BG64565B1 - Вектор за експресия на волски хормон на растежа и метод за неговото масово производство - Google Patents

Вектор за експресия на волски хормон на растежа и метод за неговото масово производство Download PDF

Info

Publication number
BG64565B1
BG64565B1 BG100264A BG10026495A BG64565B1 BG 64565 B1 BG64565 B1 BG 64565B1 BG 100264 A BG100264 A BG 100264A BG 10026495 A BG10026495 A BG 10026495A BG 64565 B1 BG64565 B1 BG 64565B1
Authority
BG
Bulgaria
Prior art keywords
growth hormone
bovine growth
gene
coli
expression vector
Prior art date
Application number
BG100264A
Other languages
English (en)
Other versions
BG100264A (bg
Inventor
Chun-Hyung Kim
Jooug-Myung Cho
Original Assignee
Lg Chemical Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lg Chemical Ltd filed Critical Lg Chemical Ltd
Publication of BG100264A publication Critical patent/BG100264A/bg
Publication of BG64565B1 publication Critical patent/BG64565B1/bg

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/36Vector systems having a special element relevant for transcription being a transcription termination element

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретението се отнася до получаващ вектор, включващ ген на телешки хормон на растежа (вgн), в който нуклеотидната последователност в 5'-крайния си участък е без изменение на аминокиселинната последователност, кодирана в нея. Използва се тrра копиращ завършващ ген, въведен след 3'-крайния участък на модифицирания вgн ген за трансформиране на е.соli клетка за масово производство на вgн. а

