WO2021141072A1 - セグメント型アミダイトを用いた核酸合成法 - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a method for synthesizing an oligonucleotide using segmented amidite.
- oligonucleotides with the desired sequence are typically synthesized by sequentially adding appropriately protected nucleosides one at a time. However, the reaction does not occur with a 100% probability, and the added nucleoside may be decomposed during the synthetic reaction, so that the length is 1 or more (n) shorter than the desired length (N). Oligonucleotide (Nn) mer with the same value can inevitably occur.
- the oligonucleotide is purified by chromatography or the like, but is an oligonucleotide having a desired length (N) mer and one nucleotide shorter than the desired length (N) (N-1). Since the mer has a close chromatographic mobility, the presence of the (N-1) mer has a great influence on the purification efficiency of the oligonucleotide and the purity of the refined product.
- Patent Documents 1 and 2 and Non-Patent Document 1 describe nucleoside phosphoramidite (segments) having two or three nucleoside moieties in synthesis as a method for suppressing the production of oligonucleotides of (N-1) mer.
- Patent Document 3 describes a derivative of saccharin as an activator that can be used more safely than 1H-tetrazole in the synthesis of oligonucleotides. However, in Patent Document 3, the performance of a saccharin derivative as an activator has not been sufficiently studied.
- Patent Document 4 describes an activator containing at least one pyridinium salt and at least one substituted imidazolium, an imidazolium salt, and a benzoimidazolium salt as activators in place of 1H-tetrazole. However, Patent Document 4 does not describe the use of a salt with saccharin as an activator.
- An object of the present invention is to provide a method for synthesizing an oligonucleotide using segmented amidite.
- the present inventors have found a useful activator in the method while working diligently on a method for synthesizing an oligonucleotide using segmented amidite. Then, as a result of further research based on such findings, the present invention was completed.
- the present invention relates to the following.
- a method for producing an oligonucleotide In the presence of the activator, the coupling step of binding the nucleoside phosphoramidite to the 3'or 5'hydroxyl or thiol group of the nucleotide or nucleoside is performed one or more times.
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety.
- the activator has the following formula: During the ceremony X is an organic base, Or the following formula: During the ceremony R 1 and R 2 are each independently, H, are selected from linear or C 1 ⁇ 7 branched alkyl group, and the group consisting of an aromatic group which may be optionally substituted, The method having a structure represented by.
- X is N-methylimidazole, pyridine or 3-methylpyridine.
- R 1 is an H, C n H 2n + 1 or benzyl group.
- R 2 is H, CH 3 , or C 6 H 5 and n is 1, 2 or 3, The method according to [1].
- the activator is 5-mercapto-1-methyltetrazole (1-Me-MCT), 5-mercapto-1-phenyltetrazole (1-Ph-MCT), saccharin 1-methylimidazole (SMI), or 5 -The method according to [1] or [2], which is ethylthio-1H-tetrazole (ETT).
- ETT ethylthio-1H-tetrazole
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety, [1]-[3].
- the method described in any one of. [5] In at least the last one of the coupling steps performed two or more times.
- Nucleoside phosphoramidite is a nucleoside phosphoramidite having three nucleoside moieties, The method according to any one of [1] to [4]. [6] In at least one of the coupling steps performed two or more times.
- Nucleoside phosphoramidite is a nucleoside phosphoramidite having one nucleoside moiety, The method according to any one of [1] to [5]. [7] In the last one of the coupling steps performed two or more times, The nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having three nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety. In the other coupling process Nucleoside phosphoramidite is a nucleoside phosphoramidite having one nucleoside moiety, The method according to any one of [1] to [6].
- a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties is represented by the following formula (I).
- X 1 is -O- or -S-, respectively;
- X 2 is -O- or -S-, respectively;
- X 3 are each independently -O-, -S-, -CH 2- or-(CH 2 ) 2- ;
- R 1 is a protecting group;
- R 2 is each independently a hydroxyl group protected with -H, -NHR 6 , halogen, -CN, -CF 3 , or an acyl protecting group, an ether protecting group or a silyl protecting group;
- R 3 are independently -OCH 2 CH 2 CN, -SCH 2 CH 2 CN, substituted or unsubstituted aliphatic groups, -OR 7 or -SR 7 ;
- R 4 and R 5 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted or unsubstituted
- R 7 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted or unsubstituted aromatic groups, or substituted or unsubstituted alalkyl groups;
- B 1 , B 2 and B 3 are independently -H, or protected or unprotected bases; and
- n is 0 or a positive integer; The method according to any one of [1] to [7], which is a nucleoside phosphoramidite represented by (1) or a stereoisomer thereof.
- a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety is represented by the following formula (II).
- X 1 is -O- or -S-, respectively;
- X 2 is -O- or -S-, respectively;
- X 3 are each independently -O-, -S-, -CH 2- or-(CH 2 ) 2- ;
- L is a linker;
- R 2 is each independently a hydroxyl group protected with -H, -NHR 6 , halogen, -CN, -CF 3 , or an acyl protecting group, an ether protecting group or a silyl protecting group;
- R 3 are independently -OCH 2 CH 2 CN, -SCH 2 CH 2 CN, substituted or unsubstituted aliphatic groups, -OR 7 or -SR 7 ;
- R 4 and R 5 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted
- R 7 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted or unsubstituted aromatic groups, or substituted or unsubstituted alalkyl groups;
- B 1 and B 2 are independently -H, or protected or unprotected bases; and
- n is 0 or a positive integer;
- a method for producing an oligonucleotide In the presence of the activator, the coupling step of binding the nucleoside phosphoramidite to the 3'or 5'hydroxyl or thiol group of the nucleotide or nucleoside is performed one or more times.
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or three nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- the activator has the following formula:
- X is an organic base, Or the following formula:
- R 1 and R 2 are each, independently, H, are selected from linear or C 1 ⁇ 7 branched alkyl group, and the group consisting of an aromatic group which may be optionally substituted, in expressed The method according to the above method.
- X is N-methylimidazole, pyridine or 3-methylpyridine.
- R 1 is an H, C n H 2n + 1 or benzyl group.
- R 2 is H, CH 3 , or C 6 H 5 and n is 1, 2 or 3, The method according to [13].
- [15] A method for producing an oligonucleotide. In the presence of the activator, the coupling step of binding the nucleoside phosphoramidite to the 3'or 5'hydroxyl or thiol group of the nucleotide or nucleoside is performed one or more times.
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety.
- the HOMO energy (au) of the activator is -0.21407 to -0.16858 in acetonitrile and The orbital coefficient of the activator is 0.31531 to 0.59405 in acetonitrile.
- the method. [16] The method according to [15], wherein the pKa of the activator is 3.65 to 7 in water.
- nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or three nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- the HOMO energy (au) of the activator is -0.22024 to -0.16858 in acetonitrile and The orbital coefficient of the activator is 0.31531 to 0.59405 in acetonitrile.
- the method. [18] The method according to [17], wherein the activator pKa is 3.65-7 in water. [19] A method for producing an oligonucleotide. In the presence of the activator, the coupling step of binding the nucleoside phosphoramidite to the 3'or 5'hydroxyl or thiol group of the nucleotide or nucleoside is performed one or more times.
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or three nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- Amidite, The activator pKa is 3.65-7 in water.
