WO2020184719A1 - 昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法 - Google Patents

昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2020184719A1
WO2020184719A1 PCT/JP2020/011246 JP2020011246W WO2020184719A1 WO 2020184719 A1 WO2020184719 A1 WO 2020184719A1 JP 2020011246 W JP2020011246 W JP 2020011246W WO 2020184719 A1 WO2020184719 A1 WO 2020184719A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
pest control
control material
pest
material according
carrier
Prior art date
Application number
PCT/JP2020/011246
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
康二 稲井
近藤　彰宏
Original Assignee
出光興産株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 出光興産株式会社 filed Critical 出光興産株式会社
Priority to EP20770030.3A priority Critical patent/EP3939430A4/en
Priority to KR1020217029905A priority patent/KR20210141941A/ko
Priority to US17/438,691 priority patent/US20220142174A1/en
Priority to CN202080020034.0A priority patent/CN113573583A/zh
Publication of WO2020184719A1 publication Critical patent/WO2020184719A1/ja

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01M—CATCHING, TRAPPING OR SCARING OF ANIMALS; APPARATUS FOR THE DESTRUCTION OF NOXIOUS ANIMALS OR NOXIOUS PLANTS
    • A01M1/00—Stationary means for catching or killing insects
    • A01M1/20—Poisoning, narcotising, or burning insects
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
    • A01N25/08—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests containing solids as carriers or diluents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/10—Animals; Substances produced thereby or obtained therefrom
    • A01N63/14—Insects
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/30—Microbial fungi; Substances produced thereby or obtained therefrom
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P7/00—Arthropodicides
    • A01P7/04—Insecticides
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01M—CATCHING, TRAPPING OR SCARING OF ANIMALS; APPARATUS FOR THE DESTRUCTION OF NOXIOUS ANIMALS OR NOXIOUS PLANTS
    • A01M1/00—Stationary means for catching or killing insects
    • A01M1/20—Poisoning, narcotising, or burning insects
    • A01M1/2022—Poisoning or narcotising insects by vaporising an insecticide
    • A01M1/2027—Poisoning or narcotising insects by vaporising an insecticide without heating
    • A01M1/2055—Holders or dispensers for solid, gelified or impregnated insecticide, e.g. volatile blocks or impregnated pads

