WO2024062132A1 - Composition de dégradation des biofilms - Google Patents

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WO2024062132A1
WO2024062132A1 PCT/EP2023/076367 EP2023076367W WO2024062132A1 WO 2024062132 A1 WO2024062132 A1 WO 2024062132A1 EP 2023076367 W EP2023076367 W EP 2023076367W WO 2024062132 A1 WO2024062132 A1 WO 2024062132A1
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WO
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dnase
composition according
biofilm
composition
activity
Prior art date
Application number
PCT/EP2023/076367
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English (en)
Inventor
Laurent Delhalle
Martine WEICKMANS
Sébastien FASTREZ
Original Assignee
Realco
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11D—DETERGENT COMPOSITIONS; USE OF SINGLE SUBSTANCES AS DETERGENTS; SOAP OR SOAP-MAKING; RESIN SOAPS; RECOVERY OF GLYCEROL
    • C11D3/00—Other compounding ingredients of detergent compositions covered in group C11D1/00
    • C11D3/16—Organic compounds
    • C11D3/38—Products with no well-defined composition, e.g. natural products
    • C11D3/386—Preparations containing enzymes, e.g. protease or amylase
    • C11D3/38636—Preparations containing enzymes, e.g. protease or amylase containing enzymes other than protease, amylase, lipase, cellulase, oxidase or reductase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11D—DETERGENT COMPOSITIONS; USE OF SINGLE SUBSTANCES AS DETERGENTS; SOAP OR SOAP-MAKING; RESIN SOAPS; RECOVERY OF GLYCEROL
    • C11D2111/00—Cleaning compositions characterised by the objects to be cleaned; Cleaning compositions characterised by non-standard cleaning or washing processes
    • C11D2111/10—Objects to be cleaned
    • C11D2111/14—Hard surfaces

Definitions

  • the present invention relates to a composition for degrading biofilms comprising a specific DNAse.
  • Prior art In many fields of activity such as the agri-food sectors, communities, the medical and veterinary sectors, the cosmetic industries, the pharmaceutical sector, "life science" or biotechnology, problematic contaminations due to the presence of microorganisms are observed very frequently. These biofilms can be treated in different ways, but it remains difficult to ensure that the treatment that is applied will be effective. In particular, biocidal or antibiotic molecules, which are known to destroy bacteria in planktonic form, are often ineffective against these same bacteria in biofilm form. Furthermore, in practice, and unlike in the laboratory, the composition of a biofilm contaminating a surface is very generally unknown.
  • the present invention relates to a liquid composition for the prevention or elimination of biofilm, comprising one or more surfactant(s), one or more sequestering agent(s) and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more HNH type DNAse(s) and/or having at least 95% identity with one of the sequences SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO :13 (or SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 18).
  • a surfactant(s) one or more sequestering agent(s) and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity
  • DNAse being one or more HNH type DNAse(s) and/or having at least 95% identity with one of the sequences SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO :13 (or SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 18).
  • the present invention further relates to the use of this composition for the elimination of a biofilm comprising a bacteria lactic agent chosen from Lacobacillus sp, Pediococcus sp, Lactococcus sp. Streptococcus sp, Teragenococcus sp, Leuconostoc sp, Oenococcus sp, Bifidobacterium sp, and/or Listeria monocytogenes, Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus cereus, Bacillus subtilis, and/or Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloacae , Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis or Clostridium sp.
  • a bacteria lactic agent chosen from Laco
  • the present invention also relates to a method for eliminating a biofilm on a surface comprising the application to said surface of this liquid composition.
  • the present invention also relates to a liquid (boost) composition comprising ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B) and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more DNAse(s) of HNH type and/or having at least 95% identity with one of the sequences SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 1313 (or SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 18).
  • a liquid (boost) composition comprising ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B) and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more DNAse(s) of HNH type and/or having at least
  • compositions against biofilms in particular to obtain compositions whose spectrum of activity is sufficiently broad and constant, and which ensures a considerable reduction in the number of microorganisms protected by the biofilm.
  • the inventors have identified a DNAse which is particularly effective against certain types of biofilms. Furthermore, depending on the biofilms, this DNAse is very effective, either alone or in synergy with other enzymatic activities.
  • the inventors have succeeded in formulating this DNAse in such a way that it retains its activity, including over time (even in the presence of a protease in the composition or sequestering agents), which allows all firstly, reasonable commercial logistics between the time the liquid (aqueous) composition is formulated and the time it will be used.
  • the composition according to the invention is preferably used on surfaces.
  • the terminology “surface” is preferably understood in the broad sense, therefore including the internal surface of a pipe, or even the surfaces of reusable medical devices, in particular endoscopes and surgical instruments.
  • Sequence 12 is the consensus sequence in its broadest understanding.
  • Sequence 13 is a consensus sequence incorporating preferred amino acids at key positions, especially in the central part of the enzyme. At the level of sequences 12 and 13, the amino acids which may be subject to variation are mentioned under the letter “X” and their structure is shown below.
  • N A, T, S, D; preferably A; 64.V,T; preferably V; 66.S,T; preferably S; 68. R, K, S; preferably R, K; 73. F, Y; 76 (sequences 12 and 13). I, V; 77 (sequences 12 and 13). V, I, T, K; 78. V, F; 79. T, Y; 80. S, D, N; preferably S; 83. E, D, N; preferably E, D; 84. I, L; 86. I, V; preferably I 89. I, V; preferably I; at least 1 I at positions 86/89; 104.S,T; preferably T; 106.
  • E, K, Q, R; preferably Q or R, preferably R 110. (sequences 12 and 13).
  • S, T, N preferably S; 172 (sequences 12 and 13).
  • S, A, G preferably S, A; 174 (sequences 12 and 13).
  • Q, E preferably Q; 175 (sequences 12 and 13).
  • T, S, G; 178 (sequences 12 and 13).
  • N,D preferably N; 179 (sequences 12 and 13).
  • A A.
  • a first object of the present invention relates to a liquid composition for the prevention or elimination of a biofilm, comprising one or more surfactant(s), one or more sequestering agents and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more HNH type DNAse(s) (having a GYS motif) and/or having at least 95% identity with one of sequences 1 to 13 , or even with the DNAses of sequences 1 to 18.
  • said liquid composition comprises at least 7% by weight of water, preferably at least 10% of water, or even at least 20% of water.
  • the DNAse(s) possess(es) at least 95% identity with one of the sequences 1 to 13, or even with the DNAses of the sequences 1 to 18.
  • the identity is preferably measured by an alignment of 'a sequence to be tested with one of sequences 1 to 13 (or 1 to 18) over their entire length (182 amino acids).
  • the default parameters of BLASTp are advantageously used, such as a Blosum62 type matrix, a “word” of size 6, a “gap” penalty of 11 and a “gap” extension penalty of 1.
  • the identity percentage is calculated without ambiguity.
  • a “gap” will be counted as a single difference, whatever its length.
