WO2022045792A1 - 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 h5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트 - Google Patents

고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 h5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트 Download PDF

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WO2022045792A1
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monoclonal antibody
subtype
hybridoma cell
cell line
avian influenza
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여선주
박현
덩단바오
친티튀디엔
단둑덩
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원광대학교산학협력단
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Definitions

  • the present invention relates to a monoclonal antibody specific for the highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype and a rapid diagnostic kit using the same.
  • the present invention is the result of research conducted with the support of the National Research Foundation (NRF-2015R1A6A1A03032236, NRF-2018M3A9H4055194) with funding from the Ministry of Education and the Ministry of Science and ICT.
  • NRF-2015R1A6A1A03032236, NRF-2018M3A9H4055194 with funding from the Ministry of Education and the Ministry of Science and ICT.
  • the causative agent of avian influenza is Infuenza virus type A of Orthomyxoviridae.
  • the subtypes of influenza A are classified according to the types of two proteins, namely, hemagglutinin (HA) and neuraminidase (NA).
  • Influenza virus subtypes are represented by each HA subtype and NA subtype (eg H5N1), and the avian influenza virus has 16 HA subtypes from H1 to H16 and 9 NA subtypes from N1 to N9,
  • H5N1 hemagglutinin
  • NA subtype eg H5N1
  • influenza virus has 16 HA subtypes from H1 to H16 and 9 NA subtypes from N1 to N9
  • There are 144 types of influenza viruses that can exist arithmetically. All of the highly pathogenic avian influenza outbreaks to date belong to the H5 and H7 subtypes.
  • Asian Highly Pathogenic Avian Influenza HPAI
  • H5N1 Asian Highly Pathogenic Avian Influenza
  • Korea Patent Publication No. 2012-0010222 discloses 'a kit for detecting highly pathogenic avian influenza H5N1 subtype virus', but the kit showed a characteristic that it did not respond to other viruses of the H5 subtype
  • Korean Patent No. 2113302 discloses 'a peptide that specifically binds to the H5 subtype of avian influenza virus based on the complementarity determinant and its use', but the 'monoclonal antibody specific for the highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype and a rapid diagnostic kit using the same' of the present invention
  • the present invention was derived from the above needs, and the present inventors prepared influenza virus PR8-H5N6 virus prepared using the H5N6 HA (2.3.4.4) delete polybasic cleavage site consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 by a reverse genetic method.
  • Two types of hybridoma cell lines producing monoclonal antibodies that specifically bind to the hemagglutinin unit HA1 of influenza H5 subtype virus were prepared using the inactivated virus as an immunogen.
  • the present invention was completed by confirming that H5 subtype influenza virus can be rapidly detected through a fluorescent immunodiagnostic kit using monoclonal antibodies produced from the hybridoma cell line.
  • the present invention provides a monoclonal antibody that specifically binds to hemagglutinin of the highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype.
  • the present invention provides a hybridoma cell line producing the monoclonal antibody.
  • the present invention also provides a method for detecting a highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype comprising the step of detecting an antigen-antibody complex formed by contacting the monoclonal antibody with a sample sample.
  • the present invention provides a kit for detecting highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype comprising the monoclonal antibody.
  • the monoclonal antibody developed in the present invention can be used in a kit that can quickly diagnose H5N6 and H5N8, which are highly pathogenic avian influenza. It is expected that it will be able to secure market competitiveness as a leader by disseminating it to
  • Anti-influenza A NP positive control (monoclonal antibody produced from the hybridoma cell line KCTC 13069BP).
  • FIG. 3 is a schematic diagram of a rapid fluorescence immunodiagnostic system introduced with single-cell antibodies 23.2 and 23.3.
  • Figure 4a is the H5N6 detection result using the rapid fluorescence immunodiagnostic system introduced with single-cell antibodies 23.2 and 23.3
  • Figure 4b is the raw data of the rapid fluorescence immunodiagnostic system
  • Figure 4c is a commercial influenza
  • a diagnostic kit is the detection result using
  • Figure 5a is the H5N8 detection result using the rapid fluorescence immunodiagnostic system introduced with single-cell antibodies 23.2 and 23.3
  • Figure 5b is the raw data of the rapid fluorescence immunodiagnostic system
  • Figure 5c is a commercial influenza
  • a diagnostic kit is the detection result using
  • FIG. 6 shows the detection results for various avian influenza subtypes using a rapid fluorescence immunodiagnostic system incorporating single-cell antibodies 23.2 and 23.3.
  • the present invention provides a monoclonal antibody that specifically binds to hemagglutinin of the highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype.
  • Hemagglutinin is an antigenic glycoprotein found on the surface of influenza viruses.
  • HA is a major protein on the surface of influenza virus in the form of a trimeric consisting of three monomers. Each monomer consists of two domains, HA1 and HA2 linked by disulfide bonds, and can be structurally divided into a round head and a stem.
  • HA1 binds to a receptor containing sialic acid to recognize a host cell
  • HA2 causes the fusion of the host cell membrane containing the receptor and the virus membrane containing HA1 to insert the viral genome into the host cell.
  • the term 'monoclonal antibody' refers to a highly specific antibody directed against a single antigenic site as a term known in the art.