- the method. [20] A method for producing an oligonucleotide. In the presence of the activator, the coupling step of binding the nucleoside phosphoramidite to the 3'or 5'hydroxyl or thiol group of the nucleotide or nucleoside is performed one or more times.
- the nucleoside phosphoramidite is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety.
- the activator pKa is 4.3-7 in water. The method.
- nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties that is, a segmented amidite, or a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety.
- Oligonucleotides can be synthesized with.
- nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, that is, a segmented amidite in the final one of the coupling steps, the desired oligonucleotide and the chromatographic mobility are close to each other, and by purification.
- the formation of (N-1) mer which is difficult to remove, can be suppressed.
- the use of the activator of the present invention as the activator also contributes to the suppression of decomposition of segmented amidite in the synthetic process.
- the present invention in one aspect, is a method of producing an oligonucleotide, which, in the presence of an activator, couples a nucleoside phosphoramidite to a nucleotide or nucleoside having an unsubstituted hydroxyl group or an unsubstituted thiol group.
- the present invention relates to the above method, which comprises performing the step one or more times.
- the production of an oligonucleotide is a so-called phosphorotide in which nucleotides are added by a condensation reaction between a nucleoside phosphoramidite and a nucleoside in the presence of a suitable activator in a solution or on a solid support. It is performed using the amidite method.
- the oligonucleotide refers to a compound having a structure in which a base, a sugar, and a phosphoric acid are linked by a phosphodiester bond, and a naturally occurring oligonucleotide such as 2'-deoxyribonucleic acid (hereinafter, "DNA”) and Includes ribonucleic acid (“RNA”) and nucleic acids containing modified sugar moieties, modified phosphate moieties, or modified nucleobases. Modifications to the sugar moiety include replacing the ribose ring with a hexose, cyclopentyl, or cyclohexyl ring.
- the D-ribose ring of a naturally occurring nucleic acid may be replaced with an L-ribose ring, or the ⁇ -anomer of a naturally occurring nucleic acid may be replaced with an ⁇ -anomer.
- Oligonucleotides may also contain one or more non-basic moieties. Modified phosphate moieties include phosphorothioate, phosphorodithioate, methylphosphonate, and methyl phosphate. Such nucleic acid analogs are known to those of skill in the art.
- Oligonucleotides comprising the above two or more mixtures include, for example, mixtures of deoxyribo and ribonucleosides, particularly 2'-O such as deoxyribonucleoside and 2'-O-methyl or 2'-O-methoxyethylribonucleoside.
- Examples of oligonucleotides comprising a mixture of nucleosides include ribozymes.
- nucleoside phosphoramidite refers to a nucleoside derivatized with amidite.
- Amiditeization can be carried out, for example, by using 1H-tetrazole as an activator and reacting a properly protected nucleoside with 2-cyanoethyl-N, N, N', N'-tetraisopropylphosphorodiamidite. it can.
- the nucleoside refers to a compound in which a base and a sugar are bound, and may be a naturally occurring nucleoside such as adenosine, thymidine, guanosine, cytidine, or uridine, or a modified nucleoside.
- the base may be a naturally occurring base such as adenine, guanine, cytosine, thymine, and uracil, or a modified base.
- the sugar moiety of the nucleoside may be naturally occurring deoxyribose or ribose, and may be in the D or L configuration.
- the activator is used for reacting a nucleoside phosphoramidite with a nucleotide or a nucleoside, and is also referred to as an activator or a coupling agent.
- the activator is defined by the following formula:
- X is an organic base that forms a salt complex with saccharin, preferably N-methylimidazole, pyridine or 3-methylpyridine.
- R 1 and R 2 are each independently, H, are selected from linear or C 1 ⁇ 7 branched alkyl group, and the group consisting of an aromatic group which may be optionally substituted, It has a structure represented by.
- R 1 and R 2 are independently H, methyl group, ethyl group, propyl group, butyl group, pentyl group, hexyl group, phenyl group and benzyl group, and more preferably R 1 is. , H, C n H 2n + 1 or a benzyl group, R 2 is H, CH 3 , or C 6 H 5 , and n is 1, 2 or 3.
- the activator is, for example, 5-mercapto-1-methyltetrazole (1-Me-MCT): 5-Mercapto-1-phenyltetrazole (1-Ph-MCT): 5-Benzylthiotetrazole (BTT): Saccharin 1-methylimidazole (SMI): 5-Ethylthio-1H-Tetrazole (ETT) 4,5-Dicyanoimidazole (DCI): Or benzimidazole trifluoromethanesulfonate (BIT): It is preferably 1-Me-MCT, 1-Ph-MCT, SMI, ETT, or BTT, and more preferably 1-Me-MCT, 1-Ph-MCT, or SMI.
- the HOMO energy (au) of the activator of the invention is -0.22024 to -0.16858 in acetonitrile.
- the HOMO energy (au) of the activator of the present invention is -0.21995 to -0.16858, -0.21407 to -0.16858, -0.19928 to -0.16858 in acetonitrile. , -0.18904 to -0.16858, or -0.18741 to -0.16885, preferably -0.21407 to -0.16858 (a.u.), and more preferably-. It is 0.18904 to ⁇ 0.16858 (au).
- the orbital coefficients of the activators of the invention are 0.31531 to 0.59405 in acetonitrile.
- the orbital coefficients of the activators of the present invention are 0.31531 to 0.59405, 0.39931 to 0.59405, 0.51802 to 0.59405, or 0.53787 to 0.59405 in acetonitrile.
- it is 0.39931 to 0.59405.
- the HOMO energy (au) of the activator is -0.22024 to -0.16858 in acetonitrile, and the orbital coefficient of the activator is 0. It is 31531 to 0.59405.
- the HOMO energy (a.u.) of the activator is -0.21407 to -0.16858 in acetonitrile, and the orbital coefficient of the activator is 0. It is 31531 to 0.59405.
- the HOMO energy and orbital coefficient can be obtained by a quantum chemistry calculation program. For example, in the quantum chemistry calculation program Gaussian16 manufactured by Gaussian, an optimization calculation using the Becke-type 3-parameter density functional theory (B3LYP) is performed. Can be sought.
- the pKa of the activator of the invention in water at 25 ° C. is 3.65 to 7.0, eg, 3.86 to 7.0, 4.1 to 7.0, 4. It is 3 to 7.0, 4.5 to 7.0, 5.0 to 7.0, 5.5 to 7.0, 6.0 to 7.0, or 6.5 to 7.0.
- the nucleoside phosphoramidite in at least one coupling step in the method of producing said oligonucleotides, is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties, or (b). ) A nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- the nucleoside phosphoramidite in at least one coupling step in the method of producing said oligonucleotides, is (a) a nucleoside phosphoramidite having two or three nucleoside moieties, or (B) A nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- a nucleoside phosphoramidite having two or three nucleoside moieties reacts because it has a smaller molecular size, is more motivated and has a faster reaction rate than a nucleoside phosphoramidite having four or more nucleoside moieties. It is presumed that the rate will increase.
- the nucleoside phosphoramidite in at least the last one of the two or more coupling steps in the method of producing the oligonucleotide, is (a) a nucleoside having two or more nucleoside moieties. Phosphoramidite, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties.
