WO2020067233A1 - イムノクロマト用試験片 - Google Patents

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immunochromatographic
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test piece
opaque substrate
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駿 酒井
景吾 河野
佳菜子 伊藤
旭 中島
元喜 森田
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積水メディカル株式会社
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    • G01N2021/7756Sensor type
    • G01N2021/7759Dipstick; Test strip

Definitions

  • the present invention relates to a test piece for immunochromatography and a method for detecting immunochromatography using the test piece.
  • a test piece for immunochromatography (hereinafter sometimes simply referred to as an immunochromatographic test piece) is generally a membrane composed of a porous body having a sample supply section, a developing section, and a detection section, and is a labeled antibody for a detection target. Can be eluted at the development start site of the development part so that it can reach the detection part after passing through the development part after contact with the sample (sample), and the detection antibody is immobilized on a part of the development part And constitute a detection unit.
  • the detection target when the sample is dropped into the sample supply unit, if the detection target is contained in the sample, the detection target specifically binds to the labeled antibody to form a complex, and the complex is Then, the developing section is developed in the downstream direction, and the detection section binds to the immobilized antibody for detection. Therefore, the detection target can be qualitatively or quantitatively analyzed by detecting the sandwich-type complex using the labeled antibody, the detection target, and the immobilized antibody in the detection unit.
  • a method of calculating the absorbance (reflection absorbance) by measuring the intensity of the reflected light derived from the label is used. is there.
  • the reflection absorbance is calculated, for example, by measuring the intensity of reflected light at the detection line of the substance to be detected in the detection section and at two sites in the vicinity thereof, and calculating the ratio using the ratio.
  • the reflected light intensity near the upstream side or downstream side of the detected section may non-specifically increase, and the measured waveform may be disturbed.
  • the reproducibility of the measurement may be reduced, or the measurement value may be corrected to an appropriate value each time (in other words, the measurement waveform may be changed). Confirmation) was required.
  • the disturbance of the measured waveform is caused by a phenomenon in which the color of the relevant portion of the membrane is relatively white than the surrounding colors, and the color appears to be missing (so-called white color). This is also visually observed as a dropout phenomenon (hereinafter, sometimes simply referred to as white spots), which hinders the visual determination of the coloration originating from the marker, causing a lack of accuracy in the determination results.
  • Patent Document 1 discloses an assay using a sample diluent to which methanol is added in order to prevent white spots which are often observed when an immunochromatographic test strip is stored for a long period of time.
  • Patent Document 2 discloses a method of preventing white spots and disturbance of measured waveforms by treating an antibody-immobilized membrane of an immunochromatographic test strip with a specific surfactant such as n-octyl- ⁇ -D-glucoside.
  • An object of the present invention is to provide a test piece capable of avoiding the occurrence of a so-called white spot phenomenon in an immunochromatographic test piece by a completely different approach from the above prior art, and capable of detecting with better visibility.
  • Another object of the present invention is to provide an immunochromatographic test strip that can prevent variations in the detection value of a test line.
  • the present inventors have attempted to change various elements of the immunochromatographic test strip in order to solve the above problems, and surprisingly, in the immunochromatographic test strip containing a porous membrane, specific binding substances such as antibodies By providing an opaque substrate on the back surface of a porous membrane having immobilized on the surface, it was possible to avoid white spots near the test line and also to prevent variations in the detected values, and completed the present invention. . That is, the present invention has the following configuration. (1) An immunochromatographic test strip including at least a porous membrane and having a sample supply unit, a developing unit, and a detection unit, wherein the detection unit is fixed to a surface of the porous membrane, and The test piece, wherein an opaque substrate is disposed on a back surface.
  • the immunochromatographic test strip according to (1) wherein the opaque substrate is a white substrate.
  • the immunochromatographic test piece according to (1) or (2) wherein the thickness of the opaque substrate is 30 ⁇ m or more and 200 ⁇ m or less.
