WO2024089224A1 - Composition et procede de transparisation d'echantillons biologiques - Google Patents

Composition et procede de transparisation d'echantillons biologiques Download PDF

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WO2024089224A1
WO2024089224A1 PCT/EP2023/080024 EP2023080024W WO2024089224A1 WO 2024089224 A1 WO2024089224 A1 WO 2024089224A1 EP 2023080024 W EP2023080024 W EP 2023080024W WO 2024089224 A1 WO2024089224 A1 WO 2024089224A1
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WO
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biological sample
composition
transparency
agent
composition according
Prior art date
Application number
PCT/EP2023/080024
Other languages
English (en)
Inventor
Brigitte DELHOMME
Martin Oheim
Original Assignee
Centre National De La Recherche Scientifique
Universite Paris Cite
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centre National De La Recherche Scientifique, Universite Paris Cite filed Critical Centre National De La Recherche Scientifique
Publication of WO2024089224A1 publication Critical patent/WO2024089224A1/fr

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Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/30—Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis

Definitions

  • the present invention relates to a composition for transparizing biological samples and its use to make a biological sample transparent. More particularly, the present invention relates to a transparency composition and a method for rapid and non-toxic sweating of biological samples.
  • Auto-fluorescence has the effect of erasing the contrast between the background and the specific marking, the specific marking then merges with the intrinsic fluorescence coming from the sample.
  • the absorption of light has the effect of reducing the number of photons exponentially with the thickness of the biological sample.
  • the effect is then double in fluorescence imaging because, (i) the excitation light of the fluorescence does not reach the entirety of a thick sample, and (ii) the absorption also attenuates the signal created, the fluorescence before being collected by the lens.
  • the diffusion of light has the effect of spatially redistributing the photons in the sample, which results in heterogeneity of the refractive indices making up the biological sample.
  • imaging by (conventional) optical microscopy typically relies on the spatial detection of photons not deviated from their initial trajectories. Diffusion therefore reduces the depth of imaging techniques to a few tens of pm. Therefore, imaging of biological tissues is fundamentally limited by light scattering.
  • these techniques include solvent-based clarification methods and involve the handling of hazardous reagents.
  • methyl salicylate, benzyl alcohol, benzyl benzoate, dichloromethane and dibenzyl ether are used as a transparency composition (Becker et al. (2012) Pios one, 7: 633916).
  • the present invention arises from the unexpected demonstration, by the inventors, that a transparency composition comprising a terpene, in particular D-limonene, and thiodiethanol (TDE) in a concentration of 60% makes it possible to obtain transparency. maximum of biological samples faster than the transparency obtained with conventional transparency compositions.
  • TDE thiodiethanol
  • the inventors have demonstrated that the process for transparency of biological samples using a transparency composition as defined above is very fast, has good transparency performance, is non-toxic for the handler and non-corrosive for the equipment used. , notably the microscope objective.
  • the biological sample transparized by the process or the transparization composition according to the invention retains its morphology, its volume and its fluorescence.
  • the inventors have demonstrated that the transparency process using the transparency composition defined above has a universal character because it applies to the transparency of thick biological samples such as those of mammals, insects, plants, and small fish.
  • composition for transparing biological samples comprising at least:
  • the present invention also relates to the use of a transparency composition as defined above, to make a biological sample transparent.
  • the present invention also relates to a method for making a biological sample transparent comprising a step of bringing a biological sample into contact with a transparency composition as defined above.
  • the present invention also relates to a kit for making a biological sample transparent comprising:
  • composition comprising a delipidation and permeabilization agent, such as D-limonene,
  • composition comprising a refractive index homogenizing agent, such as thiodiglycol (TDE),
  • a depigmentation composition comprising H 2 0 2 , an alcohol and a chelating agent, such as citrates,
  • a demineralization solution comprising a divalent ion chelator, such as EDTA, BAPTA or citrate.
  • percentage values refer to volume/volume (v/v) percentages.
  • transparization or “clarification”, we mean making biological samples transparent to light, typically in the visible band, but generally from UV to IR.
  • biological sample may be used interchangeably and refer to human or animal tissues, organs, cells, insects, whole animals, and plants, as well as fragments thereof. -these such as slices, pieces, or sections.
  • tissues and “organs” include soft tissues, hard tissues, calcified tissues as well as tissues from genetically modified organisms.
  • tissues include soft tissues, hard tissues, calcified tissues as well as tissues from genetically modified organisms.
  • a biological sample according to the invention it is possible to cite the heart, the blood vessels, the salivary glands, the esophagus, the stomach, the liver, the gallbladder, the pancreas, the intestine, colon, rectum, endocrine glands, adrenal glands, kidneys, ureter, bladder, lymph node, tonsils, spleen, skin, muscles, brain, spinal cord, nerves, ovaries, uterus, vagina, mammary gland, testicles, prostate, pharynx, larynx, trachea, bronchi, lungs, diaphragm, cartilage, ligaments, tendons, bones, teeth, fish scales, fish fins, crustaceans, insects such as a wasp, a grasshopper,
  • the biological sample according to the invention has a size between 5 ⁇ m and 10 cm.
  • the biological sample according to the invention has a size less than 10 cm, 9 cm, 8 cm, 7 cm, 6 cm, 5 cm, 4 cm, 3cm, 2cm, 1 cm.
  • the biological sample according to the invention has a size greater than 5 pm, 10 pm, 20 pm, 30 pm, 40 pm, 50 pm, 100 pm, 200 pm, 300 pm, 400 pm, 500 pm . More preferably, the biological sample according to the invention has a size between 1 mm and 5 cm, between 1 mm and 2 cm, between 1 mm and 1 cm.
  • the biological sample according to the invention has a size of approximately 1 mm, 5 mm, 10 mm, 11 mm, 12 mm, 13 mm, 14 mm, 15 mm, 16 mm, 17 mm, 18 mm , 19mm, 20mm.
  • labeling agent can be used interchangeably and refer to any material capable of targeting a specific molecule on a biological sample. These can be chemical compounds or biological compounds.
  • the delipidation and permeabilization agent according to the invention is selected from the group consisting of terpenes and terpenoids.
  • the delipidation and permeabilization agent according to the invention is a terpene selected from the group consisting of limonene monoterpene, farnesol and nerolidol.
  • the delipidation and permeabilization agent according to the invention is a limonene monoterpene. Even more preferably, the delipidation and permeabilization agent according to the invention is D-limonene.
  • D-limonene also known as (4R)-i-methyl-4-prop-i-en-2-ylcyclohexene or (R)-(+)-limonene or (+)-limonene is the enantiomer R dextrorotatory of the monoterpene limonene and is well known to those skilled in the art.
  • Farnesol also known under the name (2E,6E)-3,7,ii-trimethyldodeca-2,6,io-trién-i-ol, is well known to those skilled in the art.
  • Nerolidol also known as 3,7,n-trimethyldodeca-i,6,io-triene-3-ol, is well known to those skilled in the art.
  • the transparization composition according to the invention comprises from 0.5% to 20% volume/volume of delipidation and permeabilization agent, in particular terpene, relative to the total volume of the transparization composition.
  • the transparency composition according to the invention comprises from 0.5% to 15%, from 0.5% to 10%, from 0.5% to 9%, from 0.5% to 8%, from 0 .5% to 7%, from 0.5% to 6%, from 0.5% to 5%, from 0.5% to 4%, from 0.5% to 3%, from 0.5% to 2 %, from 0.5% to 1.5%, from 0.5% to 1%, advantageously about 1% volume/volume of delipidation and permeabilization agent, in particular terpene, relative to the total volume of the transparency composition.
  • the refractive index homogenizing agent according to the invention is selected from the group consisting of thiodiglycol (TDE), ethylcinnamate and sucrose. More preferably, the refractive index homogenizing agent is thiodiglycol (TDE).
  • the transparency composition according to the invention comprises from 50% to 90%, for example 50% to 85%, 50% to 80%, 50% to 75%, 50% to 70%, 50% to 65% , 50 to 60% preferably, 55% to 80%, 55% to 70%, 55 to 65% volume/volume of refractive index homogenizing agent, in particular thiodiglycol, relative to the total volume of the transparency composition.
  • the transparency composition according to the invention comprises 60% volume/volume of agent for homogenizing the refractive index, in particular thiodiglycol, relative to the total volume of the transparency composition.
  • the transparency composition according to the invention further comprises at least one nonionic surfactant.
  • the nonionic surfactant according to the invention is present in the composition in a concentration of between 0.5 to 1%.
  • nonionic surfactant As an example of a nonionic surfactant according to the invention, it is possible to cite esters of fatty acids and polyoxyethylene sorbitan, also known under the name of polysorbates, such as polyoxyethylene sorbitan monolaurate, polyoxyethylene monopalmitate sorbitan, polyoxyethylene sorbitan monostearate and polyoxyethylene sorbitan monooleate, alcohols such as polyvinyl alcohol and alkylphenols such as polyoxyethylene octylphenyl ether, and NP-40 (Nonyl phenoxypolyethoxylethanol).
  • the nonionic surfactant according to the invention is selected from the group consisting of Triton (Tween-40), polysorbate 60 (Tween-60), and polysorbate 80 (Tween-80) and mixtures thereof.
  • the nonionic surfactant according to the invention is selected from the group consisting of Triton X-100, polysorbate 80 (Tween-80) and polysorbate 20 (Tween-20).
  • the nonionic surfactant according to the invention is Triton X-100, preferably in a concentration of 0.5 to 1% in the composition according to the invention.
  • the transparency composition according to the invention further comprises at least one agent delaying the alteration of fluorescence by light, also known as an antifading agent.
  • agent delaying the alteration of fluorescence according to the invention can be chosen from any agent delaying the alteration of fluorescence well known to those skilled in the art.
