WO2020153364A1 - 細胞付着用シート - Google Patents

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WO2020153364A1
WO2020153364A1 PCT/JP2020/001969 JP2020001969W WO2020153364A1 WO 2020153364 A1 WO2020153364 A1 WO 2020153364A1 JP 2020001969 W JP2020001969 W JP 2020001969W WO 2020153364 A1 WO2020153364 A1 WO 2020153364A1
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cell attachment
sheet
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cell
compound represented
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陽介 山本
悠太 滋野井
菅▲崎▼　敦司
賢 田中
小林　慎吾
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富士フイルム株式会社
国立大学法人九州大学
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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
    • C12N11/089—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds
    • C12N11/093—Polyurethanes

Definitions

  • the present invention relates to a cell attachment sheet.
  • Separation such as selective separation and recovery of target substances such as cells, physiologically active substances and proteins from body fluids such as blood, tissue fluid, and lymph, or separation or removal of bacteria or viruses from biological tissue fluid -
  • the recovery technique is used for autoimmune diseases, AIDS (acquired immunodeficiency syndrome), and prevention of acute rejection after transplantation.
  • AIDS abbreviated immunodeficiency syndrome
  • cell medicine that detects and treats cancer cells derived from living tissues that have turned into cancer, including leukemia, which is a cancer of blood, a technology that efficiently and efficiently separates and collects cancerous cells. Is important.
  • a blood biopsy liquid biopsy that detects a tumor marker or cancerous cells themselves from a biological tissue fluid typified by blood.
  • the conventional tissue sampling test is a highly invasive method for the subject
  • the blood biopsy uses a minimally invasive method called blood sampling, so that it does not affect the body of the subject.
  • the feature is that the burden is extremely light.
  • a tumor marker by blood biopsy it is rare that a site-specific tumor marker is established in a cancerous tissue. For this reason, cancer cells circulating in the body that slightly leak into the blood from the cancerous tissue (circulating cancer cells in the blood) are detected with high sensitivity, high efficiency, and specifically. Development of technology was desired.
  • Patent Document 1 as a hydratable composition used in a cell separation method for selectively adsorbing and separating predetermined cells existing in the living body, "when the amount of intermediate water is 30 wt% or less, A hydrated composition for fractionating cancer cells characterized by the fact that it is present.” (Claim 4).
  • an object of the present invention is to provide a sheet for cell attachment in which platelet attachment is suppressed and cell attachment is excellent.
  • a cell-adhesive sheet formed using a composition containing a compound represented by the formula (1) described below shows that the adhesion of platelets is reduced. It was found that the cells were suppressed and excellent in cell adhesion, and the present invention was completed.
  • the present invention includes the following [1] to [8].
  • [1] A sheet for cell attachment formed using a composition containing a compound represented by the formula (1) described below.
  • R 3 is an alkyl group having 4 or less carbon atoms.
  • the present invention it is possible to provide a cell-adhesion sheet that suppresses platelet adhesion and is excellent in cell adhesion.
  • the range represented by “to” includes both ends of “to”.
  • the range represented by “AB” includes A and B.
  • the solid content means a component contained in the composition excluding the solvent component, and is calculated as a solid content even if the property is liquid.
  • the cell attachment sheet of the present invention is referred to as a composition (hereinafter referred to as “curable composition of the present invention”) containing a compound represented by the formula (1) described below (hereinafter sometimes referred to as “compound (1)”).
  • a sheet for cell attachment is formed by using
  • R 1 and R 2 each independently represent a hydrogen atom or an alkyl group, preferably a hydrogen atom or an alkyl group having 4 or less carbon atoms, and a hydrogen atom, a methyl group, an ethyl group, a propyl group or propane-2.
  • An —yl group is more preferred, a hydrogen atom or a methyl group is even more preferred, and a methyl group is even more preferred.
  • R 3 represents a hydrogen atom or a monovalent substituent, and is preferably a hydrogen atom, an alkyl group, an aryl group or a group represented by the following formula (2), a hydrogen atom, an alkyl group, a phenyl group, Alternatively, a group represented by the following formula (2) is more preferable, an alkyl group is further preferable, and an alkyl group having 4 or less carbon atoms is further preferable. Examples of the alkyl group having 4 or less carbon atoms include a methyl group, an ethyl group, a propyl group, and a propan-2-yl group, but the alkyl group having 4 or less carbon atoms is not limited thereto. An ethyl group or a methyl group is preferable, and a methyl group is more preferable.
  • R 5 represents a hydrogen atom or an alkyl group, preferably a hydrogen atom or an alkyl group having 4 or less carbon atoms, and a hydrogen atom, a methyl group, an ethyl group, a propyl group, or propane-2.
  • An —yl group is more preferred, and a hydrogen atom or a methyl group is even more preferred.
  • R 1C represents an oxygen atom or —NR 102 —.
  • R 102 represents a hydrogen atom or an alkyl group, preferably a hydrogen atom or an alkyl group having 4 or less carbon atoms, and a hydrogen atom, a methyl group, an ethyl group, a propyl group, or a propan-2-yl group. Is more preferable, a hydrogen atom or a methyl group is further preferable, and a hydrogen atom is further preferable.
  • R 1C is preferably an oxygen atom (—O—) or —NH—, and more preferably an oxygen atom (—O—).
  • L 5 represents an aliphatic hydrocarbon group containing a urethane bond represented by —NH—COO—*2 and optionally an ether bond, and —(CH 2 ) m —NH It is preferably —COO—(CH 2 ) n —, where m and n are each independently an integer of 1 to 10, preferably 2 or 3, and more preferably 2. preferable.
  • the urethane bond in the aliphatic hydrocarbon group represented by L 5 is arranged such that *2 is on the X side.
  • R 1A and R 1B each independently represent an oxygen atom or —NR 101 —.
  • R 101 represents a hydrogen atom or an alkyl group, preferably a hydrogen atom or an alkyl group having 4 or less carbon atoms, and a hydrogen atom, a methyl group, an ethyl group, a propyl group, or a propan-2-yl group. Is more preferable, a hydrogen atom or a methyl group is further preferable, and a hydrogen atom is further preferable.
  • R 1A and R 1B are preferably each independently an oxygen atom (—O—) or —NH—, and more preferably an oxygen atom (—O—).
  • L 1 and L 3 each independently represent an aliphatic hydrocarbon group containing a urethane bond represented by —NH—COO-*1 and optionally an ether bond.
  • L 1 is preferably -(CH 2 ) p -[O-(CH 2 ) r ] t -NH-COO-(CH 2 ) v -*2.
  • *2 side binds to X.
  • p, r, and v are each independently an integer of 1 or more, preferably an integer of 1 to 3, and more preferably 2 or 3.
  • t is an integer of 0 or more, preferably an integer of 0 to 3, and more preferably 0 or 1.
  • L 2 is preferably *3-(CH 2 ) w- OCO-NH-[(CH 2 ) s- O] u- (CH 2 ) q- .
  • *3 side binds to X.
  • q, s, and w are each independently an integer of 1 or more, preferably an integer of 1 to 3, and more preferably 2 or 3.
  • u is an integer of 0 or more, preferably an integer of 0 to 3, and more preferably 0 or 1.
  • the urethane bond in the aliphatic hydrocarbon group represented by L 1 is arranged so that *2 is on the X side.
  • the urethane bond in the aliphatic hydrocarbon group represented by L 3 is arranged such that *1 is on the X side.
