WO2020179571A1 - ミオスタチンスプライスバリアント由来タンパク質によるミオスタチンシグナル阻害とその利用 - Google Patents

ミオスタチンスプライスバリアント由来タンパク質によるミオスタチンシグナル阻害とその利用 Download PDF

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protein
vector
polynucleotide
cell
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雅文 松尾
宏亮 岡崎
前田　和宏
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神戸天然物化学株式会社
学校法人神戸学院
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    • C12N2800/22—Vectors comprising a coding region that has been codon optimised for expression in a respective host

Definitions

  • the present invention relates to myostatin signal inhibition by a protein derived from myostatin splice variant and its use.
  • Myostatin is produced as a precursor in cells, cleaved by protease, and converted to mature myostatin.
  • Smad2/3 is phosphorylated and phosphorylated Smad2/3 is translocated into the nucleus.
  • Phosphorylated Smad2/3 binds to the Smad binding element present in the promoter of the target gene to induce expression of the target gene (myostatin signal).
  • myostatin signal Activation of myostatin signals induces gene expression, and the induced factors act suppressively on muscle formation. In contrast, inhibition of the myostatin signal promotes muscle formation.
  • Non-Patent Document 1 Since promotion of muscle formation can be used for treatment of muscular atrophy diseases such as muscular dystrophy, it is considered that inhibition of myostatin signal may be a therapeutic method for muscular atrophy (Non-Patent Document 1).
  • the decrease in the expression level of myostatin inhibits the growth of cancer cells (Non-Patent Document 2). This suggests that lowering myostatin levels and inhibiting myostatin signals are effective in treating cancer.
  • the expression level of myostatin in type 2 diabetic patients is increasing, it is considered that there is some relationship between myostatin and diabetes (Non-Patent Document 3). From these facts, it is considered that inhibition of myostatin signal is effective for suppression of diabetes and inhibition of progression.
  • Non-Patent Document 4 Patent Document 1
  • Non-patent Documents 5 and 2 a method of suppressing the myostatin signal by using a sheep myostatin splice variant has been shown (Non-patent Documents 5 and 2). However, the myostatin splice variant found in this sheep has not been found in humans.
  • the present invention aims to provide a method for suppressing the myostatin signal.
  • a protein translated from a myostatin splice variant inhibits the myostatin signal.
  • the protein translated from the mRNA of myostatin splice variant does not have the active region required for mature myostatin, but retains 90% or more of the prodomain (Fig. 3).
  • the myostatin signal could be suppressed (Fig. 6).
  • the protein translated from the myostatin splice variant is considered to be more stable than the exogenous one because it is a protein naturally produced in vivo.
  • myostatin signal enables treatment of muscular atrophic diseases by promoting muscle formation.
  • suppression of myostatin signal enables inhibition of cancer cell growth.
  • activation of myostatin signal associated with increase in myostatin may be associated with diabetes mellitus, and thus suppression of myostatin signal is considered to be effective in preventing diabetes or inhibiting progression. .. Therefore, this protein and the protein expression system can be used for the treatment of diseases associated with myostatin.
  • the gist of the present invention is as follows.
  • the following protein (a) or (b): (a) Protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (b) A protein consisting of an amino acid sequence having at least 70% or more sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and capable of suppressing a myostatin signal (2)
  • composition (a) Protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (b) The protein according to (6) (1), the protein according to (2), which comprises an amino acid sequence having at least 70% or more sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and capable of suppressing a myostatin signal.
  • a composition for suppressing a myostatin signal comprising at least one selected from the group consisting of a polynucleotide, the vector described in (3) and the cell described in (4).
  • To promote muscle formation comprising at least one selected from the group consisting of the protein according to (1), the polynucleotide according to (2), the vector according to (3) and the cell according to (4).
  • Composition comprising at least one selected from the group consisting of the protein according to (1), the polynucleotide according to (2), the vector according to (3) and the cell according to (4).
  • Diseases associated with myostatin including at least one selected from the group consisting of the protein according to (1), the polynucleotide according to (2), the vector according to (3) and the cell according to (4).
  • Compositions for prevention and / or treatment including at least one selected from the group consisting of the protein described in (1), the polynucleotide described in (2), the vector described in (3) and the cell described in (4).
  • a medicine comprising at least one selected from the group consisting of the protein described in (1), the polynucleotide described in (2), the vector described in (3) and the cell described in (4).
  • a food comprising at least one selected from the group consisting of the protein described in (1), the polynucleotide described in (2), the vector described in (3), and the cell described in (4).
  • a method for preventing and/or treating a disease associated with myostatin which comprises administering to (13)
  • the protein translated from the myostatin splice variant can inhibit the myostatin signal.
  • This specification includes the content described in the Japan patent application, Japanese Patent Application No. 2019-37915, and/or drawing which are the foundations of the priority of this application.
  • MSTN myostatin
  • MSTN-V myostatin gene product of human rhabdomyosarcoma cells.
  • MSTN, MSTN-V Two amplification products were obtained by amplification (MSTN, MSTN-V) (left).
  • the structure of exons obtained by analyzing the nucleotide sequence of each product is shown in the schematic diagram (right).
  • bases 881 to 1843 of MSTN were deleted.
  • the sequence of the junction between exon 2 and exon 3 of each product and a part of the base sequence of base 1844 are shown (bottom right). Splicing the myostatin gene.
  • MSTN is composed of exon 1, exon 2, and exon 3 by removing introns 1 and 2 from the pre-mRNA of myostatin gene by splicing (solid line).
  • Intron 2 is the most common intron having GT and AG sequences at both 5'and 3'ends.
  • MSTN-V the splicing mode of intron 2 is different, and TG in exon 3 which is a potential splice acceptor site is activated to form GT-TG intron (dotted line).
  • myostatin V 963 bases from exon 3 881 to 1843 are deleted.
  • Myostatin V protein Myostatin V protein.
  • Myostatin is composed of a signal peptide (Nos. 1 to 18), a prodomain (Nos. 19 to 266), and a mature myostatin (Nos. 267 to 375) from the N terminus.
  • the nucleic acid sequences of myostatin and myostatin V are the same in exon 1 and exon 2 and common to amino acids 249.
  • the 250th amino acid from the N-terminal is asparagine (N), the 251st is valine (V), and the 252nd is a stop codon (*) (SEQ ID NO: 1). Therefore, myostatin V does not have the domain of mature myostatin.
  • Myostatin signal since the base sequence of exon 3 is different, the 250th amino acid from the N-terminal is asparagine (N), the 251st is valine (V), and the 252nd is a stop codon (*) (SEQ ID NO: 1). Therefore, myostatin V does not have the domain of mature my
  • myostatin mature myostatin produced from a precursor activates downstream signaling by binding to a receptor on the cell surface.
  • Smad2/3 is phosphorylated and phosphorylated Smad2/3 translocates into the nucleus.
  • Phosphorylated Smad2/3 binds to the Smad binding element present in the promoter of the target gene to induce expression of the target gene.
  • Expression vector and expression protein of myostatin V is a promoter of the target gene to induce expression of the target gene.
  • FIG. 1 A schematic diagram of the action of myostatin V and myostatin on the in vitro myostatin transcription activity measurement system is shown (left).
  • empty vector, MSTN-N expression vector, and MSTN-V expression vector were introduced into myocytes, respectively, and evaluated by the activity of luciferase whose expression was induced by Smad2/3.
  • the luciferase activity was shown as a relative value with the result of measuring the extract derived from the cells into which the empty vector was introduced as 1, (center, right). Expression of myostatin increased luciferase activity in both human rhabdomyosarcoma cells and human skeletal myoblasts. On the other hand, when myostatin V was expressed, a decrease in luciferase activity was observed, suggesting that myostatin V inhibits myostatin signaling.
  • the present invention provides the following proteins (a) or (b).
  • (a) Protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (b) A protein consisting of an amino acid sequence having at least 70% or more sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and capable of suppressing the myostatin signal
  • the protein of (a) consists of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1. It is a protein that is translated from the splice variant of human myostatin. As shown in FIG. 3, myostatin (375aa, 43 kDa) is composed of regions of the signal peptide (1-18), prodomain (19-266) and mature myostatin (267-375), whereas the myostatin variant is a signal. It is composed of the peptide (1-18) and part of the prodomain (19-251), with the C-terminal amino acid (251) replaced by proline to valine. Therefore, mature myostatin is not formed in the myostatin variant.
  • the protein (a) can suppress the myostatin signal (Fig. 4).
  • RNA was extracted from human rhabdomyosarcoma cells (CRL-2061, ATCC), cDNA was synthesized using reverse transcriptase and random primers, amplified by PCR, and sequenced. After determining the sequence, a restriction enzyme recognition sequence was added to the 5'side and 3'side of the sequence optimized for the codon usage frequency of the open reading frame, and then incorporated into an appropriate vector and introduced into an appropriate host cell. Then, it can be produced by producing it as a recombinant protein.
  • the protein (b) consists of an amino acid sequence having at least 70% sequence identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, and is a protein capable of suppressing the myostatin signal.
  • a transcription factor Smad protein
  • the presence or absence of suppression of the myostatin signal can be evaluated by co-introducing into the cell a reporter gene having a luciferase gene located downstream thereof and a vector expressing the protein of (b), and measuring the luminescence of luciferase.
  • sequence identity of the amino acid sequences of the protein of (b) and the protein of (a) is at least 70 or more, more preferably 80% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more.
  • the protein of (b) is one or more in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (any of 2 to 76, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 7, 8 9, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 75, 76 are preferable in this order.) Amino acid sequence with deletion, substitution or addition And a protein capable of suppressing the myostatin signal.
  • the protein (b) can be prepared by substituting any amino acid in the protein (a) with another amino acid by the site-directed mutagenesis method.
  • the present invention provides a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein of (a) or (b) or a sequence complementary thereto.
  • the polynucleotide of the present invention may be single-stranded or double-stranded. In the case of a double strand, it consists of a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein of (a) or (b) and its complementary strand.
