WO2017213228A1 - 糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法 - Google Patents

糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法 Download PDF

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加藤　大介
友洋 服部
志野 村松
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デンカ生研株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to an immunochromatographic test piece for extracting and measuring a sugar chain antigen, which can be subjected to nitrous acid extraction treatment of a sugar chain antigen on an immunochromatographic test piece, and an immunochromatography method using the same.
  • a nitrite extraction method is known as a method for extracting sugar chain antigens. This method is mainly used for extraction of sugar chain antigens of microorganisms belonging to the genus Streptococcus such as group A ⁇ -hemolytic streptococci and oral streptococci.
  • This nitrous acid extraction method is a method in which bacterial cells and a nitrous acid aqueous solution are mixed to expose sugar chain antigens.
  • a general nitrous acid extraction method is used for a specimen containing microorganisms such as a sodium nitrite aqueous solution, acetic acid, hydrochloric acid, etc. It is carried out by mixing a nitrous acid extract that has produced nitrous acid by mixing with an acidic solution and reacting the microorganism with the nitrous acid for a sufficient time. Since the above extract is strongly acidic, it is generally analyzed after adding a basic solution such as Tris or sodium hydroxide after the reaction to neutralize the extract.
  • a rapid diagnostic agent based on general immunochromatography can be measured quickly and easily by suspending a specimen in a specimen suspension and then supplying the suspension to an immunochromatographic test piece.
  • a nitrite solution and an acidic solution are mixed in advance immediately before the measurement to prepare a nitrite extract and mixed with the specimen. That is, after reacting with group A ⁇ -hemolytic streptococci and nitrous acid, neutralization is performed with a basic aqueous solution. The neutralized extract is supplied to the immunochromatographic test piece.
  • nitrite extract used in this method cannot be stored for a long time, it is necessary to mix and prepare the nitrite solution and the acid solution immediately before the test. Moreover, since this nitrous acid extract is too low in pH and interferes with the antigen-antibody reaction, it must be neutralized to a certain pH.
  • the steps of mixing the two liquids and the step of further neutralization are increased, the number of reagents is increased as compared with a rapid diagnostic agent based on a general immunochromatography method, and the operation is likely to be complicated. Therefore, the existing rapid diagnostic reagent is devised so that the sample treatment can be performed only by the operation of mixing the nitrite solution and the acidic solution by previously including the neutralizing reagent in the immunochromatographic test strip.
  • there are still many operation steps compared to the rapid diagnostic reagent based on the conventional immunochromatography method it is possible to extract correctly without mixing the two liquids, such as an error in the amount of the liquid to be mixed or a difference in the mixed solution. There was a problem that it could not be measured accurately because it was not operated.
  • sodium nitrite is designated as a deleterious substance by the Poisonous and Deleterious Substances Control Law, it belongs to the dangerous goods category 1 in the Fire Service Act, and is further designated as a hazardous substance in Article 2 of the Enforcement Order by the Water Pollution Control Law It is a difficult chemical to handle.
  • a manufacturing process in which a high concentration sodium nitrite aqueous solution is applied to the member of the immunochromatographic test piece and then dried is necessary. However, the operation involves a risk.
  • An object of the present invention is to simplify the operation of nitrite extraction by adding an acidic reagent and a neutralizing reagent necessary for extracting a sugar chain antigen by nitrous acid extraction to an immunochromatographic test piece in advance, and the conventional nitrous acid extraction process.
  • liquid acidic reagents such as hydrochloric acid and acetic acid volatilize and disappear on the dried immunochromatographic test piece, so that they do not settle on the immunochromatographic test piece and sufficient nitrous acid extraction is possible. Focused on not being done. Therefore, by using a solid acidic reagent such as tartaric acid, malic acid, malonic acid, citric acid, etc., the acidic reagent is fixed without volatilization even on a dried immunochromatographic test piece. Compared with the method of neutralization after treating with the nitrous acid extract mixed with two liquids, it is possible to measure quickly and easily, and the performance can be measured without inferiority. However, by using tartaric acid, the inventors have found that antigens can be sufficiently extracted, storage stability is stable, and non-specific reactions hardly occur, and the present invention has been completed.
  • the present invention is an immunochromatographic test piece comprising a sample pad, a label region, a detection region, and an absorption band from the upstream side, and tartaric acid as a solid acidic reagent upstream from the label region.
  • An immunochromatographic test strip impregnated with a neutralizing reagent is provided.
  • this invention provides the immunochromatography method performed using the immunochromatography test piece of the said invention.
  • the present invention is as follows. [1] A sample pad to which a sample is added, a labeled region containing a labeled antibody labeled with an antibody against a sugar chain antigen, and a detection region on which the antibody against the sugar chain antigen is immobilized, and the antibody-sugar chain antigen in the detection region An immunochromatographic test piece for forming a conjugate of a labeled antibody and measuring a sugar chain antigen, having a region impregnated with a neutralizing reagent upstream of the labeled region, and further impregnating the neutralizing reagent A method for measuring a sugar chain antigen in a sample by an immunochromatography method using an immunochromatographic test piece having a region impregnated with tartaric acid upstream of the region, Mixing the specimen with a nitrite solution and adding it to the sample pad of the immunochromatographic test strip, In the region impregnated with tartaric acid, sugar chain antigens are extracted from the specimen by the action of nitrous acid generated
  • [2] A method for measuring a sugar chain antigen in a specimen by the immunochromatography method according to [1], wherein a region impregnated with tartaric acid is present on a sample pad.
  • [3] The method for measuring a sugar chain antigen in a specimen by the immunochromatography method of [1] or [2], wherein the neutralizing reagent is trishydroxylmethylaminomethane or sodium hydroxide.
  • the sugar chain antigen is a sugar chain antigen of a protozoan, fungus, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia or virus, and the sugar chain antigen in the specimen is obtained by the immunochromatography method according to any one of [1] to [3] How to measure.
  • the immunochromatographic test piece of the present invention compared with the conventional method of neutralizing after treating with a nitrous acid extract previously mixed with two liquids of nitrite and a liquid acidic reagent, The performance can be measured without inferiority.
  • the present invention relates to an immunochromatographic test strip that simplifies the nitrous acid extraction treatment of a sugar chain antigen on an immunochromatographic test strip, and enables rapid and accurate measurement of the sugar chain antigen as a substance to be detected.
  • the immunochromatographic test strip comprises a support having a detection region on which an antibody (antibody 1) that captures a substance to be detected (antigen etc.) is immobilized, a labeled region having a movable labeled antibody (antibody 2), and a sample drop
  • an antibody that captures a substance to be detected (antigen etc.) is immobilized
  • a labeled region having a movable labeled antibody (antibody 2)
  • sample drop A sample pad to be added, an absorption band for absorbing the developed specimen liquid, a backing sheet for bonding these members together, and the like are provided.
  • the immunochromatographic test piece of the invention may be housed in a storage container, and the storage container can prevent deterioration due to, for example, ultraviolet rays or moisture in the air. Further, when using a sample sample having a contamination property or an infectivity property, it is possible to prevent a tester conducting an assay from the containment vessel from being contaminated or infected.
