AT390079B - Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien, sowie transformiertes pflanzenmaterial - Google Patents
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Description
Nr. 390079
Die Erfindung betrifft ein DNA-Segment, dessen Genprodukt geeignet ist, eine oriV Sequenz in cis oder in trans replikationsfähig zu machen, sowie Plasmide, die dieses Segment enthalten, durch diese Plasmide transformierte Bakterien, sowie transformiertes Pflanzenmaterial.
Das natürlich vorkommende Plasmid RK2, das identisch oder nahezu identisch ist mit den Plasmiden RP1, RP4, R18 und R86 der Inkompatibilitätsgruppe PI, ist ein broad host ränge Plasmid, das Resistenzgene gegen die Antibiotika Tetracyclin Ampicillin und Kanamycin aufweist. Die Sequenz des vegetativen Origins (oriV) und das Genprodukt des transacting factor A Gens (trfA) ist für die Replikation hinreichend (Fig. 1). Die Basensequenz des trfA Gens wurde in Christopher A. Smith und Christopher M. Thomas, J. Mol. Biol. (1984), 175, pp 251 - 262 aufgeklärt. Es ermöglicht die Replikation des oriV in vielen Spezies von gramnegativen Bakterien. Das Plasmid besitzt jedoch ein kompliziertes Replikationssystem. Für die routinemäßige Anwendung ist aber auch seine Größe von 56 Kilobasenpaaren (Kb) ein großer Nachteil. Es wurde versucht, diese Nachteile durch Konstruktion kleinerer Plasmide ausgehend von RK2-Plasmid zu beheben. So ist aus Ditta et al, Proc. Natl. Acad-Sci. Vol. 77 (12), Seiten 7347 - 7351, USA 1980 eine tetracyclinresistente Plasmidkomponente des RK2 Plasmids mit der Bezeichnung pRK 290 bekannt (Fig . 2). pRK 290 kann mit Hilfe eines Hilfsplasmids übertragen werden, besitzt aber selbst nicht die Fähigkeit sich selbst oder andere Plasmide zu übertragen. Das Plasmid ist 20 Kb groß, es ist also ein relativ großes Plasmid, das außerdem schwer isolierbar ist und außerdem nur in niedrigen Kopienzahlen vorhanden ist (5 - 8 Kopien pro Chromosomenäquivalent in Eschericha coli).
Es wurde nun gefunden, daß das in den Plasmiden RK2 und pRK 290 enthaltende trfA Gen, so mit dem trfB Gen, dessen Basensequenz in Nucleic Acid Res. 14 (11), 4453 beschrieben ist, unter Deletion dazwischenliegender Sequenzen fusioniert werden kann, daß eine DNA-Sequenz gebildet wird, deren Genprodukt die Replikation des oriV ermöglicht.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist demnach ein DNA-Segment, dessen Genprodukt geeignet ist, eine oriV Sequenz in cis oder in trans replikationsfähig zu machen, das dadurch gekennzeichnet ist, daß das Segment eine Sequenz, ausgewählt aus einer Gruppe enthaltend folgende Nukleotidsequenz
1 mAGCGGCTAAGGTGTTGACGTGCGAGAAATGTITAGCTAAACTTCrCrCATGTGCTGG 61 CGGCTGJCACCGCTATGTTCAACCAAGGGGCGGAGCAAATTATGGGTGTTATCCATGAAG
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301 GAGGACAGGAACITGCCCGAGGGGTACGCGCGGGTAACGGCGGTTCTGCCGGAACATCAG rg Gly Gin Glu Leu Ala Arg Gly Val Arg Ala Gly Asn Gly Gly Ser Ala Gly Thr Ser G 361 421 481
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AAATGCAGCTTTCCTTGTTCGATATTGCGCCGTGGCCGGACACGATGCGAGCGATGCCAA lu Met Gin Leu Ser Leu Phe Asp Ile Ala Pro Trp Pro Asp Thr Met Arg Ala Met ProA
541 ACGACACGGCCCGCTCTGCCCTGTTCACCACGCGCAAGAAAATCCCGCGCGAGGCGC sn Asp Thr Ala Arg Ser Ala Leu Phe Thr Thr Arg Asn Lys Lys Ile Pro Arg Glu Ala L
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Nr. 390079
781 CGATCAATGGCCGGTATTACACGAAGGCCGAGGAATGCCTGTCGCGCCTACAGGCGACGG er Ile Asn Gly Arg Tyr Tyr Thr Lys Ala Glu Glu Cys Leu Ser Arg Leu Gin Ala Thr A
