WO2023033022A1 - 脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬 - Google Patents

脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬 Download PDF

Info

Publication number
WO2023033022A1
WO2023033022A1 PCT/JP2022/032709 JP2022032709W WO2023033022A1 WO 2023033022 A1 WO2023033022 A1 WO 2023033022A1 JP 2022032709 W JP2022032709 W JP 2022032709W WO 2023033022 A1 WO2023033022 A1 WO 2023033022A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
antibody
complex
group
chelating agent
amino acid
Prior art date
Application number
PCT/JP2022/032709
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
聡 岸本
拓也 武田
雄大 成田
稔 河谷
彰宏 井澤
勇太 垂水
Original Assignee
日本メジフィジックス株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日本メジフィジックス株式会社 filed Critical 日本メジフィジックス株式会社
Priority to US18/688,001 priority Critical patent/US20240316228A1/en
Priority to JP2023545630A priority patent/JPWO2023033022A1/ja
Priority to CN202280071610.3A priority patent/CN118159305A/zh
Priority to EP22864604.8A priority patent/EP4397320A1/en
Publication of WO2023033022A1 publication Critical patent/WO2023033022A1/ja

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04—Organic compounds
    • A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
    • A61K51/1045—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04—Organic compounds
    • A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
    • A61K51/1093—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody conjugates with carriers being antibodies
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
    • A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
    • A61K51/04—Organic compounds
    • A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
    • A61K51/1093—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody conjugates with carriers being antibodies
    • A61K51/1096—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody conjugates with carriers being antibodies radioimmunotoxins, i.e. conjugates being structurally as defined in A61K51/1093, and including a radioactive nucleus for use in radiotherapeutic applications
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D403/00—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00
    • C07D403/02—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings
    • C07D403/12—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings linked by a chain containing hetero atoms as chain links
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2863—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against receptors for growth factors, growth regulators
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/40—Immunoglobulins specific features characterized by post-translational modification
    • C07K2317/41—Glycosylation, sialylation, or fucosylation
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/52—Constant or Fc region; Isotype

