WO2021066139A1 - 糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマトデバイス - Google Patents

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sample
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immunochromatographic
test piece
nitrite
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PCT/JP2020/037536
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加藤　大介
志野 村松
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デンカ株式会社
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    • G01N2400/02—Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates involving antibodies to sugar part of glycoproteins

Definitions

  • the present invention relates to an immunochromatographic device for extracting and measuring a sugar chain antigen, which is capable of performing a nitrite extraction treatment of a sugar chain antigen on an immunochromatographic test piece.
  • a rapid diagnostic agent based on a general immunochromatography method can measure quickly and easily by suspending a sample in a sample suspension and then supplying the suspension to an immunochromatographic test piece.
  • the nitrite extraction process is performed on the immunochromatographic test piece only by impregnating the immunochromatographic test piece with sodium nitrite and a neutralizing reagent in advance, suspending the sample in an acidic solution such as acetic acid, and supplying the immunochromatographic test piece to the immunochromatographic test piece.
  • An acidic solution such as acetic acid
  • the immunochromatographic test piece is previously impregnated with an acidic reagent and a neutralizing reagent, and the sample is suspended in nitrite and supplied to the immunochromatographic test piece.
  • a sugar chain antigen is extracted and the sugar chain antigen is measured.
  • Nitrite is required to extract the sugar chain antigen. Since nitrite is unstable by itself, nitrite is extracted by mixing a nitrite solution and an acid solution (acetic acid, citric acid, tartaric acid, etc.) at the time of use to generate nitrite.
  • an acid solution acetic acid, citric acid, tartaric acid, etc.
  • group A ⁇ -hemolytic streptococcus group A ⁇ -hemolytic streptococcus
  • group A ⁇ -hemolytic streptococcus group A ⁇ -hemolytic streptococcus
  • either a nitrite solution or an acid solution may be applied, dried, and incorporated into an immunochromatographic test piece.
  • a reagent form as compared with a liquid reagent, a reagent mixing operation is not required and the operation is simple.
  • nitrite is used when the sample is developed in a short time like a normal immunochromatography method after the reagent is mixed. Since the extraction process is not sufficiently performed, there is a problem that the sensitivity becomes insufficient.
  • the sample In the reagent form in which liquid reagents are mixed and nitrite is extracted, the sample is usually extracted for 1 to 2 minutes. Therefore, in order to obtain the same sensitivity as the liquid form, it was necessary to hold the sample on the immunochromatographic test piece for 1 to 2 minutes upstream of the neutralization.
  • the present invention enables measurement with sufficient sensitivity by performing nitrite extraction treatment over a sufficient period of time.
  • An object of the present invention is to provide an immunochromatographic device.
  • the present inventors take a sufficient time for the nitrite extraction treatment in the immunochromatography method for extracting and measuring the sugar chain antigen, which enables the nitrite extraction treatment of the sugar chain antigen on the immunochromatographic test piece. We enthusiastically examined the technology to be used.
  • the present invention is as follows.
  • [1] Includes a sample pad to which a sample mixed with a nitrite or an acidic solution is added, a labeled region containing a labeled antibody labeled with an antibody against a sugar chain antigen, and a detection region in which an antibody against the sugar chain antigen is immobilized.
  • An immunochromatographic test piece for measuring a sugar chain antigen by forming an antibody-sugar chain antigen-labeled antibody complex in the detection region, which has a region impregnated with a neutralizing reagent upstream of the labeled region.
  • a region impregnated with a solid acidic reagent when a sample mixed with a nitrite is used there is a region impregnated with a solid acidic reagent when a sample mixed with a nitrite is used, and impregnated with a nitrite when a sample mixed with an acidic solution is used.
  • It consists of an immunochromatographic test piece for extracting and measuring a sugar chain antigen in a sample and a container for storing the test piece, and the container consists of an upper lid part and a lower container part, and the upper lid part.
  • the portion has an upper support consisting of protrusions supporting the upper side of the immunochromatographic test piece
  • the lower container portion has a lower support consisting of protrusions supporting the lower side of the immunochromatographic test piece, and the sample pad of the immunochromatographic test piece.
  • An immunochromatographic device that has a sample dropping port on the top of the antibody.
  • An immunochromatographic device characterized in that the protrusions forming the upper support and / or the lower support for supporting the immunochromatographic test piece are inclined.
  • [6] A method for measuring a sugar chain antigen in a sample by an immunochromatography method using any of the immunochromatographic devices of [1] to [5].
  • the immunochromatographic device has a region impregnated with a solid acidic reagent, the sample is mixed with the nitrite solution, and when the immunochromatographic device has a region impregnated with nitrite, the sample is mixed with the acidic solution, and the immunochromatographic device is described.
  • the sugar chain antigen is extracted from the sample by the action of nitrite generated by the reaction of the nitrite and the solid acidic reagent, and the neutralizing reagent is impregnated.
  • the acidic solution containing the sugar chain antigen was neutralized.
  • the development time of the sample sample solution on the immunochromatographic test piece after sample addition can be adjusted to an appropriate time.
  • the sample processing performed on the test piece can be sufficiently performed by the sample processing reagent contained on the immunochromatographic test piece.
  • FIG. 1 It is sectional drawing which shows the lid part of the containment vessel of the immunochromatographic device, the immunochromatographic test piece, and the container part of the containment vessel. It is a perspective view of the lid part of the containment vessel of an immunochromatographic device. It is a top view of the lid part and the container part of the containment vessel of the immunochromatographic device.
  • the present invention relates to an immunochromatographic device that simplifies the nitrite extraction treatment of a sugar chain antigen on an immunochromatographic test piece and enables rapid and accurate measurement of the sugar chain antigen as a substance to be detected.
  • the immunochromatographic device comprises an immunochromatographic test piece and a container for storing the immunochromatographic test piece, and can be produced by incorporating the immunochromatographic test piece into the immunochromatographic device.
  • the containment vessel can prevent deterioration due to, for example, ultraviolet rays or moisture in the air. In addition, when a contaminating or infectious sample is used, the containment vessel can prevent the tester performing the assay from being contaminated or infected.
  • a resin case of an appropriate size may be used as a containment vessel, and the immunochromatographic test piece may be stored in the case. Further, the surface of the test piece on which the antigen or antibody is immobilized may be covered with a resin film or the like (top laminate).
  • a support having a detection region in which an antibody (antibody 1) that captures a substance to be detected (antigen, etc.) is immobilized, a labeled region having a movable labeled antibody (antibody 2), and a sample are added. It is provided with a sample pad to be used, an absorption band for absorbing the developed sample liquid, a backing sheet for bonding these members together, and the like.
  • the number of detection regions and the type of labeled antibody contained in the labeled region are not limited to one, and two or more antigens can be tested in the same test by using antibodies corresponding to a plurality of substances to be detected. It can be measured in pieces.
  • the support is a material that has the ability to immobilize the antibody for capturing the substance to be detected (antigen), and also has the ability to not prevent the liquid from passing in the horizontal direction.
  • it is a porous thin film (membrane) having a capillary action, and is a material capable of transporting a liquid and components dispersed therein by absorption.
  • the material forming the support is not particularly limited, and examples thereof include cellulose, nitrocellulose, cellulose acetate, polyvinylidene fluoride (PVDF), glass fiber, nylon, and polyketone. Of these, those using nitrocellulose to form a thin film or membrane are more preferable.
  • An antibody-immobilized membrane is called an antibody-immobilized membrane.
  • the labeled body region is made of a porous base material containing a labeled antibody, and the material of the base material can be glass fiber (glass fiber), non-woven fabric, or the like which are generally used.
  • the base material is preferably in the form of a pad having a thickness of about 0.3 mm to 0.6 mm in order to impregnate a large amount of labeled antibody.
  • a porous substrate impregnated with a labeled antibody and dried is also called a drying pad.
  • Enzymes such as alkaline phosphatase and horseradish peroxidase, metal colloids such as colloidal gold, silica particles, cellulose particles, colored polystyrene particles, colored latex particles, etc. are often used for labeling of labeled antibodies.
  • metal colloids such as colloidal gold, silica particles, cellulose particles, colored polystyrene particles, colored latex particles, etc.
  • coloring occurs due to the aggregation of these labeling reagents, and this coloring is measured.
  • Particles on which an antibody is immobilized are called antibody-immobilized particles.
  • the detection region refers to a part of the support on which the antibody that captures the substance to be detected (antigen) is immobilized.
  • the detection region is provided with at least one region in which an antibody for capturing an antigen is immobilized.
  • the detection region may be included in the support, and the antibody may be immobilized on the support.
  • the sample pad is a part for adding a sample and is a porous material.
  • the sample pad is the most upstream part of the immunochromatographic test piece.
  • filter paper, glass fiber, non-woven fabric and the like can be used as the material.
  • it is preferably in the form of a pad having a thickness of about 0.3 mm to 1 mm.
  • the sample also includes a sample prepared by using the sample, such as a sample obtained by suspending the sample in another solution.
  • the absorption band is a member that is supplied to the support and absorbs components that were not involved in the reaction in the detection region.
  • a filter paper having high water retention, a sponge, etc. made of a general natural polymer compound, a synthetic polymer compound, etc. can be used, but a material having high water absorption is used to promote the development of the sample. Is preferable.
  • the backing sheet is a member for attaching and fixing all the above-mentioned materials, that is, a support, a sample pad, a marker region, an absorption band, etc. with partial overlap.
  • the backing sheet is not always necessary as long as these materials are arranged and fixed at the optimum intervals, but it is generally preferable to use the backing sheet from the viewpoint of convenience in manufacturing or use.
  • the immunochromatographic test piece of the present invention may further have a control display region (member).
  • the control display area is the site indicating that the test was performed accurately.
  • the control display region exists downstream of the detection region, and when the sample sample passes through the detection region and reaches the control display region, a signal is emitted by coloring or the like.
  • a substance that binds to the antibody to which the labeled carrier is bound may be immobilized, or a reagent such as a pH indicator that changes color when the sample arrives may be immobilized. May be good.
  • the antibody to which the labeled carrier is bound is a mouse monoclonal antibody, an anti-mouse IgG antibody may be used.
  • the size of the immunochromatographic test piece is not limited, but is, for example, a vertical length of several cm to a dozen cm and a horizontal length of several mm to several cm.
  • the sample passes through a porous flow path formed by a series of connections such as a sample pad, a labeled body region, a support, a detection region, and an absorption band. Therefore, in this embodiment, all of these are sample movement regions.
  • the sample may pass through the interface without penetrating the inside of the material.
  • the sample moving region defined in the present specification does not matter whether it is inside the material or at the interface, this form is used. Specimens are also included within the scope of this specification.
  • the sugar chain antigen is extracted by treating a sample containing the sugar chain antigen with nitrite.
  • Nitrite can be generated by mixing a nitrite such as sodium nitrite with an acid, and the nitrite generated in this way may be used to treat a sample containing a sugar chain antigen.
  • the extracted antigen binds to the antibody immobilized on the immunochromatographic test piece by an antigen-antibody reaction. At this time, if acid remains in the reaction system, the reaction system becomes acidic and the antigen-antibody reaction is inhibited. Therefore, it is necessary to neutralize the acid in the reaction system.
  • nitrite and acid are mixed to generate nitrite
  • the sugar chain antigen in the sample is extracted with the nitrite
  • the nitrite is neutralized, and then immobilized on the immunochromatographic test piece.
  • the following methods can be mentioned as a method of extracting and measuring the sugar chain antigen.
  • extraction and neutralization of the sugar chain antigen with nitrite is performed on the immunochromatographic test piece.
  • the immunochromatographic test piece may be impregnated with an acidic reagent or nitrite.
  • the neutralization reagent may be impregnated on the immunochromatographic test piece.
  • the sample and the acidic solution are mixed in advance and added to the sample pad of the immunochromatographic test piece impregnated with the nitrite and the neutralizing reagent.
  • the mixed solution reaches the region containing nitrite, the nitrite reacts with the acid to generate nitrite, and the sugar chain antigen in the sample is extracted.
  • the extract of the sugar chain antigen is neutralized in the region impregnated with the neutralizing reagent on the immunochromatographic test piece, and the sugar chain antigen binds to the antibody immobilized on the immunochromatographic test piece and can be detected.
  • the acidic solution used in the method include acetic acid, hydrochloric acid, malonic acid, malic acid, maleic acid, citric acid, tartaric acid and the like.
  • the sample and the nitrite solution are mixed in advance and added to the sample pad of the immunochromatographic test piece impregnated with the acidic reagent and the neutralizing reagent.
  • the mixed solution reaches the region containing the acidic reagent, the nitrite and the acid are added. Reacts to generate nitrite, and the sugar chain antigen in the sample is extracted.
  • the extract of the sugar chain antigen is neutralized in the region impregnated with the neutralizing reagent on the immunochromatographic test piece, and the sugar chain antigen binds to the antibody immobilized on the immunochromatographic test piece and can be detected.
  • the sample pad is located upstream of the labeled region (upstream of the sample flow and on the side where the sample pad is present).
  • An acidic reagent or nitrate and a neutralizing reagent are impregnated inside or between the sample pad and the labeled region.
  • An immunochromatographic test piece impregnated with a nitrite and a neutralizing reagent in the sample pad or between the sample pad and the labeled region can be used in the method (A) above.
  • an immunochromatographic test piece in which an acidic reagent and a neutralizing reagent are impregnated in the sample pad or between the sample pad and the labeled region can be used in the method (B) above.
  • a solid acidic reagent is used as the acidic reagent to be impregnated in the immunochromatographic test piece.
