AT271745B - Verfahren zur Herstellung von neuen Peptiden - Google Patents
Verfahren zur Herstellung von neuen PeptidenInfo
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Description
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Verfahren zur Herstellung von neuen Peptiden
Aus Speicheldrüsen von Tintenfischen (z. B. eledone moschata) konnte als blutdrucksenkende und die glatte Muskulatur stimulierende Substanz das Eledoisin isoliert und in seiner Struktur als Undecapeptid aufgeklärt werden (ERSPARMER und ANASTASI, Experientia Bd. 18 [1962], S. 58). Eine Bestätigung dieser Struktur erbrachte die Synthese (SANDRIN und BOISSONNAS, Experientia Bd. 18 [1962], S. 59). Auf Grund pharmakologischer Untersuchungen am Menschen kommt diesem neuen Peptidwirkstoff eine klinische und therapeutische Bedeutung als hochwirksames blutdrucksenkendes, als gefässerweiterndes und die Atmung stimulierendes Mittel zu (SICUTERI, FANCUILLACCI, FRANCHI und MICHELACCI, Experientia Bd. 19 [1963], S. 44).
Es wurde nun gefunden, dass die bisher nicht beschriebenen Eledoisinanaloga der allgemeinen Formel
EMI1.1
in der R einen L-Glutaminyl-, L-Glutamyl-, L-Asparaginyl- oder Glycyl-, Rz einen L-Isoleucyl-, L-Leucyl-oder L-Valylrest bedeuten, R ausserdem auch den Asparagylrest, falls Ru für den Leucyloder Valylrest steht, überraschenderweise in Art und Stärke ihrer therapeutischen Wirksamkeit dem Eledoisin gleich, aber leichter herzustellen sind.
Die Synthese der neuen Verbindungen erfolgt gemäss der Erfindung dadurch, dass man aus Verbindungen der allgemeinen Formel
EMI1.2
gruppe geschützten Asparaginyl-bzw. Glutaminylrest oder, falls Rz für den Leucyl- oder Valylrest steht, auch den Asparagylrest bedeutetn, die Schutzgruppen auf an sich bekannte Weise entfernt.
Beispiele für geeignete Schutzgruppen und Mittel zu ihrer Entfernung sind in der nachstehenden Zusammenstellung autgeführt :
<Desc/Clms Page number 2>
EMI2.1
<tb>
<tb> 1. <SEP> Aminoschutzgruppen
<tb> Schutzgruppe <SEP> Mittel <SEP> zur <SEP> Abspaltung
<tb> Carbo-tertiär-butoxy, <SEP> Säuren, <SEP> insbesondere <SEP> Trifluoressigsäure <SEP> und
<tb> p-Methoxy-carbobenzoxy <SEP> HCI <SEP> in <SEP> Essigester <SEP> oder <SEP> Eisessig
<tb> Carbobenzoxy <SEP> HBr <SEP> in <SEP> Eisessig, <SEP> katalytische <SEP> Hydrierung
<tb> Phthalyl <SEP> Hydrazin
<tb> Tosyl <SEP> Na <SEP> in <SEP> flüssigem <SEP> Ammoniak
<tb> Trityl <SEP> Säuren
<tb> 2.
<SEP> COOH-Schutzgruppen
<tb> Schutzgruppe <SEP> Mittel <SEP> zur <SEP> Abspaltung
<tb> Methyl, <SEP> Äthyl <SEP> alkalische <SEP> Verseifung
<tb> Benzyl <SEP> alkalische <SEP> Verseifung, <SEP> Hydrierung, <SEP> HBr
<tb> in <SEP> Eisessig
<tb> tertiär-Butyl <SEP> Säuren, <SEP> insbesondere <SEP> Trifluoressigsäure <SEP> und
<tb> HCI <SEP> in <SEP> Essigester
<tb>
DieSynthese der geschützten Undecapeptide kann nach den üblichen Methoden der Peptidkupplung, wie siebeispielsweise inderMonographievonGREENSTEIN undWINITZ"Chemistry of the Amino Acids" I. Wiley and Sons, New York/London [1961]. beschrieben sind, vorzugsweise nach der Anhydrid-, der Azid-, der Carbodiimid- oder der Aktivierte-Ester-Methode erfolgen.
Dabei wird die Aminosäuresequenz vorteilhaft aus kleinerenPeptideinheiten-beispielsweise wie in den nachstehenden Schemata 1 und 2 dargestellt-aufgebaut ; gegebenenfalls werden die an der Kondensation nicht beteiligten funktionellen Gruppen intermediär durch z. B. reduktiv oder hydrolytisch leicht abspaltbare Reste geschützt.
