WO2021182456A1 - 人工染色体ベクター及びその用途 - Google Patents

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WO2021182456A1
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sequence
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rdna
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武彦 小林
哲史 飯田
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国立大学法人東京大学
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Definitions

  • the present invention broadly relates to artificial chromosome vectors and their uses.
  • Ribosomal RNA gene (rDNA) is such a repetitive sequence. Ribosomes are protein-RNA complexes that are most abundant in cells, and their gene, ribosomal RNA gene (rDNA), is also present in multiple copies (rDNA repeats).
  • Saccharomyces cerevisiae about 150 copies are repeatedly present in series on chromosome 12, accounting for about 10% of the entire genome.
  • the ribosome is an essential translator for all organisms, and the mechanism for maintaining the state of multiple copies of rDNA is also important. Even if the rDNA of Saccharomyces cerevisiae is artificially reduced to 2 copies, it recovers to 150 again. That is, 2 copies (18 kb) are extended to 150 copies (1.4 Mb). Recovery of copy count by such amplification is also observed in other organisms.
  • WO2016 / 027943A1 contains the N-terminal fragment gene of rDNA NTS (Nontranscript Sequence), the target gene for insertion, the auxotrophic selection marker gene containing the promoter region, and Saccharomyces.
  • -A cassette containing the C-terminal fragment gene of Saccharomyces cerevisiae rDNA NTS in sequence is disclosed.
  • the target gene is inserted into the intergenic region 2 (IGS2) of NTS (Fig. 1a, etc.).
  • IGS2 intergenic region 2
  • the binding sequence of cohesin a factor involved in the stability of rDNA, is present at the insertion site of IGS2, and when the target gene is inserted into IGS2, the binding sequence may be disrupted by the insertion.
  • An object of the present invention is to provide an artificial chromosome vector into which a large number of genes can be integrated and a new use using an artificial chromosome.
  • the present inventors have completed an artificial chromosome vector capable of incorporating a large number of genes by utilizing the specificity of the chromosomal function of rDNA. Further, they have found that the use of such an artificial chromosome vector makes it possible to provide new uses such as the provision of an artificial gene amplification system, and have completed the present invention.
  • an artificial chromosomal vector derived from an eukaryotic chromosome which comprises a repetitive unit of a plurality of ribosomal RNA genes (rDNA) and an intergenic region existing between each repetitive unit, and is an intergene region 1 in the intergene region.
  • rDNA ribosomal RNA genes
  • IGS1 is an artificial chromosomal vector containing a bar code sequence for incorporating and identifying a gene of interest.
  • the intergenic region contains a self-replicating sequence (ARS), a cohesin binding site, a 5S rDNA sequence, a non-coding promoter (E-pro) sequence, and a replication inhibition (RFB) sequence in order from the 5'side of the rDNA gene [1].
  • ARS self-replicating sequence
  • E-pro non-coding promoter
  • RRB replication inhibition
  • the artificial chromosome vector according to [2], wherein the intergenic region further contains a condensin binding site.
  • GAL galactose-induced
  • a eukaryotic cell comprising the artificial chromosome vector according to any one of [1] to [13].
  • the process of inserting a barcode array is 1) Step of inserting the first bar code sequence and selectable marker sequence into the first IGS1 by homologous recombination of rDNA and non-rDNA gene region; and 2) the first bar code sequence inserted in 1) A step of inserting a selectable marker sequence different from the second bar code sequence and the selectable marker sequence of 1) into the second IGS1 by homologous recombination of the rDNA gene region.
  • a method comprising the step of culturing. [21] The method according to [20], wherein the same target gene is amplified in the host. [22] The method according to [20] or [21], wherein the gene of interest is heterologous to the host. [23] The method according to any one of [20] to [22], wherein the host is an unstable rDNA strain. [24] The method according to [23], wherein the CTF4 gene or the RTT109 gene is deficient in the rDNA unstable strain.
  • [25] The method according to any one of [20] to [24], which comprises the step of controlling the expression level of the target gene or the expression product by expressing or suppressing the Fab1 protein produced by the host in the step 2).
  • Method. [26] A method for analyzing the behavior of a plurality of different target genes or expression products of the target genes derived from different cells in the host cell. 1) A step of maintaining and culturing an artificial chromosome vector according to any one of [1] to [13] in which a target gene is inserted in a bar code sequence in a host; and 2 ) A step of analyzing the function of the target gene or its expression product, or the behavior of the target gene or its expression product in the host. Including methods.
  • [27] The method according to [26], wherein the expression level of the expression product is measured in the step 2).
  • measuring the expression level comprises measuring the amount of transcript or translation of the gene of interest.
  • the method according to any one of [26] to [28], wherein the step 2) is carried out in the presence or absence of a substance that activates or inhibits the target gene or its expression product.
  • the step 2 is carried out in the presence or absence of a substance that activates or inhibits the target gene or its expression product.
  • the substance is homologous or heterologous to the host.
  • the method according to any one of [26] to [30], wherein the step 2) includes comparison with a host into which the artificial chromosome vector has not been introduced.
  • an artificial chromosome vector that can be used for various purposes by utilizing the amplification and maintenance mechanism of rDNA.
  • the number of genes that can be inserted is limited, and there is a weakness that the stability (maintenance efficiency) of the plasmid decreases depending on the size and properties of the inserted gene, but stability is maintained.
  • an artificial chromosome vector having a mechanism a large number of genes can be introduced and maintained extremely stably.
  • Gene amplification is a method for producing a large amount of protein, but it has not been put into practical use in an in vivo system using a host cell due to the difficulty of its control.
  • an artificial chromosome vector that encodes the same gene it is possible to construct a system that can continuously synthesize the protein encoded by that gene in the host cell (in vivo PCR), and by extension, a mass production system such as useful proteins. ..
  • this system is highly efficient because it utilizes a natural amplification system, and amplification can be controlled by turning on / off the Fob1 protein, which inhibits replication and induces double-strand breaks in DNA.
  • the amplified gene can be stably retained on the chromosome without the need for drug selection.
  • RNA is also possible.
  • an artificial chromosome vector in yeast which is a model organism relatively close to humans, it becomes possible to construct a new assay system, "in yeast" experimental system, which is located between in vitro and in vivo. ..
  • the in-yeast experimental system is an experiment in which a series of genes involved in one reaction of a different organism is cloned into an artificial chromosome vector derived from yeast as it is, the foreign reaction system is operated in yeast, and functional analysis such as identification of necessary factors is performed. It is a method.
  • the artificial chromosome vector of the present invention it is possible to construct a novel analysis model of such a heteroreaction system.
  • yeast For example, we can create yeast with a human-type protein production system and analyze drug discovery and drug targets, or reconstruct the human repair system with yeast to analyze the mechanism of cancer development and cell aging. It is assumed that it will be done. In addition, it is expected that research that has been conventionally conducted using mice and other animal individuals will be conducted in yeast.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of an amplification / maintenance mechanism of rDNA.
  • FIG. 2 is a schematic diagram of an rDNA amplification model.
  • FIG. 3 is a schematic diagram of the structure of rDNA of Saccharomyces cerevisiae.
  • FIG. 4 shows an example of a method for producing an artificial chromosome vector.
  • FIG. 5 shows an example of a method for creating a barcode.
  • FIG. 6 shows the structures of the vectors p1 st BC, p2 nd BC and p3 rd BC used to incorporate the barcode.
  • FIG. 7 shows a method for producing a vector used for integration of a target gene.
  • FIG. 8 shows the introduction of the URA3 lacO fragment into a 2-copy rDNA strain and the amplification of the URA3 lacO fragment.
  • FIG. 9 shows the results of analyzing the amplification of the URA3 lacO fragment by pulsed field gel electrophoresis.
  • FIG. 10 shows the result of confirming that the URA3-lacO cassette is amplified together with rDNA under a fluorescence microscope.
  • FIG. 11 shows a systematic gene insertion system using the R-recombinase expression plasmid YEp181GALpR (GALp-Rec) as a vector for integration of the target gene.
  • FIG. 12 illustrates the expression of human RNAi-related proteins by an artificial chromosome vector.
  • FIG. 13 illustrates the in-yeast rearrangement of the human siRNA production system.
  • FIG. 14 illustrates gene silencing by human siRNA.
  • FIG. 15 illustrates a protocol for introducing the SIR2 gene upstream of the TRP1 gene on chromosome 4 of Saccharomyces cerevisiae.
  • FIG. 16 shows the results of PCR confirming the insertion of 15 barcode sequences.
  • the present embodiment will be described, but the scope of the present invention is not construed as being limited to the following embodiments.
  • an artificial chromosome vector derived from a chromosome of a eukaryotic organism, which comprises a repetitive unit of a plurality of ribosomal RNA genes (rDNA) and an intergenic region existing between each repetitive unit, and is intergenic.
  • An artificial chromosomal vector is provided in which the intergenic region 1 (IGS1) in the region contains a bar code sequence for incorporating and identifying the gene of interest.
  • the eukaryotes from which artificial chromosome vectors are derived are not limited to higher mammals such as humans and other mammals, but also eukaryotes such as Zenigoke and yeasts that preserve the characteristics of higher eukaryotes.
  • Such fungi such as unicellular organisms such as Saccharomyces cerevisiae and fission yeast.
  • yeast is preferable, and budding yeast such as Saccharomyces cerevisiae is particularly preferable.
  • an "artificial chromosomal vector” is a vector that utilizes the chromosomal replication mechanism of eukaryotes, is capable of autonomous replication within host cells and distribution to daughter cells, and is a host. It means a vector that is stably retained in a cell and can exist independently of the chromosome of a host cell.
  • Ribosome is a protein-RNA complex that is present in the largest amount in cells, and its gene, rDNA, also exists in multiple copies (rDNA repeat).
  • the rDNA of eukaryotic cells is a repetitive gene that repeatedly exists on a chromosome 100 times or more. For example, in Saccharomyces cerevisiae, about 150 copies are repeatedly present in series on chromosome 12, and about 10 of the entire genome of Saccharomyces cerevisiae. Occupy%.
  • one repeating unit is 9.1 kb, of which about 6 kb is a gene (35S, 5S rDNA) and the remaining about 3 kb is a non-coding region contained in an intergenic region.
  • the ribosome is an essential translation device for all organisms, and the mechanism for maintaining the state of multiple copies of rDNA is also important. Even if the rDNA of Saccharomyces cerevisiae is artificially reduced to 2 copies, it recovers to 150 again. That is, 2 copies (18 kb) are extended to 150 copies (1.4 Mb). Recovery of copy count by such amplification is also observed in other organisms.
  • the rDNA of eukaryotic cells is composed of a coding region and a non-coding region (also referred to as Nonscript Sequence: NTS).
  • NTS Nonscript Sequence
  • Factors involved in the maintenance of chromosomes in rDNA such as cohesin involved in sister chromatid adhesion and condensin involved in chromosome condensation, are located between rRNA genes, specifically in the intergenic region (IGS). It is concentrated in the non-coding regions that are present and do not encode proteins (Fig. 1).
  • intergenic region existing between the repeating units of rDNA is composed of two sites, IGS1 and IGS2, with the 5S gene intervening between them.
  • intergene region means a region containing IGS1, 5S rDNA sequences and IGS2. Intergenic regions are thought to be involved in the regulation of transcription and the regulation of transcription termination.
  • a double-strand break (DSB: DNA double-strand break) of DNA occurs at a replication inhibition point (RFB: replication fork barrier) existing in the intergenic region of rDNA, and the cut end is backtracked. It is repaired by homologous recombination with sister chromatids of the adjacent copy. Since duplication is resumed from there, the same area will be duplicated twice and the number of copies will increase (Fig. 2, right). It has been found that this "backtracking recombinant repair" requires the dissociation of cohesin and condensin by transcription from a non-coding promoter.
  • the intergenic region contains a self-replicating sequence (ARS), a cohesin binding site, a 5S rDNA sequence, a non-coding promoter (E-pro) sequence, and a replication inhibition (RFB) sequence in order from the 5'side of the rDNA gene.
  • ARS self-replicating sequence
  • E-pro non-coding promoter
  • RRB replication inhibition
  • the components included in the artificial chromosome vector include a repeating unit of ribosomal RNA gene (rDNA) and an intergenic region existing between each repeating unit.
  • rDNA ribosomal RNA gene
  • the number of repetitive units is about 2 to 150, although it depends on the eukaryote from which the artificial chromosome is derived. However, the upper limit is not limited to 150 pieces. If the yeast is Saccharomyces cerevisiae, the repeating unit of rDNA is on chromosome 12 of Saccharomyces cerevisiae.
  • chromosomes include replication initiation sequences (ARS), cohesin binding sites (CAR), condensin binding sites, telomeres, centromeres, non-coding promoters, and replication inhibition sequences (RFBs) for autonomous replication of artificial chromosome vectors. It may be included. As an example, the structure of rDNA of Saccharomyces cerevisiae is shown in FIG.
  • the artificial chromosome vector may further contain a drug resistance gene, a selectable marker gene expressed in a host (positive selectable marker gene or negative selectable marker gene), and the like.
  • selectable marker gene include a gene encoding a fluorescent protein such as green fluorescent protein (GFP or EGF), a ⁇ -galactosidase gene, a luciferase gene, a gene related to nutritional demand, and the like.
  • the selectable marker used for insertion can be removed by homologous recombination or a recombinase such as Cre-LoxP.
  • Intergenic region 1 contains a barcode (BC) sequence for incorporating and identifying the target gene.
  • barcode sequence means a nucleic acid into which a target gene is inserted in an artificial chromosome and has a unique sequence for distinguishing a plurality of target genes from each other. do.
  • Each barcode sequence has a different sequence from each other, that is, a sequence unique to each rDNA copy, but depending on the purpose, some barcodes may have the same sequence.
  • the bar code sequence can be created, for example, by converting single-stranded DNA having a chemically synthesized random sequence into double strands by DNA polymerase and joining them together.
  • the barcode sequence is preferably one that does not easily form a secondary structure internally (there is no continuous sequence of GC) or one that does not contain the sequence of the restriction enzyme used for cloning.
  • An example of the barcode arrangement is shown in Table 4.
  • the insertion site of the barcode sequence may be anywhere in IGS1 as long as it does not affect the desired effect, but between the 5S rDNA sequence and the non-coding promoter (E-pro) sequence, or between the E-pro sequence and replication inhibition. It is preferably between (RFB) sequences.
  • the barcode sequence has a recognition site for a restriction enzyme or a recombinant enzyme.
  • recognition sites include, for example, loxP (Cre recombinase recognition site), FRT (Flp recombinase recognition site), ⁇ C31attB and ⁇ C31attP ( ⁇ C31 recombinase recognition site), R4attB and R4attP (R4 recombinase recognition site), TP901-1attB and TP901.
  • -1attP TP901-1 recombinase recognition site
  • Bxb1attB and Bxb1attP Bxb1 recombinase recognition site
  • Enzymes for specifically recombining with the target gene or the like at the above recognition site include Cre integrase (Cre recombinase), Flp recombinase, ⁇ C31 integrase, R4 integrase, TP901-1 integrase, Bxb1 integrase and the like. Is.
  • each barcode sequence can serve as a target for insertion of the target gene.
  • the barcode sequence may include a promoter sequence and a terminator sequence for controlling the expression of the gene of interest.
  • the terminator sequence can be arranged on the 3'side of each target gene, and the promoter sequence can be arranged on the 5'side.
  • the promoter may be any inducible in the host and is not particularly limited. Examples of promoters that can be used in Saccharomyces cerevisiae include inducible promoters such as galactose-inducible (GAL) promoter and alkaline phosphatase promoter (PHO). Examples thereof include a CUP1 promoter activated by the addition of copper ions, and a constitutive promoter such as ADH1. GAL promoters include GAL1, GAL7, GAL10 and the like.
  • the barcode sequence is preferably about 600 bp because if it is too short, the gene insertion efficiency using homologous recombination decreases, and if it is too long, it is difficult to create it.
  • the barcode sequence can be inserted into an artificial chromosome vector using a method known to those skilled in the art such as homologous recombination.
  • An example is shown in FIG. 4, for example, 1) a selectable marker gene (LYS2) and a unique first barcode sequence (BC-1) of about 600 bp are homologous using the sequence of non-rDNA next to rDNA repeat. Instead, it is introduced into the vector. Subsequently, 2) a new unique second barcode sequence (BC-2) and different selectable marker genes URA3 and rDNA were introduced next to each other using the BC-1 and non-rDNA sequences, and at the same time. LYS2 is excluded.
  • the LYS2-BC-3-rDNA-fragment is introduced by homologous recombination between the BC2 and non-rDNA sequences, and URA3 is removed at the same time.
  • the steps 2) and 3) are repeated by changing only the barcode sequence, and rDNA copies having unique barcode sequences are added in order, and finally the desired artificial chromosome is added.
  • Vectors can be constructed.
  • An arbitrary sequence such as an adapter sequence for sequencing can be further added to each barcode sequence.
  • rDNA repeats are also formed and maintained on other chromosomes (Oakes et al, Mol Cell Biol 26: 6223-6238, 2006). Therefore, from the viewpoint of efficiency, short chromosomal vectors are prepared separately in different cells, and finally those chromosomes are combined into one cell by mating to produce cells having multiple copies of barcodes in a short period of time. Can be done.
  • each barcode sequence is inserted into a restriction enzyme site located between the 5S rDNA sequence and the E-pro sequence.
  • the target gene may be the same or different from the host into which the artificial chromosome vector is introduced, and may be the same or different from each other.
  • the target gene is placed under the control of an appropriate promoter, and may be further integrated into an artificial chromosome vector in combination with a terminator, enhancer, marker, or the like.
  • an artificial chromosome vector in which the same gene is inserted into a large number of bar code sequences, it is possible to realize an artificial gene amplification system (in vivo PCR) capable of mass production of useful proteins and the like. Unlike the conventional mass production system using a multi-copy plasmid, there is an advantage that the amplified gene can be stably retained on the chromosome without the need for drug selection.
  • Amplification of the target gene using an artificial chromosome vector can be controlled by turning on / off the Fab1 protein that inhibits DNA replication and induces double-strand breaks in DNA (Fig. 2).
  • Fob1 specifically binds to a replication inhibition sequence (RFB) near the 35S rDNA transcription termination point, and has an activity of inhibiting a DNA replication fork that progresses from the replication origin (ARS).
  • RRB replication inhibition sequence
  • Fob1 further causes double-strand breaks in DNA and induces amplification recombination by sister chromatid displacement (unequal sister-chromatid recombination).
  • RFB is involved in the stability maintenance mechanism of rDNA in collaboration with the bidirectional non-coding promoter E-pro on rDNA.
  • E-pro is induced when the number of copies of rDNA decreases, and the number of copies of rDNA increases (lower right of FIG. 2).
  • the sirtuin protein Sir2 controls the number of copies of rDNA by controlling E-pro (lower left of FIG. 2).
  • eukaryotic cells comprising an artificial chromosome vector are provided.
  • the artificial chromosome vector is composed of the intergenic region of rDNA, the eukaryotic cell into which the artificial chromosome has been introduced can stably retain the artificial chromosome with a certain number of copies without destroying the internal gene.
  • Eukaryotic cells containing artificial chromosomes are not particularly limited, and examples thereof include microbial cells such as yeast.
  • yeast various known yeasts can be used, but yeasts of the genus Saccharomyces such as Saccharomyces cerevisiae, yeasts of the genus Pichizosaccharomyces pombe, etc.
  • Candida yeast such as Candida shehatae, Pichia yeast such as Pichia tipitis, Hansenula yeast, Klocckera yeast, Swaniomyces yeast Yeast of the genus (Yarrowia), yeast of the genus Trichosporon, yeast of the genus Brettanomyces, yeast of the genus Pachisolen, yeast of the genus Yamadazuma (Yamadazyma), yeast of the genus Kluyberomyces marxian Examples thereof include yeasts of the genus Kluiberomyces such as Kluveromyces lactis and yeasts of the genus Isatokenchia such as Isatchenkia orientalis. From the viewpoint of versatility, Saccharomyces yeast is preferable. Of these, Saccharomyces cerevisiae is preferred, especially Saccharomyces cerevisiae.
  • Examples of the method for introducing an artificial chromosome vector into eukaryotic cells include a calcium phosphate method, a transformation method, a transfection method, a conjugation method, a protoplast method, an electroporation method, and a lipofection method.
  • Transformed eukaryotic cells can be selected using the expression of a marker gene or the activity of a target gene as an index.
  • a method of producing an artificial chromosome vector which comprises the step of inserting a barcode sequence into IGS1.
  • the insertion site of the barcode sequence may be any of the IGS1 as long as it does not affect the desired effect, but it is preferably between the 5S rDNA sequence and the non-coding promoter (E-pro) sequence.
  • the bar code sequence can be inserted by a method known to those skilled in the art such as homologous recombination.
  • multiple barcode sequences can be inserted into different IGS1s by going through the following steps: 1) A step of inserting the first barcode sequence and selectable marker sequence into the first IGS1 by homologous recombination of rDNA and non-rDNA gene regions; 2) By homologous recombination of the first barcode sequence inserted in 1) and the non-rDNA gene region, a selection marker sequence different from the second barcode sequence and the selection marker sequence of 1) is inserted into the second IGS1. Process to do.