  • the solid acidic reagent or nitrite may be impregnated in the sample pad, or the pad made of a porous material such as a non-woven fabric different from the sample pad may be impregnated to obtain the solid acidic reagent impregnated porosity.
  • the material or nitrite-impregnated porous material may be placed between the sample pad and the labeled region, i.e. upstream of the labeled region.
  • the region impregnated with the solid acidic reagent or nitrite may or may not be in contact with the sample pad or the labeled region.
  • the region impregnated with the reagent is also referred to as a pad impregnated with the reagent.
  • the neutralizing reagent is arranged downstream of the region impregnated with the solid acidic reagent or nitrite.
  • the neutralizing reagent may be impregnated in the sample pad, the support, or the pad made of a porous material such as a non-woven fabric different from the support to obtain the neutralization.
  • the reagent-impregnated porous material may be placed between the region impregnated with the solid acidic reagent or nitrite and the labeled region. That is, it has a region impregnated with a neutralizing reagent upstream of the labeled region, and further has a region impregnated with a solid acidic reagent or nitrite upstream of the region impregnated with the neutralizing reagent.
  • the region impregnated with the neutralizing reagent and the region impregnated with the solid acidic reagent or nitrite or the labeled region may or may not be in contact with each other.
  • the region impregnated with the solid acidic reagent is called the solid acidic reagent region
  • the region impregnated with nitrite is called the nitrite region
  • the region impregnated with the neutralizing reagent is called the neutralizing reagent region or the basic reagent region. Called.
  • An immunochromatographic test piece having a solid acidic reagent region or nitrite region and a neutralizing reagent region is a sample pad, a solid acidic reagent region or nitrite region, a neutralizing reagent region, a labeled region, and detection from the upstream on the support. It has a region and an absorption zone, and the solid acidic reagent region or the nitrite region may be on the sample pad. Further, the sample pad, the solid acidic reagent region or the nitrite region, the neutralizing reagent region, the labeled substance region, the detection region and the absorption band may or may not be in contact with each other in adjacent regions.
  • the solid acidic reagent region or nitrite region, the neutralizing reagent region, and the labeled region do not necessarily have to be impregnated with separate porous materials, and even if a plurality or all regions are impregnated with the same porous material. Good.
  • the solid acidic reagent used in the present invention is solid at room temperature and does not volatilize at high temperature.
  • Preferred solid acidic reagents used in the present invention include malonic acid, malic acid, maleic acid, citric acid, and tartaric acid.
  • a smaller amount can be extracted by using an acid having a high valence such as citric acid. Also, acids having a smaller acid dissociation constant with the same valence, such as maleic acid and tartaric acid, are more efficient.
  • a reagent that is not colored on the immunochromatographic test piece specifically, a reagent that is white in a dry state or difficult to be colored by drying heat or oxidation is preferable.
  • nitrite used in the present invention examples include sodium nitrite, potassium nitrite and the like.
  • the amount of the solid acidic reagent or nitrite used in the present invention is not particularly limited, but is usually about 0.01 ⁇ g to 1 mg per test piece of the immunochromatographic test piece, which is preferable. Is about 0.1 ⁇ g to 0.1 mg. However, it is preferable to select the optimum amount that can obtain the effect depending on the type of solid acidic reagent or nitrite used, the composition of the sample suspension, the amount of addition, and the like.
  • the neutralizing reagent used in the present invention is solid at room temperature and does not volatilize at high temperature.
  • Preferred neutralizing reagents used in the present invention include tris base (tris hydroxylmethylaminomethane), sodium hydroxide, dipotassium hydrogen phosphate, trisodium citrate, and Good's buffer having a buffering capacity in the alkaline region. it can.
  • the amount of the neutralizing reagent used in the present invention is not particularly limited, but is usually about 0.01 ⁇ g to 1 mg per test piece of the immunochromatographic test piece, preferably 0.1 ⁇ g to 0.1 ⁇ g. It is about 0.1 mg. However, it is preferable to select the optimum amount at which the effect can be obtained depending on the type of neutralizing reagent used, the composition of the sample suspension, the amount of addition, and the like.
  • the neutralizing reagent may be dissolved once, the solution may be applied to the sample pad or the porous material, and then dried.
  • FIGS. 1 and 2 are views showing a preferred form of a typical immunochromatographic test piece.
  • the immunochromatographic test pieces shown in FIGS. 1 and 2 are immunochromatographic test pieces impregnated with a solid acidic reagent and a neutralizing reagent, but nitrate may be impregnated instead of the solid acidic reagent. In this case, An immunochromatographic test piece impregnated with nitrate and a neutralizing reagent.
  • a person skilled in the art can appropriately design and manufacture an immunochromatographic test piece impregnated with a nitrate and a neutralizing reagent.
  • the immunochromatographic test piece is not limited to the one shown in FIGS. 1 and 2.
  • 1 is a support
  • 2 is a marker region
  • 3 is a detection region
  • 4 is a sample pad
  • 7 is an absorption band
  • 8 is a backing sheet.
  • the top laminate may be attached on the entire test piece.
  • FIGS. 1B and 2B are cut sectional views.
  • a support 1 an absorption band 7, a labeled region 2, a sample pad 4, and the like in which one detection region 3 is formed are laminated on a backing sheet 8 made of resin or the like.
  • a backing sheet 8 made of resin or the like.
  • the other end and one end of the sample pad 4 are overlapped with each other, the upstream part of the sample pad 4 is impregnated with the solid acidic reagent, and after a short interval, the neutralizing reagent is applied to the downstream part of the sample pad.
  • the sample pad 4 also serves as a solid acidic reagent region 5 and a neutralizing reagent region 6. That is, a solid acidic reagent region and a neutralizing reagent region exist on the sample pad.
  • the solid acidic reagent region and the neutralizing reagent region are provided in the form of one porous material (pad), it may be referred to as a single pad test piece. In the example of FIG.
  • a solid acidic reagent region 5 and / or a neutralizing reagent region 6 exists upstream of the labeled body region 2, and these are overlapped to form a continuous lateral flow flow path. ing.
  • the solid acidic reagent region 5 also serves as a sample pad. That is, a solid acidic reagent region exists on the sample pad.
  • the test piece since the solid acidic reagent region and the neutralizing reagent region are provided in the form of two separate porous materials (pads), the test piece may be referred to as a two-pad test piece. An additional sample pad may be present upstream of the solid acidic reagent region. Further, in the test piece shown in FIG.
  • the solid acidic reagent region 5 and the neutralizing reagent region 6 are impregnated with different porous materials, but the same porous material (like the sample pad of the test piece of FIG. 1)
  • a solid acidic reagent region 5 may be provided in the upstream portion on the pad), and a neutralizing reagent region 6 may be provided in the downstream portion.
  • the above immunochromatographic test piece is stored in a containment vessel and used as an immunochromatographic device. That is, a device in which an immunochromatographic test piece is incorporated in a containment vessel is called an immunochromatographic device.
  • the containment vessel is composed of a lower container portion and an upper lid portion.
  • the immunochromatographic test piece is housed in the lower container portion, and when the immunochromatographic test is performed, the upper lid portion is placed on the lower container portion.
  • the lower container portion and the upper lid portion may be simply referred to as the lower portion and the upper portion of the containment vessel, respectively.
  • a sample drop addition port capable of supplying the sample sample solution to the sample pad is located above the sample pad, and when the sample is added to the sample drop addition port of the container. The sample soaks into the sample pad.
  • the drip addition port may be referred to as an addition port.
  • the determination unit is located on the detection area, and the detection area can be observed through the hole of the determination unit of the container.
  • the immunochromatographic test piece contained in the lower container part is sandwiched between the upper lid part of the containment vessel and the protrusions provided on the lower container part and does not move. Is supported. Therefore, the protrusions provided on the upper lid portion and the lower container portion of the containment vessel are referred to as an upper support and a lower support, respectively.
  • the upper support of the upper lid portion is provided so as to form the edge of the opening on the back side of the side to which the sample of the drip addition port is added, and the upper support of the upper lid portion is inclined. It is formed by protrusions having.
  • the upper support of the upper lid portion supports the upper side of the sample pad of the immunochromatographic test piece. When the upper support of the upper lid portion presses the upper side of the sample pad of the immunochromatographic test piece from above, the height of the protrusion becomes smaller toward the downstream part of the immunochromatographic test piece, that is, the immunochromatographic test piece. It has a slope that goes up in the downstream direction of.
  • the upper side of the sample pad of the immunochromatographic test piece is pressed from above to fix it so that it does not move, and further, it adheres to the sample pad and the sample solution is other than the sample pad. Do not leak to. Further, when the upper support of the upper lid portion presses the sample pad, the pressing becomes weaker from the upstream to the downstream.
  • the support may be referred to as a support having inclined protrusions.
  • the upper support of the lid portion on the containment vessel of the conventional immunochromatographic device does not have an inclination and has a flat shape.
  • the lower support of the lower container portion is formed of an inclined protrusion provided in the portion of the lower container portion corresponding to the sample drop addition port.
  • the portion of the lower container portion corresponding to the sample drop addition port means a portion that overlaps the opening of the sample drop addition port when the upper lid portion is placed over the lower container portion.
  • the lower support of the lower container portion supports the lower side of the sample pad of the immunochromatographic test piece when the lower container portion is covered with the upper lid portion.
  • the lower support of the lower container portion presses the lower side of the sample pad of the immunochromatographic test piece from below to fix it so that it does not move.
  • the lower support is provided as an inclined protrusion at a portion corresponding to the sample dropping port.
  • the lower support When the sample pad of the immunochromatographic test piece is pressed, the lower support is inclined so that the height of the protrusion becomes smaller toward the downstream part of the immunochromatographic test piece, that is, the lower support is inclined downward in the downstream direction of the immunochromatographic test piece.
  • the support may be referred to as a support having inclined protrusions.
  • the lower support of the container under the containment vessel of the conventional immunochromatographic device does not have an inclination and has a flat shape.
  • the lid portion having a support consisting of protrusions that press and support the upper side of the immunochromatographic test piece having an inclination that goes up in the downstream direction of the immunochromatographic test piece is called a lid portion in which the upper support has an inclination, and is downstream of the immunochromatographic test piece.
  • the container portion having a support consisting of protrusions that press and support the lower side of the immunochromatographic test piece having an inclination in the direction is called a container portion in which the lower support has an inclination, and has a support consisting of the inclined protrusions.
  • a lid portion that does not have a lid portion can be referred to as a conventional lid portion
  • a container portion that does not have a support composed of inclined protrusions can be referred to as a conventional container portion.
  • the combination of the upper lid portion and the lower container portion of the containment vessel of the immunochromatographic device of the present invention includes the following combinations A to C.
  • C Conventional lid portion and lower support
  • the support composed of the inclined protrusions is present in both the upper lid portion and the lower container portion of the storage container of the immunochromatographic device as described in B above. Alternatively, it may be present in only one of the above A and C. Preferably, it is present in both as in B above.
  • the upper lid portion and / or the lower container portion has an inclined portion formed of protrusions whose height decreases toward the downstream side of the immunochromatographic test piece on the support portion in contact with the sample pad of the immunochromatographic test piece. Therefore, when the sample pad of the immunochromatographic test piece is sandwiched between the upper support and the lower support and pressed, the upper support and the lower support are in close contact with the immunochromatographic test piece, and the pressing of the downstream portion is further applied to the upstream portion. It will be lower than the pressure. Therefore, the dropped liquid sample does not leak from the immunochromatographic test piece, and the liquid flow path on the downstream side of the sample pad of the immunochromatographic test piece is not strongly pressed by the support, so that the liquid sample flows. It will be easier.
  • the upstream portion of the sample pad exists at a position higher than the downstream portion, and the liquid sample easily flows due to gravity.
  • the development start time of the sample can be adjusted to an appropriate speed, so that the most sensitive performance can be exhibited within the set determination time.
  • the immunochromatographic device of the present invention has a support composed of the above-mentioned inclined protrusions in the storage container of the immunochromatographic test piece, the sugar chain antigen can be subjected to the nitrite extraction treatment of the sugar chain antigen on the immunochromatographic test piece.
  • the development of the sample can be adjusted to an appropriate rate.
  • the immunochromatographic device of the present invention may also have the following structural features relating to a mechanism for adjusting the unfolding rate of a sample.
  • the immunochromatographic device of the present invention may be provided with a wide drop port.
  • a conventional immunochromatographic device containing an immunochromatographic test piece having a vertical length of 5 to 9 cm, preferably 7 cm, and a horizontal length of 0.3 to 0.7 cm, preferably 0.5 cm (Quick Navi TM -Strep A, The dripping port of Denka Seiken Co., Ltd.) is provided as a substantially rectangular dripping port having a size of about 3.5 mm ⁇ about 5.5 mm (19.25 mm 2 ), but the immunochromatography of the present invention that stores an immunochromatographic test piece of the same size is provided.
  • the drip port of the device is provided as a substantially rectangular drip port having a size of about 3.5 mm ⁇ about 11 mm (38.5 mm 2). Since the size of the immunochromatographic device and the immunochromatographic test piece stored in the immunochromatographic device are almost the same size, the size of the immunochromatographic device having a length of 3 cm and a length of 9 cm is approximately 3 to 5 mm ⁇ 8 to 15 mm (24 to 75 mm 2). ) Is an immunochromatographic device having a wide drip opening, and can exert the effect of the immunochromatographic device of the present invention.
  • the long side of the droplet opening is the side parallel to the long side of the chromatography test piece, that is, the side along the flow direction of the sample sample solution.