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1261 GGGGTTCAGCAGCCAGCGC und Subfragmente und Mutanten davon, die im wesentlichen die gleiche Fähigkeit zur Replikation des oriV besitzen, enthält. 30 Das Genprodukt dieser Sequenz und davon abgeleiteter Sequenzen ermöglicht die Replikation von Plasmiden, die den oriV enthalten in einer Reihe von Mikroorganismen, insbesondere in gramnegativen Bakterien.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung des erfindungsgemäßen DNA-Segments, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man das Plasmid pRK 290 mit der Restriktionsendonuklease SpH I schneidet, das DNA-Stück zwischen 17,8 kb und 8,3 kb mit Hilfe der T4-DNA-Ligase ligiert, erneut mit 35 der Restriktionsendonuklease SpH I schneidet, in die Schnittstelle das Plasmid pUC 18 einfügt, mit Hilfe der T4-DNA-Ligase ligiert, dieses Plasmid mit der Restriktionsendonuklease Κρη I linearisiert und mit der Exonuklease Bai 31 von beiden Enden her verkürzt, wobei das Ausmaß der Verkürzung mittels Gelelektrophorese kontrolliert wird, worauf die Enden mit T4-DNA-Ligase ligiert werden.
Das erfindungsgemäße DNA-Segment wird ausgehend von Plasmid pRK 290 durch verschiedene 40 DNA-modifizierende Enzyme hergestellt. Dies sind zunächst Restriktionsendonukleasen, die doppelsträngige DNA im Bereich einer definierten Erkennungssequenz aufschneiden. Dabei entstehen Fragmente, an deren Enden entweder einzelsträngige Überhänge (cohäsive Enden, sticky ends) Zurückbleiben, oder es werden beide Stränge am selben Basenpaar durchschnitten und es entstehen sog. stumpfe Enden oder blunt ends. Ivlit Hilfe einer DNA-Ligase werden diese Fragmente anschließend in der gewünschten Weise wieder zusammengesetzt (ligiert). 45 Dabei ist es möglich, blunt end Fragmente frei zu kombinieren, während bei sticky end Fragmenten Ligation nur möglich ist, wenn eine korrekte Basenpaarung der einzelsträngigen Überhänge gegeben ist.
Zur Deletion größerer Bereiche der Plasmid DNA wird die Exonuklease Bai 31 verwendet, die einzel- oder doppelsträngige linearisierte DNA von den Enden her kontinuierlich etwa symmetrisch abbaut und dabei blunt ends hinterläßt. Das Ausmaß der Verkürzung wird mittels Gelelektrophorese kontrolliert und die Plasmid DNA 50 anschließend wieder mit einer DNA-Ligase ligiert.
Das erfindungsgemäße DNA-Segment ist ein Fusionsgen aus transacting factor B und transacting factor A, wobei jedoch nicht die vollständigen Basensequenzen der Strukturgene erhalten bleiben. In der im Anspruch 1 exemplarisch angegebenen Sequenz würden beispielsweise im Genprodukt dieser Sequenz die ersten 25 Aminosäuren des trfA-Proteins, durch die ersten 117 Aminosäuren eines am trfB-Gen codierten Proteins IncC 55 oder durch die ersten 12 Aminosäuren eines anderen Peptids (P 259) ersetzt (C.M.Thomas C.A.Smith, Nucleic Acid Res. 14 (11), 4453 (1986). An der Fusionsstelle ist die Nucleotidsequenz GTG, die für die Aminosäure Valin codiert, entstanden. Das erfindungsgemäße DNA-Segment ist jedoch nicht auf diese Nukleotidsequenz eingeschränkt, sondern umfaßt auch Subfiagmente und Mutanten davon, deren Genprodukte im wesentlichen die gleiche Fähigkeit besitzen, eine oriV Sequenz in cis oder trans replikationsfähig zu machen. 60 Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein rekombinantes Plasmid, enthaltend ein DNA-Segment nach Anspruch 1. -3-
Nr. 390079
