INHIBITEURS SELECTIFS DU TRANSPORTEUR BCRP/ABCG2 UTILISES COMME AGENTS POUR ABOLIR LA RESISTANCE AUX ANTICANCEREUX
La présente invention porte sur de nouveaux composés, leur procédé d’obtention et leur utilisation comme inhibiteur de BCRP/ABCG2.
Ces nouveaux composés organiques appartiennent tous à une même famille chimique dérivant d’un composé naturel : la chromone.
Ils ont pour principal but d’inhiber de façon sélective la protéine BCRP (Breast Cancer Resistance Protein) appelée aussi ABCG2 qui est impliquée dans les phénomènes de multirésistances des tumeurs aux agents anticancéreux (Multidrug Resistance). BCRP agit comme une pompe d’efflux et se trouve surexprimée dans les membranes des cellules tumorales. Ces composés agissent comme des inhibiteurs sélectifs et non cytotoxiques de BCRP/
ABCG2.
Enfin, ces composés présentent une meilleure activité inhibitrice et une meilleure sélectivité tout en étant moins cytotoxiques que le Ko143, le composé de référence, tout en ayant une synthèse organique nettement plus simple. En clinique, ces composés peuvent être utilisés comme adjuvants en combinaison avec des médicaments anticancéreux afin de potentialiser l’effet de ces derniers et contrecarrer la résistance des tumeurs aux traitements visant à les éradiquer.
Selon l’OMS, le cancer est la seconde cause de mortalité dans le monde en causant près de 9,6 millions de décès par an. Le coût annuel des traitements mis en place pour contrer cette maladie a été évalué à 1160 milliards de dollars en 2010. A l’heure actuelle il existe trois principales stratégies permettant de traiter un cancer en fonction de son stade de développement ainsi que son type : 1) la chirurgie, 2) la radiothérapie et 3) la chimiothérapie. A noter que ces stratégies peuvent être utilisées en complément de l’une ou de l’autre pour une complémentarité dans l’efficacité générale du traitement.
Cependant, en chimiothérapie, l’utilisation répétée d’un même agent anticancéreux provoque une réaction de protection et de défense de la cellule tumorale contre celui-ci. Malheureusement cela va aussi induire une insensibilité de la tumeur à toute une large gamme d’anticancéreux rendant alors la chimiothérapie inefficace et accroissant les atteintes chez le patient. L’une des défenses mises en place par les cellules tumorales inclut la surexpression dans la membrane cellulaire de protéines transmembranaires appelées transporteurs ATP-Binding Cassette (ABC). (Borst, P.; Elferink, R. O. Mammalian ABC Transporters in Health and Disease.
Annu. Rev. Biochem.
2002,
71 (1), 537–592. Linton, K. J. Structure and Function of ABC Transporters.
Physiology
2007,
22 (2), 122–130. Sharom, F. J. ABC Multidrug Transporters: Structure, Function and Role in Chemoresistance.
Pharmacogenomics
2008,
9 (1), 105–127.)
Trois des 48 protéines transmembranaires de cette superfamille ont été clairement identifiées pour tenir un rôle prépondérant dans l’échec de la chimiothérapie : P-gp/
ABCB1, MRP1/
ABCC1 et BCRP/
ABCG2. (Leslie, E. M.; Deeley, R. G.; Cole, S. P. C. Multidrug Resistance Proteins: Role of P-Glycoprotein, MRP1, MRP2, and BCRP (ABCG2) in Tissue Defense.
Toxicol. Appl. Pharmacol.
2005,
204 (3), 216–237. Eckford, P. D. W.; Sharom, F. J. ABC Efflux Pump-Based Resistance to Chemotherapy Drugs.
Chem. Rev.
2009,
109 (7), 2989–3011.)
Ils permettent le transport d’une large classe de composés chimiques et sont présents naturellement dans la plupart des membranes cellulaires et barrières physiologiques de notre corps. De ce fait leur rôle physiologique chez une personne saine est de défendre et protéger les organelles et tissus des agents exogènes et/ou xénobiotiques. Néanmoins il a été montré que ces transporteurs ABC modifient drastiquement l’absorption, la distribution, la métabolisation et l’élimination des principes actifs. (Sharom, F. J. ABC Multidrug Transporters: Structure, Function and Role in Chemoresistance.
Pharmacogenomics
2008,
9 (1), 105–127.)
L’ensemble de ces fonctions font de ces trois transporteurs des cibles thérapeutiques valides, originales et de premier ordre dans la recherche d’une solution thérapeutique viable pour supprimer les problèmes de chimiorésistance. (Bugde, P.; Biswas, R.; Merien, F.; Lu, J.; Liu, D.-X.; Chen, M.; Zhou, S.; Li, Y. The Therapeutic Potential of Targeting ABC Transporters to Combat Multi-Drug Resistance.
Expert Opin. Ther. Targets
2017,
21 (5), 511–530.)
Le Ko143 est une molécule organique polycyclique, contenant 3 centres asymétriques, utilisée aujourd’hui comme inhibiteur de référence sur BCRP en recherche. Cependant sa synthèse optimisée en 5 étapes se révèle fastidieuse avec un rendement global de 5% et le contrôle des 3 centres asymétriques reste un paramètre limitant. (Li, Y.; Hayman, E.; Plesescu, M.; Prakash, S. R. Synthesis of Potent BCRP Inhibitor— Ko143.
Tetrahedron Lett.
2008,
49 (9), 1480–1483.)
Malgré une bonne activité (Concentration 50% inhibitrice, IC50 = 0,09 μM ± 0,01), ce composé présente une solubilité relativement faible imputant alors sa biodisponibilité. Il a été montré lors d’études cliniques que le Ko143 est rapidement métabolisé (60 min.) via l’hydrolyse de son ester tertiobutylique, produisant un métabolite inactif. (Liu, K.; Zhu, J.; Huang, Y.; Li, C.; Lu, J.; Sachar, M.; Li, S.; Ma, X. Metabolism of KO143, an ABCG2 Inhibitor.
Drug Metab. Pharmacokinet.
2017,
32 (4), 193–200.) De ce constat, les études cliniques ont été stoppées. Enfin, ce composé présenté comme sélectif de BCRP au départ, s’est finalement révélé non sélectif d’ABCG2. (Weidner, L. D.; Zoghbi, S. S.; Lu, S.; Shukla, S.; Ambudkar, S. V.; Pike, V. W.; Mulder, J.; Gottesman, M. M.; Innis, R. B.; Hall, M. D. The Inhibitor Ko143 Is Not Specific for ABCG2.
J. Pharmacol. Exp. Ther.
2015,
354 (3), 384–393. Allen, J. D.; van Loevezijn, A.; Lakhai, J. M.; van der Valk, M.; van Tellingen, O.; Reid, G.; Schellens, J. H. M.; Koomen, G.-J.; Schinkel, A. H. Potent and Specific Inhibition of the Breast Cancer Resistance Protein Multidrug Transporter in Vitro and in Mouse Intestine by a Novel Analogue of Fumitremorgin C.
Mol. Cancer Ther.
2002,
1 (6), 417.)
Les présents demandeurs ont développé par le passé un inhibiteur, appelé MBL-II-141 sélectif, non toxique et avec une bonne activité sur des modèles précliniques. (Honorat, M.; Guitton, J.; Gauthier, C.; Bouard, C.; Lecerf-Schmidt, F.; Peres, B.; Terreux, R.; Gervot, H.; Rioufol, C.; Boumendjel, A.; et al. MBL-II-141, a Chromone Derivative, Enhances Irinotecan (CPT-11) Anticancer Efficiency in ABCG2-Positive Xenografts.
Oncotarget
2014,
5 (23), 11957–11970. Hénin, E.; Honorat, M.; Guitton, J.; Di Pietro, A.; Payen, L.; Tod, M. Pharmacokinetic Interactions in Mice between Irinotecan and MBL-II-141, an ABCG2 Inhibitor: Irinotecan MBLI-II-141 Interaction.
Biopharm. Drug Dispos.
2017. Valdameri, G.; Genoux-Bastide, E.; Peres, B.; Gauthier, C.; Guitton, J.; Terreux, R.; Winnischofer, S. M. B.; Rocha, M. E. M.; Boumendjel, A.; Di Pietro, A. Substituted Chromones as Highly Potent Nontoxic Inhibitors, Specific for the Breast Cancer Resistance Protein.
J. Med. Chem.
2012,
55 (2), 966–970. Lecerf-Schmidt, F.; Peres, B.; Valdameri, G.; Gauthier, C.; Winter, E.; Payen, L.; Di Pietro, A.; Boumendjel, A. ABCG2: Recent Discovery of Potent and Highly Selective Inhibitors.
Future Med. Chem.
2013,
5 (9), 1037–1045. Winter, E.; Lecerf-Schmidt, F.; Gozzi, G.; Peres, B.; Lightbody, M.; Gauthier, C.; Ozvegy- Laczka, C.; Szakacs, G.; Sarkadi, B.; Creczynski-Pasa, T. B.; et al. Structure–Activity Relationships of Chromone Derivatives toward the Mechanism of Interaction with and Inhibition of Breast Cancer Resistance Protein ABCG2.
J. Med. Chem.
2013,
56 (24), 9849– 9860. Pires, A. do R. A.; Lecerf-Schmidt, F.; Guragossian, N.; Pazinato, J.; Gozzi, G. J.; Winter, E.; Valdameri, G.; Veale, A.; Boumendjel, A.; Di Pietro, A.; et al. New, Highly Potent and Non- Toxic, Chromone Inhibitors of the Human Breast Cancer Resistance Protein ABCG2.
Eur. J. Med. Chem.
2016,
122, 291–301.). Les composés utilisés comme des intermédiaires de synthèse dans cette dernière publication ont maintenant été découverts comme étant des inhibiteurs de la protéine de résistance multi-drogues du cancer du sein (Breast Cancer Resistance Protein BCRP/ABCG2).
Les problèmes de chimiorésistances sont en constante augmentation à cause d’un manque de rapidité du renouvellement d’agent anticancéreux sur le marché. Afin de contrer le manque de nouveaux agents anticancéreux, se positionner à la source du problème de résistance est une solution viable et économique. En effet, supprimer la capacité des cellules tumorales de se protéger et se défendre permet de préserver l’efficacité des anticancéreux actuels et limiter leur dose active, ce qui du même coup limite leurs effets indésirables et le coût général d’une chimiothérapie pour le patient et la société. De plus il serait intéressant de trouver de nouveaux composés encore plus efficaces que le MBL-II-141 et que le Ko143.
La présente invention porte sur des composés de formule (I) :
(I)
ou énantiomère, sel ou solvate pharmaceutiquement acceptable de ce composé, ou un mélange de ceux-ci,
formule dans laquelle :
- le noyau A est non substitué ou substitué en position 2, 3, 4, 5 par un ou deux parmi F; Cl; Br; I; OR, avec R = Me, Et, Pr, i-Pr, n-Bu; O-CH
2-(O-CH
2CH
2)
n-O-CH
3, avec n = 3, 4, 5, 6,
- Z est
- Y = -OH; -OMe; -OEt; -OPr; -NH
2; -NHMe; -N(Me)
2; -N(Me)OCH
3; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) ; -NH-CH(R
3)-COR
2, avec R
2 choisi parmi :
-OH; -OMe; -OEt; -OPr; -NH
2; -NHMe; -N(Me)
2; -N(Me)OCH
3; 3-(5-méthoxy)indolyl; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-méthoxy)indolyl),
dans la formule (I) et R
3 du substituant -NH-CH(R
3)-COR
2 de Y sont indépendamment choisis parmi :H ou
à l’exception des composés avec simultanément Br en position 4 du noyau A, R
1 = CH(CH
3)
2 ou CH
2CH(CH
3)
2 ou CH(CH
3)CH
2CH
3 , Z =
En particulier, le noyau A peut être substitué en position 2, 3, 4, 5 par un ou deux Br et Y = -OH; -OMe; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) ; -NH-CH(R
3)-COR
2, R
1, R
2 et R
3 étant tels que définis ci-dessus.