  • agents delaying the alteration of fluorescence which can be used in the transparency composition according to the invention, it is possible to cite DABCO (also known under the name of triethylenediamine or its acronym, TEDA), paraphenylene diamine (PPD), n-propylgalate.
  • the transparency composition according to the invention may contain other additional additives well known to those skilled in the art.
  • additional additives that can be used in the transparization composition according to the invention, it is possible to cite solubilizing agents, diluents, emulsifying agents, preservatives, lubricants, thickening agents, gelling agents, pH adjusting agents, osmotic pressure controlling agents, etc.
  • the transparency composition according to the invention is in the form of an aqueous composition.
  • the composition according to the invention may comprise an aqueous medium such as acidic solutions and buffer solutions such as PBS and Tris-HCl.
  • the transparency composition according to the invention has a pH of between 5 and 9, between 5.5 and 8.5, between 6 and 8.
  • the pH of the transparency composition according to the invention can be adjusted by skilled person.
  • the transparency composition comprises:
  • the agent for homogenizing the refractive index is TDE. More preferably, the refractive index homogenizing agent is TDE in an amount of 60% volume/volume relative to the total volume of the transparency composition.
  • the transparency composition comprises another terpene such as farnesol as a delipidation and permeabilization agent, and an agent for homogenizing the refractive index.
  • refractive index homogenizing agent is TDE in a quantity of 6o% volume/volume relative to the total volume of the composition.
  • the transparency composition according to the invention is used to make a biological sample according to the invention transparent.
  • the transparency composition according to the invention is used to make a biological sample transparent, in particular a soft tissue, a hard tissue, a calcified tissue, a tissue from a genetically modified organism, an insect, an animal, a plant, a cell, a fish, as well as fragments of those.
  • the transparency composition according to the invention can be used in biology applications for scientific research (neurosciences, organoids, developmental biology, etc.) taking into account the size of samples, medical histology (analyses of biopsies, extemporaneous), forensic medicine, anatomy, medical field diagnosis (developing countries), marine biology, entomology, research in plant biology, agriculture, agri-food teaching for amateurs or naturalists, fun applications for children, in the arts, in biomimicry, in architecture, for museums and collections, etc.
  • the transparency composition according to the invention can be used in biological imaging, in particular in fluorescence imaging.
  • the transparency composition according to the invention is used to image the auto-fluorescence or the fluorescence of a soft tissue, a hard tissue, a calcified tissue, a tissue derived from a genetically modified organism. modified, of an insect, an animal, a plant, a cell as well as fragments thereof.
  • the transparency composition according to the invention can also be used in immunofluorescence.
  • the method for making a biological sample transparent according to the invention comprises a step of bringing the biological sample according to the invention into contact with a transparency composition according to the invention for a sufficient time to make the biological sample transparent.
  • the transparency step according to the invention is carried out in a single step.
  • the biological sample made transparent by the transparency composition according to the invention and/or by the method according to the invention retains its volume and its morphology.
  • a reduction in the size of the biological sample of between i and 25%, for example between 5% and 20%, between 10% and 20%, between 15% and 20%, preferably about 20% relative to the initial size of the biological sample can be observed.
  • the fluorescence of most of the fluorophores and fluorescent proteins of the biological sample is preserved during its transparency.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention depends on the type of biological sample used and its size.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the transparization composition according to the invention necessary to make the biological sample transparent can easily be determined by those skilled in the art.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the transparency composition is between 48 hours and 30 seconds, preferably between 24 hours and 30 seconds, 24b and 1 minute, 2oh and 1 minute, 15I1 and 1 minute, 10 and 1 minute, 5I1 and 1 minute, 5I1 and 30 minutes, 5h and 20 minutes, ih and 20 minutes.
  • the time of bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention is less than 48 hours, less than 42 hours, less than 40 hours, less than 30 hours, less than 24 hours, less to 8 p.m., less than 3 p.m., less than 10 hours, less than 5 hours, less than 1 hour. More preferably, the time for bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention is less than 30 minutes, less than 20 minutes, less than 15 minutes, less than 12 minutes, less than 10 minutes.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the transparency composition may be greater than 48 hours, for example in the case of large biological samples such as, for example, an entire animal such as an entire mouse.
  • the biological sample intended to be transparent is a soft tissue such as for example the brain, the lung, the heart, the liver, the kidney, the spleen, a testicle, the spinal cord, the vessels blood, skin, intestines, human or animal or fragments thereof, having a size preferably less than 2 cm
  • the time for bringing the biological sample into contact with the transparency composition is between 1 hour and 1 minute, preferably between 20 minutes and 1 minute, more preferably between 10 minutes and 1 minute.
  • the contact time of the biological sample with the transparization composition according to the invention is between 48 hours and 1 hour when the biological sample intended to be transparized is an insect such as for example a grasshopper. , a policeman, a bug, a spider, etc.
  • the temperature at which the biological sample according to the invention is brought into contact with the transparency composition according to the invention is between 10°C and 6o°C, preferably between 15°C and 6o°C, between 18°C and 18°C. °C and 55°C, between 23°C and 50°C, between 25°C and 45°C, more preferably between 30°C and 42°C and even more preferably between 37°C and 40°C.
  • the time necessary to transparize the biological sample decreases compared to a transparization carried out at a temperature lower than 20°C, preferably lower than io°C.
  • any type of material well known to those skilled in the art can be used to heat the transparency composition according to the invention.
  • equipment that can be used to heat the transparency composition according to the invention preferably between 20 and 42°C, more preferably at around 37°C, it is possible to cite the water bath or the oven. .
  • the method according to the invention may also comprise a step of fixing the biological sample before bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention.
  • Any method of fixing a biological sample well known to those skilled in the art can be used to fix the biological sample according to the invention.
  • the biological sample according to the invention can be fixed by a fixing agent or a mixture of fixing agents, for example by immersing the biological sample in a solution of fixing agent at a temperature of approximately 4°C then rinsing with a physiological solution or by an perfusion technique.
  • the fixed biological sample can be stored at 4°C for a period of up to 1 year, preferably in the presence of a physiological buffer such as PBS and an inhibitor of bacterial and fungal cultures such as than sodium azide.
  • a physiological buffer such as PBS
  • an inhibitor of bacterial and fungal cultures such as than sodium azide.
  • the method according to the invention may also include a step of dehydration of the biological sample.
  • This step is optional and can be carried out using conventional biological sample dehydration methods well known to those skilled in the art.
  • the method according to the invention may also include a step of inclusion of the biological sample in a hydrogel such as for example agarose or phytagel.
  • the inclusion step is intended to facilitate the handling of the biological sample.
  • the inclusion of the biological sample is carried out after the step of demineralization, depigmentation and possibly immunofluorescence of the biological sample.
  • the inclusion of the biological sample is carried out before the step of bringing the biological sample into contact with the transparization composition, more preferably, between the depigmentation step and the transparization step when a depigmentation step necessary.
  • the inclusion of the biological sample can be carried out according to conventional inclusion methods well known to those skilled in the art.
  • the sample can be placed oriented in a mold comprising hydrogel. Once the gel has set, at room temperature or 4°C, the sample is unmolded.
  • the biological sample embedded in the hydrogel can be sliced into thin sections.
  • the thickness of the slices is less than 5 cm, for example less than 4 cm, less than 3 cm, less than 2 cm, less than 1.5 cm, less than 1 cm. More preferably, the thickness of the slices is less than 100 mm, less than 90 mm, less than 80 mm, less than 70 mm, less than 60 mm, less than 50 mm, less than 40 mm, less than 30 mm, less less than 20 mm, less than 10 mm, less than 9 mm, less than 8 mm, less than 7 mm, less than 6 mm, less than 5 mm, less than 4 mm, less than 3 mm, less than 2 mm, less to 1 mm.
  • the thickness of the slices is between 5 pm and 5 cm, more preferably between 10 pm and 2 cm, 20 pm and 1 cm, 30 pm and 1 cm, 40 pm and 1 cm, 60 pm and 1 cm, 70 pm and 1 cm, 80 pm and 1 cm, 90 pm and 1 cm, 100 pm and 1 cm, 200 pm and 1 cm, 300 pm and 1 cm, 400 pm and 1 cm, 500 pm and 1 cm.
  • the thickness of the slices is between 5 pm and 10 mm, 5 pm and 9 mm, 5 pm and 8 mm, 5 pm and 7 mm, 5 pm and 6 mm, 5 pm and 5 mm, 5 pm and 4 mm, 5 pm and 3 mm, 5 pm and 2.5 mm, 5 pm and 2 mm, 5 pm and 1.5 mm, 5 pm and 1 mm.
  • the method according to the invention may also include a step of immobilizing the biological sample on a surface.
  • the immobilization of the biological sample can be carried out according to any sample immobilization method well known to those skilled in the art.
  • a surface that can be used, it is possible to cite a slide, a plate, a well, a tube, a membrane or a film.
  • the method according to the invention may also comprise a step of depigmentation of the biological sample before the step of bringing the biological sample into contact with the transparization composition according to the invention.
  • the depigmentation step of the biological sample is carried out in order to improve the depigmentation of strongly stained tissues such as the liver, kidneys, lungs, etc. those skilled in the art can easily determine when a depigmentation step is necessary.
  • the depigmentation step according to the invention is preferably carried out in a single step.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the pretreatment composition varies depending on the type and size of the biological sample and can be easily determined by those skilled in the art.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the pretreatment composition can range from a few minutes for small samples to several days for insects or fish.
  • the time for bringing the biological sample into contact with the pretreatment composition is between 10 minutes and 24 hours.
  • the depigmentation step according to the invention is preferably carried out at a temperature between 20°C and 42°C, preferably at around 37°C.
  • the step of depigmentation of the biological sample is carried out by bringing the biological sample into contact with a composition, also called pretreatment composition, comprising hydrogen peroxide (H 2 0 2 ), an alcohol, and a chelating agent and a buffer.
