CN101869101A - 一种猪精液冷冻保存方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种猪精液冷冻保存方法。该方法要求精液样品新鲜精液活力≥0.7,冷冻方法按以下操作步骤进行:1)猪精液冷冻稀释液配方与稀释液的配制;2)精液稀释;3)精液预冷平衡;4)精液的滴冻;5)精液解冻和冻后活力检查。本发明的益效是:本发明进一步丰富了猪精液冷冻保存的方法。
Description
技术领域
本发明属生物技术领域,具体是一种猪精液冷冻方法。
背景技术
国内也有一些单位研究和优化猪精液冷冻保存方法,例如:西北农林科技大学、浙江大学等,我们研制的方法与他们不同,本发明进一步丰富了猪精液冷冻保存的方法。
发明内容
本发明的目的是提供一种猪精液冷冻保存方法。
本发明解决上述技术问题的技术方案如下:
一种猪精液冷冻保存方法,精液样品要求新鲜精液活力≥0.7,冷冻方法按以下操作步骤进行:
1.猪精液冷冻稀释液配方与稀释液的配制
1.1猪精液冷冻稀释液配方
稀释液分为常温稀释液和冷冻稀释液
1.1.1常温稀释液配方
常温稀释液由葡萄糖32.0g/L;TES 12.0g/L;Tris 2.0g/L;KCl 0.8g/L;EDTA-Na2 1.5g/L;甘氨酸5.0g/L;青霉素(Penicillin G)10000IU/L,硫酸链霉(Streptomycin sulfate)0.05g/L。
1.1.2冷冻稀释液配方
在常温稀释液的基础上加卵黄20%(v/v)、甘油6%(v/v)即为冷冻稀释液。
1.2.稀释液的配制
1.2.1常温稀释液的配制
准确称量所需药品至事先经过灭菌过的圆底烧瓶中,并用封口膜封好瓶口,置于4℃冰箱中待用。
1.2.2冷冻稀释液的配制
新鲜鸡蛋1~2只,先用75%的酒精消毒鸡蛋表面、镊子及手,待酒精干后用消毒好的镊子轻轻敲开鸡蛋大头(气室)面,去掉蛋清,用10ml一次性注射器去掉针头抽取所需卵黄量,置于事先消毒好的离心管中,然后放到离心机中离心去除卵黄颗粒。如需配冷冻稀释液10ml时,取常温稀释液7.4ml,卵黄上清2ml,甘油0.6ml混匀即为冷冻稀释液,冷冻稀释液为现配现用。
2.精液稀释
2.1常温稀释液的稀释
在猪精液一经采出来后,马上用常温稀释液1∶1稀释,然后快速将精液运送回实验室,一般要求尽快把精液送回实验室。
2.2冷冻稀释液的稀释
当精液送回实验室后离心去除1/2上清,其沉淀物用II液1∶1稀释后,检查活力,如精液活力≥0.7即可进行精液预冷平衡。
3.精液预冷平衡
把稀释好的精液用4~6层纱布包裹后放置4℃冰箱中平衡4h。
4.精液的滴冻
把液氮倒到一个泡沫箱中,在液氮上方5cm高处放置一个铝盘,铝盘要预冷10min。把平衡好的精液按0.25ml/滴滴在铝盘上,盖上泡沫箱盖,10min后把颗粒铲进液氮中。
5.精液解冻和冻后活力检查
从液氮中抽取1~2颗精液放进离心管或玻璃小瓶中,置于50℃的水中进行解冻,解冻标准为精液刚好溶解1/2即可,放置37℃恒温箱中5min,然后精子图像计算机辅助分析仪(CASA)进行活力的检查,重复检查两次结果取平均值。
本发明的益效是:本发明进一步丰富了猪精液冷冻保存的方法。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步描述。
实施例
一种猪精液冷冻方法,精液样品要求新鲜精液活力≥0.7,冷冻方法按以下操作步骤进行:
1.猪精液冷冻稀释液配方与稀释液的配制
1.1猪精液冷冻稀释液配方
稀释液分为常温稀释液和冷冻稀释液
1.1.1常温稀释液配方
常温稀释液由葡萄糖32.0g/L;TES 12.0g/L;Tris 2.0g/L;KCl 0.8g/L;EDTA-Na2 1.5g/L;甘氨酸5.0g/L;青霉素(Penicillin G)10000IU/L,硫酸链霉(Streptomycin sulfate)0.05g/L。
1.1.2冷冻稀释液配方
在常温稀释液的基础上加卵黄20%(v/v)、甘油6%(v/v)即为冷冻稀释液。
1.2.稀释液的配制
1.2.1常温稀释液的配制