  • the length of the long side of the drip opening is called the drip opening length, and the length of the short side is sometimes called the drip opening width.
  • the above example is the case of a substantially rectangular drop port, but the shape of the drop port may be triangular or circular.
  • the size of the droplet addition port of the immunochromatographic device of the present invention is expressed in area, it is 24 to 75 mm 2 , preferably 35 to 75 mm 2 .
  • the immunochromatographic device of the present invention stores an immunochromatographic test piece having a vertical length of 5 to 9 cm and a horizontal length of 0.3 to 0.7 cm, and the size of the droplet addition port is approximately 3 to 5 mm (3 to 5 mm). It has a drip opening (width of drip opening) x 8 to 15 mm (drip opening length) (24 to 75 mm 2 ).
  • the drop opening length is preferably 10 mm or more, more preferably 10 mm.
  • Devices with a drop opening length of less than 8 mm, for example 5 mm, are conventional devices with a small drop port width.
  • the sample processing ability is weak because the area where the sample solution is in contact with the region impregnated with the sample processing reagent is small, and the immunochromatographic test is performed. Since the sample treatment was performed while gradually developing the pieces, there was a difference in the concentration of the sample processing reagent between the sample solution developed first and the sample solution developed later. Therefore, the sample processing could not be performed reliably.
  • sample sample solution is impregnated at once in a region impregnated with the sample processing reagent on immunochromatography, that is, a solid acidic reagent. It can be supplied to the region or the region impregnated with nitrite. As a result, the extraction of the sugar chain antigen on the immunochromatographic test piece can be promoted.
  • the sample sample solution that can be supplied at one time is 10 ⁇ L to 200 ⁇ L.
  • the concentration difference of the sample processing reagent does not occur due to the time difference, the sample processing on the immunochromatography can be promoted and the sample processing can be performed reliably and efficiently.
  • the immunochromatographic device of the present invention may be configured so that there is no gap between the dropping port and the sample pad located below the dropping port so that the sample does not escape from the dropping port.
  • the immunochromatographic device of the present invention is provided with a wide drop port, and a large amount of sample sample solution is supplied at one time.
  • the edge portion which is the outer shell of the dropping port, has a certain height (1 to 5 mm), and the supplied sample material solution is temporarily stored in the dropping port.
  • the backing sheet supporting the sample pad is supported by a backing sheet having an outer shell size equal to or larger than the outer shell size of the droplet addition port so that the sample does not escape from the droplet addition port. Therefore, the backing sheet exerts a force that presses the sample pad against the drip opening, and the structure can be configured so that there is no gap between the drip opening and the sample pad, so that the escape leakage of the sample solution can be prevented.
  • the pedestal of the device container is designed to be high in the thin part of the sample bat, and the pedestal is designed to be low in the thick part. Since it can be configured so that there is no such thing, it is possible to prevent the sample solution from escaping and leaking.
  • a highly hydrophobic material may be selected as the material (nonwoven fabric) used for producing the pad for impregnating the solid acidic reagent of the immunochromatographic test piece or the sample processing reagent such as nitrite or neutralizing reagent. This makes it possible to slow down the flow speed of the solution, that is, the time it takes for the sample sample solution to develop on the immunochromatographic test strip.
  • Examples of the highly hydrophobic material in this case include polyethylene, polyester, polystyrene, polypropylene, rayon, nylon and the like.
  • the material of the porous material used for the region to be impregnated with the neutralizing reagent is a woven fabric having a grain size of 10 to 400 g / m 2 and a thickness of 0.1 to 2.0 mm, and has a water absorption per 1 cm / m 2. It has a water absorption speed of 10 to 100 ⁇ l / cm 2 and a water absorption speed of 1.0 to 5.0 ⁇ l / sec, and a fragment of 1 cm / m 2 is brought into contact with the membrane in a wet state and left to stand for 5 minutes, and the water retention capacity is 10 to 100 ⁇ l / cm.
  • a piece of cm 2 and preferably 1 cm / m 2 is brought into contact with the membrane in a wet state, and the spread area of the liquid after standing for 5 minutes is 20 mm 2 or less, that is, it has high water absorption and water retention (liquid retention). ) Is high, and a porous material having three characteristics of low or long-lasting liquid release can be mentioned.
  • Specific examples thereof include a filter paper made of cellulose cotton fiber and a glass filter paper made of glass fiber. Examples of such filter paper include No. 26-3 of Toyo Filter Paper Co., Ltd.
  • the volume of the filter paper used is large, and it is possible to sufficiently hold an acidic solution that arrives from the upstream later than the sample.
  • an amount of neutralizing reagent that can sufficiently neutralize the sample from which the sugar chain antigen has been extracted with nitrite generated by the reaction between nitrite and the acidic reagent is impregnated. Can be done.
  • the pad can absorb and retain a large amount of liquid and its release property is maintained, it has sufficient neutralizing ability even when the liquid containing nitrite remaining upstream of the immunochromatographic test piece is developed after the determination time. As a result of being able to suppress the acidic solution from reaching the detection region where the antibody is immobilized, it is possible to suppress the non-specific reaction and detect the sugar chain antigen without causing the non-specific reaction. it can.
  • the "basis weight” of the porous material used for the region impregnated with the neutralizing reagent is 10 to 400 g / m 2 .
  • “Metsuke” means the weight per unit area (1 m 2) of cloth or the like.
  • the basis weight can be appropriately changed depending on the amount and composition of the neutralizing reagent impregnated in the pad. If the grain size is 30 g / m 2 or less, the void ratio is high, and it becomes easy to tear when impregnated with the neutralizing reagent, which makes it difficult to handle during immunochromatography.
  • the grain size is preferably 50 g / m 2 or more, and the grain size is When it is 300 g / m 2 or more, the void ratio is low, and although it depends on the composition of the neutralizing reagent, the sample does not penetrate smoothly into the material and cannot be mixed with the neutralizing reagent, so it is 300 g / m 2 or less. Is preferable.
  • the most preferable basis weight is 250 to 270 g / m 2 .
  • the "thickness" of the porous material used in the region to be impregnated with the neutralizing reagent is preferably 0.1 to 2.0 mm, but the thickness can be appropriately changed depending on the amount and composition of the neutralizing reagent to be impregnated in the pad. .. If the thickness is 0.4 mm or less, it will be easily torn off when impregnated with the neutralizing reagent, and it will be difficult to handle during immunochromatography. Therefore, the preferable thickness is 0.4 to 0.8 mm, and the amount that can be impregnated with the neutralizing reagent is Considering the ease of adjustment and the ease of handling during immunochromatography, about 0.6 mm is more preferable.
  • the "water absorption” is preferably one in which the amount of water absorption per 1 cm / m 2 is 10 to 100 ⁇ l / cm 2 and the water absorption speed is 1.0 to 5.0 ⁇ l / sec.
  • the lower end of the test piece is the one in which the piece is put and immersed in the solution, the time until the solution reaches the upper end of the test piece is measured, and immediately after the solution reaches the upper end, the test piece is taken out and remains in the cell. Measure the amount of liquid to be used.
  • the amount of water absorption is the amount of liquid obtained by subtracting the amount of liquid remaining in the cell from 200 ⁇ l and dividing by the area of 1 cm 2 of the material, and the water absorption speed is calculated by the amount of water absorption / the time taken to reach the upper end.
  • a material having a large amount of water absorption and a slow water absorption speed is preferable.
  • the water absorption is 30 ⁇ l / cm 2 or less, it is possible that the neutralizing reagent required for the immunochromatographic test piece cannot be completely impregnated.
  • the water absorption is preferably 30 ⁇ l / cm 2 or more.
  • the water absorption speed of the material of the porous material used for the region impregnated with the neutralizing reagent affects the time for extracting the sugar chain antigen in the sample and the time for neutralizing the test solution after extraction.
  • the time for extracting the sugar chain antigen can be adjusted to some extent by the material or composition of the solid acidic reagent, but since it is not perfect, the water absorption speed of the material used in the region impregnated with the neutralizing reagent is high. It is an important factor for the extraction and neutralization of sufficient sugar chain antigens. Specifically, the water absorption speed is preferably 1.0 to 5.0 ⁇ l / sec, and the more preferable water absorption speed is 2.0 ⁇ l / sec or less.
  • water retention For "water retention", a 1 cm / m 2 fragment of the material of the porous material used for the region to be impregnated with the neutralizing reagent is placed on the membrane, and 70 ⁇ l of the solution (1% Tween 20 + red No. 102) is added thereto, and 5 It is obtained by measuring the weight before and after standing for a minute.
  • the amount of water-retaining liquid varies depending on the composition of the solution to be added (amount of surfactant and protein), but the amount of water-retaining when tested with a 1% Tween 20 solution is preferably 10 to 100 ⁇ l / cm 2.
  • the preferred amount of water retention is 15 ⁇ l / cm 2 or more.
  • “Release” means placing a 1 cm / m 2 fragment of the porous material used in the area to be impregnated with the neutralizing reagent on a membrane, adding 70 ⁇ l of solution (1% Tween 20 + Red No. 102) to it, 5 It is measured by determining the area of the liquid spread on the membrane after allowing it to stand for a minute. The area varies depending on the composition of the solution to be added (the amount of surfactant and protein), but the area when tested with a 1% Tween 20 solution is 30 mm 2 or less, and the more preferable release property is 20 mm 2 or less.
  • the material of the porous material used for the region impregnated with the neutralizing reagent has a grain size of 50 to 300 g / m 2 or 250 to 270 g / m 2 and a thickness of 0.4 to 0.8 mm, per 1 cm / m 2.
  • the water absorption amount is 30 to 100 ⁇ l / cm 2
  • the water absorption speed is 1.0 to 2.0 ⁇ l / sec
  • the material having this property was "impregnated with the neutralizing reagent by sufficiently neutralizing the acidic solution containing the sugar chain antigen due to the high water absorption and water retention of the region impregnated with the neutralizing reagent. High ability to prevent residual acidic solutions from reaching the detection region due to low or sustained release of the region, or to allow a fully neutralized test solution to continuously develop into the detection region. " Therefore, it has the effect of suppressing non-specific reactions as compared with other materials.
  • the method of using the device of the present invention will be described.
  • the following method of use is a method of mixing a sample with a nitrite solution and measuring using an immunochromatographic test method impregnated with a solid acidic reagent and a neutralizing reagent.
  • the method of measurement using the immunochromatographic test method impregnated with nitrite and a neutralizing reagent can also be performed with reference to the following description of the usage method.
  • the measurement is started by contact-mixing the sample or a sample prepared using the sample with the nitrite solution, suspending the sample in the nitrite solution, and adding the sample to the sample dropping port of the device. At this time, 5 to 100 ⁇ L of the sample and 0.01 to 2 mL of 0.1 M to 8 M nitrite may be mixed, and 5 to 200 ⁇ L may be provided to the droplet addition port.
  • nitrite include sodium nitrite and potassium nitrite.
  • the sample containing the sugar chain antigen, which is the substance to be detected, provided to the droplet addition port moves to the sample pad and is expanded into the solid acidic reagent region 5 and the neutralizing reagent region 6 on the sample pad 4 by capillary action. Further, the reagent region 2, the support 1, and the absorption zone 7 are sequentially developed in the horizontal direction.
  • the nitrite mixed in the sample reacts with the solid acidic reagent on the solid acidic reagent region 5 to generate free nitrite, and the action of the nitrite causes the sugar chain antigen from the sample. Is extracted.
  • the extracted sugar chain antigen expands and moves to the neutralizing reagent region 6 together with the acidic developing solution, and the pH of the acidic developing solution containing the sugar chain antigen is neutralized in the neutralizing reagent region 6 and adjusted to the neutral region. ..
  • the sugar chain antigen expands and migrates further downstream under neutral conditions.
  • the labeled body region 2 the labeled antibody is released into the liquid and developed into the support 1 as the sample sample is developed.
  • the sugar chain antigen is specifically captured by the capture antibody in the detection region 3 of the support 1, and the sugar chain antigen also forms a complex by a specific reaction with the labeled antibody. To do.
  • a sandwich of the antibody via the sugar chain antigen is established in the detection region 3, and the labeled antibody-sugar chain antigen complex can be measured in the detection region 3.
  • the detection region can be observed through the determination unit of the immunochromatographic device.
  • the sugar chain antigen in the sample is extracted on the immunochromatographic test piece. Therefore, the sugar chain antigen in the sample is extracted in advance before the measurement using the immunochromatographic test piece. It is not necessary to do this, and the sugar chain antigen in the sample can be measured in one step.
  • An immunochromatographic test piece incorporating a pad containing a solid acidic reagent or nitrite dried according to the present invention can be efficiently extracted on the reagent.
  • the sample dropping port may have an area substantially equal to that of the pad (solid acidic reagent region) containing the solid acidic reagent. By doing so, more samples can be instantly contacted with the solid acidic reagent. Further, by adopting a highly hydrophobic non-woven fabric for the member to be coated / impregnated, it is possible to prevent the sample from being expanded to the pad (neutralizing reagent region) impregnated with the neutralizing reagent immediately downstream after the sample is added. By doing so, the sample is held in the sample addition part for 1 to 2 minutes, and sufficient antigen extraction can be performed.
  • the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region overlap and are in contact with each other, a liquid is formed between the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region. It is provided so as to sandwich a sheet that does not allow passage. By providing the sheet, the following three effects can be obtained.