  • Monoclonal antibodies are also called 'single cell group antibodies' or 'monoclonal antibodies'. Unlike polyclonal antibodies, which typically contain different antibodies directed against different epitopes (epitopes), monoclonal antibodies are directed against a single determinant on an antigen.
  • Monoclonal antibodies have the advantage of improving the selectivity and specificity of diagnostic and analytical assays using antigen-antibody binding, and also have another advantage of not being contaminated by other immunoglobulins because they are synthesized by hybridoma culture. have
  • the monoclonal antibody produced by the above hybridoma may be used without purification, but in order to obtain the best results, it is purified with high purity (eg, 95% or more) according to a method well known in the art to which the present invention belongs. it is preferable As such a purification technique, it can be separated from a culture medium or ascites fluid using, for example, a purification method such as gel electrophoresis, dialysis, salt precipitation, ion exchange chromatography, or affinity chromatography.
  • a purification method such as gel electrophoresis, dialysis, salt precipitation, ion exchange chromatography, or affinity chromatography.
  • the monoclonal antibody of the present invention is a monoclonal antibody 23.2 produced by a hybridoma cell line (Hybridoma cell clone: #23.2-lgG2a kappa light chain) with an accession number of KCTC14277BP deposited with the Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology on August 24, 2020. Or it is characterized in that the monoclonal antibody 23.3 produced by the hybridoma cell line (Hybridoma cell clone: #23.3-lgG2a kappa light chain) having an accession number of KCTC14278BP.
  • the monoclonal antibody may specifically bind to HA of the highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype, and preferably bind specifically to HA of H5N6 and H5N8 viruses, but is not limited thereto.
  • the monoclonal antibody of the present invention inactivates the influenza virus PR8-H5N6 virus made using the H5N6 HA (2.3.4.4) delete polybasic cleavage site consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 by a reverse genetic method. And using the inactivated virus, two types of antibodies produced from hybridoma cells obtained by cell fusion technology from immunized mouse splenocytes were prepared, and they were named 23.2 and 23.3, respectively.
  • the present invention also provides a hybridoma cell line producing the monoclonal antibody.
  • the hybridoma cell line of the present invention is a hybridoma cell line having an accession number of KCTC14277BP or KCTC14278BP.
  • Monoclonal antibody 23.2 of the present invention was prepared from a hybridoma cell line with accession number KCTC14277BP deposited with the Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology on August 24, 2020, and another monoclonal antibody 23.3 was deposited with the Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology on August 24, 2020 It was prepared from the hybridoma cell line with accession number KCTC14278BP deposited on the date.
  • the present invention also provides a method for detecting a highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype comprising the step of detecting an antigen-antibody complex formed by contacting the monoclonal antibody with a sample sample.
  • the term "antigen-antibody complex” refers to a combination of the H5 subtype influenza virus HA antigen in a sample and the monoclonal antibody or fragment thereof according to the present invention that recognizes it, and the antigen-antibody complex is colormetric. method), electrochemical method, fluorimetric method, luminometry, particle counting method, visual assessment and scintillation counting method selected from the group consisting of It can be detected by any method. However, it is not necessarily limited to these, and various applications and applications are possible.
  • markers can be used to detect the antigen-antibody complex.
  • Specific examples may be selected from the group consisting of enzymes, fluorescent substances, ligands, luminescent substances, microparticles, and radioactive isotopes, but are not limited thereto.
  • Preferred enzymes used as detection markers include acetylcholinesterase, alkaline phosphatase, ⁇ -D-galactosidase, horseradish peroxidase or ⁇ -lactamase, and preferred fluorescent substances include quantum dots, fluoro Rescein, Eu 3+ , Eu 3+ chelates or cryptates, preferred ligands are biotin derivatives, preferred phosphors are acridinium esters or isoluminol derivatives, preferred microparticles are colloidal gold or There is a colored latex, and preferred radioactive isotopes include, but are not limited to, 57 Co, 3 H, 125 I or 125 I-Bolton Hunter's reagent.
  • the method for detecting the antigen-antibody complex is preferably, but not limited to, enzyme immunosorbent assay (ELISA).
  • the enzyme immunosorbent method is a direct ELISA using an antibody recognizing an antigen attached to a solid support, an indirect ELISA using a labeled secondary antibody recognizing a capture antibody in a complex of an antibody recognizing an antigen attached to a solid support, and attached to a solid support
  • It includes various ELISA methods such as indirect sandwich ELISA using a secondary antibody.
  • the monoclonal antibody or fragment thereof may have a detection label, and when it does not have a detection label, these monoclonal antibodies or fragments thereof can be captured, and can be confirmed by treatment with another antibody having a detection label. .
  • the present invention also provides a kit for detecting highly pathogenic avian influenza virus H5 subtype comprising the monoclonal antibody.
  • the monoclonal antibody included in the kit of the present invention may be monoclonal antibody 23.2 produced by the hybridoma cell line having an accession number KCTC14277BP and/or monoclonal antibody 23.3 produced by the hybridoma cell line having an accession number KCTC14278BP. do not limit
  • the kit for detecting H5 subtype influenza virus of the present invention is not particularly limited as long as it can immunodetect a desired antigen, including the conjugate of the present invention with a monoclonal antibody and a fluorescent substance, but preferably a strip-type FICT ( fluorescent immunochromatographic test) kit.