  • >CR 102 ⁇ is preferable, since a difference easily occurs in the adhesiveness between the EpCAM-negative cancer cells and the EpCAM-positive cancer cells of the cell attachment sheet.
  • >CR 102 ⁇ is a group represented by the following formula (Y).
  • * represents a bonding position.
  • the compound represented by the formula (1) corresponds to the compound represented by the formula (1-1), and when X is >CR 102 ⁇ , the compound represented by the formula (1) is
  • the compound represented by the formula () corresponds to the compound represented by the formula (1-2).
  • R 102 represents a hydrogen atom or a monovalent substituent, and is preferably a hydrogen atom, an alkyl group, an aryl group, or a group represented by the above formula (2), and a hydrogen atom, an alkyl group, a phenyl group, Alternatively, a group represented by the above formula (2) is more preferable, an alkyl group is further preferable, and an alkyl group having 4 or less carbon atoms is further preferable. Examples of the alkyl group having 4 or less carbon atoms include a methyl group, an ethyl group, a propyl group, and a propan-2-yl group, but the alkyl group having 4 or less carbon atoms is not limited thereto. An ethyl group or a methyl group is preferable, and a methyl group is more preferable.
  • the molecular weight of the compound represented by the formula (1) is preferably 200 to 1000, more preferably 300 to 800 from the viewpoint of appropriately maintaining the balance between the elastic modulus and the flexibility of the cell attachment sheet. It is preferably 350 to 550, and more preferably 350 to 550.
  • Preferred examples of the compound represented by the above formula (1) also include the compound represented by the formula (J) and the compound represented by the formula (K).
  • the content of the compound represented by formula (1) in the curable composition is not particularly limited, but may be 50 mass% or more based on the total mass of the solid content of the curable composition of the present invention. It is more preferably 75% by mass or more, further preferably 85% by mass or more, and further preferably 95% by mass or more.
  • the upper limit of the content of the compound represented by formula (1) in the curable composition of the present invention is not particularly limited, but is usually less than 100% by mass, and preferably 99.9% by mass or less. ..
  • the curable composition of the present invention contains, in addition to the compound (1) described above, a monomer other than the compound (1), a surfactant, a polymerization initiator, a polymerization inhibitor, and You may further contain components other than a compound (1), such as a solvent.
  • a commercially available monofunctional monomer and/or polyfunctional monomer is represented by the formula (1) for the purpose of adjusting the mechanical properties (tensile strength, abrasion resistance, etc.) of the cured film. You may use together with a compound.
  • the content of the other monomer other than the compound (1) in the curable composition of the present invention is not particularly limited. It is preferably more than 0 mass% and 40 mass% or less based on the total mass of the solid content of the curable composition of the present invention.
  • the content of the monomer other than the compound (1) is 0% by mass, which means that the curable composition of the present invention does not contain the monomer other than the compound (1).
  • a commercially available surfactant may be added to the curable composition of the present invention in order to adjust the wettability of the curable composition to the substrate and the leveling property.
  • the content of the surfactant in the curable composition of the present invention is not particularly limited, but the total solid content of the curable composition of the present invention. It is preferably more than 0 mass% and 3 mass% or less based on the mass.
  • the content of the surfactant of 0% by mass means that the curable composition of the present invention does not contain the surfactant.
  • the polymerization initiator is not particularly limited, for example, a photoradical polymerization initiator, a photopolymerization initiator such as a photocationic polymerization initiator and a photoanionic polymerization initiator, and a thermal radical polymerization initiator and a thermal cationic polymerization initiator.
  • a thermal polymerization initiator may be used.
  • the content of the polymerization initiator in the curable composition of the present invention is not particularly limited, the total solid content of the curable composition of the present invention
  • the content is preferably 0.1% by mass to 10% by mass, more preferably 0.5% by mass to 8% by mass, and further preferably 1% by mass to 5% by mass.
  • a commercially available polymerization inhibitor may be added to the curable composition of the present invention in order to impart storage stability to the compound (1) and the curable composition.
  • the content of the polymerization inhibitor in the curable composition of the present invention is not particularly limited, but the total solid content of the curable composition of the present invention. It is preferably 0.0005 mass% to 1 mass% with respect to the mass.
  • solvent The solvent is not particularly limited, but alcohols, ketones or mixed solvents thereof are preferable, alcohols having 3 or less carbon atoms, ketones having 4 or less carbon atoms or mixed solvents thereof are more preferable, and methanol and acetone are further preferable.
  • the content of the solvent in the curable composition is not particularly limited, but is preferably 10% by mass to 95% by mass of the curable composition, and 30% by mass to 90% by mass.
  • the content is more preferably mass%, and further preferably 50 mass% to 80 mass%.
  • the method for producing the cell attachment sheet of the present invention is not particularly limited, and examples thereof include the method described below.
  • curable composition A composition containing a compound represented by formula (1) (hereinafter referred to as "curable composition") is prepared.
  • the curable composition may contain a polymerization initiator, a solvent and the like in addition to the compound represented by the formula (1).
  • the curable composition is applied to a substrate to form a curable composition film.
  • the base material is not particularly limited, but examples thereof include a glass base material, a resin base material, and a metal substrate.
  • glass substrates include soda-lime glass substrates, borosilicate glass substrates, and quartz glass substrates.
  • the shape of the glass substrate is not particularly limited, but a plate shape is preferable.
  • the surface of the glass substrate may be coated or may be modified by plasma treatment or the like.
  • the resin substrate include a polyester resin substrate, a polyimide resin substrate, an epoxy resin substrate, a polyether resin substrate, a polysulfone resin substrate, and a polystyrene resin substrate.
  • the shape of the resin substrate is not particularly limited, but it is preferably a plate shape or a film shape.
  • the surface of the resin base material may be coated or may be modified by plasma treatment or the like.
  • metal substrates are gold, platinum, palladium, copper, manganese, silicon, molybdenum, zinc, tin, iridium, cobalt, chromium, titanium, and alloys thereof, as well as alumina, zirconia, hydroxyapatite, ⁇ -phosphorus. Examples thereof include tricalcium acid ( ⁇ -TCP), calcium hydrogen phosphate dihydrate, octacalcium phosphate, and tetracalcium phosphate.
  • the shape of the metal substrate is not particularly limited, but a plate shape is preferable.
  • the surface of the metal substrate may be coated or may be modified by plasma treatment or the like.
  • the method for forming the curable composition film on the substrate is not particularly limited, and examples thereof include a method using a bar coater, spin coating, dipping, or painting.
  • the curable composition film formed on the base material is cured to form a cured film.
  • the method for curing the curable composition film is not particularly limited, but irradiation with light or heating is preferable, and irradiation with light is more preferable. In particular, when the heat resistance of the substrate is low, it is preferable to cure it by irradiation with light.
  • the light irradiation may be appropriately selected from visible rays, ultraviolet rays, electron beams, gamma rays and the like.
  • the cured film obtained by curing the curable composition film is the cell attachment sheet of the present invention.
  • the cell attachment sheet of the present invention may be one that has been peeled from a base material, or one that has a base material attached thereto. When distinguishing the latter, it may be called a cell attachment sheet with a substrate.
  • Cell attachment ⁇ Selectivity>
  • the cells include normal cells and cancer cells, and cancer cells are particularly suitable.
  • Normal cells include, for example, cells derived from tissues that maintain normal functions in epithelial tissue, connective tissue, muscle tissue, nerve tissue, etc.