  • a composition also called pretreatment composition, comprising hydrogen peroxide (H 2 0 2 ), an alcohol, and a chelating agent and a buffer.
  • the alcohol of the pretreatment composition according to the invention is selected from the group consisting of primary and secondary alcohols. More preferably, the alcohol is selected from methanol and ethanol. Even more preferably, the alcohol according to the invention is ethanol.
  • the chelating agent of the pretreatment composition according to the invention is a bivalent ion chelator.
  • the chelating agent of the pretreatment composition according to the invention may be EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid), but is preferably citrate.
  • the method according to the invention may also comprise a step of demineralization and decalcification of the biological sample before bringing the biological sample into contact with the transparency composition and before the depigmentation step when a depigmentation step is necessary. .
  • Those skilled in the art can easily determine when a step of demineralization of the biological sample is necessary.
  • the step of demineralization of the biological sample is carried out on hard tissues such as for example calcified tissues, bones, teeth, insects, fish, crustaceans, etc.
  • the step of demineralization of the biological sample is carried out by bringing the biological sample into contact with a demineralization solution.
  • the demineralization solution according to the invention preferably comprises at least one ion chelator bivalent.
  • the bivalent ion chelator selected from the group consisting of EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid), BAPTA (2, 2', 2", 2"'-[1,2-ethane-diylbis(2-oxy)acid ,i-phenylenenitrilo)]tetraacetic) and citrate.
  • the step of demineralization of the biological sample is carried out at a temperature between 35 and 45°C, more preferably at around 42°C.
  • the step of demineralization of the biological sample is carried out for a duration which depends on the type of biological sample used and its size.
  • the step of demineralization of the biological sample is carried out for a period of between 10 minutes and a few days.
  • the demineralization duration adapted to the biological sample used can be easily determined by those skilled in the art.
  • the method according to the invention further comprises a step of stopping the transparency.
  • the step of stopping the transparency is preferably carried out by immersing the biological sample in a solution of agent for homogenizing the refractive index.
  • the step of stopping the transparency is carried out by immersing the biological sample in a solution of agent for homogenizing the refractive index after removal of the agent of the delipidation agent and of permeabilization.
  • the step of stopping the transparency is carried out by immersing the biological sample in TDE. More preferably, the step of stopping the transparency is carried out by immersing the biological sample in TDE at a concentration of 60%. Imaging can subsequently take place in the same buffer.
  • the biological sample can be stored for several months in the refractive index homogenizing agent solution without delipidation and permeabilization agent.
  • the biological sample can be stored for at least 1 month, at least 2 months, at least 3 months, at least 4 months, at least 5 months, at least 6 months, at least 7 months, at least 8 months, at least 9 months, at least 10 months, at least 11 months, at least 12 months in the refractive index homogenizing agent solution without delipidation agent.
  • the transparency process according to the invention is reversible, that is to say that the biological sample which has become transparent by the process according to the invention becomes opaque again when it is immersed in a buffer.
  • at least 50% of the biological sample at least 55%, at least 60%, at least 65%, at least 70%, at least 75%, at least 80%, at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 98% of the biological sample regains its initial opacity when it is immersed in a buffer solution, such as for example a PBS solution, a PIPES solution, a HEPES solution, a MOPS solution, and a Tris-HCl solution.
  • the method according to the invention comprises: A step of depigmentation of a biological sample by bringing the biological sample according to the invention into contact with a pretreatment composition according to the invention comprising H 2 0 2 , an alcohol, in particular ethanol, and citrate;
  • a transparency step by bringing the depigmented biological sample into contact with the transparency composition according to the invention
  • the method further comprises, before the depigmentation step, a step of decalcification of the biological sample.
  • the method according to the invention further comprises one or more detection and/or characterization steps such as:
  • the method according to the invention comprises a step of marking a target of the biological sample with a dye or a marking agent, preferably coupled to a fluorescent molecule.
  • the step of marking the biological sample is carried out before the step of bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention.
  • the marking step makes it possible to highlight and/or quantify targets of the biological sample.
  • the method according to the invention comprises a direct or indirect immunostaining step.
  • the marking or immunolabeling step can be carried out using conventional marking techniques well known to those skilled in the art. For example, it is possible to use antibodies, fluorescent probes, proteins, proteins produced by genetically modified organisms, etc., for marking a target of the biological sample.
  • the targets of the biological sample are selected from the group consisting of constituents cell and tissue specific, such as nucleic acids, antigens, proteins, peptides, fragments containing amino acids, oligonucleotides, including oligonucleotides containing DNA bases, RNA bases, DNA and RNA, and synthetic bases, nucleic acid fragments, lipids, hormones, vitamins, and sugars from the biological sample.
  • constituents cell and tissue specific such as nucleic acids, antigens, proteins, peptides, fragments containing amino acids, oligonucleotides, including oligonucleotides containing DNA bases, RNA bases, DNA and RNA, and synthetic bases, nucleic acid fragments, lipids, hormones, vitamins, and sugars from the biological sample.
  • antibodies or an antibody fragment such as a monoclonal antibody, a polyclonal antibody, an immunoglobulin G (IgG ), immunoglobulin M (IgM), single-chain variable fragment antibody (scFv), nanoantibody, antigen-binding fragment (Fab), etc.
  • IgG immunoglobulin G
  • IgM immunoglobulin M
  • scFv single-chain variable fragment antibody
  • Fab antigen-binding fragment
  • the fluorescent molecules according to the invention are selected from the group consisting of coumarins such as hydroxycoumarin, methoxycoumarin, aminocoumarin, cyanines, such as Cy5, Cy2 , Cy3, and Cy7, a xanthene-based dye such as fluorescein and rhodamine in particular FAM, HEX, and TRITC, the Alexa Fluor range in particular Alexa Fluor 488, Alexa Fluor 430, Alexa Fluor 532, Alexa Fluor 546, Alexa Fluor 555, Alexa Fluor 568, Alexa Fluor 594, Alexa Fluor 633, and Alexa Fluor 660, tamara, Red6i3, and Texas red.
  • coumarins such as hydroxycoumarin, methoxycoumarin, aminocoumarin
  • cyanines such as Cy5, Cy2 , Cy3, and Cy7
  • a xanthene-based dye such as fluorescein and rhodamine in particular FAM, HEX, and TRI
  • the biological sample according to the invention can be observed by optical imaging.
  • the transparency obtained using the transparency composition according to the invention makes it possible to improve the observation capacity and the sensitivity of signal detection of fluorescent and non-fluorescent structures.
  • optical imaging techniques used in the method according to the invention include intensity, phase, lifetime imaging, light sheet microscopy, confocal microscopy, fluorescence microscopy, conventional transmitted light microscopy, and two-photon excitation microscopy, dissecting microscopy, fluorescence plaque detection, nanoscopy, spectroscopy and optical tomography.
  • the images obtained by optical imaging techniques can be processed with standard 3D reconstruction software well known to those skilled in the art.
  • the method according to the invention comprises:
  • a step of marking a target of the biological sample with a marking agent A transparency step by bringing the biological sample into contact with the transparency composition according to the invention;
  • a method according to the invention comprising the immunostaining of the biological sample may comprise the following steps:
  • a method according to the invention comprising the immunostaining of the biological sample may comprise the following steps:
  • the incubation time depends on the thickness of the biological sample and can be easily determined by those skilled in the art;
  • the kit according to the invention comprises a container comprising a composition comprising a delipidation and permeabilization agent according to the invention.
  • the kit according to the invention comprises a second container comprising a composition comprising a refractive index homogenizing agent, such as thiodiglycol (TDE).
  • a refractive index homogenizing agent such as thiodiglycol (TDE).
  • the container comprising a composition comprising a delipidation and permeabilization agent according to the invention, in particular a terpene, and also comprises a non-ionic surfactant according to the invention.
  • the container comprising a composition comprising a refractive index homogenizing agent such as thiodiglycol (TDE) also comprises an agent delaying the alteration of fluorescence also known as an antifading agent.
  • TDE thiodiglycol
  • the kit according to the present invention may further comprise a depigmentation composition according to the invention comprising H 2 0 2 , an alcohol, such as ethanol and a chelating agent, such as citrate.
  • a depigmentation composition according to the invention comprising H 2 0 2 , an alcohol, such as ethanol and a chelating agent, such as citrate.
  • the kit according to the present invention may further comprise a demineralization solution preferably comprising a divalent ion chelator, such as EDTA, BAPTA or citrate.
  • a demineralization solution preferably comprising a divalent ion chelator, such as EDTA, BAPTA or citrate.
  • the kit according to the present invention may further comprise instructions for use of the kit and the transparency composition.
  • Figure 1 represents a curve representing the percentage of contrast (%) measured after photography of the samples tested during transparency as a function of time (minutes).
  • the samples are 1 mm slices of 12-month-old mouse brains transparized in a transparization composition according to the invention and imaged in a 60% TDE composition.
  • Figure 2 represents a spider before carrying out the transparency process according to the invention.
  • Figure 3 shows a spider after having undergone a 2-day depigmentation stage.
  • Figure 4 represents a spider after having undergone a transparency step according to the invention of 40I1.
  • the inventors evaluated the transparency time of biological samples with the transparency composition according to the invention and with TDE alone.
  • Samples of 1 mm thickness of 12-month-old mouse brain and 1-month-old mouse brain were depigmented overnight in a composition comprising H 2 0 2 , ethanol and citrate and buffer.
  • the 12-month-old and 1-month-old depigmented mouse brain samples were placed in a transparency composition according to the invention comprising D-limonene and TDE 60% in a tank with a transparent bottom placed on a target having black areas and white
  • a transparization composition according to the invention comprising D-limonene and 60% TDE at 37°C or in a composition comprising 60% TDE without D-limonene at 37°C in a tank with a transparent bottom placed on a target having black and white areas.