  • a sample sample having a contamination property or an infectivity property it is possible to prevent a tester conducting an assay from the containment vessel from being contaminated or infected.
  • an appropriately sized resin case may be used as a storage container, and the apparatus of the present invention may be stored in the case. Further, the surface of the test piece on which the antigen or antibody is immobilized may be covered with a resin film or the like (top laminate).
  • the containment vessel and the test piece stored in the containment vessel may be collectively referred to as an immunochromatography device.
  • the number of detection regions and the type of labeled antibody contained in the labeled body region are not limited to one, and two or more antigens can be tested in the same test by using antibodies corresponding to a plurality of substances to be detected. It can be measured with a piece.
  • the support is a material having the ability to immobilize an antibody for capturing a substance (antigen) to be detected, and has a performance that does not prevent the liquid from passing in the horizontal direction.
  • it is a porous thin film having a capillary action, and is a material capable of transporting a liquid and components dispersed therein by absorption.
  • the material forming the support is not particularly limited, and examples thereof include cellulose, nitrocellulose, cellulose acetate, polyvinylidene difluoride (PVDF), glass fiber, nylon, and polyketone. Of these, a thin film using nitrocellulose is more preferred.
  • a membrane on which an antibody is immobilized is called an antibody-immobilized membrane.
  • the labeled body region is composed of a porous substrate containing a labeled antibody, and the glass substrate or nonwoven fabric that is generally used can be used as the material of the substrate.
  • the substrate is preferably in the form of a pad having a thickness of about 0.3 mm to 0.6 mm in order to impregnate a large amount of labeled antibody.
  • the porous substrate impregnated with the labeled antibody and dried is also referred to as a dry pad.
  • enzymes such as alkaline phosphatase and horseradish peroxidase, metal colloids such as gold colloid, silica particles, cellulose particles, colored polystyrene particles and colored latex particles are often used.
  • metal colloids such as gold colloid, silica particles, cellulose particles, colored polystyrene particles and colored latex particles
  • coloring occurs due to aggregation of these labeling reagents, and this coloring is measured.
  • the particles on which the antibody is immobilized are called antibody-immobilized particles.
  • the detection region refers to a partial region of the support on which an antibody that captures a substance to be detected (antigen) is immobilized.
  • the detection region is provided with at least one region on which an antibody for capturing an antigen is immobilized.
  • the detection region may be included in the support, and the antibody may be immobilized on the support.
  • the sample pad is a part for dropping the specimen and is a porous material.
  • the sample pad is the most upstream site of the immunochromatographic test strip.
  • As the material commonly used filter paper, glass fiber, non-woven fabric and the like can be used.
  • it is preferably a pad shape having a thickness of about 0.3 mm to 1 mm. Samples include samples prepared using samples, such as samples obtained by floating samples in other solutions.
  • the absorption band is a member for absorbing components that are supplied to the support and are not involved in the reaction in the detection region.
  • As the material filter paper with high water retention, sponge, etc. made of general natural polymer compounds, synthetic polymer compounds, etc. can be used, but those having high water absorption are preferable for promoting the development of the specimen. .
  • the backing sheet is a member for affixing and fixing all the above-mentioned materials, that is, the support, the sample pad, the marker region, and the absorption band with a partial overlap.
  • the backing sheet is not necessarily required as long as these materials are arranged and fixed at an optimal interval, but it is generally preferable to use the backing sheet for convenience in manufacturing or use.
  • a control display region may further exist.
  • the control display area is a site indicating that the test has been performed correctly.
  • the control display area exists downstream of the detection area, and when the specimen sample passes through the detection area and reaches the control display area, a signal is emitted by coloring or the like.
  • a substance that binds to the antibody to which the labeling carrier is bound may be immobilized, or a reagent such as a pH indicator that changes color when the sample arrives is immobilized. Also good.
  • the antibody to which the labeling carrier is bound is a mouse monoclonal antibody, an anti-mouse IgG antibody may be used.
  • the specimen passes through the porous flow path formed by a series of connections of the sample pad, the label body region, the support, the detection region, and the absorption band. Therefore, in this embodiment, all of these become the specimen movement area.
  • the specimen movement region defined in this specification does not matter whether the specimen is inside or the interface.
  • a solid state is present upstream from the labeled region (upstream of the specimen flow and on the side where the sample pad is present), that is, within the sample pad or between the sample pad and the labeled region. Impregnated with acidic and neutralizing reagents. Thereby, it becomes possible to measure the substance to be detected in the test sample accurately and specifically regardless of the amount used for the test of the test sample.
  • the solid acidic reagent used in the present invention is solid at room temperature, has a property of not volatilizing at high temperature, and is not colored on an immunochromatographic test piece, specifically, white or dry heat in a dry state. Reagents that are not easily colored by oxidation are preferred.
  • solid acidic reagent having these characteristics examples include tartaric acid, malonic acid, malic acid, maleic acid, citric acid and the like.
  • the antigen has all the above characteristics and is equivalent to the liquid acidic reagent.
  • the only solid acidic reagent having extractability is tartaric acid.
  • the amount of tartaric acid used in the present invention is not particularly limited, but is usually about 0.01 ⁇ g to 1 mg, preferably 0.1 ⁇ g to 0.1 mg per test piece of immunochromatographic test piece. Degree. However, it is preferable to select an optimum amount that can provide an effect depending on the composition of the sample suspension and the amount of the drop.
  • the neutralizing reagent used in the present invention is solid at normal temperature and does not volatilize at high temperature.
  • Preferred neutralizing reagents used in the present invention include tris (trishydroxylmethylaminomethane), sodium hydroxide, dipotassium hydrogen phosphate, trisodium citrate, and a good buffer having a buffer capacity in the alkaline region. .
  • the amount of the neutralizing reagent used in the present invention is not particularly limited, but is usually about 0.01 ⁇ g to 1 mg, preferably 0.1 ⁇ g to 1 ⁇ g per test strip. About 0.1mg. However, it is preferable to select an optimal amount that is effective depending on the type of the neutralizing reagent to be used, the composition of the specimen suspension, the amount of addition, and the like.
  • the neutralizing reagent is dissolved once, the solution is applied to the sample pad or the porous material, and then dried.
  • a region impregnated with tartaric acid is called a tartaric acid-impregnated region, and a region impregnated with a neutralizing reagent is called a neutralizing reagent region or a basic reagent region.
  • Tartaric acid may be impregnated in the sample pad, or impregnated in a porous material such as a non-woven fabric other than the sample pad, and the resulting tartaric acid-impregnated porous material is placed between the sample pad and the marker region, That is, you may arrange
  • the tartaric acid-impregnated region and the sample pad or marker region may or may not be in contact.
  • the neutralizing reagent region is disposed downstream of the tartaric acid impregnated region.
  • the neutralizing reagent may be impregnated into the support, or a porous material such as a non-woven fabric different from the support is impregnated, and the resulting neutralizing reagent-impregnated porous material is mixed with the tartaric acid-impregnated region and the labeling body.