  • cancer cells include breast cancer, fibrosarcoma, cervical cancer, Derived from cancerous tissues such as prostate cancer, esophageal cancer, gastric cancer, colon cancer, pancreatic cancer, rectal cancer, gallbladder cancer, liver cancer, oropharyngeal cancer, lung cancer, and skin cancer Cells.
  • the cell attachment sheet of the present invention has selective cell attachment performance.
  • the selective cell attachment performance of the cell attachment sheet of the present invention is determined by the structure between the structure derived from the compound represented by the formula (1) in the cured film and the structure present in the serum protein and the cell surface. It may be caused by the intermolecular attractive force that acts (for example, hydrogen bonding force, van der Waals force defined by orientation force, inducing force, dispersion force, etc.), but details are unknown.
  • This intermolecular attractive force is a component that constitutes the surface free energy of the cell attachment sheet, that is, the surface free energy calculated from the contact angle of water and methylene iodide with respect to the cell attachment sheet using the Owens-Wendt equation. Of these, it can be estimated from the balance between the dispersive force component and the hydrogen bonding force component. The present inventors believe that the change in this balance resulting from the structure of the compound of the present invention changes the intermolecular attractive force and thus the cell adhesion selectivity is expressed.
  • the dispersion force component is 22MNm -1 or more, more preferably less than 25MNm -1 super 40MNm -1, to be 26mNm -1 ⁇ 38mNm -1 More preferable.
  • a hydrogen bonding component is 2MNm -1 or more, more preferably less than 5MNm -1 super 51MNm -1, further preferably 19mNm -1 ⁇ 45mNm -1.
  • the surface free energy of the cell attachment sheet was calculated by using DropMaster DM-500 manufactured by Kyowa Interface Science, and applying 1 ⁇ L of pure water or methylene iodide to the surface, Is calculated using the Owens-Wendt equation from the result of measuring the contact angle from 10 seconds.
  • Example 1 ⁇ Manufacture of cell attachment sheet> A cell attachment sheet (hereinafter sometimes referred to as “sheet 1”) was produced by the method described below.
  • Curable composition 1 a curable composition (containing 30 ppm of 4OH-TEMPO (4-hydroxy-2,2,6,6-tetramethylpiperidine-1-oxyl) as a polymerization inhibitor), a polymerization initiator And a solvent were mixed in the amounts shown in Table 1 to prepare a curable composition (hereinafter referred to as “curable composition 1”).
  • the prepared curable composition 1 was adjusted with a bar coater to have a thickness of 3 ⁇ m after drying, and a PET (polyethylene terephthalate) film (Cosmoshine A4300, manufactured by Toyobo Co., Ltd.); It was coated on both sides and subjected to easy adhesion treatment and dried. Then, using a UV exposure device (ECS-401G, manufactured by Eye Graphic Co., Ltd.; a high pressure mercury lamp as a light source), the film was exposed to an exposure amount of 2 J/cm 2 to form a cured film on the PET film.
  • a UV exposure device ECS-401G, manufactured by Eye Graphic Co., Ltd.; a high pressure mercury lamp as a light source
  • Platelet Adhesion A platelet adhesion experiment was carried out using the produced cell attachment sheet (sheet 1) and a PET film (DIAFOIL T100E125, manufactured by Mitsubishi Plastics Co., Ltd.) as a control sample. Platelet-rich plasma and platelet-poor plasma were collected from human whole blood anticoagulated with sodium citrate by centrifugation, and the platelet-rich plasma was diluted with platelet-poor plasma to give a platelet suspension of 4 ⁇ 10 7 cells/mL. It was adjusted. Subsequently, the sample surface was brought into contact with the platelet suspension at 37° C.
  • Cancer cell adhesion 1 An adhesion test of cancer cells was performed using the produced cell attachment sheet (sheet 1) and a PET film (DIAFOIL T100E125, manufactured by Mitsubishi Plastics Co., Ltd.) as a control sample as a substrate for evaluation. The surface of the above substrate was washed with phosphate buffered saline and then added to DMEM/F12 medium (1:1 mixed medium of Dulbecco's modified Eagle medium and Ham's F-12 medium) prepared by adding 10% fetal bovine serum. It was acclimated by immersing it at 37° C. for 60 minutes.
  • human fibrosarcoma cells (HT-1080) suspended in the above medium were seeded on each sample so as to have a density of 1 ⁇ 10 4 cells/cm 2 and contacted at 37° C. for 60 minutes. Subsequently, the substrate was rinsed twice with a phosphate buffer solution, and the cells attached to the substrate were fixed with a 4% paraformaldehyde solution. The cell nucleus was stained with DAPI (4′,6-diamidino-2-phenylindole) and the actin skeleton was stained with phalloidin antibody, and the number of adherent cells was measured using a fluorescence microscope.
  • DAPI 4,6-diamidino-2-phenylindole
  • the relative number of cancer cells in the sheet 1 was calculated when the total number of cancer cells attached to the PET film (control sample) was 100%, and the cancer cell adhesion was evaluated according to the following criteria.
  • composition 3 A composition (hereinafter sometimes referred to as “composition 3”) was prepared by dissolving poly(2-methoxyethyl acrylate) (20 mg) in a solvent (methanol; 10 mL).
  • a sheet for cell attachment (hereinafter sometimes referred to as “sheet 3”) was produced using the composition 3 in the same manner as in Example 1.
  • the molecular weight of poly(2-methoxyethyl acrylate) the number average molecular weight (Mn) was 21,000 and the molecular weight distribution (Mw/Mn) was 2.8 from the result of the molecular weight analysis of GPC.
  • PI-1 in the column of polymerization initiator represents a photopolymerization initiator (a compound represented by the following formula)
  • Irg1173 represents a photopolymerization initiator (Omnirad 1173, manufactured by IGM Resins).
  • Example 1 As a result of evaluating the adhesiveness with respect to other cancer cells (SW480, HT29, MCF-7, A549, HeLa, MDA-MB-231), it was found that cell adhesion was similar to that of HT1080. Sex was confirmed. On the other hand, as a result of evaluating the adherence of human dermal fibroblast (NHDF), which is an epithelial tissue of normal cells, it was confirmed that the adhered number was smaller than that of cancer cells.
  • NHDF human dermal fibroblast
  • Example 2 ⁇ Manufacture of cell attachment sheet>
  • a compound represented by the following formula (B) (may be referred to as “compound B”) is synthesized, and a curable composition (hereinafter referred to as “curable composition”) having the composition shown in Table 3 is synthesized.
  • Curable composition a curable composition having the composition shown in Table 3 is synthesized.
  • sheet 4 A sheet for cell attachment (hereinafter sometimes referred to as “sheet 5”) was produced using the curable composition 4 in the same manner as in Example 1.
  • Cancer cell adhesion 2 An adhesion test of cancer cells was performed using the produced cell attachment sheet (sheet 5) and a PET film (DIAFOIL T100E125, manufactured by Mitsubishi Plastics, Inc.) as a control sample as an evaluation substrate. The surface of the above substrate was washed with phosphate buffered saline and then added to DMEM/F12 medium (1:1 mixed medium of Dulbecco's modified Eagle medium and Ham's F-12 medium) prepared by adding 10% fetal bovine serum. It was acclimated by immersing it at 37° C. for 60 minutes.
  • MDA-MB-231 human-derived invasive malignant breast cancer cell line suspended in the above medium was inoculated to each sample at a density of 1 ⁇ 10 4 cells/cm 2 , and 37° C. Contacted for 60 minutes. Subsequently, the substrate was rinsed twice with a phosphate buffer solution, and the cells attached to the substrate were fixed with a 4% paraformaldehyde solution. The cell nucleus was stained with DAPI (4′,6-diamidino-2-phenylindole) and the actin skeleton was stained with phalloidin antibody, and the number of adherent cells was measured using a fluorescence microscope.