  • the level of transparency was evaluated using the Michelson contrast measured after photographing the sample during transparency.
  • the intensity of the white and black areas was determined using ImageJ software (Schneider et al. (2012) Nature Methods, 9: 671-675).
  • the transparency of the samples using the transparization composition according to the invention is compared to that of those transparized by TDE 60% alone.
  • the data are analyzed by determining the Michelson contrast.
  • the i/contrast curve fct time (minutes) gives the T1/2 (time-lag) which corresponds to the time necessary to obtain 50% of the maximum contrast.
  • An entire spider underwent a first depigmentation step using a depigmentation composition according to the invention comprising H 2 0 2 , ethanol and citrate.
  • the spider was completely depigmented (see Figure 3).
  • the depigmented spider was then embedded in agarose and underwent a transparization step by contacting with a transparization composition comprising D-limonene and 60% TDE.
  • the spider embedded in the agarose was completely transparized (see Figure 4).

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Abstract

La présente invention concerne une composition de transparisation d'échantillons biologiques, comprenant au moins : - un agent de délipidation et de perméabilisation; - un agent d'homogénéisation de l'indice de réfraction; dans laquelle l'agent de délipidation et de perméabilisation est un composé choisi parmi les terpènes ou les terpénoïdes, de préférence les terpènes.

Description

COMPOSITION ET PROCEDE DE TRANSPARISATION D’ECHANTILLONS BIOLOGIQUES
Domaine de l’invention
La présente invention concerne une composition de transparisation d’échantillons biologiques et son utilisation pour rendre un échantillon biologique transparent. Plus particulièrement, la présente invention concerne une composition de transparisation et un procédé de transpiration rapide et non-toxique d’échantillons biologiques.
Arrière-plan technique
L’étude de la structure tridimensionnelle des échantillons biologiques comme les tissus et les organes donne lieu à la nécessité d'une imagerie optique volumétrique, ou 3D pour acquérir des informations structurelles complètes. Cependant, l'imagerie optique de tissus épais ou d'organes entiers est limitée par l’auto-fluorescence de l’échantillon biologique, l’absorption de la lumière et plus particulièrement par la diffusion de la lumière.
L’auto-fluorescence a pour effet de gommer le contraste entre le fond et le marquage spécifique, le marquage spécifique se confond alors avec la fluorescence intrinsèque provenant de l’échantillon.
L’absorption de la lumière a pour effet de réduire le nombre de photons exponentiellement avec l’épaisseur de l’échantillon biologique. L’effet est alors double en imagerie par fluorescence car, (i) la lumière d’excitation de la fluorescence n’atteint pas la totalité d’un échantillon épais, et (ii) l’absorption atténue également le signal crée, la fluorescence avant d’être collecté par l’objectif.
Enfin, la diffusion de la lumière a pour effet de redistribuer spatialement les photons dans l’échantillon ce qui résulte en une hétérogénéité des indices de réfractions composants l’échantillon biologique. Or, l’imagerie par microscopie optique (conventionnelle) repose typiquement sur la détection spatiale des photons non-déviés de leurs trajectoires initiales. La diffusion réduit donc la profondeur des techniques d’imagerie à quelques dizaines de pm. Par conséquent, l’imagerie des tissus biologiques est fondamentalement limitée par la diffusion de la lumière.
Des avancées majeures dans le domaine ont été réalisées grâce au développement de techniques de transparisation d’échantillons biologiques qui reposent notamment sur l’homogénéisation des indices de réfraction dans l’échantillon biologique afin de réduire les défauts d’homogénéité de la diffusion de la lumière et permettre l’observation de structures plus profondes de l’échantillon biologique.
Cependant, ces techniques ont en commun leur lenteur, souvent de l’ordre de plusieurs heures ou jours, selon la taille de l’échantillon transparisé, réduisant le nombre d’échantillons pouvant être analysés par jour, voir par semaine, et immobilisant des moyens matériels et humains.
De plus, ces techniques comprennent des méthodes de clarification à base de solvants et impliquent la manipulation de réactifs dangereux. A titre d’exemple, le salicylate de méthyle, l'alcool benzylique, le benzoate de benzyle, le dichlorométhane et l’éther dibenzylique sont utilisés comme composition de transparisation (Becker et al. (2012) Pios one, 7 : 633916).
Ainsi, malgré les progrès importants réalisés dans le domaine, aucune technique n’est satisfaisante et il y a un besoin de méthodes de transparisation d’échantillons biologiques alternatives plus rapides, moins toxiques et présentant de bonnes performances de transparisation. De plus, les méthodes actuelles qui fonctionnent bien le font souvent sur un type d’échantillon seulement ; lorsque la préparation ou le modèle animal change, tout reste à refaire, optimiser, modifier la méthode afin d’obtenir des résultats satisfaisants. Ainsi, il y a un besoin, notamment pour des services de microscopie et des plateformes d’imagerie, d’une méthode plus généralement applicable.
Résumé de l’invention
La présente invention découle de la mise en évidence inattendue, par les inventeurs, qu’une composition de transparisation comprenant un terpène, en particulier du D-limonène, et du thiodiéthanol (TDE) en une concentration de 60% permet d’obtenir une transparisation maximale d’échantillons biologiques plus rapide que la transparisation obtenue avec les compositions de transparisation classiques.
Les inventeurs ont mis en évidence que le procédé de transparisation d’échantillons biologiques utilisant une composition de transparisation telle que définie ci-dessus est très rapide, a de bonnes performances de transparisation, est non toxique pour le manipulateur et non corrosif pour le matériel employé, notamment l’objectif du microscope.
De plus, l’échantillon biologique transparisé par le procédé ou la composition de transparisation selon l’invention conserve sa morphologie, son volume et sa fluorescence.
Par ailleurs, les inventeurs ont mis en évidence que le procédé de transparisation utilisant la composition de transparisation définie ci-dessus revêt un caractère universel car il s’applique à la transparisation d’échantillons biologiques épais tels ceux de mammifères, d’insectes, de végétaux, et de petits poissons.
Ainsi, la présente invention concerne une composition de transparisation d’échantillons biologiques, comprenant au moins :
- un agent de délipidation et de perméabilisation ;
- un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction ; dans laquelle l’agent de délipidation et de perméabilisation est un composé sélectionné dans le groupe constitué des terpènes et des terpénoïdes, de préférence des terpènes. La présente invention concerne également l’utilisation d’une composition de transparisation telle que définie ci-dessus, pour rendre un échantillon biologique transparent.
La présente invention concerne également un procédé pour rendre un échantillon biologique transparent comprenant une étape de mise en contact d’un échantillon biologique avec une composition de transparisation telle que définie ci-dessus.
La présente invention concerne également un kit pour rendre un échantillon biologique transparent comprenant :
- une composition comprenant un agent de délipidation et de perméabilisation, tel que le D-limonène,
- une composition comprenant un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, tel que le thiodiglycol (TDE),
- éventuellement, une composition de dépigmentation comprenant H202, un alcool et un agent chélatant, tel que les citrates,
- éventuellement, une solution de déminéralisation comprenant un chélateur d’ions divalents, tel que l’EDTA, le BAPTA ou du citrate.
Description détaillée de l’invention
Définitions
Le terme « comprenant » signifie « incluant », « contenant » ou « englobant », c’est-à- dire que lorsqu’un objet « comprend » un ou plusieurs éléments, d’autres éléments que ceux mentionnés peuvent également être compris dans l’objet. A contrario, l’expression « consistant en » signifie « constitué de », c’est-à-dire que lorsqu’un objet « consiste en » un ou plusieurs éléments, l’objet ne peut pas comprendre d’autres éléments que ceux mentionnés.
Sauf définition contraire, les termes techniques et scientifiques utilisés ici ont la même signification que celle communément comprise par l’homme du métier.
Sauf indication contraire, les valeurs en pourcentage (%) se réfèrent à des pourcentages en volume/volume (v/v).
On entend par « transparisation », ou « clarification », rendre les échantillons biologiques transparents à la lumière, typiquement dans la bande visible, mais généralement de l’UV à l’IR.
Les expressions « échantillon biologique », « échantillon clinique » et « échantillon » peuvent être utilisées de manière interchangeable et désignent des tissus, organes, cellules humains ou animaux, des insectes, des animaux entiers, et des végétaux, ainsi que des fragments de ceux-ci tels que des tranches, morceaux, ou sections.
Les termes « tissus » et « organes » regroupent les tissus mous, les tissus durs, les tissus calcifiés ainsi que les tissus issus d’organismes génétiquement modifiés. A titre d’exemple d’échantillon biologique selon l’invention, il est possible de citer le cœur, les vaisseaux sanguins, les glandes salivaire, l’œsophage, l’estomac, le foie, la vésicule biliaire, le pancréas, l’intestin, le côlon, le rectum, les glandes endocrines, les glandes surrénales, les reins, l’uretère, la vessie, le ganglion lymphatique, les amygdales, la rate, la peau, les muscles, le cerveau, la moelle épinière, les nerfs, les ovaires, l’utérus, le vagin, la glande mammaire, les testicules, la prostate, le pharynx, le larynx, la trachée, les bronches, les poumons, le diaphragme, le cartilage, les ligaments, les tendons, les os, les dents, les écailles de poisson, les nageoires des poissons, les crustacés, les insectes tels qu’une guêpe, une sauterelle, une araignée, une mouche, un gendarme, une punaise etc. les végétaux tels qu’une feuille, une racine, une tige, une pétale, une fleur, etc., des animaux entiers tels que des souris, ainsi que des fragments de ceux-ci.