  • non-rDNA gene region means a region other than the ribosomal RNA gene (rDNA) sequence and its intergenic region that is present in the rDNA repeat.
  • the insertion of the third and subsequent barcode sequences can also be performed by sequentially repeating the following steps: 3) By homologous recombination of the second barcode sequence inserted in the step 2) and the non-rDNA gene region, a selectable marker sequence different from the third barcode sequence and the selectable marker sequence of 2) is placed in the third IGS1. The process of inserting into.
  • Homologous recombination may be performed using a homologous recombination vector containing each barcode sequence and selectable marker sequence.
  • the homologous recombination vector can be obtained by linking a DNA cassette to be inserted between both sequences homologous to the bases in the 5'side region and the 3'side region of the barcode sequence.
  • Examples of the homologous recombination vector include plasmids, phages, cosmids, viruses and the like, and plasmids are preferable.
  • the basic vector for constructing a homologous recombination vector may include sequences commonly inserted in vector construction, such as promoters, terminators, enhancers, selectable marker genes, replication initiation sites, and the like.
  • the selectable marker gene may be a uracil synthesis gene or a lysine synthesis gene.
  • first bar code sequence Between the region from the 3'sequence of 35S rDNA to IGS1 and the non-rDNA sequence, a unique approximately 600 bp first bar code sequence (BC-1) and selectable marker gene (LYS2) A plasmid (1stBC) sandwiched between the two is prepared, and the vector portion thereof is cut off and introduced into a host having a low copy of rDNA.
  • BC-1 and LYS2 selectable marker gene
  • a chromosomal vector to which an rDNA copy having a unique barcode sequence is added is constructed in order from the first. be able to.
  • the ribosomal RNA gene may become unstable and copy loss may occur. Therefore, when there are many barcode sequences to be inserted, for example, when the barcode sequence is 10 or more, it is preferable to further stabilize the ribosomal RNA gene.
  • the sirtuin protein Sir2 regulates the number of copies of the ribosomal RNA gene, and it is known that overexpression of the SIR2 gene encoding Sir2 stabilizes the ribosomal RNA gene (Ganley, ARD, Ide, S., Saka, K., and Kobayashi, T. (2009).
  • the ribosomal RNA gene can also be stabilized by disrupting the EAF3 gene, which encodes one of the subunits of the yeast NuA4 acetyltransferase complex (Wakatsuki, T., Sasaki, M., and Kobayashi, T. (2019) Defects in the NuA4 acetyltransferase complex increases stability of the ribosomal RNA gene and extends representative lifestylespan. Genes Genet. Systems, 94, 197-206).
  • the ribosomal RNA gene is generated by introducing the SIR2 gene into the host cell or disrupting the EAF3 gene in the host cell. Can be stabilized and the copy can be prevented from falling off.
  • the site of introduction of the SIR2 gene is not particularly limited, but for example, when budding yeast is used as a host, the SIR2 gene may be introduced upstream of the TRP1 gene on chromosome 4. Instead of introducing the SIR2 gene, the SIR2 gene cloned into a plasmid vector may be overexpressed in the host cell.
  • the EAF3 gene can be disrupted by conventional methods. For example, the function may be lost by deleting a part or all of the EAF3 gene or inserting another gene in the middle of the deletion.
  • an artificial chromosome vector having an rDNA repeat a barcode sequence unique to each rDNA copy is inserted, so that the target gene to be introduced can be reliably inserted one by one into the target copy. Therefore, by using an artificial chromosome vector, it becomes possible to produce a plurality of the same or different target genes or their expression products.
  • the production of the gene of interest or its expression product 1) a step of inserting the target gene into the barcode sequence of the artificial chromosome vector; and 2) a step of maintaining and culturing the artificial chromosome vector obtained in 1) in the host. May include.
  • the host expresses a replication inhibitory protein such as Fob1, and when the amplification of rDNA is induced by this, the inserted target gene is also amplified together with rDNA. Confirmation of amplification can be performed using Southern analysis, quantitative PCR, pulsed field gel electrophoresis, or the like.
  • the same target gene is inserted into an artificial chromosome vector.
  • a host that increases the number of copies of rDNA is preferable.
  • rDNA is destabilized (the frequency of fluctuations in the number of copies of rDNA increases) in strains lacking CTF4 involved in DNA replication and RTT109 involved in recombination, and the number of copies increases about three times as much as usual. It is known to do.
  • CTF4 is a constituent protein of replisomes.
  • Replisomes consist of CMG helicase, which rewinds template DNA, DNA polymerase ⁇ , which is responsible for the synthesis of leading strands, DNA polymerase ⁇ -primase complex, which initiates the synthesis of lagging strands, DNA polymerase delta, which is responsible for the elongation of lagging strands, and accessory proteins. It is composed.
  • RTT109 is a histone acetylase, and its gene is involved in changes in chromatin structure. It is known that when the expression of the RTT109 gene decreases, rDNA initiates rolling circle DNA replication and the number of copies increases.
  • the rDNA unstable strain can also be prepared by other methods.
  • rDNA can be destabilized by expressing a large amount of Fob1 or by deleting a part of the DNA replication origin to weaken the initiation activity.
  • Destabilization can be determined by the fact that the length of chromosome 12 in which rDNA is present changes from cell to cell, and the band after electrophoresis becomes broad (smear).
  • cyclic rDNA cyclic molecule
  • the expression level of the target gene or expression product can be controlled by a method known to those skilled in the art. For example, when a host produces a protein such as Fab1 or a gene thereof that inhibits DNA replication and induces double-strand breaks in DNA, the expression level can be controlled by turning the protein or gene on or off. ..
  • the experimental system using an artificial chromosome vector enables analysis of physiological effects in which activity is not observed in the in vitro experimental system using purified proteins. For example, there are many factors related to DNA replication and recombination reactions, and it is difficult to reconstruct them in vitro, and necessary and sufficient factors have not yet been determined. Even in such a case, for example, a series of genes involved in the human DNA repair reaction can be put into a yeast chromosome vector, and the human repair system can be operated by yeast for analysis.
  • artificial chromosome vectors can be used in the following analytical methods.
  • -Introduce genes related to the human DNA repair system into artificial chromosome vectors reconstruct the human repair system with yeast, and analyze the mechanism of cancer development and cell aging.
  • -Introduce a gene related to a complex in which multiple proteins work together into an artificial chromosome vector reconstitute it in yeast, and analyze its function.
  • the mutant of the gene introduced into the artificial chromosome vector is mutagen-treated with the host yeast, and its behavior is analyzed.
  • -Introduce genes of heterologous organisms into artificial chromosome vectors and analyze their functions -Introduce genes involved in photosynthesis into artificial chromosome vectors to create yeast that can utilize light energy, and analyze its behavior.
  • -Introduce genes related to human histones, transcription-related factors, translation-related factors, and protein modifiers into artificial chromosome vectors create yeast with a human-type protein production system, and analyze drug discovery and drug targets.
  • the above analysis is, for example, a method for analyzing the behavior of a plurality of different target genes derived from cells of the same species or different species or expression products of the target genes in a host cell.
  • the expression level of the expression product may be further measured.
  • the expression level may be measured by either the amount of the transcript or the amount of translation of the gene of interest.
  • step 2) can also be carried out in the presence or absence of a substance that activates or inhibits the target gene or its expression product. Further, the step 2) may include a step of comparing with a host into which the artificial chromosome vector has not been introduced.
  • an artificial cell containing an artificial chromosome vector in an artificial cell membrane such as a liposome is provided.
  • RDNA is a basic gene possessed by all living organisms and is the center of metabolism. For example, it is possible to clone all the genes of about 80 kinds of ribosomal proteins into an artificial chromosome vector based on the rDNA. Combining such an artificial chromosome vector with a liposome enables the production of artificial cells.
  • Examples of artificial cell membranes include liposomes and micelles.
  • Liposomes are lipid bilayer vesicles and can be prepared by methods known to those skilled in the art.
  • the micelle is preferably a mixed micelle composed of a lipid and a surfactant.
  • Barcode creation Barcodes are synthesized by linking DNA fragments obtained by ligating the synthesized single-stranded DNA oligos into double strands and then joining multiple DNA fragments by Polymerase Chain Reaction (PCR) (assembly). do.
  • PCR Polymerase Chain Reaction
  • the synthetic DNA oligos used are shown in Tables 1-3.
  • PCR was performed in a reaction system with a concentration of 1 ⁇ M for each oligoprimer using a C1000 Touch thermal cycler (BIO-RAD: 1851148JA) and a DNA polymerase KOD FX neo (Toyobo: KFX-201) kit.
  • Agarose gel electrophoresis used to separate PCR products and DNA fragments is performed by electrophoresis buffer 1xTAE (40 mM Tris, 20 mM Acidic acid, 1 mM EDTA) or 1xTBE (89 mM Tris, 89 mM Boric acid, 2.5 mM EDTA).
  • a 0.5-2% agarose gel (Star Agarose: RIKAKEN, RSV-AGRP-500g) was prepared in 1 and performed by an electrophoresis device Mupid-exU (Mupid: EXU-1).
  • the NucleoSpin Gel and PCR Clean-up (Takara: U0609C) kit was used to purify DNA fragments from agarose gels. Zofuku and creating plasmids E. coli strain JM109 (e14- (mcrA-), recA1 , supE44, endA1, hsdR17 (r k -, m k +), gyrA96, relA1, thi-1, D (lac-proAB), F'[traD36, proAB, lacI q , lacZDM15]) was used to purify the plasmid using the NucleoSpin plasmid Quick Pure (Takara: U0615B) kit.
  • E. coli transformants were performed in LB medium containing 100 mg / L of ampicillin sodium (Wako: 014-23302).
  • LB medium contains 1% tryptone (BD Bacto Tryptone: 211705), 0.5% yeast extract (BD Bacto Yeast Extract: 212750), 1% sodium chloride (Wako: 191-01665), and plate medium (agar medium) further. Includes 2% agar (BD Bacto Agar: 214010).
  • Double-strandization of a single-stranded DNA oligo is performed by using a 17 to 22-base DNA oligo having a complementary sequence as a primer for a single-stranded DNA oligo of about 100 bases including a random sequence, and using the complementary strand as a primer for KOD FX neo DNA polymerase.
  • Fig. 5 2. Strand synthesis.
  • DNA synthesis is performed by OLI002 and OLI003 (A 1 fragment), OLI004 and OLI005 (B 1 fragment), OLI006 and OLI007 (B 2 fragment), OLI008 and OLI009 (C 1 fragment), OLI010 and OLI011 (C 2 fragment), OLI012.
  • a reaction solution containing 3 ⁇ M each of OLI013 and OLI013 (D 1 fragment) was prepared, and the reaction was carried out by incubating at 94 ° C for 2 minutes, 98 ° C for 30 seconds, 48 ° C for 30 seconds, and 68 ° C for 10 minutes.
  • the single-stranded DNA remaining after the double-stranded reaction was decomposed by adding Exonuclease I (GE Healthcare: E70073Z) to the reaction solution at 0.2 u / ⁇ l and incubating at 37 ° C for 15 minutes.
  • the synthesized A 1 , B 1 , B 2 , C 1 , C 2 , and D 1 fragments were separated and purified by 1xTBE 2% agarose gel electrophoresis, and A 1 and B 1 , B 2 and C 1 , C 2 and D were separated and purified.
  • 50 ng of solution DNA containing 1 was prepared in a final volume of 2 ⁇ l.
  • DNA fragments were ligated by mixing 2 ⁇ l of DNA fragment mixture, 1.8 ⁇ l of 2x Quick Ligation reaction buffer of Quick ligation kit (NEW England BioLabs: M2200S), and 0.2 ⁇ l of Quick T4 DNA ligase, and then letting it stand at room temperature for 2 hours. (Fig. 5: 3. Ligation).
  • Each linked DNA fragment contains each oligo DNA primer set, OLI002 and OLI005 (A 1 -B 1 fragment), OLI007 and OLI009 (B 2 -C 1 fragment), so that the ligation reaction solution is 0.02 to 0.04 ⁇ l / ⁇ l.
  • the amplified A 1- B 1 , B 2- C 1 , and C 2- D 1 fragments were separated and purified by 1xTBE 2% agarose gel electrophoresis, respectively.
  • the A 1 -B 1 fragment (AB fragment) to which the NGS barcode sequence was added was a PCR prepared by adding oligo DNA primers of OLI005 and OLI014 and OLI001 to 0.5 ⁇ M and A 1 -B 1 fragment 1 ng / ⁇ l.
  • the reaction was amplified at 94 ° C for 2 minutes, [98 ° C for 5 seconds, 48 ° C for 15 seconds, 68 ° C for 45 seconds] x 9 cycles (Fig. 5: 4.1 st PCR assembly left).
  • Assembling the B 2 -C 1 and C 2 -D 1 fragments is a PCR reaction solution containing oligo DNA primers of OLI007 and OLI013, and 1 ng each of the B 2 -C 1 and C 2 -D 1 fragments.
  • the reaction was performed at 94 ° C for 2 minutes, [98 ° C for 5 seconds, 48 ° C for 15 seconds, 68 ° C for 45 seconds] x 9 cycles (Fig. 5: 4.1 st PCR). assembly right).
  • the amplified AB and BD fragments were separated and purified by 1xTBE 2% agarose gel electrophoresis, respectively.
  • the reaction was performed in [98 ° C 5 seconds, 48 ° C 15 seconds, 68 ° C 1 minute] x 7 cycles (Fig. 5: 5.2 nd PCR assembly).
  • the obtained barcode fragment was separated and purified by 1xTBE 1.5% agarose gel electrophoresis.
  • a PCR reaction solution containing the oligo DNA primers of OLI015 and OLI016 was prepared using the plasmid pUC19 (Gene 1985, 33, 103-) as a template, and 94 After amplification in a reaction of ° C 2 minutes, [95 ° C 20 seconds, 48 ° C 20 seconds, 68 ° C 3 minutes 30 seconds] x 30 cycles, separation and purification were performed by 1xTAE 2% agarose gel electrophoresis.
  • Assembling the barcode fragment and vector fragment is a mixture of a 5 ⁇ l solution containing 0.13 pmol of barcode fragment and 0.03 pmol of pUC-vector fragment and 5 ⁇ l of NEBuilder master mix (NEBuilder HiFi DNA Assembly Master Mix NEW England BioLabs: E2621S). Then, the reaction was carried out by keeping the temperature at 50 ° C for 1 hour. The assembly reaction solution was transformed by mixing 2.5 ⁇ l with 50 ⁇ l of Escherichia coli JM109 competent cells, applying the mixture to LB ampicillin plate medium, and culturing at 37 ° C overnight.
  • each colony grown at 37 ° C was cultured in LB ampicillin liquid medium, purified by a plasmid purification kit, and the barcode sequence was determined by the Sanger sequencing method (Fig. 5: 6.). Plasmid cloning). Among the obtained pBC clones, those having a common structure in the sequence of the bar code region, those having no sequence of 6 or more consecutive cytosine (C) and guanine (G), restriction enzymes AvrII, BamHI , Eco47III, and PstI that do not have a recognition sequence were selected and used as bar codes.
  • the barcode sequences used in the examples are shown in Table 4, and the barcode plasmids containing each are designated as pBC1, pBC2, and pBC3.
  • Plasmids pUC_RDN1L_URA3 and pUC_RDN1L_LYS2 with the sequence RDN1L (SGD, S288C genome chrXII: 450760..451418) near the ribosomal RNA gene and the auxotrophic marker gene URA3 or LYS2 to create a vector used for barcode integration. bottom.
  • plasmids pUCEco47RDNheadBamHI and pUCEco47RDNhyg1BamHI were prepared and used as plasmids to donate the hygromycin B-resistant ribosomal RNA gene (rDNA) sequence.
  • the skeleton part (vector fragment) of the plasmid was 94 ° C 2 minutes, [95 ° C 20 seconds, 48 ° C 20 seconds, 68 ° C 3 minutes 30 seconds] using OLI017 and OLI026 oligo DNA primers and template plasmid pUC19.
  • the URA3 fragment was prepared using OLI033 and OLI034 oligo DNA primers and template plasmid YIplac211 (Gene 1988,74, 527-) at 94 ° C 2 minutes, [95 ° C 20 seconds, 48 ° C 20 seconds, 68 ° C 1]. Minutes 30 seconds] x 33 cycles of PCR amplification, separation by agarose gel electrophoresis, and purification.
  • the RDN1L fragment, LYS2-1 fragment, rDNA_SmaI-BamHI fragment, and rDNA_NheI-Eco47III fragment use genomic DNA purified from Saccharomyces cerevisiae BY4743 (Yeast 1988, 14,115-) as a template and oligo DNA sets OLI020 and OLI025, OLI022 and OLI023, respectively. , OLI029 and OLI030, OLI027 and OLI028, 94 ° C 2 minutes, [95 ° C 20 seconds, 48 ° C 20 seconds, 68 ° C 1 minute 30 seconds] x 33 cycles of PCR amplification and agarose gel electrophoresis It was separated by electrophoresis and then purified.
  • the LYS2-2 fragment uses the genomic DNA of Saccharomyces cerevisiae BY4743 (Yeast 1988, 14, 115-) as a template and uses the oligo DNA sets OLI021 and OLI024 at 94 ° C for 2 minutes, [95 ° C for 20 seconds, 48 ° C. 20 seconds, 68 ° C 3 minutes 30 seconds] x 33 cycles of PCR amplification, separation by agarose gel electrophoresis, and purification.
  • a total of 2.5 ⁇ l of 0.05 pmol vector fragment, 0.1 pmol RDN1L fragment and 0.1 pmol URA3 fragment was mixed with 2.5 ⁇ l of NEBuilder master mix solution to prepare an assembly reaction solution of pUC_RDN1L_URA3.
  • a total of 2.5 ⁇ l of 0.05 pmol vector fragment, 0.1 pmol RDN1L fragment, 0.1 pmol LYS2-1 fragment and 0.1 pmol LYS2-2 fragment was mixed with 2.5 ⁇ l of NEBuilder master mix solution to prepare a pUC_RDN1L_LYS2 assembly reaction solution.
  • the assembly reaction of pUCEco47RDNheadBamHI was prepared by mixing a total of 2.5 ⁇ l of 0.05 pmol vector fragment, 0.1 pmol rDNA_SmaI-BamHI fragment and 0.1 pmol rDNA_NheI-Eco47III fragment with 2.5 ⁇ l of NEBuilder master mix.
  • Each assembly reaction solution was kept warm at 50 ° C for 1 hour, and then transformed into 50 ⁇ l of Escherichia coli JM109 using LB ampicillin medium to obtain pUC_RDN1L_URA3, pUC_RDN1L_LYS2 and pUCEco47RDNheadBamHI.
  • pUCEco47RDNhyg1BamHI is a plasmid backbone in which pUCEco47RDNheadBamHI is cleaved with restriction enzymes SmaI (Takara: 1085A) and NheI (Takara: 1241A), and a hygromycin B-resistant ribosomal RNA gene fragment (RDN-hyg1-1 fragment and RDN-hyg1-2 fragment). ) was concatenated and created.
  • the RDN-hyg1-1 fragment and the RDN-hyg1-2 fragment limit the plasmid pRDN-hyg1 (Nucl Acids Res 2000, 28, 3542-) with the restriction enzymes PaeI (Thermo Fisher Scientific: FD0604) and NheI (Thermo Fisher Scientific: FD0973). ) Or SmaI (Thermo Fisher Scientific: FD0664) to purify and prepare a DNA fragment of about 4 kb.
  • 2xQuickLigation reaction buffer 2.5 ⁇ l, Quick T4 DNA ligase 0.5 in 2.5 ⁇ l of solution containing 10 ng, 25 ng RDN-hyg1-1 fragment and 25 ng RDN-hyg1-2 fragment obtained by SmaI and NheI treatment After mixing ⁇ l, the mixture was allowed to stand at room temperature for 30 minutes, and then 2 ⁇ l of the ligation reaction solution was transformed into 50 ⁇ l of Escherichia coli JM109 using LB ampicillin medium to obtain pUCEco47RDNhyg1BamHI.
  • the vectors p1 st BC, p2 nd BC, and p3 rd BC (Fig. 6) used to incorporate barcodes were treated with pUC_RDN1L_LYS2 or pUC_RDN1L_URA3 with restriction enzymes SalI (Thermo Fisher Scientific: FD0644) and PstI (Thermo Fisher Scientific: FD0614).
  • a 2.5 ⁇ l solution containing 0.01 pmol each of the plasmid skeleton, ribosomal RNA gene fragment, and bar code sequence fragment was mixed with a 2.5 ⁇ l NEBuilder master mix solution and assembled at 50 ° C for 1 hour to obtain 50 ⁇ l Escherichia coli JM109. It was prepared by transformation with LB ampicillin plate medium at 30 ° C.