Definitions

  • the present invention relates to a conjugate of a deglycosylated antibody and a radionuclide, a radiopharmaceutical containing the same, and a method for producing them.
  • Antibodies have long been used to detect target molecules in various research and development activities, and have become extremely important in industrial terms as detection reagents and diagnostic agents. Antibodies are also attracting attention as drugs for treating diseases due to their high specificity for target molecules.
  • Antibodies have the property of accumulating in cell endothelial tissue through interaction with Fc ⁇ R expressed by immune cells. Therefore, for the purpose of improving the pharmacokinetics of antibodies, a technique has been reported in which antibodies obtained by cleaving the sugar chains of antibodies (hereinafter simply referred to as deglycosylated antibodies) are radiolabeled (Non-Patent Document 1). In addition, US Pat. No. 6,200,000 discloses PET experiments with radiolabeled ( 89 Zr) deglycosylated antibodies.
  • CCAP antibody-modified peptides
  • affinity peptide has been reported (Patent Document 2), and the present applicant introduced an amino acid capable of binding to a cross-linking agent into the CCAP peptide, and the binding of the amino acid and the cross-linking agent to the cross-linking agent.
  • Techniques for modifying antibodies with labeled substances such as complexes containing bound radioisotopes and drugs such as anticancer drugs have been reported (Patent Documents 3 and 4).
  • the problem with RI-labeled antibodies is the accumulation in normal tissues and the reduction of tumor accumulation.
  • the 89 Zr-labeled deglycosylated antibody of Non-Patent Document 1 and Patent Document 1 poses a problem of controlling the number of modifications. Also, no attention has been paid to radiotherapy with deglycosylated antibodies. Additionally, it is not known whether deglycosylated antibodies can be modified with CCAP peptides. Therefore, the problem is to provide an RI-labeled antibody that reduces accumulation in normal tissues and improves tumor accumulation.
  • One aspect of the present invention is a conjugate of a deglycosylated antibody and a chelating agent, wherein a radiometal nuclide is chelated to the chelating agent, and the chelating agent is linked to the Fc region of said antibody via a linker (L). is a complex that is site-specifically modified.
  • Another aspect of the invention is a conjugate of a deglycosylated antibody and a chelating agent, wherein the chelating agent is chelated with a radiometal nuclide, and wherein the radiometal nuclide is an alpha-emitting nuclide. be.
  • Another aspect of the present invention is a method for producing the composite.
  • Another aspect of the present invention is a radiopharmaceutical containing the complex as an active ingredient.
  • connection means both direct and indirect connection, unless otherwise specified.
  • an RI-labeled antibody with reduced accumulation in normal tissues and improved tumor accumulation is provided.
  • Example 1 is a graph showing the results of evaluating the binding activity to HER2 of radioconjugates prepared and formulated according to the descriptions in Example 1 (PNGase F-treated Trastuzumab) and Comparative Example 1 (Trastuzumab).
  • each tissue blood, heart , lung , It is a graph showing the results of confirming the distribution to the liver, spleen, pancreas, stomach, small intestine, large intestine, kidney, bladder, thigh muscle, thigh bone, skin, tumor, and rest of the body.
  • Example 1 89 Zr-CCAP-Trastuzumab-PNGaseF
  • Comparative Example 1 89 Zr-CCAP-Trastuzumab
  • Example 1 89 Zr-CCAP-Trastuzumab-PNGaseF
  • Comparative Example 1 89 Zr-CCAP-Trastuzumab
  • Example 1 is a graph showing the results of evaluating the antigen-binding activity of radioconjugates produced as described in Example 2 (PNGase F-treated Trastuzumab) and Comparative Example 2 (Trastuzumab).
  • 3 is a graph showing the number of surviving tumor-bearing mice over time in the group ( 225 Ac-Trastuzumab_10 KBq), the radioconjugate (Comparative Example 2) 5 kBq administration group ( 225 Ac-Trastuzumab_5 KBq), and the vehicle group.
  • 4 is a graph showing the results of evaluating the antigen-binding activity of radioconjugates produced as described in Example 3 (PNGase F-treated Cetuximab) and Comparative Example 3 (Cetuximab).
  • Example 3 ( 89 Zr-CCAP-Cetuximab-PNGaseF) and Comparative Example 3 ( 89 Zr-CCAP-Cetuximab) produced radioconjugates in vivo in each tissue (blood, heart, lung, spleen, pancreas, It is a graph showing the results of confirming the distribution to the stomach, small intestine, large intestine, muscle, bone, skin, tumor, kidney, liver, and rest of the body. 2 is a graph showing the results of confirming the in vivo distribution of radioconjugates produced according to the descriptions of Example 3 and Comparative Example 3 to each tissue (blood, liver, spleen, tumor).
  • Radioactive Complex 1 The present invention provides a conjugate of a radionuclide-chelated chelating agent and a deglycosylated antibody, wherein the chelating agent site-specifically modifies the Fc region of the antibody via a linker.
  • a conjugate hereinafter also referred to as a radioconjugate of the present invention, or simply a conjugate is provided.
  • Radiometal nuclide contained in the radioactive complex of the present invention is an ⁇ -ray-emitting radionuclide, a ⁇ -ray-emitting radionuclide, a positron-emitting radionuclide, or a ⁇ -ray-emitting radionuclide. It is a radionuclide.
  • the radioconjugate of the present invention is used for cancer therapy, it is preferable to use an ⁇ -ray-emitting radionuclide or a ⁇ -ray-emitting radionuclide.
  • radioconjugate of the present invention When the radioconjugate of the present invention is used for cancer diagnosis or detection, it is preferable to use a positron-emitting radionuclide or a ⁇ -ray-emitting radionuclide.
  • Bi-212, Bi-213, Ac-225, and Th-227 are exemplified as radionuclides that emit alpha rays.
  • radionuclides that emit ⁇ rays Co-60, Fe-59, Cu-64, Cu-67, Sr-89, Y-90, Tc-99m, Ru-103, Sm-153, Dy-165 , Ho-166, Lu-177, Re-186, Re-188, Au-198, Hg-203, Bi-212, Bi-213 or Pb-212.
  • radionuclides that emit positrons include Cu-64, Ga-68, Y-86, and Zr-89. Further, Tc-99m or In-111 is exemplified as a radionuclide that emits gamma rays. More preferably, the radiometal nuclide contained in the radioconjugate 1 of the present invention is Ac-225, Y-90, Lu-177 or Zr-89. It is particularly preferred that the radiometal nuclide contained in the radioconjugate 1 of the present invention is Ac-225 or Zr-89.
  • the antibody contained in the conjugate of the present invention is not particularly limited as long as it is a sugar chain-cleaved antibody, that is, a deglycosylated antibody.
  • the antibodies used in the present invention may be polyclonal antibodies or monoclonal antibodies, preferably monoclonal antibodies.
  • the origin of the antibody is not particularly limited, but examples include non-human animal antibodies, non-human mammal antibodies, and human antibodies, preferably humans, rats, mice, and rabbits.
  • Antibodies derived from species other than humans are preferably chimerized or humanized using well-known techniques, but the antibodies used in the present invention may be chimeric antibodies, humanized antibodies, or human antibodies.
  • Antibodies used in the present invention may also be bispecific antibodies. More preferably, the deglycosylated antibody used in the conjugates of the invention is a human IgG antibody.
  • a human IgG antibody can be, for example, IgG1, IgG2, IgG3, or IgG4.
  • a humanized antibody has an N-linked sugar chain at the Asn residue (EU numbering 297th residue) of the Fc portion of the heavy chain.
  • an N-linked sugar chain or an O-linked sugar chain may be bound to an amino acid residue other than Asn297.
  • the deglycosylated antibody used in the present invention is one in which these sugar chains are cleaved, preferably in which the N-linked sugar chain is cleaved, and more preferably Asn residue (residue 297).
  • the N-linked sugar chain of is cleaved.
  • Deglycosylation of antibodies can be performed by methods commonly used in the art, and can be chemically or enzymatically. Chemical deglycosylation is described by Hakimuddin et al. , 1987, Arch. Biochem. Biophys. 259:52 and Edge et al. , 1981, Anal. Biochem. 118:131 can be referred to. Enzymatic cleavage is described by Thotakura et al. , 1987, Meth. Enzymol. 138:350, and various glycolytic enzymes can be used. The origin of the enzyme is not particularly limited, but examples include those derived from plants, bacteria or yeast.
  • PNGaseF PNGaseA
  • PNGaseA Peptide-N 4 -(N-acetyl- ⁇ -glucosaminyl)-asparagine amidase
  • PNGaseF PNGaseA
  • PNGaseA Peptide-N 4 -(N-acetyl- ⁇ -glucosaminyl)-asparagine amidase
  • endoglycosidases include endo- ⁇ -N-acetylglucosaminidase D (endoglycosidase D, Endo-D, endo-D), endo- ⁇ -N-acetylglucosaminidase H (endoglycosidase H, Endo-H , endo-H), endoglycosidase S (EndoS, Endo-S, endo-S), endo- ⁇ -N-acetylglucosaminidase M (endoglycosidase M, Endo-M, endo-M), endo- ⁇ -N- Acetylglucosaminidase LL (endoglycosidase LL, EndoLL, Endo-LL, endo-LL), endo- ⁇ -N-acetylglucosaminidase F1 (endoglycosidase F1, Endo-F1, endo-F1), endo- ⁇ -N-
  • antibodies used in the complex of the present invention include anti-HER2 antibodies (e.g., trastuzumab, pertuzumab), anti-EGFR antibodies (e.g., cetuximab, panitumumab), anti-CD20 antibodies (e.g., rituximab, ibritumomab, ocrelizumab). is mentioned. Both can be prepared by a method known per se or are commercially available.
  • the antibody used in the complex of the present invention may be the antibody described in WO2017/141604 or WO2021/075545.
  • the chelating agent is not particularly limited as long as it has a site in its structure to which a radiometal nuclide is coordinated.
  • Chelating agents such as CB-TE2A (1,4,8,11-Tetraazabicyclo[6.6.2]hexadecane-4,11-diacetic acid), CDTA (Cyclohexane-trans-1,2-diamine tetra-acetic acid) , CDTPA (4-cyano-4-[[(dodecylthio)thioxomethyl]thio]-pentanoic acid), DOTA (1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid), DOTMA (( 1R,4R,7R,10R)- ⁇ , ⁇ ', ⁇ ′′, ⁇ ′′′-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid), DOTMA (( 1
  • R 11 , R 12 , R 13 and R 14 are each independently —(CH 2 ) p COOH, —(CH 2 ) p C 5 H 5 N, —(CH 2 ) a group consisting of p PO 3 H 2 , —(CH 2 ) p CONH 2 or —(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, R 15 is a hydrogen atom, and p is an integer of 0 or more and 3 or less; be.
  • the compound represented by formula (A) preferably includes a structure derived from 1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid (DOTA) or a derivative thereof.
  • DOTA 1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid
  • DOTMA ((1R,4R,7R,10R)- ⁇ , ⁇ ', ⁇ ”, ⁇ '”-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)
  • DOTAM (1,4,7,10-tetrakis(carbamoylmethyl)-1 ,4,7,10-tetraazacyclododecane
  • DOTPA 1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrapropionic acid), 1,4,7,10-tetrakis(pyr
  • the chelating agent may be linked to the antibody via a linker (L).
  • Linkers (L) include substituted or unsubstituted alkyl groups, substituted or unsubstituted heteroalkyl groups, polyethylene glycol (PEG) groups, peptides, sugar chains, disulfide groups and combinations thereof.
  • the chelating agent and linker (L) are preferably linked by a covalent bond. Therefore, in the conjugate of the present invention, some groups in the compound of the chelating agent described above may be substituted with a group that forms a covalent bond with the linker (L).
  • R 12 or R 15 may be substituted with a group that forms a covalent bond with the linker (L).
  • R 15 is a hydrogen atom when R 12 is substituted with a group that forms a covalent bond with the linker (L), and R 12 is —(CH 2 ) p COOH, —(CH 2 ) p C 5 H 5 N, —(CH 2 ) p PO 3 H 2 , —(CH 2 ) p CONH 2 or —(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, when R 15 is a linker (L) and It is substituted with a group that forms a covalent bond.
  • the link between the chelating agent and the linker (L) is, for example, an N-hydroxysuccinimide ester (NHS) group of formula (A-7) or (A-8) below, or 2, of formula (A-9) below.
  • NHS N-hydroxysuccinimide ester
  • a chelating agent is site-specifically introduced into the Fc region (constant region) of the antibody. More preferably, complex 1 of the present invention has one or two chelating agents per molecule of antibody.
  • the deglycosylated antibody used in the present invention is site-specifically modified with an antibody-modified peptide, preferably in the Fc region, in which case the chelate used in the present invention
  • the agent contains a peptide represented by the following formula (i) and consisting of 13 or more and 17 or less amino acid residues (hereinafter also referred to as "antibody-modified peptide") via a linker (L), and a cross-linking agent
  • a peptide formed by a cross-linking reaction between an antibody-modified peptide modified with and an antibody can be used.
  • the left side of the amino acid sequence on the page indicates the N-terminal side
  • the right side of the amino acid sequence on the page indicates the C-terminal side.
  • the position at which the chelating agent and the antibody-modified peptide are linked is not particularly limited, for example, the N-terminus or C-terminus of the antibody-modified peptide, preferably the N-terminus. They can be directly or indirectly linked.
  • the C-terminus of the antibody-modified peptide may be modified such as amidation in order to improve its stability.
  • Xa, Xb, Xc and Xd each represent a consecutive number of X, b consecutive number of X, c consecutive number of X, and d consecutive number of X;
  • X is an amino acid residue having neither a thiol group nor a haloacetyl group in its side chain;
  • a, b, c and d are each independently an integer of 1 or more and 5 or less and satisfy a + b + c + d ⁇ 14
  • Xaa1 and Xaa3 are each independently represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in its side chain, or One represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in the side chain, the other represents an amino acid residue derived from an amino acid having a haloacetyl group in the side chain
  • Amino acid residues that can be included in X in the above formula (i) include, for example, glycine, alanine, phenylalanine, proline, asparagine, aspartic acid, glutamic acid, arginine, histidine, serine, threonine, tyrosine, derived from amino acids such as methionine.
  • X may be an amino acid residue consisting of the same type of amino acid, or an amino acid residue consisting of different types of amino acids.
  • a, b, c, and d in formula (i) are not particularly limited as long as they are numbers within the ranges described above, but from the viewpoint of binding stability between the peptide and the antibody, a is b is preferably an integer of 1 to 3; c is preferably an integer of 3 to 5; and d is preferably an integer of 1 to 3.
  • Xaa1 and Xaa3 are amino acid residues derived from amino acids having thiol groups in their side chains, and the amino acids may be the same or different.
  • amino acids having a thiol group in their side chains include cysteine and homocysteine.
  • Such amino acid residues are preferably linked by a disulfide bond, or a sulfide group is linked via a linker represented by the following formula (4).
  • the wavy line portion indicates the bonding portion with the sulfide group.
  • Xaa1 and Xaa3 are, in place of the above combinations, one of Xaa1 and Xaa3 an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in the side chain, and the other an amino acid derived from an amino acid having a haloacetyl group in the side chain It may be a residue. They are linked via a thioether bond. A haloacetyl group is terminated with a halogen such as iodine, and reacts with a thiol group on the other side chain to eliminate the halogen and form a thioether bond.
  • a halogen such as iodine
  • Specific amino acid sequences of antibody-modified peptides represented by formula (i) include, for example, peptides described in WO2016/186206, WO2017/217347 and WO2018/230257. , these can also be used.
  • the amino acid sequence of the antibody-modified peptide preferably has any one of the following sequences (1) to (18), and the following sequences (1), (2), (13) or (14) is more preferred.
  • (Xaa2) represents a lysine residue, a cysteine residue, an aspartic acid residue, a glutamic acid residue, 2-aminosuberic acid, or diaminopropionic acid
  • (Xaa1) and (Xaa3) both indicate homocysteine residues. Homocysteines may form disulfide bonds with each other.
  • amino acids other than (Xaa1), (Xaa2) and (Xaa3) are represented by single-letter abbreviations.
  • Linker (L) is not particularly limited as long as it can link the chelating agent and the peptide in the radioconjugate of the present invention. Examples include substituted or unsubstituted alkyl groups, substituted or unsubstituted heteroalkyl groups, polyethylene glycol (PEG) groups, peptides, sugar chains, disulfide groups, amide groups, and combinations thereof.
  • the linker (L) is a general term for linkers used to connect a peptide-modified deglycosylated antibody and a chelating agent, and antibody-modified linkers (L 1 ) and chelate linkers (L 2 ) are It is a term that includes The antibody-modified linker (L 1 ), which will be described in detail later, is introduced to the N-terminal side of the peptide described in (1-4), and the chelate linker (L 2 ) will also be described in detail later. It is introduced into the functional group of the chelating agent described in (1-3).
  • the linker (L) used in the present invention may contain a binding site formed by a click reaction.
  • the antibody-modified linker (L 1 ) and the chelate linker (L 2 ) are bound by a click reaction.
  • the binding site formed by the click reaction is preferably a triazole skeleton-containing structure represented by the following formula (10a) or (10b) or a pyridazine skeleton-containing structure represented by the following formula (10c). . Since Formula (10a) and Formula (10b) are in an isomer relationship, they may be contained in an arbitrary ratio.
  • R1A represents the linking site with the chelating agent
  • R2A represents the linking site with the antibody-modified peptide
  • one of R 3A and R 4A represents a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group or a pyridyl group, the other represents a linking site with a chelating agent
  • R 5A is a linking site with an antibody-modified peptide.
  • the peptide is linked via an antibody-modified linker (L 1 ) to the antibody-modified peptide linking site, and the chelating agent linking site is A chelating agent is linked via a chelate linker (L 2 ).
  • the antibody is site-specifically modified with a peptide, and the peptide and chelating agent are linked via a linker (L). is a compound of the chelating agent.
  • the method for producing a conjugate of the present invention comprises a conjugation step of conjugating a chelating agent and an antibody, and a complex forming step of forming a complex between a radionuclide and a chelating agent. It can be manufactured from two steps.
  • the conjugation step may be before the complex formation step or after the complex formation step.
  • various site-specific chemical modification methods for the antibody can be used.
  • a chelating agent or linker having the antibody-modified peptide shown in (1-4) described above may be added to the Fc region of the antibody.
  • a method of site-specific modification is mentioned.
  • the chelating agent is allowed to chelate (complex) the radiometal nuclide.
  • the radiometal nuclide used here is preferably used in an ionizable form, more preferably in an ionic form.
  • the order of addition of the radiometal nuclide to the chelating agent does not matter as long as complex formation with the radiometal nuclide is possible.
  • a solution in which radioactive metal ions are dissolved in a solvent mainly composed of water can be used as a radionuclide.
  • the resulting complex may be purified using filtration filters, membrane filters, columns packed with various packing materials, chromatography, and the like.
  • the conjugation step is preferably performed after the complex formation step.
  • a complex is formed between a chelating agent having a first atomic group capable of a click reaction with a radionuclide as a substituent for enabling conjugation with an antibody. .
  • the antibody-modified peptide represented by the formula (i) described above and an antibody-modified linker (L 1 ) having a click-reactive second atomic group are used to convert the Fc region to a site A click reaction is performed between the specifically modified peptide-modified antibody and the complexed chelating agent obtained in step (A) to obtain the conjugate of the invention. Steps (A) and (B) are described in detail below.
  • the combination of the first atomic group and the second atomic group capable of a click reaction an appropriate one is selected according to the type of click reaction.
  • a combination of a tetrazine and an alkene and the like can be mentioned.
  • the first atomic group has one of the above combinations of atomic groups
  • the second atomic group has one of the above combinations of atomic groups different from the first atomic group.
  • the chelate linker (L 2 ) is an alkyne and the antibody modification linker (L 1 ) is an azide, or the chelate linker ( It is preferred that L 2 ) is a 1,2,4,5-tetrazine and the antibody-modified linker (L 1 ) is an alkene.
  • Specific examples of the click reaction by such a combination of atomic groups include Huisgen cycloaddition reaction, inverse electron demand type Diels-Alder reaction, and the like.
  • DBCO dibenzylcyclooctyne
  • Combinations with atomic groups (formula (2b)) containing trans-cyclooctene (TCO) can be mentioned as diatomic alkenes.
  • a combination of formula (1a) and formula (2a) is preferred.
  • R1 represents the linking site with the chelating agent
  • R2 represents the linking site with the antibody-modified peptide in the antibody.
  • R 3 and R 4 represents a linking site with either a chelating agent or an antibody-modified peptide in an antibody, and the other represents a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group, or a pyridyl group.
  • R 5 represents the linking site with either the chelating agent or the antibody-modified peptide in the antibody, depending on R 3 or R 4.
  • DBCO-C6-Acid Dibenzylcyclooctyne-Amine, Dibenzylcyclooctyne Maleimide
  • DBCO-PEG acid DBCO-PEG-NHS ester
  • DBCO-PEG-Alcohol DBCO-PEG-amine
  • DBCO-PEG-NH- Boc Carboxyrhodamine-PEG-DBCO
  • Sulforhodamine-PEG-DBCO TAMRA-PEG-DBCO
  • DBCO-PEG-Biotin DBCO-PEG-DBCO
  • DBCO-PEG-Maleimide TCO-PEG-DBCO
  • TCO-PEG-DBCO DBCO-mPEG, etc.
  • Dibenzylcyclooc Dibenzylcyclooctyne-Amine
  • step (A) more preferably, a chelating agent having a structure represented by formula (ii) below is used.
  • AB-C (ii) In formula (ii), A is a chelate moiety represented by formula (iia) below.
  • Ra, Rb and Rc are independently —(CH 2 ) p COOH, —(CH 2 ) p C 5 H 5 N, —(CH 2 ) p PO 3 H 2 , —( CH 2 ) p CONH 2 or a group consisting of —(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, p is an integer of 0 or more and 3 or less, and either Rd or Re is a bonding site with B ( *) and the other is a hydrogen atom, or -(CH 2 ) p COOH, -(CH 2 ) p C 5 H 5 N, -(CH 2 ) p PO 3 H 2 , -(CH 2 ) p CONH 2 or a group consisting of —(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, where p is an integer of 0 or more and 3 or less.
  • B is represented by the following formula (iib).
  • La and Lb are independently linkers having 1 to 50 carbon atoms including at least an amide bond or a thiourea bond, t is an integer of 0 to 30, and s is 0 or 1, * is the binding site with A, and ** is the binding site with C.
  • C is either an alkyne derivative represented by formula (iic) or a tetrazine derivative represented by formula (iid) below.
  • X is CHRk-** or N-**
  • Rk is independently a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 5 carbon atoms and when X is CHRk-** and Y is CHRk, the Rk moieties may together form a cycloalkyl group
  • Rf, Rg, Rh and Ri are independently a hydrogen atom, a halogen atom, or an alkyl group having 1 to 5 carbon atoms, in which Rf and Rg together or Rh and Ri may together form a hydrocarbon ring
  • ** represents the bonding site with B
  • Rj represents a hydrogen atom, a methyl group, a phenyl group or a pyridyl group.
  • Ra to Rd are -(CH 2 ) p COOH, p is 1, and Re is a binding site to B (*) or a DO3A derivative or DOTAGA in which Ra to Rc are —(CH 2 ) p COOH, p is 1, Rd is a binding site (*) with B, and Re is a hydrogen atom Any of the derivatives are more preferred.
  • B is a binding linker in which La is 1 to 50 carbon atoms including an amide bond or a thiourea bond, s is 0 or 1, and s is 1 when t is an integer of 0 or more and 30 or less
  • Lb is a binding linker having 1 or more and 50 or less carbon atoms containing an amide bond
  • C is an alkyne derivative represented by formula (iic)
  • X is N-**
  • Y is CHRk
  • Rk is a hydrogen atom
  • Rf and Rg together form a benzene ring
  • Rh and Ri together A DO3A-PEGt-DBCO derivative, which forms a benzene ring together and ** is a binding site with B, is even more preferred.
  • B is a binding linker having 1 to 50 carbon atoms in which La is an amide bond or a thiourea bond, s is 0 or 1, and s is 1 , t is an integer of 0 or more and 30 or less, Lb is a binding linker having 1 or more and 50 or less carbon atoms containing an amide bond or a thiourea bond, and C is represented by formula (iic) an alkyne derivative, wherein X is N-**, Y is CHRk, Rk is a hydrogen atom, Rf and Rg together form a benzene ring, and Rh and Ri together form a benzene ring, and ** is the binding site to B, DOTAGA-PEGt-DBCO derivatives are even more preferred.
  • the molar ratio of the chelating agent and the radionuclide is preferably 10/1 or more, more preferably 100/1 or more, further preferably 500/1 or more, and the upper limit is 15000/1, as chelate part/radionuclide.
  • the following is preferable, 10000/1 or less is more preferable, and 7000/1 or less is more preferable. .
  • the complex formation reaction is preferably carried out in a solvent.
  • solvents include water, physiological saline, sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline, trishydroxymethylaminomethane buffer (Tris buffer), 4-( 2-Hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid buffer (HEPES buffer) or buffers such as tetramethylammonium acetate buffer can be used.
  • the liquid volume of the solvent is not particularly limited, but from the viewpoint of practicality in the production process, the lower limit is 0.01 mL or more, preferably 0.1 mL or more, and more preferably 1.0 mL or more at the start of step (A). , More preferably 10 mL or more, still more preferably 100 mL or more, and the upper limit is preferably 1000 mL or less, more preferably 100 mL or less, still more preferably 10 mL or less, and even more preferably 1.0 mL or less. .01 mL or more and 100 mL or less.
  • the lower limit of the concentration of the chelating agent in the reaction solution for the complex formation reaction is preferably 0.001 ⁇ mol/L at the start of step (A) independently from the viewpoint of the yield of the desired chelating agent.
  • the upper limit is preferably 1000 ⁇ mol/L or less, more preferably 100 ⁇ mol/L or less, More preferably, it is 10 ⁇ mol/L or less, for example, a range of 1 ⁇ mol/L or more and 100 ⁇ mol/L or less.
  • the temperature of the complex formation reaction may be, for example, room temperature (25° C.) or may be under heating conditions. , preferably 20°C or higher, more preferably 30°C or higher, still more preferably 35°C or higher, still more preferably 37°C or higher, particularly preferably 45°C or higher, and the upper limit is preferably 150°C or lower, more preferably
  • the temperature is 120° C. or lower, more preferably 100° C. or lower, and even more preferably 90° C. or lower.
  • the lower limit of the reaction time is preferably 5 minutes or longer, more preferably 10 minutes or longer, still more preferably 20 minutes or longer, still more preferably 30 minutes or longer, and particularly preferably 45 minutes or longer, provided that the reaction temperature is as described above.
  • minutes or more, and the upper limit is preferably 180 minutes or less, more preferably 150 minutes or less, still more preferably 120 minutes or less, even more preferably 90 minutes or less, particularly preferably 60 minutes or less, for example, 10 minutes or more.
  • a range of 150 minutes or less is preferable, and a range of 10 minutes or more and 60 minutes or less is more preferable.
  • the antibody used in step (B) uses an antibody-modified linker (L 2 ) having an antibody-modified peptide represented by formula (i) described above and a second atomic group capable of a click reaction, and uses the above "( It is a peptide-modified antibody in which the Fc region (constant region) of the humanized antibody described in detail in the section 1-2) Antibodies is site-specifically modified.
  • Antibody-modified peptides are produced by peptide synthesis methods such as liquid-phase synthesis, solid-phase synthesis, automated peptide synthesis, genetic recombination, and phage display, using a combination of amino acids, whether natural or non-natural. It can be manufactured by providing In synthesizing the peptide, functional groups of amino acids used may be protected as necessary. These can be performed, for example, according to the methods described in WO2017/217347 and WO2018/230257.
  • the antibody-modified linker (L 2 ) may be a combination of an antibody-modified peptide and a linker represented by formula (S1) below. *-((L 1 ) m -Z) k -L 2 -AG 2 (S1) (Wherein, * indicates the binding site with the N-terminus or C-terminus of the peptide, L 1 is a polyethylene glycol (PEG) linker moiety, m is an integer of 1 or more and 50 or less, Z is a second linker moiety that connects (L 1 ) m and L 2 , k is 0 or 1, L2 is the second PEG linker moiety, AG2 is the second atomic group. )
  • PEG polyethylene glycol
  • the structure of Z is not particularly limited as long as it is a linker structure that connects (L 1 ) m and L 2 to each other. be able to.
  • the amino acid sequence contained in Z preferably contains a cysteine residue, and is bound to L2 via a thioether group formed by binding the thiol group of the cysteine residue and the maleimide group. more preferred.
  • the PEG linker moiety that constitutes L2 preferably has a structure represented by formula (P2) below.
  • n is an integer, preferably 1 or more and 50 or less, more preferably 1 or more and 20 or less, still more preferably 2 or more and 10 or less, still more preferably 2 or more and 6 or less.
  • One end of the structure of the PEG linker portion may be modified with a structure derived from a commercially available PEGylation reagent or a structure derived from a reagent commonly used for PEGylation, and is not particularly limited, for example, diglycol Structures derived from acids or derivatives thereof, maleimides or derivatives thereof are exemplified.
  • the method for introducing the second atomic group into the antibody-modified linker (L 2 ) is as follows: After obtaining an antibody-modified peptide having a desired amino acid sequence by the above-described method, the peptide is treated with a solubilizing agent and a reducing agent, and if necessary Introduced by adding an organic solvent solution of an atomic group containing an azide group or trans-cyclooctene (TCO) as a second atomic group to the solution and stirring at room temperature. method.
  • an atomic group containing an azide group As the second atomic group, a commercially available azide group introduction reagent is used to directly introduce an azide group to the N-terminus or C-terminus of the peptide according to a conventional method, or An atomic group containing an azide group can be introduced via a linked linker structure.
  • the azide group-introducing reagent used include silyl azide, phosphate azide, alkylammonium azide, inorganic azide, sulfonyl azide, PEG azide, and the like.
  • TCO when introducing an atomic group containing TCO as the second atomic group, TCO may be introduced directly to the N-terminus or C-terminus of the peptide according to a conventional method using a commercially available click chemistry reagent containing TCO. , or an atomic group containing TCO can be introduced via the linker structure described above.
  • a method of obtaining a peptide-modified antibody by binding an antibody-modified peptide and a deglycosylated antibody is according to the description of WO 2017/217347 pamphlet, for example, the antibody-modified peptide described above, a deglycosylated antibody,
  • the cross-linking agent and optionally the catalyst can be dispersed in a suitable buffer.
  • the above-mentioned thing can be used for a crosslinking agent.
  • the solution containing the deglycosylated antibody is treated with an ultrafiltration filter or the like and dispersed in the buffer solution. Alternatively, it may be performed two or more times and then bound to the antibody-modified peptide.
  • the antibody-modified peptides of the present invention bind to the Fc domain of antibodies, such as IgG.
  • the antibody-modified peptide of the present invention can also be called an IgG-binding peptide.
  • the IgG-binding peptide of the present disclosure is close to a specific region of IgG Fc in Xaa1, that is, the Lys248 or Lys246 residue according to Eu numbering in human IgG Fc, preferably the lysine residue of the Fc region corresponding to the Lys248 residue. do.
  • Xaa1 of the IgG-binding peptide of the present disclosure with a cross-linking agent and cross-linking with IgG, Xaa1 of the IgG-binding peptide can be linked to the lysine residue of the IgG Fc of the present disclosure corresponding to the above-mentioned lysine residue.
  • a crosslinked structure can be site-specifically formed between them.
  • a "cross-linking agent” is a chemical substance for covalently linking the IgG-binding peptide of the present disclosure and IgG Fc.
  • the cross-linking agent of the present disclosure can be appropriately selected by a person skilled in the art, and a desired amino acid residue (e.g., lysine residue, cysteine residue, aspartic acid residue, glutamic acid residue, 2-aminosuberine It can be a compound having at least two sites capable of binding with acids, diaminopropionic acid, arginine residues, etc.).
  • Examples include, but are not limited to, cross-linking agents preferably containing two or more succinimidyl groups such as DSG (disuccinimidyl glutarate), DSS (disuccinimidyl suberate), DMA (dimethyl adipimidate 2HCl, dimethyl adipimidate dihydrochloride), DMP (dimethyl pimelimidate 2HCl, dimethyl pimelimidate dihydrochloride), and DMS (dimethyl suberimidate 2HCl, dimethyl suberimidate dihydrochloride).
  • DSG disuccinimidyl glutarate
  • DSS disuccinimidyl suberate
  • DMA dimethyl adipimidate 2HCl, dimethyl adipimidate dihydrochloride
  • DMP dimethyl pimelimidate 2HCl, dimethyl pimelimidate dihydrochloride
  • DMS dimethyl suberimidate 2HCl, dimethyl suberimidate dihydrochloride
  • Cross-linking agents preferably containing two or more, and DTBP (dimethyl 3,3'-dithiobispropionimidate 2HCl, 3,3'-dithiobispropionimidic acid dimethyl dihydrochloride) and DSP (dithiobis (succinimidyl propionate), dithiobissuccinimide cross-linking agents having an SS bond such as dilpropionic acid).
  • DTBP dimethyl 3,3'-dithiobispropionimidate 2HCl, 3,3'-dithiobispropionimidic acid dimethyl dihydrochloride