  • DAPI 4,6-diamidino-2-phenylindole
  • the relative number of cancer cells in the sheet 1 was calculated when the total number of cancer cells attached to the PET film (control sample) was 100%, and the cancer cell adhesion was evaluated according to the following criteria. A: over 1500% B: 100% or more and 1500% or less C: less than 100%
  • the cell-attachment sheet 5 of Example 2 had less platelet attachment and more cancer cell attachment.
  • DMEM/F12 medium Dulbecco's modified Eagle medium prepared by adding 10% of fetal calf serum to each of MDA-MB-231 (human-derived invasive malignant breast cancer cell line) and MCF-7 (human-derived benign tumor cell line) And 1:1 mixed medium of Ham's F-12 medium), MDA-MB-231 cells were stained with CellTracker Red CMTPX, and MCF-7 cells were stained with CellTracker Green CMFDA.
  • MDA-MB-231 cells were stained with CellTracker Red CMTPX
  • MCF-7 cells were stained with CellTracker Green CMFDA.
  • Each cell was mixed in DMEM/F12 medium so as to have a density of 0.5 ⁇ 10 4 cells/cm 2 (1 ⁇ 10 4 cells/cm 2 in total), and seeded on sheets 1 and 5, 37 Contact was performed at 60° C. for 60 minutes.
  • sheets 1 and 5 were rinsed with a phosphate buffer solution, and cells attached to sheets 1 and 5 were fixed with a 4% paraformaldehyde solution.
  • the sheets were mounted on a slide glass using ProLong Gold Antifade Mount with DAPI, and the number of adherent cells was measured using a fluorescence microscope.
  • the number of adherent cells of both MDA-MB-231 (human-derived invasive malignant breast cancer cell line) and MCF-7 (human-derived benign tumor cell line) adhered on Sheets 1 and 5 was measured, and the number of adhered cells was measured according to the following criteria , And the selectivity of cell attachment was evaluated.

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Abstract

本発明は、血小板の付着が抑制され、細胞の付着に優れる細胞付着用シートを提供する。本発明の細胞付着用シートは、式（１）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される。

Description

細胞付着用シート
　本発明は細胞付着用シートに関する。
　血液、組織液、および、リンパ液などの体液から、細胞、生理活性物質およびタンパク質などの標的物質を選択的に分離・回収する方法、または生体組織液から細菌またはウイルスなどを分離または除去する方法などの分離・回収技術は、自己免疫疾患、ＡＩＤＳ（後天性免疫不全症候群；ａｃｑｕｉｒｅｄ　ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｓｙｎｄｒｏｍｅ）および移植後の急性拒絶反応防止などに利用されている。
　さらに、血液のがんである白血病を始め、がん化した生体組織由来のがん細胞を検出し、治療を行う細胞医療にとって、がん化した細胞を高感度で効率的に分離、回収する技術は重要である。近年、がん化した組織からがん細胞を直接採取する生検（バイオプシー）に代えて、血液に代表される生体組織液から腫瘍マーカーやがん化した細胞そのものを検出する血液生検（リキッドバイオプシー）が注目を集めている。従来から行われてきた組織採取による検査は被検者に対して高侵襲な手法であるのに対し、血液生検においては血液採取という低侵襲な手法を用いるため、被検者の体への負担が極めて軽いことが特徴である。その一方で、血液生検による腫瘍マーカーを用いた検査では、がん化した組織に部位特異的な腫瘍マーカーが確立されている場合が少ない。このため、がん化した組織からわずかに血液中に漏れ出して体内を循環しているがん細胞（血中循環がん細胞）を高感度、高効率、かつ特異的に捕捉し、検出する技術の開発が望まれていた。
　例えば、特許文献１には、生体内に存在する所定の細胞を選択的に吸着して分離させるための細胞分離方法に用いられる水和性組成物として、「中間水の量が３０ｗｔ％以下であることを特徴とするがん細胞分取用水和性組成物。」（請求項４）が記載されている。
特開２０１２－１０５５７９号公報
　しかし、特許文献１に記載されたがん細胞分取用水和性組成物を用いて形成した細胞付着用シートでは、血小板の付着が抑制されるものの、細胞の付着に改善の余地が認められた。
　そこで、本発明は、血小板の付着が抑制され、細胞の付着に優れる細胞付着用シートを提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、後述する式（１）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される細胞付着用シートが、血小板の付着が抑制され、細胞の付着に優れることを知得し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下の［１］～［８］である。
　［１］　後述する式（１）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される細胞付着用シート。
　［２］　Ｘが、窒素原子である、［１］に記載の細胞付着用シート。
　［３］　Ｘが、＞ＣＲ１０２－である、［１］に記載の細胞付着用シート。
　［４］　Ｒ３がアルキル基である、上記［１］～［３］に記載の細胞付着用シート。
　［５］　Ｒ３が炭素数４以下のアルキル基である、上記［１］～［４］に記載の細胞付着用シート。
　［６］　Ｒ１ＡおよびＲ１Ｂが、酸素原子である、上記［１］～［５］のいずれか１つに記載の細胞付着用シート。
　［７］　式（１）で表される化合物が、後述する式（１－１）で表される化合物、および、後述する式（１－２）で表される化合物からなる群から選択される、［１］～［６］のいずれかに記載の細胞付着用シート。
　［８］　がん細胞付着用である、上記［１］～［７］のいずれか１つに記載の細胞付着用シート。
　本発明によれば、血小板の付着が抑制され、細胞の付着に優れる細胞付着用シートを提供できる。
　本明細書において、「～」を用いて表される範囲には、「～」の両端を含むものとする。例えば、「Ａ～Ｂ」と表される範囲には、ＡおよびＢを含む。
　本明細書において、固形分とは、溶媒成分を除いた組成物に含まれる成分を意図し、その性状が液状であっても固形分として計算する。