  • sequences 12 and 13 when a DNAse is to be compared with sequences 12 and 13, a global alignment is carried out as described above, and an amino acid of the sequence to be compared which would be identical to the variants of sequences 12 or 13 listed in the different Positions marked with the symbol “X” are counted as identical.
  • a sequence to be compared would be aligned with sequence 12 or 13. If the amino acid of this sequence to be compared at the position corresponding to position 10 of sequence 12 or 13 is an alanine, it will be considered identical .
  • a sequence which would have equivalent enzymatic activity, but which would be longer e.g.
  • sequences for purification or sequences for increasing stability, or even signal sequence), or shorter is also covered by the present invention, provided that the enzyme in question takes up at least 95% of one of the sequences 1 to 13 (or 1 to 18).
  • identity can be deduced after a global alignment as above and by applying a tolerance of less than 10, less than 9, less than 8, less than 7, less than 6, less than 5, less than 4, less 3 variations or “gaps” between a target sequence and any one of sequences 1 to 13 (or 1 to 18).
  • the composition further comprises one or more enzymatic activity(ies) chosen from one (or more) protease, a laccase, an amylase, a lipase, a cellulase, a mannanase, a ⁇ -1,6-N activity -acetylhexosaminidase (Dispersin B) and a mixture thereof, preferably a protease (or even several proteases) and/or ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B), preferably a protease (or even several proteases) and /or a ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B) and another enzyme, or several other enzymes, chosen from a laccase, an amylase, a lipase, a cellulase and a mannanase.
  • a preferred composition comprises the DNAse described above and one (or more) proteases, one (or more) amylase and one (or more) cellulase.
  • a preferred composition may also comprise the DNAse described above and another nuclease, as well as, advantageously, a protease (or even a cellulase and/or an amylase and/or a second protease).
  • One or more enzymes catalyzing redox reactions can advantageously be added.
  • the inventors have noticed that the presence of several different enzymatic activities offered a broader spectrum of activity, which is advantageous since, in general, the composition of the biofilms to be treated is unknown, or even the biofilms to be treated comprise several different structural elements: the already remarkable effect of the DNAse of the invention is further reinforced by the enzymatic activities additional.
  • the surfactant(s) are not particularly limited. Surfactants, anionic, neutral and/or zwiterionic agents may be present.
  • surfactants of the alkyl-polyglucoside type work well, as do zwitterionic surfactants of the alkyl aminoxide type (e.g. with 12 and/or 14 and/or 16 and/or 18 carbons).
  • a foaming surfactant is advantageously incorporated.
  • a foaming enhancing agent such as betaine derivatives, and/or zwitterionic surfactants having a quaternary amine are advantageously added.
  • these surfactants are present in a (final) content of at least 1%, by weight:volume.
  • their content does not exceed 15% (by weight:volume; sum of the weights of the surfactants:volume).
  • the sequestering agent(s) is(are) chosen from the group consisting of citrate, carboxymethylinulin, a phosphate, a phosphonate, and derivatives of amino acids (glutamate and tetrasodium diacetate, GLDA; trisodium methylglycine diacetate, MGDA), sodium iminodisuccinate; IDS, gluconate (e.g. sodium gluconate) and mixtures of these.
  • the sequestering agent(s) is(are) chosen from the group consisting of citrate, carboxymethylinulin, a phosphate, a phosphonate, gluconate and mixtures thereof.
  • the composition according to the invention further comprises glycerol and/or monopropylene glycol.
  • glycerol and/or monopropylene glycol increases the stability of the composition according to the invention.
  • An advantageous content is approximately 5 to 30% by weight of the glycerol and/or monopropylene glycol:volume of the solution, preferably 7 to 15% (weight:volume), such as 8 to 12% (weight:volume ), or approximately 10% ⁇ 0.5% (weight of glycerol and/or monopropylene glycol:volume).
  • the liquid composition according to the invention comprises (in addition to glycerol and/or monopropylene glycol) advantageously water, for example at least 5% by weight, preferably at least 10% by weight.
  • the liquid composition according to the invention is present in a concentrated formulation, which is diluted (eg 10 times, 100 times, or more) in water just before use.
  • certain compositions are advantageously directly formulated “ready for use”; for example compositions comprising foaming surfactants (e.g. as described above for the treatment of siphons); a more detailed description of this will be provided below.
  • the foaming surfactants we find those which have an “HLB” value (Hydrophilic-lipophilic-Balance) included between 3 and 8.
  • HLB Hydrophilic-lipophilic-Balance
  • anionic or zwitterionic surfactants can be used, preferably in synergy with a betaine derivative, such as 1-propanaminium, 3-amino-N- (carboxymethyl)-N,N-dimethyl-, N-acyl (acyl being a hydrocarbon chain with an even number of carbons, for example 18),
  • the composition according to the invention further comprises a preservative agent, preferably an isothiazolinone such as Benzisothiazolinone, or (2-)phenoxyethanol.
  • the composition according to the invention comprises at least 40% (by volume: volume) of water.
  • This is a composition which should not be diluted too much before use. On the other hand, too high a water content risks harming the stability of the composition over time.
  • the composition according to the present invention comprises at least 60% water (by volume: volume) and, preferably, this composition further comprises ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B).
  • Disposin B ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase
  • a related aspect of the present invention relates to a composition
  • a composition comprising a polyol, ⁇ -1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersin B) and a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more DNAse(s). ) type HNH and/or having at least 95% identity with one of sequences 1 to 13 (or 1 to 18).
  • This composition is advantageous in stepwise biofilm treatment processes (see the preceding paragraph and below, the two-step process).
  • compositions with at least one HNH type DNAse and/or having at least 95% identity over the entire sequence with any of Sequences 1 to 13, or 1 to 18 “ready for use”, comprising at least 90%, or even at least 95% water (weight of water: weight of the composition) and 1 to 10% (for example 2 to 5%) other components (sum of the weights of the components other than water: total weight of the composition): the DNA according to the invention, any other enzymes (preferably one or more proteases; amylase, possibly a lipase, or even the other enzymes described above), a sequestering agent and one or more surfactants, or even one or more filler compounds (carriers) if present.
  • enzymes preferably one or more proteases; amylase, possibly a lipase, or even the other enzymes described above
  • sequestering agent preferably one or more surfactants, or even one or more filler compounds (carriers) if present.
  • a “ready-to-use” composition comprises a foaming surfactant and/or a betaine derivative as described above.
  • Another related aspect of the present invention relates to the use of the composition according to the invention (with at least one HNH type DNAse and/or having at least 95% identity over the entire sequence with any of Sequences 1 to 13, or 1 to 18) for the elimination of a biofilm comprising a lactic acid bacteria chosen from Lacobacillus sp, Pediococcus sp, Lactococcus sp.
  • Streptococcus sp Teragenococcus sp, Leuconostoc sp, Oenococcus sp, Bifidobacterium sp, and/or Listeria sp (or L. monocytogenes), Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus sp. (B. cereus, B. subtilis) and/or Pseudomonas sp. (e.g.