  • a desired antigen including the conjugate of the present invention with a monoclonal antibody and a fluorescent substance, but preferably a strip-type FICT ( fluorescent immunochromatographic test) kit.
  • the kit for detecting H5 subtype influenza virus comprises: a sample injection unit for injecting a sample; a binding part comprising a fluorescent substance-antibody complex to which monoclonal antibody 23.2 produced by a hybridoma cell line having an accession number of KCTC14277BP located at a point spaced apart from the sample injection part by a predetermined distance; a test line in which monoclonal antibody 23.3 produced by a hybridoma cell line having an accession number of KCTC14278BP is fixed at a location spaced apart from the binding portion by a predetermined interval; and a control line to which anti-mouse IgG is immobilized is preferably provided sequentially, but is not limited thereto.
  • the phosphor that can be used in the kit of the present invention any known in the art may be used.
  • the monoclonal antibody of the present invention may be labeled with europium, but is not limited thereto.
  • sample' is used interchangeably with a sample or specimen as a detection target.
  • influenza virus PR8-H5N6 virus prepared using the H5N6 HA (2.3.4.4) delete polybasic cleavage site consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 was inactivated with heat, and the inactivated virus was used as an immunogen to generate mice.
  • a total of 4 immunizations were performed intraperitoneally at intervals of 1 week.
  • cell fusion technique was performed with myeloma cells, and fusion cells (hybridomas) survived in HAT (hypoxanthine/aminopterin/thymidine) medium.
  • HAT hyperxanthine/aminopterin/thymidine
  • each of 23.2 and 23.3 clones was injected intraperitoneally into mice and collected when ascites was formed, and monoclonal antibodies were purified using a protein A column.
  • Single-cell antibody 23.2 was bound to PS-COOH europium nanoparticles (hereinafter, Eu NP) beads (0.1 ⁇ m) to prepare Eu NP-antibody complexes. Briefly, 20 ⁇ l of Eu NPs were added to 754 ⁇ l of 0.05M MES buffer (pH 6.1, Sigma-Aldrich), and 26 ⁇ l of 5 mM EDC (N-(3-Dimethylaminopropyl) was added to activate the -COOH group on the surface of Eu NPs.
  • Eu NP europium nanoparticles
  • the precipitate was collected by centrifugation at 27,237x g for 5 minutes, washed, and suspended in 400 ⁇ l of 2mM Borax buffer (pH 8.0) containing 0.1% bovine serum albumin, in a dark room at 4°C. kept.
  • a kit for detecting H5 subtype specific influenza virus containing the europium-antibody (23.2) complex prepared above was prepared.
  • the 23.3 monoclonal antibody is an antibody coating on the test line
  • the 23.2 monoclonal antibody is an antibody complex condensed with europium, which was used for detection of H5 subtype-specific influenza virus in the sample.
  • a sample injection unit capable of injecting a sample sample was provided by bonding a sample pad made of glass fiber, cotton, or cellulose to one end of the nitrocellulose membrane in the form of a strip.
  • a test line (T) was set, and then an influenza virus antibody (23.3) was applied to the test line.
  • an influenza virus antibody (23.3) was applied to the test line.
  • cast 3 mg/ml was added to fix it.
  • a control line (C) was set, and then 0.5 mg/ml of a secondary antibody (antibody against mouse IgG) against an antibody that specifically binds to influenza virus was added to the control line.
  • a fluorescence detection kit was prepared in which a sample pad, a composition for detecting influenza virus, a test line and a control line were sequentially arranged on a strip-shaped nitrocellulose membrane (FIG. 3). After applying the sample (sample) to the strip, fluorescence can be measured with a small fluorescence measuring device within 20 minutes, and the wavelength of the europium phosphor is as follows: Excitation: 355 nm, Emission: 612 nm.
  • Example 1 High-risk avian influenza H5 subtype virus diagnostic performance characteristics of single-cell antibody
  • H1N1, H9N2, H5N8 and H5N6 viruses were loaded on a gel for western blotting at 500 HAU/lane, respectively, and then 23.2 and 23.3 were reacted with a primary antibody at 1 ⁇ g/ml, respectively, 23.2 and 23.3. It was confirmed that only reacted specifically to H5N8 and H5N6 viruses, and not to H1 and H9 subtype influenza viruses (FIG. 1). In addition, as a result of inferring from the size of the detected antigen, it was expected that the monoclonal antibodies derived from clones 23.2 and 23.3 recognized a linear epitope and recognized HA1.
  • each virus was added to a 96-well plate at a concentration of 256 HAU/well, coated at 37° C. for 2 hours, and then blocked with 5% BSA. Thereafter, 23.2 and 23.3 as primary antibodies were added at 10 ⁇ g/ml, respectively, and reacted at 37° C. for about one hour, followed by washing with PBS-T three times. Then, it was washed with anti-mouse IgG HRP (anti-mouse IgG HRP) at 37° C. for 45 minutes, and TMB (3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine) was added to measure color development. As a result, it was confirmed that both antibodies showed a stronger binding force to the H5 subtype virus than other subtype viruses (FIG. 2).
  • Example 2 Influenza virus H5 subtype detection ability using a diagnostic kit using 23.2 and 23.3 monoclonal antibodies
  • the present inventors analyzed the detection limit of H5N6 virus using the rapid fluorescence immunodiagnostic kit prepared in Preparation Example 2 above.