Das geschützte Undecapeptid wird zweckmässig aus einem geschützten Heptapeptid der Formel
EMI2.2
worin R die oben angegebene Bedeutung besitzt, nach den Methoden der Peptidchemie zusammengesetzt (vgl. Schema 1). Die C-terminaleCarboxylgruppe des Heptapeptids liegt dabei zunächst in Form des Methylesters vor, der zur Freisetzung der Carboxylgruppe verseift wird. Die Verseifung kann wie üblich in alkalischem Milieu erfolgen. Als besonders vorteilhaft hat sich jedoch die Freisetzung der C-terminalen Carboxylgruppen durch enzymatische Verseifung, vorzugsweise mit Chymotrypsin oder Trypsin, erwiesen.
Durch dieses hiemit erstmalig bei der Synthese von Peptiden angewendete enzymatische Verfahren wird erstens die bei der üblichen alkalischen Verseifung notwendig eintretende Racemisierung vermieden, die sich im vorliegenden Fall besonders stark auswirken würde, da es sich bereits um ein längeres Peptid handelt, und zweitens wird-im Gegensatz zur alkalischen Verseifung - die Selektivität der Reaktion gewährleistet.
Die anschliessende Kupplung mit dem C-terminalen Tetrapeptidamid (Schema 1) führt schliesslich zu dem vollgeschützten Wirkstoff, bei dem die störenden funktionellen Gruppen durch leicht abspalt-
<Desc/Clms Page number 3>
bare Reste (die c-Aminogruppe des Lysins durch die Carbo-tert. -butoxygruppe, die y-Carboxylgruppe der Glutaminsäure durch die tert.-Butylgruppe) blockiert sind. Die Abspaltung der Schutzgruppen nach den üblichen Methoden ergibt schliesslich das gewünschte Undecapeptid.
Die Herstellung der neuen Eledoisinanaloga bietet gegenüber der Synthese des Eledoisins beträcht- liche präparative Vorteile, die mit der Wahl der ausgetauschten Aminosäuren zusammenhängen. So vermindert sich die Neigung der Zwischenprodukte zu Nebenreaktionen bei der Synthese des Glutamyl5Analogons. Beispielsweise neigt die Glutaminsäure weniger zur Glutarimidbildung als die originale Asparaginsäure zur Bildung von Succinimid.
Ein weiterer Vorteil liegt im Austausch des Isoleucinrestes in Position 8 des Eledoisins gegen Valin oder Leucin, da reines Isoleucin wesentlich schwerer zugänglich ist als die andern beiden Aminosäuren.
Tabelle
EMI3.1
<tb>
<tb> Dosis <SEP> Blutdrucksenkung <SEP> in <SEP> Prozenten <SEP> beim <SEP> Anzahl <SEP> Relative <SEP> Aktivität,
<tb> Kilogramm <SEP> Kaninchen <SEP> der <SEP> bezogen <SEP> auf
<tb> Ver-
<tb> 0,5 <SEP> 1 <SEP> 2 <SEP> 5 <SEP> 10 <SEP> 20 <SEP> 50 <SEP> suche <SEP> Eledoisin <SEP> Bradykinin
<tb> ng. <SEP> ng. <SEP> ng. <SEP> ng. <SEP> ng. <SEP> ng. <SEP> ng. <SEP>
<tb>
Glu <SEP> 5-Eledoisin <SEP> 13 <SEP> 17 <SEP> 22 <SEP> 24 <SEP> 29 <SEP> 32 <SEP> 37 <SEP> 3 <SEP> 1000/0 <SEP> 10000/0
<tb> Asp <SEP> (NH <SEP> 2) <SEP> 5 <SEP> - <SEP>
<tb> Eledoisin <SEP> 10 <SEP> 24 <SEP> 28 <SEP> 27 <SEP> 31 <SEP> 32 <SEP> 38 <SEP> 5 <SEP> 1000/0 <SEP> 1000%
<tb> Asp <SEP> (NHVal"Eledoisin <SEP> 8 <SEP> 13 <SEP> 18 <SEP> 17 <SEP> 27 <SEP> 29 <SEP> 33 <SEP> 4 <SEP> 100% <SEP> 1000%
<tb> Gly-Eledoisin <SEP> 16 <SEP> 19 <SEP> 25 <SEP> 22 <SEP> 25 <SEP> 30 <SEP> 35 <SEP> 4 <SEP> 100% <SEP> 1000%
<tb> Gly5-Leu8Eledoisin----ohne <SEP> 2 <SEP> 12 <SEP> 4 <SEP> 100 <SEP> 100%
<tb> Leu-Eledoisin----ohne <SEP> 8 <SEP> 14 <SEP> 3 <SEP> 100/0 <SEP> 100%
<tb> a)
<tb> Eledoisin <SEP> 3 <SEP> 8 <SEP> 19 <SEP> 27 <SEP> 30 <SEP> 33 <SEP> 38
<tb> b)
<tb> Bradykinin----ohne <SEP> 7 <SEP> 20
<tb>
Alle auf diesem Wege erhaltenen Analoga zeigen in ihrem Verhalten auf die glatte Muskulatur (Meerschweinchen-Ileum) und den Blutdruck (Kaninchen) die gleiche oder praktisch die gleiche Wirkung wie das Eledoisin. Lediglich die Leus-Analoga zeigen eine etwas geringere Aktivität, die aber immer noch in der gleichen Grössenordnung liegt wie z. B. die Wirkung des Bradykinins (vgl. Tabelle).