- the nucleoside phosphoramidite in at least the last one of the two or more coupling steps in the method of producing said oligonucleotides, is a nucleoside phosphoramidite having three nucleoside moieties. is there.
- the nucleoside phosphoramidite is a nucleoside phosphoramidite having one nucleoside moiety in at least one of the coupling steps performed two or more times in the method for producing the oligonucleotide.
- the nucleoside phosphoramidite in only the last one of the two or more coupling steps in the method of producing the oligonucleotide, is (a) a nucleoside phosphorami having three nucleoside moieties. Loamidite, or (b) a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties, and in the other coupling steps, the nucleoside phosphoramidite is a nucleoside phosphorami having one nucleoside moiety. Amidite.
- nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties can be prepared, for example, as described in WO 2019/212061.
- the nucleoside phosphoramidite having two or more nucleoside moieties is represented by the following formula (I). Nucleoside phosphoramidite represented by or a stereoisomer thereof.
- X 1 is -O- or -S-, respectively.
- X 2 is -O- or -S-, respectively.
- X 3 is independently of -O-, -S-, -CH 2- or-(CH 2 ) 2- .
- R 1 is a protecting group, preferably an acid-labile protecting group, or a trialkylsilyl group such as t-butyldimethylsilyl or triisopropylsilyl.
- Acid-labile protecting groups are protecting groups that can be removed by contacting the group with a protonic acid or Lewis acid. Acid-labile protecting groups are known to those of skill in the art. Examples of acid-unstable protecting groups include substituted or unsubstituted trityl groups, substituted or unsubstituted tetrahydropyranyl groups, substituted or unsubstituted tetrahydrofuranyl groups, pixyl groups and the like.
- R 1 is a substituted or unsubstituted trityl, 9-phenylxanthenyl (hereinafter “Pixil”) or tetrahydropyranyl (hereinafter "THP").
- R 1 is an unsubstituted trityl, monoalkoxytrityl, dialkoxytrityl, trialkoxytrityl, THP or pixil. Most preferably, R 1 is 4,4'-dimethoxytrityl.
- R 2 is independently any of H, NHR 6 , halogen, CN, CF 3 , or hydroxyl group protected with an acyl protecting group, an ether protecting group or a silyl protecting group. It is one.
- Halogen is, for example, F, Cl, Br, and I.
- the acyl-based protecting group include acetyl, benzoyl, pivaloyl and the like.
- the ether-based protecting group include benzyl, p-methoxybenzyl (PMB), allyl and the like.
- silyl protecting group examples include t-butyldimethylsilyl (TBS), t-butyldiphenylsilyl (TBDPS), t-triisopropylsilyl (TIPS), triethylsilyl (TES), trimethylsilyl (TMS) and the like. ..
- TBS t-butyldimethylsilyl
- TDPS t-butyldiphenylsilyl
- TIPS t-triisopropylsilyl
- TES triethylsilyl
- TMS trimethylsilyl
- R 3 is independently each of -OCH 2 CH 2 CN, -SCH 2 CH 2 CN, substituted or unsubstituted aliphatic group, -OR 7 or -SR 7 .
- it is ⁇ OCH 2 CH 2 CN.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, 4-cyanobut-2-enylthio, 4-cyanobut-2-enyloxy, allylthio, allyloxy, crotylthio or crotyloxy and the like.
- R 4 and R 5 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted or unsubstituted aromatic groups, substituted or unsubstituted alalkyl groups, respectively. Or R 4 and R 5 together with the nitrogen to which they are attached form a heterocycloalkyl group or a heteroaromatic group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, methyl, ethyl, isopropyl and the like, and isopropyl is preferable.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, phenyl, benzyl, naphthyl, 2-pyrenylmethyl, and are preferably phenyl and benzyl.
- Substituted or unsubstituted alalkyl groups include, but are not limited to, 2-fluorophenylmethoxypiperidine-4-yl and the like.
- the heterocycloalkyl group is not limited to these, and examples thereof include pyrrolidino and morpholino, and morpholino is preferable.
- each of R 6 is independently ⁇ H, a substituted or unsubstituted aliphatic group, a substituted or unsubstituted aromatic group, a substituted or unsubstituted alalkyl group.
- one of the protective groups including the acyl group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, methyl, ethyl, allyl, 1-pentenyl, 2-methoxyethyl, preferably methyl, allyl, 2-methoxyethyl. is there.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, phenyl, benzyl, naphthyl, 2-pyrenylmethyl, and are preferably phenyl and benzyl.
- Substituted or unsubstituted alalkyl groups include, but are not limited to, 2-fluorophenylmethoxypiperidine-4-yl and the like.
- Protecting groups are, for example, t-butyldimethylsilyl, trifluoroacetyl, tert-butoxycarbonyl, benzyloxycarbonyl, phthaloyl, p-toluenesulfonyl.
- R 7 is a substituted or unsubstituted aliphatic group, a substituted or unsubstituted aromatic group, or a substituted or unsubstituted alalkyl group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, THP, 4-methoxytetrahydropyranyl and the like.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, o-chlorophenyl, p-chlorophenyl, and the like.
- Substituted or unsubstituted alalkyl groups include, but are not limited to, 2-fluorophenylmethoxypiperidine-4-yl and the like.
- B 1 , B 2 and B 3 are H, or protected or unprotected bases, respectively.
- Protected or unprotected bases include, but are not limited to, naturally occurring bases such as adenin, guanine, cytosine, thymine, and uracil, as well as 7-deazaguanine, 7-deaza-8-azaguanine.
- n is 0 or a positive integer, preferably an integer of 0 or more and 4 or less, and more preferably 0 or 1.
- a nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside and linker moieties is located at the 5'position of the nucleoside via a phosphorus atom, eg, a phosphite ester, a phosphate ester, a thiophosphate. It is a nucleoside phosphoramidite in which a linker is bound via an ester and a dithiophosphate.