De préférence, l’échantillon biologique selon l’invention a une taille comprise entre 5 pm et 10 cm. De préférence, l’échantillon, biologique selon l’invention a une taille inférieure à 10 cm, 9 cm, 8 cm, 7 cm, 6 cm, 5 cm, 4 cm, 3cm, 2cm, 1 cm. De préférence également, l’échantillon, biologique selon l’invention a une taille supérieure à 5 pm, 10 pm, 20 pm, 30 pm, 40 pm, 50 pm, 100 pm, 200 pm, 300 pm, 400 pm, 500 pm. Plus préférablement, l’échantillon biologique selon l’invention a une taille comprise entre 1 mm et 5 cm, entre 1 mm et 2 cm, entre 1 mm et 1 cm. De préférence, l’échantillon biologique selon l’invention à une taille d’environ 1 mm, 5 mm, 10 mm, 11 mm, 12 mm, 13 mm, 14 mm, 15, mm, 16 mm, 17 mm, 18 mm, 19 mm, 20 mm.
Les expressions « agent de marquage », « colorant », « matériel de marquage » et « sonde » peuvent être utilisées de manière interchangeable et désignent tout matériel capable de cibler une molécule spécifique sur un échantillon biologique. Il peut s’agir de composés chimiques ou de composés biologiques.
Les termes « contenant », « récipient » et « tube » peut être utilisés de manière interchangeable.
Composition de transparisation
De préférence, l’agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention est sélectionné dans le groupe constitué des terpènes et des terpénoïdes.
De préférence, l’agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention est un terpène sélectionné dans le groupe constitué du monoterpène limonène, du farnésol et du nérolidol.
Plus préférablement, l’agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention est un monoterpène limonène. Encore plus préférablement, l’agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention est le D-limonène. Le D-limonène, aussi connu sous le nom de (4R)-i-methyl-4-prop-i-en-2- ylcyclohexene ou (R)-(+)-limonène ou (+)-limonène est l'énantiomère R dextrogyre du monoterpène limonène et est bien connu de l’homme du métier.
Le farnésol, aussi connu sous le nom (2E,6E)-3,7,ii-triméthyldodéca-2,6,io-trién-i-ol, est bien connu de l’homme du métier.
Le nérolidol, aussi connu sous le nom de 3,7,n-triméthyldodéca-i,6,io-triène-3-ol, est bien connu de l’homme du métier.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention comprend de 0,5% à 20% volume/volume d’agent de délipidation et de perméabilisation, en particulier de terpène, par rapport au volume total de la composition de transparisation. De préférence, la composition de transparisation selon l’invention comprend de 0,5% à 15%, de 0,5% à 10%, de 0,5% à 9%, de 0,5% à 8%, de 0,5% à 7%, de 0,5% à 6%, de 0,5% à 5%, de 0,5% à 4%, de 0,5% à 3%, de 0,5% à 2%, de 0,5% à 1,5%, de 0,5% à 1%, avantageusement environ 1% volume/volume d’agent de délipidation et de perméabilisation, en particulier de terpène, par rapport au volume total de la composition de transparisation.
De préférence, l’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction selon l’invention est sélectionné dans le groupe constitué du thiodiglycol (TDE), de l’éthylcinnamate et du saccharose. Plus préférablement, l'agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est le thiodiglycol (TDE).
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention comprend de 50% à 90%, par exemple 50% à 85%, 50% à 80%, 50% à 75%, 50% à 70%, 50% à 65%, 50 à 60% de préférence, 55% à 80%, 55% à 70%, 55 à 65% volume/volume d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, en particulier de thiodiglycol, par rapport au volume total de la composition de transparisation.
Plus préférablement, la composition de transparisation selon l’invention comprend 60% volume/volume d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, en particulier de thiodiglycol, par rapport au volume total de la composition de transparisation.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention comprend en outre au moins un tensioactif non ionique.
De préférence, le tensioactif non ionique selon l’invention est présent dans la composition en une concentration comprise entre 0,5 à 1%.
A titre d’exemple de tensioactif non ionique selon l’invention, il est possible de citer les esters d'acides gras et de polyoxyéthylène sorbitane, aussi connus sous le nom de polysorbates, tels que le monolaurate de polyoxyéthylène sorbitane, le monopalmitate de polyoxyéthylène sorbitane, le monostéarate de polyoxyéthylène sorbitane et le monooléate de polyoxyéthylène sorbitane, les alcools tel que l'alcool polyvinylique et les alkylphénols tel que le polyoxyéthylène octylphényl éther, et le NP-40 (Nonyl phenoxypolyethoxylethanol). De préférence, le tensioactif non ionique selon l’invention est sélectionné dans le groupe constitué des Triton X tels que le Triton X-ioo et le Triton X-140, des polysorbates tels que le polysorbate 20 (Tween-20), le polysorbate 40 (Tween-40), le polysorbate 60 (Tween- 60), et le polysorbate 80 (Tween-80) et des mélanges de ceux-ci.
Plus préférablement, le tensioactif non ionique selon l’invention est sélectionné dans le groupe constitué du Triton X-100, du polysorbate 80 (Tween-80) et du polysorbate 20 (Tween- 20).
De manière encore plus préférée, le tensioactif non ionique selon l’invention est le Triton X-100, de préférence en une concentration de 0,5 à 1% dans la composition selon l’invention.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention comprend en outre au moins un agent retardant l’altération de la fluorescence par la lumière, aussi connu sous le nom d’agent antifading. L’agent retardant l’altération de la fluorescence selon l’invention peut être choisi parmi n’importe quel agent retardant l’altération de la fluorescence bien connu de l’homme du métier. A titre d’exemple d’agents retardant l’altération de la fluorescence pouvant être utilisés dans la composition de transparisation selon l’invention, il est possible de citer le DABCO (aussi connu sous le nom de triéthylènediamine ou son acronyme, TEDA), le paraphénylène diamine (PPD), du n-propylgalate.
La composition de transparisation selon l’invention peut contenir d’autres additifs supplémentaires bien connus de l’homme du métier. A titre d’exemple d’additifs additionnels pouvant être utilisés dans la composition de transparisation selon l’invention, il est possible de citer des agents de solubilisation, des diluants, des agents émulsifiants, des conservateurs, des lubrifiants, des agents épaississants, des gélifiants, des agents d'ajustement du pH, des agents de contrôle de la pression osmotique, etc.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention est sous forme de composition aqueuse. La composition selon l’invention peut comprendre un milieu aqueux tel des solutions acides et des solutions tampon tels que le PBS et le Tris-HCl.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention à un pH compris entre 5 et 9, entre 5,5 et 8,5, entre 6 et 8. Le pH de la composition de transparisation selon l’invention peut être ajusté par l’homme du métier.
Selon un mode de réalisation particulier de l’invention, la composition de transparisation comprend :
- du D-limonène comme agent de délipidation et de perméabilisation ;
- un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction ;
- un tensioactif non ionique, de préférence le triton X-100. De préférence, l’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est le TDE. Plus préférablement, l’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est le TDE en une quantité de 6o% volume/volume par rapport au volume totale de la composition de transparisation.
Selon un mode de réalisation particulier de l’invention, la composition de transparisation comprend un autre terpène tel que du farnésol comme agent de délipidation et de perméabilisation, et un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction. De préférence, agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est le TDE en une quantité de 6o% volume/volume par rapport au volume totale de la composition.
Utilisation
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention est utilisée pour rendre un échantillon biologique selon l’invention transparent.
De préférence, la composition de transparisation selon l’invention est utilisée pour rendre transparent un échantillon biologique, en particulier un tissu mou, un tissu dur, un tissu calcifié, un tissu issu d’organisme génétiquement modifié, un insecte, un animal, une plante, une cellule, un poisson, ainsi que des fragments de ceux.
La composition de transparisation selon l’invention peut être utilisée dans les applications de biologie pour la recherche scientifique (neurosciences, organoïdes, biologie du développement,...) prenant compte de la taille des échantillons, d’histologie médicale (analyses des biopsies, des extemporanées), de médecine légale, d’anatomie, de diagnostic médical de terrain (pays en voie de développement), de biologie marine, d’entomologie, de recherche en biologie végétale, en agriculture, en agroalimentaire d’enseignement pour amateurs ou naturalistes, des applications ludiques pour enfants, dans les arts, en biomimétisme, en architecture, pour les musées et collections, etc.
La composition de transparisation selon l’invention peut être utilisée en imagerie biologique, en particulier en imagerie de fluorescence. De préférence, la composition de transparisation selon l’invention est utilisée pour imager l’auto-fluorescence ou la fluorescence d’un tissu mou, d’un tissu dur, d’un tissu calcifié, d’un tissu issu d’organisme génétiquement modifié, d’un insecte, d’un animal, d’une plante, d’une cellule ainsi que des fragments de ceux- ci.
La composition de transparisation selon l’invention peut également être utilisée en immunofluorescence.
Procédé
De préférence, le procédé pour rendre un échantillon biologique transparent selon l’invention comprend une étape de mise en contact de l’échantillon biologique selon l’invention avec une composition de transparisation selon l’invention pendant un temps suffisant pour rendre l’échantillon biologique transparent. De préférence, l’étape de transparisation selon l’invention est réalisée en une seule étape.
De préférence, l’échantillon biologique rendu transparent par la composition de transparisation selon l’invention et/ ou par le procédé selon l’invention conserve son volume et sa morphologie. Lors de la transparisation d’un échantillon biologique selon l’invention, une réduction de la taille de l’échantillon biologique comprise entre i et 25%, par exemple entre 5% et 20%, entre 10% et 20%, entre 15% et 20%, préférablement d’environ 20% par rapport à la taille initiale de l’échantillon biologique peut être observée.
De préférence également, la fluorescence de la plupart des fluorophores et protéines fluorescentes de l’échantillon biologique est conservée lors de la transparisation de celui-ci.