　以下では、本発明の細胞付着用シートについて詳細に説明する。
［細胞付着用シート］
　本発明の細胞付着用シートは、後述する式（１）で表される化合物（以下「化合物（１）」という場合がある。）を含む組成物（以下「本発明の硬化性組成物」という場合がある。）を用いて形成される細胞付着用シートである。
〈式（１）で表される化合物〉
　式（１）で表される化合物〔化合物（１）〕について説明する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
　上記式（１）中、各記号の意味は以下のとおりである。
　Ｒ１およびＲ２は、それぞれ独立に、水素原子またはアルキル基を表し、水素原子または炭素数４以下のアルキル基であることが好ましく、水素原子、メチル基、エチル基、プロピル基またはプロパン－２－イル基であることがより好ましく、水素原子またはメチル基であることがさらに好ましく、メチル基であることがいっそう好ましい。
　Ｒ３は、水素原子または１価の置換基を表し、水素原子、アルキル基、アリール基、または下記式（２）で表される基であることが好ましく、水素原子、アルキル基、フェニル基、または下記式（２）で表される基であることがより好ましく、アルキル基であることがさらに好ましく、炭素数４以下のアルキル基であることがいっそう好ましい。炭素数４以下のアルキル基の例は、メチル基、エチル基、プロピル基、およびプロパン－２－イル基であるが、これらに限定されるものではなく、炭素数４以下のアルキル基としては、エチル基またはメチル基が好ましく、メチル基がより好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
　式（２）中の各記号の意味は以下のとおりである。
　式（２）中、Ｒ５は、水素原子またはアルキル基を表し、水素原子または炭素数４以下のアルキル基であることが好ましく、水素原子、メチル基、エチル基、プロピル基、またはプロパン－２－イル基であることがより好ましく、水素原子またはメチル基であることがさらに好ましい。
　式（２）中、Ｒ１Ｃは、酸素原子または－ＮＲ１０２－を表す。Ｒ１０２は、水素原子またはアルキル基を表し、水素原子または炭素数４以下のアルキル基であることが好ましく、水素原子、メチル基、エチル基、プロピル基、またはプロパン－２－イル基であることがより好ましく、水素原子またはメチル基であることがさらに好ましく、水素原子であることがいっそう好ましい。Ｒ１Ｃは、酸素原子（－Ｏ－）または－ＮＨ－であることが好ましく、酸素原子（－Ｏ－）であることがより好ましい。
　式（２）中、Ｌ５は、－ＮＨ－ＣＯＯ－＊２で表されるウレタン結合を含み、エーテル結合を含んでいてもよい脂肪族炭化水素基を表し、－（ＣＨ２）ｍ－ＮＨ－ＣＯＯ－（ＣＨ２）ｎ－であることが好ましく、ここで、ｍおよびｎは、それぞれ独立に、１～１０の整数であり、２または３であることが好ましく、２であることがより好ましい。
　なお、上記Ｌ５で表される上記脂肪族炭化水素基中の上記ウレタン結合は、＊２がＸ側となるように配置されている。
　式（１）中の各記号の意味は以下のとおりである。
　Ｒ１ＡおよびＲ１Ｂは、それぞれ独立に、酸素原子または－ＮＲ１０１－を表す。
　Ｒ１０１は、水素原子またはアルキル基を表し、水素原子または炭素数４以下のアルキル基であることが好ましく、水素原子、メチル基、エチル基、プロピル基、またはプロパン－２－イル基であることがより好ましく、水素原子またはメチル基であることがさらに好ましく、水素原子であることがいっそう好ましい。
　Ｒ１ＡおよびＲ１Ｂは、それぞれ独立に、酸素原子（－Ｏ－）または－ＮＨ－であることが好ましく、酸素原子（－Ｏ－）であることがより好ましい。
　Ｌ１およびＬ３は、それぞれ独立に、－ＮＨ－ＣＯＯ－＊１で表されるウレタン結合を含み、エーテル結合を含んでいてもよい脂肪族炭化水素基を表す。
　Ｌ１は－（ＣＨ２）ｐ－〔Ｏ－（ＣＨ２）ｒ〕ｔ－ＮＨ－ＣＯＯ－（ＣＨ２）ｖ－＊２であることが好ましい。＊２側が、Ｘと結合する。ここで、ｐ、ｒおよびｖは、それぞれ独立に、１以上の整数であり、１～３の整数であることが好ましく、２または３であることがより好ましい。ｔは０以上の整数であり、０～３の整数であることが好ましく、０または１であることがより好ましい。
　Ｌ２は＊３－（ＣＨ２）ｗ－ＯＣＯ－ＮＨ－〔（ＣＨ２）ｓ－Ｏ〕ｕ－（ＣＨ２）ｑ－であることが好ましい。＊３側がＸと結合する。ここで、ｑ、ｓおよびｗは、それぞれ独立に、１以上の整数であり、１～３の整数であることが好ましく、２または３であることがより好ましい。ｕは０以上の整数であり、０～３の整数であることが好ましく、０または１であることがより好ましい。
　なお、Ｌ１で表される脂肪族炭化水素基中のウレタン結合は、＊２がＸ側となるように配置されている。また、Ｌ３で表される脂肪族炭化水素基中のウレタン結合は、＊１がＸ側となるように配置されている。
　Ｘは、窒素原子または＞ＣＲ１０２－を表す。なかでも、細胞付着用シートのＥｐＣＡＭ陰性癌細胞とＥｐＣＡＭ陽性癌細胞との付着性に差が生じやすい点で、＞ＣＲ１０２－が好ましい。
　なお、＞ＣＲ１０２－とは、以下の式（Ｙ）で表される基である。式（Ｙ）中、＊は結合位置を表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
　なお、Ｘが窒素原子である場合は、式（１）で表される化合物は、式（１－１）で表される化合物に該当し、Ｘが＞ＣＲ１０２－である場合、式（１）で表される化合物は、式（１－２）で表される化合物に該当する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
　Ｒ１０２は、水素原子または１価の置換基を表し、水素原子、アルキル基、アリール基、または上記式（２）で表される基であることが好ましく、水素原子、アルキル基、フェニル基、または上記式（２）で表される基であることがより好ましく、アルキル基であることがさらに好ましく、炭素数４以下のアルキル基であることがいっそう好ましい。炭素数４以下のアルキル基の例は、メチル基、エチル基、プロピル基、およびプロパン－２－イル基であるが、これらに限定されるものではなく、炭素数４以下のアルキル基としては、エチル基またはメチル基が好ましく、メチル基がより好ましい。
　式（１）で表される化合物の分子量は、細胞付着用シートの弾性率および可とう性のバランスを適切に保つ点から、２００～１０００であることが好ましく、300～800であることがより好ましく、３５０～５５０であることがさらに好ましい。
《式（１）で表される化合物の具体例》
　上記式（１）で表される化合物の好ましい例は、下記式（Ａ）、（Ｇ）、（Ｈ）または（Ｉ）で表される化合物であり、なかでも、下記式（Ａ）で表される化合物が特に好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
　上記式（１）で表される化合物の好ましい例は、式（Ｊ）で表される化合物および式（Ｋ）で表される化合物も挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
《式（１）で表される化合物の含有量》
　硬化性組成物中の式（１）で表される化合物の含有量は、特に限定されないが、本発明の硬化性組成物の固形分の合計質量に対して、５０質量％以上であることが好ましく、７５質量％以上であることがより好ましく、８５質量％以上であることがさらに好ましく、９５質量％以上であることがいっそう好ましい。
　本発明の硬化性組成物中の式（１）で表される化合物の含有量の上限は、特に限定されないが、通常、１００質量％未満であり、９９．９質量％以下であることが好ましい。
《式（１）で表される化合物の合成方法》
　式（１）で表される化合物は、従来公知の方法によって、容易に合成することができる。
〈化合物（１）以外の成分〉
　本発明の硬化性組成物は、本発明の作用効果を妨げない限り、上述した化合物（１）以外に、化合物（１）以外の他のモノマー、界面活性剤、重合開始剤、重合禁止剤および溶媒など、化合物（１）以外の成分をさらに含んでもよい。
《化合物（１）以外の他のモノマー》
　本発明の硬化性組成物では、硬化膜の力学物性（引張強度や耐摩耗性など）を調整する目的で、市販の単官能モノマーおよび／または多官能モノマーを、式（１）で表される化合物と併用してもよい。
　本発明の硬化性組成物が化合物（１）以外の他のモノマーを含む場合の、本発明の硬化性組成物中の化合物（１）以外の他のモノマーの含有量は、特に限定されないが、本発明の硬化性組成物の固形分の合計質量に対して、０質量％超４０質量％以下であることが好ましい。なお、化合物（１）以外の他のモノマーの含有量が０質量％であるとは、本発明の硬化性組成物が化合物（１）以外の他のモノマーを含まないことを意味する。