In pharmakologischer Hinsicht bietet das Glus-Analogon den Vorteil der grösseren Löslichkeit. Daher können höhere Dosen z. B. in Gelatine als Depotform appliziert werden.
Das Gly-Analogon bietet auf Grund der bekannten geringen proteolytischen Spaltungsrate von Peptidyl-Glycin- bzw. Glycyl-Peptid-Bindung weniger Angriffspunkte für den physiologischen Abbau des Wirkstoffes.
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Schema 1
EMI4.1
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Schema 2
EMI5.1
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H-Heu Gly Leu Met-NHBeispiel l : a) Carbobenzoxy-L-glutamyl-γ-tert.-butylester-L-alanyl-L-phenylalaninmethyl- ester (I).
10, 5 g Carbobenzoxy-L-glutaminsäure-y-tert.-butylester-ct-hydrazid (B. Klieger und H. Pcibian, Liebigs Ann. Chem. Bd. 655 [1962], S. 195) werden in 39,6 cm3 einer 1,5%igen Lösung von Chlorwas-
EMI6.1
arbeitung werden 12, 3 g erhalten. F. = 142 bis 1450C (aus Essigester); [α]D=-26,6 (c=1,Methanol). b) L-Glutamyl-γ-tert.-butylester-I,-alanyl-L-phenylalaninmethylester (II).
Die in der Überschrift angegebene Verbindung erhält man aus 10 g der Carbobenzoxyverbindung durch katalytische Hydrierung in Gegenwart von Pd-Mohr in Methanol.
Ausbeute = 7,75 g ; Öl. [cJD =-12, 30 (c = 1, Methanol).
EMI6.2
Sandrin und R. A. Boissonnas, Experientia XVIII [1962], S. 77) werden in möglichst wenig Wasser gelöst und mit 30 cm3 1n-KOH versetzt. Nach dreistündigem Stehen bei Zimmertemperatur wird das Gemisch über eine Dowex-50 (H+-Form)-Säule gegeben und mit Wasser nachgewaschen. Die Lösung wurde gefriergetrocknet.
EMI6.3
<Desc/Clms Page number 7>
Auf dem gleichensyntheseweg sind das Asp(NH2)5-und das Asp(NH2)5-Va;8-Eledoisin zugänglich: Beispiel 2 : a) Carbobenzoxy-L-asparaginyl-L-alanyl-L-phenylalaninmethylester.
19,3 g Carbobenzoxy-L-asparagin-p-nitrophenylester werden in Dimethylformamid gelöst und mit L-Alanyl-L-phenylalaninmethylester (aus 17, 1 g des Hydrochlorids mit 8,5 cm3 Triäthylamin erhalten) umgesetzt. Nach zweitägigem Stehen beiRaumtemperatur wird das Produkt abgesaugt und mit Äther gewaschen.
Ausbeute = 22,6 g. F. = 209 bis 211 C. [cp = -15, 10 (c = 1, Eisessig). b) L-Asparaginyl-L-alanyl-L-phenylalaninmethylester-hydrochlorid.
15 g derCarbobenzoxyverbindung werden in 330 ml Methanol/Essigsäure/1n-HCI 5 : 5 : 1 gelöst und in Gegenwart von Pd-Mohr hydriert.
Ausbeute = 10,0 g. F. = 168 bis 1720C. [a]D = 16, 10 (c = 1, Eisessig). c) L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-e-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-asparaginyl-L-alanyl-L- - phenylalaninmethylester.
