FR2830323A1 - Solution aqueuse eclaircissante de tissus - Google Patents
Solution aqueuse eclaircissante de tissus Download PDFInfo
- Publication number
- FR2830323A1 FR2830323A1 FR0112610A FR0112610A FR2830323A1 FR 2830323 A1 FR2830323 A1 FR 2830323A1 FR 0112610 A FR0112610 A FR 0112610A FR 0112610 A FR0112610 A FR 0112610A FR 2830323 A1 FR2830323 A1 FR 2830323A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- lightening
- sample
- biological
- aqueous solution
- solution according
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 17
- 230000002708 enhancing effect Effects 0.000 title abstract 2
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 title abstract 2
- YVPYQUNUQOZFHG-UHFFFAOYSA-N amidotrizoic acid Chemical compound CC(=O)NC1=C(I)C(NC(C)=O)=C(I)C(C(O)=O)=C1I YVPYQUNUQOZFHG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 6
- ZEYOIOAKZLALAP-UHFFFAOYSA-M sodium amidotrizoate Chemical compound [Na+].CC(=O)NC1=C(I)C(NC(C)=O)=C(I)C(C([O-])=O)=C1I ZEYOIOAKZLALAP-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 6
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 21
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 20
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 13
- 238000004624 confocal microscopy Methods 0.000 claims description 10
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 claims description 9
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 claims description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 5
- 229960005223 diatrizoic acid Drugs 0.000 claims description 5
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 claims description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 2
- 238000002224 dissection Methods 0.000 claims description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 abstract description 2
- XJLXINKUBYWONI-NNYOXOHSSA-N NADP zwitterion Chemical compound NC(=O)C1=CC=C[N+]([C@H]2[C@@H]([C@H](O)[C@@H](COP([O-])(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]3[C@H]([C@@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](O3)N3C4=NC=NC(N)=C4N=C3)O)O2)O)=C1 XJLXINKUBYWONI-NNYOXOHSSA-N 0.000 abstract 1
- 229960005423 diatrizoate Drugs 0.000 abstract 1
- 229960001484 edetic acid Drugs 0.000 abstract 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 17
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 10
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 7
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 7
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 6
- 208000005156 Dehydration Diseases 0.000 description 5
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 5
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 5
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 5
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 5
- 241001674044 Blattodea Species 0.000 description 4
- 241000238791 Diploptera punctata Species 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 4
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 102000002247 NADPH Dehydrogenase Human genes 0.000 description 3
- 108010014870 NADPH Dehydrogenase Proteins 0.000 description 3
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 3
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 238000001917 fluorescence detection Methods 0.000 description 3
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 2
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 2
- 229920001213 Polysorbate 20 Polymers 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 210000005013 brain tissue Anatomy 0.000 description 2
- 238000005282 brightening Methods 0.000 description 2
- 230000006835 compression Effects 0.000 description 2
- 238000007906 compression Methods 0.000 description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 2
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 2
- 239000003995 emulsifying agent Substances 0.000 description 2
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 2
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- OSWPMRLSEDHDFF-UHFFFAOYSA-N methyl salicylate Chemical compound COC(=O)C1=CC=CC=C1O OSWPMRLSEDHDFF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N n'-amino-n-iminomethanimidamide Chemical compound N\N=C\N=N VMGAPWLDMVPYIA-HIDZBRGKSA-N 0.000 description 2
- HZIRBXILQRLFIK-IEECYHMASA-N n-[(e,2s,3s)-1,3-dihydroxyoctadec-4-en-2-yl]-6-[(4-nitro-2,1,3-benzoxadiazol-7-yl)amino]hexanamide Chemical compound CCCCCCCCCCCCC\C=C\[C@H](O)[C@H](CO)NC(=O)CCCCCNC1=CC=C([N+]([O-])=O)C2=NON=C12 HZIRBXILQRLFIK-IEECYHMASA-N 0.000 description 2
- 210000004179 neuropil Anatomy 0.000 description 2
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 2
- 239000000256 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Substances 0.000 description 2
- 235000010486 polyoxyethylene sorbitan monolaurate Nutrition 0.000 description 2
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- XJMOSONTPMZWPB-UHFFFAOYSA-M propidium iodide Chemical compound [I-].[I-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CCC[N+](C)(CC)CC)=C1C1=CC=CC=C1 XJMOSONTPMZWPB-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- BOLDJAUMGUJJKM-LSDHHAIUSA-N renifolin D Natural products CC(=C)[C@@H]1Cc2c(O)c(O)ccc2[C@H]1CC(=O)c3ccc(O)cc3O BOLDJAUMGUJJKM-LSDHHAIUSA-N 0.000 description 2
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 2
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 241000238818 Acheta domesticus Species 0.000 description 1
- 239000005711 Benzoic acid Substances 0.000 description 1
- 108020003215 DNA Probes Proteins 0.000 description 1
- 239000003298 DNA probe Substances 0.000 description 1
- 241000255581 Drosophila <fruit fly, genus> Species 0.000 description 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010043121 Green Fluorescent Proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000004144 Green Fluorescent Proteins Human genes 0.000 description 1
- ACFIXJIJDZMPPO-NNYOXOHSSA-N NADPH Chemical compound C1=CCC(C(=O)N)=CN1[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]2[C@H]([C@@H](OP(O)(O)=O)[C@@H](O2)N2C3=NC=NC(N)=C3N=C2)O)O1 ACFIXJIJDZMPPO-NNYOXOHSSA-N 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical compound CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 1