  • Pseudomonas fluorescens or Pseudomonas aeruginosa Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis, Clostridium sp.
  • the inventors have noted the superiority of the DNAse according to the invention compared to other nucleases, even nucleases considered excellent, this superiority is measured either alone , or in synergy with other enzymatic activities.
  • Another related aspect of the present invention relates to a method for the elimination of a biofilm on a surface comprising the application to this surface of the liquid composition according to the invention, comprising the DNAse (or several DNAses) according to invention (with at least one HNH type DNAse and/or having at least 95% identity over the entire sequence with any of Sequences 1 to 13, or 1 to 18).
  • this process can be in two stages, in which - a solution comprising one or more detergents and one or more enzymatic activities is added, - followed by the addition of a composition comprising a phosphodiesterase having deoxyribonuclease (DNAse) activity, said DNAse being one or more DNAse(s) of the HNH type and/or having at least 95% identity with one of the sequences 1 to 13, or 1 to 18, - followed, optionally, by a rinsing step and/or disinfection.
  • This process (in a single step or in two steps) is particularly advantageous when the surface is one or more internal surface(s) of a substantially closed circuit, preferably a piping system or fermenter.
  • biofilms This is a surface that is difficult to access, but where the biofilms, when they have developed there, are well deconstructed thanks to the DNAse according to the invention.
  • Examples Two different biofilms were tested, so as to encounter a diversity of microorganisms: a biofilm consisting of Lactococcus lactis and a biofilm consisting of Pseudomonas fluorescens. These biofilms were generated by application of bacterial suspensions on agar at 37°C in multi-well plates (24 wells), for 48 hours (Pseudomonas) or 24 hours (Lactococcus).
  • the quantification of microorganisms is done by spectrometry, here at 590 nm (570 nm is also OK) following staining with “Crystal Violet”.
  • Different conditions are provided for per plate, which is shown schematically in Table 1 below: Table 1: Overview of the different test conditions. Each condition is therefore in triplicate. Bacteria are seeded in all wells, except for the “negative controls”. All solutions are sterile and they are added very gently so as not to cause mechanical disruption to the biofilms. The wells of the “Positive Control” and “Negative Control” conditions were incubated with 1 ml of physiological saline.
  • Biorem-CIP Realco
  • Denarase and DNAse 0.01% of enzymatic solutions, to ensure normalized activity
  • Biorem A1 +10 solutions sold by Realco, diluted to 0.25% (A1) and 0.05% (Biorem 10).
  • These solutions include detergents/surfactants (>1% C6 alkyl-glucoside), sequestrants (a phosphonate; >15%), and several enzymatic activities, including a protease, an amylase and a laccase.
  • Biorem CIP also contains detergents/surfactants (>1% C6 alkyl-glucoside), sequestrants (>1% sodium citrate), and a dispersing agent and several enzymatic activities, including a protease, an amylase, and a laccase.
  • the composition was applied at 1%.
  • Biorem compounds are also described, for example in patent application WO2012048758A1 as well as in the corresponding patents. Then the wells are gently emptied, taking care not to remove either the biofilms or their fragments. After rinsing with physiological water, the plate containing the biofilms is dried in an oven. for one hour at 45°C.
  • the inventors further tested, in another series of experiments, the effect of DNAse alone or of Denarase alone, and observed very good effectiveness of DNAse alone on Lactococcus lactis, which is further increased by approximately 20% by Biorem, while Denarase alone has only marginal activity.
  • the results for Pseudomonas fluorescens are shown in Table 3 below: Table 3: effectiveness of the different nucleases for the destruction of biofilms made up of Pseudomonas fluorescens and synergy with an enzymatic composition.
  • L. lactis the inventors tested in a second series of experiments the effect of DNAse alone and observed a strong activity of DNAse alone, which is somewhat increased by Biorem.
  • the inventors conclude that the DNAse of the invention is clearly superior, especially in synergy with the less intense conditions of Biorem A1+10, compared to Biorem CIP.
  • the synergy with DNAse is better demonstrated.
  • a multienzymatic disinfectant detergent containing quaternary ammonium (6th column; DMQ) or a non-enzymatic disinfection composition for endoscopes (7th column; DME).
  • the compositions were tested at a concentration of 0.5%.
  • the biofilm of the species to be tested is formed in a 96-well plate.
  • the enzymatic detergents are then diluted to their usual concentration in water of standard hardness (demineralized water) and incubated on the biofilm for 1 hour at 37°C.
  • the quantity of biomass remaining after treatment and washing of the biofilm is then evaluated by staining with crystal violet (2% sigma solution). This test is carried out on reference strains in 96-well plates, namely: S.
  • Crystal violet 2% (Crystal violet solution, Sigma-Aldrich, ref: HT90132-1L) Acetic acid 66% (glacial acetic acid 100%, ref: K48283163635, Millipore) Boxes of Tryptic soy agar (TSA; BD benelux – ref 254086)
  • TSA Tryptic soy agar

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Abstract

Composition de dégradation de biofilm comprenant une DNAse, utilisations de celles-ci et procédé de dégradation des biofilms comprenant l'application de cette composition.