准确称量所需药品至事先经过灭菌过的圆底烧瓶中,并用封口膜封好瓶口,置于4℃冰箱中待用。
1.2.2冷冻稀释液的配制
新鲜鸡蛋1~2只,先用75%的酒精消毒鸡蛋表面、镊子及手,待酒精干后用消毒好的镊子轻轻敲开鸡蛋大头(气室)面,去掉蛋清,用10ml一次性注射器去掉针头抽取所需卵黄量,置于事先消毒好的离心管中,然后放到离心机中离心去除卵黄颗粒。如需配冷冻稀释液10ml时,取常温稀释液7.4ml,卵黄上清2ml,甘油0.6ml混匀即为冷冻稀释液,冷冻稀释液为现配现用。
2.精液稀释
2.1常温稀释液的稀释
在猪精液一经采出来后,马上用常温稀释液1∶1稀释,然后快速将精液运送回实验室,一般要求尽快把精液送回实验室。
2.2冷冻稀释液的稀释
当精液送回实验室后离心去除1/2上清,其沉淀物用II液1∶1稀释后,检查活力,如精液活力≥0.7即可进行精液预冷平衡。
3.精液预冷平衡
把稀释好的精液用4~6层纱布包裹后放置4℃冰箱中平衡4h。
4.精液的滴冻
把液氮倒到一个泡沫箱中,在液氮上方5cm高处放置一个铝盘,铝盘要预冷10min。把平衡好的精液按0.25ml/滴滴在铝盘上,盖上泡沫箱盖,10min后把颗粒铲进液氮中。
5.精液解冻和冻后活力检查
从液氮中抽取1~2颗精液放进离心管或玻璃小瓶中,置于50℃的水中进行解冻,解冻标准为精液刚好溶解1/2即可,放置37℃恒温箱中5min,然后精子图像计算机辅助分析仪(CASA)进行活力的检查,重复检查两次结果取平均值。
6.精子的质膜完整性
采用低渗肿胀实验(HOST)进行检测。取5μL解冻精液放入1mL低渗液中(1.3512g果糖和0.7352g二水柠檬酸钠溶于100mL去离子水)混匀。孵育30min后,取20μL精液滴在血细胞计数板上,在400×相差显微镜下观察精子尾部情况,分析精子质膜情况。
7.精子的顶体完整性
顶体完整率检查参照江一平等[10]报道的方法,用考马斯亮蓝R250染色液对解冻精子进行染色,然后在1000×显微镜下检查精子畸形率和顶体完整率。每个处理制片2张,每片记数200个以上的精子。
8.精子的线粒体活性
按JC-1试剂盒说明书操作。JC-1染液的配制:(2.5μl JC-1染料+100μL JC缓冲液+400μL超纯水)/样本,避光放置。洗涤液的配制:(400μL JC缓冲液+1600μL超纯水)/样本。取8mL解冻精液加1mL PBS轻轻打匀,2000r/min离心6min,总共洗两次。然后,加JC-1染液和PBS各0.5mL,混匀后在37℃水浴锅中蔽光孵育30min。孵育后,再用配制好的洗涤液洗两次(2000r/min离心6min)。400×荧光显微镜下观察。
9.试验设计
在冷冻稀释液基础上添加不同浓度(0,0.5g/L,1g/L,1.5g/L)的牛血清白蛋白(BSA)作为试验组。然后根据解冻后,精子的活率、活力、质膜完整率、顶体完整率和线粒体活性等指标来评定冻后精子的质量。
10.统计分析
对试验数据用SAS统计软件进行分析。把活率、活力、质膜完整率、顶体完整率和线粒体活性的数据进行反正弦转换,再用一般线性模型下的Duncan’s多重比较检验各组之间差异的显著性。
结果与分析
试验重复6次。从表1的试验分析结果可知,添加不同浓度(0.5g/L,1g/L,1.5g/L)的BSA与对照组相比,冻后精子的活率、活力、质膜完整率、顶体完整率和线粒体活性均无显著差异(P>0.05)。但通过数据可以看出,0.5g/L BSA组的冻后精子活力略高于对照组及其他试验组;质膜完整率、顶体完整率和线粒体活性也要略高于其它各组。总体来说,各个试验组与对照组相比均无显著差异(P>0.05)。
表1不同浓度的BSA对猪精液冷冻效果的影响
Table1 Effect of different BSA concentrations on cryopreservation ofboar spermatozoa
同一列数据上标不同字母表示差异显著(a、b:P<0.05)。
Figures with different letters within columns differ significantly(a、b:P<0.05).