  • the polynucleotide may be any of DNA, RNA, and a chimera of DNA and RNA, and the nucleotides constituting the polynucleotide may be modified.
  • modified nucleotides sugar-modified ones (for example, D-ribofuranose is 2'-O-alkylated, D-ribofuranose is 2'-O, 4'-C-alkylenated) ), a phosphodiester bond modified (for example, thioated), a base modified, a combination thereof, and the like.
  • nucleotide sequence encoding the protein of (a) the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 can be mentioned.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 is a myostatin variant mRNA sequence extracted from human rhabdomyosarcoma cells (CRL-2061, ATCC).
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 includes 5'untranslated region, open reading frame (sequence between start codon (atg) and stop codon (tga)), 3'untranslated region, poly(A).
  • the nucleotide sequence encoding the protein (a) may include the sequence between the start codon (atg) and the stop codon (tga) in the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 or the sequence thereof.
  • the nucleotide sequence of the open reading frame may be optimized for the codon usage frequency. As an example, the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 for which the codon usage frequency of the open reading frame is optimized is shown in SEQ ID NO: 3.
  • polynucleotide containing the nucleotide sequence encoding the protein (a) can be prepared, for example, by the method described in Example 1 below.
  • the polynucleotide containing a sequence complementary to the nucleotide sequence encoding the protein of (a) is an mRNA of myostatin variant containing the nucleotide sequence encoding the protein of (a) (having a poly(A) chain at the 3′ end) Can be synthesized using reverse transcriptase and oligo dT primer. After the mRNA is decomposed by alkali treatment, the resulting single-stranded DNA can be used as a template to form a double strand with a reverse transcriptase or a DNA polymerase.
  • nucleotide sequence encoding the protein of (b) and a sequence complementary thereto are introduced, for example, by site-directed mutagenesis, to introduce a nucleotide substitution mutation into the nucleotide sequence encoding the protein of (a) and a sequence complementary thereto. It is obtained by doing.
  • the present invention comprises culturing a cell containing a vector containing a polynucleotide comprising a nucleotide sequence encoding the protein of (a) or (b) or a sequence complementary thereto, (a) or (b) Provide a method for producing the protein of.
  • the present invention also provides a vector (recombinant vector) containing a polynucleotide containing the nucleotide sequence encoding the protein of (a) or (b) or a sequence complementary thereto.
  • the present invention also provides a cell containing a vector containing a polynucleotide containing the nucleotide sequence encoding the protein of (a) or (b) or a sequence complementary thereto.
  • the recombinant vector of the present invention can be obtained by inserting a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein (a) or (b) and a sequence complementary thereto into an appropriate vector.
  • vectors examples include plasmids derived from Escherichia coli (eg, pBR322, pBR325, pUC12, pUC13, pUC19, pET-44, pBlueScriptII) and plasmids derived from Bacillus subtilis (eg, YEp13, pYES2, YRp7, YIp5, pYAC2, pUB110, pTP5.
  • Escherichia coli eg, pBR322, pBR325, pUC12, pUC13, pUC19, pET-44, pBlueScriptII
  • Bacillus subtilis eg, YEp13, pYES2, YRp7, YIp5, pYAC2, pUB110, pTP5.
  • yeast-derived plasmid eg, pSH19, pSH15
  • bacteriophage such as ⁇ phage, retrovirus, adenovirus, lentivirus, adeno-associated virus, animal virus such as vaccinia virus, insect pathogenic virus such as baculovirus, etc.
  • animal virus such as vaccinia virus, insect pathogenic virus such as baculovirus, etc.
  • a promoter, enhancer, terminator, splicing signal, poly A addition signal, selection marker, SV40 replication origin, etc. may be added to the expression vector.
  • the expression vector may also be a fusion protein expression vector.
  • Various fusion protein expression vectors are commercially available, for pGEX series (GE Healthcare), Novagen's® pET Systems (Merck), Clontech Fluorescent Protein Vector Series (Takara), His6, HaloTag addition.
  • Expression vectors Promega
  • FLAG tag fusion protein expression system Sigma-Aldrich
  • expression vector series for pCruz TM mammalian cells can be exemplified.
  • Transformed cells can be obtained by introducing the recombinant vector of the present invention into host cells.
  • the present invention also provides a cell (host cell) into which a recombinant vector has been introduced.
  • Examples of the host include bacterial cells (eg, Escherichia, Bacillus, Bacillus, etc.), fungal cells (eg, yeast, Aspergillus, etc.), insect cells (eg, S2 cells, Sf cells, etc.), animal cells (eg, , CHO cells, COS cells, HeLa cells, C127 cells, 3T3 cells, BHK cells, HEK293 cells, etc.), plant cells and the like.
  • bacterial cells eg, Escherichia, Bacillus, Bacillus, etc.
  • fungal cells eg, yeast, Aspergillus, etc.
  • insect cells eg, S2 cells, Sf cells, etc.
  • animal cells eg, CHO cells, COS cells, HeLa cells, C127 cells, 3T3 cells, BHK cells, HEK293 cells, etc.
  • the transformed cells can be cultured in a medium and the protein (a) or (b) can be collected from the culture.
  • the medium When the protein (a) or (b) is secreted into the medium, the medium may be recovered, and the protein (a) or (b) may be separated from the medium and purified.
  • the protein of (a) or (b) is produced in the transformed cell, the cell is lysed, and the protein of (a) or (b) is separated from the lysate and purified. Good.
  • the protein of (a) or (b) is expressed in the form of a fusion protein with another protein (which functions as a tag), after the fusion protein is separated and purified, the factor Xa or enzyme (enterokinase) By the treatment, another protein can be cleaved to obtain the target protein (a) or (b).
  • Separation and purification of the protein (a) or (b) can be performed by a known method.
  • Known separation and purification methods include solubility-based methods such as salting out and solvent precipitation methods, dialysis methods, ultrafiltration methods, gel filtration methods, and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis methods such as difference in molecular weight.
  • Method, method of utilizing difference in charge such as ion exchange chromatography, method of utilizing specific affinity such as affinity chromatography, method of utilizing difference in hydrophobicity such as reverse phase high performance liquid chromatography, etc.
  • a method utilizing a difference in isoelectric points such as an electrofocusing method is used.
  • the present invention comprises the protein of (a) and / or (b), a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein or a sequence complementary thereto, a vector containing the polynucleotide, and a cell containing the vector.
  • compositions for suppressing myostatin signaling comprising at least one selected from the group.
  • the present invention also comprises the protein of (a) and / or (b), a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein or a sequence complementary thereto, a vector containing the polynucleotide, and a cell containing the vector.
  • a composition for promoting muscle formation comprising at least one selected from the group. If the vector contains a nucleotide sequence encoding the protein of (a) and / or (b) or a polynucleotide containing a sequence complementary thereto, the vector encodes the protein of (a) and / or (b).
  • a polynucleotide containing a nucleotide sequence or a sequence complementary thereto can be introduced into a cell, for example, a gene therapeutic vector such as an adenovirus, a retrovirus, a lentivirus, an adeno-associated virus, a Sendai virus, a liposome, or a plasmid.
  • a gene therapeutic vector such as an adenovirus, a retrovirus, a lentivirus, an adeno-associated virus, a Sendai virus, a liposome, or a plasmid.
  • the polynucleotide or vector of the present invention introduced into cells self, allogeneic
  • a method for introducing a gene of interest into a vector, a method for introducing a recombinant vector into a cell, a method for administering a recombinant vector or a gene-introduced cell to a human, and an administration site are known, and can be used as it is in the present invention or as it is. It can be modified and applied. In gene therapy and cell therapy, genome editing technology may be used.
  • ZFN z inc- f inger n uclease
  • TALEN t ranscription a ctivator- l ike e ffector n uclease
  • CRISPR / Cas9 c lustered r egularly i nterspaced s hort p alindromic r epeats / CRISPR- a Artificial nucleases such as ssociated protein 9 ) can be used.
  • composition of the present invention can be used for medicines, laboratory reagents, foods, feeds and the like.
  • myostatin may be directly or indirectly involved
  • a muscular atrophic disease eg, muscular dystrophy, spinal muscular atrophy, sarcopenia, disused And/or treatment of muscular atrophy, cardiovascular disease (eg, heart failure, arteriosclerosis, etc.), renal disease (eg, chronic renal failure etc.), bone disease (eg, inflammatory arthritis etc.), cancer or diabetes
  • the disease associated with myostatin may be a disease in which reduction of myostatin amount or inhibition of myostatin signal is effective.
  • the present invention provides the protein of (a) and/or (b), At least one selected from the group consisting of a polynucleotide comprising a nucleotide sequence encoding the gene or a sequence complementary thereto, a vector containing the polynucleotide, and a cell containing the vector is administered to a subject in a pharmaceutically effective amount.
  • the present invention also provides a method for preventing and/or treating a disease associated with myostatin, which is for use in a method for preventing and/or treating a disease associated with myostatin, comprising (a) and And/or (b) the protein, a polynucleotide containing a nucleotide sequence encoding the protein or a sequence complementary thereto, a vector containing the polynucleotide, and at least one selected from the group consisting of cells containing the vector. To do.
  • myostatin Since inhibition of myostatin leads to an increase in skeletal muscle mass, it can be used to treat all diseases that exhibit muscular atrophy regardless of the cause of muscular atrophy.
  • the increase in skeletal muscle mass increases the amount of exercise and contributes to the improvement of whole body metabolism. It can also be expected to act on the myocardium to restore its function.
  • myostatin inhibition is also expected to act on osteoclasts to suppress bone destruction, activate homeostasis of vascular endothelial cells, induce apoptosis, and increase insulin sensitivity.
  • active ingredient a pharmaceutical composition of a suitable dosage form, mammal (eg, eg , Human, rabbit, dog, cat, rat, mouse) orally or parenterally.
  • the dose varies depending on the administration target, target disease, symptom, administration route, etc., but for example, when used for the prevention / treatment of muscular atrophic disease (for example, muscular dystrophy), it is used as a single dose of the active ingredient.
  • the active ingredient is a protein, it is usually about 0.1 ⁇ g to 100 mg / kg body weight, preferably about 0.5 mg to 100 mg body weight, and when the active ingredient is a polynucleotide, it is usually about 0.1 to 50 mg / kg body weight.
  • the active ingredient is a vector comprising a polynucleotide, usually 1x10 14 ⁇ 9x10 14 genome copies / kg body weight or so, preferably at 1x10 12 genome copies / kg body weight about a week 1 It may be administered by oral, intramuscular injection, subcutaneous injection, or intravenous injection (preferably continuously or every other day) at a frequency of about once a month or about once a year, preferably about once a year.
