WO2021132379A1 - 変異型ｒｓｖ ｆタンパク質及びその利用 - Google Patents

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rsv
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智治 鳳桐
寛行 岸田
啓 武富
ブランデュアルディ，ダビデ
オールー，エリウド
フェイファント，エリック
収 市原
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田辺三菱製薬株式会社
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    • C12N2760/18571—Demonstrated in vivo effect

Definitions

  • the present invention relates to a mutant RSV F protein and its use.
  • Respiratory syncytial virus (RSV) infection is a respiratory infection that is prevalent worldwide.
  • RSV infection causes lower respiratory tract inflammation in more than 30 million people annually, and more than 3 million people require hospital treatment annually. Therefore, many efforts have been made so far toward the development of a vaccine to prevent RSV infection.
  • clinical trials targeted for infants using formalin-inactivated virus as a vaccine antigen were conducted, but instead of reducing infectious diseases, the hospitalization rate due to RSV infection increased 16 times. The result was that.
  • F antigen which is one of the surface antigens of the virus
  • the F antigen is one of the surface antigens of the virus
  • the F antigen is denatured in the process of inactivation treatment, and only the antibody having low RSV neutralizing activity is induced to prevent the immune reaction. ing.
  • Non-Patent Document 1 Research on RSV F proteins has also been advanced, and mature F proteins are most stable with metastable pre-fusion conformations (sometimes referred to herein as "pre-F” or "pre-type F protein”). Pre-fusion conformation (sometimes referred to herein as "post-F” or “post-type F protein”), and pre-fusion conformation is common due to its instability.
  • Non-Patent Document 2 the pre-type F protein forms a trimer, and pre It was found that some of the epitopes (epitope ⁇ , I, II, III, IV, V, etc.) present in the type F protein are lost due to the structural change to post-F.
  • Non-Patent Document 3 Infants with insufficient immune maturation are at high risk of exacerbation of symptoms at the time of infection, which is due to the fact that infants at the time of initial infection or with a small number of infections can hardly induce immunity targeting epitopes ⁇ and V.
  • Non-Patent Document 4 It is important to efficiently induce an antibody having a high ability to neutralize virus infection in a vaccine antigen, and an ideal vaccine antigen is an antigen capable of preferentially inducing an antibody against epitopes ⁇ and V having a neutralizing ability. It is believed that.
  • An object of the present invention is to provide a technique for efficiently inducing an antibody having a high ability to neutralize RSV infection.
  • the present inventors have found that a mutant RSVF protein containing a specific amino acid mutation efficiently induces an antibody having a high ability to neutralize RSV infection, and completed the present invention.
  • the present invention is as follows.
  • a mutant RSVF protein having a mutation wherein the mutation replaces leucine corresponding to leucine at position 141 or leucine corresponding to leucine at position 142 with cysteine in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the mutant RSV F protein according to [2] wherein the RSV subtype A is an RSV A2 strain or an RSV Long strain.
  • a fusion protein comprising the mutant RSV F protein according to any one of [1] to [14] and a multimerization domain fused to the C-terminus of the mutant RSV F protein.
  • the fusion protein according to [15] wherein the multimerization domain is a foldon domain.
  • [17] The fusion protein according to [16], which comprises any of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 10-13.
  • the multimer which is associated through.
  • the multimer according to [18], wherein the multimer is a trimer.
  • the F protein or the fusion protein contains a particleization domain, and two or more of the mutant RSV F protein or the multimer are aggregated via the particleization domain to form a particle, and the particleization domain is ,
  • the particulateized product which is located closer to the epitope I than the epitope ⁇ on the three-dimensional structure of the mutant RSVF protein or the multimer.
  • two or more fusion proteins for producing a particle product in which a particle product domain is bound to the C-terminal of the mutant RSVF protein or the fusion protein are assembled via the particle product domain.
  • the particleized body according to [20].
  • the particleization domain is an Fc domain consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 30, and the particleization domain binds to the Z domain of protein A immobilized on VLP derived from a modified HBs antigen.
  • [25] The C-terminal of the mutant RSVF protein according to any one of [1] to [14], or the fusion protein according to any one of [15] to [17], and particles fused to the C-terminal thereof.
  • a fusion protein for the production of particulates including a chemical domain.
  • An expression unit comprising the polynucleotide according to [28].
  • a host cell comprising the expression unit according to [29].
  • An immunogen comprising the multimer of the above or the particleized product according to any one of [20] to [24].
  • a pharmaceutical composition comprising the expression unit according to [29] or the immunogen according to [31].
  • An RSV vaccine comprising the expression unit according to [29] or the immunogen according to [31].
  • the present invention it is possible to provide a technique for efficiently inducing an antibody having a high ability to neutralize RSV infection. It is possible to provide a mutant RSV F protein whose stability as a pre-type F protein is significantly improved as compared with the conventional case.
  • the mutant RSV F protein of the present invention has an effect of inducing an antibody group considered to have a high effect on virus neutralization, particularly in humans, preferentially over an antibody group considered to contribute less to virus neutralization ( Hereinafter, it is referred to as an effect of preferentially inducing an antibody group considered to have a high effect on virus neutralization).
  • the graph which shows the trimerization in Example 3 which concerns on one aspect of this invention.
  • a graph showing the storage stability of epitope ⁇ in Example 7 according to one aspect of the present invention (examination of an insertion linker).
  • the graph which shows the trimerization in Example 7 which concerns on one aspect of this invention (examination of an insertion linker).
  • the graph which shows the recognition of the epitope I in Example 7 which concerns on one aspect of this invention (examination of an insertion linker).
  • the photograph which shows the polyacrylamide gel electrophoresis result in Example 9 which concerns on one aspect of this invention.
  • One aspect of the present invention is a mutant RSV F protein having a mutation, and the mutation is directed to leucine corresponding to leucine at position 141 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 or cysteine of leucine corresponding to leucine at position 142.
  • This is a mutant RSV F protein in which a disulfide bond is formed between the cysteines, which is a substitution of leucine corresponding to leucine at position 373 and a substitution of leucine with cysteine.
  • Natural RSV F protein is first expressed as an F0 polypeptide (precursor).
  • the F0 polypeptide is processed by an intracellular furin-like protease at two sites after the endoplasmic reticulum translocation signal is cleaved to produce the F1 polypeptide, the F2 polypeptide, and the Pep27 polypeptide.
  • the Pep27 polypeptide is excised and therefore does not form part of the mature F protein.
  • the F2 polypeptide is derived from the N-terminal portion of the F0 polypeptide and is linked to the F1 polypeptide via two disulfide bonds.
  • the F1 polypeptide is derived from the C-terminal portion of the F0 polypeptide and anchors the mature F protein to the membrane via a transmembrane domain.
  • the three protomers of the F2-F1 heterodimer form mature F proteins as trimers, which are pre-type F proteins that have the function of fusing the viral membrane and the target cell membrane.
  • the mutant RSV F protein of the present invention contains an F2 polypeptide and an F1 polypeptide from the N-terminal side.
  • the F1 polypeptide that does not contain a transmembrane region and an intracellular region (hereinafter, may be referred to as an F1 polypeptide (extracellular region)) is preferably used.
  • the mutant RSV F protein of the present invention may contain a pep27 polypeptide on the N-terminal side of the F1 polypeptide by eliminating one of the furin-like protease recognition sites by a mutation described later.
  • a signal sequence may be contained on the N-terminal side of the F2 polypeptide, a linker between the F1 polypeptide and the F2 polypeptide, and a tag used for purification or the like may be further contained on the C-terminal side thereof.
  • the mutant RSV F protein of the present invention preferably forms a trimer.
  • the mutant RSV F protein of the present invention is preferably derived from RSV subtype A or RSV subtype B.
  • RSV subtype A include RSV A2 strain, RSV Long strain, RSV S2 strain, and RSV line 19 strain, and among them, RSV A2 strain or RSV Long strain is preferable.
  • RSV subtype B include RSV 18537 strain, RSV B1 strain, and RSV 9320 strain, and among them, RSV 18537 strain is preferable.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is the amino acid sequence of the F0 polypeptide of the F protein of the RSV A2 strain, and each component of the F0 polypeptide will be described with reference to this.
  • the amino acid sequence of the signal sequence is the amino acid sequence at positions 1 to 25.
  • the amino acid sequence of the F2 polypeptide is the amino acid sequence at positions 26 to 109.
  • the amino acid sequence of the pep27 region is the amino acid sequence of positions 110 to 136.
  • the amino acid sequence of the F1 polypeptide (extracellular region) is the amino acid sequence at positions 137 to 513.
  • the amino acid sequence of the F1 polypeptide is the amino acid sequence at positions 514 to 574.
  • the amino acid sequence of the F1 polypeptide is a sequence having 85% or more, 90% or 95% or more identity with the amino acid sequence at positions 514 to 574 of SEQ ID NO: 1. Good.
  • the RSV F protein can include an F2 polypeptide and an F1 polypeptide (extracellular region).
  • the RSVF protein containing the F2 polypeptide and the F1 polypeptide (extracellular region) contains the amino acid sequence at positions 26 to 109 of SEQ ID NO: 1 and the amino acid sequence at positions 137 to 513 in this order, SEQ ID NO: The amino acid sequence of 2 is exemplified.
  • the RSV F protein can include an F2 polypeptide and an F1 polypeptide (extracellular region) in which the pep27 region is linked.
  • the RSV F protein containing the F2 polypeptide and the F1 polypeptide (extracellular region) in which the pep27 region is linked in this order has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 including the amino acid sequence of positions 26 to 513 of SEQ ID NO: 1. Illustrated. It should be noted that these polypeptides can be separate polypeptide chains, preferably they are linked by disulfide bonds. That is, the RSVF protein can be a complex of such polypeptides.
  • the mutant RSVF protein of the present invention comprises the substitution of leucine corresponding to leucine at position 141 or leucine corresponding to leucine at position 142 with cysteine in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and leucine corresponding to leucine at position 373. Includes mutations in substitution with cysteine.
  • the mutant RSVF protein forms a new disulfide bond between the introduced cysteines in addition to the naturally occurring disulfide bond, whereby the preservability of epitope ⁇ (pre-type is maintained). ) Is improved.
  • it is particularly preferable that leucine corresponding to leucine at position 141 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine and leucine corresponding to leucine at position 373 is replaced with cysteine.
  • the mutation position of the mutant RSV F protein is indicated by the amino acid number of the reference sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • Leucine corresponding to leucine at position 141, leucine corresponding to leucine at position 142, and leucine corresponding to leucine at position 373 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 are SEQ ID NOs: regardless of the origin of the mutant RSVF protein. It refers to leucine corresponding to leucine at position 141, leucine corresponding to leucine at position 142, and leucine corresponding to leucine at position 373 in the amino acid sequence of 1.
  • leucine at position 141 when the amino acid sequence of the RSVF protein into which the mutation should be introduced is aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, leucine at position 141, leucine at position 142, and leucine at position 373 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 It refers to the leucine residue located in each of the above.
  • leucine at position 141 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is at position 140.
  • Leucine can be said to be leucine corresponding to leucine at position 141 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the amino acid sequence of the RSVF protein into which the mutation should be introduced When the amino acid sequence of the RSVF protein into which the mutation should be introduced is aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, it becomes leucine corresponding to leucine at position 141 and leucine at position 142 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • an amino acid other than leucine is present at the position of the corresponding leucine and / or the leucine corresponding to the leucine at position 373, an embodiment of substituting the amino acid with cysteine is also included in the mutant RSVF protein of the present invention.
  • the amino acid other than leucine is cysteine
  • the substitution with cysteine is not required and the amino acid may be cysteine as it is.
  • F2 produced from a mutant F0 polypeptide comprising an amino acid sequence in which the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is substituted with leucine at position 141 or leucine at position 142 and leucine at position 373 with cysteine.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 includes an amino acid sequence in which leucine at position 89 or leucine at position 90 and leucine at position 321 are replaced with cysteine.
  • One aspect of the present invention is the amino acid of SEQ ID NO: 1 in an amino acid sequence having 85% or more identity, preferably 90% or more identity, more preferably 95% or more identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • An F2 poly produced from a mutant F0 polypeptide containing an amino acid sequence in which leucine corresponding to leucine at position 141 or leucine at position 142 or leucine corresponding to leucine at position 142 and leucine corresponding to leucine at position 373 are substituted with cysteine.
  • a disulfide bond is formed between the cysteines and has an ability to induce an antibody against the pre-type F protein of RSV.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 Leucine corresponding to leucine at position 141 (89th position in SEQ ID NO: 2) or leucine corresponding to leucine at position 142 (90th position in SEQ ID NO: 2), and leucine corresponding to leucine at position 373 (321st in SEQ ID NO: 2).
  • % (%) identity with respect to an amino acid sequence is defined as sequence identity, introducing gaps if necessary to obtain maximum% identity, and any conservative substitution of sequence identity. It is defined as the percentage of amino acid residues in a candidate sequence that are identical to the amino acid residues of a particular reference polypeptide sequence, if not considered part. Alignment for the purpose of measuring% identity can be done by various methods within the skill of one of ordinary skill in the art, such as publicly available computers such as BLAST, BLAST-2, ALIGN, or Megalign (DNASTAR) software. It can be achieved by using software. One of ordinary skill in the art can determine the appropriate parameters for aligning the sequences, including any algorithm required to achieve maximum alignment for the full length of the sequences being compared.
  • % identity values are obtained by using the sequence comparison computer program BLAST in pairwise alignment.
  • the% identity of a given amino acid sequence A with a given amino acid sequence B is calculated as follows: 100 times the fraction X / Y where X is the number of amino acid residues with scores consistent to be identical by the program alignment of A and B of the sequence alignment program BLAST, and Y is the total number of amino acid residues of B. Is. It will be appreciated that if the length of amino acid sequence A differs from the length of amino acid sequence B, then the% identity of A to B is different from the% identity of B to A. Unless otherwise noted, all% identity values here are obtained using the BLAST computer program as shown in the paragraph immediately above.
  • the amino acid sequence having a predetermined identity with the predetermined amino acid sequence is due to substitution, deletion, insertion, or addition in the predetermined amino acid sequence.
  • the substitution is preferably a conservative substitution.
  • Constant substitution is the replacement of an amino acid residue with another chemically similar amino acid residue so as not to substantially alter the activity of the protein. For example, there is a case where one hydrophobic residue is replaced with another hydrophobic residue, a case where a certain polar residue is replaced with another polar residue having the same charge, and the like.
  • Examples of functionally similar amino acids capable of such substitution include alanine, valine, isoleucine, leucine, proline, tryptophan, phenylalanine, methionine and the like as non-polar (hydrophobic) amino acids.
  • Examples of the polar (neutral) amino acid include glycine, serine, threonine, tyrosine, glutamine, asparagine, cysteine and the like.
  • Examples of positively charged (basic) amino acids include arginine, histidine, lysine and the like.
  • Examples of negatively charged (acidic) amino acids include aspartic acid and glutamic acid.
  • mutant RSV F protein of the present invention is a mutant RSV F protein having a mutation, wherein the mutation is to a non-acidic amino acid of glutamic acid corresponding to glutamic acid at position 60 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • mutant RSVF protein that is a replacement for.
  • the non-acidic amino acid has the effect that the mutant RSVF protein preferentially induces an antibody group that is considered to have a high effect on improving the storage stability of epitope ⁇ , promoting trimerization, and neutralizing the virus.
  • Specific examples thereof include neutral amino acids, basic amino acids, and non-polar (hydrophobic) amino acids. More specifically, the neutral amino acids include glycine, serine, threonine, tyrosine, glutamine, asparagine and cysteine, and the basic amino acids include arginine, histidine and lysine, which are non-polar (hydrophobic).
  • amino acids examples include alanine, valine, isoleucine, leucine, proline, tryptophan, phenylalanine, and methionine.
  • the non-acidic amino acid is preferably a neutral amino acid and / or a non-polar (hydrophobic) amino acid.
  • the neutral amino acids threonine and serine are preferable, and among the non-polar (hydrophobic) amino acids, it is preferable to be selected from the group consisting of methionine, phenylalanine and leucine. Therefore, the non-acidic amino acids are methionine and phenylalanine.
  • Leucine, threonine, and serine are preferably selected from the group.
  • One aspect of the present invention is an F2 polypeptide and an F1 polypeptide (extracellular region) produced from a mutant F0 polypeptide containing an amino acid sequence in which glutamic acid at position 60 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is replaced with a non-acidic amino acid.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 includes an amino acid sequence in which glutamic acid at position 35 is replaced with a non-acidic amino acid.
  • One aspect of the present invention is the amino acid of SEQ ID NO: 1 in an amino acid sequence having 85% or more identity, preferably 90% or more identity, more preferably 95% or more identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • a mutant RSV F protein having the ability to induce an antibody against the F protein.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 It contains an amino acid sequence in which glutamic acid (position 35 in SEQ ID NO: 2) corresponding to glutamic acid at position 60 is replaced with a non-acidic amino acid.
  • the mutation of glutamic acid at position 60 may be introduced together with the above-mentioned mutation of replacing leucine with cysteine.
  • the mutant RSVF protein of the present invention is further mutated in that the amino acid constituting the furin recognition site present on the C-terminal side of the pep27 region is replaced with an amino acid such that the furin recognition site is not recognized by furin. It may be a type RSVF protein.
  • the mutant RSV F protein has an F2 polypeptide and an F1 polypeptide (extracellular region) in which the pep27 region is linked, whereby the epitope ⁇ remains conserved. , It has the effect of promoting trimerization.
  • the pep27 region is a region corresponding to the 110th to 136th positions of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, and is intracellularly composed of a first recognition site on the N-terminal side and a second recognition site on the C-terminal side by furin. Is disconnected.
  • the N-terminal side of the pep27 region is the F2 polypeptide and the C-terminal side is the F1 polypeptide.
  • an F2 polypeptide and an F1 polypeptide are produced, and these are cysteine residues originally possessed by each polypeptide. A disulfide bond is formed between them to form a complex.
  • the RSV F protein does not contain the pep27 region, but the mutation does not cleave the second recognition site, and the first recognition that exists between the C-terminal side of the F2 polypeptide and the pep27 region. Only the site is cut by furin.
  • a polypeptide containing an F1 polypeptide linking the pep27 region and an F2 polypeptide are produced, and these form a disulfide bond between the cysteine residues originally possessed by each polypeptide to form a complex.
  • this aspect may be a complex containing a polypeptide fragment containing an F1 polypeptide linking the pep27 region and an F2 polypeptide.
  • the substitution may be a substitution of one or more amino acids among the amino acids constituting the furin recognition site.
  • the amino acid constituting the furin recognition site consists of arginine corresponding to arginine at position 133, arginine corresponding to arginine at position 135, and arginine corresponding to arginine at position 136 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1. It is one or more amino acids selected from, and it is preferable that the amino acid is replaced with a non-basic amino acid.
  • the arginine corresponding to arginine at position 133, the arginine corresponding to arginine at position 135, and the arginine corresponding to arginine at position 136 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 may be independently substituted with non-basic amino acids. ..
  • the non-basic amino acid is not limited as long as it has the effect of promoting trimerization while maintaining the preservation of the epitope ⁇ , but specifically, it is a neutral amino acid, an acidic amino acid, or a non-polar (hydrophobic).
  • Sex) Amino acids can be exemplified. More specifically, neutral amino acids include glycine, serine, threonine, tyrosine, glutamine, aspartic acid, and cysteine, and acidic amino acids include aspartic acid and glutamic acid, which are non-polar (hydrophobic) amino acids. Examples include alanine, valine, isoleucine, leucine, proline, tryptophan, phenylalanine, and methionine. Among them, neutral amino acids are preferable, and asparagine is more preferable.
  • mutant RSV F protein of the present invention is that in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, leucine at position 116 or leucine 117, and leucine at position 348 are replaced with cysteine, and arginine at position 108, 110. It contains an amino acid sequence in which an amino acid selected from the group consisting of arginine at position and arginine at position 111 is replaced with a non-basic amino acid.
  • mutant RSV F protein of the present invention is an amino acid sequence having 85% or more identity, preferably 90% or more identity, more preferably 95% or more identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3. , Leucine corresponding to arginine at position 141 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (leucine at position 116 in SEQ ID NO: 3) or arginine corresponding to arginine at position 142 (leucine at position 117 in SEQ ID NO: 3), and position 373.
  • Leucine corresponding to leucine (leucine at position 348 in SEQ ID NO: 3) is replaced with cysteine, and arginine corresponding to arginine at position 133 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (arginine at position 108 in SEQ ID NO: 3), 135 Amino acids selected from the group consisting of arginine corresponding to arginine at position 3 (arginine at position 110 in SEQ ID NO: 3) and arginine corresponding to arginine at position 136 (arginine at position 111 in SEQ ID NO: 3) are non-basic amino acids. Contains the substituted amino acid sequence.
  • mutant RSV F protein of the present invention in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, glutamic acid at position 35 is replaced with a non-acidic amino acid, and arginine at position 108, arginine at position 110, and position 111.
  • glutamic acid at position 35 is replaced with a non-acidic amino acid
  • arginine at position 108, arginine at position 110, and position 111 Contains an amino acid sequence in which an amino acid selected from the group consisting of arginine is replaced with a non-basic amino acid.
  • mutant RSV F protein of the present invention is an amino acid having 85% or more identity, preferably 90% or more identity, more preferably 95% or more identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3.
  • glutamic acid corresponding to glutamic acid at position 60 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is replaced with a non-acidic amino acid, and arginine at position 133 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is used.
  • Corresponding arginine (arginine at position 108 in SEQ ID NO: 3), arginine corresponding to arginine at position 135 (arginine at position 110 in SEQ ID NO: 3), and arginine corresponding to arginine at position 136 (arginine at position 111 in SEQ ID NO: 3). ) Includes an amino acid sequence in which the amino acid selected from the group consists of non-basic amino acids.
  • the pep27 region may be replaced with an artificial linker in the amino acid sequence having 85% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more identity with SEQ ID NO: 3 or SEQ ID NO: 3.
  • the sequence of the artificial linker is not particularly limited, but it is preferably an amino acid residue length of 6 to 27, preferably a sequence containing Gly and / or Ser, and more specifically, Gly-Ser-Gly.
  • -Ser-Gly-Ser SEQ ID NO: 18
  • (Gly-Gly-Gly-Gly-Ser) 2 SEQ ID NO: 19
  • (Gly-Gly-Gly-Gly-Ser) 3 SEQ ID NO: 20
  • SEQ ID NO: 20 can be exemplified. ..
  • the mutant RSVF protein of the present invention replaces leucine corresponding to leucine at position 141 or leucine at position 142 and leucine corresponding to leucine at position 373 with cysteine in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 above.
  • the mutation that replaces leucine with cysteine the mutation of glutamate at position 60, and / or the mutation of the furin recognition site, it further corresponds to threonine at position 189 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • It may be a mutant RSVF protein in which the amino acid and / or the amino acid corresponding to serine at position 190 is replaced with a hydrophobic amino acid.
  • the mutant RSVF protein according to this embodiment has excellent storage stability of epitope ⁇ , has an effect of promoting trimerization, and also has an effect of preferentially inducing an antibody group considered to have a high effect on virus neutralization. While maintaining the effect, the expression level is remarkably improved in the expression system.
  • the amino acid corresponding to threonine at position 189 and / or the amino acid corresponding to serine at position 190 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 may be independently substituted with hydrophobic amino acids.
  • the mutant RSVF protein containing the substitution has excellent storage stability of epitope ⁇ , and preferentially induces an antibody group considered to have an effect of promoting trimerization and a high effect on virus neutralization.
  • the mutant RSVF protein according to this embodiment has a lower risk than conventional vaccines because it is difficult to be recognized by an antibody that is ineffective or poor in neutralizing viral infection.
  • the mutant RSVF protein according to this embodiment is difficult to be recognized by an antibody that recognizes epitope I.
  • Epitope I induces an antibody having a significantly low ability to neutralize viral infection
  • the symptoms are worsened by activation of immune cells that hardly contribute to neutralization of viral infection.
  • the mutant RSVF protein according to this embodiment which is difficult to be recognized by an antibody that recognizes epitope I, has a lower risk than the conventional vaccine.
  • the hydrophobic amino acid preferentially induces an antibody group in which the mutant RSV F protein is considered to have excellent storage stability of epitope ⁇ , promotion of trimerization, and high effect on virus neutralization.
  • the effect of significantly improving the expression level in the expression system while maintaining the effect of it is not limited as long as it has the effect of being ineffective in neutralizing viral infection or difficult to be recognized by a poor antibody.
  • Examples include alanine, valine, isoleucine, leucine, proline, tryptophan, phenylalanine, and methionine. Above all, it is preferable to select from the group consisting of valine, isoleucine, and leucine.
  • the 189th position in SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 137 of SEQ ID NO: 2, and the position 190 of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 138 of SEQ ID NO: 2.
  • position 189 in SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 164 of SEQ ID NO: 3
  • position 190 of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 165 of SEQ ID NO: 3
  • one or both of these mutations are introduced in addition to the above-mentioned mutation in which leucine is replaced with cysteine, the mutation in glutamate at position 60, and / or the mutation in the furin recognition site. May be done.