  • the influenza A rapid diagnostic kit was used as a comparative control.
  • the present inventors tested influenza viruses of other subtypes using the diagnostic kit of the present invention using the 23.2 and 23.3 monoclonal antibodies prepared in Preparation Example 2, but high titers of H1N1, H7N1 and H9N2 viruses (1,280 HAU/ml ), it was confirmed that the monoclonal antibody of the present invention and the diagnostic kit using the same have very high specificity to the H5 subtype (FIG. 6).

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Abstract

본 발명은 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트에 관한 것으로, 구체적으로는 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 또는 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체를 이용한 H5 아형 인플루엔자 바이러스의 검출방법에 관한 것이다.

Description

고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트
본 발명은 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트에 관한 것이다.
본 발명은 교육부와 과학기술정보통신부의 재원으로 한국연구재단의 지원(NRF-2015R1A6A1A03032236, NRF-2018M3A9H4055194)을 받아 수행된 연구결과입니다.
조류 인플루엔자의 원인체는 오르소믹소비리대(Orthomyxoviridae)의 인플루엔자 바이러스 타입 A(Infuenza virus type A)이다. A형 인플루엔자의 아형(subtype)은 두 가지 단백질 즉, 혈구응집(Hemagglutinin, HA) 및 뉴라미니다아제(Neuraminidase, NA)의 종류에 따라 구분된다. 인플루엔자 바이러스의 아형은 각각의 HA 아형과 NA 아형으로 표시하며(예: H5N1), 조류 인플루엔자 바이러스는 H1형으로부터 H16형까지 16가지 HA 아형과, N1형으로부터 N9형까지 9가지 NA 아형이 있어, 산술적으로 존재 가능한 인플루엔자 바이러스의 종류는 144가지이다. 현재까지 발생한 고병원성 조류 인플루엔자는 모두 H5 및 H7 아형에 속한다.
1996년에, 아시안계 고병원성 조류인플루엔자(Highly Pathogenic Avian Influenza, HPAI) H5N1가 처음 중국에서 발생하여 과거 100년 내에 세계 최대의 유행성 국경을 넘는 동물 질환이 시작되었다. 그 후 아시안계 H5N1 바이러스는 아시아, 중동, 유럽 및 아프리카에 확산되어 4억 마리 이상의 가금의 죽음 또는 강제적 폐기를 야기하였다. 근래에는 가금류에 있어서의 H5N1 아형 바이러스 감염에 의한 인플루엔자의 발생으로부터, 사람에의 감염 사례가 연달아 보고되고 있다. 이러한 상황으로부터, H5N1 아형 조류 인플루엔자 바이러스가 사람에서 사람으로 효율적으로 감염될 수 있도록 변이하여 신형 인플루엔자 바이러스가 되는 것이 염려되고 있다. 따라서, 고병원성인 H5 아형 조류 인플루엔자 바이러스의 가금류, 야생 조류에의 감염 및 조류로부터 사람에의 감염을 조기에 발견하여 적절히 대응하는 것이, 신형 인플루엔자의 발생을 미리 막는 데 있어서 매우 중요한 과제가 되고 있다.
한편, 한국공개특허 제2012-0010222호에는 '고병원성 조류 인플루엔자 H5N1 아형 바이러스의 검출 키트'가 개시되어 있으나, 상기 키트는 H5 아형의 다른 바이러스에는 반응하지 않는 특성을 보였으며, 한국등록특허 제2113302호에는 '상보성결정부 기반 조류 인플루엔자 바이러스의 H5 아형에 특이적으로 결합하는 펩티드 및 이의 용도'가 개시되어 있으나, 본 발명의 '고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트'에 대해서는 기재된 바가 없다.
본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 도출된 것으로서, 본 발명자들은 reverse genetic 방법으로 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 H5N6 HA(2.3.4.4) delete polybasic cleavage site를 이용하여 만든 인플루엔자 바이러스 PR8-H5N6 바이러스를 불활화하고 상기 불활화한 바이러스를 면역원으로 하여 인플루엔자 H5 아형 바이러스의 헤마글루티닌 단위체 HA1에 특이적으로 결합하는 단클론항체를 생산하는 하이브리도마 세포주 2종을 제조하였다. 또한, 상기 하이브리도마 세포주로부터 생산되는 단클론항체를 활용한 형광 면역진단키트를 통해 H5 아형 인플루엔자 바이러스를 신속하게 검출할 수 있음을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다.
상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형의 헤마글루티닌(hemagglutinin)에 특이적으로 결합하는 단클론항체를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 단클론항체를 생산하는 하이브리도마 세포주를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 단클론항체를 시료 샘플과 접촉시켜 형성된 항원-항체 복합체를 검출하는 단계를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 단클론항체를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출용 키트를 제공한다.
본 발명에서 개발된 단클론항체는 고병원성 조류 인플루엔자인 H5N6과 H5N8을 신속하게 진단할 수 있는 키트에 사용될 수 있으며, 이런 항원-항체 진단키트는 국내 뿐 아니라 해외에서 인플루엔자가 발생하고 있거나 발생 가능성이 있는 국가에 보급함으로써 선두 주자로서의 시장 경쟁력을 확보할 수 있을 것으로 기대된다.