  • Each barcode sequence uses each barcode plasmid pBC1, pBC2, pBC3 as a template and oligo DNA primer sets OLI040 and OLI041 (BC_SalI fragment), OLI044 and OLI045 (BC_PstI fragment) at 94 ° C for 2 minutes, [98. ° C 10 seconds, 49 ° C 20 seconds, 68 ° C 1 minute] x 33 cycles of PCR amplification, separation by agarose gel electrophoresis, and purification.
  • OLI040 and OLI041 BC_SalI fragment
  • OLI044 and OLI045 BC_PstI fragment
  • Ribosomal RNA gene terminal fragment uses the plasmid pUCEco47RDNheadBamHI as a template and the oligo DNA primers OLI042 and OLI043 at 94 ° C for 2 minutes, [98 ° C for 10 seconds, 49 ° C for 20 seconds, 68 ° C. 2 minutes] x 33 cycles of PCR amplification, separation by agarose gel electrophoresis, and purification.
  • the full-length ribosomal RNA gene fragment RDNhyg1 is purified by treating the plasmid pUCEco47RDNhyg1BamHI with restriction enzymes AfeI (NEW England BioLabs: R0652) and BamHI (NEW England BioLabs: R3136S) and separating it as a DNA fragment of about 9.1 kb by agarose gel electrophoresis. bottom.
  • the vector p1 st BC was created by assembling the SalI-BC1 fragment, the RDN1-end fragment and the pUC_RDN1L_LYS2 skeletal fragment (Fig. 6, left).
  • Vector 2 nd BC is, PstI-BC1 fragment, SalI-BC2 fragment was created assembling a RDNhyg1 fragment and pUC_RDN1L_URA3 backbone fragment ( Figure 6 center).
  • the vector p3 rd BC was prepared by assembling the PstI-BC2 fragment, SalI-BC3 fragment, RDNhyg1 fragment and pUC_RDN1L_LYS2 skeletal fragment (Fig. 6, right).
  • R-recombinase expression plasmid YEp181GALpR (Fig. 11: GALp-Rec), galactose-induced expression cassette plasmid pUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotI, expression cassette bar code plasmid (Fig. 7, top).
  • pBC1GAL, pBC2GAL, and pBC3GAL As vectors used for systematic integration of the target gene, R-recombinase expression plasmid YEp181GALpR (Fig. 11: GALp-Rec), galactose-induced expression cassette plasmid pUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotI, expression cassette bar code plasmid (Fig. 7, top). ) Created pBC1GAL, pBC2GAL, and pBC3GAL.
  • YEp181GALpR was created by inserting a galactose-induced R-recombinase gene fragment (GALpR fragment) into the restriction enzyme site SalI-EcoRI of the budding yeast shuttle vector YEplac181 (Gene 1988,74, 527-).
  • GALpR fragments limit pRINT (Science 276, 1997, 806-) with restriction enzymes EcoRI (NEW England BioLabs: R3136S), SalI (NEW England BioLabs: R3138S), PstI (NEW England BioLabs: R3140S), Pfl It was treated with R0595S), separated by agarose gel electrophoresis as a DNA fragment of about 2.6 kb, and then purified.
  • PUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotI was created by assembling the GAL1p fragment, CYC1t fragment, rS-URA3-Rs fragment and pUC-vector fragment.
  • the GAL1p fragment and CYC1t fragment use the plasmid pAG413Gal-Ago2 (NAR 2001, 39, e43) derived from the pAG plasmid series (Yeast 2007, 24, 913-) as a template, and the oligo DNA primer sets OLI059 and OLI060 (GAL1p fragment), respectively.
  • the rS-URA3-Rs fragment uses YIplac211 as a template and oligo DNA primers OLI063 and OLI064 for 94 ° C 2 minutes, [98 ° C 10 seconds, 49 ° C 15 seconds, 68 ° C 1 minute 5 seconds]. It was amplified by x31 cycles of PCR, separated by agarose gel electrophoresis, and then purified.
  • pBC1GAL, pBC2GAL, and pBC3GAL were prepared by inserting a galactose-induced expression cassette fragment (GAL1pCYC1t-rSURA3Rs fragment) into the restriction enzyme sites SfaI-NotI of the barcode plasmids pBC1, pBC2, and pBC3, respectively.
  • GAL1pCYC1t-rSURA3Rs fragment is treated with the plasmid pUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotI with restriction enzymes SfaAI (Thermo Fisher Scientific: FD2094), NotI (Thermo Fisher Scientific: FD2094), NotI (Thermo Fisher Scientific: FD0593) After separation, it was purified.
  • a reporter gene vector YIp128PDA1pGFP expressing the GFP gene derived from Aequorea coeruleus and a hairpin RNA expression vector YIp211TEF1p-GFP hairpin containing a GFP gene fragment were prepared and used.
  • YIp128PDA1pGFP is a plasmid skeleton obtained by treating the budding yeast shuttle vector YIplac128 (Gene 1988, 74, 527) with EcoRI (Thermo Fisher Scientific: FD0274) and Hind III (Thermo Fisher Scientific: FD0504), and the budding yeast PDA1 gene. Fragments (PDA1p fragment) and GFP gene fragment (NLS-GFP-adh1t fragment) were assembled and prepared.
  • YIp211TEF1p-GFPhairpin is a pfg1 containing a plasmid skeleton obtained by treating the budding yeast shuttle vector YIplac211 with EcoRI (FD0274) and HindIII (FD0504), a budding yeast TEF1 gene promoter fragment (TEF1p fragment), and a part of the GFP gene. Fragments, gfp2 fragments, and budding yeast CYC1 gene terminator fragments (cyc1t fragments) were assembled and prepared.
  • the PDA1p fragment, TEF1p fragment, and cyc1t fragment use the genomic DNA of Saccharomyces cerevisiae BY4741 as a template and use the oligo DNA sets OLI073 and OLI074, OLI065 and OLI066, OLI071 and OLI072, respectively, at 94 ° C for 2 minutes, [98 ° C. Amplified by PCR for 10 seconds, 48 ° C, 20 seconds, 68 ° C, 1 minute] x 30 cycles, separated by agarose gel electrophoresis, and then purified.
  • the NLS-GFP-adh1t fragment, pfg1 fragment, and gfp2 fragment are 94 ° using the GFP cassette plasmid pKT127 (Yeast 2004, 661-) as a template and the oligo DNA sets OLI075 and OLI076, OLI067 and OLI068, OLI069 and OLI070, respectively. Amplified by PCR at C 2 minutes, [98 ° C 10 seconds, 48 ° C 20 seconds, 68 ° C 1 minute] x 30 cycles, separated by agarose gel electrophoresis, and then purified.
  • Each barcode integration vector plasmid is treated with restriction enzymes PstI (NEW England BioLabs: R3140S) and AvrII (NEW England BioLabs: R0174S) to form a vector fragment, which is then applied to the host yeast as p1 st BC, p2 nd BC, p3 rd BC. Introduced by transformation in the order of.
  • HC-URA 0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w / o Amino Acids and Ammonium Sulfate: 233520), 2% D-glucose (Wako: 049-31165), 2% Agar (BD Bacto Agar: 214010), 20 mg / L L-arginine (Wako: 017-04612), 60 mg / L L-tyrosine (Wako: 202-03562), 80 mg / L L-isoleucine (Wako: 121) -00862), 50 mg / L L-phenylalanine (Wako: 161-01302), 100 mg / L L-glutamic acid (Wako: 070-00502), 100 mg / L L-aspartic acid (Wako: 010-04842), 150 mg / L L-valine (Wako: 228-00082), 200 mg / L L-threon
  • the artificial chromosome vector strains into which three types of barcodes BC1, BC2 and BC3 were introduced were YTT430 (YTT399 + BC1,2,3-LYS2) and YTT431 (YTT401 + BC1,2,3-LYS2).
  • URA3-lacO cassette was inserted into the IGS1 region of a budding yeast strain (Kobayashi et al., 2001) having only two copies of rDNA already isolated by Kobayashi et al.
  • the URA3-lacO cassette also succeeded in amplifying up to about 100 copies together with rDNA.
  • the URA3 gene was amplified from plasmid pJJ242 with primers TM7 and TM8 and inserted into SphI-SalI of pTM2 to construct pTM-lacO50 with a URA3-lacO cassette.
  • yeast strain TAK201 having 2 copies of rDNA, selected with synthetic selective medium (SG-Ura) without uracil, and having a URA3-lacO cassette in IGS1 of rDNA.
  • a yeast strain was prepared (Fig. 8). Furthermore, the pAFS144-ADE2 plasmid expressing lacI-GFP was inserted into ade2 and selected on a synthetic selective medium (SG-Ade) without adenine to complete the yeast strain TMY1 in which rDNA amplification can be detected alive by fluorescence. bottom.
  • the Fob1 expressing plasmid pTAK101 was introduced into TMY1 and cultured in a synthetic selective medium (SG-Ade, -Leu). After that, cells were collected over time, and the Fob1 plasmid was deleted by mating to stop the amplification of rDNA. I let you. DNA was purified while these cells were embedded in an agarose gel plug, treated with the restriction enzyme BamHI, which does not have a recognition sequence in rDNA, and analyzed by pulsed-field gel electrophoresis (Fig. 9). Most yeast DNA is broken down by BamHI into small fragments, but rDNA repeats are not cleaved by BamHI and can be detected as large DNA.
  • RNAi-mediated gene expression suppression via short double-stranded RNA does not exist in Saccharomyces cerevisiae, which is an artificial chromosome vector donor.
  • the RNAi mechanism found in human cells reconstitutes sequence-specific target RNA cleavage reactions by mixing purified Dicer (HsDicer), Argonaute (HsAgo2), TRBP (HsTRBP) and double-stranded RNA in vitro. Can be (Nature 2006, 436, 740-).
  • HsDicer purified Dicer
  • HsAgo2 Argonaute
  • TRBP HsTRBP
  • HsDicer, HsAgo2 and HsTRBP were introduced into the chromosomal vector, and the in-yeast experimental system was used to investigate whether hairpin RNA-dependent human RNAi suppresses the expression of the target gene.
  • HsTRBP, HsAgo2 and HsDicer were introduced into BC1, BC2 and BC3 together with the URA3 marker gene downstream of the galactose-inducible promoter, respectively, and after gene transfer, the marker gene was removed by R-recombinase.
  • RNAi gene fragment excised from the plasmid and pBC1 to 3GAL were used as a template in a strain (YTT431-R) in which the R-recombinase-inducing plasmid YEp181GALpR was previously introduced into the chromosome vector strain YTT431 at 94 ° C.
  • YTT431-R the R-recombinase-inducing plasmid YEp181GALpR was previously introduced into the chromosome vector strain YTT431 at 94 ° C.
  • HsTRBP gene 1 / 2BC promoter fragment and 1 / 2BC marker gene fragment were synthesized with oligo DNA primer sets OLI013 and OLI086, OLI014 and OLI087, respectively, using pBC1GAL as a template, and the HsTRBP donating plasmid pAG415Gal-TRBP (NAR 2011, 39, 39, e43) was introduced into barcode BC1 using HsTRBP fragments obtained by treating with restriction enzymes BamHI (Thermo Fisher Scientific: FD0544) and Eco32I (Thermo Fisher Scientific: FD0303).
  • HsAgo2 gene 1 / 2BC promoter fragment and 1 / 2BC marker gene fragment were synthesized using oligo DNA primer sets OLI013 and OLI084, OLI014 and OLI085, respectively, using pBC2GAL as a template, and the HsAgo2 donating plasmid pAG413Gal-Ago2 (NAR 2011, 39, e43) was introduced into barcode BC2 using HsAgo2 fragments obtained by treating with restriction enzymes BamHI (Thermo Fisher Scientific: FD0544) and EcoRI (Thermo Fisher Scientific: FD0274).
  • HsDicer gene 1 / 2BC promoter fragment and 1 / 2BC marker gene fragment were synthesized with oligo DNA primer sets OLI013 and OLI082, OLI014 and OLI083, respectively, using pBC3GAL as a template, and the HsDicer donated plasmid pAG416Gal-Dicer (NAR 2011, 39, 39, e43) was introduced into barcode BC3 using HsDicer fragments obtained by treating with restriction enzymes HindIII (Thermo Fisher Scientific: FD0504) and BcuI (Thermo Fisher Scientific: FD1253).
  • HindIII Thermo Fisher Scientific: FD0504
  • BcuI Thermo Fisher Scientific: FD1253
  • Each gene is HC-Ura Leu plate medium [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w / o Amino Acids and Ammonium Sulfate: 233520), 2% D-glucose (Wako: 049-31165), 2% agar (BD Bacto).
  • HCGal-Leu medium [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w / o Amino Acids and Ammonium Sulfate: 233520), 2% D-galactose (Wako: 075-00035)) , 20 mg / L L-arginine (Wako: 017-04612), 60 mg / L L-tyrosine (Wako: 202-03562), 80 mg / L L-isoleucine (Wako: 121-00862), 50 mg / L L-phenylalanine (Wako: 161-01302), 100 mg / L L-glutamic acid (Wako: 070-00502), 100 mg / L L-aspartic acid (Wako: 010-04842), 150 mg / L L-valine (Wako: 010-04842) Wako: 228-00082), 200 mg / L L-threonine (Wako: 204-01322), 400 mg
  • URA3-depleted cells are HC-Leu + 5FOA plate medium [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w / o Amino Acids and Ammonium Sulfate: 233520), 2% D-glucose (Wako: 049-31165), 2% agar (Wako: 049-31165).
  • the obtained gene-introduced cells were used for the introduction of other human RNAi genes, and were monoexpressed strains of HsDicer (YTT431-D), HsAgo2 (YTT431-A), and HsTRBP (YTT431-T), and two gene-expressing strains (YTT431-T).
  • YTT431-DA, -DT, -AT) and three gene expression strains (YTT431-DAT) were prepared.
  • YIp128PDA1pGFP was treated with the restriction enzyme AccI (NEW England BioLabs: R0161S) and inserted into the terminator region of the ADH1 gene of the chromosomal vector strain YTT430 (GFP reporter strain: YTT430-). GFP).
  • the GFP hairpin vector YIp211TEF1p-GFP hairpin was treated with the restriction enzyme HindIII (Thermo Fisher Scientific: FD0504) and inserted into the terminator region of the CYC1 gene of YTT430-GFP (GFP). Hairpin strain: YTT430-GFPhp).
  • Mating ⁇ YTT431 and YTT431-D ⁇ DAT strains are ligated to conjugating a YTT430-GFP and YTT430-GFPhp to create a diploid strain set expressing human RNAi gene, GFP reporter gene and GFP hairpin RNA. bottom.
  • RNAi gene For the expression of human RNAi gene, a diploid strain in which YTT431, YTT431-D ⁇ DAT, and YTT430-GFPhp were ligated was used in HCGal-Leu medium [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w / o Amino Acids and Ammonium Sulfate: 233520), 2% D-galactose (Wako: 075-00035), 20 mg / L L-arginine (Wako: 017-04612), 60 mg / L L-tyrosine (Wako: 202-03562), 80 mg / L L-isoleucine (Wako: 121-00862), 50 mg / L L-phenylalanine (Wako: 161-01302), 100 mg / L L-glutamic acid (Wako: 070-00502), 100 mg / L L-aspartic acid (Wako: 070-00502) Wako: 010-048
  • Protein is centrifuged at 10,000 g at 4 ° C for 5 minutes and precipitated in 30 ⁇ L of 1x sample buffer [75 mM Tris (Sigma-Aldrich: T1503), 100 mM 2-mercaptoethanol (Wako: 137-07521), 2 After suspension in% sodium dodecyl sulfate (Wako: 196-08675), 5% glycerin (Wako: 075-00611), 0.001% BPB (Wako: 029-02912)], denature at 65 ° C for 5 minutes for Western blot. It was used as a sample solution.
  • 1x sample buffer [75 mM Tris (Sigma-Aldrich: T1503), 100 mM 2-mercaptoethanol (Wako: 137-07521), 2 After suspension in% sodium dodecyl sulfate (Wako: 196-08675), 5% glycerin (Wako: 075-00611), 0.001% BPB (W
  • SDS-PAGE was performed on a 5 ⁇ l sample solution using a 5-20% polyacrylamide gel (ATTO: EHR-T / R520L) and a slab-type electrophoresis device (ATTO: WSE-1150PageRunAce).
  • the electrophoresis conditions are 1x electrophoresis buffer [25 mM Tris (Sigma-Aldrich: T1503), 192 mM glycine (Wako: 077-00735), 0.1% sodium dodecyl sulfate (Wako: 196-08675)], constant current 10 mA 30 It was performed for 90 minutes at 20 mA.
  • Proteins separated by SDS-PAGE were transferred using a mini-trans blot cell (BIO-RAD: 1703930JA), transfer buffer [0.302% Tris (Sigma-Aldrich: T1503), 1.44% glycine (Wako: 077-00735), 10 % Methanol (Wako: 137-01823)] Transferred to a PVDF membrane (Immobilon-P Merck-Millipore: PVH00010) under the conditions of 4 ° C, constant voltage 150 V, and 30 minutes.
  • the transferred membrane is immersed in PBS-T [140 mM sodium chloride, 2.7 mM potassium chloride, 10 mM phosphoric acid, 0.05% Tween20 (Sigma-Aldrich: P7949)] containing 5% skim milk (Wako: 190-12865). Blocking was performed by shaking at room temperature for 1 hour. The antibody used to detect tubulin, HsAgo2 and HsTRBP was labeled with Peroxidase Labeling Kit-NH2 (DOJINDO: LK11) and used.
  • HsDicer, HsAgo2, HsTRBP and tubulin each have 1/300 anti-Dicer antibody (Santa Cruz Biotechnology: sc-30226), 1/1000 anti-Ago2 antibody (clone11A9 Merck-Millipore: MABE253), and anti-TRBP antibody (clone46D1 Funakoshi).
  • Bsm-50266M diluted with 1 / 10,000 and anti-Tubulin Alpha antibody (cloneYL1 / 2 AbD Serotec: MCA77G) at a ratio of 1 / 2,500 with PBS-T containing 5% skim milk and shaken overnight at 4 ° C. Detected (primary antibody binding).
  • the membrane bound to the primary antibody was washed twice with PBS-T at room temperature for 30 minutes.
  • the washed membrane was further diluted with PBS-T containing 0.5% skim milk at a ratio of peroxidase-labeled anti-rabbit IgG antibody (GE Healthcare: NA934) 1 / 10,000, shaken at room temperature for 1 hour, and then PBS-. Washing was performed twice by shaking at room temperature for 30 minutes at T.
  • RNAi protein was expressed in a sufficiently detectable amount in the cell from the gene introduced into the barcode sequence (Fig. 12).
  • RNAi mechanism functions in the in-yeast experimental system is determined by extracting total RNA from diploid strains expressing the human RNAi gene, GFP reporter gene and GFP hairpin RNA, and producing and reporting siRNA derived from hairpin RNA.
  • the gene transcript was analyzed by the Northern method.
  • the amount of reporter gene transcript was determined by reverse transcription quantitative PCR (RT-qPCR), and the suppression of gene expression by the human RNAi mechanism was analyzed.
  • TES solution 10 mM Tris-Cl pH7.5 (Tris Sigma-Aldrich: T1503 / Wako hydrochloride: 080-01066), 10 mM EDTA-Na pH8 .0 (EDTA2Na DOJINDO: 345-01865 / NaOH Wako: 198-13765), 0.5% sodium dodecyl sulfate (Wako: 196-08675)] and 400 ⁇ L of acidic phenol pH 4.0 (phenol Wako: 160-12725 / glycine Wako) : 077-00735 / Wako Hydrochloric Acid: 080-01066) was suspended, and the mixture was heated and stirred for 30 minutes at 65 ° C.
  • RNA solution is centrifuged at 20,000 g at 4 ° C for 10 minutes and then recovered as an aqueous fraction.
  • Acid phenol / chloroform (1: 1 pH 4.0) [Acid phenol pH 4.0 / chloroform ( Wako: 308-026069)] Purified by extraction, 50 ⁇ l 3 M sodium acetate pH 5.2, 1 ⁇ l alcohol precipitation co-precipitant (Ethachinmate Nippon Gene: 312-01791) and 1 mL ethanol (Wako: 057-00456) ) was added and stored overnight at -20 ° C for ethanol precipitation.
  • RNA was centrifuged at 20,000 g, 4 ° C for 40 minutes, washed and dried with 80% ethanol (Wako: 057-00456), and dissolved in sterilized water as a sample for Northern analysis.
  • Wako: 057-00456 80% ethanol
  • RNA was mixed with 3 ⁇ l of formamide (Wako: 066-02301), heat-denatured at 65 ° C for 10 minutes, and denatured acrylamide gel [0.5xTBE].
  • Electrophoresis was performed using a slab-type electrophoresis device (Biocraft: BE-140G) at 0.5 x TBE at a constant current of 7 mA for 2 hours at room temperature.
  • the separated RNA was electrophoresed at 4 ° C constant current 400 mA for 2 hours using 0.5xTBE, a semi-dry transfer device (Transblot SD cell BIO-RAD: 1703940JA), and extra-thick filter paper (BIO-RAD: 1703968). Transferred to a nylon membrane (Hybond-N + GE Healthcare: RPN303B) (siRNA blot).