  • one aspect of the present invention further corresponds to lysine at position 42 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • It may be a mutant RSVF protein in which the amino acid to be used is replaced with arginine and / or the amino acid corresponding to valine at position 384 is replaced with threonine.
  • the mutant RSVF protein according to this embodiment has excellent storage stability of epitope ⁇ , and also maintains the effect of promoting trimerization and the effect of preferentially inducing an antibody group considered to have a high effect on virus neutralization. As it is, it has the effect of significantly improving the expression level in the expression system.
  • the 42nd position in SEQ ID NO: 1 is the 17th amino acid of SEQ ID NO: 2
  • the 384th position of SEQ ID NO: 1 is the 332th amino acid of SEQ ID NO: 2, which has 90% or more identity with SEQ ID NO: 2.
  • one or both of these mutations are introduced in addition to the leucine-substituting mutation and / or the glutamic acid at position 60 mutation, as well as the mutations at positions 189 and / or 190. You can.
  • position 42 in SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 17 of SEQ ID NO: 3
  • position 384 of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 359 of SEQ ID NO: 3
  • one or both of these mutations replace leucine with cysteine, glutamate at position 60, and / or mutation at the furin recognition site, and mutations at positions 189 and / or 190. In addition, it may be introduced.
  • the mutant RSV F protein may further contain a known mutation as long as it does not interfere with the effect of the mutant RSV F protein.
  • the expression system may further contain mutations for improving the expression level.
  • the amino acid corresponding to proline at position 102 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is replaced with alanine
  • the amino acid corresponding to isoleucine at position 379 is replaced with valine
  • position 447 One or more substitutions selected from the group consisting of the amino acids corresponding to methionine substituted with valine can be exemplified.
  • the 102nd position in SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 77 of SEQ ID NO: 2
  • the position 379 of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at position 327 of SEQ ID NO: 2
  • the position 447 of SEQ ID NO: 1 is 395 of SEQ ID NO: 2.
  • the amino acid sequence which is the amino acid at the position and has 85%, 90% or 95% or more identity with SEQ ID NO: 2 one or both of these mutations replaces leucine with cysteine, and / or 60.
  • glutamic acid at position 189 and / or 190 and the mutation at position 42 and / or 384 it may be introduced.
  • the 102nd position of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at the 77th position of SEQ ID NO: 3, the 379th position of SEQ ID NO: 1 is the amino acid at the 354th position of SEQ ID NO: 3, and the 447th position of SEQ ID NO: 1 is the 422 of SEQ ID NO: 3.
  • the amino acid sequence at position 3 or 85%, 90% or 95% or more identity with SEQ ID NO: 3 one or both of these mutations replace leucine with cysteine, glutamic acid at position 60.
  • mutant RSV F protein of the present invention is a mutant RSV F protein containing any of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 6 to 9. Specifically, it contains the following amino acid mutations.
  • SEQ ID NO: 6 In the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 (variant RSV_F protein contained in FH_50), in SEQ ID NO: 3, leucine at position 141 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine, and leucine at position 373 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine. , The 135th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine, the 136th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine, the 189th threonine of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine, and the 190th position of SEQ ID NO: 1 is replaced.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 is divided into the amino acid sequence of the F2 polypeptide and the amino acid sequence of the pep27-added F1 polypeptide (extracellular region), but here, they are represented as one bound amino acid sequence.
  • the amino acid sequence of the F2 polypeptide of the target protein is compared with the amino acid sequence of the pep27-added F1 polypeptide (extracellular region) bound in this order. .. The same applies hereinafter.
  • SEQ ID NO: 7 In the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 (variant RSV_F protein contained in FH_81), in SEQ ID NO: 3, leucine at position 141 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine, and leucine at position 373 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine. , The 135th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine, the 136th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine, the 189th threonine of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine, and the 190th position of SEQ ID NO: 1 is replaced.
  • Serin was replaced with valine, glutamate at position 60 of SEQ ID NO: 1 was replaced with methionine, proline at position 102 of SEQ ID NO: 1 was replaced with alanine, isoleucine at position 379 of SEQ ID NO: 1 was replaced with valine, and the sequence. It is an amino acid sequence in which methionine at position 447 of No. 1 is replaced with valine.
  • SEQ ID NO: 8 variant RSV_F protein contained in FH_82
  • SEQ ID NO: 3 leucine at position 141 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine
  • leucine at position 373 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine.
  • the 135th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine
  • the 136th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine
  • the 189th threonine of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine
  • the 190th position of SEQ ID NO: 1 is replaced.
  • Serin was replaced with valine, lyucine at position 42 of SEQ ID NO: 1 was replaced with arginine, valine at position 384 of SEQ ID NO: 1 was replaced with sleonine, proline at position 102 of SEQ ID NO: 1 was replaced with alanine, and the sequence. It is an amino acid sequence in which isoleucine at position 379 of No. 1 is replaced with valine and methionine at position 447 of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine.
  • SEQ ID NO: 9 variant RSV_F protein contained in FH_85
  • leucine at position 141 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine
  • leucine at position 373 of SEQ ID NO: 1 is replaced with cysteine.
  • the 135th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine
  • the 136th arginine of SEQ ID NO: 1 is replaced with asparagine
  • the 189th threonine of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine
  • the 190th position of SEQ ID NO: 1 is replaced.
  • Serine is replaced with valine, glutamate at position 60 of SEQ ID NO: 1 is replaced with methionine, lysine at position 42 of SEQ ID NO: 1 is replaced with arginine, valine at position 384 of SEQ ID NO: 1 is replaced with threonine, and the sequence. It is an amino acid sequence in which proline at position 102 of No. 1 is replaced with alanine, isoleucine at position 379 of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine, and methionine at position 447 of SEQ ID NO: 1 is replaced with valine.
  • One aspect of the present invention is an amino acid sequence having 85% or more identity, preferably 90% or more identity, more preferably 95% or more identity with any of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 6-9.
  • Each is a mutant RSV F protein containing the above amino acid substitutions, forming a disulfide bond between the cysteines, and having the ability to induce an antibody against the pre-type F protein of RSV.
  • the definition of an amino acid sequence having a predetermined identity with a predetermined amino acid sequence is the same as that described above.
  • Fusion protein Another aspect of the invention is a fusion protein comprising said mutant RSVF protein and at least a multimerized domain.
  • the fusion protein may contain a polypeptide other than the mutant RSVF protein and the multimerization domain, and the mutant RSVF protein and the polypeptide other than the multimerization domain interfere with the effect of the mutant RSVF protein.
  • the present invention is not particularly limited, and specific examples thereof include motifs such as a thrombin cutting motif and purification tags such as His-tag and StrepTagII.
  • the multimerization domain is not particularly limited as long as it is a polypeptide required for multimerization of the mutant RSVF protein, but a foldon domain for trimerization can be exemplified (Yizhi Tao et. Al. 1997). . Structure 5 (6): 789) (Frank S et. Al. 2001. Journal of molecular biology 308 (5): 1081).
  • Examples of the foldon domain include a foldon domain derived from bacteriophage T4 fibritin.
  • the amino acid sequence the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21 can be exemplified.
  • the fusion protein examples include a fusion protein having the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 6 to 9 in which the Foldon domain is linked to the C-terminal of the mutant RSVF protein.
  • those having the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 10 to 13 can be mentioned.
  • the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 10 to 13 are divided into the amino acid sequence of the F2 polypeptide and the amino acid sequence in which the folddon domain is linked to the C-terminal of the pep27-added F1 polypeptide (extracellular region). It is represented as one amino acid sequence.
  • the multimer is a fusion protein associated with a multimerization domain such as a foldon domain.
  • the multimer is preferably a triquantifier of the fusion protein.
  • polynucleotide Another aspect of the invention is the mutant RSVF protein, or a polynucleotide encoding the fusion protein.
  • the polynucleotide encoding the mutant RSV F protein was introduced with the desired mutation by standard genetic engineering techniques with reference to the polynucleotide sequence encoding the RSVF protein before the introduction of the mutation (SEQ ID NO: 74). It can be obtained as a polynucleotide.
  • the polynucleotide encoding the fusion protein is also a standard genetic engineering technique using a polynucleotide encoding the mutant RSVF protein and a polynucleotide encoding a polypeptide other than the mutant RSVF protein. Can be obtained by
  • polynucleotide sequences of SEQ ID NOs: 14 to 17 are exemplified as the polynucleotide sequences used for expressing the fusion protein of the present invention and producing it in a host.
  • SEQ ID NO: 14 is a polynucleotide sequence for expressing a fusion protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10 and producing it in a host, and a sequence encoding a signal peptide on the 5'end side of the sequence encoding the fusion protein. Is added.
  • SEQ ID NO: 15 is a polynucleotide sequence for expressing a fusion protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 11 and producing it in a host, and is a sequence encoding a signal peptide on the 5'end side of the sequence encoding the fusion protein. Is added.
  • SEQ ID NO: 16 is a polynucleotide sequence for expressing a fusion protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12 and producing it in a host, and a sequence encoding a signal peptide on the 5'end side of the sequence encoding the fusion protein. Is added.
  • SEQ ID NO: 17 is a polynucleotide sequence for expressing a fusion protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 13 and producing it in a host, and a sequence encoding a signal peptide on the 5'end side of the sequence encoding the fusion protein. Is added.
  • each codon may use any codon as long as it encodes the intended amino acid.
  • each codon may or may not be optimized, but it is preferably optimized.
  • the polynucleotide sequence of these polynucleotide sequences It may be a polynucleotide that hybridizes with a polynucleotide having a complementary sequence under stringent conditions.
  • the stringent condition includes, for example, a condition in which after Southern hybridization, washing is performed at 68 ° C., 0.1 ⁇ SSC, and a salt concentration corresponding to 0.1% SDS.
  • the expression unit may include an element necessary for expression such as a promoter sequence and a transcription termination signal sequence, as long as it contains a mechanism for expressing the polynucleotide, and is used in standard genetic engineering techniques. It may be an expression unit.
  • the expression unit may be included, for example, in a recombinant vector.
  • the recombinant vector include a plasmid vector and a viral vector, and examples thereof include a vector that can be expressed in prokaryotic cells, a vector that can be expressed in eukaryotic cells, and a vector that can be expressed in cells derived from mammals.
  • a host cell comprising said expression unit.
  • it is a host cell transformed with a recombinant vector containing the expression unit.
  • the host cell is not particularly limited as long as the protein encoded by the polynucleotide is expressed from the expression unit, and may be used in standard genetic engineering techniques. Specifically, prokaryotic cells such as Escherichia coli and Bacillus subtilis, eukaryotic cells, and cells derived from mammals can be exemplified.
  • the introduction of the polynucleotide into the host cell can be carried out by using a known means such as a calcium phosphate method, a DEAE dextran method, an electroporation method, or a lipofection method.
  • the mutant RSVF protein or fusion protein can be expressed to produce the mutant RSVF protein, fusion protein or a multimerizer thereof.
  • the mutant RSVF protein, fusion protein or quantifier thereof produced can be purified by known means.
  • an immunogen comprising said mutant RSVF protein, said fusion protein, said multiplier, or particle form below. That is, the mutant RSVF protein, the fusion protein, the multimer, or the particulate can be used as an immunogen.
  • the immunogen may contain any one of the mutant RSVF protein, the fusion protein, the multimer, or the particleized form, as long as it does not interfere with the effect of the mutant RSVF protein. Or two types may be included, or all may be included. Of these, a multimer, particularly a trimer, is preferable, and a particle is preferable, and it is used as an immunogen.
  • the production of the multimerized product is as described above, and the particleized product will be described in detail below.
  • the immunogen of the present invention may contain preservatives, excipients and the like contained in a standard immunogen.
  • the particle form is not particularly limited as long as it is a particle formed by aggregating two or more mutant RSVF proteins or multimerizers and can efficiently induce an antibody having a high neutralizing ability.
  • the mutant RSVF protein or the multimer is a particle formed by assembling two or more of them via a quantification domain.
  • the shapes of the particleized body and the particles are not necessarily limited to a spherical shape, and it is sufficient that the particles are aggregated in a certain direction.
  • the mutant RSVF protein or the fusion protein was further fused with a particleized domain, and the mutant RSVF protein or a multimer of the fusion protein aggregated via the particleized domain to form particles. It is preferable that it is a thing. It is preferable to use the mutant RSVF protein or a fusion protein for producing a particulate product in which a particle-forming domain is bound to the C-terminal of the fusion protein to form particles.
  • the fusion protein for producing particulates will be described later.
  • the particleized domain is preferably located closer to epitope I than to epitope ⁇ in terms of the three-dimensional structure of the mutant RSVF protein or multimer. That is, it is preferable that the particle is a particle in which the core is formed by the aggregation of the particleization domains, the epitope I of the mutant RSVF protein or the multimer is present inside, and the epitope ⁇ is exposed to the outside. Therefore, in the particleized product according to one aspect of the present invention, the mutant RSVF protein or the multimer is exposed at least the epitope ⁇ of the RSVF protein via the particleization domain, and at least the epitope I of the RSVF protein is exposed.
  • "to prevent the epitope I from being exposed” does not need to mean that the epitope I is not completely exposed, as long as the accessibility to the antibody to the epitope I and various immune cells is reduced.
  • the epitope ⁇ and the epitope I of the mutant RSV F protein are at both poles in the three-dimensional structure of the protein, so that the particleization domain forming the core is the epitope I rather than the epitope ⁇ . Due to the closeness, epitope I, which is an unnecessary epitope, is masked as an antigen, and epitope ⁇ , which is a useful epitope, can easily function as an antigen.
  • the unnecessary epitope is generally used in humans to neutralize RSV virus infection when the mutant RSV F protein, its fusion protein, their multimerizer, or their particleized product is used as an immunogen.
  • a useful epitope is generally the ability to neutralize RSV virus infection in humans when the mutant RSV F protein, its fusion protein, their multimerizer, or their particleized product is used as an immunogen. It means an epitope that induces an antibody having a high protein content, and specific examples thereof include epitope ⁇ and epitope V.
  • the particleization domain for particle formation is a polypeptide that pulverizes a mutant RSV F protein or multimer, which can bind to scaffold particles (eg, scaffold particle-binding peptide), and can be hydrophobically aggregated (eg, scaffold particle-binding peptide).
  • scaffold particles eg, scaffold particle-binding peptide
  • hydrophobically aggregated eg, scaffold particle-binding peptide
  • Examples include hydrophobic peptide chains) or those having self-association (eg, self-associating peptides).
  • the material of the scaffold particles is not particularly limited, and examples thereof include proteins having particle-forming ability, lipid bilayers, envelopes, liposomes, iosomes, virosomes, ferrosomes, gold nanoparticles, resins, silica, polymer micelles, and gels. Be done.
  • proteins having a particle-forming ability include viral proteins and variants of viral proteins that form VLPs (Virus-like particles) and VPs (Virus Particles) (for example, JP-A-2004-2313).
  • hepatocyte virus surface antigen protein modified to lack the original infectivity to hepatocytes and further modified to present a scaffold molecule, which protein is expressed in eukaryotic cells. Then, it is expressed and accumulated as a membrane protein on a membrane such as the endoplasmic reticulum membrane, and released as a VLP. More specifically, as the scaffold particle, a protein-derived VLP prepared by inserting the Fc binding domain (Z domain) of protein A into the PreS region of the hepatitis B virus surface antigen (HBs antigen) protein can be mentioned, for example. , Bionanocapsule-ZZ (Beacle's catalog number: BCL-DC-002) can be used.
  • a molecule that binds to the scaffold particle-binding peptide as a particleization domain is immobilized on the surface of the scaffold particle.
  • the Fc-binding domain of protein A can be mentioned, and the mutant RSVF protein or a multimer thereof can be bound via a scaffold particle-binding peptide.
  • the bond between the scaffold molecule and the scaffold particle-binding peptide may be either a covalent bond or a non-covalent bond.
  • covalent bonds include alkyne (acetylene, etc.)-azide bonds, cysteine-maleimide bonds, primary amine-NHS ester bonds, and charge-shift bonds (hydrazide), which are collectively referred to as click chemistry.
  • -Aldehyde bond is exemplified), a method of forming a covalent bond by a polypeptide (a method using SpyTag-SpyCatcher, etc.) and the like.
  • non-covalent bonds include ionic interactions, hydrophobic bonds, hydrogen bonds and the like.
  • a combination of Protein tag and Protein tag binding molecule (biotin-avidin, Fc-Protein A, GST (Glutathione S-transferase) -glutathione, MBP (Maltose binding protein) -maltose, His Tag-nickel, SBP tag -Streptavidin is exemplified), a combination of an antibody and an antigen, and the like.
  • the combination of the scaffold molecule and the scaffold particle-binding peptide is preferably a combination of the Fc domain of IgG1 (SEQ ID NO: 30) and the Fc-binding domain of protein A (Z domain).
  • the Fc domain of IgG1 may be used for the scaffold molecule, the Fc binding domain of protein A may be used for the scaffold particle binding peptide, the Fc domain of IgG1 may be used for the scaffold particle binding peptide, and the Fc binding domain of protein A may be used for the scaffold molecule. You may. As long as the scaffolding molecule or the scaffolding particle-binding peptide can be covalently or non-covalently bound to each other, partial fragments thereof can be used or modified.
  • a hydrophobic peptide chain is bound to the mutant RSV F protein or fusion protein, and the mutant RSV F protein or fusion protein forms particles via the hydrophobic peptide chain.
  • the hydrophobic peptide chain means a peptide chain containing a hydrophobic amino acid and self-assembling to form the particleized product, having 5 to 50 amino acid residues, preferably 10 to 30 amino acid residues.
  • examples of the highly hydrophobic amino acid include valine, leucine, phenylalanine, isoleucine and the like, with leucine or isoleucine being more preferable.
  • the proportion of hydrophobic amino acids in the hydrophobic peptide chain is preferably 20-60%.
  • the hydrophobic amino acid appears on the surface of the hydrophobic peptide chain.
  • the ratio of hydrophobic amino acids on the surface is preferably 10% or more, but if the ratio is too high, the hydrophobic amino acids on the surface are 50% or less, 30% or less, and 20% because they are not aggregated and secreted in cells. The following is preferable.
  • a higher ratio of hydrophobic amino acids on the inside is preferable because the structure of the hydrophobic peptide chain is stable.
  • any amino acid other than the hydrophobic amino acid may be used, but it is particularly preferable to contain 20% or more of histidine in order to enhance the secretory effect.
  • the hydrophobic peptide chain is preferably a repeating sequence of a peptide sequence consisting of 7 amino acids in which hydrophobic amino acids are arranged at the 1st, 3rd, and 5th positions. The number of repetitions is, for example, 2 to 5, preferably 2 to 3.
  • Preferred examples of the hydrophobic peptide chain include CC02, CC03, CC07 and CC08 (SEQ ID NOS: 40, 41, 42 and 43 in that order), of which CC07 (SEQ ID NO: 42) is more preferred.
  • the self-associating protein domain is bound to the mutant RSV F protein or fusion protein, and the mutant RSV F protein or fusion protein forms particles through the self-associating protein domain.
  • self-assembling proteins include hepatitis B virus core antigen (HBcAg), human papillomavirus capsid protein (HPV L1), hepatitis E virus capsid protein (HEV capsid), and so on.
  • the self-associating protein may be a self-associating partial fragment or a variant.
  • RSV F when bound to the RSV F protein or quantifier of the present invention, RSV F is located at a site far from the association surface for self-association of HBcAg and outside the self-association. It is preferred to bind the protein or multimer. Furthermore, when such a bond is made, it is preferable to insert a linker between the helix of the ⁇ 3 domain and the helix of the ⁇ 4 domain in order to obtain the original three-dimensional structure of HBcAg.
  • the linker is, for example, a polypeptide of 10 to 30 amino acids, for example, a GS linker.
  • the sequence in which the FLAG tag is bound to such a variant of HBcAg includes SEQ ID NO: 54.
  • the fusion protein for producing a particle product is a protein used for producing the particle product, and is a scaffold described above that is fused to the C-terminal of the mutant RSVF protein of the present invention or the C-terminal of the fusion protein. Includes pulverized domains such as particle-bound peptides, hydrophobic peptide chains, and self-associating protein domains.
  • the fusion protein for producing the present particle product is aggregated via the particle domain to form a particle product. When the distance between the C-terminals of the fusion protein constituting the multimer of the present invention changes by binding to the particle-forming domain, the particle-forming domain and the C-terminal (multimerized domain) are used.
  • the linker is not particularly limited, but is preferably a peptide having 5 to 20 amino acids, and more preferably a peptide having 5 to 10 amino acids.
  • the sequence is not particularly limited as long as it does not inhibit the vaccine effect of the fusion protein, and is, for example, a GS linker consisting of glycine and serine.
  • the position of the linker may be between the multimerization domain and the particleization domain of the mutant RSVF protein or fusion protein, and tag sequences may be included before and after the linker.
  • the tag sequence is not particularly limited, but a tag sequence usually used for protein purification is preferably used, for example, FLAG tag (SEQ ID NO: 28), His-tag (SEQ ID NO: 25), Strep-tagII (SEQ ID NO: 26) and the like. Can be exemplified.
  • the reading frame is aligned with the DNA encoding the mutant RSV F protein or the fusion protein, the DNA encoding the particleization domain, and, if necessary, the DNA encoding the linker or tag. It can be obtained by ligating and expressing in the host.
  • the expression and purification method can be carried out in the same manner as the expression and purification of the mutant RSV F protein or fusion protein.
  • a scaffold particle-binding peptide is bound to a mutant RSVF protein (sequences of their precursor proteins: SEQ ID NOs: 31 to 39, and a poly encoding the same.
  • SEQ ID NOs: 57-65 an embodiment in which a hydrophobic peptide chain is bound to a mutant RSVF protein (sequences of their precursor proteins: SEQ ID NOs: 44-49, and a polynucleotide sequence encoding it: SEQ ID NO: 66-71)
  • an autoassociative protein domain is bound to a mutant RSVF protein
  • the fusion protein for producing a particle product may contain a tag sequence such as a FLAG tag (DYKDDDDK: SEQ ID NO: 28) and a tag in which 3 amino acids (GGS) are added to the FLAG tag (GGSDYKDDDDK: SEQ ID NO: 29).
  • a tag sequence such as a FLAG tag (DYKDDDDK: SEQ ID NO: 28) and a tag in which 3 amino acids (GGS) are added to the FLAG tag (GGSDYKDDDDK: SEQ ID NO: 29).
  • the particleized product can be obtained by atomizing the particle product using the fusion protein for producing the particle product obtained above, and then purifying the particle product if necessary.
  • the fusion protein for producing particulates is mixed with the scaffold particles to form particles, and then the non-particleified mutant RSV F protein or its product is removed to obtain particles. This can be done by purifying the chemicals.
  • the scaffolding particles for example, HBsAg VLP (Beacle catalog number: BCL-DC-002) can be used.
  • the particleization step involves associating the fusion protein for producing a particulate product through the hydrophobic peptide chain to form particles, and then atomizing the fusion protein. This can be done by purifying the particulates, except for the unmodified RSV F protein or its products.
  • the particle formation step involves associating the fusion protein for the production of the particulate product through the self-associative protein domain to form particles. This can be done by purifying the granulated product, except for the unparticleted variant RSV F protein or its products.
  • the particleized product of the present invention it is desirable that, for example, 2 or more, preferably 10 or more, and more preferably 20 or more as a trimer are bonded per particleized material. Further, in the particleized product of the present invention, it is desirable that 0.0001 or more, preferably 0.0005 or more, and more preferably 0.001 or more as a trimer are bonded per 1 nm 2 surface area of the particleized product. ..
  • the surface area of the particleized body is the surface area of the particleized body when it is assumed that the particleized body is a sphere having a theoretical diameter measured by a dynamic light scattering method.
  • the number per particle body surface area can be calculated, for example, by dividing the number per particle body surface area by the particle body surface area.
  • particulates By producing particulates, selecting those having a low binding ability to epitope I and a high binding ability to epitope ⁇ , those skilled in the art can optimally count the number of particles per particle or per 1 nm 2 particle surface area. You can select the number of.
  • the RSV F protein or multimer used for granulation is not limited to the mutant RSV F protein or multimer of the present invention, and is not particularly limited as long as it can be used as an RSV vaccine.
  • a mutant RSV F protein other than the mutant RSV F protein of the present invention or a multimer thereof can also be used.
  • those described in International Publication No. 2017/172890 and International Publication No. 2017/109629 may be used. That is, the particle formation technique of the present invention can be generally used in the particle formation of RSV F protein or its multimer, and the particle form of the present invention includes the particle form of RSV F protein or its multimer.
  • the RSV F protein or its multiplier includes a particle form in which two or more particles are assembled via a particleization domain to form particles, and the particleization domain and the method of particleization include the above-mentioned mutant RSV F.
  • the particleization domains and methods described in Particleization of proteins or multipliers can be applied.
  • composition Another aspect of the present invention is a pharmaceutical composition comprising the expression unit or the immunogen as an active ingredient.
  • the expression unit or immunogen can be a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of respiratory syncytial virus infection.