Description

Област на техниката
Настоящото изобретение се отнася до метод за масово производство на волски хормон на растежа (BGH). По-специално то се отнася до вектора за експресия, обхващащ изменен ген на волския хормон на растежа, където нуклеотидната секвенция в областта на 5’-ия край е модифицирана без промяна на аминокиселинната секвенция, кодирана в него, a trpA терминатор на транскрипцията е инсериран след 3 ’-ия край на модифицирания ген на волски хормон на растежа; Е. coli клетка, трансформирана с експресионен вектор; до метод за масово производство на волски хормон на растежа, който обхваща култивиране на Е. coli трансформант и отделяне на волски хормони на растежа от културата.
Предшестващо състояние на техниката
Стероидни растежни промотори от животински произход като Estradiol-Compudose (Eli Lilly), Estradiol Benzoate-Synovax (Syntax Agribusiness Inc.) и Zeramol-Ralgro (International Minerals and Chemicals) са използвани при отглеждането на добитък за увеличаване на хранителната ефективност и увеличаване на теглото на добитъка. Все пак, употребата на такива стероидни растежни промотори от животински произход се ограничи, поради факта, че същите са разтворими в мазнини и следователно имат дълго преседяване в тъканите на добитъка, което може да има негативен резултат върху хора при консумация.
За разлика от това, животинските растежни хормони, които се произвеждат и отделят от хипофизната жлеза на животните, не са разтворими в мазнини, показват специфики на видовете и се съобщава, че подпомагат растежа и млекодобива от добитъка и че увеличават хранителната ефективност (Бауман, Д. Е. и колектив, Journal of Animal Sciences, 60, 583 (1985); Харт, И.С. и колектив, Journal of Endocrinology, 105, 189 (1985); Нюзуоч, 17 юни 1985; и Wall Street Journal, 22 юли 1986).
След 1940 г. хормоните на естествените животински хормони на растежа, отделени и пречистени от хипофизните жлези на животните, се използват за ускоряване на растежа на животните, но тяхното приложение при отглеждането 5 на животни е ограничено от ограничената доставка на хормони. Изследвания в последно време в областта на генетичните технологии позволяват масово производство на животински хормони на растежа чрез употреба на микроорга10 низми, например Е. coli.
Π. X. Сийбург и колектив разделят допълнителната ДНК, кодираща волския хормон на растежа, от волската хипофизна жлеза; определят нуклеотидна секвенция на сДНК и аминоки15 селинната секвенция на волския хормон на растежа; клонират сДНК във вектор на експресия на Е. coli, обхващащ trp промотор и експресиран волски хормон на растежа в Е. coli, който се трансформира с вектора (ДНК, 2, 37(1983).
Следтоваса правени много опити за увеличаване на степента на експресия на волските хормони на растежа в Е. coli.
Например X. Дж. Джордж и колектив откриват, че степента на експресия зависи от нук25 леотидната секвенция и дължината на региона между рибозомосвързващия сайт и началния кодон, ATG; и произвеждат волски хормони на растежа в количество, равняващо се на 15% от всички протеини, произведени в Е. coli (ДНК, 4,273, 30 (1985).
Олсен и колектив произвеждат волски хормони на растежа в количество между 10% и 15% на базата на общото количество протеини, произведени в клетка на Е. coli, чрез отглежда35 не на трансформираната клетка с вектор на експресия, обхващаща модифициран ген на волски хормон на растежа, в който регионът между рибозомо-свързващия сайт и началния кодон, ATG, е А-Т богат, под контрола на trp промотор 40 (J. Biotechnol., 9, 179, (1989).
Уотсън и колектив произвеждат волски хормони на растежа в количество 20% на базата на общото количество протеини, произведени от клетка на Е. coli, чрез отглеждане на трансфор4 5 мирана клетка с плазмид, обхващащ модифициран ген на волски хормон на растежа, в който един от нуклеотидите, кодиращ четири аминокиселини в региона наЬГтерминала на волския хормон на растежа, е променен чрез случайна му50 тация (Gene, 86, 137 (1990).
Също така е публикувано, че модифициран ген на волски хормон на растежа се приготвя с употребата на кодони, предпочитани от Е. coli; конструира се вектор на експресия за волски хормон на растежа чрез инсериране на ген на волски хормон на растежа във вектор на Е. coli, обхващащ ген на хормон за растеж на сьомга под контрола на trp промотор и лигиране на синтетична връзка между гена на хормон на растежа на сьомга и гена на волския хормон на растежа и се произвежда волски хормон на растежа в количество 27% на базата на общото количество протеини, получени след отглеждане на клетка на Е. coli, трансформирана с вектора (корейски патент публикация № 92-3665).
Максималното количество волски хормон на растежа, което може да бъде произведено чрез процесите от известното ниво на техниката, е ограничено до 30% на базата на общото количество протеини в Е. coli.