Dans un mode de réalisation particulier, Y est -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl) ou -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) à condition que :
En particulier, les composés selon l’invention peuvent être choisis parmi :
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-leucinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-valinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophanate de méthyle ;
la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucine ;
la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine ;
la (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophane ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle ;
le (S)-5-((2-bromobenzyl)oxy)-N-(1-((2-(5-hydroxy-1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide ;
le (S)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide ; et
le (R)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-3-(1H-indol-3-yl)-1-oxopropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide.
La présente invention porte également sur un procédé d’obtention des composés selon l’invention, caractérisé par le fait qu’il comprend les étapes :
(a) on fait réagir un composé alkylant de formule
, le noyau A étant tel que défini à la revendication 1, et X représentant un halogène choisi parmi F, Cl, Br et I, sur la 2,6-dihydroxyacétophénone de formule
, à la température de reflux de l’acétone et dans l’acétone afin d’obtenir l’intermédiaire de formule
[Cham. 14]
(b) on fait réagir l’intermédiaire obtenu à l’étape (a), avec l’oxalate de diéthyle de formule
, à la température de 0°C - 50°C et dans un mélange tétrahydrofurane (THF)/éthanol (1:1) afin d’obtenir l’intermédiaire de formule
(c) on fait réagir l’intermédiaire obtenu à l’étape (b), par une réaction d’hydrolyse de la fonction ester à la température de 50°C, en milieu acide ou basique, dans un solvant THF/éthanol/eau (3:1:1,5) afin d’obtenir l’intermédiaire de formule
(d) on fait réagir l’intermédiaire obtenu à l’étape (c) avec un composé de couplage de formule
, R
1, Z et Y étant tels que définis à la revendication 1, à la température ambiante, dans le DMF anhydre, pour former une liaison amide afin d’obtenir le composé de formule (I).
La présente invention porte également sur un composé de formule (I) :
(I)
ou énantiomère, sel ou solvate pharmaceutiquement acceptable de ce composé, ou un mélange de ceux-ci,
formule dans laquelle :
- le noyau A est non substitué ou substitué en position 2, 3, 4, 5 par un ou deux parmi F; Cl; Br; I; OR, avec R = Me, Et, Pr, i-Pr, n-Bu; O-CH
2-(O-CH
2CH
2)
n-O-CH
3, avec n = 3, 4, 5, 6,
- Z est
- Y = -OH; -OMe; -OEt; -OPr; -NH
2; -NHMe; -N(Me)
2; -N(Me)OCH
3; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) ; -NH-CH(R
3)-COR
2, avec R
2 choisi parmi :
-OH; -OMe; -OEt; -OPr; -NH
2; -NHMe; -N(Me)
2; -N(Me)OCH
3; 3-(5-méthoxy)indolyl; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-méthoxy)indolyl),
pour son utilisation dans l’inhibition de la protéine de résistance multi-drogues du cancer du sein (Breast Cancer Resistance Protein BCRP/ABCG2).
L’inhibition de la protéine de résistance multi-drogues du cancer du sein (Breast Cancer Resistance Protein, BCRP/ABCG2), en plus de son rôle dans le traitement du cancer du sein, peut également permettre la re-sensibilisation des cellules tumorales et l’amélioration des propriétés pharmacocinétiques et l’efficacité de médicaments nécessitant un passage des membranes ou barrières physiologiques comme la barrière hémato-encéphalique ou la barrière gastro-intestinale, pour présenter leurs activités thérapeutiques.
En particulier, le noyau A peut être substitué en position 2, 3, 4, 5 par un ou deux Br et Y = -OH; -OMe; -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl); -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) ; -NH-CH(R
3)-COR
2, R
1, R
2 et R
3 étant tels que définis ci-dessus.
Dans un mode de réalisation particulier, Y est -NH-(CH
2)
2-(3-indolyl) ou -NH(CH
2)
2-3-((5-hydroxy)indolyl) à condition que :
Les composés pour l’utilisation dans l’inhibition de la protéine de résistance multi-drogues du cancer du sein (Breast Cancer Resistance Protein BCRP/ABCG2) selon l’invention peuvent être choisis parmi :
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucinate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-leucinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-valinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophanate de méthyle ;
la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucine ;
la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine ;
la (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophane ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle ;
le (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle ;
le (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle ;
le (S)-5-((2-bromobenzyl)oxy)-N-(1-((2-(5-hydroxy-1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide ;
le (S)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide, et
le (R)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-3-(1H-indol-3-yl)-1-oxopropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide.
La présente invention porte également sur une composition pharmaceutique comprenant :
- au moins un agent actif pharmaceutiquement acceptable ; et
- au moins un composé tel que défini ci-dessus.
En particulier, que l’agent actif pharmaceutiquement acceptable peut être choisi parmi les agents anti-cancéreux, les agents anti-inflammatoires intestinaux, les agents hypocholestérolémiants, les agents anti-dyslipidémiques et les inhibiteurs de kinase.
Par exemple, comme agent anti-inflammatoire intestinal, on peut citer la Sulphasalazine, comme agent hypocholestérolémiant, on peut citer l’Atorvastatine, comme agent anti-dyslipidémique, on peut citer la Rosuvastatine, comme agent anti-cancéreux ou inhibiteur de kinase, on peut citer le mésylate d’imatinib.
Ces composés qui peuvent se distinguer par la présence d’un acide aminé naturel ou l’énantiomère d’un acide aminé naturel lié à une unité chromone ont été synthétisés en 4 étapes à partir de la 2,6-dihydroxyacétophénone
1 commerciale (Schéma 1) avec un rendement global compris entre 13 et 41 %. L’accès à l’intermédiaire
2 se fait en trois étapes usuelles : alkylation, réaction de Kostaneki et saponification, avec un rendement global de 45 %. La dernière étape est réalisée via une réaction de couplage, par exemple un couplage peptidique lorsqu’un acide aminé naturel ou l’énantiomère d’un acide aminé naturel est lié à l’unité chromone, assistée par un agent de couplage facilitant la réaction et limitant le nombre d’équivalents de réactifs.
Les réactifs sont peu onéreux et sont classiquement utilisés en laboratoire. De plus, les réactions sont peu énergivores et la purification des produits par précipitation ou recristallisation limite le volume de solvants organiques utilisés et donc les déchets. Enfin les composés ont été isolés purs et leurs structures ont été établies et vérifiées par différentes techniques d’analyse (RMN, spectrométrie de masse, diffraction des rayons X). A noter que la diffraction par rayons X permet de confirmer qu’il n’y a aucune racémisation du centre asymétrique de l’acide aminé commercial.
Schéma 1: Voie de synthèse des inhibiteurs de BCRP de l’invention.
Les exemples suivants illustrent la présente invention sans toutefois en limiter la portée.
Dans ces exemples :
Les spectres de RMN ont été enregistrés sur un instrument Bruker Avance-400 de 400 MHz (400 MHz) ou sur un instrument Bruker Avance-500 de 500 MHz (500 MHz).
Les déplacements chimiques (δ) ont été rapportés en ppm par rapport à Me
4Si utilisé comme étalon interne.
Les spectres de masse avec ionisation par électronébulisation (ESI) ont été acquis par le Département Analytique de l’Université de Grenoble sur un instrument Waters Xevo G2-S Q TOF avec une entrée de nanonébulisation. La masse exacte a été donnée en m/z.
Les analyses par HPLC ont été effectuées avec un système série Agilent 1100 utilisant un détecteur à barrettes de diodes et une colonne phase inverse C18 (Nucleosil C18, Macherey-Nagel, dimension de particule de 5 mm, 125 mm x 3 mm) à 45°C, avec une phase mobile composée de A : eau et acide trifluoroacétique (TFA) à 0,1 % et B : méthanol (MeOH) et TFA à 0,1 % avec un gradient A :B de 85:15 à 0:100 en l’espace de 14 min, 1 mL/min, injection de 10 µL, détection à 254 nm.
Les points de fusion (p.f.) exprimés en degrés Celsius (°C) ont été obtenus sur un point de fusion Büchi B540.
La chromatographie sur couche mince (CCM) a été réalisée sur des plaques de gel de silice F-254 de Merck (épaisseur de 0,25 mm).
Sauf indication contraire, les réactifs ont été obtenus à partir de sources commerciales (Alpha Aesar, Sigma-Aldrich et TCI) et ont été utilisés sans nouvelle purification.
EXEMPLES 1 à 20
Série 1
Note : Dans les protocoles suivants, le « numéro de la molécule + a » désigne lorsque le brome se situe en position 2 du cycle aromatique tandis que le « numéro de la molécule + b » désigne lorsque le brome se situe en position 4 du cycle aromatique.
Mode opératoire général A :
A une solution de 2,6-dihydroxyacétophénone
1 (1 équiv) dans l’acétone (6 mL/mmol) on a ajouté simultanément K
2CO
3 (3 équiv) et du bromure de tétra-
n-butylammonium (0,4 équiv) préalablement homogénéisés ensemble.
La solution a été portée au reflux pendant 30 à 60 min avant l’addition en goutte à goutte de bromure de bromobenzyle correspondant (1 équiv) dans l’acétone (15 mL/mmol).
Ensuite, la solution a été portée au reflux pendant 4 à 5 heures et contrôlée par CCM (acétate d’éthyle/cyclohexane 3:7). La solution a été versée dans l’eau et extraite par de l’acétate d’éthyle. Les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec de l’eau et de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et évaporées sous vide.
Mode opératoire général B :
A une solution de
2 (1 équiv) dans du THF anhydre (10 mL/mmol) on a ajouté une solution d’éthanolate de sodium généré
in situ à partir de sodium (6 équiv) dans l’éthanol anhydre (15 mL/mmol) à 0°C et sous atmosphère inerte.
La solution a été agitée pendant 30 min à la température ambiante et de l’oxalate de diéthyle (4 équiv) a été ajouté goutte à goutte à la solution. Ensuite, la solution a été réchauffée jusqu’à 50°C jusqu’à précipitation, puis portée au reflux pendant 2 heures. La réaction a été contrôlée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 1:1).
Ensuite, quelques gouttes d’acide chlorhydrique concentré (37 %) ont été ajoutées à la solution jusqu’à ce que le précipité formé devienne blanc.
La solution a été portée au reflux pendant 1 heure avant d’être refroidie jusqu’à la température ambiante. Après concentration sous vide, la solution a été versée dans l’eau et extraite par de l’acétate d’éthyle. Les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec de l’eau et de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et évaporées sous vide.
Mode opératoire général C :
A une solution de
3 (1 équiv) dans le THF (25 mL/mmol) et l’éthanol (8 mL/mmol) on a ajouté une solution de K
2CO
3 (1,3 équiv) dans l’eau (12 mL/mmol).
La solution a été réchauffée à 50°C pendant 4 heures et contrôlée par CCM (acétate d’éthyle/cyclohexane 1:1). La solution a été concentrée sous vide puis a été versée dans l’eau basique (K
2CO
3 20 %) et lavée avec de l’acétate d’éthyle. La phase aqueuse basique a été acidifiée par de l’acide chlorhydrique concentré (37 %) puis extraite avec de l’acétate d’éthyle.
Ensuite, les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec de l’eau et de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et évaporées.