  • the active ingredient is a cell containing a vector, 10,000-100,000 cells are administered as a single dose of the active ingredient at a frequency of about once a week to once a month or about once a year, preferably about once a year.
  • It may be administered by intramuscular injection, subcutaneous injection, intravenous injection, preferably intravenous injection. In the case of other parenteral administrations and oral administrations, doses similar to this can be administered. If the symptom is particularly severe, the dose may be increased according to the symptom.
  • compositions for oral administration include solid or liquid dosage forms, specifically tablets (including sugar-coated tablets, film-coated tablets), pills, granules, powders, capsules (including soft capsules), syrup.
  • examples include agents, emulsions and suspending agents.
  • Such compositions can be prepared by conventional methods and may contain carriers, diluents or excipients commonly used in the pharmaceutical field.
  • carriers and excipients for tablets include lactose, starch, sucrose, magnesium stearate and the like.
  • compositions for parenteral administration include injections, suppositories, and the like, and injections include intravenous injections, subcutaneous injections, intradermal injections, intramuscular injections, drip injections, and the like. It is good to be.
  • Such an injection is prepared by a conventional method, that is, by dissolving, suspending or emulsifying the active ingredient in a sterile aqueous or oily liquid usually used for injections.
  • aqueous solution for injection examples include physiological saline, isotonic solution containing glucose and other adjuvants, and appropriate solubilizing agents such as alcohol (eg ethanol) and polyalcohol (eg propylene glycol, Polyethylene glycol), a nonionic surfactant (eg, polysorbate 80, HCO-50 (polyoxyethylene (50 mol) adduct of hydrogenated castor oil)) and the like may be used in combination.
  • alcohol eg ethanol
  • polyalcohol eg propylene glycol, Polyethylene glycol
  • a nonionic surfactant eg, polysorbate 80, HCO-50 (polyoxyethylene (50 mol) adduct of hydrogenated castor oil)
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, and solubilizing agents such as benzyl benzoate and benzyl alcohol may be used in combination.
  • the prepared injection solution is usually filled in a suitable ampoule.
  • the above-mentioned oral or parenteral pharmaceutical composition may be prepared in a dosage unit form suitable for the dose of the active ingredient.
  • dosage forms of such dosage units include tablets, pills, capsules, injections (ampoules), suppositories, and the like, and usually 0.1 to 1.000 mg of active ingredient per dosage unit dosage form. It is preferably contained.
  • any animal can be used as long as it expresses myostatin, such as cats, dogs, sheep, pigs, cows, mammals such as chickens and turkeys, fish such as salmon, trout, cod, tuna, yellowtail, etc.
  • the breeding animals can be exemplified.
  • the foods and feeds of the present invention include general components such as proteins, lipids, carbohydrates and sodium, minerals such as potassium, calcium, magnesium and phosphorus, trace elements such as iron, zinc, copper, selenium and chromium, vitamin A, ⁇ -carotene, vitamin B 1 , vitamin B 2 , vitamin B 6 , vitamin B 12 , vitamin C, niacin, folic acid, vitamin D 3 , vitamin E, biotin, vitamins such as pantothenic acid, coenzyme Q10, ⁇ -lipoic acid , Galacto-oligosaccharides, dietary fiber, excipients (water, carboxymethyl cellulose, lactose, etc.), sweeteners, flavoring agents (apple acid, citric acid, amino acids, etc.), fragrances, etc.
  • general components such as proteins, lipids, carbohydrates and sodium, minerals such as potassium, calcium, magnesium and phosphorus, trace elements such as iron, zinc, copper, selenium and chromium, vitamin A, ⁇
  • the food or feed of the present invention When the food or feed of the present invention is used as a liquid, water, physiological saline, soup, milk, fruit juice or the like can be used as a liquid for dispersing or dissolving the food or feed components.
  • the food and feed of the present invention may be in the form of powder, granules, tablets, solutions and the like. In order to make it easy for the sick and the elderly to take, it is preferable to use a gel product such as jelly.
  • Example 1 Cloning and identification of myostatin variant RNA (500 ng) extracted from human rhombic myoma cells (CRL-2061, ATCC) with the High Pure RNA Isolation Kit (# 11828665001, Roche Life Science) was subjected to Random primers. Reverse transcriptase to cDNA by M-MLV Reverse Transcriptase (# 28025013, Thermo Fisher Scientific) in the presence of RNaseOUT TM Recombinant Ribonuclease Inhibitor (# 10777-019, Thermo Fisher Scientific) using (# 48190011, Thermo Fisher Scientific).
  • a PCR fragment of approximately 2.5 kbp was a normal splicing product composed of all exon exon 1 (Ex1), exon 2 (Ex2) and exon 3 (Ex3) of the myostatin (MSTN) gene (MSTN). ).
  • MSTN myostatin gene
  • nucleotide sequence of the approximately 1.5 kbp fragment of myostatin variant (MSTN-V) (SEQ ID NO: 2) was exactly the same as MSTN up to exon 1 and exon 2 of the myostatin gene. However, the sequence corresponding to exon 3 was completely different from MSTN. The sequence starting with aat ccg ttt was the sequence starting with aat gtc tga. The sequence below this aatgtctga perfectly matched the sequence downstream of base 1844 in exon 3 of MSTN. This indicated that the region corresponding to nucleic acid sequences 881 to 1843 of exon 3 was deleted.
  • MSTN intron 2 is the most common intron with GT and AG sequences at both ends of 5'and 3'.
  • MSTN-V the splicing pattern of intron 2 is different, and TG in exon 3 which is a potential splice acceptor site is activated to form GT-TG intron.
  • myostatin V the 881 to 1843 bases of exon 3 are deleted (Fig. 2).
  • MSTN-V mRNA has a start codon and a stop codon, suggesting that it is translated into a protein of 251 amino acids.
  • the sequence from the N-terminal side to the 250th amino acid of myostatin V had the same sequence as myostatin, but the 251st was valine and the 252nd was a stop codon. Since mature myostatin is composed of amino acids 267 to 375 of myostatin, mature myostatin is not produced from MSTN-V mRNA (SEQ ID NO: 1, FIG. 3).
  • Myostatin exerts its action via the myostatin signal. That is, Smad2/3 is phosphorylated when mature myostatin produced from the precursor binds to a receptor present on the cell membrane. Phosphorylated Smad2/3 translocates to the nucleus, binds to the Smad binding element upstream of the target gene, and enhances gene expression (Fig. 4).
  • the amino acid sequence of the myostatin precursor is shown in SEQ ID NO: 5, and the sequence of mRNA is shown in SEQ ID NO: 4.
  • Example 2 Expression of myostatin variant in cultured cells
  • an MSTN-V expression vector was prepared. Nucleic acid obtained by optimizing the codon usage frequency of the open reading frame of SEQ ID NO: 2 (SEQ ID NO: 3) and adding Nhe I recognition sequence (GCTTGC) on the 5'side and BamHI I recognition sequence (GGATCC) on the 3'side After artificial synthesis with Fasmac, it was inserted into the Nhe I and BamHI sites of pcDNA TM 3.1 (+) vector (# V79020, Thermo Fisher Scientific) (Fig. 5, left).
  • MSTN-V expression vector Protein expression from the MSTN-V expression vector was confirmed by Western Blot.
  • human rhabdomyosarcoma cells CRL-2061, ATCC
  • MSTN-V expression vector and the empty vector pcDNA TM 3.1 (+)
  • Lipofectamin® 2000 (11668019, Thermo Fisher Scientific). Introduced using. Twenty-four hours after vector introduction, cells were disrupted using Cell Lysis Buffer (# 9803, Cell Signaling) (added with 1 mM PMSF (# 8553, Cell Signaling)) to obtain a soluble fraction as a sample.
  • the protein quantification of the obtained sample was performed by Qubit (registered trademark) Protein Assay Kit (#Q33211, Thermo Fisher Scientific).
  • Samples for SDS-PAGE were prepared by heat treatment after mixing the samples with 4x Laemmli Sample Buffer (# 1610747, Bio-Rad) (added 2-Mercaptoethanol (# 1610710, Bio-Rad)).
  • electrophoresis was performed using Mini-PROTEAN (registered trademark) TGX TM Precast Gels 4-20% Gel (#456-1094, BIO-RAD).
  • Mini-PROTEAN registered trademark
  • TGX TM Precast Gels 4-20% Gel #456-1094, BIO-RAD
  • As a molecular weight marker Precision Plus Protein TM Dual Color Standards (#1610374, BIO-RAD) was electrophoresed.
  • the TransBlot Turbo TM transfer system was used for transfer to the membrane.
  • an antibody that recognizes the N-terminal side of myostatin as the primary antibody. , # ab71808, abcam
  • actin was treated overnight with a recognition antibody ( ⁇ -Actin antibody (C4), # sc-47778, Santa Cruz Biotechnology) at 4 ° C.
  • HRP-labeled anti-rabbit IgG antibody #NA934, GE
  • HRP-labeled anti-mouse IgG antibody #NA931, GE
  • the detection was carried out using the Amersham TM ECL Select TM Western Blotting Detection Reagent (#RPN2235, GE) with the ChemiDoc TM XRS+ system (Bio-Rad). As a result, a band of myostatin V was detected near 35 kDa (Fig. 5, right). At the same time, actin was also analyzed to obtain a band.
  • Example 3 Myostatin Signal Inhibition by Myostatin Variants
  • Myostatin signal inhibitory activity by myostatin V was evaluated by an in vitro myostatin transcription activity assay system.
  • a reporter gene SBE4-Luc plasmid, # 16495, Addgene
  • a luciferase gene in which a luciferase gene is arranged downstream of the Smad binding sequence is introduced into cells, and the luminescence of the expression-induced luciferase is measured to measure the myostatin signal.
  • a myostatin (MSTN-N) expression vector was used for study.
  • the MSTN-N expression vector is a nucleic acid in which Nhe I recognition sequence (GCTTGC) is added to the 5'side of myostatin cDNA (SEQ ID NO: 4) and BamHI recognition sequence (GGATCC) is added to the 3'side. It was synthesized and prepared by inserting it into the Nhe I and BamH I sites of pcDNA TM 3.1(+) vector (V79020, Thermo Fisher Scientific). The expression of myostatin (SEQ ID NO: 5) from the MSTN-N expression vector was confirmed by Western Blot as with myostatin V.
  • GCTTGC Nhe I recognition sequence
  • GGATCC BamHI recognition sequence
  • the protein quantification of the obtained sample was performed by Qubit (registered trademark) Protein Assay Kit (#Q33211, Thermo Fisher Scientific). Luciferase activity was evaluated by measuring the luciferase luminescence signal with a multi-label plate reader ARVO TM 3 (PerkinElmer) using the Luciferase Assay System of the Luciferase Assay System with Reporter Lysis Buffer (# E4030, Promega) as a substrate.
  • the luciferase activity was shown as a relative value with the result of measuring the extract derived from the cells into which the empty vector was introduced as 1 (FIG. 6, center, right).
  • an increase in luciferase specific activity was observed when myostatin was expressed.
  • myostatin V was expressed, a decrease in luciferase specific activity was observed.
  • the luciferase activity of this experimental system correlates with the myostatin signal, an increase in the luciferase activity indicates an increase in the myostatin signal, and a decrease in the luciferase activity indicates an suppression of the myostatin signal. From this, it was revealed that the expression of myostatin V suppresses the myostatin signal.
  • the present invention can be used to promote muscle formation in humans and animals.
  • ⁇ SEQ ID NO: 1> 1 shows the amino acid sequence of myostatin variant protein (all 251 amino acids).
  • Amino acid sequence (total 375 amino acids) 1 MQKLQLCVYIYLFMLIVAGPVDLNENSEQKENVEKEGLCNACTWRQNTKSSRIEAIKIQI 60 LSKLRLETAPNISKDVIRQLLPKAPPLRELIDQYDVQRDDSSDGSLEDDDYHATTETIIT 120 MPTESDFLMQVDGKPKCCFFKFSSKIQYNKVVKAQLWIYLRPVETPTTVFVQILRLIKPM 180 KDGTRYTGIRSLKLDMNPGTGIWQSIDVKTVLQNWLKQPESNLGIEIKALDENGHDLAVT 240 FPGPGEDGLNPFLEVKVTDTPKRSRRDFGLDCDEHSTESRCCRYPLTVDFEAFGWDWIIA 300 PKRYKANYCSGECEFVFLQKYPHTHLVHQANPRGSAGPCCTPTKMSPINMLYFNGKEQII 360 YGKIPAMVVDRCGCS 375 ⁇ SEQ ID NO: 6>