Definitions

  • the present invention relates to a pest control material using an insect parasite, particularly a pest control material belonging to the family Coleoptera, Cerambycidae, using a bacterium of the genus Coleoptera. More specifically, the present invention relates to a pest control material in which an insect parasite or a culture thereof is supported on a solid carrier, and a pest control method using the same.
  • Pests such as longhorn beetles harm crops and trees, and the damage caused by these pests has become a problem in the fields of agriculture and forestry.
  • microbial pesticides such as filamentous fungi that parasitize these insects and exert an insecticidal effect are used.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Publication No. 7-108212 (Patent Document 1) and Japanese Patent Publication No. 8-22810 (Patent Document 2) disclose that filamentous fungi are grown on a non-woven fabric and the non-woven fabric is used as a pest control material. Has been done.
  • the effect was defined by the number of viable bacteria contained in the culture or formulation, mainly the number of spores (conidia).
  • Patent Document 3 in the pest control agent using a solid carrier, the carrier is made into two layers of the culture carrier in order to be more susceptible to contact infection with pests and to maintain the effect. It is disclosed to increase the number of viable bacteria (number of conidia, number of spores) contained in. As also spores about 3 ⁇ 10 8 pieces in the literature as spores per optimal unit area is described as required, it was necessary very large number of bacteria.
  • an object of the present invention is to improve the long-term storage stability of the pest control material and the pest control effect.
  • the inventor has obtained storage stability and pest control effect using the total number of bacterial cells or total number of spores cultured on the carrier as an index as in the prior art.
  • the number of transcribed conidia that is, the number of spores located on the surface of the spores on the surface of the carrier (hereinafter referred to as the number of superficial spores), or the number of scattered conidia is an important index. Based on this finding, the present invention was completed.
  • the present invention is as follows.
  • the insect parasitic filamentous fungus is a genus Beauveria , a genus Paecilomyces, a genus Trichoderma, a genus Verticillium , or a genus Lecanicillium.
  • the pest control material is a genus Beauveria , a genus Paecilomyces, a genus Trichoderma, a genus Verticillium , or a genus Lecanicillium.
  • the insect-parasitic filamentous fungus is the Beauveria Bassiana F-263 (NITE BP-02855) strain or the Beauveria Bronniality NBL-851 (NITE BP-02854) strain.
  • the pests against the tree are pests belonging to the family Coleoptera, Coleoptera, Coleoptera, or Coleoptera, or Pests belonging to the family Delphacidae, Pentatomidae, Coleoptera, or Aphididae, [6] ]
  • the pest control material described in. [8] The pest control material according to any one of [1] to [7], wherein the solid carrier is an organic carrier. [9] The pest control material according to [8], wherein the organic carrier is rice husk, rice husk, bran, wheat, rice straw, soybean, soybean meal, or plant residue. [10] The pest control material according to any one of [1] to [7], wherein the solid carrier is an inorganic carrier.
  • a pest control material having improved long-term storage stability and pest control effect is provided.
  • the present invention is a pest control material containing an insect parasitic filamentous fungus grown on a solid carrier, wherein the number of spores of the insect parasitic filamentous fungus on the surface layer is within a predetermined range. Provide materials.
  • the filamentous fungus used is a filamentous fungus that parasitizes insects and has an insecticidal effect, and is not particularly limited as long as it is a filamentous fungus that can be cultured in a solid medium.
  • the genus Beauveria , Pekiromaisesu (Paecilomyces) genus Trichoderma (Trichoderma) genus include Vernon tee Shi helium (Verticillium) genus or Rekanishiriumu (Lecanicillium) filamentous fungus that belongs to one or more selected from the group consisting of genus.
  • One or more filamentous fungi to be selected are the Bobelia Bassiana F-263 strain or the Bobelia Bronniality NBL-851 strain. These filamentous fungi may be used alone or in combination of two or more.
  • the F-263 strain was entrusted to NITE Patent Microorganisms Depository (2-5-8 Kazusa Kamashita, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) on December 27, 2018, the National Institute of Technology and Evaluation Patent Microorganisms Depository.
  • NITE Patent Microorganisms Depository National Institute of Technology and Evaluation, on December 27, 2018, was deposited internationally under the Budapest Convention under the number NITE BP-02855. It has been deposited internationally under the Budapest Convention under the accession number NITE BP-02854 at Kazusa Kamashita 2-5-8).
  • the number of spores of insect parasite filamentous fungi (number of surface spores) on the surface layer of the carrier is 1.0 ⁇ 10 6 to 1.0 ⁇ 10 10 cells / cm 2 , preferably 1.0 ⁇ 10 6 to 1.0. ⁇ 10 9 pieces / cm 2 , more preferably 1.0 ⁇ 10 7 to 1.0 ⁇ 10 8 pieces / cm 2 .
  • the following method can be used.
  • the solid carrier was placed on the plate medium so that the culture surface of the solid carrier was in contact with the plate medium, and the solid carrier did not collapse.
  • the surface of the plate medium is rinsed with sterile water or sterile water containing a small amount of surface activity, and the entire amount of the solution is collected and placed under a microscope.
  • the number of surface spores is converted based on the surface area of the solid carrier. That is, the number of spores on a part of the surface layer can be measured, and the number of spores on the entire surface can be calculated from the ratio of the total area.
  • the solid carrier may be either an organic carrier or an inorganic carrier.
  • the organic carrier include, but are not limited to, rice husks, rice husks, bran, wheat, rice straw, soybeans, soybean meal, and plant residues, and components that can be assimilated by filamentous fungi.
  • Any carrier that contains or can absorb or retain the culture solution necessary for culturing the target insect parasite can be used.
  • the inorganic carrier include, but are not limited to, a porous carrier, and a granular, spherical or band-shaped carrier in which the porous portion contains a medium component.
  • Any carrier that is a porous substance and can absorb or retain the culture medium necessary for culturing the target insect parasite can be used.
  • a mineral, a foam matrix, a non-woven fabric, or a woven fabric can be used. More preferably, a strip-shaped non-woven fabric can be used as the inorganic carrier.
  • the mineral is not particularly limited, and natural minerals such as kaolin, clay, talc, choke, quartz, attapargit, montmorillonite, and diatomaceous earth, and synthetic minerals such as silicic acid, alumina, and silicate can be used.
  • the foam matrix examples include polyurethane foams, polystyrene foams, vinyl chloride foams, polyethylene foams, and polystyrene foams disclosed in JP-A-63-74479 and JP-A-63-190807. Can be mentioned.
  • a foam matrix When such a foam matrix is used as a base material, it may be used as it is, or a substance obtained by foaming a foam composition capable of producing a foam together with a medium component may be used.
  • the material of the non-woven fabric or woven fabric is not particularly limited, and a commercially available material can be used, but the retention of the medium component, water retention / hydrophilicity, adhesion of insect parasitic filamentous fungi, use as a carbon source, and natural disintegration property. From such a point of view, pulp, rayon, polyester and the like are particularly preferable.
  • the shape of the solid carrier is such that it can be easily and reliably installed on the bait tree, and its effectiveness can be maintained for a long period of time, and the insect parasitic filamentous fungus against pests belonging to the family Coleoptera, Cerambycidae, can be efficiently placed by arranging a small number of them.
  • Granular, spherical, strip-shaped or sheet-shaped shapes are preferable from the viewpoint of being able to infect. More preferably, it has a band shape.