  • RSV vaccine Another aspect of the invention is an RSV vaccine comprising said expression unit or said immunogen. This is also an embodiment in which the pharmaceutical composition according to the above aspect is an RSV vaccine.
  • the route of administration of the pharmaceutical composition is not particularly limited, and either parenteral administration (eg, intradermal, intramuscular, subcutaneous, transdermal, mucosal) or oral administration is administered. It can be administered to mammals by route. Examples of mammals include humans, mice, rats, rabbits, dogs, cats, cows, pigs, monkeys, and chimpanzees, but humans are preferred.
  • the dosage form of the pharmaceutical composition and the method for preparing the pharmaceutical composition are well known to those skilled in the art, and the pharmaceutical composition can be produced by blending the expression unit or the immunogen with a pharmaceutically acceptable carrier or the like. it can.
  • Pharmaceutically acceptable carriers are, for example, excipients, lubricants, binders and disintegrants in solid formulations, or solvents, lysis aids, suspending agents, isotonic agents, buffers in liquid formulations. Examples thereof include agents and pain-relieving agents. Further, if necessary, an appropriate amount of additives such as ordinary preservatives, antioxidants, colorants, sweeteners, adsorbents, and wetting agents can be used.
  • the pharmaceutical composition may include an adjuvant.
  • the adjuvant include a gel type, a bacterial cell type, an oil emulsion type, a polymer nanoparticle type, a synthetic type, and a cytokine type.
  • the gel type include aluminum hydroxide, aluminum phosphate, calcium phosphate and the like.
  • the bacterial cell type include CpG, cholera toxin, Escherichia coli hyperthermic toxin, pertussis toxin, and Muramyl dipeptide (MDP).
  • MDP Muramyl dipeptide
  • the oil emulsion type include Freund's incomplete adjuvant, MF59, and SAF.
  • Examples of the polymer nanoparticle type include immunostimulatory complexes, liposomes, biodegradable microspheres, and saponin-derived QS-21.
  • Examples of the synthetic type include nonionic block copolymers, muramyl peptide analogs, polyphosphazene, and synthetic polynucleotides.
  • Examples of the cytokine type include IFN- ⁇ , IL-2, IL-12 and the like.
  • Dosage forms for parenteral administration include injectable preparations (eg, drip injections, intravenous injections, intramuscular injections, subcutaneous injections, intradermal injections, intracerebral preparations, intraspinal administration preparations), external preparations.
  • injectable preparations eg, drip injections, intravenous injections, intramuscular injections, subcutaneous injections, intradermal injections, intracerebral preparations, intraspinal administration preparations
  • external preparations eg, ointment, poultice, lotion
  • suppository inhalant eye agent, eye ointment, nasal drop, ear drop, liposome agent and the like can be exemplified.
  • Dosage forms for oral administration are solid or liquid dosage forms, specifically tablets, coated tablets, pills, fine granules, granules, powders, capsules, syrups, emulsions, suspensions, troches. Examples include agents.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is preferably in
  • the effective dose of the pharmaceutical composition is, for example, pharmacological findings such as administration route, type of disease, degree of symptom, age, sex, weight of patient, severity of disease, pharmacokinetics and toxicological characteristics. It is decided by the doctor based on various factors such as whether or not a drug delivery system is used and whether it is administered as a part of a combination of other drugs.
  • Example 1 The formation of covalent bonds (disulfide bonds) using cysteine is useful for stabilizing the structure of proteins.
  • F protein RSV F protein
  • International Publication No. 2017/172890, International Publication No. 17 International Publication No. 17
  • 2017/109629 replaces amino acids that are members of secondary structure with cysteine and forms disulfides in distant parts, so the resulting mutants have a natural structure (natural F protein is a protein).
  • natural F protein is a protein
  • the precursor protein of the F_native antigen is a polypeptide (amino acid numbers 1 to 513 of SEQ ID NO: 1) obtained by removing the transmembrane region and the intracellular region of the F1 polypeptide from the natural F0 protein of the A2 strain. , P102A, I379V and M447V, a polypeptide in which the C-terminal side of the polypeptide contains the Foldon domain (SEQ ID NO: 21), Thrombin recognition sequence, His tag and StrepTagII (SEQ ID NO: 22) are fused in order. Is.
  • mutants have mutations of P102A, I379V and M447V because they were prepared based on the precursor protein of F_native antigen.
  • the F_native precursor protein undergoes processing during the expression process, and the signal peptide and pep27 region are shed.
  • the F_native antigen is produced by expressing a polynucleotide (SEQ ID NO: 5) encoding a precursor protein (SEQ ID NO: 4) of the F_native antigen using mammalian cells as a host.
  • the F_native antigen is a precursor protein of the F_native antigen (SEQ ID NO: 4) that forms a quaternary structure after being processed during the expression process.
  • the signal peptide and pep27 region were shed by processing, and the remaining F2 polypeptide sequence and F1 polypeptide (extracellular region), Foldon domain, Thrombin recognition sequence, His tag, and Strep-Tag II-containing sequence were bound by disulfide bonds.
  • the homotrimer is formed mainly by the binding force generated by the foldone domain.
  • the specific method for producing the F native antigen is shown below.
  • the above polynucleotide (SEQ ID NO: 5) was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) by standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for mammalian cells expressing the precursor protein of the F_native antigen was constructed.
  • the vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • F_native antigen expression was performed by mammalian cell secretion expression using Expi293 Expression System (Thermo Fisher Scientific).
  • the purified vector is introduced into Expi293 cells using ExpiFectamin293Reagent, which is a gene transfer reagent of the same kit, and cultured for about 5 days to secrete and express the encoded F_native antigen, centrifuge and pore size 0.22 ⁇ m. Only the supernatant component was obtained using the filter of.
  • F_native antigen Purification of the F_native antigen was performed by affinity chromatography using Ni Sepharose High Performance (GE Healthcare). After reacting the Ni carrier with a substance obtained by diluting the above culture supernatant component with a binding buffer (20 mmol / L Tris-HCl pH 7.4, 500 mmol / L NaCl, 20 mmol / L Imidazole) about 3 times for a whole day and night. , Elution buffer (20 mmol / L Tris-HCl pH 7.4, 500 mmol / L NaCl, 500 mmol / L Imidazole) to elute each antigen. Then, the solvent was replaced with PBS (pH 7.4) using an ultrafiltration membrane, and the antigen was used as an F_native antigen.
  • a binding buffer (20 mmol / L Tris-HCl pH 7.4, 500 mmol / L NaCl, 20 mmol / L Imidazole
  • the binding property of each antigen to each antibody was measured using Octet QK384 (ForteBio) under the conditions of PBS (pH 7.4), 25 ° C., and 1000 rpm.
  • Each antibody solution was applied to the Protein A sensor chip (ForteBio) equilibrated with PBS (pH 7.4) for 180 sec to bind each antibody to the sensor chip, and then each antigen solution was applied for 180 sec.
  • the amount of increase in the detected value at time was taken as the value of the binding signal of each antigen to each antibody.
  • As the antibody to be used for the sensor chip a D25 antibody capable of specifically detecting epitope ⁇ was used.
  • the value of the binding signal was normalized by determining the ratio to the value of the binding signal when Palivizumab (Synagis intramuscular injection, AbbVie), which can bind regardless of the conformational change of the F antigen, was used.
  • the antigens FH_08 and FH_09 containing the mutant protein in which the cysteine point mutation was introduced at two places for the formation of the disulfide bond have significantly preserved epitope ⁇ as compared with the F_native antigen containing the F protein before the mutation introduction. Results were obtained indicating that the sex was improved (Fig. 1).
  • Example 2 The native F protein first undergoes cleavage of the first furin recognition site to form a monomeric structure, and then undergoes cleavage of the second furin recognition site to eliminate the pep27 region, thereby promoting trimerization. There is a report that it will be done (Anders Krarup et al. 2015. Nature communications 6: 8143). However, since the pep27 region is highly conserved in sequence length and amino acid type among virus strains isolated from nature, it is considered that it may have an indispensable effect on the formation of the three-dimensional structure of the antigen. Therefore, we decided to introduce a mutation into the second furin recognition site to inhibit cleavage of the pep27 region and to investigate the effect of the mutation on trimer formation.
  • FH_08 + R135N, R136N is a precursor protein of the antigen FH_08, in which arginine at position 135 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to asparagine and arginine at position 136 is mutated to asparagine. Indicates that you are doing.
  • FH_09 + R135N, R136N means that in the precursor protein of antigen FH_09, arginine at position 135 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to asparagine, and arginine at position 136 is mutated to asparagine. Represents.
  • GSGSGS SEQ ID NO: 18
  • GGGGS GGGGS 2
  • GGGGS GGGGS 3
  • a polynucleotide encoding the precursor protein of each of the above antigens was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed. The vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • Example 2 Expression and purification of each antigen were carried out in the same manner as in Example 1.
  • the binding property of each antigen to each antibody was also measured by the same operation as in Example 1, but AM14 antibody capable of detecting pre-F trimer formation was added as an antibody to be used for the sensor chip.
  • AM14 antibody capable of detecting pre-F trimer formation was added as an antibody to be used for the sensor chip.
  • For the binding signal values of D25 antibody and AM14 antibody determine the ratio to the binding signal values when using Synagis antibody (AbbVie, Synagis intramuscular injection) that can bind regardless of the conformal change of F antigen. Normalized with.
  • the antigens FH_21, FH_24, and FH_25 containing the mutant protein to which the mutation was added to the second furin recognition site are trimeric with the preservation of epitope ⁇ as compared with the antigen FH_08 before the addition of the mutation. Results were obtained indicating that the formation was improved. Among them, the improvement in trimer formation was remarkable in the antigen FH_21, which is closer to the pep27 region of the F_native antigen, than in the case where the pep27 region was replaced with an artificial linker (FH_24, FH_25) (Figs. 2 and 3).
  • the amino acids at positions 189 and 190 of the precursor protein of F_native antigen are threonine and serine, which are hydrophilic amino acids in that they have a hydroxyl group in the side chain.
  • the amino acids located proximal to the three-dimensional structure of the amino acids at positions 189 to 190 are isoleucine at position 57, isoleucine at position 167, leucine at position 171, valine at position 179, and leucine at position 260. Since all of these are hydrophobic amino acids, it is possible that their structural stability is impaired.
  • Table 3 summarizes the mutation details of the precursor protein of each antigen prepared below.
  • “FH_21 + T189I” in Table 3 indicates that the threonine at position 189 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to isoleucine in the precursor protein of the antigen FH_21.
  • “FH_21 + T189V” indicates that in the precursor protein of antigen FH_21, threonine at position 189 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to valine.
  • FH_21 + T189I, S190V indicates that threonine at position 189 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to isoleucine and serine at position 190 is mutated to valine in the precursor protein of antigen FH_21.
  • FH_21 + T189L, S190V indicates that threonine at position 189 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to leucine and serine at position 190 is mutated to valine in the precursor protein of antigen FH_21.
  • FH_21 + T189V, S190V indicates that threonine at position 189 and serine at position 190 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 are mutated to valine in the precursor protein of antigen FH_21.
  • FH_50 + K42R, V384T indicates that in the precursor protein of the antigen FH_50, the lysine at position 42 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 is mutated to arginine and the valine at position 384 is mutated to threonine.
  • a polynucleotide encoding the precursor protein of each of the above antigens was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed. The vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • each antigen FH_50, FH_51, FH_52, FH_53, FH_55 to which the mutation to the hydrophobic amino acid (V, I, L) at positions 189 to 190 was added has an epitope as compared with the antigen FH_21 before the mutation was added. Results were obtained showing that the expression level was significantly improved while maintaining the storage stability of ⁇ and the formation of trimers.
  • the antigen FH_82 to which two point mutations (K42R, V384T) extracted from natural mutations that can occur in natural viruses have been added, has a significantly higher expression level while maintaining the conservation of epitope ⁇ and the formation of trimers. Results showing improvement were obtained (FIGS. 4, 5, and 6).
  • the amino acid at position 60 of F_native precursor protein is glutamic acid, and since it belongs to acidic amino acids, it is generally known that the solvent is negatively charged under neutral conditions. This amino acid is adjacent to aspartic acid at position 194, which is also negatively charged under neutral conditions in terms of three-dimensional structure, and it was considered that the structure may be destabilized by the proximity of the negative charge. Therefore, we decided to carry out a mutation that changes the amino acid at position 60 to an amino acid other than the acidic amino acid in the amino acid sequence of F_native precursor protein.
  • a polynucleotide encoding the precursor protein of each of the above antigens was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed. The vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • the antigen ⁇ FP furin wt F ecto (Kurt A. Swanson et al. 2014. Journal of Virology. 88 (20): 11802), which is known to have a post-F trimer structure, was also prepared. It was decided to use it for the evaluation of the antigen.
  • Table 5 summarizes the mutations of precursor protein of the antigen prepared below.
  • the precursor protein of antigen FH_81-85 is the precursor protein of antigen FH_50 introduced with mutations of E60M, K42R + V384T or E60M + K42R + V384T, respectively.
  • a polynucleotide encoding the precursor protein of each of the above antigens was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques.
  • the precursor protein of the antigen F_DS-Cav1 has an amino acid sequence consisting of SEQ ID NO: 23, and the precursor protein of ⁇ FP furin wt F ecto has an amino acid sequence consisting of SEQ ID NO: 24. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed.
  • the vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • the antigens FH_50, FH_81, FH_82, and FH_85 have the same ability to neutralize virus infection, while the conservation of epitope ⁇ and the formation of trimers are not so different from those of the antigen F_DS-Cav1 in the prior literature.
  • Results indicate that Epitope I, which is known to induce significantly lower antibodies, is rarely detected (FIGS. 9, 10, 11). This is because vaccines carry the risk of exacerbating symptoms by activating immune cells that contribute little to virus neutralization, but the introduction of newly found mutations is higher than the introduction of DS-Cav1 mutations. It suggests that the risk is low.
  • Antigen adsorption operation was performed on 3 healthy adult sera using magnetic beads Dynabeads His-Tag Isolation and Pulldown (Thermo Fisher Scientific, 10103D).
  • 20 ⁇ g of antigens F_DS-Cav1, FH_50, FH_81, FH_82 or FH_85 were added to and bound to 45 ⁇ L of beads in a bead solution washed twice with PBS (pH 7.4), and then bovine serum albumin was added. Blocked at.
  • 100 ⁇ L of each healthy adult serum was diluted 10-fold with PBS (pH 7.4), beads were added and incubated (4 ° C, 1 hour, rotated), and then the beads were removed to obtain an antigen. Removal of the binding antibody was performed.
  • a 4-fold dilution series was prepared by appropriately adding buffer to healthy adult serum or healthy adult serum after antigen adsorption operation, and the mixture was added to a plate and incubated (room temperature, 1 hour, standing). After that, the diluted serum is removed, a peroxidase-binding anti-human IgG antibody (Jackson Immuno Research, 709-035-149) is bound, and the color is further developed with a standard peroxidase detection reagent, and then the color is developed by absorbance measurement using a standard plate reader. The strength of was calculated.
  • the relationship between the serum dilution rate and the absorbance was obtained by segmented linear interpolation between the measurement points, and the inverse number of the dilution rate at which the absorbance was 0.2 was used as the antibody titer of the antibody that binds to post-F, and the serum before the adsorption operation was used.
  • the relative value of the decrease in serum antibody titer after the adsorption operation when the antibody titer was set to 100% was taken as the adsorption rate (Fig. 12).
  • a 5-fold dilution series was prepared by appropriately adding PBS (pH 7.4) to healthy adult serum or healthy adult serum after antigen adsorption operation, and RS virus was mixed and incubated (room temperature, 30 minutes, static). After placement), 4 ⁇ 10 4 cells were seeded in each well of a 96-well plate, added to Vero cells cultured for 1 day, and incubated (37 ° C., humidity, 2 hours, standing).
  • 1% (v) of Sodium Pyruvate Solution (Nacalai, 06977-34) and Antibiotic-Antimycotic Mixed Stock Solution (Nacalai, 09366-44) were added to DMEM, High Glucose (Thermo Fisher Scientific, 11965). / v) 100 ⁇ L of the added medium was added per well, and the mixture was further incubated (37 ° C., humidity, 16 hours, standing).
  • the cells were fixed with paraformaldehyde and permeabilized with Triton X-100 (Nakarai, 35501-15), and the cells were subjected to Anti-RSV Antibody, fusion protein, all type A, B strains, clone 133-. Stain the nuclei of infected cells and whole cells with 1H, Alexa Fluor 488 (Merck, MAB8262X) and Heochst 33258 (Dojindo, 343-07961) and in the infected cell region with Imager IN Cell Analyzer (GE Healthcare). The number of virus-infected cells was counted by counting the number of nuclei.
  • the reciprocal of IC 50 was used as the virus infection neutralizing titer.
  • the virus infection neutralizing titer of serum before the adsorption operation was set to 100%, the relative value of the decrease in the virus infection neutralizing titer after the adsorption operation was taken as the adsorption rate (Fig. 13).
  • the antigens FH_50, FH_81, FH_82, and FH_85 have lower binding properties of the post-F recognition antibody present in healthy adult serum than the antigen F_DS-Cav1 of the prior literature, and the antibody is halved in the adsorption operation. It was shown that only the degree of binding was possible. Nevertheless, almost all the antibodies contributing to the virus infection neutralizing ability were bound like F_DS-Cav1, and it was also shown that the antibody remaining by the adsorption operation had almost no virus infection neutralizing ability.
  • Mouse immune serum was obtained by immunizing BALB / cAnNCrlCrlj (Japan Charles River) (female, 7 weeks old) with each mutant protein.
  • Antigens FH_50, FH_81, FH_82, FH_85 or F_DS-Cav1 (antigen concentration: 0.80 mg / mL) dissolved in PBS (pH 7.4) and aluminum hydroxide (InvivoGen, vac-alu-250) were mixed well in equal amounts.
  • the solution was intramuscularly administered to the hind limbs and thighs of the mice on the 0th day of breeding and the 21st day of breeding (5 animals per group).
  • 50 ⁇ L of each mouse immune serum was diluted 20-fold with PBS (pH 7.4), beads were added and incubated (4 ° C, 1 hour, rotated), and then the beads were removed to obtain an antigen. Removal of the binding antibody was performed.
  • a 5-fold dilution series was prepared by appropriately adding a buffer to the mouse immune serum or the mouse immune serum after the antigen adsorption operation, and the mixture was added to a plate and incubated (room temperature, 2 hours). Then, the diluted serum was removed, a peroxidase-binding anti-mouse antibody antibody (DaKo, P0161) was bound, and the color was further developed with a standard peroxidase detection reagent, and then the intensity of color development was determined by absorbance measurement with a standard plate reader.
  • a peroxidase-binding anti-mouse antibody antibody DaKo, P0161
  • the relationship between the serum dilution rate and the absorbance was obtained by segmental linear interpolation between the measurement points, and the inverse number of the dilution rate at which the absorbance was 0.2 was used as the antibody titer of the detected anti-F antigen antibody, and the serum before the adsorption operation was used.
  • the relative value of the decrease in serum antibody titer after the adsorption operation when the antibody titer was 100% was taken as the adsorption rate (Fig. 14).
  • the antigens FH_50, FH_81, FH_82, and FH_85 had a smaller induction rate of the post-F recognition antibody than the antigen F_DS-Cav1 in the prior literature.
  • the results suggest that when the antigens FH_50, FH_81, FH_82, and FH_85 are used as vaccine antigens, the risk of inducing antibodies that do not contribute to virus infection protection is low.
  • Example 6 Comparison with the preceding product 2
  • the F protein moieties of the antigens FH_50, FH_81, FH_82, FH_85 carried out in Example 5 all contain mutations in L141C and L373C.
  • the mutation was introduced in Example 1 to introduce a disulfide bond, but in the previous patent (International Publication No. 2017/109629), the introduction of a disulfide bond into a relatively close site (Mutant ID: pXCS524. L142C, N371C) have been investigated, and further mutated optimized antigens (Mutant ID: pXCS881.
  • the antigens FH_08, FH_82, and FH85 used were those described in Example 1, Example 3, and Example 5, respectively.
  • the polynucleotide encoding these precursor proteins is inserted into the pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques, and the nucleotide sequence indicating that the target DNA sequence is inserted is inserted. Confirmed by analysis, an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed. The vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • the antigen FH_08 induces an antibody having a significantly lower ability to neutralize virus infection, while having better storage of epitope ⁇ and formation of trimers than the antigen Pf524 into which the mutation of the previous patent has been introduced.
  • the optimized antigens FH_82 and FH_85 are superior to the antigens Pf881 into which the mutation of the previous patent, which is also optimized, have been introduced, while the preservation of epitope ⁇ and the formation of trimers are superior, while they are infected with virus. Results indicate that epitope I, which is known to induce antibodies with significantly lower harmony, is rarely detected.
  • the antigens FH_82 and FH_85 had a smaller induction rate of the post-F recognition antibody than the antigen Pf881 into which the mutation of the previous patent was introduced.
  • the results suggest that they preferentially induce antibody groups that are considered to have a higher effect on virus neutralization than Pf881.
  • Example 7 Particleing of antigen using scaffold particles
  • an antigen site recognized by a post-F recognition antibody such as an epitope I recognition antibody. It is considered effective to reduce the accessibility of antibodies against the virus and various immune cells by the steric disorder effect. Therefore, we considered the possibility of obtaining the steric hindrance effect by immobilizing the antigen on appropriate scaffold particles so that the recognition site of the post-F recognition antibody is on the inside.
  • the density is sparse because the interval between the antigens is longer than a certain length, or a flexible linker having a length longer than a certain length is provided between the scaffold particle and the antigen. If it is introduced, it is possible that the above-mentioned steric hindrance effect cannot be obtained. Therefore, we decided to investigate GS linkers of multiple lengths using HBsAg VLP, which is considered to be feasible for relatively high-density antigen presentation.
  • Bionanocapsule-ZZ (Beacle, BCL-DC-002) capable of binding an Fc fusion protein was used.
  • the precursor protein of the antigen F_DS-Cav1-Fc (SEQ ID NO: 31), the precursor protein of FH_82-Fc (SEQ ID NO: 32), and the precursor protein of FH_85-Fc (SEQ ID NO: 33) were prepared.
  • the GS linker (GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS (SEQ ID NO: 75), GGGGSGGGGS (SEQ ID NO: 19) or GGGGS (SEQ ID NO: 27) immediately before the Fc sequence ) was inserted, and it was prepared by the following method based on the corresponding precursor protein (SEQ ID NOs: 34 to 39).
  • the polynucleotide encoding each precursor protein was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing the precursor protein of each antigen was constructed.
  • the vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • Expi293 Expression System (Thermo Fisher Scientific). Each purified vector is introduced into Expi 293 cells using Expi Fectamin 293 Reagent, which is a gene transfer reagent of the same kit, and cultured for about 4 to 5 days to secrete and express each antigen encoded by centrifugation and pore size. Only the supernatant component was obtained using a 0.22 ⁇ m filter. Purification of each antigen was performed by a standard affinity purification method using a Protein A purification column. After purification, the solvent was replaced with PBS (pH 7.4) by using an ultrafiltration membrane.
  • PBS pH 7.4
  • Each prepared antigen is mixed with HBsAg VLP at a ratio of about 135 molecules (about 45 molecules in trimer) on average per HBsAg VLP particle, and allowed to stand at room temperature for 1 hour to form scaffold particles. Fixed. At this time, it was confirmed by performing Blue Native PAGE that almost no unimmobilized antigen was present.
  • Table 7 summarizes the antigen used for the evaluation in this example and the particleized product in which the antigen is immobilized on the scaffold particles (hereinafter, may be referred to as “particleted antigen”).
  • any of the GS linker insertions carried out improved the formation of the trimer while maintaining the binding property of the antibody to the epitope ⁇ , and had the effect of diminishing the detected value of the epitope I.
  • the attenuating effect of epitope I detection was shown to be reduced when too long a GS linker was inserted between the scaffold particles and the antigen.
  • a length of about GGGGSGGGGS does not have a significant effect, but a longer length of GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS (SEQ ID NO: 75) reduces the effect of attenuating epitope I detection. It was seen.
  • the theoretical diameter of the particleized antigen FH_85-VLP was estimated to be 89.28 nm by a dynamic light scattering method using Zetasizer ⁇ V (Malvern) (Fig. 25). Since an average of about 135 molecules (about 45 molecules of the trimer) is presented per particle, the average molecular density per 1 nm 2 theoretical surface area is calculated to be about 0.005 molecules (about 0.0018 molecules as a trimer). it can.
  • the desired steric hindrance effect can be achieved if the density is such that at least about 0.005 molecules or more of antigen molecules are present per 1 nm 2 theoretical surface area estimated by the dynamic light scattering method. Similar results were obtained with DS-Cav1-VLP and FH_82-VLP (Fig. 25).
  • each particleized antigen use a well-mixed solution of PBS or PBS and aluminum hydroxide (InvivoGen, vac-alu-250) in equal amounts.
  • the antigen is intramuscularly administered to the hind limbs and thighs of mice twice at intervals of about 3 weeks, and blood is obtained about 3 weeks after the second administration.
