WO2023003384A1 - 조직 수복용 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물 - Google Patents

조직 수복용 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물 Download PDF

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biocompatible polymer
biocompatible
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윤혜성
임수미
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Definitions

  • the present invention relates to a powder formulation for tissue repair, a method for preparing the same, and an injectable composition for tissue repair comprising the same, and more specifically, a copolymer of a hydrophilic biocompatible polymer and a hydrophobic biocompatible polymer, which is formulated in an aqueous medium.
  • hyaluronic acid fillers occupy more than 90% of the filler market worldwide, but their half-life in the body is less than 1 to 3 days, which is very low and very fast in vivo.
  • reabsorption Accordingly, products in which the reabsorption period is extended by cross-linking hyaluronic acid and a cross-linking material are being sold.
  • An object of the present invention is a tissue repair product that is free of toxicity, secures functionality, physical properties, and safety suitable for tissue repair biomaterials, and is easy to transport, store, and handle while exhibiting excellent tissue repair effects. It is to provide a manufacturing method.
  • biocompatible copolymer which is a copolymer of a hydrophilic biocompatible polymer and a hydrophobic biocompatible polymer, wherein:
  • the biocompatible copolymer forms nanoparticles in the form of micelles having an average diameter of greater than 20 nm and less than or equal to 100 nm as measured by dynamic light scattering in an aqueous medium [condition (1)]; or
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic biocompatible polymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic biocompatible polymer in the biocompatible copolymer is 1.84 or less [condition (2) ]; or
  • a powder formulation for tissue repair is provided.
  • Another aspect of the present invention is to polymerize a monomer for a hydrophobic biocompatible polymer in the presence of a hydrophilic biocompatible polymer to prepare a copolymer of a hydrophilic biocompatible polymer and a hydrophobic biocompatible polymer; And drying the prepared copolymer; includes, wherein,
  • the biocompatible copolymer forms nanoparticles in the form of micelles having an average diameter of greater than 20 nm and less than or equal to 100 nm as measured by dynamic light scattering in an aqueous medium [condition (1)]; or
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic biocompatible polymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic biocompatible polymer in the biocompatible copolymer is 1.84 or less [condition (2) ]; or
  • a method for preparing a powder formulation for tissue repair is provided.
  • the tissue repair powder formulation of the present invention provides an injectable composition for tissue repair including; and a pharmaceutically acceptable carrier for injection.
  • Another aspect of the present invention provides a method for preparing an injectable composition for tissue repair, comprising mixing the powder formulation for tissue repair of the present invention and a pharmaceutically acceptable carrier for injection at room temperature.
  • the powder formulation for tissue repair according to the present invention is non-toxic, easy to transport, store, and handle, and is easily dissolved in an aqueous medium at room temperature and is stable in the form of micelles having an average diameter of more than 20 nm to less than 100 nm. It forms nanoparticles, and after being introduced into the body, the nanoparticles self-assemble through hydrophobic aggregation of hydrophobic polymers under the influence of the body environment to form a large structure, which is not eaten by macrophages and induces collagen It shows excellent tissue repair effect.
  • Figure 2 is the animal test results for the tissue repair effect performed in Experimental Example 4 of the present invention.
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention includes a biocompatible copolymer that is a copolymer of a hydrophilic biocompatible polymer and a hydrophobic biocompatible polymer.
  • the biocompatible copolymer forms nanoparticles in the form of micelles having an average diameter of greater than 20 nm and less than or equal to 100 nm as measured by dynamic light scattering in an aqueous medium [ Condition (1) ] .
  • the aqueous medium may be, for example, water (more specifically, distilled water).
  • the Dynamic Light Scattering (DLS) method is a non-invasive and well-established technique for measuring the size of nanoparticles in a dispersion, and measures the intensity of the scattering tube over time in a suspension using the Brownian motion of the particles. is to do
  • the variation in the intensity of the scattered light is converted into a diffusion coefficient by which the average diameter of the particles can be known, and the average diameter of the particles can be known from the diffusion coefficient through the Stokes-Einstein relationship.
  • the average diameter of the nanoparticles formed by the biocompatible copolymer in an aqueous medium is 20 nm or less or exceeds 100 nm, a powder formulation prepared using such a copolymer may not exhibit a tissue repair effect.
  • the average diameter of the nanoparticles formed by the biocompatible copolymer in an aqueous medium is greater than 20 nm, greater than 21 nm, greater than 25 nm, greater than 30 nm, greater than 35 nm, and greater than 40 nm. It may be 45 nm or more, 50 nm or more, or 55 nm or more, and may also be 100 nm or less, less than 100 nm, 95 nm or less, 90 nm or less, or 85 nm or less, but is not limited thereto.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic biocompatible polymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic biocompatible polymer in the biocompatible copolymer is 1.84 or less [ condition ( 2) ].
  • the number average molecular weight of the hydrophilic and hydrophobic biocompatible polymers may be measured by, for example, gel permeation chromatography (GPC).
  • the gel permeation chromatography is a physical unfolding mechanism in which large components come first and small components come out later according to the size of the hydrodynamic volume of the analyte.
  • Large molecules can enter the pores of a porous gel It is a method of analyzing the relative molecular weight in the order of molecules passing through the column more quickly as they pass slowly through the column because they are retained because they can enter the pores of the gel, and small molecules can enter the pores of the gel.
  • a powder formulation prepared using such a copolymer may not exhibit a tissue repair effect.
  • the Mn1/Mn2 ratio in the biocompatible copolymer may be 1.84 or less, 1.82 or less, 1.8 or less, 1.78 or less, 1.76 or less, or 1.75 or less.
  • the lower limit of the Mn1/Mn2 ratio is not particularly limited, and may be, for example, 0.5 or more, 0.55 or more, 0.6 or more, 0.65 or more, 0.7 or more, 0.75 or more, 0.8 or more, 0.85 or more, 0.9 or more, or 0.95 or more, but is not limited thereto. don't
  • the biocompatible copolymer satisfies both conditions (1) and (2) above.
  • the hydrophilic biocompatible polymer may be selected from the group consisting of polyethylene glycol or its derivatives (e.g., alkoxy- or hydroxy-polyethylene glycol), polyvinylpyrrolidone, polyvinyl alcohol, polyacrylamide, and combinations thereof. And, more specifically, it may be selected from the group consisting of polyethylene glycol (PEG), methoxy polyethylene glycol (mPEG), and combinations thereof.