《界面活性剤》
　本発明の硬化性組成物には、硬化性組成物の基材への濡れ性やレベリング性を調整するために、市販の界面活性剤を添加してもよい。
　本発明の硬化性組成物が界面活性剤を含む場合の、本発明の硬化性組成物中の界面活性剤の含有量は、特に限定されないが、本発明の硬化性組成物の固形分の合計質量に対して、０質量％超３質量％以下であることが好ましい。なお、界面活性剤の含有量が０質量％であるとは、本発明の硬化性組成物が界面活性剤を含まないことを意味する。
《重合開始剤》
　重合開始剤は、特に限定されないが、例えば、光ラジカル重合開始剤、光カチオン重合開始剤および光アニオン重合開始剤などの光重合開始剤、ならびに熱ラジカル重合開始剤および熱カチオン重合開始剤などの熱重合開始剤が挙げられる。
　本発明の硬化性組成物が重合開始剤を含む場合の、本発明の硬化性組成物中の重合開始剤の含有量は、特に限定されないが、本発明の硬化性組成物の固形分の合計質量に対して、０．１質量％～１０質量％であることが好ましく、０．５質量％～８質量％であることがより好ましく、１質量％～５質量％であることがさらに好ましい。
《重合禁止剤》
　本発明の硬化性組成物には、化合物（１）および硬化性組成物の保存安定性を持たせるために、市販の重合禁止剤を添加してもよい。
　本発明の硬化性組成物が重合禁止剤を含む場合の、本発明の硬化性組成物中の重合禁止剤の含有量は、特に限定されないが、本発明の硬化性組成物の固形分の合計質量に対して、０．０００５質量％～１質量％であることが好ましい。
《溶媒》
　溶媒は、特に限定されないが、アルコール、ケトンまたはこれらの混合溶媒が好ましく、炭素数３以下のアルコール、炭素数４以下のケトンまたはこれらの混合溶媒がより好ましく、メタノール、アセトンがさらに好ましい。
　硬化性組成物が溶媒を含む場合の硬化性組成物中の溶媒の含有量は、特に限定されないが、硬化性組成物の１０質量％～９５質量％であることが好ましく、３０質量％～９０質量％であることがより好ましく、５０質量％～８０質量％であることがさらに好ましい。
［細胞付着用シートの製造方法］
　本発明の細胞付着用シートの製造方法は、特に限定されるものではないが、例えば以下に説明する方法が挙げられる。
〈硬化性組成物の調製〉
　式（１）で表される化合物を含む組成物（以下「硬化性組成物」という。）を調製する。
　硬化性組成物には、式（１）で表される化合物に加えて、重合開始剤および溶媒などを含んでもよい。
〈硬化性組成物膜の形成〉
　硬化性組成物を基材に塗布し、硬化性組成物膜を形成する。
　基材は特に限定されないが、例えば、ガラス基材、樹脂基材および金属基板が挙げられる。
　ガラス基材の例は、ソーダ石灰ガラス製基材、ホウケイ酸ガラス製基材、および石英ガラス製基材が挙げられる。ガラス基材の形状は、特に限定されないが、板状であることが好ましい。ガラス基材の表面はコーティングされていてもよいし、プラズマ処理などにより改質されていてもよい。
　樹脂基材の例は、ポリエステル系樹脂基材、ポリイミド系樹脂基材、エポキシ系樹脂基材、ポリエーテル系樹脂基材、ポリスルフォン系樹脂基板、およびポリスチレン系樹脂基材が挙げられる。樹脂基材の形状は、特に限定されないが、板状またはフィルム状であることが好ましい。樹脂基材の表面はコーティングされていてもよいし、プラズマ処理などにより改質されていてもよい。
　金属基板の例は、金、白金、パラジウム、銅、マンガン、ケイ素、モリブデン、亜鉛、スズ、イリジウム、コバルト、クロム、チタン、および、これらの合金、並びに、アルミナ、ジルコニア、ヒドロキシアパタイト、β－リン酸三カルシウム（β－ＴＣＰ）、リン酸水素カルシウム二水和物、リン酸八カルシウム、および、リン酸四カルシウムなどが挙げられる。金属基材の形状は、特に限定されないが、板状であることが好ましい。金属基材の表面はコーティングされていてもよいし、プラズマ処理などにより改質されていてもよい。
　基材上に硬化性組成物膜を形成する方法は特に限定されないが、バーコーター、スピンコーティング、ディッピング、またはペインティングなどによる方法が挙げられる。
〈硬化膜の形成〉
　基材上に形成した硬化性組成物膜を硬化させて、硬化膜を形成する。
　硬化性組成物膜を硬化させる方法は、特に限定されないが、光照射または加熱によることが好ましく、光照射によることがより好ましい。特に、基材の耐熱性が低い場合には、光照射により硬化させることが好ましい。光照射は、可視光線、紫外線、電子線、またはガンマ線など、適宜選択すればよい。
　硬化性組成物膜を硬化させて得られる硬化膜が本発明の細胞付着用シートである。
　本発明の細胞付着用シートは、基材から剥がしたものであってもよいし、基材が貼りついたものであってもよい。後者を区別する場合は、基材付き細胞付着用シートという場合がある。
［細胞付着］
〈選択性〉
　本発明の細胞付着用シートは、血小板が付着しにくく、細胞が付着しやすい。細胞としては、正常細胞およびがん細胞が挙げられ、特に、がん細胞が適している。
　正常細胞には例えば上皮組織、結合組織、筋組織、神経組織などにおいて正常な機能を維持している組織に由来する細胞が挙げられ、がん細胞には乳がん、線維肉腫、子宮頸がん、前立腺がん、食道がん、胃がん、結腸がん、膵臓がん、直腸がん、胆嚢がん、肝臓がん、口腔咽頭がん、肺がん、皮膚がんなどのがん化した組織に由来する細胞が挙げられる。
　本発明の細胞付着用シートは、選択的な細胞付着性能を有する。
　本発明の細胞付着用シートの選択的な細胞付着性能は、硬化膜中の式（１）で表される化合物に由来する構造と、血清中のタンパク質および細胞表面に存在する構造との間に働く分子間引力（例えば、水素結合力や、配向力、誘起力、分散力などで定義されるファンデルワールス力など）に起因するものではないかと考えられるが、詳細は不明である。
　この分子間引力は、細胞付着用シートの表面自由エネルギーを構成する成分、すなわち、細胞付着用シートに対する水およびヨウ化メチレンの接触角からOwens-Wendtの式を用いて算出される表面自由エネルギーのうち、分散力成分と水素結合力成分のバランスから見積もることができる。本発明の化合物の構造に起因するこのバランスが変化することで分子間引力が変化し、細胞の接着選択性が発現していると本発明者らは考えている。
　細胞付着用シート表面の自由エネルギーにおいて、分散力成分は２２ｍＮｍ－１以上であることが好ましく、２５ｍＮｍ－１超４０ｍＮｍ－１未満であることがより好ましく、２６ｍＮｍ－１～３８ｍＮｍ－１であることがさらに好ましい。水素結合成分は２ｍＮｍ－１以上であることが好ましく、５ｍＮｍ－１超５１ｍＮｍ－１未満であることがより好ましく、１９ｍＮｍ－１～４５ｍＮｍ－１であることがさらに好ましい。
　なお、本発明において、細胞付着用シートの表面自由エネルギーの算出には、協和界面科学製　ＤｒｏｐＭａｓｔｅｒ　ＤＭ－５００を用いて、純水もしくはヨウ化メチレン１μＬの液滴を表面に着滴させ、着滴から１０秒の接触角を測定した結果からOwens-Wendtの式を用いて算出したものである。
［実施例１］
〈細胞付着用シートの製造〉
　以下に記載する方法により、細胞付着用シート（以下「シート１」という場合がある。）を製造した。
１．化合物Ａの合成
　Ｎ－メチルジエタノールアミン（７ｇ、５８．７ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン（１００ｍＬ）、およびメタクリル酸２－イソシアナトエチル（１９．６ｇ、１２６ｍｍｏｌ）を混合した。この混合液に、ネオスタンＵ６００（３７７ｍｇ；日東化成社製）をテトラヒドロフラン（５ｍＬ）に希釈した溶液を発熱に注意しながら、滴下し、室温で１２時間撹拌した。この反応の式は以下に示すとおりである。反応溶液を減圧濃縮し、得られた粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（溶出液：酢酸エチル～酢酸エチル：メタノール＝９：１）に供することで精製し、式（Ａ）で表される化合物（本明細書において「化合物Ａ」という）（２４ｇ、収率９５％）を得た。１Ｈ　ＮＭＲ（Nuclear Magnetic Resonance）にて、目的物であることを確認した。
　1H NMR (メタノール－ｄ４, 400MHz) δ: 1.93 (6H, s), 2.35 (3H,s), 2.71 (4H, t), 3.39 (4H, t), 4.10-4.19 (8H, m), 5.62 (2H, s), 6.12 (2H, s).