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Abstract

ミオスタチンシグナルを抑制する方法を提供する。以下の(a)又は(b)のタンパク質。 (a) 下記のアミノ酸配列からなるタンパク質 (b) 下記のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質 1 MQKLQLCVYIYLFMLIVAGPVDLNENSEQKENVEKEGLCNACTWRQNTKSSRIEAIKIQI 60 LSKLRLETAPNISKDVIRQLLPKAPPLRELIDQYDVQRDDSSDGSLEDDDYHATTETIIT 120 MPTESDFLMQVDGKPKCCFFKFSSKIQYNKVVKAQLWIYLRPVETPTTVFVQILRLIKPM 180 KDGTRYTGIRSLKLDMNPGTGIWQSIDVKTVLQNWLKQPESNLGIEIKALDENGHDLAVT 240 FPGPGEDGLNV 251

Description

ミオスタチンスプライスバリアント由来タンパク質によるミオスタチンシグナル阻害とその利用
　本発明は、ミオスタチンスプライスバリアント由来タンパク質によるミオスタチンシグナル阻害とその利用に関する。
　ミオスタチンは、細胞内で前駆体として産出され、プロテアーゼにより切断されて、成熟ミオスタチンに変換される。この成熟ミオスタチンが細胞表層の受容体と結合すると、Smad2/3がリン酸化され、リン酸化Smad2/3が核内に移行する。標的遺伝子のプロモーターに存在するSmad結合エレメントにリン酸化Smad2/3が結合することで標的遺伝子の発現を誘導する（ミオスタチンシグナル）。ミオスタチンシグナルの活性化は、遺伝子発現を誘導し、誘導された因子は、筋肉形成に対して抑制的に働く。これに対し、ミオスタチンシグナルの阻害は、筋肉形成を促進させる。筋肉形成の促進は、筋ジストロフィーなどの筋萎縮性疾患の治療に利用できることから、ミオスタチンシグナルの阻害は、筋萎縮に対する治療法になりうると考えられている(非特許文献１)。また、ミオスタチンの発現量の低下によりがん細胞の増殖は阻害される(非特許文献２)。このことは、がん治療においてミオスタチン量の低下ならびにミオスタチンシグナルの阻害が有効であることを示唆している。さらに、2型糖尿病患者におけるミオスタチン発現量は増加していることから、ミオスタチンと糖尿病との間に何らかの関係があると考えられている (非特許文献３)。これらのことから、ミオスタチンシグナルの阻害が、糖尿病の抑制や進行の阻害に対し有効であることが考えられる。
　ミオスタチンシグナルの阻害方法としてミオスタチンと結合するペプチドの利用が検証されている。このペプチドはミオスタチン自身が持つ配列由来であり、実際にミオスタチンシグナルを抑制できた。しかしながら、生体内に投与した際の安定性が低いという問題点がある(非特許文献４, 特許文献１)。
　また、ヒツジのミオスタチンスプライスバリアントを利用してミオスタチンシグナルを抑制する方法も示されている (非特許文献５, 特許文献２)。しかしながら、このヒツジで発見されたミオスタチンスプライスバリアントと同様のものはヒトでは発見されていない。
Bogdanovich et al., Nature, 2002, 420;418-421 Han et al., Redox Biol. 2018, 19;412-4128 Palsgaard et al. 2009, 4;e6575 Ohsawa et al., PlosOne, 2015, 10;e0133713 Jeanplong et al., PlosOne, 2013, 8;e81713
WO2014/119753A1 WO2006/036074A1
　本発明は、ミオスタチンシグナルを抑制する方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、鋭意努力した結果、ミオスタチンスプライスバリアント(スプライシングパターンの変化によって産出される多様体)から翻訳されるタンパク質がミオスタチンシグナルを阻害することを見出した。ミオスタチンスプライスバリアントのmRNAから翻訳されるタンパク質は、成熟ミオスタチンに必要となる活性領域を持たないが、プロドメインの９割以上を保持している(図３)。培養細胞においてミオスタチンバリアントを過剰発現させることで、ミオスタチンシグナルを抑制することができた(図６)。ミオスタチンスプライスバリアントから翻訳されるタンパク質は、生体内で天然に産出されるタンパク質であることから外来性のものよりも安定性はよいと考えられる。ミオスタチンシグナルを抑制することにより、筋肉形成の促進による筋萎縮性疾患の治療が可能になる。また、ミオスタチンシグナル抑制による、がん細胞増殖阻害が可能になる。さらに、ミオスタチン増加に伴う、ミオスタチンシグナルの活性化が、糖尿病と関係する可能性が示唆されていることから、ミオスタチンシグナルの抑制は、糖尿病の予防、あるいは進行阻害に対して有効であると考えられる。よって、このタンパク質ならびにタンパク質発現系は、ミオスタチンが関与する疾患の治療法に利用できる。
　本発明の要旨は、以下の通りである。
（１）以下の(a)又は(b)のタンパク質。
(a) 配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質
（２）（１）記載のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド。
（３）（２）記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
（４）（３）記載のベクターを含む細胞。
（５）（４）記載の細胞を培養することを含む、以下の(a)又は(b)のタンパク質を作製する方法。
(a) 配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質
（６）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、ミオスタチンシグナルを抑制するための組成物。
（７）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、筋肉形成を促進させるための組成物。
（８）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療するための組成物。
（９）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、医薬。
（１０）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、食品。
（１１）１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、飼料。
（１２）（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを医薬的に有効な量で被験者に投与することを含む、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法。
（１３）ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法に使用するための、（１）記載のタンパク質、（２）記載のポリヌクレオチド、（３）記載のベクター及び（４）記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つ。
　ミオスタチンスプライスバリアントから翻訳されるタンパク質によりミオスタチンシグナルを阻害することができる。
　本明細書は、本願の優先権の基礎である日本国特許出願、特願2019‐37915の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
ミオスタチンＶのPCR増幅例。
　ヒト横紋筋肉腫細胞のミオスタチン(MSTN)遺伝子産物のPCR増幅結果を示す。増幅により２つの増幅産物を得た (MSTN, MSTN-V) (左)。それぞれの産物の塩基配列を解析した結果得られたエクソンの構造を模式図にした (右)。MSTN-Vでは、MSTNの塩基番号881番から1843番の塩基が欠失した。それぞれの産物のエクソン２とエクソン３の結合部の配列と、1844番塩基部分の塩基配列の一部を示した (右下)。
ミオスタチン遺伝子のスプライシング。
　MSTNは、ミオスタチン遺伝子のpre-mRNAよりイントロン１と２がスプライシングにより取り除かれ、エクソン１、エクソン２、エクソン３から構成される (実線)。イントロン２は、GTとAGの配列を５’と３’の両端に有する最も一般的なイントロンである。一方、MSTN-Vではイントロン２のスプライシング様式が異なり、潜在的スプライスアクセプターサイトであるエクソン３内のTGが活性化されGT-TGイントロンが形成される (点線)。その結果、ミオスタチンＶでは、エクソン３の881番から1843番までの963塩基が欠失する。
ミオスタチンＶタンパク。
　ミオスタチン、ミオスタチンＶのタンパク構造を模式図にした。ミオスタチンはＮ末からシグナルペプチド (1番～18番)、プロドメイン (19番～266番)、成熟ミオスタチン (267番～375番) で構成される。ミオスタチンとミオスタチンＶの核酸配列は、エクソン１、エクソン２は同じで、アミノ酸249まで共通である。ミオスタチンＶでは、エクソン３の塩基配列が異なるため、Ｎ末から250番目のアミノ酸がアスパラギン (Ｎ)、251番目がバリン (Ｖ)、252番目はストップコドン (＊) となる (配列番号１)。このため、ミオスタチンＶは成熟ミオスタチンのドメインを持たない。
ミオスタチンシグナル。
　ミオスタチンは、前駆体から生み出された成熟ミオスタチンが、細胞表層の受容体と結合することで下流のシグナル伝達を活性化させる。成熟ミオスタチンが受容体と結合すると、Smad2/3がリン酸化され、リン酸化Smad2/3が核内に移行する。標的遺伝子のプロモーターに存在するSmad結合エレメントにリン酸化Smad2/3が結合することで標的遺伝子の発現を誘導する。
ミオスタチンＶの発現ベクターと発現タンパク。
　配列番号２に対してコドン使用頻度を最適化した配列 (配列番号３) の５’側にNhe I認識配列 (GCTTGC)、３’側にBamH I認識配列 (GGATCC) を付加した人工合成核酸を、pcDNATM3.1(+) ベクターのNhe I、BamH I認識サイトに挿入してMSTN-V発現ベクターを作製した（左）。作製したベクターを筋細胞に導入し、発現したタンパクをWestern blot解析した。MSTN-V発現ベクターを導入した細胞から抽出したサンプルにおいて分子量35kDa付近に特異的なバンドが検出され (矢印)、ミオスタチンＶの発現が確認された (右)。左から分子量マーカー、Mock (空ベクターを導入した細胞由来サンプル)、MSTN-V発現ベクターを導入した細胞由来サンプルの順で示す。
ミオスタチンＶによるミオスタチンシグナルの抑制。
　ミオスタチンＶとミオスタチンのin vitroミオスタチン転写活性測定系への作用の模式図を示す (左)。ミオスタチンシグナル解析は、空ベクター、MSTN-N発現ベクター、MSTN-V発現ベクターをそれぞれ筋細胞に導入し、Smad2/3によって発現が誘導されるルシフェラーゼの活性により評価した。