  • the material of the sheet provided between the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region is not limited as long as it is a material that does not allow liquid to pass through, and is, for example, a resin sheet such as a PET (polyethylene terephthalate) sheet or a polyethylene sheet. Can be used.
  • the resin sheet is also called a resin film.
  • the sheet may be provided so that the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region partially contact and overlap.
  • the length of the overlapping portion of the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region is preferably as short as possible, for example, 5 mm or less, preferably 3 mm or less, and more preferably 2 mm or less.
  • the sheet may be provided so that the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region do not come into contact with each other, and the pad impregnated with the acidic reagent or the nitrite may cover the PET sheet.
  • the neutralization region may be completely covered with a sheet, and a solid acidic reagent region or a nitrite region may be provided on the sheet.
  • the liquid in the solid acidic reagent region or the nitrite region does not move directly to the neutralization region, but reaches the neutralization reagent region after flowing on the sheet.
  • the sheet may be provided only between the solid acidic reagent region or the nitrite region and the neutralizing reagent region, for example.
  • the top laminate sheet is sampled in the solid acidic reagent region or nitrite region other than the solid acidic reagent region or nitrite region. If it also serves as a pad, attach it so as to cover the neutralizing reagent area, labeled body area, support, detection area, and absorption zone other than the sample pad, and place the solid acidic reagent area or nitrite area on the upper part of the neutralizing reagent part. It may be attached to the upper part of the attached top laminate sheet.
  • the biological sample as a sample is not particularly limited, and examples thereof include body fluids such as serum, plasma, blood, urine, stool, saliva, tissue fluid, cerebrospinal fluid, and wiping fluid, or dilutions thereof.
  • the substance to be measured is an immunoassay, that is, a sugar chain antigen that can be measured by an assay using an antigen-antibody reaction.
  • the antigen include polysaccharides, which are sugar chain antigens present on the cell wall of bacteria extracted by nitrite extraction treatment. Protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, viruses and the like containing these substances can also be measured.
  • the biological sample of the subject contains sugar chain antigens derived from protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, virus and the like. If the sugar chain antigen is contained, it can be determined that the subject is suffering from an infectious disease caused by a protozoan, a fungus, a bacterium, a mycoplasma, rickettsia, chlamydia, a virus or the like. For example, it is possible to detect the presence or absence of infection with group A ⁇ -hemolytic streptococcus (Streptococcus pyogenes), Escherichia coli, Legionella, Campylobacter and the like.
  • group A ⁇ -hemolytic streptococcus Streptococcus pyogenes
  • Example 1 Examination of the size of the drop mouth 1. Immobilization of anti-Streptococcus pyogenes (Group A ⁇ -hemolytic streptococcus) antibody on a nitrocellulose membrane (support) Anti-Streptococcus pyogenes antibody diluted with purified water to 1.0 mg / mL and anti-rabbit IgG antibody In preparation, anti-Streptococcus pyogenes antibody was linearly applied to the sample pad side of the nitrocellulose membrane lined with PET (polyethylene terephthalate) film, and anti-rabbit IgG antibody was linearly applied to the absorption zone side. Then, the nitrocellulose membrane was dried at 45 ° C. for 30 minutes to obtain an anti-Streptococcus pyogenes antibody-immobilized membrane. This membrane is referred to as an "antibody-immobilized membrane" in this example.
  • step 3 Application and drying of anti-Streptococcus pyogenes antibody-bound colored polystyrene particles
  • a predetermined amount of the antibody-immobilized particle suspension prepared in step 2 was applied to a non-woven fabric and dried at 45 ° C. for 30 minutes.
  • the obtained non-woven fabric is referred to as a "drying pad" in this embodiment.
  • Solid Acid Reagent Pad As a solid acid reagent, 1.0 M tartaric acid, 0.5% Triton X100 was applied to a non-woven fabric (Unitika; Elves (registered trademark)) at 13 ⁇ L / cm. Immediately after coating, the non-woven fabric impregnated with a solid acidic reagent was dried at 45 ° C. for 1 hour.
  • a solid acid reagent 1.0 M tartaric acid, 0.5% Triton X100 was applied to a non-woven fabric (Unitika; Elves (registered trademark)) at 13 ⁇ L / cm. Immediately after coating, the non-woven fabric impregnated with a solid acidic reagent was dried at 45 ° C. for 1 hour.
  • the immunochromatographic test piece is a solid acidic reagent impregnated non-woven fabric, a neutralizing reagent (basic reagent) impregnated non-woven fabric, a drying pad (labeled body region), and an antibody-immobilized membrane (detection region) from the upstream along the flow of the sample. ), It has an absorption band.
  • the immunochromatographic test piece of the present invention is incorporated into a storage container ((1) small droplet addition port) having a drop addition port length (long side length) of 5 mm to prepare 1 immunochromatographic device, and the drop addition port length (long side) is prepared.
  • the immunochromatographic device of (2) was prepared by incorporating it into a storage container ((2) large drop mouth) having a side length of 10 mm.
  • the containment vessel of the immunochromatographic device (1) and (2) is a conventionally used containment vessel, and has an inclined shape that the containment vessel of the lower immunochromatographic device has in both the lower container portion and the upper lid portion. Does not have a support consisting of protrusions with.
  • the container portion below the conventionally used containment vessel is referred to as a conventional container portion, and the lid portion above the conventionally used containment vessel is referred to as a conventional lid portion.
  • a container portion under the storage container which has a support composed of protrusions that press and support the lower side of the immunochromatographic test piece having an inclination downward in the downstream direction of the immunochromatographic test piece (lower support).
  • Has an inclined container portion) and a lid portion on the storage container which has a support consisting of protrusions that press and support the upper side of the immunochromatographic test piece having an inclination that goes up in the downstream direction of the immunochromatographic test piece.
  • the drop addition port length of the upper lid portion of the immunochromatographic devices (3) to (5) was 10 mm.
  • Specimen Streptococcus pyogenes was cultured, and the culture solution was prepared with physiological saline to a bacterial count of 1.0 ⁇ 10 7 CFU / mL. Moreover, physiological saline was used as a negative sample.
  • the immunochromatographic devices of (2), (3), (4) and (5) having a large droplet addition port are positively judged because the deployment start time is earlier than that of the immunochromatographic device of (1) having a small droplet addition port. Was able to be determined more quickly.