Description

COMPOSITION DE DÉGRADATION DES BIOFILMS Domaine technique La présente invention se rapporte à une composition de dégradation des biofilms comprenant une DNAse spécifique. L'art antérieur Dans de nombreux domaines d’activités comme les secteurs agroalimentaires, les collectivités, les secteurs médicaux et vétérinaires, les industries cosmétiques, le secteur pharma, « life science » ou de la biotechnologie, des contaminations problématiques dues à la présence de microorganismes sont observées très fréquemment. Ces biofilms peuvent être traités de différentes manières, mais il reste difficile de s’assurer que le traitement qui va être appliqué sera efficace. En particulier, des molécules biocides ou antibiotiques, qui sont connues pour détruire des bactéries sous forme planctonique, sont bien souvent inefficaces contre ces mêmes bactéries sous forme de biofilm. En outre, en pratique, et contrairement au laboratoire, la composition d’un biofilm contaminant une surface est très généralement inconnue. Finalement, les applications dans le domaine de l’agroalimentaire ou médical, voire pour une production GMP (Good Manufacturing Practice) imposent des contraintes quant aux composés qui peuvent être utilisés, ce qui complique le traitement des biofilms. A titre d’exemple, les tuyauteries sont difficiles à désinfecter du fait d’un accès moindre. De même les instruments médicaux, tels les endoscopes, sont difficiles à désinfecter, du fait (i) de leur surface, qui présente de nombreuses irrégularités, et (ii) de l’impossibilité d’y appliquer de nombreux traitement usuels physiques ou chimiques, tels que des traitements thermiques, des produits qui les endommageraient ou seraient incompatibles avec l’usage ultérieur chez un patient. Différents types d’enzymes ont été testées et utilisées avec succès pour la dégradation des biofilms. Cependant, certains biofilms ne sont pas déstructurés convenablement avec une seule activité enzymatique, alors que des mélanges d’enzymes, en particulier lorsqu’il y a des protéases, ne permettent pas nécessairement des compositions liquides qui soient stables au cours du temps. En outre, comme ce sera décrit ci-dessous, pour un biofilm de composition donnée, les inventeurs ont noté que les compositions enzymatiques actuelles présentaient trop souvent des variations importantes en termes d’efficacité, ce qui complique le travail pour arriver à une formulation optimale. La demande de brevet WO2022079318 décrit l’utilisation d’une nucléase particulière (Denarase), avec une efficacité accrue. Le brevet US10954497 décrit une catégorie de DNAses HNH ayant un motif GYS et leur efficacité lorsqu’elles sont formulées pour la destruction de biofilms. Bref résumé de l'invention La présente invention porte sur une composition liquide pour la prévention ou l’élimination d’un biofilm, comprenant un ou plusieurs agent(s) tensioactif(s), un ou plusieurs agent(s) séquestrant(s) et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO :13 (ou SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO :18). La présente invention porte en outre sur l’utilisation de cette composition pour l’élimination d’un biofilm comprenant une bactérie lactique choisie parmi Lacobacillus sp, Pediococcus sp, Lactococcus sp. Streptococcus sp, Teragenococcus sp, Leuconostoc sp, Oenococcus sp, Bifidobacterium sp, et/ou Listeria monocytogenes, Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus cereus, Bacillus subtilis, et/ou Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis ou Clostridium sp. La présente invention porte aussi sur un procédé pour l’élimination d’un biofilm sur une surface comprenant l’application sur ladite surface de cette composition liquide. La présente invention porte aussi sur une composition liquide (de boost) comprenant de la β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B) et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 1313 (ou SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO :18). Description détaillée d'une réalisation de l'invention Les inventeurs ont cherché à améliorer les compositions contre les biofilms, en particulier pour obtenir des compositions dont le spectre d’activité est suffisamment large et constant, et qui assure une réduction considérable du nombre de microorganismes protégés par le biofilm. Pour ce faire, les inventeurs ont identifié une DNAse qui est particulièrement efficace contre certains types de biofilms. En outre, selon les biofilms, cette DNAse est très efficace, soit seule, soit en synergie avec d’autres activités enzymatiques. De plus, les inventeurs ont réussi à formuler cette DNAse de manière à ce qu’elle conserve son activité, y compris au cours du temps (même en présence d’une protéase dans la composition ou d’agents séquestrants), ce qui permet tout d’abord une logistique commerciale raisonnable entre le temps où la composition liquide (aqueuse) est formulée et le moment où elle sera utilisée. La composition selon l’invention est de préférence utilisée sur des surfaces. Dans le contexte de la présente invention, la terminologie « surface » est de préférence entendue au sens large, donc y compris la surface interne d’une tuyauterie, ou encore des surfaces de dispositifs médicaux réutilisables en particulier des endoscopes et des instruments chirurgicaux. En effet, les inventeurs ont testé l’effet de cette DNAse seule, par rapport à d’autres nucléases connues pour leur activité remarquable, telle que la Denarase (comme dans WO2022079318), et l’effet de cette DNAse en synergie avec d’autres enzymes, soit dans un mélange, soit en application séquentielle, et ont remarqué une efficacité accrue ou plus constante, selon le type de biofilm à traiter. En effet, à leur surprise, les inventeurs ont comparé, dans des conditions de laboratoires bien contrôlées, l’effet sur des biofilms des compositions (protéase+ amylase+ lipase+ détergent+ séquestrant doux) sans cette DNAse et des mêmes compositions avec la DNAse de l’invention et, dans le cas des composition sans cette DNAse, ils ont parfois noté des bons résultats et parfois des résultats médiocres, alors que les compositions enrichies avec la DNAse de la présente invention ont toujours montré des très bons résultats. Ainsi, il a fallu de nombreux tests, et répétés de nombreuses fois, pour identifier clairement l’effet de la DNAse de la présente invention, et les résultats montrés ci-dessous sont parmi les plus spectaculaires. Listage des séquences Les séquences 1 à 11, ainsi que de 14 à 18 reprennent des DNAses selon l’invention. Il s’agit de DNAses du type HNH. La séquence 12 est la séquence consensus dans sa compréhension la plus large. La séquence 13 est une séquence consensus incorporant des acides aminés préférés à des positions clés, surtout dans la partie centrale de l’enzyme. Au niveau des séquences 12 et 13, les acides aminés pouvant faire l’objet de variation sont mentionnés sous la lettre « X » et leur structure est reprise ci-dessous. Certaines positions sont préférentiellement occupées par des acides aminés précis, ce qui est également listé ci- dessous : SEQ ID NO :12 XPXXXPSKXXXQXQLXXLXVXXEXXMXGYSRXXFPHWXXQGXGCXTRQXVLXRDADXXSG XCPXTXGXWYSYXDGXXXXXPSXXDXDHXVPLAEAWRSGASSWXTXXRXXFANDLXGXQL