От друга страна, транскрипционният терминатор trpA е описан като много ефективен rho-независим терминатор (Кристи, Г. Е. и колектив, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 78,4180 (1981), и следователно желаният протеин може да бъде масово произвеждан, докато се ограничава производството на нежеланите протеини, получени от плазмид, чрез внедряване на транскрипционен терминатор trpA след 3 ’-пя край на гена, кодиращ търсения протеин (Генц, Р. и колектив, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 78, 4936(1981).
Матсуки и колектив получават калмодулин от клетки на плъх в количество 30% на базата на общото количество протеини в Е. coli чрез култивиране на клетка с плазмид, обхващащ trpA промотор, ген калмодулин и транскрипционен терминатор trpA (Biotech. Appl. Biochem, 12, 284(1990).
Сато и колектив съобщават, че когато интерлевкин-2 ген е извлечен чрез използване на плазмид, обхващащ интерлевкин-2 ген, под контрола на trpA промотор и транскрипционен терминатор trpA след 3’-ия край на интерлевкин-2 гена, се получава около 5 пъти по-голямо количество на интерлевкин-2 ген в сравнение с произведеното чрез контролна група, където не е внедрен trpA терминатор (J. Biochem., 101, 525 (1987).
Независимо от тези разработки продължава да съществува необходимост от разработване на метод за масово производство на волски хормон на растежа в търговски изпълним и икономически мащаб.
Техническа същност на изобретението
Предмет на настоящото изобретение е да представи експресионен вектор, който да е подходящ за масово производство на волски хормон на растежа.
Друга цел на настоящото изобретение е да осигури като приемник клетка, трансформирана с експресионния вектор.
Предмет на настоящото изобретение е да представи и метод за масово производство на волски хормон на растежа, включващ култивиране на трансформанта.
Съгласно настоящото изобретение е представен подобрен метод за масово производство на волски хормон на растежа чрез конструиране на вектор на експресия, обхващащ модифициран ген на волски хормон на растежа, където нуклеотидната секвенция в областта на 5'-ия край е модифицирана без промяна на аминокиселинната секвенция, кодирана в него, а транскрипционен терминатор trpA е внедрен след 3'-ия край на модифицирания ген на волски хормон на растежа. Изобретението представя и производство на волски хормон на растежа в количество, по-голямо от 50% на базата на общото количество протеини, получени чрез отглеждане на Е. coli клетка, трансформирана чрез споменатия вектор.
Описание на приложените фигури
Целите и характеристиките на настоящото изобретение се поясняват в следващото описание на изобретението, разгледано в съчетание с приложените фигури, от които:
фигура 1 представлява сравнение на нуклеотидната секвенция в областта на 5'-ия край на гена на волски хормон на растежа (ptrphs BGH 1 -13) с нейна разновидност (ptrphs BGHRAN #5);
фигура 2А показва схематична диаграма за конструиране на плазмид ptrphs BGHRAN, обхващащ модифициран ген на волски хормон на растежа;
фигура 2В разкрива схематична диаграма за конструиране на плазмиди ptrp3H BGH 1 -13 и ptrp3H BGHRA, обхващащи ген на волски хормон на растежа или негова разновидност заедно с транскрипционен терминатор trpA, лигиран в 3'-ия край, съответно;
фигура 3 показва резултата от SDS-полиакриламид гел електрофореза (PAGE), използваща преципитати на Е. coli клетка, трансформирана с плазмиди ptrphs BGH 1-13, ptrphs BGHRAN #5, ptrp3H BGH 1-13 или ptrp3H BGHRAN; и фигура 4 представя резултатите от определяне на количеството волски хормон на растежа с денсиметър, което количество се извлича в Е. coli клетки, трансформирани с плазмиди ptrphs BGH 1-13, ptrphs BGHRAN #5,ptrp3HBGH 1 -13 и ptrp3H BGHRAN, съответно.
Подробно описание на изобретението
В съответствие с един от аспектите на настоящото изобретение е представен вектор на експресия за масово производство на волски хормон на растежа, който вектор обхваща модифициран ген на волски хормон на растежа и транскрипционен терминатор trpA, инсериран след 3 ’-ия край на модифицирания ген.
Модифицираният ген на волски хормон на растежа съгласно настоящото изобретение има модифицирана нуклеотидна секвенция в областта на 5'-ия й край за минимизиране на формирането на вторична структура в тРНК и увеличаване на степента на експресия, докато се кодира непроменената аминокиселинна секвенция от нормален волски хормон на растежа. Модифицираният ген на волски хормон на растежа съгласно настоящото изобретение преференциално има в областта на 5'-ия край нуклеотидна секвенция от:
5'-ATG GCT TTT CCG GCT ATG TCT CTA TCT GGC CTA TTC GCA AAT GCC GTT CTT CGA GCT CAG CAT CTT CAT CAG CTG GCT-3' където ATG е начален кодон на ген на волски хормон на растежа.
Векторът на експресия в съответствие с настоящото изобретение може да се приготви съгласно всеки конвенционален метод за генетична рекомбинация или метод за синтезиране на гени, например съгласно описаната по-долу процедура.