  • strip-shaped or sheet-shaped culture substrate examples include the foam matrix disclosed in JP-A-63-74479 and JP-A-63-190807, or the porous and apparent surface area of non-woven fabric, woven fabric, and the like. Examples include materials with a large surface area and materials that combine these.
  • the components of the culture solution contained in the solid carrier are not particularly limited, and any organic substance containing a sugar source or nutrients necessary for microbial culture can be used.
  • a specific component it is preferable to include a carbon source or nitrogen source capable of assimilation, inorganic salts, natural organic matter and the like.
  • the carbon source include glucose, saccharose, lactose, maltose, glycerin, starch, and cellulose molasses.
  • the nitrogen source include ammonium sulfate, ammonium chloride, and ammonium nitrate.
  • the inorganic salts include phosphates such as potassium dihydrogen phosphate, magnesium nitrate, magnesium, potassium and calcium.
  • Natural organic substances include meat extract, fish meat extract, animal tissue extract such as sardine powder, ground animal tissue extract, malt extract, corn steep liquor, plant tissue extract such as soybean oil, dried yeast, yeast extract, polypeptone, etc.
  • Examples thereof include microbial cells or extracts thereof.
  • Specific examples of the culture solution include an extract from cereals to which sugar such as glucose is added, and more specifically, an extract from potato to which sugar such as glucose is added.
  • Examples of the method of containing these culture solutions in the solid carrier include a method of directly applying the culture solution and a method of containing the culture solution by immersion or the like.
  • the culture conditions for the insect parasitic filamentous fungus are not particularly limited as long as the target insect parasitic filamentous fungus can grow.
  • the temperature at which the target insect parasitic filamentous fungus can grow is preferably 15 ° C to 35 ° C, more preferably 20 ° C to 30 ° C.
  • the humidity at which the target insect parasitic filamentous fungus can grow may be any of 0% to 100%. In order to keep the number of surface spores within the target range, it is preferable to change the humidity between the early stage and the late stage of the culture, that is, the humidity in the late stage of the culture is lower than that in the early stage of the culture.
  • culturing in the initial stage of culturing (for example, from the start of culturing to 3 to 8 days), culturing is preferably performed at a humidity of 60% to 100%, and more preferably 80% to 100%. After that (late stage of culture), it is preferable to reduce the humidity to 30% or more and less than 80% and culture for 2 to 5 days.
  • the culture of insect parasitic filamentous fungi is prepared by a method in which the culture medium component is contained in the culture substrate and then the bacteria are ingested and cultured, and the culture solution obtained by pre-culturing the insect parasitic filamentous fungus in advance and the medium component are mixed. It can be obtained by a method of incorporating the mixture obtained later into a solid carrier or the like.
  • pests to be controlled include plant pests and sanitary pests.
  • Plant pests are preferably pests against trees.
  • pests against trees include pests belonging to the order Hemiptera or Hemiptera
  • pests belonging to the order Delphacidae include pests belonging to the family Delphacidae, Delphacidae, Hemiptera, etc., and pests belonging to the order Hemiptera.
  • Examples include pests belonging to the family Delphacidae, Hemiptera, Hemiptera, and Hemiptera.
  • sanitary pests are insects and the like that cause diseases and other harmful effects on animals such as humans and livestock.
  • Examples of the pests belonging to the family Cerambycidae in the present invention include the longhorn beetle (Monochamus alternatus), the longhorn beetle (Anoplophora malasiaca), the longhorn beetle (Psacothea hilaris), the longhorn beetle (Acalolepta), and the longhorn beetle (Acalolepta). , Kubia katsuya kamikiri (Aromia bungii), tiger kamikiri (Xylotrechus chinensis, Xylotrechus quadripes or Xylotrechus pyrrhoderus) and the like.
  • the application of the culture of the insect parasitic filamentous fungus to the bait tree is not particularly limited, but for example, the culture can be wrapped around the bait tree with a pulp non-woven fabric, stapler locked, or the like. In order to further improve the control effect, it is more preferable to collect the bait trees of the pests to be controlled at the time of application.
  • the time of application is not particularly limited, but from the viewpoint of improving the extermination efficiency, it is preferable to apply it according to the life cycle of the pests belonging to the family Coleoptera, Cerambycidae, to be exterminated.
  • pests belonging to the family Coleoptera, Cerambycidae spawn under the bark of trees, hatched larvae grow while feeding on the bark, and when the temperature rises in spring, the larvae that overwinter in the pupal chamber become pupae. It has a life cycle in which adult larvae that have emerged escape from the tree and take after-eating behavior for a while before mating and spawning.
  • Example 1 Insect parasitic filamentous fungus culture method Glucose was added to a 4% sardine powder extract to a final concentration of 2%, and the Beauveria Boronniati NBL-851 strain was shaken at 25 ° C for 5 days in a medium. It was cultured and used as a preculture solution. A sterile pulp non-woven fabric containing 4% sardine powder extract and 10% glucose solution was placed on a stainless steel net, the pre-culture solution was contained in the non-woven fabric, and culture was started at 25 ° C. at a humidity of 80 to 100%, and the temperature was increased 4 days later.
  • the humidity was changed to 80% or less (30% or more) at 25 ° C, and the culture was carried out while maintaining this culture condition.
  • the number of surface spores was measured daily using the method for measuring the number of surface spores described later, and the cells were cultured until the number of surface spores reached 5 ⁇ 10 5 cells / cm 2 . Actually, it was done for another 3 days after changing the humidity. After that, excess water was removed by blowing and drying for one day. After that, the number of surface spores was further measured, and it was confirmed that the number of surface spores was 5 ⁇ 10 5 cells / cm 2 or more. At that time, the total number of spores was 1 ⁇ 10 8 to 3 ⁇ 10 8 cells / cm 2 or more.
  • a pulp non-woven fabric containing a spore powder extract or the like is placed in a polypropylene bag and cultured at 25 ° C. (humidity 100%) for 1 week.
  • the total number of spores was 1 ⁇ 10 8 to 3 ⁇ 10 8 cells / cm 2 or more, while the number of surface spores was 1 ⁇ 10 5 cells / cm 2 or less.
  • Example 2 Insecticidal activity on Psacothea hirsutum
  • Psacothea hirsutus was used for about 1 month after becoming a pupa.
  • a test sample (Example 1), which is a control material containing the Beauveria Boronniati NBL-851 strain, was placed in a large container, and it was confirmed that the control material was in contact with Psacothea hirsutus, and left for 1 minute. After that, the longhorn beetle was transferred to a large container containing mulberry trees (about 1 cm in diameter, 2 trees), and the number of days until complete death was measured. The effects were compared by insecticidal activity for up to 7 days.
  • a control material containing the Beauveria boroniati NBL-851 strain was prepared using a method as described in Japanese Patent No. 3764254 (Comparative Example 1). As shown in Table 1, the total number of bacteria was similar between the sample described in Comparative Example 1 and the sample described in Example 1, but the number of superficial spores was 1 ⁇ 10 6 cells / cm in Comparative Example 1. It was less than 2 , and in Example 1, it was 1 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 or more. As a result, in Example 1, the insecticidal effect was observed for 7 days in all the repeated experiments (repetitions 1 to 4), whereas in Comparative Example 1, all the repeated experiments (repetitions 1 to 4) showed an insecticidal effect. No insecticidal effect was seen for 7 days. That is, it was found that the control material according to the present invention had an improved insecticidal effect as compared with the control material according to the prior art.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Insects & Arthropods (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Catching Or Destruction (AREA)