  • SiRNA blots were crosslinked at 120,000 ⁇ J / cm 2 using a UV crosslinker (Stratagene: StrataLinker 1800), then 5xSSC [75 mM sodium citrate (Wako: 191-01785), 0.75 M sodium chloride (Wako: 191-01665)). ], Then dried and stored.
  • a UV crosslinker Stratagene: StrataLinker 1800
  • 5xSSC 75 mM sodium citrate (Wako: 191-01785), 0.75 M sodium chloride (Wako: 191-01665).
  • wash buffer 1 (5xSSC, 0.1% sodium dodecyl sulfate) twice for 10 minutes at room temperature
  • wash buffer 2 (2xSSC, 0.1% sodium dodecyl sulfate) for 10 minutes at room temperature Wash once
  • wash buffer 2 (2xSSC, 0.1% sodium dodecyl sulfate) 42 ° C, wash once for 10 minutes, expose siRNA blot to imaging plate and detect siRNA signal using FLA7000 (GE Healthcare) bottom.
  • oligo DNA probe To label the oligo DNA probe, 3 ⁇ L of T4 polynucleotide kinase (Takara: 2021S), 3 ⁇ L of 10xPNK buffer (Takara), and 3 ⁇ L of DNA oligo 5 pmol (16.5 ⁇ L) prepared from an equal amount of siGFP 01 to 13 were mixed. After mixing with 7.5 ⁇ L ⁇ - 32 P-ATP (6000 Ci / mmol PerkinElmer: NEG502Z), heat is kept at 37 ° C for 30 minutes, and heat denaturation (95 ° C for 5 minutes) with 7.5 ⁇ L of 50 mM EDTA pH 8.0 is applied. It was purified on a microspin column G-25 (GE Healthcare: 27532501).
  • siRNA corresponding to the GFP sequence was detected in a sample of cells expressing HsDicer and GFP hairpin RNA, and that the amount of siRNA increased in cells co-expressing HsTRBP and HsAgo2 in addition to HsDicer. (Fig. 13). This suggests that the functions of HsTRBP and HsAgo2 shown in vitro to help the function of HsDicer (Nature 2005, 436, 740-) were reproduced in the yeast experiment.
  • RNA Detection of GFP reporter gene transcripts and hairpin RNA was performed by general Northern analysis.
  • the DNA probe was labeled with 100 ng gfp2 fragment, 5 ⁇ l ⁇ - 32 P-dCTP (3000Ci / mmol PerkinElmer: NEG513H) and random primer labeling kit (Takara: 6045) and microspin column G-50 (GE). Healthcare: Prepared by purification in 28903408).
  • Northern blot contains 5 ⁇ g of total RNA (3 ⁇ l solution), 4 ⁇ l of formamide, 2 ⁇ L of formaldehyde solution (Wako: 061-00416), 10xMOPS buffer [0.2 M MOPS-NaOH pH 7 (MOPS DOJINDO: 345-01804 /). Sodium hydroxide Wako: 198-13765), 2 mM sodium acetate, 10 mM EDTA] 1 ⁇ L, 400 ⁇ g / mL of ethidium bromide (Wako: 315-90051) mixed with 1 ⁇ L and heat-denatured at 65 ° C for 10 minutes.
  • RNA blots were crosslinked with a UV crosslinker (Stratagene: StrataLinker 2400) at 120,000 ⁇ J / cm 2 , washed with 5xSSC, dried and stored.
  • a UV crosslinker Stratagene: StrataLinker 2400
  • RNA blots were prehybridizing RNA blots with 10 ml Rapid-Hyb buffer (GE Healthcare: RPN1635) 65 ° C for 2 hours followed by a 32 P-labeled gfp2 fragment probe at 65 ° C for 2 hours. Hybridization, wash buffer 2 (2xSSC, 0.1% sodium dodecyl sulfate) 65 ° C for 30 minutes once, wash buffer 3 (0.1xSSC, 0.1% sodium dodecyl sulfate) 65 ° C for 30 minutes twice. The RNA blot was exposed to an imaging plate and the signals of GFP reporter gene RNA and GFP hairpin RNA were detected using FLA7000 (GE Healthcare).
  • RNA of the GFP reporter gene is slightly decreased in cells expressing the four factors of GFP hairpin RNA, HsDicer, HsAgo2 and HsTRBP, the human RNAi mechanism functions by the expression of hairpin RNA and suppresses gene expression. It was suggested that there is a possibility of doing.
  • RNA of the GFP reporter gene was analyzed more quantitatively using RT-qPCR.
  • RT-qPCR was performed using a quantitative PCR system (Illumina: EcoRealTimePCR System) and an RT-qPCR kit (KAPA SYBRFAST One-Step qRT-PCR Kit KAPA Biosystem: KK4650).
  • a quantitative PCR system Illumina: EcoRealTimePCR System
  • KAPA SYBRFAST One-Step qRT-PCR Kit KAPA Biosystem: KK4650 KAPA SYBRFAST One-Step qRT-PCR Kit KAPA Biosystem: KK4650.
  • the internal standard ACT1 gene RNA was 42 ° C 10 minutes, 95 ° C 3 minutes [95 ° C 5 seconds, 50 ° C 20 seconds, using 20 ng of total RNA and oligo DNA primer sets OLI1126 and OLI1127. It was analyzed by RT-qPCR of 72 ° C 30 seconds] x 40 cycles.
  • the GFP reporter gene RNA was 42 ° C 10 minutes, 95 ° C 3 minutes [95 ° C 5 seconds, 52 ° C 20 seconds, 72 ° C, using 20 ng of total RNA, oligo DNA primer set pPCRsplitGFPFw and pPCRsplitGFPRv. 30 seconds] x 40 cycles of RT-qPCR analysis.
  • the cycle value (Ct value) is obtained, and the expression of the GFP reporter gene is quantitatively analyzed by the comparative Ct method using the Ct value of the ACT1 gene RNA and the Ct value of the GFP reporter gene RNA. bottom.
  • RNA of GFP reporter gene is slightly reduced in cells expressing GFP hairpin RNA, HsDicer, HsAgo2 and HsTRBP, and human RNAi mechanism is in yeast experimental system. I confirmed that it works with.
  • the region between the centromere of Saccharomyces cerevisiae 4 and the TRP1 gene is amplified by PCR, respectively. .. As shown in FIG. 15, the respective regions are referred to as 5'-UP_5'(about 250 base pairs) and 5'-UP_3' (about 410 base pairs).
  • the 5'-UP_5'fragment was cleaved with the restriction enzymes SalI and EcoRI, and then inserted into the plasmid pTA2 that had been cleaved with the same restriction enzyme in advance.
  • the obtained recombinant plasmid was cleaved with restriction enzymes PstI and BamHI.
  • the 5'-UP_3' fragment was also cleaved with PstI and BamHI and inserted into this plasmid.
  • the obtained recombinant plasmid pTA-5'-UP_5' + 3'(Fig. 15) was cleaved with restriction enzymes EcoRI and PstI.
  • the SIR2 gene (about 2600 base pairs) containing the promoter and terminator regions was amplified by PCR using primers MN2515 and MN2503.
  • the CgHIS3 gene was amplified by the PCR method using primers MN2517 and MN2518 using the plasmid p3009 (NBRP :: YeastID BYP3009) containing the HIS3 gene (CgHIS3) derived from Candida glabrata as a template. Any marker gene other than CgHIS3 can be used by changing the primer design.
  • the plasmid pTA-5'-UP_5' + 3'cleaved with EcoRI and PstI, the above SIR2 gene and CgHIS3 gene were mixed (molar ratio of about 1: 2: 2), and an equal amount of NEBuilder reagent (New England Biolab) was used. ) Is added and held at 50 oC for 1 hour to bind the three DNA fragments. Escherichia coli DH5? Strain was transformed to obtain the desired recombinant plasmid (Fig. 15).
  • the primer sequences used are shown in the table below.
  • Bold type indicates the duplicate sequence required to combine each fragment.
  • the obtained plasmid was cleaved with restriction enzymes SalI and NotI, purified with a DNA purification kit (MACHEREY-NAGEL Takara Bio), and then the yeast strain MFY2010SAH (MAT ⁇ his3 ⁇ 1 ura3delta0 leu2 ⁇ 0 met15 ⁇ 0 lys2 ⁇ 0 fob1 ⁇ 0 RDN1-15) already has 10 barcodes. BC1-10-URA3) was transformed.
  • chromosomal DNA was extracted from the yeast transformant and PCR reaction was performed using primers MN2509 and MN2512, and it was confirmed that a DNA fragment of about 4800 base pairs expected from the recombinant was obtained. bottom.

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Abstract

真核生物の染色体に由来する人工染色体ベクターであって、複数のリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）の反復単位と、各反復単位間に存在する遺伝子間領域とを含み、遺伝子間領域における遺伝子間領域１（ＩＧＳ１）が、目的遺伝子を組み込み、且つ識別するためのバーコード配列を含む、人工染色体ベクター、を提供する。

Description

人工染色体ベクター及びその用途
　本発明は広く、人工染色体ベクター及びその用途に関する。
　ヒトゲノムの組成では、大小合わせると全ゲノムのおおよそ半分が反復性の配列で占められている。このような反復配列としてリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）がある。リボソームは細胞中にもっとも多量に存在するタンパク質－ＲＮＡ複合体であり、その遺伝子であるリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）も多コピー（ｒＤＮＡリピート）で存在する。
　例えば出芽酵母では約１５０コピーが１２番染色体に直列に繰り返して存在し、ゲノム全体の約１０％を占める。リボソームはすべての生物にとって必須な翻訳装置であり、多コピーのｒＤＮＡの状態を維持する機構もまた重要である。実際に出芽酵母のｒＤＮＡを人為的に２コピーに減らしても、また１５０まで回復する。つまり２コピー（１８ｋｂ）が１５０コピー（１．４Ｍｂ）に伸長する。このような増幅によるコピー数の回復は他の生物でも観察される。
　ｒＤＮＡ上に多重に遺伝子を挿入するためのカセットとして、ＷＯ２０１６／０２７９４３Ａ１号には、ｒＤＮＡ ＮＴＳ（Ｎｏｎｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ）のＮ末端断片遺伝子、挿入目的遺伝子、プロモーター領域を含む栄養要求性選択標識マーカー遺伝子及びサッカロマイセス・セレビジエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ｒＤＮＡ ＮＴＳのＣ末端断片遺伝子を順次に含む入カセットが開示されている。
ＷＯ２０１６／０２７９４３Ａ１号
　ＷＯ２０１６／０２７９４３Ａ１号に記載の遺伝子多重挿入カセットでは目的遺伝子が、ＮＴＳの遺伝子間領域２（ＩＧＳ２）に挿入されている（図１ａ等）。しかしながら、ＩＧＳ２の挿入部位には、コヒーシンというｒＤＮＡの安定性に関わる因子の結合配列が存在しており、ＩＧＳ２に目的遺伝子を挿入した場合、挿入により結合配列が壊れる可能性がある。
　本発明は、多数の遺伝子を組み込むことができる人工染色体ベクター及び、人工染色体を用いた新規用途を提供することを目的とする。
　本発明者らは、ｒＤＮＡの染色体機能の特異性を利用することで、多数の遺伝子を組み込むことができる人工染色体ベクターを完成させた。また、このような人工染色体ベクターを利用することで、人工遺伝子増幅系の提供など、新規用途の提供が可能になることを見出し、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本願発明は以下の発明を包含する。
［１］
　真核生物の染色体に由来する人工染色体ベクターであって、複数のリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）の反復単位と、各反復単位間に存在する遺伝子間領域とを含み、遺伝子間領域における遺伝子間領域１（ＩＧＳ１）が、目的遺伝子を組み込み、且つ識別するためのバーコード配列を含む、人工染色体ベクター。
［２］
　遺伝子間領域が、ｒＤＮＡ遺伝子の５'側から順に、自己複製配列（ＡＲＳ）、コヒーシン結合部位、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列、非コードプロモーター（Ｅ－ｐｒｏ）配列及び複製阻害（ＲＦＢ）配列を含む、［１］に記載の人工染色体ベクター。
［３］
　遺伝子間領域がコンデンシン結合部位を更に含む、［２］に記載の人工染色体ベクター。
［４］
　各バーコード配列が、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列とＥ－ｐｒｏ配列との間に位置する制限酵素部位に挿入されている、［１］～［３］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［５］
　テロメア配列及びセントロメア配列を更に含む、［１］～［４］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［６］
　各バーコード配列が、目的遺伝子の発現を制御するためのプロモーター配列及びターミネーター配列を含む、［１］～［３］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［７］
　各目的遺伝子の３'側にターミネーター配列が、５'側にプロモーター配列が配置される、［６］に記載の人工染色体ベクター。
［８］
　反復単位数が２～１５０である、［１］～［７］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［９］
　真核生物がヒト又は酵母である、［１］～［８］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［１０］
　酵母が出芽酵母であり、ｒＤＮＡの反復単位が出芽酵母の第１２染色体に由来する、［９］に記載の人工染色体ベクター。
［１１］
　前記プロモーターがガラクトース誘導（ＧＡＬ）プロモーターである、［６］～［１０］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［１２］
　挿入される目的遺伝子が、前記人工染色体ベクターを導入する宿主と同種又は異種である、［１］～［１１］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［１３］
　バーコード配列に挿入される前記目的遺伝子がそれぞれ同一であるか又は互いに異なる、［１］～［１２］のいずれかに記載の人工染色体ベクター。
［１４］
　［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターを含む、真核細胞。
［１５］
　［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターを製造する方法であって、ＩＧＳ１内にバーコード配列を挿入する工程を含む、方法。
［１６］
　バーコード配列を挿入する工程が、
１）ｒＤＮＡと非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより第１のバーコード配列及び選択マーカー配列を第１のＩＧＳ１内に挿入する工程；及び
２）１）で挿入した第１のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第２のバーコード配列及び１）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第２のＩＧＳ１内に挿入する工程、
を含む、［１５］に記載の方法。
［１７］
　３）２）の工程で挿入した第２のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第３のバーコード配列及び２）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第３のＩＧＳ１内に挿入する工程を含み、任意に、３）と同様の工程を繰り返すことにより、第４以降のバーコード配列が第４以降のＩＧＳ１内に挿入される、［１６］に記載の方法。
［１８］
　相同組換えが各バーコード配列及び選択マーカー配列を含む相同組換えベクターを用いて行われる、［１７］に記載の方法。
［１９］
　選択マーカー配列がウラシル合成遺伝子又はリジン合成遺伝子である、［１８］に記載の方法。
［２０］
　複数の同一の又は異なる目的遺伝子又は当該目的遺伝子の発現産物を製造する方法であって、
１）［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターのバーコード配列内に目的遺伝子を挿入する工程；及び
２）１）で得られた人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程を含む、方法。
［２１］
　宿主内で同一の目的遺伝子が増幅される、［２０］に記載の方法。
［２２］
　目的遺伝子が宿主にとって異種である、［２０］又は［２１］に記載の方法。
［２３］
　宿主がｒＤＮＡ不安定株である、［２０］～［２２］のいずれかに記載の方法。