　ルシフェラーゼ活性を、空ベクターを導入した細胞由来の抽出液を測定した結果を１として、相対値で示した (中央、右)。ヒト横紋筋肉腫細胞、ヒト骨格筋筋芽細胞のいずれにおいても、ミオスタチンを発現させるとルシフェラーゼ活性の上昇がみられた。一方、ミオスタチンＶを発現させた場合では、ルシフェラーゼ活性の低下がみられ、ミオスタチンＶがミオスタチンシグナル伝達を阻害することが示唆された。
　以下、本発明の実施の形態についてより詳細に説明する。
　本発明は、以下の(a)又は(b)のタンパク質を提供する。
(a) 配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質
　(a)のタンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質であり、ヒトのミオスタチンのスプライスバリアントから翻訳されるタンパク質である。図３に示す通り、ミオスタチン（375aa, 43kDa）は、シグナルペプチド(1-18)、プロドメイン(19-266)及び成熟ミオスタチン(267-375)の領域から構成されるが、ミオスタチンバリアントは、シグナルペプチド(1-18)及びプロドメインの一部(19-251)から構成され、C末端アミノ酸(251)はプロリンからバリンに置換されている。よって、ミオスタチンバリアントでは、成熟ミオスタチンは形成されない。
　(a)のタンパク質は、ミオスタチンシグナル（図４）を抑制することができる。
　(a)のタンパク質は、ヒト横紋筋肉腫細胞 (CRL-2061, ATCC)からRNAを抽出し、逆転写酵素及びランダムプライマーを用いてcDNAを合成し、PCRによって増幅した後、シーケンス解析を行い、配列を決定した後、オープンリーディングフレームのコドン使用頻度を最適化した配列の5’側及び3’側に制限酵素認識配列を付加した後、適当なベクターに組み込み、適当な宿主細胞に導入して、組換えタンパク質として生産させることにより、製造することができる。
　(b)のタンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質である。後述の実施例に記載した通り、ミオスタチンによりシグナル伝達が活性化されると、転写因子(Smadタンパク質)がSmad結合配列に結合して転写を誘導するので、この現象を利用して、Smad結合配列の下流にルシフェラーゼ遺伝子を配したレポーター遺伝子と、(b)のタンパク質を発現するベクターを細胞に共導入し、ルシフェラーゼの発光を測定することで、ミオスタチンシグナルの抑制の有無を評価することができる。
　(b)のタンパク質と(a)のタンパク質のアミノ酸配列の配列同一性は、少なくとも70以上であり、80%以上、90%以上、95%以上、98%以上の順により好ましい。(b)のタンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列において１若しくは複数個（2～76個のいずれかであり、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、20個、30個、40個、50個、60個、70個、75個、76個の順で好ましい。）のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質であるとよい。
　(b)のタンパク質は、部位特異的変異導入法により、(a)のタンパク質中の任意のアミノ酸を他のアミノ酸で置換することにより作製することができる。
　本発明は、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを提供する。
　本発明のポリヌクレオチドは１本鎖でも２本鎖でもよい。２本鎖の場合は、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドとその相補鎖からなる。
　ポリヌクレオチドは、DNA、RNA、DNAとRNAのキメラのいずれであってもよく、ポリヌクレオチドを構成するヌクレオチドは修飾されていてもよい。修飾ヌクレオチドとしては、糖が修飾されたもの（例えば、Ｄ－リボフラノースが2'-O-アルキル化されたもの、Ｄ－リボフラノースが2'-O, 4'-C-アルキレン化されたもの）、リン酸ジエステル結合が修飾（例えば、チオエート化）されたもの、塩基が修飾されたもの、それらを組み合わせたものなどを例示することができる。
　(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列の一例として、配列番号２のヌクレオチド配列を挙げることができる。配列番号２のヌクレオチド配列は、ヒト横紋筋肉腫細胞 (CRL-2061, ATCC)から抽出されたミオスタチンバリアントのmRNAの配列である。配列番号２のヌクレオチド配列には、5’非翻訳領域、オープンリーディングフレーム（開始コドン(atg)とストップコドン(tga)の間の配列）、3’非翻訳領域、poly(A)が含まれる。(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列は、配列番号２のヌクレオチド配列中の開始コドン(atg)とストップコドン(tga)の間の配列またはその配列を含むものであってもよい。オープンリーディングフレームのヌクレオチド配列にはコドン使用頻度の最適化を行ってもよく、その一例として、配列番号２におけるオープンリーディングフレームのコドン使用頻度を最適化したヌクレオチド配列を配列番号３に示す。
　(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドは、例えば、後述の実施例１に記載の方法により調製することができる。
　(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列に相補的な配列を含むポリヌクレオチドは、(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むミオスタチンバリアントのmRNA（3’末端にポリ(A)鎖をもつ）から逆転写酵素及びオリゴdTプライマーを用いて合成することができる。アルカリ処理でmRNAを分解した後、生じた１本鎖DNAを鋳型として逆転写酵素またはDNAポリメラーゼで２本鎖とすることができる。
　(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列及びそれに相補的な配列は、例えば、部位特異的変異導入法により、(a)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列及びそれに相補的な配列に塩基置換変異を導入することにより得られる。
　(a)又は(b)のタンパク質をコードするDNAをベクターに組み込んで組換えベクターを作製し、これを宿主細胞に導入して形質転換させ、この形質転換細胞を培養し、(a)又は(b)のタンパク質を生産させることにより、(a)又は(b)のタンパク質を作製することができる。よって、本発明は、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを含むベクターを含む細胞を培養することを含む、(a)又は(b)のタンパク質を作製する方法を提供する。本発明は、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを含むベクター（組換えベクター）も提供する。また、本発明は、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを含むベクターを含む細胞を提供する。
　本発明の組換えベクターは、(a)又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列及びそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを適当なベクターに挿入することにより得られる。
　ベクターとしては、大腸菌由来のプラスミド（例、ｐＢＲ３２２，ｐＢＲ３２５，ｐＵＣ１２，ｐＵＣ１３、ｐＵＣ１９，ｐＥＴ－４４，ｐＢｌｕｅＳｃｒｉｐｔII）、枯草菌由来のプラスミド（例、ＹＥｐ１３，ｐＹＥＳ２，ＹＲｐ７，ＹＩｐ５，ｐＹＡＣ２、ｐＵＢ１１０，ｐＴＰ５，ｐＣ１９４）、酵母由来プラスミド（例、ｐＳＨ１９，ｐＳＨ１５）、λファージなどのバクテリオファージ、レトロウイルス、アデノウイルス、レンチウイルス、アデノ随伴ウイルス、ワクシニアウイルスなどの動物ウイルス、バキュロウイルスなどの昆虫病原ウイルスなどを用いることができる。
　発現ベクターには、プロモーター、エンハンサー、ターミネーター、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー、ＳＶ４０複製オリジンなどを付加してもよい。
　また、発現ベクターは、融合タンパク質発現ベクターであってもよい。種々の融合タンパク質発現ベクターが市販されており、ｐＧＥＸシリーズ（ＧＥヘルスケア社）、Ｎｏｖａｇｅｎ’ｓ(登録商標) ｐＥＴ Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｍｅｒｃｋ社）、クロンテック蛍光タンパク質ベクターシリーズ（Ｔａｋａｒａ社）、Ｈｉｓ６，ＨａｌｏＴａｇ付加用発現ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社）、ＦＬＡＧタグ融合タンパク質発現システム（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社）、ｐＣｒｕｚTM 哺乳動物細胞用発現ベクターシリーズ（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社）などを例示することができる。
　本発明の組換えベクターを宿主細胞に導入することにより、形質転換細胞を得ることができる。本発明は、組換えベクターを導入された細胞（宿主細胞）も提供する。
　宿主としては、細菌細胞（例えば、エシェリヒア属菌、バチルス属菌、枯草菌など）、真菌細胞（例えば、酵母、アスペルギルスなど）、昆虫細胞（例えば、Ｓ２細胞、Ｓｆ細胞など）、動物細胞（例えば、ＣＨＯ細胞、ＣＯＳ細胞、ＨｅＬａ細胞、Ｃ１２７細胞、３Ｔ３細胞、ＢＨＫ細胞、ＨＥＫ２９３細胞など）、植物細胞などを例示することができる。
　組換えベクターを宿主に導入するには、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，  Ｊ．  Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂ．  Ｐｒｅｓｓ，  １９８９に記載の方法（例えば、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥ－デキストラン法、トランスベクション法、マイクロインジェクション法、リポフェクション法、エレクロトポレーション法、形質導入法、スクレープローディング法、ショットガン法など）または感染により行うことができる。
　形質転換細胞を培地で培養し、培養物から(a)又は(b)のタンパク質を採取することができる。(a)又は(b)のタンパク質が培地に分泌される場合には、培地を回収し、その培地から(a)又は(b)のタンパク質を分離し、精製すればよい。(a)又は(b)のタンパク質が形質転換された細胞内に産生される場合には、その細胞を溶解し、その溶解物から(a)又は(b)のタンパク質を分離し、精製すればよい。