- the nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and linker moieties is not limited to these, but can be obtained from, for example, Glen Research, as shown below. It may be prepared from phosphoramidite having: PC Linker Phosphoramidite (3- (4,4'-dimethoxytrityl) -1- (2-nitrophenyl) -propane-1-yl-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phosphoroamidite )
- ⁇ -Tocopherol-TEG Phosphoramidite (1-dimethoxytrityloxy-3-O-[(9-DL- ⁇ -tocopherol) -triethylene glycol-1-yl] -glyceryl-2-O-[(2-cyanoethyl)- (N, N, -diisopropyl)]-Phosphoramidite)
- 5'-DBCO-TEG Phosphoramidite (10- (6-oxo-6- (dibenzo [b, f] azacycloocta-4-in-1-yl) -caproamide-N-ethyl) -O-triethylene glycol- 1-[(2-Cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-Phosphoramidite)
- DNP-TEG Phosphoramidite (1-dimethoxytrityloxy-3-O- [N- (2,4-dinitrophenyl) -3-N-aminopropyl- (triethylene glycol)]-glyceryl-2-O- (2-) Cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl) -phosphoromidite)
- Cholesteryl-TEG Phosphoramidite (1-dimethoxytrityloxy-3-O- (N-cholesteryl-3-aminopropyl) -triethylene glycol-glyceryl-2-O- (2-cyanoethyl)-(N, N, -diisopropyl) -Phosphoramidite)
- TEG CE-Phosphoramidite (10- (O-trifluoroacetamide-N-ethyl) -triethylene glycol-1-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phosphoroamidite )
- Spacer Phosphoramidite 18 (18-O-dimethoxytritylhexaethylene glycol, 1-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phosphoroamidite)
- Spacer Phosphoramidite 9 (9-O-dimethoxytrityl-triethylene glycol, 1-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phosphoroamidite)
- PC Amino-Modifier Phosphoramidite [(6-trifluoroacetylamide caproamide methyl) -1- (2-nitrophenyl) -ethyl] -2-cyanoethyl- (N, N-diisopropyl) -phosphoroamidite)
- Thiol-Modifier C6 SS (1-O-dimethoxytrityl-hexyl-disulfide, 1'-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phosphoroamidite)
- 5'-Carboxy-Modifier C10 (10-carboxy-decyl- (2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl) -phosphoromidite, N-hydroxysuccinimide ester)
- PC Biotin Phosphoramidite (1- [2-nitro-5-(6- (N- (4,4'-dimethoxytrityl))-biotinamide caproamide methyl) phenyl] -ethyl- [2-cyanoethyl- (N, N) -Diisopropyl)]-Phosphoramidite)
- Azobenzene Phosphoramidite (3-O- (dimethoxytrityl) -2-N- (4-carboxyazobenzene) -D-threonine-1-yl-O-[(2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl)]-phospho Loamidite)
- Psoralen C6 Phosphoramidite (6- [4'-(hydroxymethyl) -4,5', 8-trimethylsoleran] -hexyl-1-O- (2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl) -phosphoroamidite )
- Psoralen C2 Phosphoramidite (2- [4'-(hydroxymethyl) -4,5', 8-trimethylsoleran] -ethyl-1-O- (2-cyanoethyl)-(N, N-diisopropyl) -phosphoroamidite )
- CNVK 3-Cyanovinylcarbazole Phosphoramidite
- nucleoside phosphoramidite having one or more nucleoside moieties and a linker moiety is represented by the following formula (II). Nucleoside phosphoramidite represented by or a stereoisomer thereof.
- X 1 is -O- or -S-, respectively.
- X 2 is -O- or -S-, respectively.
- X 3 is independently of -O-, -S-, -CH 2- or-(CH 2 ) 2- .
- L is a linker. The linker is not limited to these, but for example,
- R 2 was independently protected with -H, -NHR 6 , halogen, -CN, -CF 3 , or an acyl-based protecting group, an ether-based protecting group, or a silyl-based protecting group. It is one of the hydroxyl groups.
- Halogen is, for example, F, Cl, Br, and I.
- Examples of the acyl-based protecting group include acetyl, benzoyl, pivaloyl and the like.
- the ether-based protecting group include benzyl, p-methoxybenzyl (PMB), allyl and the like.
- silyl protecting group examples include t-butyldimethylsilyl (TBS), t-butyldiphenylsilyl (TBDPS), t-triisopropylsilyl (TIPS), triethylsilyl (TES), trimethylsilyl (TMS) and the like. ..
- TBS t-butyldimethylsilyl
- TDPS t-butyldiphenylsilyl
- TIPS t-triisopropylsilyl
- TES triethylsilyl
- TMS trimethylsilyl
- R 3 are independently -OCH 2 CH 2 CN, -SCH 2 CH 2 CN, substituted or unsubstituted aliphatic groups, -OR 7 or -SR 7 .
- it is ⁇ OCH 2 CH 2 CN.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, 4-cyanobut-2-enylthio, 4-cyanobut-2-enyloxy, allylthio, allyloxy, crotylthio or crotyloxy and the like.
- R 4 and R 5 are independently substituted or unsubstituted aliphatic groups, substituted or unsubstituted aromatic groups, substituted or unsubstituted alalkyl groups, respectively. Or R 4 and R 5 together with the nitrogen to which they are attached form a heterocycloalkyl group or a heteroaromatic group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, methyl, ethyl, isopropyl and the like, and isopropyl is preferable.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, phenyl, benzyl, toluyl, aniryl and the like, with preference given to phenyl and benzyl.
- Heterocycloalkyl groups include, but are not limited to, pyrrolidino, morpholino, and the like.
- each of R 6 is independently ⁇ H, a substituted or unsubstituted aliphatic group, a substituted or unsubstituted aromatic group, a substituted or unsubstituted alalkyl group.
- one of the protective groups including the acyl group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, methyl, ethyl, allyl, 1-pentenyl, 2-methoxyethyl, preferably methyl, allyl, 2-methoxyethyl. is there.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, phenyl, benzyl, naphthyl, 2-pyrenylmethyl, and are preferably phenyl and benzyl.
- the protecting group is, for example, t-butyldimethylsilyl.
- R 7 is a substituted or unsubstituted aliphatic group, a substituted or unsubstituted aromatic group, or a substituted or unsubstituted alalkyl group.
- Substituted or unsubstituted aliphatic groups include, but are not limited to, THP, 4-methoxytetrahydropyranyl and the like.
- Substituted or unsubstituted aromatic groups include, but are not limited to, o-chlorophenyl, p-chlorophenyl, and the like.
- Substituted or unsubstituted alalkyl groups include, but are not limited to, 2-fluorophenylmethoxypiperidine-4-yl and the like.
- B 1 and B 2 are H, or protected or unprotected bases, respectively.
- Protected or unprotected bases include, but are not limited to, naturally occurring bases such as adenin, guanine, cytosine, thymine, and uracil, as well as 7-deazaguanine, 7-deaza-8-azaguanine.
- B 1 and B 2 are adenine.
- n is 0 or a positive integer, preferably an integer of 0 or more and 4 or less, and more preferably 0 or 1.
- Example 1 Comparison between sequential method and segment method (1) Synthesis of oligonucleotides dT NittoPhase (registered trademark) HL dT300 (manufactured by Nitto Denko KK) was packed in a reaction column in an amount corresponding to 1573 ⁇ mol, and a nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot was added. A 17mer (5'CCG ATT AAG CGA AGC TT 3') DNA oligonucleotide was synthesized using plus100 (Cytiva, formerly manufactured by GE Healthcare Japan).
- a solid phase carrier with 17mer DNA was packed in the reaction column in an amount corresponding to 205 ⁇ mol, and dC, dT, using 5-ethylthio-1H-tetrazole (ETT) as an activator with the nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot plus100.
- ETT 5-ethylthio-1H-tetrazole
- the dATC was made as described in International Publication No. 2019/212061.
- the solid-phase carrier to which the DNA oligonucleotide was bound was immersed in 28% aqueous ammonia, and the DNA oligonucleotide was cut out from the solid-phase carrier. A part of this solution was diluted with water to prepare a DNA oligonucleotide sample solution. The remaining solution was a crude solution.
- the contents of impurity I and impurity II were 2.9% and 2.8%, respectively, whereas when synthesized by the segment method 1, impurities I and impurities were contained.
- the content of II was 0.6% and 0.4%, respectively, and when synthesized by the segment method 2, it was 0.7% and 1.8%, respectively.
- the contents of impurity I and impurity II could be significantly reduced as compared with the case of synthesis by the successive method.
- Table 2 shows the analysis results of the purified DNA oligonucleotide sample solution.