  • the obtained blood is incubated at room temperature and then centrifuged to collect serum.
  • An ELISA test in which the antigens of each conformation are stratified is performed to confirm the degree of induction of antibodies that bind to pre-F or post-F in serum.
  • the antigen adsorption operation and the reduction rate of the antigen recognition antibody by the antigen adsorption operation are measured.
  • the method conforms to the method shown in Example 5.
  • this particle formation confirms the effect of preferentially inducing antibody groups that are considered to have a high effect on virus neutralization.
  • Example 8 Particleification of antigen using hydrophobic peptide chain
  • the effect of reducing the accessibility of antibodies and various immune cells to the antigen site recognized by the post-F recognition antibody shown in Example 7 by the steric hindrance effect is , I thought that it could be realized by a method that does not use scaffold particles. Therefore, in this example, it was decided to investigate particle formation by a hydrophobic assembly using a hydrophobic peptide chain (a polypeptide chain containing a hydrophobic amino acid).
  • hydrophobic peptide chain used needs to have the property of hydrophobically assembling under the conditions of a vaccine preparation or in vivo, but it is difficult to put it into practical use with a sequence that significantly reduces the efficiency of antigen secretion and expression by cells.
  • hydrophobic polypeptide chain should be investigated. And said.
  • the sequence containing the Thrombin recognition sequence, His tag, and Strep-Tag II (SEQ ID NO: 22) in the precursor protein of the antigen F_DS-Cav1 is subjected to various hydrophobic peptide chains (SEQ ID NOs: 40 to 43) and the FLAG tag which is a tag for purification.
  • An antigen was prepared based on the precursor protein substituted with the sequence consisting of (SEQ ID NOs: 44 to 47).
  • the hydrophobic peptide sequences examined are summarized in Table 8-1.
  • the polynucleotide encoding each precursor protein was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing each precursor protein was constructed.
  • the vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • each antigen was carried out in the same manner as in Example 7. Purification of each antigen was performed by affinity purification using ANTI-FLAG M2 Affinity Gel (Sigma, A2220). Although FLAG peptide was used for elution of affinity purification, FLAG peptide was removed from each antigen sample by using an ultrafiltration membrane. PBS (pH 7.4) was used as the solvent. Whether or not the antigen was secreted and expressed was determined by performing general SDS-PAGE after purification and confirming whether or not the target protein could be separated and purified with high purity. In addition, the feasibility of particle formation was confirmed by performing a general Blue Native PAGE after purification.
  • the difference between the hydrophobic peptide chains of F_DS-Cav1-CC02 and F_DS-Cav1-CC03 is that the non-hydrophilic amino acid alanine is replaced by the hydrophilic amino acid lysine or glutamic acid. Therefore, we first considered changing the alanine of F_DS-Cav1-CC02 to histidine, which has moderate hydrophilicity and a pK of about pH6. Since it is known that the pH of the solvent at the time of preparation is near neutral, while the pH in the secretory pathway of cells is lower, the peptide chain containing histidine is relatively high at the time of secretory expression. It was expected to have hydrophilic properties and relatively hydrophobic properties at the time of formulation.
  • the sequence containing the Thrombin recognition sequence, His tag, and StrepTagII (SEQ ID NO: 22) in the precursor proteins of the antigens FH_82 and FH_85 is arranged into a sequence consisting of the optimal hydrophobic peptide chain (SEQ ID NO: 42) and the FLAG tag which is a purification tag.
  • Antigens were prepared based on the substituted precursor proteins (SEQ ID NOs: 48 and 49).
  • the polynucleotide encoding the precursor protein was inserted into a pcDNA3.4 vector (Thermo Fisher Scientific) using standard genetic engineering techniques. It was confirmed by nucleotide sequence analysis that the target DNA sequence was inserted, and an expression vector for each mammalian cell expressing each precursor protein was constructed.
  • the vector for introduction into cells was purified by standard plasmid vector purification methods.
  • each antigen was carried out in the same manner as in the examination of the hydrophobic peptide chain. Purification of each antigen was carried out in the same manner as in the examination of hydrophobic peptide chains.
  • Table 8-2 summarizes the antigens (sometimes referred to as "particulate antigens") used for evaluation in this example.
  • the theoretical diameters of the antigen FH_85 and the particleized antigen FH_85-CC07 were estimated by dynamic light scattering using a DynaPro Plate Reader III (Wyatt) and found to be 13.8 nm and 60.0 nm (Fig. 31).
  • the molecular weight ratio of two particles is proportional to the 2nd to 3rd power of the theoretical diameter ratio, so the molecular weight of FH_85-CC07 is about 20 to 80 times the molecular weight of FH_85. Is estimated.
  • FH85-CC07 is considered to present about 60 to 240 molecules per particle (about 20 to 80 molecules as a trimer), and the average molecular density per 1 nm 2 theoretical surface area is 0.005 to 0.022. It can be calculated to be about a molecule (about 0.0017 to 0.0073 molecules as a trimer). Similar results were obtained with FH_82-CC07 (Fig. 31). Therefore, it was estimated that the pulverized antigen using the hydrophobic peptide chain had an antigen density equal to or higher than that of the pulverized antigen using the scaffold particles shown in Example 6.
  • Mouse immune serum was obtained by immunizing BALB / cAnNCrlCrlj (Japan Charles River) (female, 6 weeks old) with each antigen and particleized antigen.
  • Antigen or particulate antigen dissolved in PBS (pH 7.4) F_DS-Cav1, F_DS-Cav1-CC07, FH_82-CC07 or FH_85-CC07 (antigen concentration: 0.40 mg / mL) on the 0th and 21st days of breeding
  • 50 ⁇ L was intramuscularly administered (5 animals per group).
  • Example 9 Particleification of antigen using self-associating protein domain
  • the accessibility of antibodies and various immune cells to the antigen site recognized by the post-F recognition antibody shown in Examples 7 and 8 is reduced by the steric disorder effect. It was considered that the effect of causing the antigen could be realized by fusion of the self-associating protein domain to the C-terminal side of the antigen. In particular, it was considered that by regularly aligning the antigens using the self-associating protein domain, a higher steric hindrance effect than the particle formation by the hydrophobic assembly shown in Example 8 could be obtained. Therefore, in this example, it was decided to investigate particle formation utilizing the self-association of the core antigen (HBcAg) of hepatitis B virus.
  • HBcAg core antigen
  • sequence containing the Thrombin recognition sequence, His tag, and Strep-Tag II in the antigen F_DS-Cav1 is GS linker (GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS) (SEQ ID NO: 75), the self-association domain of HBcAg (SEQ ID NO: 50), In the one replaced with the peptide sequence consisting of the and His tags (SEQ ID NO: 51), self-association was not observed although expression was observed (verification result by BlueNativePAGE).
  • the N-terminal of the self-association domain of HBcAg exists near the binding surface when HBcAgs self-associate with each other, and it is considered that self-association may be hindered by fusing a large protein to the N-terminal. .. Therefore, in order to place the RSVF antigen moiety at a position far from the binding surface at the time of self-association, a site (between the helix existing in the ⁇ 3 domain and the ⁇ 4 domain) in which the particles protrude outward when HBcAg self-associates. It was decided to divide it into the C-terminal side and the N-terminal side rather than the partial).
  • the sequence containing the Thrombin recognition sequence, His tag, and StrepTagII (SEQ ID NO: 22) in the precursor proteins of the antigens F_DS-Cav1 and FH_85 is GS linker (GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS) (SEQ ID NO: 75), and the self-association domain of HBcAg.
  • a 10-fold dilution series was prepared by adding appropriate buffer to each antigen, added to the plate and incubated (room temperature, 2 hours, standing). After that, the added antigen solution is removed, peroxidase-binding anti-FLAG M2 antibody (Sigma-Aldrich, A8592) is bound, and the color is further developed with a standard peroxidase detection reagent, and then the intensity of color development is measured by absorbance measurement with a standard plate reader. Asked. The relationship between the dilution rate of the antigen and the absorbance was obtained by segmental linear interpolation between the measurement points, and the reciprocal of the dilution rate at which the absorbance was 0.2 was used as the binding force of the added antigen to the solidified antibody.
  • the value obtained by dividing the binding force to the D25 antibody by the binding force to Palivizumab was defined as the epitope ⁇ detection signal, and the value obtained by dividing the binding force to the 131-2A antibody by the binding force to Palivizumab was defined as the epitope I detection signal (FIGS. 34 and 35). ..
  • the pulverized antigen aggregated by the self-associating protein domain in which pre-F is added to the C-terminal of the amino acid sequence has further the binding property of the antibody to epitope ⁇ than the pulverization by the hydrophobic peptide chain. Results have been shown to improve and attenuate the detection of epitope I, which is known to induce antibodies with significantly lower ability to neutralize viral infections. The above results suggest that this particle formation improves the effect of preferentially inducing antibody groups that are considered to have a high effect on virus neutralization.

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Abstract

本発明によれば、変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換であり、前記システイン間でジスルフィド結合が形成される、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が提供される。また、変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸の非酸性アミノ酸への置換である、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が提供される。

Description

変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質及びその利用
　本発明は、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質及びその利用に関する。
　呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）感染症は世界的に流行を見せている呼吸器感染症である。特に5歳未満の児において重症化リスクが高く、ＲＳＶ感染によって年間３千万人以上が下気道炎に至り，年間３百万人以上が入院治療を要している。そこで、ＲＳＶ感染症を予防するワクチンの開発に向けて、これまでに多くの取り組みがされてきた。古くは1965-66年のシーズンで、ホルマリンで不活化したウイルスをワクチン抗原とした臨床試験（対象は乳児）を実施したが、感染症を低減するどころか逆にRSV感染による入院率を16倍増加する結果となった。原因の一つとして、不活化処理の過程でウイルスの表面抗原の一つであるF抗原を変性させ、RSV中和活性の低い抗体ばかりを誘導することで免疫反応をかえって妨げたことが考えられている。その後も様々な取り組みがなされたが、未だに有効なワクチンの開発には至っていない。
　そのような状況の中、健常成人はＲＳＶに感染してもほとんど重症化しないことに注目し、健常成人血清を用いた調査が行われた。調査の結果、健常成人血清には高いウイルス感染能中和効果があること、そしてその感染中和効果は抗ＲＳＶ　Ｆタンパク質抗体に起因することが分かった（非特許文献１）。ＲＳＶ　Fタンパク質の研究も進められ、成熟したFタンパク質は準安定な融合前コンホメーション（本明細書では、「pre-F」や「pre型Fタンパク質」と称することがある。）と最安定な融合後コンホメーション（本明細書では、「post-F」や「post型Fタンパク質」と称することがある。）を持ち、融合前コンホメーションはその不安定さのために、一般的なワクチン製剤溶液中では融合後コンホメーションに早期にリフォールディングする傾向があることがわかった。
また、安定的に取得することが困難であったpre-Fの構造が明らかとなった（非特許文献２）ことにより、pre型Ｆタンパク質は３量体を形成していること、また、pre型Ｆタンパク質に存在するエピトープ（エピトープΦ、I、II、III、IV、V等）のうち、いくつかのエピトープはpost-Fへの構造変化によって失われることが分かった。
　成人ヒト血清をより詳細に調べた研究では、血清中に含まれる抗Fタンパク質抗体のうち、ウイルス感染中和能の高い抗体は主にpre型Fタンパク質に存在するエピトープΦやエピトープVに特異的に結合する抗体であり、それらはpre型Fタンパク質を特異的に認識するが、post-Fには結合しない性質を持つこと、上記血清中にはpost-Fにも結合する抗体も含まれているが、そのウイルス感染中和能は低いことが明らかとなった（非特許文献３）。また、免疫成熟が不十分な乳幼児期は感染時に症状が増悪するリスクが高いが、それは初感染時あるいは感染回数の少ない児はエピトープΦやVをターゲットとした免疫をほとんど誘導できていないことが原因とされる（非特許文献４）。ワクチン抗原においてウイルス感染中和能の高い抗体を効率よく誘導することは重要であり、理想的なワクチン抗原は、中和能を有するエピトープΦやVに対する抗体を優先的に誘導可能な抗原であると考えられている。
　RSV Fタンパク質に人工的なジスルフィド結合を導入する変異等によってエピトープΦやVを有するpre型Fタンパク質の安定化の試みがなされている。例えばDS-Cav1変異体（特許文献１、非特許文献５、非特許文献６）やその他の変異体（特許文献２）が報告されている。しかしながら、pre型Fタンパク質の安定化が十分とはいえず、現在も研究が続けられている。
国際公開第２０１７／１７２８９０号 国際公開第２０１７／１０９６２９号
Ngwuta JO et al. Science Translational Medicine 2015; 309: 309ra162 Jason S McLellan et al. Science 2013; 340: 1113 Morgan S. A. Gilman et al. 2016. Science Immunology. 1(6). pii: eaaj1879 Eileen Goodwin et al. Immunity 2018; 48(2): 339 Jason S. McLellan et al. Science 2013; 342:592 M Gordon Joyce et al. Nature structural and molecular biology 2016; 23(9): 811
　本発明は、ＲＳＶ感染中和能の高い抗体を効率よく誘導するための技術の提供を課題とする。
　本発明者らは、特定のアミノ酸変異を含む変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が、ＲＳＶ感染中和能の高い抗体を効率よく誘導することを見出し、本発明を完成させた。
　本発明は以下の通りである。
［１］変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換であり、前記システイン間でジスルフィド結合が形成される、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[２]前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が、ＲＳＶサブタイプＡ又はＲＳＶサブタイプＢに由来する、［１］に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[３]前記ＲＳＶサブタイプＡがＲＳＶ　Ａ２株又はＲＳＶ　Ｌｏｎｇ株である、［２］に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[４]前記ＲＳＶサブタイプＢがＲＳＶ　１８５３７株である、［２］に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[５]配列番号２と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインに置換されたアミノ酸配列を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、［１］～［４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[６]さらに、ｐｅｐ２７領域のＣ末端側に存在する、フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、前記フーリン認識部位がフーリンによって認識されないように置換されている、［１］～［４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[７]前記フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸であり、
　当該アミノ酸が、非塩基性アミノ酸に置換されている、[６]に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[８]配列番号３と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインに置換され、さらに、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸が、非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、[６]または[７]に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[９]前記非塩基性アミノ酸がアスパラギンである、[７]または[８]に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１０]さらに、配列番号１のアミノ酸配列の１８９位のスレオニンに相当するスレオニン、及び／又は１９０位のセリンに相当するセリンが疎水性アミノ酸に置換されている、［１］～［９］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１１]前記疎水性アミノ酸が、それぞれ独立して、バリン、イソロイシン、及びロイシンからなる群から選択される、[１０]に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１２]さらに、配列番号１のアミノ酸配列の４２位のリジンに相当するリジンがアルギニンに置換されており、及び／又は、３８４位のバリンに相当するバリンがスレオニンに置換されている、［１］～［１１］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１３]変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸の非酸性アミノ酸への置換である、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１４]前記非酸性アミノ酸が、メチオニン、フェニルアラニン、ロイシン、スレオニン、及びセリンからなる群から選択される、[１３]に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
[１５][１]～[１４]のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質と、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のＣ末端に融合された多量体化ドメインを含む、融合タンパク質。
[１６]前記多量体化ドメインがフォルドンドメインである、[１５]に記載の融合タンパク質。
[１７]配列番号１０～１３のいずれかのアミノ酸配列を含む、[１６]に記載の融合タンパク質。
[１８]［１］～［１４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の多量化体であって、［１５］～［１７］のいずれかに記載の融合タンパク質が前記多量体化ドメインを介して会合したものである、前記多量化体。
[１９]前記多量化体が３量体である、[１８]に記載の多量化体。
[２０][１]～[１４]のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または[１５]～[１７]のいずれかに記載の多量化体の粒子化体であって、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質は粒子化ドメインを含み、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記多量化体が該粒子化ドメインを介して２個以上集合して粒子を形成しており、前記粒子化ドメインは、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体の立体構造上、エピトープΦよりもエピトープＩに近い位置に存在する、前記粒子化体。