　(a)又は(b)のタンパク質が別のタンパク質（タグとして機能する）との融合タンパク質の形態で発現される場合には、融合タンパク質を分離及び精製した後に、因子Ｘａや酵素（エンテロキナーゼ）処理をすることにより、別のタンパク質を切断し、目的とする(a)又は(b)のタンパク質を得ることができる。
　(a)又は(b)のタンパク質の分離及び精製は、公知の方法により行うことができる。公知の分離、精製法としては、塩析や溶媒沈澱法などの溶解度を利用する方法、透析法、限外ろ過法、ゲルろ過法、およびＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動法などの分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーなどの荷電の差を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動法などの等電点の差を利用する方法などが用いられる。
　本発明のタンパク質、本発明のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、本発明のヌクレオチド及び／又は本発明の細胞を含むベクターを用いて、ミオスタチンシグナルを抑制することにより、筋肉形成を促進させることができる。よって、本発明は、(a)及び／又は(b)のタンパク質、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター並びに該ベクターを含む細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、ミオスタチンシグナルを抑制するための組成物を提供する。また、本発明は、(a)及び／又は(b)のタンパク質、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター並びに該ベクターを含む細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、筋肉形成を促進させるための組成物を提供する。(a)及び／又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドがベクターに含まれる場合、ベクターは、(a)及び／又は(b)のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチドを細胞に導入できるものであるとよく、例えば、アデノウィルス、レトロウイルス、レンチウイルス、アデノ随伴ウイルス、センダイウイルス、リポソーム、プラスミドなどの遺伝子治療用ベクターを挙げることができる。また、本発明のポリヌクレオチド又はベクターを細胞（自己、同種）に導入したものを細胞治療に用いることもできる。目的の遺伝子をベクターに導入する方法、組換えベクターを細胞に導入する方法、組換えベクターや遺伝子導入細胞をヒトに投与する方法や投与部位は、公知であり、本発明にも、そのまま、あるいは改変して、適用することができる。遺伝子治療や細胞治療においては、ゲノム編集の技術を利用してもよい。ゲノム編集において、ZFN（zinc-finger nuclease）、TALEN（transcription activator-like effector nuclease）、CRISPR/Cas9（clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated protein 9）などの人工ヌクレアーゼを用いることができる。
　本発明の組成物は、医薬、実験用試薬、食品、飼料などに使用することができる。
　医薬としては、ミオスタチンが関与する疾患（ミオスタチンの関与は直接的でも間接的であってもよい）、具体的には、筋萎縮性疾患（例えば、筋ジストロフィー、脊髄性筋萎縮症、サルコペニア、廃用性筋萎縮、循環器疾患（例えば、心不全、動脈硬化症など）、腎疾患（例えば、慢性腎不全など）、骨疾患（例えば、炎症性関節炎など）、がん又は糖尿病の予防及び／又は治療に用いることができる。ミオスタチンが関与する疾患は、ミオスタチン量の低下やミオスタチンシグナルの阻害が有効である疾患であるとよい。本発明は、(a)及び／又は(b)のタンパク質、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター並びに該ベクターを含む細胞からなる群より選択される少なくとも一つを医薬的に有効な量で被験者に投与することを含む、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法を提供する。また、本発明は、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法に使用するための、(a)及び／又は(b)のタンパク質、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター並びに該ベクターを含む細胞からなる群より選択される少なくとも一つを提供する。
　ミオスタチンの阻害は、骨格筋量の増加をもたらすことから、筋萎縮の原因に関わらず全ての筋萎縮を呈する疾患の治療に用いることが可能である。骨格筋量の増加は運動量の増加を図り、全身の代謝の改善にも貢献する。また、心筋へ作用してその機能を回復させることが期待できる。
　一方、ミオスタチン阻害が、破骨細胞に作用して骨破壊を抑制すること、血管内皮細胞の恒常性維持能を活性化すること、アポトーシスを誘導すること、インスリンの感受性の高めることなども期待される。
　(a)及び／又は(b)のタンパク質、該タンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター並びに該ベクターを含む細胞からなる群より選択される少なくとも一つ（以下、「有効成分」と記す。）は単独で、あるいは、薬理学的に許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤とともに、適当な剤型の医薬組成物として、哺乳動物（例えば、ヒト、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス）に対して経口的または非経口的に投与することができる。投与量は投与対象、対象疾患、症状、投与ルートなどによっても異なるが、例えば、筋萎縮性疾患（例えば、筋ジストロフィー）の予防・治療のために使用する場合には、有効成分の１回量として、有効成分がタンパク質の場合、通常０．１μｇ～１００ｍｇ／ｋｇ体重程度、好ましくは０．５ｍｇ～１００ｍｇ体重程度を、有効成分がポリヌクレオチドの場合、通常0.１～50 mｇ／ｋｇ体重程度、好ましくは0.５ mｇ／ｋｇ体重程度を、有効成分がポリヌクレオチドを含むベクターの場合、通常1x1014～9x1014 ゲノムコピー／ｋｇ体重程度、好ましくは1x101２ ゲノムコピー／ｋｇ体重程度を、週１～月１回程度若しくは年１回程度の頻度で、好ましくは年１回程度の頻度で、経口・筋肉内注射・皮下注射・静脈注射により投与（好ましくは、連続または隔日投与）するとよい。有効成分がベクターを含む細胞の場合、有効成分の１回量として、10,000-100,000細胞を、週１～月１回程度若しくは年１回程度の頻度で、好ましくは年１回程度の頻度で、筋肉内注射・皮下注射・静脈注射、好ましくは静脈注射により投与するとよい。
他の非経口投与および経口投与の場合もこれに準ずる量を投与することができる。症状が特に重い場合にはその症状に応じて増量してもよい。
　経口投与のための組成物としては、固体または液体の剤形、具体的には錠剤（糖衣錠、フィルムコーティング錠を含む）、丸剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤（ソフトカプセル剤を含む）、シロップ剤、乳剤、懸濁剤などがあげられる。かかる組成物は常法により製造することができ、製剤分野において通常用いられる担体、希釈剤もしくは賦形剤を含有してもよい。例えば、錠剤用の担体、賦形剤としては、乳糖、でんぷん、庶糖、ステアリン酸マグネシウムなどがあげられる。
　非経口投与のための組成物としては、例えば、注射剤、坐剤などがあげられ、注射剤は静脈注射剤、皮下注射剤、皮内注射剤、筋肉注射剤、点滴注射剤などの剤型であるとよい。かかる注射剤は常法、すなわち有効成分を通常注射剤に用いられる無菌の水性もしくは油性液に溶解、懸濁または乳化することによって調製される。注射用の水性液としては生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液などがあげられ、適当な溶解補助剤、例えば、アルコール（例えば、エタノール）、ポリアルコール（例えば、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン界面活性剤（例えば、ポリソルベート８０、ＨＣＯ－５０（ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎｅ（５０ｍｏｌ）ａｄｄｕｃｔ  ｏｆ  ｈｙｄｒｏｇｅｎａｔｅｄ  ｃａｓｔｏｒ  ｏｉｌ））などと併用してもよい。油性液としてはゴマ油、大豆油などがあげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどを併用してもよい。調製された注射液は通常適当なアンプルに充填される。直腸投与に用いられる坐剤は、有効成分を通常の坐薬用基剤に混合することによって調製することができる。
　上記の経口用または非経口用医薬組成物は、有効成分の投与量に適合するような投薬単位の剤形に調製されるとよい。かかる投薬単位の剤形としては、錠剤、丸剤、カプセル剤、注射剤（アンプル）、坐剤などが挙げられ、それぞれの投薬単位剤形当り通常０．１～１．０００ ｍｇの有効成分が含有されていることが好ましい。
　食品、飼料としては、ヒトや動物の筋肉形成の促進に用いることができる。動物はミオスタチンを発現しているものであればよく、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ニワトリ、シチメンチョウなどの哺乳動物、サケ、マス、タラ、マグロ、ブリなどの魚類などの使役用、食用の飼育動物を例示することができる。
　本発明の食品、飼料には、たんぱく質、脂質、炭水化物、ナトリウムなどの一般成分、カリウム、カルシウム、マグネシウム、リンなどのミネラル類、鉄、亜鉛、銅、セレン、クロムなどの微量元素、ビタミンＡ、β－カロテン、ビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＢ６、ビタミンＢ１２、ビタミンＣ、ナイアシン、葉酸、ビタミンＤ３、ビタミンＥ、ビオチン、パントテン酸などのビタミン類、コエンザイムQ10、α－リポ酸、ガラクトオリゴ糖、食物繊維、賦形剤（水、カルボキシメチルセルロース、乳糖など）、甘味料、矯味剤（リンゴ酸、クエン酸、アミノ酸など）、香料などを添加してもよい。本発明の食品、飼料を液剤とする場合、食品又は飼料成分を分散または溶解する液体として、水、生理食塩水、スープ、牛乳、果汁等を用いることができる。本発明の食品及び飼料は、粉末、顆粒、錠剤、液剤などの形状としてもよい。病人や高齢者が容易に摂取可能とするためには、ゼリーなどのゲル状製品とすることが好ましい。
　食品や飼料の摂取は、所望の効果が確認されるような摂取量と頻度、摂取期間で行うとよい。
