CN101836587A - 通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法,经过选材、花蕾消毒、愈伤组织的诱导、愈伤组织分化成芽、再生植株的扩繁等步骤,获得花药培养的洋桔梗再生植株。本发明诱导洋桔梗基因型成功率达100%,愈伤诱导率达35~100%,愈伤组织分化率为8~23%,分化植株最高可达28株/愈伤组织,可为F1代种子生产提供优良的亲本材料。
Description
技术领域
本发明涉及一种通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法,属于生物技术领域。
背景技术
洋桔梗(Eustoma grandiflorum)为龙胆科观赏植物,原产于北美洲,其株态轻盈,花色典雅,花形别致,茎杆叶片光洁动人,是近年来国际上流行的一种高档切花。其种源主要是从国外进口F1杂种,价格昂贵,给洋桔梗切花生产带来很多困难。
发明内容
为解决F1杂种需进口,洋桔梗切花难以生产等问题,本发明提供一种通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法。通过本发明可对洋桔梗进行花药培养产生单倍体植株,再经秋水仙素加倍处理能够产生纯合自交系,可为F1代种子生产提供优良的亲本材料。
本发明通过下列技术方案完成:一种通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法,其特征在于经过下列工艺步骤:
A.将经过预处理的花蕾灭菌后切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+0.5~3mg/L的KT+0.5~3mg/L的2,4-D,pH为5.5~6.0的诱导培养基上,在光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天,温度为20~28℃条件下,培养20~40天,取出,放入上述诱导培养基上,如此反复培养至花药上长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+0.5~3mg/L的KT+0.1~0.5mg/L的NAA,pH为5.5~6.0的分化培养基上,在温度为:20~28℃,光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天的条件下,培养20~40天,使愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入上述相同分化培养基上,在相同条件下继续培养至分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.1~0.5mg/L的BA+0.1~0.5mg/L的NAA,pH为5.5~6.0的繁殖培养基上,在温度为:20~28℃,光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天的条件下,培养20~40天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
所述A中的花蕾预处理经过下列步骤:
(1)于冬季选洋桔梗材料,取其花蕾;
(2)将花蕾装入塑料袋中,放入3~6℃冰箱中2~4天;
(3)花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒30~60秒,再用质量浓度为0.05~0.2%的HgCl2消毒10~20分种,最后用无菌水冲洗2~4次,吸干花蕾上的水分,得预处理灭菌的花蕾。
所述A中的花蕾为花萼等长于花冠或者花萼稍长于花冠的花蕾。
本发明与现有技术相比具有下列优点和效果:通过本发明之方法对洋桔梗花药进行离体培养,诱导洋桔梗基因型成功率达100%,愈伤诱导率达35~100%,愈伤组织分化率为8~23%,分化植株最高可达28株/愈伤组织,为洋桔梗单倍体植株的获得提供了可靠技术支持,进而有望解决生产洋桔梗切花困难、成本高等问题。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步描述。
实施例1
A.所用洋桔梗材料为‘Ceremony Orange’,取花萼与花冠等长的花蕾;将花蕾送冰箱内于3℃放置4天;取出花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒30秒,再用质量浓度为0.2%的HgCl2消毒10分种,最后用无菌水冲洗3次,用经过高压灭菌处理的滤纸吸干花蕾上的水分;将花蕾切除花冠,剥出花药,除去花丝后,接种在:MS+0.5mg/L的KT+0.5mg/L的2,4-D,pH为5.5的诱导培养基上,在光照强度为:1500lx,光照时间为:12小时/天,温度20℃,培养40天,取出,放入新的与上述相同的诱导培养基上至花药长出愈伤组织,切下愈伤组织,未长愈伤组织的花药继续在相同的诱导培养基中,相同培养条件下进行继代培养至长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+0.5mg/L的KT+0.1mg/L的NAA,pH为5.5的分化培养基上,在温度20℃,光照强度为:1500lx,光照12小时/天的条件下,培养40天,从愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织再放入相同配方的上述分化培养基上、在相同培养条件下继续培养分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.1mg/L的BA+0.1mg/L的NAA,pH为5.5的繁殖培养基上,在温度为20℃,光照强度为:1500lx,光照时间为:12小时/天,培养40天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
该实施例的愈伤诱导率达77.3%,愈伤组织分化率为12.1%。
实施例2
A.选洋桔梗材料‘Art Peach’,取花萼稍长于花冠的花蕾;将花蕾放入冰箱中于6℃放置2天;取出花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒60秒,再用质量浓度为0.05%的HgCl2消毒20分种,最后用无菌水冲洗2次,用经过高压灭菌处理的滤纸吸干花蕾上的水分;将花蕾切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+3mg/L的KT+3mg/L的2,4-D,pH为6.0的诱导培养基上,在光照强度为:2000lx,光照时间为:8小时/天,温度28℃,培养20天,取出,放入上述诱导培养基上至花药长出愈伤组织,切下愈伤组织,未长愈伤组织的花药继续在相同的诱导培养基中,相同培养条件下进行继代培养至长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+3mg/L的KT+0.5mg/L的NAA,pH为6.0的分化培养基上,在温度28℃,光照强度为:2000lx,光照8小时/天的条件下,培养20天,从愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入相同配方的上述分化培养基上,在相同培养条件下继续分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.5mg/L的BA+0.5mg/L的NAA,pH为6.0的繁殖培养基上,在温度为28℃,光照强度为:2000lx,光照时间为:8小时/天,培养20天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