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
　なお、化合物Ａの合成法としては、下記の条件でも同様に合成できる。
　Ｎ－メチルジエタノールアミン（７ｇ、５８．７ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン（１００ｍＬ）、およびメタクリル酸２－イソシアナトエチル（１９．６ｇ、１２６ｍｍｏｌ）を混合し、室温で２４時間撹拌した。反応溶液を減圧濃縮し、得られた粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（溶出液：酢酸エチル～酢酸エチル：メタノール＝９：１）に供することで精製し、式（Ａ）で表される化合物（本明細書において「化合物Ａ」という）（２１ｇ、収率８５％）を得た。
２．硬化性組成物の調製
　合成した化合物Ａ（重合禁止剤として、４ＯＨ－ＴＥＭＰＯ（４－ヒドロキシ－２，２，６，６－テトラメチルピペリジン－１－オキシル）を３０ｐｐｍ含む）と、重合開始剤と、溶媒とを、表１に示す配合量で混合して、硬化性組成物（以下「硬化性組成物１」という。）を調製した。
３．硬化膜の作製
　調製した硬化性組成物１を、バーコーターを用いて、乾燥後に厚さ３μｍとなるようにクリアランスを調整して、ＰＥＴ（ポリエチレンテレフタラート）フィルム（コスモシャインＡ４３００，東洋紡社製；両面易接着処理）上に塗布し、乾燥させた。
　その後、紫外線露光機（ＥＣＳ－４０１Ｇ，アイグラフィック社製；光源は高圧水銀ランプ）を用いて、２Ｊ／ｃｍ２の露光量となるように露光し、ＰＥＴフィルム上に硬化膜を作製した。
〈付着性の評価〉
１．血小板付着性
　製造した細胞付着用シート（シート１）と、対照試料としてのＰＥＴフィルム（ＤＩＡＦＯＩＬ　Ｔ１００Ｅ１２５、三菱樹脂株式会社製）とを用いて、血小板の粘着実験を行った。クエン酸ナトリウムで抗凝固したヒト全血から多血小板血漿と少血小板血漿を遠心分離によって回収し、多血小板血漿を少血小板血漿で希釈することにより４×１０７ｃｅｌｌｓ／ｍＬの血小板懸濁液を調整した。続いて、試料表面と血小板懸濁液とを３７℃で６０分間接触させた後、リン酸緩衝溶液で２回リンスし、粘着した血小板を１％グルタルアルデヒド溶液で固定化した。固定化した試料はリン酸緩衝溶液にて１０分、リン酸緩衝溶液：水＝１：１にて８分、水にて８分、さらに水でもう一度８分浸漬させて洗浄し、室温で風乾した。その後、試料表面１×１０４μｍ２に付着した血小板を電子顕微鏡で観察し、血小板粘着数を計測した。
　ＰＥＴフィルム（対照試料）に付着した血小板の総数を１００％とした場合の、シート１における血小板の相対数を算出し、血小板付着性を以下の基準に従って評価した。
　Ａ・・・５％以下
　Ｂ・・・５％超２０％以下
　Ｃ・・・２０％超
２．がん細胞付着性１
　製造した細胞付着用シート（シート１）と、対照試料としてのＰＥＴフィルム（ＤＩＡＦＯＩＬ　Ｔ１００Ｅ１２５、三菱樹脂株式会社製）とを評価用基板として用いて、がん細胞の接着試験を行った。上記基板の表面をリン酸緩衝生理食塩水により洗浄した後、ウシ胎児血清を１０％添加して調製したＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（ダルベッコ改変イーグル培地とハムＦ－１２培地の１：１混合培地）に３７℃で６０分間浸漬させて馴化した。その後、上記の培地に懸濁したヒト線維肉腫細胞（ＨＴ－１０８０）を各試料に対して１ｃｍ２あたり１×１０４個の密度となるように播種し、３７℃、６０分間接触させた。続いて、基板をリン酸緩衝溶液で２回リンスし、基板に接着した細胞を４％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。細胞の核をＤＡＰＩ（４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール）、アクチン骨格をファロイジン抗体でそれぞれ染色して、蛍光顕微鏡を用いて付着細胞数の計測を行った。
　ＰＥＴフィルム（対照試料）に付着したがん細胞の総数を１００％とした場合の、シート１におけるがん細胞の相対数を算出し、がん細胞付着性を以下の基準に従って評価した。
　Ａ・・・１５００％超
　Ｂ・・・１００％以上１５００％以下　
　Ｃ・・・１００％未満
［比較例１］
〈細胞付着用シートの製造〉
　下記式（Ｃ）で表される化合物（「化合物Ｃ」という場合がある）を合成し、表１に示す組成で硬化性組成物（以下「硬化性組成物２」という場合がある。）を調製した。
　硬化性組成物２を用いて、実施例１と同様にして、細胞付着用シート（以下「シート２」という場合がある。）を製造した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
［比較例２］
〈細胞付着用シートの製造〉
　ポリ（２－メトキシエチルアクリレート）（２０ｍｇ）を溶媒（メタノール；１０ｍＬ）に溶解して、組成物（以下「組成物３」という場合がある。）を調製した。
　組成物３を用いて、実施例１と同様にして、細胞付着用シート（以下「シート３」という場合がある。）を製造した。なお、ポリ（２－メトキシエチルアクリレート）の分子量は、ＧＰＣの分子量分析の結果から、数平均分子量（Ｍｎ）が２１，０００であり分子量分布（Ｍｗ／Ｍｎ）は２．８であった。
［比較例３］
　ＰＥＴフィルム（ＤＩＡＦＯＩＬ　Ｔ１００Ｅ１２５、三菱樹脂株式会社製）を細胞付着用シート（以下「シート４」という場合がある。）として用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　表１中、重合開始剤の欄のＰＩ－１は光重合開始剤（下記式で表される化合物）を表し、Ｉｒｇ１１７３は光重合開始剤（Ｏｍｎｉｒａｄ　１１７３，ＩＧＭ　Ｒｅｓｉｎｓ社製）を表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
　ＰＩ－１は、国際公開第２０１７／０１８１４６号の［０１０５］～［０１１０］に記載の方法を参考にして合成したものを用いた。
　比較例１～３の細胞付着用シートを用いて、実施例１と同様にして血小板の付着性およびがん細胞付着性１を評価した。評価結果を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
　実施例１の細胞付着用シートは、血小板の付着が少なく、かつ、がん細胞の付着が多かった。
　また、実施例１のシート１を用いて、他のがん細胞（ＳＷ４８０、ＨＴ２９、ＭＣＦ－７、Ａ５４９、ＨｅＬａ、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１）に関する付着性を評価した結果、ＨＴ１０８０と同様に細胞付着性が確認された。一方、正常細胞の上皮組織であるヒト皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ）に関する付着性を評価した結果、がん細胞に比べ、付着数が少ないことが確認された。
［実施例２］
〈細胞付着用シートの製造〉
