WO2020262662A1 - 紐と、それに固定されたイネの緑化針苗とからなる苗紐、その調製方法及び溝の底部にイネの種子又は苗紐を定置するイネの栽培方法 - Google Patents

紐と、それに固定されたイネの緑化針苗とからなる苗紐、その調製方法及び溝の底部にイネの種子又は苗紐を定置するイネの栽培方法 Download PDF

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seedling
string
seed
groove
seeds
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集三 加持
史 上原
真弘 山田
秀行 櫻井
根本　正久
和恵 南
明久 大嶋
理人 仁木
紀彦 中倉
道昭 城下
彩香 戸田
Original Assignee
フィールド・バイオリサーチ株式会社
ヤマト農磁株式会社
バイエルクロップサイエンス株式会社
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01C—PLANTING; SOWING; FERTILISING
    • A01C1/00—Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
    • A01C1/04—Arranging seed on carriers, e.g. on tapes, on cords ; Carrier compositions
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01C—PLANTING; SOWING; FERTILISING
    • A01C1/00—Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
    • A01C1/04—Arranging seed on carriers, e.g. on tapes, on cords ; Carrier compositions
    • A01C1/042—Tapes, bands or cords
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G22/00—Cultivation of specific crops or plants not otherwise provided for
    • A01G22/20—Cereals
    • A01G22/22—Rice

Definitions

  • the present invention is a seedling string composed of a string and a rice seedling (also referred to as a green needle seedling here) having a green foliage, a root and a seed body fixed or enclosed therein and having elasticity, and a method for preparing the same. It also relates to a rice cultivation method (also referred to as groove cultivation here) in which rice seeds, seed cords (seed tapes) or seedling cords are placed at the bottom of the groove.
  • a rice cultivation method also referred to as groove cultivation here
  • rice seeds, seed cords (seed tapes) or seedling cords are placed at the bottom of the groove.
  • paddy rice transplanting cultivation is widely practiced in which seedlings are once prepared and transplanted to the field because of a stable yield and an established cultivation system.
  • the preparation of the nursery has a large burden of securing equipment for that purpose, labor, cost, etc., and the burden of labor generated from the weight of the nursery when transplanting the seedlings is also large.
  • the structure of the machine becomes a limiting factor, and it is common to plant several plants per plant so that stock shortages do not occur.
  • Non-Patent Document 1 So-called direct sowing cultivation (Non-Patent Document 1), in which rice paddy is sown directly in the field and cultivated with the aim of reducing the burden of adjusting the seedlings and preventing damage to the seedlings during planting and transplanting one plant per plant. Cultivation methods using seed tapes (Patent Documents 1 and 2, Non-Patent Documents 2 and 3) have become widespread. However, these methods have problems in poor germination, floating seedlings, fallen seedlings, low seedling rate, high lodging rate, and low yield as compared with transplant cultivation.
  • An object of the present invention is to significantly reduce the burden of preparing rice seedlings or nurseries, and to produce seedlings with extremely little root damage during planting, thereby stabilizing the seedling rate, minimizing the amount of paddy, ideally.
  • Saplings and reels for saplings that enable easy use of various agricultural materials, and rice seeds that enable efficient seedling planting, reduction of lodging, and high yields. , To provide a cultivation method in which a seed tape or a seedling string is placed at the bottom of a groove.
  • the inventor of the present invention has found a seedling string or a seedling string containing a rice seedling having a greened foliage, root and seed body fixed or enclosed in the string and having elasticity. It has been found that the burden of preparing seedlings or nurseries in transplant cultivation can be reduced, the seedling standing rate can be improved, the lodging rate can be reduced, or the yield can be improved by preparing the rice in a state of being wound on a reel. We have found that the seedling standing rate is improved, the lodging rate is reduced, or the yield is improved by placing the seeds at the bottom of the groove formed in the field, and the present invention has been made.
  • the present invention provides the following solutions.
  • a seedling string comprising a string and a rice seedling having a foliage, a root, and a seed body fixed or enclosed therein.
  • the seed portion and / or seedling string of the seedling is further covered with a seed coating material that does not hinder the penetration of water but suppresses the outflow of the coated active ingredient into the aqueous phase, or the seed coating material and the active ingredient are mixed.
  • a reel for a seedling string composed of a tubular support member, a first support member provided around the tubular support member, and a second support member provided at a distance from the first support member.
  • [18] Includes steps to soak and germinate seeds fixed or enclosed in a string, and to germinate, root and grow seeds.
  • the seedling string according to any one of [1] to [10], wherein at least the step of germinating and rooting the seed and growing the seed is performed under irradiation with natural light and / or artificial light. Production method.
  • the steps of sprouting, rooting and growing the seeds are carried out in water or UV-irradiated water, an aqueous hypochlorite solution, water containing a bactericidal / bactericidal component such as a bactericidal agent, or in water or UV.
  • the method for producing a seedling string according to any one.
  • [22] Use seeds and / or seed cords coated on the coating layer of the active ingredient with a seed coating material that does not further impede the penetration of water but suppresses the outflow of the coated active ingredient into the aqueous phase, or seeds.
  • the seedling string according to any one of [1] to [10] is set or buried 0 to 5 cm from the soil surface, and when the seedling string is placed on the soil surface, the seedling string is further suppressed. It may be fixed to the soil surface with a tool, or a part of the seedling string may be vertically pressed and buried in the paddy soil at appropriate intervals.
  • the seedling string, rice seed or seed string (seed tape) according to any one of [1] to [10] is placed at the bottom of the groove formed on the surface of the paddy soil or at the bottom of the groove at the same time as the groove. It is characterized by being stationary, and in the case of seedling strings or seed strings, the seedling strings can be further fixed to the bottom of the groove with a restraint, or a part of the seedling strings can be covered with soil and fixed at appropriate intervals. Good way to grow rice.
  • the cross-sectional shape of the groove formed on the paddy field surface is quadrangular, trapezoidal, U-shaped, semi-circular, V-shaped or W-shaped (however, the height of the central portion does not reach the upper surface of the paddy field surface).
  • the method for cultivating rice according to any one of [25] to [35], wherein one or more active ingredients are applied to seeds, seed cords (seed tape), seedling cords and / or soil.
  • the rice seedling string of the present invention reduces the burden of preparing seedlings or nurseries in paddy rice transplanting cultivation.
  • the seedling string of the present invention can be raised in a state of being wound on a reel (pincushion) (diameter 29 cm x thickness 5.5 cm) as described later.
  • the area required for raising seedlings is simply 1 m 2 , and the area between the reels and the space of the seedling raising device are estimated to be twice that area. Is 2m 2 even if it is necessary.
  • the area required for preparing the seedling string of the present invention is at most 1/20 of the area for raising seedlings required for paddy rice transplanting cultivation.
  • the rice planting period is two months in May and June and the seedling raising period in paddy rice transplanting cultivation is about January
  • the number of seedlings that can be raised in one year is two.
  • the area required for preparing the seedling string of the present invention is at most 1/40 of the seedling raising area required for paddy rice transplanting cultivation.
  • the green needle seedlings according to the present invention have sufficient strength and elasticity so that the foliage and roots can withstand external forces, and the planting pain immediately after Nissan placement is small, so that the roots take root quickly.
  • the growth of the crown root is also vigorous, and the yield is increased compared to transplant cultivation.
  • the surrounding soil gradually collapses to cover the seed body part.
  • the surrounding soil gradually collapses and the seedlings skillfully utilize the time difference until they cover the seed body part, and the plant has inherent light and gravitropism.
  • the above-ground part is quickly upright without being buried, and finally the roots grow vigorously downward from the bottom of the groove without inter-strain competition.
  • the grooved cultivated rice of the present invention has fewer floating seedlings and fallen seedlings than the directly sown cultivated rice, and the seedling standing rate is improved.
  • the planting depth is secured, the lodging resistance is increased. Such an effect also appears when rice paddy coated with calper, rice paddy coated with iron, and rice paddy processed into seed tape are cultivated in a groove.
  • the greening needle seedlings of the present invention are formed in contact with the seed paddy and are located below the soil surface. Therefore, a herbicide (regioselectivity) that forms a treatment layer and exhibits selectivity. Herbicides) are less likely to cause phytotoxicity.
  • the present invention provides a seedling string, which comprises a string and a rice seedling having a green foliage, root, and seed body fixed or enclosed therein.
  • the string is a string made by joining fibers or threads in a string shape, twisting an elongated cloth, paper or non-woven tape, or attaching both long sides to form a string, which is known in the agricultural field. You can use the seed tape that is available.
  • natural fibers such as cotton, hemp, palm, rush and other plant fibers, wool (wool), silk (silk) and other animal fibers, chemical fibers such as lyocell and tencel, purified fibers such as rayon and cupra.
  • Casein fiber peanut protein fiber, corn protein fiber, soybean protein fiber, recycled silk thread, argin fiber, chitin fiber, mannan fiber, regenerated fiber such as rubber fiber, acetate, triacetate, oxide acetate, promix, rubber chloride, rubber hydrochloride
  • Semi-synthetic fibers such as nylon, vinylon, vinylidene, polyvinyl chloride, polyester, acrylic, polyethylene, polypropylene, lexe, success, polyurethane, polyclar, etc., and natural fibers are preferable, and cotton, wool, hemp are preferable. More preferred, cotton is even more preferred.
  • the above string is preferably degradable.
  • Degradability means that the strength is lost within one year, preferably within half a year after being placed in a paddy field, and at least it easily collapses during soil plowing and naturally decomposes in the soil. On the other hand, the strength is such that it does not collapse at each stage from the soaking treatment to the germination treatment, the germination / seedling raising stage, and the placement in the paddy field.
  • the rice seedling having a greened foliage, root, and seed body in the present invention means a rice seedling grown under irradiation with natural light and / or artificial light.
  • the buds, pods, and foliage including the leaves from the first leaf of the green needle seedling are green. It is considered that the greening is due to photosynthesis, and it is sufficient that the greening is to the extent that it can be visually confirmed.
  • the first leaf method is preferably from the 3.5 leaf stage, more preferably from the sheath leaf stage to the 2.5 leaf stage, and even more preferably from the 1.0 leaf stage to the 2.0 leaf stage.
  • the leaf age of green needle seedlings in the present invention is based on the first leaf method. Specifically, it is shown in FIG.
  • the foliage and roots of the green needle seedlings of the present invention have higher hardness and elasticity than the foliage and roots of seedlings germinated and grown in a light-shielded state, and after germination, during seedling raising and placement in the field. It can withstand possible external forces, such as the force of peeling entangled roots, foliage or strings. Therefore, it is possible to place the green needle seedlings in the paddy field without causing damage to the green needle seedlings, which has a great influence on the growth of the green needle seedlings.
  • Seedlings germinated and cultivated in a shaded state may form mesocotyl (middle stem).
  • Mesocotyl is a stalk-like organ formed between the seed body and the sheath leaf, and is easily damaged by an external force (see the right figure in FIG. 2).
  • the green needle seedlings of the present invention that germinate and grow under light irradiation are extremely short even if mesocotyl is invisible to the naked eye or formed, and therefore becomes strong against external force.
  • the string and the green needle seedling may be fixed to the string by a fixing means such as a thread or an adhesive, the seed body may be enclosed inside the string, or an elongated cloth.
  • the seeds may be enclosed in the string inside a string made by twisting paper or non-woven tape or pasting both long sides together, and the foliage and root of the green needle seedling fixed or enclosed in the string. It is desirable that the string extends outward.
  • An example of the form of the seedling string according to the present invention is shown in FIG.
  • the green needle seedlings in the seed vegetative growth period can continue to grow due to the nutrients present in the seedlings for a while after being placed in the paddy field, and can maintain their lives even in situations where photosynthesis is insufficient. Even when the green needle seedlings are buried in the paddy soil, this enables the seedlings to stand upright and grow.
  • chlorophyll is formed immediately after germination in the green needle seedlings of the present invention, the conversion from heterotrophic to endosperm to autotrophic progresses faster than in normal seedling raising, and the seedlings take root quickly after grooving and grow thereafter. Is vigorous.
  • the root cap of the green needle seedling since the root cap of the green needle seedling has extremely little damage, it has high gravitropism, and the roots facing upward at the time of grooving quickly grow downward, take root, and grow vigorously thereafter.
  • the green needle seedlings in the present invention can be stored for 1 week to 6 weeks, preferably 1 week to 4 weeks by lowering the temperature to 2 ° C. to 24 ° C., preferably 10 ° C. to 20 ° C. After preparing the green needle seedlings, the time of placement in the paddy field can be optimized.
  • One form of the present invention is a seedling string or a green needle seedling that can be stored for a long period of time by setting the temperature to the above temperature.
  • the distance between individual green needle seedlings fixed or enclosed in a string varies depending on the soil properties, the growing environment such as climate, but from the viewpoint of yield, the distance is 1 to 20 cm, preferably 2 to 15 cm. More preferably, the interval is 3 to 10 cm.
  • the seedling string of the present invention can be wound in a tubular shape, a cylindrical shape, or a ring shape.
  • Cylindrical winding methods include bobbin winding, cheese winding, ball winding, coreless winding, and cone winding.
  • the ring-shaped winding method includes a skein winding.
  • One form of the present invention is a seedling string wound in a tubular, cylindrical or ring shape. Further, one form of the present invention is a seedling string wound on a reel (pincushion).
  • the seedling string may be woven in a net shape, or may be in a state in which it is wound.
  • the rice seedlings woven in a net shape can be spread out and placed in a paddy field to arrange rice seedlings at equal intervals.
  • a seedling string is provided between a first support member provided around a tubular support member and a second support member provided at a distance from the first support member. It is a wound seedling string.
  • one embodiment of the present invention comprises a tubular support member, a first support member provided around the tubular support member, and a second support member provided at a distance from the first support member. It is a reel for seedling strings.
  • FIGS. 5-7 As an example of the reel, for a seedling string composed of a first support member 200 provided around a tubular support member 100 and a second support member 300 provided at a distance from the first support member.
  • the reels are shown in FIGS. 5-7.
  • Examples of the reel include reels having a plurality of openings in the first and second support members. At this time, the ratio of the area of the opening to the area of the first and second support members is preferably 60% or more, more preferably 70% or more, still more preferably 80% or more, however. , 90% or less.
  • reels having a plurality of openings 210 and 310 in the first and second support members are shown in FIGS. 5 to 7.
  • the shape of the reel is not particularly limited, and an example of the reel includes a reel 10 in which the first and second support members are substantially disk-shaped.
  • FIGS. 5 to 7 show reels 10 in which the first and second support members 200 and 300 are substantially disk-shaped.
  • the first and second support members are preferably circular with a diameter of 20 to 50 cm, and the distance between them is preferably 2 cm to 10 cm or 3 cm to 6 cm.
  • the shape of the cylindrical support member is preferably cylindrical.
  • the tubular support member and the first and second support members provided around the tubular support member may be fixed or rotatably provided.
  • the first and second support members may be fixed by three or more fastening sets provided at equal intervals in the vicinity of the tubular support member.
  • reels 10 in which the first and second support members 200 and 300 are fixed by three fastening sets 400 provided at equal intervals in the vicinity of the tubular support member 100 are shown in FIGS. Shown in 7.
  • the fastening set is not particularly limited as long as it is a means capable of fixing the first and second support members in parallel, but may consist of bolts and nuts.
  • the reel 10 in which the fastening set 400 is composed of a bolt (500) and a nut (600) is shown in FIGS. 5 to 7.
  • the tubular support member is not always necessary.
  • three or more fastening members having first and second support members having a circular opening in the center are provided at equal intervals in the vicinity of the circular opening. It is a reel for seedling strings fixed by a set.
  • the tubular support member may have connecting portions that can be detachably joined to the tubular support member of another reel at both ends thereof.
  • the material of the tubular support member and the first and second support members is not particularly limited in the reel, but it is preferably made of a resin and / or metal material having water resistance and chemical resistance.
  • the resin is preferably transparent or translucent.
  • the first and second support members of the reel are not shielded from light.
  • the light transmittance of the first and second support members is preferably 60% or more, more preferably 70% or more, and further preferably 80% or more.
  • the seedling string of the present invention contains one or more active ingredients selected from the group consisting of pesticides, oxygen generators, sulfide ion generation inhibitors, fertilizers, biostimulants, rooting promoters and soil conditioners. Can be done.
  • the pesticide is an insecticide, an acaricide, a nematode, a fungicide, a bactericidal agent, a mollusk repellent, a microbial agent, a beneficial organism, an insecticidal agent, a herbicide, a fertilizer, a bird repellent, Means plant fortifiers, fertilizers, herbicides, information chemicals and / or plant growth regulators.
  • the pesticide is preferably one that can be absorbed from the root of rice.
  • Insecticides / Acaricides / Nematodes The active ingredients identified by “generic name” herein are known and, for example, “The Pesticide Manual”, 16th ed., British Crop. It is described in “Protection Council 2012” or can be searched on the Internet (for example, “http://www.alanwood.net/pesticides”). The classification is based on the "IRAC Mode of Action Classification Scene” applicable at the time of filing of this patent application.
  • Acetylcholinesterase (AChE) inhibitor for example Carbamates such as aranicalb, aldicarb, benziocarb, benfuracarb, butocarboxim, butoxycarboxym, carbyl, carbofuran, carbosulfan, etiophencarb, phenocarb, formanate, fratiocarb, isoprocarb, methiocarb, methomyl, metolcarb, oxamil, pyrimicurve, propox.
  • AChE Acetylcholinesterase
  • GABA-controlled chloride channel blockers such as Cyclodiene-organochlorine, such as chlordan and endosulfan; or Phenylpyrazole-based (fiprol-based), such as etiprol and fipronil.
  • Sodium channel modulator for example Pyrethroids, such as acrinathrin, allethrin, d-cis-trans-allethrin, d-trans-allethrin, bifenthrin, bioallethrin, bioallethrin S-cyclopentenyl isomer, bioresmethrin, cycloprothrin, cypermethrin, beta-cypermethrin, cypermethrin, lambda -Cypermethrin, gamma-cypermethrin, cypermethrin, alpha-cypermethrin, beta-cypermethrin, theta-cypermethrin, zeta-cypermethrin, ciphenothrin [(1R) -trans isomer], deltamethrin, empentrin [(EZ)- (1R) isomer], esphenvalerate
  • Nicotinic acetylcholine receptor (nAChR) competitive modulators such as Neonicotinoids, such as acetamiprid, clothianidin, dinotefuran, imidacloprid, nitenpyram, thiacloprid, and thiamethoxam; or Nicotine; or Sulfoxaflor, flupyradiflon, fulpyrimin.
  • Neonicotinoids such as acetamiprid, clothianidin, dinotefuran, imidacloprid, nitenpyram, thiacloprid, and thiamethoxam
  • Nicotine or Sulfoxaflor, flupyradiflon, fulpyrimin.
  • Nicotinic acetylcholine receptor (nAChR) allosteric modulator for example Spinosads, such as spinetram and spinosad.
  • Glutamic acid controlled chloride channel (GluCl) allosteric modulator eg Avermectin / milbemycin, such as abamectin, emamectin benzoate, repimectin, and milbemectin.
  • Juvenile hormone mimics such as Juvenile hormone analogs such as hydroprene, quinoprene, and methoprene; or Phenoxycarb; or pyriproxyfen.
  • Various unspecified (multisite) inhibitors such as Alkylated alkyl halides, such as methyl bromide and another alkyl halide; or Chloropicrin; or Sulfuryl fluoride; or borax; or tartar, or methyl isocyanate-producing substances, such as diazomet and metam.
  • organ modulator for example Pymetrodin, pyrifluquinazone, afidopyropen; or flonicamide.
  • Tick growth regulator for example Clofentezine, hexitiazox, and difluorovidadine; or Etoxazole.
  • a microbial disruptor of the insect midgut membrane eg Bacillus thuringiensis subspecies israelensis, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies, Bacillus thuringiensis subspecies islaelsis Subspecies Bacillus thuringiensis subspecies kurstaki, Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis, Bacillus thuringiensis subspecies tenebriois, and Bacillus thuringiensis subspecies tenebriois, and BtAcy 105, Cry2Ab, Vip3A, mCry3A, Cry3Ab, Cry3Bb,
  • Inhibitors of mitochondrial ATP synthase such as ATP disruptors, such as Diafenthiuron; or Organic tin compounds such as azocyclotin, cyhexatin, and fenbutatin oxide; or Propargite; or tetradiphon.
  • ATP disruptors such as Diafenthiuron
  • Organic tin compounds such as azocyclotin, cyhexatin, and fenbutatin oxide
  • Propargite or tetradiphon.
  • a decoupling agent for oxidative phosphorylation by disrupting the proton gradient eg Chlorfenapyr, DNOC, and sulfullamin.
  • Nicotinic acetylcholine receptor channel blockers such as Bensultap, Cartap hydrochloride, thiocyclum, and thiosultap-sodium.
  • Inhibitors of chitin biosynthesis eg Bistrifluron, chlorflubenzuron, diflubenzuron, flucycloxuron, fulphenoxuron, hexaflumron, lufenuron, novalron, nobiflumron, teflubenzuron, and triflumron.
  • Inhibitors of chitin biosynthesis (type 1), eg Buprofezin.
  • Moulting disruptors especially in the case of Diptera, for example Cyromazine.
  • Ecdysone receptor agonists eg Chromaphenozide, halophenozide, methoxyphenozide, and tebufenozide.
  • Mitochondrial complex III electron transfer inhibitor eg, Hydramethylnon, acequinosyl, biphenazate or fluaclipirim.
  • Mitochondrial complex I electron transfer inhibitor eg, METI acaricides such as phenazakin, phenpyroximate, pyrimidiphen, pyridaben, tebufenpyrado, and tolfenpyrad; or Rotenone (Derris).
  • Inhibitors of acetyl-CoA carboxylase such as Tetrolic acid derivatives and tetramic acid derivatives, such as spirodiclofen, spiromesiphen, and spirotetramato.
  • Mitochondrial complex IV electron transfer inhibitor eg, Phosphine-based, such as aluminum phosphide, calcium phosphide, phosphine, and zinc phosphide; Cyanide, calcium cyanide, potassium cyanide, and sodium cyanide.
  • Mitochondrial complex II electron transfer inhibitor eg, ⁇ -ketonitrile derivatives such as sienopyraphen and ciflumethofen and carboxyanilides such as pifrubmid.
  • Ryanodine receptor modulator eg, Diamides such as chloranthraniliprole, cyantraniliprole, tetraniliprole and flubendiamide.
  • brofranylide Isoxazolines such as fluxametamide
  • additional active ingredients such as afoxoleiner, azadilactin, bencrothias, benzoximate, brofranylide, bromopropirate, quinomethionate, chloropralletrin, cryolite.