Le temps de mise en en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention dépend du type d’échantillon biologique utilisé et de sa taille. Le temps de mise en en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention nécessaire pour rendre l’échantillon biologique transparent peut aisément être déterminé par l’homme du métier.
De préférence, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation est compris entre 48 heures et 30 secondes, de préférence entre 24 heures et 30 secondes, 24b et 1 minute, 2oh et 1 minute, 15I1 et 1 minute, 10 et 1 minute, 5I1 et 1 minute, 5I1 et 30 minutes ,5h et 20 minutes, ih et 20 minutes.
De préférence, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention est inférieur à 48 heures, inférieur à 42 heures, inférieur à 40 heures, inférieur à 30 heures, inférieur à 24 heures, inférieur à 20 heures, inférieur à 15 heures, inférieur à 10 heures, inférieur à 5 heures, inférieur à 1 heure. Plus préférablement, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention est inférieur à 30 minutes, inférieur à 20 minutes, inférieur à 15 minutes, inférieur à 12 minutes, inférieur à 10 minutes.
Le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation peut être supérieur à 48 heures par exemple dans le cas d’échantillons biologiques volumineux tels que par exemple un animal entier comme une souris entière.
A titre d’exemple, lorsque l’échantillon biologique destiné à être transparisé est un tissu mou tel que par exemple le cerveau, le poumon, le cœur, le foie, le rein, la rate, un testicule, la moelle épinière, les vaisseaux sanguins, la peau, les intestins, humains ou animaux ou des fragments de ceux-ci, ayant une taille de préférence inférieure à 2 cm, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation est compris entre 1 heure et 1 minute, de préférence entre 20 minutes et 1 minute, plus préférablement entre 10 minutes et 1 minute. A titre d’exemple, le temps de contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention est compris entre 48 heures et 1 heure lorsque l’échantillon biologique destiné à être transparisé est un insecte tel que par exemple une sauterelle, un gendarme, une punaise, une araignée, etc.
De préférence, la température de mise en contact de l’échantillon biologique selon l’invention avec la composition de transparisation selon l’invention est comprise entre io°C et 6o°, de préférence entre 15°C et 6o°C, entre 18°C et 55°C, entre 23°C et 5O°C, entre 25°C et 45°C, plus préférablement entre 3O°C et 42°C et de manière encore plus préférée entre 37°C et 4O°C.
Lorsque que la mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention est réalisée à température ambiante, soit entre 20 et 25°C, ou à une température supérieure, de préférence entre 37°C et 42°C, le temps nécessaire pour transpariser l’échantillon biologique diminue par rapport à une transparisation réalisée à une température inférieure à 20°C, de préférence inférieur à io°C.
Tout type de matériel bien connu de l’homme du métier peut être utilisé pour chauffer la composition de transparisation selon l’invention. A titre d’exemple de matériel pouvant être utilisé pour chauffer la composition de transparisation selon l’invention, de préférence entre 20 et 42°C, plus préférablement à environ 37°C, il est possible de citer le bain marie ou l’étuve.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape de fixation de l’échantillon biologique avant la mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention. N’importe quelle méthode de fixation d’échantillon biologique bien connues de l’homme du métier peut être utilisée pour fixer l’échantillon biologique selon l’invention. A titre d’exemple, l’échantillon biologique selon l’invention peut être fixé par un agent fixateur ou un mélange d’agents fixateurs par exemple par immersion de l’échantillon biologique dans une solution d’agent fixateur à une température d’environ 4°C puis rinçage avec une solution physiologique ou par une technique de perfusion. A titre d’exemple d’agent fixateur pouvant être utilisé il est possible de citer les aldéhydes, tels que le formol et le paraformaldéhyde, les alcools, tels que l’éthanol et le méthanol, les acides tels que l’acide acétique, le glyoxal, et des mélanges de ceux-ci. De préférence, l’échantillon biologique fixé peut être conservé à 4°C pendant une durée pouvant aller jusqu’à 1 an de préférence en présence d’un tampon physiologique tel que du PBS et d’un inhibiteur de cultures bactériennes et de champignons tel que l’azide de sodium.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape de déshydratation de l’échantillon biologique. Cette étape est optionnelle et peut être réalisée selon les méthodes de déshydratation d’échantillons biologiques classiques bien connues de l’homme du métier. A titre d’exemple, il est possible de déshydrater l’échantillon biologique selon l’invention en replaçant l’eau qu’il contient par de l’alcool tel que l’éthanol, par exemple en plongeant l’échantillon dans une succession de bains d’alcool de concentration croissante.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape d’inclusion de l’échantillon biologique dans un hydrogel tel que par exemple de l’agarose ou du phytagel. Avantageusement, l’étape d’inclusion est destinée à faciliter la manipulation de l’échantillon biologique. De préférence, l’inclusion de l’échantillon biologique est réalisée après l’étape de déminéralisation, de dépigmentation et éventuellement d’immunofluorescence de l’échantillon biologique. De préférence, l’inclusion de l’échantillon biologique est réalisée avant l’étape de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation, plus préférablement, entre l’étape de dépigmentation et l’étape de transparisation lorsqu’une étape de dépigmentation nécessaire. L’inclusion de l’échantillon biologique peut être effectuée selon les méthodes classiques d’inclusion bien connues de l’homme du métier. A titre d’exemple, l’échantillon peut être déposé orienté dans un moule comprenant de l’hydrogel. Une fois la prise du gel effectuée, à température ambiante ou 4°C, l’échantillon est démoulé.
L’échantillon biologique inclus dans l’hydrogel peut être coupé en tranches de sections fines. De préférence, l’épaisseur des tranches est inférieure à 5 cm, par exemple inférieure à 4 cm, inférieure à 3 cm, inférieure à 2 cm, inférieure à 1,5 cm, inférieure à 1 cm. Plus préférablement, l’épaisseur des tranches est inférieure à 100 mm, inférieure à 90 mm, inférieure à 80 mm, inférieure à 70 mm, inférieure à 60 mm, inférieure à 50 mm, inférieure à 40 mm, inférieure à 30 mm, inférieure à 20 mm, inférieure à 10 mm, inférieure à 9 mm, inférieure à 8 mm, inférieure à 7 mm, inférieure à 6 mm, inférieure à 5 mm, inférieure à 4 mm, inférieure à 3 mm, inférieure à 2 mm, inférieure à 1 mm.
De préférence, l’épaisseur des tranches est comprise entre 5 pm et 5 cm, plus préférablement entre 10 pm et 2 cm, 20 pm et 1 cm, 30 pm et 1 cm, 40 pm et 1 cm, 60 pm et 1 cm, 70 pm et 1 cm, 80 pm et 1 cm, 90 pm et 1 cm, 100 pm et 1 cm, 200 pm et 1 cm, 300 pm et 1 cm, 400 pm et 1 cm, 500 pm et 1 cm.
Plus préférablement, l’épaisseur des tranches est comprise entre 5 pm et 10 mm, 5 pm et 9 mm, 5 pm et 8 mm, 5 pm et 7 mm, 5 pm et 6 mm, 5 pm et 5 mm, 5 pm et 4 mm, 5 pm et 3 mm, 5 pm et 2,5 mm, 5 pm et 2 mm, 5 pm et 1,5 mm, 5 pm et 1 mm.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape d’immobilisation de l’échantillon biologique sur une surface. L’immobilisation de l’échantillon biologique peut être effectuée selon n’importe quelle méthode d’immobilisation d’échantillon bien connue de l’homme du métier. A titre d’exemple de surface pouvant être utilisée, il est possible de citer une lame, une plaque, un puits, un tube, une membrane ou un film.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape de dépigmentation de l’échantillon biologique avant l’étape de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention. De préférence, l’étape de dépigmentation de l’échantillon biologique est réalisée afin d’améliorer la dépigmentation de tissus fortement colorés tels que le foie, les reins, les poumons, etc. l’homme du métier peut aisément déterminer lorsqu’une étape de dépigmentation est nécessaire. L’étape de dépigmentation selon l’invention est de préférence réalisée en une seule étape.
Le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de prétraitement varie selon le type et la taille de l’échantillon biologique et peut être aisément déterminé par l’homme du métier. A titre d’exemple, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de prétraitement peut aller de quelques minutes pour des petits échantillons à plusieurs jours pour les insecte ou poissons. De préférence, le temps de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de prétraitement est compris entre 10 minutes et 24 heures.
L’étape de dépigmentation selon l’invention est réalisée de préférence à une température comprise entre 20°C et 42°C de préférence à environ 37°C.
De préférence, l’étape de dépigmentation de l’échantillon biologique est réalisée en mettant en contact l’échantillon biologique avec une composition, aussi nommée composition de prétraitement, comprenant du peroxyde d’hydrogène (H202), un alcool, et un agent chélatant et un tampon.
De préférence, l’alcool de la composition de prétraitement selon l’invention est sélectionné dans le groupe constitué des alcools primaires et secondaires. Plus préférablement, l’alcool est sélectionné parmi le méthanol et l’éthanol. De manière encore plus préféré, l’alcool selon l’invention est l’éthanol.
De préférence, l’agent chélatant de la composition de prétraitement selon l’invention est un chélateur d’ions bivalents. De préférence, l’agent chélatant de la composition de prétraitement selon l’invention peut être de l’EDTA (acide éthylènediaminetétraacétique), mais est préférentiellement du citrate.
Le procédé selon l’invention peut également comprendre une étape de déminéralisation et décalcification de l’échantillon biologique avant la mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation et avant l’étape de dépigmentation lorsqu’une étape de dépigmentation est nécessaire. L’homme du métier peut aisément déterminer lorsqu’une étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est nécessaire.
De préférence, l’étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est réalisée sur les tissus durs tels que par exemple les tissus calcifiées, les os, les dents, les insectes, les poissons, les crustacés, etc.