- 102000006382 Ribonucleases Human genes 0.000 description 1
- 108010083644 Ribonucleases Proteins 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 210000003790 arthropod antennae Anatomy 0.000 description 1
- ACFIXJIJDZMPPO-UHFFFAOYSA-N beta-NADPH Natural products C1=CCC(C(=O)N)=CN1C1C(O)C(O)C(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OCC2C(C(OP(O)(O)=O)C(O2)N2C3=NC=NC(N)=C3N=C2)O)O1 ACFIXJIJDZMPPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 1
- BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L disodium;(2',7'-dibromo-3',6'-dioxido-3-oxospiro[2-benzofuran-1,9'-xanthene]-4'-yl)mercury;hydrate Chemical class O.[Na+].[Na+].O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC(Br)=C([O-])C([Hg])=C1OC1=C2C=C(Br)C([O-])=C1 BFMYDTVEBKDAKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 1
- 238000000799 fluorescence microscopy Methods 0.000 description 1
- 238000002372 labelling Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 229960001047 methyl salicylate Drugs 0.000 description 1
- 238000001000 micrograph Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001537 neural effect Effects 0.000 description 1
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- CCHNOBQMQBSRHQ-UHFFFAOYSA-N phosphoric acid;7h-purin-6-amine Chemical compound OP(O)(O)=O.NC1=NC=NC2=C1NC=N2 CCHNOBQMQBSRHQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000035479 physiological effects, processes and functions Effects 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 238000009877 rendering Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000002798 spectrophotometry method Methods 0.000 description 1
- 239000008096 xylene Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
- G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
- G01N1/30—Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/10—Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/10—Composition for standardization, calibration, simulation, stabilization, preparation or preservation; processes of use in preparation for chemical testing
- Y10T436/107497—Preparation composition [e.g., lysing or precipitation, etc.]
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
- Y10T436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10T436/25—Chemistry: analytical and immunological testing including sample preparation
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Sampling And Sample Adjustment (AREA)
Abstract
L'invention concerne une solution aqueuse éclaircissante permettant d'augmenter la transparence de tissus biologiques comprenant, dans un milieu aqueux approprié, un ou plusieurs composés choisis parmi le diméthylsulfoxyde, l'acide diatrizoique, l'acide éthylènediaminotétraacétique, la glucamine, le ß-nicotinamide-adénine-dinucléotide-phosphate, le diatrizoate de sodium et des dérivés de polyoxyalkylènes, ainsi qu'un procédé d'augmentation de la transparence de tissus biologiques utilisant une telle solution.
Description
<Desc/Clms Page number 1>
Solution aqueuse éclaircissante de tissus
La présente invention concerne une solution utilisée pour l'analyse de tissus biologiques et, en particulier, une solution aqueuse éclaircissante rendant des tissus biologiques transparents.
La présente invention concerne une solution utilisée pour l'analyse de tissus biologiques et, en particulier, une solution aqueuse éclaircissante rendant des tissus biologiques transparents.
Dans un certain nombre de sciences telles que la biologie cellulaire, la neurobiologie, la biologie moléculaire, la physiologie, l'immunologie, la biologie des signaux et la biologie du développement, pour examiner au microscope des structures biologiques ou non biologiques planes ou tridimensionnelles, il est nécessaire non seulement de disposer d'un microscope confocal permettant d'obtenir des images avec une haute résolution, mais également d'apporter un soin particulier à la préparation des échantillons, à l'enregistrement des images microscopiques et au traitement des images de manière à ce que les instruments optiques puissent être utilisés pour examiner certains échantillons, tissus ou cellules biologiques, capables d'émettre un rayonnement fluorescent. Lors de la préparation des échantillons, et en particulier lors du montage et de la fixation de ceux-ci, il est nécessaire de préserver l'intégrité des échantillons ayant une structure tridimensionnelle.
D'une manière générale, la microscopie par transmission de lumière est communément utilisée dans à peu près n'importe quel laboratoire biologique pour l'examen de structures cellulaires. Des tissus biologiques sont habituellement colorés avec des colorants, avant que l'on puisse les examiner au microscope. Pour rendre visibles les structures internes colorées, les tissus sont souvent examinés sous forme de coupes minces. Pour augmenter la transparence des tissus, la plupart des échan-
<Desc/Clms Page number 2>
tillons colorés sont rendus transparents (éclaircis) par déshydratation et extraction de lipides. Par exemple, on utilise souvent le xylène pour éclaircir, c'est-à-dire rendre transparents, des coupes paraffiniques après déshydratation à l'alcool. Les structures internes colorées peuvent alors être visualisées avec une grande netteté.
L'extraction par des solvants nécessite toutefois beaucoup de temps et entraîne souvent des déformations morphologiques qui doivent parfois être évitées. Par exemple des cryocoupes, ou coupes à congélation, c'est-à-dire des coupes obtenues à partir de tissus congelés, appropriées pour un diagnostic rapide, ne sont généralement pas bien fixées.
Ces coupes tissulaires sont normalement immergées ou incluses directement dans des liquides de montage aqueux à base de glycérol, sans qu'une étape d'éclaircissement ait lieu, afin d'éviter la destruction de la morphologie fragile. Les images de microscopie obtenues souffrent alors d'un manque de clarté ou de transparence. Par ailleurs, pendant les étapes d'observation, de balayage et de reconstruction des images de tissus biologiques, l'épaisseur reconstruite ne dépasse pas 100 à 200 micromètres en raison de la transparence insuffisante des échantillons de tissus.