  • the neutralizing reagent region and the tartaric acid-impregnated region or the labeled body region may or may not be in contact.
  • An immunochromatographic test piece having a tartaric acid-impregnated region and a neutralizing reagent region has a sample pad, a tartaric acid-impregnated region, a neutralizing reagent region, a labeled region, a detection region, and an absorption band from the upstream on the support. It may be on the sample pad. Further, the sample pad, the tartaric acid-impregnated region, the neutralizing reagent region, the labeling region, the detection region, and the absorption band may or may not be in contact with each other. Furthermore, the tartaric acid-impregnated region, the neutralizing reagent region, and the marker region need not necessarily be impregnated in separate porous materials, and a plurality or all of the regions may be impregnated in the same porous material.
  • FIG. 1 and FIG. 2 are diagrams showing a preferred embodiment of a typical immunochromatographic test piece.
  • the immunochromatographic test piece is not limited to those shown in FIGS. 1 and 2.
  • reference numeral 1 denotes a support
  • 2 denotes a labeling body region
  • 3 denotes a detection region
  • 4 denotes a sample pad
  • 7 denotes an absorption band
  • 8 denotes a backing sheet.
  • FIG. 1 and 2 are a top view and a bottom is a cut sectional view.
  • a support 1 an absorption band 7, a marker body region 2, a sample pad 4, etc., each having a single detection region 3 are laminated on a backing sheet 8 made of resin or the like.
  • a backing sheet 8 made of resin or the like.
  • one end of the absorption band 7 and one end of the support 1, the other end of the support 1 and one end of the label body region 2 The other end and one end of the sample pad 4 are overlapped with each other, and the tartaric acid-impregnated region 5 in which the upstream portion of the sample pad 4 is impregnated with tartaric acid is neutralized to the downstream portion of the sample pad.
  • Reagent region 6 is present.
  • the sample pad also serves as the tartaric acid-impregnated region 5 and the neutralizing reagent region 6. That is, the tartaric acid impregnated region 5 and the neutralizing reagent region 6 are present on the sample pad.
  • the tartaric acid-impregnated region and the neutralizing reagent region 6 are provided in the form of a single porous material (pad) and may be referred to as a single-pad test piece.
  • the tartaric acid-impregnated region 5 and / or the neutralizing reagent region 6 are present upstream of the labeled body region 2, and these are overlapped to form a continuous lateral flow channel. .
  • FIG. 2 the test piece shown in FIG.
  • the tartaric acid-impregnated region 5 also serves as a sample pad. That is, the tartaric acid-impregnated region 5 is present on the sample pad.
  • the tartaric acid-impregnated region 5 and the neutralizing reagent region 6 are provided in the form of two separate porous materials (pads), and may be referred to as a two-pad test piece.
  • An additional sample pad may be present upstream of the tartaric acid impregnated region 5.
  • the tartaric acid-impregnated region 5 and the neutralizing reagent region 6 are impregnated in different porous materials, but the same porous material (pad) as in the sample pad of the test piece in FIG.
  • the tartaric acid impregnation region 5 may be provided in the upper upstream portion, and the neutralizing reagent region 6 may be provided in the downstream portion.
  • the measurement is started by contacting and mixing the specimen or a specimen prepared using the specimen with a nitrite solution, suspending the specimen in the nitrite solution, and adding the specimen to a sample pad. At this time, 5 to 100 ⁇ L of the sample and 0.01 to 2 mL of 0.1 M to 8 M nitrite may be mixed, and 5 to 200 ⁇ L may be supplied to the sample pad.
  • nitrites include sodium nitrite and potassium nitrite.
  • a specimen containing a sugar chain antigen, which is a substance to be detected, provided to the sample pad 4 is developed into a tartaric acid-impregnated region 5 and a neutralizing reagent region 6 on the sample pad 4 by capillary action.
  • the body 1 and the absorption band 7 are sequentially developed in the horizontal direction.
  • nitrite mixed with the sample reacts with tartaric acid on the tartaric acid-impregnated region 5 to generate free nitrous acid, and the sugar chain antigen is extracted from the sample by the action of the nitrous acid.
  • the extracted sugar chain antigen moves to the neutralizing reagent region 6 together with the acidic developing solution, and the pH of the acidic developing solution containing the sugar chain antigen is neutralized in the neutralizing reagent region 6 and adjusted to the neutral region. .
  • the sugar chain antigen develops and moves further downstream under neutral conditions.
  • the labeled antibody is released into the liquid and developed on the support 1 as the specimen sample is developed.
  • the sugar chain antigen is specifically captured by the capture antibody in the detection region 3 of the support 1, and the sugar chain antigen forms a complex by a specific reaction with the labeled antibody. To do.
  • an antibody sandwich via the sugar chain antigen is established in the detection region 3, and the labeled antibody-sugar chain antigen complex can be measured in the detection region 3.
  • the sugar chain antigen in the sample is extracted on the immunochromatographic test strip, the sugar chain antigen in the sample is extracted in advance before the measurement using the immunochromatographic test strip.
  • the sugar chain antigen in the sample can be measured in one step.
  • a biological sample to be a specimen is not particularly limited, and examples thereof include body fluids such as serum, plasma, blood, urine, feces, saliva, tissue fluid, spinal fluid, wiping fluid, and the like, or dilutions thereof.
  • the substance to be detected is a sugar chain antigen that can be measured by an immunoassay, that is, an assay utilizing an antigen-antibody reaction.
  • an immunoassay that is, an assay utilizing an antigen-antibody reaction.
  • the antigen include polysaccharides that are sugar chain antigens present on the cell walls of bacteria extracted by nitrite extraction treatment. Protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, viruses and the like containing these substances can also be measured.
  • the subject's biological sample contains sugar chain antigens derived from protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, virus, etc.
  • sugar chain antigens derived from protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, virus, etc.
  • a sugar chain antigen it can be determined that the subject is suffering from an infection caused by protozoa, fungi, bacteria, mycoplasma, rickettsia, chlamydia, viruses, and the like.
  • group A ⁇ -hemolytic streptococci Streptococcus pyogenes
  • Escherichia coli Legionella, Campylobacter, etc.
  • Example 1 Effects of the conventional method and the method of the present invention Immobilization of anti-Streptococcus pyogenes (Group A ⁇ -hemolytic streptococci) antibody on nitrocellulose membrane
  • An anti-Streptococcus pyogenes antibody was applied to the sample pad side of the nitrocellulose membrane lined with a film, and an anti-rabbit IgG antibody was applied to the absorption band side in a linear form. Thereafter, the nitrocellulose membrane was dried at 45 ° C. for 30 minutes to obtain an anti-Streptococcus pyogenes antibody-immobilized membrane.
  • This membrane is referred to as “antibody-immobilized membrane” in this example.