　以下、実施例に基づいて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
〔実施例１〕ミオスタチンバリアントのクローニングと同定
　ヒト横紋筋肉腫細胞 (CRL-2061, ATCC) からHigh Pure RNA Isolation Kit (#11828665001, Roche Life Science) で抽出したRNA (500 ng) を、Random primers (#48190011, Thermo Fisher Scientific) を用いて、RNaseOUTTM Recombinant Ribonuclease Inhibitor (#10777-019, Thermo Fisher Scientific) 存在下で、M-MLV Reverse Transcriptase (#28025013, Thermo Fisher Scientific) によりcDNAに逆転写した。得られたcDNAに対し、プライマーMSTN Ex1_F1; 5'-agattcactggtgtggcaag-3'（配列番号６）, MSTN R2; 5'-tgcatgacatgtctttgtgc-3'（配列番号７）、TaKaRa Ex Taq(登録商標) DNAポリメラーゼ (#RR001A, Takara) を用いてPCRを行った。PCR産物をアガロースゲル電気泳動した。泳動により、DNAサイズマーカーの2kbpと3kbpの中間、1kbpと2kbpの中間にそれぞれ増幅バンドを得、2.5kbpと1.5kbpのPCR断片とした (図１左)。それぞれの断片領域からMinElute(登録商標) Gel Extraction Kit (#28604, Qiagen) を用いてDNA抽出し、抽出断片をDNA Ligation Kit Ver.2.1 (#6022, Takara) により、pT7Blue (#69820, Novagen) にサブクローニングした。プライマーMSTN Ex1_F1, MSTN R2、TaKaRa Ex Taq(登録商標) DNAポリメラーゼ (#RR001A, Takara) を用いたPCRによりサブクローニングされた配列を増幅し、MinElute(登録商標) PCR Purification Kit (#28006, QIAGEN) で精製後、シーケンス解析をサンガー法にて行った。
　シーケンスの結果、およそ2.5kbpのPCR断片は、ミオスタチン (MSTN) 遺伝子のエクソンエクソン１(Ex1)、エクソン２(Ex2)、エクソン３(Ex3)の全てから構成された正常スプライシング産物であった (MSTN)。このMSTNの模式図を図１右に示し、エクソン２と３の結合部の配列とエクソン内の1844番塩基部分の配列のそれぞれの一部を図１右下に示す。一方、ミオスタチンバリアント (MSTN-V) であるおよそ1.5kbpの断片の塩基配列（配列番号２）は、ミオスタチン遺伝子のエクソン１、エクソン２までは、MSTNと全く同じであった。しかし、エクソン３に相当する配列では、MSTNとは全く異なった。aat ccg tttで始まる配列が、aat gtc tgaで始まる配列になっていた。このaat gtc tga以下の配列はMSTNのエクソン３内の1844番塩基下流の配列と完全に合致した。これは、エクソン３の核酸配列881番から1843番に相当する領域が欠失したことを示した。
　MSTNのイントロン２は、GTとAGの配列を５’と３’の両端に有する最も一般的なイントロンである。一方、MSTN-Vではイントロン２のスプライシング様式が異なり、潜在的スプライスアクセプターサイトであるエクソン３内のTGが活性化されGT-TGイントロンが形成される。その結果、ミオスタチンＶでは、エクソン３の881番目から1843番目の963塩基が欠失する (図２)。
　同定したMSTN-V mRNAは、開始コドンと終止コドンを有しており、251アミノ酸のタンパクに翻訳されることが示唆された。ミオスタチンＶのＮ末端側から250番目のアミノ酸まではミオスタチンと同一の配列であったが、251番目がバリン、252番目はストップコドンであった。成熟ミオスタチンは、ミオスタチンの267番目から375番目のアミノ酸で構成されるため、MSTN-V mRNAから成熟ミオスタチンは産出されない (配列番号１、図３)。
　ミオスタチンはミオスタチンシグナルを介して作用を発揮する。すなわち、前駆体から生み出された成熟ミオスタチンが、細胞膜に存在する受容体に結合すると、Smad2/3がリン酸化される。リン酸化されたSmad2/3は核に移行し、標的遺伝子の上流にあるSmad結合エレメントに結合し、遺伝子の発現を亢進させる (図４)。ミオスタチン前駆体のアミノ酸配列を配列番号５に、mRNAの配列を配列番号４に示す。
〔実施例２〕培養細胞におけるミオスタチンバリアントの発現
　培養細胞でのミオスタチンＶの発現のため、MSTN-V発現ベクターを作製した。配列番号２のオープンリーディングフレームのコドン使用頻度を最適化し(配列番号３)、5’側にNhe I認識配列 (GCTTGC)、3'側にBamH I認識配列 (GGATCC) を付加した核酸を株式会社ファスマックにて人工合成した後、pcDNATM3.1(+) ベクター (#V79020, Thermo Fisher Scientific) のNhe I、BamH Iサイトに挿入した (図５左)。
　MSTN-V発現ベクターからのタンパク発現は、Western Blotによって確認した。ヒト横紋筋肉腫細胞 (CRL-2061, ATCC) に、MSTN-V発現ベクターと、比較対象の空ベクター (pcDNATM3.1(+)) をLipofectamin(登録商標) 2000 (11668019, Thermo Fisher Scientific) を用いて導入した。ベクター導入の24時間後にCell Lysis Buffer (#9803, Cell Signaling) (1 mM PMSF (#8553, Cell Signaling) 添加) を用いて細胞を破砕し、可溶性画分をサンプルとして得た。得られたサンプルのタンパク定量は、Qubit(登録商標) Protein Assay Kit (#Q33211, Thermo Fisher Scientific) で行った。SDS-PAGE用サンプルは、サンプルを4x Laemmli Sample Buffer (#1610747, Bio-Rad) (2-Mercaptoethanol (#1610710, Bio-Rad) 添加) と混合した後、熱処理にて調製した。SDS-PAGEでは、Mini-PROTEAN(登録商標) TGXTM Precast Gels 4-20% Gel (#456-1094, BIO-RAD) を使用して泳動を行った。分子量マーカーとして、Precision Plus ProteinTM Dual Color Standards (#1610374, BIO-RAD) を泳動した。メンブレンへの転写には、トランスブロット TurboTM 転写システム (Bio-Rad) を使用した。タンパク転写後のメンブレンを、2% ECLTM Prime Blocking Agent (#RPN418, Amersham) で、室温にて1時間ブロッキングした後、一次抗体としてミオスタチンのＮ末側を認識する抗体 (Anti-GDF8/Myostatin抗体, #ab71808, abcam) あるいはアクチンを認識抗体 (β-Actin抗体 (C4), #sc-47778, Santa Cruz Biotechnology) で、4℃にてオーバーナイトで処理した。二次抗体には、HRP標識抗ウサギIgG抗体 (#NA934, GE)、HRP標識抗マウスIgG抗体 (#NA931, GE) を使用し、室温にて1時間処理した。検出は、AmershamTM ECL SelectTM Western Blotting Detection Reagent (#RPN2235, GE) を用いて、ChemiDocTM XRS+ システム (Bio-Rad) で行った。その結果、ミオスタチンＶのバンドを35kDa付近に検出した (図５右)。同時にアクチンも解析し、バンドを得た。
〔実施例３〕ミオスタチンバリアントによるミオスタチンシグナル阻害
　ミオスタチンＶによるミオスタチンシグナル阻害活性をin vitroミオスタチン転写活性測定系で評価した。本評価系では、Smad結合配列の下流にルシフェラーゼ遺伝子を配したレポーター遺伝子 (SBE4-Luc plasmid, #16495, Addgene) を細胞に導入し、発現誘導されたルシフェラーゼの発光を測定することで、ミオスタチンシグナルを評価した (図６左)。MSTN-V発現ベクターに加え、ミオスタチン (MSTN-N) 発現ベクターを使用し、検討を行った。MSTN-N発現ベクターは、ミオスタチンcDNA (配列番号４) の５’側にNhe I認識配列 (GCTTGC)、３’側にBamH I認識配列 (GGATCC) を付加した核酸を株式会社ファスマックにて人工合成し、pcDNATM3.1(+) ベクター (V79020, Thermo Fisher Scientific) のNhe I、BamH Iサイトに挿入して作製した。MSTN-N発現ベクターからのミオスタチン（配列番号５）の発現は、ミオスタチンＶと同様にWestern Blotにより確認した。
　ヒト横紋筋肉腫細胞 (CRL-2061, ATCC)、ヒト骨格筋筋芽細胞 (Human Skeletal Myoblast) に２種のベクターをLipofectamin(登録商標) 2000 (#11668019, Thermo Fisher Scientific) を用いて共導入した。１つは、SBE4-Luc plasmidで、もう一つは、MSTN-V発現ベクターもしくはMSTN-N発現ベクターもしくは空ベクター (pcDNATM3.1(+)) の組み合わせとした。ベクター導入の24時間後にLuciferase Assay System with Reporter Lysis Buffer (E4030, Promega) のReporter Lysis Bufferを用いて細胞を破砕し、可溶性画分をサンプルとして得た。得られたサンプルのタンパク定量は、Qubit(登録商標) Protein Assay Kit (#Q33211, Thermo Fisher Scientific) で行った。ルシフェラーゼ活性は、Luciferase Assay System with Reporter Lysis Buffer (#E4030, Promega) のLuciferase Assay Systemを基質として、マルチラベルプレートリーダーARVOTM3 (PerkinElmer) でルシフェラーゼ発光シグナルを測定することで評価した。
　ルシフェラーゼ活性を、空ベクターを導入した細胞由来の抽出液を測定した結果を１として、相対値で示した (図６中央、右)。ヒト横紋筋肉腫細胞、ヒト骨格筋筋芽細胞のいずれにおいても、ミオスタチンを発現させた場合にルシフェラーゼ比活性の上昇がみられた。一方、ミオスタチンＶを発現させた場合でルシフェラーゼ比活性の低下がみられた。本実験系のルシフェラーゼ活性は、ミオスタチンシグナルと相関し、ルシフェラーゼ活性の上昇はミオスタチンシグナルの亢進を示し、ルシフェラーゼ活性の低下はミオスタチンシグナルの抑制を示す。このことから、ミオスタチンＶの発現によりミオスタチンシグナルが抑制されることが明らかになった。