  • the hydrophobic biocompatible polymer may be a polymer of alpha ( ⁇ )-hydroxy acid-derived monomers, and more specifically, polylactide, polyglycolide, poly(lactic-glycolide), polymandelic acid , It may be selected from the group consisting of polycaprolactone, polydioxan-2-one, polyamino acid, polyorthoester, polyanhydride, polycarbonate, and combinations thereof, more specifically polylactide, It may be selected from the group consisting of polyglycolide, poly(lactic-glycolide), and combinations thereof.
  • the number average molecular weight (Mn1) (unit: g/mol) by GPC of the hydrophilic biocompatible polymer may be 1,000 or more, 2,000 or more, 3,000 or more, or 4,000 or more, and also 30,000 or less, 25,000 or less, 20,000 or less, or It may be less than 15,000.
  • the number average molecular weight (Mn2) (unit: g/mol) by GPC of the hydrophobic biocompatible polymer may be 500 or more, 1,000 or more, 1,500 or more, or 2,000 or more, and also 30,000 or less, 25,000 or less, 20,000 or less. or 15,000 or less.
  • the total number average molecular weight by GPC of the biocompatible copolymer may be 2,000 or more, 5,000 or more, 8,000 or more, or 10,000 or more, and may also be 40,000 or less, 35,000 or less, 30,000 or less, or 25,000 or less.
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention may further include one or more additives commonly used in pharmaceutical powder formulations in addition to the biocompatible copolymer.
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention may further include a lyophilization aid (also referred to as a lyophilization agent).
  • a lyophilization aid also referred to as a lyophilization agent
  • the lyophilization aid may be at least one selected from the group consisting of lactose, maltose, sucrose, trehalose, mannitol, sorbitol, maltitol, xylitol, and lactitol.
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention may further include a local anesthetic.
  • the local anesthetic is ambucaine, amolanone, amylocaine, benoxinate, benzocaine, betoxycaine, biphenamine (biphenamine), bupivacaine, butacaine, butamben, butanilicaine, butethamine, butoxycaine, carticaine, chloro Procaine, cocaethylene, cocaine, cyclomethycaine, dibucaine, dimethysoquin, dimethocaine, diperodone ( diperodon), dycyclonine, ecgonidine, ecgonine, ethyl chloride, etidocaine, beta-eucaine, euprosin ( euprocin, fenalcomine, formocaine, hexylcaine, hydroxytetracaine, isobutyl p-aminobenzoate, leucinocaine mesylate ), levoxadrol, lidocaine, mepivacaine
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention may be lyophilized or dried by other drying methods (eg, spin drying, etc.) to have a powdery formulation.
  • Another aspect of the present invention is to polymerize a monomer for a hydrophobic biocompatible polymer in the presence of a hydrophilic biocompatible polymer to prepare a copolymer of a hydrophilic biocompatible polymer and a hydrophobic biocompatible polymer; and drying the prepared copolymer, wherein (1) the biocompatible copolymer is in the form of micelles having an average diameter of greater than 20 nm and less than or equal to 100 nm as measured by a dynamic light scattering method in an aqueous medium.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic biocompatible polymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic biocompatible polymer in the biocompatible copolymer is 1.84 or less;
  • (3) provides a method for producing a powder formulation for tissue repair, wherein the biocompatible copolymer satisfies both the conditions (1) and (2).
  • the hydrophilic biocompatible polymer, the hydrophobic biocompatible polymer, and the biocompatible copolymer are as described above.
  • the monomer for the hydrophobic biocompatible polymer may be an alpha ( ⁇ )-hydroxy acid-derived monomer, and more specifically, selected from the group consisting of lactide, glycolide, mandelic acid, caprolactone, and combinations thereof It may be, and more specifically, it may be selected from the group consisting of lactide, glycolide, mandelic acid, and combinations thereof, but is not necessarily limited thereto.
  • Polymerizing the hydrophobic biocompatible polymer monomer in the presence of the hydrophilic biocompatible polymer may be performed according to known methods and conditions.
  • drying of the biocompatible copolymer may be performed by lyophilization or other drying methods (eg, spin drying, etc.), and more specifically, may be performed by lyophilization, but is not necessarily limited thereto.
  • Freeze-drying of the biocompatible copolymer may be performed in the presence of the above-mentioned lyophilization aids, but is not necessarily limited thereto.
  • the powder formulation for tissue repair of the present invention is easily dissolved in an aqueous medium at room temperature to form stable micellar nanoparticles having an average diameter of greater than 20 nm to less than 100 nm, and after being introduced into the body, it is affected by the internal environment.
  • nanoparticles self-assemble to form a large structure, which induces collagen without being phagocytosed by macrophages, showing excellent tissue repair effects.
  • the tissue repair effect refers to the effect of returning the tissue to its original state when necrosis or defect occurs in the skin tissue or the like due to trauma, inflammation, or aging.
  • the tissue repair powder formulation of the present invention provides an injectable composition for tissue repair including; and a pharmaceutically acceptable carrier for injection.
  • Conventional carriers for injection included in the injectable composition for tissue repair of the present invention may be used without limitation, and for example, distilled water for injection, physiological saline, 5% glucose, buffer (eg, phosphate buffer ( PBS)) and those selected from the group consisting of combinations thereof may be used, but are not limited thereto.
  • distilled water for injection physiological saline, 5% glucose, buffer (eg, phosphate buffer ( PBS)) and those selected from the group consisting of combinations thereof may be used, but are not limited thereto.
  • the injectable composition for tissue repair of the present invention may further contain one or more conventional additives usable for injectable preparations.
  • Another aspect of the present invention provides a method for preparing an injectable composition for tissue repair, comprising mixing the powder formulation for tissue repair of the present invention and a pharmaceutically acceptable carrier for injection at room temperature.
  • room temperature means 1 to 30 ° C, 20 to 30 ° C, 22 to 28 ° C, more specifically, 24 to 26 ° C (eg, 25 ° C). .
  • tissue repair powder formulations of tissue repair polymer products must be heated (for example, the temperature must be raised from the melting point of the polymer to the boiling point of water) to be prepared in the form of an aqueous solution, but the tissue repair powder formulation of the present invention can be prepared in an aqueous medium even at room temperature. Since it dissolves easily, an injectable composition in the form of an aqueous solution thereof can be easily prepared and used at room temperature.
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 15,500 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer, mPEG, to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer, Poly(D,L-lactide), in the copolymer was 1.74.