  • Anti-Streptococcus pyogenes antibody was diluted with purified water to 1.0 mg / mL, and colored polystyrene particles were added to this to 0.1%. After stirring, carbodiimide was added. Add to 1% and stir further. The supernatant was removed by centrifugation and resuspended in 50 mM Tris (pH 9.0) and 3% BSA to obtain a 0.04% anti-Streptococcus pyogenes antibody-bound colored polystyrene particle suspension. This particle is referred to as “antibody-immobilized particle” in this example.
  • test piece of the present invention Preparation of Streptococcus pyogenes test piece Antibody-immobilized membrane prepared in 1, dry pad prepared in 3, acid reagent and neutralizing reagent (basic reagent) impregnated filter paper prepared in 4, 5 other members (backing sheet, absorption band) ) And cut to a width of 5 mm to obtain a Streptococcus pyogenes test piece.
  • a test piece using an acid reagent and a neutralizing reagent (basic reagent) impregnated filter paper as a sample pad is referred to as a “test piece of the present invention” in this example.
  • the structure is as shown in FIG.
  • test pieces were prepared using filter paper on which nothing was applied in place of the acidic reagent and neutralizing reagent (basic reagent) impregnated filter paper prepared in 4 and 5, and were used as conventional examples.
  • a test piece using a filter paper to which nothing is applied as a sample pad is called a “conventional test piece”.
  • the test piece is from the upstream along the flow of the specimen, acidic reagent-impregnated nonwoven fabric, neutralizing reagent (basic reagent) -impregnated nonwoven fabric, dry pad (labeled body region), antibody-immobilized membrane (detection region), absorption It has a belt.
  • Sample Streptococcus pyogenes was cultured, and the culture solution was prepared with physiological saline to 1.0 ⁇ 10 7 CFU / mL and 0.25 ⁇ 10 7 CFU / mL.
  • physiological saline was used as a negative sample.
  • a method of floating a sample in a nitrous acid extraction solution in which sodium nitrite and acetic acid were mixed in advance which was a conventional method, was added to the conventional test piece.
  • malonic acid, malic acid, maleic acid, citric acid, and tartaric acid are present as powders at room temperature and are not volatile. Therefore, the coating amount is also applied in the drying process when producing an acidic reagent-impregnated nonwoven fabric. Since the nitrous acid extraction treatment can be performed without inferiority compared with the conventional method, the sensitivity was not significantly reduced. Furthermore, it was possible to measure with fewer operations compared with the conventional method. However, malonic acid and malic acid reacted with nitrous acid to color the immunochromatographic specimen, and maleic acid and citric acid caused a nonspecific reaction. Among them, tartaric acid was not colored on the immunochromatographic test piece, and sensitivity and specificity were not inferior compared with the conventional method.
  • Example 2 Examination of application amount of acidic reagent The application amount of the acidic reagent in Example 1 was changed, and the test results (Table 2) were compared and examined.

Abstract

本発明は、糖鎖抗原を特異的に測定することを可能にするイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法を提供することを目的とする。本発明は、検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域および前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に酒石酸を含浸させた領域を有するイムノクロマト試験片を用いてイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法であって、 検体を亜硝酸塩溶液と混合し、前記イムノクロマト試験片のサンプルパッドに添加することを含み、 酒石酸を含浸させた領域において、亜硝酸塩と酒石酸の反応により発生した亜硝酸の作用により検体から糖鎖抗原が抽出され、 中和試薬を含浸させた領域において、前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が中和され、 検出領域において、抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成される、 イムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法である。