De préférence, l’étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est réalisée en mettant en contact l’échantillon biologique avec une solution de déminéralisation. La solution de déminéralisation selon l’invention comprend de préférence au moins un chélateur d’ions bivalent. De préférence, le chélateur d’ions bivalent sélectionné dans le groupe constitué d’EDTA (acide éthylènediaminetétraacétique), de BAPTA (2, 2', 2", 2" '-[acide éthane-1,2- diylbis(oxy-2,i-phénylènenitrilo)]tétraacétique) et de citrate.
De préférence, l’étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est réalisée à une température comprise entre 35 et 45°C, plus préférablement à environ 42°C.
De préférence, l’étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est réalisée pendant une durée qui dépend du type d’échantillon biologique utilisé et de sa taille. De préférence, l’étape de déminéralisation de l’échantillon biologique est réalisée pendant une durée comprise entre 10 minutes à quelques jours. La durée de déminéralisation adaptée à l’échantillon biologique utilisé peut être facilement déterminée par l’homme du métier.
De préférence, le procédé selon l’invention comprend en outre une étape d’arrêt de la transparisation. L’étape d’arrêt de la transparisation est de préférence réalisée par immersion de l’échantillon biologique dans une solution d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction. De préférence, l’étape d’arrêt de la transparisation est réalisée par immersion de l’échantillon biologique dans une solution d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction après retrait de l’agent de l’agent de délipidation et de perméabilisation.
De préférence, l’étape d’arrêt de la transparisation est réalisée par immersion de l’échantillon biologique dans du TDE. Plus préférablement l’étape d’arrêt de la transparisation est réalisée par immersion de l’échantillon biologique dans du TDE à une concentration de 60%. L’imagerie peut avoir lieu, par la suite, dans le même tampon.
De préférence, l’échantillon biologique peut être conservé plusieurs mois dans la solution d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction sans agent de délipidation et de perméabilisation. De préférence, l’échantillon biologique peut être conservé au moins 1 mois, au moins 2 mois, au moins 3 mois, au moins 4 mois, au moins 5 mois, au moins 6 mois, au moins 7 mois, au moins 8 mois, au moins 9 mois, au moins 10 mois, au moins 11 mois, au moins 12 mois dans la solution d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction sans agent de délipidation.
De préférence, le procédé de transparisation selon l’invention est réversible, c’est-à- dire que l’échantillon biologique devenu transparent par le procédé selon l’invention redevient opaque lorsqu’il est plongé dans un tampon. De préférence, au moins 50% de l’échantillon biologique, au moins 55%, au moins 60%, au moins 65%, au moins 70%, au moins 75%, au moins 80%, au moins 85%, au moins 90%, au moins 95%, au moins 98% de l’échantillon biologique retrouve son opacité initiale lorsqu’il est plongé dans une solution tampon, comme par exemple une solution de PBS, une solution de PIPES, une solution de HEPES, une solution de MOPS, et une solution de Tris-HCl.
Selon un mode de réalisation particulier, le procédé selon l’invention comprend : Une étape de dépigmentation d’un échantillon biologique par mise en contact de l’échantillon biologique selon l’invention avec une composition de prétraitement selon l’invention comprenant de l’H202, un alcool, en particulier l’éthanol, et du citrate ;
Une étape de transparisation par mise en contact de l’échantillon biologique dépigmenté avec la composition de transparisation selon l’invention ;
Une étape d’arrêt de la transparisation par immersion de l’échantillon biologique dans une solution de TDE, de préférence de TDE à 6o%.
Selon un mode de réalisation particulier, le procédé comprend en outre avant l’étape de dépigmentation, une étape de décalcification de l’échantillon biologique.
Selon un mode de réalisation de l’invention, le procédé selon l’invention comprend en outre une ou plusieurs étapes de détection et/ou caractérisation telles que :
(i) La détection de l’autofluorescence ou d’autres contrastes intrinsèques, tel que la seconde harmonique (SHG) ou troisième harmonique (TH G) ;
(ii) La coloration de l’échantillon biologique en utilisant un ou plusieurs colorants fluorescents ;
(iii) L’immunofluorescence ;
(iv) L’imagerie optique de phase ou de densité ;
(v) L’immunohistochimie ou l’histochimie fluorescente
(vi) L’expression de protéine fluorescente produite par des animaux transgéniques par exemple souris, poissons comme zebrafish, insectes, (comme tdTomato, AmCyan, GFP...).
Selon un mode de réalisation particulier, le procédé selon l’invention comprend une étape de marquage d’une cible de l’échantillon biologique avec un colorant ou un agent de marquage, de préférence couplé à une molécule fluorescente. De préférence, l’étape de marquage de l’échantillon biologique est réalisée avant l’étape de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention.
De préférence, l’étape de marquage permet de mettre en évidence et/ou de quantifier des cibles de l’échantillon biologique.
Selon un mode de réalisation particulier, le procédé selon l’invention comprend une étape d’immunomarquage directe ou indirect.
L’étape de marquage ou d’immunomarquage peut être réalisée selon les techniques de marquage conventionnelles bien connues de l’homme du métier. A titre, d’exemple, il est possible d’utiliser des anticorps, des sondes fluorescentes, des protéines, des protéines produites par des organismes génétiquement modifiés etc., pour le marquage d’une cible de l’échantillon biologique.
A titre d’exemple de cibles de l’échantillon biologique, il est possible de citer les biomolécules ou molécules synthétiques de l’échantillon biologique. De préférence, les cibles de l’échantillon biologique sont sélectionnées dans le groupe constitué des constituants cellulaires et tissulaires spécifiques, tels que des acides nucléiques, des antigènes, des protéines, des peptides, des fragments contenant des acides aminés, des oligonucléotides, incluant des oligonucléotides contenant des bases d'ADN, des bases d'ARN, des bases d'ADN et d'ARN, et des bases synthétiques, des fragments d'acide nucléique, des lipides, des hormones, des vitamines, et des sucres de l’échantillon biologique.
A titre d’exemple d’espèce pouvant être utilisée pour marquer une cible de l’échantillon biologique, il est possible de citer les anticorps ou un fragment d'anticorps tels qu’un anticorps monoclonal, un anticorps polyclonal, une immunoglobuline G (IgG), une immunoglobuline M (IgM), un anticorps à fragment variable à chaîne unique (scFv), un nanoanticorps, un fragment de liaison à l'antigène (Fab), etc.
De préférence, les molécules fluorescentes selon l’invention, aussi connues sous le nom de fluorochrome ou fluorophore, sont sélectionnées dans le groupe constitué des coumarines telles que l’hydroxycoumarine, la methoxycoumarine, l’aminocoumarine, les cyanines, telles que Cy5, Cy2, Cy3, et Cy7, un colorant à base de xanthène telles que la fluorescéine et la rhodamine en particulier FAM, HEX, et TRITC, la gamme d'Alexa Fluor en particulier Alexa Fluor 488, Alexa Fluor 430, Alexa Fluor 532, Alexa Fluor 546, Alexa Fluor 555, Alexa Fluor 568, Alexa Fluor 594, Alexa Fluor 633, et Alexa Fluor 660, tamara, Red6i3, et Texas red.
L’échantillon biologique selon l’invention peut être observé en imagerie optique. De préférence, la transparence obtenue en utilisant la composition de transparisation selon l’invention permet d’améliorer la capacité d'observation et la sensibilité de détection de signal des structures fluorescentes et non fluorescentes.
N’importe quelle technique d'imagerie optique bien connue de l’homme du métier peut être employée pour observer l’échantillon biologique selon l’invention. De préférence, les techniques d'imageries optiques employées dans le procédé selon l’invention comprennent l’imagerie d’intensité, de phase, de durée de vie, la microscopie à nappe de lumière, la microscopie confocale, la microscopie à fluorescence, la microscopie à lumière transmise conventionnelle, et la microscopie par excitation à deux photons, la microscopie à dissection, la détection de plaque de fluorescence, la nanoscopie, la spectroscopie et la tomographie optique.
Les images obtenues par les techniques d’imagerie optique peuvent être traitées avec des logiciels standards de reconstructions 3D bien connues de l’homme du métier.
Selon un mode de réalisation particulier, le procédé selon l’invention comprend :
Une étape de dépigmentation d’un échantillon biologique par mise en contact de l’échantillon biologique selon l’invention avec une composition de prétraitement selon l’invention ;
Une étape de marquage d’une cible de l’échantillon biologique avec un agent de marquage ; Une étape de transparisation par mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention ;
Une étape d’arrêt de la transparisation par immersion de l’échantillon biologique dans une solution de TDE, de préférence de TDE à 6o%.
Selon une mode de réalisation particulier de l’invention, un procédé selon l’invention comprenant l’immunomarquage de l’échantillon biologique peut comprendre les étapes suivantes :
- Une étape de déshydratation de l’échantillon biologique ;
- Une étape de perméabilisation de l’échantillon biologique ;
- Une étape de blocage des sites non spécifiques
- Une étape de marquage avec un anticorps primaire spécifique de la cible, le temps d’incubation dépendant de l’épaisseur de l’échantillon biologique et pouvant être aisément déterminé par l’homme du métier ;
- Une étape de lavage de l’excès d’anticorps ;
- Une étape de marquage avec un anticorps secondaire qui reconnaît l’anticorps primaire et porte la molécule fluorescente ;
- Une étape de lavage de l’excès d’anticorps ;
- Une étape de de transparisation par mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention ;
- Une étape d’arrêt de la transparisation par immersion de l’échantillon biologique dans une solution de TDE, de préférence de TDE à 6o%.