  • a powder formulation was prepared in the same manner as in Preparation Example 1, but the target number average molecular weight (Mn) of the biocompatible copolymer was 17,000 g/mol.
  • Mn target number average molecular weight
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 17,200 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer mPEG in the copolymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer Poly(D,L-lactide) was 1.34.
  • a powder formulation was prepared in the same manner as in Preparation Example 1, but the target number average molecular weight (Mn) of the biocompatible copolymer was 20,000 g/mol.
  • Mn target number average molecular weight
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 20,200 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer, mPEG, to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer, Poly(D,L-lactide), in the copolymer was 0.95.
  • a product made of mPEG-Polycaprolactone copolymer (Miracle L, Dexlevo Co.) was lyophilized and prepared as a powder formulation was used as Comparative Example 1.
  • a powder formulation was prepared in the same manner as in Preparation Example 1, but the target number average molecular weight (Mn) of the biocompatible copolymer was 12,000 g/mol.
  • Mn target number average molecular weight
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 12,350 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer mPEG in the copolymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer Poly(D,L-lactide) was 2.8.
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 25,650 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer mPEG in the copolymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer Poly(D,L-lactide) was 3.5.
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-Poly (D,L-lactide) copolymer was 23,500 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was obtained by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer. Calculated.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer mPEG in the copolymer to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer Poly(D,L-lactide) was 5.7.
  • the number average molecular weight (Mn) of the prepared mPEG-PCL copolymer was 15,100 g/mol
  • the hydrophobic polymer molecular weight was calculated by subtracting the hydrophilic polymer molecular weight from the measured molecular weight of the copolymer.
  • the ratio (Mn1/Mn2) of the number average molecular weight (Mn1) of the hydrophilic polymer, mPEG, to the number average molecular weight (Mn2) of the hydrophobic polymer, Poly(D,L-lactide), in the copolymer was 1.85.
  • Each of the formulations of Preparation Examples 1 to 3 and Comparative Examples 1 to 5 was added to water for injection as an aqueous medium to make a concentration of 5% by weight, and then dynamic light scattering using Malvern's Zetasizer Nano Zs90.
  • the average diameter of the polymer nanoparticles formed in the aqueous medium was measured by a method (Dynamic Light Scattering, DLS).
  • DLS Dynamic Light Scattering
  • Preparation Example 3 After the powder formulation of Preparation Example 3 was dissolved in water for injection at a concentration of 5% by weight at room temperature, the stability of the aqueous solution was confirmed by observing the state over time. The powder formulation of Preparation Example 3 was all melted within 20 minutes, and the particles were not visible to the naked eye, and even when left for 3 hours, the particles were not visible to the naked eye without significant change.
  • the lyophilized powder formulation of the comparative product (Miracle L) was administered in water for injection at a concentration of 5% by weight at room temperature, and then the condition was observed over time.
  • the dispersion of the lyophilized powder formulation of the comparative product (Miracle L) was opaque and turbid, and the particles did not dissolve even after 3 hours and were precipitated or dispersed in the water for injection.
  • saline and test substances were administered to each 5-week-old SD Rat on both sides.
  • the breeding environment was set at a temperature of 24 ⁇ 2 ° C, a relative humidity of 50 ⁇ 10%, and a lighting time of 12 hours, and food was allowed to eat freely.
  • the powder formulation according to the present invention has the advantage of being easy to transport, store, and handle, as well as being easily dissolved in an aqueous medium at room temperature, and increasing collagen formation when introduced into the body. It was confirmed by this that it induces excellently and exhibits a more excellent tissue repair effect.

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Abstract

본 발명은 조직 수복용 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물에 관한 것으로, 보다 구체적으로는, 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체로서, 수성 매질 내에서 특정 범위의 평균 직경을 나타내는 미셀(micelle) 형태의 나노입자를 형성하고/하거나, 상기 친수성 고분자의 분자량 대 상기 소수성 고분자의 분자량 비율이 특정 수준 이하인, 생체적합성 공중합체를 포함하며, 분말 형태로서 운반, 보관 및 취급이 용이하고, 실온의 수성 매질에서 쉽게 용해되어 안정한 나노입자를 형성하며, 체내에 도입된 이후에는 대식세포에 탐식되지 않고 콜라겐을 유도하여 우수한 조직 수복 효과를 나타내는, 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물에 관한 것이다.

Description

조직 수복용 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물
본 발명은 조직 수복용 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물에 관한 것으로, 보다 구체적으로는, 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체로서, 수성 매질 내에서 특정 범위의 평균 직경을 나타내는 미셀(micelle) 형태의 나노입자를 형성하고/하거나, 상기 친수성 고분자의 분자량 대 상기 소수성 고분자의 분자량 비율이 특정 수준 이하인, 생체적합성 공중합체를 포함하며, 분말 형태로서 운반, 보관 및 취급이 용이하고, 실온의 수성 매질에서 쉽게 용해되어 안정한 나노입자를 형성하며, 체내에 도입된 이후에는 대식세포에 탐식되지 않고 콜라겐을 유도하여 우수한 조직 수복 효과를 나타내는, 분말 제형 및 이의 제조 방법, 및 이를 포함하는 조직 수복용 주사제 조성물에 관한 것이다.
최근 젊을 때부터 멋지게 나이 드는 웰에이징(well-aging)에 많은 사람들이 관심을 보인다. 현재 뷰티 시장은 천천히, 그리고 아름답고 건강하게 나이 드는 항노화에 집중하는 시대라 해도 과언이 아니다. 노화의 현상으로 손꼽히는 것이 볼륨의 감소다. 특히, 얼굴에 볼륨이 없으면 나이가 더 들어 보이고 초라해 보일 수 있기 때문에 볼륨을 채워 줄 수 있는 필러에 사람들이 많은 관심을 가지고 있다. 따라서 필러 시장도 매해 급속도로 증가하고 있으며, 현재 전세계적으로 2조 이상의 시장을 형성하고 있다.
현재 필러에 사용되는 소재로 다양한 물질들이 활용되고 있는데, 그 중 히알루론산 필러는 세계적으로 필러 시장의 90% 이상을 점유하고 있으나, 체내 반감기가 1일 내지 3일 이내로 지속성이 매우 낮고 매우 빠르게 생체 내 재흡수가 일어나는 문제가 있다. 이에, 히알루론산과 가교 물질을 서로 가교 연결하여 재흡수 기간을 연장시킨 제품이 판매되고 있다. 그러나, 이러한 가교 제품의 경우, 가교 물질인 BDDE(1,4-butanediol diglycidyl ether)가 독성이 있는 발암물질이기 때문에, 그 제거 공정에 따른 공정 비용 상승, 미생물 오염에 의한 제품 폐기, 잔류물 검출에 따른 제품 폐기 등의 손실이 발생하는 문제점이 있다.