IAVXASXNRXKGDQDPSTWXPXRXXAXCXYXKXWXXTKXXXXLXLQSXEKXXLXXMLXXC XY SEQ ID NO:13 LPPGTPSKSXAQSQLNALXVXXEXSMTGYSRXXFPHWSSQGGGCDTRQVVLKRDADXXSG XCPVTSGKWYSYFDGXXFTNPSDLDIDHIVPLAEAWRSGASSWTTSKRXXFANDLNGPQL IAVXASXNRXKGDQDPSTWQPPRAAARCAYSKWWISTKYKWGLSLQSXEKXXLXXMLXXC AY 1 : L, F, I, T, P ; de préférence L ou I, de préférence L ; 3: P, S; de préférence P ; 4: G, E, V, de préférence G, V, de préférence, G ; 5: T, I; de préférence T; 9 S, A, de préférence S; 10. (séquences 12 et 13). A, E, Q, T, de préférence E, Q; 11. A, S; de préférence A; 13. S, T; de préférence S; 16. N, D; de préférence N; 17 A, S, G; de préférence A, S; 19 (séquences 12 et 13). T, A; de préférence T; 21 (séquences 12 et 13). K, Q; de préférence K; 22 (séquences 12 et 13). A, P, T, S; de préférence P ou S; 24 (séquences 12 et 13). D, S, G; de préférence D ; 25. P, T, A, S; de préférence P, S ; 27. T, S; de préférence T ; 32. (séquences 12 et 13). D, N ; 33. (séquences 12 et 13). L, H, K ; 38. N, S, I, T; 39. S, G, de préférence S ; 42. S, G, N; 45. D, N; 49. I, L, V, M; 52. Q, K; 57(séquences 12 et 13), Y, S; de préférence Y; 58 (séquences 12 et 13). Y, F, de préférence Y au moins un résidu Y aux positions 57/58, de préférence les positions 57 et 58 sont occupées par 2 résidus Y ; 59. S, T; de préférence S ; 61 (séquences 12 et 13). N, A, T, S, D; de préférence A ; 64. V, T; de préférence V; 66. S, T; de préférence S; 68. R, K, S; de préférence R, K ; 73. F, Y; 76 (séquences 12 et 13). I, V; 77 (séquences 12 et 13). V, I, T, K; 78. V, F; 79. T, Y; 80. S, D, N ; de préférence S ; 83. E, D, N; de préférence E, D; 84. I, L; 86. I, V; de préférence I 89. I, V; de préférence I; au moins 1 I aux positions 86/89 ; 104. S, T; de préférence T; 106. E, S, Q, A, T; 107. K, Q; de préférence K ; 109. (séquences 12 et 13). E, K, Q, R; de préférence Q ou R, de préférence R 110. (séquences 12 et 13). E, S, A, N, D; de préférence N ou D, de préférence N 116. N, T, G, S; de préférence N, S ; 118. P, S, de préférence P; 124 (séquences 12 et 13). S, T; 127 (séquences 12 et 13). T, S, V; de préférence S, V ; 130 (séquences 12 et 13). S, A; de préférence S; 140. Q, K; de préférence Q; 142. P, T; de préférence P; 144. A, V, S, Y; 145. A, G, S; de préférence G; 147. R, H, K, A; de préférence R; 149. G, A; 151. S, A; de préférence A; 153. W, M; de préférence W; 155. I, V. de préférence I; 156. N, S; de préférence N; 159. H, Y, S; de préférence Y, H ; 160. R, V, K; de préférence R, K, de préférence R ; 161. W, Y; de préférence W; 162. D, G, N, de préférence G, D; 164. S, H, N; 168 (séquences 12 et 13). S, A; de préférence S; 171(séquences 12 et 13). S, T, N; de préférence S; 172 (séquences 12 et 13). S, A, G, de préférence S, A ; 174 (séquences 12 et 13). Q, E; de préférence Q; 175 (séquences 12 et 13). T, S, G; 178 (séquences 12 et 13). N, D; de préférence N; 179 (séquences 12 et 13). T, G, S; de préférence T, S, de préférence T; 181. S, A. Ainsi, un premier objet de la présente invention porte sur une composition liquide pour la prévention ou l’élimination d’un biofilm, comprenant un ou plusieurs agent(s) tensioactif(s), un ou plusieurs agents séquestrants et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH (ayant un motif GYS) et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences 1 à 13, voire avec les DNAses des séquences 1 à 18. De préférence ladite composition liquide comprend au moins 7% en poids d’eau, de préférence au moins 10% d’eau, ou encore au moins 20% d’eau. De préférence, dans cette composition, la (ou les) DNAse(s) possède(nt) au moins 95% d’identité avec l’une des séquences 1 à 13, voire avec les DNAses des séquences 1 à 18. Dans le contexte de la présente invention, l’identité se mesure de préférence par un alignement d’une séquence à tester avec une des séquences 1 à 13 (ou 1 à18) sur toute leur longueur (182 acides aminés). Les paramètres par défaut de BLASTp sont avantageusement utilisés, tels qu’une matrice de type Blosum62, un « mot » de taille 6, une pénalité de « gap » de 11 et une pénalité d’extension du « gap » de 1. Ainsi le pourcentage d’identité se calcule sans ambiguïté. Avantageusement, dans le calcul ci-dessus, un « gap » sera comptabilisé comme une seule différence, quelle que soit sa longueur. De même, lorsqu’une DNAse est à comparer avec les séquences 12 et 13, un alignement global est réalisé comme décrit ci-dessus, et un acide aminé de la séquence à comparer qui serait identique aux variants des séquences 12 ou 13 listés aux différentes positions marquées du symbole « X » est comptabilisé comme identique. Par exemple une séquence à comparer serait alignée avec la séquence 12 ou 13. Si l’acide aminé de cette séquence à comparer à la position correspondant à la position 10 de la séquence 12 ou 13 est une alanine, celui-ci sera considéré comme identique. Une séquence qui aurait une activité enzymatique équivalente, mais qui serait plus longue (ex. ajout de séquences pour la purification ou de séquences pour l’augmentation de la stabilité, voire même de séquence signal), ou plus courte, est également couverte par la présente invention, pour autant que l’enzyme en question reprenne au moins 95% d’une des séquences 1 à 13 (ou 1 à 18). Alternativement, l’identité peut se déduire après un alignement global comme ci-dessus et en appliquant une tolérance de moins de 10, moins de 9, moins de 8, moins de 7, moins de 6, moins de 5, moins de 4, moins de 3 variations ou « gaps » entre une séquence cible et l’une quelconque des séquences 1 à 13 (ou 1 à 18). Enzymes additionnels Avantageusement, la composition comprend en outre une ou plusieurs activité(s) enzymatiques choisies parmi une (ou plusieurs) protéase, une laccase, une amylase, une lipase, une cellulase, une mannanase, une activité β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B) et un mélange de celles-ci, de préférence une protéase (voire plusieurs protéases) et/ou β- 1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B), de préférence une protéase (voire plusieurs protéases) et/ou une β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B) et une autre enzyme, ou plusieurs autres enzymes, choisie(s) parmi une laccase, une amylase, une lipase, une cellulase et une mannanase. Par exemple, une composition préférée comprend la DNAse décrite ci- dessus et une (ou plusieurs) protéases, une (ou plusieurs) amylase et une (ou plusieurs) cellulase. Une composition préférée peut également comprendre la DNAse décrite ci-dessus et une autre nucléase, ainsi que, avantageusement, une protéase (voire une cellulase et/ou une amylase et/ou une seconde protéase). Une ou plusieurs enzymes catalysant des réactions d’oxydo-réduction peuvent avantageusement être ajoutées. En effet, même si l’addition de plusieurs activités enzymatiques présente des difficultés, en particulier au niveau de la stabilité, par exemple du fait des agents séquestrants (voir ci-dessous) ou de l’activité endogène de la protéase, les inventeurs ont remarqué qu’une présence de plusieurs activités enzymatiques différentes offrait un plus large spectre d’activité, ce qui est avantageux puisque, en général, la composition des biofilms à traiter est inconnue, voire les biofilms à traiter comprennent plusieurs éléments structurels différents : l’effet, déjà