도 1은 다양한 조류 인플루엔자 아형에 대한 단세포군 항체 23.2 및 23.3의 반응성을 확인한 웨스턴 블랏 결과이다. Anti-influenza A NP: 양성 대조군(KCTC 13069BP인 하이브리도마 세포주로부터 생산되는 단클론항체).
도 2는 다양한 조류 인플루엔자 아형에 대한 단세포군 항체 23.2 및 23.3의 반응성을 확인한 ELISA 결과이다.
도 3은 단세포군 항체 23.2 및 23.3을 도입한 신속 형광 면역진단시스템의 모식도이다.
도 4a는 단세포군 항체 23.2 및 23.3을 도입한 신속 형광 면역진단시스템을 이용한 H5N6 검출 결과이고, 도 4b는 신속 형광 면역진단시스템의 원시 결과(raw data)이고, 도 4c는 상용화된 인플루엔자 A 진단키트를 이용한 검출 결과이다.
도 5a는 단세포군 항체 23.2 및 23.3을 도입한 신속 형광 면역진단시스템을 이용한 H5N8 검출 결과이고, 도 5b는 신속 형광 면역진단시스템의 원시 결과(raw data)이고, 도 5c는 상용화된 인플루엔자 A 진단키트를 이용한 검출 결과이다.
도 6은 단세포군 항체 23.2 및 23.3을 도입한 신속 형광 면역진단시스템을 이용한 다양한 조류 인플루엔자 아형에 대한 검출 결과이다.
본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형의 헤마글루티닌(hemagglutinin)에 특이적으로 결합하는 단클론항체를 제공한다.
헤마글루티닌(HA)은 인플루엔자 바이러스의 표면에서 발견되는 항원성 당단백질이다. HA는 인플루엔자 바이러스 표면에 있는 주요 단백질로 3개의 단량체로 구성된 삼량체 형태이다. 각 단량체는 이황화결합으로 연결된 HA1과 HA2의 두 개의 도메인으로 구성되어 있으며, 구조적으로 둥근 머리 부분과 줄기 부분으로 나누어 볼 수 있다. HA1은 시알릭산(sialic acid)을 포함하는 수용체와 결합하여 숙주 세포를 인식하고, HA2는 수용체를 포함하는 숙주세포 막과 HA1을 포함하는 바이러스 막의 융합을 일으켜 숙주 세포에 바이러스 게놈을 삽입하는 역할을 수행한다. 본 발명에 따른 단클론항체는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형의 HA1 단량체에 반응하는 것으로 사료된다.
본 발명에서 용어 '단클론항체(monoclonal antibody)'란 당해 분야에 공지된 용어로서 단일 항원성 부위에 대해서 지시되는 고도의 특이적인 항체를 의미한다. 단클론항체는 '단세포군 항체' 또는 '단일클론항체'라고 불리기도 한다. 통상적으로, 상이한 에피토프(항원결정기)들에 대해 지시되는 상이한 항체들을 포함하는 다클론항체(polyclonal antibody)와는 다르게, 단클론항체는 항원상의 단일 결정기에 대해서 지시된다. 단클론항체는 항원-항체 결합을 이용하는 진단 및 분석학적 분석법의 선택성과 특이성을 개선시키는 장점이 있으며, 또한 하이브리도마(hybridoma) 배양에 의해 합성되기 때문에 다른 면역글로불린에 의해 오염되지 않는 또 다른 장점을 갖는다.
상기한 하이브리도마가 생산하는 단클론항체는 정제하지 않고 사용할 수도 있으나, 최선의 결과를 얻기 위해서는 본 발명이 속하는 기술분야에 잘 알려져 있는 방법에 따라 고순도(예컨대, 95% 이상)로 정제하여 사용하는 것이 바람직하다. 이러한 정제 기술로는, 예를 들어 겔 전기영동, 투석, 염 침전, 이온교환 크로마토 그래피, 친화성 크로마토그래피 등의 정제 방법을 이용하여 배양 배지 또는 복수액(ascite fluid)으로부터 분리될 수 있다.
본 발명의 단클론항체는 한국생명공학연구원에 2020년 8월 24일자로 기탁된, 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주(Hybridoma cell clone: #23.2-lgG2a kappa light chain)에 의하여 생산되는 단클론항체 23.2 또는 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주(Hybridoma cell clone: #23.3-lgG2a kappa light chain)에 의하여 생산되는 단클론항체 23.3인 것을 특징으로 한다.
상기 단클론항체는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형의 HA에 특이적으로 결합할 수 있으며, 바람직하게는 H5N6 및 H5N8 바이러스의 HA에 특이적으로 결합할 수 있으나, 이에 제한하지 않는다.
본 발명의 일 구현예에서, 본 발명의 단클론항체는 reverse genetic 방법으로 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 H5N6 HA(2.3.4.4) delete polybasic cleavage site를 이용하여 만든 인플루엔자 바이러스 PR8-H5N6 바이러스를 불활화하고 상기 불활화한 바이러스를 사용하여 면역된 마우스 비장세포로부터 세포융합기술에 의해 획득한 하이브리도마 세포로부터 생산되는 항체 2종을 제작하였으며, 이를 각각 23.2, 23.3으로 명명하였다.
본 발명은 또한, 상기 단클론항체를 생산하는 하이브리도마 세포주를 제공한다.