  • the immunochromatographic devices (3), (4) and (5) having a support made of inclined protrusions on the upper lid portion and / or the lower container portion have a support made of inclined protrusions.
  • the signal after 10 minutes was stronger than that of the immunochromatographic devices (1) and (2) that did not have.
  • the immunochromatographic device (4) having a support having an inclined protrusion on the upper lid portion and the lower container portion has a support having an inclined protrusion on only one of the upper lid portion and the lower container portion.
  • the signal after 10 minutes was stronger than that of the immunochromatographic devices of (3) and (5) having a body.
  • the immunochromatographic device of the present invention can be used to detect group A ⁇ -hemolytic streptococcal infection with high sensitivity. All publications, patents and patent applications cited herein are incorporated herein by reference in their entirety.

Abstract

イムノクロマト試験片上で亜硝酸抽出により糖鎖抗原を抽出し測定するイムノクロマト法において、亜硝酸抽出処理を十分な時間をかけて行うことにより十分な感度での測定を可能にする方法及びイムノクロマトデバイスの提供。　亜硝酸塩若しくは酸性溶液と混合した検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域及び前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に、亜硝酸塩と混合した検体を用いるときには固形状酸性試薬を含浸させた領域を有し、酸性溶液と混合した検体を用いるときには亜硝酸塩を含浸させた領域を有する、検体中の糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片と該試験片を格納する容器よりなる、試験片のサンプルパッドの上部に検体滴加口を有するイムノクロマトデバイスであって、 (i)　添加した検体試料溶液を保持し検体試料溶液を前記固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させた領域に短時間で供給することにより亜硝酸塩と固形状酸性試薬による糖鎖抗原の抽出を促進するための広い検体滴加口を有し、 (ii)　滴加口から試料が逃げこぼれないよう、滴加口とサンプルパッドの間に隙間がない、 イムノクロマトデバイス。

Description

糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマトデバイス
　本発明は、イムノクロマト試験片上で糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をすることが可能な、糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマトデバイスに関する。
　イムノクロマト法を原理とする迅速診断薬の多くは、ウイルス又は細菌感染症を迅速・簡便に測定し、治療方針を決定する一つの手段として広く使用されている。
　一般的なイムノクロマト法を原理とする迅速診断薬は、検体を検体浮遊液に浮遊させた後、その浮遊液をイムノクロマト試験片に供給することで迅速・簡便に測定できる。
　Ａ群β溶血性レンサ球菌（Ａ群β溶連菌）、口腔内レンサ球菌等ストレプトコッカス属に属する微生物を検出するためには糖鎖抗原を抽出し、糖鎖抗原を測定する必要がある。
　例えば、イムノクロマト試験片に予め亜硝酸ナトリウムと中和試薬を含ませておき、検体を酢酸等の酸性溶液に浮遊してイムノクロマト試験片に供給する操作のみで亜硝酸抽出処理をイムノクロマト試験片上で行う方法が報告されている（特許文献１）。
　また、イムノクロマト試験片に予め酸性試薬と中和試薬を含ませておき、検体を亜硝酸塩に浮遊してイムノクロマト試験片に供給する方法もある。
　イムノクロマト法においては、イムノクロマト試験片におけるクロマト展開スピードを制御する必要があることがあり、デバイス形状で制御するもの、貼り合わせ位置で制御するもの、使う素材（不織布などのマテリアル）で制御するもの、試薬で制御するもの等のイムノクロマト法が報告されている（特許文献２及び３）。
国際公開WO2005/121794号公報 特開2005-331471号公報 特開2005-331463号公報
　Ａ群β溶血性レンサ球菌（Ａ群β溶連菌）、口腔内レンサ球菌等ストレプトコッカス属に属する微生物を検出するためには糖鎖抗原を抽出し、糖鎖抗原を測定する。
　糖鎖抗原を抽出するためには、亜硝酸が必要である。亜硝酸は単独では不安定なので、亜硝酸抽出には、亜硝酸塩溶液と酸溶液（酢酸、クエン酸、酒石酸など）を用時混合し、亜硝酸を発生させることで抗原抽出を行っている。
　Ａ群β溶血性レンサ球菌（Ａ群β溶連菌）等をイムノクロマト法で検出する場合、亜硝酸溶液または酸溶液のどちらか一方を、塗布、乾燥させ、イムノクロマト試験片に組込めばよい。このような試薬形態では、液状試薬と比較して、試薬の混合操作が不要で操作が簡便になる一方で、試薬混合後、通常のイムノクロマト法のように短時間で試料が展開すると、亜硝酸抽出処理が十分に行われないため、感度不足になるという課題があった。
　液状試薬を混合して亜硝酸抽出をする試薬形態では、通常試料を1～2分抽出する。したがって、液状形態と同等の感度を出すためには、イムノクロマト試験片上の試料が中和される上流で、1～2分間保持されることが必要であった。
　それに対し、抽出を十分に行うため、疎水性の素材で亜硝酸や酸を含むパッドを作製し使用する方法もあるが、試料の展開が遅くなりすぎると5分の反応時間内に試料が試験片を展開しきらないという課題があった。
　それらの課題を解決するためには、通常のイムノクロマト試験片と比較し厚みのある素材をパッドに採用するなどして解決する方法があるが、素材の厚みや柔らかさによって、検体を添加する滴加口に隙間が発生し、1～2分抽出されるべき試料が、滴加口から容器内部にこぼれ、試験片の側面をつたって展開し正常に反応が進まない（酸性の試料が中和されないままメンブレンに展開し、非特異反応が発生する）という課題があった。
　本発明は、イムノクロマト試験片上で亜硝酸抽出により糖鎖抗原を抽出し測定するイムノクロマト法において、亜硝酸抽出処理を十分な時間をかけて行うことにより十分な感度での測定を可能にする方法及びイムノクロマトデバイスの提供を目的とする。
　本発明者らは、イムノクロマト試験片上で糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をすることが可能な、糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト法において、亜硝酸抽出処理を十分な時間をかけて行わせる技術について鋭意検討を行った。
　そこで、イムノクロマトデバイスのイムノクロマト試験片を支持する突起からなる支持体部分に傾斜をもたせることにより、展開時間を調節することで上記目的を達成できることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち本発明は以下のとおりである。
[１]　亜硝酸塩若しくは酸性溶液と混合した検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域及び前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に、亜硝酸塩と混合した検体を用いるときには固形状酸性試薬を含浸させた領域を有し、酸性溶液と混合した検体を用いるときには亜硝酸塩を含浸させた領域を有する、検体中の糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片と該試験片を格納する容器よりなり、該容器は上の蓋部分と下の容器部分からなり、上の蓋部分はイムノクロマト試験片の上側を支持する突起からなる上部支持体を有し、下の容器部分はイムノクロマト試験片の下側を支持する突起からなる下部支持体を有し、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの上部に検体滴加口を有するイムノクロマトデバイスであって、
　イムノクロマト試験片を支持する上部支持体及び／又は下部支持体を形成する突起部分に傾斜を持たせたことを特徴とする、イムノクロマトデバイス。
[２]　イムノクロマト試験片を支持する上部支持体及び下部支持体を形成する突起部分に傾斜を持たせたことを特徴とする、[１]のイムノクロマトデバイス。
[３]　イムノクロマト試験片の下部支持体の突起部分の傾斜がイムノクロマト試験片の下流方向に下ることを特徴とする、[１]又は[２]のイムノクロマトデバイス。
[４]　イムノクロマト試験片の上部支持体の突起部分の傾斜がイムノクロマト試験片の下流方向に上ることを特徴とする、[１]～[３]のいずれかのイムノクロマトデバイス。
[５]　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア又はウイルスの糖鎖抗原である、[１]～[４]のいずれかのイムノクロマトデバイス。
[６]　[１]～[５]のいずれかのイムノクロマトデバイスを用いてイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法であって、
　イムノクロマトデバイスが固形状酸性試薬を含浸させた領域を有するときに検体を亜硝酸溶液と混合し、イムノクロマトデバイスが亜硝酸塩を含浸させた領域を有するときに検体を酸性溶液と混合し、前記イムノクロマトデバイスのサンプルパッドに添加することを含み、
　固形状酸性試薬を含浸させた領域又は亜硝酸塩を含浸させた領域において、亜硝酸塩と固形状酸性試薬の反応により発生した亜硝酸の作用により検体から糖鎖抗原が抽出され、　中和試薬を含浸させた領域において、前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が中和され、
　検出領域において、抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体が形成される、糖鎖抗原の抽出を促進して、イムノクロマト法により、検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
　本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2019-184047号の開示内容を包含する。
　本発明のイムノクロマトデバイスを用いた場合、試料添加後のイムノクロマト試験片上での検体試料溶液の展開時間を適切な時間に調節することができる。その結果、イムノクロマト試験片上に含ませた検体処理試薬により試験片上で行われる検体処理を十分に行うことができる。
固形状酸性試薬領域及び中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片（１枚パッド試験片）の構造を模式的に示す図である。 固形状酸性試薬領域及び中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片（２枚パッド試験片）の構造を模式的に示す図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の外観を示す斜視図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の断面図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の蓋部分とイムノクロマト試験片と格納容器の容器部分を示す斜視図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の蓋部分とイムノクロマト試験片と格納容器の容器部分を示す断面図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の蓋部分の斜視図である。 イムノクロマトデバイスの格納容器の蓋部分と容器部分の平面図である。
　以下、本発明を詳細に説明する。
　本発明は、糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をイムノクロマト試験片上で行えるように簡便化し、被検出物質である糖鎖抗原を迅速かつ正確に測定することを可能にするイムノクロマトデバイスに関する。イムノクロマトデバイスは、イムノクロマト試験片とそれを格納する容器からなり、イムノクロマト試験片をイムノクロマトデバイスに組込んで作製できる。該格納容器により、例えば紫外線や空気中の湿気による劣化を防ぐことができる。また、汚染性、感染性の有る検体試料を用いる場合、格納容器によりアッセイを行う試験者が汚染又は感染するのを防止することができる。例えば適当な大きさの樹脂製ケースを格納容器として用い、該ケース中にイムノクロマト試験片を収納すればよい。また、抗原又は抗体を固定化した試験片の表面を樹脂製フィルム等（トップラミネート）で覆ってもよい。
　イムノクロマト試験片は、被検出物質（抗原等）を捕捉する抗体（抗体１）が固定化された検出領域を有する支持体、移動可能な標識抗体（抗体２）を有する標識体領域、検体を添加するサンプルパッド、展開された検体液を吸収する吸収帯、これら部材を１つに貼り合わせるためのバッキングシート等を具備する。
　なお、検出領域の数及び標識体領域に含まれる標識抗体の種類は１つに限られるものではなく、複数の被検出物質に対応する抗体を用いることで、２つ以上の抗原を同一の試験片にて測定することができる。
　支持体は、被検出物質（抗原）を捕捉するための抗体を固定化する性能を持つ材料であり、かつ液体が水平方向に通行することを妨げない性能を持つ。好ましくは、毛細管作用を有する多孔性薄膜（メンブレン）であり、液体及びそれに分散した成分を吸収により輸送可能な材料である。支持体を成す材質は特に限定されるものではなく、例えばセルロース、ニトロセルロース、セルロースアセテート、ポリビニリデンジフルオライド（ＰＶＤＦ）、ガラス繊維、ナイロン、ポリケトンなどが挙げられる。このうちニトロセルロースを用いて薄膜又はメンブレンとしたものがより好ましい。抗体を固定化したメンブレンを抗体固定化メンブレンと呼ぶ。
　標識体領域は、標識抗体を含む多孔性基材から成り、基材の材質は一般的に用いられているガラス繊維（グラスファイバー）や不織布等を用いることができる。該基材は、多量の標識抗体を含浸させるために、厚さ0.3mm～0.6mm程度のパッド状であることが好ましい。標識抗体を含浸させ乾燥させた多孔性基材を乾燥パッドとも呼ぶ。
　標識抗体の標識には、アルカリフォスファターゼや西洋ワサビペルオキシダーゼのような酵素、金コロイドのような金属コロイド、シリカ粒子、セルロース粒子、着色ポリスチレン粒子及び着色ラテックス粒子等が用いられることが多い。金属コロイド粒子、着色ポリスチレン粒子や着色ラテックス粒子等の着色粒子を用いる場合には、これらの標識試薬が凝集することによって着色が生じるので、この着色を測定する。抗体を固定化した粒子を抗体固定化粒子と呼ぶ。
　検出領域は、被検出物質（抗原）を捕捉する抗体が固定化された支持体の一部の領域を指す。検出領域は、抗原を捕捉するための抗体を固定化した領域を少なくとも１つ設ける。検出領域は支持体に含まれていればよく、支持体上に抗体を固定化すればよい。
　サンプルパッドは、検体を添加するための部位であり、多孔性材料である。サンプルパッドはイムノクロマト試験片の最も上流にある部位である。該材料には一般的に用いられるろ紙、ガラス繊維、不織布等を用いることができる。多量の検体を免疫測定に用いるために、厚さ0.3mm～1mm程度のパッド状であることが好ましい。検体には、検体を他の溶液に浮遊して得られる試料等、検体を用いて調製された試料も含む。