  • DSP dithiobis (succinimidyl propionate), dithiobissuccinimide cross-linking agents having an SS bond such as dilpropionic acid).
  • a cross-linking agent containing a succinimidyl group such as DSS or DSG reacts with the side chain of a lysine residue and a primary amine present at the N-terminus of the polypeptide.
  • DSS a succinimidyl group
  • DSG a primary amine present at the N-terminus of the polypeptide.
  • the cross-linking reaction between the IgG-binding peptide and the antibody of the present disclosure can occur site-specifically, particularly between the Xaa1 amino acid residue of the IgG-binding peptide and EU numbering Lys248 or Lys246, preferably Lys248, of human IgG Fc. .
  • the conditions for the mixing step are not particularly limited as long as the conditions are such that a cross-linking reaction occurs between the IgG-binding peptide of the present disclosure and the antibody of the present disclosure.
  • the reaction can be carried out by mixing an IgG-binding peptide of this disclosure and an antibody of this disclosure in an appropriate buffer at room temperature (eg, about 15°C to 30°C).
  • the mixing step may be performed by adding an appropriate amount of a catalyst that promotes the cross-linking reaction, if necessary.
  • a solvent containing at least water is added to dissolve the antibody of the present disclosure.
  • the solvent may be, for example, dimethyl sulfoxide, acetonitrile, physiological saline, sodium acetate buffer, ammonium acetate buffer, phosphate buffer, phosphate buffered saline, Tris buffer, HEPES buffer. , or a buffer such as tetramethylammonium acetate buffer.
  • the pH at 25°C is preferably 4.0 or more and 10.0 or less, more preferably 5.5 or more and 8.5 or less, from the viewpoint of antibody stability.
  • the antibody concentration is preferably 1.0 ⁇ mol/L or more as a lower limit, 1000 ⁇ mol/L or less as an upper limit, and 500 ⁇ mol/L or less as an upper limit.
  • an IgG-binding peptide modified with a cross-linking agent and, if necessary, a catalyst are added, and dispersed at 10° C. or higher and 30° C. or lower.
  • the mixing ratio of the IgG-binding peptide of the present disclosure and the antibody of the present disclosure in the mixing step is not particularly limited.
  • the molar ratio of IgG binding peptides of this disclosure to antibodies of this disclosure can be, for example, 1:1 to 20:1, preferably 2:1 to 20:1 or 5:1 to 10:1.
  • the antibody of the present disclosure and the IgG-binding peptide can be mixed at 0.5 to 2.2, preferably 0.8 to 1.8. .
  • a monovalent modified antibody ie, a complex containing one IgG-binding peptide to the antibody
  • the mixing time (reaction time) in the mixing step is not limited as long as a cross-linking reaction occurs between the IgG-binding peptide of the present disclosure and the antibody of the present disclosure, for example, 1 minute to 5 hours, preferably 10 minutes. can be ⁇ 2 hours.
  • the peptide-modified antibody obtained through the above steps is an antibody in which one molecule of the antibody-modified peptide is bound to one molecule of the deglycosylated antibody (hereinafter referred to as "monovalent antibody”), and one molecule of the deglycosylated antibody. and an antibody to which two molecules of the antibody-modified peptide are bound (hereinafter referred to as "bivalent antibody”) in an arbitrary ratio.
  • monovalent antibody an antibody to which two molecules of the antibody-modified peptide are bound
  • bivalent antibody an antibody to which two molecules of the antibody-modified peptide are bound
  • any of the above-described purification methods may be used for separation and purification.
  • a column filled with a packing material in which a protein such as protein A, protein G, or the antibody-modified peptide described above is bound to a carrier can be used.
  • the shape of the carrier of the filler packed in such a column includes gels (e.g., column gels), particles, beads, nanoparticles, microparticles, macrobeads, and the like.
  • Materials include latex, agarose, glass, cellulose, sepharose, nitrocellulose, polystyrene, and other polymeric materials.
  • a specific example is an IgG-BP column (see WO2021/080008) in which the antibody-modified peptide described above is bound to a column gel.
  • the first antibody composition containing a relatively large amount of unmodified antibody and monovalent antibody is compared with the bivalent antibody by utilizing the difference in their interaction with the antibody-modified peptide.
  • the second antibody composition which is relatively abundant, can be separated and purified, respectively.
  • the first antibody composition has a molar ratio of unmodified antibody to monovalent modified antibody of 4 to 47:53 to 96, preferably 4 to 30:70 to 96, more preferably 4 to 20:80-96, more preferably 4-10:90-96.
  • the separated and purified first antibody composition or second antibody composition may be directly used for the click reaction in the subsequent step (B). ) may be used for click reactions.
  • the click reaction in step (B) is carried out between the click-reactive first atomic group of the chelating agent and the click-reactive second atomic group of the peptide-modified antibody.
  • Such a click reaction forms a binding group (substituent that enables conjugation with the antibody) that connects the chelating agent and the antibody.
  • step (A) can undergo a click reaction, the order of their addition does not matter.
  • One of the chelating agent and the antibody may be added and then reacted, or the other may be added to a dispersion in which one of the chelating agent and the antibody is dispersed in a solvent and reacted. Alternatively, these may be simultaneously added to a reaction vessel containing a solvent and reacted.
  • a solvent containing water can be used as the solvent used for the click reaction in step (B).
  • Buffers such as buffered saline, Tris buffer, HEPES buffer, or tetramethylammonium acetate buffer can be used.
  • the pH at 25°C is preferably 4.0 or more and 10.0 or less, more preferably 5.5 or more, from the viewpoint of achieving both the stability of the complex and the antibody and their binding efficiency. 5 or less.
  • the amount of the reaction liquid is not particularly limited, but from the viewpoint of practicality in the production process, the lower limit at the start of the step (B) is preferably 0.001 mL or more, more preferably 0.01 mL or more, and 0.1 mL or more. is more preferably 1 mL or more, and the upper limit is preferably 1000 mL or less, more preferably 100 mL or less, even more preferably 10 mL or less, and even more preferably 1 mL or less, for example, preferably 0.001 mL or more and 1000 mL or less, A range of 0.1 mL or more and 10 mL or less is more preferable.
  • the concentrations of the chelating agent and the antibody in the reaction solution are each independently at the start of step (B), and the lower limit thereof is preferably 0.001 ⁇ mol/L or more, more preferably 0.01 ⁇ mol/L or more, 0.1 ⁇ mol/L or more is more preferable, 1.0 ⁇ mol/L or more is still more preferable, and the upper limit is preferably 1000 ⁇ mol/L or less, more preferably 100 ⁇ mol/L or less, for example, 0.1 ⁇ mol/L or more and 1000 ⁇ mol/L.
  • the following range is preferable, and a range of 1 ⁇ mol/L or more and 100 ⁇ mol/L or less is more preferable from the viewpoint of the yield of the target complex.
  • the upper limit of the reaction temperature for the click reaction in step (B) is preferably 50°C or lower, more preferably 40°C or lower.
  • the lower limit of the reaction temperature is not particularly limited as long as it is a temperature at which the reaction proceeds, but 15° C. or higher is preferable.
  • the reaction time of the click reaction is preferably 5 minutes or more, more preferably 10 minutes or more, and preferably 24 hours or less, more preferably 20 hours or less, provided that the reaction temperature is as described above.
  • the range is preferably 5 minutes or more and 24 hours or less, more preferably 10 minutes or more and 20 hours or less.
  • the obtained complex may be used as it is, or may be purified using a filtration filter, a membrane filter, a column filled with various fillers, chromatography, or the like.
  • the conjugates produced by steps (A) and (B) are those in which the lysine residues in the Fc region of the deglycosylated antibody are specifically modified with a chelating agent.
  • This complex comprises one or two molecules of the chelating agent per molecule of the antibody.
  • the chelating agent site-specifically modifies the Fc region of the antibody of the present invention via the linker (L).
  • the linker (L) includes a chelate linker (L 2 ) that connects to a chelating agent, a first atomic group that connects to the linker (L 2 ), a second atomic group that can click-react with the first atomic group, and a second atom.
  • the linker (L) has a chemical structure derived from the first atomic group and the second atomic group.
  • a triazole skeleton-containing structure represented by the above formula (10a) or (10b) or a pyridazine skeleton-containing structure represented by the above formula (10c) can be considered. Since Formula (10a) and Formula (10b) are in an isomer relationship, they may be contained in an arbitrary ratio.
  • Radiopharmaceutical refers to a composition containing the complex of the present invention and in a form suitable for in vivo administration to a subject.
  • Radiopharmaceuticals for example, the complex produced by the method shown in (1-6) above, as it is, or after purifying it, are produced by dissolving in a solvent that is mainly composed of water and is approximately isotonic with the living body. can do.
  • the radiopharmaceutical is preferably in the form of an aqueous solution, and may contain other pharmaceutically acceptable ingredients as necessary.
  • a radiopharmaceutical is administered in an effective amount orally or parenterally such as intravenously, subcutaneously, intraperitoneally or intramuscularly to a living body, and is used for cancer treatment, cancer diagnosis, or lesion detection.
  • Subjects for administration here include humans and animals such as mice, rats, monkeys, guinea pigs, chimpanzees, sheep, goats, dogs, cats, pigs, cows, and horses, but are not particularly limited. Humans are preferred.
  • Target diseases are determined according to the characteristics of the antibody used, and in the case of anti-HER2 antibodies, diseases in which HER2 is overexpressed can be mentioned.
  • Specific examples include breast cancer in which HER2 overexpression has been confirmed, unresectable advanced/recurrent gastric cancer in which HER2 overexpression has been confirmed, and the like.
  • diseases in which EGFR is overexpressed are included.
  • specific examples include unresectable advanced/recurrent colorectal cancer, head and neck cancer, and the like.
  • diseases in which CD20 is overexpressed are included.
  • CD20-positive B-cell non-Hodgkin's lymphoma CD20-positive B-cell non-Hodgkin's lymphoma
  • immunosuppressive CD20-positive B-cell lymphoproliferative disease CD20-positive B-cell lymphoproliferative disease
  • Wegener's granulomatosis microscopic polyangiitis
  • microscopic polyangiitis microscopic polyangiitis
  • refractory nephrotic syndrome renal transplantation - Suppression of antibody-related rejection in ABO blood group incompatible transplantation at the time of liver transplantation.
  • the "effective amount” as used herein is an amount capable of obtaining a diagnostically or therapeutically effective effect in the subject of administration.
  • the effective amount to be administered to a subject depends on the type of subject, the weight of the subject, the dosage form (tablet, injection, etc.) and route (oral administration, parenteral administration, etc.), and the severity of the disease (e.g., cancer). Varies depending on severity. A physician or veterinarian will be able to determine an appropriate effective amount considering such factors.
  • Radioactive metal nuclides that have a therapeutic effect specifically, nuclides that emit ⁇ rays or nuclides that emit ⁇ rays (preferably Ac-225, Y-90, Lu-177, more preferably Ac -225)
  • the radiopharmaceutical of the present invention can be used for internal radiotherapy of cancer.
  • the radiopharmaceutical of the present invention is administered intravenously or orally, and the radioconjugate of the present invention is accumulated in a lesion site such as a cancer primary tumor or metastatic lesion, and released from the radiometal nuclide. Radiation can destroy cancer cells at the lesion site.
  • the dose and dose of the radiopharmaceutical of the present invention are determined by the efficacy of the active ingredient, the mode and route of administration, the stage of cancer progression, the body type, body weight and age of the patient, and the type and amount of the therapeutic drug used in combination for other diseases. is selected as appropriate.
  • radiometal nuclide that emits positrons or a radionuclide that emits ⁇ rays (preferably Zr-89) as the radiometal nuclide
  • Radiopharmaceuticals using positron-emitting radionuclides can be suitably used for PET (Positron Emission Tomography) examinations, and SPECT (Single Photon Emission Computed Tomography) inspection. This may be used in combination with cancer diagnosis or lesion detection in the above-described cancer radiotherapy.
  • the diagnostic radiopharmaceutical for cancer of the present invention may be used for diagnosis before performing internal radiotherapy for cancer, or may be used for diagnosis after performing internal radiotherapy for cancer.
  • Radiopharmaceutical of the present invention Treatment of whether or not to perform internal radiotherapy for cancer using the radiopharmaceutical of the present invention comprising a metal nuclide that emits ⁇ -rays by being used for diagnosis before radiotherapy for cancer It can be used for selection judgment. In addition, by being used for diagnosis after performing radiotherapy for cancer, it is possible to determine whether or not radiotherapy for cancer using the radiopharmaceutical of the present invention is effective, increase or decrease the dose, etc. can be used to optimize the treatment plan for
  • the invention provides a conjugate of a chelating agent chelated with a radionuclide and a deglycosylated antibody, wherein said radionuclide is an alpha-ray nuclide.
  • the chelating agent may randomly modify the antibody, and in this case, it is preferable to have 1 to 8 antibody molecules.
  • various chemical modification methods of the antibody are used in the conjugation step of the chelating agent or linker and the antibody. Specifically, the methods (a) to (e) are mentioned.
  • the radionuclide in the chelating agent is an ⁇ -ray nuclide and the chelating agent may randomly modify the antibody.
  • Xa, Xb, Xc and Xd represent a consecutive number of X's, b consecutive number of X's, c consecutive number of X's, and d consecutive number of X's
  • X is an amino acid residue having neither a thiol group nor a haloacetyl group in its side chain
  • a, b, c and d are each independently an integer of 1 or more and 5 or less and satisfy a + b + c + d ⁇
  • Xaa1 and Xaa3 are each independently represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol group in its side chain, and is bound via a disulfide bond or a sulfide group is bound via a linker, or
  • One represents an amino acid residue derived from an amino acid having a thiol
  • R 11 , R 13 and R 14 are each independently —(CH 2 ) p COOH, —(CH 2 ) p C 5 H 5 N, —(CH 2 ) p PO 3 a group consisting of H 2 , —(CH 2 ) p CONH 2 or —(CHCOOH)(CH 2 ) p COOH, wherein one of R 12 or R 15 is a hydrogen atom, a carboxyl group, or 3 is a carboxyalkyl group, the other is a substituent for conjugation with the antibody, p is an integer of 0 or more and 3 or less, and R 12 is a substituent for conjugation with the antibody.
  • R 15 is a hydrogen atom, and when R 12 is not a substituent for conjugation with the antibody, R 15 is a substituent for conjugation with the antibody.
  • the complex according to (8), wherein the ⁇ -ray emitting nuclide is Ac-225.
  • (16) comprising a conjugating step of conjugating a radionuclide-chelated chelating agent with a deglycosylated antibody to form a conjugate of the chelating agent and the antibody; A method for producing a composite according to any one of .
  • (17) The production method according to (16), wherein the conjugating step is performed by performing a click reaction.
  • the conjugating step is carried out by a click reaction between the antibody and a DOTAGA-DBCO radioactive metal complex represented by the following formula.
  • Example 1 Production of deglycosylated antibody-RI conjugate using 89Zr -labeled DOTAGA-DBCO (1. Production of antibody composition) (Step 1) (1-1. Production of antibody-modified linker) A peptide (SEQ ID NO: 19) containing 17 amino acid residues represented by (P3) below was obtained by the method described in International Publication 2017/217347. The amino acid sequence of this peptide was identical to the sequence in which Xaa2 of SEQ ID NO:2 is a lysine residue, and the side chain terminal amino group of the lysine residue was modified with the structure shown by R1 .
  • cysteine residues are disulfide-bonded to each other, and the N-terminus of the peptide is an atomic group containing an azide group, which is the second atomic group, via a linker (L1) structure having diglycolic acid and eight PEGs. As such, ethyl azide was bound.
  • Lys is lysine
  • Gly is glycine
  • Pro is proline
  • Asp is aspartic acid
  • Cys is cysteine
  • Ala is alanine
  • Tyr is tyrosine
  • His is histidine
  • Glu is Glutamic acid
  • Leu for leucine
  • Val for valine
  • Thr for threonine
  • Trp for tryptophan
  • Phe for phenylalanine.
  • the liquid was passed through an IgG-BP column to obtain a first antibody composition containing a relatively large amount of unlabeled antibody and monovalent antibody.
  • the concentration was adjusted with 0.02 mol/L phosphate buffer (pH 6.0) containing 0.1 mol/L sodium chloride so that the concentration of monovalent antibody contained in the collected fractions was 15 mg/mL.
  • the obtained solution containing the first antibody composition was subjected to the labeling step described below.
  • Step 2 DOTAGA-DBCO represented by the following formula was analyzed by Chem. Eur. J. 2012, 18, 7834-7841. DOTAGA-DBCO was dispersed in 0.156 mol/L sodium acetate buffer (pH 5.5) as a solvent to prepare a dispersion containing 0.3 mmol/L of a chelating agent.
  • 0.03 mL of this dispersion, 0.03 mL of 0.156 mol/L sodium acetate buffer (pH 5.5) containing 0.15 mol/L gentisic acid, and 89 Zr ion-containing solution ( 89 Y(p, n) 89 Zr produced by the 89 Zr method was mixed with 0.1 mol/L hydrochloric acid aqueous solution, adjusted to a radioactivity concentration of 910 MBq/mL, liquid volume 0.03 mL) 27.3 MBq, and the reaction solution was heated to It was made to react and the 89Zr complex solution was obtained.
  • the radiochemical purity of the obtained 89 Zr complex was measured by the following method. That is, a part of the 89 Zr complex solution was subjected to thin layer chromatography (manufactured by Agilent, model number: SGI0001, developing solvent is a mixture of acetonitrile: 0.1 mol/L EDTA solution (pH 5.0) (volume ratio 1:1)). It was developed and then measured with a radio- ⁇ -TLC analyzer (manufactured by raytest, MODEL GITA Star). The percentage of the peak radioactivity (counts) detected near the origin to the total radioactivity (counts) detected was defined as the labeling rate (%) of the 89 Zr complex.
  • the labeling rate of the 89 Zr complex was 96.0%.
  • the labeling rate (%) means the radioactivity of the 89 Zr complex with respect to the radioactivity charged in the complex formation step.
  • the obtained 89 Zr complex solution was directly used for the labeling step.
  • Step 3 Labeling step (Step 3) Add the solution containing the peptide-modified antibody (monovalent antibody) obtained in step 1 above to the unpurified 89 Zr complex solution obtained in step 2 above, and click at 37° C. for 2 hours.
  • a 89 Zr complex-labeled antibody was obtained by reaction.
  • the molar ratio of DBCO groups to azide groups during the reaction was about 1:2.4.
  • the reaction rate (%) of the unpurified 89Zr complex-labeled antibody was 89.9%.
  • the reaction rate (%) means the radiochemical purity (RCP) (%) of the 89 Zr complex-labeled antibody with respect to the labeling rate (%) in the complex formation step.
  • the 89 Zr complex-labeled antibody solution obtained by reacting at 37° C. for 2 hours was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the RCP of the purified 89 Zr complex-labeled antibody was 96.5%, and the radiochemical yield (RCY) was 66.7%.
  • Step 4 A portion of each of the 89 Zr complex-labeled antibodies produced in step 3 above was taken out into a 5 mL Eppendorf tube (LoBind, manufactured by Eppendorf) and stored in a storage buffer (19 g/L trehalose hydrate containing 84 mg/L PS20, 470 mg/L L- histidine hydrochloride, 300 mg/L L-histidine aqueous solution).
  • Step 1 Non-deglycosylated Trastuzumab was used as the antibody. The same antibody-modified linker as described in Example 1 was used, and the separation and purification of the monovalent antibody were performed in the same manner as in Example 1.
  • Step 2 DOTAGA-DBCO was dispersed in 0.156 mol/L sodium acetate buffer (pH 5.5) as a solvent to prepare a dispersion containing 0.3 mmol/L of a chelating agent.
  • 0.03 mL of this dispersion, 0.03 mL of 0.156 mol/L sodium acetate buffer (pH 5.5) containing 0.15 mol/L gentisic acid, and 89 Zr ion-containing solution ( 89 Y(p, n) 89 Zr produced by the 89 Zr method was mixed with 0.1 mol/L hydrochloric acid aqueous solution, adjusted to a radioactivity concentration of 890 MBq/mL, liquid volume 0.03 mL) 26.7 MBq. It was made to react and the 89Zr complex solution was obtained.
  • the radiochemical purity of the resulting 89 Zr complex was determined as in Example 1. As a result, the labeling rate of the 89 Zr complex was 97.7%. The obtained 89 Zr complex solution was directly used for the labeling step.
  • Step 3 Add the solution containing the peptide-modified antibody (monovalent antibody) obtained in the same manner as in Example 1 to the unpurified 89 Zr complex solution obtained through the above step 2, and click at 37 ° C. for 2 hours.
  • a 89 Zr complex-labeled antibody was obtained by reaction.
  • the molar ratio of DBCO to azide during the reaction was approximately 1:2.4.
  • the reaction rate (%) of the unpurified 89Zr complex-labeled antibody was 88.9%.
  • the 89 Zr complex-labeled antibody solution obtained by reacting at 37° C. for 2 hours was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the purified 89 Zr complex-labeled antibody had an RCP of 97.1% and an RCY of 73%.
  • the RCP and RCY of the 89 Zr complex-labeled antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Step 4 A portion of each of the 89 Zr complex-labeled antibodies produced in step 3 above was taken out into a 5 mL Eppendorf tube (LoBind, manufactured by Eppendorf) and stored in a storage buffer (19 g/L trehalose hydrate containing 84 mg/L PS20, 470 mg/L L- histidine hydrochloride, 300 mg/L L-histidine aqueous solution).
  • Antigen-binding activity was confirmed by in vitro autoradiography (ARG).
  • SKOV3 cells, a HER2-positive human ovarian cancer cell line, and MDA-MB-231 cells, a HER2-negative human breast cancer cell line, purchased from ATCC (American Type Culture Collection) were used in female SCID Beige mice (Charles River Japan). 5 ⁇ 10 6 cells were subcutaneously administered to the flanks of each to prepare tumor-bearing mice.
  • SKOV3 tumors and MDA-MB-231 tumors were then excised and delivered to Tissue Tech O.C. C. T. Frozen sections were prepared by embedding in a compound (Sakura Fine Tech Japan).
  • Each of the radioconjugates obtained in Example 1 and Comparative Example 1 was added to PBS containing 1% bovine serum albumin at 5 kBq/mL, and SKOV3 tumor sections and MDA-MB-231 tumor sections were immersed. After contacting the section with the imaging plate, the section was read with a scanner-type image analyzer (Typhoon FLA 7000, manufactured by GE Healthcare Japan) to evaluate the radioactivity bound to the section. The results are shown in FIG. The vertical axis in the figure is an arbitrary region of interest (ROI) set in the tissue, the intensity per unit area thereof is quantified, and the standard radiation source Std. (standard radiation source: 5 ⁇ L spot of the solution containing the radioactive complex in which the section was immersed).
  • ROI region of interest
  • Radioconjugates prepared as described in Example 1 and Comparative Example 1 bound more strongly to HER2-positive SKOV3 tumor sections, did not bind to HER2-negative MDA-MB-231 tumor sections, and were HER2-selective. showed good binding. On the other hand, there was no difference in the binding ability to HER2 between the antibody with the sugar chain cleaved and the antibody with the non-cleaved sugar chain.
  • blood was collected from the heart under isoflurane anesthesia, and heart, lung, liver, spleen, pancreas, stomach, small intestine, large intestine, kidney, bladder, thigh muscle, femur. , skin, and tumor were collected, and other tissues were collected as the remaining whole body.
  • mice administered each radioconjugate were housed in metabolic cages until the time point of dissection, and faeces and urine were collected.
  • the weight of each sampled tissue and blood was measured, and the counting rate of each tissue, blood, feces and urine was measured with a ⁇ -ray scintillation measuring device (JDC-1712, Hitachi, Ltd.).
  • the accumulation rate per unit weight (%ID/g) was calculated from the obtained tissue weight and counting rate. The results are shown in FIG.
  • 89 Zr-labeled deglycosylated antibody produced according to Example 1 compared to 89 Zr-labeled deglycosylated antibody produced as described in Comparative Example 1 (non-deglycosylated antibody) at any time point
  • the amount of accumulation was low in the liver and spleen, which are reticuloendothelial tissues (Fig. 3).
  • the amount of antibody retained in the blood was higher for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody than for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody at any time point, and the tumor accumulation was higher for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody. It was a high result.
  • Example 2 Production of deglycosylated antibody-RI conjugate using 225 Ac-labeled DOTAGA-DBCO
  • step 1 Deglycosylated antibody preparation step
  • step 2 Using the deglycosylated antibody and the antibody-modified linker described in Example 1, the antibody is modified with the antibody-modified linker, and the first antibody obtained by the monovalent antibody separation and purification method described in Example 1 A solution containing the composition was subjected to the labeling step described below.
  • (2. Complex formation step) (Step 2) DOTAGA-DBCO was dispersed in 0.156 mol/L sodium acetate buffer (pH 5.5) as a solvent to prepare a dispersion containing 0.3 mmol/L of a chelating agent.
  • the radiochemical purity of the resulting 225 Ac complex was determined as in Example 1. As a result, the labeling rate of the 225 Ac complex was 81%. From the resulting 225 Ac complex solution, 0.04 mL (300 kBq, 8 nmol of ligand) was used for the labeling step.
  • Step 3 0.117 mL of the solution containing the peptide-modified antibody (monovalent antibody) obtained in step 1 was added to the solution of the unpurified 225 Ac complex obtained in step 2 above, and the mixture was stirred at 37°C for 1.5 minutes. A time-click reaction was performed to obtain a 225 Ac complex-labeled antibody.
  • the molar ratio of DBCO to azide during the reaction was about 1:1.5.
  • the reaction rate of the unpurified 225 Ac complex-labeled antibody was 77.6%.
  • the resulting 225 Ac complex-labeled antibody solution was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the purified 225 Ac complex-labeled antibody had an RCP of 99.4% and an RCY of 62.0%.
  • the RCP and RCY of the 225 Ac complex-labeled antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Step 4 The 225 Ac complex-labeled deglycosylated antibody prepared in step 3 above was diluted in storage buffer as in Example 1.
  • the RCP of the resulting 225 Ac complex was measured in the same manner as in Example 1. As a result, the RCP of the 225 Ac complex was 81%. From the obtained 225 Ac complex solution, 0.04 mL (307 kBq, 8 nmol of ligand) was used for the labeling step.
  • Step 3 Labeling step (Step 3) Add 0.137 mL of the solution containing the peptide-modified antibody (monovalent antibody) obtained in step 1 to the unpurified 225 Ac complex solution obtained in step 2 above, and click at 37° C. for 1 hour.
  • a 225 Ac complex-labeled antibody was obtained by reacting. The molar ratio of DBCO to azide during the reaction was about 1:1.7. The reaction rate of the unpurified 225 Ac complex-labeled antibody was 79.8%.
  • the 225 Ac complex-labeled antibody solution obtained by reacting at 37° C. for 2 hours was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the purified 225 Ac complex-labeled antibody had an RCP of 99.7% and an RCY of 60.9%.
  • the RCP and RCY of the 225 Ac complex-labeled antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Step 4 The 225 Ac complex-labeled antibody produced in Step 3 above was diluted with a storage buffer in the same manner as in Comparative Example 1.
  • Both 225 Ac complex-labeled antibodies were administered to the tail vein at doses of 10 kBq or 5 kBq/animal (approximately 100 ⁇ g/animal and approximately 50 ⁇ g/animal, respectively, as Trastuzumab).
  • a control group a vehicle group to which the storage buffer was administered was set. Each group consisted of 6 mice, and the general conditions, body weight and tumor volume were measured over time until 30 days after administration. Animals weighing less than 80% of the body weight on the day of dosing and exhibiting abnormal locomotion and feeding behavior were euthanized for humane endpoints.
  • FIG. 5 shows changes in tumor volume over time
  • FIG. 6 shows changes in body weight over time
  • the vertical axis of the graph in FIG. 5 represents the tumor volume, and the horizontal axis represents the number of days elapsed after administration of each drug.
  • the graph represents the mean ⁇ standard deviation of tumor volume in each group.
  • the vertical axis of the graph in FIG. 6 represents the body weight of the mouse, and the horizontal axis represents the number of days elapsed since administration of each drug.
  • the vertical axis of the graph in FIG. 7 indicates the number of surviving individuals, and the horizontal axis indicates the number of days elapsed since administration of each drug.
  • "*" in the figure indicates the time point at which the individual was euthanized by application of the humane endpoint.
  • the group to which the 225 Ac complex-labeled antibody was administered showed a difference in antitumor effect compared to the vehicle group.
  • the average tumor volume of the group administered with the antibody produced in Example 2 was smaller than that of the antibody produced in Comparative Example 2. It was suggested that it exhibits a strong antitumor effect.
  • Example 3 Production of deglycosylated antibody-RI conjugate using 89Zr -labeled DOTAGA-DBCO-2
  • Antibody preparation step (Step 1) Deglycosylated Cetuximab was used as the antibody. The same antibody-modified linker as described in Example 1 was used, and the separation and purification of the monovalent antibody were performed in the same manner as in Example 1.
  • (2. Complex formation step) (Step 2) The procedure was carried out in the same manner as in Example 1, except that the radioactivity at the time of complex formation was 87.7 MBq. The RCP of the obtained 89 Zr complex was measured in the same manner as in Example 1. As a result, the RCP of the 89 Zr complex was 97.8%. From the resulting 89 Zr complex solution, 0.03 mL (25.9 MBq, 3 nmol of ligand) was used for the labeling step.
  • Example 1 (3. Labeling step) (Step 3) Example 1 was repeated except that deglycosylated Cetuximab was used as the antibody and the molar ratio of DBCO to azide in the reaction was about 1:1.2.
  • the reaction rate of the unpurified 89 Zr complex-labeled antibody was 56.1%.
  • the resulting 89 Zr complex-labeled antibody solution was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the 89 Zr complex-labeled antibody after purification had an RCP of 93.9% and an RCY of 46.6%.
  • the RCP and RCY of the 89 Zr complex-labeled antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Step 4 A portion of the 89 Zr complex-labeled deglycosylated antibody in step 3 above was extracted into a 5 mL Eppendorf tube (LoBind, manufactured by Eppendorf) and stored in a storage buffer (100 mg/L PS20 containing 5844 mg/L sodium chloride, 7507 mg/L glycine, 2101 mg/ L citric acid hydrate aqueous solution))).
  • a storage buffer 100 mg/L PS20 containing 5844 mg/L sodium chloride, 7507 mg/L glycine, 2101 mg/ L citric acid hydrate aqueous solution
  • Example 1 (3. Labeling step) (Step 3) Example 1 was repeated except that non-deglycosylated Cetuximab was used as the antibody and the molar ratio of DBCO to azide during the reaction was about 1:1.2.
  • the reaction rate of the unpurified 89 Zr complex-labeled antibody was 51.4%.
  • the resulting 89 Zr complex-labeled antibody solution was purified using an ultrafiltration filter (manufactured by Merck, model number: UFC505096).
  • the 89 Zr complex-labeled antibody after purification had an RCP of 93.8% and an RCY of 50.7%.
  • the RCP and RCY of the 89 Zr complex-labeled antibody were measured in the same manner as in Example 1.
  • Step 4 A portion of the 89 Zr complex-labeled antibody (not deglycosylated) in step 3 above was extracted into a 5 mL Eppendorf tube (LoBind, manufactured by Eppendorf) and stored in a storage buffer (100 mg/L PS20 containing 5844 mg/L sodium chloride, 7507 mg/ L glycine, 2101 mg/L citric acid hydrate aqueous solution).
  • a storage buffer 100 mg/L PS20 containing 5844 mg/L sodium chloride, 7507 mg/ L glycine, 2101 mg/L citric acid hydrate aqueous solution.
  • blood was collected from the heart under isoflurane anesthesia, and heart, lung, spleen, pancreas, stomach, small intestine, large intestine, thigh muscle, femur, skin, tumor, and kidney. , the liver was collected, and other tissues were collected as the remaining whole body.
  • mice administered each radioconjugate were housed in metabolic cages until the time point of dissection, and faeces and urine were collected.
  • the weight of each sampled tissue and blood was measured, and the counting rate of each tissue, blood, feces and urine was measured with a ⁇ -ray scintillation measuring device (JDC-1712, Hitachi, Ltd.).
  • the accumulation rate per unit weight (%ID/g) was calculated from the obtained tissue weight and counting rate. The results are shown in FIG.
  • the vertical axis of the graph indicates the accumulation rate per unit weight of each tissue.
  • the 89 Zr-labeled deglycosylated antibody produced according to Example 3 was accumulated in liver and spleen, which are reticuloendothelial tissues, as compared with the 89 Zr-labeled deglycosylated antibody produced according to Comparative Example 3. was low (Fig. 10).
  • the amount of antibody retained in the blood was higher for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody than for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody at any time point, and the tumor accumulation was higher for the 89Zr -labeled deglycosylated antibody. It was a high result.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