Description

糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法
　本発明は、イムノクロマト試験片上で糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をすることが可能な、糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法に関する。
　糖鎖抗原の抽出方法として亜硝酸抽出法が知られている。この方法は主にＡ群β溶血性レンサ球菌、口腔内レンサ球菌等ストレプトコッカス属に属する微生物の糖鎖抗原の抽出に対して使用される。
　この亜硝酸抽出法は、菌体と亜硝酸水溶液を混合し、糖鎖抗原を露出させる方法であり、一般的な亜硝酸抽出法は、微生物を含む検体に亜硝酸ナトリウム水溶液と酢酸、塩酸等の酸性溶液とを混合することで亜硝酸を生成させた亜硝酸抽出液を混合し、微生物と該亜硝酸とを十分な時間反応させることにより実施される。上記の抽出液は強酸性であるので、反応後にトリス、水酸化ナトリウム等の塩基性溶液を添加し、抽出液を中和した後に分析するのが一般的である。
　一方、イムノクロマトを原理とする迅速診断薬の多くは、ウイルスまたは細菌感染症を迅速・簡便に測定し、治療方針を決定する一つの手段として広く使用されている。
　一般的なイムノクロマトを原理とする迅速診断薬は、検体を検体浮遊液に浮遊させた後、その浮遊液をイムノクロマト試験片に供給することで迅速・簡便に測定できる。
　それに対し、例えばＡ群β溶血性レンサ球菌の糖鎖抗原を測定する際は、予め亜硝酸塩溶液と酸性溶液の２液を測定直前に混合し亜硝酸抽出液を調製し、検体と混合する。すなわち、Ａ群β溶血性レンサ球菌と亜硝酸と反応させた後、塩基性水溶液で中和する。中和した抽出液をイムノクロマト試験片に供給する。
　この方法で用いる亜硝酸抽出液は長時間保存することができないため、亜硝酸塩溶液と酸溶液は試験直前に混合・調製をする必要がある。また、この亜硝酸抽出液はｐＨが低すぎて抗原抗体反応に支障をきたすことから、ある程度のｐＨまで中和する必要がある。
　しかし、２液を混合する工程とさらに中和する工程が増えることから、一般的なイムノクロマト法を原理とする迅速診断薬と比較して試薬がより多くなり、操作が煩雑になりやすくなる。そのため、既存の迅速診断試薬では、中和試薬をイムノクロマト試験片にあらかじめ含ませることにより、亜硝酸塩溶液と酸性溶液を混合する操作のみで検体処理が出来るよう工夫されている。しかし、依然として従来のイムノクロマト法を原理とした迅速診断試薬に比較し操作工程が多いことから、混合する液量の間違いや混合する溶液の取り違い、２液を混合せずに抽出する等、正しく操作されないことから、正確に測定できないという問題があった。
　上述のようにイムノクロマトを原理とする迅速診断薬において、誤った方法で操作された場合、その迅速性・簡便性が故に誤った診断・治療を促し、治療を遅らせ、患者に不利益が生じる場合もある。
　そこで、イムノクロマト試験片に予め亜硝酸ナトリウムと中和試薬を含ませることにより、検体を酢酸等の酸性溶液に浮遊してイムノクロマト試験片に供給する操作のみで亜硝酸抽出処理をイムノクロマト試験片上で行う方法が報告されている（特許文献１）。
　しかし、亜硝酸ナトリウムは毒物及び劇物取締法で劇物に指定され、消防法で危険物第1類に属し、さらに水質汚濁防止法で施行令第２条有害物質に指定されていることから、取り扱いの難しい薬品である。上記イムノクロマト試験片を製造するにあたっては、高濃度の亜硝酸ナトリウム水溶液をイムノクロマト試験片の部材に塗布した上で乾燥させる製造工程が必要であるが、その作業は危険が伴われる。
　そこで、亜硝酸ナトリウムではなく、酸性溶液を予めイムノクロマト試験片に含ませることが考えられるが、一般的に酸性溶液として使用される塩酸や酢酸では従来の予め２液を混合した亜硝酸抽出液で処理して中和する方法と比較して、著しく劣る性能しか示せなかった。また液状酸性試薬の代わりにクエン酸等の固形状酸性試薬を含浸したイムノクロマト試験片を用いる方法も存在するが（特許文献２）、長期の保存安定性に向かず、非特異的な反応が生じるなどの問題があった。
国際公開WO2005/121794号公報 特表2008-509384号公報
　本発明の目的は、亜硝酸抽出により糖鎖抗原を抽出する際に必要な酸性試薬と中和試薬を予めイムノクロマト試験片に含ませることにより、亜硝酸抽出の操作を簡便化し、かつ従来の亜硝酸抽出法と比較しても性能に遜色なく正確に、糖鎖抗原を特異的に測定することを可能にするイムノクロマト試験片及びそれを用いたイムノクロマト法を提供することである。
　本願発明者らは、鋭意研究の結果、塩酸や酢酸等の液状酸性試薬は乾燥状態のイムノクロマト試験片上では揮発して消失することから、イムノクロマト試験片上には定着せず、十分な亜硝酸抽出が行われないことに着目した。そこで、酒石酸、リンゴ酸、マロン酸、クエン酸等の固形状酸性試薬を用いることにより酸性試薬を乾燥状態のイムノクロマト試験片上でも揮発せずに定着させ、従来の予め亜硝酸ナトリウムと液状酸性試薬の２液を混合した亜硝酸抽出液で処理した後に中和する方法と比較して、迅速・簡便に測定でき、且つ性能も遜色なく測定することが可能であり、さらに上記固形状酸試薬のなかでも酒石酸を使用することで、十分に抗原を抽出でき、保存性が安定し、かつ非特異的な反応が生じにくいことを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、上流側からサンプルパッドと、標識体領域と、検出領域と、吸収帯とを具備するイムノクロマト試験片であって、標識体領域よりも上流に、固形状酸性試薬として酒石酸と中和試薬が含浸されているイムノクロマト試験片を提供する。また、本発明は、上記本発明のイムノクロマト試験片を用いて行うイムノクロマト法を提供する。
　本発明は以下のとおりである。
[１]　検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域および前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に酒石酸を含浸させた領域を有するイムノクロマト試験片を用いてイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法であって、
検体を亜硝酸塩溶液と混合し、前記イムノクロマト試験片のサンプルパッドに添加することを含み、
酒石酸を含浸させた領域において、亜硝酸塩と酒石酸の反応により発生した亜硝酸の作用により検体から糖鎖抗原が抽出され、
中和試薬を含浸させた領域において、前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が中和され、
検出領域において、抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成される、
イムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
[２]　酒石酸を含浸させた領域が、サンプルパッド上に存在する、[１]記載のイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
[３]　中和試薬が、トリスヒドロキシルメチルアミノメタンまたは水酸化ナトリウムである、[１]または[２]のイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
[４]　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジアまたはウイルスの糖鎖抗原である、[１]～[３]のいずれかのイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
[５]　検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域および前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に酒石酸を含浸させた領域を有する検体中の糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片。