5, 4 g L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-#-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysin und L-Asparaginyl-L- - alanyl-L-phenylalaninmethylester (aus 4, 0 g Hydrochlorid durch Reaktion mit 1, 4 cm3 Triäthylamin erhalten) werden in Gegenwart von 2,5 g Dicyclohexylcarbodiimid zum Heptapeptid gekuppelt. Zur Entfernung der polaren Anteile wird in wässerigem Methanol mit einem basischen und einem sauren Austauscher behandelt.
Ausbeute = 5 g.
Die gleiche Verbindung kann auch auf folgendem Wege erhalten werden :
EMI7.1
EMI7.2
E-tert. - butyloxycarbonyl- L -lysinninmethylester.
7, 3 g der Carbobenzoxyverbindung aus Beispiel 2 d) werden in 130 cm3 Dimethylformamid in Gegenwart von Pd-Mohr hydriert und die Lösung nach demAbfiltrieren vomKatalysator mitCarbobenzoxy- - L-prolyl-L-serinazid (aus 2, 7 g Hydrazid durch Umsetzung in 20 cm3 einer 1, 5n-LösungvonChlorwas- serstoff in Tetrahydrofuran mit 1,4 cm3 tert.-Butylnitrit) umgesetzt.
Ausbeute = 6, 5 g. F. = 199 bis 2010C. cl) L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-e-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-asparaginyl-L-alanyl-L- - phenylalaninmethylester.
Die gemäss b) erhaltene Verbindung wird wie oben beschrieben katalytisch hydriert und mit Carbobenzoxy-L-pyroglutaminsäure-p-nitrophenylester umgesetzt. Nach erneuter Hydrierung resultiert ein Produkt, das mit dem nach b) erhaltenen identisch ist. d) L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-#-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysyl-L-asparaginyl-L-alanyl-L- - phenylalanin.
Aus dem Methylester c) und c') durch enzymatische Verseifung wie in 1 e) beschrieben. Zur Aufarbeitung wird das Enzym durch kurzes Erwärmen denaturiert, abgesaugt und die Lösung gefriergetrocknet.
Ausbeute = 90%.
EMI7.3
ser ausgewaschen.
Ausbeute = 65o mg. F. = 207 bis 2090C.
Zur Abspaltung der e-tert.-Butyloxycarbonylgruppe des Lysins werden 180 mg in 3 cm3 Trifluoressigsäure gelöst und 45 min bei Raumtemperatur stehen gelassen. Nach dem Fällen mit Äther wird das Produkt über eine SE-Sephex-Säule (Ammonacetat-Gradient PH 5, 5, 0, 001- bis 0, 2-molar) chroma- tographiert.
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EMI8.1
3 : L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-L-lysyl-L-asparaginyl-L-alanyl-L-phenylalanyl--asparaginyl-L-alanyl-L-phenylalanin und L-Valyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid erhalten.
Beispiel 4 : Auf analogem Wege, ausgehend von Carbobenzoxy-L-asparagyl-ss-tert,-butylester-
EMI8.2
halten werden. Nach enzymatischer Verseifung, Kupplung mit L-Leucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid und üblicher Schutzgruppenabspaltung und Reinigung resultierte das Leu8-Eledoisin.
Beispiel 5 : a) Tert.-Butyloxycarbonyl-glycyl-L-alanyl-L-phenylalanin-methylester.
EMI8.3
Aus dem Methylester durch Umsetzung mit der vierfachen Menge Hydrazinhydrat in Methanol.
Ausbeute = 89%. F. = 177 bis 183 C, Mp = -27, 70 (e = 1, Eisessig). c) Tert.-Butyloxycarbonyl-glycyl-L-alanyl-L-phenylalanyl-L-isoleucyl-glycyl-L-leucyl-L-me- thioninamid.
EMI8.4
3,6 cm3 einer 2,2n-Lösung vonchlorwasserstoff inTetrahydrofuran suspendiert und mit 0,37 cm3 tert.- -Butylnitrit in das Azid überführt. Nach dem Versetzen mit 40 cm3 kaltem Essigester wird mit einer gesättigten NaHCOs-Lösung gewaschen und über Na. S04 getrocknet. Diese Azidlösung wird mit einem Gemischvon 1, 4 g L-Isoleucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid-hydrochlorid und 0, 42 cm3 Triäthylamin in 15 cm3 Dimethylformamid umgesetzt.
Nach dem Einengen wird mit 10% tiger Citronensäurelösung, Wasser, NaHC03 -Lösung und Eiswasser gewaschen und getrocknet.
