发明内容:
(一)需要解决的技术问题
本发明为了解决小细胞肺癌早期诊断的特异性问题,以化学发光免疫分析技术为技术平台,建立了proGRP(31-98)的免疫分析方法,并实现试剂盒的制备,满足临床检测的需要。本发明采用链亲合素-生物素系统包被抗体,节省抗体原料用量,延长包被固相的使用期限,从而为试剂盒的广泛推广应用提供了有利因素。
本发明的目的是提供一种定量测定proGRP(31-98)化学发光免疫分析试剂盒,并提供一种制备上述试剂盒的方法。
(二)技术方案
本发明所述检测proGRP(31-98)化学发光免疫分析方法及组装试剂盒中包括:proGRP(31-98)校准品;proGRP(31-98)单克隆抗体包被的微孔板;辣根过氧化物酶标记的proGRP单克隆抗体;发光底物液;浓缩洗涤液。
本发明所述试剂盒包括以下制备步骤:
a、选择合适的标准品稀释液;以选择的牛血清稀释液稀释proGRP(31-98)纯品,稀释浓度分别为0pg/ml、30pg/ml、150pg/ml、300pg/ml、600pg/ml、1200pg/ml;
b、proGRP(31-98)单克隆抗体微孔板:首先,在微孔板表面包被链亲合素,同时生物素化proGRP(31-98)单克隆抗体;进一步将生物素化proGRP抗体加入链亲合素包被微孔板中,形成proGRP(31-98)单克隆抗体包被微孔板;抗体包被的微孔板需要经过封闭,再干燥密封,置于4℃密封储存备用。
c、采用戊二醛偶联法制备辣根过氧化物酶标记的proGRP(31-98)单克隆抗体;选择Tris缓冲液做酶标记物稀释液,及确定酶标记物稀释浓度为1:10000;其中Tris缓冲液配制酶标记物稀释液如下:三羟甲基氨基甲烷12.1g/L,氯化钠8.8g/L,牛血清白蛋白10g/L,Proclin300生物防腐剂1.0ml/L,食品红0.1ml/L,盐酸调pH至7.5,纯化水定容。
d、配制化学发光底物液;本发明所述发光底物液包括A液与B液,其中A液包括10mM鲁米诺、0.3mM4-羟基联苯、0.05mM4-碘苯硼酸、0.2M pH8.7硼酸-硼砂缓冲液,其pH值为8.0~10.0;所述化学发光底物B液,包括3.5mM过氧化脲、0.1%Tween20、0.2M pH7.2磷酸盐缓冲液,其pH值为7.0~7.6。使用时A液B液1:1混合使用。
e、配制浓缩洗涤液;本发明所述浓缩洗涤液稀释20倍使用。具体的配制如下:磷酸氢二钠58g/L,磷酸二氢钠2g/L,氯化钠160g/L,Tween-20 1ml/L,Proclin 300生物防腐剂1ml/L,去离子水定容,盐酸调pH至7.5使用时稀释20倍使用。
f、分装上述校准品、抗体包被微孔板、酶标记物、化学发光底物液、浓缩洗涤液,并组装为成品试剂盒。
本发明“胃泌素释放肽前体化学发光免疫分析测定试剂盒”一方面应用化学发光免疫分析技术实现灵敏地检测小细胞肺癌人体内的胃泌素释放肽前体含量,对于小细胞肺癌患者的早期诊断、早期治疗提供可靠的临床参考价值;另一方面结合使用链亲合素-生物素化包被系统,大大提高了胃泌素释放肽前体检测的线性范围、降低了包被抗体的用量、增强了包被固相的稳定性。总体来说,本发明试剂盒具有集实用性、先进性、经济性于一体等优点。
该“胃泌素释放肽前体化学发光免疫分析测定试剂盒”采用双抗体夹心免疫反应模式,即酶标记的抗体与载体上包被的抗体和被测样品的胃泌素释放肽前体结合形成双抗体夹心复合物。试剂盒各项指标均符合临床应用的要求。试剂盒在使用过程中,操作简便适用性广,既可应用于开放式的半自动化学发光测量仪,也可用于全自动的测量系统,可实现大批量快速检测,使用成本低,更易推广应用,特别适合广大中小医院推广使用,为临床诊断和科研工作提供一种非常有价值的检测手段。
具体实施方式
实施例1 制备本发明的胃泌素释放肽前体(31-98)化学法光免疫分析测定试剂盒