Aus dem auf die oben beschriebene Weise hergestellten Plasmid, das ein erfindungsgemäßes DNA-Segment enthält, können durch dem Fachmann bekannte Methoden Derivate hergestellt werden, die beispielsweise andere Resistenzgene wie Kanamycin- oder Ampicillinresistenzgene oder die Bordersequenzen von Ti (Tumorinducing) oder Ri (Rootinducing) Plasmiden enthalten. Agrobakterium tumefaciens und Agrobacterium rhizogenes enthalten natürliche Plasmide, Ti-Plasmide bzw. Ri-Plasmide, die auf Grund bestimmter funktioneller Bestandteile die Fähigkeit besitzen DNA-Segmente in Pflanzen zu übertragen. Insbesondere enthalten diese Segmente Sequenzen, die Informationen zur Synthese von Wachstumshormonen enthalten. Für die Übertragung in die Pflanzenzelle werden die flankierenden Basenpaare dieser Sequenzen benötigt, die etwa 30 Basenpaare enthalten und beiderseits nahezu identisch sind. Diese Bordersequenzen sind das eigentliche Erfordernis für die Übertragung der dazwischenliegenden DNA-Stücke in die Pflanzenzelle. Zwischen den Bordersequenzen liegende beliebige DNA-Stücke können in die Pflanzenzelle übertragen werden.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind Mikroorganismen, insbesondere gramnegative Bakterien, die mit einem eine der erfindungsgemäßen DNA-Sequenzen enthaltenden Plasmid transformiert wurden.
Zur Transformation wird in an sich bekannter Weise ein geeigneter Bakterienstamm, beispielsweise E coli HB 101, E coli JM 103, Agrobacterium tumefaciens, Agrobacterium rhizogenes, Pseudomonasarten u. dgl. mit einem geeigneten Transformationspuffer behandelt, und mit Plasmid-DNA versetzt. Die Transformanten werden anschließend beispielsweise durch Plattieren selektiert.
Methoden zur Transformation von Mikroorganismen, insbesondere Bakterien, sind dem Fachmann bekannt und beispielsweise in Meth. in Enzymology Vol. 101, p. 527 ff (1983), Mol, Gen. Gen. Vol 163,181 (1978), J. Mol. Biol. 53, 159 - 162 (1970), Proc. Natl. Acad. Sei., USA 69, 2110 - 2114 (1972) beschrieben. Da transformierte Bakterien eine mehr oder weniger ausgeprägte Tendenz aufweisen zu degenerieren, müssen die Bakterien unter günstigen Lebensbedingungen gehalten werden, um ihre künstlich erzeugten Fähigkeiten zu bewahren. Der Fachmann wird diese Bedingungen in Abhängigkeit vom verwendeten Bakterienstamm leicht bestimmen können.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist Pflanzenmaterial, das durch Agrobakterien, die ein erfindungsgemäßen Plasmid enthalten, transformiert wurde. Die Transformation von Pflanzenmaterial mittels Agrobakterien ist beispielsweise in Chilton M.D., Drummond M,J., Merlo DJ., Sciaky D., Montoja, A.L., Gordon M.P., Nester E.W., Cell 11, (1977) pp 263 -271; Chilton M.D, Tepfer D.A., Davin c., Casse-Dellart F., Tempe J., Nature 295 (1982) pp 432 - 434 sowie Barton K.A., Chilton M.D., Methods in Enzym. 101(1983) pp 527 - 539 beschrieben
Es besteht, wie bereits beschrieben, die Möglichkeit, jede zwischen den Bordersequenzen der Ti- oder Ri-Plasmide liegende Sequenz auf die Pflanze zu übertragen und somit ihre Eigenschaften zu beeinflussen.
Beispiele:
1. Konstruktion eines Plasmids enthaltend ein erfindungsgemäßes DNA-Segments (Fig. 2). (pPS 99). Das Plasmid pRK 290 wurde mit der Restriktionsendonucleose Sph I (aus Steptomycees phaeochromogenes) ΡΡΔΤΓίΓ an den Schnittstellen SP (Fig. 2) mit der Erkennungssequenz ^ geschnitten. Die Reaktion wird mit QpTACG Plasmid-DNA in einem Inkubationspuffer aus 10 mmol/1 TrisHCl, 50 mmol/1 NaCl, 10 mmol/1 MgCl2 und 1 mmol/1 Dithiothreit (pH 7,5) bei 37 °C durchgeführt. Anschließend wird das große Fragment mit Hilfe der T4-DNA Ligase in 40 μί 50 mM Tris/HCl ph 7,8, 10 mM MgCl2, 10 mM Dithiothreit 1 mM
Adenosintriphosphat wieder zu einem Plasmid geschlossen, das die Region zwischen 17,8 Kb und 83 Kb des ursprünglichen Plasmids pRK 290 aufweist (Plasmid I in Fig. 2).