　上記化合物Ａの合成を参照して、下記式（Ｂ）で表される化合物（「化合物Ｂ」という場合がある）を合成し、表３に示す組成で硬化性組成物（以下「硬化性組成物４」という場合がある。）を調製した。
　硬化性組成物４を用いて、実施例１と同様にして、細胞付着用シート（以下「シート５」という場合がある。）を製造した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　製造した細胞付着用シート（シート５）を用いて、実施例１と同様にして血小板の付着性、および、以下の（３．がん細胞付着性２）の評価を実施した。評価結果を表４に示す。
２．がん細胞付着性２
　製造した細胞付着用シート（シート５）と、対照試料としてのＰＥＴフィルム（ＤＩＡＦＯＩＬ　Ｔ１００Ｅ１２５、三菱樹脂株式会社製）とを評価用基板として用いて、がん細胞の接着試験を行った。上記基板の表面をリン酸緩衝生理食塩水により洗浄した後、ウシ胎児血清を１０％添加して調製したＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（ダルベッコ改変イーグル培地とハムＦ－１２培地の１：１混合培地）に３７℃で６０分間浸漬させて馴化した。その後、上記の培地に懸濁したＭＤＡ－ＭＢ－２３１（ヒト由来浸潤性悪性乳がん細胞株）を各試料に対して１ｃｍ２あたり１×１０４個の密度となるように播種し、３７℃、６０分間接触させた。続いて、基板をリン酸緩衝溶液で２回リンスし、基板に接着した細胞を４％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。細胞の核をＤＡＰＩ（４’，６－ジアミジノ－２－フェニルインドール）、アクチン骨格をファロイジン抗体でそれぞれ染色して、蛍光顕微鏡を用いて付着細胞数の計測を行った。
　ＰＥＴフィルム（対照試料）に付着したがん細胞の総数を１００％とした場合の、シート１におけるがん細胞の相対数を算出し、がん細胞付着性を以下の基準に従って評価した。
　Ａ・・・１５００％超
　Ｂ・・・１００％以上１５００％以下
　Ｃ・・・１００％未満
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
　実施例２の細胞付着用シート５は、血小板の付着が少なく、かつ、がん細胞の付着が多かった。
〈付着選択性の評価〉
　ＭＤＡ－ＭＢ－２３１（ヒト由来浸潤性悪性乳がん細胞株）とＭＣＦ－７（ヒト由来良性腫瘍細胞株）とをそれぞれウシ胎児血清を１０％添加して調製したＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（ダルベッコ改変イーグル培地とハムＦ－１２培地の１：１混合培地）で培養した後、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞をＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ　Ｒｅｄ　ＣＭＴＰＸ、ＭＣＦ－７細胞をＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ　Ｇｒｅｅｎ　ＣＭＦＤＡで染色した。それぞれの細胞が１ｃｍ２あたり０．５×１０４個（合計１ｃｍ２あたり１×１０４個）の密度になるようにＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中に混合してシート１および５上に播種し、３７℃、６０分間接触させた。
　続いて、シート１および５をリン酸緩衝溶液でリンスし、シート１および５に接着した細胞を４％パラホルムアルデヒド溶液で固定した。細胞固定後のシート１および５をリン酸緩衝溶液でリンスした後、ＰｒｏＬｏｎｇ　Ｇｏｌｄ　Ａｎｔｉｆａｄｅ　Ｍｏｕｎｔａｎｔ　ｗｉｔｈ　ＤＡＰＩを使用してスライドガラス上に封入し、蛍光顕微鏡を用いて、付着細胞数の計測を行った。
　シート１および５上に付着したＭＤＡ－ＭＢ－２３１（ヒト由来浸潤性悪性乳がん細胞株）とＭＣＦ－７（ヒト由来良性腫瘍細胞株）との両方の付着細胞数を計測し、以下の基準に従って、細胞付着の選択性を評価した。
Ａ：（ＭＢＡ－ＭＢ－２３１の付着細胞数／ＭＣＦ－７の付着細胞数）の比率が２以上
Ｂ：（ＭＢＡ－ＭＢ－２３１の付着細胞数／ＭＣＦ－７の付着細胞数）の比率が２未満
　シート１に関しては評価「Ｂ」で、シート５に関しては評価「Ａ」であった。
　上記結果より、式（１－２）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される細胞付着用シート（シート５）のほうが、式（１－１）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される細胞付着用シート（シート１）よりも、細胞付着の選択性があることが確認された。なお、従来の細胞付着用シートでは、ＥｐＣＡＭ陰性癌細胞（ＭＤＡ－ＭＢ－２３１）と、ＥｐＣＡＭ陽性癌細胞（ＭＣＦ－７）との間で付着の選択性はなかったが、驚くべきことに、シート５では、両者の細胞の付着の選択性が確認された。

Claims (8)

  1. 　式（１）で表される化合物を含む組成物を用いて形成される細胞付着用シート。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     　式（１）中、Ｒ１およびＲ２は、それぞれ独立に、水素原子またはアルキル基を表す。Ｒ３は、水素原子または１価の置換基を表す。Ｒ１ＡおよびＲ１Ｂは、それぞれ独立に、酸素原子または－ＮＲ１０１－を表す。Ｒ１０１は、水素原子またはアルキル基を表す。Ｌ１およびＬ３は、それぞれ独立に、－ＮＨ－ＣＯＯ－＊１で表されるウレタン結合を含み、エーテル結合を含んでいてもよい脂肪族炭化水素基を表す。Ｘは、窒素原子または＞ＣＲ１０２－を表す。Ｒ１０２は、水素原子または１価の置換基を表す。
    　なお、前記Ｌ１で表される脂肪族炭化水素基中のウレタン結合は、＊１がＸ側となるように配置されている。また、前記Ｌ３で表される脂肪族炭化水素基中のウレタン結合は、＊１がＸ側となるように配置されている。
  2. 　Ｘが、窒素原子である、請求項１に記載の細胞付着用シート。
  3. 　Ｘが、＞ＣＲ１０２－である、請求項１に記載の細胞付着用シート。
  4. 　Ｒ３がアルキル基である、請求項１～３のいずれか１項に記載の細胞付着用シート。
  5. 　Ｒ３が炭素数４以下のアルキル基である、請求項１～４のいずれか１項に記載の細胞付着用シート。
  6. 　Ｒ１ＡおよびＲ１Ｂが、酸素原子である、請求項１～５のいずれか１項に記載の細胞付着用シート。
  7. 　式（１）で表される化合物が、式（Ａ）で表される化合物、および、式（Ｊ）で表される化合物からなる群から選択される、請求項１～６のいずれか１項に記載の細胞付着用シート。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
  8. 　がん細胞付着用である、請求項１～７のいずれか１項に記載の細胞付着用シート。
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