一.标准品的配制
选择成牛血清为标准品基质液稀释proGRP(31-98)纯品,浓度分别为0pg/ml、30pg/ml、150pg/ml、300pg/ml、600pg/ml、1200pg/ml;
二.酶标记物的制备及酶稀释浓度的确定
1、改良的戊二醛交联法标记辣根过氧化物酶(HRP),其步骤如下:
a、将12mgHRP溶于含5mgproGRP单克隆抗体的1mlPBS(0.1Mol/L pH6.8)中,缓慢搅拌下加入1%戊二醛溶液4mL,置室温3小时。
b、加入0.1mL0.2mol/L赖氨酸(0.29g溶于10mL蒸馏水),4℃放置2h,以封闭残留的醛基,终止反应。
c、装入透析袋,以0.01mol/L、pH7.2的PBS,4℃透析过夜。
d、将透析产物移入试剂瓶加入1%BSA,再加入等量60%甘油,混匀,小量分装,-20℃保存。
2、酶标抗体浓度选定
试验证明,采用方阵法选择酶标抗体的工作浓度范围为1:10000。
3、酶标记抗体稀释液的选择
采用棋盘试验确定的酶标记抗体的稀释液组成为:
试剂 | 分子式 | 终浓度 | 分子量 | 1000mL用量 |
三羟甲基氨基甲烷 | C4H11NO3 | 0.10M | 121.09 | 12.1g |
盐酸 | HCI | | | 调pH至7.5 |
氯化钠 | NaCl | 150mM | 58.44 | 8.8g |
牛血清白蛋白 | BSA | 1.0% | | 10g |
生物防腐剂 | Proclin300 | 0.1% | | 1.0ml |
食品红 | | 0.005‰ | | 0.1ml |
纯化水 | H2O | | | 加至1000mL |
三.固相抗体的制备
a、链亲合素包被微孔板:pH9.6,0.05mol/L碳酸缓冲液稀释链霉亲和素到10mg/L,制成抗体包被液,然后取100μL/孔加入微孔板,4℃过夜,次日取出,洗涤3次。洗板液用0.05%吐温20,pH7.4 0.01mol/L PBS。再用牛血清封闭液37℃封闭30min;具体的牛血清封闭液配方如下:
试剂 | 分子式 | 终浓度 | 分子量 | 1000mL用量 |
磷酸二氢钠 | NaH2PO4·2H2O | 1.28mM | 156.01 | 0.2g |
磷酸氢二钠 | Na2HPO4·12H2O | 8.10mM | 358.14 | 2.9g |
牛血清 | | 10% | | 100ml |
生物防腐剂 | Proclin300 | 0.1% | | 1.0ml |
纯化水 | H2O | | | 加至1000mL |
b、生物素化proGRP(31-98)抗体:用0.1M NaHCO3溶液将纯化的proGRP(31-98)单克隆抗体稀释为1mg/ml,将生物素酰一N羟基丁二酰亚胺酯用二甲基甲酰胺溶解,浓度20mg/ml,在1ml抗体溶液中加入BNHS液20μl,混匀后置室温反应2小时,然后在4℃中对PBS透析2小时,滴定工作浓度后即可使用。
c、包被proGRP(31-98)单克隆抗体:将生物素化proGRP(31-98)抗体100μL/孔加入链亲合素化微孔板中,37℃温育3小时;
d、清洗、封闭:用pH值为7.4、含吐温一20和叠氮化钠防腐剂的磷酸盐洗涤缓冲液清洗3~5次,再用水解明胶封闭液封闭,干燥密封于4℃保存。封闭配方如下:
试剂 | 分子式 | 终浓度 | 分子量 | 1000mL用量 |
磷酸二氢钠 | NaH2PO4·2H2O | 1.28mM | 156.01 | 0.2g |
磷酸氢二钠 | Na2HPO4·12H2O | 8.10mM | 358.14 | 2.9g |
水解明胶 | | 1.0% | | 10g |
生物防腐剂 | Proclin300 | 0.1% | | 1.0ml |