본 발명의 하이브리도마 세포주는 기탁번호가 KCTC14277BP 또는 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주이다. 본 발명의 단클론항체 23.2는 한국생명공학연구원에 2020년 8월 24일자로 기탁된 수탁번호 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주로부터 제조된 것이며, 또 다른 단클론 항체 23.3은 한국생명공학연구원에 2020년 8월 24일자로 기탁된 수탁번호 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주로부터 제조된 것이다.
본 발명은 또한, 상기 단클론항체를 시료 샘플과 접촉시켜 형성된 항원-항체 복합체를 검출하는 단계를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출방법을 제공한다.
본 발명에서 용어 "항원-항체 복합체"란, 시료 중의 H5 아형 인플루엔자 바이러스 HA 항원과 이를 인지하는 본 발명에 따른 단일클론 항체 또는 이의 절편의 결합물을 의미하며, 이러한 항원-항체 복합체는 비색법(colormetric method), 전기화학법(electrochemical method), 형광법(fluorimetric method), 발광법(luminometry), 입자계수법(particle counting method), 육안측정법(visual assessment) 및 섬광계수법(scintillation counting method)으로 이루어진 군에서 선택되는 임의의 방법으로 검출할 수 있다. 그러나 반드시 이들로만 제한되지 않고 다양한 응용과 적용이 가능하다.
본 발명에서는 항원-항체 복합체를 검출하기 위한 것으로 여러가지 표지체를 사용할 수 있다. 구체적인 예로는 효소, 형광물, 리간드, 발광물, 미소입자, 방사성 동위원소로 이루어진 그룹 중에서 선택될 수 있으며, 반드시 이들로만 한정되는 것은 아니다.
검출 표지체로서 사용되는 바람직한 효소로는 아세틸콜린에스테라제, 알칼라인 포스파타제, β-D-갈락토시다제, 호스래디쉬 퍼옥시다제 또는 β-락타마제가 있으며, 바람직한 형광물로는 양자점, 플루오레세인, Eu3+, Eu3+ 킬레이트 또는 크립테이트가 있으며, 바람직한 리간드로는 바이오틴 유도체가 있고, 바람직한 발광물로는 아크리디늄 에스테르 또는 이소루미놀 유도체가 있으며, 바람직한 미소입자로는 콜로이드 금 또는 착색된 라텍스가 있고, 바람직한 방사성 동위원소로는 57Co, 3H, 125I 또는 125I-볼톤(Bolton) 헌터(Hunter) 시약이 있으나, 이에 한정하는 것은 아니다.
항원-항체 복합체를 검출하는 방법은 바람직하게는 효소면역흡착법(ELISA)을 이용하여 검출할 수 있으나, 이에 한정하는 것은 아니다. 효소면역흡착법은 고체 지지체에 부착된 항원을 인지하는 항체를 이용하는 직접적 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항원을 인지하는 항체의 복합체에서 포획 항체를 인지하는 표지된 이차 항체를 이용하는 간접적 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항체와 항원의 복합체에서 항원을 인지하는 표지된 또 다른 항체를 이용하는 직접적 샌드위치 ELISA, 고체 지지체에 부착된 항체와 항원의 복합체에서 항원을 인지하는 또 다른 항체와 반응시킨 후 이 항체를 인지하는 표지된 이차 항체를 이용하는 간접적 샌드위치 ELISA 등 다양한 ELISA 방법을 포함한다.
상기 단클론항체 또는 이의 절편은 검출 표지체를 가질 수 있으며, 검출 표지체를 가지지 않을 경우는 이들 단일클론 항체 또는 이의 절편을 포획할 수 있고, 검출 표지체를 가지는 또 다른 항체를 처리하여 확인할 수 있다.
본 발명은 또한, 상기 단클론항체를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출용 키트를 제공한다.
본 발명의 키트에 포함되는 단클론항체는 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.2 또는/및 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.3일 수 있으나, 이에 제한하지 않는다.
본 발명의 H5 아형 인플루엔자 바이러스 검출용 키트는 본 발명의 단클론항체와 형광물질이 결합된 결합체를 포함하여 목적하는 항원을 면역검출할 수 있는 한 특별히 이에 제한되지 않으나, 바람직하게는 스트립 형태의 FICT(fluorescent immunochromatographic test) 키트가 될 수 있다.
본 발명에 따른 상기 H5 아형 인플루엔자 바이러스 검출용 키트는, 시료를 주입하는 시료 주입부; 상기 시료 주입부로부터 일정 간격이 이격된 지점에 위치하는 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.2가 결합된 형광체-항체 복합체를 포함하는 결합부; 상기 결합부로부터 일정 간격이 이격된 위치에 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.3이 고정된 검사선(test line); 및 항-마우스 IgG가 고정된 대조선(control line)이 순차적으로 구비되는 것이 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 키트에 사용될 수 있는 형광체는 당업계에 공지되어 있는 어떠한 것도 이용할 수 있다. 본 발명의 일 구현 예에서, 본 발명의 단클론항체는 유로피움(europium)으로 표지될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명에서 용어 '시료'는 검출 대상체로 샘플 또는 검체와 동일한 의미로 혼용되어 사용되었다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
제조예 1. 고위험성 조류 인플루엔자 바이러스 H5에 특이적인 단클론항체의 제조
Reverse genetic 방법으로 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 H5N6 HA(2.3.4.4) delete polybasic cleavage site를 이용하여 만든 인플루엔자 바이러스 PR8-H5N6 바이러스를 열로 불활화하고, 상기 불활화한 바이러스를 면역원으로 하여 마우스의 복강에 1주 간격으로 총 4회 면역시켰다. 면역된 마우스의 비장세포(splenocytes)를 얻은 다음, 골수종 세포(myeloma cells)와 세포융합기술(cell fusion technique)을 시행하고, HAT(hypoxanthine/aminopterin/thymidine) 배지에서 생존한 융합세포(하이브리도마) 클론 중 세포 배양 상징액(supernatant)을 이용한 ELISA 실험에서 H5 아형 바이러스인 H5N6 바이러스와 특이적으로 반응하는 단클론항체를 생산하는 23.2 및 23.3 클론을 선별하였다.