  • Fungicide The active ingredient identified by the "generic name” herein is known and is described, for example, in “Pesticide Manual” (16th Ed., British Crop Protection Council). Alternatively, it can be searched on the Internet (for example, “http://www.alanwood.net/pesticides").
  • All the components described in classes (1)-(15) can optionally form suitable bases or acids and salts based on their functional groups. All fungicide mixture components described in classes (1)-(15) may optionally include tautomeric morphology.
  • Inhibitors of ergosterol biosynthesis such as (1.001) cyproconazole, (1.002) diphenoconazole, (1.003) epoxyconazole, (1.004) fenhexamide, (1. 005) phenpropidine, (1.006) phenpropimorph, (1.007) fenpyrazamine, (1.08) flukinconazole, (1.009) flutriazole, (1.010) imazalyl, (1.
  • Inhibitors of the respiratory chain in Complex I or Complex II such as (2.001) benzobindiflupill, (2.002) bixaphen, (2.003) boscalide, (2.004) carboxamide. , (2.005) Fluopirum, (2.006) Flutranil, (2.007) Fluxapyroxado, (2.08) Flametopil, (2.009) Isophetamide, (2.010) Isopyrazam (anti-epimer) Enantiomer 1R, 4S, 9S), (2.011) isopyrazam (anti-epimeric enantiomer 1S, 4R, 9R), (2.012) isopyrazam (anti-epimer racemic compound 1RS, 4SR, 9SR), (2.
  • Isopyrazam (mixture of syn-epimeric racemic compound (1RS, 4SR, 9RS) and anti-epimeric racemic compound (1RS, 4SR, 9SR)), (2.014) isopyrazam (thin-epimeric enantiomer 1R, 4S) , 9R), (2.015) isopyrazam (thin-epimer enantiomer 1S, 4R, 9S), (2.016) isopyrazam (thin-epimer racemic compound 1RS, 4SR, 9RS), (2.017) penfluphen (2.018) penthiopyrado, (2.019) pydiflumetofen, (2.020) pyraziflumid, (2.021) sedaxane, (2.022) 1,3-dimethyl-N- (1, 1,3-trimethyl-2,3-dihydro-1H-inden-4-yl) -1H-pyrazol-4-carboxamide, (2.023) 1,3-
  • Respiratory chain inhibitors in Complex III such as (3.001) amethoctrazine, (3.002) amysulbrom, (3.003) azoxystrobin, (3.004) coumethoxystrobin. ), (3.005) spumoxystrobin, (3.006) siazofamide, (3.007) dimoxystrobin, (3.08) enoxastrobin, (3.009) famoxadon, (3.010).
  • Fenamiden (3.011) fluphenoxystrobin, (3.012) fluoxastrobin, (3.013) cresoxime-methyl, (3.014) methaminostrobin, (3.015) orisastrobin.
  • Inhibitors of thread division and cell division such as (4.001) carbendazim, (4.002) dietofencarb, (4.003) etaboxam, (4.004) fluoricolide, (4.005) pencyclon. , (4.006) thiabendazole, (4.007) thiophanate-methyl, (4.08) zoxamide, (4.009) 3-chloro-4- (2,6-difluorophenyl) -6-methyl-5- Phenylpyridazine, (4.010) 3-chloro-5- (4-chlorophenyl) -4- (2,6-difluorophenyl) -6-methylpyridazine, (4.011) 3-chloro-5- (6-- Chloropyridine-3-yl) -6-methyl-4- (2,4,6-trifluorophenyl) pyridazine, (4.012) 4- (2-bromo-4-fluorophenyl) -N- (2, 6-Difluorophenyl)
  • Inhibitors of amino acid and / or protein biosynthesis such as (7.001) cyprodinyl, (7.002) kasugamycin, (7.003) kasugamycin hydrochloride hydrate, (7.004) oxytetracycline, (7.005) pyrimethanyl, (7.06) 3- (5-fluoro-3,3,4,5-tetramethyl-3,4-dihydroisoquinoline-1-yl) quinoline.
  • ATP production inhibitor for example, (8.01) silthiofham.
  • Inhibitors of lipid and membrane synthesis such as (10.001) propamocarb, (10.002) propamocarb hydrochloride, (10.03) turquophos-methyl.
  • Melanin biosynthesis inhibitor for example, (11.001) tricyclazole, (11.002) 2,2,2-trifluoroethyl ⁇ 3-methyl-1-[(4-methylbenzoyl) amino] butane- 2-Il ⁇ carbamate.
  • Nucleic acid synthesis inhibitors such as (12.001) Benalaxil, (12.002) Benalaxil-M (Kiraluxil), (12.003) Metalaxil, (12.004) Metalaxil-M (Mephenoxam).
  • Signal transduction inhibitors such as (13.001) fludioxonyl, (13.002) iprodion, (13.003) procymidone, (13.004) proquinazide, (13.005) quinoxyphen, (13.006). Bincrozoline.
  • Microbial agents beneficial organisms include, in particular, bacteria, fungi, yeasts, plant extracts and products formed by microorganisms (eg, proteins and secondary metabolites).
  • Bacteria include, for example, spore-forming bacteria, bacteria that colonize roots and biological pesticides, fungicides or nematode-acting bacteria.
  • Bacillus amyloliquefaciens strain FZB42 (DSM 231179), or Bacillus cereus, in particular Bacillus cereus strain CNCM I-1562, or Bacillus film.
  • Bacillus filmus strain I-1582 (trust number CNCM I-1582), or Bacillus plumils, in particular stock GB34 (trust number ATCC 700814) and stock QST2808 (trust number NRRL B-3807), or Bacillus subtilis, in particular, strain GB03 (accession number ATCC SD-1397) or Bacillus subtilis strain QST713 (accession number NRRL B-21661), or Bacillus subtilis (accession number NRRL B-21661) or Bacillus subtilis Strain OST 30002 (accession number NRRL B-50421), Bacillus turingiensis, especially Bacillus turingiensis subspecies Islaelensis (B.
  • fungi and yeasts are: Beauveria bassiana, in particular ATCC 74040, Coniothirium minitans, in particular CON / M / 91-8 (accession number DSM-9660), Lecanicillium species (Leclic) , Strain HRO LEC 12, Lecanicillium lecanii (formerly known as Verticillium lecanii), in particular KV01, in particular Metarhizium anisopriae (Metalhizium) / ATCC 90448), Metoscanicovia fructicola, especially NRRL Y-30752, Paesiromyces fumosoroseus (Paecilomyces fumosoroseus) (New: Isaophila) 97 (accession number ATCC 20874), Paecilomyces lilacinus, in particular P.
  • viruses are: Ringworm (Adoxophyes orana) Granular disease virus (GV), Codling moth (Cydia pomonella) Granular disease virus (GV), Helicoverpa armyworm (Helicoverpa armigara) Nuclear polygonal disease virus (NPV), Beet armyworm (NPV), Beet armyworm (Beet armyworm) Fall armyworm (Spodoptera frugiperda) mNPV, Egyptian cotton leafworm (African cotton leafworm) (Spodoptera littoralis) NPV.
  • Ringworm Adoxophyes orana
  • Granular disease virus GV
  • Codling moth Cedia pomonella
  • Granular disease virus GV
  • Helicoverpa armyworm Helicoverpa armigara
  • Nuclear polygonal disease virus NPV
  • Beet armyworm NPV
  • Beet armyworm Beet armyworm
  • Beet armyworm Beet armyworm
  • Fall armyworm Spodoptera frugiperda
  • Bacteria and fungi that are added as "sources of inoculation" to plants or parts of plants or organs of plants and that promote plant growth and plant health by their particular properties are also included. Examples include: Agrobacterium spp., Azorizobium caulinodans, Azospirillum spp., Azotoburkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp. Burkholderia spp.
  • Burkholderia spp. In particular Burkholderia sepasia (formerly known as Pseudomonas cepasia), Gigaspora genus (Gigaspora sp.) Species (Gigaspora sp.) monosporum, glomus spp., Laccaria spp., Lactobacillus buchneri, paraglomus spp., Pisolithus spp., Pisoritus spp., Pisoritus spp.pp.
  • Burkholderia spp. Pseudomonas spp.
  • Burkholderia trifolia Burkholderia spp.
  • Burkholderia spp. Burkholderia spp.
  • Burkholderia spp. Burkholderia spp.
  • Burkholderia spp. Burkholderia spp.
  • plant extracts and products formed by microorganisms which include proteins and secondary metabolites, are: Ninnik (Allium saponin), Nigayomogi (Artemisia absinthium), Azajirachtin, Biokeeper WP, Cassia niglicans (Cassia nigricans), Celastols anglatus Mexican tea (Dryopteris filix-mas), Sugina (Equisetum arvense), Fortune Aza, Fungastop, Heads Up (Chenopodium quinoa, Quillaja, Saponin extract), Quillaja (Chenopodium quinoa) Saponin extract Quercus), Quillaja, Regalia, ("Requiem TM Authentide”), Rotenon, Liania / Ryanozin, Symphytum officinale, Yomogikuma (Tanacetum tubicinale), Yomogi (Tanacetum ul) Urtica dioica, Veratrin, Viscum album, Brass
  • the drug damage reducing agent is, for example, benoxacol, cloquintoset (-mexil), siometrinyl, cyprosulfamide, dichloromid, phenchlorazole (-ethyl), phenchlorim, flurazol, fluxophenim, frillazole, isoxadiphen (-).
  • Ethyl mefenpil (-diethyl), naphthalic anhydride, oxabetrinyl, 2-methoxy-N- ( ⁇ 4-[(methylcarbamoyl) amino] phenyl ⁇ sulfonyl) benzamide (CAS 129531-12-0), 4-( Dichloroacetyl) -1-oxa-4-azaspiro [4.5] decane (CAS 71526-07-3), 2,2,5-trimethyl-3- (dichloroacetyl) -1,3-oxazolidine (CAS 52863-) 31-4) and so on.
  • examples of apple snail killing agents include cartap, IBP, metaldehyde, ferric phosphate and the like.
  • examples of the oxygen generating agent include calper and the like.
  • examples of the sulfide ion production inhibitor include molybdate and the like.
  • fertilizer examples include ammonium-containing fertilizer, potassium-containing fertilizer, phosphorus-containing fertilizer and the like.
  • biostimulant directly means "biostimulant” and means various substances and microorganisms that bring about better physiological conditions in plants and soil.
  • biostimulant By utilizing the natural power of rice and its surrounding environment, they have a positive effect on rice in terms of plant health, stress tolerance, yield and quality, post-harvest condition and storage. It is a thing.
  • the active ingredient is prepared in a conventional formulation and applied to a string, a green needle seedling and / or a seed body of a green needle seedling. If the preparation is liquid, it means to spray and soak it on the string or seedling string, and if the preparation is solid, it means to fix or enclose it on the string or seedling string, and coat the seed body. It also means that.
  • Conventional formulations are, for example: water-soluble liquids (SL), emulsions (EC), oil-in-water emulsions (EW), suspension formulations (SC, SE, FS, OD), granulated water.
  • SL water-soluble liquids
  • EW oil-in-water emulsions
  • SC suspension formulations
  • SE FS
  • OD granulated water
  • WG Japanese preparations
  • GR granules
  • CS capsule formulations
  • the active ingredient can be applied so as to soak into the string, and granules (GR) and capsules.
  • GR granules
  • a preparation or the like it can be applied by fixing or enclosing it in a string.
  • a seedling string in which the active ingredient covers the seed body and / or the seedling string can be mentioned.
  • the seed body and / or the seedling string of the seedling is further coated with a seed coating material that does not hinder the permeation of water but suppresses the outflow of the coated active ingredient into the aqueous phase.
  • the seed body and / or the seed string is coated with a mixture of the seed dressing and the active ingredient.
  • the seed and / or the seed string is further coated with a seed coating material that does not hinder the permeation of water but suppresses the outflow of the coated active ingredient into the aqueous phase, or the seed coating material. It is preferable that the seed and / or the seed string is coated with a mixture of the active ingredient and the seed.
  • the seed coating material examples include a polymer resin seed coating material.
  • a polymer resin seed coating material vinyl acetate acrylic copolymer resin, vinyl acetate beova copolymer resin, vinyl acetate copolymer resin, vinyl acetate ethylene copolymer resin, vinyl acetate
  • examples thereof include ethylene vinyl chloride copolymer resin, acrylic styrene copolymer resin, acrylic copolymer resin, polyvinyl acetate resin, styrene butadiene rubber latex resin, and ethylene-acrylic acid-2-ethylhexyl-vinyl acetate copolymer.
  • the seed coating material is obtained by coating rice seeds already coated with the active ingredient with the aqueous dispersant of the polymer resin, or by mixing the active ingredient with the aqueous dispersion to prepare rice seeds, seed strings, etc. It can be covered with seedlings or formed by a combination thereof.
  • the method for producing the seedling string of the present invention includes the step of fixing or enclosing the seed in the string, it can be produced by the method described below.
  • Steps to fix or enclose seeds in string Including the steps of soaking and sprouting seeds and sprouting, rooting and growing seeds. At least the steps of germination, rooting and growth of seeds are carried out under natural light and / or artificial light.
  • the method of fixing or enclosing the seeds in the string can be carried out according to the method of producing a so-called seed tape by using a commercially available string (nonwoven fabric), rice seed and seed tape (seed string) manufacturing apparatus.
  • the method for producing the seedling string of the present invention is as follows.
  • Including the steps of soaking and sprouting seeds and sprouting, rooting and growing seeds At least the steps of germination, rooting and growth of seeds are carried out under natural light and / or artificial light.
  • Seed soaking treatment is performed by the usual method.
  • the temperature is 10 to 15 ° C.
  • the integrated temperature is 100 to 120 ° C.
  • Seed sprouting treatment is performed by the usual method. For example, at 30 ° C. for 1 to 2 days.
  • the step of germinating and rooting the seeds and growing them is the first leaf method from the 3.5 leaf stage, preferably from the sheath leaf stage to the 2.5 leaf stage, and more preferably from the 1.0 to 2.0 leaf stage. Grow. During that time, sufficient water is supplied by capillary water, spraying, dropping, irrigation, etc., and sufficient air is supplied.
  • the root is extended to the extent that it does not get entangled with the adjacent strain or string when it is placed in a paddy field. That is, when the seedling string is placed, it is preferable that the seedling string does not break when it is sent out from the reel.
  • natural light means sunlight, which may be direct light, reflected light, or transmitted light.
  • the artificial light means light emitted from an artificial light emitting device such as a fluorescent lamp, an incandescent lamp, or an LED.
  • the intensity of the light to be irradiated may be as long as it can be greened to the extent that the green needle seedlings can be visually confirmed, and is 80 lux or more, preferably 300 lux or more, and 25,000 lux or more is more preferable. ..
  • the time of light irradiation is sufficient so that the greening of the green needle seedlings can be visually confirmed, and may be continuous or intermittent. In the case of intermittent, for example, it is possible to repeat irradiation from 6:00 am to 6:00 pm during the day and not from 6:00 pm to 6:00 am the next day at night.
  • the temperature at the time of light irradiation is 10 ° C to 35 ° C, preferably 15 ° C to 30 ° C, and is controlled at an effective integrated temperature ((daily average temperature-lower limit growth temperature) x number of days) 60 to 200 ° C.
  • the humidity at the time of light irradiation is 75% to 100%, preferably 90% to 100%, and it is more preferable that water is intermittently applied.
  • hypochlorite is a salt of hypochlorous acid and an alkali metal or alkaline earth metal, and specifically includes sodium hypochlorite and calcium hypochlorite.
  • a step of soaking and sprouting seeds, a step of sprouting and rooting seeds, a step of growing them, a step of irradiating natural light and / or artificial light, and / or an active ingredient are used.
  • Examples of the method of application include a method in which a string (also referred to as a seed string) in which seeds are fixed or enclosed is wound in a tubular, cylindrical or ring shape.
  • the tubular, cylindrical or ring-shaped form in which the seed string is wound is sized and shaped if sufficient light irradiation is possible for the seeds inside the wound seed string to grow into green needle seedlings. There is no limit. It can also be prepared by wrapping a seed string around the above reel. When the method of winding the string is ball winding, coreless winding, skein winding, etc., a tubular support member is not required, so light is irradiated from the inside of the tubular, cylindrical or ring-shaped form in which the string is wound. Is possible.
  • the method for producing a seedling string is selected in advance from the group consisting of pesticides, oxygen generators, sulfide ion generation inhibitors, fertilizers, biostimulants, rooting promoters and soil conditioners.
  • pesticides oxygen generators, sulfide ion generation inhibitors, fertilizers, biostimulants, rooting promoters and soil conditioners.
  • a seed coating that does not impede water penetration but suppresses the outflow of the coated active ingredient into the aqueous phase.
  • a method of applying the active ingredient to the seedling string at least once at the same time as or before and after each of the above steps can be mentioned.
  • the seedling string of the present invention can be cultivated by placing or burying it at 0 to 5 cm from the soil surface, and preferably burying it at 1 to 5 cm.
  • the seedling string is further fixed to the soil surface with a holding tool, or a part of the seedling string is vertically pressed and buried in the paddy soil at appropriate intervals.
  • the groove may be closed after the seedling string is placed at the bottom of the groove formed on the surface of the paddy soil.
  • the material, shape, etc. of the retainer are not particularly limited.
  • the interval for fixing with a retainer or the interval for pressurizing the seedling string in the vertical direction includes, but is limited to, 10 cm or more, 20 cm or more, 30 cm or more, or 30 cm or less, 50 cm or less, 1 m or less, 3 m or less, and 5 m or less. Not done. It is sufficient to fix the seedling string so that the seedling string does not move from the stationary place for a certain period of time, for example, until the green needle seedlings take root.
  • the seedling string, rice seed, and seed tape (seed string) of the present invention can be cultivated by placing them at the bottom of a groove formed on the surface of paddy soil or at the bottom of the groove at the same time as the groove (here). , Also called groove cultivation).
  • groove cultivation when grooving the seedling string, it is not intended to backfill the groove. That is, it is not intended that the seedling string is completely covered with soil immediately after it is placed at the bottom of the groove.
  • the seedling string is placed with the foliage of the green needle seedling facing down, it is preferable that there is time for the foliage to turn upward.
  • rice seeds or seed tapes are grooved, sufficient oxygen supply is required until germination.
  • the time until the seedling string or the seed body is completely buried in the soil is preferably 1 day or more, 2 days or more, 3 days or more, 5 days or more, and 7 days or more.
  • the seedling string or the seed string may be further fixed to the bottom of the groove with a holding tool, or a part of the seedling string may be covered with soil and fixed at appropriate intervals.
  • the material, shape, etc. of the retainer are not particularly limited.
  • the interval of fixing with the retainer or the interval of covering with soil includes, but is not limited to, 10 cm or more, 20 cm or more, 30 cm or more, or 30 cm or less, 50 cm or less, 1 m or less, 3 m or less, and 5 m or less. It is sufficient to fix the seedling string so that the seedling string does not move from the stationary place for a certain period of time, for example, until the green needle seedlings take root.
  • the seedling standing rate is improved, the lodging is reduced, or the yield is improved.
  • the above effect is not limited to the case where the seedling string of the present invention is cultivated in a grooved manner, and rice seeds such as Calper powdered rice paddy, iron-coated rice seeds, and rice seeds processed into seed tape are cultivated in a grooved manner. It is also demonstrated when you do. In particular, if iron-coated seeds are buried in paddy soil after sowing and before germination, they will be placed in a reduced state due to oxygen deficiency or sulfide ions and will not germinate, so seeds must be sown so as not to be buried in the soil. Iron-coated cultivation in which rice paddy is sown on the soil surface has a high lodging rate.
  • the grooved cultivation of the present invention can improve the lodging rate or the yield in the direct sowing cultivation of rice seeds, particularly in the cultivation of iron-coated rice paddy.
  • the groove width according to the groove cultivation of the present invention is not particularly limited, but considering that the line spacing at the time of normal rice planting is 30 cm, the upper limit of the groove width on the soil surface is substantially 30 cm, which is 1.5. It is preferably from 30 cm and 1.5 to 10 cm, more preferably from 2 to 7 cm.
  • the depth of the groove according to the grooved cultivation of the present invention is not particularly limited, but is substantially preferably 15 cm or less, preferably 1 to 10 cm, 1 to 6 cm, and more preferably 2 to 4 cm.
  • the width of the bottom surface of the groove according to the grooved cultivation of the present invention is not particularly limited, but is preferably 0 to 5 cm, more preferably 0.5 to 3.5 cm.
  • the above groove can be made on the surface of paddy soil by a groove cutting device before the rice seeds, seed tapes or string seedlings are placed.
  • the shape of the cross section of the groove can be made into a quadrangle, a trapezoid, a U-shape, a semicircle, a V-shape, or the like by the grooving device. If you want to create a groove and place the seed tape or seedling string at the same time, for example, put the seed tape or seedling string in the dent of the rim-shaped thing of the bicycle tire, make the rim-shaped thing vertical, and push it into the soil surface.
  • the seed tape or seedling string can be placed at the same time as the groove.
  • the shape of the cross section of the groove may be almost W-shaped (however, the height of the central part does not reach the upper surface of the paddy field) because the seed tape or the seedling string is in the recess on the outer circumference of the rim. is there.
  • the present invention further describes at least once at the same time as and before and after the step of placing rice seeds, seed tapes or seedling strings at the bottom of the groove on the surface of the paddy soil or at the same time as the groove.
  • Cultivation of rice characterized in that one or more active ingredients selected from the group consisting of pesticides, oxygen generators, sulfide ion production inhibitors and fertilizers are applied to seeds, seed tapes, seedling strings and / or soil. Regarding the method.
  • the seed string used in the present invention was commercially available (purchased from Tsuneso Agricultural Co., Ltd.).
  • a seed tape was used in which rice (Koshihikari) seeds were sealed in a 100% cotton non-woven fabric (trade name: Meshron) at intervals of 4 cm.
  • the inner width of the first and second support members having a circular skeleton structure with only a skeleton (thickness: about 0.5 cm, diameter: 31 cm) around a cylindrical support member of a vinyl chloride pipe (VU40) having a diameter of 5 cm.
  • a reel fixed at a distance of 3 cm was prepared, and about 600 m of the seed tape was wound up.
  • the seed tape wound on the reel is soaked in a dark place indoors for 6 days (average temperature: 15.2 ° C), and then germinated and greened under natural light for 9 days (average temperature: 21.9 ° C, effective integration). The temperature was 151.7 ° C.).
  • the 1.4 leaf stage seedlings were prepared by immersing the lower half of the reels and inverting them 5-10 times per day so that the entire seedlings were evenly exposed to water, light, air and gravity. ..