Par conséquent, la présente invention propose une solution aqueuse "éclaircissante" permettant de rendre des tissus biologiques transparents sans les endommager et sans nécessiter une étape de déshydratation. Les figures lA à 1C montrent qu'un cerveau d'insecte ayant une épaisseur d'environ 500 m, qui est normalement opaque dans du sérum physiologique (Fig. 1A) et semi-opaque dans du sérum physiologique contenant 80 % de glycérol (Fig. 1B), est complètement transparent dans la solution éclaircissante de la présente invention (Fig. 1C).
L'invention a pour but de proposer une solution aqueuse éclaircissante permettant de rendre transparentes des coupes de tissus biologiques sans les endommager et sans altérer leur morphologie.
Elle a également pour but de proposer un procédé de traitement de tissus biologiques avec la solution éclaircissante de la présente invention permettant d'obtenir, par microscopie à lumière fluorescente et à lumière non fluorescente, des images avec une meilleure résolution.
<Desc/Clms Page number 3>
La présente invention a pour objet une solution aqueuse éclaircissante permettant de rendre des tissus biologiques transparents sans étape de déshydratation, comprenant, dans un milieu aqueux approprié, un ou plusieurs composés choisis parmi le diméthylsulfoxyde, l'acide diatrizoïque (acide diacétamido-3,5-triiodo-2,4,6-benzoïque), l'acide éthylènediaminotetraacétique, la glucamine, le P-nicotinamide-adénine-dinucléotide-phosphate, le diatrizoate de sodium et des dérivés de polyoxyalkylènes (commercialisés sous la dénomination Tween 20 et utilisés en tant qu'agents émulsionnants et détergents).
L'invention a encore pour objet un procédé d'augmentation de la transparence de tissus biologiques comprenant le traitement d'un échantillon de tissu biologique avec une telle solution éclaircissante de manière à obtenir un échantillon de tissu biologique clair et transparent.
Enfin, l'invention a pour objet un procédé d'examen d'échantillons de tissus biologiques, caractérisé par le fait qu'il comprend les étapes suivantes : - traitement d'un tissu biologique avec une solution aqueuse éclaircissante décrite ci-dessus, et - examen au microscope de l'échantillon ainsi traité de manière à obtenir une image de la structure interne de l'échantillon.
Les Figures 1 A à 1 C illustrent l'évaluation de la transparence de divers tissus. Des tissus cérébraux d'une épaisseur d'environ 500 m sont prélevés sur des cafards femelles adultes de l'espèce Diploptera punctata.
Figure (A) : Le cerveau est opaque lorsqu'il est incubé dans du sérum physiologique.
Figure (B) : Le cerveau est semi-transparent dans du sérum physiologique contenant 80 % de glycérol.
Figure (C) : Le cerveau devient complètement transparent dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention.
Les Figures 2A et 2B montrent l'effet d'une bonne transparence des tissus sur les images obtenues par microscopie confocale. On fait au
<Desc/Clms Page number 4>
microscope confocal une série d'images de glomérules d'antennes de cafards D. punctata distantes les unes des autres de 50 m dans la direction Z.
Figure (A) : Les glomérules internes ne sont plus visibles à une profondeur de 100 m en dessus de la surface du tissu lorsque celui-ci baigne dans du sérum physiologique contenant 80 % de glycérol.
Figure (B) : L'image des glomérules reste limpide même à une profondeur de 200 m lorsque ceux-ci sont dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention.
La Figure 3 montre une carte tri-dimensionnelle de neuropiles de cerveaux de cafards Diploptera punctata adultes femelles.
La Figure 4 montre une image de microscopie de corps pédonculés d'un cerveau de criquet observé par microscopie à transmission de lumière.
La Figure 5 montre des images haute résolution obtenues par microscopie confocale de fibroblastes humains baignant dans la solution aqueuse éclaircissante de a présente invention.
La Figure 6 montre une reconstruction, en trois dimensions, d'un grain de pollen ayant un diamètre d'environ 100 m.
La distance de chaque structure par rapport à la surface est indiquée par un gradient de couleur.
La présente invention concerne une solution aqueuse éclaircissante permettant de rendre des tissus biologiques transparents. La solution aqueuse éclaircissante de la présente invention comprend, dans un milieu aqueux approprié, un ou plusieurs composés choisis parmi le diméthylsulfoxyde, l'acide diatrizoïque, l'acide éthylènediaminotetraacétique, la glucamine, le phosphate dinucléotide adénine ss-nicotainamide, le diatrizoate de sodium et des dérivés de polyoxyalkylènes, commercialisés sous la dénomination commerciale Tween 20 et utilisés en tant qu'agents émulsionnants et détergents. Le pH de la solution ci-dessus est tamponné à une valeur comprise entre 5 et 10.
<Desc/Clms Page number 5>
Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, la solution aqueuse éclaircissante comprend un excès de diatrizoate de sodium et d'acide diatrizoïque.
Un autre mode de réalisation concerne une solution aqueuse éclaircissante comprenant un excès de diméthylsulfoxyde.
Les tissus biologiques englobent des structures biologiques telles que des cellules animales ou végétales, des organismes biologiques et des composés et éléments biologiques.
On peut obtenir la transparence des échantillons en incubant directement les tissus, préalablement fixés ou non fixé, dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention. La transparence des tissus biologiques s'améliore au bout d'un certain temps d'incubation.