Alternativement, un procédé selon l’invention comprenant l’immunomarquage de l’échantillon biologique peut comprendre les étapes suivantes :
- Une étape de de transparisation par mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation selon l’invention ;
- Une étape d’arrêt de la transparisation par immersion de l’échantillon biologique dans une solution de TDE, de préférence de TDE à 6o% destiné à évaluer l’intérêt de l’échantillon par une première imagerie ;
- Une étape de lavage extensive pour éliminer le milieu de transparisation et réhydrater l’échantillon ;
- Une étape de blocage des sites non spécifiques ;
- Une étape de marquage avec un anticorps primaire spécifique de la cible, le temps d’incubation dépend de l’épaisseur de l’échantillon biologique et peut être aisément déterminé par l’homme du métier ;
- Une étape de lavage de l’excès d’anticorps ;
- Une étape de marquage avec un anticorps secondaire qui reconnaît l’anticorps primaire et porte la molécule fluorescente ; - Une étape de lavage de l’excès d’anticorps ;
- Une étape d’arrêt de la transparisation par immersion de l’échantillon biologique dans une solution de TDE, de préférence de TDE à 6o%.
Kit
De préférence, le kit selon l’invention comprend un contenant comprenant une composition comprenant un agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention.
De préférence, le kit selon l’invention comprend un deuxième contenant comprenant une composition comprenant un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, tel que le thiodiglycol (TDE).
De préférence, le contenant comprenant une composition comprenant un agent de délipidation et de perméabilisation selon l’invention en particulier un terpène et comprend également un tensioactif non ionique selon l’invention.
De préférence, le contenant comprenant une composition comprenant un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, tel que le thiodiglycol (TDE) comprend également un agent retardant l’altération de la fluorescence aussi connu sous le nom d’agent antifading.
Le kit selon la présente invention peut en outre comprendre une composition de dépigmentation selon l’invention comprenant de l’H202, un alcool, tel que l’éthanol et un agent chélatant, tel que le citrate.
Le kit selon la présente invention peut en outre comprendre une solution de déminéralisation comprenant de préférence un chélateur d’ions divalents, tel que l’EDTA, le BAPTA ou du citrate.
Le kit selon la présente invention peut en outre comprendre des instructions d’utilisation du kit et de la composition de transparisation.
Figure imgf000018_0001
La figure 1 représente une courbe représentant le pourcentage de contraste (%) mesuré après photographie des échantillons testés au cours de la transparisation en fonction du temps (minutes). Les échantillons sont des tranches de 1 mm de cerveaux de souris de 12 mois transparisés dans une composition de transparisation selon l’invention et imagés dans une composition de TDE à 60%.
La figure 2 représente une araignée avant la réalisation du procédé de transparisation selon l’invention.
La figure 3 représente une araignée après avoir subi une étape de dépigmentation de 2 jours.
Figure 4 :
La figure 4 représente une araignée après avoir subi une étape de transparisation selon l’invention de 40I1.
Exemple 1
Les inventeurs ont évalué le temps de transparisation d’échantillons biologique avec la composition de transparisation selon l’invention et avec du TDE seul.
1. Matériel et méthode
Des échantillons de i mm d’épaisseur de cerveau de souris de 12 mois et de cerveau de souris de 1 mois ont été dépigmentés pendant une nuit dans une composition comprenant de l’H202, de l’éthanol et du citrate et du tampon.
2 compositions de transparisation différentes ont été testées :
(i) une composition ; et
(ii) une composition comprenant du TDE à 60% sans D-limonène ;
Les échantillons de cerveau de souris dépigmentés de 12 mois et de 1 mois ont été placés dans une composition de transparisation selon l’invention comprenant du D-limonène et du TDE 60% dans une cuve à fond transparent posée sur une mire comportant des zones noires et blanches
A des fins de comparaison, d’autres échantillons de cerveau de souris dépigmentés de 12 mois et de 1 mois ont été placés dans une composition de transparisation comprenant du TDE à 60% sans D-limonène dans une cuve à fond transparent posée sur une mire comportant des zones noires et blanches.
Afin d’évaluer l’effet de la température sur la vitesse de transparisation, des échantillons de 1 mm d’épaisseur de cerveau de souris de 12 mois dépigmentés ont été placés dans une composition de transparisation selon l’invention comprenant du D-limonène et du TDE 60% à 37°C ou dans une composition comprenant du TDE à 60% sans D-limonène à 37°C dans une cuve à fond transparent posée sur une mire comportant des zones noires et blanches.
Le niveau de transparisation a été évalué à l’aide du contraste de Michelson mesuré après photographie de l’échantillon au cours de la transparisation. L’intensité des zones blanches et noires a été déterminée à l’aide du logiciel ImageJ (Schneider et al. (2012) Nature Methods, 9: 671-675). La transparence des échantillons à l’aide de la composition de transparisation selon l’invention est comparée à celle de ceux transparisés par le TDE 60% seul. Les données sont analysées par détermination du contraste de Michelson. La courbe i/contraste = fct temps (minutes) donne le T1/2 (time-lag) qui correspond au temps nécessaire à l’obtention de 50% du contraste maximum.
2. Résultats
Sur la figure 1, on peut voir que la transparence obtenue avec la composition de transparisation selon l’invention est plus efficace qu’avec le TDE.
Le temps nécessaire à la transparisation est présenté dans le tableau 1 ci-dessous :
Tableau 1 :
Figure imgf000020_0001
L’obtention de la transparisation maximale pour ce tissu est obtenue plus rapidement lorsque le TDE est en présence de D-limonène.
Le temps nécessaire à la transparisation à une température de 37°C est présenté dans le tableau 2 ci-dessous :
Tableau 2 :
Figure imgf000020_0002
La rapidité de transparisation a été multipliée par deux en augmentant la température à laquelle l’échantillon biologique est mis en contact avec la composition de transparisation. Exemple 2
Les inventeurs ont testé le procédé de transparisation selon l’invention sur une araignée (voir la figure 2).
Une araignée entière a subi une première étape de dépigmentation à l’aide d’une composition de dépigmentation selon l’invention comprenant de l’H202, de l’éthanol et du citrate. L’araignée a été entièrement dépigmentée (voir la figure 3). L’araignée dépigmentée a ensuite été incluse dans de l’agarose et a subi une étape de transparisation par mise en contact avec une composition de transparisation comprenant du D-limonène et du TDE à 60%. L’araignée incluse dans l’agarose a été entièrement transparisée (voir la figure 4).

Claims

Revendications
1. Composition de transparisation d’échantillons biologiques, comprenant au moins :
- un agent de délipidation et de perméabilisation ;
- un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction ; dans laquelle l’agent de délipidation et de perméabilisation est un composé choisi parmi les terpènes ou les terpénoïdes, de préférence les terpènes.
2. Composition de transparisation selon la revendication 1, dans laquelle l’agent de délipidation et de perméabilisation est le monoterpène limonène, de préférence le D- limonène.
3. Composition de transparisation selon la revendication 1 ou 2, comprenant de 0,5% à 10%, de 0.5% à 5%, de 0.5% à 2%, de 0.5% à 1.5%, avantageusement 1%, en volume/volume d’agent de délipidation par rapport au volume total de la composition de transparisation.
4. Composition de transparisation selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, comprenant en outre un tensioactif non ionique.
5. Composition de transparisation selon la revendication 4, dans laquelle le tensioactif non ionique est sélectionné dans le groupe constitué du triton X-100 et des polysorbates tels que le polysorbate 80 (TWEEN80) ou le polysorbate 20 (TWEEN20), de préférence le tensioactif non ionique est le triton X-100.
6. Composition de transparisation selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, dans laquelle l’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est sélectionné dans le groupe constitué de thiodiglycol (TDE), d’éthylcinnamate et de saccharose, de préférence l'agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction est le TDE.
7. Composition de transparisation selon l’une quelconque des revendications 1 à 6, comprenant en outre un agent retardant l’altération de la fluorescence.
8. Composition de transparisation selon l’une quelconque des revendications 1 à 7, étant une composition aqueuse.
9. Utilisation d’une composition de transparisation telle que définie dans l’une quelconque des revendications 1 à 8, pour rendre un échantillon biologique transparent.
10. Procédé pour rendre un échantillon biologique transparent comprenant une étape de mise en contact d’un échantillon biologique avec une composition de transparisation telle que définie dans l’une quelconque des revendications i à 8.
11. Procédé selon la revendication 10, comprenant en outre une étape d’immersion de l’échantillon biologique dans une solution d’agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, après retrait de l’agent de délipidation, afin d’arrêter la transparisation de l’échantillon biologique.
12. Procédé selon la revendication 10 ou il, comprenant en outre une étape de dépigmentation de l’échantillon biologique avant l’étape de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation.
13. Procédé selon la revendication 12, dans lequel la dépigmentation est réalisée en mettant en contact l’échantillon biologique avec une composition comprenant au moins de l’H202, un alcool, tel que de l’éthanol, et un agent chélatant, tel que les citrates.
14. Procédé selon la revendication 12 ou 13, comprenant en outre une étape de déminéralisation de l’échantillon biologique avant l’étape de dépigmentation et/ou avant la mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation.
15. Procédé selon l’une quelconque des revendications 10 à 14, comprenant en outre une étape de marquage d’une biomolécule ou d’une molécule synthétique de l’échantillon biologique avec un fluorophore avant l’étape de mise en contact de l’échantillon biologique avec la composition de transparisation, la biomolécule ou molécule synthétique étant choisie parmi un acide nucléique, une protéine, une hormone, une vitamine ou un sucre.
16. Kit pour rendre un échantillon biologique transparent comprenant :
- une composition comprenant un agent de délipidation et de perméabilisation, tel que le D-limonène,
- une composition comprenant un agent d’homogénéisation de l’indice de réfraction, tel que le thiodiglycol (TDE),
- une composition de dépigmentation comprenant H202, un alcool et un agent chélatant, tel que les citrates, - une solution de déminéralisation comprenant un chélateur d’ions divalents, comme de l’EDTA, le BAPTA ou du citrate.
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