Mode opératoire général D :
A une solution de dérivé acide carboxylique
4 (1 équiv) dans le diméthylformamide (DMF) anhydre (20 mL/mmol) on a ajouté du tétrafluoroborate de 2-(1H-benzotriazole-1-yl)-1,1,3,3-tétraméthylaminium
(TBTU) (2 équiv). La solution a été agitée pendant 30 minutes à la température ambiante.
Ensuite, une solution de dérivé d’acide aminé (2 équiv) dans le DMF (10 mL/mmol) en présence de N, N-diisopropyléthylamine (DIEA) (4 équiv) a été ajoutée soigneusement au précédent. La réaction a été agitée pendant 12 ou 24 heures à la température ambiante et contrôlée par CCM (acétate d’éthyle/cyclohexane 1:1). La solution a été concentrée sous vide puis a été versée dans de l’eau acidifiée (HCl 1M) et extraite par de l’acétate d’éthyle.
Les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec une solution de NaHCO
3 (20 %), de l’eau et de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et concentrées sous vide.
Mode opération général E :
A une solution de dérivé ester
5 (1 équiv) dans le THF (25 mL/mmol) et le méthanol (10 mL/mmol) on a ajouté une solution de LiOH (1,5 équiv) dans H
2O (10 mL/mmol). La réaction a été agitée pendant 2 heures à la température ambiante et contrôlée par CCM (acétate d’éthyle/cyclohexane 1:1).
La solution a été versée dans de l’eau basifiée (NaHCO
3 20 %) et lavée par de l’acétate d’éthyle. La phase aqueuse a été acidifiée par de l’acide chlorhydrique concentré (37 %) et extraite par de l’acétate d’éthyle.
Ensuite, les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et concentrées sous vide.
EXEMPLE 1
Préparation de la
1-(2-((2-bromobenzyl)oxy)-6-hydroxyphényl)éthan-1-one (
2a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général A en partant de
1 (1,500 g, 9,86 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol ou l’acétate d’éthyle pour obtenir
2a (2,583 g, 82 %).C
15H
13BrO
3.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 11,69 (s, 1H), 7,71 (dd,
J = 8,0, 1,1 Hz, 1H), 7,61 (dd,
J = 7,6, 1,6 Hz, 1H), 7,46 (td,
J = 7,5, 1,2 Hz, 1H), 7,39 – 7,29 (m, 2H), 6,67 (dd,
J = 8,4, 0,5 Hz, 1H), 6,56 (dd,
J = 8,3, 0,7 Hz, 1H), 5,19 (s, 2H), 2,47 (s, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 203,38, 159,60, 157,95, 135,31, 133,90, 132,72, 130,64, 130,41, 128,00, 123,04, 114,62, 109,83, 103,19, 70,02, 32,86.
p.f.: 75,5 – 77,4 °C.
MS (ESI) m/z 321 (
79Br), 323 (
81Br) [M+H]
+, 319 (
79Br), 321 (
81Br) [M-H]
+.
EXEMPLE 2
Préparation de la
1-(2-((4-bromobenzyl)oxy)-6-hydroxyphényl)éthan-1-one (
2b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général A en partant de
1 (1,500 g, 9,86 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans l’acétate d’éthyle pour obtenir
2b (2,321, 73 %).C
15H
13BrO
3.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 11,64 (s, 1H), 7,62 – 7,58 (m, 2H), 7,45 – 7,41 (m, 2H), 7,30 (t,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,62 (dd,
J = 8,4, 0,5 Hz, 1H), 6,52 (dd,
J = 8,3, 0,7 Hz, 1H), 5,14 (s, 2H), 2,48 (s, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 203,43, 159,52, 157,94, 135,96, 133,77, 131,41, 129,98, 121,15, 114,75, 109,63, 103,41, 69,30, 33,04.
p.f.: 114,8 – 116,8 °C.
MS (ESI) m/z 320 (
79Br), 322 (
81Br) [M]
+.
EXEMPLE 3
Préparation du 5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylate d’éthyle (
3a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général B en partant de
2a (2,583 g, 8,04 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol ou l’acétate d’éthyle pour obtenir
3a (2,478, 76 %).C
19H
15BrO
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,11 (dd,
J = 7,7, 1,4 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,68 (dd,
J = 8,0, 1,0 Hz, 1H), 7,51 (td,
J = 7,6, 1,1 Hz, 1H), 7,33 (td,
J = 7,8, 1,7 Hz, 1H), 7,30 – 7,25 (m, 1H), 7,18 – 7,13 (m, 1H), 6,79 (s, 1H), 5,23 (s, 2H), 4,40 (q,
J = 7,1 Hz, 2H), 1,36 (t,
J = 7,1 Hz, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,40, 172,49, 160,01, 158,25, 157,43, 150,24, 135,70, 135,44, 132,17, 129,57, 129,12, 127,85, 121,05, 115,43, 114,62, 110,78, 108,85, 69,72, 62,61, 13,87.
p.f.: 155,3 – 157,1 °C.
MS (ESI) m/z 403 (
79Br), 405 (
81Br) [M-H]
+.
EXEMPLE 4
Préparation du 5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylate d’éthyle (
3
b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général B en partant de
2b (1,718 g, 5,35 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol ou l’acétate d’éthyle pour obtenir
3b (1,516, 70 %).C
19H
15BrO
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 7,74 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,64 – 7,56 (m, 4H), 7,25 – 7,21 (m, 1H), 7,13 – 7,08 (m, 1H), 6,77 (s, 1H), 5,24 (s, 2H), 4,38 (q,
J = 7,1 Hz, 2H), 1,34 (t,
J = 7,1 Hz, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,39, 160,01, 157,70, 157,23, 150,19, 136,23, 135,29, 131,21, 128,90, 120,61, 115,43, 114,68, 110,54, 109,02, 69,22, 62,59, 13,87.
p.f.: 148,0 – 149,4 °C.
MS (ESI) m/z 402 (
79Br), 404 (
81Br) [M]
+.
EXEMPLE 5
Préparation de l’acide 5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylique (
4a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général C en partant de
3a (1,000 g, 2,48 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le méthanol puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour obtenir
4a (0,777, 84 %). Le produit désiré peut aussi être obtenu cristallin en le recristallisant dans le méthanol. C
17H
11BrO
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,14 (dd,
J = 7,7, 1,1 Hz, 1H), 7,77 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,68 (dd,
J = 8,0, 0,9 Hz, 1H), 7,51 (td,
J = 7,6, 0,9 Hz, 1H), 7,32 (td,
J = 7,8, 1,5 Hz, 1H), 7,26 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,13 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,74 (s, 1H), 5,23 (s, 2H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,70, 161,44, 157,42, 157,36, 151,31, 135,75, 135,24, 132,13, 129,52, 129,13, 127,82, 121,01, 115,17, 114,63, 110,80, 108,71, 69,71.
p.f.: 244,3 °C.
MS (ESI) m/z 373 (
79Br), 375 (
81Br) [M-H]
-.
EXEMPLE 6
Préparation de l’acide 5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylique (
4b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général C en partant de
3b (1,586 g, 3,93 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le méthanol puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour obtenir
4b (1,259, 85 %). Il est possible de faire cristalliser le produit désiré dans le méthanol pour obtenir des cristaux blancs. C
17H
11BrO
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 7,76 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,66 – 7,59 (m, 4H), 7,24 (dd,
J = 8,4, 0,7 Hz, 1H), 7,14 – 7,10 (m, 1H), 6,76 (s, 1H), 5,27 (s, 2H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,69, 161,44, 157,69, 157,35, 151,15, 136,27, 135,14, 131,20, 128,89, 120,58, 115,21, 114,69, 110,58, 108,93, 69,23.
p.f.: 204,6 – 205,3 °C.
MS (ESI) m/z 374 (
79Br), 376 (
81Br) [M]
+.
EXEMPLE 7
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucinate de méthyle
(5a)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4a (511 mg, 1,36 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique d’isoleucine (0,485g, 2,72 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour obtenir
5a (0,352 g, 51 %).C
24H
24BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,23 (d,
J = 7,7 Hz, 1H), 8,14 (d,
J = 7,4 Hz, 1H), 7,82 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,69 (d,
J = 7,9 Hz, 1H), 7,52 (t,
J = 7,4 Hz, 1H), 7,40 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,33 (t,
J = 7,3 Hz, 1H), 7,17 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,74 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,39 (t,
J = 7,7 Hz, 1H), 3,70 (s, 3H), 2,10 – 1,99 (m, 1H), 1,60 – 1,48 (m,
J = 11,6, 5,8 Hz, 1H), 1,33 – 1,23 (m, 1H), 0,97 – 0,86 (m, 6H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,44, 171,41, 159,61, 157,38, 157,05, 152,97, 135,76, 135,11, 132,17, 129,56, 129,14, 127,85, 121,04, 114,49, 112,75, 111,09, 108,81, 69,70, 57,26, 51,90, 35,48, 25,09, 15,37, 10,77.
p.f.: 123,1 – 125,7 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
24H
25BrNO
6 (M+H
+) : 502,0865,
trouvé : 502,0860.
Pureté (HPLC) > 95 %.
EXEMPLE 8
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucinate de méthyle
(5b)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4b ((300 mg, 0,80 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-isoleucine (290 mg, 1,60 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5b (318 mg, 79 %).C
24H
24BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,17 (d,
J = 7,9 Hz, 1H), 7,77 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,64 – 7,56 (m, 4H), 7,34 (dd,
J = 8,5, 0,7 Hz, 1H), 7,12 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 6,70 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,37 (t,
J = 7,7 Hz, 1H), 3,68 (s, 3H), 2,07 – 1,96 (m, 1H), 1,58 – 1,45 (m, 1H), 1,32 – 1,19 (m, 1H), 0,95 – 0,84 (m, 6H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,41, 171,40, 159,62, 157,63, 157,04, 152,91, 136,29, 134,95, 131,21, 128,92, 120,59, 114,54, 112,73, 110,86, 108,99, 69,19, 57,24, 51,88, 35,48, 25,09, 15,37, 10,77.
EXEMPLE 9
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-leucinate de méthyle
(5c)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4a (500 mg, 1,33 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-leucine (0,483 g, 2,66 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5c (234 mg, 35 %).C
24H
24BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, CDCl
3) δ 8,13 (d,
J = 7,4 Hz, 1H), 7,57 (t,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,48 (d,
J = 7,9 Hz, 1H), 7,38 (t,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,18 – 7,05 (m, 3H), 6,98 (s, 1H), 6,90 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 5,18 (s, 2H), 4,82 – 4,73 (m, 1H), 3,74 (s, 3H), 1,80 – 1,60 (m, 3H), 0,99 – 0,87 (m, 6H).
RMN 13 C (101 MHz, CDCl
3) δ 177,52, 172,93, 159,05, 158,46, 157,33, 152,34, 135,55, 134,74, 132,10, 129,07, 128,79, 128,12, 120,82, 115,42, 114,21, 110,63, 108,66, 70,38, 52,73, 51,14, 41,81, 25,02, 22,82, 22,05.
p.f.: 60,3 – 60,4 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
24H
25BrNO
6 (M+H
+) : 502,0865,
trouvé : 502,0865.
Pureté (HPLC) > 98 %.
EXEMPLE 10
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-valinate de méthyle
(5d)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4a (0,200 g, 0,53 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-valine (0,179 g, 1,07 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5d (0,126 g, 48 %).C
23H
22BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,20 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 8,12 (d,
J = 7,4 Hz, 1H), 7,82 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,69 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 7,51 (t,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,39 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,33 (t,
J = 7,4 Hz, 1H), 7,16 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,74 (s, 1H), 5,24 (s, 2H), 4,33 (t,
J = 7,7 Hz, 1H), 3,70 (s, 3H), 2,32 – 2,19 (m, 1H), 1,06 – 0,92 (m, 6H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,42, 171,34, 159,69, 157,41, 157,07, 153,03, 135,76, 135,09, 132,17, 129,57, 129,18, 127,84, 121,07, 114,53, 112,74, 111,10, 108,88, 69,76, 58,56, 51,90, 29,46, 19,04, 18,95.
p.f.: 127,0 – 128,2 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
23H
23BrNO
6 (M+H
+) : 488,0709,
trouvé : 488,0719.