Abstract

本発明は、糸状菌を利用した害虫防除資材の長期保存安定性の向上と害虫防除効果の向上を課題とし、固体担体上に生育させた昆虫寄生糸状菌を含む害虫防除資材であって、表層における前記昆虫寄生糸状菌の胞子菌数が1.0×106～1.0×1010個/cm2であることを特徴とする、害虫防除資材を提供する。

Description

昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法
　本発明は、昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材、特にボーベリア属菌を用いたコウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫防除資材に関する。より詳細には、固体状の担体に昆虫寄生菌又はその培養物を担持させた害虫防除資材とそれを用いた害虫防除法に関する。
　カミキリムシなどの害虫は作物や樹木に害を及ぼし、当該害虫による被害は農業や林業分野で問題となっている。カミキリムシなどの害虫を防除するために、これらの昆虫に寄生して殺虫効果を発揮する糸状菌などの微生物農薬が利用されている。
　例えば、特公平7-108212号公報（特許文献１）や特公平8-22810号公報（特許文献２）には、糸状菌を不織布上に生育させ、当該不織布を害虫防除資材として用いることが開示されている。このような不織布などの固体担体を使用する資材に関しては、培養物中または製剤中に含まれる生菌数、おもに胞子（分生子）数によって効果を規定していた。
　特許第3764254号明細書（特許文献３）には、固体担体を用いた害虫駆除剤において、より害虫に接触感染しやすく、効果も持続させるために、培養担体を2層にするなどして担体に含まれる生菌数(分生子数、胞子数)を増加させることが開示されている。そして、当該文献には最適な単位面積当たりの胞子数として約3×108個もの胞子が必要と記載されているように、非常に膨大な菌数が必要であった。しかし、必要以上の胞子を培養するために、人件費、冷暖房費、培養時間等を費やすため、コストが高くなるという課題があり、さらに、担体中に含まれる総菌数の増大は、効果の安定性や剤の保存安定性(持続性)の効果に大きな寄与をせず、従来技術を持っても半年～1年、使用後は数週間～数ヶ月で効果が減少することが分かっていた。
特公平7-108212号公報 特公平8-22810号公報 特許第3764254号明細書
　従来、糸状菌を用いた微生物農薬は、培養物中または製剤中に含まれる総菌数おもに総胞子（分生子）数によって効果を規定しており、これら培養物や製剤の保存安定性および効果の安定性を担保するため、非常に多くの胞子を含有させている。これにより、製品自体の製造コストは増大し、微生物農薬は化学農薬よりも価格が高くなること場合が多く、生産者の求めるニーズに合致することがないことがある。
　したがって、本発明の課題は、害虫防除資材の長期保存安定性の向上と害虫防除効果の向上である。
　　発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、従来技術のように担体上に培養された菌体の総菌数または総胞子菌数を指標として保存安定性や害虫防除効果を決定するのではなく、転写分生子数、すなわち担体表面に存在する胞子のうち、その表層に位置する胞子菌数（以下、表層胞子菌数という）、または飛散分生子数が重要な指標となることを見出し、該知見に基づき、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］固体担体上に生育させた昆虫寄生糸状菌を含む害虫防除資材であって、表層における前記昆虫寄生糸状菌の胞子菌数が1.0×106～1.0×1010個/cm2であることを特徴とする、害虫防除資材。
［２］前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア属（Beauveria）属菌、ペキロマイセス（Paecilomyces）属菌、トリコデルマ（Trichoderma）属菌、ヴァーティシリウム（Verticillium）属菌、またはレカニシリウム（Lecanicillium）属菌である、［１］に記載の害虫防除資材。
［３］前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア・バッシアーナ（Beauveria bassiana）またはボーベリア・ブロンニアリティ（Beauveria brongniartii）である［１］又は［２］に記載の害虫防除資材。
［４］前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア・バッシアーナF-263（NITE BP-02855）株またはボーベリア・ブロンニアリティNBL-851（NITE BP-02854）株である、［１］～［３］のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
［５］前記害虫が、植物害虫または衛生害虫である、［１］～［４］のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
［６］前記植物害虫が、樹木に対する害虫である、［５］に記載の害虫防除資材。
［７］前記樹木に対する害虫が、コウチュウ目のオサゾウムシ科、ゾウムシ科、もしくはカミキリムシ科に属する害虫、またはカメムシ目のウンカ科、カメムシ科、カスミカメムシ科、もしくはアブラムシ科に属する害虫である、［６］に記載の害虫防除資材。
［８］前記固体担体が、有機物担体である、［１］～［７］のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
［９］前記有機物担体が、籾殻、おがくず、ふすま、麦、稲藁、大豆、大豆かす、または植物残渣である、［８］に記載の害虫防除資材。
［１０］前記固体担体が、無機物担体である、［１］～［７］のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
［１１］前記無機物担体が、多孔質の担体であり、前記多孔質部分に培地成分を含有する、［１０］に記載の害虫防除資材。
［１２］前記無機物担体が、帯状の不織布である、［１０］または［１１］に記載の害虫防除資材。
　本発明によれば、より長期保存安定性および害虫防除効果が向上した害虫防除用資材が提供される。
　本発明は、固体担体上に生育させた昆虫寄生糸状菌を含む害虫防除資材であって、表層における前記昆虫寄生糸状菌の胞子菌数が所定の範囲内であることを特徴とする、害虫防除資材を提供する。