Lorsqu'une structure interne particulière est marquée par immunofluorescence ou avec un colorant classique, le fait que rendre transparent le milieu au-dessus et en dessous de l'élément marqué améliore la qualité des images obtenues et augmente la sensibilité de détection. Ainsi, la transparence obtenue grâce à la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention permet d'améliorer la qualité de l'observation et de la détection de structures cellulaires fluorescentes ou non-fluorescentes par des méthodes de détection optiques telles que la microscopie confocale, la microscopie de fluorescence, la microscopie classique par transmission de lumière, la microscopie pour dissection, l'examen à l'oeil nu, la cytométrie à flux, la spectrophotométrie, la détection de fluorescence sur plaque et la détection de fluorescence sur plaquette etc. La transparence que l'on obtient grâce à la solution éclaircissante de la présente invention améliore la qualité de l'observation et la sensibilité de détection de structures cellulaires fluorescentes et non-fluorescentes.
La microscopie confocale permet d'éliminer, dans un échantillon épais fluorescent, le bruit de fluorescence dû à la fluorescence du milieu en dehors du plan focal, et permet d'enregistrer les coordonnées X, Y et Z d'objets qui peuvent ensuite être reconstruits et analysés en trois dimensions. L'opacité de tissus biologiques ayant une épaisseur supérieure à 100 m, c'est-à-dire comportant environ 5 à 10 couches de cellules, empêche normalement une excitation efficace et un signal suffisam-
<Desc/Clms Page number 6>
ment fort pour une détection de fluorescence. D'autre part, des méthodes classiques impliquant une série de déshydrations à l'alcool et un éclaircissement par du salicylate de méthyle s'accompagnent souvent de la diffusion des fluorochromes de marquage. L'éclaircissement et l'immersion des tissus marqués avec des colorants fluorescents dans la solution éclaircissante permettent de surmonter complètement ces problèmes. Par exemple, les glomérules d'un lobe d'antenne d'un insecte, immergés dans du sérum physiologique contenant 80 % de glycérol ne peuvent être observés par microscopie confocale que jusqu'à une profondeur maximale de 100 m (Fig. 2A). Par contre, lorsque l'échantillon est rendu limpide par immersion dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention, les structures internes situées à une profondeur supérieure à 200 m sont toujours visibles (Fig. 2B).
Par ailleurs, le céramide-NBD fluorescent, qui est une sonde fluorescente membranaire utilisée pour le marquage de n'importe quelle structure lipidique dans des tissus biologiques, se trouvera progressivement dissous dans le mélange sérum physiologique-glycérol. Ceci se traduit par le fait que des détails de structures fines marquées ne sont plus visibles. Au contraire, de tels détails restent clairement visibles lorsque le même tissu est immergé dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention.
La présente invention est illustrée plus en détail à l'aide des exemples suivants :
Exemple 1
Microscopie de tissus épais marqués avec des sondes fluorescentes
On utilise pour cet exemple un cerveau d'insecte ayant une épaisseur supérieure à 500 m, c'est-à-dire un cerveau d'un cafard de l'espèce Diploptera punctata.
Exemple 1
Microscopie de tissus épais marqués avec des sondes fluorescentes
On utilise pour cet exemple un cerveau d'insecte ayant une épaisseur supérieure à 500 m, c'est-à-dire un cerveau d'un cafard de l'espèce Diploptera punctata.
Les structures neuropilaires et les corps neuronaux du cerveau sont marqués avec la sonde lipophile membranaire NBD-C6-céramide et avec de l'iodure de propidium, une sonde d'ADN. Après fixation appropriée dans du para-formaldéhyde à 4 %, les noyaux à l'intérieur du cerveau sont digérés par une solution d'ARNase à 50 g/ml et on colore avec de
<Desc/Clms Page number 7>
l'iodure de propidium à 20 g/ml dans du tampon phosphate physiologique.
Ensuite, après un bref rinçage dans du tampon phosphate physiologique, on colore les membranes avec 0,453 mM de NBD-C6-céramide dans du DMSO. Le cerveau est rendu transparent par immersion directe, pendant 1 heure, dans la solution éclaircissante de la présente invention.
Pour éviter la compression des échantillons par la lamelle de recouvrement, on les place dans des anneaux d'espacement ayant une épaisseur d'environ 600 l et on les examine par microscopie confocale.
Les structures fluorescentes peuvent alors être observées directement dans la totalité du cerveau au moyen d'un microscope de fluorescence usuel ou par microscopie confocale. La Figure 3 montre un cerveau de cafard en trois dimensions contenant l'ensemble des neuropiles internes reconstruits à partir d'images numériques de 168 coupes optiques confocales. Ceci n'aurait pas été possible si le tissu cérébral n'avait pas été suffisamment transparent pour permettre la pénétration de la lumière laser et la détection de la fluorescence.
La solution aqueuse éclaircissante de la présente invention permet non seulement de rendre transparent des tissus entiers, mais peut également être utilisée pour des coupes de tissus telles que des cryocoupes et des coupes obtenues à l'aide d'un vibratome.