Първоначално се синтезират произволни праймъри, базирани на информацията за нуклеотидните секвенции на ген на волски хормон на растежа (виж корейски патент, публикация No 92-3665). Тези произволни праймъри са предназначени за въвеждане на волски хормон на растежа на разпознавателен сайт за ограничаване по отношение на ензим SacI и за произволно модифициране на нуклеотидната секвенция, кодираща волски хормон на растежа, без промяна на аминокиселинната секвенция, кодирана в него.
Също така е приготвен праймър, който отговаря на част от Amp ген в рекомбиниран вектор ptrphs BGH 1-13, обхващащ ген на волски хормон на растежа (виж корейски патент, публикация No 92-3665; АТСС 68975 (депозиран на 6 май 1992) и има разпознавателен сайт по отношение на рестрикционен ензим Pvul. Освен това, се извършва PCR чрез използване на посочените праймъри и плазмид ptrphs BGH 1-13 като мостра за получаване на модифициран ген на волски хормон на растежа. Полученият ген на волски хормон на растежа се смила с рестрикционни ензими Pvul и SacI и е лигиран с ДНК фрагмент, който се получава чрез смилане на плазмид ptrphs BGH 1-13 със същите ензими, за получаване на вектор на експресия на волски хормон на растежа. Векторът на експресия се използва за трансформиране на Е. coli и се отделя плазмид, обхващащ модифицирания ген на волски хормон на растежа, наречен ptrphs BGHRAN.
Впоследствие, за да се въведе транскрипционен терминатор trpA във вектора на експресия на волски хормон на растежа, се приготвят праймъри за PCR, съдържащи ген на транскрипционен терминатор trpA, разпознавателен сайт за ограничение по отношение на ензим Sall и друг разпознавателен сайт за ограничение по отношение на ензим Pvul. След това се извършва PCR чрез използване на посочените праймъри и плазмид ptrphs BGH 1-13, като мостра за получаване на ДНК фрагмент, обхващащ транскрипционен терминатор trpA. Полученият ДНК фрагмент се разтваря с ограничение по отношение на ензими Pvul и Sall и се лигира с ДНК фрагмент, който е получен чрез разтваряне на плазмид ptrphs BGHRAN със същите ензими, за получаване на вектор на експресия на волски хормон на растежа. Векторът на експресия се използва за трансформиране на Е. coli и се отделя плазмид, наречен ptrp3H BGHRAN, който обхваща модифицирания ген на волски хормон на растежа и транскрипционния терминатор trpA.
Векторите за експресия съгласно настоящото изобретение се използват за трансформиране на Е. coli клетка, например Е. coli W3110 (АТСС 37339), подходяща за получаване на ген на волски хормон на растежа във вектора за експресия. Трансформираната Е. coli клетка се култивира при условия, които позволяват получаването на волски хормон на растежа, и полученият волски хормон на растежа да бъде отделен и пречистен от културата в съответствие с който и да е конвенционален метод.
Настоящото изобретение представя метод за масово производство на волски хормон на растежа, който включва култивиране на Е. coli клетки, трансформирани с вектора на експресия съгласно настоящото изобретение, и отделяне на волски хормон на растежа от културата. В съответствие с метода, обект на изобретението, е възможно да се получи волски хормон на растежа от Е. coli трансформант в количество, по-голямо от 50% от общото количество произведени протеини.
Следващите примери имат за цел допълнително да илюстрират настоящото изобретение, без да ограничават обхвата му.
Процентите, представени по-долу, за твърди вещества в твърда смес, течност в течност и твърди вещества в течност са дадени в wt/wt, vol/vol и wt/vol, съответно, освен ако специално не е уточнено друго.
Пример 1. Получаване на модифициран ген на волски хормон на растежа и конструиране на съдържащ го експресионен вектор.
Стъпка 1. Основавайки се на информацията за нуклеотидните секвенциии на ген на волски хормон на растежа (виж корейски патент, публикация No 92-3665), са синтезирани произволни праймъри за PCR, които съответстват на областта на 5'-ия край на волски хормон на растежа и имат следващите нуклеотидни секвенции: Праймър PBGHRAN:
5'-TGCTGAGCTCGNAGNACNGCRTT NGCRAANAGNCCNGANAGNGACATNGC NGGRAANGCCATTTATAATTCCTCCA-3’ където N означава А, Т, G или С; a R означава А или G.
Праймър PBGHRAN включва SacI разпознавателен сайт и модифицирана нуклеотидна секвенция, кодираща 16 аминокиселини от N-терминала на волски хормон на растежа.
Също така са синтезирани и праймър PPBR3720, включващ и част от Amp ген в плазмид ptrphs BGH 1-13 (виж корейски патент, публикация No 92-3665; АТСС 68975), и Pvul разпознавателен сайт, като тяхната нуклеотидна секвенция има следния вид:
5'-TCCTTCGGTCCTCCGATCGTTGTCA3'.
Стъпка 2. В епруветка се смесват 1 ng от плазмид ptrphs BGH 1-13 като матрица, 2 pg от всеки от праймърите PBGHRAN и PPBR3720, получени в стъпка 1,10 μΐ от 10х полимеризиращ буфер (10 mM Tris-HCl, pH 8.3,500 тМ КС1,15 тМ MgCl2,0.1% (W/V) желатин), 10 μΐ смес от dNTP’s (по 2 тМ от dGTP, dATP, dCTP и dTTP),
2.5 единици от Taq ДНК (Perkin Elmer Cetus, USA) и се добавя дестилирана вода за получаване на обем от 100 μΐ.
PCR се извършва чрез повтаряне 25 пъти на цикъла от: 95°С за 1 min (денатуриране), 55°С за 40 s (отгряване) и 72°С за 2 min (полимеризация). PCR продуктът, получен по гореспоменатия начин, се подлага на 5% полиакриламид гел електрофореза и като резултат се потвърждава, че се получава около 990 Ьр от ДНК. ДНК се филтрира чрез същата полиакриламид гел електрофореза и получава наименованието фрагмент BGHRAN.