本発明は、「放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、該キレート剤が、リンカーを介して、前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、複合体」を提供する。該複合体は、効果の低下と副作用のリスクが改善されている。

Description

脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
　本発明は、脱グリコシル化された抗体と放射性核種との複合体、それを含む放射性医薬、及びそれらの製造方法に関する。
　抗体は、従来から種々の研究・開発において、標的分子の検出に多く利用されており、検出試薬や診断薬として産業面でも、極めて重要なものとなっている。また、抗体は、その標的分子に対する特異性の高さから、疾患の治療のための医薬品としても注目されている。
　抗体は免疫細胞が発現するＦｃγＲとの相互作用により細胞内皮系組織に集積する特性を有している。そこで、抗体の体内動態を改善する目的で、抗体の糖鎖を切断した抗体（以下、単に脱グリコシル化抗体とも称する）へ放射標識を行う技術が報告されている（非特許文献１）。また、特許文献１には、放射標識（８９Ｚｒ）された脱グリコシル化抗体によるＰＥＴ実験が開示されている。
　一方、抗体の標的分子に対する特異性に影響を与えずに機能付加するための部位特異的な化学修飾として、これまで、抗体に特異的又は選択的に結合する抗体修飾ペプチド（ＣＣＡＰ（Chemical conjugation by affinity peptide）ペプチドともいう）が報告され（特許文献２）、さらに本出願人は、ＣＣＡＰペプチドに架橋剤と結合可能なアミノ酸を導入し、該アミノ酸と架橋剤との結合を介し、架橋剤に結合した放射性同位元素を含む錯体等の標識物質や抗がん剤等の薬剤で抗体を修飾する技術について報告してきた（特許文献３、４）。
米国特許出願公開第２０１９／０３８９９６６号明細書 国際公開第２０１６／１８６２０６号 国際公開第２０１７／２１７３４７号 国際公開第２０２１／０７５５４６号
Vivier D. et al., J Nucl Med. 2019 Aug;60(8):1174-1182.
　ＲＩ標識抗体では、正常組織への集積および腫瘍集積の低下が課題となる。
　非特許文献１および特許文献１の８９Ｚｒ標識された脱グリコシル化抗体は、修飾個数の制御が課題となる。また、脱グリコシル化抗体による放射線治療には、着目されていない。
　加えて、脱グリコシル化抗体がＣＣＡＰペプチドで修飾可能かどうかは知られていない。
　従って、正常組織への集積を低減し腫瘍集積性を向上させるＲＩ標識抗体の提供が課題となる。
　本発明の一態様は、脱グリコシル化抗体とキレート剤との複合体であって、キレート剤に放射性金属核種がキレート化しており、該キレート剤がリンカー（Ｌ）を介して前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、複合体である。本発明の別の一態様は、脱グリコシル化抗体とキレート剤との複合体であって、キレート剤に放射性金属核種がキレート化しており、放射性金属核種がα線放出核種である、複合体である。
　本発明の他の態様は、上記複合体の製造方法である。
　本発明の他の態様は、上記複合体を有効成分として含有する放射性医薬である。
　なお、本発明でいう「連結」とは、特に断りがない場合、直接的又は間接的に接続していることの両方を意味する。
　本発明によれば、正常組織への集積が低減し、腫瘍集積性が向上したＲＩ標識抗体が提供される。
実施例１（PNGase F-treated Trastuzumab）及び比較例１(Trastuzumab)の記載に従って製造し、製剤化した放射性複合体のＨＥＲ２に対する結合活性を評価した結果を表すグラフである。 実施例１(89Zr-CCAP-Trastuzumab-PNGaseF)及び比較例１(89Zr-CCAP-Trastuzumab)の記載に従って製造し、製剤化した放射性複合体の生体内における各組織（血液、心臓、肺、肝臓、脾臓、膵臓、胃、小腸、大腸、腎臓、膀胱、大腿筋、大腿骨、皮膚、腫瘍、残全身）への分布を確認した結果を示すグラフである。 実施例１(89Zr-CCAP-Trastuzumab-PNGaseF)及び比較例１(89Zr-CCAP-Trastuzumab)の記載に従って製造し、製剤化した放射性複合体の生体内における各組織（血液、肝臓、脾臓、腫瘍）への分布を確認した結果を示すグラフである。 実施例２(PNGase F-treated Trastuzumab)及び比較例２(Trastuzumab)の記載に従って製造した放射性複合体の抗原結合活性を評価した結果を示したグラフである。 放射性複合体（実施例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab-PNGaseF_10KBq)、放射性複合体（実施例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab-PNGaseF_5KBq)、放射性複合体（比較例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab_10KBq)、放射性複合体（比較例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab_5KBq)、及びＶｅｈｉｃｌｅ群の担癌マウスにおける経時的な腫瘍体積の推移を示したグラフである。 放射性複合体（実施例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Tmab-PNG._10KBq)、放射性複合体（実施例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Tmab-PNG._5KBq)、放射性複合体（比較例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Tmab-Cont._10KBq)、放射性複合体（比較例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Tmab-Cont._5KBq)、及びＶｅｈｉｃｌｅ群の担癌マウスにおける経時的な体重の推移を示したグラフである。 放射性複合体（実施例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab-PNGaseF_10KBq)、放射性複合体（実施例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab-PNGaseF_5KBq)、放射性複合体（比較例２）１０ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab_10KBq)、放射性複合体（比較例２）５ｋＢｑ投与群(225Ac-Trastuzumab_5KBq)、及びＶｅｈｉｃｌｅ群の担癌マウスにおける経時的な生存個体数を示したグラフである。 実施例３(PNGase F-treated Cetuximab)及び比較例３(Cetuximab)の記載に従って製造した放射性複合体の抗原結合活性を評価した結果を示したグラフである。 実施例３(89Zr-CCAP-Cetuximab-PNGaseF)及び比較例３(89Zr-CCAP-Cetuximab)の記載に従って製造した放射性複合体の生体内における各組織（血液、心臓、肺、脾臓、膵臓、胃、小腸、大腸、大腿筋（muscle）、大腿骨（bone）、皮膚、腫瘍、腎臓、肝臓、残全身）への分布を確認した結果を示すグラフである。 実施例３及び比較例３の記載に従って製造した放射性複合体の生体内における各組織（血液、肝臓、脾臓、腫瘍）への分布を確認した結果を示すグラフである。
（１）放射性複合体１
　本発明は、放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、該キレート剤が、リンカーを介して、前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、複合体（以下、本発明の放射性複合体、又は単に複合体とも称する）を提供する。
（１－１）放射性金属核種
　本発明の放射性複合体に含まれる放射性金属核種は、α線を放出する放射性核種、β線を放出する放射性核種、ポジトロンを放出する放射性核種又はγ線を放出する放射性核種である。本発明の放射性複合体をがん治療に用いる場合は、α線を放出する放射性核種又はβ線を放出する放射性核種を用いることが好ましい。また、本発明の放射性複合体をがんの診断若しくは検出に用いる場合は、ポジトロンを放出する放射性核種又はγ線を放出する放射性核種を用いることが好ましい。α線を放出する放射性核種として、Ｂｉ－２１２、Ｂｉ－２１３、Ａｃ－２２５、Ｔｈ－２２７が例示される。また、β線を放出する放射性核種として、Ｃｏ－６０、Ｆｅ－５９、Ｃｕ－６４、Ｃｕ－６７、Ｓｒ－８９、Ｙ－９０、Ｔｃ－９９ｍ、Ｒｕ－１０３、Ｓｍ－１５３、Ｄｙ－１６５、Ｈо－１６６、Ｌｕ－１７７、Ｒｅ－１８６、Ｒｅ－１８８、Ａｕ－１９８、Ｈｇ－２０３、Ｂｉ－２１２、Ｂｉ－２１３又はＰｂ－２１２が例示される。また、ポジトロンを放出する放射性核種として、Ｃｕ－６４、Ｇａ－６８、Ｙ－８６、Ｚｒ－８９が例示される。また、γ線を放出する放射性核種として、Ｔｃ－９９ｍ又はＩｎ－１１１が例示される。本発明の放射性複合体１に含まれる放射性金属核種は、Ａｃ－２２５、Ｙ－９０、Ｌｕ－１７７又はＺｒ－８９であることが、より好ましい。本発明の放射性複合体１に含まれる放射性金属核種は、Ａｃ－２２５又はＺｒ－８９であることが、特に好ましい。
（１－２）抗体
　本発明の複合体に含まれる抗体は、糖鎖が切断された抗体、即ち脱グリコシル化抗体であれば特に限定されない。本発明で用いられる抗体は、ポリクローナル抗体であってもよいし、モノクローナル抗体であってもよいが、モノクローナル抗体が好ましい。抗体の由来は、特に限定されないが、例えば、非ヒト動物の抗体、非ヒト哺乳動物の抗体、およびヒト抗体が挙げられ、好ましくは、ヒト、ラット、マウス及びウサギを例示できる。抗体がヒト以外の種に由来する場合は、周知の技術を用いて、キメラ化又はヒト化することが好ましいが、本発明に用いられる抗体は、キメラ抗体、ヒト化抗体、またはヒト抗体であってもよい。また、本発明で用いられる抗体は、二重特異性抗体であってもよい。より好ましくは、本発明の複合体に用いられる脱グリコシル化抗体はヒトＩｇＧ抗体である。ヒトＩｇＧ抗体は、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、またはＩｇＧ４であり得る。
　ヒト化抗体（ＩｇＧ）には重鎖のＦｃ部分のＡｓｎ残基（ＥＵナンバリング２９７残基目）にＮ結合型糖鎖を有している。また、Ａｓｎ２９７以外のアミノ酸残基にＮ結合型糖鎖やＯ結合型糖鎖が結合する場合もある。本発明で用いられる脱グリコシル化抗体はこれらの糖鎖が切断されたものであり、好ましくはＮ結合型糖鎖が切断されたものであり、より好ましくは、Ａｓｎ残基（２９７残基目）のＮ結合型糖鎖が切断されたものである。
　抗体の脱グリコシル化は、当分野で通常用いられている方法で実施することができ、化学的又は酵素的に行われ得る。化学的な脱グリコシル化は、Ｈａｋｉｍｕｄｄｉｎ　ｅｔ　ａｌ．，１９８７，Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２５９：５２及びＥｄｇｅ　ｅｔ　ａｌ．，１９８１，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１１８：１３１の記載を参照することができる。酵素的切断は、Ｔｈｏｔａｋｕｒａ　ｅｔ　ａｌ．，１９８７，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１３８：３５０の記載を参照することができ、様々な糖鎖分解酵素を使用することができる。酵素の由来は特に限定されないが、植物、細菌又は酵母由来のものが挙げられる。好ましくはＮ結合型糖鎖を切断する（遊離する）酵素であり、ＥＣ３．５．１．５２に分類されるペプチド－Ｎ４－（Ｎ－アセチル－β－グルコサミニル）－アスパラギンアミダーゼ（ＰＮＧａｓｅＦ、ＰＮＧａｓｅＡ等）、ＥＣ３．２．１．９６に分類されるエンドグリコシダーゼ等が挙げられる。エンドグリコシダーゼとしては、具体的には、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＤ（エンドグリコシダーゼＤ、Ｅｎｄｏ－Ｄ、ｅｎｄｏ－Ｄ）、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＨ（エンドグリコシダーゼＨ、Ｅｎｄｏ－Ｈ、ｅｎｄｏ－Ｈ）、エンドグリコシダーゼＳ（ＥｎｄｏＳ、Ｅｎｄｏ－Ｓ、ｅｎｄｏ－Ｓ）、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＭ（エンドグリコシダーゼＭ、Ｅｎｄｏ－Ｍ、ｅｎｄｏ－Ｍ）、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＬＬ（エンドグリコシダーゼＬＬ、ＥｎｄｏＬＬ、Ｅｎｄｏ－ＬＬ、ｅｎｄｏ－ＬＬ）、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＦ１（エンドグリコシダーゼＦ１、Ｅｎｄｏ－Ｆ１、ｅｎｄｏ－Ｆ１）、エンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＦ２（エンドグリコシダーゼＦ２、Ｅｎｄｏ－Ｆ２、ｅｎｄｏ－Ｆ２）、及びエンド－β－Ｎ－アセチルグルコサミニダーゼＦ３（エンドグリコシダーゼＦ３、Ｅｎｄｏ－Ｆ３、ｅｎｄｏ－Ｆ３）が挙げられる。
　抗体の脱グリコシル化処理（反応温度、反応時間等）は、糖鎖の切断（遊離）に用いる手段に応じて、当分野で実施される方法に従って実施することができる。
　本発明の複合体に用いられる抗体の好ましい具体例としては、抗ＨＥＲ２抗体（例、トラスツズマブ、ペルツズマブ）、抗ＥＧＦＲ抗体（例、セツキシマブ、パニツムマブ）、抗ＣＤ２０抗体（例、リツキシマブ、イブリツモマブ、オクレリズマブ）が挙げられる。
　いずれも自体公知の方法で調製可能であるか商業的に入手可能である。
　なお、本発明の複合体に用いられる抗体は、ＷＯ２０１７／１４１６０４やＷＯ２０２１／０７５５４５記載の抗体であってもよい。
（１－３）キレート剤
　本発明においてキレート剤は、放射性金属核種が配位する部位を構造中に有するものであれば特に限定されない。キレート剤として、例えば、CB-TE2A（1,4,8,11-Tetraazabicyclo[6.6.2]hexadecane-4,11-diacetic acid）、CDTA（Cyclohexane-trans-1,2-diamine tetra-acetic acid）、CDTPA（4-cyano-4-[[(dodecylthio)thioxomethyl]thio]-pentanoic acid）、DOTA(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTMA((1R,4R,7R,10R)-α,α’,α”,α’”-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTAM（1,4,7,10-tetrakis(carbamoylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane）、DOTPA (1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetra propionic acid)、1,4,7,10-tetrakis(pyridin-2-ylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane (Lpy)、DOTA-GA(α-(2-Carboxyethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTP(((1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrayl)tetrakis(methylene))tetraphosphonic acid)、DOTMP(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(methylenephosphonic acid))、DOTA-4AMP(1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(acetamidomethylenephosphonic acid))、D02P(Tetraazacyclododecane dimethanephosphonic acid)、Deferoxamine (DFO)、DTPA(Glycine, N,N-bis[2-[bis(carboxymethyl)amino]ethyl]-)、CHX-A”-DTPA(2,2'-((2-(((1S,2R)-2-(bis(carboxymethyl)amino)cyclohexyl)(carboxymethyl)amino)ethyl)azanediyl)diacetic acid)、DTPA-BMA(5,8-Bis(carboxymethyl)-11-[2-(methylamino)-2-oxoethyl]-3-oxo-2,5,8,11-tetraazatridecan-13-oic acid)、EDTA(2,2',2”,2’”-(ethane-1,2-diylbis(azanetriyl))tetraacetic acid)、NOTA(1,4,7-Triazacyclononane-1,4,7-triacetic acid)、NOTP(1,4,7-Triazacyclononane-1,4,7-triyltris(methylenephosphonic acid))、TETPA(1,4,8,11-tetraazacyclotetradecane-1,4,8,11-tetrapropionic acid)、TETA(1,4,8,11-Tetraazacyclotetradecane-N,N',N”,N’”-tetraacetic acid)、TTHA(3,6,9,12-Tetrakis(carboxymethyl)-3,6,9,12-tetraazatetradecanedioic acid)、HEHA(1,2,7,10,13-hexaazacyclooctadecane-1,4,7,10,13,16-hexaacetic acid)、1,2-HOPO(N,N’,N”,N’”-tetra(1,2-dihydro-1-hydroxy-2-oxopyridine-6-carbonyl)-1,5,10,14-tetraazatetradecane)、PEPA(1,4,7,10,13-pentaazacyclopentadecane-N,N’,N”,N’”,N””-pentaacetic acid)、H4octapa(N,N’-bis(6-carboxy-2-pyridylmethyl)-ethylenediamine-N,N’-diacetic acid)、H2bispa2(6,6’-({9-hydroxy-1,5-bis(methoxycarbonyl)-2,4-di(pyridine-2-yl)-3,7-diazabicyclo[3.3.1]nonane-3,7-diyl}bis(-methylene))dipicolinic acid)、H2dedpa(1,2-[{6-(carboxy)-pyridin-2-yl}-methylamino]ethane)、H2macropa(6-(1,4,10,13-tetraoxa-7,16-diazacyclooctadecan-N,N’-methyl)picolinic acid)、H5decapa(N,N”-bis(6-carboxy-2-pyridylmethyl)-diethylenetriamine-N,N’,N”-triacetic acid)、H6phospa(N,N’-(methylenephosphonate)-N,N’-[6-(methoxycarbonyl)pyridin-2-yl]-methyl-1,2-diaminoethane)、HP-D03A(Hydroxypropyltetraazacyclododecanetriacetic acid)、porphyrinといったものが挙げられるが、下記式（Ａ）で表される化合物が好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
（式（Ａ）中、Ｒ１１、Ｒ１２、Ｒ１３及びＲ１４は、それぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）(ＣＨ２)ｐＣＯＯＨからなる基であり、Ｒ１５が、水素原子であり、ｐが０以上３以下の整数である。）
　式（Ａ）で表される化合物としては、好ましくは１，４，７，１０－テトラアザシクロドデカン－１，４，７，１０－テトラ酢酸（ＤＯＴＡ）、又はその誘導体に由来する構造を含む化合物であり、具体的には、構造中にDOTA(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTMA((1R,4R,7R,10R)- α,α’,α”,α’”-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTAM(1,4,7,10-tetrakis(carbamoylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane)、DOTPA (1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrapropionic acid)、1,4,7,10-tetrakis(pyridin-2-ylmethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane (Lpy)、DOTA-GA(α-(2-Carboxyethyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetraacetic acid)、DOTP(((1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrayl)tetrakis(methylene))tetraphosphonicacid)、DOTMP(1,4,7,10-Tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(methylenephosphonic acid))、DOTA-4AMP(1,4,7,10-tetraazacyclododecane-1,4,7,10-tetrakis(acetamidomethylenephosphonic acid))、D02P(Tetraazacyclododecane dimethanephosphonic acid)から選択される一のキレート剤に由来する構造を含むことができ、より好ましくは以下の式（Ａ－１）～（Ａ－６）で表される化合物が挙げられる。本発明の放射性複合体に用いられるキレート剤は、ＤＯＴＡ－ＧＡ（式（Ａ－６）で表される化合物）がさらにより好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
　本発明の複合体において、キレート剤は、リンカー（Ｌ）を介して抗体と連結されていてもよい。リンカー（Ｌ）としては、置換又は無置換のアルキル基、置換又は無置換のヘテロアルキル基、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）基、ペプチド、糖鎖、ジスルフィド基及びこれらの組み合わせなどが挙げられる。
　本発明の複合体において、キレート剤とリンカー（Ｌ）とは共有結合により連結されていることが好ましい。したがって、前述したキレート剤は、本発明の複合体においては、化合物内の一部の基がリンカー（Ｌ）と共有結合を形成する基に置換されていてもよい。例えば、本発明で用いられるキレート剤が、式（Ａ）で表される化合物である場合は、Ｒ１２又はＲ１５がリンカー（Ｌ）と共有結合を形成する基に置換されていてもよい。好ましくは、Ｒ１２がリンカー（Ｌ）と共有結合を形成する基に置換されているときＲ１５は水素原子であり、Ｒ１２が－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２又は、－（ＣＨＣＯＯＨ）(ＣＨ２)ｐＣＯＯＨからなる基であるとき、Ｒ１５がリンカー（Ｌ）と共有結合を形成する基に置換されている。
　キレート剤とリンカー（Ｌ）との連結は、例えば、下記式（Ａ－７）や（Ａ－８）のＮ－ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＮＨＳ）基、又は、下記式（Ａ－９）の２，６－ジオキソテトラヒドロ－２Ｈ－ピラニル基と、リンカー（Ｌ）の第１級アミンとの反応により形成される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
　本発明の複合体１において、キレート剤は、抗体１分子に対し、少なくとも1分子以上備えていればよい。ただし、抗体そのものの活性（抗原認識作用、中和作用、補体活性化作用及び／又はオプソニン作用）を維持する観点から、抗体のＦｃ領域（定常領域）に部位特異的にキレート剤が導入されることが好ましく、本発明の複合体１においては、キレート剤は、抗体１分子に対して1分子又は２分子備えていることがより好ましい。
（１－４）抗体修飾ペプチド
　好ましくは、本発明で用いられる脱グリコシル化抗体は、抗体修飾ペプチドで部位特異的に、好ましくはＦｃ領域に修飾しており、この場合は本発明で用いられるキレート剤は、リンカー（Ｌ）を介して、下記式（ｉ）で表される、１３以上１７以下のアミノ酸残基からなるペプチド（以下、「抗体修飾ペプチド」ともいう。）を含み、かつ架橋剤で修飾された抗体修飾ペプチドと抗体との架橋反応によって形成されているものを用いることができる。なお、式（ｉ）において、アミノ酸配列の紙面左側がＮ末端側を示し、アミノ酸配列の紙面右側がＣ末端側を示すものとして説明する。キレート剤がリンカーとして抗体修飾ペプチドを介して抗体と接続される場合、キレート剤と抗体修飾ペプチドが連結する位置は特に限定しないが、例えば抗体修飾ペプチドのＮ末端又はＣ末端、好ましくはＮ末端に直接又は間接的に連結することができる。また、抗体修飾ペプチドのＣ末端はその安定性の向上等のためにアミド化等の修飾を受けていてもよい。
　(Xa)-Xaa1-(Xb)-Xaa2-(Xc)-Xaa3-(Xd)・・・（ｉ）
式（ｉ）中、Ｘａ、Ｘｂ、Ｘｃ及びＸｄは、それぞれ、連続するａ個のＸ、連続するｂ個のＸ、連続するｃ個のＸ、及び連続するｄ個のＸを表し、
Ｘは、側鎖にチオール基及びハロアセチル基のいずれも有しないアミノ酸残基であり、
ａ、ｂ、ｃ及びｄはそれぞれ独立に１以上５以下の整数で、かつａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を満たし、
Ｘａａ１及びＸａａ３は、それぞれ独立に、
側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、又は、
一方が、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、他方が、側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、Ｘａａ１とＸａａ３とが連結しており、
Ｘａａ２は、リシン残基、アルギニン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸であり、架橋剤で修飾されている。
　上記式（ｉ）におけるＸに含まれ得るアミノ酸残基としては、例えば、グリシン、アラニン、フェニルアラニン、プロリン、アスパラギン、アスパラギン酸、グルタミン酸、アルギニン、ヒスチジン、セリン、スレオニン、チロシン、メチオニン等のアミノ酸に由来するものが挙げられ、Ｘは、同一の種類のアミノ酸からなるアミノ酸残基であってもよく、それぞれ異なる種類のアミノ酸からなるアミノ酸残基であってもよい。
　式（ｉ）中のａ、ｂ、ｃ及びｄは、上述した範囲の数であれば特に制限はないが、ペプチドと抗体との結合安定性の観点から、ａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を条件として、ａは好ましくは１以上３以下の整数、ｂは好ましくは１以上３以下の整数、ｃは好ましくは３以上５以下の整数、及びｄは好ましくは１以上３以下の整数である。
　Ｘａａ１及びＸａａ３は、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であり、該アミノ酸はそれぞれ同一であってもよく、異なっていてもよい。側鎖にチオール基を有するアミノ酸としては、例えばシステイン、ホモシステインが挙げられる。このようなアミノ酸残基は、ジスルフィド結合によって結合しているか、又は以下の式（４）に示すリンカーを介して、スルフィド基が結合されていることが好ましい。式（４）中、波線部分はスルフィド基との結合部分を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
　Ｘａａ１及びＸａａ３は、上述した組み合わせに代えて、Ｘａａ１及びＸａａ３のうち一方が側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であり、他方が側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基であってもよい。これらは、チオエーテル結合を介して結合している。ハロアセチル基は、その末端がヨウ素等のハロゲンで置換されており、他方の側鎖におけるチオール基との反応によってハロゲンが脱離して、チオエーテル結合が形成される。
　式（ｉ）で表される抗体修飾ペプチドの具体的なアミノ酸配列は、例えば国際公開２０１６／１８６２０６号パンフレット、国際公開２０１７／２１７３４７号パンフレット及び国際公開２０１８／２３０２５７号パンフレットに記載のペプチドが挙げられ、これらを用いることもできる。
　これらのうち、抗体修飾ペプチドのアミノ酸配列として、以下の配列（１）～（１８）のいずれか一つを有していることが好ましく、以下の配列（１）、（２）、（１３）又は（１４）を有していることが更に好ましい。以下のアミノ酸配列（１）～（１８）において、（Ｘａａ２）はリシン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸を示し、（Ｘａａ１）及び（Ｘａａ３）はともにホモシステイン残基を示す。ホモシステイン同士は互いにジスルフィド結合を形成していてもよい。また、以下のアミノ酸配列（１）～（１８）中、（Ｘａａ１）、（Ｘａａ２）及び（Ｘａａ３）以外のアミノ酸は一文字略号にて表記する。
（１）DCAYH(Xaa2)GELVWCT（配列番号１）、
（２）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH（配列番号２）、
（３）RCAYH(Xaa2)GELVWCS（配列番号３）、
（４）GPRCAYH(Xaa2)GELVWCSFH（配列番号４）、
（５）SPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH（配列番号５）、
（６）GDDCAYH(Xaa2)GELVWCTFH（配列番号６）、
（７）GPSCAYH(Xaa2)GELVWCTFH（配列番号７）、
（８）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCSFH（配列番号８）、
（９）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTHH（配列番号９）、
（１０）GPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY（配列番号１０）、
（１１）SPDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY（配列番号１１）、
（１２）SDDCAYH(Xaa2)GELVWCTFY（配列番号１２）、
（１３）RGNCAYH(Xaa2)GQLVWCTYH（配列番号１３）、
（１４）G(Xaa1)DCAYH(Xaa2)GELVWCT(Xaa3)H（配列番号１４）
（１５）DCTYH(Xaa2)GNLVWCT（配列番号１５）、
（１６）DCAYH(Xaa2)GNLVWCT（配列番号１６）、
（１７）DCTYH(Xaa2)GELVWCT（配列番号１７）、及び
（１８）DCAWH(Xaa2)GELVWCT（配列番号１８）。
（１－５）リンカー（Ｌ）
　リンカー（Ｌ）は、本発明の放射性複合体において、キレート剤とペプチドとを連結できるものであれば特に限定されない。置換又は無置換のアルキル基、置換又は無置換のヘテロアルキル基、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）基、ペプチド、糖鎖、ジスルフィド基、アミド基、及びこれらの組み合わせなどが挙げられる。
　本明細書においてリンカー（Ｌ）とは、ペプチドで修飾された脱グリコシル化抗体とキレート剤との接続に用いられるリンカーの総称であり、抗体修飾リンカー（Ｌ１）及びキレートリンカー（Ｌ２）を含む用語である。抗体修飾リンカー（Ｌ１）は、詳細は後述するが、（１－４）で説明したペプチドのＮ末端側に導入されるものであり、キレートリンカー（Ｌ２）も、詳細は後述するが、（１－３）で説明したキレート剤の官能基に導入されるものである。
　本発明で用いられるリンカー（Ｌ）は、クリック反応で形成された結合部位を含んでいてもよく、好ましくは、抗体修飾リンカー（Ｌ１）とキレートリンカー（Ｌ２）とがクリック反応により結合している。ここで、クリック反応で形成された結合部位は、好ましくは、下記式（１０ａ）又は（１０ｂ）で表されるトリアゾール骨格含有構造又は下記式（１０ｃ）で表されるピリダジン骨格含有構造が考えられる。式（１０ａ）と式（１０ｂ）は異性体の関係にあるため任意の割合で含まれていてもよい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
　式（１０ａ）及び式（１０ｂ）中、Ｒ１Ａはキレート剤との連結部位を示し、Ｒ２Ａは抗体修飾ペプチドとの連結部位を示す。式（１０ｃ）中、Ｒ３Ａ及びＲ４Ａのうち一方は水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示し、他方はキレート剤との連結部位を示し、Ｒ５Ａは抗体修飾ペプチドとの連結部位を示す。式（１０ａ）、式（１０ｂ）及び式（１０ｃ）において、抗体修飾ペプチドとの連結部位は、抗体修飾リンカー（Ｌ１）を介してペプチドが連結しており、キレート剤との連結部位は、キレートリンカー（Ｌ２）を介してキレート剤が連結している。
　本発明の放射性複合体は、ペプチドで部位特異的に抗体が修飾され、ペプチドとキレート剤とがリンカー（Ｌ）を介して連結するため、脱グリコシル化抗体１分子に対して1分子又は２分子のキレート剤を複合化させたものになる。
（１－６）複合体の製造方法
　本発明の複合体の製造方法は、キレート剤と抗体とをコンジュゲーションするコンジュゲーション工程と、放射性核種とキレート剤との錯体を形成する錯体形成工程との２つの工程から製造することができる。コンジュゲーション工程は、錯体形成工程の前であってもよいし錯体形成工程の後であってもよい。
　コンジュゲーション工程においては、抗体に対する部位特異的な化学修飾法を種々用いることができるが、例えば、前述した（１－４）で示す抗体修飾ペプチドを有するキレート剤又はリンカーを、抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾する方法が挙げられる。
　錯体形成工程では、キレート剤に放射性金属核種をキレート（錯体形成）させる。ここで使用する放射性金属核種は、錯体形成効率を高める観点から、電離可能な態様で用いることが好ましく、イオンの態様で用いることが更に好ましい。錯体形成工程は、放射性金属核種との錯体形成が可能であれば、キレート剤への放射性金属核種の添加順序は問わない。例えば、水を主体とする溶媒に、放射性金属イオンが溶解した溶液を放射性核種として用いることができる。
　錯体形成後、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、クロマトグラフィー等を用いて、得られた錯体を精製してもよい。
　本発明の複合体の製造方法は、錯体形成工程の後にコンジュゲーション工程が実行されることが好ましい。