该例愈伤诱导率达100%,愈伤组织分化率为15.6%。
实施例3
A.选洋桔梗材料‘Cessna White’,取花萼稍长于花冠的花蕾;将花蕾放入冰箱内于4℃放置3天;花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒40秒,再用质量浓度为0.1%的HgCl2消毒15分种,最后用无菌水冲洗4次,用经过高压灭菌处理的滤纸吸干花蕾上的水分;将花蕾切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+1mg/L的KT+1mg/L的2,4-D,pH为5.8的诱导培养基上,在光照强度为:1800lx,光照时间为:10小时/天,温度25℃,培养30天,取出,放入上述诱导培养基上至花药长出愈伤组织,切下愈伤组织,未长愈伤组织的花药继续在相同的诱导培养基中,相同培养条件下进行继代培养至长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+1.2mg/L的KT+0.3mg/L的NAA,pH为5.8的分化培养基上,在温度25℃,光照强度为:1800lx,光照10小时/天的条件下,培养30天,从愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入相同配方的上述分化培养基上,在相同培养条件下继续分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.2mg/L的BA+0.2mg/L的NAA,pH为5.8的繁殖培养基上,在温度为25℃,光照强度为:1800lx,光照时间为:10小时/天,培养30天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
该例愈伤诱导率达92.3%,愈伤组织分化率为17.7%。
实施例4
A.选洋桔梗材料‘Cessna Green’,取花萼稍长于花冠的花蕾;将花蕾放入冰箱内于4℃放置2天;取出花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒50秒,再用质量浓度为0.1%的HgCl2消毒15分种,最后用无菌水冲洗3次,用经过高压灭菌处理的滤纸吸干花蕾上的水分;将花蕾切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+2mg/L的KT+2mg/L的2,4-D,pH为5.5的诱导培养基上,在光照强度为:2000lx,光照时间为:10小时/天,温度25℃,培养30天,取出,放入上述诱导培养基上至花药长出愈伤组织,切下愈伤组织,未长愈伤组织的花药继续在相同的诱导培养基中,相同培养条件下进行继代培养至长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+1.0mg/L KT+0.5mg/L NAA,pH为5.5的分化培养基上,在温度25℃,光照强度为:2000lx,光照10小时/天的条件下,培养30天,从愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入相同配方的上述分化培养基上,在相同培养条件下继续分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.3mg/L BA+0.1mg/L NAA,pH为5.5的繁殖培养基上,在温度为25℃,光照强度为:2000lx,光照时间为:10小时/天,培养30天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
该例愈伤诱导率达85.7%,愈伤组织分化率为22.2%。
实施例5
A.选洋桔梗材料‘Volet Spring’,取花萼等长于花冠的花蕾;将花蕾于4℃冰箱中放置2天;取出花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒30秒,再用质量浓度为0.2%的HgCl2消毒10分种,最后用无菌水冲洗2次,用经过高压灭菌处理的滤纸吸干花蕾上的水分;将花蕾切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+3mg/L KT+1mg/L 2,4-D,pH为6.0的诱导培养基上,在光照强度为:2000lx,光照时间为:8小时/天,温度25℃,培养40天,花药长出愈伤组织,切下愈伤组织,未长愈伤组织的花药继续在相同的诱导培养基中,相同培养条件下进行继代培养至长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+1.0mg/L KT+0.3mg/L NAA,pH为6.0的分化培养基上,在温度25℃,光照强度为:2000lx,光照12小时/天的条件下,培养40天,从愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入相同配方的上述分化培养基上,在相同培养条件下继续分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.4mg/L BA+0.2mg/L NAA,pH为6.0的繁殖培养基上,在温度为25℃,光照强度为:2000lx,光照时间为:12小时/天,培养30天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
该例愈伤诱导率达69.2%,愈伤组织分化率为14.3%。
Claims (3)
1.一种通过花药培养获得洋桔梗再生植株的方法,其特征在于经过下列各步骤:
A.将经过预处理的花蕾灭菌后切除花冠,剥出花药,除去花丝,将花药接种在:MS+0.5~3mg/L的KT+0.5~3mg/L的2,4-D,pH为5.5~6.0的诱导培养基上,在光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天,温度为:20~28℃条件下,培养20~40天,取出,放入上述诱导培养基上,如此反复培养至花药上长出愈伤组织;
B.将A中继代培养的愈伤组织置于:MS+0.5~3mg/L的KT+0.1~0.5mg/L的NAA,pH为5.5~6.0的分化培养基上,在温度为:20~28℃,光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天的条件下,培养20~40天,使愈伤组织分化出芽,未分化的愈伤组织继续放入上述相同分化培养基上,在相同条件下继续培养至分化出芽;
C.将B中分化出的芽置于:MS+0.1~0.5mg/L的BA+0.1~0.5mg/L的NAA,pH为5.5~6.0的繁殖培养基上,在温度为:20~28℃,光照强度为:1500~2000lx,光照时间为:8~12小时/天的条件下,培养20~40天,即获得花药培养的洋桔梗再生植株。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于所述A中预处理为经过下列步骤:
(1)于冬季选洋桔梗材料,取其花蕾;
(2)将花蕾装入塑料袋中,放入3~6℃冰箱中2~4天;
(3)花蕾用体积浓度为75%的酒精消毒30~60秒,再用质量浓度为0.05~0.2%的HgCl2消毒10~20分种,最后用无菌水冲洗2~4次,吸干花蕾上的水分,得预处理灭菌的花蕾。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于所述A中的花蕾为花萼等长于花冠或者花萼稍长于花冠的花蕾。
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