　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
本発明は、ヒトや動物の筋肉形成の促進に利用できる。
＜配列番号１＞
ミオスタチンバリアントタンパク質のアミノ酸配列（全251アミノ酸）を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000001



























＜配列番号２＞
ミオスタチンバリアントの塩基配列(全1860塩基。開始コドン(atg)とストップコドン(tga)を□内に示す)を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000002








＜配列番号３＞
発現ベクターに組み込んだミオスタチンＶ (MSTN-V) 塩基配列
５’側にNhe Iサイト、３’側にBamH Iサイトを付加して、ベクターに挿入した。
(全1860塩基。開始コドン(atg)とストップコドン(tga)を□内に示す)
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000003





















＜配列番号４＞
発現ベクターに組み込んだミオスタチン (MSTN-N) 塩基配列。
５’側にNhe Iサイト、３’側にBamH Iサイトを付加して、ベクターに挿入した(全2823塩基。開始コドン(atg)とストップコドン(tga)を□内に示す)
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000004
＜配列番号５＞
ミオスタチンのアミノ酸配列情報。
アミノ酸配列 (全375アミノ酸)
1 MQKLQLCVYIYLFMLIVAGPVDLNENSEQKENVEKEGLCNACTWRQNTKSSRIEAIKIQI  60
  LSKLRLETAPNISKDVIRQLLPKAPPLRELIDQYDVQRDDSSDGSLEDDDYHATTETIIT 120
  MPTESDFLMQVDGKPKCCFFKFSSKIQYNKVVKAQLWIYLRPVETPTTVFVQILRLIKPM 180
  KDGTRYTGIRSLKLDMNPGTGIWQSIDVKTVLQNWLKQPESNLGIEIKALDENGHDLAVT 240
  FPGPGEDGLNPFLEVKVTDTPKRSRRDFGLDCDEHSTESRCCRYPLTVDFEAFGWDWIIA 300
  PKRYKANYCSGECEFVFLQKYPHTHLVHQANPRGSAGPCCTPTKMSPINMLYFNGKEQII 360
  YGKIPAMVVDRCGCS　　　　　　375

＜配列番号６＞
プライマーMSTN Ex1_F1の配列。5'-agattcactggtgtggcaag-3'
＜配列番号７＞
プライマーMSTN R2の配列。5'-tgcatgacatgtctttgtgc-3'

Claims (13)

  1. 以下の(a)又は(b)のタンパク質。
    (a) 配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質
    (b) 配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質
  2. 請求項１記載のタンパク質をコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含むポリヌクレオチド。
  3. 請求項２記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
  4. 請求項３記載のベクターを含む細胞。
  5. 請求項４記載の細胞を培養することを含む、以下の(a)又は(b)のタンパク質を作製する方法。
    (a) 配列番号１のアミノ酸配列からなるタンパク質
    (b) 配列番号１のアミノ酸配列と少なくとも70％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつミオスタチンシグナルを抑制することができるタンパク質
  6. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、ミオスタチンシグナルを抑制するための組成物。
  7. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、筋肉形成を促進させるための組成物。
  8. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療するための組成物。
  9. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、医薬。
  10. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、食品。
  11. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを含む、飼料。
  12. 請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つを医薬的に有効な量で被験者に投与することを含む、ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法。
  13. ミオスタチンが関与する疾患を予防及び／又は治療する方法に使用するための、請求項１記載のタンパク質、請求項２記載のポリヌクレオチド、請求項３記載のベクター及び請求項４記載の細胞からなる群より選択される少なくとも一つ。
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