［２４］
　ｒＤＮＡ不安定株においてＣＴＦ４遺伝子又はＲＴＴ１０９遺伝子が欠損している、［２３］に記載の方法。
［２５］
　２）の工程において、宿主が製造するＦｏｂ１タンパク質の発現又は抑制を行うことにより、前記目的遺伝子又は発現産物の発現量を制御する工程を含む、［２０］～［２４］のいずれかに記載の方法。
［２６］
　宿主細胞内において、異種の細胞に由来する複数の異なる目的遺伝子又は当該目的遺伝子の発現産物の挙動を解析する方法であって、
１）［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターであって、バーコード配列内に目的遺伝子が挿入されている人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程；及び
２）前記目的遺伝子又はその発現産物の機能、あるいはそれらの宿主内における挙動を解析する工程、
を含む、方法。
［２７］
　２）の工程において、発現産物の発現レベルが測定される、［２６］に記載の方法。
［２８］
　発現レベルの測定が、目的遺伝子の転写産物の量又は翻訳産物の量の測定を含む、［２７］に記載の方法。
［２９］
　２）の工程が目的遺伝子又はその発現産物を活性化又は阻害する物質の存在下又は不在化で実施される、［２６］～［２８］のいずれかに記載の方法。
［３０］
　前記物質が宿主にとって同種又は異種である、［２９］に記載の方法。
［３１］
　２）の工程が、前記人工染色体ベクターが導入されていない宿主との比較を含む、［２６］～［３０］のいずれかに記載の方法。
［３２］
　目的遺伝子が薬剤耐性遺伝子であり、人工染色体ベクターのｒＤＮＡがヒト由来であり、宿主が酵母である、［２６］～［３１］のいずれかに記載の方法。
［３３］
　リポソームと、［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターとを含む、人工細胞。
［３４］
　人工細胞を製造する方法であって、リポソーム内に［１］～［１３］のいずれかに記載の人工染色体ベクターを導入する工程を含む、方法。
　本発明によれば、ｒＤＮＡの増幅及び維持機構を利用することで、種々の用途に利用可能な人工染色体ベクターの提供が可能になる。例えば、現行のプラスミドを利用した系では挿入できる遺伝子の数に限りがあり、また挿入した遺伝子のサイズや性質によってはプラスミドの安定性（維持効率）が低下するという弱点があるが、安定性維持機構を有する人工染色体ベクターにおいては、極めて安定に多数の遺伝子の導入、維持が可能となる。
　遺伝子増幅はタンパク質を多量に生産する方法であるが、宿主細胞を用いたｉｎ　ｖｉｖｏの系ではその制御の難しさから実用化されていない。同一遺伝子をコードする人工染色体ベクターを用いることで、宿主細胞内でその遺伝子がコードするタンパク質を連続的に合成できる系（ｉｎ　ｖｉｖｏ　ＰＣＲ）、ひいては有用タンパク質などの多量生産系の構築が可能になる。加えて、この系は、天然の増幅系を利用するため高効率であり、複製を阻害しＤＮＡの二本鎖切断を誘導するＦｏｂ１タンパク質のＯＮ／ＯＦＦにより、増幅の制御が可能である。また、従来の多コピープラスミドによる多量生産系とは異なり、薬剤選択なども必要なく増幅遺伝子を染色体上で安定に保持させることができる。
　本発明の人工染色体ベクターによれば、ＲＮＡの大量生産も可能になる。
　ヒトに比較的近いモデル生物である酵母において人工染色体ベクターを発現することで、ｉｎ　ｖｉｔｒｏとｉｎ　ｖｉｖｏの中間の位置にある新規のアッセイ系、「ｉｎ　ｙｅａｓｔ」実験系を構築することが可能になる。ｉｎ　ｙｅａｓｔ実験系とは、異なる生物の一反応に関わる一連の遺伝子群をそのまま酵母由来の人工染色体ベクターにクローニングし、酵母内で外来反応系を動かし、必要因子の同定などの機能解析を行う実験手法である。本発明の人工染色体ベクターによれば、このようなヘテロ反応系の新規解析モデルの構築が可能となる。
　例えば、ヒト型のタンパク質生産系をもつ酵母を作成し、創薬や薬剤ターゲットの解析を行うことや、酵母でヒトの修復系を再構築して、がんの発生や細胞老化のメカニズムを解析することなどが想定される。他にも、従来マウスや他の動物個体を用いて行われている研究を酵母において行うことなども期待される。
図１は、ｒＤＮＡの増幅・維持機構の模式図である。 図２は、ｒＤＮＡ増幅モデルの模式図である。 図３は、出芽酵母のｒＤＮＡの構造の模式図である。 図４は、人工染色体ベクターの作成方法の一例を示す。 図５は、バーコードの作成方法の一例を示す。 図６は、バーコードの組み込みに使用したベクターｐ１ｓｔＢＣ、ｐ２ｎｄＢＣ及びｐ３ｒｄＢＣの構造を示す。 図７は、目的遺伝子の組み込みに使用したベクターの作成方法を示す。 図８は、２コピーｒＤＮＡ株へのＵＲＡ３ ｌａｃＯ断片の導入と、ＵＲＡ３ ｌａｃＯ断片の増幅を示す。 図９は、ＵＲＡ３ ｌａｃＯ断片の増幅をパルスフィールド電気泳動で解析した結果を示す。 図１０は、蛍光顕微鏡のもとで、ＵＲＡ３－ｌａｃＯカセットがｒＤＮＡと共に増幅されていることを確認した結果を示す。 図１１は、ベクターとして、Ｒ－ｒｅｃｏｍｂｉｎａｓｅ発現プラスミドＹＥｐ１８１ＧＡＬｐＲ（ＧＡＬｐ－Ｒｅｃ）を目的遺伝子の組み込みのためのベクターとして使用したシステマティックな遺伝子の挿入系を示す。 図１２は、人工染色体ベクターによるヒトＲＮＡｉ関連タンパク質の発現を説明したものである。 図１３は、ヒトｓｉＲＮＡ生産系の酵母内再構成を説明したものである。 図１４は、ヒトｓｉＲＮＡによる遺伝子のサイレンシングを説明したものである。 図１５は、SIR2遺伝子を出芽酵母の４番染色体のTRP1遺伝子の上流に導入するプロトコールを図示したものである。 図１６は、１５個のバーコード配列の挿入を確認したPCRの結果を示す。
　以下、本発明の実施の形態（以下、「本実施形態」という。）について説明するが、本発明の範囲は以下の実施形態に限定して解釈されない。
（人工染色体ベクター）
　第一の態様において、真核生物の染色体に由来する人工染色体ベクターであって、複数のリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）の反復単位と、各反復単位間に存在する遺伝子間領域とを含み、遺伝子間領域における遺伝子間領域１（ＩＧＳ１）が、目的遺伝子を組み込み、且つ識別するためのバーコード配列を含む、人工染色体ベクターが提供される。
　人工染色体ベクターの由来となる真核生物はヒトやその他の哺乳類のような高等哺乳動物に限定されず、ゼニゴケのような真核植物や、高等真核生物の持つ特徴を保存している酵母のような真菌類、例えば出芽酵母や分裂酵母のような単細胞生物も包含する。真核生物の中でも酵母が好ましく、特にサッカロマイセス・セレビジエのような出芽酵母が好ましい。
　本明細書で使用する場合、「人工染色体ベクター」とは、真核生物の染色体の複製機構を利用したベクターであって、宿主細胞内で自律複製や娘細胞への分配が可能であり、宿主細胞内で安定的に保持され、宿主細胞の染色体とは独立して存在することができるベクターを意味する。
　リボソームは細胞中にもっとも多量に存在するタンパク質－ＲＮＡ複合体であり、その遺伝子であるｒＤＮＡも多コピー（ｒＤＮＡリピート）で存在する。真核細胞のｒＤＮＡは、染色体上に１００回以上繰り返して存在する反復遺伝子であり、例えば、出芽酵母では約１５０コピーが１２番染色体に直列に繰り返して存在し、出芽酵母のゲノム全体の約１０％を占める。出芽酵母の場合、１つの反復単位は９．１ｋｂで、その内訳は約６ｋｂが遺伝子（３５Ｓ、５Ｓ　ｒＤＮＡ）、残りの約３ｋｂが遺伝子間領域に含まれる非コード領域である。
　リボソームはすべての生物にとって必須な翻訳装置であり、多コピーのｒＤＮＡの状態を維持する機構もまた重要である。実際に出芽酵母のｒＤＮＡを人為的に２コピーに減らしても、また１５０まで回復する。つまり２コピー（１８ｋｂ）が１５０コピー（１．４Ｍｂ）に伸長する。このような増幅によるコピー数の回復は他の生物でも観察される。
　真核細胞のｒＤＮＡは、コード領域と非コード領域（Ｎｏｎｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＴＳともいう。）とで構成されている。姉妹染色分体の接着に関与するコヒーシンや染色体の凝縮に関与するコンデンシンなど、ｒＤＮＡの染色体の維持に関与する因子は、ｒＲＮＡ遺伝子間、具体的には、遺伝子間領域（Ｉｎｔｅｒｇｅｎｉｃ Ｓｐａｃｅｒ：ＩＧＳ）に存在する、タンパク質をコードしていない非コード領域に集中している（図１）。
　ｒＤＮＡの反復単位間に存在する遺伝子間領域は、２つの部位ＩＧＳ１とＩＧＳ２から構成され、その間に５Ｓ遺伝子が介在している。本明細書で使用する場合、「遺伝子間領域」はＩＧＳ１、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列及びＩＧＳ２を含む領域を意味する。遺伝子間領域は転写の調節や転写の終結の制御に関与していると考えられる。
　ｒＤＮＡ特有の機能として、多コピーの状態を作り出す遺伝子増幅作用とコピーの脱落を防ぐ組換え抑制作用がある。これまでの本発明者らの研究により図２に示すようなＤＮＡの複製阻害に依存した増幅モデルが提唱されている（Kobayashi T, Ganley ARG (2005) Recombination regulation by transcription-induced cohesin dissociation in rDNA repeats. Science 309: 1581-1584；Kobayashi T, Horiuchi T, Tongaonkar P, Vu L, Nomura M (2004) SIR2 regulates recombination between different rDNA repeats, but not recombination within individual rRNA genes in yeast. Cell 117: 441-453）。
　図２のモデルでは、ｒＤＮＡの遺伝子間領域に存在する複製阻害点（ＲＦＢ：ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｆｏｒｋ　ｂａｒｒｉｅｒ）においてＤＮＡの二本鎖切断（ＤＳＢ：ＤＮＡ　ｄｏｕｂｌｅ－ｓｔｒａｎｄ　ｂｒｅａｋ）が生じ、その切断末端が後戻りして隣のコピーの姉妹染色分体との相同組換えで修復される。そこから複製が再開されるため、同じ領域が２度複製されることになりコピー数が増加する（図２右）。この「後戻り組換え修復」には非コードプロモーターからの転写によるコヒーシン、コンデンシンの乖離が必要であることが判明している。
　もう一方のコピー数維持に働く「組換え抑制作用」については、これまでに、ｒＤＮＡの安定性を低下させる、つまりコピー数の変動が激しい変異株が多数同定されている。
　遺伝子間領域は、ｒＤＮＡ遺伝子の５'側から順に、自己複製配列（ＡＲＳ）、コヒーシン結合部位、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列、非コードプロモーター（Ｅ－ｐｒｏ）配列及び複製阻害（ＲＦＢ）配列を含む。
　人工染色体ベクターに含まれる構成要素としては、リボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）の反復単位や、各反復単位間に存在する遺伝子間領域とがある。人工染色体の由来となる真核生物にもよるが、酵母の場合、反復単位数は２～１５０個程度である。しかしながら、上限は１５０個に限定されない。酵母が出芽酵母の場合、ｒＤＮＡの反復単位は出芽酵母の第１２染色体に存在する。
　人工染色体は、その他にも人工染色体ベクターが自律複製するための複製開始配列（ＡＲＳ）、コヒーシン結合部位（ＣＡＲ）、コンデンシン結合部位、テロメア、セントロメア、非コードプロモーター、複製阻害配列（ＲＦＢ）などを含んでもよい。一例として出芽酵母のｒＤＮＡの構造を図３に示す。
　図３に記載の構造は例示であり、人工染色体ベクターは更に、薬剤耐性遺伝子、宿主で発現する選択マーカー遺伝子（ポジティブ選択マーカー遺伝子又はネガティブ選択マーカー遺伝子）等を含んでもよい。選択マーカー遺伝子としては、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ又はＥＧＦ）等の蛍光タンパク質をコードする遺伝子、β－ガラクトシダーゼ遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子、栄養要求性に関わる遺伝子等が挙げられる。挿入に用いた選択マーカーは相同組換えや、Ｃｒｅ－ＬｏｘＰ等のリコンビナーゼで取り除くことができる。
　遺伝子間領域１（ＩＧＳ１）は、目的遺伝子を組み込み、且つ識別するためのバーコード（ＢＣ）配列を含む。本明細書で使用する場合、「バーコード配列」とは、人工染色体において目的遺伝子を挿入されるための核酸であって、複数の目的遺伝子を互いに識別するために固有の配列を有する核酸を意味する。各バーコード配列は互いに異なる配列、つまり、各ｒＤＮＡコピーに固有の配列を有するが、目的によっては、一部のバーコードが同一の配列を有していてもよい。
　バーコード配列は、例えば、化学的に合成したランダムな配列を持つ一本鎖ＤＮＡをＤＮＡポリメラーゼにより二本鎖にし、それらをつなぎ合わせて作成することができる。バーコード配列は、内部で２次構造をとりにくいもの（GCの連続した配列がない）や、クローニングに使用する制限酵素の配列を含まないものが好ましい。バーコード配列の一例を表４に示す。
　バーコード配列の挿入部位は所望とする効果に影響を及ぼさない限りＩＧＳ１内のいずれでもよいが、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列と非コードプロモーター（Ｅ－ｐｒｏ）配列との間、又はＥ－ｐｒｏ配列と複製阻害（ＲＦＢ）配列との間が好ましい。
　目的遺伝子を挿入する観点から、バーコード配列は制限酵素や組換え酵素の認識部位を有していることが好ましい。このような認識部位には、例えばｌｏｘＰ（Ｃｒｅリコンビナーゼ認識部位）、ＦＲＴ（Ｆｌｐリコンビナーゼ認識部位）、φＣ３１ａｔｔＢ及びφＣ３１ａｔｔＰ（φＣ３１リコンビナーゼ認識部位）、Ｒ４ａｔｔＢ及びＲ４ａｔｔＰ（Ｒ４リコンビナーゼ認識部位）、ＴＰ９０１－１ａｔｔＢ及びＴＰ９０１－１ａｔｔＰ（ＴＰ９０１－１リコンビナーゼ認識部位）、Ｂｘｂ１ａｔｔＢ及びＢｘｂ１ａｔｔＰ（Ｂｘｂ１リコンビナーゼ認識部位）等がある。
　上記の認識部位で特異的に目的遺伝子等と組換えを起こすための酵素は、Ｃｒｅインテグレース（Ｃｒｅリコンビナーゼ）、Ｆｌｐリコンビナーゼ、φＣ３１インテグレース、Ｒ４インテグレース、ＴＰ９０１－１インテグレース、Ｂｘｂ１インテグレース等である。
　更に、各バーコード配列は、目的遺伝子の挿入の標的としての役割を果たすことができる。バーコード配列は目的遺伝子の発現を制御するためのプロモーター配列及びターミネーター配列を含んでもよい。この場合、各目的遺伝子の３'側にターミネーター配列が、５'側にプロモーター配列が配置され得る。プロモーターは宿主で誘導可能なものであればよく、特に限定されないが、出芽酵母で使用可能なプロモーターの例として、誘導的プロモーター、例えば、ガラクトース誘導（ＧＡＬ）プロモーターや、アルカリフォスファターゼプロモーター（ＰＨＯ）、銅イオンの添加で活性化するＣＵＰ１プロモーター、更にはＡＤＨ１等の構成的プロモーター等が挙げられる。ＧＡＬプロモーターとしてはＧＡＬ１、ＧＡＬ７、ＧＡＬ１０などがある。
　バーコード配列は、短すぎると相同組換えを利用した遺伝子の挿入効率が下がり、長すぎると作成が困難なため、およそ６００ｂｐが好ましい。
　バーコード配列は相同組換え等の当業者に公知の方法を用いて人工染色体ベクター内に挿入され得る。一例を図４に示すと、例えば、１）ｒＤＮＡリピートの横の非ｒＤＮＡの配列を用いて選択マーカー遺伝子（ＬＹＳ２）とユニークな約６００ｂｐの第１のバーコード配列（ＢＣ－１）が相同組換えでベクター内に導入される。続いて、２）ＢＣ－１と非ｒＤＮＡの配列を利用して隣に新たなユニークな第２のバーコード配列（ＢＣ－２）と、異なる選択マーカー遺伝子であるＵＲＡ３とｒＤＮＡが導入され、同時にＬＹＳ２が除かれる。３）第３のバーコード配列についても同様にＢＣ２と非ｒＤＮＡの配列間での相同組換えによりＬＹＳ２－ＢＣ－３－ｒＤＮＡ－断片が導入され、同時にＵＲＡ３が除かれる。第４以降のバーコード配列についても２）、３）の工程をバーコード配列のみを変えて繰り返すことにより順番にユニークなバーコード配列を有するｒＤＮＡコピーが付加され、最終的に所望とする人工染色体ベクターが構築され得る。
　各バーコード配列に対しては更に、シーケンシングのためのアダプター配列のような任意の配列を付加することもできる。
　ｒＤＮＡのリピートは、別の染色体にも形成・維持されることが知られている（Ｏａｋｅｓ　ｅｔ　ａｌ，　Ｍｏｌ　Ｃｅｌｌ　Ｂｉｏｌ　２６：　６２２３-６２３８，　２００６）。そのため、効率の観点からは、異なる細胞において短い染色体ベクターを別々に作成し、最後にそれらの染色体を交配により１つの細胞にまとめることにより、短期間で多コピーのバーコードを持つ細胞を作ることができる。
　ｒＤＮＡの安定性を高める観点から、各バーコード配列は、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列とＥ－ｐｒｏ配列との間に位置する制限酵素部位に挿入されることが好ましい。
　バーコード配列中に挿入される目的遺伝子は、人工染色体の用途に応じて当業者が適宜決定することができる。目的遺伝子は、人工染色体ベクターを導入する宿主と同種又は異種であってもよいし、それぞれ同一であるか又は互いに異なっていてもよい。
　目的遺伝子は、適当なプロモーターの制御下に置かれ、さらに、ターミネーター、エンハンサー、マーカー等と組み合わせて人工染色体ベクター内に組み込まれてもよい。
　多数のバーコード配列に同一の遺伝子を挿入した人工染色体ベクターを作成することで、有用タンパク質などの大量生産が可能な人工遺伝子増幅系（ｉｎ　ｖｉｖｏ　ＰＣＲ）を実現することができる。従来の多コピープラスミドによる多量生産系とは異なり、薬剤選択なども必要なく、増幅遺伝子を染色体上で安定に保持させることができるという利点もある。
　多くの生理反応には複合体を形成した複数のタンパク質が関係しており、それらすべての因子を発現しないと解析に必要な反応系の再構築はできない。プラスミドを利用した系では挿入できる遺伝子の数に限りがあり、また挿入した遺伝子のサイズや性質によってはプラスミドの安定性（維持効率）が低下するという弱点がある。一方、人工染色体ベクターは、安定性を維持する機構を有するため、極めて安定に多数の異種遺伝子の導入、維持が可能である。特に、各ｒＤＮＡコピーに固有のバーコード配列を挿入することにより、導入したい遺伝子を狙ったコピーに１つずつ確実に挿入することもできる。そのため、解析を必要とするヒトのタンパク質複合体をコードする人工染色体ベクターを宿主内に導入することにより、タンパク質複合体やその反応系を異なる宿主細胞内でそのまま再構築することが可能になる。
　人工染色体ベクターを用いた目的遺伝子の増幅は、ＤＮＡの複製を阻害し、ＤＮＡの二本鎖切断を誘導するＦｏｂ１タンパク質のオン、オフにより制御することができる（図２）。Ｆｏｂ１は３５Ｓ　ｒＤＮＡ転写終結点近傍にある複製阻害配列（ＲＦＢ）に特異的に結合し、複製開始点（ＡＲＳ）から進行してくるＤＮＡ複製フォークを阻害する活性を有する。Ｆｏｂ１は更にＤＮＡの二本鎖切断を引き起こし、姉妹染色体間のずれ（ｕｎｅｑｕａｌ　ｓｉｓｔｅｒ－ｃｈｒｏｍａｔｉｄ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ）による増幅組換えを誘導する。
　ＲＦＢは、ｒＤＮＡ上にある双方向性非コードプロモーターのＥ－ｐｒｏと共同してｒＤＮＡの安定性維持機構に関与している。Ｅ－ｐｒｏは、ｒＤＮＡのコピー数が減少するとその発現が誘導され、ｒＤＮＡのコピー数を増大させる（図２右下）。サーチュインタンパク質Ｓｉｒ２はＥ－ｐｒｏを制御することによりｒＤＮＡのコピー数を制御する（図２左下）。
（真核細胞）
　第二の態様において、人工染色体ベクターを含む、真核細胞が提供される。
　人工染色体ベクターはｒＤＮＡの遺伝子間領域から構成されることから、人工染色体が導入された真核細胞は、内在する遺伝子を破壊することなく、一定のコピー数で安定に人工染色体を保持し得る。
　人工染色体を含む真核細胞は特に限定されないが、その例として酵母などの微生物細胞が挙げられる。酵母としては、公知の各種酵母を利用できるが、サッカロマイセス・セレビジエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）等のサッカロマイセス属の酵母、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅ）等のシゾサッカロマイセス属の酵母、キャンディダ・シェハーテ（Ｃａｎｄｉｄａ　ｓｈｅｈａｔａｅ）等のキャンディダ属の酵母、ピキア・スティピティス（Ｐｉｃｈｉａ　ｓｔｉｐｉｔｉｓ）等のピキア属の酵母、ハンセヌラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）属の酵母、クロッケラ属（Ｋｌｏｃｃｋｅｒａ）の酵母、スワニオマイセス属（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ）の酵母及びヤロイア属（Ｙａｒｒｏｗｉａ）の酵母、トリコスポロン（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ）属の酵母、ブレタノマイセス（Ｂｒｅｔｔａｎｏｍｙｃｅｓ）属の酵母、パチソレン（Ｐａｃｈｙｓｏｌｅｎ）属の酵母、ヤマダジマ（Ｙａｍａｄａｚｙｍａ）属の酵母、クルイベロマイセス・マーキシアヌス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｍａｒｘｉａｎｕｓ）、クルイベロマイセス・ラクティス（Ｋｌｕｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　ｌａｃｔｉｓ）等のクルイベロマイセス属の酵母、イサトケンキア・オリエンタリス（Ｉｓｓａｔｃｈｅｎｋｉａ　ｏｒｉｅｎｔａｌｉｓ）等のイサトケンキア属の酵母が挙げられる。汎用性の観点からは、サッカロマイセス属酵母が好ましい。なかでも、出芽酵母、特にサッカロマイセス・セレビジエが好ましい。
　人工染色体ベクターを真核細胞へ導入する方法としては、例えば、リン酸カルシウム法、トランスフォーメーション法、トランスフェクション法、接合法、プロトプラスト法、エレクトロポレーション法、リポフェクション法等の方法が挙げられる。マーカー遺伝子の発現や目的遺伝子の活性を指標として、形質転換された真核細胞が選択され得る。
（人工染色体ベクターの製造方法）
　第三の態様において、ＩＧＳ１内にバーコード配列を挿入する工程を含む、人工染色体ベクターを製造する方法が提供される。
　バーコード配列の挿入部位は所望とする効果に影響を及ぼさない限りＩＧＳ１内のいずれでもよいが、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列と非コードプロモーター（Ｅ－ｐｒｏ）配列との間が好ましい。
　既に図４を参照して説明したとおり、バーコード配列の挿入は相同組換え等の当業者に公知の方法により行うことができる。例えば、以下の工程を経由することで複数のバーコード配列をそれぞれ異なるＩＧＳ１内に挿入することができる：
１）ｒＤＮＡと非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより第１のバーコード配列及び選択マーカー配列を第１のＩＧＳ１内に挿入する工程；
２）１）で挿入した第１のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第２のバーコード配列及び１）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第２のＩＧＳ１内に挿入する工程。
　本明細書で使用する場合、「非ｒＤＮＡ遺伝子領域」とは、ｒＤＮＡリピートに存在する、リボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）配列とその遺伝子間領域以外の領域を意味する。
　第３以降のバーコード配列の挿入についても、更に以下の工程を順次繰り返すことにより行うことができる：
３）２）の工程で挿入した第２のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第３のバーコード配列及び２）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第３のＩＧＳ１内に挿入する工程。