Ausbeute = 2,16 g (89%). F. = 252 bis 255 C, Mp = -27, 00 (c : = 1, Dimethylformamid). d) H-Glycyl-L- alanyl-L-phenylalanyl-L-isoleucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid-hydrochlo- rid#1,5 H2O.
Aus 2 g der. tert.-Butyloxycarbonylverbindung werden durch Schutzgruppenabspaltung mit Chlorwasserstoff in Eisessig in der wie oben beschriebenen Weise 1, 6 g (880 ; 0) erhalten. F. = 240 bis 260 C, [α]D=-45,8 (c = l, Eisessig). e) L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-L-lysyl-glycyl-L-alanyl-L-phenylanyl-L-isoleucyl-glycyl- -L-leucyl-L-methioninamid.
1,6 g des Heptapeptids nach a) werden in Dimethylformamid mit 0,3 cm3 Triäthylamin versetzt und nach dem Abfiltrieren des Triäthylammoniumchlorids mit 1, 2 g L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl- - e-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysin und 4, 4 g Dicyclohexylcarbodiimid umgesetzt. Nach dreitägigem Stehen bei 0 C wird nach Zerstörung des überschüssigen Carbodiimids mit wenig 2n-Essigsäure vom ausgefallenen Dicyclohexylharnstoff abgesaugt, das Filtrat eingeengt und in üblicher Weise mit 10% tiger Citronensäurelösung, Wasser, gesättigter NaHCO3-Lösung und Wasser verrieben und getrocknet.
Ausbeute = 1, 8 g. F. = 223 bis 225 C.
Durch übliche Schutzgruppenabspaltung mit Trifluoressigsäure und Reinigung durch Chromatographie an SE-Sephadex (wie unter 1 g beschrieben) wird das Gly5-Eledoisin erhalten.
Beispiel 6 : Auf analogem Wege ist aus tert.-Butyloxycarbonyl-glycyl-L-alanyl-L-phenylalanyl- - L-leucyl-L-glycyl-I@leucyl-L-methionina mid [durch Reaktion von tert.-Butyloxycarbonyl-glycyl-L- - alanyl-L-phenylalaninhydrazid und H-L-Leucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid erhalten, F. = 227 bis 229 C, [aJD =-32,6 (c =1, Dimethylformamid)]. Schutzgruppenabspaltung und Kupplung mit L-
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<Desc/Clms Page number 9>
7 :- seryl-E-tert.-butyloxycarbonyl-L-lysin nach der Carbodiimidmethode, enzymatische Verseifung des Reaktionsproduktes und erneute Carbodiimidkupplung mit L-Isoleucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid bzw. L-Leucyl-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid erhalten.
PATENTANSPRÜCHE :
1. Verfahren zur Herstellung von neuen Peptiden der allgemeinen Formel
EMI9.1
in der Rl einen L-Glutaminyl-, L-Glutamyl-, L-Asparaginyl- oder Glycyl-, Rz einen L-Isoleucyl-, L-Leucyl- oder L-Valylrest bedeuten, Ri ausserdem auch den Asparagylrest, falls Ra für den Leucyloder Valylrest steht, dadurch gekennzeichnet, dass man aus Verbindungen der allgemeinen Formel
L-Pyroglutamyl-L-prolyl-L-seryl-L-lysyl (A)-X1-L-alanyl- - L-phenylalanyl-R2-glycyl-L-leucyl-L-methioninamid, worin A eine ct-Aminoschutzgruppe, X 1 den Glycyl-, L-Glutamyl-oder den an der freien Carboxylgruppe geschütztenasparaginyl-bzw, Glutaminylrest oder, falls Rj für den Leucyl- oder Valylrest steht, auch den Asparagylrest bedeuten,
die Schutzgruppen auf an sich bekannte Weise entfernt.
EMI9.2
Claims (1)
- 3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass man das geschützte Heptapeptid aus dem am C-terminalen Ende mit Methanol veresterten geschützten Heptapeptid durch Verseifung, vorzugsweise mit Hilfe eines Enzyms, wie Chymotrypsin oder Trypsin, herstellt.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE271745X | 1964-01-09 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| AT271745B true AT271745B (de) | 1969-06-10 |
Family
ID=6006765
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| AT1365A AT271745B (de) | 1964-01-09 | 1965-01-04 | Verfahren zur Herstellung von neuen Peptiden |
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| Country | Link |
|---|---|
| AT (1) | AT271745B (de) |
-
1965
- 1965-01-04 AT AT1365A patent/AT271745B/de active
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