Pureté (HPLC) > 98 %.
EXEMPLE 11
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle
(5e)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4a (0,194 g, 0,52 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-phénylalanine (0,223 g, 1,04 mmol) et on l’a purifié par précipitation dans le diéthyl éther et le cyclohexane pour obtenir
5e (0,187 g, 70 %).C
27H
22BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,47 (s, 1H), 8,13 (dd,
J = 7,7, 1,5 Hz, 1H), 7,82 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,68 (dd,
J = 8,0, 1,1 Hz, 1H), 7,51 (td,
J = 7,6, 1,1 Hz, 1H), 7,35 – 7,27 (m, 6H), 7,25 – 7,19 (m, 1H), 7,16 (d,
J = 8,0 Hz, 1H), 6,64 (s, 1H), 5,24 (s, 2H), 4,77 – 4,71 (m, 1H), 3,69 (s, 3H), 3,26 (dd,
J = 13,8, 5,4 Hz, 1H), 3,21 – 3,13 (m, 1H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,33, 171,26, 159,21, 157,42, 156,95, 152,77, 137,22, 135,74, 135,24, 132,15, 129,54, 129,11, 129,06, 128,31, 127,84, 126,62, 121,01, 114,43, 112,57, 110,82, 108,85, 69,69, 54,13, 52,20, 35,93, 30,67.
p.f.: 145,5 - 147,5 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
27H
23BrNO
6 (M+H
+) : 536,0709,
trouvé : 536,0711.
Pureté (HPLC) > 97 %.
EXEMPLE 12
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalaninate de méthyle
(5f)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4b (0,472 g, 1,26 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-phénylalanine (0,453 g, 2,52 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5f (0,551 g, 90 %).C
27H
22BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,43 (d,
J = 7,9 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,68 – 7,54 (m, 4H), 7,30 (d,
J = 12,6 Hz, 5H), 7,23 (d,
J = 6,1 Hz, 1H), 7,13 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,63 (s, 1H), 5,26 (s, 2H), 4,73 (dd,
J = 13,5, 9,1 Hz, 1H), 3,68 (s, 3H), 3,26 (dd,
J = 13,8, 5,2 Hz, 1H), 3,16 (dd,
J = 13,6, 10,3 Hz, 1H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,31, 171,22, 159,22, 157,68, 156,94, 152,71, 137,20, 136,26, 135,08, 131,20, 129,05, 128,91, 128,31, 126,62, 120,59, 114,50, 112,56, 110,60, 109,06, 69,21, 54,10, 52,20, 35,93.
Point de décomposition : 153,1 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
27H
23BrNO
6 (M+H
+) : 536,0709,
trouvé : 536,0704.
Pureté (HPLC) > 96 %.
EXEMPLE 13
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle
(5g)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4a (0,100 g, 0,27 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-tryptophane (0,136 g, 0,53 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5g (0,043 g, 28 %).C
29H
23BrN
2O
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,89 (s, 2H), 9,36 (d,
J = 7,8 Hz, 2H), 8,12 (d,
J = 7,7 Hz, 2H), 7,83 (t,
J = 8,4 Hz, 2H), 7,69 (dd,
J = 8,0, 0,9 Hz, 2H), 7,62 (d,
J = 7,8 Hz, 2H), 7,51 (td,
J = 7,5, 0,9 Hz, 2H), 7,39 – 7,28 (m, 6H), 7,25 (d,
J = 2,2 Hz, 2H), 7,17 (d,
J = 8,3 Hz, 2H), 7,07 (td,
J = 7,7, 0,9 Hz, 2H), 6,98 (t,
J = 7,4 Hz, 2H), 6,65 (s, 2H), 5,24 (s, 4H), 4,80 – 4,70 (m, 2H), 3,69 (s, 7H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,36, 171,52, 159,18, 157,43, 156,95, 152,81, 136,09, 135,74, 135,21, 132,17, 129,57, 129,15, 127,85, 127,03, 123,79, 121,05, 121,02, 118,44, 118,04, 114,43, 112,55, 111,48, 110,83, 109,47, 108,89, 69,73, 53,80, 52,19, 26,38. Deux signaux de proton sous le pic de l’eau.
p.f.: 250 – 252,8 °C.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
29H
24BrN
2O
6 (M+H
+) : 575,0818,
trouvé : 575,0821.
Pureté(HPLC) > 99 %.
EXEMPLE 14
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-tryptophanate de méthyle
(5h)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4b (0,100 g, 0,27 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de L-tryptophane (0,136 g, 0,533 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
5h (0,126 g, 82 %).C
29H
23BrN
2O
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,90 (s, 1H), 9,34 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,69 – 7,52 (m, 5H), 7,35 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,29 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,25 (d,
J = 2,2 Hz, 1H), 7,12 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,10 – 7,03 (m, 1H), 7,02 – 6,94 (m, 1H), 6,63 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,80 – 4,69 (m, 1H), 3,68 (s, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,34, 171,50, 159,19, 157,67, 156,92, 152,76, 136,25, 136,10, 135,04, 131,20, 128,92, 127,03, 123,78, 121,02, 120,59, 118,44, 118,04, 114,48, 112,54, 111,48, 110,61, 109,47, 109,06, 69,23, 53,79, 52,18, 26,39. Deux signaux de proton sous le pic de l’eau.
p.f.: 235,3 – 236,2 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
29H
24BrN
2O
6 (M+H
+) : 575,0818,
trouvé :575,0807.
Pureté(HPLC) > 99 %.
EXEMPLE 15
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophanate de méthyle
(5i)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général D en partant de
4b (0,300 g, 0,80 mmol) et du chlorhydrate d’ester méthylique de D-tryptophane (0,408 g, 1,60 mmol) et on l’a purifié par précipitation dans l’acétate d’éthyle et le cyclohexane pour fournir
5i (0,375 g, 81 %).C
29H
23BrN
2O
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,90 (s, 1H), 9,34 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,66 – 7,57 (m, 5H), 7,35 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,29 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,25 (d,
J = 2,1 Hz, 1H), 7,12 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,07 (t,
J = 7,2 Hz, 1H), 6,98 (t,
J = 7,4 Hz, 1H), 6,63 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,79 – 4,70 (m, 1H), 3,69 (s, 3H), 3,43 – 3,38 (m, 1H), 3,33 – 3,27 (m, 1H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,33, 171,51, 159,18, 157,67, 156,93, 152,75, 136,26, 136,10, 135,04, 131,20, 128,91, 127,03, 123,78, 121,01, 120,59, 118,43, 118,04, 114,48, 112,54, 111,48, 110,60, 109,47, 109,04, 69,21, 53,79, 52,18, 26,38.
p.f.: 236,2 – 237,9 °C.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
29H
24BrN
2O
6 (M+H
+) : 575,0818,
trouvé : 575,0822.
Pureté (HPLC) > 99 %.
EXEMPLE 16
Préparation de la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucine
(6a)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général E en partant de
5a (0,256 g, 0,51 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
6a (0,114 g, 46 %).C
23H
22BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,99 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 8,14 (d,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,82 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,69 (dd,
J = 7,9, 0,8 Hz, 1H), 7,52 (td,
J = 7,6, 0,8 Hz, 1H), 7,41 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,33 (td,
J = 7,8, 1,5 Hz, 1H), 7,17 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 6,73 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,39 – 4,31 (m, 1H), 2,08 – 1,98 (m, 1H), 1,61 – 1,48 (m, 1H), 1,35 – 1,23 (m, 1H), 0,97 (d,
J = 6,8 Hz, 3H), 0,90 (t,
J = 7,4 Hz, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,46, 172,23, 159,43, 157,39, 157,06, 153,18, 135,76, 135,07, 132,16, 129,57, 129,16, 127,84, 121,06, 114,49, 112,64, 111,12, 108,84, 69,73, 57,21, 35,62, 25,04, 15,52, 10,96.
p.f.: 242,8 – 243,7 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
23H
23BrNO
6 (M+H
+) : 488,0709,
trouvé : 488,0712.
Pureté (HPLC) > 98 %.
EXEMPLE 17
Préparation de la (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonyl)-L-alloisoleucine
(6b)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général E en partant de
5b (671 mg, 0,51 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
6b (419 mg, 64 %).C
23H
22BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 12,91 (s, 1H), 8,98 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,78 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,67 – 7,57 (m, 4H), 7,37 (dd,
J = 8,5, 0,6 Hz, 1H), 7,13 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 6,72 (s, 1H), 5,26 (s, 2H), 4,40 – 4,29 (m, 1H), 2,07 – 1,96 (m, 1H), 1,61 – 1,45 (m, 1H), 1,38 – 1,20 (m, 1H), 0,96 (d,
J = 6,8 Hz, 3H), 0,90 (t,
J = 7,4 Hz, 3H). (ERO1-94)
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,44, 172,23, 159,44, 157,63, 157,04, 153,12, 136,28, 134,91, 131,20, 128,93, 120,59, 114,54, 112,63, 110,89, 108,99, 69,21, 57,19, 35,63, 25,04, 15,52, 10,96.
p.f.: 230,1 – 230,4 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
23H
23BrNO
6 (M+H
+) : 488,0709,
trouvé :488,0715.
Pureté (HPLC) > 98 %.
EXEMPLE 18
Préparation de la (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine
(6c)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général E en partant de
5e (0,320 g, 0,60 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
6c (0,210 g, 67 %).C
26H
20BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 9,29 (d,
J = 8,2 Hz, 2H), 8,11 (dd,
J = 7,6, 1,0 Hz, 2H), 7,82 (t,
J = 8,4 Hz, 2H), 7,68 (dd,
J = 7,9, 0,8 Hz, 2H), 7,50 (td,
J = 7,6, 0,9 Hz, 2H), 7,37 – 7,25 (m, 11H), 7,24 – 7,10 (m, 4H), 6,63 (s, 2H), 5,23 (s, 4H), 4,72 – 4,58 (m, 2H), 3,14 (dd,
J = 13,8, 10,3 Hz, 5H). Un pic sous le signal de l’eau.
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,37, 172,20, 159,04, 157,44, 156,96, 153,00, 137,72, 135,73, 135,20, 132,16, 129,57, 129,17, 129,02, 128,25, 127,83, 126,47, 121,06, 114,45, 112,43, 110,85, 108,91, 69,75, 54,18, 36,01.
p.f.: 240,4 – 241,7 °C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
26H
21BrNO
6 (M+H
+) : 522,0552,
trouvé : 522,0558
EXEMPLE 19
Préparation de la (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-phénylalanine
(6d)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général E en partant de
5f (0,551 g, 1,03 mmol) et on l’a purifié par recristallisation dans le méthanol pour fournir
6d (0,446 g, 83 %).C
26H
20BrNO
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,51 (d,
J = 6,8 Hz, 1H), 7,72 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,66 – 7,57 (m, 4H), 7,24 – 7,16 (m, 5H), 7,16 – 7,07 (m, 2H), 6,62 (s, 1H), 5,24 (s, 2H), 4,24 (dd,
J = 11,0, 5,9 Hz, 1H), 3,26 (dd,
J = 13,5, 4,6 Hz, 1H), 3,11 (dd,
J = 13,5, 6,8 Hz, 1H). (ERO1-71)
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,35, 172,19, 159,11, 157,67, 156,94, 152,89, 137,66, 136,26, 135,06, 131,20, 129,02, 128,91, 128,27, 126,50, 120,58, 114,47, 112,44, 110,62, 109,04, 69,21, 54,08, 35,94.