- the purity of the target oligonucleotide was 90.46% in the successive method, 92.34% in the segment method 1, and 92.53% in the segment method 2, and the oligonucleotide was synthesized by the segment method. In some cases, the desired oligonucleotide could be obtained with higher purity than when synthesized by the successive method. Further, the FLP (total length product, purity ⁇ total OD) is 9302 in the successive method, 10702 in the segment method 1, and 10724 in the segment method 2, and when synthesized by the segment method, it is 10724. Compared with the case of synthesis by the successive method, the desired oligonucleotide could be obtained with a high yield.
- Example 2 Comparison of reaction rates (1) Synthesis of DNA oligonucleotide Nitto Phase (registered trademark) HL UnyLinker 350 (manufactured by Nitto Denko KK) was packed in a reaction column in an amount corresponding to 2935 ⁇ mol, and a nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot plus 100 was used. A 17mer (5'CCG ATT AAG CGA AGC TT 3') DNA oligonucleotide was synthesized.
- HL UnyLinker 350 manufactured by Nitto Denko KK
- Suitable synthetic reagents include 3% DCA in toluene as a deprotecting agent, pyridine in water and iodine as an oxidizing agent, pyridine in acetonitrile as a capping agent, N-methylimidazole, acetic anhydride or isobutyric anhydride, and an amine wash reaction solution. TBA in acetonitrile was used.
- the dGCC was made as described in International Publication No. 2019/212061.
- the solid-phase carrier to which the DNA oligonucleotide was bound was immersed in aqueous ammonia, and the DNA oligonucleotide was cut out from the solid-phase carrier.
- Activator42 has the following structure: Have.
- RNA oligonucleotide NittoPhase registered trademark
- HL rU250 manufactured by Kinovate Life Science
- 17mer synthesis was performed using a nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot plus100.
- RNA oligonucleotides of CCG AUU AAG CGA AGC UU 3' were synthesized.
- a solid phase carrier with 17 mer RNA was loaded into the reaction column in an amount corresponding to 85 ⁇ mol, and 5-mercapto-1-methyltetrazole (1-Me-MCT) and saccharin were used as activators with the nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot plus10.
- RNA oligonucleotide was excised from the solid-phase carrier by slowly dropping 3HF and shaking.
- Table 3 shows the results in DNA synthesis
- Table 4 shows the results in RNA synthesis.
- the HOMO energy and orbital coefficients of the activators used in this experiment are also shown in Tables 3 and 4.
- the HOMO energy and orbital coefficient were obtained by optimization calculation using the Gaussian quantum chemistry calculation program Gaussian16 manufactured by Gaussian and adopting the Becke-type 3-parameter density functional theory (B3LYP).
- the structure of the active species BIT is a neutral species, the others are anionic species
- the actuator makes a nucleophilic attack on amidite
- the activators showing higher reaction rates than Activator 42 had higher HOMO energy levels and / or higher orbital coefficients. It is considered that the high HOMO energy level of the activator reduces the energy difference between the HOMO energy level of the activator and the LUMO energy level of the segmented amidite, and facilitates the reaction. Further, it is considered that the large orbital coefficient of the activator causes the orbital overlap between the nitrogen atom of the activator and the phosphorus atom of the segmented amidite to be large, and the reaction is likely to occur.
- Example 3 Comparison of degradation of segmented amidite (1) Synthesis of oligonucleotide using dGCC as segmented amidite Reaction column using the solid phase carrier with 17mer DNA obtained in Example 2 (1) in an amount corresponding to 90 ⁇ mol.
- nucleic acid synthesizer AKTA oligopilot plus10 0.6M 5-mercapto-1-methyltetrazole (1-Me-MCT) and 0.5M 5-mercapto-1-phenyltetrazole (1-Ph-MCT) were used as activators.
- BTT 0.25M 5-benzylthiotetrazole
- SMI 0.25M saccharin 1-methylimidazole
- ETT 0.6M 5-ethylthio-1H-tetrazole
- Activator42 0.25M 5- [3,5 -Bis (trifluoromethyl) phenyl] -1H-tetrazole
- Other synthetic reagents include 3% DCA in toluene as a deprotecting agent, pyridine in water and iodine as an oxidizing agent, pyridine in acetonitrile as a capping agent, N-methylimidazole, acetic anhydride, and TBA in acetonitrile as an amine wash reaction solution.
- the dGCC was made as described in International Publication No. 2019/212061.
- the solid-phase carrier to which the DNA oligonucleotide was bound was immersed in aqueous ammonia at 55 ° C. for 12 to 16 hours, and the DNA oligonucleotide was cut out from the solid-phase carrier.
- Table 5 also shows the pKa values of the activators used in this experiment in water.
- the peak area of Impurity II was 9.089%, and remarkable decomposition of segmented amidite was observed.
- the peak area of Impurity II was about 1 to 2%, and almost no decomposition was observed. It is highly probable that Impurity II was generated by the decomposition of the phosphoric acid diester bond that connects the oligonucleotide and the segmented amidite with an acid.