　使用される糸状菌としては、昆虫に寄生して殺虫効果を有する糸状菌であって、固体培地によって培養することのできる糸状菌であれば特に限定はされないが、例えば、ボーベリア（Beauveria）属、ペキロマイセス（Paecilomyces）属、トリコデルマ（Trichoderma）属、ヴァーティシリウム（Verticillium）属菌、またはレカニシリウム（Lecanicillium）属菌からなる群より選択される1種以上に属する糸状菌が挙げられる。更に具体的には、コウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫に対する特異的な殺虫力の観点から、ボーベリア・バッシアーナ（Beauveria bassiana）、ボーベリア・ブロンニアティ（Beauveria brongniartii）、ボーベリア・アモルファ（Beauveria amrpha）からなる群より選択される1種以上の糸状菌が挙げられる。特に好ましくは、ボーベリア・バッシアーナF-263株またはボーベリア・ブロンニアリティNBL-851株が挙げられる。これらの糸状菌は、単独でまたは二種以上を組み合わせて用いてもよい。なお、F-263株は、２０１８年１２月２７日に独立行政法人 製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターNITE Patent Microorganisms Depository（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8）に、受託番号NITE BP-02855でブダペスト条約に基づく国際寄託され、NBL-851株は、２０１８年１２月２７日に独立行政法人 製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターNITE Patent Microorganisms Depository（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8）に、受託番号NITE BP-02854でブダペスト条約に基づく国際寄託されている。
　本発明の資材においては、担体の表層における昆虫寄生体糸状菌の胞子菌数（表層胞子菌数）を、1.0×106～1.0×1010個/cm2、好ましくは1.0×106～1.0×109個/cm2、より好ましくは1.0×107～1.0×108個/cm2とする。
　表層胞子菌数をこの範囲とすることにより、資材の保存安定性を向上させ、かつ、殺虫効果も向上させることができる。
　表層胞子菌数の測定方法としては、例えば以下の方法を使用することができる。固体担体上で培養された昆虫寄生糸状菌を固体担体上に静置した状態で、固体担体の培養面を平板培地に接触させるように固体担体を平板培地上に置き、固体担体が崩れないぐらいの重さで上から加重を一定時間かけた後に、固体担体を除去し、滅菌水または少量の界面活性を含む滅菌水にて平板培地の表面を洗い流し、その液を全量回収し、顕微鏡下にて胞子菌数を測定する。その際、固体担体の表面面積を元に表層胞子菌数の換算を行う。すなわち、表層の一部について胞子菌数を測定し、その面積の全体に占める割合から、全表面の胞子菌数を計算することができる。
　固体担体は、有機物担体または無機物担体のいずれであってもよい。
　有機物担体としては、具体的な例としては、籾殻、おがくず、ふすま、麦、稲藁、大豆、大豆かす、または植物残渣が挙げられるが、これらに限定されず、糸状菌が資化できる成分を含有している、または、目的の昆虫寄生菌を培養するのに必要である培養液を吸収または、表面上に保持できる担体であれば使用できる。
　無機物担体としては、具体的な例としては、多孔質の担体であり、前記多孔質部分に培地成分を含有する、粒状、球状または帯状の形状の担体が挙げられるが、これらに限定されず、多孔質の物質であり、目的の昆虫寄生菌を培養するのに必要である培養液を吸収または、表面上に保持できる担体であれば使用できる。好ましくは、無機物担体としては、鉱物、発泡体マトリックス、不織布、織布が使用できる。さらに好ましくは、無機物担体としては、帯状の不織布が使用できる。
　鉱物としては、特に限定されず、カオリン、粘土、タルク、チョーク、石英、アタパルジャイト、モンモリロナイト、珪藻土等の天然鉱物、ケイ酸、アルミナ、ケイ酸塩等の合成鉱物を用いることができる。
　発泡体マトリックスとしては、例えば、特開昭63-74479号公報、特開昭63-190807号公報で開示されたポリウレタンフォーム、ポリスチレン発泡体、塩化ビニル発泡体、ポリエチレン発泡体、ポリスチレン発泡体などが挙げられる。かかる発泡体マトリックスを基材として用いる場合、そのまま用いてもよく、発泡体を生成し得る発泡体組成物を培地成分と共に発泡させて得られる物質を用いてもよい。
　不織布または織布の素材としては特に限定されず、市販の素材が使用できるが、培地成分の保持性や保水性・親水性、昆虫寄生糸状菌の付着性、炭素源としての利用や天然崩壊性などの点からは、パルプ、レーヨン、ポリエステルなどが特に好ましい。
　固体担体の形状は、餌木に簡便且つ確実に設置でき、しかもその有効性を長期間持続させることができる観点、および少数配置するだけで効率よくコウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫に対する昆虫寄生糸状菌を感染させることができる観点から、粒状、球状、帯状またはシート状の形状が好ましい。より好ましくは、帯状の形状である。
　帯状またはシート状の培養基材としては、例えば特開昭63-74479号公報、特開昭63-190807号公報で開示された発泡体マトリックス、または不織布、織布などの多孔性で見掛けの表面積が大きい素材、およびこれらを組合せた素材が挙げられる。 
　固体担体に含有させる培養液の成分は特に限定されず、有機物に糖源や、微生物培養に必要な養分を含むものであれば使用できる。具体的な成分として、同化が可能な炭素源や窒素源、無機塩類、天然有機物などを含むことが好ましい。炭素源としては、例えば、グルコース、サッカロース、ラクトース、マルトース、グリセリン、デンプン、セルロース糖蜜などが例示できる。窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウムなどが例示できる。無機塩類としては、リン酸二水素カリウムなどのリン酸塩、硝酸マグネシウム、マグネシウム、カリウム、カルシウムなどが例示できる。天然有機物としては、肉エキス、魚肉摘出液、サナギ粉などの動物組織抽出物や動物組織粉砕物、麦芽エキス、コーンスチープリカー、大豆油などの植物組織抽出物、乾燥酵母、酵母エキス、ポリペプトンなどの微生物菌体またはその抽出物などが例示できる。
　培養液は具体的には、穀類からの抽出物にグルコースなどの糖を添加したもの、更に具体的には、バレイショからの抽出物にグルコースなどの糖を添加したものが例示できる。
　これらの培養液を固体担体に含有させる方法としては、培養液を直接塗布する方法や浸漬などによって含有させる方法が例示できる。 