Point de décomposition : 231,5°C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
26H
21BrNO
6 (M+H
+) : 522,0552,
trouvé : 522,0559.
Pureté (HPLC) > 95 %.
EXEMPLE 20
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-D-tryptophane
(6e)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général E en partant de
5i (0,250 g, 0,27 mmol) et on l’a purifié par précipitation dans l’acétate d’éthyle et le cyclohexane pour fournir
6e (0,158 g, 66 %).C
28H
21BrN
2O
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,87 (d,
J = 1,4 Hz, 1H), 9,18 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,69 – 7,56 (m, 5H), 7,34 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,29 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,24 (d,
J = 2,2 Hz, 1H), 7,13 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,10 – 7,04 (m, 1H), 7,01 – 6,95 (m, 1H), 6,63 (s, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,73 – 4,65 (m, 1H). Deux signaux sous le pic de l’eau.
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,37, 172,52, 159,06, 157,66, 156,92, 152,92, 136,26, 136,08, 135,04, 131,20, 128,91, 127,09, 123,66, 120,98, 120,58, 118,39, 118,16, 114,44, 112,42, 111,43, 110,59, 109,93, 109,00, 69,18, 53,73, 26,37. Deux signaux de proton sous le pic de l’eau.
p.f.: 185,5 – 186,7 °C.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
28H
22BrN
2O
6 (M+H
+) : 561,0661,
trouvé : 561,0672.
Pureté (HPLC) > 99 %.
EXEMPLES 21 à 27
Série 2
Note : Dans les protocoles suivants, le « numéro de la molécule + a » désigne lorsque le brome se situe en position 2 du cycle aromatique tandis que le « numéro de la molécule + b » désigne lorsque le brome se situe en position 4 du cycle aromatique.
Note: même schéma de synthèse que la série 1 jusqu’à l’étape
e
. Seule l’étape
f
permettant l’accès aux composés
7
est différente.
Mode opératoire général F :
A une solution de dérivé acide carboxylique
6 (1 équiv) dans le DMF anhydre (20 mL/mmol) on a ajouté du TBTU (1,5 équiv ou 2 équiv). La solution a été agitée pendant 30 minutes à la température ambiante. Ainsi, une solution de dérivé d’acide aminé (1,5 or 2 équiv) dans le DMF (10 mL/mmol) en présence de DIEA (5 équiv) a été ajoutée soigneusement à la précédente. La réaction a été agitée pendant 24h à la température ambiante et contrôlée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 3:2). La solution a été versée dans de l’eau acidifiée (HCl 1M) et extraite par de l’acétate d’éthyle. Les phases organiques ont été rassemblées et ont été lavées avec une solution de NaHCO
3 à 20 % et de la saumure avant d’être séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et évaporée sous vide.
EXEMPLE 21
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle
(7a)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6a (0,091 g, 0,19 mmol), de l’ester méthylique de L-valine (0,064 g, 0,38 mmol) et on l’a purifié par précipitation dans l’acétate d’éthyle et une quantité minimale de cyclohexane, puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour fournir
7a (0,042 g, 37 %).C
29H
33BrN
2O
7.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,79 (d,
J = 8,4 Hz, 0,5H), 8,60 – 8,50 (m, 1H), 8,45 (d,
J = 7,2 Hz, 0,5H), 8,13 (d,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,81 (t,
J = 8,0 Hz, 1H), 7,69 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 7,52 (t,
J = 7,3 Hz, 1H), 7,40 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,33 (t,
J = 7,3 Hz, 1H), 7,16 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 6,72 (d,
J = 5,0 Hz, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,73 – 4,65 (m, 0,5H), 4,54 – 4,45 (m, 0,5H), 4,27 – 4,21 (m, 0,5H), 4,21 – 4,14 (m, 0,5H), 3,65 (d,
J = 4,7 Hz, 3H), 2,13 – 1,92 (m, 2H), 1,64 – 1,47 (m, 1H), 1,28 – 1,14 (m, 1H), 1,04 – 0,70 (m, 12H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 172,31, 171,91, 171,88, 157,84, 157,83, 157,82, 157,51, 157,49, 157,46, 157,43, 157,42, 153,69, 153,67, 153,65, 135,92, 132,79, 130,34, 129,78, 128,33, 121,94, 114,74, 114,72, 114,70, 114,66, 112,89, 112,87, 112,69, 111,52, 111,46, 109,48, 109,46, 109,37, 109,35, 70,33, 70,31, 58,31, 58,30, 58,21, 58,05, 58,02, 57,96, 52,33, 52,26, 52,23, 52,21, 36,32, 30,00, 25,02, 19,31, 19,17, 19,13, 18,66, 18,59, 15,29, 15,28, 10,85.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
29H
34BrN
2O
7 (M+H
+) : 601,1549,
trouvé : 601,1533.
EXEMPLE 22
Préparation du (5-((2-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle
(7b)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6a (0,082 mg, 0,16 mmol), de l’ester méthylique de L-leucine (0,061 g, 0,32 mmol) et on l’a purifié par précipitation dans l’acétate d’éthyle et une quantité minimale de cyclohexane, puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour fournir
7b (0,030 g, 31 %).C
30H
35BrN
2O
7.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,79 (d,
J = 8,8 Hz, 0,5H), 8,64 (d,
J = 7,6 Hz, 1H), 8,56 (d,
J = 7,7 Hz, 0,5H), 8,13 (d,
J = 7,6 Hz, 1H), 7,81 (t,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,69 (d,
J = 8,0 Hz, 1H), 7,52 (t,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,40 (dd,
J = 8,3, 4,4 Hz, 1H), 7,33 (t,
J = 7,5 Hz, 1H), 7,16 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 6,73 (d,
J = 7,3 Hz, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,64 – 4,56 (m, 0,5H), 4,41 (t,
J = 8,7 Hz, 1H), 4,37 – 4,27 (m, 0,5H), 3,63 (s, 1H), 2,05 – 1,92 (m, 1H), 1,74 – 1,43 (m, 4H), 1,27 – 1,13 (m, 1H), 0,98 – 0,81 (m, 12H) ).
RMN 13 C (126 MHz, DMSO) δ 177,64, 174,72, 173,46, 173,29, 171,55, 171,48, 159,81, 159,64, 157,82, 157,41, 153,65, 153,63, 135,89, 135,84, 132,77, 130,31, 129,75, 128,32, 121,89, 114,67, 112,93, 112,88, 111,50, 109,43, 70,31, 58,05, 57,49, 52,53, 52,42, 52,32, 51,52, 51,02, 50,90, 41,57, 40,89, 37,32, 36,39, 25,92, 24,96, 24,70, 24,64, 23,10, 23,01, 22,99, 21,82, 21,57, 21,44, 21,23, 15,31, 14,95, 11,64, 10,85.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C30H36BrN2O7 (M+H
+) : 615,1690,
trouvé : 615,1684.
EXEMPLE 23
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-valinate de méthyle (
7c
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6a (0,123 g, 0,25 mmol), de l’ester méthylique de L-valine (0,084 g, 0,50 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther pour fournir
7c (0,061 g, 41 %).C
29H
33BrN
2O
7.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,76 (d,
J = 8,6 Hz, 0,5H), 8,54 (d,
J = 9,4 Hz, 1H), 8,43 (d,
J = 7,5 Hz, 0,5H), 7,76 (t,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,60 (q,
J = 8,6 Hz, 4H), 7,35 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,11 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,69 (d,
J = 5,4 Hz, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,67 (dd,
J = 8,8, 6,9 Hz, 0,5H), 4,48 (t,
J = 8,8 Hz, 0,5H), 4,22 (dd,
J = 7,9, 6,9 Hz, 0,5H), 4,15 (t,
J = 7,0 Hz, 0,5H), 3,63 (d,
J = 4,9 Hz, 3H), 2,12 – 1,90 (m, 2H), 1,59 – 1,36 (m, 1H), 1,25 – 1,11 (m, 1H), 0,99 – 0,81 (m, 12H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,43, 171,93, 171,64, 170,88, 170,67, 159,10, 158,94, 157,64, 157,01, 153,21, 136,29, 134,90, 131,19, 128,91, 120,58, 114,52, 112,61, 112,54, 110,83, 109,00, 69,21, 57,66, 57,42, 57,24, 56,72, 51,72, 51,53, 37,09, 35,99, 29,85, 29,58, 25,65, 24,62, 19,02, 18,84, 18,35, 18,20, 14,95, 14,58, 11,37, 10,55.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
29H
34BrN
2O
7 (M+H
+) : 601,1549,
trouvé : 601,1545.
EXEMPLE 24
Préparation du (5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carbonylamino)-L-alloisoleucyl-L-leucinate de méthyle (
7d
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6b (0,123 g, 0,25 mmol), de l’ester méthylique de L-leucine (0,091 mg, 0,50 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther pour fournir
7d (0,052 g, 34 %).C
30H
35BrN
2O
7.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,76 (d,
J = 8,7 Hz, 0,5H), 8,62 (d,
J = 7,8 Hz, 0,5H), 8,54 (dd,
J = 8,0, 4,5 Hz, 1H), 7,76 (t,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,66 – 7,56 (m, 4H), 7,35 (dd,
J = 8,4, 4,2 Hz, 1H), 7,11 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 6,70 (d,
J = 7,5 Hz, 1H), 5,25 (s, 2H), 4,58 (dd,
J = 8,6, 6,5 Hz, 0,5H), 4,39 (t,
J = 8,6 Hz, 0,5H), 4,36 – 4,24 (m, 1H), 3,62 (d,
J = 2,3 Hz, 3H), 2,03 – 1,89 (m, 1H), 1,70 – 1,55 (m, 2H), 1,55 – 1,45 (m, 2H), 1,24 – 1,10 (m, 1H), 0,96 – 0,79 (m, 12H).
RMN 13 C 176,43, 172,81, 172,60, 170,56, 170,42, 159,14, 158,95, 157,63, 157,01, 153,19, 136,28, 134,90, 131,19, 128,91, 120,57, 114,51, 112,62, 112,54, 110,84, 109,00, 69,20, 57,29, 56,64, 51,86, 51,71, 50,39, 50,23, 36,98, 36,00, 25,59, 24,56, 24,23, 24,18, 22,78, 22,66, 21,28, 20,90, 14,99, 14,62, 10,54.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
30H
36BrN
2O
7 (M+H
+) : 615,1690,
trouvé : 615,1690.
EXEMPLE 25
Préparation du (S)-5-((2-bromobenzyl)oxy)-N-(1-((2-(5-hydroxy-1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide (
7e
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6c (0,127 mg, 0,24 mmol), du chlorhydrate de 5-hydroxytryptamine (0,103 mg, 0,48 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le méthanol, puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour fournir
7e (0,063 g, 38 %).C
36H
30BrN
3O
6.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,49 (d,
J = 1,6 Hz, 1H), 9,11 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 8,61 (s, 1H), 8,31 (t,
J = 5,5 Hz, 1H), 8,10 (dd,
J = 7,7, 0,8 Hz, 1H), 7,79 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,65 (dd,
J = 8,0, 0,7 Hz, 1H), 7,48 (td,
J = 7,6, 0,7 Hz, 1H), 7,37 – 7,23 (m, 6H), 7,18 (t,
J = 7,2 Hz, 1H), 7,12 (d,
J = 8,6 Hz, 2H), 7,04 (d,
J = 2,1 Hz, 1H), 6,86 (d,
J = 2,1 Hz, 1H), 6,63 (s, 1H), 6,60 (dd,
J = 8,6, 2,2 Hz, 1H), 5,21 (s, 2H), 4,73 – 4,65 (m, 1H), 3,34 – 3,26 (m, 1H), 3,17 (dd,
J = 13,7, 4,5 Hz, 1H), 3,05 (dd,
J = 13,6, 10,2 Hz, 1H), 2,73 (t,
J = 7,5 Hz, 2H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,46, 170,03, 158,99, 157,41, 156,99, 153,19, 150,16, 137,88, 135,74, 135,14, 132,15, 130,81, 129,55, 129,15, 128,14, 127,83, 126,38, 123,13, 121,06, 114,44, 112,36, 111,65, 111,27, 110,93, 110,64, 108,83, 102,20, 69,74, 54,91, 37,11, 25,14. 31C + 2EQ MANQUE 3C.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
36H
31BrN
3O
6 (M+H
+) : 680,1396,
trouvé : 680,1392.