이에 따라 생체 내 분해가 되는 고분자를 이용한 조직 수복용 제품도 다수 개발되었으며, 기존의 생체 적합성 고분자를 이용한 필러 제형으로서, 물에 녹지 않는 고분자를 마이크로사이즈의 입자로 가공한 후 점도가 있는 부형제 또는 증점제를 통해 분산시킨 제형이 개발되어 사용되었다. 예를 들어, 20 내지 50 마이크로미터 직경의 폴리락트산(Poly(lactic acid), PLA) 입자를 카복시메틸셀룰로우스(Carboxymethylcellulose, CMC) 수용액에 분산시킨 제형 또는 20 내지 50 마이크로미터 직경의 폴리카프로락톤(Poly(caprolactone), PCL) 입자를 CMC 및 글리세린(Glycerin) 수용액에 분산시킨 제형이 사용되었는데, 이러한 제형은 주사시 마이크로 입자에 의해 바늘이 막히는 시술상의 불편함 및 입자가 균일하게 분산되지 않아 균일한 조직 수복 효과가 나오지 못하는 문제점이 존재하였다.
본 발명의 목적은, 독성 발생 우려가 없고, 조직수복용 생체 재료에 적합한 기능성, 물성 및 안전성을 확보할 뿐만 아니라, 우수한 조직 수복 효과를 나타내면서 운반, 보관 및 취급도 용이한 조직 수복용 제품 및 그 제조 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 일 측면은, 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체인 생체적합성 공중합체를 포함하며, 여기서,
(1) 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 나노입자를 형성하거나[조건 (1)]; 또는
(2) 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)이 1.84 이하이거나[조건 (2)]; 또는
(3) 상기 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인,
조직 수복용 분말 제형을 제공한다.
본 발명의 다른 측면은, 친수성 생체적합성 고분자의 존재하에 소수성 생체적합성 고분자용 단량체를 중합하여 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체를 제조하는 단계; 및 상기 제조된 공중합체를 건조하는 단계;를 포함하며, 여기서,
(1) 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 나노입자를 형성하거나[조건 (1)]; 또는
(2) 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)이 1.84 이하이거나[조건 (2)]; 또는
(3) 상기 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인,
조직 수복용 분말 제형의 제조 방법을 제공한다.
본 발명의 또 다른 측면은, 상기 본 발명의 조직 수복용 분말 제형; 및 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체;를 포함하는, 조직 수복용 주사제 조성물을 제공한다.
본 발명의 또 다른 측면은, 상기 본 발명의 조직 수복용 분말 제형 및 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체를 실온에서 혼합하는 것을 포함하는, 조직 수복용 주사제 조성물의 제조방법을 제공한다.
본 발명에 따른 조직 수복용 분말 제형은 독성이 없고, 운반, 보관 및 취급이 용이하며, 실온의 수성 매질에서 쉽게 용해되어 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀(micelle) 형태의 안정한 나노입자를 형성하며, 체내에 도입된 이후에는 체내 환경의 영향으로 소수성 고분자의 소수성 응집을 통하여 나노 입자가 자가 조립(self-assemble)되어 커다란 구조체를 형성하여 대식세포에 탐식되지 않고 콜라겐을 유도하여 우수한 조직 수복 효과를 나타낸다.
도 1은 본 발명의 실험예 2에서 행한 입자 크기 측정 결과들이다.
도 2는 본 발명의 실험예 4에서 행한 조직 수복 효과에 대한 동물 실험 결과들이다.
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
본 발명의 조직 수복용 분말 제형은 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체인 생체적합성 공중합체를 포함한다.
일 구체예에서, 상기 생체적합성 공중합체는 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀(micelle) 형태의 나노입자를 형성한다[조건 (1)].
상기 수성 매질은, 예컨대, 물(보다 구체적으로는, 증류수)일 수 있다.
상기 동적광산란법(Dynamic Light Scattering, DLS)이란, 통상적으로 분산 내 나노입자의 크기를 측정하는 비침투적이고 잘 정립된 기법으로, 입자의 브라운 운동을 이용하여 현탁액 안에서 시간에 따른 산란관의 세기를 측정하는 것이다. 이러한 산란광의 세기 변동을 입자의 평균 직경을 알 수 있는 확산 계수로 변환하여 스토크스-아인슈타인 방정식(Stokes-Einstein relationship)을 통해 상기의 확산 계수로부터 입자의 평균 직경을 알 수 있다.
상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 형성하는 나노입자의 평균 직경(DLS 측정시)이 20 nm 이하이거나 100 nm를 초과하면, 그러한 공중합체를 사용하여 제조된 분말 제형이 조직 수복 효과를 나타내지 못할 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 형성하는 나노입자의 평균 직경(DLS 측정시)은, 20 nm 초과, 21 nm 이상, 25 nm 이상, 30 nm 이상, 35 nm 이상, 40 nm 이상, 45 nm 이상, 50 nm 이상 또는 55 nm 이상일 수 있고, 또한 100 nm 이하, 100 nm 미만, 95 nm 이하, 90 nm 이하 또는 85 nm 이하일 수 있으나, 이에 한정되지 않는다.
다른 구체예에서, 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 1.84 이하이다[조건 (2)].
상기 친수성 및 소수성 생체적합성 고분자들의 수평균분자량은, 예컨대, 겔 투과 크로마토그래피(Gel Permeation Chromatography, GPC)에 의하여 측정된 것일 수 있다.
상기 겔 투과 크로마토그래피(Gel Permeation Chromatography, GPC)란, 분석 성분의 hydrodynamic volume의 size에 의해서 큰 성분이 먼저 나오고 작은 성분이 나중에 나오는 물리적인 전개 mechanism으로 크기가 큰 분자는 다공성 겔의 구멍으로 들어갈 수 없어 빨리 통과하고, 작은 분자는 겔의 구멍을 들어갈 수 있어 머무름이 생겨 천천히 통과하여 더 빠르게 컬럼을 통과하는 분자 순으로 상대분자량을 분석하는 방법이다.