　吸収帯は、支持体に供給され検出領域で反応に関与しなかった成分を吸収するための部材である。吸収帯の材料には、一般的な天然高分子化合物、合成高分子化合物等からなる保水性の高いろ紙、スポンジ等を用いることができるが、検体の展開促進のためには吸水性が高いものが好ましい。
　バッキングシートは、前述の全ての材料、すなわち支持体、サンプルパッド、標識体領域、吸収帯等が、部分的な重なりをもって貼付、固定されるための部材である。バッキングシートは、これらの材料が最適な間隔で配置、固定されるのであれば、必ずしも必要ではないが、製造上あるいは使用上の利便性から、一般的には用いた方が好ましい。
　本発明のイムノクロマト試験片には、さらに対照表示領域(部材）が存在していてもよい。対照表示領域は試験が正確に実施されたことを示す部位である。例えば、対照表示領域は、検出領域の下流に存在し、検体試料が検出領域を通過し、対照表示領域に到達したときに着色等によりシグナルを発する。対照表示領域には、標識担体を結合させた抗体に結合する物質を固相化しておいてもよいし、検体が到達したときに色が変化するpHインジケーター等の試薬を固相化しておいてもよい。標識担体を結合させた抗体がマウスモノクローナル抗体の場合、抗マウスIgG抗体を用いればよい。
　イムノクロマト試験片の大きさは限定されないが、例えば、縦の長さ数cm～十数cm、横の長さ数mm～数cm程度である。
　上記の形態の試験片において、検体は、サンプルパッド、標識体領域、支持体、検出領域、吸収帯等の一連の接続により形成された多孔性流路を通過する。よって本形態においては、これら全てが検体移動領域となる。各構成材料の材質や形態によって、検体が材料内部を浸透せず界面を通行する形態もありうるが、本明細書で定義する検体移動領域は材料の内部か界面かを問わないため、該形態の試験片も本明細書の範囲に含まれる。
　本発明のイムノクロマト試験片を用いて検体中の糖鎖抗原を測定する場合、最初に検体中の糖鎖抗原を抽出する必要がある。糖鎖抗原の抽出は、糖鎖抗原を含む検体を亜硝酸で処理することにより行う。亜硝酸は亜硝酸ナトリウム等の亜硝酸塩を酸と混合することにより発生させることができ、このようにして発生させた亜硝酸で糖鎖抗原を含む検体を処理すればよい。抽出した抗原はイムノクロマト試験片上に固相化した抗体に抗原抗体反応により結合するが、この際、反応系に酸が残っていると反応系は酸性になり、抗原抗体反応が阻害される。そこで、反応系の酸を中和する必要がある。
　本発明において、亜硝酸塩と酸を混合し亜硝酸を発生させて、該亜硝酸により検体中の糖鎖抗原を抽出して、亜硝酸を中和した上で、イムノクロマト試験片上に固相化した抗体に糖鎖抗原を結合させ、糖鎖抗原を測定する方法において、糖鎖抗原を抽出して測定する方法として以下の方法が挙げられる。いずれの方法においても、亜硝酸による糖鎖抗原の抽出と中和はイムノクロマト試験片上で行う。亜硝酸による糖鎖抗原の抽出をイムノクロマト試験片上で行うためには、イムノクロマト試験片上に酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させておけばよい。中和をイムノクロマト試験片上で行うためには、イムノクロマト試験片上に中和試薬を含浸させておけばよい。
（Ａ）予め検体と酸性溶液を混合し、亜硝酸塩と中和試薬を含浸させたイムノクロマト試験片のサンプルパッドに添加する。混合液が亜硝酸塩を含ませた領域に達すると亜硝酸塩と酸が反応し、亜硝酸が発生し、検体中の糖鎖抗原が抽出される。糖鎖抗原の抽出液はイムノクロマト試験片上の中和試薬を含浸させた領域で中和され、糖鎖抗原はイムノクロマト試験片上に固相化した抗体に結合し、検出できる。該方法において、用いる酸性溶液としては、酢酸、塩酸、マロン酸、リンゴ酸、マレイン酸、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
（Ｂ）予め検体と亜硝酸塩溶液を混合し、酸性試薬と中和試薬を含浸させたイムノクロマト試験片のサンプルパッドに添加する、混合液が酸性試薬を含ませた領域に達すると亜硝酸塩と酸が反応し、亜硝酸が発生し、検体中の糖鎖抗原が抽出される。糖鎖抗原の抽出液はイムノクロマト試験片上の中和試薬を含浸させた領域で中和され、糖鎖抗原はイムノクロマト試験片上に固相化した抗体に結合し、検出できる。
　上記の（Ａ）又は（Ｂ）の方法を行うための本発明のイムノクロマト試験片では、標識体領域よりも上流（検体の流れの上流でありサンプルパッドが存在する側）に、すなわち、サンプルパッド内又はサンプルパッドと標識体領域との間に、酸性試薬若しくは硝酸塩と中和試薬が含浸されている。サンプルパッド内又はサンプルパッドと標識体領域との間に、亜硝酸塩と中和試薬が含浸されているイムノクロマト試験片は上記（Ａ）の方法に用いることができる。また、サンプルパッド内又はサンプルパッドと標識体領域との間に、酸性試薬と中和試薬が含浸されているイムノクロマト試験片は上記（Ｂ）の方法に用いることができる。なお、イムノクロマト試験片に含浸させる酸性試薬としては、固形状酸性試薬が用いられる。これらの方法により、被検試料中の被検出物質を被検試料の試験に供される量によらず、正確に、特異的に測定することが可能になる。
　前記固形状酸性試薬又は亜硝酸塩は、サンプルパッドに含浸させてもよいし、サンプルパッドとは別の不織布等の多孔性材料からなるパッドに含浸させて、得られた固形状酸性試薬含浸多孔性材料又は亜硝酸塩含浸多孔性材料を、サンプルパッドと標識体領域との間、すなわち標識体領域の上流側に配置してもよい。ここで、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させた領域とサンプルパッド又は標識体領域は接触していても、いなくてもよい。本発明において、試薬を含浸させた領域を試薬を含浸させたパッドともいう。
　前記中和試薬は、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させる領域よりも下流に配置する。中和試薬は、サンプルパッドに含浸させてもよいし、支持体に含浸させてもよいし、支持体とは別の不織布等の多孔性材料からなるパッドに含浸させて、得られた中和試薬含浸多孔性材料を、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させた領域と標識体領域との間に配置してもよい。すなわち、標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させた領域を有する。ここで、中和試薬を含浸させた領域と固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含浸させた領域又は標識体領域は接触していても、いなくてもよい。
　固形状酸性試薬を含浸させた領域を固形状酸性試薬領域と呼び、亜硝酸塩を含浸させた領域を亜硝酸塩領域と呼び、中和試薬を含浸させた領域を中和試薬領域又は塩基性試薬領域と呼ぶ。
　固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片は、支持体上に上流からサンプルパッド、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域、中和試薬領域、標識体領域、検出領域及び吸収帯を有し、固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域はサンプルパッド上にあってもよい。また、サンプルパッド、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域、中和試薬領域、標識体領域、検出領域及び吸収帯は、隣合う領域どうしで接触していても、いなくてもよい。さらに、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域、中和試薬領域、標識体領域は必ずしも別々の多孔性材料に含浸する必要はなく、複数又は全ての領域を同一の多孔性材料に含浸させてもよい。
　本発明で用いられる固形状酸性試薬は常温において固形状のものであり、高温において揮発しないものである。
　本発明に用いられる好ましい固形状酸性試薬としては、マロン酸、リンゴ酸、マレイン酸、クエン酸、酒石酸を挙げることができる。
　また、本発明で用いられる好ましい固形状酸性試薬としては、例えばクエン酸のような価数の多い酸を用いればより少ない量で抽出できる。また同じ価数ならより酸解離定数が小さい酸、例えばマレイン酸、酒石酸は効率が良い。
　また、本発明で用いられる好ましい固形状酸性試薬としては、イムノクロマト試験片上で着色されないような試薬、具体的には乾燥状態で白色又は乾燥熱や酸化で着色されにくい試薬が好ましい。
　本発明で用いられる亜硝酸塩としては、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウム等が挙げられる。
　本発明に用いられる固形状酸性試薬又は亜硝酸塩の使用量、すなわちイムノクロマト試験片に含浸させる量は、特に限定されないが、通常、イムノクロマト試験片の一試験片あたり0.01μg～1mg程度であり、好ましくは0.1μg～0.1mg程度である。もっとも、使用する固形状酸性試薬又は亜硝酸塩の種類、検体浮遊液の組成や添加量などにより効果が得られる最適な量を選択することが好ましい。
　固形状酸性試薬又は亜硝酸塩をサンプルパッド又は多孔性材料に含浸させるには、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を一度溶解させて塗布し乾燥させる。
　本発明に用いられる中和試薬は常温において固形状のものであり、高温において揮発しないものである。
　本発明に用いられる好ましい中和試薬としては、トリス塩基（トリスヒドロキシルメチルアミノメタン）、水酸化ナトリウム、リン酸水素二カリウム、クエン酸三ナトリウム、アルカリ領域に緩衝能をもつグッドバッファーを挙げることができる。
　本発明に用いられる中和試薬の使用量、すなわちイムノクロマト試験片に含浸させる量は、特に限定されないが、通常、イムノクロマト試験片の一試験片あたり0.01μg～1mg程度であり、好ましくは0.1μg～0.1mg程度である。もっとも、使用する中和試薬の種類、検体浮遊液の組成や添加量などにより効果が得られる最適な量を選択することが好ましい。
　中和試薬をサンプルパッド又は多孔性材料に含浸させるには、中和試薬を一度溶解させて、溶液をサンプルバッド又は多孔性材料に塗布し、その後乾燥させればよい。
　図１及び図２は、典型的なイムノクロマト試験片の好ましい１形態を示した図である。図１及び図２に示すイムノクロマト試験片は、固形状酸性試薬及び中和試薬を含浸させたイムノクロマト試験片であるが、固形状酸性試薬の代りに硝酸塩を含浸させてもよく、この場合は、硝酸塩及び中和試薬を含浸させたイムノクロマト試験片となる。当業者ならば、硝酸塩及び中和試薬を含浸させたイムノクロマト試験片を適宜設計し製造することができる。なお、イムノクロマト試験片は、図１及び図２に示すものに限定されるものではない。図１及び図２中、１が支持体、２が標識体領域、３が検出領域、４がサンプルパッド、７が吸収帯、８がバッキングシートを指している。また、試験片全体の上にトップラミネートを貼り付けてもよい。
　図１Ａ及び図２Ａが上面図、図１Ｂ及び図２Ｂが切断断面図である。図１の例では、樹脂等でできたバッキングシート８上に１個の検出領域３が形成された支持体１、吸収帯７、標識体領域２、サンプルパッド４等がそれぞれ積層されている。そして図１に示すように、吸収帯７の一方の端部と支持体１の一方の端部、支持体１の他方の端部と標識体領域２の一方の端部、標識体領域２の他方の端部とサンプルパッド４の一方の端部がそれぞれ重ね合わされており、サンプルパッド４の上流部に固形状酸性試薬が含浸され、少し間を離してサンプルバッドの下流部に中和試薬が含浸されている。固形状酸性試薬が含浸された領域を固形状酸性試薬領域５と呼び、中和試薬が含浸された領域を中和試薬領域６と呼ぶ。この試験片においては、サンプルパッド４が固形状酸性試薬領域５及び中和試薬領域６を兼ねている。すなわち、固形状酸性試薬領域及び中和試薬領域がサンプルパッド上に存在する。この試験片においては、固形状酸性試薬領域及び中和試薬領域が１枚の多孔性材料（パッド）状に設けられているので、１枚パッド試験片と呼ぶことがある。図２の例では、標識体領域２の上流に固形状酸性試薬領域５及び／又は中和試薬領域６が存在し、これらが重ね合わされており、これにより連続したラテラルフローの流路が形成されている。図２に示す試験片においては、固形状酸性試薬領域５がサンプルパッドを兼ねている。すなわち、固形状酸性試薬領域がサンプルパッド上に存在する。この試験片においては、固形状酸性試薬領域及び中和試薬領域が別々の２枚の多孔性材料（パッド）状に設けられているので、２枚パッド試験片と呼ぶことがある。固形状酸性試薬領域の上流にさらにサンプルパッドが存在してもよい。また、図２に示す試験片では、固形状酸性試薬領域５及び中和試薬領域６は異なる多孔性材料に含浸させているが、図１の試験片のサンプルパッドのように同じ多孔性材料（パッド）上の上流部に固形状酸性試薬領域５を設け、下流部に中和試薬領域６を設けてもよい。
　上記のイムノクロマト試験片は格納容器に収納され、イムノクロマトデバイスとして用いられる。すなわち、格納容器にイムノクロマト試験片を組込んだ状態のものをイムノクロマトデバイスという。一般的に上記格納容器は下の容器部分と上の蓋部分から構成される。ここで、下の容器部分には、イムノクロマト試験片が収納され、イムノクロマト試験を行う場合に、下の容器部分の上に上の蓋部分がかぶせられる。下の容器部分及び上の蓋部分を、それぞれ、単に格納容器の下部分及び上部分と呼ぶことがある。上記のイムノクロマト試験片を格納容器に収納したときに、サンプルパッドの上部に、サンプルパッドに検体試料溶液を供給できる検体滴加口が位置し、容器の検体滴加口に検体を添加したときに検体はサンプルパッドに浸み込む。ここで、滴加口を添加口ということもある。また、イムノクロマト試験片を格納容器に収納したときに、検出領域上に判定部が位置し、容器の判定部の穴を通して、検出領域を観察することができる。
　下の容器部分に上の蓋部分をかぶせたとき、下の容器部分に収容されているイムノクロマト試験片は、格納容器の上の蓋部分と下の容器部分に設けられた突起により挟まれ動かないように支持される。したがって、格納容器の上の蓋部分と下の容器部分に設けられた突起を、それぞれ、突起からなる上部支持体及び下部支持体と呼ぶ。
　上の蓋部分の上部支持体は、滴加口の検体を滴加する側の裏側に開口部の縁を形成するように設けられており、さらに、上の蓋部分の上部支持体は、傾斜を有する突起で形成されている。上の蓋部分の上部支持体は、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの上側を支持する。上の蓋部分の上部支持体がイムノクロマト試験片のサンプルパッドの上側を上から押さえた場合に、イムノクロマト試験片の下流部に向かって突起の高さが小さくなるような傾斜、すなわち、イムノクロマト試験片の下流方向に上る傾斜を有している。下の容器部分に上の蓋部分をかぶせたときに、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの上側を上から押さえて固定し動かないようにし、さらに、サンプルパッドに密着して、検体溶液がサンプルパッド以外に漏出しないようにする。さらに、上の蓋部分の上部支持体がサンプルパッドを押さえつけた場合、押圧が上流から下流に向かって弱くなる。該支持体を傾斜した突起よりなる支持体ということがある。
　一方、従来のイムノクロマトデバイスの格納容器の上の蓋部分の上部支持体は、傾斜を有しておらず、フラットな形状を有している。
　下の容器部分の下部支持体は、下の容器部分の検体滴加口に対応する部分に設けられた傾斜を有する突起で形成されている。ここで、下の容器部分の検体滴加口に対応する部分とは、上の蓋部分を下の容器部分にかぶせたときに、検体滴加口の開口部に重なる部分をいう。下の容器部分の下部支持体は下の容器部分に上の蓋部分をかぶせたときに、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの下側を支持する。下の容器部分の下部支持体は、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの下側を下から押さえて固定し動かないようにする。下部支持体は、検体滴加口に対応する部分に傾斜を有する突起として設けられる。下部支持体は、イムノクロマト試験片のサンプルパッドを押さえた場合に、イムノクロマト試験片の下流部に向かって突起の高さが小さくなるように傾斜、すなわち、イムノクロマト試験片の下流方向に下る傾斜を有し、サンプルパッドを押さえつける押圧が上流から下流に向かって弱くなる。該支持体を傾斜した突起よりなる支持体ということがある。
　一方、従来のイムノクロマトデバイスの格納容器の下の容器の下部支持体は、傾斜を有しておらず、フラットな形状を有している。