EXEMPLE 26
Préparation du (S)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-1-oxo-3-phénylpropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide (
7f
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6d (0,090 g, 0,17 mmol), du chlorhydrate de tryptamine (0,067 g, 0,34 mmol) et on l’a purifié par trituration dans l’acétate d’éthyle et une quantité minimale de cyclohexane, puis on l’a lavé avec du diéthyl éther pour fournir
7f (0,014 g, 12 %).C
36H
30BrN
3O
5.
RMN 1 H (400 MHz, CDCl
3) δ 8,20 (s, 1H), 7,68 (d,
J = 7,7 Hz, 1H), 7,57 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,54 – 7,44 (m, 5H), 7,32 – 7,15 (m, 6H), 7,12 – 7,06 (m, 2H), 7,06 – 7,01 (m, 1H), 6,89 (s, 1H), 6,85 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 6,80 (s, 1H), 5,99 – 5,91 (m, 1H), 5,19 (s, 2H), 4,72 (dd,
J = 13,5, 7,7 Hz, 1H), 3,53 (dd,
J = 11,8, 5,9 Hz, 2H), 3,20 (dd,
J = 13,4, 5,6 Hz, 1H), 3,06 (dd,
J = 13,3, 8,4 Hz, 1H), 2,88 (dt,
J = 13,1, 6,4 Hz, 1H), 2,84 – 2,73 (m, 1H).
RMN 13 C (101 MHz, CDCl
3) δ 177,67, 170,09, 159,03, 158,55, 157,39, 152,34, 136,50, 136,16, 135,38, 134,72, 131,87, 129,44, 128,91, 128,45, 127,44, 127,17, 122,32, 122,19, 121,84, 119,59, 118,58, 115,56, 113,88, 112,34, 111,42, 110,84, 109,06, 70,35, 60,54, 55,24, 39,94, 38,96, 29,82, 25,00, 21,18, 14,33. 36c AU LIEU DE 32.
HRMS (ESI/QTOF):
calculé pour C
36H
31BrN
3O
5 (M+H
+) : 664,1447,
trouvé : 664,1432.
EXEMPLE 27
Préparation du (R)-N-(1-((2-(1H-indol-3-yl)éthyl)amino)-3-(1H-indol-3-yl)-1-oxopropan-2-yl)-5-((4-bromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide (
7g
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général F en partant de
6e (0,069 g, 0,13 mmol), du chlorhydrate de tryptamine (0,048 g, 0,25 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther pour fournir
7g (0,051 mg, 59 %).C
38H
31BrN
4O
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,83 (s, 2H), 8,98 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 8,34 (t,
J = 5,3 Hz, 1H), 7,78 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,70 (d,
J = 7,7 Hz, 1H), 7,60 (q,
J = 8,6 Hz, 1H), 7,55 (d,
J = 7,8 Hz, 1H), 7,36 – 7,26 (m, 3H), 7,18 (dd,
J = 31,1, 0,9 Hz, 2H), 7,11 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,08 – 7,01 (m, 2H), 7,00 – 6,92 (m, 2H), 6,61 (s, 1H), 5,24 (s, 2H), 4,72 – 4,63 (m, 1H), 3,30 – 3,14 (m, 2H), 2,82 (t,
J = 7,3 Hz, 2H). Deux signaux sous le pic de l’eau.
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,46, 170,44, 158,90, 157,64, 156,94, 153,16, 136,27, 136,19, 136,04, 134,99, 131,20, 128,90, 127,24, 127,15, 123,76, 122,67, 120,89, 120,88, 120,58, 118,53, 118,21, 114,43, 112,31, 111,66, 111,33, 110,67, 110,08, 108,95, 69,17, 54,44, 27,38, 25,02. 32C + 2 EQ MANQUE 4C.
HRMS (ESI/QTOF) :
calculé pour C
38H
31BrN
4O
5 (M+H
+) : 703,1556, trouvé : 703,1553.
EXEMPLES 28 à 36
Série 3
Note : Dans les protocoles suivants, le « numéro de la molécule + a » désigne lorsque les bromes se situent en position 2 et 4 du cycle aromatique tandis que le « numéro de la molécule + b » désigne lorsque les bromes se situent en position 3 et 5 du cycle aromatique.
Mode opération général A :
La 2,5-dihydroxyacétophénone
3 (1 équiv) a été solubilisée dans l’acétone (11 mL/mmol). Ensuite, K
2CO
3 (3 équiv) et du bromure de tétra-n-butylammonium (TBAB) (1,5 équiv) ont été mélangés ensemble, pesés et ajoutés à la solution. La suspension résultante a été portée au reflux pendant 30 min et une solution de dibromo-1-(bromométhyl)benzène (1 équiv) dans l’acétone (4 mL/mmol) a été ajoutée. La suspension a été portée au reflux pendant 30 min, puis concentrée sous vide. La réaction a été surveillée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 7:3).
Le mélange réactionnel a été versé dans de l’acétate d’éthyle et de l’eau acidifiée (HCl 1M). La couche aqueuse a été extraite (3 fois) par de l’acétate d’éthyle, puis les couches organiques combinées ont été lavées (1 fois) avec de l’eau acidifiée (HCl 1M) et de la saumure. Les couches organiques combinées ont été séchées sur MgSO
4, filtrées et évaporées sous vide. Pour finir, le brut est séché sous vide poussé.
Mode opératoire général B :
Du sodium (6 équiv) a été solubilisé dans de l’éthanol froid et anhydre (3 mL/mmol) pour obtenir une solution fraîche d’éthanoate de sodium. Cette solution a été versée goutte à goutte dans une solution froide (0°C) de
4 (1 équiv) dans le THF sec (même volume que l’éthanol). Ensuite, de l’oxalate de diéthyle (4 équiv) a été ajouté à la solution et agité à la température ambiante pendant 30 min. La solution résultante a été réchauffée jusqu’à 50°C et surveillée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 3:2). Une précipitation de l’intermédiaire de réaction s’est produite pendant la réaction.
Au bout de 4 heures, des gouttes d’HCl à 37 % ont été ajoutées à la solution jusqu’à la coloration blanche du précipité. La réaction a été portée au reflux pendant 1,5 heure après changement de couleur. Ensuite, le mélange réactionnel a été évaporé et versé dans de l’acétate d’éthyle et de l’eau acidifiée (HCl 1M). La couche aqueuse a été extraite (3 fois) par de l’acétate d’éthyle jusqu’à changement de couleur. Les couches organiques combinées ont été lavées (1 fois) avec de l’eau acidifiée (HCl 1M) et de la saumure puis séchées sur MgSO
4 avant d’être évaporées.
Mode opératoire général C :
Une solution de K
2CO
3 (1,3 équiv) dans l’eau (15 mL/mmol) a été ajoutée à une solution de
5 (1 équiv) dans le THF (30 mL/mmol) et éthanol (EtOH) (10 mL/mmol). La solution résultante a été réchauffée jusqu’à 50°C et agitée pendant 1,5 heure. La réaction a été surveillée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 7:3). Le mélange réactionnel a été concentré puis versé dans du dichlorométhane et de l’eau acidifiée (HCl 1M).
Pour augmenter la solubilité du produit désiré dans la couche organique, quelques gouttes de méthanol ont été ajoutées. La couche aqueuse a été extraite (3 fois) par du dichlorométhane et les couches organiques combinées ont été lavées (1 fois) avec de l’eau acidifiée (HCl 1M) et de la saumure. Ensuite, les couches organiques combinées ont été séchées sur MgSO
4, filtrées et évaporées.
EXEMPLE 28
Préparation du 2,4-dibromo-1-(bromométhyl)benzène (
2
)
Du 2,4-dibromotoluène
1 (1 000 g, 4,00 mmol) et du N-bromosuccinimide (NBS) fraîchement purifié (0,925 g, 5,20 mmol) ont été solubilisés dans 12 mL de 1,2-dichloroéthane sous atmosphère inerte. La solution a été portée au reflux pendant 10 min et de l’azobisisobutyronitrile (AIBN) (0,328 g, 2,00 mmol) a été ajouté. La suspension résultante a été agitée et portée au reflux pendant 6 heures. La réaction a été surveillée par CCM (cyclohexane 100 %). Ensuite, le mélange réactionnel a été évaporé et une solution froide de cyclohexane /dichlorométhane 1:1 a été ajoutée pour faire précipiter des produits secondaires (solide blanc). Après filtration et évaporation, le produit brut
2 (1,476 g, 4,49 mmol) a été directement utilisé sans purification. C
7H
5Br
3
EXEMPLE 29
Préparation de la 1-(2-((2,4-dibromobenzyl)oxy)-6-hydroxyphényl)éthan-1-one (
4a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général A en partant de
2 (1,315 g, 4,00 mmol) et de
3 (1,000 g, 4,00 mmol). On a précipité le brut avec une solution de cyclohexane/dichlorométhane 1:1 puis on l’a recristallisé dans l’isopropanol pour fournir
4a (0,793 g, 50 %).C
15H
12Br
2O
3.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 11,64 (s, 1H), 7,95 (d,
J = 1,8 Hz, 1H), 7,66 (dd,
J = 8,2, 1,8 Hz, 1H), 7,54 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 7,32 (t,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,62 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,55 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 5,13 (s, 2H), 2,45 (s, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 203,27, 159,54, 157,71, 134,92, 134,60, 133,83, 132,06, 131,01, 123,92, 122,19, 114,68, 109,93, 103,16, 69,38, 32,88.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap) :
calculé pour C
15H
11O
3Br
2 (M-H
+) : 396,9080,
trouvé : 396,9082.
EXEMPLE 30
Préparation de la 1-(2-((3,5-dibromobenzyl)oxy)-6-hydroxyphényl)éthan-1-one (
4b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général A en partant de 1,3-dibromo-5-(bromométhyl)benzène
(1,315 g, 4,00 mmol) et de
3 (1,000 g, 4,00 mmol). On l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther pour fournir
4b (1,103 g, 70 %).C
15H
12O
3Br
2.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 11,53 (s, 1H), 7,79 (s, 1H), 7,69 (d,
J = 1,5 Hz, 2H), 7,29 (t,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,58 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,54 (d,
J = 8,2 Hz, 1H), 5,17 (s, 2H), 2,53 – 2,46 (m, 5H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 203,16, 158,98, 157,30, 141,43, 133,41, 132,81, 129,45, 122,49, 115,30, 109,78, 103,40, 68,24, 32,91.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap) :
calculé pour C
15H
11O
3Br
2 (M-H
+) : 396,9080,
trouvé : 396,9078.
EXEMPLE 31
Préparation du 5-((2,4-dibromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylate d’éthyle (
5a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général B en partant de
4a (0,435 g, 1,09 mmol) et d’oxalate de diéthyle (0,636 g, 4,35 mmol). L’huile résultante a été solidifiée sous vide poussé et de l’isopropanol a été ajouté et chauffé.