  • a grooving roller was prepared in which four rings were mounted on the outer circumference of the cylinder at intervals of 30 cm in the long side surface direction. Roll the grooving roller on the well-scraped paddy field surface (the water level was 0 to 0.5 cm), and at the same time, apply the seedling string and germinated seed tape along the dent on the ring.
  • the seedling string and seed tape were installed at the bottom of the groove with a width of about 2.5 cm and a depth of about 2 cm (also called grooving). 30 cm between rows, 4 cm between plants, one plant per plant). The seedling string and seed tape installed at the bottom of the groove were visible, and the groove was not backfilled. In parallel, seedling strings and seed tapes were placed on the surface of the paddy field and cultivated (row spacing 30 cm, plant spacing 4 cm, 1 plant per plant).
  • Test B A groove making device was created in which a plate having a cross-sectional shape of a plastic groove was arranged behind a columnar roller. After the roller leveled the paddy field surface by pulling the grooving device on the well-scraped paddy field surface (the water level was 1 to 2 cm), the width and depth of 2 cm created by the grooving device A seedling string was placed at the bottom of the groove (also called a groove). Compared with Test A, the ditch collapsed (soil returned) faster, and some seedling strings were buried in the soil or floated in the water. In addition, floating seedlings occurred frequently due to strong wind and rain after grooving.
  • Evaluation items The evaluation methods for each survey item are as follows.
  • the germination rate was defined as ⁇ when 95% or more of the seeds used or sown germinated, ⁇ for 95-85%, and ⁇ for less than 85%.
  • the seedling standing rate is the number of seedlings that have been sown per square meter as a percentage.
  • the risk of planting damage is a little high ( ⁇ ) because the rice transplanter mechanically tears the seedlings from the nursery at the time of transplanting, and in the case of seedling strings, from the reel.
  • ⁇ the risk of planting damage
  • the rice transplanter mechanically tears the seedlings from the nursery at the time of transplanting, and in the case of seedling strings, from the reel.
  • the roots grow inside the strings, and even if the roots grow outside the strings, they are less likely to be entangled with the strings or other seedlings, so the risk is low ( ⁇ ).
  • ⁇ In the seed tape and iron coating cultivation, there is no risk of root cutting as described above, so there is no risk ( ⁇ ).
  • For the degree of lodging refer to the criteria for determining the degree of lodging in Fig. 11, and set many to severe as x, medium to many as ⁇ , small to medium as ⁇ , and none to small as ⁇ .
  • Test Results The results of tests A and B are shown in Table 1.
  • Grooving roots improved by grooving.
  • the initial growth speed of the reed needle seedlings after emplacement was fast, and it looked as good as the transplanted rice in about a month.
  • the fact that each plant is planted one by one means that there is no intra-strain competition in the first to middle stages of growth, and considerably thicker roots are formed as compared with conventional transplanting and direct sowing cultivation.
  • the degree of lodging was improved by cultivating in a groove.
  • grooved cultivation that can receive light even in horizontal seedlings is very effective, and in the case of the needle seedlings of the present invention, the seedlings were upright in 2 to 5 days.
  • the yield of grooved cultivation of seedling strings according to the present invention was higher than the yield of conventional seedling transplanting cultivation, and the sowing amount was small, so that the yield was increased more than expected.
  • Drug administration test Reagent product Tetraniliprol flowable preparation (480 g / L)
  • Test group No treatment Seed cords were prepared by encapsulating rice (Koshihikari) seeds in a 100% cotton non-woven fabric (trade name: Meshron) at intervals of 6 cm, and seedling cords were prepared according to the above method.
  • Seed coating Per 1 kg of rice (koshihikashi) seeds, coated with tetraniliprol flowable preparation (480 g / L) (11 ml) and Peridium Eco EC104 (seed coating agent, 2 ml) is sealed at 6 cm intervals. A seed string was prepared, and a seed string was prepared according to the above method.
  • Immersion treatment A solution prepared by diluting 44 ⁇ L of tetraniliprol flowable preparation (480 g / L) in 10 ml of water was applied to the seedling string prepared in the same manner as in the above-mentioned untreated group, and 1 ml per 1 m of the seedling string was applied and incubated for 24 hours. Prepared.
  • the planter was placed in the center of a 50 cm diameter basin filled with water and covered with a net gauge. Seventeen days after the seedling string was placed, 10 female adults (collected) + 5 adult males were inoculated into each test plot, and the number of parasitic larvae and the number of worms produced were measured 31 days after inoculation.
  • Test results The test results are shown in Table 2.
  • Seed coating and dipping treatment showed excellent insecticidal effect in groove cultivation of seedling string.
  • Insecticidal effect test 2 According to the method described in the insecticidal effect test 1, the seedling strings of the untreated, seed-coated, and soak-treated plots were grooved, and after 58 days, the foliage was collected, cut into 7 cm pieces, and placed in a petri dish. Strain) 10 second-instar larvae were inoculated per petri dish. The number of surviving larvae 6 days after inoculation was counted.
  • Test results The test results are shown in Table 3.
  • each container has a groove width / groove depth on the soil surface.
  • the seedling string is left in the groove, when it is left on the soil surface without making a groove, and when it is left on the soil surface without making a groove, the seedling string is further fixed to the soil with a clip (20 cm) Subsequent seedling standing and seedling growth were compared with and after the interval). During the test period, the water depth from the soil surface outside the ditch was maintained at 1-2 cm. The test results are shown in Tables 4 and 5.
  • the seedling string was placed on the surface of the paddy soil, the seedling string was fixed to obtain an excellent seedling standing rate. It is probable that the roots survived well because the seedling strings were fixed. In the case of grooving without fixing the seedling string, good seedling standing was obtained from the groove depth of 1.3 cm.
  • the green needle seedlings showed a higher germination rate than the germinated paddy, and the difference was remarkable especially when the planting depth was deep. Green needle seedlings have a higher tolerance for planting depth than germinated paddy and have a lower risk of stock loss.
  • Green needle seedlings in the leaf stage were sealed in a plastic bag in a damp state and stored at 10 ° C. After storage for 25 days, 150 grains were planted at a soil depth of 1 cm in a container in which paddy soil was put and scraped 2 days before planting. It was confirmed that all the seedlings were growing soundly 2 weeks after planting.
  • FIG. 12 shows the state of the groove at the time of making the groove and after 3 days. The test results are shown in Table 12.
  • Test results It was shown that there is a difference in disintegration depending on the soil type and that disintegration can be reduced by widening the V-shaped angle. It was shown that the disintegration property of the groove can be adjusted by adjusting the slope of the side surface of the groove.
  • Bactericidal effect test reagent product Isothianyl flowable preparation (41.7%)
  • Test area Untreated: Rice seeds soaked in water (Hitomebore) were placed at 10 ° C. for 24 hours and then at 30 ° C. for 2 days to germinate. The germinated paddy (pectus carinatum) was further spread on the non-woven fabric in the greenhouse and kept moist and greened (10 days).
  • Seed coating 1 kg of rice (Hitomebore) seeds were coated with isothianyl flowable preparation (41.7%) (8 ml) and peridium quality 009 (seed coating agent containing styrene acrylic copolymer, 2 ml).
  • the coated seeds were germinated and greened in the same manner as the untreated paddy to prepare green needle seedlings.
  • Paddy soil was filled to a height of 5 cm in a planter (length 27 cm, width 17 cm, height 10 cm), and green needle seedlings at the 1.5 leaf stage were planted in 3 rows at 3 cm intervals at a soil depth of about 1 cm.
  • the seedlings 3 weeks after planting were sprayed with a blast fungus spore suspension, and 4 weeks later, the number of blast lesions was counted.
  • the test results are shown in Table 13.
  • FIG. 1 shows the leaf age of rice by the first leaf method and the incomplete leaf method.
  • FIG. 2 shows the names of the germinated seedlings.
  • FIG. 3 shows a seedling string (first leaf method, 0.2 leaf stage) wound on a reel.
  • FIG. 4 shows a linear seedling string
  • FIG. 5 shows a front view of the reel 10 (100: tubular support member, 200: first support member, 300: third support member, 210: opening of first support member, 320: first. 2 support member openings, 400: fastening set, 500: bolts, 600: nuts).
  • FIG. 6 shows a side view of the reel 10 (100: tubular support member, 200: first support member, 300: third support member, 400: fastening set, 500: bolt, 600: nut).
  • FIG. 7 shows a perspective view of the reel (100: tubular support member, 200: first support member, 300: third support member, 210: opening of first support member, 320: second support member. Support member opening, 400: fastening set, 500: bolt, 600: nut).
  • FIG. 8 is a cross-sectional view of the root of the plant by direct sowing of iron-coated seeds (soil surface sowing) (126 days after sowing).
  • FIG. 9 is a cross-sectional view of the stock root with a seedling string (grooving) (126 days after grooving).
  • FIG. 10 is a cross-sectional view of the root of the plant by seedling (transplanting) (126 days after transplanting).
  • FIG. 11 shows a criterion for determining the degree of lodging.
  • FIG. 12 shows the disintegration of ditches in different soils of sandy loam, clay loam, and loam.

Landscapes

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Abstract

本発明は、紐と、それに固定または封入され、弾力性を有する緑化された茎葉部、根部及び種子体を有するイネの苗（ここでは緑化針苗ともいう）とからなる苗紐、その調製方法及び溝の底部にイネの種子、種紐（シードテープ）又は苗紐を定置するイネの栽培方法（ここでは溝置栽培ともいう）に関する。

Description

紐と、それに固定されたイネの緑化針苗とからなる苗紐、その調製方法及び溝の底部にイネの種子又は苗紐を定置するイネの栽培方法
　本発明は、紐と、それに固定または封入され、弾力性を有する緑化された茎葉部、根部及び種子体を有するイネの苗（ここでは緑化針苗ともいう）とからなる苗紐、その調製方法及び溝の底部にイネの種子、種紐（シードテープ）又は苗紐を定置するイネの栽培方法（ここでは溝置栽培ともいう）に関する。
　イネの栽培においては、安定した収量と確立された栽培体系のため、一度苗を調製し、それを圃場に移植する、いわゆる水稲移植栽培が広く行われている。しかし、苗床の調製は、そのための設備の確保、労力、費用等の負担が大きく、また、苗を移植する際の苗床の重量から生じる労力の負担も大きい。また、機械移植栽培では苗種（乳苗、密苗、稚苗、中苗、成苗）を問わず、機械の構造が制限要因となり、欠株が発生しないように、１株数本植えが一般的であり、田植機の爪などで根が損傷を負うことから、移植直後は一時的に生育が停滞し、活着までに時間を要することがある。上記苗調整のための負担の軽減、１株１本植え及び移植時の苗への損傷防止をめざして、イネ籾を圃場に直接播種して栽培する、いわゆる直播栽培（非特許文献１）やシードテープを使用した栽培方法（特許文献１、２、非特許文献２、３）が普及してきている。しかし、それらの方法は、移植栽培と比較して、発芽不良、浮き苗、転び苗、苗立ち率の低さ、倒伏率の高さ、ならびに収量の低さに問題がある。
特開平４－２８７６０４ 特開２０００－４１４２０
鉄コーティング湛水直播マニュアル２０１０、独立行政法人　農業・食品産業技術総合研究機構　近畿中国四国農業研究センター、２０１０年３月 シードテープ利用による水稲直播技術、農研機構、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎａｒｏ．ａｆｆｒｃ．ｇｏ．ｊｐ／ｐｒｏｊｅｃｔ／ｒｅｓｕｌｔｓ／ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ／ｎａｒｃ／２０００／ｎａｒｃ００－７０４．ｈｔｍｌ 無粉衣種子利用シードテープ直播栽培技術、福島県農業試験場会津地域研究支場、平成１５年
　本発明の目的は、イネの苗又は苗床の調製の負担を大幅に軽減し、定植時に根の損傷が極めて少ない苗を生産することで、苗立ち率の安定化、種籾量の最小化、理想的な１株１本植え、多収、各種農業資材の簡便な使用を可能にする苗紐および苗紐用リール、及び効率的な苗の植え付け、倒伏軽減、多収を可能とするイネの種子、シードテープ又は苗紐を溝の底部に定置する栽培方法を提供することである。
　本発明の発明者は、鋭意検討を重ねた結果、紐と、それに固定又は封入され、弾力性を有する緑化された茎葉部、根部及び種子体を有するイネの苗を含む苗紐又は前記苗紐をリールに巻いた状態で調製することによって、移植栽培における苗又は苗床の調製にかかる負担軽減、さらに苗立ち率の改善、倒伏軽減又は収量を改善することを見出し、また、苗紐又はイネの種子を圃場に作溝した溝の底部に定置することにより、苗立ち率を改善し、倒伏軽減又は収量を改善することを見出し本発明に至った。
　本発明は、以下の解決手段を提供する。
［１］
紐と、それに固定又は封入され、緑化された茎葉部、根部、種子体を有するイネの苗とを含むことを特徴とする、苗紐。