[２１]前記粒子化体は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質のＣ末端に粒子化ドメインが結合した粒子化体製造用融合タンパク質が、前記粒子化ドメインを介して２個以上集合したものである、[２０]に記載の粒子化体。
[２２]前記多量化体が[１６]に記載の融合タンパク質からなる3量体である、[２０]または[２１]に記載の粒子化体。
[２３]前記粒子化ドメインが配列番号３０のアミノ酸配列配列からなるＦｃドメインであって、当該粒子化ドメインが改変型HBｓ抗原由来のVLPに固定化されているプロテインＡのＺドメインと結合することにより集合したものである、[２２]に記載の粒子化体。
[２４]前記粒子化ドメインが配列番号４２のアミノ酸配列からなるペプチドである、[２２]に記載の粒子化体。
[２５]［１］～［１４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のＣ末端、または［１５］～［１７］のいずれかに記載の融合タンパク質と、そのＣ末端に融合した粒子化ドメインを含む、粒子化体製造用融合タンパク質。
[２６]前記粒子化ドメインが配列番号３０のアミノ酸配列配列からなるＦｃドメインである、[２５]に記載の粒子化体製造用融合タンパク質。
[２７]前記粒子化ドメインが配列番号４２のアミノ酸配列からなるペプチドである、[２５]に記載の粒子化体製造用融合タンパク質。
[２８]［１］～［１４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、［１５］～［１７］のいずれかに記載の融合タンパク質、または[２５]～[２７]のいずれかに記載の粒子化体製造用融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
[２９][２８]に記載のポリヌクレオチドを含む、発現ユニット。
[３０][２９]に記載の発現ユニットを含む、宿主細胞。
[３１]［１］～［１４］のいずれかに記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、［１５］～［１７］のいずれかに記載の融合タンパク質、[１８]～[１９]のいずれかに記載の多量化体又は[２０]～[２４]のいずれかに記載の粒子化体を含む、免疫原。
[３２][２９]に記載の発現ユニット又は[３１]に記載の免疫原を含む、医薬組成物。
[３３][２９]に記載の発現ユニット又は[３１]に記載の免疫原を含む、ＲＳＶワクチン。
[３４]ヒト用である、[３２]に記載の医薬組成物または[３３]に記載のＲＳＶワクチン。
　本発明によれば、ＲＳＶ感染中和能の高い抗体を効率よく誘導するための技術を提供することができる。ｐｒｅ型Ｆタンパク質としての安定性が従来よりも著しく向上した変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質を提供することができる。本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、特にヒトにおいて、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を、あまりウイルス中和に寄与しないと考えられる抗体群よりも優先的に誘導する効果（以下、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果と称する）を有する。
本発明の一態様に係る実施例１におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例２におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例２における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例３におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例３における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例３における発現量を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例４におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例４における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５におけるエピトープIの認識性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５における、ヒト血清中のウイルス中和抗体の吸着試験の結果を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５における、ヒト血清中のウイルス中和抗体の吸着試験の結果を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例５における、マウス免疫で誘導された抗体の検証の結果を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例６におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例６における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例６におけるエピトープIの認識性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例６における、マウス免疫で誘導された抗体の検証の結果を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例７におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例７における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例７におけるエピトープIの認識性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例７におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ（挿入リンカーの検討）。 本発明の一態様に係る実施例７における三量体化を示すグラフ（挿入リンカーの検討）。 本発明の一態様に係る実施例７におけるエピトープIの認識性を示すグラフ（挿入リンカーの検討）。 本発明の一態様に係る実施例７における粒子直径を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例８におけるポリアクリルアミドゲル電気泳動結果を示す写真（その１）。 本発明の一態様に係る実施例８におけるポリアクリルアミドゲル電気泳動結果を示す写真（その２）。 本発明の一態様に係る実施例８におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例８における三量体化を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例８におけるエピトープIの認識性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例８における粒子直径を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例８における、マウス免疫で誘導された抗体の検証の結果を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例９におけるポリアクリルアミドゲル電気泳動結果を示す写真。 本発明の一態様に係る実施例９におけるエピトープΦの保存性を示すグラフ。 本発明の一態様に係る実施例９におけるエピトープIの認識性を示すグラフ。
　本発明の一態様は、変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換であり、前記システイン間でジスルフィド結合が形成される、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。
　天然のＲＳＶ　Ｆタンパク質は、Ｆ０ポリペプチド（前駆体）としてまず発現する。Ｆ０ポリペプチドは小胞体移行シグナルが切断されたのち、２つの部位で細胞内フーリン様プロテアーゼによってプロセシングされ、Ｆ１ポリペプチド、Ｆ２ポリペプチド、およびPep27ポリペプチドを生成する。ここで、Pep27ポリペプチドは切除されるため、成熟Ｆタンパク質の一部を形成しない。Ｆ２ポリペプチドは、Ｆ０ポリペプチドのN末端側部分に由来し、2つのジスルフィド結合を介してＦ１ポリペプチドに連結する。Ｆ１ポリペプチドは、Ｆ０ポリペプチドのＣ末端側部分に由来し、膜貫通ドメインを介して、成熟Ｆタンパク質を膜に固定する。Ｆ２－Ｆ１ ヘテロ二量体の3つのプロトマーは3量体として成熟Ｆタンパク質を形成し、それは、ウイルス膜と標的細胞膜とを融合させる機能を持ったｐｒｅ型Fタンパク質である。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、Ｎ末端側からＦ２ポリペプチド、Ｆ１ポリペプチドを含む。当該Ｆ１ポリペプチドは膜貫通領域および細胞内領域を含まないもの（以下、Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）と呼ぶことがある）が好ましく用いられる。さらに、後述する変異によりフーリン様プロテアーゼ認識部位の一つを消失させることにより、本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質はＦ１ポリペプチドのＮ末端側にｐｅｐ２７ポリペプチドが含まれる場合もある。また、Ｆ２ポリペプチドのＮ末端側にシグナル配列、Ｆ１ポリペプチドとＦ２ポリペプチドとの間にリンカーと、さらにそのＣ末端側に精製等に用いるタグなどをそれぞれ含むこともできる。さらに、本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は三量体を形成しているものが好ましい。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、ＲＳＶサブタイプＡ又はＲＳＶサブタイプＢに由来することが好ましい。
　前記ＲＳＶサブタイプＡとしては、具体的にはＲＳＶ　Ａ２株、ＲＳＶ　Ｌｏｎｇ株、ＲＳＶ　Ｓ２株、ＲＳＶ　ｌｉｎｅ　１９株が例示でき、中でも、ＲＳＶ　Ａ２株又はＲＳＶ　Ｌｏｎｇ株であることが好ましい。
　前記ＲＳＶサブタイプＢとしては、具体的にはＲＳＶ　１８５３７株、ＲＳＶ　Ｂ１株、ＲＳＶ　９３２０株が例示でき、中でも、ＲＳＶ　１８５３７株であることが好ましい。
　配列番号１のアミノ酸配列はＲＳＶ　Ａ２株のＦタンパク質のＦ０ポリペプチドのアミノ酸配列であるが、これを参照して、Ｆ０ポリペプチドの各構成要素を説明する。
　配列番号１において、シグナル配列のアミノ酸配列は、１位～２５位のアミノ酸配列である。
　配列番号１において、Ｆ２ポリペプチドのアミノ酸配列は、２６位～１０９位のアミノ酸配列である。
　配列番号１において、ｐｅｐ２７領域のアミノ酸配列は、１１０位～１３６位のアミノ酸配列である。
　配列番号１において、Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）のアミノ酸配列は、１３７位～５１３位のアミノ酸配列である。
　配列番号１において、Ｆ１ポリペプチド（膜貫通領域と細胞内領域）のアミノ酸配列は、５１４位～５７４位のアミノ酸配列である。なお、Ｆ１ポリペプチド（膜貫通領域と細胞内領域）のアミノ酸配列は、配列番号１の５１４位～５７４位のアミノ酸配列と８５％以上、９０％または９５％以上同一性を有する配列であってよい。
　ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、Ｆ２ポリペプチドと、Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）を含むことができる。Ｆ２ポリペプチドと、Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）を含むＲＳＶ　Ｆタンパク質は、配列番号１の２６位～１０９位のアミノ酸配列と、１３７位～５１３位のアミノ酸配列をこの順で含む、配列番号２のアミノ酸配列が例示される。
　ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、Ｆ２ポリペプチドと、ｐｅｐ２７領域が連結したＦ１ポリペプチド（細胞外領域）を含むことができる。Ｆ２ポリペプチドと、ｐｅｐ２７領域が連結したＦ１ポリペプチド（細胞外領域）をこの順で含むＲＳＶ　Ｆタンパク質は、配列番号１の２６位～５１３位のアミノ酸配列を含む、配列番号３のアミノ酸配列が例示される。
　なお、これらのポリペプチドは別々のポリペプチド鎖であることができ、好ましくは、それらはジスルフィド結合で連結されている。すなわち、ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、このようなポリペプチドの複合体であることができる。
（ロイシンをシステインに置換する変異）
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換の変異を含む。前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は上記アミノ酸変異を有することにより、天然に生じるジスルフィド結合に加え、導入されたシステイン間で新たなジスルフィド結合が形成され、これにより、エピトープΦの保存性（ｐｒｅ型を維持）の向上という効果を奏する。３量体の形成のためには、特に配列番号１の１４１位のロイシンに相当するロイシンがシステインに、３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインへ置換されているものが好ましい。
　なお、本明細書において変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の変異位置は、配列番号１で表される参照配列のアミノ酸番号で示される。
　配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン、１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンとは、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の由来を問わず、配列番号１のアミノ酸配列でいうところの１４１位のロイシンに相当するロイシン、１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンをいう。すなわち、変異を導入すべきＲＳＶ　Ｆタンパク質のアミノ酸配列について、配列番号１のアミノ酸配列とアラインメントを行ったときに、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシン、１４２位のロイシン、３７３位のロイシンのそれぞれに位置づけられるロイシン残基のことをいう。
　例えば、Ｎ末端側が配列番号１のアミノ酸配列と比較して1アミノ酸短い変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のアミノ酸配列の場合、配列番号１のアミノ酸配列における１４１位のロイシンは１４０位となるが、そのようなロイシンは配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシンということができる。
　尚、変異を導入すべきＲＳＶ　Ｆタンパク質のアミノ酸配列について、配列番号１のアミノ酸配列とアラインメントを行ったときに、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン、１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び／または３７３位のロイシンに相当するロイシンの位置にロイシン以外のアミノ酸が存在する場合、当該アミノ酸をシステインに置換する態様も本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質に含まれる。また、当該ロイシン以外のアミノ酸がシステインである場合には、システインへの前記置換を要さず、そのままシステインであってよい。
　本発明の一態様は、配列番号１のアミノ酸配列において、１４１位のロイシン又は１４２位のロイシン、及び３７３位のロイシンがシステインに置換されたアミノ酸配列を含む変異型Ｆ０ポリペプチドから生成されるＦ２ポリペプチドとＦ１ポリペプチド（細胞外領域）を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成される、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。具体的には、配列番号２のアミノ酸配列において、８９位のロイシン又は９０位のロイシン、及び３２１位のロイシンがシステインに置換されたアミノ酸配列を含む。
　本発明の一態様は、配列番号１のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインに置換されたアミノ酸配列を含む変異型Ｆ０ポリペプチドから生成されるＦ２ポリペプチドとＦ１細胞外領域ポリペプチドを含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。具体的には、配列番号２のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン（配列番号２では８９位）又は１４２位のロイシンに相当するロイシン（配列番号２では９０位）、及び３７３位のロイシンに相当するロイシン（配列番号２では３２１位）がシステインに置換されたアミノ酸配列を含む。
　本明細書において、アミノ酸配列に関する「パーセント(％)同一性」とは、配列を整列させ、最大の％同一性を得るために必要ならば間隙を導入し、如何なる保存的置換も配列同一性の一部と考えないとした後の、特定の参照ポリペプチド配列のアミノ酸残基と同一である候補配列中のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。％同一性を測定する目的のためのアラインメントは、当業者の技量の範囲にある種々の方法、例えばBLAST、BLAST-2、ALIGN、又はMegalign (DNASTAR) ソフトウエアのような公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能である。当業者であれば、比較される配列の完全長に対して最大のアラインメントを達成するために必要な任意のアルゴリズムを含む、配列をアラインメントするための適切なパラメータを決定することができる。しかし、ここでの目的のためには、％同一性値は、ペアワイズアラインメントにおいて、配列比較コンピュータプログラムBLASTを使用することによって得られる。アミノ酸配列比較にBLASTが用いられる状況では、与えられたアミノ酸配列Ａの、与えられたアミノ酸配列Ｂとの％ 同一性は次のように計算される：
　分率Ｘ／Ｙの１００倍
　ここで、Ｘは配列アラインメントプログラムBLASTのＡ及びＢのプログラムアラインメントによって同一であると一致したスコアのアミノ酸残基の数であり、ＹはＢの全アミノ酸残基数である。アミノ酸配列Ａの長さがアミノ酸配列Ｂの長さと異なる場合、ＡのＢに対する％同一性は、ＢのＡに対する％同一性とは異なることは理解されるであろう。特に断らない限りは、ここでの全ての％同一性値は、直ぐ上のパラグラフに示したようにBLASTコンピュータプログラムを用いて得られる。
　所定のアミノ酸配列と所定の同一性を有するアミノ酸配列とは、該所定のアミノ酸配列において置換、欠失、挿入、又は付加がなされたことによるものである。該置換は保存的置換が好ましい。「保存的置換」とは、タンパク質の活性を実質的に改変しないように、アミノ酸残基を、別の化学的に類似したアミノ酸残基で置換えることである。例えば、ある疎水性残基を別の疎水性残基によって置換する場合、ある極性残基を同じ電荷を有する別の極性残基によって置換する場合等が挙げられる。このような置換を行うことができる機能的に類似のアミノ酸の例として、非極性（疎水性）アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニン等が挙げられる。極性（中性）アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システイン等が挙げられる。陽電荷をもつ（塩基性）アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジン等が挙げられる。また、負電荷をもつ（酸性）アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸等が挙げられる。
（６０位のグルタミン酸の変異）
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の他の態様は、変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸の非酸性アミノ酸への置換である、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。
　前記非酸性アミノ酸は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が、エピトープΦの保存性の向上と三量体化の促進およびウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導するという効果を奏する限り限定されないが、具体的には、中性アミノ酸、塩基性アミノ酸、非極性（疎水性）アミノ酸が例示できる。より具体的には、中性アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システインが例示でき、塩基性アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジンが例示でき、非極性（疎水性）アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニンが例示できる。
　前記非酸性アミノ酸は、中性アミノ酸、及び／又は非極性（疎水性）アミノ酸であることが好ましい。
　また、中性アミノ酸の中でも、スレオニン、セリンが好ましく、非極性（疎水性）アミノ酸の中でも、メチオニン、フェニルアラニン、ロイシンからなる群から選択されることが好ましいため、前記非酸性アミノ酸は、メチオニン、フェニルアラニン、ロイシン、スレオニン、及びセリンからなる群から選択されることが好ましい。
　本発明の一態様は、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸が非酸性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む変異型Ｆ０ポリペプチドから生成されるＦ２ポリペプチドとＦ１ポリペプチド（細胞外領域）を含む変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。具体的には、配列番号２のアミノ酸配列において、３５位のグルタミン酸が非酸性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　本発明の一態様は、配列番号１のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸が非酸性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む変異型Ｆ０ポリペプチドから生成されるＦ２ポリペプチドとＦ１ポリペプチド（細胞外領域）を含み、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。具体的には、配列番号２のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸（配列番号２では３５位）が非酸性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　なお、６０位のグルタミン酸の変異は、上記のロイシンをシステインに置換する変異と併せて導入されてもよい。
（フーリン認識部位の変異）
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、さらに、ｐｅｐ２７領域のＣ末端側に存在する、フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、前記フーリン認識部位がフーリンによって認識されないようなアミノ酸に置換されている、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であってもよい。このようなアミノ酸置換を有することにより、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、Ｆ２ポリペプチドと、ｐｅｐ２７領域が連結したＦ１ポリペプチド（細胞外領域）を有し、それによりエピトープΦの保存性を保ったまま、三量体化が促進されるという効果を奏する。
　ｐｅｐ２７領域とは、配列番号１のアミノ酸配列の１１０位～１３６位に相当する領域であり、細胞内でフーリンによってそれよりＮ末端側の第１認識部位とそのＣ末端側の第２認識部位とが切断される。ｐｅｐ２７領域よりＮ末端側がＦ２ポリペプチドであり、Ｃ末端側がＦ１ポリペプチドであり、前記切断の結果、Ｆ２ポリペプチドとＦ１ポリペプチドとが生成し、これらはそれぞれのポリペプチドが本来有するシステイン残基間でジスルフィド結合を形成して複合体化する。よって、通常は、ＲＳＶ　Ｆタンパク質には、ｐｅｐ２７領域が含まれないが、当該変異により、第２認識部位は切断されず、Ｆ２ポリペプチドのＣ末端側とｐｅｐ２７領域の間に存在する第１認識部位のみがフーリンによって切断される。該切断の結果、ｐｅｐ２７領域を連結するＦ１ポリペプチドを含むポリペプチドと、Ｆ２ポリペプチドとが生成し、これらはそれぞれのポリペプチドが本来有するシステイン残基間でジスルフィド結合を形成して複合体化する。よって、本態様は、ｐｅｐ２７領域を連結するＦ１ポリペプチドを含むポリペプチド断片とＦ２ポリペプチドとを含む複合体であってよい。
　当該置換は、前記フーリン認識部位を構成するアミノ酸のうち一又は複数のアミノ酸の置換でよい。具体的には、フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンからなる群から選択される1以上のアミノ酸であり、当該アミノ酸が、非塩基性アミノ酸に置換されていることが好ましい。
　配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンは、それぞれ独立に、非塩基性アミノ酸に置換されていてもよい。
　前記非塩基性アミノ酸は、エピトープΦの保存性を保ったまま、三量体化が促進されるという効果を奏する限り限定されないが、具体的には、中性アミノ酸、酸性アミノ酸、非極性（疎水性）アミノ酸が例示できる。より具体的には、中性アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システインが例示でき、酸性アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸が例示でき、非極性（疎水性）アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニンが例示できる。中でも、中性アミノ酸が好ましく、アスパラギンがより好ましい。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の一態様は、配列番号３のアミノ酸配列において、１１６位のロイシン又は１１７位のロイシン、及び３４８位のロイシンがシステインに置換され、かつ、１０８位のアルギニン、１１０位のアルギニン、及び１１１位のアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸が非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の一態様は、配列番号３のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン（配列番号３では１１６位のロイシン）又は１４２位のロイシンに相当するロイシン（配列番号３では１１７位のロイシン）、及び３７３位のロイシンに相当するロイシン（配列番号３では３４８位のロイシン）がシステインに置換され、かつ、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン（配列番号３では１０８位のアルギニン）、１３５位のアルギニン相当するアルギニン（配列番号３では１１０位のアルギニン）、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニン（配列番号３では１１１位のアルギニン）からなる群から選択されるアミノ酸が非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の他の一態様は、配列番号３のアミノ酸配列において、３５位のグルタミン酸が非酸性アミノ酸に置換され、かつ、１０８位のアルギニン、１１０位のアルギニン、及び１１１位のアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸が非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の他の一態様は、配列番号３のアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸（配列番号３では３５位のグルタミン酸）が非酸性アミノ酸に置換され、かつ、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン（配列番号３では１０８位のアルギニン）、１３５位のアルギニン相当するアルギニン（配列番号３では１１０位のアルギニン）、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニン（配列番号３では１１１位のアルギニン）からなる群から選択されるアミノ酸が非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含む。
　なお、配列番号３または配列番号３と８５％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、前記ｐｅｐ２７領域は人工リンカーに置換されてもよい。前記人工リンカーとしては、その配列は特に制限されないが、６～２７のアミノ酸残基長であることが好ましく、Gly及び／又はSerを含む配列が好ましく、より具体的には、Gly-Ser-Gly-Ser-Gly-Ser（配列番号１８）、(Gly-Gly-Gly-Gly-Ser)2（配列番号１９）、(Gly-Gly-Gly-Gly-Ser)3（配列番号２０）が例示できる。
（その他の変異）
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、上記配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンをシステインへ置換する変異（以下、ロイシンをシステインに置換する変異と称する）、６０位のグルタミン酸の変異、および／またはフーリン認識部位の変異に加えて、さらに、配列番号１のアミノ酸配列の１８９位のスレオニンに相当するアミノ酸、及び／又は１９０位のセリンに相当するアミノ酸が疎水性アミノ酸に置換されている、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であってもよい。
　本態様に係る変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、エピトープΦの保存性に優れ、三量体化が促進するという効果およびウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果も保ったまま、発現系において発現量が著しく向上するという効果を奏する。
　配列番号１のアミノ酸配列の１８９位のスレオニンに相当するアミノ酸、及び／又は１９０位のセリンに相当するアミノ酸は、それぞれ独立に、疎水性アミノ酸に置換されていてもよい。
　また、当該置換を含む変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、エピトープΦの保存性に優れ、三量体化が促進するという効果およびウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果も保ったまま、発現系において発現量が著しく向上するという効果に加えて、ウイルス感染の中和に効果のない又は乏しい抗体によって認識されにくい。逆に、ウイルス感染の中和に効果のない又は乏しい抗体が誘導されると、ウイルス感染の中和に寄与しない又はほとんど寄与しない免疫細胞が活性化し、かえって症状を悪化するリスクが想定されるところ、後述する実施例から分かるように、本態様に係る変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、ウイルス感染の中和に効果のない又は乏しい抗体によって認識されにくいため、従来のワクチンよりもそのリスクが低い。
　具体例を挙げれば、本態様に係る変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、エピトープＩを認識する抗体によって認識されにくい。エピトープＩは、ウイルス感染の中和能の著しく低い抗体を誘導することから、抗体によってエピトープＩが認識されると、ウイルス感染の中和にほとんど寄与しない免疫細胞の活性化によって、かえって症状を悪化するリスクが想定されるところ、後述する実施例から分かるように、エピトープＩを認識する抗体によって認識されにくい本態様に係る変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、従来のワクチンよりもそのリスクが低い。
　前記疎水性アミノ酸は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が、エピトープΦの保存性に優れ、三量体化が促進するという効果およびウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果も保ったまま、発現系において発現量が著しく向上するという効果に加えて、ウイルス感染の中和に効果のない又は乏しい抗体によって認識されにくいという効果を奏する限り限定されないが、具体的には、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニンが例示できる。中でも、バリン、イソロイシン、及びロイシンからなる群から選択されることが好ましい。