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Abstract
Description
特許文献1および2ならびに非特許文献1には、(N-1)merのオリゴヌクレオチドの生成を抑えるための方法として、合成において、2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト(セグメント型アミダイト)を利用する方法が記載されているが、それらの方法は十分に効率な方法ではなかった。
また、特許文献3には、オリゴヌクレオチドの合成において1H-テトラゾールよりも安全に使用することができるアクチベータとして、サッカリンの誘導体が記載されている。しかしながら、特許文献3においては、サッカリンの誘導体のアクチベータとしての性能については十分に検討されていない。また、特許文献4には、1H-テトラゾールに代わるアクチベータとして、少なくとも1つのピリジニウム塩および少なくとも1つの置換されたイミダゾールを含むアクチベータ、イミダゾリウム塩およびベンゾイミダゾリウム塩が記載されている。しかしながら、特許文献4においては、アクチベータとして、サッカリンとの塩を用いることについては記載されていない。
[1]オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータが、以下の式:
式中、
Xは、有機塩基である、
または、以下の式:
式中、
R1およびR2は、それぞれ独立して、H、直鎖または分岐鎖のC1~7アルキル基、および任意に置換されていてもよい芳香族基からなる群から選択される、
で表される構造を有する、前記方法。
R1は、H、CnH2n+1またはベンジル基であり、
R2は、H、CH3、またはC6H5であり、
nは、1、2または3である、
[1]に記載の方法。
[3]前記アクチベータが、5-メルカプト-1-メチルテトラゾール(1-Me-MCT)、5-メルカプト-1-フェニルテトラゾール(1-Ph-MCT)、サッカリン1-メチルイミダゾール(SMI)、または5-エチルチオ-1H-テトラゾール(ETT)である、[1]または[2]に記載の方法。
[4]2回以上行われるカップリング工程の少なくとも最後の1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
である、[1]~[3]のいずれか一つに記載の方法。
[5]2回以上行われるカップリング工程の少なくとも最後の1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
[1]~[4]のいずれか一つに記載の方法。
[6]2回以上行われるカップリング工程の少なくとも1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが1個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
[1]~[5]のいずれか一つに記載の方法。
[7]2回以上行われるカップリング工程の最後の1回のみにおいて、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
その他の回のカップリング工程において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが1個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
[1]~[6]のいずれか一つに記載の方法。
X1は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X2は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-であり;
R1は保護基であり;
R2は、各々独立して、-H、-NHR6、ハロゲン、-CN、-CF3、またはアシル系保護基、エーテル系保護基もしくはシリル系保護基で保護された水酸基であり;
R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり;
R4およびR5は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;または
R4およびR5は、それらが結合している窒素と一緒になって、ヘテロシクロアルキル基またはヘテロ芳香族基を形成し;
R6は、各々独立して、-H、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基、または保護基であり;
R7は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、または置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;
B1、B2およびB3は、各々独立して、-H、または保護されたもしくは無保護の塩基であり;および
nは0または正の整数である;
で示されるヌクレオシドホスホロアミダイトまたはその立体異性体である、[1]~[7]のいずれか一つに記載の方法。
[10]R2が-Hである、[8]または[9]に記載の方法。
[11]R3が-OCH2CH2CNである、[8]~[10]のいずれか一つに記載の方法。
X1は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X2は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-であり;
Lはリンカーであり;
R2は、各々独立して、-H、-NHR6、ハロゲン、-CN、-CF3、またはアシル系保護基、エーテル系保護基もしくはシリル系保護基で保護された水酸基であり;
R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり;
R4およびR5は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;または
R4およびR5は、それらが結合している窒素と一緒になって、ヘテロシクロアルキル基またはヘテロ芳香族基を形成し;R6は、各々独立して、-H、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基、または保護基であり;
R7は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、または置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;
B1およびB2は、各々独立して、-H、または保護されたもしくは無保護の塩基であり;および
nは0または正の整数である;
で示されるヌクレオシドホスホロアミダイトまたはその立体異性体である、[1]~[11]のいずれか一つに記載の方法。
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータが、以下の式:
Xは、有機塩基である、
または、以下の式:
R1およびR2は、それぞれ独立して、H、直鎖または分岐鎖のC1~7アルキル基、および任意に置換されていてもよい芳香族基からなる群から選択される、で表される構造を有する、前記方法。
R1は、H、CnH2n+1またはベンジル基であり、
R2は、H、CH3、またはC6H5であり、
nは、1、2または3である、
[13]に記載の方法。
[15]オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータのHOMOエネルギー(a.u.)が、アセトニトリル中において、-0.21407~-0.16858であり、かつ、
前記アクチベータの軌道係数が、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である、
前記方法。
[16]前記アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、[15]に記載の方法。
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのHOMOエネルギー(a.u.)が、アセトニトリル中において、-0.22024~-0.16858であり、かつ、
前記アクチベータの軌道係数が、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である、
前記方法。
[18]アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、[17]に記載の方法。
[19]オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、
前記方法。
[20]オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのpKaが、水中において、4.3~7である、
前記方法。
本明細書において別様に定義されない限り、本明細書で用いる全ての技術用語および科学用語は、当業者が通常理解しているものと同じ意味を有する。本明細書中で参照する全ての特許、出願および他の出版物や情報は、その全体を参照により本明細書に援用する。また本明細書において参照された出版物と本明細書の記載に矛盾が生じた場合は、本明細書の記載が優先されるものとする。
本発明において、オリゴヌクレオチドの製造は、溶液中または固体支持体上で、好適な活性化剤の存在下で、ヌクレオシドホスホロアミダイトとヌクレオシドとの縮合反応によってヌクレオチドの付加が行われる、いわゆるホスホロアミダイト法を用いて行われる。
本発明の一態様において、アクチベータは、以下の式:
Xは、有機塩基であり、サッカリンと塩複合体を形成し、好ましくはN-メチルイミダゾール、ピリジンまたは3-メチルピリジンである、
または、以下の式:
R1およびR2は、それぞれ独立して、H、直鎖または分岐鎖のC1~7アルキル基、および任意に置換されていてもよい芳香族基からなる群から選択される、
で表される構造を有する。
好ましくは、R1およびR2は、それぞれ独立して、H、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基、ペンチル基、ヘキシル基、フェニル基、ベンジル基であり、さらに好ましくは、R1は、H、CnH2n+1またはベンジル基であり、R2は、H、CH3、またはC6H5であり、nは、1、2または3である。
本発明の一態様において、本発明のアクチベータの軌道係数は、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である。例えば、本発明のアクチベータの軌道係数は、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405、0.39931~0.59405、0.51802~0.59405、または0.53787~0.59405であり、好ましくは、0.39931~0.59405である。
本発明の一態様において、アクチベータのHOMOエネルギー(a.u.)は、アセトニトリル中において、-0.21407~-0.16858であり、かつ、前記アクチベータの軌道係数は、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である。