［２］
前記苗の葉齢が、第一葉方式で３．５葉期までであることを特徴とする、［１］に記載の苗紐。
［３］
前記苗の葉齢が、第一葉方式で鞘葉期から２．５葉期までであることを特徴とする、［１］に記載の苗紐。
［４］
前記紐が分解性であることを特徴とする、［１］～［３］のいずれかに記載の苗紐。
［５］
前記苗が紐に１～２０ｃｍ間隔で固定又は封入されていることを特徴とする、［１］～［４］のいずれかに記載の苗紐。
［６］
農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分を含むことを特徴とする、［１］～［５］のいずれかに記載の苗紐。
［７］
前記有効成分が種子体及び／又は苗紐を被覆していることを特徴とする、［６］に記載の苗紐。
［８］
水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で前記苗の種子部分及び／又は苗紐がさらに被覆されていること又は種子被覆材と有効成分の混和物によって種子部分及び／又は苗紐が被覆されていることを特徴とする、［７］に記載の苗紐。
［９］
苗紐が巻かれた状態又は網状に織られて巻かれた状態であることを特徴とする、［１］～［８］のいずれかに記載の苗紐。
［１０］
苗紐がリールに巻かれた状態であることを特徴とする、［１］～［９］のいずれかに記載の苗紐。
［１１］
筒形状の支持部材と、その周りに設けられた第１の支持部材と、前記第１の支持部材と距離をおいて設けられた第２の支持部材からなる苗紐用リール。
［１２］
前記第１及び第２の支持部材が複数の開口部を有することを特徴とする、［１１］に記載のリール。
［１３］
前記第１及び第２の支持部材の面積における前記開口部の面積の割合が６０％以上であることを特徴とする、［１２］に記載のリール。
［１４］
前記第１及び第２の支持部材がほぼ円盤状であることを特徴とする、［１１］～［１３］のいずれかに記載のリール。
［１５］
前記第１及び第２の支持部材が、筒形状の支持部材の周りに回転自在に設けられていることを特徴とする、［１１］～［１４］のいずれかに記載のリール。
［１６］
前記第１及び第２の支持部材が、耐水性及び耐薬品性を有する樹脂及び／又は金属材料で構成されることを特徴とする、［１１］～［１５］のいずれかに記載のリール。
［１７］
前記樹脂が透明又は半透明であることを特徴とする、［１６］に記載のリール。
［１８］
紐に固定又は封入された種子を浸種、催芽するステップ、及び
種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを含み、
少なくとも種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを自然光及び／又は人工光の照射下で行うことを特徴とする、［１］～［１０］のいずれか１項に記載の苗紐の製造方法。
［１９］
前記種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを、水若しくはＵＶ照射した水あるいは次亜塩素酸塩水溶液、殺菌剤等の殺菌・殺細菌成分を含んだ水に浸しながら又は水若しくはＵＶ照射した水あるいは次亜塩素酸塩水溶液、殺菌剤等の殺菌・殺細菌成分を含んだ水をかけながら行うことを特徴とする、［１８］に記載の苗紐の製造方法。
［２０］
さらに種子を紐に固定又は封入するステップを含むことを特徴とする［１８］又は［１９］に記載の苗紐の製造方法。
［２１］
あらかじめ農薬、薬害軽減剤、生育調節剤、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分で被覆されている種子を使用するか又は前記各ステップと同時及び前後のうち少なくとも１回有効成分を紐又は苗紐に施用又は固定若しくは封入することを特徴とする、［１８］～［２０］のいずれかに記載の苗紐の製造方法。
［２２］
有効成分の被覆層の上にさらに水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で被覆されている種子及び／又は種子紐を使用するか、又は種子被覆材と有効成分の混和物で被覆されている種子及び／又は種子紐を使用することを特徴とする［２１］に記載の製造方法。
［２３］
種子を浸種、催芽するステップ、種子を発芽、発根、それらを生育させるステップ、自然光及び／又は人工光を照射するステップ及び／又は有効成分を施用するステップを、種子を固定又は封入した紐を巻いた状態で行うことを特徴とする、［１８］～［２２］のいずれかに記載の苗紐の製造方法。
［２４］
種子を固定又は封入した紐をリールに巻いた状態で行うことを特徴とする、［２３］に記載の苗紐の製造方法。
［２５］
［１］～［１０］のいずれかに記載の苗紐を、土壌表面から０～５ｃｍに定置又は埋設することを特徴とし、土壌表面に苗紐を定置する場合には、さらに苗紐を抑え具で土壌表面に固定してもよく、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を水田土壌中に垂直方向に加圧して埋設させてもよく、苗紐を水田土壌中に埋設する場合には、水田土壌表面に作溝した溝の底部に苗紐を定置したのちに溝を閉じてもよい、イネの栽培方法。
［２６］
［１］～［１０］のいずれか１項に記載の苗紐、イネの種子又は種紐（シードテープ）を、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置することを特徴とし、苗紐又は種紐の場合には、さらに苗紐を抑え具で溝の底部に固定するか、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を覆土して固定してもよい、イネの栽培方法。
［２７］
前記溝の土壌表面の溝幅が１．５～３０ｃｍであることを特徴とする、［２６］に記載のイネの栽培方法。
［２８］
前記溝の土壌表面の溝幅が１．５～１０ｃｍであることを特徴とする、［２６］に記載のイネの栽培方法。
［２９］
前記溝の土壌表面の溝幅が２～７ｃｍであることを特徴とする、［２６］に記載のイネの栽培方法。
［３０］
前記溝の深さが１～１０ｃｍであることを特徴とする、［２６］～［２９］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３１］
前記溝の深さが１～６ｃｍであることを特徴とする、［２６］～［２９］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３２］
前記溝の深さが２～４ｃｍであることを特徴とする、［２６］～［２９］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３３］
前記溝の底面幅が０～５ｃｍであることを特徴とする、［２６］～［３２］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３４］
前記溝の底面幅が０．５～３．５ｃｍであることを特徴とする、［２６］～［３２］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３５］
前記水田面に作溝した溝の断面の形状が、四角形、台形、Ｕ字型、半円形、Ｖ字型又はＷ型（ただし、中央部分の高さは水田面上面に達しない）であることを特徴とする、［２６］～［３４］のいずれかに記載のイネの栽培方法。
［３６］
苗紐を水田土壌表面に定置若しくは土壌中に埋設するステップ又はイネの種子、種紐（シードテープ）又は苗紐を、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置するステップと同時及びその前後に、少なくとも１回、農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分を種子、種紐（シードテープ）、苗紐及び／又は土壌に施用することを特徴とする、［２５］～［３５］のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
　本発明のイネの苗紐は、水稲移植栽培における苗又は苗床の調製にかかる負担を軽減する。移植栽培において１ヘクタール当たり苗箱（幅６０ｃｍｘ奥行３０ｃｍ＝０．１８ｍ２）が２００～２５０箱必要であり、育苗に必要な面積は、平均４１ｍ２である。一方で、本発明の苗紐は後述するようにリール（糸巻）（直径２９ｃｍｘ厚さ５．５ｃｍ）に巻いた状態で育苗できる。１ヘクタール当たり約６０巻き必要であり、リールを軸方向につなげて立たせた場合、育苗に必要な面積は単純に１ｍ２であり、リール間の隙間や育苗装置の空間を見積もってその倍の面積が必要としても２ｍ２である。本発明の苗紐の調製に必要な面積は、水稲移植栽培に必要な育苗面積の多くても２０分の一である。
　また、田植えの期間を５月、６月の２か月とし、水稲移植栽培における育苗期間を約１月とすると、１年に可能な育苗回数は２回となる。一方で、本発明の苗紐の育苗には約２週間でよく、一年あたり４回の育苗が可能になる。これを考慮に入れると、本発明の苗紐の調製に必要な面積は、水稲移植栽培に必要な育苗面積の多くても４０分の一である。
　また、後述するとおり、本願発明に係る緑化針苗は茎葉部及び根部が外力に耐え得る十分な強度と弾力性を有しており、本田定置直後の植え痛みが少ないせいか、活着が速く、冠根の生育も旺盛であり、移植栽培と比較しても収量が増大する。
　また、本願発明の溝置栽培は、溝の底部に紐苗を定置した後、徐々に周囲の土壌が崩壊して、種子体部分を覆う。溝の底部に紐苗を定置した後、徐々に周囲の土壌が崩壊して、種子体部分を覆うまでの間に、当該苗はその時間差を巧みに利用し植物が本来もつ光・重力屈性により地上部が埋没することなく速やかに直立し、最終的に根は溝の底部から下方向に株間競合がなく旺盛に生長する。その結果、本発明の溝置栽培イネは、直播栽培イネに比べ、浮き苗、転び苗が少なく、苗立ち率が向上する。さらに、植え付け深度が確保されるため、耐倒伏性が増大する。このような効果は、カルパーで被覆されたイネ籾、鉄コーティングされたイネ籾、シードテープに加工されたイネ籾を溝置栽培したときにも表れる。
　また、後述するように本願発明の緑化針苗は、生長点が種籾に接して形成され、土壌表面より下に位置するため、処理層を形成して選択性を発揮する除草剤（位置選択性除草剤）の薬害が生じにくくなる。
　本発明は、紐と、それに固定又は封入された、緑化された茎葉部、根部、種子体を有するイネの苗を含むことを特徴とする、苗紐を提供するものである。
　本発明において、紐とは繊維又は糸を紐状により合わせたもの又は細長い布、紙若しくは不織布テープをより合わせるかもしくは両長辺を張り合わせて紐状にしたものであり、農業分野で知られているシードテープのテープを使用することができる。紐の素材としては、天然繊維の綿、麻、やし、いぐさ等の植物繊維、毛（ウール）、絹（シルク）等の動物繊維、化学繊維のリヨセル、テンセル等の精製繊維、レーヨン、キュプラ、カゼイン繊維、落花生タンパク繊維、とうもろこしタンパク繊維、大豆タンパク繊維、再生絹糸、アルギン繊維、キチン繊維、マンナン繊維、ゴム繊維等の再生繊維、アセテート、トリアセテート、酸化アセテート、プロミックス、塩化ゴム、塩酸ゴム等の半合成繊維、ナイロン、ビニロン、ビニリデン、ポリ塩化ビニル、ポリエステル、アクリル、ポリエチレン、ポリプロピレン、レクセ、サクセス、ポリウレタン、ポリクラール等の合成繊維が挙げられ、天然繊維が好ましく、綿、毛、麻がより好ましく、綿がさらに好適である。
　上記紐は分解性を有するものが好ましい。分解性を有するとは、水田に定置した後１年以内、好ましくは半年以内に強度を失い、少なくとも土壌耕転の際に容易に崩壊し、土壌中で自然に分解するものである。一方で、浸種処理から、催芽処理、発芽・育苗段階を経て水田に定置するまで、それらの各段階で崩壊しない程度の強度を有するものである。
　本発明における緑化された茎葉部、根部、種子体を有するイネの苗（ここでは、緑化針苗ともいう）は、自然光及び／又は人工光の照射下で生育したイネの幼苗を意味する。緑化針苗の芽、鞘葉、第１葉からの葉部を含む茎葉部は緑色を呈している。緑化は光合成によるものと考えられ、視覚的に確認できる程度に緑化していればよい。また葉齢では、第一葉方式で３．５葉期までが好ましく、鞘葉期から２．５葉期までがより好ましく、１．０葉期から２．０葉期までがさらに好ましい。
　本発明における緑化針苗の葉齢は、第一葉方式による。具体的には図１に示す。
　本発明の緑化針苗の茎葉部及び根部は、遮光状態で発芽、生育した幼苗の茎葉部及び根部と比較して高い硬度及び弾力性を有し、発芽後、育苗、圃場に定置する間に起こりうる外力、例えば絡まった根、茎葉部又は紐をはがす力に対して十分耐えることがでる。そのため、水田での緑化針苗の生育に大きな影響を引き起こす損傷を緑化針苗に与えることなく水田に定置することが可能である。
　遮光状態で発芽、育成した苗は、メソコチル（中茎）を形成することがある。メソコチルは種子体と鞘葉の間に形成される茎状の器官であり、外力によって欠損しやすい（図２の右図を参照）。光照射下に発芽、生育する本願発明に緑化針苗は、メソコチルが肉眼では見えないか、或いは形成されても極めて短く、その為、外力に対して強くなる。
　本発明において、紐と緑化針苗とは紐に糸や接着剤などの固定手段により紐に固定されていてもよく、紐の内部にその種子体が封入されていてもよく、又は細長い布、紙若しくは不織布テープをより合わせるかもしくは両長辺を張り合わせて紐状にしたものの内部に種子体が紐内に封入されていてもよい、紐に固定又は封入された緑化針苗の茎葉部及び根部は紐の外方向に伸びていることが望ましい。本発明にかかる苗紐の形態の一例を図３に示す。
　種子栄養生育期の緑化針苗は、水田に定置後、しばらく苗体に存在する養分により成長を続けることができ、光合成が十分できない状況においても生命を維持することが可能である。緑化針苗が水田土壌中に埋設された時も、これにより苗の直立、生長が可能である。
　本発明の緑化針苗は、発芽直後から葉緑素が形成されるため、通常の育苗と比べ胚乳への従属栄養から独立栄養への転換がより速く進み、溝置後には速やかに活着、その後の生育が旺盛である。
　本発明において、緑化針苗は根冠に損傷が極めて少ないことから、重力屈性が高く、溝置時に上を向いた根が速やかに下に伸び、活着、その後の生育が旺盛になる。
　本発明における緑化針苗は、温度を２℃～２４℃に下げ、好ましくは１０℃～２０℃に下げることにより、１週間～６週間、好ましくは１週間～４週間保存することができる。緑化針苗の調製後、水田への定置時期を最適化することができる。本発明の一形態は、温度を上記温度にすることにより長期間保存できる苗紐又は緑化針苗である。
　本発明において、紐に固定又は封入された個々の緑化針苗の間隔は、土壌の性質、気候等の生育環境により変化するが、収量の観点から１～２０ｃｍ間隔、好ましくは２～１５ｃｍ間隔、より好ましくは３～１０ｃｍ間隔である。
　本発明の苗紐は筒状、円筒形状又は輪状に巻いておくことができる。円筒形状の巻き方には、ボビン巻き、チーズ巻き、玉巻き、無芯巻き、コーン巻きなどがある。輪状の巻き方には、カセ巻きなどがある。本発明の一形態は、筒状、円筒状又は輪状に巻かれた苗紐である。また、本発明の一形態は、リール（糸巻）に巻かれた苗紐である。
　また、苗紐は、網状に織られていてもよく、さらにそれが巻かれた状態でもよい。上記網状に織られた苗紐は、広げて水田に定置することにより等間隔にイネの苗を配置することが可能である。
　本発明の一形態は、苗紐が、筒形状の支持部材の周りに設けられた第１の支持部材と前記第１の支持部材と距離をおいて設けられた第２の支持部材の間に巻かれた苗紐である。
　また、本発明の一形態は、筒形状の支持部材と、その周りに設けられた第１の支持部材と、前記第１の支持部材と距離をおいて設けられた第２の支持部材からなる苗紐用リールである。
　前記リールの一例として、筒形状の支持部材１００の周りに設けられた第１の支持部材２００と前記第１の支持部材と距離をおいて設けられた第２の支持部材３００からなる苗紐用リールを図５～７に示す。
　前記リールとして、第１と第２の支持部材に複数の開口部を有するリールが挙げられる。このとき、前記第１及び第２の支持部材の面積における前記開口部の面積の割合が６０％以上でることが好ましく、より好ましくは７０％以上であり、さらに好ましくは８０％以上であり、ただし、９０％以下でもよい。
　前記リールの一例として、第１と第２の支持部材に複数の開口部２１０及び３１０を有するリールを図５～７に示す。
　前記リールの形状は、特に限定されないが、前記リールの一例として、前記第１及び第２の支持部材がほぼ円盤状であるリール１０が挙げられる。
　前記リールの一例として、前記第１及び第２の支持部材２００及び３００がほぼ円盤状であるリール１０を図５～７に示す。
　前記リールにおいて、第１及び第２の支持部材は直径２０～５０ｃｍの円形であることが好ましく、それら間の距離は２ｃｍ～１０ｃｍであるか、３ｃｍ～６ｃｍであることが好ましい。
　前記リールにおいて、筒形状の支持部材の形状は、円筒形であることが好ましい。
　前記リールにおいて、筒形状の支持部材とその周りに設けられた第１及び第２の支持部材は、固定されていてもよく又は回転自在に設けられていてもよい。
　前記リールにおいて、第１及び第２の支持部材は、筒形状の支持部材近傍に等間隔に設けられた３個以上の締結セットによって固定されていてもよい。
　前記リールの一例として、第１及び第２の支持部材２００及び３００が、筒形状の支持部材１００近傍に等間隔に設けられた３個の締結セット４００によって固定されているリール１０を図５～７に示す。
　前記締結セットは、第１及び第２の支持部材を平行に固定できる手段であれば特に限定されないが、ボルトとナットからなることができる。
　前記リールの一例として、締結セット４００がボルト（５００）とナット（６００）からなるリール１０を図５～７に示す。
　ここで、第１及び第２の支持部材及びが３個以上の締結セットにより固定されている場合、筒形状の支持部材は、必ずしも必要ではない。
　したがって、本願発明の苗紐用リールの一形態は、中心に円形の開口部を有する第１及び第２の支持部材が、前記円形の開口部近傍に等間隔に設けられた３個以上の締結セットによって固定されている苗紐用リールである。
　前記リールにおいて、筒形状の支持部材は、その両端部において他のリールの筒形の支持部材と脱着可能な形で結合することができる結合部分を有していてもよい。
　前記リールにおいて、筒形状の支持部材、第１及び第２の支持部材の材質について特に限定はされないが、耐水性及び耐薬品性を有する樹脂及び／又は金属材料で構成されることが好ましい。
　前記リールにおいて、筒形状の支持部材、第１及び第２の支持部材の材質が樹脂である場合、前記樹脂は透明又は半透明であることが好ましい。
　本願発明の苗紐が、リールに巻かれた状態で調製される場合、前記リールの第１及び第２の支持部材は遮光しないことが好ましい。前記第１及び第２の支持部材の光の透過率は６０％以上であることが好ましく、より好ましくは７０％以上であり、さらに好ましくは８０％以上である。
　本発明の苗紐は、農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分を含むことができる。
　本発明において、農薬とは殺虫剤、殺ダニ剤、殺線虫剤、殺菌剤、殺細菌剤、軟体動物駆除剤、微生物剤、有益生物、殺スクミリンゴガイ剤、除草剤、肥料、鳥忌避剤、植物強化剤、不妊剤、薬害軽減剤、情報化学物質及び／又は植物成長調節剤を意味する。前記農薬は、イネの根部から吸収され得るものが好ましい。
　殺虫剤／殺ダニ剤／殺線虫剤
　本明細書中において「一般名」によって特定されている活性成分は、既知であり、そして、例えば、「“Ｔｈｅ　Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ　Ｍａｎｕａｌ”，１６ｔｈ　ｅｄ．，Ｂｒｉｔｉｓｈ　Ｃｒｏｐ　Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　Ｃｏｕｎｃｉｌ　２０１２」に記載されているか、又は、インターネット上で検索することができる（例えば、「ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｌａｎｗｏｏｄ．ｎｅｔ／ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ」）。その分類は、本特許出願の出願時点において適用できる「ＩＲＡＣ　Ｍｏｄｅ　ｏｆ　Ａｃｔｉｏｎ　Ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｓｃｈｅｍｅ」に基づいている。
（１）　アセチルコリンエステラーゼ（ＡＣｈＥ）阻害薬、例えば、
カーバメート系、例えば、アラニカルブ、アルジカルブ、ベンジオカルブ、ベンフラカルブ、ブトカルボキシム、ブトキシカルボキシム、カルバリル、カルボフラン、カルボスルファン、エチオフェンカルブ、フェノブカルブ、ホルメタネート、フラチオカルブ、イソプロカルブ、メチオカルブ、メソミル、メトルカルブ、オキサミル、ピリミカーブ、プロポクスル、チオジカルブ、チオファノックス、トリアザメート、トリメタカルブ、ＸＭＣ、及び、キシリルカルブ；又は、
有機リン酸エステル系、例えば、アセフェート、アザメチホス、アジンホス－エチル、アジンホス－メチル、カズサホス、クロルエトキシホス、クロルフェンビンホス、クロルメホス、クロルピリホス－メチル、クマホス、シアノホス、ジメトン－Ｓ－メチル、ダイアジノン、ジクロルボス／ＤＤＶＰ、ジクロトホス、ジメトエート、ジメチルビンホス、ダイスルホトン、ＥＰＮ、エチオン、エトプロホス、ファムフール、フェナミホス、フェニトロチオン、フェンチオン、ホスチアゼート、ヘプテノホス、イミシアホス、イソフェンホス、Ｏ－（メトキシアミノチオホスホリル）サリチル酸イソプロピル、イソキサチオン、マラチオン、メカルバム、メタミドホス、メチダチオン、メビンホス、モノクロトホス、ナレド、オメトエート、オキシジメトン－メチル、パラチオン－メチル、フェントエート、ホレート、ホサロン、ホスメット、ホスファミドン、ホキシム、ピリミホス－メチル、プロフェノホス、プロペタムホス、プロチオホス、ピラクロホス、ピリダフェンチオン、キナルホス、スルホテップ、テブピリムホス、テメホス、テルブホス、テトラクロルビンホス、チオメトン、トリアゾホス、トリクロルホン、及び、バミドチオン。
（２）　ＧＡＢＡ制御塩化物チャンネル遮断薬、例えば、
シクロジエン－有機塩素系、例えば、クロルダン、及び、エンドスルファン；又は、
フェニルピラゾール系（フィプロール系）、例えば、エチプロール、及び、フィプロニル。
（３）　ナトリウムチャンネルモジュレーター、例えば、
ピレスロイド系、例えば、アクリナトリン、アレスリン、ｄ－シス－トランスアレスリン、ｄ－トランスアレスリン、ビフェントリン、ビオアレスリン、ビオアレスリン　Ｓ－シクロペンテニル異性体、ビオレスメトリン、シクロプロトリン、シフルトリン、ベータ－シフルトリン、シハロトリン、ラムダ－シハロトリン、ガンマ－シハロトリン、シペルメトリン、アルファ－シペルメトリン、ベータ－シペルメトリン、シータ－シペルメトリン、ゼータ－シペルメトリン、シフェノトリン［（１Ｒ）－トランス異性体］、デルタメトリン、エムペントリン［（ＥＺ）－（１Ｒ）異性体］、エスフェンバレレート、エトフェンプロックス、フェンプロパトリン、フェンバレレート、フルシトリネート、フルメトリン、タウ－フルバリネート、ハルフェンプロックス、イミプロトリン、カデトリン、モンフルオロトリン、ペルメトリン、フェノトリン［（１Ｒ）－トランス異性体］、プラレトリン、ピレトリン類（除虫菊（ｐｙｒｅｔｈｒｕｍ））、レスメトリン、シラフルオフェン、テフルトリン、テトラメトリン、テトラメトリン［（１Ｒ）異性体］、トラロメトリン、及び、トランスフルトリン；又は、
ＤＤＴ；又は、メトキシクロル。
（４）　ニコチン性アセチルコリン受容体（ｎＡＣｈＲ）競合的モジュレーター、例えば、
ネオニコチノイド系、例えば、アセタミプリド、クロチアニジン、ジノテフラン、イミダクロプリド、ニテンピラム、チアクロプリド、及び、チアメトキサム；又は、
ニコチン；又は、
スルホキサフロル、フルピラジフロン、フルピリミン。
（５）　ニコチン性アセチルコリン受容体（ｎＡＣｈＲ）アロステリックモジュレーター、例えば、
スピノシン系、例えば、スピネトラム、及び、スピノサド。
（６）　グルタミン酸制御塩化物チャンネル（ＧｌｕＣｌ）アロステリックモジュレーター、例えば、
アベルメクチン系／ミルベマイシン系、例えば、アバメクチン、エマメクチン安息香酸塩、レピメクチン、及び、ミルベメクチン。
（７）　幼若ホルモン模倣物質、例えば、
幼若ホルモン類似体、例えば、ハイドロプレン、キノプレン、及び、メトプレン；又は、
フェノキシカルブ；又は、ピリプロキシフェン。
（８）　種々の特定されていない（多部位）阻害薬、例えば、
ハロゲン化アルキル系、例えば、臭化メチル、及び、別のハロゲン化アルキル；又は、
クロロピクリン；又は、
フッ化スルフリル；又は、ホウ砂；又は、吐酒石、又は、イソシアン酸メチル生成物質、例えば、ダゾメット（ｄｉａｚｏｍｅｔ）及びメタム。
（９）　弦音器官モジュレーター、例えば、
ピメトロジン、ピリフルキナゾン、アフィドピロペン；又は、フロニカミド。
（１０）　ダニ成長阻害薬、例えば、
クロフェンテジン、ヘキシチアゾクス、及び、ジフロビダジン；又は、
エトキサゾール。
（１１）　昆虫中腸膜の微生物ディスラプター、例えば、
バシルス・ツリンギエンシス・亜種・イスラエレンシス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐｅｃｉｅｓ　ｉｓｒａｅｌｅｎｓｉｓ）、バシルス・スファエリクス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｐｈａｅｒｉｃｕｓ）、バシルス・ツリンギエンシス・亜種・アイザワイ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐｅｃｉｅｓ　ａｉｚａｗａｉ）、バシルス・ツリンギエンシス・亜種・クルスタキ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐｅｃｉｅｓ　ｋｕｒｓｔａｋｉ）、バシルス・ツリンギエンシス・亜種・テネブリオニス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐｅｃｉｅｓ　ｔｅｎｅｂｒｉｏｎｉｓ）、及び、Ｂｔ植物タンパク質：Ｃｒｙ１Ａｂ、Ｃｒｙ１Ａｃ、Ｃｒｙ１Ｆａ、Ｃｒｙ１Ａ．１０５、Ｃｒｙ２Ａｂ、Ｖｉｐ３Ａ、ｍＣｒｙ３Ａ、Ｃｒｙ３Ａｂ、Ｃｒｙ３Ｂｂ、Ｃｒｙ３４Ａｂ１／３５Ａｂ１。
（１２）　ミトコンドリアＡＴＰシンターゼの阻害薬、例えば、ＡＴＰディスラプター、例えば、
ジアフェンチウロン；又は、
有機スズ化合物、例えば、アゾシクロチン、シヘキサチン、及び、酸化フェンブタスズ；又は、
プロパルギット；又は、テトラジホン。
（１３）　プロトン勾配を破壊することによる酸化的リン酸化の脱共役剤、例えば、
クロルフェナピル、ＤＮＯＣ、及び、スルフルラミド。
（１４）　ニコチン性アセチルコリン受容体チャンネル遮断薬、例えば、
ベンスルタップ、カルタップ塩酸塩、チオシクラム、及び、チオスルタップ－ナトリウム。
（１５）　キチン生合成の阻害薬（タイプ０）、例えば、
ビストリフルロン、クロルフルアズロン、ジフルベンズロン、フルシクロクスロン、フルフェノクスロン、ヘキサフルムロン、ルフェヌロン、ノバルロン、ノビフルムロン、テフルベンズロン、及び、トリフルムロン。