[６]　酒石酸を含浸させた領域が、サンプルパッド上に存在する、[５]のイムノクロマト試験片。
[７]　中和試薬が、トリスヒドロキシルメチルアミノメタンまたは水酸化ナトリウムである、[５]または[６]のイムノクロマト試験片。
[８]　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジアまたはウイルスの糖鎖抗原である、[５]～[７]のいずれかのイムノクロマト試験片。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2016-115626号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
　本発明のイムノクロマト試験片によれば、従来の予め亜硝酸塩と液状酸性試薬の２液を混合した亜硝酸抽出液で処理した後に中和する方法と比較して、迅速・簡便に測定でき、且つ性能も遜色なく測定することが可能である。
酒石酸含浸領域および中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片（１枚パッド試験片）の構造を模式的に示す図である。 酒石酸含浸領域および中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片（２枚パッド試験片）の構造を模式的に示す図である。
　本発明は、糖鎖抗原の亜硝酸抽出処理をイムノクロマト試験片上で行えるように簡便化し、被検出物質である糖鎖抗原を迅速且つ正確に測定することを可能にするイムノクロマト試験片に係る。
　イムノクロマト試験片は、被検出物質（抗原等）を捕捉する抗体（抗体１）が固定化された検出領域を有する支持体、移動可能な標識抗体（抗体２）を有する標識体領域、検体を滴加するサンプルパッド、展開された検体液を吸収する吸収帯、これら部材を１つに貼り合わせるためのバッキングシート等を具備する。
　発明のイムノクロマト試験片は、格納容器内に収められていてもよく、該格納容器により、例えば紫外線や空気中の湿気による劣化を防ぐことができる。また、汚染性、感染性の有る検体試料を用いる場合、格納容器によりアッセイを行う試験者が汚染または感染するのを防止することができる。例えば適当な大きさの樹脂製ケースを格納容器として用い、該ケース中に本発明の装置を収納すればよい。また、抗原または抗体を固定化した試験片の表面を樹脂製フィルム等（トップラミネート）で覆ってもよい。格納容器とその中に納められた試験片を、一体としてイムノクロマトデバイスという場合がある。
　なお、検出領域の数および標識体領域に含まれる標識抗体の種類は１つに限られるものではなく、複数の被検出物質に対応する抗体を用いることで、２つ以上の抗原を同一の試験片にて測定することができる。
　支持体は、被検出物質（抗原）を捕捉するための抗体を固定化する性能を持つ材料であり、かつ液体が水平方向に通行することを妨げない性能を持つ。好ましくは、毛細管作用を有する多孔性薄膜であり、液体およびそれに分散した成分を吸収により輸送可能な材料である。支持体を成す材質は特に限定されるものではなく、例えばセルロース、ニトロセルロース、セルロースアセテート、ポリビニリデンジフルオライド（ＰＶＤＦ）、ガラス繊維、ナイロン、ポリケトンなどが挙げられる。このうちニトロセルロースを用いて薄膜としたものがより好ましい。抗体を固定化したメンブレンを抗体固定化メンブレンと呼ぶ。
　標識体領域は、標識抗体を含む多孔性基材から成り、基材の材質は一般的に用いられているガラス繊維や不織布等を用いることができる。該基材は、多量の標識抗体を含浸させるために、厚さ0.3mm～0.6mm程度のパッド状であることが好ましい。標識抗体を含浸させ乾燥させた多孔性基材を乾燥パッドとも呼ぶ。
　標識抗体の標識には、アルカリフォスファターゼや西洋ワサビペルオキシダーゼのような酵素、金コロイドのような金属コロイド、シリカ粒子、セルロース粒子、着色ポリスチレン粒子および着色ラテックス粒子等が用いられることが多い。金属コロイド粒子、着色ポリスチレン粒子や着色ラテックス粒子等の着色粒子を用いる場合には、これらの標識試薬が凝集することによって着色が生じるので、この着色を測定する。抗体を固定化した粒子を抗体固定化粒子と呼ぶ。
　検出領域は、被検出物質（抗原）を捕捉する抗体が固定化された支持体の一部の領域を指す。検出領域は、抗原を捕捉するための抗体を固定化した領域を少なくとも１つ設ける。検出領域は支持体に含まれていればよく、支持体上に抗体を固定化すればよい。
　サンプルパッドは、検体を滴加するための部位であり、多孔性材料である。サンプルパッドはイムノクロマト試験片の最も上流にある部位である。該材料には一般的に用いられるろ紙、ガラス繊維、不織布等を用いることができる。多量の検体を免疫測定に用いるために、厚さ0.3mm～1mm程度のパッド状であることが好ましい。検体には、検体を他の溶液に浮遊して得られる試料等、検体を用いて調製された試料も含む。
　吸収帯は、支持体に供給され検出領域で反応に関与しなかった成分を吸収するための部材である。該材料には、一般的な天然高分子化合物、合成高分子化合物等からなる保水性の高いろ紙、スポンジ等を用いることができるが、検体の展開促進のためには吸水性が高いものが好ましい。
　バッキングシートは、前述の全ての材料、すなわち支持体、サンプルパッド、標識体領域、吸収帯らが、部分的な重なりをもって貼付・固定されるための部材である。バッキングシートは、これら材料らが最適な間隔で配置・固定されるのであれば、必ずしも必要ではないが、製造上あるいは使用上の利便性から、一般的には用いた方が好ましい。
　本発明のイムノクロマトグラフィー装置には、さらに対照表示領域(部材）が存在していてもよい。対照表示領域は試験が正確に実施されたことを示す部位である。例えば、対照表示領域は、検出領域の下流に存在し、検体試料が検出領域を通過し、対照表示領域に到達したときに着色等によりシグナルを発する。対照表示領域には、標識担体を結合させた抗体に結合する物質を固相化しておいてもよいし、検体が到達したときに色が変化するpHインジケーター等の試薬を固相化しておいてもよい。標識担体を結合させた抗体がマウスモノクローナル抗体の場合、抗マウスIgG抗体を用いればよい。
　上記の形態の試験片において、検体は、サンプルパッド、標識体領域、支持体、検出領域、吸収帯らの一連の接続により形成された多孔性流路を通過する。よって本形態においては、これら全てが検体移動領域となる。各構成材料の材質や形態によって、検体が材料内部を浸透せず界面を通行する形態もありうるが、本明細書で定義する検体移動領域は材料の内部か界面かを問わないため、該形態の試験片も本明細書の範囲に含まれる。
　本発明のイムノクロマト試験片では、標識体領域よりも上流（検体の流れの上流でありサンプルパッドが存在する側）に、すなわち、サンプルパッド内またはサンプルパッドと標識体領域との間に、固形状酸性試薬と中和試薬が含浸されている。これにより、被検試料中の被検出物質を被検試料の試験に供される量によらず、正確に、特異的に測定することが可能になる。
　本発明で用いられる固形状酸性試薬は常温において固形状のものであり、高温において揮発しない性質を持ち、かつイムノクロマト試験片上で着色されないような試薬、具体的には乾燥状態で白色または乾燥熱や酸化で着色されにくい試薬が好ましい。
　また、抗原抽出能という観点では、価数の多い酸を用いればより少ない量で抽出できる。また同じ価数ならより酸解離定数が小さい試薬の方が効率良く抗原を抽出できる。
　これら特性を持つ固形状酸性試薬としては、酒石酸、マロン酸、リンゴ酸、マレイン酸、クエン酸等を挙げることができるが、本発明において上記特性を全て有し、かつ液状酸性試薬と同等の抗原抽出能を有する固形状酸性試薬は酒石酸のみである。
　本発明に用いられる酒石酸の使用量、すなわちイムノクロマト試験片に含浸させる量は、特に限定されないが、通常、イムノクロマト試験片の一試験片あたり0.01μg～1mg程度であり、好ましくは0.1μg～0.1mg程度である。もっとも、検体浮遊液の組成や滴加量などにより効果が得られる最適な量を選択することが好ましい。
　酒石酸をサンプルパッドまたは多孔性材料に含浸させるには、酒石酸を一度溶解させて塗布し乾燥させる。
　本発明に用いられる中和試薬は常温において固形状のものであり、高温において揮発しないものである。