In einem weiteren Schritt wurde das 2,7 Kb große Plasmid pUC18 (beschrieben in Vieira J„ Messing J., 1982, Gene JL2 S. 259) in das Plasmid I an der Schnittstelle Sp eingesetzt. Dazu werden Plasmid I und pUC18 unter den oben beschriebenen Bedingungen mit SpH I linearisiert und anschließend wieder mit T4 DNA-Ligase ligiert. (Plasmid Π in Fig. 2) Das so hergestellte Plasmid enthält aus dem pUC18 Fragment eine einzige Κρη I
Restriktionsstelle (K) mit der Erkennungssequenz υυ , die der Startpunkt für eine anschließende Deletion
CjCATGG mit der Exonuclease Bai 31 ist. Die Sequenzen des trfB und des trfA liegen durch die Insertion des pUCl8 etwa gleich weit von dieser Κρη I Restriktionsstelle entfernt.
Plasmid II wurde also vorerst mit der Restriktionsendonuclease ΚΡη I (in einem Inkubationspuffer bestehend aus 10 mmol/1 Tris HCl (pH 7,5) 10 mmol/1 MgCl2 und 1 mmol/1 Dithiothreit linearisiert und anschließend mit der Exonuclease Bai 31 (aus Alteromonas espeijiani) von beiden Enden her verkürzt Das Außmaß der Verkürzung wurde mittels Gelektrophorese auf 1 % Agarosegel kontrolliert. Mit Hilfe der T4-DNA Ligase wurde schließlich ein 6,6 Kb großes Plasmid, das ein DNA Segment des Anspruchs 1 enthält, ligiert. -4-
Claims (9)
- Nr. 390079
- 2. Transformation des E.coli HB 101. Die Transformation des E-coli Stammes kann in an sich bekannter Weise, beispeilsweise nach der in Mandel M., und Higa A. J. Mol. Biol. 53 159 - 162 (1970), und Cohen, S.N., Chang, A. C. Y., and Hsu, L. Proc. Naü. Acad. Sei., USA 69,2110 -2114 (1972) angegebenen Vorschrift erfolgen. Dazu werden 5 ml Lurea Broth - ein Nährmedium bestehend aus Fleischextrakt, Hefeextrakt und Salz - mit 1 ml Vorkultur von E.coli HB 101 inokuliert und bei 37 °C geschüttelt, bis ein Viertel der maximalen Zelldichte (Extinktion im Phonometer ca. 0,4 - 0,6) erreicht ist. Die Zellen werden durch Zentrifugieren bei 5000 rpm geerntet und in 25 ml Transformationspuffer, bestehend aus 150 mmol KCl, 50 mmol CaC^, 5 mmol MgC^ und 1 mmol Tris HCl (pH 7,5), in Eis suspendiert. Nach erneuter Zentrifugation werden die Zellen in 2 ml Transformationspuffer resuspendiert. Von dieser Suspension werden 0,1 ml mit Plasmid DNA (pPS 99) unter Eiskühlung versetzt, nach 1 Stunde auf 42 °C erwärmt und nach 90 Sekunden 1,2 ml Lurea Broth bei 37 °C zugesetzt. Nach 5 -15 Minuten wird auf Selektionsagar (Lurea Broth mit 1,5 % Agar und geeignetem Antibiotikum plattiert). Die Transformanten sind nach 15-24 Stunden sichtbar. Ein auf diese Weise erhaltener transformierter E.coli HB 101 Stamm wurde am 16. Juni 1988 bei Deutschen Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, unter der Nummer DSM 4673 hinterlegt.