　より好ましい態様において、錯体形成工程（Ａ）では、放射性核種とクリック反応可能な第１の原子団を抗体と複合化を可能とするための置換基として有するキレート剤との間で錯体を形成する。次いで、コンジュゲーション工程（Ｂ）では、前述した式（ｉ）で示す抗体修飾ペプチドと、クリック反応可能な第２の原子団とを有する抗体修飾リンカー（Ｌ１）を用いて、Ｆｃ領域を部位特異的に修飾されたペプチド修飾抗体と、工程（Ａ）で得られた錯体形成されたキレート剤との間でクリック反応を実行し、本発明の複合体を得る。
　以下工程（Ａ）及び（Ｂ）について、詳述する。
　クリック反応可能な第１原子団と第２原子団との組み合わせとしては、クリック反応の種類に応じて適切なものが選択され、例えば、アルキンとアジドとの組み合わせ、１，２，４，５－テトラジンとアルケンとの組み合わせ等が挙げられる。これらの原子団は、第１原子団が上記原子団の組み合わせのうち一つを有し、第２原子団が上記原子団の組み合わせのうち第１原子団と異なる一つとなる原子団を有していればよい。キレート剤及び抗体の安定性と、これらの結合効率の向上とを両立する観点から、キレートリンカー（Ｌ２）がアルキンであり且つ抗体修飾リンカー（Ｌ１）がアジドであるか、又はキレートリンカー（Ｌ２）が１，２，４，５－テトラジンであり且つ抗体修飾リンカー（Ｌ１）がアルケンであることが好ましい。このような原子団の組み合わせによるクリック反応の具体例として、ヒュスゲン環化付加反応、あるいは逆電子要請型ディールスアルダー反応等が挙げられる。
　クリック反応可能な原子団の組み合わせの具体例としては、以下の式に示すように、第１原子団のアルキンとしてジベンジルシクロオクチン（ＤＢＣＯ）を含む原子団（式（１ａ））と、第２原子団のアジドとしてアジド基を含む原子団（式（２ａ））との組み合わせ、あるいは、第１原子団が１，２，４，５－テトラジンを含む原子団（式（１ｂ））と、第２原子団のアルケンとしてｔｒａｎｓ－シクロオクテン（ＴＣＯ）を含む原子団（式（２ｂ））との組み合わせが挙げられる。好ましくは式（１ａ）と式（２ａ）との組合せである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
（式（１ａ）中、Ｒ１は、キレート剤との連結部位を示し、式（２a）中、Ｒ２は、抗体における抗体修飾ペプチドとの連結部位を示す。）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
（式（１ｂ）中、Ｒ３及びＲ４のうち一方がキレート剤又は抗体における抗体修飾ペプチドのいずれか一方との連結部位を示し、他方が水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示し、式（２ｂ）中、Ｒ５は、Ｒ３又はＲ４に応じてキレート剤又は抗体における抗体修飾ペプチドのいずれか一方との連結部位を示す。）
　第１原子団のアルキンとして、上記式（１ａ）で表されるＤＢＣＯを含む原子団を用いる場合は、市販されている種々のＤＢＣＯ試薬が挙げられる。具体的には、例えば、DBCO-C6-Acid、Dibenzylcyclooctyne-Amine、Dibenzylcyclooctyne Maleimide、DBCO-PEG acid、DBCO-PEG-NHS ester、DBCO-PEG-Alcohol、DBCO-PEG-amine、DBCO-PEG-NH-Boc、Carboxyrhodamine-PEG-DBCO、Sulforhodamine-PEG-DBCO、TAMRA-PEG-DBCO、DBCO-PEG-Biotin、DBCO-PEG-DBCO、DBCO-PEG-Maleimide、TCO-PEG-DBCO、DBCO-mPEGなどが選択できるが、好ましくはDibenzylcyclooctyne Maleimideを用いる。
　工程（Ａ）では、より好ましくは、以下の式（ｉｉ）で表される構造を有するキレート剤を用いる。
　Ａ－Ｂ－Ｃ　・・・（ｉｉ） 
　式（ｉｉ）中、Ａは、以下の式（ｉｉａ）で表されるキレート部である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
　式（ｉｉａ）中、Ｒａ、Ｒｂ及びＲｃは、独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨからなる基であり、ｐは０以上３以下の整数であり、Ｒｄ又はＲｅのいずれか一方が、Ｂとの結合部位（＊）であり、他方が水素原子であるか、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨからなる基であり、ｐは０以上３以下の整数である。
　式（ｉｉ）中、Ｂは以下の式（ｉｉｂ）で表される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
　式（ｉｉｂ）中、Ｌａ及びＬｂは、独立して、少なくともアミド結合又はチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｔは０以上３０以下の整数であり、sは０又は１であり、＊はＡとの結合部位であり、＊＊はＣとの結合部位である。
　式（ｉｉ）中、Ｃは、以下の式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体又は式（ｉｉｄ）で表されるテトラジン誘導体のいずれかである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
　式（ｉｉｃ）中、ＸはＣＨＲｋ－＊＊又はＮ－＊＊であり、ＹはＣＨＲｋ又はＣ＝Ｏであり、Ｒｋは独立して水素原子であるか、炭素数１以上５以下のアルキル基であって、ＸがＣＨＲｋ－＊＊で、ＹがＣＨＲｋである場合は、Ｒｋ部分が一緒になってシクロアルキル基を形成してもよく、Ｒｆ、Ｒｇ、Ｒｈ及びＲｉは、独立して、水素原子、ハロゲン原子、炭素数１以上５以下のアルキル基であり、ＲｆとＲｇが一緒になって、若しくはＲｈとＲｉが一緒になって炭化水素環を形成してもよく、＊＊はＢとの結合部位を示し、式（ｉｉｄ）中、＊＊はＢとの結合部位を示し、Ｒｊは水素原子、メチル基、フェニル基又はピリジル基を示す。
　工程（Ａ）で使用されるキレート剤として、上記式（ｉｉａ）中、Ｒａ乃至Ｒｄが、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨであり、ｐが１であり、ＲｅがＢとの結合部位（＊）であるＤＯＴＡ誘導体；又はＲａ乃至Ｒｃが、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨであり、ｐが１であり、ＲｄがＢとの結合部位（＊）であり、Ｒｅが水素原子であるＤＯ３Ａ誘導体若しくはＤＯＴＡＧＡ誘導体のいずれかがより好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯＴＡ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが1である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ－＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯＴＡ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体；又はＢは、Ｌａがチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが1である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｄ）で表されるテトラジン誘導体である、ＤＯＴＡ－ＰＥＧｔ－Ｔｚ誘導体が更により好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯ３Ａ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが１である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ－＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯ３Ａ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体が更により好ましい。
　式(ｉｉ)中、Ａが上記ＤＯＴＡＧＡ誘導体である場合、Ｂは、Ｌａがアミド結合若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、ｓが０又は１であり、ｓが１である場合は、ｔが０以上３０以下の整数であり、Ｌｂがアミド結合を含む若しくはチオウレア結合を含む炭素数１以上５０以下の結合リンカーであり、Ｃは、式（ｉｉｃ）で表されるアルキン誘導体であり、式（ｉｉｃ）中、ＸがＮ－＊＊であり、ＹがＣＨＲｋであり、Ｒｋが水素原子であり、ＲｆとＲｇが一緒になってベンゼン環を形成しており、ＲｈとＲｉが一緒になってベンゼン環を形成しており、＊＊はＢとの結合部位である、ＤＯＴＡＧＡ－ＰＥＧｔ－ＤＢＣＯ誘導体が更により好ましい。
　キレート剤と放射性核種とのモル比率は、キレート部／放射性核種として、下限が、１０／１以上が好ましく、１００／１以上がより好ましく、５００／１以上がさらに好ましく、上限が、１５０００／１以下が好ましく、１００００／１以下がより好ましく、７０００／１以下がさらに好ましく、例えば、１００／１以上７０００／１以下の範囲が好ましく、より好ましくは５００／１以上７０００／１以下の範囲である。
　錯体形成反応は、溶媒下に行うことが好ましい。溶媒としては、例えば水、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、トリスヒドロキシメチルアミノメタン緩衝液（Ｔｒｉｓ緩衝液）、４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジンエタンスルホン酸緩衝液（ＨＥＰＥＳ緩衝液）、若しくはテトラメチルアンモニウム酢酸緩衝液等の緩衝液等を用いることができる。
　溶媒の液量は特に限定されないが、製造工程における実用性の観点から、工程（Ａ）の開始時において、下限は、０．０１ｍＬ以上、好ましくは０．１ｍＬ以上、より好ましくは１．０ｍＬ以上、さらに好ましくは１０ｍＬ以上、よりさらに好ましくは１００ｍＬ以上であり、上限は、好ましくは１０００ｍＬ以下、より好ましくは１００ｍＬ以下、さらに好ましくは１０ｍＬ以下、よりさらに好ましくは１．０ｍＬ以下であり、例えば、０．０１ｍＬ以上１００ｍＬ以下の範囲である。
　錯体形成反応の反応液中のキレート剤の濃度は、目的とするキレート剤の収率の観点から、それぞれ独立して、工程（Ａ）の開始時において、下限は、好ましくは０．００１μｍｏｌ／Ｌ以上、より好ましくは０．０１μｍｏｌ／Ｌ以上、さらに好ましくは０．１μｍｏｌ／Ｌ以上、より好ましくは１μｍｏｌ／Ｌ以上であり、上限は、好ましくは１０００μｍｏｌ／Ｌ以下、より好ましくは１００μｍｏｌ／Ｌ以下、さらに好ましくは１０μｍｏｌ／Ｌ以下であり、例えば、１μｍｏｌ／Ｌ以上１００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲が挙げられる。
　錯体形成反応の温度としては、例えば室温（２５℃）であってもよく、加熱条件下であってもよいが、キレート剤の分解抑制と錯体の形成効率向上とを両立する観点から、下限は、好ましくは２０℃以上、より好ましくは３０℃以上、さらに好ましくは３５℃以上、よりさらに好ましくは３７℃以上、特に好ましくは４５℃以上であり、上限は、好ましくは１５０℃以下、より好ましくは１２０℃以下、さらに好ましくは１００℃以下、よりさらに好ましくは９０℃以下であり、例えば、３０℃以上１００℃以下の範囲が好ましく、より好ましくは３５℃以上９０℃以下の範囲である。
　反応時間は、上述の反応温度であることを条件として、下限は、好ましくは５分以上、より好ましくは１０分以上、さらに好ましくは２０分以上、よりさらに好ましくは３０分以上、特に好ましくは４５分以上であり、上限は、好ましくは１８０分以下、より好ましくは１５０分以下、さらに好ましくは１２０分以下、よりさらに好ましくは９０分以下、特に好ましくは６０分以下であり、例えば、１０分以上１５０分以下の範囲が好ましく、より好ましくは１０分以上６０分以下の範囲である。
　工程（Ｂ）で使用される抗体は、前述した式（ｉ）で示す抗体修飾ペプチドと、クリック反応可能な第２の原子団とを有する抗体修飾リンカー（Ｌ２）を用いて、上記「（１－２）抗体」の項で詳述したヒト化抗体のＦｃ領域（定常領域）が部位特異的に修飾されたペプチド修飾抗体である。
　抗体修飾ペプチドは、天然アミノ酸及び非天然アミノ酸を問わないアミノ酸を組み合わせて用いて、例えば液相合成法、固相合成法、自動ペプチド合成法、遺伝子組み換え法及びファージディスプレイ法等のペプチド合成法に供することよって製造することができる。ペプチドの合成にあたり、必要に応じて、用いられるアミノ酸の官能基の保護を行ってもよい。これらは、例えば、国際公開２０１７／２１７３４７号パンフレット及び国際公開２０１８／２３０２５７号パンフレットに記載の方法に準じて行うことができる。
　抗体修飾リンカー（Ｌ２）は、抗体修飾ペプチドと、以下の式（Ｓ１）で表されるリンカーとが結合したものであってもよい。
　　＊－（（Ｌ１）ｍ－Ｚ）ｋ－Ｌ２－ＡＧ２　・・・（Ｓ１）
（式中、＊は、ペプチドのＮ末端又はＣ末端との結合部位を示し、
　Ｌ１は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）リンカー部であり、
　ｍは、１以上５０以下の整数であり、
　Ｚは、（Ｌ１）ｍとＬ２とを結合する第２リンカー部であり、
　ｋは、０又は１であり、
　Ｌ２は、第２のＰＥＧリンカー部であり、
　ＡＧ２は第２原子団である。）
　前記式（Ｓ１）において、Ｚの構造は、（Ｌ１）ｍとＬ２とを互いに結合するリンカー構造であれば特に限定されないが、例えば１以上５以下のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を含むことができる。この場合、Ｚに含まれるアミノ酸配列は、システイン残基を含むことが好ましく、システイン残基のチオール基とマレイミド基との結合により形成されたチオエーテル基を介してＬ２と結合していることがより好ましい。
　本発明において、Ｌ２を構成するＰＥＧリンカー部は、以下の式（Ｐ２）に示す構造を有していることが好ましい。式（Ｐ２）中、ｎは整数であり、好ましくは１以上５０以下、より好ましくは１以上２０以下、さらに好ましくは２以上１０以下、一層好ましくは２以上６以下である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
　ＰＥＧリンカー部の構造の一端は、市販されているＰＥＧ化試薬に由来する構造又はＰＥＧ化する際に通常用いられる試薬に由来する構造によって修飾されていてもよく、特に限定されないが、例えばジグリコール酸又はその誘導体、マレイミド又はその誘導体に由来する構造が例示される。
　抗体修飾リンカー（Ｌ２）への前記第２原子団の導入方法は、上述の方法によって所望のアミノ酸配列を有する抗体修飾ペプチドを得た後、該ペプチドを、溶解補助剤及び還元剤、並びに必要に応じて酸を加えた溶液に溶解し、該溶液に第２原子団として、アジド基又はｔｒａｎｓ－シクロオクテン（ＴＣＯ）を含む原子団の有機溶媒溶液を添加し、室温で攪拌することにより導入する方法が挙げられる。
　第２原子団としてアジド基を含む原子団を導入する場合には、市販のアジド基導入試薬を用いて、常法に従い、ペプチドのＮ末端又はＣ末端に直接アジド基を導入するか、又は上述したリンカー構造を介してアジド基を含む原子団を導入することができる。用いられるアジド基導入試薬としては例えば、シリルアジド、リン酸アジド、アルキルアンモニウムアジド、無機アジド、スルホニルアジド、又はＰＥＧアジド等が挙げられる。
　また、第２原子団としてＴＣＯを含む原子団を導入する場合には、ＴＣＯを含む市販のクリックケミストリー用試薬を用いて、常法に従い、ペプチドのＮ末端又はＣ末端に直接ＴＣＯを導入するか、又は上述したリンカー構造を介してＴＣＯを含む原子団を導入することができる。
　抗体修飾ペプチドと脱グリコシル化抗体とを結合させて、ペプチド修飾抗体を得る方法は、国際公開２０１７／２１７３４７号パンフレットの記載に準じて、例えば、上述した抗体修飾ペプチドと、脱グリコシル化抗体と、架橋剤と、必要に応じて触媒とを、適切な緩衝液中に分散させて行うことができる。ここで、架橋剤は上述のものを用いることができる。また、抗体修飾ペプチドと脱グリコシル化抗体とを結合させる際に、必要に応じて脱グリコシル化抗体を含む溶液を、限外ろ過フィルター等で処理して緩衝液に分散させる緩衝液置換を１回又は２回以上実施してから、抗体修飾ペプチドと結合させてもよい。
　本発明の抗体修飾ペプチドは、抗体、例えばＩｇＧのＦｃドメインに結合する。その場合、本発明の抗体修飾ペプチドは、ＩｇＧ結合ペプチドともいえる。本開示のＩｇＧ結合ペプチドは、上記Ｘａａ１において、ＩｇＧ　Ｆｃの特定の領域、すなわちヒトＩｇＧＦｃにおけるＥｕナンバリングに従うＬｙｓ２４８残基又はＬｙｓ２４６残基、好ましくはＬｙｓ２４８残基に対応するＦｃ領域のリジン残基と近接する。したがって、本開示のＩｇＧ結合ペプチドのＸａａ１を架橋剤で修飾し、ＩｇＧと架橋反応させることによって、ＩｇＧ結合ペプチドのＸａａ１は、上記リジン残基に対応する本開示のＩｇＧ　Ｆｃのリジン残基との間で部位特異的に架橋構造を形成させることができる。
　本開示において、「架橋剤」とは、本開示のＩｇＧ結合ペプチドと、ＩｇＧ　Ｆｃを、共有結合により連結させるための化学物質である。本開示の架橋剤は、当業者であれば適宜選択することが可能であり、所望のアミノ酸残基（例えば、リシン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸、及びアルギニン残基等）と結合可能な部位を少なくとも２箇所有する化合物とすることができる。その例として、限定するものではないが、ＤＳＧ（ｄｉｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ　ｇｌｕｔａｒａｔｅ、ジスクシンイミジルグルタレート）、ＤＳＳ（ｄｉｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ　ｓｕｂｅｒａｔｅ、ジスクシンイミジルスベレート）等のスクシンイミジル基を好ましくは２以上含む架橋剤、ＤＭＡ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｄｉｐｉｍｉｄａｔｅ・２ＨＣｌ、アジプイミド酸ジメチル二塩酸塩）、ＤＭＰ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ｐｉｍｅｌｉｍｉｄａｔｅ・２ＨＣｌ、ピメルイミド酸ジメチル二塩酸塩）、及びＤＭＳ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ｓｕｂｅｒｉｍｉｄａｔｅ・２ＨＣｌ、スベルイミド酸ジメチル二塩酸塩）等のイミド酸部分を好ましくは２以上含む架橋剤、並びにＤＴＢＰ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ　３，３’－ｄｉｔｈｉｏｂｉｓｐｒｏｐｉｏｎｉｍｉｄａｔｅ・２ＨＣｌ、３，３’－ジチオビスプロピオンイミド酸ジメチル二塩酸塩）及びＤＳＰ（ｄｉｔｈｉｏｂｉｓ（ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ　ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ）、ジチオビススクシンイミジルプロピオン酸）等のＳＳ結合を有する架橋剤が挙げられる。
　例えば、ＤＳＳ又はＤＳＧ等のスクシンイミジル基を含む架橋剤は、リシン残基の側鎖及びポリペプチドのＮ末端に存在する一級アミンと反応するため、ＩｇＧ結合ペプチドのＮ末端をブロッキングした上でＤＳＳ又はＤＳＧと反応させることで、リシン残基の側鎖のみをＤＳＳ又はＤＳＧで特異的に修飾することができる。このようなアミノ酸残基と架橋剤の組み合わせは、当業者であれば適宜選択することができる。
　ＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体の間の架橋反応は、特にＩｇＧ結合ペプチドの上記Ｘａａ１のアミノ酸残基と、ヒトＩｇＧ　ＦｃにおけるＥＵナンバリングＬｙｓ２４８又はＬｙｓ２４６、好ましくはＬｙｓ２４８の間で部位特異的に生じ得る。
　該混合工程の条件は、本開示のＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体の間で架橋反応が生じる条件で行うものであれば特に限定しない。例えば、本開示のＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体を、適当なバッファー中において、室温（例えば約１５℃～３０℃）で混合することにより反応を行うことができる。該混合工程は、必要に応じて架橋反応を促進する触媒を適量加えて行ってもよい。
　一例として、少なくとも水を含む溶媒を加えて、本開示の抗体を溶解する。この溶媒は、水以外には、例えば、ジメチルスルホキシド、アセトニトリル、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、若しくはテトラメチルアンモニウム酢酸緩衝液等の緩衝液等が挙げられる。緩衝液を用いる場合、抗体の安定性の観点から、２５℃におけるｐＨを好ましくは４．０以上１０．０以下、より好ましくは５．５以上８．５以下とする。抗体の濃度は、架橋反応の開始時において、好ましくは、下限を１．０μｍｏｌ／Ｌ以上、上限を１０００μｍｏｌ／Ｌ以下とし、上限について５００μｍｏｌ／Ｌ以下とすることが好ましい。
　次いで、架橋剤により修飾されたＩｇＧ結合ペプチドと必要に応じて触媒を加え、１０℃以上３０℃以下で分散させて行うことができる。
　該混合工程における本開示のＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体の混合比率は、特に限定しない。本開示のＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体のモル比率は、例えば１：１～２０：１、好ましくは２：１～２０：１又は５：１～１０：１とすることができる。
　ある好ましい態様では、上記混合工程においては、本開示の抗体に対してＩｇＧ結合ペプチド（モル比）は、０．５～２．２、好ましくは０．８～１．８で混合することができる。このようにすることで、一価の修飾抗体（すなわち、抗体に対して１つのＩｇＧ結合ペプチドを含む複合体）を効率よく得ることができる。
　該混合工程における混合時間（反応時間）は、本開示のＩｇＧ結合ペプチドと本開示の抗体の間で架橋反応が生じる限り限定するものではないが、例えば、１分～５時間、好ましくは１０分～２時間とすることができる。
　以上の工程を経て得られるペプチド修飾抗体は、脱グリコシル化抗体１分子に対して抗体修飾ペプチド１分子が結合した抗体（以下、「一価抗体」という）と、脱グリコシル化抗体１分子に対して抗体修飾ペプチド２分子が結合した抗体（以下、「二価抗体」という）とを任意の割合で含有する混合物であるが、これをそのままで以後の工程に供してもよく、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、各種クロマトグラフィー等の方法で、未修飾抗体と、一価抗体と、二価抗体と、を分離精製したあとでいずれかの価数の抗体のみを以後の工程に供してもよい。
　精製の結果、未修飾抗体と他の価数の抗体との分離ができない場合には、これらを含有する混合物として以降の工程に供してもよい。
　未修飾抗体と、一価抗体と、二価抗体とを分離精製する場合は、上記のいずれの精製方法で分離精製してもよいが、種々の充填剤を充填したカラムを用いることができ、例えば、プロテインＡ、プロテインＧ又は上述の抗体修飾ペプチド等のタンパク質が担体に結合した充填剤が充填されたカラムを用いることができる。このようなカラムに充填される充填剤の担体の形状としては、ゲル（例えばカラム用ゲル）、粒子、ビーズ、ナノ粒子、微粒子及びマクロビーズなどの形状が挙げられ、担体の材質としては、磁性物質、ラテックス、アガロース、ガラス、セルロース、セファロース、ニトロセルロース、ポリスチレン、その他の高分子材料が挙げられる。具体的には上述の抗体修飾ペプチドを、カラム用ゲルに結合させたＩｇＧ－ＢＰカラム（ＷＯ２０２１／０８０００８参照）が例示できる。
　このＩｇＧ－ＢＰカラムを用いて、抗体修飾ペプチドに対するそれぞれの相互作用の違いを利用して、未修飾抗体および一価抗体を相対的に多く含む第一の抗体組成物と、二価抗体を相対的に多く含む第二の抗体組成物とをそれぞれ分離精製することができる。第一の抗体組成物は、ある好ましい態様では、未修飾抗体と一価の修飾抗体とのモル比が４～４７：５３～９６、好ましくは４～３０：７０～９６、より好ましくは４～２０：８０～９６、さらに好ましくは、４～１０：９０～９６である。
　分離精製した第一の抗体組成物又は第二の抗体組成物は、そのまま以降の工程（Ｂ）におけるクリック反応に用いてもよく、含有するペプチド修飾抗体のタンパク質濃度を調節してから工程（Ｂ）におけるクリック反応に用いてもよい。
　工程（Ｂ）におけるクリック反応は、キレート剤が有するクリック反応可能な第１原子団と、ペプチド修飾抗体が有するクリック反応可能な第２原子団との間で実行されるものである。かかるクリック反応によりキレート剤と抗体とを連結する結合基（抗体との複合化を可能とする置換基）が形成される。
　ペプチド修飾抗体と工程（Ａ）で得られた錯体とがクリック反応可能であれば、これらの添加順序は問わず、例えば、溶媒を収容した反応容器に、該錯体及び該ペプチド修飾抗体の一方を添加し、次いで他方を添加して反応させてもよく、該キレート剤及び該抗体の一方を溶媒に分散した分散液に他方を添加して反応させてもよい。あるいは、溶媒を収容した反応容器に、これらを同時に添加して反応させてもよい。
　工程（Ｂ）のクリック反応に用いられる溶媒としては、水を含む溶媒を用いることができ、例えば、水、生理食塩水、又は酢酸ナトリウム緩衝液、酢酸アンモニウム緩衝液、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水、Ｔｒｉｓ緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、若しくはテトラメチルアンモニウム酢酸緩衝液等の緩衝液等を用いることができる。緩衝液を用いる場合、錯体及び抗体の安定性と、これらの結合効率とを両立する観点から、２５℃におけるｐＨを好ましくは４．０以上１０．０以下、更に好ましくは５．５以上８．５以下とする。
　反応液量は、特に限定されないが、製造工程における実用性の観点から、工程（Ｂ）の開始時において、下限は、０．００１ｍＬ以上が好ましく、０．０１ｍＬ以上がより好ましく、０．１ｍＬ以上がさらに好ましく、１ｍＬ以上がよりさらに好ましく、上限は、１０００ｍＬ以下が好ましく、１００ｍＬ以下がより好ましく、１０ｍＬ以下がさらに好ましく、１ｍＬ以下がよりさらに好ましく、例えば０．００１ｍＬ以上１０００ｍＬ以下の範囲が好ましく、０．１ｍＬ以上１０ｍＬ以下の範囲がより好ましい。
　また、キレート剤及び抗体の反応液中の濃度は、それぞれ独立して、工程（Ｂ）の開始時において、下限として、０．００１μｍｏｌ／Ｌ以上が好ましく、０．０１μｍｏｌ／Ｌ以上がより好ましく、０．１μｍｏｌ／Ｌ以上がさらに好ましく、１．０μｍｏｌ／Ｌ以上がよりさらに好ましく、上限として、１０００μｍｏｌ／Ｌ以下が好ましく、１００μｍｏｌ／Ｌ以下がより好ましく、例えば、０．１μｍｏｌ／Ｌ以上１０００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲が好ましく、１μｍｏｌ／Ｌ以上１００μｍｏｌ／Ｌ以下の範囲であることが、目的とする複合体の収量の観点からより好ましい。
　抗体の意図しない変性を防ぎつつ、反応効率を高める観点から、工程（Ｂ）におけるクリック反応は、反応温度の上限は、５０℃以下が好ましく、４０℃以下がより好ましい。また、反応温度の下限は、反応が進行する温度であれば特に制限はないが、１５℃以上が好ましい。クリック反応の反応時間は、上述の反応温度であることを条件として、好ましくは５分以上、より好ましくは１０分以上であり、２４時間以下が好ましく、より好ましくは２０時間以下であり、例えば、５分以上２４時間以下の範囲が好ましく、より好ましくは１０分以上２０時間以下の範囲である。
　得られた複合体は、これをそのままで用いてもよく、あるいは、ろ過フィルター、メンブランフィルター、種々の充填剤を充填したカラム、クロマトグラフィー等を用いて精製してもよい。
　工程（Ａ）及び（Ｂ）によって製造される複合体は、脱グリコシル化抗体のＦｃ領域のリシン残基がキレート剤により特異的に修飾されたものである。この複合体は、該抗体１分子に対し、前記キレート剤を１分子又は２分子備える。キレート剤は、リンカー（Ｌ）を介して、本発明の抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している。該リンカー（Ｌ）は、キレート剤に接続するキレートリンカー（Ｌ２）、該リンカー（Ｌ２）に接続する第１原子団、第１原子団とクリック反応し得る第２原子団、第２原子団に接続する抗体修飾リンカー（Ｌ１）（上記式（ｉ）で表される抗体修飾ペプチドを含む）で構成される。従って、該リンカー（Ｌ）は、第１原子団と第２原子団とに由来する化学構造を有する。このような化学構造としては、前述の式（１０ａ）又は（１０ｂ）で表されるトリアゾール骨格含有構造又は前述の式（１０ｃ）で表されるピリダジン骨格含有構造が考えられる。式（１０ａ）と式（１０ｂ）は異性体の関係にあるため任意の割合で含まれていてもよい。
（１－７）放射性医薬
　放射性医薬とは、本発明の複合体を含み、対象の生体内への投与に適した形態となっている組成物を指す。放射性医薬は、例えば上述の（１－６）に示す方法で製造した複合体をそのままで、又はこれを精製したあとで、水を主体とし、且つ生体と略等張の溶媒に溶解させて製造することができる。この場合、放射性医薬は水溶液の形態であることが好ましく、必要に応じて、薬学的に許容される他の成分を含んでいてもよい。放射性医薬は、その有効量が、経口的に、又は静脈内、皮下、腹腔内若しくは筋肉内等の非経口的に生体に投与され、がんの治療、がんの診断、あるいは病巣の検出等に用いられる。
　ここで投与対象としてはヒト、またはマウス、ラット、サル、モルモット、チンパンジ－、ヒツジ、ヤギ、イヌ、ネコ、ブタ、ウシもしくはウマなどの動物であるが、特に限定されるものではない。好ましくはヒトである。
　対象疾患は用いる抗体の特性に応じて決定されるが、抗ＨＥＲ２抗体の場合、ＨＥＲ２が過剰発現している疾患が挙げられる。具体的には、ＨＥＲ２過剰発現が確認された乳がんやＨＥＲ２過剰発現が確認された治癒切除不能な進行・再発の胃がん等が挙げられる。抗ＥＧＦＲ抗体の場合、ＥＧＦＲが過剰発現している疾患が挙げられる。具体的には、切除不能な進行・再発大腸がんや頭頸部がん等が挙げられる。抗ＣＤ２０抗体の場合、ＣＤ２０が過剰発現している疾患が挙げられる。具体的には、ＣＤ２０陽性のＢ細胞性非ホジキンリンパ腫、免疫抑制状態下のＣＤ２０陽性のＢ細胞性リンパ増殖性疾患、ヴェゲナ肉芽腫症、顕微鏡的多発血管炎、難治性のネフローゼ症候群、腎移植・肝移植時のＡＢＯ血液型不適合移植における抗体関連型拒絶反応の抑制等が挙げられる。
　ここでの「有効量」とは、投与対象における診断上または治療上有効な効果を得ることができる量である。対象に投与するべき有効量は、対象の種類、対象の体重、投与する剤形（錠剤、注射剤など）および経路（経口投与、非経口投与など）、および疾患（例、がん）の重篤度などにより異なる。医師や獣医師はそれらの因子を考慮して、適切な有効量を決定することができる。
　放射性金属核種として治療効果を有するもの、具体的には、α線を放出する核種又はβ線を放出する核種（好ましくは、Ａｃ－２２５、Ｙ－９０、Ｌｕ－１７７であり、より好ましくはＡｃ－２２５）を選択することにより、本発明の放射性医薬は、がんの放射線内用療法に用いることができる。この放射線内用療法では、本発明の放射性医薬を静注や経口で投与し、がん原発巣や転移巣のような病巣部位に本発明の放射性複合体を集積させ、放射性金属核種から放出される放射線により、病巣部位のがん細胞を破壊することができる。本発明の放射性医薬の投与量、用量は、有効成分の有効性、投与の形態・経路、がんの進行ステージ、患者の体型・体重・年齢、併用する他の疾患の治療薬の種類や量に応じ、適宜選択される。
　また、放射性金属核種として、ポジトロンを放出する放射性核種やγ線を放出する放射性核種（好ましくは、Ｚｒ－８９）を選択することで、がんの診断又は病巣の検出に用いることができる。ポジトロンを放出する放射性核種が用いられた放射性医薬の場合、ＰＥＴ（Positron Emission Tomography）検査に好適に用いることができ、γ線を放出する放射性核種が用いられた放射性医薬の場合、ＳＰＥＣＴ（Single Photon Emission Computed Tomography）検査に好適に用いることができる。これを上述したがんの放射線内用療法におけるがんの診断又は病巣の検出に併用してもよい。本発明のがんの診断用放射性医薬は、がんの放射線内用療法を行う前の診断に用いてもよいし、がんの放射線内用療法を行った後の診断に用いてもよい。がんの放射線内用療法を行う前の診断に用いられることによって、α線を放出する金属核種を備えた本発明の放射性医薬を用いたがんの放射線内用療法を実行するかどうかの治療選択の判断に用いることができる。また、がんの放射線内用療法を行った後の診断に用いられることによって、本発明の放射性医薬を用いたがんの放射線内用療法の効果があるかどうかの判定や投与量の増減などの治療計画の適正化に用いることができる。
（２）複合体２
　別の一実施態様として、本発明は、放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、上記放射性核種がα線核種である、複合体を提供する。
　本発明の複合体において、キレート剤は、抗体をランダムに修飾していてもよく、この場合、抗体１分子以上８分子以下備えることが好ましい。
　抗体をランダムに修飾する場合、キレート剤またはリンカーと抗体とのコンジュゲーション工程においては、種々の抗体の化学修飾法が用いられる。具体的には、(ａ)～（ｅ）の方法が挙げられる。
（ａ）アミンカップリング法（N-ヒドロキシスクシミジル(NHS)基で活性化されたカルボキシル基をもつキレート剤またはキレートを用いて抗体のリシン残基のアミノ基を修飾する方法）
（ｂ）抗体のヒンジ部位にあるポリペプチド鎖間のジスルフィド結合（SS結合）を部分的に還元することによって生じるスルフヒドリル(SH)基に対して、SH基に反応性を有するマレイミド基を持つキレート剤またはリンカーで修飾する方法
（ｃ）遺伝子工学によるアミノ酸変異によって、抗体に新たに導入されたシステインに対してマレイミド基をもつキレート剤またはリンカーを修飾する方法
（ｄ）遺伝子工学によるアミノ酸変異によって、抗体に新たに導入されたアジド化リシンのアジド基に、クリック反応を利用して、アルキン（例えばDibenzylcyclooctyne: DBCO）をもつキレート剤またはリンカーを修飾する方法
（ｅ）トランスグルタミナーゼを利用して、抗体の特定の位置に導入されたグルタミンに、リシンの側鎖を有するキレート剤またはリンカーを修飾する方法
　キレート剤における放射性核種がα線核種であり、キレート剤が抗体をランダムに修飾していてもよいこと以外は、上記「（１）複合体１」と同様の定義が適用される。
　以下の態様も本発明の技術的思想に包含される。
（１）放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、
　該キレート剤が、リンカーを介して、前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、複合体。
（２）該リンカーが、下記式（ｉ）で表される、１３以上１７以下のアミノ酸残基からなる抗体修飾ペプチドを含む、（１）に記載の複合体。
(Xa)-Xaa1-(Xb)-Xaa2-(Xc)-Xaa3-(Xd)・・・（ｉ）
（式中、Ｘａ、Ｘｂ、Ｘｃ及びＸｄは、それぞれ、連続するａ個のＸ、連続するｂ個のＸ、連続するｃ個のＸ、及び連続するｄ個のＸを表し、
Ｘは、側鎖にチオール基及びハロアセチル基のいずれも有しないアミノ酸残基であり、
ａ、ｂ、ｃ及びｄはそれぞれ独立に１以上５以下の整数で、かつａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を満たし、
Ｘａａ１及びＸａａ３は、それぞれ独立に、