HOMOエネルギーおよび軌道係数は、量子化学計算プログラムによって求めることができ、例えば、Gaussian社製の量子化学計算プログラムGaussian16において、Becke-型3-パラメータ密度汎関数法(B3LYP)を採用した最適化計算によって求めることができる。
2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトは、4個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトと比較して、分子サイズの小ささから運動性が高く反応速度が速いため、反応率が高くなることが推測される。
本発明の一態様において、2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトは、下記式(I)
式(I)において、X2は、各々独立して、-O-または-S-である。
式(I)において、X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-である。
式(I)において、R2は、各々独立して、H、NHR6、ハロゲン、CN、CF3、またはアシル系保護基、エーテル系保護基もしくはシリル系保護基で保護された水酸基のいずれか一つである。ハロゲンは、例えば、F、Cl、Br、およびIである。アシル系保護基としては、例えば、アセチル、ベンゾイル、ピバロイルなどが挙げられる。エーテル系保護基としては、例えば、ベンジル、p-メトキシベンジル(PMB)、アリルなどが挙げられる。シリル系保護基としては、例えば、t-ブチルジメチルシリル(TBS)、t-ブチルジフェニルシリル(TBDPS)、t-トリイソプロピルシリル(TIPS)、トリエチルシリル(TES)、トリメチルシリル(TMS)などが挙げられる。好ましくは、-Hである。
式(I)において、R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり、好ましくは、-OCH2CH2CNである。置換されたもしくは未置換の脂肪族基としては、これらに限定されないが、例えば、4-シアノブト-2-エニルチオ、4-シアノブト-2-エニルオキシ、アリルチオ、アリルオキシ、クロチルチオまたはクロチルオキシなどが挙げられる。
式(I)において、nは0または正の整数であり、好ましくは、0以上4以下の整数であり、より好ましくは、0または1である。
PC Linker Phosphoramidite(3-(4,4’-ジメトキシトリチル)-1-(2-ニトロフェニル)-プロパン-1-イル-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホロアミダイト)
ソプロピル)]-ホスホロアミダイト)
式(II)において、X2は、各々独立して、-O-または-S-である。
式(II)において、X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-である。
式(II)において、Lはリンカーである。リンカーとしては、これらに限定されないが、例えば、
式(II)において、R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり、好ましくは、-OCH2CH2CNである。置換されたもしくは未置換の脂肪族基としては、これらに限定されないが、例えば、4-シアノブト-2-エニルチオ、4-シアノブト-2-エニルオキシ、アリルチオ、アリルオキシ、クロチルチオまたはクロチルオキシなどが挙げられる。
式(II)において、nは0または正の整数であり、好ましくは、0以上4以下の整数であり、より好ましくは、0または1である。
(1)オリゴヌクレオチドの合成
dT NittoPhase(登録商標)HL dT300(日東電工株式会社製))を1573μmolに相当する量で反応カラムに充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus100(Cytiva社、旧GEヘルスケアジャパン社製)を用いて、17mer(5’ CCG ATT AAG CGA AGC TT 3’)のDNAオリゴヌクレオチドを合成した。その後、17mer DNA付固相担体を205μmolに相当する量で反応カラム内に充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus100で、アクチベータとして5-エチルチオ-1H-テトラゾール(ETT)を用いて、dC、dT、dAを順に縮合する逐次法、dATCをアミダイト当量1.8当量、縮合時間5分で縮合したセグメント法1、dATCをアミダイト当量3.0当量、縮合時間10分で縮合したセグメント法2の3条件で合成した。その他の合成試薬は、通常用いられる脱保護試薬、キャッピング試薬及び酸化溶液を用いた。dATCは、国際公開第2019/212061号に記載されるように作製した。
DNAオリゴヌクレオチドが結合した固相担体を28%アンモニア水に浸し、固相担体から該DNAオリゴヌクレオチドの切り出しを行った。この液の一部を水で希釈し、DNAオリゴヌクレオチド試料溶液を作成した。残る溶液はクルード溶液とした。
得られたクルード溶液について、精製装置AKTA pure 25(Cytiva社、旧GEヘルスケアジャパン社製)による精製を行った。(精製条件:カラム;25cm×10mm CV=19.6mL GE source 15Q resin、Buffer;NaOH、NaCl、超純水で調整)。
(3)DNAオリゴヌクレオチドの分析
精製前および精製後のDNAオリゴヌクレオチド試料溶液について、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による測定を行った(測定条件:カラム;Waters XBridge OST C18 2.5μm 50×4.6mm、UV検出;260nm、BufferA;HFIP/TEA in Water、BufferB;メタノール)。
精製前のDNAオリゴヌクレオチド試料溶液の分析結果を表1に示す。
ここで、不純物Iは、HPLC測定においてN-1mer付近に出る不純物を、不純物IIは、HPLC測定においてN-2mer付近に出る不純物を、不純物IIIは、HPLC測定においてN-3mer付近に出る不純物をそれぞれ指す、以下同じ。
(1)DNAオリゴヌクレオチドの合成
NittoPhase(商標登録)HL UnyLinker 350(日東電工株式会社製)を2935μmolに相当する量で反応カラムに充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus100を用いて、17mer(5’ CCG ATT AAG CGA AGC TT 3’)のDNAオリゴヌクレオチドを合成した。その後、17mer DNA付固相担体を90μmolに相当する量で反応カラム内に充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus10で、アクチベータとして、5-メルカプト-1-メチルテトラゾール(1-Me-MCT)、5-メルカプト-1-フェニルテトラゾール(1-Ph-MCT)、5-ベンジルチオテトラゾール(BTT)、サッカリン 1-メチルイミダゾール(SMI)、5-エチルチオ-1H-テトラゾール(ETT)、4,5-ジシアノイミダゾール(DCI)、5-[3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル]-1H-テトラゾール(Activator42)、またはベンズイミダゾールトリフルオロメタンスルホン酸塩(BIT)を用いて、dGCCをアミダイト当量数1.8当量、縮合時間5分で縮合した。アクチベータは全てアセトニトリルに溶解させ、0.25Mに調製した。その他の合成試薬は、脱保護剤としてトルエン中3%DCA、酸化剤として水中ピリジン、ヨウ素、キャップ化剤としてアセトニトリル中ピリジン、N-メチルイミダゾール、無水酢酸または無水イソ酪酸、アミンウォッシュ反応液として、アセトニトリル中TBAを用いた。dGCCは、国際公開第2019/212061号に記載されるように作製した。
DNAオリゴヌクレオチドが結合した固相担体をアンモニア水に浸し、固相担体から該DNAオリゴヌクレオチドの切り出しを行った。
なお、Activator42は、以下の構造:
NittoPhase(商標登録)HL rU250(Kinovate Life Science社製)を327μmolに相当する量で反応カラムに充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus100を用いて、17mer合成(5’ CCG AUU AAG CGA AGC UU 3’)のRNAオリゴヌクレオチドを合成した。その後、17mer RNA付固相担体を85μmolに相当する量で反応カラム内に充填し、核酸合成装置AKTA oligopilot plus10で、アクチベータとして、5-メルカプト-1-メチルテトラゾール(1-Me-MCT)、サッカリン 1-メチルイミダゾール(SMI)、または5-[3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル]-1H-テトラゾール(Activator42)を用いてrAUCをアミダイト当量数2.0当量、縮合時間15分で縮合した。アクチベータは全てアセトニトリルに溶解させ、0.25Mに調製した。その他の合成試薬は、脱保護剤としてトルエン中3%DCA、酸化剤として水中ピリジン、ヨウ素、キャップ化剤としてアセトニトリル中ピリジン、N-メチルイミダゾール、無水酢酸、アミンウォッシュ反応液として、アセトニトリル中TBAを用いた。rAUCは、国際公開第2019/212061号に記載されるように作成した。
RNAオリゴヌクレオチドが結合した固相担体をAMA試薬(28~30%アンモニア水:メチルアミン水溶液=1:1)に浸し、フィルターでろ過し、DMSOで洗浄した。その後、氷浴下でTEA.3HFをゆっくりと滴下し、振盪することで固相担体から該RNAオリゴヌクレオチドの切り出しを行った。
切り出し後の各オリゴヌクレオチド試料溶液について、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による測定を行った(測定条件:カラム;Waters XBridge OST C18 2.5μm 50×4.6mm、UV検出;260nm、BufferA;HFIP/TEA in Water、BufferB;メタノール)。
DNA合成においては、HPLC測定結果において不純物IIIのピークが観測された後、1.1分後までに検出されたピークの面積の総和を100%とし、不純物IIIのピーク面積(%)を差し引くことにより、反応率を算出した。RNA合成においては、HPLC測定結果において不純物IIIのピークが観測された後、1.4分後までに検出されたピークの面積の総和を100%とし、不純物IIIのピーク面積(%)を差し引くことにより、反応率を算出した。
DNA合成における結果を表3に、RNA合成における結果を表4に示す。
また、本実験に用いたアクチベータのHOMOエネルギーおよび軌道係数を、併せて表3および表4に示す。HOMOエネルギー、軌道係数は、Gaussian社製の量子化学計算プログラムGaussian16を利用し、Becke-型3-パラメータ密度汎関数法(B3LYP)を採用した最適化計算によって求めた。具体的には、アクチベータがアミダイトに対し求核攻撃をする際の活性種(BITは中性種、その他はアニオン種)の構造、すなわちアクチベータの初期構造を、Webベースの計算支援プログラムWebMOを用いて計算前の分子の初期構造を作成し、基底関数に6-31G(d)、電荷にアニオンの場合は-1、中性種の場合には0、多重度に1重項、溶媒にアセトニトリルを入力し、構造最適化、軌道計算の順に実行することにより、HOMOエネルギーおよび軌道係数を求めた。分子モデルの原子間の衝突を避けるための初期構造の簡易的な構造修正を、WebMOにおいてCleanup機能のMechanics Optimizeを実行することにより、適宜行った。