- 3. Rekombinantes Plasmid, enthaltend ein DNA-Segment nach Anspruch 1.3. Transformation von Agrobakterien Unter anderem wurden die Konstruktionen, die in Fig. 3 dargestellt sind, auf ihre Replikationsfähigkeit in Agrobakterien getestet. Es wurden 100 ml YEP (1 % Hefeextrakt, 1 % Pepton, 0,5 % NaCl) mit 2 ml Vorkultur bei 30 °C 4 - 6 h lang inokuliert. Die Zellen wurden 4 - 6 h bei 30 °C gezüchtet und durch Zentrifugation bei 5000 rpm für 10 Minuten geerntet. Anschließend wurden die Zellen in 10 mMl NaCl suspendiert und wiederum zentrifugiert. Dann wurde in ml YEP resuspendiert. 0,2 ml dieser Suspension wurden mit 1 μg Plasmid-DNA versetzt und sofort bei 80 eC in einem EtOH-Bad eingefroren. Nach 5 min wurden die Zellen aufgetaut und 25 Minuten bei 37 °C gehalten. Danach wurde mit 0,5 ml YEP verdünnt und 1-2 h bei 30 °C inkubiert. Danach wurden die Zellen auf Selektionsagar Nutrient broth (0,8 % Nutrient broth, 1,5 % Agar) oder auf YEP (mit 1,5 % Agar) mit dem gewünschten Antibiotikum plattiert. Auf diese Weise wurden Agrobakterien mit den in Fig. 3 dargestellten Plasmiden transformiert und in jedem Fall Transformanten erhalten, die den gewünschten Phaenotyp (Antibiotikuresistenz(en)) aufwiesen. Aus diesen Transformanten konnten die eingesetzten Plasmide wiedergewonnen werden, was durch Transformation von Escherichia coli mit dieser DNA und anschließender Restriktionsanalyse bewiesen werden konnten. Die in Fig. 3 angeführten Abkürzungen bedeuten: Ampr Ampicillinresistenzgen, Tetf Tetracyclinresistenzgen, NPT: Neomycinphosphotransferasegen, kodiert für Kanamycinresistenz, Pnos: Promotor der Nopalinsynathetase, SNPT: Strukturgen des NPT, Tnos: Terminator des Nopalinsynthethetasegens, ori (pUC) origin of Replication des Plasmids pUC18, oriV: origin of replication des Plamids RK22, trfBA das beschriebene Fragmentessentiell für die Replikation des oriV, F: Fusionsstelle des trfA Strukturgens mit der trfB Region, recl: Stück der T-DNA des Ti-Plasmids als linkes Recombinationsfragment. EcoRI, Bglll, Pvull, BamHI, Aval, Hindin, Kpnl: Restriktionsenzyme Die Einheit PnosSNPTTnos kann in Pflanzen Neomycin und Kanamycin-Restistenz bewirken. PATENTANSPRÜCHE 1. DNA-Segment, dessen Genprodukt geeignet ist, eine oriV Sequenz in cis oder in trans replikationsfähig zu machen, dadurch gekennzeichnet, daß das Segment eine Sequenz, ausgewählt aus einer Gruppe enthaltend folgende Nukleotidsequenz 1 TnAGCGGCTAAGGTGTTGACGTGCGAGAAATGTTTAGCTAAACTTCTCTCATGTGCTGG 61 CGGCTGJCACCGCTATGTTCAACCAAGGGGCGGAGCAAATTATGGGTGTTATCCATGAAG Met Gly Val Ile His Glu G 121 AAACGGCTTACCGAAATCCAGTTCCAGGAGGCGATCCAGGGGCTGGAAGTGGGGCAGCAG lu Thr Ala Tyr Arg Lys Pro Val Pro Gly Gly Asp Pro Gly Ala Gly Ser Gly Ala AlaA -5- 181 Nr. 390079 ACCATCGAGATAGCGCGGGGCGTCTTAGTCEATGGGAAGCCACAGGCGACGTTCGCAACG sp His Arg Asp Ser Ala Gly Arg Leu Ser Arg Trp Glu Ala Thr Gly Asn Fal Arg AsnV 241 301 361 421 481 541 601 661 721 781 841 901 961 1021 1081 1141 1201 1261 TCGCTGGGACTGACCAGGGGCGCAGTGTCGCAAGCGGTGCATCGCGTGTGGGCCGCGTTC al Ala Gly Thr Asp Gin Gly Arg Ser Val Ala Ser Gly Ala Ser