단클론항체의 대량생산을 위해 23.2와 23.3 클론 각각을 마우스 복강 내로 주입하여 복수가 생성되면 채취하였고, 단백질 A 칼럼(protein A column)을 이용하여 단클론항체를 정제하였다.
제조예 2. 단세포군 항체 23.2 및 23.3을 이용한 신속 진단 키트 제작
2-1. 형광체-항체 복합체 제조
단세포군 항체 23.2를 PS-COOH 유로피움 나노파티클(이하, Eu NP) 비드(0.1 μm)에 결합시켜 Eu NP-항체 복합체를 만들었다. 간단하게, 20㎕의 Eu NP를 754㎕의 0.05M MES 버퍼(pH 6.1, Sigma-Aldrich)에 첨가하고, Eu NP 표면의 -COOH기를 활성화하기 위해 26㎕의 5mM EDC (N-(3-Dimethylaminopropyl)-N'-ethylcarbodiimide hydrochloride)와 200㎕의 50mM sulfo-NHS (N-hydroxysulfosuccinimide sodium salt) 존재하에, 25℃에서 1시간 동안 교반하였다. 반응 후, 과량의 EDC와 sulfo-NHS는 27,237xg에서 5분 동안 원심분리하여 제거하였다. 활성화된 Eu NP는 0.1M 인산나트륨 버퍼(pH 8.0) 940㎕ 및 60㎕의 1 ㎎/㎖ 농도의 23.2 항체와 혼합한 후 25℃에서 2시간 동안 반응시켰다. 반응 종료 후, 27,237xg에서 5분 동안 원심분리하여 침전물을 수거하고, 세척한 후, 0.1% 소혈청알부민을 포함하고 있는 400㎕의 2mM Borax 버퍼(pH 8.0)에 현탁시켜, 4℃ 암실에서 보관하였다.
2-2. 신속 형광 면역진단키트용 스트립 제조
상기 제조한 유로피움-항체(23.2) 복합체를 포함하는 H5 아형 특이 인플루엔자 바이러스 검출용 키트를 제작하였다. 이때 23.3 단클론항체는 검사선(test line)에 점적하는(coating) 항체이고, 23.2 단클론항체는 유로피움과 축합된 항체 복합체로서 시료 내 H5 아형 특이적 인플루엔자 바이러스 검출(detection)용으로 사용되었다.
구체적으로는 스트립 형태의 나이트로셀룰로오스 멤브레인의 일 말단에 유리섬유(glass fiber), 코튼(cotton) 또는 셀룰로오스 재질의 검체 패드를 결합시켜서 검체 시료를 투입할 수 있는 시료 주입부를 구비시켰다. 상기 검체 패드와 일정 간격을 두고, 상기 유로피움-항체(23.2) 복합체 6 ㎕를 가한 다음 일정 간격을 두고, 검사선(T)을 설정한 다음, 상기 검사선에 인플루엔자 바이러스에 대한 항체(23.3)를 3 ㎎/㎖을 가하여 고정시켰다. 상기 검사선으로부터 일정 간격을 두고, 대조선(control line; C)을 설정한 다음, 상기 대조선에 인플루엔자 바이러스와 특이적으로 결합하는 항체에 대한 이차항체(마우스 IgG에 대한 항체) 0.5 ㎎/㎖을 가하여 고정시켰다. 최종적으로, 스트립 형태의 나이트로셀룰로오스 멤브레인 위에 검체패드, 인플루엔자 바이러스 검출용 조성물, 검사선 및 대조선이 순차적으로 정렬된 형태의 형광 검출 키트를 제작하였다(도 3). 스트립에 시료(검체)를 적용한 후 20분 안에 소형 형광측정장비로 형광을 측정할 수 있고, 유로피움 형광체의 파장은 하기와 같다: Excitation: 355 nm, Emission: 612 nm.
실시예 1. 단세포군 항체의 고위험성 조류 인플루엔자 H5 아형 바이러스 진단 성능 특성
상기 제조예 1을 통해 제조한 23.2 및 23.3 클론 유래 단클론항체의 H5 아형 바이러스에 대한 반응성을 웨스턴 블랏과 ELISA를 통해 검증하였다.