　イムノクロマト試験片の下流方向に上る傾斜を持たせたイムノクロマト試験片の上側を押さえて支持する突起からなる支持体を有する蓋部分を上部支持体が傾斜を有する蓋部分と呼び、イムノクロマト試験片の下流方向に下る傾斜を持たせたイムノクロマト試験片の下側を押さえて支持する突起からなる支持体を有する容器部分を下部支持体が傾斜を有する容器部分と呼び、傾斜した突起よりなる支持体を有しない蓋部分を従来の蓋部分と呼び、傾斜した突起よりなる支持体を有しない容器部分を従来の容器部分と呼ぶことができる。この場合、本発明のイムノクロマトデバイスの格納容器の上の蓋部分と下の容器部分の組合せには以下のＡ～Ｃの組合せがある。
Ａ：上部支持体が傾斜を有する蓋部分、及び従来の容器部分
Ｂ：上部支持体が傾斜を有する蓋部分、及び下部支持体が傾斜を有する容器部分
Ｃ：従来の蓋部分、及び下部支持体が傾斜を有する容器部分
　本発明のイムノクロマトデバイスにおいて、傾斜した突起よりなる支持体は、上記Ｂのようにイムノクロマトデバイスの格納容器の上の蓋部分と下の容器部分の両方に存在していてもよいし、上記Ａ及びＣのように片方だけに存在していてもよい。好ましくは、上記Ｂのように両方に存在する。
　このように、上の蓋部分及び／又は下の容器部分の、イムノクロマト試験片のサンプルパッドに接触する支持体部分に、イムノクロマト試験片の下流側に向かって高さが低くなる突起からなる傾斜部があるため、上部支持体と下部支持体でイムノクロマト試験片のサンプルパッドを挟んで押さえ付けた場合、上部支持体及び下部支持体がイムノクロマト試験片に密着し、さらに下流部の押圧は上流部の押圧よりも低くなる。このため、滴加した液体検体が、イムノクロマト試験片から漏れ出ることがなく、また、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの下流側の液体の流路が支持体により強く押さえられないので、液体検体が流れやすくなる。また、サンプルパッドの上流部が下流部よりも高い位置に存在し、液体検体が重力により流れやすくなる。検体が流れやすくなる結果、検体の展開開始時間を適切な速度に調節できるので、設定した判定時間内に最も高感度の性能が発揮できるようになる。
　本発明のイムノクロマトデバイスは、イムノクロマト試験片の格納容器において上記の傾斜を有する突起からなる支持体を有するため、イムノクロマト試験片上で糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をすることが可能な、糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト法において、試料の展開を適切な速度に調節することができる。本発明のイムノクロマトデバイスは、その他、以下の検体試料の展開速度を調節する仕組みに関する構造的特徴を有していてもよい。
（１）本発明のイムノクロマトデバイスは滴加口が広く設けられていてもよい。
　例えば、縦の長さが5～9cm、好ましくは7cm、横の長さが0.3～0.7cm、好ましくは0.5cmのイムノクロマト試験片を格納した従来のイムノクロマトデバイス（クイックナビ（商標）-Strep A、デンカ生研）の滴加口は約3.5mm×約5.5mm(19.25mm2)のサイズを有する略矩形の滴加口として設けられているが、同じサイズのイムノクロマト試験片を格納する本発明のイムノクロマトデバイスの滴加口は約3.5mm×約11mm(38.5mm2)のサイズを有する略矩形の滴加口として設けられている。イムノクロマトデバイス及びその中に格納されるイムノクロマト試験片の大きさは概ね類似サイズになるので、長さが横3cm、縦9cmのイムノクロマトデバイスにおいて略矩形で3～5mm×8～15mm(24～75mm2)の滴加口を有するイムノクロマトデバイスは滴加口が広いイムノクロマトデバイスであり、本発明のイムノクロマトデバイスの効果を奏し得る。滴加口の長い辺は、クロマトグラフィー試験片の長い辺と平行な辺であり、すなわち検体試料溶液の流れ方向に沿った辺である。滴加口の長い辺の長さを滴加口長といい、短い辺の長さを滴加口幅ということがある。上記の例は、略矩形の滴加口の場合であるが、滴加口の形状は、三角形でも円形でもよい。本発明のイムノクロマトデバイスの滴加口の大きさを面積で表した場合、24～75mm2、好ましくは35～75mm2である。
　例えば、本発明のイムノクロマトデバイスは、縦の長さが5～9cm、横の長さが0.3～0.7cmのイムノクロマト試験片を格納しており、滴加口のサイズが略矩形で3～5mm（滴加口の幅）×8～15mm（滴加口長）(24～75mm2)の滴加口を有する。滴加口長は、好ましくは10mm以上、さらに好ましくは10mmである。滴加口長が8mm未満、例えば5mmのデバイスは従来の滴加口の広さが小さいデバイスである。
　従来のイムノクロマト法において、イムノクロマト試験片上に設けた検体処理試薬で検体処理を行う際は、試料溶液が検体処理試薬を含浸した領域に接している面積が少ないため検体処理能力が弱く、なおかつイムノクロマト試験片を徐々に展開しながら検体処理が行われていたことから、最初に展開した試料溶液と後から展開した試料溶液には検体処理試薬の濃度差が起きていた。従って、検体処理を確実に行うことができなかった。
　本発明のイムノクロマトデバイスの滴加口は広く設けられていることから、一度に大量の検体試料溶液を短時間でイムノクロマト上の検体処理試薬を含浸させた領域、すなわち固形状酸性試薬を含浸させた領域又は亜硝酸を含浸させた領域に供給することができる。この結果、イムノクロマト試験片上における糖鎖抗原の抽出を促進することができる。一度に供給することができる検体試料溶液は、10μL～200μLである。
　その結果、時間差による検体処理試薬の濃度差が起きないことから、イムノクロマト上の検体処理を促進し確実に効率よく行うことができる。
（２）本発明のイムノクロマトデバイスにおいては、滴加口から試料が逃げこぼれないよう、滴加口とその下に位置するサンプルパッドの間に隙間が無いよう構成されていてもよい。
　本発明のイムノクロマトデバイスは滴加口が広く設けられており、一度に大量の検体試料溶液が供給される。また、滴加口の外郭である縁部分には一定の高さ（1～5mm）があり、供給された検体資料溶液は滴加口内に一旦貯まる。
　その結果、検体試料溶液の全液がイムノクロマト試験片に吸収されるまで時間が掛かることから、試料溶液がイムノクロマト試験片に吸収されずにイムノクロマト試験片外に逃げこぼれることがあった。
　本発明のイムノクロマトのデバイスは、サンプルパッドを支えるバッキングシートを滴加口から試料が逃げこぼれないよう、滴加口の外郭サイズと同等かそれより大きい外郭サイズのバッキングシートでサンプルパッドを支持することで、バッキングシートによりサンプルパッドを滴加口に押さえつけるような力が働き、滴加口とサンプルパッドの間に隙間が無いよう構成できることから、試料溶液の逃げ漏れを防ぐことができる。
　また、サンプルパッドの厚みに差がある場合は、サンプルパッドの厚みが薄い箇所は滴加口との隙間ができやすく、試料溶液の逃げ漏れが発生しやすい。
　本発明においては、サンプルバットの薄い箇所はデバイスの容器の台座は高く、厚い箇所は台座を低く設計することで、パッドの厚みに差がある場合においても、滴加口とパッドの間に隙間が無いよう構成できることから、試料溶液の逃げ漏れを防ぐことができる。
　この結果、この結果、イムノクロマト試験片上における糖鎖抗原の抽出を効率よくすることができる。
（３）また、イムノクロマト試験片の固形状酸性試薬や亜硝酸塩や中和試薬等の検体処理試薬を含浸させるパッドの製造に使用する素材（不織布）を疎水性の高い素材を選択してもよく、これにより液の流れるスピード、すなわち検体試料溶液がイムノクロマト試験片上を展開する時間を遅く調節することが可能である。
　この場合の疎水性の高い素材とは例えば、ポリエチレン、ポリエステル、ポリスチレン、ポリプロピレン、レーヨン、ナイロン等が挙げられる。
　中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材としては、目付が10～400g/m2であり、かつ、厚みが0.1～2.0mmの織物であり、1cm/m2あたりの吸水量が10～100μl/cm2で、かつ吸水スピードが1.0～5.0μl/secであり、さらに1cm/m2の断片を濡れた状態でメンブレンに接触させ5分間静置後の保水量が10～100μl/cm2であり、好ましくは1cm/m2の断片を濡れた状態でメンブレンに接触させ5分間静置後の液の広がり面積が20mm2以下、つまり吸水力が高く、保水性（液体の保持力）が高く、さらに液体の放出性が低い又は持続するという特性の３つを有する多孔性材料が挙げられる。具体的には、セルロースの綿繊維でできた濾紙やガラス繊維でできたガラス濾紙等が挙げられる。このような濾紙として、例えば、東洋濾紙株式会社のNo.26-3が挙げられる。また、用いる濾紙の容積は大きく、上流から検体よりも遅れて到達する酸性溶液を十分に保持することができる。このような多孔性材料を用いることにより、亜硝酸塩と酸性試薬との反応で発生した亜硝酸で糖鎖抗原を抽出した検体を十分に中和することができる量の中和試薬を含浸させることができる。また、該パッドは大量の液体を吸収保持することができ、放出性が持続するため、イムノクロマト試験片の上流に残る亜硝酸を含む液が判定時間以降に展開した際にも十分な中和能力を有することができ、酸性溶液が抗体を固相化した検出領域に達するのを抑えることができる結果、非特異反応を抑制し、非特異反応を生じることがなく糖鎖抗原を検出することができる。一方、吸水力が高く、保水性が高く、放出性が低いガラス濾紙の場合、具体的には、東洋濾紙株式会社のGS-25が挙げられるが、吸水力が高いため、より多くの中和試薬を含浸でき、保水性が高く、放水性が低いため、酸性溶液が固相化した検出領域に達することを防ぐ。この結果、陰性の場合には非特異反応を抑制し、陽性の場合には判定時間以降のライン発色を防止することができる。
　中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材の「目付」は10～400g/m2である。ここで、「目付」とは、布等の単位面積(1m2)当たりの重量をいう。目付は該パッドに含浸せる中和試薬の量や組成により適宜変えることができる。目付が30g/m2以下だと空隙率が高く、中和試薬を含浸した際にちぎれやすくなり、イムノクロマト製造時の取扱いが難しくなることから、好ましくは目付50g/m2以上であり、目付が300g/m2以上の場合には、空隙率が低く、中和試薬の組成にもよるが、検体がスムーズに素材に浸透せず、中和試薬と混合できないため、300g/m2以下であることが好ましい。最も好ましい目付は250～270g/m2である。
　また、中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材の「厚み」は0.1～2.0mmが良いが、厚みは、該パッドに含浸せる中和試薬の量や組成により適宜変えることができる。厚みが0.4mm以下の場合、中和試薬を含浸した際にちぎれやすくなり、イムノクロマト製造時の取扱いが難しくなることから、好ましい厚みとしては、0.4～0.8mm、中和試薬を含浸させられる量が調節しやすく、かつ、イムノクロマト製造時のハンドリングのしやすさを考慮すると、0.6mm程度がより好ましい。
　「吸水性」は1cm/m2あたりの吸水量が10～100μl/cm2で、かつ吸水スピードが1.0～5.0μl/secのものが好ましい。吸水量と吸水スピードは、96穴のＥＩＡプレートの1セルに200μlの色づけした溶液（1％Tween20+赤色102号）を用意し、そこに5×60mmの大きさの素材をバッキングシートに貼付した試験片を入れ、溶液に浸漬させた方を試験片の下端とし、試験片の上端に溶液が達するまでの時間を測定し、さらに溶液が上端に達した後、直ちに試験片を取り出し、セルに残存する液量を測定する。吸水量は、200μlからセルに残った液量を差し引き、素材の1cm2面積あたりで割った液量であり、吸水スピードは、吸水量/上端到達までにかかった時間で求められる。 中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材としては、吸水量が多く、吸水スピードが遅めの素材が好ましい。固形状酸性試薬の濃度と含水量にもよるが、吸水量が30μl/cm2以下の場合、イムノクロマト試験片として必要な中和試薬が含浸しきれない場合も考えられるため、具体的には、吸水量が30μl/cm2以上であることが好ましい。中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材の吸水スピードは、検体中の糖鎖抗原が抽出される時間及び抽出後の試験液が中和される時間に影響する。糖鎖抗原を抽出する時間は、固形状酸性試薬の素材もしくは組成で調節することがある程度までは可能であるが、完全でないため、中和試薬を含浸させる領域に使用する素材の吸水スピードは、十分な糖鎖抗原の抽出及び中和に重要な要素となる。具体的には、吸水スピードは1.0～5.0μl/secが好ましく、より好ましい吸水スピードは、2.0μl/sec以下である。
　「保水性」は、中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材の1cm/m2の断片をメンブレン上に置き、そこに70μlの溶液（1％Tween20+赤色102号）添加し、5分間静置前後の重量を測定することで得られる。保水性の液量は、添加する溶液の組成（界面活性剤やタンパク量）によって変化するが、1%Tween20溶液で試験した場合の保水量が10～100μl/cm2であることが好ましく、より好ましい保水量は15μl/cm2以上である。
　「放出性」は、中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材の1cm/m2の断片をメンブレン上に置き、そこに70μlの溶液（1％Tween20+赤色102号）添加し、5分間静置後にメンブレン上に広がった液の面積を求めることで測定する。面積は、添加する溶液の組成（界面活性剤やタンパク量）によって変化するが、1%Tween20溶液で試験した場合の面積が、30mm2以下、より好ましい放出性は20mm2以下である。
　例えば、中和試薬を含浸させる領域に用いる多孔性材料の素材は、目付が50～300g/m2若しくは250～270g/m2であり、厚みが0.4～0.8mmであり、1cm/m2あたりの吸水量が30～100μl/cm2であり、吸水スピードが1.0～2.0μl/secであり、1cm/m2の断片を濡れた状態で検出領域に接触させ5分間静置後の保水量が15～100μl/cm2であり、1cm/m2の断片を濡れた状態でメンブレンに接触させ5分間静置後の液の広がり面積が20mm2以下である。この特性を有する素材は、「中和試薬を含浸させた領域の吸水性の高さ及び保水性の高さにより前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が十分中和され、中和試薬を含浸させた領域の放出性の低さ又は放出性の持続により残った酸性溶液が検出領域に達するのを抑えるか、或いは十分に中和された試験液が継続的に検出領域に展開し続ける」能力が高いので、他の素材に比べ非特異反応を抑えるという効果を有する。
　本発明のデバイスの使用方法について述べる。以下の使用方法は、検体を亜硝酸溶液と混合し、固形状酸性試薬と中和試薬を含浸させたイムノクロマトクロマト試験法を用いて測定する方法であるが、検体を酸性溶液と混合し、亜硝酸塩と中和試薬を含浸させたイムノクロマトクロマト試験法を用いて測定する方法も以下の使用方法の説明を参考にして行うことができる。
　測定は、検体又は検体を用いて調製された試料を亜硝酸塩溶液と接触混合させ、検体を亜硝酸塩溶液に浮遊させ、デバイスの検体滴加口に添加して供することにより開始される。この際、検体5～100μLと0.1M～8Mの亜硝酸塩0.01～2mLを混合し、5～200μLを滴加口に供すればよい。亜硝酸塩として、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウム等が挙げられる。
　滴加口に供された被検出物質である糖鎖抗原を含む検体は、サンプルパッドに移動し、毛管作用によって、サンプルパッド４上の固形状酸性試薬領域５及び中和試薬領域６へ展開され、さらに、標識体領域２、支持体１、吸収帯７へと順次、水平方向に展開される。固形状酸性試薬領域５において、検体に混合した亜硝酸塩と固形状酸性試薬領域５上の固形状酸性試薬が反応し、遊離の亜硝酸が発生し、その亜硝酸の作用によって検体から糖鎖抗原が抽出される。抽出された糖鎖抗原は酸性の展開溶液と共に中和試薬領域６に展開移動し、中和試薬領域６で糖鎖抗原を含む酸性の展開溶液のpHが中和され中性域に調整される。その結果、糖鎖抗原は中性条件下においてさらに下流に展開移動する。標識体領域２では検体試料の展開と共に標識抗体が液中に放出され支持体１へと展開される。検体試料中に糖鎖抗原が存在する場合において、支持体１の検出領域３では捕捉抗体により糖鎖抗原が特異的に捕捉され、なおかつ糖鎖抗原は標識抗体とも特異的反応により複合体を形成する。これにより検出領域３では糖鎖抗原を介した抗体のサンドイッチが成立し、標識抗体－糖鎖抗原複合物を検出領域３にて測定することができる。検出領域はイムノクロマトデバイスの判定部を通して観察することができる。
　本発明のイムノクロマト試験片を用いた方法によれば、検体中の糖鎖抗原の抽出はイムノクロマト試験片上で行われるため、イムノクロマト試験片を用いた測定の前にあらかじめ検体中の糖鎖抗原を抽出する必要はなく、１ステップで検体中の糖鎖抗原を測定することができる。