纯化水 | H2O | | | 加至1000mL |
四、化学发光底物A液
鲁米诺 10mM 1.7716g
4-羟基联苯 0.3mM 0.051g
4-碘苯硼酸 0.05mM 0.012g
硼酸 11.4g
硼砂 4.9g
双蒸水 定溶 1000mL
pH 8.0~10.0
五、化学发光底物B液
过氧化脲 3.5mM 0.329g
Tween20 0.1% 1ml
Na2HPO4·12H2O 51.58g
NaH2PO4·2H2O 8.74g
双蒸水 定溶 1000mL
pH 7.0~7.6
使用时A液与B液等比例混合。
六、洗涤液缓冲液
Na2HPO4·12H2O 58g
NaH2PO4·2H2O 2g
NaCl 160g
Tween-20 1ml
Proclin300 1ml
去离子水 1000ml
七、成品试剂盒的组装
上述六个步骤所得产品分装、组合后即为试剂盒试剂组成。作为成品试剂盒,需要对所制备的试剂盒进行临床应用的考察。
实施例2 本发明的胃泌素释放肽前体化学法光免疫分析测定试剂盒使用方法
一.样品前处理
取人的空腹血清,2000-4000rpm离心10min,取上清液,无需其它特殊处理便可进行分析。
二.检测步骤
使用本试剂盒进行检测前,需先取出试剂盒内分装好的各组分:包被板、酶标记物、标准品室温静置,平衡到室温后使用;将恒温箱或者水浴锅调至37℃;准备好合适的微量加样器及对应吸头并且检查化学发光仪是否正常工作。
使用本试剂盒的具体操作步骤如下:
1)取出试剂盒平衡到室温;
2)每孔加入25μL血清样品或系列标准品溶液,再加入标记物50μL,每次试验设空白1孔,然后除空白孔外,每孔加辣根过氧化物酶标记抗体溶液50μL;
3)37℃恒温温育45分钟;
4)取出微孔板,弃去溶液。用稀释20倍后的洗涤液洗板5次;
5)每孔加发光底物100μL,室温(22~28℃)静置5分钟;
6)用化学发光仪测相对发光值(RLU),测量时间1秒/孔;
7)分别对校准品浓度和对应RLU取对数,在建立的双对数曲线上建立标准曲线,以各待测血清RLU值在标准曲线上查出该血清的proGRP(31-98)的浓度,计算检测结果;
8)打印检测结果报告。
本试剂盒的校准曲线见附图1,其中,I为发光强度,C为proGRP(31-98)浓度(单位为pg/mL),相关系数R2=0.9983,Y=1.8549+1.3149X。
实施例3 本发明的试剂盒的方法学指标
按照本领域中常规的制造及检定规程对实施例1中制备的试剂盒进行检定,结果如下:
1.试剂盒灵敏度
灵敏度即可与零剂量点可区分开的浓度。同时测定10个零标准点,得RLU的平均值与标准偏差。计算RLU平均值与两倍标准偏差的差值,由内插法,从工作曲线中得出其对应浓度值。实验中测定的灵敏度为1.37pg/ml。
2.试剂盒精密度
将实施例1中制备的试剂盒分别取三批进行精密度实验。以实施例1中所抽取的试剂盒测定三份高\中\低值样本110pg/mL和220pg/mL的proGRP样品各8次。计算测定浓度的变异系数。实施例1中的三批试剂盒的测定结果如表2、表3,表4所示,结果表明变异系数小于8.0%。
表1.低值血清20pg/ml的变异系数
表2.中值血清样本389pg/ml的变异系数
表3.高值血清样本890pg/ml的变异系数
3.试剂盒准确度测定
在混合人血清中加入一定值1000pg/ml,537pg/ml,60pg/ml的proGRP(31-98)标准品,配成溶液,浓度分别为。再根据工作曲线,实际检测该溶液中proGRP含量.则样品的测定值减去血清本底值,再除以proGRP(31-98)标准浓度值,得到回收率。回收率如表2所示,三个样本的回收率分别为95%,93%,104%,即回收率在95-104%之间,符合临床应用的需要.