　相同組換えは、各バーコード配列及び選択マーカー配列を含む相同組換えベクターを用いて行ってもよい。相同組換えベクターは、バーコード配列の５'側領域及び３'側領域の塩基と相同な両配列の間に、挿入すべきＤＮＡカセットを連結して得ることができる。相同組換えベクターとしては、例えばプラスミド、ファージ、コスミド、ウイルスなどが挙げられ、好ましくはプラスミドである。相同組換えベクターを構築するための基本ベクターには、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、選択マーカー遺伝子、複製開始点などの、ベクター構築において一般的に挿入される配列を含めてもよい。
　選択マーカー遺伝子はウラシル合成遺伝子又はリジン合成遺伝子であってもよい。
　限定することを意図するものではないが、人工染色体ベクターの製造方法の一例を以下に記載する。
第一のバーコード配列の挿入
　３５ＳｒＤＮＡの３'配列からＩＧＳ１までの領域と非ｒＤＮＡ配列の間に、ユニークな約６００ｂｐの第１のバーコード配列（ＢＣ－１）と選択マーカー遺伝子（ＬＹＳ２）とを挟んだプラスミド（１ｓｔＢＣ）を作成し、そのベクター部分を切り離して低コピーのｒＤＮＡを有する宿主に導入する。リジンを含まない培地で選択すると３５ＳｒＤＮＡと非ｒＤＮＡ配列が、それぞれ宿主の相同領域と相同組換えを起こして入れ替わり、結果的にＢＣ－１とＬＹＳ２がｒＤＮＡの末端領域に導入された株が単離される。
第二のバーコード配列の挿入
　続いてＢＣ－１と非ｒＤＮＡ配列間に、第２のバーコード配列（ＢＣ－２）、選択マーカー遺伝子（ＵＲＡ３）とハイグロマイシン耐性の変異を持ったｒＤＮＡ１コピーを挟んだプラスミド（２ｎｄＢＣ）を作成し、ベクター部分を切り離して、ＢＣ－１とＬＹＳ２がｒＤＮＡの末端領域に挿入された株に導入する。ウラシルを含まない培地で選択するとＢＣ－１と非ｒＤＮＡ配列が、それぞれ宿主の相同領域と相同組換えを起こして入れ替わり、結果的にＬＹＳ２が取り除かれ、ＢＣ－２、ｒＤＮＡとＵＲＡ３がｒＤＮＡの末端領域に導入された株が単離される。
第三のバーコード配列の挿入
　続いてＢＣ－２と非ｒＤＮＡ配列間に、第３のバーコード配列（ＢＣ－３）、選択マーカー遺伝子（ＬＹＳ２）とハイグロマイシン耐性の変異を持ったｒＤＮＡ１コピーを挟んだプラスミド（３ｒｄＢＣ）を作成し、ベクター部分を切り離して、ＢＣ－２とＵＲＡ３がｒＤＮＡの末端領域に挿入された株に導入する。リジンを含まない培地で選択するとＢＣ－２と非ｒＤＮＡ配列が、それぞれ宿主の相同領域と相同組換えを起こして入れ替わり、結果的にＵＲＡ３が取り除かれＢＣ－３、ｒＤＮＡとＬＹＳ２がｒＤＮＡの末端領域に導入された株が単離される。
　第２と第３のバーコード配列の挿入で行った操作をバーコード配列のみを変えて繰り返すことにより、第一から順番にユニークなバーコード配列を有するｒＤＮＡコピーが付加された染色体ベクターを構築することができる。
　染色体ベクターに挿入するバーコード配列の数が増大すると、リボソームRNA遺伝子が不安定化し、コピーの脱落が生じる場合がある。そのため、挿入されるバーコード配列が多い場合、例えばバーコード配列が１０以上の場合、リボソームRNA遺伝子をより安定化することが好ましい。例えば、サーチュインタンパク質Sir2はリボソームRNA遺伝子のコピー数を制御しており、Sir2をコードするSIR2遺伝子を過剰に発現させるとリボソームRNA遺伝子が安定化することが知られている（Ganley, A.R.D., Ide, S., Saka, K., and Kobayashi, T. (2009). The effect of replication initiation on gene amplification in the rDNA and its relationship to aging. Molecular Cell , 35, 683-693）。また、酵母NuA4アセチルトランスフェラーゼ複合体のサブユニットの一つをコードするEAF3遺伝子を破壊することでもリボソームRNA遺伝子を安定化することができる（Wakatsuki, T., Sasaki, M., and Kobayashi, T. (2019) Defects in the NuA4 acetyltransferase complex increases stability of the ribosomal RNA gene and extends replicative lifespan. Genes Genet. Systems, 94, 197-206）。
　そのため、人工染色体ベクターに含めるバーコード配列の数が多い場合、例えばその数が１０個以上の場合、宿主細胞にSIR2遺伝子を導入するか、宿主細胞のEAF3遺伝子を破壊することにより、リボソームRNA遺伝子を安定化するとともに、コピーの脱落を防ぐことができる。SIR2遺伝子の導入部位は特に限定されないが、例えば出芽酵母を宿主とする場合、４番染色体のTRP1遺伝子の上流にSIR2遺伝子を導入してもよい。SIR2遺伝子の導入に代えて、宿主細胞においてプラスミド ベクターにクローンしたSIR2遺伝子を用いて過剰発現させてもよい。EAF3遺伝子の破壊は常法により行うことができる。例えば、EAF3遺伝子の一部又は全部を欠失させたり、その途中に別の遺伝子を挿入する等してその機能を失わせればよい。
（人工染色体ベクターの用途）
　第四の態様において、人工染色体を用いた種々の方法が提供される。
　例えば、ｒＤＮＡリピートを有する人工染色体ベクターは、各ｒＤＮＡコピーに固有のバーコード配列が挿入されているため、導入したい目的遺伝子を狙ったコピーに１つずつ確実に挿入することができる。そのため、人工染色体ベクターを用いることで複数の同一の又は異なる目的遺伝子又はその発現産物を製造することが可能になる。
　目的遺伝子又はその発現産物の製造は、
１）人工染色体ベクターのバーコード配列内に目的遺伝子を挿入する工程；及び
２）１）で得られた人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程、
を含んでもよい。
　培養工程において、宿主はＦｏｂ１等の複製阻害タンパク質を発現し、これによりｒＤＮＡの増幅が誘導されると、挿入された目的遺伝子もｒＤＮＡと一緒に増幅される。増幅の確認は、サザン解析、定量ＰＣＲ、パルスフィールド電気泳動などを用いて行うことができる。
　目的遺伝子又はその発現産物を大量に製造する場合、同一の目的遺伝子が人工染色体ベクター中に挿入される。
　宿主やその培養条件は目的に応じて当業者が適宜選択することができる。例えば、目的遺伝子を大量に生産する観点からは、ｒＤＮＡのコピー数を増大させる宿主が好ましい。例えば、酵母においては、ＤＮＡ複製に関わるＣＴＦ４や組換えに関わるＲＴＴ１０９の欠損株ではｒＤＮＡが不安定化（ｒＤＮＡのコピー数の変動頻度が上昇）し、且つコピー数が通常の３倍程度に上昇することが知られている。
　ＣＴＦ４はレプリソームの構成タンパク質である。レプリソームは、鋳型ＤＮＡを巻きもどすＣＭＧヘリカーゼ、リーディング鎖の合成を担うＤＮＡポリメラーゼε、ラギング鎖の合成を開始するＤＮＡポリメラーゼα－プライマーゼ複合体、ラギング鎖の伸長を担うＤＮＡポリメラーゼδ及びアクセサリータンパク質から構成される。
　ＣＴＦ４の欠損により、ＤＮＡ二本鎖切断の末端は削り込みをうけて相同組換え経路により修復されるようになり、ｒＤＮＡのコピー数が異常に増幅する。
　ＲＴＴ１０９はヒストンアセチル化酵素であり、その遺伝子はクロマチン構造の変化に関与している。ＲＴＴ１０９遺伝子の発現が低下すると、ｒＤＮＡがローリングサークル型ＤＮＡ複製を開始し、コピー数が増大することが知られている。
　ｒＤＮＡ不安定株はその他の方法によっても作成することができる。例えば、Ｆｏｂ１を多量発現したり、ＤＮＡ複製開始点の一部を欠損させて開始活性を弱めることによりｒＤＮＡを不安定化することができる。不安定化は、ｒＤＮＡが存在している１２番染色体の長さが細胞ごとに変化し、泳動後のバンドがブロード（スミア）になることで判定できる。あるいは、ｒＤＮＡから組換えによって切り出される環状分子（環状ｒＤＮＡ）の量はｒＤＮＡの不安定化と相関があることが報告されており、この量を測定することによっても不安定化を確認することができる。
　目的遺伝子又は発現産物の発現量の制御は当業者に公知の手法により行うことができる。例えば、宿主がＤＮＡの複製を阻害し、ＤＮＡの二本鎖切断を誘導するＦｏｂ１のようなタンパク質又はその遺伝子を産生する場合、そのタンパク質又は遺伝子のオン、オフにより発現量を制御することができる。
　人工染色体ベクターを用いる実験系は、精製タンパク質を用いたｉｎ　ｖｉｔｒｏの実験系では活性が見られないような生理作用の解析を可能にする。例えば、ＤＮＡの複製や組換え反応は関係する因子が多く、ｉｎ　ｖｉｔｒｏでの再構築が難しく、必要十分な因子が未だ確定されていない。そのような場合でも例えばヒトのＤＮＡ修復反応に関わる一連の遺伝子を酵母染色体ベクターに入れて、ヒトの修復系を酵母で動かし解析することが可能となる。
　限定することを意図するものではないが、人工染色体ベクターは、以下のような解析方法に使用することができる。
・ヒトのＤＮＡ修復系に関わる遺伝子を人工染色体ベクターに導入し、酵母でヒトの修復系を再構築して、がんの発生や細胞老化のメカニズムを解析する。
・マウスや他の動物個体を用いて行われている研究に関わる遺伝子を人工染色体ベクターに導入し、これを導入した酵母などの宿主でそれらの遺伝子や機能を解析する。
・複数のタンパク質が集合して働く複合体に関わる遺伝子を人工染色体ベクターに導入し、酵母内で再構成してその機能を解析する。
・人工染色体ベクターに導入した遺伝子の変異体を宿主の酵母を変異原処理し、その挙動を解析する。
・人工染色体ベクターに異種生物の遺伝子を導入し、それらの機能を解析する。
・人工染色体ベクターに光合成に関わる遺伝子を導入し光エネルギーを利用できる酵母を作成し、その挙動を解析する。
・人工染色体ベクターにヘテロクロマチンの生成に関わる遺伝子を導入し、その挙動を解析する。
・人工染色体ベクターにヒトのヒストン、転写関連因子、翻訳関連因子、タンパク質修飾因子に関わる遺伝子を導入し、ヒト型のタンパク質生産系をもつ酵母を作成し、創薬や薬剤ターゲットの解析を行う。
・人工染色体ベクターにヒトや有用生物の病気に関わる遺伝子とその代謝系に関わる遺伝子導入し、創薬や薬剤ターゲットの解析を行う。
　上記の解析は、例えば、宿主細胞内において、同種又は異種の細胞に由来する複数の異なる目的遺伝子又は当該目的遺伝子の発現産物の挙動を解析する方法であって、
１）バーコード配列内に目的遺伝子が挿入されている人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程；及び
２）前記目的遺伝子又はその発現産物の機能、あるいはそれらの宿主内における挙動を解析する工程、
を含む、方法により行うことができる。
　上記の工程はあくまでも例示であり、解析の目的に応じて１）又は２）の工程において、あるいはそれらの工程の前後に適宜必要な工程を含めることができる。例えば、２）の工程において、更に発現産物の発現レベルを測定してもよい。発現レベルは、目的遺伝子の転写産物の量又は翻訳産物の量のいずれを測定してもよい。
　更に、２）の工程は、目的遺伝子又はその発現産物を活性化又は阻害する物質の存在下又は不在化で実施することもできる。また、２）の工程は、人工染色体ベクターが導入されていない宿主と比較する工程を含んでもよい。
（人工細胞）
　第五の態様において、人工染色体ベクターをリポソーム等の人工細胞膜に含む人工細胞が提供される。
　ｒＤＮＡは、すべての生物が持っている基本遺伝子で代謝の中心である。そのｒＤＮＡを土台とした人工染色体ベクターに、例えば、約８０種あるリボソームタンパク質の遺伝子をすべてクローニングすることも可能である。このような人工染色体ベクターをリポソームと組み合わせることで人工細胞の作成が可能になる。
　機能性タンパク質をコードする遺伝子を人工染色体ベクターにクローニングすることで、人工細胞に生理活性を持たせることもできる。
　人工細胞膜としてはリポソームやミセルなどが挙げられる。リポソームは脂質二重膜小胞であり、当業者に公知の手法により作成することができる。ミセルは脂質と界面活性剤とから成る混合ミセルが好ましい。
　以下に実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
１．バーコードの作成
　バーコードの作成は、合成した一本鎖DNAオリゴを二本鎖化したDNA断片同士を連結後、Polymerase Chain Reaction (PCR)によって複数のDNA断片をつなぎ合わせる(アッセンブリ)ことで合成する。使用した合成DNAオリゴは、表１～３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　PCRは、C1000 Touch サーマルサイクラー (BIO-RAD:1851148JA)とDNAポリメラーゼKOD FX neo (東洋紡:KFX-201)キットを用いた各オリゴプライマー濃度1 μMの反応系で行った。PCR産物やDNA断片の分離で使用するアガロース電気泳動は、電気泳動緩衝液1xTAE (40 mM Tris, 20 mM Acetic acid, 1 mM EDTA)または1xTBE (89 mM Tris, 89 mM Boric acid, 2.5 mM EDTA)で0.5～2%アガロースゲル(Star Agarose:RIKAKEN, RSV-AGRP-500g)を作成し、電気泳動装置Mupid-exU(Mupid:EXU-1)によって行った。
　アガロースゲルからのDNA断片の精製は、NucleoSpin Gel and PCR Clean-up (Takara:U0609C)キットを用いた。プラスミドの作成と増幅は、大腸菌株JM109 (e14-(mcrA-), recA1, supE44, endA1, hsdR17(rk -, mk +), gyrA96, relA1, thi-1, D(lac-proAB), F' [traD36, proAB, lacIq, lacZDM15])で行い、NucleoSpin Plasmid Quick Pure (Takara:U0615B)キットを用いてプラスミド精製を行った。
　大腸菌の形質転換体の選択と培養は、アンピシリンナトリウム(Wako:014-23302)を100 mg/L含む LB培地で行った。LB培地は、1%トリプトン(BD Bacto Tryptone:211705)、0.5%酵母エキス(BD Bacto Yeast Extract:212750)、1%塩化ナトリウム(Wako:191-01665)を含み、プレート培地(寒天培地)ではさらに2%寒天(BD Bacto Agar:214010)を含む。
　一本鎖DNAオリゴの二本鎖化は、ランダム配列を含む約100塩基の一本鎖DNAオリゴに対し、相補配列を持つ17～22塩基のDNAオリゴをプライマーとして相補鎖をKOD FX neo DNAポリメラーゼを用いて合成した(図５:2.Strand synthesis)。DNA合成は、OLI002とOLI003(A1断片)、OLI004とOLI005(B1断片)、OLI006とOLI007(B2断片)、OLI008とOLI009(C1断片)、OLI010とOLI011(C2断片)、OLI012とOLI013(D1断片)をそれぞれ3 μM含む反応液を調製し、94°C 2分、98°C 30秒、48°C 30秒、68°C 10分間保温し反応を行った。二本鎖化反応後に残存している一本鎖DNAは、反応液に0.2 u/μlとなるようにExonuclease I (GEヘルスケア: E70073Z)を加え37°Cで15分間保温し分解した。
　合成したA1、B1、B2、C1、C2、D1断片は、1xTBE 2%アガロースゲル電気泳動により分離精製し、A1とB1、B2とC1、C2とD1をそれぞれ混合した溶液DNA 50 ng分を最終体積2 μlで調製した。DNA断片の連結は、DNA断片混合液2 μl、Quick ligation kit (NEW England BioLabs:M2200S)の2xQuick Ligation反応バッファー1.8 μl、Quick T4 DNAリガーゼ0.2 μlを混合したのち室温で2時間静置し行った(図５:3.Ligation)。各連結DNA断片は、連結反応液を0.02?0.04 μl/μlとなるように各オリゴDNAプライマーセット、OLI002とOLI005(A1-B1断片)、OLI007とOLI009(B2-C1断片)、OLI011とOLI013(C2-D1断片)を含むPCR反応液を調製し、94°C 2分、[98°C 10秒、48°C 15秒、68°C 30秒]x 10サイクルで反応し増幅した。
　増幅したA1-B1、B2-C1、C2-D1断片は、それぞれ1xTBE 2%アガロースゲル電気泳動により分離精製した。NGSバーコード配列を付加したA1-B1断片(AB断片)は、OLI005とOLI014のオリゴDNAプライマーと、OLI001を0.5 μMとA1-B1断片1 ng/μlとなるように調製したPCR反応を、94°C 2分、[98°C 5秒、48°C 15秒、68°C 45秒]x 9サイクルで行い増幅した(図５:4. 1stPCR assembly左)。
　B2-C1とC2-D1断片のアッセンブリ(BD断片)は、OLI007とOLI013のオリゴDNAプライマーを含むPCR反応液に、B2-C1とC2-D1断片をそれぞれ1 ng/μlとなるように加え、94°C 2分、[98°C 5秒、48°C 15秒、68°C 45秒]x 9サイクルの反応で行った(図５:4. 1stPCR assembly右)。
　増幅したAB断片とBD断片は、それぞれ1xTBE 2%アガロースゲル電気泳動により分離精製した。AB断片とBD断片のアッセンブリ(バーコード断片)は、OLI013とOLI014のオリゴDNAプライマーを含むPCR反応液に、ABとBD断片をそれぞれ2 ng/μlとなるように加え、94°C 2分、[98°C 5秒、48°C 15秒、68°C 1分]x 7サイクルの反応で行った(図５:5. 2ndPCR assembly)。
　得られたバーコード断片は、1xTBE 1.5%アガロースゲル電気泳動により分離精製した。バーコード断片のクローニングに使用するベクター断片(pUC-vector断片)は、プラスミドpUC19（Gene 1985, 33, 103-）を鋳型として、OLI015とOLI016のオリゴDNAプライマーを含むPCR反応液を調製し、94°C 2分、[95°C 20秒、48°C 20秒、68°C 3分30秒]x 30サイクルの反応で増幅後、1xTAE 2%アガロースゲル電気泳動により分離精製した。
　バーコード断片とベクター断片のアッセンブリは、バーコード断片0.13 pmolとpUC-vector断片0.03 pmolを含む5 μl溶液と5 μlのNEBuilderマスターミックス液(NEBuilder HiFi DNA Assembly Master Mix NEW England BioLabs: E2621S)を混合し、50°Cで1時間保温し反応を行った。アッセンブリ反応液は、2.5 μlを50 μlの大腸菌JM109コンピテントセルと混合したのち、LBアンピシリンプレート培地に塗布し、37°Cで一晩培養し形質転換を行った。
　バーコードプラスミド(pBC)は、37°Cで生育した各コロニーをLBアンピシリン液体培地で培養後、プラスミド精製キットにより精製し、サンガーシークエンス法によるバーコード配列の決定を行った(図５:6. Plasmid cloning)。得られたpBCクローンのうち、バーコード領域の配列に共通の構造を持っているもの、シトシン(C)やグアニン(G)が6個以上連続した配列を持っていないもの、制限酵素AvrII、BamHI、Eco47III、PstIの認識配列を持たないものを選抜し、バーコードとした。実施例に使用したバーコード配列を表４に示し、それぞれを含むバーコードプラスミドをpBC1、pBC2、pBC3とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　バーコードの組み込みに使用するベクターを作成するために、リボソーム RNA遺伝子近傍の配列RDN1L (SGD,S288CゲノムchrXII:450760..451418)と栄養要求性マーカー遺伝子URA3またはLYS2を有するプラスミドpUC_RDN1L_URA3とpUC_RDN1L_LYS2を構築した。また、プラスミドpUCEco47RDNheadBamHIとpUCEco47RDNhyg1BamHIを作成し、ハイグロマイシンB耐性リボソーム RNA遺伝子(rDNA)配列を供与するプラスミドとした。
　プラスミドの骨格部分(vector断片)は、OLI017とOLI026オリゴDNAプライマーと鋳型プラスミドpUC19を用いて、94°C 2分、[95°C 20秒、48°C 20秒、68°C 3分30秒]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。URA3断片は、OLI033とOLI034オリゴDNAプライマーと鋳型プラスミドYIplac211（Gene 1988,74, 527-）を用いて、94°C 2分、[95°C 20秒、48°C 20秒、68°C 1分30秒]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　RDN1L断片、LYS2-1断片、rDNA_SmaI-BamHI断片、rDNA_NheI-Eco47III断片は、出芽酵母菌株BY4743（Yeast 1988, 14,115-）から精製したゲノムDNAを鋳型とし、それぞれオリゴDNAセットOLI020とOLI025、OLI022とOLI023、OLI029とOLI030、OLI027とOLI028を用いて、94°C 2分、[95°C 20秒、48°C 20秒、68°C 1分30秒]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　LYS2-2断片は、出芽酵母菌株BY4743（Yeast 1988, 14,115-）のゲノムDNAを鋳型とし、オリゴDNAセットOLI021とOLI024を用いて、94°C 2分、[95°C 20秒、48°C 20秒、68°C 3分30秒]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。0.05 pmolのvector断片、0.1 pmolのRDN1L断片と0.1 pmol URA3断片の計2.5 μlを2.5 μlのNEBuilderマスターミックス液と混合しpUC_RDN1L_URA3のアッセンブリ反応液とした。また、0.05 pmolのvector断片、0.1 pmolのRDN1L断片、0.1 pmol LYS2-1断片と0.1 pmol LYS2-2断片の計2.5 μlを2.5 μlのNEBuilderマスターミックス液と混合しpUC_RDN1L_LYS2アッセンブリ反応液とした。pUCEco47RDNheadBamHIのアッセンブリ反応は、0.05 pmolのvector断片、0.1 pmolのrDNA_SmaI-BamHI断片と0.1 pmol rDNA_NheI-Eco47III断片の計2.5 μlを2.5 μlのNEBuilderマスターミックス液と混合し調製した。
　各アッセンブリ反応液は、50°Cで1時間保温した後、50 μlの大腸菌JM109にLBアンピシリン培地を用いて形質転換し、pUC_RDN1L_URA3、pUC_RDN1L_LYS2とpUCEco47RDNheadBamHIを得た。pUCEco47RDNhyg1BamHIは、pUCEco47RDNheadBamHIを制限酵素SmaI (Takara: 1085A)とNheI (Takara: 1241A)で切断したプラスミド骨格と、ハイグロマイシンB耐性型リボソームRNA遺伝子断片(RDN-hyg1-1断片とRDN-hyg1-2断片)を連結し作成した。RDN-hyg1-1断片とRDN-hyg1-2断片は、プラスミドpRDN-hyg1 (Nucl Acids Res 2000, 28, 3524-)を制限酵素PaeI (Thermo Fisher Scientific: FD0604)と、NheI (Thermo Fisher Scientific: FD0973)またはSmaI (Thermo Fisher Scientific: FD0664)で処理し約4 kbのDNA断片を精製し調製した。