Стъпка 3. 2 μg от плазмид ptrphs BGH 113 са изцяло смлени със SacI в NEB (New England Biolabs Inc.) буфер 1 (10 mM Bis Tris пропан-HCl, 10 mM MgCl2, 1 mM DTT, pH 7.0) при 37°C за 1 до 2 h, след което напълно се смила с Pvul в NEB буфер 3 (100 mM NaCl, 50 тМ Tris-HCl, 10 тМ MgCl2,1 тМ DTT, pH 7.9) при същите условия. Получената смес се подлага на
0.7% агар-агар гел електрофореза за отделяне на около 2 kb фрагмент, който се нарича фрагмент PBGH-T/P.
pg от фрагмент BGHRAN, получен в стъпка 2, напълно се смила със SacI в NEB буфер 1, след което напълно се смила с Pvul в NEB буфер 3. Полученият ДНК фрагмент се екстрахира с фенол/хлороформ, след което се разтваря в 20 μΐ от ТЕ буфер. ДНК фрагментът се нарича фрагмент BGHRAN-T/P.
Чрез използване на получения ДНК фрагмент се извършва лигираща реакция, както е описано по-долу.
В епруветка се поставят 100 ng от фрагментите BGHRAN-T/P и PBGH-T/P, 2 μΐ от 10х лигиращ буфер и 10 части Т4 ДНК лигиращ елемент; добавя се дестилирана вода за получаване на общ обем от 20 μΐ. Цитирането се осъществява при 16°С за 12 h.
Е. coli W3110 (АТСС 37339) се трансформира с лигиращата смес за получаване на рекомбиниран Е. coli трансформант, съдържащ плазмид ptrphs BGHRAN, обхващащ фрагмент BGHRAN (виж фиг. 2).
Пример 2. Получаване на модифициран ген на волски хормон на растежа и установяване на секвенцията на гена
Стъпка 1. Около 100 Е. coli трансформант колонии, получени в пример 1, са култивирани в течна Luria среда (6% бактотриптон, 0.5% екстракт от дрожди, 1% NaCI), съдържаща 50 pg/ ml ампицилин при 37°С за 12 h. 3 ml от културата се трансферира в 300 ml от М9 среда (40 тМ iqHPO4,22 тМ КН2РО4, 8.5 тМ NaCI, 18.7 тМ NH4C1, 1% глюкоза, 0.1 тМ MgSO4, 0.1 тМ СаС12, 0.4% казамино киселина, 10 pg/ml витамин В„ 40 pg/ml ампицилин); културата се разклаща при 37°С за 4 h.
Когато O.D. стойността на културата при 650 пт достигне 0.3, към нея се добавя индолакрилна киселина (IAA) за получаване на крайна концентрация от 50 g/ml. След 4 h се определя O.D. на получената култура и тя се центрофугира при 11,000 o6./min за 25 min за събиране на Е. coli клетъчните преципитати. Клетъчните преципитати се подлагат на 15% SDS-PAGE чрез прилагане на метода на Лаемли (Nature, 227,680 (1970) за потвърждаване на получаването на волски хормон на растежа. Клонингите, показващи 40% по-голямо количество на волски хормон на растежа, в сравнение с Е. coli трансформанта, обхващащ плазмид ptrphs BGH 1-13 (контролна група), са избрани и съдържащият ги плазмид се нарича ptrphs BGHRAN #5 (виж фиг. 3).
Стъпка 2. Установяване последователността на гена на волски хормон на растежа в плазмид ptrphs BGHRAN #5, получен в стъпка 2, се извършва по следния начин: плазмид ptrphs BGHRAN #5 напълно се смила със SacI в NEB буфер 1, след което напълно се смила с EcoRI в
NEB буфер 3. Получената смес се подлага на 7% полиакриламидна гел електрофореза за отделяне на ДНК фрагмент, имащ около 187 Ьр, който фрагмент се нарича BGHRAN-T/R.
От друга страна, 2 pg от плазмид М13тр18 напълно се смила със SacI в NEB буфер 1, след което изцяло се смила с EcoRI в NEB буфер 3. Получената смес се подлага на 0.7% агар-агар гел електрофореза за отделяне на ДНК фрагмент от около 7 kb, който се нарича фрагмент M13-T/R.
В епруветка се поставят 100 ng от фрагментите BGHRAN-TR и Μ13-T/R, 2 μΐ от 1 Ох лигиращ буфер и 10 части от Т4 ДНК за лигиране; прибавя се дестилирана вода за получаване на общ обем от 20 μΐ. Лигирането се осъществява при 16°С за 12 h.
μΐ от получената лигирана смес се смесват с 200 μΐ от Е. coli JM105 (АТСС 47016) устойчиви клетки и към сместа се прибавят 8 μΐ от 0.2М IPIG разтвор, 100 μΐ от преди култивирането спомагателни клетки (Е. coli JM105), 3 ml от 2xYT висш агар-агар (мек агар-агар; 16 g Бактотриптон, 10 g екстракт от дрожди, 5 g NaCI, 5 g бактоагар-агар/1) и 25 μΐ от 4% Х-гел. Сместа се разпределя на Min А плоча (10.5 gKH2PO4, 1 g (NH4)2SO4, 0.5 g Na-цитрат, 12 g Бактоагарагар, 1 ml 20% MgSO4, 0.5 ml 1% витамин B, 10 ml 50% глюкоза/1), след което се култивира при 37°С за 12 h.
Получените в средата прозрачни плаки се събират, трансферират се към 2 ml от 2xYT течна среда, след което се култивират при 37°С за 5 h. Културата се центрофугира за отделяне на повърхността на вещество и към него се прибавят 1/4 обема от PEG/NaCl (20% полиетилен гликол, 2.5 MnaCl). М13 фаза се отделя от плаващото по повърхността вещество; от него се екстрахира ДНК, а нуклеотидната секвенция на областта на 5'-ия край на гена на волски хормон на растежа се потвърждава (виж фиг. 1).
Пример 3. Конструиране на експресионен вектор, включващ гена trpA за крайна транскрипция.
Стъпка 1. За получаване на trpA ген за крайна транскрипция и за инсерирането му във векторите на експресия на волски хормон на растежа, получени в пример 2, се синтезират следните праймъри:
Праймър PTRPATER:
’-GCTTTGTCGACTAATTAAAGCCC GCCTAATGAGCGGGCTTTTTTTTGCCT CGCGCGTTTCGGT-3 ’.
Праймър PTRPATER включва разпознавателен сайт за Sall и 25ти-50ти и 51ви-67ми нуклеотид съответстват на гена на транскрипционен терминатор trpA и нуклеотидната секвенция след 3'-ия край на гена на волски хормон на растежа във вектора, съответно.
Както е показано по-долу, плазмид PPBR3740 съответства на част от Amp гена в плазмид ptrphs BGH 1-13 и обхваща разпознавателен сайт за Pvul.
Плазмид PPBR3740:5’-TGACAACGATCG GAGGACCGAAGGA-3’.
Стъпка 2. В епруветка се поставят 1 ng от плазмид ptrphs BGH 1-13 като матрица, 2 pg от всеки от праймърите PTRPATER и PPBR3740, приготвени в стъпка 1, 10 μΐ от 10х полимерен буфер (10 mM Tris-HCl, pH 8.3,500 тМ КС1,15 тМ MgCl2, 0.1% (w/v) желатин), 10 μΐ от 2 mM dNTP (всеки от dGTP, dATP, dCTP и dTTP е 2 mM) и 2.5 части от Taq ДНК полимераза; добавя се дестилирана вода за получаване на общ обем от 100 μΐ. Изпълнява се PCR чрез повторение 25 пъти на цикъла от: 95°С за 1 min, 55°С за 40 s и 72°С за 2 min.
Полученият PCR продукт се подлага на 1 % агар-агар гел електрофореза за потвърждаване, че се получават около 1.5 kb от ДНК. ДНК се пречиства по същия начин чрез агар-агар гел електрофореза и полученият фрагмент се нарича фрагмент PBR.
Стъпка 3. 2 μg от плазмид ptrphs BGH 113 напълно се смила със Sall и Pvul в NEB буфер 3 и получената смес се подлага на 0.7% агарагар гел електрофореза за отделяне на фрагмент от около 1.5 kb, който се нарича фрагмент PBGHP/L.
μg от плазмид ptrphs BGHRAN #5, получен в стъпка 1 от пример 2, изцяло се смила със Sall и Pvul в NEB буфер 3 и получената смес се подлага на 0.7% агар-агар гел електрофореза за отделяне на около 1.5 kb фрагмент, който се нарича фрагмент PBGHRAN-P/L.
Впоследствие 2 μg от фрагмент PBR, получен в стъпка 2, изцяло се смила със Sall и Pvul в NEB буфер 3. Полученият ДНК фрагмент се екстрахира с фенол/хлороформ и след това се разтваря в 20 μΐ от ТЕ буфер. ДНК фрагмен тът се нарича фрагмент PBR-P/L.
Чрез получените по-горе ДНК фрагменти се извършва лигиране. В две епруветки А и В се поставят по 100 ng от всеки от фрагментите PBGH-P/L и PBGHRAN-P/L, съответно. Към всяка от епруветките се добавят по 100 ng от фрагмент PBR-P/L, 2 μΐ от 10х лигиращ буфер и 10 части от Т4 ДНК лигаза; прибавя се дестилирана вода за получаване на общ обем от 20 μΐ. Лигирането се извършва при 16°С за 12 h.
Е. coli W3110 (АТСС 37339) клетки са трансформирани с лигираните смеси в съответствие с СаС12 метод (Маниатис и колектив, Molecular Cloning: a Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, 1982) за получаване на рекомбинирани Е. coli трансформанти, съдържащи плазмид ptrp3H BGH 1-13 (епруветка А) или плазмид ptrp3H BGHRAN (епруветка В) (виж фиг. 2).
Пример 4. Експресия на волски хормон на растежа чрез използване на вектори за експресия, включващи модифициран ген на волски хормон на растежа и trpA терминатор
Е. coli трансформанти, получени в пример 3, се култивират с разклащане в течна Luria среда (6% Бактотриптон, 0,5% екстракт от дрожди, 1% NaCl), включваща 50 μg/μl ампицилин при 37°С за 12 h. 3 μΐ от културата се трансферира в 300 μΐ от М9 среда (40 тМ К2НР04, 22 тМ КН2РО4,8.3 тМ NaCl, 18.7 тМ NH4C1,1% глюкоза, 0.1 тМ MgSO4, 0.1 тМ СаС12, 0.4% казамино киселина, 10 μg/μl витамин Вр 40 μg/μl ампицилин) и се култивира с разклащане при 37°С за 4 h.
Когато O.D. стойността на културата при 650 шп достигне ниво от около 0.3, към културата се добавя индолакрилна киселина (IAA) за получаване на крайна концентрация от 50 μg/μl. След 4 h се определя O.D. на получената култура и тя се центрофугира с центрофуга (Бекман J2-21, JA14 rotor) при 11,000 o6./min за 25 min за събиране на Е. coli клетъчните преципитати. Клетъчните преципитати се подлагат на 15% SDS-PAGE в съответствие с метода на Лаемли (Nature, 227 680(1970) за потвърждаване на експресията на волски хормон на растежа. Резултатът е показан на фиг. 3.
Както е показано на фиг. 3, количеството волски хормон на растежа, получено чрез Е. coli клетки, трансформирани с плазмиди ptrp3H BGH 1-13 или ptrp3H BGHRAN са 39.9% и 57.3%, съ7 ответно, на база на общото количество протеини, получени в клетката. Тези количества са с 40-50% по-големи в сравнение с количествата, получени от Е. coli, трансформирани с плазмиди ptrphs BGH 1-13 и ptrphs BGHRAN #5, т.е. 26.3% и 39.9%, съответно (виж фиг. 4).
Е. coli W3110, трансформирани с плазмид ptrp3H BGHRAN, са депозирани на 26 декември 1994 год. при Korean Collection for Type Cultures (KCTC) (Адрес: GERI, KIST, P.O. Box 115, Yusong, Taejon, 305-600, KR) c номер от KCTC 0143BP, съгласно условията на Споразумението от Будапеща за Международните правила за депозиране на микроорганизми за целите на патентните процедури.
Изобретението е представено от гледна точка на изложените специфични описания, но трябва да се приеме, че могат да бъдат направени различни модификации и промени към него от специалисти в областта, които промени също попадат в обхвата на изобретението, както е посочено в приложените претенции.