먼저, 열로 불활화한 H1N1, H9N2, H5N8 및 H5N6 바이러스를 각각 500 HAU/lane으로 웨스턴 블롯용 겔에 로딩시킨 이후 1차 항체로 23.2 및 23.3을 각각 1㎍/㎖로 반응시킨 결과, 23.2 및 23.3은 H5N8 및 H5N6 바이러스에만 특이적으로 반응하고, H1 및 H9 아형 인플루엔자 바이러스에는 반응하지 않음을 확인할 수 있었다(도 1). 또한, 검출된 항원의 크기를 통해 유추한 결과, 23.2 및 23.3 클론 유래 단클론항체는 선형 에피토프(linear epitope)를 인식하고 HA1을 인식할 것으로 예상되었다.
또한, 상기 각 바이러스를 96-웰 플레이트에 256 HAU/well의 농도로 첨가하고 37℃에서 2시간 동안 코팅한 뒤 5% BSA로 블로킹하였다. 이후 1차 항체로 23.2와 23.3을 각각 10 ㎍/㎖로 넣은 뒤에 37℃에서 약 한시간 동안 반응시킨 뒤 3회 PBS-T로 세척하였다. 이후 항-마우스 IgG HRP(anti-mouse IgG HRP)로 37℃에서 45분 동안 반응시켜 세척하고 TMB(3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine)를 넣어 발색을 측정하였다. 그 결과 두 항체 모두 H5 아형 바이러스에 대해 다른 아형 바이러스보다 강한 결합력을 보임을 확인하였다(도 2).
실시예 2. 23.2 및 23.3 단클론항체가 이용된 진단 키트를 활용한 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출능
본 발명자는 상기 제조예 2에서 제조한 신속 형광 면역진단키트를 이용하여 H5N6 바이러스의 검출한계를 분석하였다. 현재, 상용화된 H5 특이 신속 진단키트는 존재하지 않아, 인플루엔자 A 신속 진단키트를 비교 대조군으로 사용하였다.
간단하게, H5N6 바이러스를 5, 10, 40, 80, 640 HAU/㎖로 단계희석해서 신속 형광 면역진단키트용 스트립에 테스트한 결과, H5N6 바이러스의 5 HAU/㎖ 까지 검출가능함을 확인할 수 있었고, 이 범위에서 r2=0.95로서 매우 정확한 검출을 할 수 있음을 알 수 있었다(도 4a). 그러나 상용화된 진단키트는 약 10 HAU/㎖의 검출한계를 보여(도 4c), 본 발명에 따른 H5 아형 특이 신속 형광 면역진단키트가 H5N6 검출에 매우 우수함을 확인할 수 있었다. 또한, H5N8 바이러스에 대해 검출한계를 분석한 결과, H5N6 바이러스와 동일하게 5 HAU/㎖ 까지 검출가능함을 확인할 수 있었고(r2=0.94), 상용화된 진단키트의 20 HAU/㎖ 검출한계에 비해 본 발명의 진단 키트가 우수한 검출능을 보임을 알 수 있었다(도 5).
또한, 본 발명자는 제조예 2에서 제조한 23.2 및 23.3 단클론항체가 이용된 본 발명의 진단키트를 이용하여 다른 아형의 인플루엔자 바이러스를 테스트하였으나, H1N1, H7N1 및 H9N2 바이러스의 높은 역가(1,280 HAU/㎖)에서도 반응성이 확인되지 않아, 본 발명의 단클론항체 및 이를 이용한 진단키트는 H5 아형에 특이성이 매우 높음을 알 수 있었다(도 6).
[수탁번호]
기탁기관명 : 한국생명공학연구원
수탁번호 : KCTC14277BP
수탁일자 : 20200824
기탁기관명 : 한국생명공학연구원
수탁번호 : KCTC14278BP
수탁일자 : 20200824
Figure PCTKR2021011436-appb-img-000001
Figure PCTKR2021011436-appb-img-000002

Claims (8)

  1. 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형의 헤마글루티닌(hemagglutinin)에 특이적으로 결합하는 단클론항체.
  2. 제1항에 있어서, 상기 단클론항체는 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.2 또는 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.3인 것을 특징으로 하는 단클론항체.
  3. 제1항에 있어서, 상기 H5 아형 바이러스는 H5N6 또는 H5N8인 것을 특징으로 하는 단클론항체.
  4. 제1항의 단클론항체를 생산하는 하이브리도마 세포주.
  5. 제4항에 있어서, 상기 하이브리도마 세포주는 기탁번호가 KCTC14277BP 또는 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주.
  6. 제1항의 단클론항체를 시료 샘플과 접촉시켜 형성된 항원-항체 복합체를 검출하는 단계를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출방법.
  7. 제1항의 단클론항체를 포함하는 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출용 키트.
  8. 제7항에 있어서, 상기 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 H5 아형 검출용 키트는 시료를 주입하는 시료 주입부; 상기 시료 주입부로부터 일정 간격이 이격된 지점에 위치하는 기탁번호가 KCTC14277BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.2가 결합된 형광체-항체 복합체를 포함하는 결합부; 상기 결합부로부터 일정 간격이 이격된 위치에 기탁번호가 KCTC14278BP인 하이브리도마 세포주에 의하여 생산되는 단클론항체 23.3이 고정된 검사선(test line); 및 항-마우스 IgG가 고정된 대조선(control line)이 순차적으로 구비되는 것을 특징으로 하는 키트.
PCT/KR2021/011436 2020-08-28 2021-08-26 고병원성 조류 인플루엔자 바이러스 h5 아형에 특이적인 단클론항체 및 이를 이용한 신속 진단 키트 WO2022045792A1 (ko)

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