　本発明に用いられる好ましい中和試薬としては、トリス（トリスヒドロキシルメチルアミノメタン）、水酸化ナトリウム、リン酸水素二カリウム、クエン酸三ナトリウム、アルカリ領域に緩衝能をもつグッドバッファーを挙げることができる。
　本発明に用いられる中和試薬の使用量、すなわちイムノクロマト試験片に含浸させる量は、特に限定されないが、通常、イムノクロマト試験片の一試験片あたり0.01μg～1mg程度であり、好ましくは0.1μg～0.1mg程度である。もっとも、使用する中和試薬の種類、検体浮遊液の組成や滴加量などにより効果が得られる最適な量を選択することが好ましい。
　中和試薬をサンプルパッドまたは多孔性材料に含浸させるには、中和試薬を一度溶解させて、溶液をサンプルバッドまたは多孔性材料に塗布し、その後乾燥させればよい。
　酒石酸を含浸させた領域を酒石酸含浸領域と呼び、中和試薬を含浸させた領域を中和試薬領域または塩基性試薬領域と呼ぶ。
酒石酸は、サンプルパッドに含浸させてもよいし、サンプルパッドとは別の不織布等の多孔性材料に含浸させて、得られた酒石酸含浸多孔性材料を、サンプルパッドと標識体領域との間、すなわち標識体領域の上流側に配置してもよい。ここで、酒石酸含浸領域とサンプルパッドまたは標識体領域は接触していても、いなくてもよい。
　前記中和試薬領域は、酒石酸含浸領域よりも下流に配置する。中和試薬は、支持体に含浸させてもよいし、支持体とは別の不織布等の多孔性材料に含浸させて、得られた中和試薬含浸多孔性材料を、酒石酸含浸領域と標識体領域との間に配置してもよい。すなわち、標識体領域の上流に中和試薬領域を有し、さらに中和試薬領域の上流に酒石酸含浸領域を有する。ここで、中和試薬領域と酒石酸含浸領域または標識体領域は接触していても、いなくてもよい。
　酒石酸含浸領域と中和試薬領域を有するイムノクロマト試験片は、支持体上に上流からサンプルパット、酒石酸含浸領域、中和試薬領域、標識体領域、検出領域及び吸収帯を有し、酒石酸含浸領域はサンプルパッド上にあってもよい。また、サンプルパット、酒石酸含浸領域、中和試薬領域、標識体領域、検出領域及び吸収帯は、隣合う領域どうしで接触していても、いなくてもよい。さらに、酒石酸含浸領域、中和試薬領域、標識体領域は必ずしも別々の多孔性材料に含浸する必要はなく、複数または全ての領域を同一の多孔性材料に含浸されていてもよい。
　図１および図２は、典型的なイムノクロマト試験片の好ましい１形態を示した図である。なお、イムノクロマト試験片は、図１および図２に示すものに限定されるものではない。図１および図２中、１が支持体、２が標識体領域、３が検出領域、４がサンプルパッド、７が吸収帯、８がバッキングシートを指している。また、試験片全体の上にトップラミネートを貼り付けてもよい。
　図１および図２の上が上面図、下が切断断面図である。図１の例では、樹脂等でできたバッキングシート８上に１個の検出領域３が形成された支持体１、吸収帯７、標識体領域２、サンプルパッド４等がそれぞれ積層されている。そして図１に示すように、吸収帯７の一方の端部と支持体１の一方の端部、支持体１の他方の端部と標識体領域２の一方の端部、標識体領域２の他方の端部とサンプルパッド４の一方の端部がそれぞれ重ね合わされており、サンプルパッド４の上流部に酒石酸が含浸された酒石酸含浸領域５、少し間を離してサンプルバッドの下流部に中和試薬領域６が存在する。この試験片においては、サンプルパッドが酒石酸含浸領域５および中和試薬領域６を兼ねている。すなわち、酒石酸含浸領域５および中和試薬領域６がサンプルパッド上に存在する。この試験片においては、酒石酸含浸領域および中和試薬領域６が１枚の多孔性材料（パッド）状に設けられているので、１枚パッド試験片と呼ぶことがある。図２の例では、標識体領域２の上流に酒石酸含浸領域５および／または中和試薬領域６が存在し、これらが重ね合わされており、これにより連続したラテラルフローの流路が形成されている。図２に示す試験片においては、酒石酸含浸領域５がサンプルパッドを兼ねている。すなわち、酒石酸含浸領域５がサンプルパッド上に存在する。この試験片においては、酒石酸含浸領域５および中和試薬領域６が別々の２枚の多孔性材料（パッド）状に設けられているので、２枚パッド試験片と呼ぶことがある。酒石酸含浸領域５の上流にさらにサンプルパッドが存在してもよい。また、図２に示す試験片では、酒石酸含浸領域５および中和試薬領域６は異なる多孔性材料に含浸させているが、図１の試験片のサンプルパッドのように同じ多孔性材料（パッド）上の上流部に酒石酸含浸領域５を設け、下流部に中和試薬領域６を設けてもよい。
　図１の形態に基づき、本発明の試験片の使用方法について述べる。測定は、検体または検体を用いて調製された試料を亜硝酸塩溶液と接触混合させ、検体を亜硝酸塩溶液に浮遊させ、サンプルパッドに添加して供することにより開始される。この際、検体5～100μLと0.1M～8Mの亜硝酸塩0.01～2mLを混合し、5～200μLをサンプルバッドに供すればよい。亜硝酸塩として、亜硝酸ナトリウム、亜硝酸カリウム等が挙げられる。
　サンプルパッド４に供された被検出物質である糖鎖抗原を含む検体は毛管作用によって、サンプルパッド４上の酒石酸含浸領域５および中和試薬領域６へ展開され、さらに、標識体領域２、支持体１、吸収帯７へと順次、水平方向に展開される。酒石酸含浸領域５において、検体に混合した亜硝酸塩と酒石酸含浸領域５上の酒石酸が反応し、遊離の亜硝酸が発生し、その亜硝酸の作用によって検体から糖鎖抗原が抽出される。抽出された糖鎖抗原は酸性の展開溶液と共に中和試薬領域６に展開移動し、中和試薬領域６で糖鎖抗原を含む酸性の展開溶液のpHが中和され中性域に調整される。その結果、糖鎖抗原は中性条件下においてさらに下流に展開移動する。標識体領域２では検体試料の展開と共に標識抗体が液中に放出され支持体１へと展開される。検体試料中に糖鎖抗原が存在する場合において、支持体１の検出領域３では捕捉抗体により糖鎖抗原が特異的に捕捉され、なおかつ糖鎖抗原は標識抗体とも特異的反応により複合体を形成する。これにより検出領域３では糖鎖抗原を介した抗体のサンドイッチが成立し、標識抗体－糖鎖抗原複合物を検出領域３にて測定することができる。
　本発明のイムノクロマト試験片を用いた方法によれば、検体中の糖鎖抗原の抽出はイムノクロマト試験片上で行われるため、イムノクロマト試験片を用いた測定の前にあらかじめ検体中の糖鎖抗原を抽出する必要はなく、１ステップで検体中の糖鎖抗原を測定することができる。
　本発明の方法において、検体となる生体試料は、特に限定されないが、血清、血漿、血液、尿、便、唾液、組織液、髄液、拭い液等の体液等またはその希釈物が挙げられる。
　本発明のイムノクロマト試験片を用いた方法において、測定対象となる被検出物質はイムノアッセイ、すなわち抗原抗体反応を利用したアッセイで測定し得る糖鎖抗原である。抗原としては亜硝酸抽出処理によって抽出される細菌の細胞壁に存在する糖鎖抗原である多糖体等が挙げられる。これらの物質を含む原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等も測定し得る。本発明のイムノクロマト試験片を用いた方法により、被験体の生体試料中に原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等に由来する糖鎖抗原が含まれているか否かを確認することができ、糖鎖抗原が含まれている場合、被験体は原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジア、ウイルス等による感染症に罹患していると判断することができる。例えば、Ａ群β溶血性レンサ球菌（Streptococcus pyogenes）、大腸菌、レジオネラ、カンピロバクター等の感染の有無を検出することができる。
　以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
実施例１：従来法と本発明法による効果
１．抗Streptococcus pyogenes（Ａ群β溶血性レンサ球菌）抗体のニトロセルロースメンブレンへの固定化
　抗Streptococcus pyogenes抗体を1.0mg/mLになるように精製水で希釈した液及び抗ウサギIgG抗体を準備し、PETフィルムで裏打ちされたニトロセルロースメンブレンのサンプルパッド側に抗Streptococcus pyogenes抗体、吸収帯側に抗ウサギIgG抗体をそれぞれ線状に塗布した。その後、ニトロセルロースメンブレンを45℃、30分間乾燥させ、抗Streptococcus pyogenes抗体固定化メンブレンを得た。このメンブレンを本実施例において、「抗体固定化メンブレン」と呼ぶ。