remarquable, de la DNAse de l’invention est encore renforcé par les activités enzymatiques additionnelles. Autres composants Le ou les agents tensioactifs ne sont pas particulièrement limités. Des agents tensioactifs, anioniques, neutres et/ou zwiterioniques peuvent être présents. Les inventeurs ont remarqué que des agents tensioactifs de type alkyl-polyglucoside fonctionnent bien, tout comme des tensioactifs zwitterioniques de type aminoxyde d’alkyle (ex. à 12 et/ou 14 et/ou 16 et/ou 18 carbones). Lorsque la composition doit être appliquée à des surfaces verticales, par exemple un siphon, un tensioactif moussant est avantageusement incorporé. En outre, un agent renforçant le caractère moussant, tels que des dérivés de bétaine, et/ou des surfactants zwitterioniques ayant une amine quaternaire sont avantageusement ajoutés. Typiquement ces agents tensioactifs sont présents en une teneur (finale) d’au moins 1%, en poids :volume. Avantageusement, leur teneur n’excède pas 15% (en poids :volume ; somme des poids des tensioactifs :volume). De préférence, dans la composition selon l’invention, le ou les agent(s) séquestrants est (sont) choisis dans le groupe constitué du citrate, de la carboxyméthylinuline, d’un phosphate, d’un phosphonate, et des dérives d’acides aminés (Glutamate et diacétate tétrasodique, GLDA ; le diacétate de méthylglycine trisodique, MGDA), l’iminodisuccinate de sodium ; IDS, du gluconate (ex. gluconate de sodium) et des mélanges de ceux-ci. De préférence le ou les agent(s) séquestrants est (sont) choisis dans le groupe constitué du citrate, de la carboxyméthylinuline, d’un phosphate, d’un phosphonate, du gluconate et des mélanges de ceux- ci. Il s’agit, de préférence, de séquestrants doux. Les inventeurs ont remarqué que ces séquestrants là n’interfèrent pas avec l’activité de la DNAse de l’invention, ni avec celle des autres enzymes listés ci-dessus (lorsqu’ils sont présents). Avantageusement, la composition selon l’invention comprend en outre du glycérol et/ou du monopropylène glycol. Les inventeurs ont remarqué que ce type de molécules augmentait la stabilité de la composition selon l’invention. Une teneur avantageuse est d’environ 5 à 30% en poids du glycérol et/ou du monopropylène glycol:volume de la solution, de préférence 7 à 15% (poids :volume), tel que de 8 à 12 % (poids:volume), soit environ 10%±0,5% (poids de glycérol et/ou du monopropylène glycol:volume). Du sorbitol peut également être incorporé dans le même but. Réciproquement, ou en complément, la composition liquide selon l’invention comprend (outre le glycérol et/ou le monopropylène glycol) avantageusement de l’eau, par exemple au moins 5% en poids, de préférence au moins 10% en poids. En outre, avantageusement, la composition liquide selon l’invention est présente selon une formulation concentrée, qui est diluée (ex.10 fois, 100 fois, ou plus) dans de l’eau juste avant usage. Certaines compositions sont toutefois avantageusement directement formulées « prêtes à l’emploi » ; par exemple les compositions comprenant des agents tensioactifs moussants (ex. comme décrit ci- dessus pour le traitement des siphons) ; une description plus détaillée de ceci sera fournie ci-dessous. Parmi les tensioactifs moussants, l’on retrouve ceux qui ont une valeur « HLB » (Hydrophilic-lipophilc-Balance) comprise entre 3 et 8. Alternativement, plusieurs surfactants anioniques ou zwitterioniques peuvent être utilisés, de préférence en synergie avec un dérivé de bétaine, tel que le 1-propanaminium, 3-amino-N- (carboxymethyl)-N,N-dimethyl-, N-acyle (l’acyle étant une chaine hydrocarbonnée à nombre pair de carbones, par exemple 18), De même, avantageusement, la composition selon l’invention comprend en outre un agent conservateur, de préférence un isothiazolinone tel que la Benzisothiazolinone, ou le (2-)phénoxyéthanol. Avantageusement, la composition selon l’invention comprend au moins 40% (en volume :volume) en eau. Il s’agit d’une composition qui ne doit pas trop être diluée avant l’emploi. Par contre, une teneur trop élevée en eau risque de nuire à la stabilité de la composition au cours du temps. De préférence, la composition selon la présente invention comprend au moins 60% en eau (en volume :volume) et, de préférence, cette composition comprend en outre la β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B). Il s’agit d’une composition qui peut avantageusement être utilisée dans un second temps pour le traitement de surfaces, en particulier des surfaces internes d’une tuyauterie qui ont été préalablement traitée par des compositions comprenant une protéase et une ou plusieurs polysaccharidase, voire également une laccase. Ceci réduit l’interférence entre les différentes activités enzymatiques surtout lors de la conservation de la composition, mais au prix d’une étape supplémentaire dans le traitement. Un aspect connexe de la présente invention porte sur une composition comprenant un polyol, de la β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B) et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences 1 à 13 (ou 1 à 18). Cette composition est avantageuse dans les procédés de traitement des biofilms par étapes (voir au paragraphe qui précède et ci- dessous, le procédé en deux étapes). Un autre aspect connexe de la présente invention porte sur une composition (avec au moins une DNAse de type HNH et/ou ayant au moins 95% d’identité sur toute la séquence avec une quelconque des Séquences 1 à 13, ou 1 à 18) « prête à l’emploi », comprenant au moins 90%, voire même au moins 95% d’eau (poids de l’eau :poids de la composition) et de 1 à 10 % (par exemple de 2 à 5%) des autres composants (somme des poids des composants autres que l’eau: poids total de la composition) : la DNA selon l’invention, les éventuelles autres enzymes (de préférence une ou plusieurs protéase ; amylase, éventuellement une lipase, voire même les autres enzymes décrites ci- dessus), un agent séquestrant et un ou plusieurs tensioactifs, voire un ou plusieurs composé de charge (carrier) si présent. De préférence une telle composition « prête à l’emploi comprend » un tensioactif moussant et/ou un dérivé de bétaine tel que décrit ci-dessus. Un autre aspect connexe de la présente invention porte sur l’utilisation de la composition selon l’invention (avec au moins une DNAse de type HNH et/ou ayant au moins 95% d’identité sur toute la séquence avec une quelconque des Séquences 1 à 13, ou 1 à 18) pour l’élimination d’un biofilm comprenant une bactérie lactique choisie parmi Lacobacillus sp, Pediococcus sp, Lactococcus sp. Streptococcus sp, Teragenococcus sp, Leuconostoc sp, Oenococcus sp, Bifidobacterium sp, et/ou Listeria sp (ou L. monocytogenes), Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus sp. (B. cereus, B. subtilis) et/ou Pseudomonas sp. (ex. Pseudomonas fluorescens ou Pseudomonas aeruginosa), Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis, Clostridium sp. En effet, dans le cas des biofilms comprenant les microorganismes listés ci- dessus, les inventeurs ont noté la supériorité de la DNAse selon l’invention par rapport à d’autres nucléases, mêmes des nucléases considérées comme excellentes, cette supériorité est mesurée soit seule, soit en synergie avec d’autres activités