Exemple 2
Microscopie de tissus épais marqués avec des colorants non fluorescents
On utilise pour cet exemple des cerveaux de criquets de l'espèce Acheta domesticus. On fixe les cerveaux pendant 2 heures sur de la glace dans du tampon phosphate physiologique contenant 4 % de formaldéhyde (360 mOsMparkg H20,pH 7,4). On les lave ensuite 3 fois avec du tampon phosphate physiologique refroidi par la glace, chaque lavage ayant une durée de 10 minutes. On rend les tissus perméables en les incubant pendant 16 heures à 4 C dans du tampon phosphate physiologique contenant 1 % de Triton X-100. Après lavage avec du tampon phosphate physiologique, on visualise l'activité NADPH-diaphorase insensible à la fixation en incubant les tissus pendant 2 heures à 27 C dans 100 l de Tris-HCl (50 mM,
Microscopie de tissus épais marqués avec des colorants non fluorescents
On utilise pour cet exemple des cerveaux de criquets de l'espèce Acheta domesticus. On fixe les cerveaux pendant 2 heures sur de la glace dans du tampon phosphate physiologique contenant 4 % de formaldéhyde (360 mOsMparkg H20,pH 7,4). On les lave ensuite 3 fois avec du tampon phosphate physiologique refroidi par la glace, chaque lavage ayant une durée de 10 minutes. On rend les tissus perméables en les incubant pendant 16 heures à 4 C dans du tampon phosphate physiologique contenant 1 % de Triton X-100. Après lavage avec du tampon phosphate physiologique, on visualise l'activité NADPH-diaphorase insensible à la fixation en incubant les tissus pendant 2 heures à 27 C dans 100 l de Tris-HCl (50 mM,
<Desc/Clms Page number 8>
pH 7,4) contenant 1 % de Triton X-100, 1 mM de ss-NADPH et 0,5 mM de NBT. Du bleu de formazan précipite et indique ainsi les sites où la NADPH diaphorase a été active. On élimine la précipitation non spécifique en lavant abondamment les tissus pendant 72 heures dans du tampon TrisHCl contenant 1 % de Triton X-100.
Après élimination des tissus environnants, on rend transparent les cerveaux entiers ayant une épaisseur supérieure à 600 m, en incubant directement pendant 1 heure dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention. Afin d'éviter la compression par la lamelle de recouvrement, les échantillons sont placés dans des anneaux espaceurs montés dans la même solution aqueuse éclaircissante, on examine visuellement et on les photographie à travers un microscope de dissection ou à l'aide d'un microscope Zeiss Axiophot (Carl Zeiss, Jena, Allemagne) équipé d'un système optique Nomarski. La Figure 4 montre qu'une forte activité NADPH-diaphorase mise en évidence par précipitation de formazan se situe au niveau des corps pédonculés. Les corps pédonculés internes sont bien visibles car les cerveaux a été rendu transparent par incubation dans la solution éclaircissante de la présente invention.
Cette méthode peut également être utilisée pour rendre visibles des structures dans des cryocoupes et des coupes tissulaires obtenues par à l'aide d'un vibratome.
Exemple 3
Microscopie de cellules individualisées marquées avec des sondes fluorecentes ou non fluorescentes
Des cellules indivudualisées fixées sur plaque peuvent être directement rendues transparentes et montées dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention. La nature aqueuse de la solution éclaircissante permet de l'utiliser directement pour l'analyse de cellules individualisées marquées par immunofluorescence ou par d'autres composés fluorochromes. La Figure 5 montre qu'une bonne transparence améliore sensiblement la résolution et la sensibilité de détection en microscopie confocale. L'efficacité d'excitation et la sensibilité de détection de l'émission sont nettement augmentées grâce à la transparence améliorée. Par conséquent, on peut utiliser une ouverture plus faible pour éliminer le
Microscopie de cellules individualisées marquées avec des sondes fluorecentes ou non fluorescentes
Des cellules indivudualisées fixées sur plaque peuvent être directement rendues transparentes et montées dans la solution aqueuse éclaircissante de la présente invention. La nature aqueuse de la solution éclaircissante permet de l'utiliser directement pour l'analyse de cellules individualisées marquées par immunofluorescence ou par d'autres composés fluorochromes. La Figure 5 montre qu'une bonne transparence améliore sensiblement la résolution et la sensibilité de détection en microscopie confocale. L'efficacité d'excitation et la sensibilité de détection de l'émission sont nettement augmentées grâce à la transparence améliorée. Par conséquent, on peut utiliser une ouverture plus faible pour éliminer le
<Desc/Clms Page number 9>
bruit de fluorescence en dehors du plan focal.
Cette méthode peut également être utilisée pour visualiser des cellules individualisées marquées avec un colorant non fluorescent à l'aide d'un microscope usuel. Elle est également efficace pour des tissus présentant une certaine autofluorescence tels que des mutants de Drosophila exprimant des protéines à fluorescence verte ou des tissus végétaux. La Figure 6 montre une reconstruction en trois dimensions d'un grain de pollen autofluorescent ayant un diamètre d'environ 100 m. La morphologie de surface avec un code de profondeur est rendue grâce à un empilement de plans de confocalisation correspondant à des coupes optiques distantes de 5 m les unes des autres.
Bien que la présente invention ait été décrite en référence à des modes de réalisation préférés, on comprendra que l'invention n'est pas limitée à des détails de ces modes de réalisation. Différentes substitutions et variations ont été suggérées dans la description et l'homme du métier pourra en imaginer d'autres. Par conséquent, toutes ces modifications et substitutions font partie de la présente invention.
Claims (15)
1. Solution aqueuse éclaircissante permettant d'augmenter la transparence de tissus biologiques, caractérisée par le fait qu'elle comprend, dans un milieu aqueux approprié, un ou plusieurs composés choisis parmi le diméthylsulfoxyde, l'acide diatrizoïque, l'acide éthylènediaminotetraacétique, la glucamine, le p-nicotinamide-adénine-dinucléotide- phosphate, le diatrizoate de sodium et des dérivés de polyoxyalkylènes.
2. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait que lesdits tissus biologiques englobent des cellules animales et végétales.
3. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait que lesdits tissus biologiques englobent des organismes biologiques.
4. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait que les tissus biologiques englobent des composés et éléments biologiques.
5. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait qu'elle est tamponnée à un pH compris entre 5 et 10.
6. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait qu'elle comprend en outre un excès de diatrizoate de sodium et d'acide diatrizoïque.
7. Solution aqueuse éclaircissante selon la revendication 1, caractérisée par le fait qu'elle comprend en outre un excès de diméthylsulfoxyde.
8. Procédé d'augmentation de la transparence de tissus biologiques caractérisé par le fait qu'il comprend le traitement d'un échantillon de tissu biologique avec une solution éclaircissante selon l'une quelconque des revendications précédentes, de manière à obtenir un échantillon de tissu biologique clair et transparent.
9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que l'échantillon est examiné par microscopie confocale.
10. Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que l'échantillon est examiné à l'aide d'un microscope à transmission de lumière.
<Desc/Clms Page number 11>
11. Procédé selon la revendication 1, caractérisé par le fait que l'échantillon est examiné à l'aide d'un cytomètre à flux.
12. Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que l'échantillon est observé directement à l'oeil nu ou à l'aide d'un microscope pour dissection.
13. Procédé d'examen d'échantillons de tissus biologiques, caractérisé par le fait qu'il comprend les étapes suivantes : - traitement d'un tissu biologique avec une solution aqueuse éclaircissante selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, et - examen au microscope de l'échantillon ainsi traité de manière à obtenir une image de la structure interne de l'échantillon.
14. Procédé selon la revendication 13, caractérisé par le fait que l'on examine l'échantillon par microscopie confocale.
15. Procédé selon la revendication 13, caractérisé par le fait que l'on examine l'échantillon par microscopie à transmission de lumière.
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US09/910,764 US6472216B1 (en) | 2001-07-24 | 2001-07-24 | Aqueous tissue clearing solution |
DE10139110A DE10139110B4 (de) | 2001-07-24 | 2001-08-09 | Wässerige Lösung zur Gewebereinigung |
FR0112610A FR2830323B1 (fr) | 2001-07-24 | 2001-10-01 | Solution aqueuse eclaircissante de tissus |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US09/910,764 US6472216B1 (en) | 2001-07-24 | 2001-07-24 | Aqueous tissue clearing solution |
DE10139110A DE10139110B4 (de) | 2001-07-24 | 2001-08-09 | Wässerige Lösung zur Gewebereinigung |
FR0112610A FR2830323B1 (fr) | 2001-07-24 | 2001-10-01 | Solution aqueuse eclaircissante de tissus |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FR2830323A1 true FR2830323A1 (fr) | 2003-04-04 |
FR2830323B1 FR2830323B1 (fr) | 2004-06-11 |
Family
ID=27214551
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FR0112610A Expired - Lifetime FR2830323B1 (fr) | 2001-07-24 | 2001-10-01 | Solution aqueuse eclaircissante de tissus |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6472216B1 (fr) |
DE (1) | DE10139110B4 (fr) |
FR (1) | FR2830323B1 (fr) |
Families Citing this family (37)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6703242B1 (en) | 2002-01-02 | 2004-03-09 | Vladimir V. Senatorov | Dark-field microscopy visualization of unstained axonal pathways using oil of wintergreen |
US20050163390A1 (en) * | 2004-01-23 | 2005-07-28 | Ann-Shyn Chiang | Method for improving the depth of field and resolution of microscopy |
US7742878B2 (en) * | 2005-06-30 | 2010-06-22 | National Tsing Hua University | Bio-expression system and the method of the same |
US8659825B2 (en) | 2007-12-20 | 2014-02-25 | National Tsing Hua University | Sample carrying apparatus capable of revolving sample |
TWI386679B (zh) * | 2007-12-20 | 2013-02-21 | Nat Univ Tsing Hua | 具可翻轉樣本功能之樣本承載設備 |
TW200928427A (en) * | 2007-12-20 | 2009-07-01 | Nat Univ Tsing Hua | Microscopy system with revolvable stage |
US20100177190A1 (en) * | 2008-12-16 | 2010-07-15 | Ann-Shyn Chiang | Microscopy system with revolvable stage |
TWI406181B (zh) * | 2009-05-11 | 2013-08-21 | Nat Univ Tsing Hua | 一種建構和搜尋三維影像資料庫之方法 |
US8126247B2 (en) * | 2009-05-19 | 2012-02-28 | National Tsing Hua University | Image preprocessing system for 3D image database construction |
CN102859344A (zh) * | 2010-03-12 | 2013-01-02 | 独立行政法人理化学研究所 | 用于生物材料的澄清试剂和其用途 |
DE102010013950A1 (de) | 2010-03-30 | 2011-10-06 | Technische Universität Wien | Histologisches Verfahren |
US8867803B2 (en) * | 2010-04-20 | 2014-10-21 | Eric J. Seibel | Optical projection tomography microscopy (OPTM) for large specimen sizes |
TWI425201B (zh) * | 2010-10-01 | 2014-02-01 | Nat Univ Tsing Hua | 觀察厚組織三維結構之方法 |