La suspension résultante a été filtrée, et le produit pâteux a été dissous dans le dichlorométhane pour obtenir un solide blanc après évaporation. Le produit souhaité
5a (0,144 g, 27 %).C
19H
14O
5Br
2.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,08 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,94 (d,
J = 1,9 Hz, 1H), 7,80 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,74 (dd,
J = 8,3, 1,9 Hz, 1H), 7,29 (d,
J = 8,5 Hz, 1H), 7,15 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,81 (s, 1H), 5,19 (s, 2H), 4,40 (q,
J = 7,1 Hz, 2H), 1,36 (t,
J = 7,1 Hz, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,44, 159,99, 157,23, 157,22, 150,30, 135,46, 135,43, 134,04, 130,85, 130,60, 121,82, 121,29, 115,42, 114,59, 110,90, 108,90, 69,29, 62,62, 13,87.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap):
calculé pour C
19H
15O
5Br
2 (M+H
+) : 480,9281,
trouvé : 480,9271.
EXEMPLE 32
Préparation du 5-((3,5-dibromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylate d’éthyle (
5b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général B en partant de
4b (1,103 g, 2,76 mmol) et d’oxalate de diéthyle (1,612 g, 14,03 mmol). On l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther pour fournir
5b (0,785 g, 59 %).C
19H
14Br
2O
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 7,91 (d,
J = 1,6 Hz, 2H), 7,81 – 7,74 (m, 2H), 7,26 (d,
J = 8,1 Hz, 1H), 7,08 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,83 (s, 1H), 5,27 (s, 2H), 4,38 (q,
J = 7,1 Hz, 2H), 1,34 (t,
J = 7,1 Hz, 3H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,55, 159,99, 157,32, 157,22, 150,28, 141,68, 135,40, 132,26, 128,38, 122,44, 115,46, 114,62, 110,82, 108,83, 68,21, 62,60, 13,86.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap):
calculé pour C
19H
15Br
2O
5 (M+H
+) : 480,9281,
trouvé : 480,9274.
EXEMPLE 33
Préparation de l’acide 5-((2,4-dibromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylique (
6a
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général C en partant de
5a (0,144 g, 0,30 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther/dichlorométhane 1:1 pour fournir
6a (0,074 g, 55 %).C
17H
10Br
2O
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 8,07 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,90 (d,
J = 1,9 Hz, 1H), 7,76 (t,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,70 (dd,
J = 8,3, 1,9 Hz, 1H), 7,24 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 7,10 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,75 (s, 1H), 5,15 (s, 2H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,72, 161,42, 157,30, 157,17, 151,21, 135,46, 135,28, 133,97, 130,81, 130,55, 121,71, 121,23, 115,20, 114,54, 110,90, 108,69, 69,23, 64,89.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap):
calculé pour C
17H
11Br
2O
5 (M+H
+) : 454,8948,
trouvé : 454,8937.
EXEMPLE 34
Préparation de l’acide 5-((3,5-dibromobenzyl)oxy)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxylique (
6b
)
On a préparé le brut conformément au mode opératoire général C en partant de
5b (0,785 g, 1,63 mmol) et on l’a purifié par trituration dans le diéthyl éther/dichlorométhane 1:1 pour fournir
6b (0,493 g, 67 %).C
17H
10Br
2O
5.
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 7,91 (s, 2H), 7,82 – 7,72 (m, 2H), 7,24 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,06 (d,
J = 8,3 Hz, 1H), 6,79 (s, 1H), 5,27 (s, 2H).
RMN 13 C (101 MHz, DMSO) δ 176,82, 161,44, 157,31, 157,29, 151,21, 141,70, 135,23, 132,22, 128,34, 122,42, 115,23, 114,58, 110,83, 108,67, 68,19.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap):
calculé pour C
17H
11Br
2O
5 (M+H
+) : 454,8948,
trouvé : 454,8941.
EXEMPLE 35
Préparation du 5-((2,4-dibromobenzyl)oxy)-N-(2-(5-méthoxy-1H-indol-3-yl)éthyl)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide (
7a
)
6a (0,074 g, 0,16 mmol) a été solubilisé dans 2 mL de DMF anhydre. Ensuite, de la DIEA (0,084 g, 0,65 mmol) et du TBTU (0,105 g, 0,33 mmol) ont été ajoutés successivement à la solution. Après la dissolution complète, de la 5-méthoxytryptamine (0,074 g, 0,33 mmol) a été ajoutée et la solution résultante a été agitée à la température ambiante pendant 24 heures. La réaction a été contrôlée par CCM (cyclohexane/acétate d’éthyle 1:4).
Le mélange réactionnel a été versé dans de l’eau acidifiée (HCl 1M) et extrait (3 fois) par du dichlorométhane. Les phases organiques ont été rassemblée et ont été lavées (1 fois) par de l’eau acidifiée (HCl 1M), de l’eau basifiée (NaOH 10 %) et de la saumure avant d’être séchées sur MgSO
4, filtrées et évaporées. L’huile résultante a été précipitée grâce à quelques gouttes d’éther diéthylique.
Après filtration, le produit brut a été purifié grâce à une colonne de silice de 12 g et comme éluant du cyclohexane/dichlorométhane 4:1 à dichlorométhane 100 %. Après élution d’un premier produit, le produit désiré a été obtenu avec du dichlorométhane/méthanol 9:1. Le produit désiré
7a (0,006 g, 5,6 %)est un solide,.C
28H
22Br
2N
2O
5
RMN 1 H (500 MHz, CDCl
3) δ 8,12 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 8,00 (s, 1H), 7,72 (d,
J = 1,9 Hz, 1H), 7,60 – 7,55 (m, 2H), 7,31 (d,
J = 8,8 Hz, 1H), 7,10 (dd,
J = 9,8, 2,3 Hz, 2H), 7,05 (s, 1H), 6,95 – 6,89 (m, 3H), 6,85 (dd,
J = 8,4, 0,5 Hz, 1H), 5,16 (s, 2H), 3,84 – 3,78 (m, 5H), 3,11 (t,
J = 6,6 Hz, 2H).
RMN 13 C (126 MHz, CDCl
3) δ 177,59, 159,14, 158,11, 157,22, 154,32, 152,90, 134,78, 134,48, 134,36, 131,54, 131,28, 130,13, 127,80, 122,96, 121,80, 121,15, 115,29, 113,68, 112,63, 112,36, 112,17, 110,59, 108,41, 100,40, 69,86, 55,84, 40,52, 24,94.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap) :
calculé pour C
28H
23Br
2N
2O
5 (M+H
+) : 626,9948,
trouvé : 626,9929.
EXEMPLE 36
Préparation du ((3,5-dibromobenzyl)oxy)-N-(2-(5-méthoxy-1H-indol-3-yl)éthyl)-4-oxo-4H-chromène-2-carboxamide (
7b
)
6b (0,100 g, 0,22 mmol) a été solubilisé dans du DMF anhydre (10 mL) et agité jusqu’à dissolution complète. Ensuite, l’agent de couplage hexafluorophosphate de (1H-benzotriazol-1-yloxy)(tri-1-pyrrolidinyl)phosphonium (PyBOP) (0,195 g, 0,44 mmol) a été ajouté à la solution suivi par de la DIEA (0,114 g, 0,88 mmol). La solution a été agitée à la température ambiante pendant 1 heure. Un changement de couleur est apparu.
Ensuite, de la 5-méthoxytryptamine (0,100 g, 0,44 mmol) a été ajoutée et la solution a été agitée à la température ambiante pendant 2 jours. Sans changement en CCM cyclohexane/acétate d’éthyle 1:1, du chlorure bis(2-oxo-1,3-oxazolidin-3-yl)phosphinique
(BOP-Cl) (0,112 g, 0,44 mmol) a été ajouté à la solution. Au bout de 2 jours, une CCM cyclohexane/acétate d’éthyle 1:1 a montré la formation de produits.
Le mélange réactionnel a été évaporé et versé dans de l’acétate d’éthyle. La phase organique a été lavée (3 fois) avec de l’eau basifiée (K
2CO
3 saturé), puis de l’eau acidifiée (HCl 1M) et de la saumure. La couche organique a été séchée sur MgSO
4 et évaporée pour obtenir un solide brun.
Le solide a été purifié par chromatographie sur colonne de silice grâce à un échantillon sec et un éluant tel que le dichlorométhane 100 %, puis dichlorométhane/méthanol 2,4:0,1. Les fractions de 5 mL avaient été maintenues pendant toute une nuit sous une hotte pour faire précipiter le produit désiré. Après filtration, le produit désiré
7b, (0.007g, 6,6 %) a été obtenu. C
28H
22O
5N
2Br
2
RMN 1 H (400 MHz, DMSO) δ 10,71 (s, 1H), 9,23 (t,
J = 5,8 Hz, 1H), 7,94 (d,
J = 1,3 Hz, 2H), 7,85 – 7,79 (m, 2H), 7,30 (d,
J = 8,4 Hz, 1H), 7,24 (d,
J = 8,7 Hz, 1H), 7,19 (d,
J = 2,1 Hz, 1H), 7,12 – 7,06 (m, 2H), 6,76 – 6,70 (m, 2H), 5,30 (s, 2H), 3,75 (s, 3H), 3,58 (dd,
J = 14,2, 6,6 Hz, 2H), 2,97 (t,
J = 7,4 Hz, 2H).
RMN 13 C (126 MHz, DMSO) δ 177,14, 159,37, 157,83, 157,49, 154,21, 153,51, 142,26, 135,54, 132,78, 131,88, 128,94, 128,03, 123,91, 122,94, 114,95, 112,57, 112,53, 111,72, 111,56, 111,36, 109,32, 100,65, 68,76, 55,81, 25,35.
HRMS (ESI/LTQ Orbitrap):
calculé pour C
28H
23O
5N
2Br
2 (M+H
+) : 626,9948,
trouvé : 626,9937.
EXEMPLE 37
EVALUATION BIOLOGIQUE
Matériels
Le DMEM (milieu minimal d’Eagle modifié par Dulbecco/Vogt) à haute teneur en glucose avec GlutaMAX
TM (Gibco) et du sérum de veau fœtal (FBS, GE Healthcare Hyclone) ont été achetés auprès de Fisher Scientific. La pénicilline/streptomycine (10 000 U/10 mg par ml), G418, la trypsine et une solution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (DPBS) ont été achetées auprès de Sigma Aldrich (France), ainsi que la mitoxantrone (MX), la rhodamine 123 (R123), la calcéine-AM (cAM) et le bromure de 3-(4,5-diméthylthiazol-2-yl)-2,5-diphényl-tétrazolium (MTT). Tous les produits commerciaux étaient du plus haut degré de pureté disponible.
Composés
Tous les dérivés de chromone ont été dissous dans du diméthylsulfoxyde (DMSO), puis dilués dans un milieu DMEM à teneur élevée en glucose. Les solutions mères ont été stockées à -20°C et réchauffées jusqu’à 25°C juste avant l’utilisation.
Lignées cellulaires et cultures
Des cellules NIH/3T3 transfectées par ABCB1, Flp-In 293 transfectées par ABCC1 et HEK293 transfectées par ABCG2, ainsi que leurs contreparties à plasmide vide, ont été générées comme précédemment décrit
(Borst, P.; Elferink, R. O. Mammalian ABC Transporters in Health and Disease.
Annu. Rev. Biochem.
2002,
71 (1), 537–592).
De façon spécifique, la lignée cellulaire monoclonale HEK293 transfectée par ABCG2 a été sélectionnée après un tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) à l’aide d’un anticorps 5D3 couplé à la phycoérythrine (Santa Cruz Biotech) comme rapporteur d’expression endogène.