（１６）　キチン生合成の阻害薬（タイプ１）、例えば、
ブプロフェジン。
（１７）　脱皮ディスラプター（特に、双翅目の場合）、例えば、
シロマジン。
（１８）　エクジソン受容体作動薬、例えば、
クロマフェノジド、ハロフェノジド、メトキシフェノジド、及び、テブフェノジド。
（１９）　オクトパミン受容体作動薬、例えば、
アミトラズ。
（２０）　ミトコンドリア複合体ＩＩＩ電子伝達阻害薬、例えば、
ヒドラメチルノン、アセキノシル、ビフェナゼート又は、フルアクリピリム。
（２１）　ミトコンドリア複合体Ｉ電子伝達阻害薬、例えば、
ＭＥＴＩ殺ダニ剤、例えば、フェナザキン、フェンピロキシメート、ピリミジフェン、ピリダベン、テブフェンピラド、及び、トルフェンピラド；又は、
ロテノン（Ｄｅｒｒｉｓ）。
（２２）　電位依存性ナトリウムチャンネル遮断薬、例えば、
インドキサカルブ；又は、メタフルミゾン。
（２３）　アセチルＣｏＡカルボキシラーゼの阻害薬、例えば、
テトロン酸誘導体及びテトラミン酸誘導体、例えば、スピロジクロフェン、スピロメシフェン、及び、スピロテトラマト。
（２４）　ミトコンドリア複合体ＩＶ電子伝達阻害薬、例えば、
ホスフィン系、例えば、リン化アルミニウム、リン化カルシウム、ホスフィン、及び、リン化亜鉛；又は、
シアン化物、シアン化カルシウム、シアン化カリウム、及び、シアン化ナトリウム。
（２５）　ミトコンドリア複合体ＩＩ電子伝達阻害薬、例えば、
β－ケトニトリル誘導体、例えば、シエノピラフェン、及び、シフルメトフェン、及び、カルボキシアニリド、例えば、ピフルブミド。
（２８）　リアノジン受容体モジュレーター、例えば、
ジアミド系、例えば、クロラントラニリプロール、シアントラニルプロール、テトラニリプロール（ｔｅｔｒａｎｉｌｉｐｒｏｌｅ）及び、フルベンジアミド。
（３０）ＧＡＢＡ制御塩化物チャンネルアロステリックモジュレーター
メタジアミド系、例えば、ブロフラニリド（ｂｒｏｆｌａｎｉｌｉｄｅ）
イソキサゾリン系、例えば、フルキサメタミド
　さらなる活性成分、例えば、アフォキソレイナー、アザジラクチン、ベンクロチアズ、ベンゾキシメート、ブロフラニリド（ｂｒｏｆｌａｎｉｌｉｄｅ）、ブロモプロピレート、キノメチオナート、クロロプラレトリン（ｃｈｌｏｒｏｐｒａｌｌｅｔｈｒｉｎ）、氷晶石（ｃｒｙｏｌｉｔｅ）、シクラニリプロール、シクロキサプリド（ｃｙｃｌｏｘａｐｒｉｄ）、シハロジアミド（ｃｙｈａｌｏｄｉａｍｉｄｅ）、ジクロロメゾチアズ（ｄｉｃｌｏｒｏｍｅｚｏｔｉａｚ）、ジコホル、ε－メトフルトリン（ｅｐｓｉｌｏｎ　ｍｅｔｏｆｌｕｔｈｒｉｎ）、ε－モムフルトリン（ｅｐｓｉｌｏｎ　ｍｏｍｆｌｕｔｈｒｉｎ）、フロメトキン、フルアザインドリジン（ｆｌｕａｚａｉｎｄｏｌｉｚｉｎｅ）、フルエンスルホン、フルフェネリム、フルフェノキシストロビン、フルフィプロール、フルヘキサホン（ｆｌｕｈｅｘａｆｏｎ）、フルオピラム、フルララネル、フフェノジド（ｆｕｆｅｎｏｚｉｄｅ）、グアジピル（ｇｕａｄｉｐｙｒ）、ヘプタフルトリン、イミダクロチズ、イプロジオン、κ－ビフェントリン、κ－テフルトリン、ロチラネル（ｌｏｔｉｌａｎｅｒ）、メペルフルトリン、パイコングディング（ｐａｉｃｈｏｎｇｄｉｎｇ）、ピリダリル、ピリミノストロビン、スピロブジクロフェン（ｓｐｉｒｏｂｕｄｉｃｌｏｆｅｎ）、テトラメチルフルトリン、テトラクロラントラニリプロール（ｔｅｔｒａｃｈｌｏｒａｎｔｒａｎｉｌｉｐｒｏｌｅ）、チオキサザフェン、チオフルオキシメート（ｔｈｉｏｆｌｕｏｘｉｍａｔｅ）、トリフルメゾピリム、及び、ヨードメタン；さらに、バシルス・フィルムス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｆｉｒｍｕｓ）に基づく調製物（Ｉ－１５８２，ＢｉｏＮｅｅｍ，Ｖｏｔｉｖｏ）、及び、以下の化合物：１－｛２－フルオロ－４－メチル－５－［（２，２，２－トリフルオロエチル）スルフィニル］フェニル｝－３－（トリフルオロメチル）－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－５－アミン（ＷＯ２００６／０４３６３５から既知）（ＣＡＳ　８８５０２６－５０－６）、｛１’－［（２Ｅ）－３－（４－クロロフェニル）プロパ－２－エン－１－イル］－５－フルオロスピロ［インドール－３，４’－ピペリジン］－１（２Ｈ）－イル｝（２－クロロピリジン－４－イル）メタノン（ＷＯ２００３／１０６４５７から既知）（ＣＡＳ　６３７３６０－２３－７）、２－クロロ－Ｎ－［２－｛１－［（２Ｅ）－３－（４－クロロフェニル）プロパ－２－エン－１－イル］ピペリジン－４－イル｝－４－（トリフルオロメチル）フェニル］イソニコチンアミド（ＷＯ２００６／００３４９４から既知）（ＣＡＳ　８７２９９９－６６－１）、３－（４－クロロ－２，６－ジメチルフェニル）－４－ヒドロキシ－８－メトキシ－１，８－ジアザスピロ［４．５］デカ－３－エン－２－オン（ＷＯ２０１００５２１６１から既知）（ＣＡＳ　１２２５２９２－１７－０）、３－（４－クロロ－２，６－ジメチルフェニル）－８－メトキシ－２－オキソ－１，８－ジアザスピロ［４．５］デカ－３－エン－４－イル　エチルカルボネート（ＥＰ２６４７６２６から既知）（ＣＡＳ－１４４０５１６－４２－６）、４－（ブタ－２－イン－１－イルオキシ）－６－（３，５－ジメチルピペリジン－１－イル）－５－フルオロピリミジン（ＷＯ２００４／０９９１６０から既知）（ＣＡＳ　７９２９１４－５８－０）、ＰＦ１３６４（ＪＰ２０１０／０１８５８６から既知）（ＣＡＳ　Ｒｅｇ．Ｎｏ．１２０４７７６－６０－２）、Ｎ－［（２Ｅ）－１－［（６－クロロピリジン－３－イル）メチル］ピリジン－２（１Ｈ）－イリデン］－２，２，２－トリフルオロアセトアミド（ＷＯ２０１２／０２９６７２から既知）（ＣＡＳ　１３６３４００－４１－２）、（３Ｅ）－３－［１－［（６－クロロ－３－ピリジル）メチル］－２－ピリジリデン］－１，１，１－トリフルオロプロパン－２－オン（ＷＯ２０１３／１４４２１３から既知）（ＣＡＳ　１４６１７４３－１５－６）、Ｎ－［３－（ベンジルカルバモイル）－４－クロロフェニル］－１－メチル－３－（ペンタフルオロエチル）－４－（トリフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－５－カルボキサミド（ＷＯ２０１０／０５１９２６から既知）（ＣＡＳ　１２２６８８９－１４－０）、５－ブロモ－４－クロロ－Ｎ－［４－クロロ－２－メチル－６－（メチルカルバモイル）フェニル］－２－（３－クロロ－２－ピリジル）ピラゾール－３－カルボキサミド（ＣＮ１０３２３２４３１から既知）（ＣＡＳ　１４４９２２０－４４－３）、４－［５－（３，５－ジクロロフェニル）－４，５－ジヒドロ－５－（トリフルオロメチル）－３－イソオキサゾリル］－２－メチル－Ｎ－（シス－１－オキシド－３－チエタニル）ベンズアミド、４－［５－（３，５－ジクロロフェニル）－４，５－ジヒドロ－５－（トリフルオロメチル）－３－イソオキサゾリル］－２－メチル－Ｎ－（トランス－１－オキシド－３－チエタニル）ベンズアミド及び４－［（５Ｓ）－５－（３，５－ジクロロフェニル）－４，５－ジヒドロ－５－（トリフルオロメチル）－３－イソオキサゾリル］－２－メチル－Ｎ－（シス－１－オキシド－３－チエタニル）ベンズアミド（ＷＯ２０１３／０５０３１７Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１３３２６２８－８３－７）、Ｎ－［３－クロロ－１－（３－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－４－イル］－Ｎ－エチル－３－［（３，３，３－トリフルオロプロピル）スルフィニル］プロパンアミド、（＋）－Ｎ－［３－クロロ－１－（３－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－４－イル］－Ｎ－エチル－３－［（３，３，３－トリフルオロプロピル）スルフィニル］プロパンアミド及び（－）－Ｎ－［３－クロロ－１－（３－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－４－イル］－Ｎ－エチル－３－［（３，３，３－トリフルオロプロピル）スルフィニル］プロパンアミド（ＷＯ２０１３／１６２７１５Ａ２、ＷＯ２０１３／１６２７１６Ａ２、ＵＳ２０１４／０２１３４４８Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１４７７９２３－３７－７）、５－［［（２Ｅ）－３－クロロ－２－プロペン－１－イル］アミノ］－１－［２，６－ジクロロ－４－（トリフルオロメチル）フェニル］－４－［（トリフルオロメチル）スルフィニル］－１Ｈ－ピラゾール－３－カルボニトリル（ＣＮ１０１３３７９３７Ａから既知）（ＣＡＳ　１１０５６７２－７７－２）、３－ブロモ－Ｎ－［４－クロロ－２－メチル－６－［（メチルアミノ）チオキソメチル］フェニル］－１－（３－クロロ－２－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－５－カルボキサミド、（Ｌｉｕｄａｉｂｅｎｊｉａｘｕａｎａｎ、ＣＮ１０３１０９８１６Ａから既知）（ＣＡＳ　１２３２５４３－８５－９）；Ｎ－［４－クロロ－２－［［（１，１－ジメチルエチル）アミノ］カルボニル］－６－メチルフェニル］－１－（３－クロロ－２－ピリジニル）－３－（フルオロメトキシ）－１Ｈ－ピラゾール－５－カルボキサミド（ＷＯ２０１２／０３４４０３Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１２６８２７７－２２－０）、Ｎ－［２－（５－アミノ－１，３，４－チアジアゾール－２－イル）－４－クロロ－６－メチルフェニル］－３－ブロモ－１－（３－クロロ－２－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－５－カルボキサミド（ＷＯ２０１１／０８５５７５Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１２３３８８２－２２－８）、４－［３－［２，６－ジクロロ－４－［（３，３－ジクロロ－２－プロペン－１－イル）オキシ］フェノキシ］プロポキシ］－２－メトキシ－６－（トリフルオロメチル）ピリミジン（ＣＮ１０１３３７９４０Ａ）（ＣＡＳ　１１０８１８４－５２－６から既知）；（２Ｅ）－及び２（Ｚ）－２－［２－（４－シアノフェニル）－１－［３－（トリフルオロメチル）フェニル］エチリデン］－Ｎ－［４－（ジフルオロメトキシ）フェニル］ヒドラジンカルボキサミド（ＣＮ１０１７１５７７４Ａから既知）（ＣＡＳ　１２３２５４３－８５－９）；シクロプロパンカルボン酸３－（２，２－ジクロロエテニル）－２，２－ジメチル－４－（１Ｈ－ベンズイミダゾール－２－イル）フェニルエステル（ＣＮ１０３５２４４２２Ａから既知）（ＣＡＳ　１５４２２７１－４６－４）；（４ａＳ）－７－クロロ－２，５－ジヒドロ－２－［［（メトキシカルボニル）［４－［（トリフルオロメチル）チオ］フェニル］アミノ］カルボニル］インデノ［１，２－ｅ］［１，３，４］オキサジアジン－４ａ（３Ｈ）－カルボン酸メチルエステル（ＣＮ１０２３９１２６１Ａから既知）（ＣＡＳ　１３７０３５８－６９－２）；６－デオキシ－３－Ｏ－エチル－２，４－ジ－Ｏ－メチル－１－［Ｎ－［４－［１－［４－（１，１，２，２，２－ペンタフルオロエトキシ）フェニル］－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－イル］フェニル］カルバメート］－α－Ｌ－マンノピラノース（ＵＳ２０１４／０２７５５０３Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１１８１２１３－１４－８）；８－（２－シクロプロピルメトキシ－４－トリフルオロメチルフェノキシ）－３－（６－トリフルオロメチルピリダジン－３－イル）－３－アザビシクロ［３．２．１］オクタン（ＣＡＳ　１２５３８５０－５６－４）、（８－アンチ）－８－（２－シクロプロピルメトキシ－４－トリフルオロメチルフェノキシ）－３－（６－トリフルオロメチルピリダジン－３－イル）－３－アザビシクロ［３．２．１］オクタン（ＣＡＳ　９３３７９８－２７－７）、（８－シン）－８－（２－シクロプロピルメトキシ－４－トリフルオロメチルフェノキシ）－３－（６－トリフルオロメチルピリダジン－３－イル）－３－アザビシクロ［３．２．１］オクタン（ＷＯ２００７０４０２８０Ａ１、ＷＯ２００７０４０２８２Ａ１から既知）（ＣＡＳ　９３４００１－６６－８）、及び、Ｎ－［３－クロロ－１－（３－ピリジニル）－１Ｈ－ピラゾール－４－イル］－Ｎ－エチル－３－［（３，３，３－トリフルオロプロピル）チオ］プロパンアミド（ＷＯ２０１５／０５８０２１Ａ１、ＷＯ２０１５／０５８０２８Ａ１から既知）（ＣＡＳ　１４７７９１９－２７－９）、オキサゾスルフィル、ジクロロメゾチアズ。
　殺菌剤
　本明細書中において「一般名」によって特定されている活性成分は、既知であり、そして、例えば、「“Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ　Ｍａｎｕａｌ”（１６ｔｈ　Ｅｄ．，　Ｂｒｉｔｉｓｈ　Ｃｒｏｐ　Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　Ｃｏｕｎｃｉｌ）」に記載されているか、又は、インターネット上で検索することができる（例えば、「ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ａｌａｎｗｏｏｄ．ｎｅｔ／ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ」）。
　クラス（１）～（１５）に記載されている全ての成分は、それらの官能基に基づいて可能であれば、場合により、適切な塩基又は酸と塩を形成することができる。クラス（１）～（１５）に記載されている全ての殺菌剤混合成分は、場合により、互変異性体形態を包含し得る。
（１）　エルゴステロール生合成の阻害薬、例えば、（１．００１）シプロコナゾール、（１．００２）ジフェノコナゾール、（１．００３）エポキシコナゾール、（１．００４）フェンヘキサミド、（１．００５）フェンプロピジン、（１．００６）フェンプロピモルフ、（１．００７）フェンピラザミン、（１．００８）フルキンコナゾール、（１．００９）フルトリアホール、（１．０１０）イマザリル、（１．０１１）硫酸イマザリル、（１．０１２）イプコナゾール、（１．０１３）メトコナゾール、（１．０１４）ミクロブタニル、（１．０１５）パクロブトラゾール、（１．０１６）プロクロラズ、（１．０１７）プロピコナゾール、（１．０１８）プロチオコナゾール、（１．０１９）ピリソキサゾール、（１．０２０）スピロキサミン、（１．０２１）テブコナゾール、（１．０２２）テトラコナゾール、（１．０２３）トリアジメノール、（１．０２４）トリデモルフ、（１．０２５）トリチコナゾール、（１．０２６）（１Ｒ，２Ｓ，５Ｓ）－５－（４－クロロベンジル）－２－（クロロメチル）－２－メチル－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イルメチル）シクロペンタノール、（１．０２７）（１Ｓ，２Ｒ，５Ｒ）－５－（４－クロロベンジル）－２－（クロロメチル）－２－メチル－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イルメチル）シクロペンタノール、（１．０２８）（２Ｒ）－２－（１－クロロシクロプロピル）－４－［（１Ｒ）－２，２－ジクロロシクロプロピル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール（１．０２９）（２Ｒ）－２－（１－クロロシクロプロピル）－４－［（１Ｓ）－２，２－ジクロロシクロプロピル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール、（１．０３０）（２Ｒ）－２－［４－（４－クロロフェノキシ）－２－（トリフルオロメチル）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）プロパン－２－オール、（１．０３１）（２Ｓ）－２－（１－クロロシクロプロピル）－４－［（１Ｒ）－２，２－ジクロロシクロプロピル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール、（１．０３２）（２Ｓ）－２－（１－クロロシクロプロピル）－４－［（１Ｓ）－２，２－ジクロロシクロプロピル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール、（１．０３３）（２Ｓ）－２－［４－（４－クロロフェノキシ）－２－（トリフルオロメチル）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）プロパン－２－オール、（１．０３４）（Ｒ）－［３－（４－クロロ－２－フルオロフェニル）－５－（２，４－ジフルオロフェニル）－１，２－オキサゾール－４－イル］（ピリジン－３－イル）メタノール、（１．０３５）（Ｓ）－［３－（４－クロロ－２－フルオロフェニル）－５－（２，４－ジフルオロフェニル）－１，２－オキサゾール－４－イル］（ピリジン－３－イル）メタノール、（１．０３６）［３－（４－クロロ－２－フルオロフェニル）－５－（２，４－ジフルオロフェニル）－１，２－オキサゾール－４－イル］（ピリジン－３－イル）メタノール、（１．０３７）１－（｛（２Ｒ，４Ｓ）－２－［２－クロロ－４－（４－クロロフェノキシ）フェニル］－４－メチル－１，３－ジオキソラン－２－イル｝メチル）－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール、（１．０３８）１－（｛（２Ｓ，４Ｓ）－２－［２－クロロ－４－（４－クロロフェノキシ）フェニル］－４－メチル－１，３－ジオキソラン－２－イル｝メチル）－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール、（１．０３９）１－｛［３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－５－イルチオシアネート、（１．０４０）１－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｒ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－５－イルチオシアネート、（１．０４１）１－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｓ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－５－イルチオシアネート、（１．０４２）２－［（２Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４３）２－［（２Ｒ，４Ｒ，５Ｓ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４４）２－［（２Ｒ，４Ｓ，５Ｒ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４５）２－［（２Ｒ，４Ｓ，５Ｓ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４６）２－［（２Ｓ，４Ｒ，５Ｒ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４７）２－［（２Ｓ，４Ｒ，５Ｓ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４８）２－［（２Ｓ，４Ｓ，５Ｒ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０４９）２－［（２Ｓ，４Ｓ，５Ｓ）－１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０５０）２－［１－（２，４－ジクロロフェニル）－５－ヒドロキシ－２，６，６－トリメチルヘプタン－４－イル］－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０５１）２－［２－クロロ－４－（２，４－ジクロロフェノキシ）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）プロパン－２－オール、（１．０５２）２－［２－クロロ－４－（４－クロロフェノキシ）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール、（１．０５３）２－［４－（４－クロロフェノキシ）－２－（トリフルオロメチル）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ブタン－２－オール、（１．０５４）２－［４－（４－クロロフェノキシ）－２－（トリフルオロメチル）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）ペンタン－２－オール、（１．０５５）２－［４－（４－クロロフェノキシ）－２－（トリフルオロメチル）フェニル］－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イル）プロパン－２－オール、（１．０５６）２－｛［３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０５７）２－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｒ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０５８）２－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｓ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－２，４－ジヒドロ－３Ｈ－１，２，４－トリアゾール－３－チオン、（１．０５９）５－（４－クロロベンジル）－２－（クロロメチル）－２－メチル－１－（１Ｈ－１，２，４－トリアゾール－１－イルメチル）シクロペンタノール、（１．０６０）５－（アリルスルファニル）－１－｛［３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール、（１．０６１）５－（アリルスルファニル）－１－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｒ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール、（１．０６２）５－（アリルスルファニル）－１－｛［ｒｅｌ（２Ｒ，３Ｓ）－３－（２－クロロフェニル）－２－（２，４－ジフルオロフェニル）オキシラン－２－イル］メチル｝－１Ｈ－１，２，４－トリアゾール、（１．０６３）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛［３－（１，１，２，２－テトラフルオロエトキシ）フェニル］スルファニル｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６４）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛［３－（２，２，２－トリフルオロエトキシ）フェニル］スルファニル｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６５）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛［３－（２，２，３，３－テトラフルオロプロポキシ）フェニル］スルファニル｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６６）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛［３－（ペンタフルオロエトキシ）フェニル］スルファニル｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６７）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛３－［（１，１，２，２－テトラフルオロエチル）スルファニル］フェノキシ｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６８）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛３－［（２，２，２－トリフルオロエチル）スルファニル］フェノキシ｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０６９）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛３－［（２，２，３，３－テトラフルオロプロピル）スルファニル］フェノキシ｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７０）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－｛３－［（ペンタフルオロエチル）スルファニル］フェノキシ｝フェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７１）Ｎ’－（２，５－ジメチル－４－フェノキシフェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７２）Ｎ’－（４－｛［３－（ジフルオロメトキシ）フェニル］スルファニル｝－２，５－ジメチルフェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７３）Ｎ’－（４－｛３－［（ジフルオロメチル）スルファニル］フェノキシ｝－２，５－ジメチルフェニル）－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７４）Ｎ’－［５－ブロモ－６－（２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－２－イルオキシ）－２－メチルピリジン－３－イル］－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７５）Ｎ’－｛４－［（４，５－ジクロロ－１，３－チアゾール－２－イル）オキシ］－２，５－ジメチルフェニル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７６）Ｎ’－｛５－ブロモ－６－［（１Ｒ）－１－（３，５－ジフルオロフェニル）エトキシ］－２－メチルピリジン－３－イル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７７）Ｎ’－｛５－ブロモ－６－［（１Ｓ）－１－（３，５－ジフルオロフェニル）エトキシ］－２－メチルピリジン－３－イル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７８）Ｎ’－｛５－ブロモ－６－［（シス－４－イソプロピルシクロヘキシル）オキシ］－２－メチルピリジン－３－イル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０７９）Ｎ’－｛５－ブロモ－６－［（トランス－４－イソプロピルシクロヘキシル）オキシ］－２－メチルピリジン－３－イル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド、（１．０８０）Ｎ’－｛５－ブロモ－６－［１