Arg Val Gly Arg Val A GAGGACAGGAACITGCCCGAGGGGTACGCGCGGGTAACGGCGGTTCTGCCGGAACATCAG rg Gly Gin Glu Leu Ala Arg Gly Val Arg Ala Gly Asn Gly Gly Ser Ala Gly Thr Ser G GCGTACATCGTCCGGAAGTGGGAAGCGGACGCCAAGAAAAAACAGGAAACCAAACGATGA ly Val His Arg Pro Glu Val Gly Ser Gly Arg Gin Glu Lys Thr Gly Asn Gin Thr Met L trfB <--> trfA AAACTTTGGTCACGGCCAACCAGAAAGGCGGCGTGAAACACACGAAGCAGCAGATCAAGG ys Thr Leu Val Thr Ala Asn Gin Lys Gly Gly Va 1 Lys His Thr Lys Gin Gin Ile LysG AAATGCAGCTTTCCTTGTTCGATATTGCGCCGTGGCCGGACACGATGCGAGCGATGCCAA lu Met Gin Leu Ser Leu Phe Asp Ile Ala Pro Trp Pro Asp Thr Met Arg Ala Met ProA ACGACACGGCCCGCTCTGCCCTGTTCACCACGCGCAAGAAAATCCCGCGCGAGGCGC sn Asp Thr Ala Arg Ser Ala Leu Phe Thr Thr Arg Asn Lys Lys De Pro Arg Glu Ala L TGCAAGACAAGGTCATTTTCCACGTCAACAAGGACGTGAAGATCACCTACACCGGCGTCG eu Gin Asn Lys Fal De Phe His Val Asn Lys Asp Val Lys Ile Thr Tyr Thr Gly Val G AGCTGCGGGCCGACGATGACGAACTGGTGTGGCAGCAGGTGTTGGAGTACGCGAAGCGCA lu Leu Arg Ala Asp Asp Asp Glu Leu Val Tip Gin Gin Val Leu Glu Tyr Ala Lys ArgT CCCCTATCGGCGAGCCGATCACCTTCACGTTCTACGAGCTTTGCCAGGACCTGGGCTGGT hr Pro Ile Gly Glu Pro De Thr Phe Thr Phe Tyr Glu Leu Cys Gin Asp Leu Gly Tap S CGATCAATGGCCGGTATTACACGAAGGCCGAGGAATGCCTGTCGCGCCTACAGGCGACGG er De Asn Gly Arg Tyr Tyr Thr Lys Ala Glu Glu Cys Leu Ser Arg Leu Gin Ala Thr A CGATGGGCTTCACGTCCGACCGCGTTGGGCACCTGGAATCGGTGTCGCTGCTGCACCGCT la Met Gly Phe Thr Ser Asp Arg Val Gly His Leu Glu Ser Val Ser Leu Leu His ArgP TCCGCGTCCTGGACCGTGGCAAGAAAACGTCCCGTTGCCAGGTCCTGATCGACGAGGAAA he Arg Val Leu Asp Arg Gly Lys Lys Thr Ser Arg Cys Gin Val Leu Ile Asp Glu GluI TCGTGCTGCTGTTTGCTGGCGACCACTACACGAAATTCATATGGGAGAAGTACCGCAAGC le Val Val Leu Phe Ala Gly Asp His Tyr Thr Lys Phe Ile Trp Glu Lys Tyr Arg Lys L TGTCGCCGACGGCCCGACGGATGTTCGACTATTTCAGCTCGCACCGGGAGCCGTACCCGC eu Ser Pro Thr Ala Arg Arg Mel Phe Asp Tyr Phe Ser Ser His Arg Glu Pro Tyr Pro L TCAAGCTGGAAACCTTCCGCCTCATGTGCGGATCGGATTCCACCCGCGTGAAGAAGTGGC eu Lys Leu Glu Thr Phe Arg Leu Met Cys Gly Ser Asp Ser Thr Arg Val Lys Lys Trp A GCGAGCAGGTCGGCGAAGCCTGCGAAGAGTTGCGAGGCAGCGGCCTGGTGGAACACGCCT rg Glu Gin Val Gly Glu Ala Cys Glu Glu Leu Arg Gly Ser Gly Leu Val Glu His Ala T GGGTCAATGATGACCTGGTGCATTGCAAACGCTAGGGCCTTGTGGGGTCAGTTCCGGCTG rp Val Asn Asp Asp Leu Val His Cys Lys Arg+++ GGGGTTCAGCAGCCAGCGC und Subfragmente und Mutanten davon, die im wesentlichen die gleiche Fähigkeit zur Replikation des oriV besitzen, enthält. 2. Verfahren zur Herstellung eines DNA-Segments nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man das Plasmid pRK 290 mit der Restriktionsendonuklease SpH I schneidet, das DNA-Stück zwischen 17,8 kb und -6- Nr. 390079 8,3 kb mit Hilfe der T4-DNA-Ligase ligiert, erneut mit der Restriktionsendonuklease SpH I schneidet, in die Schnittstelle des Plasmid pUC 18 einfügt, mit Hilfe der T4-DNA-Ligase ligiert, dieses Plasmid mit der Restriktionsendonuklease Κρη I linearisiert und mit der Exonuklease Bai 31 von beiden Enden her verkürzt, wobei das Ausmaß der Verkürzung mittels Gelelektrophorese kontrolliert wird, worauf die Enden mit T4-Ligase ligiert werden.