　昆虫寄生糸状菌の培養条件は、目的の昆虫寄生糸状菌の生育が可能な条件であれば特に限定されない。目的の昆虫寄生糸状菌の生育が可能な温度としては、15℃～35℃が好ましく、20℃～30℃がより好ましい。目的の昆虫寄生糸状菌の生育が可能な湿度としては、0％～100％のいずれでもよい。表層胞子菌数を目的の範囲とするためには、培養初期と培養後期で湿度を変化させること、すなわち、培養後期の湿度は、培養初期と比較して低湿度とすることが好ましい。例えば、培養初期（例えば、培養開始から３～８日まで）は湿度60％～100％で培養することが好ましく、80％～100％で培養することがより好ましい。その後（培養後期）、湿度を30％以上80％未満に低下させて２～５日培養することが好ましい。
　昆虫寄生糸状菌の培養物は、培養基材に培地成分を含有させた後に菌を摂取し培養する方法、予め昆虫寄生糸状菌を前培養して得られた培養液と培地成分とを混合した後に得られた混合物を固体担体に含有させる方法などで得ることができる。
　防除対象の害虫としては、例えば植物害虫または衛生害虫が例示される。植物害虫は、樹木に対する害虫であることが好ましい。さらに、樹木に対する害虫は、コウチュウ目、またはカメムシ目などに属する害虫が例示され、コウチュウ目に属する害虫としては、オサゾウムシ科、ゾウムシ科、カミキリムシ科などに属する害虫が挙げられ、カメムシ目に属する害虫としては、ウンカ科、カメムシ科、カスミカメムシ科、アブラムシ科などに属する害虫が挙げられる。また、衛生害虫とは、例えばヒトや家畜を初めとする動物に対して、疾患等の害を与える昆虫等のことである。
　本発明におけるコウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫としては、例えば、マツノマダラカミキリ（Monochamus alternatus）、ゴマダラカミキリ（Anoplophora malasiaca）、キボシカミキリ（Psacothea hilaris）、センノカミキリ（Acalolepta luxuriosa）、ハラアカコブカミキリ（Moechotypa diphysis）、クビアカツヤカミキリ（Aromia bungii）、トラカミキリ（Xylotrechus chinensis、Xylotrechus quadripesまたはXylotrechus pyrrhoderus）などが挙げられる。
　当該昆虫寄生糸状菌の培養物の餌木への施用は、特に限定されないが、例えば、パルプ不織布による培養物の餌木への巻き付け、ステープラー係止などで行うことができる。防除効果をさらに向上させるために、施用の際には、防除対象の害虫の餌木を集積して行うことがより好ましい。 
　施用の時期は、特に限定されないが、駆除効率を高める観点から、駆除対象とするコウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫のライフサイクルにあわせて施用することが好ましい。一般的に、コウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫は、樹木の樹皮下に産卵され、孵化した幼虫は樹皮下を食害しながら成長し、春になり気温が上昇すると蛹室で越冬した幼虫は蛹となり、羽化した成虫が樹木から脱出し、交尾・産卵に入る前にしばらく後食行動をとるというライフサイクルを有する。例えば、ハラアカコブカミキリなどは、8～10月に羽化脱出した後、日当たりがよく雨水のかからない比較的乾燥した石や落葉の下、ホダ場原木の枝葉の間、切株の下、屋根瓦や壁などに潜み越冬して、翌年5月までは後食期間が続き、翌年5月から産卵が始まり翌年8月まで続く。
　したがって、例えば、8月以降翌年5月までの間に本発明の駆除方法を実施することにより、非常に効率的に、後食および産卵目的で集まってくる成虫を駆除することができ、さらに羽化脱出直後の成虫をも駆除することができる。
　以下実施例により、本発明をより詳細に説明するが、本発明の範囲が実施例のみに限定されないことは言うまでもない。
＜実施例1＞昆虫寄生糸状菌の培養方法
　4％サナギ粉抽出液に終濃度2％になるようにグルコースを加えて、培地にて5日間、ボーベリア・ボロンニアティNBL-851株を25℃で振盪培養し前培養液とした。4％サナギ粉抽出液と10％グルコース液を含有する滅菌パルプ不織布をステンレス網上に置き、前培養液を不織布に含有させ25℃で湿度80～100％で培養を開始し、4日後に温度は25℃のままで湿度を80％以下（30％以上）に変更し、この培養条件を維持した培養を行った。培養中には後述の表層胞子菌数の測定方法を用いて日々表層胞子菌数の測定を行い、表層胞子菌数が5×105個/cm2以上になるまで培養を行った。実際には湿度変更後さらに3日間行った。その後1日間、送風乾燥することで余分な水分を飛ばした。その後さらに表層胞子菌数の測定を行い、表層胞子菌数が5×105個/cm2以上存在することを確認した。その際の総胞子菌数は、1×108～3×108個/cm2以上であった。
　対照として、従来技術である特許第3764254号に記載にあるように、サナギ粉抽出液等を含有するパルプ不織布をポリプロピレンの袋に入れて25℃（湿度100％）で1週間培養を行った結果、総胞子菌数は1×108～3×108個/cm2以上であったが、その一方で表層胞子菌数は1×105個/cm2以下であった。
　表層胞子菌数の測定は、昆虫寄生糸状菌の培養後の不織布を5cm×5cm幅に切り取り、PDA（Potato Dextrose Agar）培地上に置き、5分間一定加重後、不織布を除去し、0.05％tween20を添加した溶液にて培地表面上に存在する胞子を全量回収し、顕微鏡下にてトーマ血球計算板を用いて胞子菌数を計算した。不織布の表面面積を元に表層胞子菌数の換算を行った。
＜実施例2＞キボシカミキリへの殺虫活性
　サナギになった約1ヶ月のキボシカミキリを使用した。大型の容器に、ボーベリア・ボロンニアティNBL-851株を含む防除資材である試験サンプル（実施例1）を入れ、その防除資材にキボシカミキリをまたがせ接触したことを確認し、1分間放置した。その後、桑の木(径約1cm、2本)が入った大容器にキボシカミキリを移し、完全に致死するまでの日数を計測した。7日間までの殺虫活性にて効果を比較した。比較例は、従来技術である特許第3764254号に記載にあるような方法を使用して、ボーベリア・ボロンニアティNBL-851株を含ませた防除資材を準備した（比較例1）。
　表1に示すように、比較例1に記載のサンプルと実施例1に記載のサンプルとでは総菌数は同程度であるが、表層胞子菌数は比較例1において1×106個/cm2未満であり、実施例1においては1×106個/cm2以上であった。その結果、実施例1においてはいずれの反復実験（反復1～4）においても7日間の殺虫効果が見られたのに対し、比較例1においてはいずれの反復実験（反復1～4）においても7日間の殺虫効果が見られなかった。つまり、本発明に係る防除資材は、従来技術に係る防除資材と比較して、殺虫効果が向上したことが分かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001