側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、かつ、ジスルフィド結合を介して結合しているか若しくはスルフィド基がリンカーを介して結合しており、又は、
一方が、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、他方が、側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、かつ、チオエーテル結合を介して結合しており、
Ｘａａ２は、リシン残基、アルギニン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸である。）
（３）該抗体修飾ペプチドが、前記式（ｉ）中、Ｘａａ２がリシン残基である、（２）に記載の複合体。
（４）該抗体修飾ペプチドが、配列番号２（ただし、Ｘａａ２はリシン残基である）で表されるアミノ酸配列からなる抗体修飾ペプチドを含む、（２）又は（３）記載の複合体。
（５）該キレート剤が、下記式（Ａ）で表される化合物又はその塩に由来する構造を有する、（１）～（４）のいずれかに記載の複合体。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
（式（Ａ）中、Ｒ１１、Ｒ１３及びＲ１４は、それぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）(ＣＨ２)ｐＣＯＯＨからなる基であり、Ｒ１２又はＲ１５の一方が、水素原子、カルボキシル基、又は、炭素数２若しくは３のカルボキシアルキル基であり、他方が、前記抗体と複合化するための置換基であり、ｐが０以上３以下の整数であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基であるときＲ１５は水素原子であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基でないときＲ１５は前記抗体と複合化するための置換基である。）
（６）該リンカーが、クリック反応で形成された結合基を有する、（１）～（５）のいずれかに記載の複合体。
（７）該放射性金属核種がＡｃ－２２５、Ｙ－９０、Ｌｕ－１７７又はＺｒ－８９である、（１）～（６）のいずれかに記載の複合体。
（８）放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、
該放射性核種がα線放出核種である、複合体。
（９）α線放出核種がＡｃ－２２５である、（８）記載の複合体。
（１０）該脱グリコシル化された抗体がヒトＩｇＧ抗体である、（１）～（９）のいずれか１項に記載の複合体。
（１１）脱グリコシル化がＮ型糖鎖の切断による、（１）～（１０）のいずれかに記載の複合体。
（１２）Ｎ型糖鎖の切断がＰＮＧａｓｅＦでの処理による、（１１）に記載の複合体。
（１３）（１）～（１２）のいずれかに記載の複合体を有効成分として含有する、放射性医薬。
（１４）がんのＲＩ内用療法に用いられる、（１３）に記載の放射性医薬。
（１５）がんの診断に用いられる、（１３）に記載の放射性医薬。
（１６）放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体とを複合化して、該キレート剤と該抗体との複合体を生成する複合化工程を含む、（１）～（１２）のいずれかに記載の複合体の製造方法。
（１７）該複合化工程がクリック反応を実行することにより実施される、（１６）記載の製造方法。
（１８）該複合化工程が、該抗体と、下記式で表されるＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯの放射性金属錯体とをクリック反応させることで実施される、（１７）に記載の製造方法。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000015
　以下、実施例により本発明を更に詳細に説明する。しかしながら本発明の範囲は、かかる実施例に制限されない。
［実施例１］８９Ｚｒ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた脱グリコシル化抗体－ＲＩコンジュゲートの製造
（１．抗体組成物の製造）（工程１）
（１－１．抗体修飾リンカーの製造）
　国際公開２０１７／２１７３４７号パンフレットに記載の方法で、下記（Ｐ３）で表される１７個のアミノ酸残基を含むペプチド（配列番号１９）を得た。このペプチドのアミノ酸配列は、配列番号２のＸａａ２がリシン残基である配列と同一であり、リシン残基の側鎖末端アミノ基がＲ１で示される構造で修飾されていた。また、２つのシステイン残基で互いにジスルフィド結合しており、ペプチドのＮ末端はジグリコール酸及び８つのＰＥＧを有するリンカー（Ｌ１）構造を介して、第２原子団であるアジド基を含む原子団として、エチルアジドが結合しているものであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
　（式（Ｐ３）中、Ｌｙｓはリシンを、Ｇｌｙはグリシンを、Ｐｒｏはプロリンを、Ａｓｐはアスパラギン酸を、Ｃｙｓはシステインを、Ａｌａはアラニンを、Ｔｙｒはチロシンを、Ｈｉｓはヒスチジンを、Ｇｌｕはグルタミン酸を、Ｌｅｕはロイシンを、Ｖａｌはバリンを、Ｔｈｒはスレオニンを、Ｔｒｐはトリプトファンを、Ｐｈｅはフェニルアラニンを示す。）
（１－２．抗体修飾リンカーによる抗体の修飾）
　国際公開２０１７／２１７３４７号パンフレット記載の方法に準じて、上述のペプチドＤＳＧ（ジスクシンイミジルグルタレート）を反応させた。得られたＤＳＧ修飾ペプチドを含有する溶液と、Ｊ．Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．２０１９，６０，１１７４に記載の方法で得られたＰＮＧａｓｅＦによって脱グリコシル化された抗体（Ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂ）を含有する溶液とを、０．０２ｍｏｌ／Ｌ酢酸・酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．０）に混合し、室温で６０分反応させて、ペプチド修飾抗体を含む溶液を得た。このペプチド修飾抗体は、上記のペプチドによって抗体のＦｃ領域が部位特異的に修飾されたものであった。
（１－３．一価抗体の分離精製）
　次いで、ＩｇＧ－ＢＰカラムに通液して、未標識抗体及び一価抗体を相対的に多く含む第一の抗体組成物を得た。回収した画分に含まれる一価抗体の濃度が１５ｍｇ／ｍＬになるように０．１ｍｏｌ／Ｌ塩化ナトリウム含有０．０２ｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で濃度を調整した。得られた第一の抗体組成物を含む溶液を後述の標識工程に供した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　下記式で表されるＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯをＣｈｅｍ．Ｅｕｒ．Ｊ．２０１２，１８，７８３４－７８４１に記載の方法を基にして製造した。ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを、溶媒として０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に分散させて、キレート剤を０．３ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液とした。この分散液０．０３ｍLと、０．１５ｍｏｌ／Ｌゲンチジン酸含有０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）０．０３ｍＬと、放射性金属源として８９Ｚｒイオン含有溶液（８９Ｙ（ｐ，ｎ）８９Ｚｒ法にて生成した８９Ｚｒを０．１ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液、放射能濃度９１０ＭＢｑ／ｍＬに調整、液量０．０３ｍＬ）２７．３ＭＢｑとを混合した反応液を、加熱条件下で反応させて、８９Ｚｒ錯体溶液を得た。キレート剤と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート剤：８９Ｚｒイオン＝約１５００：１であり、反応液の加熱温度は７０℃、加熱時間は１時間とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
　得られた８９Ｚｒ錯体の放射化学的純度を次の方法で測定した。すなわち８９Ｚｒ錯体溶液の一部を薄層クロマトグラフィー（Ａｇｉｌｅｎｔ社製、型番：ＳＧＩ０００１、展開溶媒はアセトニトリル：０．１ｍｏｌ／Ｌ　ＥＤＴＡ溶液（ｐＨ５．０）の混液（体積比１：１））で展開し、その後、ラジオ－γ－ＴＬＣアナライザー（ｒａｙｔｅｓｔ製、ＭＯＤＥＬ　ＧＩＴＡ　Ｓｔａｒ）で測定した。検出された全放射能（カウント）に対する、原点付近に検出されるピークの放射能（カウント）の百分率を８９Ｚｒ錯体の標識率（％）とした。その結果、８９Ｚｒ錯体の標識率は９６．０％であった。ここで、標識率（％）とは、錯体形成工程での仕込み放射能に対する８９Ｚｒ錯体の放射能を意味する。得られた８９Ｚｒ錯体溶液は、そのまま標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　上述の工程２を経て得られた未精製のままの８９Ｚｒ錯体の溶液に、上記の工程１で得られたペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液を添加し、３７℃で２時間クリック反応させて、８９Ｚｒ錯体標識抗体を得た。反応時のＤＢＣＯ基とアジド基とのモル比は約１：２．４であった。未精製時の８９Ｚｒ錯体標識抗体の反応率（％）は８９．９％であった。ここで、反応率（％）とは、錯体形成工程での標識率（％）に対する８９Ｚｒ錯体標識抗体の放射化学的純度（ＲＣＰ）（％）を意味する。
　更に、３７℃で２時間反応させて得られた８９Ｚｒ錯体標識抗体の溶液を限外濾過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰは９６．５％、放射化学的収率（ＲＣＹ）は６６．７％であった。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３で製造した８９Ｚｒ錯体標識抗体をそれぞれ５ｍＬエッペンチューブ（ＬｏＢｉｎｄ、エッペンドルフ社製）に一部抜き取り、保存緩衝液（８４ｍｇ／Ｌ　ＰＳ２０含有１９ｇ／Ｌトレハロース水和物、４７０ｍｇ／Ｌ Ｌ－ヒスチジン塩酸塩、３００ｍｇ／Ｌ　Ｌ－ヒスチジン水溶液）で希釈した。
［比較例１］８９Ｚｒ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた抗体（脱グリコシル化されていない）との複合体の製造
（１．抗体調製工程）（工程１）
　抗体は脱グリコシル化されていないＴｒａｓｔｕｚｕｍａｂを用いた。抗体修飾リンカーは実施例１に記載のものと同じものを使用し、一価抗体の分離精製も実施例１と同様に実施した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを、溶媒として０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に分散させて、キレート剤を０．３ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液とした。この分散液０．０３ｍLと、０．１５ｍｏｌ／Ｌゲンチジン酸含有０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）０．０３ｍＬと、放射性金属源として８９Ｚｒイオン含有溶液（８９Ｙ（ｐ，ｎ）８９Ｚｒ法にて生成した８９Ｚｒを０．１ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液、放射能濃度８９０ＭＢｑ／ｍＬに調整、液量０．０３ｍＬ）２６．７ＭＢｑとを混合した反応液を、加熱条件下で反応させて、８９Ｚｒ錯体溶液を得た。キレート剤と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート剤：８９Ｚｒイオン＝約１５００：１であり、反応液の加熱温度は７０℃、加熱時間は１時間とした。
　得られた８９Ｚｒ錯体の放射化学的純度を、実施例１と同様に測定した。その結果、８９Ｚｒ錯体の標識率は９７．７％であった。得られた８９Ｚｒ錯体溶液は、そのまま標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　上述の工程２を経て得られた未精製のままの８９Ｚｒ錯体溶液に実施例１と同様にして得られたペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液を添加し、３７℃で２時間クリック反応させて、８９Ｚｒ錯体標識抗体を得た。反応時のＤＢＣＯとアジドとのモル比は約１：２．４であった。未精製時の８９Ｚｒ錯体標識抗体の反応率（％）は８８．９％であった。
　さらに、３７℃で２時間反応させて得られた８９Ｚｒ錯体標識抗体の溶液を限外濾過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰは９７．１％、ＲＣＹは７３％であった。８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰ及びＲＣＹの測定方法は、実施例１と同様に行った。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３で製造した８９Ｚｒ錯体標識抗体をそれぞれ５ｍＬエッペンチューブ（ＬｏＢｉｎｄ、エッペンドルフ社製）に一部抜き取り、保存緩衝液（８４ｍｇ／Ｌ ＰＳ２０含有１９ｇ／Ｌトレハロース水和物、４７０ｍｇ／Ｌ　Ｌ－ヒスチジン塩酸塩、３００ｍｇ／Ｌ　Ｌ－ヒスチジン水溶液）で希釈した。
［評価１］凝集体の割合
　８９Ｚｒ錯体標識抗体に含まれる凝集体の割合を、サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）で確認した。液体クロマトグラフィー装置としてＷａｔｅｒ社製の２６９５型セパレーションモジュール又はｅ２６９５型セパレーションモジュールを用い、ＵＶ検出器としてＷａｔｅｒｓ社製の２４８９型ＵＶ／Ｖｉｓ検出器を使用し、下記の条件で分析した。製造終了後の各成分の割合を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
〔ＨＰＬＣ条件〕
　カラム：ＴＯＳＯＨ　ＴＳＫｇｅｌ ｇｕａｒｄｃｏｌｕｍｎＳＷＸＬ（６ｍｍ×４ｃｍ），ＴＯＳＯＨ　ＴＳＫｇｅｌ　Ｇ３０００ＳＷＸＬ（５μｍ、７．８×３０ｃｍ）×２本（直列）
　カラム温度：２５℃付近の一定温度
　移動相：０．２ｍｏｌ／Ｌアルギニン塩酸塩含有０．１ｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液（ｐＨ６．８）
　流量：毎分 １．０ｍＬ
　面積測定範囲：３０分
　検出波長：２８０ｎｍ
［評価２］抗原への結合性
　抗原への結合活性はｉｎ　ｖｉｔｒｏ　オートラジオグラフィー（ＡＲＧ）で確認した。ＡＴＣＣ（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｙｐｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）から購入したＨＥＲ２陽性のヒト卵巣がん細胞株であるＳＫＯＶ３細胞およびＨＥＲ２陰性のヒト乳がん細胞株であるＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞を雌性ＳＣＩＤ　Ｂｅｉｇｅマウス（日本チャールス・リバー）の脇腹皮下にそれぞれ５×１０６ｃｅｌｌｓ投与して担癌マウスを作製した。その後、ＳＫＯＶ３腫瘍およびＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍を摘出してティシュー・テック　Ｏ．Ｃ．Ｔ．コンパウンド（サクラファインテックジャパン）に包埋して凍結切片を作製した。１％ウシ血清アルブミン含有ＰＢＳに実施例１および比較例１で得られた放射性複合体をそれぞれ５ｋＢｑ／ｍＬとなるように添加し、ＳＫＯＶ３腫瘍切片およびＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍切片を浸漬した。切片をイメージングプレートにコンタクトした後、スキャナータイプ画像解析装置（ＧＥヘルスケアジャパン製、Ｔｙｐｈｏｏｎ　ＦＬＡ　７０００）で読み取り、切片に結合した放射能を評価した。結果を図１に示す。図中の縦軸は，組織中に任意の関心領域（ＲＯＩ）を設定し、その単位面積当たりの強度を定量し、標準線源Ｓｔｄ．の強度で除した値を示す（標準線源：切片を浸漬した放射性複合体含む溶液を５μＬスポット）。ＲＯＩは組織中に１０個設定し、その標準偏差を取った。
　実施例１および比較例１の記載に従って製造したいずれの放射性複合体でもＨＥＲ２に対する結合活性が確認された。実施例１および比較例１の記載に従って製造した放射性複合体はＨＥＲ２が陽性であるＳＫＯＶ３腫瘍切片により強く結合し、ＨＥＲ２が陰性であるＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍切片には結合せず、ＨＥＲ２選択的な結合を示した。
　一方、糖鎖を切断した抗体も切断していない抗体もＨＥＲ２ヘの結合能に違いはなかった。
［評価３］体内分布評価
　マウスを用いて、ＳＫＯＶ３細胞の皮下担癌のモデルを作製し、実施例１及び比較例１の記載に従って製造した放射性複合体の生体内における各組織への分布を確認した。ＳＫＯＶ３細胞を、５０％マトリゲルを含むＰＢＳに懸濁し、５週齢の雌性ＮＳＧ（正式系統名：ＮＯＤ.Ｃｇ－ＰｒｋｄｃｓｃｉｄＩｌ２ｒｇｔｍ１Ｗｊｌ /ＳｚＪ）マウス（日本チャールス・リバー）の左鼠径部皮下に５×１０６ｃｅｌｌｓ移植して担癌マウスを作製した。腫瘍体積がおおよそ５０～２００ｍｍ３となるまで担癌マウスを飼育し、実施例１又は比較例１の記載に従って製造した放射性複合体を０．５～０．６ＭＢｑ／匹（各ｎ＝３）の用量で尾静脈内投与した。各放射性複合体の投与２４、４８及び１２０時間後に、イソフルラン麻酔下にて心臓から採血を行い、心臓、肺、肝臓、脾臓、膵臓、胃、小腸、大腸、腎臓、膀胱、大腿筋、大腿骨、皮膚、腫瘍を採取し、それ以外の組織を残全身として回収した。各放射性複合体を投与したマウスは、解剖時間点まで代謝ケージで飼育し、糞及び尿を採取した。採取した各組織、血液の重量を測定し、γ線シンチレーション測定装置（ＪＤＣ－１７１２，日立製作所）にて各組織、血液、糞および尿の計数率を測定した。得られた組織重量及び計数率から、単位重量当たりの集積率（％ＩＤ／ｇ）を算出した。結果を図２に示す。
　実施例１に従って製造した８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体は、比較例１の記載に従って製造した８９Ｚｒ標識糖鎖未処理抗体（脱グリコシル化されていない抗体）に比較して、いずれの時間点においても細網内皮系組織である肝臓及び脾臓で集積量が低かった（図３）。また血液中に滞留した抗体量は、いずれの時間点においても８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体が８９Ｚｒ標識糖鎖未処理抗体よりも多く、腫瘍集積性は８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体の方が高い結果であった。
［実施例２］２２５Ａｃ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた脱グリコシル化抗体－ＲＩコンジュゲートの製造
（１．脱グリコシル化抗体調製工程）（工程１）
　実施例１に記載した脱グリコシル化抗体と抗体修飾リンカーを用いて、抗体修飾リンカーによる抗体の修飾を行い、さらに実施例１に記載した一価抗体の分離精製法で得られた第一の抗体組成物を含む溶液を後述の標識工程に供した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを、溶媒として０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に分散させて、キレート剤を０．３ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液とした。この分散液０．０８０ｍＬと０．２ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液０．０３４ｍＬと、放射性金属源として２２５Ａｃイオン含有溶液（０．２ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液、放射能濃度１５７ＭＢｑ／ｍＬ、ＲＯＳＡＴＯＭ製より調製、液量０．００６ｍＬ）０．９４ＭＢｑとを混合した反応液を加熱条件下で反応させて、２２５Ａｃ錯体溶液を得た。その際のキレート剤と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート剤：２２５Ａｃイオン＝約１２３０４：１であり、反応液の加熱条件は７０℃、加熱時間は３０分とした。
　得られた２２５Ａｃ錯体の放射化学的純度を実施例１と同様に測定した。その結果、２２５Ａｃ錯体の標識率は８１％であった。得られた２２５Ａｃ錯体溶液から０．０４ｍＬ（３００ｋＢｑ、配位子８ｎｍоｌ分）を標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　上述の工程２を経て得られた未精製のままの２２５Ａｃ錯体の溶液に工程１で得られたペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液を０．１１７ｍL添加し、３７℃で１．５時間クリック反応させ、２２５Ａｃ錯体標識抗体を得た。反応時のＤＢＣＯとアジドのモル比は約１：１．５であった。未精製時の２２５Ａｃ錯体標識抗体の反応率は７７．６％であった。
　さらに、得られた２２５Ａｃ錯体標識抗体の溶液を限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の２２５Ａｃ錯体標識抗体のＲＣＰは９９．４％、ＲＣＹは６２．０％であった。２２５Ａｃ錯体標識抗体のＲＣＰおよびＲＣＹの測定は、実施例１と同様の方法で行った。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３で製造した２２５Ａｃ錯体標識脱グリコシル化抗体を実施例１と同様に保存緩衝液で希釈した。
［比較例２］２２５Ａｃ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた抗体（脱グリコシル化されていない）との複合体の製造
（１．抗体調製工程）（工程１）
　比較例１に記載した脱グリコシル化されていない抗体と抗体修飾リンカーを用いて、抗体修飾リンカーによる抗体の修飾を行い、さらに実施例１に記載した一価抗体の分離精製法で得られた第一の抗体組成物を含む溶液を後述の標識工程に供した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを、溶媒として０．１５６ｍｏｌ／Ｌ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）に分散させて、キレート剤を０．３ｍｍｏｌ／Ｌ含む分散液とした。この分散液０．０８０ｍＬと０．２ｍｏｌ／Ｌ塩酸水溶液０．０３４ｍＬと、放射性金属源として２２５Ａｃイオン含有溶液（０．２ｍｏｌ-／Ｌ塩酸水溶液、放射能濃度１５７ＭＢｑ／ｍＬ、ＲＯＳＡＴＯＭ製より調製、液量０．００６ｍＬ）０．９４ＭＢｑとを混合した反応液を加熱条件下で反応させて、２２５Ａｃ錯体溶液を得た。その際のキレート剤と放射性金属イオンとのモル比率は、キレート剤：２２５Ａｃイオン＝約１２３０４：１であり、反応液の加熱条件は７０℃、加熱時間は３０分とした。
　得られた２２５Ａｃ錯体のＲＣＰを実施例１と同様に測定した。その結果、２２５Ａｃ錯体のＲＣＰは８１％であった。得られた２２５Ａｃ錯体溶液から０．０４ｍＬ（３０７ｋＢｑ、配位子８ｎｍоｌ分）を標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　上述の工程２を経て得られた未精製のままの２２５Ａｃ錯体の溶液に工程１で得られたペプチド修飾抗体（一価抗体）を含む溶液を０．１３７ｍL添加し、３７℃で１時間クリック反応させることで、２２５Ａｃ錯体標識抗体を得た。反応時のＤＢＣＯとアジドのモル比は約１：１．７であった。未精製時の２２５Ａｃ錯体標識抗体の反応率は７９．８％であった。
　さらに、３７℃で２時間反応させて得られた２２５Ａｃ錯体標識抗体の溶液を限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の２２５Ａｃ錯体標識抗体のＲＣＰは９９．７％、ＲＣＹは６０．９％であった。２２５Ａｃ錯体標識抗体のＲＣＰおよびＲＣＹの測定は，実施例１と同様に行った。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３で製造した２２５Ａｃ錯体標識抗体を比較例１と同様に保存緩衝液で希釈した。
［評価４］凝集体の評価
　２２５Ａｃ錯体標識抗体に凝集体が含まれるかを、動的光散乱法（ＤＬＳ）で確認した。ＤＬＳ測定装置としてＷＹＡＴＴ社製ＤｙｎａＰｒｏ　ＮａｎｏＳｔａｒ（製造番号：６９３－ＤＰＮ）を用い、下記の条件で分析した。製造終了後の平均粒子径は、２２５Ａｃ錯体標識脱グリコシル化抗体で１０．６ｎｍ、２２５Ａｃ錯体標識糖鎖未処理抗体では９．２ｎｍであった。いずれも抗体の平均的な粒子径である９～１２ｎｍの範囲内であったことから凝集等の進行は示唆されなかった。
〔ＤＬＳ測定条件〕
測定時間：５秒
測定間隔：１秒
測定回数：１０回×３回
測定温度：２５℃
レーザー波長：６５８ｎｍ
レーザー出力：１０～１００ｍＷ（可変）
［評価５］抗原への結合性
　評価２に記載した方法と同様にＳＫＯＶ３腫瘍およびＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍の凍結切片を作製した。１％ウシ血清アルブミン含有ＰＢＳに実施例２および比較例２で得られた放射性複合体をそれぞれ１ｋＢｑ／ｍＬとなるように添加し、ＳＫＯＶ３腫瘍切片およびＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍切片を浸漬した。評価２に記載した方法と同様に切片に結合した放射能を評価した結果を図４に示す。
　実施例２および比較例２の記載に従って製造した放射性複合体はＨＥＲ２が陽性であるＳＫＯＶ３腫瘍切片により強く結合し、ＨＥＲ２が陰性であるＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍切片には結合せず、ＨＥＲ２選択的な結合を示した。一方、糖鎖を切断した抗体も切断していない抗体もＨＥＲ２ヘの結合能に違いはなかった。
［評価６］２２５Ａｃ錯体標識抗体を用いた薬効評価
　マウスを用いてＳＫＯＶ３の皮下担癌モデルを作製し、実施例２及び比較例２の記載に従って製造した放射性複合体の抗腫瘍効果を確認した。
　ＳＫＯＶ３細胞を、５０％マトリゲルを含むＭｃＣｏｙ’ｓ　５Ａ培地（ｇｉｂｃｏ社製）に懸濁し、５週齢の雌性ＮＳＧマウス（ジャクソンラボラトリージャパン社製）の右肩皮下に５×１０６ｃｅｌｌｓ投与して担癌マウスを作製した。腫瘍体積がおおよそ５０～２００ｍｍ３になるまで成長させ、腫瘍径測定に適した形状の個体から無作為に群分けを実施した。その際の各マウスの腫瘍体積と体重を表２に示す。腫瘍体積は以下の式に従って算出した。
　腫瘍体積（ｍｍ３）＝（腫瘍長径×（腫瘍短径）２）×１／２
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　２２５Ａｃ錯体標識抗体をいずれも１０ｋＢｑまたは５ｋＢｑ／匹（Ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂとしてそれぞれ約１００μｇ／匹および約５０μｇ／匹）の用量で尾静脈内投与した。また、コントロール群として、保存緩衝液を投与したＶｅｈｉｃｌｅ群を設定した。各群は６匹とし、投与後３０日まで経時的に、一般状態の観察、体重及び腫瘍体積を計測した。体重が投与日の体重の８０％を下回りかつ、運動量や摂餌行動に異常が見られた個体は、人道的エンドポイントを適用し安楽殺した。経時的な腫瘍体積の変化を図５に、経時的な体重変化を図６に、観察期間中の生存個体数を図７に示す。図５のグラフの縦軸は腫瘍体積を表し、横軸は各薬剤を投与してからの経過日数を示す。グラフは各群の腫瘍体積の平均値±標準偏差で表す。図６のグラフの縦軸はマウスの体重を表し、横軸は各薬剤を投与してからの経過日数を示す。図７のグラフの縦軸は生存個体数、横軸は各薬剤を投与してからの経過日数を示す。図中の「＊」は人道的エンドポイントの適用により個体を安楽殺した時点を示す。
　２２５Ａｃ錯体標識抗体を投与した群は、投与後３０日点において、Ｖｅｈｉｃｌｅ群と比較して抗腫瘍効果に差が認められた。また、１０ｋＢｑ投与群、５ｋＢｑ投与群のいずれにおいても、実施例２で製造した抗体を投与した群の平均腫瘍体積が比較例２で製造した抗体より小さくなったため、脱グリコシル化した抗体の方が強い抗腫瘍効果を示すことが示唆された。
　また、体重や運動量の減少により人道的エンドポイントを適用した個体は、実施例２で製造した抗体を投与した群で合計１匹であったのに対し，比較例２で製造した抗体を投与した群では合計５匹であった。この結果から、抗体を脱グリコシル化することにより，体重や運動量減少といった副作用を低減できることが示唆された。
［実施例３］８９Ｚｒ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた脱グリコシル化抗体－ＲＩコンジュゲートの製造－２
（１．抗体調製工程）（工程１）
　抗体は脱グリコシル化されたＣｅｔｕｘｉｍａｂを用いた。抗体修飾リンカーは実施例１に記載のものと同じものを使用し、一価抗体の分離精製も実施例１と同様に実施した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　錯体形成時の放射能を８７．７ＭＢｑとした以外は実施例１と同様に実施した。
　得られた８９Ｚｒ錯体のＲＣＰを実施例１と同様に測定した。その結果、８９Ｚｒ錯体のＲＣＰは９７．８％であった。得られた８９Ｚｒ錯体溶液から０．０３ｍＬ（２５．９ＭＢｑ、配位子３ｎｍоｌ分）を標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　抗体として脱グリコシル化されたＣｅｔｕｘｉｍａｂを用いて、反応時のＤＢＣＯとアジドのモル比は約１：１．２とした以外は実施例１と同様に実施した。未精製時の８９Ｚｒ錯体標識抗体の反応率は５６．１％であった。
　さらに、得られた８９Ｚｒ錯体標識抗体の溶液を限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰは９３．９％、ＲＣＹは４６．６％であった。８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰおよびＲＣＹの測定は，実施例１と同様に行った。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３の８９Ｚｒ錯体標識脱グリコシル化抗体を５ｍＬエッペンチューブ（ＬｏＢｉｎｄ、エッペンドルフ社製）に一部抜き取り、保存緩衝液（１００ｍｇ／Ｌ　ＰＳ２０含有５８４４ｍｇ／Ｌ塩化ナトリウム、７５０７ｍｇ／Ｌグリシン、２１０１ｍｇ／Ｌクエン酸水和物水溶液））で希釈した。
［比較例３］８９Ｚｒ標識ＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯを用いた抗体（脱グリコシル化されていない）との複合体の製造－２
（１．抗体調製工程）（工程１）
　抗体は脱グリコシル化されていないＣｅｔｕｘｉｍａｂを用いた。抗体修飾リンカーは実施例１に記載のものと同じものを使用し、一価抗体の分離精製も実施例１と同様に実施した。
（２．錯体形成工程）（工程２）
　実施例３と同様に実施した。
　得られた８９Ｚｒ錯体のＲＣＰを実施例１と同様に測定した。その結果、８９Ｚｒ錯体のＲＣＰは９７．８％であった。得られた８９Ｚｒ錯体溶液から０．０３ｍＬ（２８．７ＭＢｑ、配位子３ｎｍоｌ分）を標識工程に用いた。
（３．標識工程）（工程３）
　抗体として脱グリコシル化されていないＣｅｔｕｘｉｍａｂを用いて、反応時のＤＢＣＯとアジドのモル比は約１：１．２とした以外は実施例１と同様に実施した。未精製時の８９Ｚｒ錯体標識抗体の反応率は５１．４％であった。
　さらに、得られた８９Ｚｒ錯体標識抗体の溶液を限外ろ過フィルター（Ｍｅｒｃｋ社製、型番：ＵＦＣ５０５０９６）を用いて精製した。精製後の８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰは９３．８％、ＲＣＹは５０．７％であった。８９Ｚｒ錯体標識抗体のＲＣＰおよびＲＣＹの測定は，実施例１と同様に行った。
（４．製剤化工程）（工程４）
　上記工程３の８９Ｚｒ錯体標識抗体（脱グリコシル化されていない）を５ｍＬエッペンチューブ（ＬｏＢｉｎｄ、エッペンドルフ社製）に一部抜き取り、保存緩衝液（１００ｍｇ／Ｌ　ＰＳ２０含有５８４４ｍｇ／Ｌ塩化ナトリウム、７５０７ｍｇ／Ｌグリシン、２１０１ｍｇ／Ｌクエン酸水和物水溶液）で希釈した。
［評価７］凝集体の割合
　実施例３、比較例３で製造した８９Ｚｒ錯体標識抗体に含まれる凝集体の割合を、評価１と同様にＳＥＣで分析した。ＨＰＬＣ条件は、評価１と同様に設定した。製造終了後の各成分の割合を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
［評価８］抗原への結合性
　評価２に記載した方法と同様に腫瘍の凍結切片を作製した。ただし、陽性切片にはＮＳＧマウスにより作製したＡ４３１切片を用い、陰性切片の代用として、ＳＣＩＤ　Ｂｅｉｇｅマウスで作製した低発現切片であるＳＮＵ－１６切片を使用した。結果を図８に示す。
　実施例３および比較例３の記載に従って製造したいずれの放射性複合体でもＥＧＦＲに対する結合活性が確認された。８９Ｚｒ錯体標識抗体はＥＧＦＲが陽性であるＡ４３１腫瘍切片により強く結合し、ＥＧＦＲが低発現であるＳＮＵ－１６腫瘍切片にはより低い結合性を示し、ＥＧＦＲ選択的な結合を示した。一方、脱グリコシル化抗体も糖鎖未処理抗体もＥＧＦＲヘの結合能に違いはなかった。
［評価９］体内分布評価
　評価３と同様に、マウスを用いてＡ４３１腫瘍の皮下移植モデルを作製し、実施例３及び比較例３の記載に従って製造した放射性複合体の生体内における各組織への分布を確認した。Ａ４３１細胞を、ＤＭＥＭ培地（ｇｉｂｃｏ社製）に懸濁し、５週齢の雌性ＮＳＧマウス（ジャクソンラボラトリージャパン社製）の右肩皮下に５×１０６ｃｅｌｌｓ移植して担癌マウスを作製した。腫瘍体積がおおよそ５０～２００ｍｍ３となるまで担癌マウスを飼育し、８９Ｚｒ錯体標識抗体をそれぞれ０．５～０．６ＭＢｑ／匹（各群ｎ＝４）の用量で尾静脈内投与した。各放射性複合体の投与２４、４８及び１２０時間後に、 イソフルラン麻酔下にて心臓から採血を行い、心臓、肺、脾臓、膵臓、胃、小腸、大腸、大腿筋、大腿骨、皮膚、腫瘍、腎臓、肝臓を採取し、それ以外の組織を残全身として回収した。各放射性複合体を投与したマウスは、解剖時間点まで代謝ケージで飼育し、糞及び尿を採取した。採取した各組織、血液の重量を測定し、γ線シンチレーション測定装置（ＪＤＣ－１７１２、日立製作所）にて各組織、血液、糞および尿の計数率を測定した。得られた組織重量及び計数率から、単位重量当たりの集積率（％ＩＤ／ｇ）を算出した。結果を図９に示す。グラフの縦軸は、各組織の単位重量当たりの集積率を示す。
　実施例３に従って製造した８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体は、比較例３の記載に従って製造した８９Ｚｒ標識糖鎖未処理抗体に比較して、細網内皮系組織である肝臓及び脾臓で集積量が低かった（図１０）。また、血液中に滞留した抗体量は、いずれの時間点においても８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体が８９Ｚｒ標識糖鎖未処理抗体よりも多く、腫瘍集積性は８９Ｚｒ標識脱グリコシル化抗体のほうが高い結果であった。
　本出願は、日本で出願された特願２０２１－１４１６２５（出願日：２０２１年８月３１日）を基礎としておりそれらの内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (16)