상기 생체적합성 공중합체 내의 Mn1/Mn2 비율이 1.84를 초과하면, 그러한 공중합체를 사용하여 제조된 분말 제형이 조직 수복 효과를 나타내지 못할 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 생체적합성 공중합체 내의 Mn1/Mn2 비율은 1.84 이하, 1.82 이하, 1.8 이하, 1.78 이하, 1.76 이하 또는 1.75 이하일 수 있다. 상기 Mn1/Mn2 비율의 하한에는 특별한 제한이 없으며, 예컨대, 0.5 이상, 0.55 이상, 0.6 이상, 0.65 이상, 0.7 이상, 0.75 이상, 0.8 이상, 0.85 이상, 0.9 이상 또는 0.95 이상일 수 있으나, 이에 한정되지 않는다.
바람직한 구체예에서, 상기 생체적합성 공중합체는 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것이다.
구체적으로, 상기 친수성 생체적합성 고분자는 폴리에틸렌글리콜 또는 그의 유도체(예컨대, 알콕시- 또는 히드록시-폴리에틸렌글리콜), 폴리비닐피롤리돈, 폴리비닐알콜, 폴리아크릴아미드 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있으며, 보다 구체적으로는 폴리에틸렌글리콜(PEG), 메톡시폴리에틸렌글리콜(mPEG) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있다.
또한 구체적으로, 상기 소수성 생체적합성 고분자는 알파(α)-히드록시산 유래 단량체의 고분자일 수 있고, 보다 구체적으로는 폴리락타이드, 폴리글리콜라이드, 폴리(락틱-글리콜라이드), 폴리만델릭산, 폴리카프로락톤, 폴리디옥산-2-온, 폴리아미노산, 폴리오르소에스터, 폴리언하이드라이드, 폴리카보네이트 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있으며, 보다 더 구체적으로는 폴리락타이드, 폴리글리콜라이드, 폴리(락틱-글리콜라이드) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 친수성 생체적합성 고분자의 GPC에 의한 수평균분자량(Mn1)(단위: g/mol)은 1,000 이상, 2,000 이상, 3,000 이상 또는 4,000 이상일 수 있고, 또한 30,000 이하, 25,000 이하, 20,000 이하 또는 15,000 이하일 수 있다.
또한 구체적으로, 상기 소수성 생체적합성 고분자의 GPC에 의한 수평균분자량(Mn2)(단위: g/mol)은 500 이상, 1,000 이상, 1,500 이상 또는 2,000 이상일 수 있고, 또한 30,000 이하, 25,000 이하, 20,000 이하 또는 15,000 이하일 수 있다.
구체적으로, 생체적합성 공중합체의 GPC에 의한 총 수평균분자량은 2,000 이상, 5,000 이상, 8,000 이상 또는 10,000 이상일 수 있고, 또한 40,000 이하, 35,000 이하, 30,000 이하 또는 25,000 이하일 수 있다.
본 발명의 조직 수복용 분말 제형은, 상기 생체적합성 공중합체 이외에 약학적 분말 제형에 통상 사용 가능한 하나 이상의 첨가제를 더 포함할 수 있다.
일 구체예에서, 본 발명의 조직 수복용 분말 제형은 동결건조 보조제(동결건조화제라고도 한다)를 추가로 포함할 수 있다.
구체적으로, 상기 동결건조 보조제는 락토스, 말토스, 슈크로스, 트레할로스, 만니톨, 솔비톨, 말티톨, 자일리톨 및 락티톨로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있다.
일 구체예에서, 본 발명의 조직 수복용 분말 제형은 국소 마취제를 추가로 포함할 수 있다.
구체적으로, 상기 국소 마취제는 암부카인(ambucaine), 아몰라논(amolanone), 아밀로카인(amylocaine), 베녹시 네이트(benoxinate), 벤조카인(benzocaine), 베톡시카인(betoxycaine), 비페나민(biphenamine), 부피바카인(bupivacaine), 부타카인(butacaine), 부탐벤(butamben), 부타닐리카인(butanilicaine), 부테타민 (butethamine), 부톡시카인(butoxycaine), 카르티카인(carticaine), 클로로프로카인(chloroprocaine), 코카에틸렌(cocaethylene), 코카인(cocaine), 사이클로메티카인(cyclomethycaine), 다이부카인(dibucaine), 다이메티소퀸(dimethysoquin), 다이메토카인(dimethocaine), 디페로돈(diperodon), 다이사이클로닌(dycyclonine), 에크고니딘(ecgonidine), 에크고닌(ecgonine), 에틸 클로라이드(ethyl chloride), 에티도카인(etidocaine), 베타유카인(beta-eucaine), 유프로신(euprocin), 페날코민(fenalcomine), 포르모카인(formocaine), 헥실카인(hexylcaine), 하이드록시테트라카인(hydroxytetracaine), 이소부틸 p-아미노벤조에이트(isobutyl paminobenzoate), 류시노카인 메실레이트(leucinocaine mesylate), 레복사드롤(levoxadrol), 리도카인(lidocaine), 메피바카인(mepivacaine), 메프릴카인(meprylcaine), 메타부톡시카인(metabutoxycaine), 메틸 클로라이드(methyl chloride), 미르테카인(myrtecaine), 나에파인(naepaine), 옥타카인(octacaine), 오르소카인(orthocaine), 옥세타자인(oxethazaine), 파레톡시카인(parethoxycaine), 페나카인(phenacaine), 페놀(phenol), 피페로카인(piperocaine), 피리도카인(piridocaine), 폴리도카놀(polidocanol), 프라목신(pramoxine), 프릴로카인(prilocaine), 프로카인(procaine), 프로파노카인(propanocaine), 프로파라카인(proparacaine), 프로피오카인(propipocaine), 프로록시카인(propoxycaine), 슈도코카인(psuedococaine), 피로카인(pyrrocaine), 로피바카인(ropivacaine), 살리실 알코올(salicyl alcohol), 테트라카인(tetracaine), 톨릴카인(tolycaine), 트리메카인(trimecaine), 졸라민(zolamine), 및 이들의 염으로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있다.
본 발명의 조직 수복용 분말 제형은, 동결건조 또는 기타 건조 방법(예: spin drying 등)에 의해 건조되어 분말 성상을 갖는 제형일 수 있다.
본 발명의 다른 측면은, 친수성 생체적합성 고분자의 존재하에 소수성 생체적합성 고분자용 단량체를 중합하여 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체를 제조하는 단계; 및 상기 제조된 공중합체를 건조하는 단계;를 포함하며, 여기서, (1) 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 나노입자를 형성하거나; 또는 (2) 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)이 1.84 이하이거나; 또는 (3) 상기 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인, 조직 수복용 분말 제형의 제조 방법을 제공한다.