CN103492852B (zh) * | 2011-04-28 | 2016-08-17 | 独立行政法人理化学研究所 | 生物材料的透明化方法、及其利用 |
CN107300496B (zh) * | 2011-05-20 | 2020-11-24 | 国立研究开发法人理化学研究所 | 生物材料用透明化试剂、及其利用 |
CN102749231B (zh) * | 2011-10-14 | 2014-07-09 | 华中科技大学 | 骨组织光透明剂 |
JP5967528B2 (ja) | 2012-06-22 | 2016-08-10 | 国立研究開発法人理化学研究所 | 生物材料を透明化する方法および生物材料用透明化処理キット |
WO2014025392A1 (fr) | 2012-08-09 | 2014-02-13 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Procédés et compositions pour préparer des échantillons biologiques pour une analyse microscopique |
JP6325461B2 (ja) * | 2013-01-28 | 2018-05-16 | 国立研究開発法人科学技術振興機構 | 組織透明化方法、組織透明化試薬及び組織観察方法 |
WO2015022883A1 (fr) * | 2013-08-14 | 2015-02-19 | 独立行政法人理化学研究所 | Composition pour la préparation d'un biomatériau possédant une excellente propriété de transmission de la lumière, et son utilisation |
DE102013216934A1 (de) * | 2013-08-26 | 2015-02-26 | Leica Microsystems Cms Gmbh | Verfahren und Vorrichtung zur Erhöhung der optischen Transparenz von Bereichen einer Gewebeprobe |
US10794802B2 (en) | 2013-09-20 | 2020-10-06 | California Institute Of Technology | Whole-body tissue stabilization and selective extractions via tissue-hydrogel hybrids for high resolution intact circuit mapping and phenotyping |
WO2015041755A1 (fr) | 2013-09-20 | 2015-03-26 | California Institute Of Technology | Procédés de phénotypage de tissus totaux intacts |
CA2947898A1 (fr) | 2014-05-30 | 2015-12-03 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Procedes et dispositifs pour l'imagerie de grands echantillons de tissus intacts |
US20170160170A1 (en) * | 2014-07-07 | 2017-06-08 | Chih-Yung Lin | Aqueous tissue clearing solution and uses thereof |
WO2017031249A1 (fr) * | 2015-08-17 | 2017-02-23 | California Institute Of Technology | Stabilisation de tissu de tout le corps et extractions sélectives par le biais d'hybrides hydrogel-tissu pour un phénotypage et un appariement de circuit intact à haute résolution |
WO2017093323A1 (fr) | 2015-12-01 | 2017-06-08 | Universität Duisburg-Essen | Transparisation sans risque d'échantillons biologiques |
US11254974B2 (en) | 2016-02-10 | 2022-02-22 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | RNA fixation and detection in clarity-based hydrogel tissue |
WO2018044899A1 (fr) | 2016-08-29 | 2018-03-08 | The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services | Procédé et composition de clarification optique de tissus |
CN110139922B (zh) | 2016-12-22 | 2021-05-25 | 香港大学 | 用于澄清组织的组合物和方法 |
CN106901865B (zh) * | 2017-01-06 | 2019-10-01 | 华中科技大学 | 一种颅骨光透明处理方法及其应用 |
US10955322B2 (en) | 2017-01-18 | 2021-03-23 | California Institute Of Technology | Methods and devices for soft and osseous tissue clearing and fluorescent imaging |
JP7092294B2 (ja) * | 2017-12-13 | 2022-06-28 | 学校法人東海大学 | 超薄膜から成る生体組織被覆用材料、及びそれで被覆された生体組織 |
WO2019190216A1 (fr) * | 2018-03-29 | 2019-10-03 | 주식회사 바이나리 | Composition pour améliorer l'infiltration dans des tissus biologiques comprenant du triton x-100 et de l'urée en tant que principes actifs, et procédé d'amélioration de l'infiltration dans des tissus biologiques l'utilisant |
US11994451B2 (en) * | 2018-11-21 | 2024-05-28 | Cornell University | Optical clearing and auto-fluorescence quenching solutions and method of use for enhanced microscopy imaging of biological tissues |
CN111610078B (zh) * | 2020-07-03 | 2021-12-14 | 中国科学技术大学 | 生物组织透明化试剂及生物组织透明化方法 |
CN113640520A (zh) * | 2021-07-16 | 2021-11-12 | 南方医科大学珠江医院 | 一种组织透明方法和组织学方法联合用于检测肿瘤内细菌的应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4282001A (en) * | 1978-04-14 | 1981-08-04 | Boehringer Mannheim Gmbh | Compositions and method for reducing turbidity in samples |
US4981610A (en) * | 1986-05-21 | 1991-01-01 | Universite De Nancy I | Reagent for rendering biological media transparent and its analytical applications |
US5258315A (en) * | 1990-06-09 | 1993-11-02 | Merck Patent Gesellschaft Mit Beschrankter Haftung | Process and composition for the removal of turbidity from biological fluids |
US6219575B1 (en) * | 1998-10-23 | 2001-04-17 | Babak Nemati | Method and apparatus to enhance optical transparency of biological tissues |
Family Cites Families (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5281353A (en) * | 1991-04-24 | 1994-01-25 | Allergan, Inc. | Compositions and methods for disinfecting/cleaning of lenses and for destroying oxidative disinfectants |
WO1992019952A1 (fr) * | 1991-05-07 | 1992-11-12 | Wescor, Inc. | Procede de coloration ameliore pour echantillons histologiques et cytologiques |
US5252246A (en) * | 1992-01-10 | 1993-10-12 | Allergan, Inc. | Nonirritating nonionic surfactant compositions |
US5514379A (en) * | 1992-08-07 | 1996-05-07 | The General Hospital Corporation | Hydrogel compositions and methods of use |
US5344637A (en) * | 1993-06-01 | 1994-09-06 | Camiener Gerald W | Use of saturated, ring-containing compounds as clearing solvents in histologic procedures |
US6159445A (en) * | 1994-07-20 | 2000-12-12 | Nycomed Imaging As | Light imaging contrast agents |
US5907082A (en) * | 1995-11-17 | 1999-05-25 | The Regents Of The University Of California | Ovule-specific gene expression |