２．抗Streptococcus pyogenes抗体の着色ポリスチレン粒子への固定化
　抗Streptococcus pyogenes抗体を1.0mg/mLになるように精製水で希釈し、これに着色ポリスチレン粒子を0.1％になるように加え、攪拌後、カルボジイミドを1％になるように加え、さらに攪拌する。遠心操作により上清を除き、50mM Tris（pH9.0）、3％BSAに再浮遊し、0.04％抗Streptococcus pyogenes抗体結合着色ポリスチレン粒子浮遊液を得た。この粒子を、本実施例において、「抗体固定化粒子」と呼ぶ。
３．抗Streptococcus pyogenes抗体結合着色ポリスチレン粒子の塗布・乾燥
　２で作製した抗体固定化粒子浮遊液を不織布に所定量を塗布し、45℃、30分間乾燥させた。得られた不織布を、本実施例において、「乾燥パッド」と呼ぶ。
４．中和試薬（塩基性試薬）の塗布
　中和試薬（塩基性試薬）として、2Mトリス（Trizma Base）を15μL/cmで濾紙の一端に塗布した。
５．酸性試薬含浸不織布の作製
　中和試薬を塗布した濾紙のもう一端に酸性試薬として、1M塩酸、1M酢酸、1Mマロン酸、1Mリンゴ酸、1Mマレイン酸、1Mクエン酸、1M酒石酸を3.75μLずつ塗布した。塗布後に直ちに45℃、１時間、乾燥して、酸性試薬含浸不織布を得た。
６．Streptococcus pyogenes試験片の作製
　１で作製した抗体固定化メンブレン、３で作製した乾燥パッド、４、５で作製した酸性試薬及び中和試薬（塩基性試薬）含浸濾紙を他部材（バッキングシート、吸収帯）と貼り合せて５ｍｍ幅に切断し、Streptococcus pyogenes試験片とした。酸性試薬及び中和試薬（塩基性試薬）含浸濾紙をサンプルパッドとして用いた試験片を本実施例において、「本発明試験片」と呼ぶ。構造は図２に示すとおりである。４、５で作製した酸性試薬及び中和試薬（塩基性試薬）含浸濾紙の替わりに何も塗布していない濾紙を用いて同様の試験片を作製し、従来例として使用した。何も塗布していない濾紙をサンプルパッドとして用いた試験片を「従来法試験片」と呼ぶ。なお、試験片は、検体の流れに沿って、上流から、酸性試薬含浸不織布、中和試薬（塩基性試薬）含浸不織布、乾燥パッド（標識体領域）、抗体固定化メンブレン（検出領域）、吸収帯を具備するものである。
７. 検体
　Streptococcus pyogenesを培養し、培養液を生理食塩水で菌数1.0×107CFU/mLと0.25×107CFU/mLに調製した。
　また、陰性検体として、生理食塩水を用いた。
８．　測定
　検体20μLを亜硝酸ナトリウム溶液（2M NaNO2）180μLに浮遊し、そのうち75μLを本発明試験片に滴加した。また、従来法として亜硝酸ナトリウムと塩酸を混合した亜硝酸抽出液に検体を浮遊した後、トリス溶液で中和した検体浮遊液を従来法試験片に50μＬ滴加した。５分後に抗Streptococcus pyogenes抗体を固定化した所定位置上の着色ポリスチレン粒子の堆積の有無とその程度を目視判定にて行った。その線状の堆積の程度が強いものを順に＋＋＋、＋＋、＋とし、判定が難しい場合を±、堆積がみられなかったものを－とした。
　また比較例として、従来法である予め亜硝酸ナトリウムと酢酸を混合した亜硝酸抽出溶液に検体を浮遊した後、中和した検体を従来法試験片に滴加する方法も実施した。
９. 結果
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１に示されるように、従来法と比較して酸性試薬として塩酸、酢酸はStreptococcus pyogenesの検出感度が著しく低下した。これは、塩酸及び酢酸は揮発する性質を持つことから、酸性試薬含浸不織布を作成する際の乾燥工程において揮発することにより塗布量が減り、その結果、亜硝酸抽出処理ができなかったためと考えられる。
　一方、マロン酸、リンゴ酸、マレイン酸、クエン酸、酒石酸はそれぞれ常温では粉末状として存在するものであり、揮発性がないことから、酸性試薬含浸不織布を作製する際の乾燥工程においても塗布量が減ることなく、従来法と比較しても遜色なく亜硝酸抽出処理ができることから、感度が大幅に低下することは無かった。さらに従来法と比較して少ない操作で測定できた。しかしマロン酸やリンゴ酸は亜硝酸と反応してイムノクロマト試験片が着色してしまい、マレイン酸とクエン酸は非特異的な反応が生じた。その中で酒石酸はイムノクロマト試験片に着色せず、感度・特異性ともに従来法と比較しても遜色なかった。
実施例２：酸性試薬の塗布量の検討
　実施例１における酸性試薬の塗布量を変え、試験結果（表２）を比較検討した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表２に示されるように、塗布量が1.875μL以下の塗布量では感度が低下する傾向が見られた。また、3.75μL以上に塗布しても感度が大幅に上がる傾向は見られなかった。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
　１　支持体（検出領域を含む）
　２　標識体領域
　３　検出領域
　４　サンプルパッド
　５　酒石酸含浸領域
　６　中和試薬領域
　７　吸収帯
　８　バッキングシート

Claims (8)

  1. 　検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域および前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に酒石酸を含浸させた領域を有するイムノクロマト試験片を用いてイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法であって、
    検体を亜硝酸塩溶液と混合し、前記イムノクロマト試験片のサンプルパッドに添加することを含み、
    酒石酸を含浸させた領域において、亜硝酸塩と酒石酸の反応により発生した亜硝酸の作用により検体から糖鎖抗原が抽出され、
    中和試薬を含浸させた領域において、前記糖鎖抗原を含む酸性溶液が中和され、
    検出領域において、抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成される、
    イムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
  2. 　酒石酸を含浸させた領域が、サンプルパッド上もしくは、標識体領域が塗布されたパッド上に存在する、請求項１記載のイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
  3. 　中和試薬が、トリスヒドロキシルメチルアミノメタンまたは水酸化ナトリウムである、請求項１または２に記載のイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
  4. 　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジアまたはウイルスの糖鎖抗原である、請求項１～３のいずれか１項に記載のイムノクロマト法により検体中の糖鎖抗原を測定する方法。
  5. 　検体を添加するサンプルパッド、糖鎖抗原に対する抗体を標識した標識抗体を含む標識体領域および前記糖鎖抗原に対する抗体を固相化した検出領域を含み、検出領域において抗体-糖鎖抗原-標識抗体の複合体を形成させ、糖鎖抗原を測定するイムノクロマト試験片であって、前記標識体領域の上流に中和試薬を含浸させた領域を有し、さらに該中和試薬を含浸させた領域の上流に酒石酸を含浸させた領域を有する検体中の糖鎖抗原を抽出し測定するためのイムノクロマト試験片。
  6. 　酒石酸を含浸させた領域が、サンプルパッド上もしくは、標識体領域が塗布されたパッド上に存在する、請求項５記載のイムノクロマト試験片。
  7. 　中和試薬が、トリスヒドロキシルメチルアミノメタンまたは水酸化ナトリウムである、請求項５または６に記載のイムノクロマト試験片。
  8. 　糖鎖抗原が、原生動物、真菌、細菌、マイコプラズマ、リケッチア、クラミジアまたはウイルスの糖鎖抗原である、請求項５～７のいずれか１項に記載のイムノクロマト試験片。
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