－（３，５－ジフルオロフェニル）エトキシ］－２－メチルピリジン－３－イル｝－Ｎ－エチル－Ｎ－メチルイミドホルムアミド。
（２）　複合体Ｉ又は複合体ＩＩにおける呼吸鎖の阻害薬、例えば、（２．００１）ベンゾビンジフルピル、（２．００２）ビキサフェン、（２．００３）ボスカリド、（２．００４）カルボキシン、（２．００５）フルオピラム、（２．００６）フルトラニル、（２．００７）フルキサピロキサド、（２．００８）フラメトピル、（２．００９）イソフェタミド、（２．０１０）イソピラザム（アンチ－エピマー性エナンチオマー　１Ｒ，４Ｓ，９Ｓ）、（２．０１１）イソピラザム（アンチ－エピマー性エナンチオマー　１Ｓ，４Ｒ，９Ｒ）、（２．０１２）イソピラザム（アンチ－エピマー性ラセミ化合物　１ＲＳ，４ＳＲ，９ＳＲ）、（２．０１３）イソピラザム（シン－エピマー性ラセミ化合物（１ＲＳ，４ＳＲ，９ＲＳ）とアンチ－エピマー性ラセミ化合物（１ＲＳ，４ＳＲ，９ＳＲ）の混合物）、（２．０１４）イソピラザム（シン－エピマー性エナンチオマー　１Ｒ，４Ｓ，９Ｒ）、（２．０１５）イソピラザム（シン－エピマー性エナンチオマー　１Ｓ，４Ｒ，９Ｓ）、（２．０１６）イソピラザム（シン－エピマー性ラセミ化合物　１ＲＳ，４ＳＲ，９ＲＳ）、（２．０１７）ペンフルフェン、（２．０１８）ペンチオピラド、（２．０１９）ピジフルメトフェン（ｐｙｄｉｆｌｕｍｅｔｏｆｅｎ）、（２．０２０）ピラジフルミド、（２．０２１）セダキサン、（２．０２２）１，３－ジメチル－Ｎ－（１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル）－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０２３）１，３－ジメチル－Ｎ－［（３Ｒ）－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０２４）１，３－ジメチル－Ｎ－［（３Ｓ）－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０２５）１－メチル－３－（トリフルオロメチル）－Ｎ－［２’－（トリフルオロメチル）ビフェニル－２－イル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０２６）２－フルオロ－６－（トリフルオロメチル）－Ｎ－（１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル）ベンズアミド、（２．０２７）インピルフルキサム（３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－Ｎ－（１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル）－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド）、（２．０２８）３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－Ｎ－［（３Ｒ）－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０２９）３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－Ｎ－［（３Ｓ）－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３０）３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－（７－フルオロ－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３１）３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－［（３Ｒ）－７－フルオロ－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３２）３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－［（３Ｓ）－７－フルオロ－１，１，３－トリメチル－２，３－ジヒドロ－１Ｈ－インデン－４－イル］－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３３）５，８－ジフルオロ－Ｎ－［２－（２－フルオロ－４－｛［４－（トリフルオロメチル）ピリジン－２－イル］オキシ｝フェニル）エチル］キナゾリン－４－アミン、（２．０３４）Ｎ－（２－シクロペンチル－５－フルオロベンジル）－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３５）Ｎ－（２－ｔｅｒｔ－ブチル－５－メチルベンジル）－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３６）Ｎ－（２－ｔｅｒｔ－ブチルベンジル）－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３７）Ｎ－（５－クロロ－２－エチルベンジル）－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３８）Ｎ－（５－クロロ－２－イソプロピルベンジル）－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０３９）Ｎ－［（１Ｒ，４Ｓ）－９－（ジクロロメチレン）－１，２，３，４－テトラヒドロ－１，４－メタノナフタレン－５－イル］－３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４０）Ｎ－［（１Ｓ，４Ｒ）－９－（ジクロロメチレン）－１，２，３，４－テトラヒドロ－１，４－メタノナフタレン－５－イル］－３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４１）Ｎ－［１－（２，４－ジクロロフェニル）－１－メトキシプロパン－２－イル］－３－（ジフルオロメチル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４２）Ｎ－［２－クロロ－６－（トリフルオロメチル）ベンジル］－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４３）Ｎ－［３－クロロ－２－フルオロ－６－（トリフルオロメチル）ベンジル］－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４４）Ｎ－［５－クロロ－２－（トリフルオロメチル）ベンジル］－Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４５）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－Ｎ－［５－メチル－２－（トリフルオロメチル）ベンジル］－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４６）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－Ｎ－（２－フルオロ－６－イソプロピルベンジル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４７）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－Ｎ－（２－イソプロピル－５－メチルベンジル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０４８）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－Ｎ－（２－イソプロピルベンジル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボチオアミド、（２．０４９）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－Ｎ－（２－イソプロピルベンジル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５０）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－Ｎ－（５－フルオロ－２－イソプロピルベンジル）－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５１）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－（２－エチル－４，５－ジメチルベンジル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５２）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－（２－エチル－５－フルオロベンジル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５３）Ｎ－シクロプロピル－３－（ジフルオロメチル）－Ｎ－（２－エチル－５－メチルベンジル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５４）Ｎ－シクロプロピル－Ｎ－（２－シクロプロピル－５－フルオロベンジル）－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５５）Ｎ－シクロプロピル－Ｎ－（２－シクロプロピル－５－メチルベンジル）－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド、（２．０５６）Ｎ－シクロプロピル－Ｎ－（２－シクロプロピルベンジル）－３－（ジフルオロメチル）－５－フルオロ－１－メチル－１Ｈ－ピラゾール－４－カルボキサミド。
（３）　複合体ＩＩＩにおける呼吸鎖の阻害薬、例えば、（３．００１）アメトクトラジン、（３．００２）アミスルブロム、（３．００３）アゾキシストロビン、（３．００４）クメトキシストロビン（ｃｏｕｍｅｔｈｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ）、（３．００５）クモキシストロビン、（３．００６）シアゾファミド、（３．００７）ジモキシストロビン、（３．００８）エノキサストロビン、（３．００９）ファモキサドン、（３．０１０）フェンアミドン、（３．０１１）フルフェノキシストロビン（ｆｌｕｆｅｎｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ）、（３．０１２）フルオキサストロビン、（３．０１３）クレソキシム－メチル、（３．０１４）メトミノストロビン、（３．０１５）オリサストロビン、（３．０１６）ピコキシストロビン、（３．０１７）ピラクロストロビン、（３．０１８）ピラメトストロビン、（３．０１９）ピラオキシストロビン、（３．０２０）トリフロキシストロビン、（３．０２１）（２Ｅ）－２－｛２－［（｛［（１Ｅ）－１－（３－｛［（Ｅ）－１－フルオロ－２－フェニルビニル］オキシ｝フェニル）エチリデン］アミノ｝オキシ）メチル］フェニル｝－２－（メトキシイミノ）－Ｎ－メチルアセトアミド、（３．０２２）（２Ｅ，３Ｚ）－５－｛［１－（４－クロロフェニル）－１Ｈ－ピラゾール－３－イル］オキシ｝－２－（メトキシイミノ）－Ｎ，３－ジメチルペンタ－３－エンアミド、（３．０２３）（２Ｒ）－２－｛２－［（２，５－ジメチルフェノキシ）メチル］フェニル｝－２－メトキシ－Ｎ－メチルアセトアミド、（３．０２４）（２Ｓ）－２－｛２－［（２，５－ジメチルフェノキシ）メチル］フェニル｝－２－メトキシ－Ｎ－メチルアセトアミド、（３．０２５）（３Ｓ，６Ｓ，７Ｒ，８Ｒ）－８－ベンジル－３－［（｛３－［（イソブチリルオキシ）メトキシ］－４－メトキシピリジン－２－イル｝カルボニル）アミノ］－６－メチル－４，９－ジオキソ－１，５－ジオキソナン－７－イル　２－メチルプロパノエート、（３．０２６）２－｛２－［（２，５－ジメチルフェノキシ）メチル］フェニル｝－２－メトキシ－Ｎ－メチルアセトアミド、（３．０２７）Ｎ－（３－エチル－３，５，５－トリメチルシクロヘキシル）－３－ホルムアミド－２－ヒドロキシベンズアミド、（３．０２８）（２Ｅ，３Ｚ）－５－｛［１－（４－クロロ－２－フルオロフェニル）－１Ｈ－ピラゾール－３－イル］オキシ｝－２－（メトキシイミノ）－Ｎ，３－ジメチルペンタ－３－エンアミド。
（４）　有糸分裂及び細胞分裂の阻害薬、例えば、（４．００１）カルベンダジム、（４．００２）ジエトフェンカルブ、（４．００３）エタボキサム、（４．００４）フルオピコリド、（４．００５）ペンシクロン、（４．００６）チアベンダゾール、（４．００７）チオファネート－メチル、（４．００８）ゾキサミド、（４．００９）３－クロロ－４－（２，６－ジフルオロフェニル）－６－メチル－５－フェニルピリダジン、（４．０１０）３－クロロ－５－（４－クロロフェニル）－４－（２，６－ジフルオロフェニル）－６－メチルピリダジン、（４．０１１）３－クロロ－５－（６－クロロピリジン－３－イル）－６－メチル－４－（２，４，６－トリフルオロフェニル）ピリダジン、（４．０１２）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２，６－ジフルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１３）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－ブロモ－６－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１４）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－ブロモフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１５）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－クロロ－６－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１６）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－クロロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１７）４－（２－ブロモ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１８）４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２，６－ジフルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０１９）４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－クロロ－６－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０２０）４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－クロロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０２１）４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－Ｎ－（２－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０２２）４－（４－クロロフェニル）－５－（２，６－ジフルオロフェニル）－３，６－ジメチルピリダジン、（４．０２３）Ｎ－（２－ブロモ－６－フルオロフェニル）－４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０２４）Ｎ－（２－ブロモフェニル）－４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン、（４．０２５）Ｎ－（４－クロロ－２，６－ジフルオロフェニル）－４－（２－クロロ－４－フルオロフェニル）－１，３－ジメチル－１Ｈ－ピラゾール－５－アミン。
（５）　多部位に活性を示し得る化合物、例えば、（５．００１）ボルドー液、（５．００２）カプタホール、（５．００３）キャプタン、（５．００４）クロロタロニル（ｃｈｌｏｒｔｈａｌｏｎｉｌ）、（５．００５）水酸化銅、（５．００６）ナフテン酸銅、（５．００７）酸化銅、（５．００８）塩基性塩化銅、（５．００９）硫酸銅（２＋）、（５．０１０）ジチアノン、（５．０１１）ドジン、（５．０１２）ホルペット、（５．０１３）マンゼブ、（５．０１４）マンネブ、（５．０１５）メチラム、（５．０１６）メチラム亜鉛（ｚｉｎｃ　ｍｅｔｉｒａｍ）、（５．０１７）オキシン銅（ｃｏｐｐｅｒ　ｏｘｉｎｅ）、（５．０１８）プロピネブ、（５．０１９）硫黄及び硫黄剤、例えば、多硫化カルシウム、（５．０２０）チウラム、（５．０２１）ジネブ、（５．０２２）ジラム。
（６）　宿主の防御を誘発し得る化合物、例えば、（６．００１）アシベンゾラル－Ｓ－メチル、（６．００２）イソチアニル、（６．００３）プロベナゾール、（６．００４）チアジニル。
（７）　アミノ酸及び／又はタンパク質の生合成の阻害薬、例えば、（７．００１）シプロジニル、（７．００２）カスガマイシン、（７．００３）カスガマイシン塩酸塩水和物、（７．００４）オキシテトラサイクリン、（７．００５）ピリメタニル、（７．００６）３－（５－フルオロ－３，３，４，４－テトラメチル－３，４－ジヒドロイソキノリン－１－イル）キノリン。
（８）　ＡＴＰ産生阻害薬、例えば、（８．００１）シルチオファム。
（９）　細胞壁合成阻害薬、例えば、（９．００１）ベンチアバリカルブ、（９．００２）ジメトモルフ、（９．００３）フルモルフ、（９．００４）イプロバリカルブ、（９．００５）マンジプロパミド、（９．００６）ピリモルフ（ｐｙｒｉｍｏｒｐｈ）、（９．００７）バリフェナレート、（９．００８）（２Ｅ）－３－（４－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）－３－（２－クロロピリジン－４－イル）－１－（モルホリン－４－イル）プロパ－２－エン－１－オン、（９．００９）（２Ｚ）－３－（４－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）－３－（２－クロロピリジン－４－イル）－１－（モルホリン－４－イル）プロパ－２－エン－１－オン。
（１０）　脂質及び膜の合成の阻害薬、例えば、（１０．００１）プロパモカルブ、（１０．００２）プロパモカルブ塩酸塩、（１０．００３）トルクロホス－メチル。
（１１）　メラニン生合成阻害薬、例えば、（１１．００１）トリシクラゾール、（１１．００２）２，２，２－トリフルオロエチル｛３－メチル－１－［（４－メチルベンゾイル）アミノ］ブタン－２－イル｝カルバメート。
（１２）　核酸合成阻害薬、例えば、（１２．００１）ベナラキシル、（１２．００２）ベナラキシル－Ｍ（キララキシル）、（１２．００３）メタラキシル、（１２．００４）メタラキシル－Ｍ（メフェノキサム）。
（１３）　シグナル伝達阻害薬、例えば、（１３．００１）フルジオキソニル、（１３．００２）イプロジオン、（１３．００３）プロシミドン、（１３．００４）プロキナジド、（１３．００５）キノキシフェン、（１３．００６）ビンクロゾリン。
（１４）　脱共役剤として作用し得る化合物、例えば、（１４．００１）フルアジナム、（１４．００２）メプチルジノカップ。
（１５）　さらなる化合物、例えば、（１５．００１）アブシジン酸、（１５．００２）ベンチアゾール、（１５．００３）ベトキサジン、（１５．００４）カプシマイシン（ｃａｐｓｉｍｙｃｉｎ）、（１５．００５）カルボン、（１５．００６）キノメチオネート、（１５．００７）クフラネブ、（１５．００８）シフルフェナミド、（１５．００９）シモキサニル、（１５．０１０）シプロスルファミド、（１５．０１１）フルチアニル、（１５．０１２）ホセチル－アルミニウム、（１５．０１３）ホセチル－カルシウム、（１５．０１４）ホセチル－ナトリウム、（１５．０１５）イソチオシアン酸メチル、（１５．０１６）メトラフェノン、（１５．０１７）ミルディオマイシン、（１５．０１８）ナタマイシン、（１５．０１９）ジメチルジチオカルバミン酸ニッケル、（１５．０２０）ニトロタル－イソプロピル、（１５．０２１）オキサモカルブ（ｏｘａｍｏｃａｒｂ）、（１５．０２２）オキサチアピプロリン、（１５．０２３）オキシフェンチイン（ｏｘｙｆｅｎｔｈｉｉｎ）、（１５．０２４）ペンタクロロフェノール及び塩、（１５．０２５）ホスホン酸及びその塩、（１５．０２６）プロパモカルブ－ホセチレート（ｐｒｏｐａｍｏｃａｒｂ－ｆｏｓｅｔｙｌａｔｅ）、（１５．０２７）ピリオフェノン（クラザフェノン（ｃｈｌａｚａｆｅｎｏｎｅ））、（１５．０２８）テブフロキン、（１５．０２９）テクロフタラム、（１５．０３０）トルニファニド、（１５．０３１）１－（４－｛４－［（５Ｒ）－５－（２，６－ジフルオロフェニル）－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－３－イル］－１，３－チアゾール－２－イル｝ピペリジン－１－イル）－２－［５－メチル－３－（トリフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］エタノン、（１５．０３２）１－（４－｛４－［（５Ｓ）－５－（２，６－ジフルオロフェニル）－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－３－イル］－１，３－チアゾール－２－イル｝ピペリジン－１－イル）－２－［５－メチル－３－（トリフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］エタノン、（１５．０３３）２－（６－ベンジルピリジン－２－イル）キナゾリン、（１５．０３４）２，６－ジメチル－１Ｈ，５Ｈ－［１，４］ジチイノ［２，３－ｃ：５，６－ｃ’］ジピロール－１，３，５，７（２Ｈ，６Ｈ）－テトロン、（１５．０３５）２－［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］－１－［４－（４－｛５－［２－（プロパ－２－イン－１－イルオキシ）フェニル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－３－イル｝－１，３－チアゾール－２－イル）ピペリジン－１－イル］エタノン、（１５．０３６）２－［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］－１－［４－（４－｛５－［２－クロロ－６－（プロパ－２－イン－１－イルオキシ）フェニル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－３－イル｝－１，３－チアゾール－２－イル）ピペリジン－１－イル］エタノン、（１５．０３７）２－［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］－１－［４－（４－｛５－［２－フルオロ－６－（プロパ－２－イン－１－イルオキシ）フェニル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－３－イル｝－１，３－チアゾール－２－イル）ピペリジン－１－イル］エタノン、（１５．０３８）２－［６－（３－フルオロ－４－メトキシフェニル）－５－メチルピリジン－２－イル］キナゾリン、（１５．０３９）２－｛（５Ｒ）－３－［２－（１－｛［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］アセチル｝ピペリジン－４－イル）－１，３－チアゾール－４－イル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－５－イル｝－３－クロロフェニル　メタンスルホネート、（１５．０４０）２－｛（５Ｓ）－３－［２－（１－｛［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］アセチル｝ピペリジン－４－イル）－１，３－チアゾール－４－イル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－５－イル｝－３－クロロフェニル　メタンスルホネート、（１５．０４１）２－｛２－［（７，８－ジフルオロ－２－メチルキノリン－３－イル）オキシ］－６－フルオロフェニル｝プロパン－２－オール、（１５．０４２）２－｛２－フルオロ－６－［（８－フルオロ－２－メチルキノリン－３－イル）オキシ］フェニル｝プロパン－２－オール、（１５．０４３）２－｛３－［２－（１－｛［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］アセチル｝ピペリジン－４－イル）－１，３－チアゾール－４－イル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－５－イル｝－３－クロロフェニル　メタンスルホネート、（１５．０４４）２－｛３－［２－（１－｛［３，５－ビス（ジフルオロメチル）－１Ｈ－ピラゾール－１－イル］アセチル｝ピペリジン－４－イル）－１，３－チアゾール－４－イル］－４，５－ジヒドロ－１，２－オキサゾール－５－イル｝フェニル　メタンスルホネート、（１５．０４５）２－フェニルフェノール及びその塩、（１５．０４６）３－（４，４，５－トリフルオロ－３，３－ジメチル－３，４－ジヒドロイソキノリン－１－イル）キノリン、（１５．０４７）３－（４，４－ジフルオロ－３，３－ジメチル－３，４－ジヒドロイソキノリン－１－イル）キノリン、（１５．０４８）４－アミノ－５－フルオロピリミジン－２－オール（互変異性形態：４－アミノ－５－フルオロピリミジン－２（１Ｈ）－オン）、（１５．０４９）４－オキソ－４－［（２－フェニルエチル）アミノ］酪酸、（１５．０５０）５－アミノ－１，３，４－チアジアゾール－２－チオール、（１５．０５１）５－クロロ－Ｎ’－フェニル－Ｎ’－（プロパ－２－イン－１－イル）チオフェン　２－スルホノヒドラジド、（１５．０５２）５－フルオロ－２－［（４－フルオロベンジル）オキシ］ピリミジン－４－アミン、（１５．０５３）５－フルオロ－２－［（４－メチルベンジル）オキシ］ピリミジン－４－アミン、（１５．０５４）９－フルオロ－２，２－ジメチル－５－（キノリン－３－イル）－２，３－ジヒドロ－１，４－ベンゾオキサゼピン、（１５．０５５）ブタ－３－イン－１－イル｛６－［（｛［（Ｚ）－（１－メチル－１Ｈ－テトラゾール－５－イル）（フェニル）メチレン］アミノ｝オキシ）メチル］ピリジン－２－イル｝カルバメート、（１５．０５６）（２Ｚ）－３－アミノ－２－シアノ－３－フェニルアクリル酸エチル、（１５．０５７）フェナジン－１－カルボン酸、（１５．０５８）３，４，５－トリヒドロキシ安息香酸プロピル、（１５．０５９）キノリン－８－オール、（１５．０６０）キノリン－８－オールスルフェート（２：１）、（１５．０６１）｛６－［（｛［（１－メチル－１Ｈ－テトラゾール－５－イル）（フェニル）メチレン］アミノ｝オキシ）メチル］ピリジン－２－イル｝カルバミン酸ｔｅｒｔ－ブチル。