　SmaIとNheI処理により得たプラスミド骨格断片10 ng、25 ngのRDN-hyg1-1断片と25 ngのRDN-hyg1-2断片を含む溶液2.5 μlに2xQuick Ligation反応バッファー2.5 μl、Quick T4 DNAリガーゼ0.5 μlを混合したのち室温で30分間静置した後、2 μlの連結反応液を50 μlの大腸菌JM109にLBアンピシリン培地を用いて形質転換し、pUCEco47RDNhyg1BamHIを得た。
　バーコードの組み込みに使うベクターp1stBC、p2ndBC、p3rdBC（図６）は、pUC_RDN1L_LYS2またはpUC_RDN1L_URA3を制限酵素SalI (Thermo Fisher Scientific: FD0644)とPstI (Thermo Fisher Scientific: FD0614)で処理したプラスミド骨格と、リボソームRNA遺伝子断片、バーコード配列断片を各0.01 pmol混合した2.5 μlの溶液に2.5 μlのNEBuilderマスターミックス液と混合し50°Cで1時間アッセンブリ反応を行い50 μlの大腸菌JM109にLBアンピシリンプレート培地30°Cで形質転換を行い作成した。
　各バーコード配列は、各バーコードプラスミドpBC1、pBC2、pBC3を鋳型に、オリゴDNAプライマーセットOLI040とOLI041(BC_SalI断片)、OLI044とOLI045(BC_PstI断片)を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、49°C 20秒、68°C 1分]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。リボソームRNA遺伝子末端の断片RDN1-end断片は、プラスミドpUCEco47RDNheadBamHIを鋳型に、オリゴDNAプライマーOLI042とOLI043を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、49°C 20秒、68°C 2分]x 33サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　全長のリボソームRNA遺伝子断片RDNhyg1は、プラスミドpUCEco47RDNhyg1BamHIを制限酵素AfeI(NEW England BioLabs: R0652)とBamHI(NEW England BioLabs: R3136S)で処理し、約9.1 kbのDNA断片としてアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。ベクターp1stBCは、SalI-BC1断片、RDN1-end断片とpUC_RDN1L_LYS2骨格断片をアッセンブルし作成した(図６左)。ベクター2ndBCは、PstI-BC1断片、SalI-BC2断片、RDNhyg1断片とpUC_RDN1L_URA3骨格断片をアッセンブルし作成した(図６中央)。ベクターp3rdBCは、PstI-BC2断片、SalI-BC3断片、RDNhyg1断片とpUC_RDN1L_LYS2骨格断片をアッセンブルし作成した(図６右)。
　システマティックな目的遺伝子の組み込みに使用するベクターとして、R-recombinase発現プラスミドYEp181GALpR (図１１：GALp-Rec)、ガラクトース誘導型発現カセットプラスミドpUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotI、発現カセットバーコードプラスミド(図７上)pBC1GAL、pBC2GAL、pBC3GALを作成した。
　YEp181GALpRは、出芽酵母シャトルベクターYEplac181 (Gene 1988,74, 527-)の制限酵素サイトSalI-EcoRIに、ガラクトース誘導型R-recombinase遺伝子断片(GALpR断片)を挿入し作成した。GALpR断片は、pRINT (Science 276,1997, 806-) を制限酵素EcoRI (NEW England BioLabs: R3136S)、SalI (NEW England BioLabs: R3138S)、PstI (NEW England BioLabs: R3140S)、PflFI (NEW England BioLabs: R0595S)で処理し、約2.6 kbのDNA断片としてアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　pUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotIは、GAL1p断片、CYC１t断片、rS-URA3-Rs断片とpUC-vector断片をアッセンブルし作成した。GAL1p断片とCYC1t断片は、pAGプラスミドシリーズ(Yeast 2007, 24, 913-)由来のプラスミドpAG413Gal-Ago2 (NAR 2001, 39, e43)を鋳型に、それぞれオリゴDNAプライマーセットOLI059とOLI060(GAL1p断片)、OLI061とOLI062(CYC１t断片) を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、49°C 15秒、68°C 1分5秒]x 31サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　rS-URA3-Rs断片は、YIplac211を鋳型に、オリゴDNAプライマーOLI063とOLI064を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、49°C 15秒、68°C 1分5秒]x 31サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。pBC1GAL、pBC2GAL、pBC3GALは、それぞれバーコードプラスミドpBC1、pBC2、pBC3の制限酵素サイトSfaI-NotIに、ガラクトース誘導型発現カセット断片(GAL1pCYC1t-rSURA3Rs断片)を挿入し作成した。
　GAL1pCYC1t-rSURA3Rs断片は、プラスミドpUC_AsiSI-GAL1pCYC1t-rSURA3Rs-NotIを制限酵素SfaAI (Thermo Fisher Scientific: FD2094)、NotI (Thermo Fisher Scientific: FD0593)で処理し、約2 kbのDNA断片としてアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　In yeast実験系を用いたRNA干渉機構再構成では、オワンクラゲ由来GFP遺伝子を発現するレポーター遺伝子ベクターYIp128PDA1pGFPと、GFP遺伝子断片を含むヘアピンRNA発現ベクターYIp211TEF1p-GFPhairpinを作成し使用した。YIp128PDA1pGFPは、出芽酵母シャトルベクターYIplac128(Gene 1988, 74, 527)をEcoRI (Thermo Fisher Scientific: FD0274)とHindIII (Thermo Fisher Scientific: FD0504)で処理して得られたプラスミド骨格と、出芽酵母PDA1遺伝子プロモーター断片(PDA1p断片)、GFP遺伝子断片(NLS-GFP-adh1t断片)をアッセンブルし作成した。
　YIp211TEF1p-GFPhairpinは、出芽酵母シャトルベクターYIplac211をEcoRI (FD0274)とHindIII (FD0504)で処理して得られたプラスミド骨格と、出芽酵母TEF1遺伝子プロモーター断片(TEF1p断片)、GFP遺伝子の一部を含むpfg1断片、gfp2断片、出芽酵母CYC1遺伝子ターミネーター断片(cyc1t断片)をアッセンブルし作成した。PDA1p断片、TEF1p断片、cyc1t断片は、出芽酵母菌株BY4741のゲノムDNAを鋳型とし、それぞれオリゴDNAセットOLI073とOLI074、OLI065とOLI066、OLI071とOLI072を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、48°C 20秒、68°C 1分]x 30サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
　NLS-GFP-adh1t断片、pfg1断片、gfp2断片は、GFPカセットプラスミドpKT127 (Yeast 2004, 661-)を鋳型に、それぞれオリゴDNAセットOLI075とOLI076、OLI067とOLI068、OLI069とOLI070を用いて、94°C 2分、[98°C 10秒、48°C 20秒、68°C 1分]x 30サイクルのPCRで増幅しアガロースゲル電気泳動により分離後精製した。
２．人工染色体ベクターの作成
　低コピーrDNAを有する宿主は、出芽酵母菌株YTT399 (MATa his3Δ1 ura3Δ0 leu2Δ0 met15Δ0 lys2Δ0 fob1Δ0 RDN1-15)とYTT401 (MATα his3Δ1 ura3Δ0 leu2Δ0 met15Δ0 lys2Δ0 fob1Δ0 RDN1-15)を使用した。各バーコード組み込みベクタープラスミドは、制限酵素PstI (NEW England BioLabs: R3140S)とAvrII (NEW England BioLabs: R0174S)で処理することでベクター断片とし、宿主酵母にp1stBC、p2ndBC、p3rdBCの順で形質転換により導入した。
　形質転換は、約2.5x108個の対数増殖期の細胞を、ベクター断片を含む形質転換液[0.1 M酢酸リチウム(Wako: 123-01542)、15%ポリエチレングリコール3350 (Sigma:P4338-500G)、熱変性したサケ精子DNA (Sigma:D1626) 278 μg/mL] 45 μlに懸濁後、30°Cで１時間保温することで行った。形質転換液は、30°Cの保温後、5 μlのジメチルスルホキシド(Wako: 043-07216)を加え再懸濁し、42°Cで15分間熱ショック処理をして選択培地に塗布し30°Cで3～4日培養することで、バーコードがrDNAに導入された細胞を選択した。
　p1stBCとp3rdBCのベクター断片の導入は選択培地HC-Lys [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-グルコース (Wako:049-31165)、2% 寒天(BD Bacto Agar:214010)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、60 mg/L L-ロイシン(Wako: 124-00852)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、20 mg/Lウラシル(Wako: 212-00062)] を用いて行った。
　p2ndBCのベクター断片の導入は選択培地HC-URA [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-グルコース (Wako:049-31165)、2% 寒天(BD Bacto Agar:214010)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、60 mg/L L-ロイシン(Wako: 124-00852)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、120 mg/L L-リジン塩酸塩(ナカライテスク: 20809-52)]を用いて行なった。
　BC1、BC2とBC3の３種のバーコードを導入した人工染色体ベクター菌株はYTT430(YTT399+BC1,2,3-LYS2)とYTT431(YTT401+BC1,2,3-LYS2)とした。
３．人工遺伝子増幅系の作成
　すでに小林らにより単離されたrDNAを２コピーのみもつ出芽酵母株（Kobayashi et al., 2001）のIGS1領域にURA3-lacOカセットを挿入し、複製阻害点に結合して組換を活性化するFob1タンパク質を発現させてrDNAの増幅を誘導させた結果、URA3-lacOカセットもrDNAと一緒に100コピー程度まで増幅させることに成功した。
方法：（酵母株、プラスミドおよびプライマーは表５～７を参照のこと）
　lacOリピートを250コピー持つプラスミドpAFS52を制限酵素EcoRIで処理して再結合することでlacOリピートを50コピーまで減らしたpAFS52-lacO50を作成した。プライマーTM3とTM4を使いrDNAのIGS1のDNAの一部を増やしpAFS52-lacO50の制限酵素KpnI-XhoI サイトに挿入しプラスミドpTM1を作成した。プライマーTM-HindとTM-SphによりrDNAのIGS2の一部を増やし、pTM1のHindIII-SphIに挿入しpTM2を作成した。URA3遺伝子はプラスミドpJJ242からプライマーTM7とTM8で増幅し、pTM2のSphI-SalIに挿入し、URA3-lacOカセットを持つpTM-lacO50を構築した。
　pTM-lacO50をKpnI-HindIIIで切断した後、rDNAを２コピーもつ酵母株TAK201に導入し、ウラシルを除いた合成選択培地（SG-Ura）で選択してrDNAのIGS１にURA3-lacOカセットを持つ酵母株を作成した（図８）。さらにlacI-GFPを発現するpAFS144-ADE2プラスミドをade2に挿入し、アデニンを除いた合成選択培地（SG-Ade）で選択して、rDNAの増幅が生きたまま蛍光で検出できる酵母株TMY1を完成した。
　TMY1にFob1を発現するプラスミドpTAK101を導入し合成選択培地（SG-Ade, -Leu）で培養し、その後時間をおって細胞を回収し、交配によりFob1プラスミドを欠失させてrDNAの増幅を停止させた。それらの細胞をアガロースゲルプラグに包埋した状態でDNAを精製し、rDNA内に認識配列を持たない制限酵素BamHIで処理し、パルスフィールド電気泳動で解析した（図９）。BamHIによりほとんどの酵母のDNAは小さな断片にまで分解されてしまうが、rDNAリピートはBamHIに切断されないため、大きなDNAとして検出することができる。その結果、Fob1の発現時間に応じてrDNAのコピー数が増幅していることが確認された。またそのURA3-lacOカセットがrDNAと共に増幅していることは、蛍光顕微鏡の観察でlac0-LacIGFPがrDNA全体に結合して蛍光を発することにより確認された（図１０）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
４．in yeast実験系の確立
　短い二本鎖RNA(siRNA)を介したRNAiによる遺伝子発現抑制機構は、人工染色体ベクター供与菌である出芽酵母S. cerevisiaeには存在しない。ヒト細胞で見られるRNAi機構は、精製したDicer (HsDicer)、Argonaute (HsAgo2)とTRBP (HsTRBP)と二本鎖RNAを試験管内で混ぜることにより、配列特異的な標的RNAの切断反応を再構成することができる(Nature 2006, 436, 740-)。また、S. cerevisiae細胞内でHsDicer、HsAgo2とHsTRBPを導入しアンチセンスRNAを転写することにより標的遺伝子の発現抑制を観察した報告があるが (NAR 2011, 39, e43)、実際にsiRNAの生成がなされているかなどは確認されていない。
　そこで、HsDicer、HsAgo2とHsTRBPを染色体ベクターに導入し、in yeast実験系を用いてヘアピンRNA依存的なヒトRNAiによる標的遺伝子の発現抑制が起こるかを検討した。HsTRBP、HsAgo2とHsDicerは、それぞれBC1、BC2とBC3にガラクトース誘導性プロモーターの下流にURA3マーカー遺伝子と共に導入し、遺伝子導入後、R-recombinaseによってマーカー遺伝子を除去した。
　各遺伝子の導入は、染色体ベクター菌株YTT431にあらかじめR-recombinase誘導プラスミドYEp181GALpRを導入してある菌株(YTT431-R)に、プラスミドから切り出したヒトRNAi遺伝子断片と、pBC1~3GALを鋳型に94°C 2分、[98°C 10秒、49°C 15秒、68°C 1分]x 33サイクルのPCRで増幅した1/2BCプロモーター断片と1/2BCマーカー遺伝子断片をアガロースゲル電気泳動により分離後精製したのち形質転換し行なった(図１１)。
　HsTRBP遺伝子は、pBC1GALを鋳型に、オリゴDNAプライマーセットOLI013とOLI086、OLI014とOLI087でそれぞれ1/2BCプロモーター断片と1/2BCマーカー遺伝子断片を合成し、HsTRBP供与プラスミドpAG415Gal-TRBP (NAR 2011, 39, e43)を制限酵素BamHI (Thermo Fisher Scientific: FD0544)とEco32I (Thermo Fisher Scientific: FD0303)処理して得たHsTRBP断片を用いてバーコードBC1に導入した。HsAgo2遺伝子は、pBC2GALを鋳型に、オリゴDNAプライマーセットOLI013とOLI084、OLI014とOLI085でそれぞれ1/2BCプロモーター断片と1/2BCマーカー遺伝子断片を合成し、HsAgo2供与プラスミドpAG413Gal-Ago2 (NAR 2011, 39, e43)を制限酵素BamHI (Thermo Fisher Scientific: FD0544)とEcoRI (Thermo Fisher Scientific: FD0274)処理して得たHsAgo2断片を用いてバーコードBC2に導入した。
　HsDicer遺伝子は、pBC3GALを鋳型に、オリゴDNAプライマーセットOLI013とOLI082、OLI014とOLI083でそれぞれ1/2BCプロモーター断片と1/2BCマーカー遺伝子断片を合成し、HsDicer供与プラスミドpAG416Gal-Dicer (NAR 2011, 39, e43)を制限酵素HindIII (Thermo Fisher Scientific: FD0504)とBcuI (Thermo Fisher Scientific: FD1253)処理して得たHsDicer断片を用いてバーコードBC3に導入した。各遺伝子は、HC-Ura Leuプレート培地[0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-グルコース (Wako:049-31165)、2% 寒天(BD Bacto Agar:214010)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、120 mg/L L-リジン塩酸塩(ナカライテスク: 20809-52)]で選択した。その後、遺伝子導入が確認された細胞を1 mLのHCGal-Leu培地 [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-ガラクトース (Wako: 075-00035)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、120 mg/L L-リジン塩酸塩(ナカライテスク: 20809-52)、20 mg/Lウラシル(Wako: 212-00062)] 30°Cで一晩培養し、R-recombinaseによるURA3遺伝子の除去を行なった(図１１: URA3の除去)。
　URA3除去細胞は、HC-Leu+5FOAプレート培地 [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-グルコース (Wako:049-31165)、2% 寒天(BD Bacto Agar:214010)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、120 mg/L L-リジン塩酸塩(ナカライテスク: 20809-52)、20 mg/Lウラシル(Wako: 212-00062)、1 g/L 5-フルオロオロチン酸 (fluoroChem: 003234)] 30°Cで選抜した。
　得られた遺伝子導入細胞は、他のヒトRNAi遺伝子の導入に利用し、HsDicer (YTT431-D)、HsAgo2 (YTT431-A)、HsTRBP (YTT431-T)の単一発現菌株、二遺伝子発現菌株(YTT431-DA、-DT、-AT)、三遺伝子発現株(YTT431-DAT)を作成した。
　ヒトRNAi機構による遺伝子抑制を評価するGFPレポーター遺伝子は、YIp128PDA1pGFPを制限酵素AccI (NEW England BioLabs: R0161S)で処理し、染色体ベクター菌株YTT430のADH1遺伝子のターミネーター領域に挿入した(GFPレポーター菌株:YTT430-GFP)。さらに、ヒトRNAi機構の誘導に必要なヘアピンRNA遺伝子は、GFPヘアピンベクターYIp211TEF1p-GFPhairpinを制限酵素HindIII (Thermo Fisher Scientific: FD0504)で処理し、YTT430-GFPのCYC1遺伝子のターミネーター領域に挿入した(GFPヘアピン菌株:YTT430-GFPhp)。
　接合型αのYTT431とYTT431-D~DAT株は、接合型aのYTT430-GFPとYTT430-GFPhpと接合させ、ヒトRNAi遺伝子、GFPレポーター遺伝子とGFPヘアピンRNAを発現する二倍体菌株セットを作成した。
　ヒトRNAi遺伝子の発現は、YTT431とYTT431-D~DATとYTT430-GFPhpを接合させた二倍体菌株を、HCGal-Leu培地 [0.17% YNB (BD Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate:233520)、2% D-ガラクトース (Wako: 075-00035)、20 mg/L L-アルギニン(Wako: 017-04612)、60 mg/L L-チロシン(Wako: 202-03562)、80 mg/L L-イソロイシン(Wako: 121-00862)、50 mg/L L-フェニルアラニン(Wako: 161-01302)、100 mg/L L-グルタミン酸(Wako: 070-00502)、100 mg/L L-アスパラギン酸(Wako: 010-04842)、150 mg/L L-バリン(Wako: 228-00082)、200 mg/L L-トレオニン(Wako: 204-01322)、400 mg/L L-セリン(Wako: 199-00402)、40 mg/L L-トリプトファン(Wako: 204-03382)、20 mg/L L-ヒスチジン(Wako: 084-00682)、20 mg/L L-メチオニン(Wako: 133-01602)、40 mg/L アデニン硫酸塩(ナカライテスク: 01990-94)、120 mg/L L-リジン塩酸塩(ナカライテスク: 20809-52)、20 mg/Lウラシル(Wako: 212-00062)] 30°Cで対数増殖期まで培養した細胞の抽出液をSDS-PAGEで分離後、ウエスタンブロットにより確認した。
　OD600=1.0となるよう集菌した菌体を250 μLの滅菌水に懸濁後、37.5 μLのアルカリ変性溶液[1 N 水酸化ナトリウム(Wako: 198-13765)、7.5% 2-メルカプトエタノール(Wako: 137-07521)]を加え氷上で5分間冷却し、37.5 μLの50% トリクロロ酢酸溶液(Wako: 208-08081)を加え氷上でさらに5分間冷却し全タンパク質を沈殿させた。タンパク質は、4°C、10,000 gで5分間遠心し沈殿させ、30 μLの1xサンプルバッファー[75 mM トリス(Sigma-Aldrich: T1503)、100 mM 2-メルカプトエタノール (Wako: 137-07521)、2% ドデシル硫酸ナトリウム(Wako: 196-08675)、5% グリセリン(Wako: 075-00611)、0.001% BPB (Wako: 029-02912)]に懸濁後65°Cで5分間変性し、ウエスタンブロット用サンプル溶液とした。