본 발명의 조직 수복용 분말 제형의 제조 방법에 있어서, 상기 친수성 생체적합성 고분자, 소수성 생체적합성 고분자 및 생체적합성 공중합체에 대해서는 앞서 설명한 바와 같다.
구체적으로, 상기 소수성 생체적합성 고분자용 단량체는 알파(α)-히드록시산 유래 단량체일 수 있고, 보다 구체적으로는 락타이드, 글리콜라이드, 만델릭산, 카프로락톤 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있으며, 보다 더 구체적으로는 락타이드, 글리콜라이드, 만델릭산 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것일 수 있으나, 이에 반드시 제한되지는 않는다.
상기 친수성 생체적합성 고분자의 존재하에 소수성 생체적합성 고분자용 단량체를 중합하는 단계는 알려진 방법 및 조건에 따라 수행될 수 있다.
구체적으로, 상기 생체적합성 공중합체의 건조는 동결건조 또는 기타 건조 방법(예: spin drying 등)에 의해 수행될 수 있고, 보다 구체적으로는 동결건조에 의해 수행될 수 있으나, 이에 반드시 제한되지는 않는다. 생체적합성 공중합체의 동결건조는 상기한 동결건조 보조제의 존재하에 수행될 수 있으나, 이에 반드시 제한되지는 않는다.
본 발명의 조직 수복용 분말 제형은 실온의 수성 매질에서 쉽게 용해되어 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 안정한 나노입자를 형성하며, 체내에 도입된 이후에는 체내 환경의 영향으로 소수성 고분자의 소수성 응집을 통하여 나노 입자가 자가 조립되어 커다란 구조체를 형성하여 대식세포에 탐식되지 않고 콜라겐을 유도하여 우수한 조직 수복 효과를 나타낸다.
본 발명에 있어서, 상기 조직 수복 효과란, 외상이나 염증, 노화 등의 원인으로 피부 조직 등에 괴사, 결손 등이 생겼을 대에 그 조직을 본래의 상태로 되돌리는 효과를 말한다.
따라서, 본 발명의 또 다른 측면은, 상기 본 발명의 조직 수복용 분말 제형; 및 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체;를 포함하는, 조직 수복용 주사제 조성물을 제공한다.
본 발명의 조직 수복용 주사제 조성물에 포함되는 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체로는 통상의 것을 제한 없이 사용할 수 있으며, 예컨대, 주사용 증류수, 생리 식염수, 5% 포도당, 완충액(예컨대, 인산 완충액 (PBS)) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것을 사용할 수 있으나, 이에 한정되지 않는다.
본 발명의 조직 수복용 주사제 조성물은, 상기한 성분들 이외에, 주사용 제제에 사용 가능한 통상의 첨가제를 하나 이상 더 포함할 수 있다.
본 발명의 또 다른 측면은, 상기 본 발명의 조직 수복용 분말 제형 및 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체를 실온에서 혼합하는 것을 포함하는, 조직 수복용 주사제 조성물의 제조방법을 제공한다.
본 발명의 조직 수복용 주사제 조성물의 제조방법에 있어서, “실온”은 1 내지 30℃, 20 내지 30℃, 22 내지 28℃, 보다 구체적으로는 24 내지 26℃(예컨대, 25℃)를 의미한다.
기존의 조직 수복용 고분자 제품의 분말 제형은 가열해야(예컨대, 고분자의 녹는점에서 물의 끓는점 사이로 온도를 올려야) 수용액 형태로 제조가 가능하지만, 본 발명의 조직 수복용 분말 제형은 실온에서도 수성 매질에 쉽게 용해되므로, 그의 수용액 형태의 주사제 조성물을 실온에서 쉽게 제조 및 사용할 수 있다.
이하는 본 발명의 일 실시예이나, 본 발명의 범위는 이에 의하여 제한되지 않는다.
[실시예]
제조예 1: 분말 제형의 제조
목표 수평균분자량(Mn)이 15,000g/mol인 생체적합성 공중합체를 얻기 위하여, 친수성 생체적합성 고분자로서 수평균분자량(Mn1)이 9,850g/mol(GPC 측정)인 메톡시폴리에틸렌글리콜 (methoxypolyethyleneglycol, mPEG)의 존재하에 D,L-락타이드(D,L-lactide) 단량체를 촉매하에서 중합한 후, 결과 공중합체를 건조하여 분말 제형을 얻었다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 15,500g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 1.74이었다.
제조예 2: 분말 제형의 제조
제조예 1과 동일한 방식으로 분말 제형을 제조하되, 생체적합성 공중합체의 목표 수평균분자량(Mn)을 17,000g/mol으로 하였다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 17,200g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 1.34이었다.
제조예 3: 분말 제형의 제조
제조예 1과 동일한 방식으로 분말 제형을 제조하되, 생체적합성 공중합체의 목표 수평균분자량(Mn)을 20,000g/mol으로 하였다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 20,200g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 0.95이었다.
비교예 1
mPEG-Polycaprolactone 공중합체로 이루어진 제품(Miracle L, Dexlevo社)을 동결건조 시켜 분말로 제조한 제형을 비교예 1로 사용하였다.
비교예 2: 분말 제형의 제조
제조예 1과 동일한 방식으로 분말 제형을 제조하되, 생체적합성 공중합체의 목표 수평균분자량(Mn)을 12,000g/mol으로 하였다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 12,350g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 2.8이었다.
비교예 3: 분말 제형의 제조
목표 수평균분자량(Mn)이 25,000g/mol인 생체적합성 공중합체를 얻기 위하여, 친수성 생체적합성 고분자로서 수평균분자량(Mn1)이 20,000g/mol(GPC 측정)인 메톡시폴리에틸렌글리콜 (methoxypolyethyleneglycol, mPEG)의 존재하에 D,L-락타이드(D,L-lactide) 단량체를 촉매하에서 중합한 후, 결과 공중합체를 건조하여 분말 제형을 얻었다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 25,650g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 3.5이었다.
비교예 4: 분말 제형의 제조
목표 수평균분자량(Mn)이 23,000g/mol인 생체적합성 공중합체를 얻기 위하여, 친수성 생체적합성 고분자로서 수평균분자량(Mn1)이 20,000g/mol(GPC 측정)인 메톡시폴리에틸렌글리콜 (methoxypolyethyleneglycol, mPEG)의 존재하에 D,L-락타이드(D,L-lactide) 단량체를 촉매하에서 중합한 후, 결과 공중합체를 건조하여 분말 제형을 얻었다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-Poly(D,L-lactide) 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 23,500g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 5.7이었다.