enzymatiques. Un autre aspect connexe de la présente invention porte sur un procédé pour l’élimination d’un biofilm sur une surface comprenant l’application sur cette surface de la composition liquide selon l’invention, comprenant la DNAse (ou plusieurs DNAses) selon l’invention (avec au moins une DNAse de type HNH et/ou ayant au moins 95% d’identité sur toute la séquence avec une quelconque des Séquences 1 à 13, ou 1 à 18). De préférence ce procédé peut être en deux étapes, dans lequel - une solution comprenant un ou plusieurs détergents et une ou plusieurs activités enzymatiques est ajouté, - suivi de l’ajout d’une composition comprenant une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences 1 à 13, ou 1 à 18, - suivi, optionnellement, d’une étape de rinçage et/ou de désinfection. Ce procédé (en une seule étape ou en deux étapes) est particulièrement avantageux lorsque la surface est une ou plusieurs surface(s) interne d’un circuit substantiellement fermé, de préférence un système de tuyauterie ou un fermenteur. Il s’agit de surface d’accès difficile, mais dont les biofilms, lorsqu’ils s’y sont développés, sont bien destructurés grâce à la DNAse selon l’invention. Exemples Deux biofilms différents ont été testés, de manière à rencontrer une diversité de microorganismes : un biofilm constitué de Lactococcus lactis et un biofilm constitué de Pseudomonas fluorescens. Ces biofilms ont été générés par application des suspensions bactériennes sur gélose à 37°C dans des plaques multipuits (24 puits), pendant 48h (Pseudomonas) ou 24h (Lactococcus). La quantification des microorganismes se fait par spectrométrie, ici à 590 nm (570 nm est également OK) suite à une coloration au « Crystal Violet ». Différents conditions sont prévues par plaque, ce qui est schématisé dans le Tableau 1 ci-dessous :
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Tableau 1 : aperçu des différentes conditions pour les tests. Chaque condition est donc en triple. Les bactéries sont ensemencées dans tous les puits, sauf pour les « témoins négatifs ». Toutes les solutions sont stériles et elles sont ajoutées très délicatement pour ne pas causer de perturbations mécaniques aux biofilms. Les puits des conditions « Témoin positif » et « Témoin négatif » ont été incubés avec 1 ml de sérum physiologique. Les autres puits ont été incubés pendant 30 minutes à 45°C avec 1 ml des solutions (les pourcentages ci-dessous sont en poids :volume) suivantes : Biorem-CIP (Realco) : 1% ; Denarase et DNAse : 0,01% des solutions enzymatiques, de manière à assurer une activité normalisée ; Biorem A1 +10 : les solutions vendues par Realco, diluées à 0,25% (A1) et 0,05% (Biorem 10). Ces solutions comprennent des détergents/agents tensioactifs (>1% de C6 alkyl-glucoside), séquestrants (un phosphonate ; > 15%), et plusieurs activités enzymatiques, dont une protéase, une amylase et une laccase. Biorem CIP contient également des détergents/tensioactifs (>1% de C6 alkyl-glucoside), des séquestrants (>1% de citrate de sodium), et un agent dispersant et plusieurs activités enzymatiques, dont une protéase, une amylase et une laccase. La composition a été appliquée à 1%. Les composés Biorem sont également décrits, par exemple dans la demande de brevet WO2012048758A1 ainsi que dans les brevets correspondants. Ensuite les puits sont délicatement vidés en prenant soin de ne retirer ni les biofilms ni leurs fragments. Après un rinçage à l’eau physiologique, la plaque contenant les biofilms est séchée à l’étuve pendant une heure à 45°C. Une fois le biofilm séché, le Crystal violet (0,1%) est ajouté pour une incubation de 15 minutes à température ambiante qui est suivie de trois rinçages à l’eau distillée. Enfin, les puits sont remplis d’acide acétique à 44% pour une incubation d’une heure à température ambiante. La mesure d’absorbance à 590 nm peut désormais être effectuée. Si les concentrations en Crystal violet sont trop importantes et que le spectrophotomètre sature alors une dilution par dix est réalisée. Les résultats pour Lactococcus lactis sont repris dans le Tableau 2 ci-dessous :
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Tableau 2 : efficacité des différentes nucléases pour la destruction des biofilms constitués de Lactococcus lactis et synergie avec une composition enzymatique. Les inventeurs ont testé en outre, dans une autre série d’expériences, l’effet de la DNAse seule ou de la Denarase seule, et ont observé une très bonne efficacité de la DNAse seule sur Lactococcus lactis, qui est encore augmentée d’environ 20% par le Biorem, alors que la Denarase seule n’a qu’une activité marginale. Les résultats pour Pseudomonas fluorescens sont repris dans le Tableau 3 ci-dessous :
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Tableau 3 : efficacité des différentes nucléases pour la destruction des biofilms constitués de Pseudomonas fluorescens et synergie avec une composition enzymatique. Comme pour L. lactis, les inventeurs ont testé dans une seconde série d’expériences l’effet de la DNAse seule et ont observé une forte activité de la DNAse seule, qui est quelque peu augmentée par le Biorem. De ceci, les inventeurs concluent que la DNAse de l’invention est clairement supérieure, surtout en synergie avec les conditions moins intenses du Biorem A1+10, par rapport au Biorem CIP. De manière avantageuse, pour le Lactococcus lactis, où l’efficacité du Biorem CIP est un peu moins marquée, la synergie avec la DNAse est mieux mise en évidence. Une autre série d’expériences a été pratiquée en synergie avec d’autres composition enzymatiques (Enzimed Prevent, qui comprend une protéase, une cellulase, une amylase et une mannanase ; les 2 premières colonnes des tableaux ci-dessous, sans ou avec la DNAse de la présente invention), et une comparaison a été réalisée avec d’autres compositions commerciales : des compositions détergentes alcalines avec une activité protéase (3° colonne ; DAP), soit un cocktail dégraissant enzymatique, deux formulations commerciales distinctes (4° et 5° colonne ; DE1 et DE2), un détergent désinfectant multienzymatique contenant un ammonium quaternaire (6° colonne ; DMQ) ou une composition de désinfection non- enzymatique des endoscopes (7° colonne ; DME). Les compositions ont été testées à une concentration de 0,5%. Le biofilm de l’espèce à tester est formé dans une plaque 96 puits. Les détergents enzymatiques sont ensuite dilués à leur concentration d’usage dans de l’eau de dureté standard (eau déminéralisée) et incubée sur le biofilm pendant 1h à 37°C. La quantité de biomasse restante après traitement et lavage du biofilm est ensuite évaluée par une coloration au cristal violet (solution 2% de sigma). Ce test est réalisé sur des souches de référence en plaques de 96 puits, à savoir : S. aureus ATCC33591 : 24h biofilm (TGN) E. coli ATCC25922: 48h biofilm ( LB) P. aeruginosa ATCC27853 et PAO1: 48h biofilm (TGN) Solutions: TGN (TSB+1% glucose+2% NaCl) LB (pour E.coli) Eau « distillée » : stérilisée par filtration (0,22 micron), contenant au final 1.25 mM MgCl2, 2.5 mM CaCl2, 3.33 mM NaHCO3. Cristal violet à 2% (Cristal violet solution, Sigma-Aldrich, ref : HT90132-1L) Acide acétique 66% (acid Acétique glacial 100%, ref : K48283163635, Millipore) Boites de