Claims (12)

  1. 固体担体上に生育させた昆虫寄生糸状菌を含む害虫防除資材であって、表層における前記昆虫寄生糸状菌の胞子菌数が1.0×106～1.0×1010個/cm2であることを特徴とする、害虫防除資材。
  2. 前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア（Beauveria）属菌、ペキロマイセス（Paecilomyces）属菌、トリコデルマ（Trichoderma）属菌、ヴァーティシリウム（Verticillium）属菌、またはレカニシリウム（Lecanicillium）属菌である、請求項１に記載の害虫防除資材。
  3. 前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア・バッシアーナ（Beauveria bassiana）および／またはボーベリア・ブロンニアリティ（Beauveria brongniartii）である、請求項１又は２に記載の害虫防除資材。
  4. 前記昆虫寄生糸状菌が、ボーベリア・バッシアーナF-263（NITE BP-02855）株および／またはボーベリア・ブロンニアリティNBL-851（NITE BP-02854）株である、請求項１～３のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
  5. 前記害虫が、植物害虫または衛生害虫である、請求項１～４のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
  6. 前記植物害虫が、樹木に対する害虫である、請求項５に記載の害虫防除資材。
  7. 前記樹木に対する害虫が、コウチュウ目カミキリムシ科に属する害虫である、請求項６に記載の害虫防除資材。
  8. 前記固体担体が、有機物担体である、請求項１～７のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
  9. 前記有機物担体が、籾殻、おがくず、ふすま、麦、稲藁、大豆、大豆かす、または植物残渣である、請求項８に記載の害虫防除資材。
  10. 前記固体担体が、無機物担体である、請求項１～７のいずれか一項に記載の害虫防除資材。
  11. 前記無機物担体が、多孔質の担体であり、前記多孔質部分に培地成分を含有する、請求項１０に記載の害虫防除資材。
  12. 前記無機物担体が、帯状の不織布である、請求項１０または１１に記載の害虫防除資材。
PCT/JP2020/011246 2019-03-14 2020-03-13 昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法 WO2020184719A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP20770030.3A EP3939430A4 (en) 2019-03-14 2020-03-13 PEST CONTROL MATERIAL USING ENTOMOPARASITIC MICROBES AND PEST CONTROL METHODS USING THEM
KR1020217029905A KR20210141941A (ko) 2019-03-14 2020-03-13 곤충 기생균을 사용한 해충 방제 자재 및 그것을 사용한 해충 방제 방법
US17/438,691 US20220142174A1 (en) 2019-03-14 2020-03-13 Pest control material using entomoparasitic microbe and pest control method using same
CN202080020034.0A CN113573583A (zh) 2019-03-14 2020-03-13 使用昆虫寄生菌的害虫防除材料及使用其的害虫防除方法

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2019-047524 2019-03-14
JP2019047524A JP7395257B2 (ja) 2019-03-14 2019-03-14 昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2020184719A1 true WO2020184719A1 (ja) 2020-09-17

Family

ID=72427093

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2020/011246 WO2020184719A1 (ja) 2019-03-14 2020-03-13 昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20220142174A1 (ja)
EP (1) EP3939430A4 (ja)
JP (1) JP7395257B2 (ja)
KR (1) KR20210141941A (ja)
CN (1) CN113573583A (ja)
WO (1) WO2020184719A1 (ja)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112280691A (zh) * 2020-11-05 2021-01-29 河北省农林科学院植物保护研究所 一种用于防治桃红颈天牛的球孢白僵菌及其应用

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109797110A (zh) * 2019-03-29 2019-05-24 云南农业大学 一种利用甘薯小象甲诱集采集球孢白僵菌的方法

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6374479A (ja) 1986-09-19 1988-04-04 Nitto Electric Ind Co Ltd 微生物培養用発泡体
JPS63190807A (ja) 1986-09-19 1988-08-08 Nitto Electric Ind Co Ltd 害虫駆除用具およびそれを用いた害虫駆除法
JPH07108212B2 (ja) 1989-09-11 1995-11-22 日東電工株式会社 微生物培養用不織布及びこれを用いてなる害虫駆除用不織布、並びに害虫駆除方法
JPH0822810B2 (ja) 1990-03-23 1996-03-06 日東電工株式会社 害虫駆除用担体及び害虫駆除方法
JPH1142036A (ja) * 1997-07-28 1999-02-16 Nitto Denko Corp 害虫駆除用具およびそれを用いた害虫駆除方法
JP2002338419A (ja) * 2001-05-14 2002-11-27 Nitto Denko Corp 害虫防除製剤およびそれを用いた害虫防除方法
JP2006117617A (ja) * 2004-10-25 2006-05-11 Kyoto Univ 天敵糸状菌培養物を用いたカシノナガキクイムシの防除方法
JP2018203696A (ja) * 2017-06-09 2018-12-27 日本農薬株式会社 有害生物防除剤組成物およびその使用方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2653660B2 (ja) * 1987-11-30 1997-09-17 田中貴金属工業株式会社 白金族金属を回収する方法
JPH07108212A (ja) 1993-10-14 1995-04-25 Sekisui Chem Co Ltd スプレー塗装方法
JP2005289864A (ja) * 2004-03-31 2005-10-20 Nitto Denko Corp カミキリムシ類の駆除方法
CN101210223B (zh) * 2006-12-27 2011-07-27 近藤幸盛 昆虫寄生菌子实体的生产方法
US20110280839A1 (en) * 2008-10-14 2011-11-17 PWC Tower Entomopathogenic Fungi and Uses Thereof