  1. 　放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、
    　該キレート剤が、リンカーを介して、前記抗体のＦｃ領域を部位特異的に修飾している、複合体。
  2. 　該リンカーが、下記式（ｉ）で表される、１３以上１７以下のアミノ酸残基からなる抗体修飾ペプチドを含む、請求項１に記載の複合体。
    (Xa)-Xaa1-(Xb)-Xaa2-(Xc)-Xaa3-(Xd)・・・（ｉ）
    （式中、Ｘａ、Ｘｂ、Ｘｃ及びＸｄは、それぞれ、連続するａ個のＸ、連続するｂ個のＸ、連続するｃ個のＸ、及び連続するｄ個のＸを表し、
    Ｘは、側鎖にチオール基及びハロアセチル基のいずれも有しないアミノ酸残基であり、
    ａ、ｂ、ｃ及びｄはそれぞれ独立に１以上５以下の整数で、かつａ＋ｂ＋ｃ＋ｄ≦１４を満たし、
    Ｘａａ１及びＸａａ３は、それぞれ独立に、
    側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、かつ、ジスルフィド結合を介して結合しているか若しくはスルフィド基がリンカーを介して結合しており、又は、
    一方が、側鎖にチオール基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、他方が、側鎖にハロアセチル基を有するアミノ酸に由来するアミノ酸残基を表し、かつ、チオエーテル結合を介して結合しており、
    Ｘａａ２は、リシン残基、アルギニン残基、システイン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、２－アミノスベリン酸、又はジアミノプロピオン酸である。）
  3. 　該抗体修飾ペプチドが、前記式（ｉ）中、Ｘａａ２がリシン残基である、請求項２に記載の複合体。
  4. 　該抗体修飾ペプチドが、配列番号２（ただし、Ｘａａ２はリシン残基である）で表されるアミノ酸配列からなる抗体修飾ペプチドを含む、請求項２記載の複合体。
  5. 　該キレート剤が、下記式（Ａ）で表される化合物又はその塩に由来する構造を有する、請求項１又は２に記載の複合体。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     （式（Ａ）中、Ｒ１１、Ｒ１３及びＲ１４は、それぞれ独立して、－（ＣＨ２）ｐＣＯＯＨ、－（ＣＨ２）ｐＣ５Ｈ５Ｎ、－（ＣＨ２）ｐＰＯ３Ｈ２、－（ＣＨ２）ｐＣＯＮＨ２若しくは、－（ＣＨＣＯＯＨ）(ＣＨ２)ｐＣＯＯＨからなる基であり、Ｒ１２又はＲ１５の一方が、水素原子、カルボキシル基、又は、炭素数２若しくは３のカルボキシアルキル基であり、他方が、前記抗体と複合化するための置換基であり、ｐが０以上３以下の整数であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基であるときＲ１５は水素原子であり、Ｒ１２が前記抗体と複合化するための置換基でないときＲ１５は前記抗体と複合化するための置換基である。）
  6. 　該リンカーが、クリック反応で形成された結合基を有する、請求項１又は２に記載の複合体。
  7. 　該放射性核種がＡｃ－２２５、Ｙ－９０、Ｌｕ－１７７又はＺｒ－８９である、請求項１又は２に記載の複合体。
  8. 　放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体との複合体であって、
    該放射性核種がアクチニウム－２２５（Ａｃ－２２５）である、複合体。
  9. 　該脱グリコシル化された抗体がヒトＩｇＧ抗体である、請求項１又は８に記載の複合体。
  10. 　脱グリコシル化がＮ型糖鎖の切断による、請求項１又は８に記載の複合体。
  11. 　請求項１又は８に記載の複合体を有効成分として含有する、放射性医薬。
  12. 　がんのＲＩ内用療法に用いられる、請求項１１に記載の放射性医薬。
  13. 　がんの診断に用いられる、請求項１１記載に記載の放射性医薬。
  14. 　放射性核種がキレートしたキレート剤と、脱グリコシル化された抗体とを複合化して、該キレート剤と該抗体との複合体を生成する複合化工程を含む、請求項１又は８に記載の複合体の製造方法。
  15. 　該複合化工程がクリック反応を実行することにより実施される、請求項１４記載の製造方法。
  16. 　該複合化工程が、該抗体と、下記式で表されるＤＯＴＡＧＡ－ＤＢＣＯの放射性金属錯体とをクリック反応させることで実施される、請求項１５に記載の製造方法。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
PCT/JP2022/032709 2021-08-31 2022-08-31 脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬 WO2023033022A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US18/688,001 US20240316228A1 (en) 2021-08-31 2022-08-31 Radioactive complex of deglycosylated antibody and radioactive pharmaceutical product
JP2023545630A JPWO2023033022A1 (ja) 2021-08-31 2022-08-31
CN202280071610.3A CN118159305A (zh) 2021-08-31 2022-08-31 脱糖基化抗体的放射性复合物和放射性药物
EP22864604.8A EP4397320A1 (en) 2021-08-31 2022-08-31 Radioactive complex of deglycosylated antibody and radioactive pharmaceutical product