　なお、配列番号１における１８９位は配列番号２の１３７位のアミノ酸であり、配列番号１の１９０位は配列番号２の１３８位のアミノ酸であり、配列番号２またはそれと８５％以上、９０％以上または９５％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、および／または６０位のグルタミン酸の変異に加えて、導入されてよい。
　また、配列番号１における１８９位は配列番号３の１６４位のアミノ酸であり、配列番号１の１９０位は配列番号３の１６５位のアミノ酸であり、配列番号３またはそれと８５％以上、９０％以上または９５％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、６０位のグルタミン酸の変異、および／またはフーリン認識部位の変異に加えて、導入されてよい。
　本発明の一態様は、上記ロイシンをシステインに置換する変異、６０位のグルタミン酸の変異、および／またはフーリン認識部位の変異に加えて、さらに、配列番号１のアミノ酸配列の４２位のリジンに相当するアミノ酸がアルギニンに置換されており、及び／又は、３８４位のバリンに相当するアミノ酸がスレオニンに置換されている、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であってもよい。
　本態様に係る変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、エピトープΦの保存性に優れ、三量体化の促進という効果およびウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果も保ったまま、発現系において発現量が著しく向上するという効果を奏する。
　なお、配列番号１における４２位は配列番号２の１７位のアミノ酸であり、配列番号１の３８４位は配列番号２の３３２位のアミノ酸であり、配列番号２またはそれと９０％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、および／または６０位のグルタミン酸の変異、さらには上記１８９位および／または１９０位の変異に加えて、導入されてよい。
　また、配列番号１における４２位は配列番号３の１７位のアミノ酸であり、配列番号１の３８４位は配列番号３の３５９位のアミノ酸であり、配列番号３またはそれと９０％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、６０位のグルタミン酸の変異、および／またはフーリン認識部位の変異、さらには上記１８９位および／または１９０位の変異に加えて、導入されてよい。
　前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の効果を妨げるものでなければ、公知の変異をさらに含んでもよい。例えば、発現系において発現量の向上のための変異をさらに含んでもよい。具体的には、配列番号１のアミノ酸配列の１０２位のプロリンに相当するアミノ酸がアラニンに置換されていること、３７９位のイソロイシンに相当するアミノ酸がバリンに置換されていること、及び、４４７位のメチオニンに相当するアミノ酸がバリンに置換されていることからなる群から選択される一以上の置換が例示できる。
　なお、配列番号１における１０２位は配列番号２の７７位のアミノ酸であり、配列番号１の３７９位は配列番号２の３２７位のアミノ酸であり、配列番号１の４４７位は配列番号２の３９５位のアミノ酸であり、配列番号２またはそれと８５％、９０％または９５％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、および／または６０位のグルタミン酸の変異、さらには上記１８９位および／または１９０位の変異や４２位および／または３８４位の変異に加えて、導入されてよい。
　また、配列番号１における１０２位は配列番号３の７７位のアミノ酸であり、配列番号１の３７９位は配列番号３の３５４位のアミノ酸であり、配列番号１の４４７位は配列番号３の４２２位のアミノ酸であり、配列番号３またはそれと８５％、９０％または９５％以上同一性を有するアミノ酸配列において、これらの一方または両方の変異が、上記ロイシンをシステインに置換する変異、６０位のグルタミン酸の変異、および／またはフーリン認識部位の変異、さらには上記１８９位および／または１９０位の変異や４２位および／または３８４位の変異に加えて、導入されてよい。
　本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の具体的態様は、配列番号６～９のいずれかのアミノ酸配列を含む、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。具体的には、下記のアミノ酸変異を含んでいる。
　配列番号６（FH_50に含まれる変異型RSV＿Fタンパク質）のアミノ酸配列は、配列番号３において、配列番号１の１４１位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の３７３位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の１３５位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１３６位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１８９位のスレオニンがバリンに置換され、配列番号１の１９０位のセリンがバリンに置換され、配列番号１の１０２位のプロリンがアラニンに置換され、配列番号１の３７９位のイソロイシンがバリンに置換され、配列番号１の４４７位のメチオニンがバリンに置換されたアミノ酸配列である。ここで、実際は、配列番号６のアミノ酸配列はＦ２ポリペプチドのアミノ酸配列と、ｐｅｐ２７付加Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）のアミノ酸配列に分かれるが、ここではそれらを結合した一つのアミノ酸配列として表す。したがって、下記のアミノ酸配列の同一性を算出する場合は、対象タンパク質のＦ２ポリペプチドのアミノ酸配列と、ｐｅｐ２７付加Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）のアミノ酸配列をこの順で結合したアミノ酸配列と比較する。以下同様である。
　配列番号７（FH_81に含まれる変異型RSV＿Fタンパク質）のアミノ酸配列は、配列番号３において、配列番号１の１４１位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の３７３位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の１３５位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１３６位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１８９位のスレオニンがバリンに置換され、配列番号１の１９０位のセリンがバリンに置換され、配列番号１の６０位のグルタミン酸がメチオニンに置換され、配列番号１の１０２位のプロリンがアラニンに置換され、配列番号１の３７９位のイソロイシンがバリンに置換され、配列番号１の４４７位のメチオニンがバリンに置換されたアミノ酸配列である。
　配列番号８（FH_82に含まれる変異型RSV＿Fタンパク質）のアミノ酸配列は、配列番号３において、配列番号１の１４１位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の３７３位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の１３５位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１３６位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１８９位のスレオニンがバリンに置換され、配列番号１の１９０位のセリンがバリンに置換され、配列番号１の４２位のリジンがアルギニンに置換され、配列番号１の３８４位のバリンがスレオニンに置換され、配列番号１の１０２位のプロリンがアラニンに置換され、配列番号１の３７９位のイソロイシンがバリンに置換され、配列番号１の４４７位のメチオニンがバリンに置換されたアミノ酸配列である。
　配列番号９（FH_85に含まれる変異型RSV＿Fタンパク質）のアミノ酸配列は、配列番号３において、配列番号１の１４１位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の３７３位のロイシンがシステインに置換され、配列番号１の１３５位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１３６位のアルギニンがアスパラギンに置換され、配列番号１の１８９位のスレオニンがバリンに置換され、配列番号１の１９０位のセリンがバリンに置換され、配列番号１の６０位のグルタミン酸がメチオニンに置換され、配列番号１の４２位のリジンがアルギニンに置換され、配列番号１の３８４位のバリンがスレオニンに置換され、配列番号１の１０２位のプロリンがアラニンに置換され、配列番号１の３７９位のイソロイシンがバリンに置換され、配列番号１の４４７位のメチオニンがバリンに置換されたアミノ酸配列である。
　本発明の一態様は、配列番号６～９のいずれかのアミノ酸配列と８５％以上の同一性、好ましくは９０％以上の同一性、より好ましくは９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、それぞれが上記のアミノ酸の置換を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質である。
　尚、所定のアミノ酸配列と所定の同一性を有するアミノ酸配列の定義は、既述の内容と同一である。
（融合タンパク質）
　本発明の他の態様は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質と、少なくとも多量体化ドメインとを含む、融合タンパク質である。
　融合タンパク質は変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質および多量体化ドメイン以外のポリペプチドを含んでもよく、当該変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質および多量体化ドメイン以外のポリペプチドは、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の効果を妨げるものでなければ特に限定されないが、具体的には、トロンビン切断モチーフなどのモチーフ、His-tagやStrepTagIIなどの精製用タグが例示できる。
　多量体化ドメインは変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が多量体化するのに必要なポリペプチドであれば特に制限されないが、三量体化のためのフォルドンドメインが例示できる（Yizhi Tao et. al. 1997. Structure 5(6):789）（Frank S et. al. 2001. Journal of molecular biology 308(5):1081）。
　フォルドンドメインとしては、バクテリオファージＴ４フィブリチン由来のフォルドンドメインが例示できる。そのアミノ酸配列としては、配列番号２１のアミノ酸配列が例示できる。
　融合タンパク質の例としては、配列番号６～９のアミノ酸配列を有する、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のC末端にフォルドンドメインが連結した融合タンパク質が挙げられる。
　具体的には、配列番号１０～１３のアミノ酸配列を有するものが挙げられる。
　実際は、配列番号１０～１３のアミノ酸配列はＦ２ポリペプチドのアミノ酸配列と、ｐｅｐ２７付加Ｆ１ポリペプチド（細胞外領域）のC末端にフォルドンドメインが連結したアミノ酸配列に分かれるが、ここではそれらを結合した一つのアミノ酸配列として表す。
（多量化体）
　本発明の他の態様は、前記融合タンパク質の多量化体である。前記多量化体は、前記融合タンパク質がフォルドンドメインなどの多量体化ドメインを介して会合したものである。多量化体は、前記融合タンパク質の３量化体であることが好ましい。
（ポリヌクレオチド）
　本発明の他の態様は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、又は前記融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドである。
　前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、変異導入前のＲＳＶ　Ｆタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列（配列番号７４）を参考に、標準的な遺伝子工学技術により、所望の変異が導入されたポリヌクレオチドとして得ることができる。
　また、前記融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドも、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質をコードするポリヌクレオチド、及び当該変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質以外のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを用いて、標準的な遺伝子工学技術により得ることができる。
　具体的には、本発明の融合タンパク質を発現させて宿主で産生させるために使用されるポリヌクレオチド配列としては、配列番号１４～１７のポリヌクレオチド配列が例示される。
　配列番号１４は配列番号１０のアミノ酸配列を有する融合タンパク質を発現させて宿主で産生させるためのポリヌクレオチド配列であるが、当該融合タンパク質をコードする配列の５’末端側にシグナルペプチドをコードする配列が付加されている。
　配列番号１５は配列番号１１のアミノ酸配列を有する融合タンパク質を発現させて宿主で産生させるためのポリヌクレオチド配列であるが、当該融合タンパク質をコードする配列の５’末端側にシグナルペプチドをコードする配列が付加されている。
　配列番号１６は配列番号１２のアミノ酸配列を有する融合タンパク質を発現させて宿主で産生させるためのポリヌクレオチド配列であるが、当該融合タンパク質をコードする配列の５’末端側にシグナルペプチドをコードする配列が付加されている。
　配列番号１７は配列番号１３のアミノ酸配列を有する融合タンパク質を発現させて宿主で産生させるためのポリヌクレオチド配列であるが、当該融合タンパク質をコードする配列の５’末端側にシグナルペプチドをコードする配列が付加されている。
　尚、各コドンは意図したアミノ酸をコードしていればどれを用いてもよい。例えば、GlyをコードするコドンはGGT、GGC、GGA、GGGの４種あるが、このうちどれを用いてもよい。また、各コドンは最適化されていてもよいし最適化されていなくてもよいが、最適化されていることが好ましい。
　変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、上記特定の変異を含み、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質をコードする限り、これらのポリヌクレオチド配列の相補配列を有するポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであってもよい。ここで、ストリンジェントな条件とは、例えば、サザンハイブリダイゼーションの後、６８℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度で洗浄を行う条件が挙げられる。
（発現ユニット）
　本発明の他の態様は、前記ポリヌクレオチドを含む、発現ユニットである。
　前記発現ユニットは、前記ポリヌクレオチドを発現させる機構を含むものであればよく、例えば、プロモーター配列や転写終結シグナル配列等の発現に必要な要素を含んでよく、標準的な遺伝子工学技術に用いられる発現ユニットでよい。発現ユニットは、例えば、組換えベクターに含まれてよい。組換えベクターとしては、プラスミドベクターやウイルスベクターが例示でき、原核細胞において発現可能なベクターや、真核細胞において発現可能なベクター、哺乳動物由来の細胞において発現可能なベクターが挙げられる。
（宿主細胞）
　本発明の他の態様は、前記発現ユニットを含む、宿主細胞である。好ましくは、前記発現ユニットを含む組換えベクターで形質転換された宿主細胞である。
　前記宿主細胞としては、前記発現ユニットから前記ポリヌクレオチドがコードするタンパク質が発現されれば特に限定されず、標準的な遺伝子工学技術に用いられるものでよい。具体的には、大腸菌、枯草菌のような原核細胞や、真核細胞、哺乳動物由来の細胞が例示できる。
　宿主細胞へのポリヌクレオチド導入は、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥデキストラン法、エレクトロポレーション法、リポフェクション法などの公知の手段を用いて行うことができる。
　宿主細胞を適当な条件で培養することで、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または融合タンパク質を発現させ、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、融合タンパク質またはそれらの多量化体を生産することができる。生産された前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、融合タンパク質またはそれらの多量化体は公知の手段により、精製することができる。
（免疫原）
　本発明の他の態様は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、前記融合タンパク質、前記多量化体、又は下記粒子化体を含む、免疫原である。
　すなわち、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、前記融合タンパク質、前記多量化体、又は前記粒子化体は、免疫原として使用することができる。当該免疫原は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の効果を妨げない限り、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、前記融合タンパク質、前記多量化体、又は前記粒子化体のいずれか１種を含んでもよく、いずれか２種を含んでもよく、すべてを含んでもよい。このうち多量化体、特に三量体が好ましく、また粒子化体が好ましく、免疫原として用いられる。多量化体の製造については、上記の通りであり、粒子化体については、以下に詳細に説明する。なお、本発明の免疫原は標準的な免疫原が含む保存剤や賦形剤等を含んでもよい。
（粒子化体）
　本発明の他の態様は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記多量化体の粒子化体である。
　粒子化体は、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体が２個以上集合して粒子を形成したものであって、中和能の高い抗体を効率よく誘導できるものであれば特に制限されないが、例えば、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記多量化体が粒子化ドメインを介して２個以上集合して粒子を形成したものである。ここで、粒子化体および粒子の形状は必ずしも球状に限られず、一定方向を向いて集合していれば足りる。
　すなわち、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質にさらに粒子化ドメインを融合させ、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質の多量化体が該粒子化ドメインを介して集合して粒子を形成したものであることが好ましい。
　前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質のＣ末端に粒子化ドメインが結合した粒子化体製造用融合タンパク質を用いて粒子化させることが好ましい。粒子化体製造用融合タンパク質については後述する。
　粒子化体においては、前記粒子化ドメインは、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体の立体構造上、エピトープΦよりもエピトープＩに近い位置に存在することが好ましい。すなわち、粒子化ドメインが集合することによりコアを構成し、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体のエピトープＩが内側に存在し、エピトープΦが外側に露出した粒子化体であることが好ましい。
　したがって、本発明の一態様にかかる粒子化体は、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体が、粒子化ドメインを介して少なくともＲＳＶ　Ｆタンパク質のエピトープΦが露出し、少なくともＲＳＶ　Ｆタンパク質のエピトープＩが露出しないように２個以上集合したものである粒子化体である。ここで、「エピトープＩが露出しないように」とは、エピトープＩが完全に露出しないことまでは要さず、エピトープIへの抗体や各種免疫細胞のアクセシビリティが低下する程度であればよい。
　本発明の粒子化体の一態様においては、変異型RSV　Fタンパク質のエピトープΦとエピトープIが該タンパク質の立体構造上両極にあるので、コアを形成する粒子化ドメインがエピトープΦよりもエピトープIに近いことにより、不要エピトープであるエピトープIが抗原としてマスクされ、有用エピトープであるエピトープΦが抗原として機能しやすい構造をとることができる。ここで、不要エピトープとは、当該変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、その融合タンパク質、それらの多量化体、又はそれらの粒子化体を免疫原として用いたときに、ヒトにおいて一般的にRSVウイルス感染中和能の低い抗体を誘導するエピトープを意味し、具体的にはエピトープIが挙げられる。一方、有用エピトープとは、当該変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、その融合タンパク質、それらの多量化体、又はそれらの粒子化体を免疫原として用いたときに、ヒトにおいて一般的にRSVウイルス感染中和能の高い抗体を誘導するエピトープを意味し、具体的にはエピトープΦやエピトープVが挙げられる。この構造をとることによって、不要エピトープに対する抗体や各種免疫細胞のアクセシビリティを立体障害効果によって低下させる効果を奏する。
　粒子化のための粒子化ドメインは、変異型RSV　Fタンパク質または多量化体を粒子化させるポリペプチドであり、足場粒子へ結合し得るもの（例：足場粒子結合ペプチド）、疎水集合し得るもの（例：疎水性ペプチド鎖）、または自己会合性を有するもの（例：自己会合性ペプチド）などが挙げられる。
　まず、足場粒子を用いた粒子化の態様について説明する。すなわち、足場粒子に、変異型RSV　Fタンパク質または多量化体が結合した態様である。
　足場粒子の材料としては、特に制限されないが、粒子形成能を有するタンパク質、脂質二重膜、エンベロープ、リポソーム、ニオソーム、virosome、フェロソーム、金ナノ粒子、樹脂、シリカ、高分子ミセル、ゲルなどが挙げられる。
　粒子形成能を有するタンパク質の例として、VLP (Virus-like particle)やVP (Virus Particle)を形成する、ウイルスタンパク質やウイルスタンパク質の改変体が挙げられる（例えば、特開2004-2313号公報）。例えば、本来の肝細胞に対する感染能を欠失するように改変され、さらに足場分子を提示するように改変されたＢ型肝炎ウイルス表面抗原タンパク質が挙げられ、当該タンパク質は、真核細胞で発現させると、小胞体膜等の膜上に膜タンパク質として発現、蓄積され、VLPとして放出される。
　足場粒子としてより具体的には、Ｂ型肝炎ウイルス表面抗原（HBs抗原）タンパク質のPreS領域に、プロテインAのFc結合ドメイン（Zドメイン）を挿入して作製したタンパク質由来のVLPが挙げられ、例えば、Bionanocapsule-ZZ（Beacle社カタログ番号：BCL-DC-002）が使用できる。
　足場粒子の表面には、粒子化ドメインとしての足場粒子結合ペプチドと結合する分子（足場分子）が固定化されていることが好ましい。
　例えば、プロテインAのFc結合ドメインを挙げることができ、足場粒子結合ペプチドを介して変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質またはその多量化体を結合させることができる。
　なお、足場分子と足場粒子結合ペプチドの結合は、共有結合、非共有結合のいずれでもよい。共有結合の例としては、クリックケミストリーと総称される手法（アルキン（アセチレンなど）－アジド結合、システイン－マレイミド結合、１級アミン－NHSエステル結合が例示される）、電荷シフト結合を生じる手法（ヒドラジド－アルデヒド結合が例示される）、ポリペプチドに依って共有結合を生じる手法（SpyTag－SpyCatcherを用いる方法など）などが挙げられる。非共有結合の例としては、イオン性相互作用、疎水結合、水素結合などが挙げられる。
　具体的には、Protein tagとProtein tag結合分子の組み合わせ（ビオチン－アビジン、Fc－Protein A、GST（Glutathione S-transferase）－グルタチオン、MBP（Maltose binding protein）－マルトース、His Tag－ニッケル、SBPタグ－ストレプトアビジンが例示される）、抗体と抗原の組み合わせなどが挙げられる。
　足場分子と足場粒子結合ペプチドの組み合わせとしては好ましくは、IgG1 のFcドメイン（配列番号３０）とプロテインAのFc結合ドメイン（Zドメイン）の組み合わせである。IgG1 のFcドメインを足場分子に、プロテインAのFc結合ドメインを足場粒子結合ペプチドに使用してもよいし、IgG1 のFcドメインを足場粒子結合ペプチドに、プロテインAのFc結合ドメインを足場分子に使用してもよい。
　なお、上記足場分子または足場粒子結合ペプチドは互いに共有結合または非共有結合できる限り、それらの部分断片を使用したり改変したりすることができる。
　次に、粒子化ドメインとして、疎水性ペプチド鎖を用いた粒子化の態様について説明する。
　この態様では、変異型RSV　Fタンパク質または融合タンパク質に疎水性ペプチド鎖が結合しており、該疎水性ペプチド鎖を介して変異型RSV　Fタンパク質または融合タンパク質が粒子を形成する。
　疎水性ペプチド鎖は、疎水性アミノ酸を含み、自己集合して当該粒子化体を形成する、アミノ酸残基数５～５０、好ましくは１０～３０のペプチド鎖を意味する。ここで、疎水性の強いアミノ酸としては、バリン、ロイシン、フェニルアラニン、イソロイシン等が挙げられ、ロイシンまたはイソロイシンがより好ましい。疎水性ペプチド鎖における疎水性アミノ酸の割合は好ましくは２０～６０％である。
　疎水性ペプチド鎖においては、疎水性アミノ酸が疎水性ペプチド鎖の表面に現れることが好ましい。表面の疎水性アミノ酸の割合は10％以上であることが好ましいが、比率が高すぎると、細胞内で凝集して分泌されないため、表面の疎水性アミノ酸が50%以下、30%以下、20%以下が好ましい。一方、内側の疎水性アミノ酸の比率は高いほうが、疎水性ペプチド鎖の構造が安定するため好ましい。
　疎水性アミノ酸以外のアミノ酸は、いずれのものでもよいが、特に分泌効果を高めるためにヒスチジンを20%以上含むことが好ましい。
　疎水性ペプチド鎖を7アミノ酸からなるペプチドの繰り返し配列とすることにより、ヘリックス構造を形成し、かつ上記設計が行いやすいため、好ましく用いられる。例えば、疎水性ペプチド鎖は、１、３、５番目に疎水性アミノ酸が配置される７アミノ酸からなるペプチド配列の繰り返し配列が好ましい。繰り返し数は例えば２～５であり、２～３であることが好ましい。
　疎水性ペプチド鎖の好ましい例としては、CC02、CC03、CC07、CC08（順に、配列番号４０、４１、４２、４３）が挙げられ、この中ではCC07（配列番号４２）がより好ましい。
　次に、粒子化ドメインとして、自己会合性タンパク質ドメインを用いた粒子化の態様について説明する。
　この態様では、変異型RSV　Fタンパク質または融合タンパク質に自己会合性タンパク質ドメインが結合しており、該自己会合性タンパク質ドメインを介して変異型RSV　Fタンパク質または融合タンパク質が粒子を形成する。
　自己会合性を有するタンパク質（Self-assembly protein）の例としては、Ｂ型肝炎ウイルスのコア抗原（HBcAg）、ヒトパピローマウイルスのカプシドタンパク（HPV L1）、Ｅ型肝炎ウイルスのカプシドタンパク（HEV capsid）、Bacteriophage Qβ coat protein、ノーウォークウイルス（ノロウイルス、NoV） Capsid、Parvovirus B19 capsid、Alfalfa mosaic virus、Feritin、encapsulinなどが挙げられる。自己会合性を有するタンパク質は自己会合性を有する部分断片でもよいし、改変体でもよい。
　HBcAｇを使用する場合には、本発明のRSV Fタンパク質または多量化体と結合する際には、HBcAgの自己会合のための会合面から遠い部位でかつ、自己会合したものの外側の部位とRSV Fタンパク質または多量化体とを結合させることが好ましい。さらに、このような結合を行った場合、HBcAgの本来の立体構造を取らせるために、α3ドメインのヘリックスとα４ドメインのヘリックスの間にリンカーを挿入することが好ましい。リンカーは例えば１０～３０アミノ酸のポリペプチドであり、例えば、GSリンカーである。このようなHBcAｇの改変体にFLAGタグが結合している配列としては、配列番号５４が挙げられる。
＜粒子化体製造用融合タンパク質＞
　粒子化体製造用融合タンパク質は、上記の粒子化体の作製に使用されるタンパク質であって、本発明の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のＣ末端、または融合タンパク質のＣ末端に融合する、上述した足場粒子結合ペプチド、疎水性ペプチド鎖、自己会合性タンパク質ドメインなどの粒子化ドメインを含む。
　本粒子化体製造用融合タンパク質が粒子化ドメインを介して、集合することにより粒子化体となる。
　なお、本発明の多量化体を構成する融合タンパク質のC末端間の距離が、粒子化ドメインと結合することによって変化してしまう場合には、粒子化ドメインと当該C末端（多量体化ドメイン）との間にリンカーを挿入することによって、上記C末端間の距離への影響を小さくすることができる。リンカーは特に制限されないが、５～２０アミノ酸のペプチドであることが好ましく、５～１０アミノ酸のペプチドであることがより好ましい。配列は融合タンパク質のワクチン効果を阻害しない限り特に制限されないが、例えば、グリシンとセリンからなるGSリンカーである。
　リンカーの位置は、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または融合タンパク質の多量体化ドメインと粒子化ドメインの間であればよく、リンカーの前後にタグ配列を含んでもよい。タグ配列は特に制限されないが、タンパク質の精製に通常用いられるタグ配列が好ましく用いられ、例えば、FLAGタグ（配列番号２８）、His-tag（配列番号２５）、Strep-tagII（配列番号２６）などが例示できる。
　粒子化体製造用融合タンパク質は、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または融合タンパク質をコードするＤＮＡに、粒子化ドメインをコードするＤＮＡ、さらには必要に応じてリンカーやタグをコードするＤＮＡを、読み枠を合わせて連結し、宿主において発現させることによって得ることができる。発現及び精製方法は前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または融合タンパク質の発現及び精製と同様にして行うことができる。
　粒子化体製造用融合タンパク質の具体的な例としては、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質に足場粒子結合ペプチドが結合した態様（それらの前駆体タンパク質の配列：配列番号３１～３９、またそれをコードするポリヌクレオチド配列：配列番号５７～６５）、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質に疎水性ペプチド鎖が結合した態様（それらの前駆体タンパク質の配列：配列番号４４～４９、またそれをコードするポリヌクレオチド配列：配列番号６６～７１）、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質に自己会合性タンパクドメインが結合した態様（それらの前駆体タンパク質の配列：配列番号５５～５６、またはそれをコードするポリヌクレオチド配列：配列番号７２～７３）が挙げられる。
　なお、粒子化体製造用融合タンパク質は、FLAGタグ（DYKDDDDK：配列番号２８）、FLAGタグに3アミノ酸（GGS）が付加したタグ（GGSDYKDDDDK：配列番号２９）などのタグ配列を含んでもよい。
（粒子化体製造方法）
　粒子化体は、上記で得られた粒子化体製造用融合タンパク質を用いて粒子化させたのちに、必要に応じて粒子化体を精製することで得ることができる。
　粒子化工程は、足場粒子を用いる場合は、粒子化体製造用融合タンパク質を足場粒子と混合して粒子化させたのちに、粒子化されていない変異型RSV　Fタンパク質またはその産物を除き、粒子化体を精製することにより行うことができる。足場粒子としては、例えば、HBsAg VLP（Beacle社カタログ番号：BCL-DC-002）が使用できる。
　疎水性ペプチド鎖を含む粒子化体製造用融合タンパク質を用いる場合、粒子化工程は、粒子化体製造用融合タンパク質を、疎水性ペプチド鎖を介して会合させて粒子化させたのちに、粒子化されていない変異型RSV　Fタンパク質またはその産物を除き、粒子化体を精製することにより行うことができる。
　自己会合性タンパクドメインを含む粒子化体製造用融合タンパク質を用いる場合、粒子化工程は、粒子化体製造用融合タンパク質を、自己会合性タンパクドメインを介して会合させて粒子化させたのちに、粒子化されていない変異型RSV　Fタンパク質またはその産物を除き、粒子化体を精製することにより行うことができる。