비교예 5: 분말 제형의 제조
목표 수평균분자량(Mn)이 15,000g/mol인 생체적합성 공중합체를 얻기 위하여, 친수성 생체적합성 고분자로서 수평균분자량(Mn1)이 9,800g/mol(GPC 측정)인 메톡시폴리에틸렌글리콜 (methoxypolyethyleneglycol, mPEG)의 존재하에 카프로락톤 (ε-caprolactone) 단량체를 촉매하에서 중합한 후, 결과 공중합체를 건조하여 분말 제형을 얻었다. GPC 측정결과, 제조된 mPEG-PCL 공중합체의 수평균분자량(Mn)은 15,100g/mol이었고, 소수성 고분자 분자량의 경우 측정된 공중합체의 분자량에서 친수성 고분자 분자량을 뺀 것으로 계산하였다. 공중합체 내의 친수성 고분자인 mPEG의 수평균분자량(Mn1) 대 소수성 고분자인 Poly(D,L-lactide)의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)은 1.85이었다.
상기 mPEG-PCL을 상온에서 혼합하여 수용액으로 제조한 경우, 분산 안정성이 떨어져 침전되어 입자크기 분석이 어려웠으며, 결과값에 대한 신뢰도가 떨어졌다. 따라서, 상기 mPEG-PCL에 물을 가하고 80℃온도로 가열한 후 혼합하여 고분자 콜로이드 수용액을 제조한 후, 5중량% 농도로 희석하여 입자크기 분석을 수행하였다.
실험예 1: 고분자 분자량 분석
하기 표에 나타낸 조건으로 겔 투과 크로마토그래피(Gel Permeation Chromatography, GPC)를 수행하여, 제조예 1 내지 3 및 비교예 1 내지 5의 공중합체들의 수평균분자량(Mn)을 측정하였으며, 그 결과를 하기 표 1에 나타내었다.
Figure PCTKR2022010688-appb-img-000001
실험예 2: 수성 매질 내 고분자 나노입자의 평균 직경 측정
제조예 1 내지 3 및 비교예 1 내지 5의 제형들 각각을 수성 매질로서 주사용수에 투입하여 5중량% 농도로 만든 후, 말버른(Malvern)사의 제타사이저(Zetasizer) Nano Zs90를 사용한 동적광산란법(Dynamic Light Scattering, DLS)으로 수성 매질 내에 형성된 고분자 나노입자의 평균 직경을 측정하였다. 제조예 1 내지 3의 분말 제형을 수성 매질에 녹일 경우, 육안으로 확인이 어려운 미세한 크기의 고분자 나노입자가 수성 매질 내에 형성됨을 확인할 수 있었다. 상기 평균 직경 측정 결과를 도 1 및 하기 표 1에 나타내었다.
[표 1]
Figure PCTKR2022010688-appb-img-000002
실험예 3: 분말 제형 수용액의 안정성 확인
제조예 3의 분말 제형을 실온에서 5중량% 농도로 주사용수에 녹인 후, 시간의 경과에 따른 상태를 관찰하여 수용액의 안정성을 확인하였다. 제조예 3의 분말 제형은 20분 이내로 모두 녹아 입자가 육안으로 보이지 않았으며, 3시간 동안 방치했을 경우에도 큰 변화 없이 입자가 육안으로 보이지 않았다.
대비를 위하여, 비교예 제품(Miracle L)의 동결건조 분말 제형을 주사용수에 실온에서 5중량% 농도로 투여한 후, 시간의 경과에 따른 상태를 관찰하였다. 비교예 제품(Miracle L)의 동결건조 분말 제형의 분산액은 불투명하고 탁한 형태를 나타내었으며, 3시간 뒤에도 입자가 녹지 않고 주사용수 내에서 침전 내지 분산되었다.
실험예 4: 동물실험을 통한 조직 수복용 제형으로서의 효능 검증
본 발명에 따른 분말 제형의 조직 수복용 효능을 동물 실험을 통하여 검증하였다. 동물 실험은 생후 5주의 SD Rat(오리엔트 바이오에서 구입)으로 확인하였다.
상기 동물 실험은 생후 5주의 SD Rat 한 개체당 양측으로 식염수 (saline)과 시험 물질을 투여하였다. 실험 기간 동안 사육 환경은 온도 24±2℃상대습도 50±10%, 조명 시간 12시간으로 설정하였고, 먹이는 자유롭게 먹을 수 있게 하였다.
Control로서 생리식염수(saline), 시험 물질로서 상기 제조예 1 및 3에서 제조한 분말 제형을 주사용수에 녹인 수용액(5%, 10%, 20% 농도), 및 비교군으로서 비교예 1 제품(Miracle L) 및 비교예 2 내지 5의 분말 제형을 주사용수에 녹인 수용액(20% 농도)을 100㎕씩 일정하게 주입한 뒤, 6주 경과 후에 실험동물을 희생시키고, 신생 콜라겐 생합성력을 평가하기 위하여 시료 주입 부위의 피부 조직(도 2의 위쪽 도에서 화살표로 표시된 부분)을 Masson's Trichorme(MT)으로 염색한 후 조직 내의 콜라겐 형성을 관찰하였다. 그 결과를 도 2 (도 2의 아래쪽 도)에 나타내었다.
도 2로부터, 비교예들, 특히, Miracle L 대비, 제조예 제형들의 수용액이 우수한 콜라겐 형성을 나타내었으며, 특히 제조예 3 제형의 경우 비교예들 보다, 특히, Miracle L보다 현저히 굵은 다수의 콜라겐 섬유 형성을 나타내었음이 확인되었다.
즉, 비교예들, 특히, Miracle L과 대비하여, 본 발명에 따른 분말 제형은 운반, 보관 및 취급이 용이하다는 장점은 물론, 실온의 수성 매질에서 쉽게 용해되며, 체내에 도입시 콜라겐 형성을 보다 우수하게 유도하여, 보다 우수한 조직 수복 효과를 나타냄이 이로써 확인되었다.

Claims (18)

  1. 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체인 생체적합성 공중합체를 포함하며, 여기서,
    (1) 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 나노입자를 형성하거나[조건 (1)]; 또는
    (2) 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)이 1.84 이하이거나[조건 (2)]; 또는
    (3) 상기 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인,
    조직 수복용 분말 제형.