Claims (1)
1.一种猪精液冷冻保存方法,其特征在于,精液样品要求新鲜精液活力≥0.7,冷冻方法按以下操作步骤进行:
1)猪精液冷冻稀释液配方与稀释液的配制
1.1)猪精液冷冻稀释液配方
稀释液分为常温稀释液和冷冻稀释液
1.1.1)常温稀释液配方
常温稀释液由葡萄糖32.0g/L;TES 12.0g/L;Tris 2.0g/L;KCl 0.8g/L;EDTA-Na2 1.5g/L;甘氨酸5.0g/L;青霉素(Penicillin G)10000IU/L,硫酸链霉(Streptomycin sulfate)0.05g/L;
1.1.2)冷冻稀释液配方
在常温稀释液的基础上加卵黄20%(v/v)、甘油6%(v/v)即为冷冻稀释液;
1.2.)稀释液的配制
1.2.1)常温稀释液的配制
准确称量所需药品至事先经过灭菌过的圆底烧瓶中,并用封口膜封好瓶口,置于4℃冰箱中待用;
1.2.2)冷冻稀释液的配制
新鲜鸡蛋1~2只,先用75%的酒精消毒鸡蛋表面、镊子及手,待酒精干后用消毒好的镊子轻轻敲开鸡蛋大头(气室)面,去掉蛋清,用10ml一次性注射器去掉针头抽取所需卵黄量,置于事先消毒好的离心管中,然后放到离心机中离心去除卵黄颗粒。如需配冷冻稀释液10ml时,取常温稀释液7.4ml,卵黄上清2ml,甘油0.6ml混匀即为冷冻稀释液,冷冻稀释液为现配现用;
2)精液稀释
2.1)常温稀释液的稀释
在猪精液一经采出来后,马上用常温稀释液1∶1稀释,然后快速将精液运送回实验室,一般要求尽快把精液送回实验室;
2.2)冷冻稀释液的稀释
当精液送回实验室后离心去除1/2上清,其沉淀物用II液1∶1稀释后,检查活力,如精液活力≥0.7即可进行精液预冷平衡;
3)精液预冷平衡
把稀释好的精液用4~6层纱布包裹后放置4℃冰箱中平衡4h;
4)精液的滴冻
把液氮倒到一个泡沫箱中,在液氮上方5cm高处放置一个铝盘,铝盘要预冷10min。把平衡好的精液按0.25ml/滴滴在铝盘上,盖上泡沫箱盖,10min后把颗粒铲进液氮中;
5)精液解冻和冻后活力检查
从液氮中抽取1~2颗精液放进离心管或玻璃小瓶中,置于50℃的水中进行解冻,解冻标准为精液刚好溶解1/2即可,放置37℃恒温箱中5min,然后精子图像计算机辅助分析仪(CASA)进行活力的检查,重复检查两次结果取平均值。
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