　本発明の粒子化体においては、1粒子化体当たり、例えば三量体としては2個以上、好ましくは10個以上、より好ましくは２０個以上が結合していることが望ましい。
　また、本発明の粒子化体においては、粒子化体表面積1 nm2あたり、例えば三量体としては0.0001個以上、好ましくは0.0005個以上、より好ましくは0.001個以上が結合していることが望ましい。ここで、粒子化体表面積とは、粒子化体を、動的光散乱法により測定された理論直径を直径とする球体と仮定したときの表面積のことである。粒子化体表面積あたりの個数は、例えば1粒子化体あたりの個数を粒子化体表面積で除する方法で算出できる。
　粒子化体を生成し、エピトープIに対する結合能が低く、かつ、エピトープΦに対する結合能が高いものを選択することにより当業者は最適な1粒子化体当たりの個数や粒子化体表面積1nm2あたりの個数を選択できる。
　なお、本発明において、粒子化に用いられるRSV Fタンパク質または多量化体は、本発明の変異型RSV　Fタンパク質または多量化体に限られず、ＲＳＶワクチンとして使用可能なものであれば特に制限されず、本発明の変異型RSV　Fタンパク質以外の変異型RSV　Fタンパク質やその多量化体を使用することもできる。例えば国際公開第２０１７／１７２８９０号や国際公開第２０１７／１０９６２９号記載のものでよい。すなわち、本発明の粒子化技術は、RSV Fタンパク質またはその多量化体の粒子化において一般的に使用でき、本発明の粒子化体には、RSV Fタンパク質またはその多量化体の粒子化体であって、RSV Fタンパク質またはその多量化体は粒子化ドメインを介して２個以上集合して粒子を形成した粒子化体が含まれ、粒子化ドメインや粒子化の方法は上記の変異型RSV　Fタンパク質または多量化体の粒子化で説明した粒子化ドメインや粒子化法を適用できる。
（医薬組成物）
　本発明の他の態様は、前記発現ユニット又は前記免疫原を有効成分として含む、医薬組成物である。
　前記発現ユニット又は前記免疫原は、ＲＳウイルス感染症の予防又は治療のための医薬組成物とすることができる。
　また、本発明の他の態様は、前記発現ユニット又は前記免疫原を含む、ＲＳＶワクチンである。これは、前記態様に係る医薬組成物がＲＳＶワクチンである態様でもある。
　前記医薬組成物（ＲＳＶワクチンを含む、以下同じ）の投与経路は特に限定されず、非経口投与（例えば、皮内、筋肉内、皮下、経皮、粘膜）、及び経口投与のいずれかの投与経路で哺乳動物に投与することができる。哺乳動物としては、ヒト、マウス、ラット、ウサギ、イヌ、ネコ、ウシ、ブタ、サル、チンパンジーなどが例示されるが、ヒトが好ましい。
　前記医薬組成物の剤型およびその調製方法は当業者に周知であり、前記発現ユニット又は前記免疫原を、薬学的に許容される坦体等と配合することにより医薬組成物を製造することができる。
　薬学的に許容される坦体とは、例えば固形製剤における賦形剤、滑沢剤、結合剤及び崩壊剤、あるいは液状製剤における溶剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤、緩衝剤及び無痛化剤等が挙げられる。更に必要に応じ、通常の防腐剤、抗酸化剤、着色剤、甘味剤、吸着剤、湿潤剤等の添加物を適宜、適量用いることもできる。
　医薬組成物はアジュバントを含んでもよい。アジュバントとしては、ゲルタイプ、菌体タイプ、油乳濁液タイプ、高分子ナノ粒子タイプ、合成タイプ、サイトカインタイプなどが例示できる。
　ゲルタイプとしては、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、リン酸カルシウムなどが例示できる。
　菌体タイプとしては、ＣｐＧ、コレラ毒素、大腸菌易熱性毒素、百日咳毒素、ムラミルジペプチド（Muramyl dipeptide；ＭＤＰ）などが例示できる。
　油乳濁液タイプとしては、フロイント不完全アジュバント、ＭＦ５９、ＳＡＦなどが例示できる。
　高分子ナノ粒子タイプとしては、免疫刺激複合体、リポソーム、生分解性マイクロスフェア、サポニン由来ＱＳ－２１などが例示できる。
　合成タイプとしては、非イオン性ブロックコポリマー、ムラミルペプチドアナログ、ポリホスファゼン、合成ポリヌクレオチドなどが例示できる。
　サイトカインタイプとしては、ＩＦＮ－γ、ＩＬ－２、ＩＬ－１２などが例示できる。
　非経口投与のための剤型は、注射用製剤（例えば、点滴注射剤、静脈注射剤、筋肉注射剤、皮下注射剤、皮内注射剤、脳内投与製剤、脊髄内投与製剤）、外用剤（例えば、軟膏剤、パップ剤、ローション剤）、坐剤吸入剤、眼剤、眼軟膏剤、点鼻剤、点耳剤、リポソーム剤等が例示できる。
　経口投与のための剤型は、固体または液体の剤型、具体的には錠剤、被覆錠剤、丸剤、細粒剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤、シロップ剤、乳剤、懸濁剤、トローチ剤等が例示できる。
　本発明の医薬組成物は好ましくは液体の剤型であり、注射剤が好ましい。
　前記医薬組成物の有効投与量は、例えば、投与経路、疾患の種類、症状の程度、患者の年齢、性別、体重、疾患の重篤度、薬物動態および毒物学的特徴等の薬理学的知見、薬物送達系の利用の有無、並びに他の薬物の組合せの一部として投与されるか、など様々な因子を元に、医師により決定される。
　以下に実施例を記載するが、いずれの実施例も、限定的な意味として解釈される実施例ではない。
〔実施例１〕
　タンパク質の構造の安定化には、システインを用いた共有結合（ジスルフィド結合）の形成が有用である。先行研究では、RSV Fタンパク質（以下、「Fタンパク質」と称することがある）においてpre-F構造を安定化する様々なジスルフィド変異が報告されている（国際公開第2017/172890号、国際公開第2017/109629号）が、２次構造のメンバーであるアミノ酸をシステインに置き換えていたり、距離が遠い部分にジスルフィドを形成させていたりするため、得られる変異体は天然構造（天然型Fタンパク質がタンパク質発現時に取ると考えられる融合前構造）と異なる構造となるリスクが大きい。そこで、２次構造を取っておらず、かつ、システインに置き換えたときのＳ原子間の距離が5Åよりも近いアミノ酸ペアをシステインに置き換えることで構造の安定化を実施することとした。距離の計算においては、公開されている構造モデル（PDB登録番号：4MMS）を用いて、任意の２アミノ酸をシステインに置き換えて二面角N-Ca-Cb-Sがエネルギー的に安定な配座を発生させ、最短となるＳ原子間の距離を算出した（表１）。その結果、後述する抗原FH_08およびFH_09に含まれる変異型RSV Fタンパク質（本明細書では、「変異タンパク質」と称することがある。）の変異箇所が候補として挙げられた。この2候補は、変異箇所における変異前のアミノ酸の側鎖に極性のある官能基が無いため、天然型Fタンパク質に存在する極性基間相互作用（水素結合など）を失わせることに起因する構造不安定化のリスクが無い点でも優れていることが考えられた。尚、表１中の「L141C」は、配列番号１のアミノ酸配列における141位のロイシンがシステインに変異していることを表す。以下、表中では同様の表記を用いている。なお、F_native抗原の前駆体タンパク質（配列番号４）はＡ２株の天然型Ｆ０タンパク質からＦ１ポリペプチドの膜貫通領域と細胞内領域を除いたポリペプチド（配列番号１のアミノ酸番号１～５１３）において、P102A、I379VおよびM447Vの変異を有するポリペプチドのＣ末端側に、順に、フォルドンドメイン（配列番号２１）、Thrombin認識配列、HisタグおよびStrepTagIIを含む配列（配列番号２２）を融合したポリペプチドである。本実施例ではいずれの変異体もF_native抗原の前駆体タンパク質を元に作成されたため、P102A、I379VおよびM447Vの変異を有する。なお、F_native前駆体タンパク質は発現過程でプロセシングを受け、シグナルペプチドとｐｅｐ２７領域が脱落する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 
　上記F_native抗原は、F_native抗原の前駆体タンパク質（配列番号４）をコードするポリヌクレオチド（配列番号５）を、哺乳類細胞を宿主として発現させて製造したものである。F_native抗原は、F_native抗原の前駆体タンパク質（配列番号４）が発現過程のプロセシングを受けた後に４次構造を形成したものである。プロセシングによってシグナルペプチドとpep27領域は脱落し，残ったF2ポリペプチド配列とF1ポリペプチド（細胞外領域）、フォルドンドメイン、Thrombin認識配列、Hisタグ、Strep-Tag IIを含む配列はジスルフィド結合によって結合され、さらに主にフォルドンドメインが生じる結合力によってホモ３量体を形成していると予測される。
　F native抗原の具体的な製造方法を以下に示す。上記ポリヌクレオチド（配列番号５）をpcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、F_native抗原の前駆体タンパク質を発現する哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　F_native抗原の発現はExpi293 Expression System（Thermo Fisher Scientific社）を用いた哺乳類細胞分泌発現によって実施した。精製された上記ベクターを同キットの遺伝子導入試薬であるExpi Fectamin 293 Reagentを用いてExpi293細胞に導入し、5日程度培養することでコードされたＦ_native抗原を分泌発現させ、遠心分離および孔径0.22 μmのフィルターを用いて上清成分のみを取得した。
　Ｆ_native抗原の精製はNi Sepharose High Performance（GE Healthcare社）を用いたアフィニティークロマトグラフィーによって実施した。Ni担体を、上記培養上清成分をbinding buffer（20 mmol/L Tris-HCl pH7.4, 500 mmol/L NaCl, 20 mmol/L Imidazole）で約3倍程度希釈したものと一昼夜反応させた後、elution buffer（20 mmol/L Tris-HCl pH7.4, 500 mmol/L NaCl, 500 mmol/L Imidazole）に供して各抗原を溶出させた。その後、限外濾過膜を用いてPBS（pH7.4）に溶媒置換し、F_native抗原として用いた。
　F_native抗原の前駆体タンパク質にＬ１４１ＣとＬ３７３Ｃの２重変異が導入された抗原FH_08の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドを上記と同様に準備した。また、F_native抗原の前駆体タンパク質にＬ１４２ＣとＬ３７３Ｃの２重変異が導入された抗原FH_09の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドを上記と同様に準備した。これらを上記の方法で発現、精製して抗原FH_08、およびFH_09を製造した。
　各抗原の各抗体への結合性は、Octet QK384（ForteBio社）を用い、PBS（pH7.4）、25℃、1000 rpmの条件下で測定した。PBS（pH7.4）にて平衡化したProtein Aセンサーチップ（ForteBio社）に対して各抗体溶液を180 sec供することでセンサーチップに各抗体を結合させ、続けて各抗原溶液を180 sec供した時の検出値の上昇量を各抗体に対する各抗原の結合シグナルの値とした。センサーチップに供する抗体には、エピトープΦを特異的に検出可能なD25抗体を用いた。結合シグナルの値は、F抗原のコンホメーション変化に依らず結合可能なPalivizumab（シナジス筋注液、アッヴィ）を用いた際の結合シグナルの値との比を求めることで正規化した。
　以上の操作により、ジスルフィド結合形成のために2か所にシステイン点変異を導入した変異タンパク質を含む抗原FH_08およびFH_09は、当該変異導入前のFタンパク質を含むF_native抗原に比べて著しくエピトープΦの保存性が向上していることを示す結果を得た（図１）。
〔実施例２〕
　天然型Fタンパク質は、まず第１フーリン認識部位の切断を受けて単量体構造を取った後に、第2フーリン認識部位の切断を受けてpep27領域が消失することによって、三量体化が促進されるとする報告がある（Anders Krarup et al. 2015. Nature communications 6:8143）。ところが、pep27領域は天然から単離されたウイルス株間で配列の長さ及びアミノ酸の種類が高度に保存されているため、寧ろ、抗原の立体構造形成に不可欠な効果がある可能性を考えた。そこで、第2フーリン認識部位に変異を導入してpep27領域の切断を阻害するとともに、該変異の三量体形成に対する効果を調べることとした。下記で作製した各抗原の前駆体タンパク質の変異内容は、表２にまとめた。表２中の「FH_08 + R135N, R136N」は、抗原FH_08の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における135位のアルギニンがアスパラギンに変異し、かつ、136位のアルギニンがアスパラギンに変異していることを表す。「FH_09 + R135N, R136N」は、抗原FH_09の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における135位のアルギニンがアスパラギンに変異し、かつ、136位のアルギニンがアスパラギンに変異していることを表す。なお、抗原FH23～25では抗原FH08の前駆体タンパク質におけるpep27（p27）配列を各種GSリンカーに置換した。GSリンカーはGSGSGS（配列番号１８）、(GGGGS)２（配列番号１９）、(GGGGS)３（配列番号２０）を用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 
　上記各抗原の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドをpcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現および精製は、実施例１と同様の操作で実施した。
　各抗原の各抗体への結合性も実施例１と同様の操作で測定したが、センサーチップに供する抗体として、pre-Fの三量体形成を検出可能なAM14抗体を追加した。D25抗体およびAM14抗体の結合シグナルの値は、F抗原のコンホメーション変化に依らず結合可能なシナジス抗体（アッヴィ、シナジス筋注液）を用いた際の結合シグナルの値との比を求めることで正規化した。
　以上の操作により、第2フーリン認識部位に変異を追加した変異タンパク質を含む抗原FH_21、FH_24、FH_25は、変異追加前の抗原FH_08に比べて、エピトープΦの保存性を保ったまま三量体の形成が向上していることを示す結果を得た。中でも、pep27領域を人工リンカーに置換したもの（FH_24，FH_25）に比べ、F_native抗原のpep27領域により近い抗原FH_21で三量体形成の向上が顕著であった（図２、図３）。
〔実施例３〕
　F_native抗原の前駆体タンパク質の189位と190位のアミノ酸はスレオニンとセリンであり、側鎖にヒドロキシル基を持つという点で親水性アミノ酸である。ところが、189～190位のアミノ酸の立体構造上の近位に存在するアミノ酸は57位のイソロイシン、167位のイソロイシン、171位のロイシン、179位のバリン、260位のロイシン等であるが、それらはいずれも疎水性アミノ酸であるため、構造の安定性を損ねている可能性が考えられた。そこで、189～190位のアミノ酸を疎水性アミノ酸（バリン、ロイシン、イソロイシン）に変異させることで構造を安定化させ、発現量向上に寄与する可能性を考えた。下記で作製した各抗原の前駆体タンパク質の変異内容は表３にまとめた。表３中の「FH_21 + T189I」は、抗原FH_21の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における189位のトレオニンがイソロイシンに変異していることを表す。「FH_21 + T189V」は、抗原FH_21の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における189位のトレオニンがバリンに変異していることを表す。「FH_21 + T189I, S190V」は、抗原FH_21の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における189位のトレオニンがイソロイシンに、190位のセリンがバリンに、変異していることを表す。「FH_21 + T189L, S190V」は、抗原FH_21の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における189位のトレオニンがロイシンに、190位のセリンがバリンに、変異していることを表す。「FH_21 + T189V, S190V」は、抗原FH_21の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における189位のトレオニンがバリンに、190位のセリンがバリンに、変異していることを表す。「FH_50 + K42R, V384T」は、抗原FH_50の前駆体タンパク質において、さらに、配列番号１のアミノ酸配列における42位のリジンがアルギニン、384位のバリンがトレオニンに変異していることを表す。さらに、天然のウイルス単離株にて生じている点変異を抽出し、それぞれ単独変異の検討を行ったところ、２つの点変異（K42R，V384T）で発現量を向上させる効果が認められたため、この変異も併せて導入して検討を行うこととした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 
　上記各抗原の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチド を、pcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現および精製は、実施例２と同様の操作で実施した。
　各抗原の発現量は、標準的な分光光度計を用いた吸光度測定によって測定した。精製後の抗原溶液の吸光度（280 nm）A280、アミノ酸一次配列情報から推定されるモル吸光度係数εと分子量M、精製後の抗原溶液量Vp、発現培養液量Vcを用い発現培養体積当たりの発現量y（y=A280xM/εxVp /Vc）を算出した。
　各抗原のD25抗体およびAM14抗体への結合性は実施例２と同様の操作で測定した。
　以上の操作により、189～190位の疎水性アミノ酸（V、I、L）への変異を追加した各抗原FH_50、FH_51、FH_52、FH_53、FH_55は、変異追加前の抗原FH_21に比べて、エピトープΦの保存性と三量体の形成を保ったまま、著しく発現量が向上していることを示す結果を得た。更に自然界のウイルスで起こりうる天然変異から抽出された２つの点変異（K42R、V384T）を追加した抗原FH_82は、エピトープΦの保存性と三量体の形成を保ったまま、更に著しく発現量が向上していることを示す結果を得た（図４、図５、図６）。
〔実施例４〕
　F_nativeの前駆体タンパク質の60位のアミノ酸はグルタミン酸であり、酸性アミノ酸に属するため溶媒が中性の条件下で負電荷を帯びることが一般的に知られている。このアミノ酸は、立体構造上、同じく中性条件下で負電荷を帯びる194位のアスパラギン酸と隣接しており、負電荷の近接により構造が不安定化する可能性を考えた。そこで、F_nativeの前駆体タンパク質のアミノ酸配列において、60位のアミノ酸を酸性アミノ酸以外のアミノ酸に変更する変異を実施することとした。ただし、60位のアミノ酸をアスパラギンに変更する際は、60～62位のアミノ酸が一般的に知られるN型糖鎖結合モチーフ（Asn-X-Ser/Thr）となることを避けるため、同時に62位のアミノ酸をセリンからアラニンに変更することとした。下記で作製した抗原の前駆体タンパク質の変異内容は、表４にまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 
　上記各抗原の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドをpcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現および精製は、実施例２と同様の操作で実施した。
　各抗原のD25抗体およびAM14抗体への結合性は、実施例２と同様の操作で測定した。
　以上の操作により、60位をM、F、L、S、Tに変更した際にエピトープΦの保存性と三量体の形成が向上していることを示す結果を得た（図７、図８）。
〔実施例５〕先行品との比較
　F抗原のpre-Fを安定化させる技術として最もよく報告されている変異の一つにDS-Cav1変異（S155C、S290C、S190F、V207L）がある（Jason S. McLellan et al. 2013. Science 342: 592）。そこで、先述の実施例で見出された有用な抗原FH_50及び抗原FH_50にさらに有用な変異を導入した表５に記載の抗原をDS-Cav1変異を導入した抗原F_DS-Cav1と比較することとした。また、post-F三量体構造を取ることが知られている抗原ΔFP furinwtFecto（Kurt A. Swanson et al. 2014. Journal of Virology. 88(20): 11802）も併せて作製し、抗原の評価に用いることとした。下記で作製した抗原の前駆タンパク質の変異内容を、表５にまとめた。抗原FH_81～85の前駆体タンパク質は抗原FH_50の前駆体タンパク質においてそれぞれE60M、K42R＋V384TまたはE60M＋K42R＋V384Tの変異を導入したものである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
 
　上記各抗原の前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドをpcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。抗原F_DS-Cav1の前駆体タンパク質は配列番号２３からなるアミノ酸配列とし、ΔFP furinwt Fectoの前駆体タンパク質は配列番号２４からなるアミノ酸配列とした。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現および精製は、実施例２と同様の操作で実施した。
　各抗原の発現量は、実施例３と同様の操作で実施した。
（抗体結合性試験）
　各抗原の各抗体への結合性は実施例２と同様の操作で測定したが、センサーチップに供する抗体として、エピトープIを認識する131-2A抗体を追加した。D25抗体、AM14抗体および131-2A抗体の結合シグナルの値は、F抗原のコンホメーション変化に依らず結合可能なシナジス抗体（アッヴィ、シナジス筋注液）を用いた際の結合シグナルの値との比を求めることで正規化した。
　以上の操作により、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85は、先行文献の抗原F_DS-Cav1に比べて、エピトープΦの保存性と三量体の形成はあまり変わらない一方で、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIはあまり検出されないことを示す結果を得た（図９、図10、図11）。これは、ワクチンには、ウイルス中和にほとんど寄与しない免疫細胞の活性化によってかえって症状を悪化させるリスクが存在するが、新規に見出した変異の導入は、DS-Cav1変異の導入に比べてそのリスクが低いことを示唆している。
（ヒト血清中のウイルス中和抗体の吸着試験）
　先の操作によって、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85は、ウイルス中和に寄与しない免疫の誘導を抑える効果がある可能性が示された。その効果をより詳細に検討するため、健常成人血清を用いて、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85およびF_DS-Cav1について、健常成人血清中のどのような抗体に結合するのか検証することとした。
　３名分の健常成人血清に対し、磁気ビーズDynabeads His-Tag Isolation and Pulldown（Thermo Fisher Scientific, 10103D）を用いた抗原吸着操作を実施した。まず、PBS（pH7.4）で２回洗浄した、ビーズ液45 μL分のビーズに対して20 μgの抗原F_DS-Cav1、FH_50、FH_81、FH_82又はFH_85を供して結合させた後、ウシ血清アルブミンにてブロッキングした。次に各健常成人血清100 μLをPBS（pH7.4）にて10倍希釈したものに対してビーズを添加してインキュベート（4℃、1時間、ローテート）した後にビーズを取り除くことで、抗原に結合する抗体の除去を実施した。
　Post-Fに結合する抗体（ウイルス感染中和能が比較的低いと考えられる抗体）をどの程度結合したか確認するため、抗原ΔFP furinwt Fectoを固層化したELISA試験を実施した。抗原結合バッファーには炭酸重炭酸バッファー（Sigma-Aldrich, C3041-50CAP）、サンプルの希釈及びプレートの洗浄にはTBS（TaKaRa, T9142）を用いた。96ハーフウェルプレートに対して2.0 pmolの抗原ΔFP furinwt Fectoを添加して直接固層化し、ウシ血清アルブミンにてブロッキングした。健常成人血清又は抗原吸着操作後の健常成人血清に対して適当にバッファーを添加することで４倍希釈系列を作製し、プレートに添加してインキュベート（室温、1時間、静置）した。その後希釈血清を除き、ペルオキシダーゼ結合抗ヒトIgG抗体（Jackson Immuno Research, 709-035-149）を結合させ、更に標準的なペルオキシダーゼ検出試薬で発色させた後に標準的なプレートリーダーによる吸光度測定にて発色の強度を求めた。測定点間は区分線形補間することで血清の希釈率と吸光度の関係を求め、吸光度が0.2となる希釈率の逆数をpost-Fに結合する抗体の抗体力価とし、吸着操作前の血清の抗体力価を100%とした時の吸着操作後の血清の抗体力価の減少量の相対値を吸着率とした（図12）。
　吸着操作によってウイルス感染中和能を持つ抗体がどの程度除かれたかを確認するため、ＲＳウイルス（ATCC, VR-1540）およびVero細胞（ATCC, CCL-81）を用いた感染評価を実施した。健常成人血清又は抗原吸着操作後の健常成人血清に対して適当にPBS（pH7.4）を添加することで5倍希釈系列を作製し、ＲＳウイルスを混合してインキュベート（室温、30分間、静置）した後に、96ウェルプレートの各ウェルに4×10４cells量を播種して１日間培養したVero細胞に添加し、インキュベート（37℃、humidity、2時間、静置）した。その後、ウイルス液を除去した後にDMEM, High Glucose（Thermo Fisher Scientific, 11965）にSodium Pyruvate Solution（ナカライ、06977-34）およびAntibiotic-Antimycotic Mixed Stock Solution（ナカライ、09366-44）をそれぞれ1% (v/v)添加した培地を1ウェルあたり100 μL添加し、さらにインキュベート（37℃、humidity、16時間、静置）した。次に、パラホルムアルデヒドで細胞を固定し、Triton X-100（ナカライ、35501-15）にて透過処理をした細胞に対し、Anti-RSV Antibody, fusion protein, all type A,B strains, clone 133-1H, Alexa Fluor 488（Merck, MAB8262X）およびHeochst33258（Dojindo, 343-07961）を用いて感染細胞および全細胞の核を染色し、イメージャーIN Cell Analyzer（GE Healthcare社）を用いて感染細胞領域中の核の数をカウントしてウイルス感染細胞数とした。各血清の希釈率xと感染数yの関係はシグモイド曲線（y=Ymax/(1+(x/IC50)C)）を実験結果へフィッティング（最小二乗誤差法によるあてはめ）をすることによって求め、IC50の逆数をウイルス感染中和力価とした。吸着操作前の血清のウイルス感染中和力価を100%としたときの吸着操作後のウイルス感染中和力価の減少量の相対値を吸着率とした（図13）。
　以上の操作により、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85は、先行文献の抗原F_DS-Cav1に比べて、健常成人血清中に存在するpost-F認識抗体の結合性は低く、吸着操作において抗体を半分程度しか結合できていないことが示された。それにもかかわらず、ウイルス感染中和能に寄与する抗体は、F_DS-Cav1と同様ほぼ全て結合しており、吸着操作で残った抗体にはウイルス感染中和能がほとんど無いことも示された。以上の結果は、新規に見出した変異は、DS-Cav1変異の導入に比べてウイルス感染中和に効果のない抗体の結合が少なく、ワクチン抗原として使用した際に、ウイルス感染防御に寄与しない抗体の誘導をするリスクが低いことを示唆している。
（マウス免疫で誘導された抗体の検証）
　先の操作によって、変異タンパク質はウイルス中和に寄与しない免疫の誘導を抑える効果があることが示唆された。その効果をさらに詳細に検討するため、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85又はF_DS-Cav1をマウスに免疫することで誘導される抗体の分析を実施した。
　マウス免疫血清は、BALB/cAnNCrlCrlj（日本チャールス・リバー）（雌、7週齢）に各変異タンパク質を免疫することで取得した。PBS（pH7.4）に溶解した抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85又はF_DS-Cav1（抗原濃度：0.80 mg/mL）と水酸化アルミニウム（InvivoGen, vac-alu-250）を等量ずつよく混合した液を飼育0日目および飼育21日目にマウスの後肢大腿部に50 μL筋肉内投与した（１群あたり５匹とした。）。飼育42日目に後大静脈から血液を取得し、取得した血液はインキュベート（室温、約2時間、静置）した後に遠心分離して血清を回収し、非働化（55℃、30 min）してマウス免疫血清とした。
　融合後コンホメーションに結合する抗体をどの程度の割合誘導したか確認するため、各マウス免疫血清に対し、磁気ビーズDynabeads His-Tag Isolation and Pulldown（Thermo Fisher Scientific, 10103D）を用いた抗原吸着操作を実施した。まず、PBS（pH7.4）で2回洗浄した、ビーズ液45 μL分のビーズに対して20 μgのΔFP furinwt Fectoを供して結合させた後、ウシ血清アルブミンにてブロッキングした。次に各マウス免疫血清50 μLをPBS（pH7.4）にて20倍希釈したものに対してビーズを添加してインキュベート（4℃、1時間、ローテート）した後にビーズを取り除くことで、抗原に結合する抗体の除去を実施した。
　次に、抗原F_DS-Cav1を固層化したELISA試験を実施し、抗原吸着操作による抗F抗原抗体の減少率を測定した。抗原結合バッファーには炭酸重炭酸バッファー（Sigma-Aldrich, C3041-50CAP）、サンプルの希釈及びプレートの洗浄にはPBS（TaKaRa, T9183）を用いた。96ハーフウェルプレートに対して2.0 pmolの抗原F_DS-Cav1を添加して直接固層化し、ウシ血清アルブミンにてブロッキングした。マウス免疫血清又は抗原吸着操作後のマウス免疫血清に対して適当にバッファーを添加することで5倍希釈系列を作製し、プレートに添加してインキュベート（室温、2時間）した。その後希釈血清を除き、ペルオキシダーゼ結合抗マウス抗体抗体（DaKo, P0161）を結合させ、更に標準的なペルオキシダーゼ検出試薬で発色させた後に標準的なプレートリーダーによる吸光度測定にて発色の強度を求めた。測定点間は区分線形補間することで血清の希釈率と吸光度の関係を求め、吸光度が0.2となる希釈率の逆数を検出された抗F抗原抗体の抗体力価とし、吸着操作前の血清の抗体力価を100%とした時の吸着操作後の血清の抗体力価の減少量の相対値を吸着率とした（図14）。
　以上の操作により、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85は、先行文献の抗原F_DS-Cav1に比べて、post-F認識抗体の誘導割合が少ないことが示された。つまり、抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85をワクチン抗原として用いた場合、ウイルス感染防御に寄与しない抗体を誘導するリスクが低いことを示唆する結果となった。
〔実施例６〕先行品との比較２
　実施例５で実施した抗原FH_50、FH_81、FH_82、FH_85のFタンパク質部分は、いずれもＬ１４１ＣおよびＬ３７３Ｃの変異を含んでいる。当該変異は実施例１においてジスルフィド結合を導入するために導入した変異であるが、先行特許（国際公開第２０１７／１０９６２９号）にて比較的近い部位へのジスルフィド結合の導入（Mutant ID: pXCS524．L142C、N371C）が検討され、さらに変異を加えた最適化抗原（Mutant ID: pXCS881．L142C、N371C、S55C、L188C、T54H、V296I、D486S、E487Q、D489S）が検討されている。そこで、先述の実施例で見出された有用な抗原を、pXCS524変異またはpXCS881変異を導入した抗原Pf524またはPf881と比較することとした。下記で作製した抗原の前駆体タンパク質の変異内容を、表６にまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
 
　抗原FH_08、FH_82、及びFH85はそれぞれ実施例１、実施例３、及び実施例５に記載のものを用いた。Pf524及びPf881は、これらの前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドをpcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入し、目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現および精製は、実施例２と同様の操作で実施した。
　各抗原の発現量は、実施例３と同様の操作で測定した。
（抗体結合性試験）
　各抗原の各抗体への結合性は実施例５と同様の操作で測定したが、結合シグナルの値は、各抗原溶液を180 sec供した時の検出値から、PBS（pH7.4）を180 sec供した時の検出値を引いた値とした（図１５、図１６、図１７）。