　SDS-PAGEは、5 μlのサンプル溶液を5-20%ポリアクリルアミドゲル(ATTO: EHR-T/R520L)とスラブ型電気泳動装置(ATTO: WSE-1150PageRunAce)を用いて行なった。電気泳動条件は、1x泳動バッファー[25 mM トリス(Sigma-Aldrich: T1503)、192 mM グリシン (Wako: 077-00735)、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム(Wako: 196-08675)]、定電流10 mA 30分間、20mA 90分間で行なった。SDS-PAGEによって分離したタンパク質は、ミニトランスブロットセル(BIO-RAD: 1703930JA)を用いて、トランスファーバッファー[0.302% トリス(Sigma-Aldrich: T1503)、1.44% グリシン (Wako: 077-00735)、10% メタノール(Wako: 137-01823)] 4°C、定電圧150 V、30分間の条件で、PVDFメンブレン(Immobilon-P Merck-Millipore: PVH00010)に転写した。
　転写したメンブレンは、5% スキムミルク(Wako: 190-12865)を含むPBS-T [140 mM 塩化ナトリウム、2.7 mM 塩化カリウム、10 mM リン酸、0.05% Tween20 (Sigma-Aldrich: P7949)]に浸し、室温で１時間振盪しブロッキングを行なった。チューブリン、HsAgo2とHsTRBPの検出に使用した抗体は、Peroxidase Labeling Kit-NH2 (DOJINDO: LK11)で標識し使用した。HsDicer、HsAgo2、HsTRBPとチューブリンは、それぞれ抗Dicer抗体(Santa Cruz Biotechnology: sc-30226)を1/300、抗Ago2抗体(clone11A9 Merck-Millipore: MABE253) を1/1,000、抗TRBP抗体(clone46D1 フナコシ: bsm-50266M) を1/10,000、抗Tubulin Alpha抗体(cloneYL1/2 AbD Serotec: MCA77G) を1/2,500の割合で5% スキムミルクを含むPBS-Tで希釈し、一晩4°Cで振盪し検出した(一次抗体結合)。一次抗体結合したメンブレンは、PBS-Tで室温30分間振盪する洗浄を2回行なった。HsDicerの検出は、洗浄したメンブレンをさらにペルオキシダーゼ標識抗ウサギIgG抗体(GEヘルスケア: NA934)1/10,000の割合で0.5% スキムミルクを含むPBS-Tで希釈し,室温で1時間振盪後、PBS-Tで室温30分間振盪する洗浄を2回行なった。
　タンパク質の検出は、洗浄したメンブレンを化学発光基質(Merck-Millipore: WBKLS0500)と室温で5分間保温したのち、ケミルミイメージングシステム(Vilber-Lourmat:Fusion SL)で行なった。ウエスタンブロットの結果から、各ヒトRNAiタンパク質は、バーコード配列に導入した遺伝子から細胞内で十分に検出できる量発現することが確認された(図１２)。
　ヒトRNAi機構が、in yeast実験系で機能しているかは、ヒトRNAi遺伝子、GFPレポーター遺伝子とGFPヘアピンRNAを発現する二倍体菌株から全RNAを抽出し、ヘアピンRNA由来のsiRNAの生成とレポーター遺伝子転写産物の解析をノーザン法により行なった。また、レポーター遺伝子転写産物量は、逆転写定量PCR (RT-qPCR)によって行い、ヒトRNAi機構による遺伝子発現抑制について解析した。
　全RNAは、YPGal [2%トリプトン(BD Bacto peptone:211677)、1%酵母エキス(BD Bacto Yeast Extract:212750) 2% D-ガラクトース (Wako: 075-00035)]で対数増殖期まで培養した約5x108個の細胞を冷却した滅菌水で洗浄後、400 μLのTES液[10 mM Tris-Cl pH7.5 (Tris Sigma-Aldrich: T1503/ 塩酸 Wako: 080-01066)、10 mM EDTA-Na pH8.0 (EDTA2Na DOJINDO: 345-01865/ NaOH Wako: 198-13765)、0.5% ドデシル硫酸ナトリウム(Wako: 196-08675)]と400 μLの酸性フェノールpH4.0 (フェノール Wako: 160-12725/グリシン Wako: 077-00735/ 塩酸 Wako: 080-01066)に懸濁し、ヒートミキサ(Eppendorf ThermoMixer C Eppendorf: 5382000023/ Eppendorf SmartBlock Eppendorf: 5362000035)を用いて65°C 30分間保温・攪拌し抽出した。抽出した400 μlのRNA溶液は、20,000 g 4°C 10分間の遠心の後、水層画分として回収後、酸性フェノール/クロロホルム(1:1 pH4.0)[酸性フェノールpH4.0/ クロロホルム(Wako: 308-026069)]抽出で精製し、50 μlの3 M酢酸ナトリウムpH5.2、1 μl アルコール沈殿用共沈剤(Ethachinmate ニッポンジーン: 312-01791)と1 mLのエタノール(Wako: 057-00456)を加え-20°Cで一晩保管しエタノール沈殿を行った。
　全RNAは、20,000 g 4°C 40分間の遠心の後、80%エタノール(Wako: 057-00456)で洗浄・乾燥して、滅菌水に溶解したものをノーザン解析用サンプルとした。siRNAを検出するノーザン解析では、5 μgの全RNA(3 μl溶液)を3 μlのホルムアミド(Wako: 066-02301)と混合し、65°C 10分間熱変性したものを変性アクリルアミドゲル[0.5xTBE、8M 尿素(Wako: 219-00175)、12%アクリルアミド(BIO-RAD: 1610144)、0.1%過硫酸アンモニウム(Wako: 018-03282)、0.1%テトラメチレンジアミン(Wako: 202-04003)]で電気泳動分離した。
　電気泳動は、スラブ型電気泳動装置(バイオクラフト: BE-140G)を用いて、0.5xTBEで定電流7 mA 2時間 室温で行った。分離したRNAは0.5xTBEとセミドライ型転写装置(トランスブロットSDセル BIO-RAD: 1703940JA)、極厚濾紙(BIO-RAD: 1703968)を用いた4°C 定電流400 mA 2時間の電気泳動で、ナイロンメンブレン(Hybond-N+ GEヘルスケア: RPN303B)に転写した(siRNAブロット)。siRNAブロットは、UVクロスリンカー(Stratagene: StrataLinker 1800)を用い120,000 μJ/cm2で架橋後、5xSSC [75 mMクエン酸ナトリウム(Wako: 191-01785)、0.75 M塩化ナトリウム(Wako:191-01665)]で洗浄後乾燥させ保存した。
　siRNAのノーザン解析は、siRNAブロットを滅菌水で湿らせた後、10 mlのRapid-Hybバッファー(GEヘルスケア: RPN1635) 42°C 2時間のプレハイブリダイゼーション、32Pで末端標識した5 pmolのオリゴDNAプローブを加えた一晩25°Cのハイブリダイゼーション、洗浄バッファー1(5xSSC、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム)室温10分間の洗浄2回、洗浄バッファー2(2xSSC、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム)室温10分間の洗浄1回、洗浄バッファー2(2xSSC、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム)42°C 10分間の洗浄1回を行い、siRNAブロットをイメージングプレートに感光させFLA7000(GEヘルスケア)を用いてsiRNAシグナルを検出した。オリゴDNAプローブの標識は、siGFP01~13を等量混合した溶液から調製したDNAオリゴ5 pmol (16.5 μL)を3 μLのT4ポリヌクレオチドキナーゼ(Takara: 2021S)、3 μLの10xPNKバッファー(Takara)、7.5 μL γ-32P-ATP (6000Ci/mmol PerkinElmer: NEG502Z)と混合した後、37°C 30分間保温、7.5 μLの50 mM EDTA pH8.0を加えた熱変性(95°C 5分間)を行い、マイクロスピンカラムG-25 (GEヘルスケア: 27532501)で精製した。
　siRNAのノーザン解析では、GFP配列に対応するsiRNAがHsDicerとGFPヘアピンRNAを発現する細胞のサンプルで検出され、siRNAの量はHsDicerに加えてHsTRBPとHsAgo2を共発現する細胞で増加することが示された(図１３)。このことは、試験管内で示されているHsTRBPやHsAgo2がHsDicerの働きを助ける機能が(Nature 2005, 436, 740-)、in yeast実験でも再現された事を示唆している。
　GFPレポーター遺伝子転写産物とヘアピンRNAの検出は、一般的なノーザン解析によって行った。DNAプローブは、100 ngのgfp2断片、5 μlのα-32P-dCTP (3000Ci/mmol PerkinElmer: NEG513H)とランダムプライマーラベリングキット(Takara: 6045)用いて標識し、マイクロスピンカラムG-50 (GEヘルスケア: 28903408)で精製して調製した。
　ノーザンブロットは、5 μgの全RNA(3 μl溶液)を4 μlのホルムアミド、2 μLのホルムアルデヒド溶液(Wako: 061-00416)、10xMOPSバッファー[0.2 M MOPS-NaOH pH7 (MOPS DOJINDO: 345-01804/ 水酸化ナトリウム Wako: 198-13765)、2 mM 酢酸ナトリウム、10 mM EDTA] 1 μL、400 μg/mLの臭化エチジウム(Wako: 315-90051) 1 μLと混合し65°C 10分間熱変性したものを、サブマリン電気泳動装置(バイオクラフト: BE-527)を用いて変性アガロースゲル(1.2% Star Agarose 、1xMOPS、6%ホルムアルデヒド)と1xMOPS変性バッファー(1xMOPS、6%ホルムアルデヒド)で定電圧100 V 1時間と定電圧150 V 45分間の電気泳動を行い分離した。
　分離したRNAは、ゲルを滅菌水で30分間洗浄した後、10xSSCを用いた一晩のキャピラリートランスファーによりナイロンメンブレン(Hybond-N+ GEヘルスケア: RPN303B)に転写した(RNAブロット)。RNAブロットは、UVクロスリンカー(Stratagene: StrataLinker 2400)を用い120,000 μJ/cm2で架橋後、5xSSCで洗浄後乾燥させ保存した。
　ノーザン解析は、RNAブロットを10 mlのRapid-Hybバッファー(GEヘルスケア: RPN1635) 65°C 2時間のプレハイブリダイゼーションした後、32Pで標識したgfp2断片プローブを加えた2時間65°Cのハイブリダイゼーション、洗浄バッファー2(2xSSC、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム) 65°C 30分間の洗浄1回、洗浄バッファー3(0.1xSSC、0.1% ドデシル硫酸ナトリウム) 65°C 30分間の洗浄2回を行い、RNAブロットをイメージングプレートに感光させFLA7000(GEヘルスケア)を用いてGFPレポーター遺伝子RNAとGFPヘアピンRNAのシグナルを検出した。GFPヘアピンRNA由来のsiRNAが検出されたHsDicer発現細胞においても、HsDicerを発現しない細胞と同程度の量のGFPヘアピンRNAがされ、HsDicerによるGFPヘアピンの分解は、GFPヘアピンRNAの合成に比べて効率が高くないことが示唆された(図１４)。
　また、GFPレポーター遺伝子のRNAが、GFPヘアピンRNA、HsDicer、HsAgo2とHsTRBPの四者を発現する細胞において僅かながら減少していることから、ヒトRNAi機構がヘアピンRNAの発現によって機能し、遺伝子発現抑制を行う可能性が示唆された。
　GFPレポーター遺伝子のRNAは、RT-qPCRを用いてより定量的に解析した。RT-qPCRは、定量PCRシステム(Illumina: Eco Real Time PCR System)とRT-qPCRキット(KAPA SYBR FAST One-Step qRT-PCR Kit KAPA Biosystem: KK4650)を用いて行った。RT-qPCRは、qPCR Master Mix (1x)、各オリゴDNAプライマー0.2 μM、 KAPA RTMix (1x)、ROX low Dye (1x)、0.8 ng/μl全RNAの混合液12.5 μlを反応液とした。内部標準としたACT1遺伝子RNAは、20 ngの全RNA、オリゴDNAプライマーセットOLI1126とOLI1127を用いて、42°C 10分、95°C 3分[95°C 5秒、50°C 20秒、72°C 30秒]x 40サイクルのRT-qPCRで解析した。
　GFPレポーター遺伝子RNAは、20 ngの全RNA、オリゴDNAプライマーセットpPCRsplitGFPFwとpPCRsplitGFPRvを用いて、42°C 10分、95°C 3分[95°C 5秒、52°C 20秒、72°C 30秒]x 40サイクルのRT-qPCRで解析した。各反応は、ROX low Dyeで補正したのちサイクル値(Ct値)を求め、ACT1遺伝子RNAのCt値とGFPレポーター遺伝子RNAのCt値を用いて比較Ct法によって、GFPレポーター遺伝子の発現を定量解析した。ノーザン解析と同様にRT-qPCR解析においても、GFPヘアピンRNA、HsDicer、HsAgo2とHsTRBPの四者を発現する細胞で僅かながらGFPレポーター遺伝子のRNAが減少しており、ヒトRNAi機構がin yeast実験系で機能する事を確認した。
５．人工染色体の安定化
　上記２．の方法に従い、バーコードの数を更に増やした人工染色体ベクターを作成したところ、BACの数が１０個を過ぎたあたりでリボソームRNA遺伝子が不安定化し、コピーの脱落が生じ得ることが明らかとなった。宿主の４番染色体にあるTRP1遺伝子の上流にSIR2遺伝子を導入した結果、バーコードの挿入確率が増大するとともに、リボソームRNA遺伝子が安定化し、コピーの脱落も減少した。SIR2遺伝子を導入するプロトコール以下に示す。
　出芽酵母BY4741株の染色体DNAを鋳型として、プライマーMN2509 (Table 1)とMN2510およびMN2511とMN2512を用いて、PCR法により出芽酵母４番染色体の動原体とTRP1遺伝子の間の領域をそれぞれ増幅する。図１５に示すように、それぞれの領域を5'-UP_5' (約250塩基対)と5'-UP_3'（約410塩基対）と呼ぶ。
　5'-UP_5'断片を制限酵素SalIとEcoRIで切断したのち、前もって同じ制限酵素で切断しておいたプラスミドpTA2に挿入した。得られた組換えプラスミドを制限酵素PstIとBamHIで切断した。5'-UP_3' 断片をやはりPstIとBamHIで切断して、このプラスミドに挿入した。
　得られた組換えプラスミドpTA-5'-UP_5'+3'（図１５）を制限酵素EcoRIとPstIで切断した。出芽酵母BY4741株の染色体DNAを鋳型として、プライマーMN2515とMN2503を用いてPCR法によりプロモーターとターミネーター領域を含むSIR2遺伝子（約2600塩基対）を増幅した。
　Candida glabrata由来のHIS3遺伝子(CgHIS3)を含むプラスミドp3009(NBRP::Yeast ID BYP3009)を鋳型として、プライマーMN2517とMN2518を用いてPCR法によりCgHIS3遺伝子を増幅した。プライマーの設計を変えることによりCgHIS3以外の任意のマーカー遺伝子を使用することができる。
　EcoRIとPstIで切断したプラスミドpTA-5'-UP_5'+3'、上記のSIR2遺伝子およびCgHIS3遺伝子を混合し（約1:2:2のモル比）、等量のNEBuilder試薬(New England Biolab社)を加え、50oCで１時間保持することにより、３種のDNA断片を結合させる。大腸菌DH5?株を形質転換して、目的とする組換えプラスミドを得た（図１５）。
　使用したプライマー配列を以下の表に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
 　太字はそれぞれの断片の結合に必要な重複配列を示す。
　得られたプラスミドを制限酵素SalIとNotIで切断し、DNA精製キット (MACHEREY-NAGEL社　タカラバイオ)で精製後、バーコードをすでに１０個もつ酵母株MFY2010SAH (MATα his3Δ1 ura3delta0 leu2Δ0 met15Δ0 lys2Δ0 fob1Δ0 RDN1-15 BC1-10-URA3)を形質転換した。
　目的部位への挿入は、酵母形質転換株より染色体DNAを抽出し、プライマーMN2509とMN2512を用いてPCR反応を行い、組換え体から期待される約4800塩基対のDNA断片が得られることを確認した。
　上記の方法でSIR2遺伝子を出芽酵母の４番染色体に導入することにより、合計１５個のバーコード（BAC1～BAC15）を含む、安定性の高い人工染色体ベクターが得られた（図１６）。

Claims (34)

  1. 　真核生物の染色体に由来する人工染色体ベクターであって、複数のリボソームＲＮＡ遺伝子（ｒＤＮＡ）の反復単位と、各反復単位間に存在する遺伝子間領域とを含み、遺伝子間領域における遺伝子間領域１（ＩＧＳ１）が、目的遺伝子を組み込み、且つ識別するためのバーコード配列を含む、人工染色体ベクター。
  2. 　遺伝子間領域が、ｒＤＮＡ遺伝子の５'側から順に、自己複製配列（ＡＲＳ）、コヒーシン結合部位、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列、非コードプロモーター（Ｅ－ｐｒｏ）配列及び複製阻害（ＲＦＢ）配列を含む、請求項１に記載の人工染色体ベクター。
  3. 　遺伝子間領域がコンデンシン結合部位を更に含む、請求項２に記載の人工染色体ベクター。
  4. 　各バーコード配列が、５Ｓ　ｒＤＮＡ配列とＥ－ｐｒｏ配列との間に位置する制限酵素部位に挿入されている、請求項１～３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  5. 　テロメア配列及びセントロメア配列を更に含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  6. 　各バーコード配列が、目的遺伝子の発現を制御するためのプロモーター配列及びターミネーター配列を含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  7. 　各目的遺伝子の３'側にターミネーター配列が、５'側にプロモーター配列が配置される、請求項６に記載の人工染色体ベクター。
  8. 　反復単位数が２～１５０である、請求項１～７のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  9. 　真核生物がヒト又は酵母である、請求項１～８のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  10. 　酵母が出芽酵母であり、ｒＤＮＡの反復単位が出芽酵母の第１２染色体に由来する、請求項９に記載の人工染色体ベクター。
  11. 　前記プロモーターがガラクトース誘導（ＧＡＬ）プロモーターである、請求項６～１０のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  12. 　挿入される目的遺伝子が、前記人工染色体ベクターを導入する宿主と同種又は異種である、請求項１～１１のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  13. 　バーコード配列に挿入される前記目的遺伝子がそれぞれ同一であるか又は互いに異なる、請求項１～１２のいずれか一項に記載の人工染色体ベクター。
  14. 　請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターを含む、真核細胞。
  15. 　請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターを製造する方法であって、ＩＧＳ１内にバーコード配列を挿入する工程を含む、方法。
  16. 　バーコード配列を挿入する工程が、
    １）ｒＤＮＡと非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより第１のバーコード配列及び選択マーカー配列を第１のＩＧＳ１内に挿入する工程；及び
    ２）１）で挿入した第１のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第２のバーコード配列及び１）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第２のＩＧＳ１内に挿入する工程、
    を含む、請求項１５に記載の方法。
  17. 　３）２）の工程で挿入した第２のバーコード配列と非ｒＤＮＡ遺伝子領域の相同組換えにより、第３のバーコード配列及び２）の選択マーカー配列と異なる選択マーカー配列を第３のＩＧＳ１内に挿入する工程を含み、任意に、３）と同様の工程を繰り返すことにより、第４以降のバーコード配列が第４以降のＩＧＳ１内に挿入される、請求項１６に記載の方法。
  18. 　相同組換えが各バーコード配列及び選択マーカー配列を含む相同組換えベクターを用いて行われる、請求項１７に記載の方法。
  19. 　選択マーカー配列がウラシル合成遺伝子又はリジン合成遺伝子である、請求項１８に記載の方法。
  20. 　複数の同一の又は異なる目的遺伝子又は当該目的遺伝子の発現産物を製造する方法であって、
    １）請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターのバーコード配列内に目的遺伝子を挿入する工程；及び
    ２）１）で得られた人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程を含む、方法。
  21. 　宿主内で同一の目的遺伝子が増幅される、請求項２０に記載の方法。
  22. 　目的遺伝子が宿主にとって異種である、請求項２０又は２１に記載の方法。
  23. 　宿主がｒＤＮＡ不安定株である、請求項２０～２２のいずれか一項に記載の方法。
  24. 　ｒＤＮＡ不安定株においてＣＴＦ４遺伝子又はＲＴＴ１０９遺伝子が欠損している、請求項２３に記載の方法。
  25. 　２）の工程において、宿主が製造するＦｏｂ１タンパク質の発現又は抑制を行うことにより、前記目的遺伝子又は発現産物の発現量を制御する工程を含む、請求項２０～２４のいずれか一項に記載の方法。
  26. 　宿主細胞内において、異種の細胞に由来する複数の異なる目的遺伝子又は当該目的遺伝子の発現産物の挙動を解析する方法であって、
    １）請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターであって、バーコード配列内に目的遺伝子が挿入されている人工染色体ベクターを宿主内で維持し、培養する工程；及び
    ２）前記目的遺伝子又はその発現産物の機能、あるいはそれらの宿主内における挙動を解析する工程、
    を含む、方法。
  27. 　２）の工程において、発現産物の発現レベルが測定される、請求項２６に記載の方法。
  28. 　発現レベルの測定が、目的遺伝子の転写産物の量又は翻訳産物の量の測定を含む、請求項２７に記載の方法。
  29. 　２）の工程が目的遺伝子又はその発現産物を活性化又は阻害する物質の存在下又は不在化で実施される、請求項２６～２８のいずれか一項に記載の方法。
  30. 　前記物質が宿主にとって同種又は異種である、請求項２９に記載の方法。
  31. 　２）の工程が、前記人工染色体ベクターが導入されていない宿主との比較を含む、請求項２６～３０のいずれか一項に記載の方法。
  32. 　目的遺伝子が薬剤耐性遺伝子であり、人工染色体ベクターのｒＤＮＡがヒト由来であり、宿主が酵母である、請求項２６～３１のいずれか一項に記載の方法。
  33. 　リポソームと、請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターとを含む、人工細胞。
  34. 　人工細胞を製造する方法であって、リポソーム内に請求項１～１３のいずれか一項に記載の人工染色体ベクターを導入する工程を含む、方法。
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