　本発明により乾燥させた固形状酸性試薬又は亜硝酸塩を含むパッドを組込んだイムノクロマト試験片において、試薬上で効率的に抽出を行うことができる。
　検体滴加口を固形状酸性試薬を含むパッド（固形状酸性試薬領域）とほぼ同等の面積にしてもよい。こうすることにより、より多くの試料が瞬時に固形状酸性試薬と接触できるようなる。さらに、塗布・含浸させる部材に疎水性の高い不織布を採用することで、試料が添加されてから直ぐに下流の中和試薬を含浸させたパッド（中和試薬領域）へ展開しないようにできる。こうすることで、検体添加部に試料が1～2分保持され、十分な抗原抽出を行うことができる。
　また、本発明においては、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域が重なりあって接触している場合に、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域の間に液体を通過させないシートを挟み込むように設ける。シートを設けることにより、以下の３つの効果を奏することができる。
（Ａ）試験片の保存時に隣接する２つの領域における試薬の移動を抑制することができる。この結果、固形状酸性試薬若しくは亜硝酸塩と中和試薬の接触による反応を防止することができる。この結果、試薬の安定性を向上させることができる。
（Ｂ）また、亜硝酸塩又は酸性試薬と混合した検体を添加したときに、検体が固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域に到達し、その後すぐに中和試薬領域に移動してしまうことによる不十分な糖鎖抗原の抽出を防止することできる。すなわち、固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域から中和試薬領域へ検体を含む液体が移動する速度を低下させ、固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域に検体を含む液体が留まる時間を長くし、その結果、糖鎖抗原を十分に抽出し、測定感度を高める。
（Ｃ）さらに、亜硝酸塩又は酸性試薬と混合した検体を添加したときに、検体が固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域に到達し、その後すぐに中和試薬領域に移動してしまい、移動した検体を含む液体が固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域に逆流し、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩の活性を低下させ、抽出効率が低下するのを防止することができる。すなわち、一旦中和試薬領域に到達した検体を含む液体が固形状酸性試薬領域又は亜硝酸塩領域に逆流するのを防止し、固形状酸性試薬又は亜硝酸塩の活性の低下を防止し、亜硝酸による糖鎖抗原の抽出処理を効率よく進ませ、測定感度を高める。
　固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域の間に設けるシートの素材は液体を通過させない素材である限り限定されず、例えば、PET（ポリエチレンテレフタレート）シート、ポリエチレンシート等の樹脂製シートを用いることができる。樹脂製シートは樹脂製フィルムともいう。
　シートは、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域が部分的に接触して重なるように設けてもよい。この場合、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域の重なる部分の長さは、極力短くすることが好ましく、例えば、５mm以下、好ましくは３mm以下、さらに好ましくは２mm以下である。
　また、シートを固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域が接触しないように設け、酸性試薬若しくは亜硝酸塩を含浸させたパッドがPETシート上に覆い被さる形状にしてもよい。この場合、中和領域がシートにより完全に覆われ、そのシート上に固形状酸性試薬領域又は亜硝酸領域を設ければよい。この場合、固形状酸性試薬領域又は亜硝酸領域内の液体は、直接中和領域に移動することはなく、シート上を流れた後に中和試薬領域に達する。
　シートは、例えば、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域と中和試薬領域の間にのみ設ければよい。一方、イムノクロマト試験片の上側を覆うように樹脂製シートをトップラミネートシートとして貼付するときに、トップラミネートシートを固形状酸性試薬領域又は亜硝酸領域以外、固形状酸性試薬領域又は亜硝酸領域がサンプルパッドを兼ねる場合はサンプルパッド以外の中和試薬領域、標識体領域、支持体、検出領域、吸収帯を覆うように貼付し、固形状酸性試薬領域若しくは亜硝酸塩領域を中和試薬部分の上部に貼付したトップラミネートシートの上部に貼付すればよい。
　本発明の方法において、検体となる生体試料は、特に限定されないが、血清、血漿、血液、尿、便、唾液、組織液、髄液、拭い液等の体液等又はその希釈物が挙げられる。
　本発明のイムノクロマトデバイスを用いた方法において、測定対象となる被検出物質はイムノアッセイ、すなわち抗原抗体反応を利用したアッセイで測定し得る糖鎖抗原である。抗原としては亜硝酸抽出処理によって抽出される細菌の細胞壁に存在する糖鎖抗原である多糖体等が挙げられる。これらの物質を含む原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等も測定し得る。本発明のイムノクロマト試験片を用いた方法により、被験体の生体試料中に原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等に由来する糖鎖抗原が含まれているか否かを確認することができ、糖鎖抗原が含まれている場合、被験体は原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等による感染症に罹患していると判断することができる。例えば、Ａ群β溶血性レンサ球菌（Streptococcus pyogenes）、大腸菌、レジオネラ、カンピロバクター等の感染の有無を検出することができる。
　本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
　以下の実施例において、％は、特に断らない場合はw/v％を示す。
実施例１：滴加口の大きさの検討
１．抗Streptococcus pyogenes（Ａ群β溶血性レンサ球菌）抗体のニトロセルロースメンブレン（支持体）への固定化
　抗Streptococcus pyogenes抗体を1.0mg/mLになるように精製水で希釈した液及び抗ウサギIgG抗体を準備し、PET（ポリエチレンテレフタレート）フィルムで裏打ちされたニトロセルロースメンブレンのサンプルパッド側に抗Streptococcus pyogenes抗体、吸収帯側に抗ウサギIgG抗体をそれぞれ線状に塗布した。その後、ニトロセルロースメンブレンを45℃、30分間乾燥させ、抗Streptococcus pyogenes抗体固定化メンブレンを得た。このメンブレンを本実施例において、「抗体固定化メンブレン」と呼ぶ。
２．抗Streptococcus pyogenes抗体の着色ポリスチレン粒子への固定化
　抗Streptococcus pyogenes抗体を1.0mg/mLになるように精製水で希釈し、これに着色ポリスチレン粒子を0.1％になるように加え、攪拌後、カルボジイミドを1％になるように加え、さらに攪拌する。遠心操作により上清を除き、50mM Tris（pH9.0）、3％BSAに再浮遊し、0.04％抗Streptococcus pyogenes抗体結合着色ポリスチレン粒子浮遊液を得た。この粒子を、本実施例において、「抗体固定化粒子」と呼ぶ。
３．抗Streptococcus pyogenes抗体結合着色ポリスチレン粒子の塗布・乾燥
　２で作製した抗体固定化粒子浮遊液を不織布に所定量を塗布し、45℃、30分間乾燥させた。得られた不織布を、本実施例において、「乾燥パッド」と呼ぶ。
４．中和試薬（塩基性試薬）パッドの作製
　中和試薬（塩基性試薬）として、3M Trizma（商標名） Base（トリス塩基）、1.5% TritonX100を30μL/cm濾紙(東洋濾紙；No.26-3)に塗布した。
５．固形状酸性試薬パッドの作製
　固形状酸性試薬として、1.0M 酒石酸、0.5% TritonX100を13μL/cmで不織布(ユニチカ；エルベス（登録商標）)に塗布した。塗布後に直ちに45℃、１時間、乾燥して、固形状酸性試薬含浸不織布を得た。
６．Streptococcus pyogenes検出用イムノクロマト試験片の作製
　１で作製した抗体固定化メンブレン、３で作製した乾燥パッド、４で作製した中和試薬（塩基性試薬）パッド、５で作製した固形状酸性試薬パッドを他部材（バッキングシート、吸収帯）と貼り合せて５mm幅に切断し、Streptococcus pyogenes試験片とした。固形状酸性試薬及び中和試薬（塩基性試薬）含浸濾紙をサンプルパッドとして用いた試験片を本実施例において、「本発明イムノクロマト試験片」と呼ぶ。なお、イムノクロマト試験片は、検体の流れに沿って、上流から、固形状酸性試薬含浸不織布、中和試薬（塩基性試薬）含浸不織布、乾燥パッド（標識体領域）、抗体固定化メンブレン（検出領域）、吸収帯を具備するものである。
７．イムノクロマトデバイス
　本発明のイムノクロマト試験片を滴加口長（長辺の長さ）5mmの格納容器（（１）滴加口小）に組込み、１のイムノクロマトデバイスを作製し、滴加口長（長辺の長さ）10mmの格納容器（（２）滴加口大）に組込み、（２）のイムノクロマトデバイスを作製した。（１）及び（２）のイムノクロマトデバイスの格納容器は、従来用いられていた格納容器であり、下の容器部分にも上の蓋部分にも、下のイムノクロマトデバイスの格納容器が有する傾斜した形状を有する突起からなる支持体を有していない。従来用いられていた格納容器の下の容器部分を従来の容器部分といい、従来用いられていた格納容器の上の蓋部分を従来の蓋部分という。
　また、格納容器の下の容器部分であって、イムノクロマト試験片の下流方向に下る傾斜を持たせたイムノクロマト試験片の下側を押さえて支持する突起からなる支持体を有する容器部分（下部支持体が傾斜を有する容器部分という）及び格納容器の上の蓋部分であって、イムノクロマト試験片の下流方向に上る傾斜を持たせたイムノクロマト試験片の上側を押さえて支持する突起からなる支持体を有する蓋部分（上部支持体が傾斜を有する蓋部分）と上記の従来の容器部分と従来の蓋部分を下のように組合せ、イムノクロマト試験片を組込んだイムノクロマトデバイス（３）～（５）を作製し、以下の試験を実施した。イムノクロマトデバイス（３）～（５）の上の蓋部分の滴加口長は10mmのものであった。
（３）上部支持体が傾斜を有する蓋部分、及び従来の容器部分
（４）上部支持体が傾斜を有する蓋部分、及び下部支持体が傾斜を有する容器部分
（５）従来の蓋部分、及び下部支持体が傾斜を有する容器部分
８．検体
　Streptococcus pyogenesを培養し、培養液を生理食塩水で菌数1.0×107CFU/mLに調製した。
　また、陰性検体として、生理食塩水を用いた。
９．測定
　検体20μLを亜硝酸ナトリウム溶液（2.0M NaNO3、1% Tween20）180μLに浮遊し、そのうち75μLを本発明のイムノクロマトデバイスの滴加口に添加した。また、従来法として亜硝酸ナトリウムと塩酸を混合した亜硝酸抽出液に検体を浮遊した後、トリス溶液で中和した検体浮遊液を従来法のイムノクロマトデバイス（酸性試薬も中和試薬も固定化されていない）の滴加口に50μＬ添加した。１０分後に抗Streptococcus pyogenes抗体を固定化した所定位置上の着色ポリスチレン粒子の堆積の有無とその程度をスコアコードでシグナルの程度が強いものを順に＋＋＋、＋＋、＋とし、判定が難しい場合を±、シグナルがみられなかったものを－とした。
１０．結果
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000001
　滴加口が大きい（２）、（３）、（４）及び（５）のイムノクロマトデバイスは滴加口の小さい（１）のイムノクロマトデバイスと比較して、展開開始時間が早くなることから陽性判定をより迅速に判定できた。
　また、上の蓋部分及び／又は下の容器部分に傾斜を有する突起からなる支持体を持たせた（３）、（４）及び（５）のイムノクロマトデバイスは傾斜を有する突起からなる支持体を持たない（１）及び（２）のイムノクロマトデバイスと比較して、10分後のシグナルが強く得られた。特に、上の蓋部分及び下の容器部分に傾斜を有する突起からなる支持体を有する（４）のイムノクロマトデバイスは、上の蓋部分又は下の容器部分の一方のみに傾斜を有する突起からなる支持体を有する（３）及び（５）のイムノクロマトデバイスよりも10分後のシグナルが強く得られた。
　１　支持体（検出領域を含む）
　２　標識体領域
　３　検出領域
　４　サンプルパッド
　５　固形状酸性試薬領域
　６　中和試薬領域
　７　吸収帯
　８　バッキングシート
　９　イムノクロマト試験片
　１０　格納容器
　１１　格納容器の蓋部分
　１２　格納容器の容器部分
　１３　デバイスの滴加口
　１４　デバイスの判定部
　１５　格納容器の蓋部分の突起部分
　１６　格納容器の容器部分の傾斜部
　本発明のイムノクロマトデバイスを用いてＡ群β溶血性レンサ球菌の感染を高感度で検出することができる。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (6)

  1. 　亜硝酸塩若しくは酸性溶液と混合した検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域及び前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に、亜硝酸塩と混合した検体を用いるときには固形状酸性試薬を含浸させた領域を有し、酸性溶液と混合した検体を用いるときには亜硝酸塩を含浸させた領域を有する、検体中の糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片と該試験片を格納する容器よりなり、該容器は上の蓋部分と下の容器部分からなり、上の蓋部分はイムノクロマト試験片の上側を支持する突起からなる上部支持体を有し、下の容器部分はイムノクロマト試験片の下側を支持する突起からなる下部支持体を有し、イムノクロマト試験片のサンプルパッドの上部に検体滴加口を有するイムノクロマトデバイスであって、
    　イムノクロマト試験片を支持する上部支持体及び／又は下部支持体を形成する突起部分に傾斜を持たせたことを特徴とする、イムノクロマトデバイス。
  2. 　イムノクロマト試験片を支持する上部支持体及び下部支持体を形成する突起部分に傾斜を持たせたことを特徴とする、請求項１記載のイムノクロマトデバイス。
  3. 　イムノクロマト試験片の下部支持体の突起部分の傾斜がイムノクロマト試験片の下流方向に下ることを特徴とする、請求項１又は２に記載のイムノクロマトデバイス。
  4. 　イムノクロマト試験片の上部支持体の突起部分の傾斜がイムノクロマト試験片の下流方向に上ることを特徴とする、請求項１～３のいずれか１項に記載のイムノクロマトデバイス。
  5. 　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア又はウイルスの糖鎖抗原である、請求項１～４のいずれか１項に記載のイムノクロマトデバイス。
  6. 　請求項１～５のいずれか１項に記載のイムノクロマトデバイスを用いてイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法であって、
    　イムノクロマトデバイスが固形状酸性試薬を含浸させた領域を有するときに検体を亜硝酸溶液と混合し、イムノクロマトデバイスが亜硝酸塩を含浸させた領域を有するときに検体を酸性溶液と混合し、前記イムノクロマトデバイスのサンプルパッドに添加することを含み、
    　固形状酸性試薬を含浸させた領域又は亜硝酸塩を含浸させた領域において、亜硝酸塩と固形状酸性試薬の反応により発生した亜硝酸の作用により検体から糖鎖抗原が抽出され、　中和試薬を含浸させた領域において、前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が中和され、
    　検出領域において、抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体が形成される、糖鎖抗原の抽出を促進して、イムノクロマト法により、検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
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