　微生物剤、有益生物として、特に、細菌類、菌類、酵母類、植物抽出物及び微生物によって形成される生成物（例えば、タンパク質及び二次代謝産物）などがある。
　細菌類、例えば、芽胞形成性細菌、根にコロニーを形成する細菌及び生物学的殺虫剤、殺菌剤又は殺線虫剤として作用する細菌などがある。
　上記細菌類の例は、以下のものである：
バシルス・アミロリクエファシエンス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ）株ＦＺＢ４２（ＤＳＭ　２３１１７９）、又は、バシルス・セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｃｅｒｅｕｓ）、特に、バシルス・セレウス（Ｂ．ｃｅｒｅｕｓ）株ＣＮＣＭ　Ｉ－１５６２、又は、バシルス・フィルムス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｆｉｒｍｕｓ）株Ｉ－１５８２（受託番号　ＣＮＣＭ　Ｉ－１５８２）、又は、バシルス・プミルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｕｍｉｌｕｓ）、特に、株ＧＢ３４（受託番号　ＡＴＣＣ　７００８１４）及び株ＱＳＴ２８０８（受託番号　ＮＲＲＬ　Ｂ－３００８７）、又は、バシルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、特に、株ＧＢ０３（受託番号　ＡＴＣＣ　ＳＤ－１３９７）、又は、バシルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）株ＱＳＴ７１３（受託番号　ＮＲＲＬ　Ｂ－２１６６１）、又は、バシルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｕｂｔｉｌｉｓ）株ＯＳＴ　３０００２（受託番号　ＮＲＲＬ　Ｂ－５０４２１）、バシルス・ツリンギエンシス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ）、特に、バシルス・ツリンギエンシス　亜種　イスラエレンシス（Ｂ．　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐｅｃｉｅｓ　ｉｓｒａｅｌｅｎｓｉｓ）（抗原型　Ｈ－１４）株ＡＭ６５－５２（受託番号　ＡＴＣＣ　１２７６）、又は、バシルス・ツリンギエンシス　亜種　アイザワイ（Ｂ．　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐ．　ａｉｚａｗａｉ）、特に、株ＡＢＴＳ－１８５７（ＳＤ－１３７２）、又は、バシルス・ツリンギエンシス　亜種　クルスタキ（Ｂ．　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐ．　ｋｕｒｓｔａｋｉ）株ＨＤ－１、又は、バシルス・ツリンギエンシス　亜種　テネブリオニス（Ｂ．　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ　ｓｕｂｓｐ．　ｔｅｎｅｂｒｉｏｎｉｓ）株ＮＢ　１７６（ＳＤ－５４２８）、パステウリア・ペネトランス（Ｐａｓｔｅｕｒｉａ　ｐｅｎｅｔｒａｎｓ）、パステウリア属種（Ｐａｓｔｅｕｒｉａ　ｓｐｐ．）（ロチレンクルス・レニホルミス（Ｒｏｔｙｌｅｎｃｈｕｌｕｓ　ｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）線虫）－ＰＲ３（受託番号　ＡＴＣＣ　ＳＤ－５８３４）、ストレプトミセス・ミクロフラブス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ　ｍｉｃｒｏｆｌａｖｕｓ）株ＡＱ６１２１（＝　ＱＲＤ　３１．０１３、ＮＲＲＬ　Ｂ－５０５５０）、ストレプトミセス・ガルブス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ　ｇａｌｂｕｓ）株ＡＱ　６０４７（受託番号　ＮＲＲＬ　３０２３２）。
　菌類及び酵母類の例は、以下のものである：
ベアウベリア・バシアナ（Ｂｅａｕｖｅｒｉａ　ｂａｓｓｉａｎａ）、特に、株ＡＴＣＣ　７４０４０、コニオチリウム・ミニタンス（Ｃｏｎｉｏｔｈｙｒｉｕｍ　ｍｉｎｉｔａｎｓ）、特に、株ＣＯＮ／Ｍ／９１－８（受託番号　ＤＳＭ－９６６０）、レカニシリウム属種（Ｌｅｃａｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｓｐｐ．）、特に、株ＨＲＯ　ＬＥＣ　１２、レカニシリウム・レカニイ（Ｌｅｃａｎｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｌｅｃａｎｉｉ）（以前は、ベルチシリウム・レカニイ（Ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍ　ｌｅｃａｎｉｉ）として知られていた）、特に、株ＫＶ０１、メタリジウム・アニソプリアエ（Ｍｅｔａｒｈｉｚｉｕｍ　ａｎｉｓｏｐｌｉａｅ）、特に、株Ｆ５２（ＤＳＭ３８８４／　ＡＴＣＣ　９０４４８）、メトスクニコウィア・フルクチコラ（Ｍｅｔｓｃｈｎｉｋｏｗｉａ　ｆｒｕｃｔｉｃｏｌａ）、特に、株ＮＲＲＬ　Ｙ－３０７５２、パエシロミセス・フモソロセウス（Ｐａｅｃｉｌｏｍｙｃｅｓ　ｆｕｍｏｓｏｒｏｓｅｕｓ）（新規：イサリア・フモソロセア（Ｉｓａｒｉａ　ｆｕｍｏｓｏｒｏｓｅａ））、特に、株ＩＦＰＣ　２００６１３又は株Ａｐｏｐｋａ　９７（受託番号　ＡＴＣＣ　２０８７４）、パエシロミセス・リラシヌス（Ｐａｅｃｉｌｏｍｙｃｅｓ　ｌｉｌａｃｉｎｕｓ）、特に、パエシロミセス・リラシヌス（Ｐ．　ｌｉｌａｃｉｎｕｓ）株２５１（ＡＧＡＬ　８９／０３０５５０）、タラロミセス・フラブス（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ　ｆｌａｖｕｓ）、特に、株Ｖ１１７ｂ、トリコデルマ・アトロビリデ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ａｔｒｏｖｉｒｉｄｅ）、特に、株ＳＣ１（受託番号　ＣＢＳ　１２２０８９）、トリコデルマ・ハルジアヌム（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｈａｒｚｉａｎｕｍ）、特に、トリコデルマ・ハルジアヌム・リファイ（Ｔ．　ｈａｒｚｉａｎｕｍ　ｒｉｆａｉ）Ｔ３９（受託番号　ＣＮＣＭ　Ｉ－９５２）。
　ウイルス類の例は、以下のものである：
リンゴコカクモンハマキ（Ａｄｏｘｏｐｈｙｅｓ　ｏｒａｎａ）顆粒病ウイルス（ＧＶ）、コドリンガ（Ｃｙｄｉａ　ｐｏｍｏｎｅｌｌａ）顆粒病ウイルス（ＧＶ）、オオタバコガ（Ｈｅｌｉｃｏｖｅｒｐａ　ａｒｍｉｇｅｒａ）核多角体病ウイルス（ＮＰＶ）、シロイチモジヨトウ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｅｘｉｇｕａ）ｍＮＰＶ、ツマジロクサヨトウ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）ｍＮＰＶ、エジプトヨトウ（Ａｆｒｉｃａｎ　ｃｏｔｔｏｎ　ｌｅａｆｗｏｒｍ）（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｌｉｔｔｏｒａｌｉｓ）ＮＰＶ。
　植物又は植物の部分又は植物の器官に対して「接種源」として加えられて、それらの特定の特性によって植物の成長及び植物の健康を増進する細菌類及び菌類も、同様に包含される。例としては、以下のものをあげることができる：
アグロバクテリウム属種（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｓｐｐ．）、アゾリゾビウム・カウリノダンス（Ａｚｏｒｈｉｚｏｂｉｕｍ　ｃａｕｌｉｎｏｄａｎｓ）、アゾスピリルム属種（Ａｚｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ　ｓｐｐ．）、アゾトバクテル属種（Ａｚｏｔｏｂａｃｔｅｒ　ｓｐｐ．）、ブラジリゾビウム属種（Ｂｒａｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ　ｓｐｐ．）、ブルクホルデリア属種（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ　ｓｐｐ．）、特に、ブルクホルデリア・セパシア（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ　ｃｅｐａｃｉａ）（以前は、プセウドモナス・セパシア（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｃｅｐａｃｉａ）として知られていた）、ギガスポラ属種（Ｇｉｇａｓｐｏｒａ　ｓｐｐ．）又はギガスポラ・モノスポルム（Ｇｉｇａｓｐｏｒａ　ｍｏｎｏｓｐｏｒｕｍ）、グロムス属種（Ｇｌｏｍｕｓ　ｓｐｐ．）、ラッカリア属種（Ｌａｃｃａｒｉａ　ｓｐｐ．）、ラクトバシルス・ブクネリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｕｃｈｎｅｒｉ）、パラグロムス属種（Ｐａｒａｇｌｏｍｕｓ　ｓｐｐ．）、ピソリツス・チンクトルス（Ｐｉｓｏｌｉｔｈｕｓ　ｔｉｎｃｔｏｒｕｓ）、プセウドモナス属種（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｓｐｐ．）、リゾビウム属種（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ　ｓｐｐ．）、特に、リゾビウム・トリホリイ（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ　ｔｒｉｆｏｌｉｉ）、リゾポゴン属種（Ｒｈｉｚｏｐｏｇｏｎ　ｓｐｐ．）、スクレロデルマ属種（Ｓｃｌｅｒｏｄｅｒｍａ　ｓｐｐ．）、スイルス属種（Ｓｕｉｌｌｕｓ　ｓｐｐ．）、ストレプトミセス属種（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ　ｓｐｐ．）。
　植物抽出物及び微生物によって形成される生成物（これは、タンパク質及び二次代謝産物を包含する）の例は、以下のものである：
ニンニク（Ａｌｌｉｕｍ　ｓａｔｉｖｕｍ）、ニガヨモギ（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｂｓｉｎｔｈｉｕｍ）、アザジラクチン（ａｚａｄｉｒａｃｈｔｉｎ）、Ｂｉｏｋｅｅｐｅｒ　ＷＰ、カッシア・ニグリカンス（Ｃａｓｓｉａ　ｎｉｇｒｉｃａｎｓ）、セラストルス・アングラツス（Ｃｅｌａｓｔｒｕｓ　ａｎｇｕｌａｔｕｓ）、アメリカアリタソウ（Ｃｈｅｎｏｐｏｄｉｕｍ　ａｎｔｈｅｌｍｉｎｔｉｃｕｍ）、キチン、Ａｒｍｏｕｒ－Ｚｅｎ、セイヨウオシダ（Ｄｒｙｏｐｔｅｒｉｓ　ｆｉｌｉｘ－ｍａｓ）、スギナ（Ｅｑｕｉｓｅｔｕｍ　ａｒｖｅｎｓｅ）、Ｆｏｒｔｕｎｅ　Ａｚａ、Ｆｕｎｇａｓｔｏｐ、Ｈｅａｄｓ　Ｕｐ（キノア（Ｃｈｅｎｏｐｏｄｉｕｍ　ｑｕｉｎｏａ）サポニン抽出物）、除虫菊（ｐｙｒｅｔｈｒｕｍ／ｐｙｒｅｔｈｒｉｎｓ）、スリナムニガキ（Ｑｕａｓｓｉａ　ａｍａｒａ）、コナラ属（Ｑｕｅｒｃｕｓ）、キラヤ属（Ｑｕｉｌｌａｊａ）、Ｒｅｇａｌｉａ、（「ＲｅｑｕｉｅｍＴＭ　Ｉｎｓｅｃｔｉｃｉｄｅ」）、ロテノン、リアニア／リアノジン、ヒレハリソウ（Ｓｙｍｐｈｙｔｕｍ　ｏｆｆｉｃｉｎａｌｅ）、ヨモギギク（Ｔａｎａｃｅｔｕｍ　ｖｕｌｇａｒｅ）、チモール、Ｔｒｉａｃｔ　７０、ＴｒｉＣｏｎ、キンレンカ（Ｔｒｏｐａｅｕｌｕｍ　ｍａｊｕｓ）、セイヨウイラクサ（Ｕｒｔｉｃａ　ｄｉｏｉｃａ）、Ｖｅｒａｔｒｉｎ、セイヨウヤドリギ（Ｖｉｓｃｕｍ　ａｌｂｕｍ）、アブラナ科（Ｂｒａｓｓｉｃａｃｅａｅ）抽出物、特に、ナタネ粉末又はカラシナ粉末。
　本発明において、薬害軽減剤とは、例えば、ベノキサコール、クロキントセット（－メキシル）、シオメトリニル、シプロスルファミド、ジクロルミド、フェンクロラゾール（－エチル）、フェンクロリム、フルラゾール、フルキソフェニム、フリラゾール、イソキサジフェン（－エチル）、メフェンピル（－ジエチル）、ナフタル酸無水物、オキサベトリニル、２－メトキシ－Ｎ－（｛４－［（メチルカルバモイル）アミノ］フェニル｝スルホニル）ベンズアミド（ＣＡＳ　１２９５３１－１２－０）、４－（ジクロロアセチル）－１－オキサ－４－アザスピロ［４．５］デカン（ＣＡＳ　７１５２６－０７－３）、２，２，５－トリメチル－３－（ジクロロアセチル）－１，３－オキサゾリジン（ＣＡＳ　５２８３６－３１－４）などである。
　本発明において、殺スクミリンゴガイ剤として、カルタップ、ＩＢＰ、メタアルデヒド、リン酸第二鉄等が挙げられる。
　本発明において、酸素発生剤として、カルパー等が挙げられる。
　本発明において、硫化物イオン生成抑制剤として、モリブデン酸塩等が挙げられる。
　本発明おいて、肥料として、具体的にはアンモニウム含有肥料、カリウム含有肥料又はリン含有肥料等が挙げられる。
　本発明において、バイオスティミュラントとは直截的には「生物刺激剤」を意味し、植物や土壌により良い生理状態をもたらす様々な物質や微生物を意味する。これらは、イネやその周辺環境が本来持つ自然な力を活用することにより、植物の健全さ、ストレスへの耐性、収量と品質、収穫後の状態及び貯蔵などについて、イネに良好な影響を与えるものである。
　本発明において、有効成分は慣習的な製剤に調製され、紐、緑化針苗及び／又は緑化針苗の種子体に施用される。施用とは製剤が液体であれば、紐又は苗紐に散布、浸漬することを意味し、製剤が固体であれば紐又は苗紐に固定又は封入することを意味し、種子体に被覆処理することも意味する。
　慣習的な製剤は、例えば、以下のものである：　水溶性液剤（ＳＬ）、乳剤（ＥＣ）、水中油型エマルション剤（ＥＷ）、懸濁製剤（ＳＣ、ＳＥ、ＦＳ、ＯＤ）、顆粒水和剤（ＷＧ）、粒剤（ＧＲ）、及び、カプセル製剤（ｃａｐｓｕｌｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｅｓ）（ＣＳ）；　これらの製剤型及び別の可能な製剤型は、例えば、以下のものに記載されている：　Ｃｒｏｐ　Ｌｉｆｅ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　ａｎｄ　ｉｎ　Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ　Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ，　Ｍａｎｕａｌ　ｏｎ　ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｕｓｅ　ｏｆ　ＦＡＯ　ａｎｄ　ＷＨＯ　ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ　ｆｏｒ　ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ，　ＦＡＯ　Ｐｌａｎｔ　Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　Ｐａｐｅｒｓ　－１７３（作製元：ｔｈｅ　ＦＡＯ／ＷＨＯ　Ｊｏｉｎｔ　Ｍｅｅｔｉｎｇ　ｏｎ　Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ　Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ，　２００４，　ＩＳＢＮ：９２５１０４８５７６）。
　上記製剤が、水溶性液剤、乳剤、水中油型エマルション剤、懸濁製剤、顆粒水和剤等の場合は、有効成分は紐にしみ込むように施用することができ、粒剤（ＧＲ）及びカプセル製剤等の場合は、紐に固定又は封入させて施用することができる。
　本発明の苗紐の一形態として、有効成分が種子体及び／又は苗紐を被覆している苗紐が挙げられる。その場合、水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で前記苗の種子体及び／又は苗紐がさらに被覆されていることが好ましい。
　また、種子体及び／又は苗紐が種子被覆材と有効成分の混合物によりを被覆されていることも可能である。
　この場合、有効成分にあらかじめ被覆された種子及び／又は種紐から緑化針苗及び／又は苗紐を調製することが好ましい。また、その場合、水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で前記種子及び／又は種紐がさらに被覆されていることが好ましく、又は種子被覆材と有効成分の混合物により前記種子及び／又は種紐が被覆されていることが好ましい。
　前記種子被覆材として、高分子樹脂の種子被覆材が挙げられるが、具体的には酢酸ビニルアクリル共重合樹脂、酢酸ビニルベオバ共重合樹脂、酢酸ビニルマレート共重合樹脂、酢酸ビニルエチレン共重合樹脂、酢酸ビニルエチレン塩化ビニル共重合樹脂、アクリルスチレン共重合樹脂、アクリル共重合樹脂、ポリ酢酸ビニル樹脂、スチレンブタジエンゴムラテックス樹脂、エチレン－アクリル酸－２－エチルヘキシル－酢酸ビニル共重合体などが挙げられる。
　前記種子被覆材は、前記高分子樹脂の水中分散剤を既に有効成分で被覆されているイネの種子に被覆するか、若しくは前記水中分散体に有効成分を混合してイネの種子、種紐、苗紐に被覆するか、又はそれらの組み合わせで形成することができる。
　本発明の苗紐の製造方法が、種子を紐に固定又は封入するステップを含む場合は、以下に記載の方法で製造することができる。
種子を紐に固定又は封入するステップ、
種子を浸種、催芽するステップ、及び
種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを含み、
少なくとも種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを自然光及び／又は人工光の照射下で行う。
　種子を紐に固定又は封入する方法は、市販の紐（不織布）、イネ種子及びシードテープ（種子紐）製造装置を使用して、いわゆるシードテープを製造する方法に準じて行うこと
ができる。
　市販のシードテープを使用する場合、本発明の苗紐の製造方法は以下のようになる。
種子を浸種、催芽するステップ、及び
種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを含み、
少なくとも種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを自然光及び／又は人工光の照射下で行う。
　種子の浸種処理は、通常の方法で行う。例えば、１０～１５℃で、積算温度（日平均水温×日数）１００～１２０℃まで行う。
　種子の催芽処理は、通常の方法で行う。例えば、３０℃で、１～２日間行う。
　種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップは、第一葉方式で３．５葉期、好ましくは鞘葉～２．５葉期、より好ましくは１．０～２．０葉期まで生育させる。その間、毛管水、噴霧、滴下、灌水等により十分な水分を供給し、及び十分な空気を供給する。
　根部については、水田への定置時に冠根が隣接した株や紐に絡まない程度に伸長した状態が好ましい。即ち、苗紐を定置する際、苗紐をリールから送り出すときに断根が起こらない状態が好ましい。
　上記自然光及び／又は人工光（ここでは単に光ということがある）のうち自然光とは太陽光を意味し、直射光でも反射光でも透過光でもよい。また、人工光とは、蛍光灯、白熱灯、ＬＥＤなどの人工発光装置から発せられる光を意味する。照射する光の強度は緑化針苗が視覚的に確認できる程度に緑化することが可能である程度であればよく、８０ルクス以上、好適には３００ルクス以上であり、２５０００ルクス以上がさらに好適である。光照射の時間は緑化針苗の緑化が視覚的に確認できる程度で十分であり、連続的でも断続的でもよい。断続的な場合には、例えば日中の午前６時から午後６時迄照射して、夜間の午後６時から翌日の午前６時迄照射しないことを繰り返すことも可能である。
　光照射の際の温度は、１０℃～３５℃であり、好ましくは１５℃～３０℃であり、有効積算温度（（日平均気温－成長下限温度）×日数）６０～２００℃で管理する。
　光照射の際の湿度は、７５％～１００％であり、好ましくは９０％～１００％であり、断続的に水がかかる状態がさらに好ましい。
　光照射時には、紐及びイネ種子の腐敗を防ぐために、次亜塩素酸塩水溶液、殺菌剤等の殺菌・殺細菌成分を含んだ水によって水分を供給することが好ましい。次亜塩素酸塩は、次亜塩素酸とアルカリ金属又はアルカリ土類金属との塩であって、具体的には次亜塩素酸ナトリウム、次亜塩素酸カルシウムが含まれる。
　本発明の苗紐の製造方法の一形態として、種子を浸種、催芽するステップ、種子を発芽、発根、それらを生育させるステップ、自然光及び／又は人工光を照射するステップ及び／又は有効成分を施用するステップを、種子を固定又は封入した紐（種子紐ともいう）を筒状、円筒形状又は輪状に巻いた状態で行う方法が挙げられる。
　種子紐が巻かれた筒状、円筒形状又は輪状の形態は、巻かれた種子紐の内側の種子が緑化針苗に生育するのに十分な光照射が可能であれば、大きさ、形に制限はない。上記のリールに種子紐を巻くことでも調製することができる。紐の巻き方が玉巻き、無芯巻き、カセ巻き等の場合には、筒形の支持部材が必要でないので、紐が巻かれた筒状、円筒形状又は輪状の形態の内側から光の照射が可能である。
　本発明に係る苗紐の製造方法の一形態として、あらかじめ農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分で被覆されている種子を使用するか、さらに水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で被覆されている種子を使用するか又は／及び前記各ステップと同時若しくは前後に少なくとも１回有効成分を苗紐に施用する方法が挙げられる。
　本発明の苗紐は土壌表面から０～５ｃｍに定置又は埋設し、望ましくは１～５ｃｍに埋設することにより栽培することができる。また、土壌表面に苗紐を定置する場合には、さらに苗紐を抑え具で土壌表面に固定するか、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を水田土壌中に垂直方向に加圧して埋設させてもよく、苗紐を水田土壌中に埋設する場合には、水田土壌表面に作溝した溝の底部に苗紐を定置したのちに溝を閉じてもよい。前記抑え具の素材、形状等は特に限定されない。抑え具で固定する間隔又は苗紐を垂直方向に加圧する間隔は、１０ｃｍ以上、２０ｃｍ以上、３０ｃｍ以上、又は３０ｃｍ以下、５０ｃｍ以下、１ｍ以下、３ｍ以下、５ｍ以下が挙げられるが、これに限定されない。苗紐の固定は、苗紐を一定期間、例えば、緑化針苗が活着するまで、定置箇所から移動しないようにできれば足りる。
　本発明の苗紐、イネの種子、シードテープ（種紐）は、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置することにより栽培することができる（ここでは、溝置栽培ともいう）。この場合、苗紐を溝置する際、溝を埋め戻すことを意図していない。つまり、苗紐の溝底部への定置の直後に苗紐が完全に覆土されることを意図していない。緑化針苗の茎葉部が下に向いたまま苗紐が定置されるとき、茎葉部が上に向き直るための時間があるほうが好ましい。また、イネの種子又はシードテープが溝置されるとき、発芽まで十分な酸素の供給が必要である。したがって、苗紐又は種子体が完全に土壌中に埋設されるまでの時間は、１日以上、２日以上、３日以上、５日以上、７日以上が好ましい。また、苗紐又は種紐の場合には、さらに苗紐又は種紐を抑え具で溝の底部に固定するか、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を覆土して固定してもよい。前記抑え具の素材、形状等は特に限定されない。抑え具で固定する間隔又は覆土する間隔は、１０ｃｍ以上、２０ｃｍ以上、３０ｃｍ以上、又は３０ｃｍ以下、５０ｃｍ以下、１ｍ以下、３ｍ以下、５ｍ以下が挙げられるが、これに限定されない。苗紐の固定は、苗紐を一定期間、例えば、緑化針苗が活着するまで、定置箇所から移動しないようにできれば足りる。
　本発明の溝置栽培により、苗立ち率が改善し、倒伏が減少し、又は収量が改善する。
　上記効果は、本発明の苗紐を溝置栽培したときに限定されることなく、カルパー粉衣イネ籾、鉄コーティングイネ種子、シードテープに加工されたイネ種子等のイネの種子を溝置栽培したときも発揮される。特に鉄コーティング種子は、播種後発芽前に水田土壌中に埋没すると、酸欠又は硫化物イオンによる還元状態に置かれ発芽しなくなるため、土壌中に埋没しないように播種しなければならない。イネ籾を土壌表面に播種する鉄コーティング栽培は倒伏率が高くなる。本発明の溝置栽培は、イネの種子の直播栽培において、特に鉄コーティングイネ籾の栽培において、倒伏率を改善し、又は収量を改善することができる。
　本発明の溝置栽培に係る溝幅は特に制限はないが、通常の田植え時の条間が３０ｃｍであることを考えると、土壌表面の溝幅の上限は実質的に３０ｃｍとなり、１．５～３０ｃｍ、１．５～１０ｃｍが好ましく、２～７ｃｍがより好ましい。
　本発明の溝置栽培に係る溝の深さには特に制限はないが、実質上１５ｃｍ以下が好ましく、１～１０ｃｍ、１～６ｃｍが好ましく、２～４ｃｍがより好ましい。
　本発明の溝置栽培に係る溝の底面幅には特に制限はないが、０～５ｃｍが好ましく、０．５～３．５ｃｍがより好ましい。
　上記溝は、イネの種子、シードテープ又紐苗を定置する前に溝切装置により水田土壌表面に作溝することができる。溝の断面の形状は、前記溝切装置により、四角形、台形、Ｕ字型、半円形、Ｖ字型などにすることができる。溝の作成とシードテープ又苗紐の定置を同時にする場合は、例えば自転車タイヤのリム状のものの凹みの中にシードテープや苗紐を添わせて、リム状のもの垂直にして土壌表面に押し込みながら回転させ、作溝と同時にシードテープ又は苗紐の定置をすることができる。その際の溝の断面の形状は、シードテープ又は苗紐がリムの外周上の凹みにあることから、ほぼＷ型（ただし、中央部分の高さは水田面上面に達しない）になることがある。
　本発明は、さらに、イネの種子、シードテープ又苗紐を、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置するステップと同時及びその前後に、少なくとも１回、農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤及び肥料からなる群から選択される１以上の有効成分を種子、シードテープ、苗紐及び／又は土壌に施用することを特徴とするイネの栽培方法に関する。
　本発明を以下の具体的実施例により更に詳述する。ただし、本発明がそれら実施例に限定されることはない。
苗紐の調製