表4 血清样本回收率/方法准确度试验
人血清本底值pg/ml | 标准浓度值pg/ml | 实际检测值pg/ml | 回收率% |
108.5 | 1000 | 1057.6 | 95 |
24.5 | 537 | 542.8 | 96 |
3.74 | 60 | 69.58 | 110 |
4.健全性试验
用成牛血清稀释高值血清,检测稀释血清的proGRP含量值,一方面可以分析高值血清稀释后测值的可靠性,另一方面分析成牛血清作基质是否与人血清有交叉。如附图2所示是成牛血清以1:2,1:4,1:8,1:16稀释高值样品的测值曲线.由相关系数R=0.9998表明稀释倍数与浓度呈良好的线性关系,牛血清缓冲液作基质不存在基质效应。
5.特异性实验
在血清样本中加入小细胞肝癌联合检测的肿瘤标志物,如癌胚抗原(CEA)、鳞状上皮细胞抗原(SCC)、组织角蛋白(CYFRA,TPA,TPS),神经特异性抗原(NSE),通过测值确定与proGRP(31-98)的交叉性。结果如下,可以看出,交叉反应率均在0.5-3%之间,符合临床要求。
经过上面所述大量实验,得出本发明试剂盒的方法学指标如下:
检测范围:0~1200pg/ml;
灵敏度:最小检出限为1.37pg/ml;
精密度:变异系数小于8.0%(n=10);
准确性:加标回收率在95~110%之间;
特异性:和CEA、SCC、CYFRA、TPA、TPS、NSE、常见小细胞肺癌肿瘤标志物的交叉反应率小于3%。
实施例4 本发明的试剂盒同ELSIA试剂盒临床血样测值比对
本发明试剂盒检测100份临床血清样品,其中正常血清15例,非小细胞肺癌15例,小细胞肺癌70例。测值及阴性、阳性检出结果如表5所示。
表5 本发明试剂盒对100例临床血清的测值与临床诊断对照
编号 | 诊断结果 | 测值pg/ml | 编号 | 诊断结果 | 测值pg/ml | 编号 | 诊断结果 | 测值pg/ml |
1 | 正常 | 2.62 | 35 | SCLC | 1042.4 | 69 | SCLC | 115.59 |
2 | 正常 | 37.91 | 36 | SCLC | 1103.6 | 70 | SCLC | 387.45 |
3 | 正常 | 40.04 | 37 | SCLC | 974.20 | 71 | SCLC | 516.36 |
4 | 正常 | 4.46 | 38 | SCLC | 583.86 | 72 | SCLC | 965.09 |
5 | 正常 | 32.88 | 39 | SCLC | 437.46 | 73 | SCLC | 865.82 |
6 | 正常 | 20.34 | 40 | SCLC | 532.39 | 74 | SCLC | 146.04 |
7 | 正常 | 15.89 | 41 | SCLC | 675.17 | 75 | SCLC | 1075.9 |
8 | 正常 | 23.98 | 42 | SCLC | 188.94 | 76 | SCLC | 753.48 |
9 | 正常 | 7.18 | 43 | SCLC | 357.95 | 77 | SCLC | 910.86 |
10 | 正常 | 11.12 | 44 | SCLC | 447.35 | 78 | SCLC | 818.91 |
11 | 正常 | 19.37 | 45 | SCLC | 1190.3 | 79 | SCLC | 159.28 |
12 | 正常 | 54.61 | 46 | SCLC | 1032.0 | 80 | SCLC | 786.07 |
13 | 正常 | 8.84 | 47 | SCLC | 495.96 | 81 | SCLC | 25.97 |