  2. 제1항에 있어서, 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1)을 만족시키는 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  3. 제1항에 있어서, 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (2)를 만족시키는 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  4. 제1항에 있어서, 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  5. 제1항에 있어서, 친수성 생체적합성 고분자는 폴리에틸렌글리콜 또는 그의 유도체, 폴리비닐피롤리돈, 폴리비닐알콜, 폴리아크릴아미드 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  6. 제1항에 있어서, 소수성 생체적합성 고분자는 폴리락타이드, 폴리글리콜라이드, 폴리(락틱-글리콜라이드), 폴리만델릭산, 폴리카프로락톤, 폴리디옥산-2-온, 폴리아미노산, 폴리오르소에스터, 폴리언하이드라이드, 폴리카보네이트 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  7. 제1항에 있어서, 친수성 생체적합성 고분자는 폴리에틸렌글리콜(PEG), 메톡시폴리에틸렌글리콜(mPEG) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것이고, 소수성 생체적합성 고분자는 폴리락타이드, 폴리글리콜라이드, 폴리(락틱-글리콜라이드) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것인, 조직 수복용 분말 제형.
  8. 제1항에 있어서, 친수성 생체적합성 고분자의 겔 투과 크로마토그래피에 의한 수평균분자량은 1,000 g/mol 내지 30,000 g/mol인, 조직 수복용 분말 제형.
  9. 제1항에 있어서, 소수성 생체적합성 고분자의 겔 투과 크로마토그래피에 의한 수평균분자량은 500 g/mol 내지 30,000 g/mol인, 조직 수복용 분말 제형.
  10. 제1항에 있어서, 생체적합성 공중합체의 겔 투과 크로마토그래피에 의한 수평균분자량은 2,000 g/mol 내지 40,000 g/mol인, 조직 수복용 분말 제형.
  11. 제1항에 있어서, 동결건조 보조제를 추가로 포함하는, 조직 수복용 분말 제형.
  12. 제11항에 있어서, 동결건조 보조제는 락토스, 말토스, 슈크로스, 트레할로스, 만니톨, 솔비톨, 말티톨, 자일리톨 및 락티톨로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 하나 이상인, 조직 수복용 분말 제형.
  13. 제1항에 있어서, 국소 마취제를 추가로 포함하는, 조직 수복용 분말 제형.
  14. 제13항에 있어서, 상기 국소 마취제는 암부카인(ambucaine), 아몰라논(amolanone), 아밀로카인(amylocaine), 베녹시 네이트(benoxinate), 벤조카인(benzocaine), 베톡시카인(betoxycaine), 비페나민(biphenamine), 부피바카인(bupivacaine), 부타카인(butacaine), 부탐벤(butamben), 부타닐리카인(butanilicaine), 부테타민 (butethamine), 부톡시카인(butoxycaine), 카르티카인(carticaine), 클로로프로카인(chloroprocaine), 코카에틸렌(cocaethylene), 코카인(cocaine), 사이클로메티카인(cyclomethycaine), 다이부카인(dibucaine), 다이메티소퀸(dimethysoquin), 다이메토카인(dimethocaine), 디페로돈(diperodon), 다이사이클로닌(dycyclonine), 에크고니딘(ecgonidine), 에크고닌(ecgonine), 에틸 클로라이드(ethyl chloride), 에티도카인(etidocaine), 베타유카인(beta-eucaine), 유프로신(euprocin), 페날코민(fenalcomine), 포르모카인(formocaine), 헥실카인(hexylcaine), 하이드록시테트라카인(hydroxytetracaine), 이소부틸 p-아미노벤조에이트(isobutyl paminobenzoate), 류시노카인 메실레이트(leucinocaine mesylate), 레복사드롤(levoxadrol), 리도카인(lidocaine), 메피바카인(mepivacaine), 메프릴카인(meprylcaine), 메타부톡시카인(metabutoxycaine), 메틸 클로라이드(methyl chloride), 미르테카인(myrtecaine), 나에파인(naepaine), 옥타카인(octacaine), 오르소카인(orthocaine), 옥세타자인(oxethazaine), 파레톡시카인(parethoxycaine), 페나카인(phenacaine), 페놀(phenol), 피페로카인(piperocaine), 피리도카인(piridocaine), 폴리도카놀(polidocanol), 프라목신(pramoxine), 프릴로카인(prilocaine), 프로카인(procaine), 프로파노카인(propanocaine), 프로파라카인(proparacaine), 프로피오카인(propipocaine), 프로록시카인(propoxycaine), 슈도코카인(psuedococaine), 피로카인(pyrrocaine), 로피바카인(ropivacaine), 살리실 알코올(salicyl alcohol), 테트라카인(tetracaine), 톨릴카인(tolycaine), 트리메카인(trimecaine), 졸라민(zolamine), 및 이들의 염으로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상인, 조직 수복용 분말 제형.
  15. 친수성 생체적합성 고분자의 존재하에 소수성 생체적합성 고분자용 단량체를 중합하여 친수성 생체적합성 고분자와 소수성 생체적합성 고분자의 공중합체를 제조하는 단계; 및
    상기 제조된 공중합체를 건조하는 단계;를 포함하며, 여기서,
    (1) 상기 생체적합성 공중합체가 수성 매질 내에서 동적광산란법으로 측정시 20 nm 초과 내지 100 nm 이하의 평균 직경을 나타내는 미셀 형태의 나노입자를 형성하거나[조건 (1)]; 또는
    (2) 상기 생체적합성 공중합체 내의 상기 친수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn1) 대 상기 소수성 생체적합성 고분자의 수평균분자량(Mn2)의 비율(Mn1/Mn2)이 1.84 이하이거나[조건 (2)]; 또는
    (3) 상기 생체적합성 공중합체가 상기 조건 (1) 및 (2)를 모두 만족시키는 것인,
    조직 수복용 분말 제형의 제조 방법.
  16. 제15항에 있어서, 소수성 생체적합성 고분자용 단량체는 락타이드, 글리콜라이드, 만델릭산, 카프로락톤 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택된 것인, 조직 수복용 분말 제형의 제조 방법.
  17. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항의 조직 수복용 분말 제형; 및
    약학적으로 허용 가능한 주사용 담체;를 포함하는,
    조직 수복용 주사제 조성물.
  18. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항의 조직 수복용 분말 제형 및 약학적으로 허용 가능한 주사용 담체를 실온에서 혼합하는 것을 포함하는, 조직 수복용 주사제 조성물의 제조방법.
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