　以上の操作により、抗原FH_08は先行特許の変異を導入した抗原Pf524に比べて、エピトープΦの保存性と三量体の形成は優れている一方で、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIはあまり検出されないことを示す結果を得た。更に最適化された抗原FH_82、FH_85は、同じく最適化された先行特許の変異を導入した抗原Pf881に比べて、エピトープΦの保存性と三量体の形成は優れている一方で、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIはあまり検出されないことを示す結果を得た。これは、上記実施例で見出された有用なジスルフィドの導入変異は、先行特許におけるジスルフィドの導入変異（L142C、N371C）と比べてウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する変異であることを示唆している。
（マウス免疫で誘導された抗体の検証）
　上記の実験によって、抗原FH_82、FH_85は、ウイルス中和に寄与しない免疫の誘導が先行特許の変異を導入した変異体Pf881に比べて低いという効果があることが示唆された。その効果をさらに詳細に検討するため、抗原FH_82、FH_85又はPf881をマウスに免疫することで誘導される抗体の分析を実施した。
　誘導抗体の分析は、実施例５と同様の操作で実施し、ΔFP furinwt Fectoによる吸着操作による抗体力価の吸着率を測定した（図１８）。
　以上の操作により、抗原FH_82、FH_85は、先行特許の変異を導入した抗原Pf881に比べて、post-F認識抗体の誘導割合が少ないことが示された。つまり、抗原FH_82、FH_85をワクチン抗原として用いた場合、Pf881と比較してもウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導することを示唆する結果となった。
〔実施例７〕足場粒子を用いた抗原の粒子化
　ウイルス感染防御に寄与しない抗体を誘導するリスクをさらに減少させるためには、エピトープI認識抗体等のpost-F認識抗体によって認識される抗原部位に対する抗体や各種免疫細胞のアクセシビリティを立体障害効果によって低下させることが有効であると考えらえれる。そこで、post-F認識抗体の認識部位が内側になるように抗原を適当な足場粒子上に固定させることで、当該立体障害効果を得ることができる可能性を考えた。
　ところが、抗原を適当な足場粒子上に提示させる際に、抗原の間隔がある一定以上長いために密度が疎であったり、足場粒子と抗原との間に一定以上の長さのフレキシブルなリンカーを導入したりすると、先述の立体障害効果が得られない可能性が考えられる。そこで、比較的高密度な抗原提示が実現可能であると考えられるHBsAg VLPを用い、複数の長さのGSリンカーを検討することとした。
（粒子化抗原の調製）
　足場粒子として、Fc融合タンパクを結合可能なBionanocapsule-ZZ（Beacle社、BCL-DC-002）を用いた。
　抗原の前駆体タンパク質として、前述のF_DS-Cav1、FH_82、FH_85の前駆体タンパク質におけるThrombin認識配列、Hisタグ、Strep-Tag IIを含む配列（配列番号２２）をFc配列（配列番号３０）に置換した抗原F_DS-Cav1-Fcの前駆体タンパク質（配列番号３１）、FH_82-Fcの前駆体タンパク質（配列番号３２）、FH_85-Fcの前駆体タンパク質（配列番号３３）を作製した。さらに、抗原F_DS-Cav1-Fcの前駆体タンパク質、FH_85-Fcの前駆体タンパク質について、Fc配列の直前にGSリンカー（GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS（配列番号７５）、GGGGSGGGGS（配列番号１９）あるいはGGGGS（配列番号２７））を挿入したものについては、対応する前駆体タンパク質（配列番号３４～３９）を元に以下の方法で作製した。
　上記各前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、pcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各抗原の前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の前駆体タンパク質の発現はExpi293 Expression System（Thermo Fisher Scientific社）を用いた哺乳類細胞分泌発現によって実施した。精製された各ベクターを同キットの遺伝子導入試薬であるExpi Fectamin 293 Reagentを用いてExpi293細胞に導入し、4～5日程度培養することでコードされた各抗原を分泌発現させ、遠心分離および孔径0.22 μmのフィルターを用いて上清成分のみを取得した。
　各抗原の精製は、Protein A精製カラムを用いた標準的なアフィニティー精製法にて実施した。精製後は限外濾過膜を用いることでPBS（pH7.4）に溶媒置換した。
　作製した各抗原は、HBsAg VLP 1粒子当たり、平均して約135分子（3量体にして約45分子）となる比率でHBsAg VLPと混合し、室温で１時間静置することで足場粒子に固定化した。この時、固定化していない抗原がほとんど存在していないことは、BlueNativePAGEを行うことで確認した。
　本実施例で評価に用いた抗原、および当該抗原が足場粒子に固定化された粒子化体（以下、「粒子化抗原」と称することがある）を表７にまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
 
（抗体結合性試験）
　抗原または粒子化抗原であるF_DS-Cav1、F_DS-Cav1-VLP、FH_82、FH_82-VLP、FH_85およびFH_85-VLPの各抗体への結合性は、実施例６と同様の操作で測定した（図１９、図２０、図２１）。
　以上の操作により、F抗原領域のpre安定化方法（pre安定化のためのアミノ酸変異の内容）に依らず、pre-Fをそのアミノ酸配列のC末端に付加したドメインを介して足場粒子に固定化すると、エピトープΦに対する抗体の結合性を保ったまま三量体の形成が向上することが示された。さらに、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIの検出値は減弱することが示された。以上の結果は、本粒子化抗原をワクチン抗原として用いた際に、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導することを示唆している。
（挿入リンカーの検討）
　抗原または粒子化抗原であるF_DS-Cav1、F_DS-Cav1-4GS-VLP、F_DS-Cav1-2GS-VLP、F_DS-Cav1-1GS-VLP、F_DS-Cav1-VLP、FH_85、FH_85-4GS-VLP、FH_85-2GS-VLP、FH_85-1GS-VLPおよびFH_85-VLPの各抗体への結合性を実施例６と同様の操作で測定した（図２２、図２３、図２４）。
　以上の操作により、実施した何れのGSリンカーの挿入によっても、エピトープΦに対する抗体の結合性を保ったまま三量体の形成を向上し、エピトープIの検出値は減弱する効果があることが示された。ただし、エピトープI検出の減弱の効果は、足場粒子と抗原との間に長すぎるGSリンカーが挿入されると、低下することが示された。具体的には、GGGGSGGGGS（配列番号１９）程度の長さであれば顕著な影響は見られないが、より長いGGGGSGGGGSGGGGSGGGGS（配列番号７５）の長さになるとエピトープI検出を減弱させる効果の低下が見られた。
　以上の結果は、足場粒子と抗原との間に一定以上の長さのフレキシブルなリンカーを挿入すると、立体障害効果によってpost-F認識抗体の認識部位へのアクセシビリティを低下させる効果が減弱することを示唆している。
（抗原密度の見積もり）
　粒子化抗原FH_85-VLPの理論直径をZetasizer μV（Malvern）を用いた動的光散乱法によって見積もったところ、89.28 nmであった（図２５）。１粒子当たり平均約135分子（3量体約45分子）を提示してることから、理論表面積1 nm2当たりの平均分子密度は、約0.005 分子（３量体としては、約0.0018 分子）と計算できる。なお、ここでは球体の表面積Sはその半径ｒを用いて以下の式によって求められることとした。
　Ｓ＝４πｒ２
　すなわち、目的の立体障害効果は、動的光散乱法によって見積もられる理論表面積1 nm2当たり、最低でも約0.005 分子以上の抗原分子が存在する程度の密度であれば実現できることが示唆された。
　DS-Cav1-VLPおよびFH_82-VLPにおいても同様の結果であった（図２５）。
（マウス免疫で誘導された抗体の検証）
　上記実験によって、足場粒子HBsAg VLPに結合したpre-F抗原はウイルス中和に寄与しない免疫の誘導を抑える効果があることが示唆された。その効果をさらに詳細に検討するため、F_DS-Cav1、F_DS-Cav1-VLP、FH_82、FH_82-VLP、FH_85またはFH_85-VLPをマウスに免疫することで誘導される抗体の分析を実施する。
　マウス免疫血清は、BALB/c（雌、５～８週齢）に各粒子化抗原を免疫することで取得する。各粒子化抗原の溶媒組成としてPBSまたはPBSと水酸化アルミニウム（InvivoGen、 vac-alu-250）を等量ずつよく混合した液を使用する。抗原は約３週間間隔で２回マウスの後肢大腿部に筋肉内投与し、２回目の投与から更に約３週間後に血液を取得する。取得した血液は室温でインキュベートした後に遠心分離して血清を回収する。
　血清中にpre-Fあるいはpost-Fに結合する抗体をどの程度誘導したか確認するため、各コンホメーションの抗原を固層化したELISA試験を実施する。
　また、post-F認識抗体の誘導割合を算出するために抗原吸着操作および抗原吸着操作による抗原認識抗体の減少率の測定を実施する。方法は実施例５で示した方法に準拠する。
　結論として、本粒子化によって、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果が確認される。
〔実施例８〕疎水性ペプチド鎖を用いた抗原の粒子化
　実施例７で示したpost-F認識抗体によって認識される抗原部位に対する抗体や各種免疫細胞のアクセシビリティを立体障害効果によって低下させる効果は、足場粒子を用いない方法によっても実現できる可能性を考えた。そこで、本実施例では、疎水性ペプチド鎖（疎水性のアミノ酸を含むポリペプチド鎖）を用いた疎水集合による粒子化を検討することとした。
（疎水性ペプチド鎖の検討）
　用いる疎水性ペプチド鎖は、ワクチン製剤あるいは生体内での条件下で疎水集合する性質を有する必要があるが、細胞による抗原の分泌発現効率を著しく低下する配列では実用が困難である。一般的に疎水性のアミノ酸を多く含むポリペプチド鎖をタンパクに融合した場合、そのタンパクの細胞における生産効率は低下することが知られているため、適切な疎水性ポリペプチド鎖の検討をすることとした。
　前記抗原F_DS-Cav1の前駆体タンパク質におけるThrombin認識配列、Hisタグ、Strep-Tag IIを含む配列（配列番号２２）を各種疎水性ペプチド鎖（配列番号４０～４３）および精製用タグであるFLAGタグから成る配列（配列番号４４～４７）に置換した前駆体タンパク質を元に抗原を作製した。検討した疎水性ペプチド配列を表８－１にまとめた。
　上記各前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、pcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現は実施例７と同様の操作で実施した。
　各抗原の精製は、ANTI-FLAG M2 Affinity Gel（Sigma，A2220）を用いたアフィニティー精製によって実施した。アフィニティー精製の溶出にはＦＬＡＧペプチドを使用したが、限外濾過膜を用いることで各抗原サンプル中のＦＬＡＧペプチドの除去を行った。溶媒にはPBS（pH7.4）を使用した。
　抗原の分泌発現の可否は、精製後に一般的なＳＤＳ－ＰＡＧＥを行い、目的タンパクを高純度に分離精製できているかどうかを確認することで行った。また、粒子化の可否は、精製後に一般的なＢｌｕｅＮａｔｉｖｅＰＡＧＥを行うことで確認した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　F_DS-Cav1-CC02およびF_DS-Cav1-CC03の分泌発現の可否および粒子化の可否を検討したところ、F_DS-Cav1-CC03は分泌発現するものの粒子化は起こらず、一方でF_DS-Cav1-CC02は分泌発現がうまく行かないことが分かった（図２６）。そこで、用いる疎水性ペプチド鎖の最適な疎水度は、両者の疎水度の間にあると考えられた。
　F_DS-Cav1-CC02とF_DS-Cav1-CC03の疎水性ペプチド鎖の違いは、親水性ではないアミノ酸であるアラニンが、親水性アミノ酸であるリジンあるいはグルタミン酸に置き換わっている点である。そこでまず、F_DS-Cav1-CC02のアラニンを、中程度の親水性を持ち、pKがpH6程度であるヒスチジンに変更することを考えた。製剤時の溶媒のpHは中性付近であるのに対し、細胞の分泌経路中のpHはより低いpHであることが知られているため、ヒスチジンを含むペプチド鎖は、分泌発現時は比較的親水的な性質となり、製剤時には比較的疎水的な性質となることが期待された。
　また、設計した疎水性ペプチド鎖がコイルドコイル構造を形成すると仮定すると、フォルドンドメインの直下に接続された疎水性ペプチド鎖の２１個のアミノ酸の位相は、順にdefgabcdefgabcdefgabcとなることが予想される。３量体で疎水相互作用するa、d位にロイシンとイソロイシンを配置する場合、天然のタンパクのアミノ酸配列を検討した先行研究（Joel P Schneider et al. 1998. Folding & Design. 3:R29）によると、イソロイシンをa位、ロイシンをd位とする方がより高頻度であるため、F_DS-Cav1-CC02のa位とd位のロイシン、イソロイシンを入れ替えることを考えた。
　以上から、新たにF_DS-Cav1-CC07を設計し、分泌発現の可否および粒子化の可否を検討したところ、分泌発現と粒子化の両方が達成された（図２７）。ヒスチジン、リジン、グルタミン酸の位置を変更したF_DS-Cav1-CC08では分泌発現が困難になることから、単なるアミノ酸の組成のみの問題ではなく、立体構造上の配置が重要であることも示唆された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 
（粒子化抗原の調製）
　前記抗原FH_82およびFH_85の前駆体タンパク質におけるThrombin認識配列、Hisタグ、StrepTagIIを含む配列（配列番号２２）を最適な疎水性ペプチド鎖（配列番号４２）および精製用タグであるFLAGタグから成る配列に置換した前駆体タンパク質（配列番号４８、４９）を元に、抗原を作製した。
　上記前駆体タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、pcDNA3.4ベクター（Thermo Fisher Scientific社）に標準的な遺伝子工学技術により挿入した。目的のDNA配列が挿入されていることを塩基配列解析によって確認し、各前駆体タンパク質を発現する各哺乳類細胞用発現ベクターを構築した。細胞に導入するためのベクターを標準的なプラスミドベクター精製方法により精製した。
　各抗原の発現は、疎水性ペプチド鎖の検討と同様の操作で実施した。
　各抗原の精製は、疎水性ペプチド鎖の検討と同様の操作で実施した。
　本実施例にて以降で評価に使用した抗原（「粒子化抗原」と称することがある）を表８－２にまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
 
（抗体結合性試験）
　作製した各粒子化抗原の各抗体への結合性は、実施例６と同様の操作で測定した（図２８、図２９、図３０）。
　以上の操作により、F抗原領域のpre安定化方法（pre安定化のためのアミノ酸変異の内容）に依らず、pre-Fをそのアミノ酸配列のC末端に付加した疎水性ペプチド鎖によって集合させた粒子化抗原は、エピトープΦに対する抗体の結合性を保ったまま三量体の形成が向上していることを示す結果を得た。さらに、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIの検出は減弱することを示す結果を得た。以上の結果は、本抗原をワクチン抗原として用いた際に、本粒子化によって、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果が向上することを示唆している。
（抗原密度の見積もり）
　抗原FH_85および粒子化抗原FH_85-CC07の理論直径をDynaPro Plate Reader III（Wyatt）を用いた動的光散乱法によって見積もったところ、13.8 nmおよび60.0 nmであった（図３１）。２つの粒子の分子量の比は、一般的なタンパク質においては、その理論直径の比の2～3乗に比例するため、FH_85-CC07の分子量はFH_85の分子量の20～80倍程度になっていると見積もられる。つまり、FH85-CC07は１粒子当たり60～240分子程度（3量体としては20～80分子程度）を提示していると考えられ、理論表面積1 nm2当たりの平均分子密度は、0.005～0.022分子程度（３量体としては、0.0017～0.0073 分子程度）と計算できる。
　FH_82-CC07においても、同様の結果であった（図３１）。
　従って、疎水性ペプチド鎖を用いた粒子化抗原は、実施例６で示した足場粒子を用いた粒子化抗原と比べて、同等程度かそれ以上の抗原密度であることが見積もられた。
（マウス免疫で誘導された抗体の検証）
　先の操作によって、疎水性ペプチド鎖が結合した抗原の粒子化は、ウイルス中和に寄与しない免疫の誘導を抑える効果があることが示唆された。その効果をさらに詳細に検討するため、前記抗原または粒子化抗原F_DS-Cav1F_DS-Cav1-CC07、FH_82-CC07又はFH_85-CC07をマウスに免疫することで誘導される抗体の分析を実施した。
　マウス免疫血清は、BALB/cAnNCrlCrlj（日本チャールス・リバー）（雌、６週齢）に各抗原及び粒子化抗原を免疫することで取得した。PBS（pH7.4）に溶解した抗原または粒子化抗原F_DS-Cav1、F_DS-Cav1-CC07、 FH_82-CC07又はFH_85-CC07（抗原濃度：0.40 mg/mL）を飼育0日目および飼育21日目にマウスの後肢大腿部に50 μL筋肉内投与した（１群あたり５匹とした。）。飼育42日目に後大静脈から血液を取得し、取得した血液はインキュベート（室温、約2時間、静置）した後に遠心分離して血清を回収し、非働化（55℃、30 min）してマウス免疫血清とした。
　融合後コンホメーションに結合する抗体をどの程度の割合誘導したか確認するため、各マウス免疫血清に対し、実施例６と同様の方法でΔFP furinwt Fectoを結合した磁気ビーズまたは何も抗原を結合せずにブロッキング操作のみを実施した磁気ビーズを用いた抗原吸着操作を行った。さらに、吸着操作後の各血清について、実施例６と同様の方法でF_DS-Cav1を固層化したELISA試験を実施して吸着率を算出した。ただし吸着率は、抗原無しの吸着操作後の血清の抗体力価を100%とした時の、抗原無しの吸着操作後の血清の抗体力価からΔFP furinwtFectoによる吸着操作後の血清の抗体力価を引いた値の相対値とした（図３２）。
　以上の操作により、粒子化前の抗原F_DS-Cav1では半分程度誘導されていたpost-F認識抗体が、疎水性ペプチド鎖によって粒子化した抗原F_DS-Cav1-CC07ではほとんど誘導されないことが示された。また、FH_82-CC07、FH_85-CC07も同様にpost-F認識抗体がほとんど誘導されなかった。以上より、本粒子化によって、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果が向上することが示唆された。
〔実施例９〕自己会合性タンパクドメインを用いた抗原の粒子化
　実施例７、８で示したpost-F認識抗体によって認識される抗原部位に対する抗体や各種免疫細胞のアクセシビリティを立体障害効果によって低下させる効果は、抗原のＣ末端側への自己会合性タンパクドメインの融合によっても実現できる可能性を考えた。特に、自己会合性タンパクドメインを用いて規則正しく抗原を整列させることで、実施例８で示した疎水集合による粒子化よりも高い立体障害効果が得られる可能性を考えた。
　そこで、本実施例では、Ｂ型肝炎ウイルスのコア抗原（ＨＢｃＡｇ）の自己会合性を利用した粒子化を検討することとした。
　ただし、前記抗原F_DS-Cav1におけるThrombin認識配列、Hisタグ、Strep-Tag IIを含む配列（配列番号２２）をＧＳリンカー（GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS）（配列番号７５）、ＨＢｃＡｇの自己会合ドメイン（配列番号５０）、およびHisタグからなるペプチド配列（配列番号５１）に置き換えたものでは、発現はするものの自己会合が見られなかった（ＢｌｕｅＮａｔｉｖｅＰＡＧＥによる検証結果）。ＨＢｃＡｇの自己会合ドメインのＮ末端は、ＨＢｃＡｇ同士が自己会合する際の結合面に近い位置に存在しており、Ｎ末端に大きなタンパク質を融合することで自己会合を妨げている可能性を考えた。
　そこで、自己会合する際の結合面から遠い位置にＲＳＶ　Ｆ抗原部分を配置するため、ＨＢｃＡｇが自己会合する際に粒子の外向きに突出する部位（α３ドメインとα４ドメインに存在するヘリックスの間の部分）よりもＣ末側とＮ末側に分割することとした。また、想定しないジスルフィド結合の生成リスクを減らすため、自己会合に影響が無いと考えられている２つの点変異（C48SおよびC107A）を導入することとした。具体的には、前記抗原F_DS-Cav1およびFH_85の前駆体タンパク質におけるThrombin認識配列、Hisタグ、StrepTagIIを含む配列（配列番号２２）をＧＳリンカー（GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS）（配列番号７５）、ＨＢｃＡｇの自己会合ドメインのＣ末側（配列番号５２）並びに、ＧＳリンカー（GGGGSGGGGSGGGGSGGGGS）（配列番号７５）、ＨＢｃＡｇの自己会合ドメインのＮ末側（配列番号５３）及び、ＦＬＡＧタグがその順番に結合した配列（配列番号５４）に置き換えたF_DS-Cav1-HBcCNの前駆体タンパク質（配列番号５５）及びFH_85-HBcCNの前駆体タンパク質（配列番号５６）を元に抗原（「粒子化抗原」と称することがある）を作製した。
　F_DS-Cav1-HBcCNについて、実施例８と同様の操作で発現、精製して分泌発現の可否および粒子化の可否を検討したところ、分泌発現と粒子化の両方が達成された（図３３）。ただし、比較的発現量が低かったため、発現方法の改良が望まれた。そこで、DS-Cav1-HBcCNあるいはFH_85-HBcCNの前駆体をコードするポリヌクレオチドについて、GS Xceed Gene Expression System（Lonza社）を用いて安定発現CHO株を樹立した。樹立された細胞株を培養し、各抗原を分泌発現させた後に培養上清成分を取得した。
　各粒子化抗原の精製は、実施例８と同様の操作で実施した。
　各粒子化抗原の各抗体への結合性を確認するため、Palivizumab（シナジス筋注液、アッヴィ）、131-2A抗体、D25抗体をそれぞれ固層化したELISA試験を実施した。抗体結合バッファーには炭酸重炭酸バッファー（Sigma-Aldrich, C3041-50CAP）、サンプルの希釈及びプレートの洗浄にはTBS（TaKaRa, T9142）を用いた。96ハーフウェルプレートに対して10 μg/mLのPalivizumabまたは131-2A抗体またはD25抗体を添加して直接固層化し、ウシ血清アルブミンにてブロッキングした。各抗原に対して適当にバッファーを添加することで10倍希釈系列を作製し、プレートに添加してインキュベート（室温、2時間、静置）した。その後添加した抗原溶液を除き、ペルオキシダーゼ結合抗FLAG M2抗体（Sigma-Aldrich, A8592）を結合させ、更に標準的なペルオキシダーゼ検出試薬で発色させた後に標準的なプレートリーダーによる吸光度測定にて発色の強度を求めた。測定点間は区分線形補間することで抗原の希釈率と吸光度の関係を求め、吸光度が0.2となる希釈率の逆数を、固層化した抗体に対する添加した抗原の結合力とした。D25抗体に対する結合力をPalivizumabに対する結合力で割り算した値をエピトープΦ検出シグナル、131-2A抗体に対する結合力をPalivizumabに対する結合力で割り算した値をエピトープI検出シグナルとした（図３４、図３５）。
　以上の操作により、pre-Fをそのアミノ酸配列のC末端に付加した自己会合性タンパクドメインによって集合させた粒子化抗原は、疎水性ペプチド鎖による粒子化よりも更にエピトープΦに対する抗体の結合性を向上させ、ウイルス感染中和能の著しく低い抗体を誘導することで知られているエピトープIの検出を減弱することを示す結果を得た。以上の結果は、本粒子化によって、ウイルス中和に高い効果を持つと考えられる抗体群を優先的に誘導する効果が向上することを示唆している。

Claims (34)

  1. 　変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンのシステインへの置換であり、前記システイン間でジスルフィド結合が形成される、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  2. 　前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質が、ＲＳＶサブタイプＡ又はＲＳＶサブタイプＢに由来する、請求項１に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  3. 　前記ＲＳＶサブタイプＡがＲＳＶ　Ａ２株又はＲＳＶ　Ｌｏｎｇ株である、請求項２に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  4. 　前記ＲＳＶサブタイプＢがＲＳＶ　１８５３７株である、請求項２に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  5. 　配列番号２と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインに置換されたアミノ酸配列を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、請求項１～４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  6. 　さらに、ｐｅｐ２７領域のＣ末端側に存在する、フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、前記フーリン認識部位がフーリンによって認識されないように置換されている、請求項１～４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  7. 　前記フーリン認識部位を構成するアミノ酸が、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸であり、
    　当該アミノ酸が、非塩基性アミノ酸に置換されている、
    　請求項６に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  8. 　配列番号３と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列において、配列番号１のアミノ酸配列の１４１位のロイシンに相当するロイシン又は１４２位のロイシンに相当するロイシン、及び３７３位のロイシンに相当するロイシンがシステインに置換され、さらに、配列番号１のアミノ酸配列の１３３位のアルギニンに相当するアルギニン、１３５位のアルギニン相当するアルギニン、及び１３６位のアルギニンに相当するアルギニンからなる群から選択されるアミノ酸が、非塩基性アミノ酸に置換されたアミノ酸配列を含み、前記システイン間でジスルフィド結合が形成され、ＲＳＶのｐｒｅ型Ｆタンパク質に対する抗体を誘導する能力を有する、請求項６または７に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  9. 　前記非塩基性アミノ酸がアスパラギンである、請求項７または８に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  10. 　さらに、配列番号１のアミノ酸配列の１８９位のスレオニンに相当するスレオニン、及び／又は１９０位のセリンに相当するセリンが疎水性アミノ酸に置換されている、請求項１～９のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  11. 　前記疎水性アミノ酸が、それぞれ独立して、バリン、イソロイシン、及びロイシンからなる群から選択される、請求項１０に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  12. 　さらに、配列番号１のアミノ酸配列の４２位のリジンに相当するリジンがアルギニンに置換されており、及び／又は、３８４位のバリンに相当するバリンがスレオニンに置換されている、請求項１～１１のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  13. 　変異を有する変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質であって、前記変異は、配列番号１のアミノ酸配列の６０位のグルタミン酸に相当するグルタミン酸の非酸性アミノ酸への置換である、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  14. 　前記非酸性アミノ酸が、メチオニン、フェニルアラニン、ロイシン、スレオニン、及びセリンからなる群から選択される、請求項１３に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質。
  15. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質と、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のＣ末端に融合された多量体化ドメインを含む、融合タンパク質。
  16. 　前記多量体化ドメインがフォルドンドメインである、請求項１５に記載の融合タンパク質。
  17. 　配列番号１０～１３のいずれかのアミノ酸配列を含む、請求項１６に記載の融合タンパク質。
  18. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質の多量化体であって、前記請求項１５～１７のいずれか一項に記載の融合タンパク質が前記多量体化ドメインを介して会合したものである、前記多量化体。
  19. 　前記多量化体が３量体である、請求項１８に記載の多量化体。
  20. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または請求項１５～１７のいずれか一項に記載の多量化体の粒子化体であって、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質は粒子化ドメインを含み、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記多量化体が該粒子化ドメインを介して２個以上集合して粒子を形成しており、前記粒子化ドメインは、変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または多量化体の立体構造上、エピトープΦよりもエピトープＩに近い位置に存在する、前記粒子化体。
  21. 　前記粒子化体は、前記変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質または前記融合タンパク質のＣ末端に粒子化ドメインが結合した粒子化体製造用融合タンパク質が、前記粒子化ドメインを介して２個以上集合したものである、請求項２０に記載の粒子化体。
  22. 　前記多量化体が請求項１６記載の融合タンパク質からなる3量体である、請求項２０または２１に記載の粒子化体。
  23. 　前記粒子化ドメインが配列番号３０のアミノ酸配列からなるＦｃドメインであって、当該粒子化ドメインが改変型HBｓ抗原由来のVLPに固定化されているプロテインＡのＺドメインと結合することにより集合したものである、請求項２２に記載の粒子化体。
  24. 　前記粒子化ドメインが配列番号４２のアミノ酸配列からなるペプチドである、請求項２２に記載の粒子化体。
  25. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質のＣ末端、または請求項１５～１７のいずれか一項に記載の融合タンパク質と、そのＣ末端に融合した粒子化ドメインを含む、粒子化体製造用融合タンパク質。
  26. 　前記粒子化ドメインが配列番号３０のアミノ酸配列配列からなるＦｃドメインである、請求項２５に記載の粒子化体製造用融合タンパク質。
  27. 　前記粒子化ドメインが配列番号４２のアミノ酸配列からなるペプチドである、請求項２５に記載の粒子化体製造用融合タンパク質。
  28. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、請求項１５～１７のいずれか一項に記載の融合タンパク質、または請求項２５～２７のいずれか一項に記載の粒子化体製造用融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
  29. 　請求項２８に記載のポリヌクレオチドを含む、発現ユニット。
  30. 　請求項２９に記載の発現ユニットを含む、宿主細胞。
  31. 　請求項１～１４のいずれか一項に記載の変異型ＲＳＶ　Ｆタンパク質、請求項１５～１７のいずれか一項に記載の融合タンパク質、請求項１８～１９のいずれか一項に記載の多量化体、又は請求項２０～２４のいずれか一項に記載の粒子化体を含む、免疫原。
  32. 　請求項２９に記載の発現ユニット、又は請求項３１に記載の免疫原を含む、医薬組成物。
  33. 　請求項２９に記載の発現ユニット、又は請求項３１に記載の免疫原を含む、ＲＳＶワクチン。
  34. 　ヒト用である、請求項３２に記載の医薬組成物または請求項３３に記載のＲＳＶワクチン。
     
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