14 | 正常 | 31.18 | 48 | SCLC | 149.06 | 82 | SCLC | 1021.6 |
15 | 正常 | 7.08 | 49 | SCLC | 205.16 | 83 | SCLC | 883.4 |
16 | NSCLC | 67.43 | 50 | SCLC | 106.48 | 84 | SCLC | 948.53 |
17 | NSCLC | 10.77 | 51 | SCLC | 675.34 | 85 | SCLC | 742.50 |
18 | NSCLC | 44.13 | 52 | SCLC | 379.48 | 86 | SCLC | 479.01 |
19 | NSCLC | 74.44 | 53 | SCLC | 720.08 | 87 | SCLC | 202.34 |
20 | NSCLC | 62.27 | 54 | SCLC | 27.01 | 88 | SCLC | 394.78 |
21 | NSCLC | 11.33 | 55 | SCLC | 111.03 | 89 | SCLC | 652.17 |
22 | NSCLC | 93.09 | 56 | SCLC | 407.72 | 90 | SCLC | 156.28 |
23 | NSCLC | 42.92 | 57 | SCLC | 247.11 | 91 | SCLC | 326.58 |
24 | NSCLC | 6.86 | 58 | SCLC | 118.34 | 92 | SCLC | 686.58 |
25 | NSCLC | 14.10 | 59 | SCLC | 441.09 | 93 | SCLC | 208.43 |
26 | NSCLC | 56.84 | 60 | SCLC | 379.59 | 94 | SCLC | 910.01 |
27 | NSCLC | 39.32 | 61 | SCLC | 207.31 | 95 | SCLC | 848.62 |
28 | NSCLC | 53.60 | 62 | SCLC | 399.61 | 96 | SCLC | 721.53 |
29 | NSCLC | 66.16 | 63 | SCLC | 474.77 | 97 | SCLC | 276.01 |
30 | NSCLC | 23.32 | 64 | SCLC | 432.32 | 98 | SCLC | 959.31 |
31 | SCLC | 119.18 | 65 | SCLC | 490.46 | 99 | SCLC | 249.77 |
32 | SCLC | 257.51 | 66 | SCLC | 364.43 | 100 | SCLC | 1222.3 |
33 | SCLC | 462.93 | 67 | SCLC | 473.87 | | | |
34 | SCLC | 254.47 | 68 | SCLC | 200.81 | | | |
用本发明的试剂盒和德国IBL公司ELSIA试剂盒对100份临床血清样品同时进行检测。其检测结果见附图3,以本发明方法测定的血样proGRP结果为横坐标,以ELSIA试剂盒测定的结果为纵坐标作回归分析,相关系数r2=0.9796。经统计学处理结果表明,本发明方法同ELSIA试剂盒临床血样测值相关性良好。
本发明为了满足小细胞肺癌早期诊断的需要,并区分非小细胞肺癌,解决了现行的小细胞肺癌早期诊断难题,即采用高灵敏的化学发光免疫分析方法结合链亲合素-生物素包被系统,提供了一种高灵敏、高特异、操作简便、价格适宜的定量检测proGRP(31-98)化学发光免疫试剂盒。本试剂盒不需要昂贵的检测仪器,便于临床推广,具有良好的市场价值。