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6374479A (ja) 1986-09-19 1988-04-04 Nitto Electric Ind Co Ltd 微生物培養用発泡体
JPS63190807A (ja) 1986-09-19 1988-08-08 Nitto Electric Ind Co Ltd 害虫駆除用具およびそれを用いた害虫駆除法
JPH07108212B2 (ja) 1989-09-11 1995-11-22 日東電工株式会社 微生物培養用不織布及びこれを用いてなる害虫駆除用不織布、並びに害虫駆除方法
JPH0822810B2 (ja) 1990-03-23 1996-03-06 日東電工株式会社 害虫駆除用担体及び害虫駆除方法
JPH1142036A (ja) * 1997-07-28 1999-02-16 Nitto Denko Corp 害虫駆除用具およびそれを用いた害虫駆除方法
JP3764254B2 (ja) 1997-07-28 2006-04-05 日東電工株式会社 害虫駆除用具およびそれを用いた害虫駆除方法
JP2002338419A (ja) * 2001-05-14 2002-11-27 Nitto Denko Corp 害虫防除製剤およびそれを用いた害虫防除方法
JP2006117617A (ja) * 2004-10-25 2006-05-11 Kyoto Univ 天敵糸状菌培養物を用いたカシノナガキクイムシの防除方法
JP2018203696A (ja) * 2017-06-09 2018-12-27 日本農薬株式会社 有害生物防除剤組成物およびその使用方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP3939430A4
WADA, TETSUO: "How to use Beauveria Bassiana", PLANT PROTECTION, JAPAN PLANT PROTECTION ASSOCIATION , TOKYO, JP, vol. 57, no. 4, 30 November 2002 (2002-11-30), JP, pages 181 - 183, XP009530803, ISSN: 0037-4091 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112280691A (zh) * 2020-11-05 2021-01-29 河北省农林科学院植物保护研究所 一种用于防治桃红颈天牛的球孢白僵菌及其应用

Also Published As

Publication number Publication date
JP2020147540A (ja) 2020-09-17
EP3939430A1 (en) 2022-01-19
EP3939430A4 (en) 2022-11-16
JP7395257B2 (ja) 2023-12-11
KR20210141941A (ko) 2021-11-23
CN113573583A (zh) 2021-10-29
US20220142174A1 (en) 2022-05-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Burge Fungi in biological control systems
EP1876232B1 (fr) Nouvelle souche de trichoderma atroviride, un milieu de culture la contenant, ainsi que l'utilisation de ladite souche notamment comme stimulant de la germination et/ou de la croissance des plantes
JPH05505591A (ja) 殺線虫菌剤
KR20030035708A (ko) 신규한 패실로마이세스 속 미생물 및 그를 포함하는토양해충 방제용 미생물 살충제
KR101680638B1 (ko) 신규미생물 보베리아 바시아나 fg274와 이를 함유하는 파밤나방 유충 방제용 미생물제제
KR20150057124A (ko) 신규미생물 메타리지움 아니소플리애 ft83와 이를 함유하는 파밤나방 유충 방제용 미생물제제
Kim et al. A novel approach: Beauveria bassiana granules applied to nursery soil for management of rice water weevils in paddy fields
JP2949218B2 (ja) 菌食性線虫アフェレンクス・アベネの大量生産法
KR102251508B1 (ko) 우수한 살충 효과 및 포자생성능을 갖는 신규 보베리아 바시아나 knu-101 균주 및 이의 용도
WO2020184719A1 (ja) 昆虫寄生菌を用いた害虫防除資材およびそれを用いた害虫防除方法
Wiwattanapatapee et al. Effervescent fast-disintegrating bacterial formulation for biological control of rice sheath blight
KR102126582B1 (ko) 이사리아 자바니카 ft333 균주 또는 이를 함유하는 총채벌레 및 식물탄저병균의 동시방제용 미생물제제
KR101773339B1 (ko) 이사리아 푸모소로세아 Pf212 균주 또는 이를 이용한 진딧물, 잘록병균 및 고추 탄저병균의 동시방제용 조성물
US5194258A (en) Production of enhanced biocontrol agents
CN110896964A (zh) 一种没有农药残留的拌种剂及其制备方法
AU2012248892B2 (en) Uses, methods and biological compositions of the genus Paecilomyces for the control, prevention and eradication of phytoparasites in solanaceae cultures
KR101680639B1 (ko) 신규미생물 이사리아 푸모소로세 fg340와 이를 함유하는 파밤나방 유충 방제용 미생물제제
KR100616408B1 (ko) 라이조푸스 올리고스포러스을 포함하는 잔디생장촉진제 및이를 이용한 잔디 생장 촉진 방법
EP0544039B1 (en) Production of enhanced biocontrol agents
Sutthisa et al. Development of Trichoderma formulation and application to control durian anthracnose disease
KR102650171B1 (ko) 뿌리응애 방제능을 가지는 메타리지움 펨피기 111 균주 및 이의 용도
KR100713059B1 (ko) 신규의 라이조푸스 올리고스포러스 kccm 10624 및 이를 포함하는 식물생장촉진제 및 식물병저항성 증진제
KR102670639B1 (ko) 뿌리응애 방제능을 가지는 메타리지움 아니소플리애 432 균주 및 이의 용도
Doolotkeldieva et al. IN VITRO AND IN VIVO SCREENING OF BEAUVERIA BASSIANA STRAINS FOR ENDOPHYTIC AND INSECTICIDE ACTIVITY
Ermiyanti et al. Bioassay test of Beauveria bassiana alginate pellet formulation on mortality of Spodoptera frugiperda in the laboratory

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 20770030

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2020770030

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2020770030

Country of ref document: EP

Effective date: 20211014