(1)セグメント型アミダイトとしてdGCCを用いて行ったオリゴヌクレオチドの合成
例2(1)で得られた17mer DNA付固相担体を90μmolに相当する量で反応カラムに充填し、核酸合成機AKTA oligopilot plus10で、アクチベータとして0.6M 5-メルカプト-1-メチルテトラゾール(1-Me-MCT)、0.5M 5-メルカプト-1-フェニルテトラゾール(1-Ph-MCT)、0.25M 5-ベンジルチオテトラゾール(BTT)、0.25M サッカリン 1-メチルイミダゾール(SMI)、0.6M 5-エチルチオ-1H-テトラゾール(ETT)、または0.25M 5-[3,5-ビス(トリフルオロメチル)フェニル]-1H-テトラゾール(Activator42)を用いて、dGCCをアミダイト当量数1.8当量、縮合時間10分で縮合した。その他の合成試薬は、脱保護剤としてトルエン中3%DCA、酸化剤として水中ピリジン、ヨウ素、キャップ化剤としてアセトニトリル中ピリジン、N-メチルイミダゾール、無水酢酸、アミンウォッシュ反応液として、アセトニトリル中TBAを用いた。dGCCは、国際公開第2019/212061号に記載されるように作製した。
DNAオリゴヌクレオチドが結合した固相担体をアンモニア水に55℃で12~16時間浸し、固相担体から該DNAオリゴヌクレオチドの切り出しを行った。
切り出し後のDNAオリゴヌクレオチド試料溶液について、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による測定を行った(測定条件:カラム;Waters XBridge OST C18 2.5μm 50×4.6mm、UV検出;260nm、BufferA;100mM HFIP/7mM TEA in Water、pH8.0、BufferB;メタノール、温度;60℃)。
HPLC測定結果において不純物IIIのピークが観測された後、1.1分後までに検出されたピークの面積の総和を100%とした場合における、不純物IIのピーク面積(%)を算出した。
Claims (20)
- オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータが、以下の式:
式中、
Xは、有機塩基である、
または、以下の式:
式中、
R1およびR2は、それぞれ独立して、H、直鎖または分岐鎖のC1~7アルキル基、および任意に置換されていてもよい芳香族基からなる群から選択される、
で表される構造を有する、前記方法。 - Xは、N-メチルイミダゾール、ピリジンまたは3-メチルピリジンであり、
R1は、H、CnH2n+1またはベンジル基であり、
R2は、H、CH3、またはC6H5であり、
nは、1、2または3である、
請求項1に記載の方法。 - 前記アクチベータが、5-メルカプト-1-メチルテトラゾール(1-Me-MCT)、5-メルカプト-1-フェニルテトラゾール(1-Ph-MCT)、サッカリン1-メチルイミダゾール(SMI)、または5-エチルチオ-1H-テトラゾール(ETT)である、請求項1または2に記載の方法。
- 2回以上行われるカップリング工程の少なくとも最後の1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。 - 2回以上行われるカップリング工程の少なくとも最後の1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。 - 2回以上行われるカップリング工程の少なくとも1回において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが1個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。 - 2回以上行われるカップリング工程の最後の1回のみにおいて、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
その他の回のカップリング工程において、
ヌクレオシドホスホロアミダイトが1個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトである、
請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。 - 2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトが、下記式(I)
式中、
X1は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X2は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-であり;
R1は保護基であり;
R2は、各々独立して、-H、-NHR6、ハロゲン、-CN、-CF3、またはアシル系保護基、エーテル系保護基もしくはシリル系保護基で保護された水酸基であり;
R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり;
R4およびR5は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;または
R4およびR5は、それらが結合している窒素と一緒になって、ヘテロシクロアルキル基またはヘテロ芳香族基を形成し;
R6は、各々独立して、-H、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基、または保護基であり;
R7は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、または置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;
B1、B2およびB3は、各々独立して、-H、または保護されたもしくは無保護の塩基であり;および
nは0または正の整数である;
で示されるヌクレオシドホスホロアミダイトまたはその立体異性体である、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。 - nが0または1である、請求項8に記載の方法。
- R2が-Hである、請求項8または9に記載の方法。
- R3が-OCH2CH2CNである、請求項8~10のいずれか一項に記載の方法。
- 1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトが、下記式(II)
式中、
X1は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X2は、各々独立して、-O-または-S-であり;
X3は、各々独立して、-O-、-S-、-CH2-または-(CH2)2-であり;
Lはリンカーであり;
R2は、各々独立して、-H、-NHR6、ハロゲン、-CN、-CF3、またはアシル系保護基、エーテル系保護基もしくはシリル系保護基で保護された水酸基であり;
R3は、各々独立して、-OCH2CH2CN、-SCH2CH2CN、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、-OR7または-SR7であり;
R4およびR5は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;または
R4およびR5は、それらが結合している窒素と一緒になって、ヘテロシクロアルキル基またはヘテロ芳香族基を形成し;R6は、各々独立して、-H、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、置換されたもしくは未置換のアルアルキル基、または保護基であり;
R7は、各々独立して、置換されたもしくは未置換の脂肪族基、置換されたもしくは未置換の芳香族基、または置換されたもしくは未置換のアルアルキル基であり;
B1およびB2は、各々独立して、-H、または保護されたもしくは無保護の塩基であり;および
nは0または正の整数である;
で示されるヌクレオシドホスホロアミダイトまたはその立体異性体である、請求項1~11のいずれか一項に記載の方法。 - オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータが、以下の式:
式中、
Xは、有機塩基である、
または、以下の式:
式中、
R1およびR2は、それぞれ独立して、H、直鎖または分岐鎖のC1~7アルキル基、および任意に置換されていてもよい芳香族基からなる群から選択される、で表される構造を有する、前記方法。 - Xは、N-メチルイミダゾール、ピリジンまたは3-メチルピリジンであり、
R1は、H、CnH2n+1またはベンジル基であり、
R2は、H、CH3、またはC6H5であり、
nは、1、2または3である、
請求項13に記載の方法。 - オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、前記ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト
であり、
前記アクチベータのHOMOエネルギー(a.u.)が、アセトニトリル中において、-0.21407~-0.16858であり、かつ、
前記アクチベータの軌道係数が、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である、
前記方法。 - 前記アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、請求項15に記載の方法。
- オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのHOMOエネルギー(a.u.)が、アセトニトリル中において、-0.22024~-0.16858であり、かつ、
前記アクチベータの軌道係数が、アセトニトリル中において、0.31531~0.59405である、
前記方法。 - アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、請求項17に記載の方法。
- オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個または3個のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのpKaが、水中において、3.65~7である、
前記方法。 - オリゴヌクレオチドを製造する方法であって、
アクチベータの存在下で、ヌクレオチドまたはヌクレオシドの3’または5’の水酸基またはチオール基に、ヌクレオシドホスホロアミダイトを結合させるカップリング工程を1回以上行うことを含み、
少なくとも1回のカップリング工程において、ヌクレオシドホスホロアミダイトが
(a)2個以上のヌクレオシド部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイト、または
(b)1個以上のヌクレオシド部分およびリンカー部分を有するヌクレオシドホスホロアミダイトであり、
前記アクチベータのpKaが、水中において、4.3~7である、
前記方法。
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