Claims (7)

Патентни претенции
1. Вектор за експресия на волски хормон на растежа, който включва модифициран ген на волски хормон на растежа, в който нуклеотидната секвенция в региона на 5'-ия му край е модифицирана без промяна на кодираната аминокиселинна секвенция и се инсерира trpA край на транскрипцията след 3 ’-ия край на гена.
2. Вектор за експресия съгласно претенция 1, в който областта на 5 ’-ия края на модифицирания ген на волския хормон на растежа включва нуклеотидна секвенция от:
3. Вектор за експресия съгласно претенция 1, в който транскрипционният терминатор trp А включва нуклеотидна секвенция от: 5’-AGCCCGCCTA ATGAGCGGGC
ТТТТТТТТ-3’.
4. Вектор за експресия съгласно претенция 3, който е плазмид ptrp3H BGHRAN (KCTC 0143ВР).
20 5. Клетка на Е. coli, трансформирана с век тор за експресия съгласно която и да е претенция от 1 до 4.
5, която е Е. coli W3110, трансформирана с плаз25 мид ptrp3H BGHRAN (KCTC 0143ВР).
5 5’-ATG GCT TTT CCG GCT ATG TCT
CTA TCT GGC
CTA TTC GCA AAT GCC GTT CTT CGA GCT CAG
CAT CTT CAT CAG CTG GCT-3 ’
10 където ATG е начален кодон на ген на вол ски хормон на растежа.
6. Клетката на Е. coli съгласно претенция
7. Метод за масово производство на волски хормон на растежа, който включва култивиране на Е. coli трансформант съгласно претенция 5 и разделяне на волския хормон на растежа
BG100264A 1994-12-30 1995-12-28 Вектор за експресия на волски хормон на растежа и метод за неговото масово производство BG64565B1 (bg)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1019940040025A KR100225511B1 (ko) 1994-12-30 1994-12-30 소 성장호르몬의 대량 생산 방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
BG100264A BG100264A (bg) 1996-12-31
BG64565B1 true BG64565B1 (bg) 2005-07-29