Les cellules ont été cultivées et maintenues dans du DMEM à teneur élevée en glucose avec GlutaMAX
TM supplémenté par 10 % de sérum de veau fœtal (FBS) inactivé par la chaleur et 1 % de pénicilline/streptomycine, dans une atmosphère humidifiée à 37ºC avec 5 % de CO
2. De plus, 200 µg/mL d’hygromycine B, 90 ng/mL de colchicine ou 750 µg/mL de G418 ont été ajoutés au milieu de croissance comme agents de sélection pour les cellules transfectées NIH/3T3, Flp-In 293 ou HEK293, respectivement.
Essais de cytotoxicité
La cytotoxicité de composés a été déterminée à l’aide d’un essai colorimétrique MTT tel que rapporté dans la littérature (Linton, K. J. Structure and Function of ABC Transporters.
Physiology
2007,
22 (2), 122–130. Sharom, F. J. ABC Multidrug Transporters: Structure, Function and Role in Chemoresistance.
Pharmacogenomics
2008,
9 (1), 105–127).
En bref, les cellules ont été ensemencées sur des plaques à 96 puits à une densité de 1 × 10
5 cellules/puits pour un volume de milieu de croissance total de 100 µL et incubées pendant toute une nuit. Ensuite, 100 µL de milieu frais contenant des concentrations croissantes de composés (dissous dans DMSO dans une plage de concentration de 0, 2 et 20 μM) à tester ont été ajoutés à chaque puits alors que le témoin DMSO a été fixé à 0,5 % (v/v). Après incubation de 72 heures, 22 μL de colorant MTT dans du PBS (5 mg/mL) ont été ajoutés à chaque puits et les plaques ont été incubées pendant 4 heures supplémentaires à 37°C. Après retrait du milieu et séchage, les cristaux de colorant formazan ont été solubilisés avec 200 μL de DMSO/éthanol (1:1, v/v). L’absorbance a été mesurée à l’aide de spectrophotométrie à 570 nm et 690 nm comme longueur d’onde de référence. L’effet de chaque composé sur la viabilité cellulaire dans toutes les lignées cellulaires a été calculé comme différence d’absorbance entre les puits de test et les puits de témoin de milieu.
Les résultats de cytotoxicité des composés selon l’invention sont indiqués dans la Tableau 1.
Composé |
Viabilité cellulaire (%) |
[Composé] 1 µM |
[Composé] 10 µM |
5a (série 1) |
/ |
/ |
5b (série 1) |
78 ± 0 |
87 ± 1 |
5c (série 1) |
82 ± 2 |
76 ± 1 |
5d (série 1) |
75 ± 1 |
82 ± 6 |
5e (série 1) |
81 ± 3 |
88 ± 1 |
5f (série 1) |
82 ± 6 |
84 ± 3 |
5g (série 1) |
73 ± 4 |
77 ± 0 |
5h (série 1) |
83 ± 2 |
102 ± 1 |
5i (série 1) |
78 ± 0 |
87 ± 1 |
7a (série 2) |
104 ± 16 |
102 ± 12 |
7b (série 2) |
100 ± 18 |
104 ± 11 |
7c (série 2) |
106 ± 30 |
89 ± 22 |
7d (série 2) |
118 ± 12 |
101 ± 12 |
DMSO 0,5 % |
100 |
100 |
Les composés selon l’invention présentent donc une très faible cytotoxicité voire pas de cytotoxicité.
Tests d’inhibition de l’efflux de médicament apparenté à MDR
Les cellules ont été ensemencées sur des plaques à 96 puits à une densité de 5 x 10
4 cellules/puits dans 200 µL de milieu et incubées pendant toute une nuit. Ensuite, le milieu de croissance a été changé vers un milieu frais contenant les composés et en présence de 4 µM de MX comme sonde fluorescente pour un efflux à médiation par BCRP à une concentration finale de DMSO à 0,5 % (v/v). Après 30 min d’incubation à 37°C, le milieu a été retiré, et les cellules ont été lavées avec 100 µL de tampon phosphate salin de Dulbecco (DPBS) suivi par une dissociation des cellules pendant 5 min à 37°C à médiation par 25 µL de trypsine. Finalement, la trypsine a été neutralisée par 175 µL de DPBS glacé avec de la sérumalbumine bovine (BSA) à 2 % et les cellules ont été soigneusement remises en suspension. Comme essai de sélectivité, la même expérience a été effectuée pour un efflux à médiation par P-gp et par MRP1 avec 0,5 µM de R123 ou 0,2 µM de cAM comme substrats fluorescents respectifs au lieu de la MX.
La fluorescence intracellulaire a été mesurée avec un cytomètre de flux MacsQUANT VRB Analyzer (Miltenyi Biotec) avec au moins 5 000 événements enregistrés. Alors que MX a été excitée à 635 nm et l’émission de fluorescence enregistrée dans une fenêtre de 655-730 nm, R123 et cAM ont été excitées à 488 nm et enregistrées dans un filtre de 525/50 nm. Le rendement d’inhibition de composé a été estimé par l’équation suivante :
où G2
FA correspond à l’émission de fluorescence (u.a.) de fluorophore accumulé dans des cellules exprimant la pompe d’efflux incubées avec un substrat fluorescent et le composé de test. G2
FBG correspond à l’émission de fluorescence d’arrière-plan résultante (u.a.) dans des cellules transfectées par ABCG2 (pas de substrat ni de composé de test). G2
S correspond à l’émission de fluorescence (u.a.) de fluorophore accumulé dans des cellules exprimant la pompe d’efflux incubées avec le substrat seulement. HEK
FA correspond à l’émission de fluorescence (u.a.) de fluorophore accumulé dans des cellules témoins incubées avec le substrat et le composé de test. HEK
FBG correspond à l’émission de fluorescence d’arrière-plan résultante (u.a.) dans les cellules témoins (pas de substrat ni de composé de test). Toutes les valeurs sont données en tant que moyenne géométrique d’émission de fluorescence (u.a.) dans un filtre de 655-730 nm (excitation 635 nm) mesurée au cours de 5000 événements. Les essais ont été effectués en triple.
Activité de Chromones en tant qu’inhibiteurs d’ABCG2
Entrée
|
Position de Br
|
R
1
|
Configuration absolue
|
Inhibition (%)
|
CI
50
(µM)
|
1 µM
|
10 µM
|
SERIE 1
|
|
5a
|
2 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
78 ± 9 |
143 ± 22 |
0,10 ± 0,01 |
|
5b
|
4 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
- |
115 ± 14 % |
0,59 ± 0,08 |
|
5c
|
2 |
-CH
2CH(CH
3)
2
|
S |
115 ± 17 |
101,5 ± 21,7 |
0,14 ± 0,04 |
|
5d
|
2 |
-CH(CH
3)
2
|
S |
87 ± 7 |
148,2 ± 6,7 |
0,05 ± 0,03 |
|
5e
|
2 |
-CH
2Ph |
S |
100 ± 14 |
84,6 ± 2,0 |
0,10 ± 0,07 |
|
5g
|
2 |
-CH
2(3-indolyl) |
S |
93,7 ± 17 |
39,7 ± 3,7 |
n.d. |
|
5f
|
4 |
-CH
2Ph |
S |
92 ± 15 |
114 ± 11 |
0,27 ± 0,11 |
|
5h
|
4 |
-CH
2(3-indolyl) |
S |
92 ± 15 |
87,7 ± 12 |
0,48 ± 0,07 |
|
5i
|
4 |
-CH
2(3-indolyl) |
R |
85 ± 12 |
96,3 ± 19 |
0,29 ± 0,05 |
|
6a
|
2 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
0,0 ± 0,7 |
1,6 ± 3,1 |
n.d. |
|
6d
|
4 |
-CH
2Ph |
S |
4,0 ± 0,7 |
6,5 ± 0,0 |
n.d. |
|
6e
|
4 |
-CH
2(3-indolyl) |
R |
6,1 ± 0,6 |
11,2 ± 2,0 |
n.d. |
|
SERIE 2
|
|
7a
|
2 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
|
|
0,07 ± 0,01 |
|
7b
|
2 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
|
|
0,07 ± 0,01 |
|
7c
|
4 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
|
|
0,25 ± 0,10 |
|
7d
|
4 |
-CH(CH
3)CH
2CH
3
|
S |
|
|
0,11 ± 0,03 |
|
SERIE 3
|
|
7a
|
2, 4 |
H |
/ |
|
/ |
0,05 ± 0,01 |
|
7b
|
3, 5 |
H |
/ |
|
/ |
0,10 ± 0,01 |
|
MBL-II-141
|
4 |
|
|
|
|
0,13 ± 0,09 |
|
Ko143
|
|
|
|
|
|
0,09 |
|
Le tableau ci-dessus montre que les composés présentent de bonnes valeurs de CI50. En particulier, les composés 5d de la série 1, 7a et 7b de la série 2 et 7a de la série III montrent de meilleurs résultats que l’inhibiteur MBL-II-141 et que l’inhibiteur de référence Ko143.
Sélectivité des chromones pour BCRP vs. P-gp et MRP1
|
|
P-gp
|
MRP1
|
BCRP
|
entrée
|
[Inhibiteur] µM
|
Inhibition (%)
|
5a (série 1)
|
1 |
|
|
|
10 |
|
|
/ |
5c (série 1)
|
1 |
7,0 ± 1,1 |
20,2 ± 2,7 |
114,5 |
10 |
4,8 ± 0,7 |
19,2 ± 2,2 |
/ |
5d (série 1)
|
1 |
7,9 ± 0,7 |
12,6 ± 1,3 |
86,6 |
10 |
6,5 ± 1,9 |
17,8 ± 0,9 |
/ |
5e (série 1)
|
1 |
4,9 ± 0,8 |
25,8 ± 0,8 |
100,2 |
10 |
5,7 ± 1,4 |
29,2 ± 1,5 |
/ |
5f (série 1)
|
1 |
6,4 ± 1,5 |
23,0 |
91,6 |
10 |
6,8 ± 1,4 |
19,0 |
/ |
5g (série 1)
|
1 |
7,4 ± 0,3 |
23,0 ± 2,5 |
93,7 |
10 |
5,3 ± 0,5 |
16,0 ± 2,5 |
/ |
5h (série 1)
|
1 |
7,4 ± 2,5 |
10,3 |
96,4 |
10 |
6,6 ± 1,4 |
17,4 |
/ |
5i
(série 1)
|
1 |
7,2 ± 1,3 |
11,9 |
84,8 |
10 |
6,1± 1,1 |
12,6 |
/ |
6a
(série 1)
|
1 |
7,8 1,8 |
17,1 |
/ |
10 |
7,9 ± 2,3 |
13,1 ± 2,4 |
/ |
6b
(série 1)
|
1 |
7,7 ± 1,9 |
21,9 ± 4,6 |
/ |
10 |
7,1 ± 0,6 |
20,6 ± 1,2 |
/ |
6c
(série 1)
|
1 |
7,7 ± 2,0 |
20,0 ± 3,7 |
/ |
10 |
6,3 ± 1,4 |
18,1 ± 1,2 |
/ |
7a (série 2)
|
1 |
0,1 ± 0,0 |
11,1 ± 0,8 |
84,8 ± 7,4 |
10 |
0,2 ± 0,0 |
10,8 ± 2,8 |
/ |
7b (série 2)
|
1 |
1,7 ± 2,4 |
10,3 ± 0,7 |
82,5 ± 9,7 |
10 |
2,4 ± 0,5 |
± 0,6 |
/ |
7c (série 2)
|
1 |
2,4 ± 2,1 |
11,5 ± 0,4 |
72,4 ± 7,1 |
10 |
10,6 ± 0,3 |
15,3 ± 1,5 |
/ |
7d (série 2)
|
1 |
3,6 ± 0,2 |
10,9 ± 1,4 |
52,3 ± 5,1 |
10 |
5,9 ± 0,1 |
14,7 ± 1,0 |
/ |