- 4. Rekombinantes Plasmid nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß es ein Resistenzgen gegen mindestens ein Antibiotikum enthält.
- 5. Rekombinantes Plasmid nach einem der Ansprüche 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß es die Bordersequenzen von Ti oder Ri-Plasmiden aufweist.
- 6. Transformierte Bakterien, enthaltend ein Plasmid nach einem der Ansprüche 3 bis 5.
- 7. Transformierte Bakterien nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß die Bakterien aus der Gruppe der gramnegativen Bakterien ausgewählt sind.
- 8. Transformierte Bakterien nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß sie aus der Gruppe der Agrobakterien ausgewählt sind.
- 9. Pflanzenmaterial, das durch Bakterien nach Anspruch 8 transformiert wurde. Hiezu 3 Blatt Zeichnungen -7-
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| AT170988A AT390079B (de) | 1988-07-01 | 1988-07-01 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien, sowie transformiertes pflanzenmaterial |
| DE19883824670 DE3824670A1 (de) | 1988-07-01 | 1988-07-20 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien, sowie transformiertes pflanzenmaterial |
| JP1506977A JPH03505819A (ja) | 1988-07-01 | 1989-06-21 | Dna―セグメント、プラスミド、このセグメントを含有する、形質転換された細菌、並びに形質転換された植物体 |
| EP19890907148 EP0424413A1 (de) | 1988-07-01 | 1989-06-21 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien sowie transformiertes pflanzenmaterial |
| PCT/EP1989/000701 WO1990000197A1 (de) | 1988-07-01 | 1989-06-21 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien sowie transformiertes pflanzenmaterial |
| AU38433/89A AU3843389A (en) | 1988-07-01 | 1989-06-21 | Dna segment, plasmid containing this segment, transformed bacteria and transformed plant material |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| AT170988A AT390079B (de) | 1988-07-01 | 1988-07-01 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien, sowie transformiertes pflanzenmaterial |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ATA170988A ATA170988A (de) | 1989-08-15 |
| AT390079B true AT390079B (de) | 1990-03-12 |
Family
ID=3519287
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| AT170988A AT390079B (de) | 1988-07-01 | 1988-07-01 | Dna-segment, plasmide, die dieses segment enthalten, transformierte bakterien, sowie transformiertes pflanzenmaterial |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
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| JP (1) | JPH03505819A (de) |
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| AU (1) | AU3843389A (de) |
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-
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- 1988-07-01 AT AT170988A patent/AT390079B/de not_active IP Right Cessation
- 1988-07-20 DE DE19883824670 patent/DE3824670A1/de not_active Withdrawn
-
1989
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- 1989-06-21 AU AU38433/89A patent/AU3843389A/en not_active Abandoned
- 1989-06-21 EP EP19890907148 patent/EP0424413A1/de not_active Ceased
- 1989-06-21 WO PCT/EP1989/000701 patent/WO1990000197A1/de not_active Ceased
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| WO1990000197A1 (de) | 1990-01-11 |
| EP0424413A1 (de) | 1991-05-02 |
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| JPH03505819A (ja) | 1991-12-19 |
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