Tryptic soy agar (TSA ; BD benelux – ref 254086) Les solutions ont été préchauffées à 37°C, de manière à éviter des chocs thermiques aux biofilms. Méthode : J0 : Lancer une culture « overnight ».5ml TGN + 20 µl des bactéries. Incuber 18H a 37°C sous agitation lente, 130rpm J1 : Préparation Ajouter 200 ml de l’inoculum (DO 0,05) dans chaque puit d’une plaque 96-puit en suivant le plan de plaque (VWR). Faire un test de non-contamination de la préculture liquide Strier la preculture sur une boite TSA. Incuber toute la nuit @37°C Le lendemain, s’assurer qu’il n’y a pas de contamination. Croissance du biofilm : Pour S. aureus 24h @37°C Incuber la plaque à 37°C pendant 24h dans une boite fermée afin d’éviter l’évaporation. Noter le temps pour avoir un biofilm de 24h exactement. Pour E. coli : 48h avec changement du milieu après 24h @37°C: - Incuber la plaque à 37°C pendant 24h dans une boite fermée afin d’éviter l’évaporation (LB pas TGN). - Retirer délicatement le milieu par pipetage - Rajouter 200 µl de LB préchauffé - Incuber pour 24h de plus @37°C dans une boite fermée afin d’éviter l’évaporation. Pour P. aeruginosa : 48h @37°C - Incuber la plaque à 37°C pendant 48h dans une boite fermée afin d’éviter l’évaporation. Noter bien le temps pour avoir un biofilm de 48h exactement. J2 : Apres croissance du biofilm Vider le milieu de culture des plaques de biofilm par aspiration, en évitant de toucher le biofilm Rincer les plaques 1 X avec du PBS stérile préchauffé (retirer le PBS après 30 sec) Traitement enzymatique : - Préparer les solutions enzymatiques aux concentrations voulues selon le protocole de préparation annexe - Ajouter 230 µl des solutions enzymatiques dans des plaques 96- puits vides selon le plan de plaque - Chauffer ces plaques dans un bain-marie à 37°C ou dans l’étuve pendant 15 min - Transférer 200 µl d’enzymes chauffées dans les puits les plaques 96 puits comprenant les biofilms en pipetant horizontalement - Incuber les plaques à 37°C pendant 1h - Vider les enzymes des plaques traitées par aspiration - Rincer les plaques 2X avec du PBS stérile préchauffé, entre chaque étape, retirer le PBS par aspiration Coloration de la biomasse au cristal violet : - Sécher les plaques au four à 60°C pendant une nuit afin de fixer le biofilm - Ajouter 200 ml de solution de cristal violet 2% dans les plaques (dont le contrôle négatif) - Incuber les plaques à température ambiante pendant 15 min - Vider les plaques et les rincer au moins 5X à l’eau distillée - Égoutter les plaques pendant quelques minutes afin d’éliminer l’eau de rinçage des puits - Ajouter 200 µl d’acide acétique 66% dans les plaques (dont le contrôle négatif) - Incuber les plaques à température ambiante pendant au moins 1h - Mesurer les valeurs d’absorbance au spectramax (570nm) et réaliser des dilutions ds de l’acide acétique si certaines valeurs de la plaque sont > 2
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Expérience 1
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Expérience 2
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5
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Ainsi, le produit Enzimed Prevent seul est efficace de manière constante contre E. coli et P. aeurginosa, mais son efficacité contre S. aureus est variable. Cependant, cette composition Enzimed enrichie avec la DNAse de la présente invention montre une activité accrue systématiquement, et constante, même contre S. aureus. Les autres compositions nettoyantes ou même désinfectantes sont moins efficaces et parfois même non efficace du tout sur les biofilms testés.

Claims

REVENDICATIONS 1. Une composition liquide pour la prévention ou l’élimination d’un biofilm, comprenant un ou plusieurs agent(s) tensioactif(s), un ou plusieurs agent(s) séquestrant(s) et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO :13. 2. La composition selon la revendication 1 dans laquelle la DNAse possède au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 13. 3. La composition selon la revendication 1 ou 2 comprenant en outre une ou plusieurs activité(s) enzymatiques choisies parmi une protéase, une laccase, une amylase, une lipase, une cellulase, une mannanase, une activité β-1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B) et un mélange de celles-ci, de préférence une protéase et/ou β- 1,6-N-acetylhexosaminidase (Dispersine B). 4. La composition selon une quelconque des revendications précédentes dans laquelle le ou les agent(s) séquestrants est (sont) choisis dans le groupe constitué du citrate, de la carboxyméthylinuline, d’un phosphate, d’un phosphonate, le Glutamate et diacétate tétrasodique (GLDA), le diacétate de méthylglycine trisodique (MGDA), l’iminodisuccinate de sodium (IDS), un gluconate et des mélanges de ceux-ci. 5. La composition selon une quelconque des revendications précédentes comprenant en outre du glycérol et/ou du monopropylène glycol, de préférence entre 5 et 30% (poids :volume). 6. La composition selon une quelconque des revendications précédentes comprenant en outre un agent conservateur, de préférence un isothiazolinone tel que la Benzisothiazolinone, ou un phénoxyéthanol. 7. La composition selon une quelconque des revendications précédentes comprenant au moins 7 % en eau (poids :volume). 8. La composition selon une quelconque des revendications précédentes comprenant au moins 60% en eau (poids :volume), de préférence ladite composition comprenant en outre la β-1,6-N- acetylhexosaminidase (Dispersine B). 9. La composition selon une quelconque des revendications précédentes comprenant au moins 90% en eau (poids :volume) et un tensioactif moussant. 10. Une composition liquide comprenant de la β-1,6-N- acetylhexosaminidase (Dispersine B) et une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 13. 11. Utilisation de la composition selon une quelconque des revendications précédentes pour l’élimination d’un biofilm comprenant une bactérie lactique choisie parmi Lacobacillus sp, Pediococcus sp, Lactococcus sp. Streptococcus sp, Teragenococcus sp, Leuconostoc sp, Oenococcus sp, Bifidobacterium sp, et/ou Listeria monocytogenes, Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus cereus, Bacillus subtilis, et/ou Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis ou Clostridium sp. 12. Un procédé pour l’élimination d’un biofilm sur une surface comprenant l’application sur ladite surface de la composition liquide selon une quelconque des revendications précédentes 1 à 9. 13. Un procédé pour l’élimination d’un biofilm sur une surface, dans lequel - une solution comprenant un ou plusieurs détergents et une ou plusieurs activités enzymatiques est ajoutée, - suivi de l’ajout d’une composition comprenant une phosphodiestérase ayant une activité désoxyribonucléase (DNAse), ladite DNAse étant une ou plusieurs DNAse(s) de type HNH et/ou possédant au moins 95% d’identité avec l’une des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 13, - suivi, optionnellement, d’une étape de rinçage et/ou de désinfection. 14. Le procédé selon la revendication 12 ou 13, dans lequel la surface est une ou plusieurs surface(s) interne d’un circuit substantiellement fermé, de préférence un système de tuyauterie ou un fermenteur.
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