EP0822403B1 (fr) * | 1996-08-02 | 1998-07-29 | Milestone S.r.l. | Procédé pour le traitement d'échantillons organiques |
US6165798A (en) * | 1996-10-10 | 2000-12-26 | University Of British Columbia | Optical quantification of analytes in membranes |
US5698503A (en) * | 1996-11-08 | 1997-12-16 | Ashland Inc. | Stripping and cleaning composition |
US6232092B1 (en) * | 1998-10-02 | 2001-05-15 | Rogers Imaging Corporation | Method for preparing biological specimens for visual analysis |
-
2001
- 2001-07-24 US US09/910,764 patent/US6472216B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-08-09 DE DE10139110A patent/DE10139110B4/de not_active Expired - Lifetime
- 2001-10-01 FR FR0112610A patent/FR2830323B1/fr not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4282001A (en) * | 1978-04-14 | 1981-08-04 | Boehringer Mannheim Gmbh | Compositions and method for reducing turbidity in samples |
US4981610A (en) * | 1986-05-21 | 1991-01-01 | Universite De Nancy I | Reagent for rendering biological media transparent and its analytical applications |
US5258315A (en) * | 1990-06-09 | 1993-11-02 | Merck Patent Gesellschaft Mit Beschrankter Haftung | Process and composition for the removal of turbidity from biological fluids |
US6219575B1 (en) * | 1998-10-23 | 2001-04-17 | Babak Nemati | Method and apparatus to enhance optical transparency of biological tissues |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
GRACE A A ET AL: "Morphological artifacts induced in intracellularly stained neurons by dehydration: circumvention using rapid dimethyl sulfoxide clearing.", NEUROSCIENCE. ENGLAND OCT 1985, vol. 16, no. 2, October 1985 (1985-10-01), pages 461 - 475, XP009011345, ISSN: 0306-4522 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FR2830323B1 (fr) | 2004-06-11 |
DE10139110B4 (de) | 2012-02-23 |
US6472216B1 (en) | 2002-10-29 |
DE10139110A1 (de) | 2003-02-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FR2830323A1 (fr) | Solution aqueuse eclaircissante de tissus | |
US9964489B2 (en) | System and method for controlling depth of imaging in tissues using fluorescence microscopy under ultraviolet excitation following staining with fluorescing agents | |
Klaus et al. | Three‐dimensional visualization of insect morphology using confocal laser scanning microscopy | |
EP3194937B1 (fr) | Procédé pour commander la profondeur d'imagerie dans des tissus à l'aide de microscopie par fluorescence sous excitation aux ultraviolets après coloration avec des agent fluorescents | |
US6232092B1 (en) | Method for preparing biological specimens for visual analysis | |
Zucker et al. | Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy | |
Zucker et al. | Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis‐stage mouse embryos | |
Zucker | Whole insect and mammalian embryo imaging with confocal microscopy: morphology and apoptosis | |
Galloway | Coral Disease and Health Workshop, Coral Histopathology II | |
Smolla et al. | Clearing pigmented insect cuticle to investigate small insects' organs in situ using confocal laser-scanning microscopy (CLSM) | |
WO2018175565A1 (fr) | Système et procédé pour commander la profondeur d'imagerie dans les tissus à l'aide de la microscopie de fluorescence sous excitation aux ultraviolets après coloration avec des agents fluorescents | |
Singh et al. | Confocal microscopy: a powerful technique for biological research | |
Strickland et al. | Light microscopy of echinoderm embryos | |
JP2003066035A (ja) | 水溶性組織清澄溶液 | |
Wetzker et al. | Distinct metabolic profiles in Drosophila sperm and somatic tissues revealed by two-photon NAD (P) H and FAD autofluorescence lifetime imaging | |
Holloway et al. | Development of a scanning confocal laser microscopic technique to examine the structure and composition of marine snow | |
Zucker et al. | Confocal laser scanning microscopy morphology and apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos | |
Paddock | An introduction to confocal imaging | |
Sam-Yellowe et al. | New trichrome stains identify cysts of Colpodella sp.(Apicomplexa) and Bodo caudatus | |
Luu et al. | More than double the fun with two-photon excitation microscopy | |
Lyndby et al. | Non-invasive investigation of the morphology and optical properties of the upside-down jellyfish Cassiopea with optical coherence tomography | |
Zucker et al. | Confocal laser scanning microscopy of morphology and apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos | |
GB2377757A (en) | Tissue clearing solution | |
Vogl et al. | Methods for multiscale structural and functional analysis of the mammalian cochlea | |
CN113189071B (zh) | 用于完整器官血管三维网络精准成像的试剂盒及成像方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 15 |
|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 16 |
|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 17 |
|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 18 |
|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 19 |
|
PLFP | Fee payment |
Year of fee payment: 20 |