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2021141625 2021-08-31
JP2021-141625 2021-08-31

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2023033022A1 true WO2023033022A1 (ja) 2023-03-09

Family

ID=85411332

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2022/032709 WO2023033022A1 (ja) 2021-08-31 2022-08-31 脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20240316228A1 (ja)
EP (1) EP4397320A1 (ja)
JP (1) JPWO2023033022A1 (ja)
CN (1) CN118159305A (ja)
TW (1) TW202325343A (ja)
WO (1) WO2023033022A1 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024190896A1 (ja) * 2023-03-15 2024-09-19 国立大学法人 鹿児島大学 放射性標識抗体の製造方法、放射性標識抗体及び放射性医薬

Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002512014A (ja) * 1998-04-20 2002-04-23 パブロ ウマナ， 抗体依存性細胞傷害性を改善するための抗体のグリコシル化操作
WO2016186206A1 (ja) 2015-05-20 2016-11-24 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチドによる抗体の特異的修飾
WO2017141604A1 (ja) 2016-02-15 2017-08-24 地方独立行政法人神奈川県立病院機構 膜型ムチン様タンパク質の認識とその医療応用
WO2017217347A1 (ja) 2016-06-13 2017-12-21 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチドによる部位特異的ＲＩ標識抗体
WO2018230257A1 (ja) 2017-06-16 2018-12-20 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチド、及び該ペプチドによる抗体の特異的修飾
US20190389966A1 (en) 2018-06-21 2019-12-26 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods for Treating Cancer with Bispecific Anti-CD3xMUC16 Antibodies and Anti-PD-1 Antibodies
WO2021075546A1 (ja) * 2019-10-18 2021-04-22 日本メジフィジックス株式会社 放射性金属標識抗体の製造方法
WO2021075545A1 (ja) 2019-10-18 2021-04-22 大日本住友製薬株式会社 ヒト化抗体およびその使用方法
WO2021080008A1 (ja) 2019-10-24 2021-04-29 国立大学法人 鹿児島大学 １価ｃｃａｐ生成物の製造方法
JP2021141625A (ja) 2020-02-29 2021-09-16 隆一 嶋田 通信回線を利用した電力系統安定化システム

Patent Citations (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002512014A (ja) * 1998-04-20 2002-04-23 パブロ ウマナ， 抗体依存性細胞傷害性を改善するための抗体のグリコシル化操作
WO2016186206A1 (ja) 2015-05-20 2016-11-24 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチドによる抗体の特異的修飾
WO2017141604A1 (ja) 2016-02-15 2017-08-24 地方独立行政法人神奈川県立病院機構 膜型ムチン様タンパク質の認識とその医療応用
WO2017217347A1 (ja) 2016-06-13 2017-12-21 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチドによる部位特異的ＲＩ標識抗体
WO2018230257A1 (ja) 2017-06-16 2018-12-20 国立大学法人鹿児島大学 ＩｇＧ結合ペプチド、及び該ペプチドによる抗体の特異的修飾
US20190389966A1 (en) 2018-06-21 2019-12-26 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods for Treating Cancer with Bispecific Anti-CD3xMUC16 Antibodies and Anti-PD-1 Antibodies
WO2021075546A1 (ja) * 2019-10-18 2021-04-22 日本メジフィジックス株式会社 放射性金属標識抗体の製造方法
WO2021075545A1 (ja) 2019-10-18 2021-04-22 大日本住友製薬株式会社 ヒト化抗体およびその使用方法
WO2021080008A1 (ja) 2019-10-24 2021-04-29 国立大学法人 鹿児島大学 １価ｃｃａｐ生成物の製造方法
JP2021141625A (ja) 2020-02-29 2021-09-16 隆一 嶋田 通信回線を利用した電力系統安定化システム

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHEM. EUR. J., vol. 18, 2012, pages 7834 - 7841
EDGE ET AL., ANAL. BIOCHEM., vol. 118, 1981, pages 131
HAKIMUDDIN ET AL., ARCH. BIOCHEM. BIOPHYS., vol. 259, 1987, pages 52
J. NUCL. MED., vol. 60, 2019, pages 1174
OKAZAKI A., ET AL: "Fucose Depletion from Human IgG1 Oligosaccharide Enhances Binding Enthalpy and Association Rate Between IgG1 and Fcgamma RIIIa", JOURNAL OF MOLECULAR BIOLOGY, ACADEMIC PRESS, UNITED KINGDOM, vol. 336, no. 5, 5 March 2004 (2004-03-05), United Kingdom , pages 1239 - 1249, XP002610113, ISSN: 0022-2836, DOI: 10.1016/j.jmb.2004.01.007 *
THOTAKURA ET AL., METH. ENZYMOL., vol. 138, 1987, pages 350
VIVIER D. ET AL., J NUCL MED., vol. 60, no. 8, August 2019 (2019-08-01), pages 1174 - 1182
VIVIER DELPHINE, SHARMA SAI KIRAN, ADUMEAU PIERRE, RODRIGUEZ CINDY, FUNG KIMBERLY, ZEGLIS BRIAN M.: "The Impact of FcγRI Binding on Immuno-PET", THE JOURNAL OF NUCLEAR MEDICINE, SOCIETY OF NUCLEAR MEDICINE, US, vol. 60, no. 8, 1 August 2019 (2019-08-01), US , pages 1174 - 1182, XP093042302, ISSN: 0161-5505, DOI: 10.2967/jnumed.118.223636 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024190896A1 (ja) * 2023-03-15 2024-09-19 国立大学法人 鹿児島大学 放射性標識抗体の製造方法、放射性標識抗体及び放射性医薬

Also Published As

Publication number Publication date
US20240316228A1 (en) 2024-09-26
JPWO2023033022A1 (ja) 2023-03-09
EP4397320A1 (en) 2024-07-10
CN118159305A (zh) 2024-06-07
TW202325343A (zh) 2023-07-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7036996B2 (ja) Ｒｉ標識されたヒト化抗体
TW202128732A (zh) 放射性金屬標定抗體、其製造方法、螯合連接子、及肽修飾抗體
WO2023033022A1 (ja) 脱グリコシル化抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
WO2022224980A1 (ja) 抗ｃｄ２０抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
WO2022211051A1 (ja) 抗ｅｇｆｒ抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
WO2022080481A1 (ja) 抗ｈｅｒ２抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
WO2023157822A1 (ja) 抗ｖｅｇｆ抗体の放射性複合体、及び、放射性医薬
WO2023277144A1 (ja) Ｈｅｇ１タンパク質に結合するヒト化抗体および当該抗体と放射性核種との複合体
WO2024090488A1 (ja) 放射性医薬組成物
WO2022225006A1 (ja) β線を放出する核種で標識されたヒト化抗体
CN117769440A (zh) 抗cd20抗体的放射性复合物和放射性药物
WO2022225007A1 (ja) 放射性抗腫瘍剤
CN116456992A (zh) 抗her2抗体的放射性复合物和放射性药物
CN117377690A (zh) 抗egfr抗体的放射性复合物和放射性药物
WO2024090489A1 (ja) 放射性医薬組成物の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 22864604

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2023545630

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 18688001

Country of ref document: US

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2022864604

Country of ref document: EP

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022864604

Country of ref document: EP

Effective date: 20240402

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 202280071610.3

Country of ref document: CN