Family

ID=36951464

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
BG100264A BG64565B1 (bg) 1994-12-30 1995-12-28 Вектор за експресия на волски хормон на растежа и метод за неговото масово производство

Country Status (10)

Country Link
JP (1) JP3234478B2 (bg)
KR (1) KR100225511B1 (bg)
AR (1) AR000606A1 (bg)
AU (1) AU713218B2 (bg)
BG (1) BG64565B1 (bg)
BR (1) BR9600009A (bg)
CO (1) CO4480064A1 (bg)
NZ (1) NZ280764A (bg)
TW (1) TW505694B (bg)
ZA (1) ZA9511030B (bg)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109182318A (zh) * 2018-08-16 2019-01-11 湖北大学 一种利用pBV220表达载体高效表达色氨酸合成酶的方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1988005078A1 (en) * 1986-12-31 1988-07-14 Lucky, Ltd. Method for the production of bovine growth hormone using a synthetic gene
DE4101736A1 (de) * 1991-01-22 1992-07-23 Gruenenthal Gmbh Neue als plasminogenaktivatoren einsetzbare polypeptide, dafuer codierende plasmide und verfahren zu deren herstellung und deren verwendung

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109182318A (zh) * 2018-08-16 2019-01-11 湖北大学 一种利用pBV220表达载体高效表达色氨酸合成酶的方法

Also Published As

Publication number Publication date
NZ280764A (en) 1997-02-24
AU713218B2 (en) 1999-11-25
JPH08228787A (ja) 1996-09-10
CO4480064A1 (es) 1997-07-09
TW505694B (en) 2002-10-11
JP3234478B2 (ja) 2001-12-04
KR100225511B1 (ko) 1999-10-15
ZA9511030B (en) 1996-07-09
AR000606A1 (es) 1997-07-10
AU4076895A (en) 1996-07-11
BR9600009A (pt) 1998-01-21
KR960023059A (ko) 1996-07-18
BG100264A (bg) 1996-12-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5470719A (en) Modified OmpA signal sequence for enhanced secretion of polypeptides
RU2129606C1 (ru) ШТАММ ESCHERICHIA COLI JM 105, ТРАНСФОРМИРОВАННЫЙ ПЛАЗМИДОЙ PAE12, - ПРОДУЦЕНТ АЛЬФА-АМИДИРУЮЩЕГО ФЕРМЕНТА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА PAE12, ЛИНИЯ КЛЕТОК С127 МЫШИ, ТРАНСФИЦИРОВАННАЯ ПЛАЗМИДОЙ PD BPV-ММТ NEO αАЕА75-ПРОДУЦЕНТ АЛЬФА-АМИДИРУЮЩЕГО ФЕРМЕНТА, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА pd BPV-MMT Neo αAEA75
JP2766781B2 (ja) ウシ成長ホルモンを生産し得る微生物
JP3250968B2 (ja) オリゴペプチド反復単位を有する大ポリペプチド
RU2072393C1 (ru) Способ получения рекомбинантного полипептида со свойствами свиного гормона роста
ES2333942T3 (es) Precursores de insulina y proceso para su preparacion.
JPS5985292A (ja) ヒト−レラキシン遺伝子
JPH04501807A (ja) 尿酸オキシダーゼ活性蛋白質、それをコードした組換え遺伝子、発現ベクター、微生物および形質転換細胞
FR2464997A1 (fr) Genes de la proinsuline humaine et de pre-proinsuline humaine, leur procede de preparation et leurs applications
WO2002018570A1 (en) Yeast transformant producing recombinant human parathyroid hormone and method for producing the hormone
US4958007A (en) Extraction of human interleukin-4- from bacteria
US6342375B1 (en) Modified methylotrophic Pichia pastoris yeast which secretes human growth hormone
BG64565B1 (bg) Вектор за експресия на волски хормон на растежа и метод за неговото масово производство
CN1055314C (zh) 从葡聚糖明串珠菌克隆和过量表达葡糖-6-磷酸脱氢酶
JPH0716433B2 (ja) ウシ成長ホルモンの高レベル産生
AU643194B2 (en) Recombinant fish hormone proteins
CN113249241B (zh) 一种酿酒酵母蛋白酶缺失菌株的构建及其应用
EP0622460A2 (en) Plasmid and escherichia coli transformed with it
KR100427587B1 (ko) 신규 d-글루탐산 합성효소 유전자 dna 및 이를 이용한 항생제 비의존성 벡터
RU2207374C1 (ru) Рекомбинантная плазмида, кодирующая поверхностный антиген (hbsag) вируса гепатита b, ее получение и штамм дрожжей hansenula polymorpha - продуцент поверхностного антигена (hbsag) вируса гепатита b
EP0613496A1 (en) Collagen-like polypeptides
WO1990009434A1 (en) Production of superoxide dismutase in pichia pastoris yeast cells
JP2003079379A (ja) 成長ホルモンの高発現用dnaおよびその使用
EP0363063A2 (en) Sheep growth hormone
AU647374B2 (en) Sheep growth hormone