　本発明に使用する種子紐は市販されているものを利用した（（株）常総農興より購入）。綿１００％の不織布（商品名：メッシュロン）にイネ（コシヒカリ）の種籾を、４ｃｍ間隔で封入したシードテープを使用した。直径５ｃｍの塩ビ管（ＶＵ４０）の円筒形の支持部材の周囲に（厚さ：約０．５ｃｍ、直径：３１ｃｍ）の骨組みのみの円形スケルトン構造を有する第１及び第２の支持部材を内幅３ｃｍの距離で固定されているリールを作成し、上記シードテープ約６００ｍ分を巻き取った。上記リールに巻き取ったシードテープを６日間、室内暗所で浸種（平均気温：１５．２℃）し、その後、９日間自然光の下で催芽～緑化（平均気温：２１．９℃、有効積算温度１５１．７℃）した。プラスチック製の箱型桶に６％次亜塩素酸ナトリウムを１０００倍希釈した水（水と紐の腐敗、種籾由来の病害を防ぐ目的で使用）を入れ、発芽・緑化の間、縦方向に設置したリールの下半分が浸るようにし、１日当たり５～１０回反転させ、苗紐全体が均一に水、光、空気及び重力に晒されるようにして、１．４葉期の苗紐を調製した。
試験Ａ
　直径３７ｃｍ及び長側面長１０３ｃｍのプラスチック製の円柱状のローラーの外周に、内周直径３９ｃｍ、外周直径４２ｃｍ、幅２．６ｃｍ及び外周面に深さ１．０ｃｍの凹みを有する自転車のリム状のリングを上記円柱の外周にはめ込む形で長側面方向に３０ｃｍ間隔で４本装着した溝置用ローラーを作成した。よく代掻きをした湛水水田面（水位は０～０．５ｃｍであった）上を、上記溝置用ローラーを転がすと同時にリング上の凹みに沿わせて苗紐及び催芽処理をしたシードテープを導入し、作溝すると同時に苗紐及びシードテープを幅約２．５ｃｍ及び深さ約２ｃｍの溝の底部に設置した（溝置したともいう）（
条間３０ｃｍ、株間４ｃｍ、１株１本植え）。溝の底部に設置された苗紐及びシードテープは目視することができ、溝の埋め戻りは起きていなかった。並行して苗紐及びシードテープを水田表面に定置し栽培した（条間３０ｃｍ、株間４ｃｍ、１株１本植え）。その後通常の栽培管理（代掻き時に施肥（一発かんた君（１５－１５－１５－４）を３０ｋｇ／１０アール）、一般防除（溝置／定置から５日後にサンバード粒剤（３ｋｇ／１０アール）、シクロパック粒剤（６００ｇ／１０アール）、８日後にクリンチャージャンボ（１ｋｇ／１０アール）、２５日後にアクト粒剤（１ｋｇ／１０アール）を施用した））をし、溝置／表面定置から４３日目に苗立ち数の調査、生育程度の調査をし、穂数、１穂籾数、倒伏程度の調査は収穫適期行った。溝置／表面定置から約７か月後に収量構成要素の詳細な調査を行った。試験は５反復行った。
試験Ｂ
　円柱状のローラーの後ろにプラスチック製の溝の断面形状を有する板を配置した作溝装置を作成した。よく代掻きをした湛水水田面（水位は１～２ｃｍであった）上を、上記溝置装置を引いてローラーが田面を平準化した後に、作溝装置で作成した幅２ｃｍ及び深さ２ｃｍの溝の底部に苗紐を定置した（溝置したともいう）。試験Ａと比較して溝の崩壊（土の戻り）が速く、苗紐が土中に埋没し又は水中に浮遊したものがあった。また、溝置後の強い風雨により浮苗が頻発した。並行して鉄コーティング種子の水田表面播種による栽培（条間３０ｃｍ、株間１８ｃｍ、１株５～８粒撒き（４ｋｇ／１０アール））、慣行稚苗移植栽培（条間３０ｃｍ、株間１８ｃｍ、１株４～７本）を行った。溝置、播種又は移植後は通常の栽培管理（苗紐及び慣行稚苗移植苗には溝置／移植後２日目に一発かんた君（１５－１５－１５－４）（２５ｋｇ／１０アール）を、４３日後に一発かんた君（１５－１５－１５－４）（１５ｋｇ／１０アール）を施肥し、鉄コーティング栽培には側条施肥し、８０日後にすべての試験区にＮ－Ｋ化成（１５－１５）（１５ｋｇ／１０アール）を施肥した）、一般防除（全試験区で溝置／播種／移植日にサンバード粒剤（３ｋｇ／１０アール）、１３日後に忍フロアブル（５００ｍｌ／１０アール）を施用し、鉄コーティング種子は種子に殺虫剤を施用し、苗紐と慣行稚苗移植苗には溝置／移植日にトレボン粒剤（３ｋｇ／１０アール）を水面施用）をした。溝置／播種／移植日から冠根数の測定、２３日目に苗立ち数の調査、生育程度の調査及び倒伏程度の調査は随時行った。溝置／播種／移植から約７か月後に収量の調査を行った。
評価項目
　各調査項目の評価方法は以下のとおりである。
　発芽率は、使用又は播種した種子のうち９５％以上が発芽した場合を◎とし、９５～８５％を○とし、８５％未満を△とした。
　苗立ち率は、１平方メートル中の播種数当たりの苗立ちした株数を百分率で表示した。
　植傷みリスク（断根等）については、慣行稚苗移植苗が、移植時に田植え機が苗床から苗を機械的にちぎり取ることから、リスクはやや高い（△）とし、苗紐の場合、リールから苗紐をほどく際、根が紐の内部で生育していたりして、根が紐の外で生育していても紐や他の苗に絡んでいることが少ないので、リスクは低い（○）～なし（◎）とし、シードテープ、鉄コーティング栽培においては、上記のような断根のリスクがないので、リスクはなし（◎）とした。
　冠根の生育は、慣行稚苗移植苗（やや良：○）と視覚的に比較して、不良を×、やや不良を△、やや良を○、良を◎とした。試験Ｂにおけるイネの株元の断面図を図８～１０に示す。
　倒伏程度は、図１１の倒伏程度の判断基準を参照し、多～甚を×、中～多を△、少～中を○、無～少を◎とした。
試験結果
　試験Ａ及びＢの結果を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　試験Ｂでの苗紐溝置の苗立ち率が６０％と低いのは、溝置後の非常に強い風雨により浮苗が頻発したためであるが、その後、１株１本植えの効果により分げつが旺盛であった結果、移植栽培以上の有効茎数（穂数）が得られ、苗紐溝置栽培で収量５５９ｋｇ／１０アールを記録した。
　溝置栽培することで苗立ちが改善した。苗立ちには重力屈性が重要な役割を果たしていると考えられ、根冠（根の先端）に分布するコルメラ細胞内のアミロプラストなどがオーキシン輸送を主導していることから、リード針苗の根の植え傷み（＝断根）が少ないことが活着、苗立ちにかなり有利に働いていると考えられる。
　溝置栽培することによって冠根の生育が改善した。リード針苗は定置後の初期生育スピードが速く、一月ほどで移植イネに見劣りしない程に見えた。また、１株１本植えであることは、生育初～中期の株内競合がないことを意味し、従来の移植、直播栽培と比べると、かなり太い根が形成されている。
　溝置栽培することによって、倒伏程度が改善した。茎葉の直立（オーキシンによる光屈性）にとっては、横置きとなった苗でも受光可能な溝置栽培が大変有効で、本願発明の針苗であれば、２～５日で直立した。
　溝置栽培により収量が改善した。本願発明に係る苗紐の溝置栽培の収量は、慣行稚苗移植栽培の収量より多くなり、播種量が少ないことからすると、予想を超える増収効果があった。
施薬試験
供試薬品：テトラニリプロールフロアブル製剤（４８０ｇ／Ｌ）
試験区
無処理：綿１００％の不織布（商品名：メッシュロン）にイネ（コシヒカリ）の種籾を、６ｃｍ間隔で封入した種子紐を作成し、上記の方法に準じて苗紐を調製した。
種子コーティング：イネ（コシヒカシ）の種籾１ｋｇ当たり、テトラニリプロールフロアブル製剤（４８０ｇ／Ｌ）（１１ｍｌ）及びペリディアムエコ
ＥＣ１０４（種子被覆剤、２ｍｌ）で被覆処理したものを、６ｃｍ間隔で封入して種子紐を作成し、上記の方法に準じて苗紐を調製した。
浸漬処理：上記無処理区と同じようにして調製した苗紐に、テトラニリプロールフロアブル製剤（４８０ｇ／Ｌ）４４μＬを水１０ｍｌに希釈した溶液を苗紐１ｍ当たり１ｍｌ施用して、２４時間インキュベーションして調製した。
殺虫効果試験１
　プランター（縦２７ｃｍ、横１７ｃｍ、高さ１０ｃｍ）の高さ５ｃｍまで水田土壌を満たし、１０ｃｍ間隔で縦方向に幅２ｃｍ深さ２ｃｍの溝を掘り、底部に苗紐を定置した。プランターを、水を張った直径５０ｃｍのタライの中心部に置き、ネットゲージで覆った。苗紐定置１７日後にヒメトビウンカ（採取したもの）雌成虫１０頭＋雄成虫５頭を各試験区に接種し、接種後３１日目に寄生幼虫数及び寄生成虫数を計測した。
試験結果
　試験結果を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　苗紐の溝置栽培において、種子コーティング及び浸漬処理が卓越した殺虫効果を示した。
殺虫効果試験２
　殺虫効果試験１に記載の方法に準じて、無処理、種子コーティング、浸漬処理区の苗紐を溝置して、５８日後茎葉部を採取し、７ｃｍにカットしてシャーレに入れ、ニカメイチュウ（感受性系統）２齢幼虫をシャーレあたり１０頭接種した。接種６日後の生存する幼虫数を計測した。
試験結果
　試験結果を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　無処理区では太い茎葉部の内部まで食害され幼虫の排泄物が目立ち、接種した幼虫は明らかに成長していた。一方、種子コーティング処理区及び浸漬処理区においては食害痕も排泄物もほとんど観察されず、生存虫は小さく、高い防除効果を示した。
溝置栽培における溝の深さの検討
　水田土壌（砂壌土又は埴壌土）を入れた４５ｃｍｘ６０ｃｍｘ深さ２５ｃｍの容器を代掻したのち、各容器に土壌表面の溝幅／溝の深さがそれぞれ、２．５ｃｍ／１．３ｃｍ、５．０ｃｍ／２．５ｃｍ、１０．０ｃｍ／５．０ｃｍ、３０．０ｃｍ／１０．０ｃｍの溝（溝の断面の形状は略Ｖ字型）を１本ずつ作り、溝の中に苗紐を静置した場合、溝を作らずに土壌表面に静置した場合および溝を作らずに土壌表面に静置したものをさらに苗紐をクリップで土壌に固定（２０ｃｍ間隔）した場合とで、その後の苗立ちおよび苗の生育を比較した。試験期間中は溝外の土壌表面からの水深を１－２ｃｍに維持した。試験結果を表４及び表５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　驚くべきことに、苗紐を水田土壌表面に定置した場合は苗紐を固定することにより、優れた苗立ち率が得られた。苗紐が固定されたことにより根の活着が良かったからと考えられる。苗紐を固定しなくても溝置の場合は溝の深さが１．３ｃｍから良好な苗立ちが得られた。
緑化による苗の強靭化の検討
　同じ回数強く振盪することにより均一条件で物理的な力を加え、緑化することによる苗の強靭化を検討した。
　催芽処理し、鳩胸状態の種籾をガラス温室内で遮光条件で育苗した０．３葉期あるいは１．２葉期の苗（遮光苗）と緑化条件で育苗した０．３葉期あるいは１．２葉期の苗（緑化針苗）の、乾籾重１０ｇ相当する苗をビニール袋（容量７Ｌ）に入れ、袋を空気で完全に膨らむようにして閉じて、前後に強く１００回振り強い負荷をかけ、根部・葉部の損傷を調査した。その際、茎葉部又は根部に折れがないものを健全苗とした。また本試験に供した苗のうちから６０粒をランダムに選び、代掻きした水田土壌に深度1ｃｍに植え付けた。定植後、２葉期になった苗の、傾倒又は生育遅延を生じている本数および苗立率を計測した。試験結果を表６～９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　定植苗の２葉期の生育調査結果
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　苗の外観から判定できる強振盪による傷みとその苗を定植した場合の生育の両方の観点から、緑化することにより苗が物理的な力が加わってもダメージを受けにくくなっていることが示された。
還元土壌における生育の検討
　催芽籾と緑化針苗の植付深度の許容性を比較する為に人工的に還元状態の水田条件を作り、その条件下で土壌表面、土壌表面下１ｃｍ、土壌表面下３ｃｍの位置に植え付けたときの苗立ちを比較した。乾燥し篩にかけた水田土壌１．３ｋｇあたりに２ｇの米ぬかを添加し、プラスチック容器内で代掻きし、３日温室に静置した。この容器に所定の土壌深度に鳩胸状態の催芽籾あるいは１．３葉期の緑化針苗を１容器当たり３０粒播種あるいは定植した。播種・定植１４日後に土壌表面から出現している芽の数（発芽数）を計測した。結果を表１０に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　緑化針苗は催芽籾と比較して高い発芽率を示し、特に定植深度が深いときにその差は顕著であった。緑化針苗は催芽籾と比較して植付深度の許容性が高く、欠株の生じるリスクが小さい。
緑化針苗の保存性の検討
　１．３葉期の緑化針苗を湿った状態でビニール袋に密封し、１０℃で保存した。２５日の保存後に、定植２日前に水田土壌を入れて代掻きをしていた容器内に１５０粒を土壌深度１ｃｍに定植した。定植２週間後にすべての苗が健全に生育していることを確認した。
土壌種別の溝崩壊性の検討
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　溝作成時と３日後の溝の様子を図１２に示す。また、試験結果を表１２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　試験結果：土壌種によって崩壊性に差があること及びＶ字の角度を広くすることで崩壊を軽減できることが示された。溝の側面の斜度を調節することにより、溝の崩壊性を調節できることが示された。
殺菌効果試験
　供試薬品：イソチアニルフロアブル製剤（４１．７％）
　試験区：
　無処理：水に浸した状態のイネ（ひとめぼれ）の種籾を１０℃に２４時間、その後３０℃に２日間置き、催芽させた。発芽籾（鳩胸）は温室内で不織布上に一層に広げ湿潤状態を保って緑化した（１０日間）。
　種子コーティング：イネ（ひとめぼれ）の種籾１ｋｇ当たり、イソチアニルフロアブル製剤（４１．７％）（８ｍｌ）及びペリディアムクオリティ００９（スチロールアクリル共重合体を含む種子被覆剤、２ｍｌ）で被覆処理した。コーティングした種籾は前記無処理籾と同様に催芽・緑化し緑化針苗を作成作成した。
　プランター（縦２７ｃｍ、横１７ｃｍ、高さ１０ｃｍ）の高さ５ｃｍまで水田土壌を満たし、１．５葉期の緑化針苗を３列、３ｃｍ間隔で土壌深度約１ｃｍに植え付けた。植え付け３週間後の苗にいもち病菌胞子懸濁液を噴霧、さらに４週間後にいもち病の病斑数を数えた。試験結果を表１３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
図１は、第１葉方式及び不完全葉方式によるイネの葉齢を示す。
図２は、発芽した幼苗各部の名称を示す。
図３は、リールに巻かれた状態の苗紐（第一葉方式で、０．２葉期）を示す。
図４は、直線状にした苗紐を示す。
図５は、リール１０の正面図を示す（１００：筒形状の支持部材、２００：第１の支持部材、３００：第３の支持部材、２１０：第１の支持部材の開口部、３２０：第２の支持部材の開口部、４００：締結セット、５００：ボルト、６００：ナット）。
図６は、リール１０の側面図を示す（１００：筒形状の支持部材、２００：第１の支持部材、３００：第３の支持部材、４００：締結セット、５００：ボルト、６００：ナット）。
図７は、リールの斜視図を示す（１００：筒形状の支持部材、２００：第１の支持部材、３００：第３の支持部材、２１０：第１の支持部材の開口部、３２０：第２の支持部材の開口部、４００：締結セット、５００：ボルト、６００：ナット）。
図８は、鉄コーティング種子直播（土壌表面播種）による株元断面図（播種後１２６日目）。
図９は、苗紐（溝置）による株元断面図（溝置後１２６日目）。
図１０は、稚苗（移植）による株元断面図（移植後１２６日目）。
図１１は、倒伏程度の判断基準を示す。
図１２は、砂壌土、埴壌土、壌土の異なる土壌における溝の崩壊性を示す。

Claims (36)

  1. 紐と、それに固定又は封入され、緑化された茎葉部、根部、種子体を有するイネの苗とを含むことを特徴とする、苗紐。
  2. 前記苗の葉齢が、第一葉方式で３．５葉期までであることを特徴とする、請求項１に記載の苗紐。
  3. 前記苗の葉齢が、第一葉方式で鞘葉期から２．５葉期までであることを特徴とする、請求項１に記載の苗紐。
  4. 前記紐が分解性であることを特徴とする、請求項１～３のいずれか１項に記載の苗紐。
  5. 前記苗が紐に１～２０ｃｍ間隔で固定又は封入されていることを特徴とする、請求項１～４のいずれか１項に記載の苗紐。
  6. 農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料及、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分を含むことを特徴とする、請求項１～５のいずれか１項に記載の苗紐。
  7. 前記有効成分が種子体及び／又は苗紐を被覆していることを特徴とする、請求項６に記載の苗紐。
  8. 水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で前記苗の種子部分及び／又は苗紐がさらに被覆されていること又は種子被覆材と有効成分の混和物によって種子部分及び／又は苗紐が被覆されていることを特徴とする、請求項７に記載の苗紐。
  9. 苗紐が巻かれた状態又は網状に織られて巻かれた状態であることを特徴とする、請求項１～８のいずれか１項に記載の苗紐。
  10. 苗紐がリールに巻かれた状態であることを特徴とする、請求項１～９のいずれか１項に記載の苗紐。
  11. 筒形状の支持部材と、その周りに設けられた第１の支持部材と、前記第１の支持部材と距離をおいて設けられた第２の支持部材からなる苗紐用リール。
  12. 前記第１及び第２の支持部材が複数の開口部を有することを特徴とする、請求項１１に記載のリール。
  13. 前記第１及び第２の支持部材の面積における前記開口部の面積の割合が６０％以上であることを特徴とする、請求項１２に記載のリール。
  14. 前記第１及び第２の支持部材がほぼ円盤状であることを特徴とする、請求項１１～１３のいずれか１項に記載のリール。
  15. 前記第１及び第２の支持部材が、筒形状の支持部材の周りに回転自在に設けられていることを特徴とする、請求項１１～１４のいずれか１項に記載のリール。
  16. 前記第１及び第２の支持部材が、耐水性及び耐薬品性を有する樹脂及び／又は金属材料で構成されることを特徴とする、請求項１１～１５のいずれか１項に記載のリール。
  17. 前記樹脂が透明又は半透明であることを特徴とする、請求項１６に記載のリール。
  18. 紐に固定又は封入された種子を浸種、催芽するステップ、及び
    種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを含み、
    少なくとも種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを自然光及び／又は人工光の照射下で行うことを特徴とする、請求項１～１０のいずれか１項に記載の苗紐の製造方法。
  19. 前記種子を発芽、発根させ、それを生育させるステップを、水若しくはＵＶ照射した水あるいは次亜塩素酸塩水溶液、殺菌剤等の殺菌・殺細菌成分を含んだ水に浸しながら又は水若しくはＵＶ照射した水あるいは次亜塩素酸塩水溶液、殺菌剤等の殺菌・殺細菌成分を含んだ水をかけながら行うことを特徴とする、請求項１８に記載の苗紐の製造方法。
  20. さらに種子を紐に固定又は封入するステップを含むことを特徴とする請求項１８又は１９に記載の苗紐の製造方法。
  21. あらかじめ農薬、薬害軽減剤、生育調節剤、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分で被覆されている種子を使用するか又は前記各ステップと同時及び前後のうち少なくとも１回有効成分を紐又は苗紐に施用又は固定若しくは封入することを特徴とする、請求項１８～２０のいずれか１項に記載の苗紐の製造方法。
  22. 有効成分の被覆層の上にさらに水の浸透は妨げないが被覆した有効成分の水相への流出を抑制する種子被覆材で被覆されている種子及び／又は種子紐を使用するか、又は種子被覆材と有効成分の混和物で被覆されている種子及び／又は種子紐を使用することを特徴とする請求項２１に記載の製造方法。
  23. 種子を浸種、催芽するステップ、種子を発芽、発根、それらを生育させるステップ、自然光及び／又は人工光を照射するステップ及び／又は有効成分を施用するステップを、種子を固定又は封入した紐を巻いた状態で行うことを特徴とする、請求項１８～２２のいずれか１項に記載の苗紐の製造方法。
  24. 種子を固定又は封入した紐をリールに巻いた状態で行うことを特徴とする、請求項２３に記載の苗紐の製造方法。
  25. 請求項１～１０のいずれか１項に記載の苗紐を、土壌表面から０～５ｃｍに定置又は埋設することを特徴とし、土壌表面に苗紐を定置する場合には、さらに苗紐を抑え具で土壌表面に固定してもよく、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を水田土壌中に垂直方向に加圧して埋設させてもよく、苗紐を水田土壌中に埋設する場合には、水田土壌表面に作溝した溝の底部に苗紐を定置したのちに溝を閉じてもよい、イネの栽培方法。
  26. 請求項１～１０のいずれか１項に記載の苗紐、イネの種子又は種紐（シードテープ）を、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置することを特徴とし、苗紐又は種紐の場合には、さらに苗紐を抑え具で溝の底部に固定してもよく、あるいは適当な間隔で苗紐の一部を覆土して固定してもよい、イネの栽培方法。
  27. 前記溝の土壌表面の溝幅が１．５～３０ｃｍであることを特徴とする、請求項２６に記載のイネの栽培方法。
  28. 前記溝の土壌表面の溝幅が１．５～１０ｃｍであることを特徴とする、請求項２６に記載のイネの栽培方法。
  29. 前記溝の土壌表面の溝幅が２～７ｃｍであることを特徴とする、請求項２６に記載のイネの栽培方法。
  30. 前記溝の深さが１～１０ｃｍであることを特徴とする、請求項２６～２９のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  31. 前記溝の深さが１～６ｃｍであることを特徴とする、請求項２６～２９のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  32. 前記溝の深さが２～４ｃｍであることを特徴とする、請求項２６～２９のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  33. 前記溝の底面幅が０～５ｃｍであることを特徴とする、請求項２６～３２のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  34. 前記溝の底面幅が０．５～３．５ｃｍであることを特徴とする、請求項２６～３２のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  35. 前記水田面に作溝した溝の断面の形状が、四角形、台形、Ｕ字型、半円形、Ｖ字型又はＷ型（ただし、中央部分の高さは水田面上面に達しない）であることを特徴とする、請求項２６～３４のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
  36. 苗紐を水田土壌表面に定置若しくは土壌中に埋設するステップ又はイネの種子、種紐（シードテープ）又は苗紐を、水田土壌表面に作溝した溝の底部に又は作溝と同時に溝の底部に定置するステップと同時及びその前後に、少なくとも１回、農薬、酸素発生剤、硫化物イオン生成抑制剤、肥料、バイオスティミュラント、発根促進剤及び土壌改良剤からなる群から選択される１以上の有効成分を種子、種紐（シードテープ）、苗紐及び／又は土壌に施用することを特徴とする、請求項２５～３５のいずれか１項に記載のイネの栽培方法。
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KR1020227001331A KR20220029659A (ko) 2019-06-28 2020-06-26 끈과, 그것에 고정된 벼의 녹화 침묘를 포함하는 모종끈, 그 조제 방법 및 홈의 바닥부에 벼의 종자 또는 모종끈을 정치하는 벼의 재배 방법
CN202080046606.2A CN114144057A (zh) 2019-06-28 2020-06-26 包含绳以及固定于该绳的稻的绿化秧苗的秧绳、其制备方法以及在沟的底部安置稻的种子或秧绳的稻的栽培方法
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Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0613408U (ja) * 1992-07-30 1994-02-22 三菱農機株式会社 種球の植付装置
JPH09289834A (ja) * 1996-03-01 1997-11-11 Honda Motor Co Ltd 育苗シート、育苗シートの製造方法、育苗方法、栽培方法および移植機
JPH1028410A (ja) * 1996-07-17 1998-02-03 Unie Star:Kk 補植材料及び植栽テープ
WO2008029481A1 (fr) * 2006-09-09 2008-03-13 Daito Shoji Inc. Appareil de prélèvement de semis, rouleau à semis, appareil et système de plantage de semis

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04287604A (ja) 1991-03-15 1992-10-13 Nippon Plant Shiidaa Kk 催芽処理可能な種紐
JP3786796B2 (ja) * 1998-06-01 2006-06-14 本田技研工業株式会社 植え付け作業装置
JP3501655B2 (ja) 1998-07-28 2004-03-02 日本プラントシーダー株式会社 シードテープ敷設方法とシードテープ敷設装置
CN100998278A (zh) * 2006-12-26 2007-07-18 沈阳农业大学 一种作物种绳及其捻制机
CN201523525U (zh) * 2009-06-25 2010-07-14 韩凤臣 一种用于精量播种的种子绳
CN201533495U (zh) * 2009-08-12 2010-07-28 王林友 绳索育秧栽秧装置
CN106922251A (zh) * 2017-03-28 2017-07-07 江苏天丰种业有限公司 播种绳及其播种方法
CN111052922A (zh) * 2019-12-03 2020-04-24 农业农村部南京农业机械化研究所 一种穴盘苗的自动移栽方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0613408U (ja) * 1992-07-30 1994-02-22 三菱農機株式会社 種球の植付装置
JPH09289834A (ja) * 1996-03-01 1997-11-11 Honda Motor Co Ltd 育苗シート、育苗シートの製造方法、育苗方法、栽培方法および移植機
JPH1028410A (ja) * 1996-07-17 1998-02-03 Unie Star:Kk 補植材料及び植栽テープ
WO2008029481A1 (fr) * 2006-09-09 2008-03-13 Daito Shoji Inc. Appareil de prélèvement de semis, rouleau à semis, appareil et système de plantage de semis

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