  • the opaque substrate is a member arranged for backing the porous membrane, and further, a backing sheet is arranged below the opaque substrate (1) to (3).
  • the immunochromatographic test strip according to 1. The immunochromatographic test according to any one of (1) to (4), further comprising a sample pad serving as the sample supply unit and a conjugate pad containing a specific binding substance labeled with colloidal gold or colored latex. Pieces.
  • the immunochromatographic test strip according to any one of (1) to (6) which is a test strip for detection by optical means.
  • An immunochromatographic detection kit comprising the immunochromatographic test strip according to any one of (1) to (7).
  • An immunochromatographic detection method wherein the following test piece is used;
  • An immunochromatographic test strip comprising a porous membrane having at least a detection portion, wherein an opaque substrate is disposed on the back side of the porous membrane.
  • the immunochromatographic detection method according to (9) or (10), wherein the thickness of the opaque substrate is 30 ⁇ m or more and 200 ⁇ m or less.
  • the opaque substrate is a member arranged for lining the porous membrane, and further, a backing sheet is arranged below the opaque substrate (9) to (11). 2.
  • the method for detecting immunochromatography according to item 1. (13) The test piece further includes a sample pad serving as the sample supply unit and a conjugate pad containing a specific binding substance labeled with colloidal gold or colored latex. 2.
  • the method for detecting immunochromatography according to item 1. (14) The immunochromatographic detection method according to any one of (9) to (13), wherein the specific binding substance is an antibody.
  • the opaque substrate is a member arranged for backing the porous membrane, and further, a backing sheet is arranged below the opaque substrate (17) to (19).
  • a method for reducing the variation described in 1. (21) A method for reducing white spots in a test piece in an immunochromatography detection method using the test piece, wherein the method uses the following test piece; An immunochromatographic test strip including at least a porous membrane, a sample supply unit, a developing unit, and a detection unit, wherein the detection unit is fixed to the surface of the porous membrane, and an opaque substrate is provided on the back side of the porous membrane. The test piece on which is placed.
  • the opaque substrate is a member arranged for backing the porous membrane, and further, a backing sheet is arranged below the opaque substrate (21) to (23). 2. The method for reducing white spots on a test piece according to item 1.
  • an immunochromatographic test piece which is excellent in visibility at the time of detection by visual inspection because white spots near the test line can be avoided and has little variation in measured values by optical means.
  • 4 is a graph showing the variation in measured values when immunochromatographic measurement was performed using an immunochromatographic test piece using a porous membrane in which a backing member was a transparent substrate (comparative example) and a white substrate (the present invention).
  • Test example 2 the substance to be detected is on the middle concentration side
  • 4 is a graph showing the variation in measured values when immunochromatographic measurement was performed using an immunochromatographic test piece using a porous membrane in which a backing member was a transparent substrate (comparative example) and a white substrate (the present invention).
  • (Test Example 3 the substance to be detected is on the low concentration side) 4 is a graph showing the variation in measured values when immunochromatographic measurement was performed using an immunochromatographic test piece using a porous membrane in which a backing member was a transparent substrate (comparative example) and a white substrate (the present invention).
  • (Test Example 4 the substance to be detected is on the high concentration side) It is a perspective view showing the immunochromatography test piece of the present invention. A shows the entire immunochromatographic test piece, and B shows a porous membrane. It is a top view of the immunochromatography detection device of the present invention. FIG. 6 shows a cut surface when the device shown in FIG. 5 is cut along a dotted line.
  • the immunochromatographic test strip of the present invention includes a porous membrane having at least a ⁇ sample supply section '', an ⁇ development section '', and a ⁇ detection section '', and a labeled specific binding substance that binds to an object to be detected.
  • a porous membrane having at least a ⁇ sample supply section '', an ⁇ development section '', and a ⁇ detection section '', and a labeled specific binding substance that binds to an object to be detected.
  • the specific binding substance for detection is immobilized on a part of the developing part And constitute a detection unit.
  • a sample pad serving as a sample supply unit
  • a conjugate pad serving as a part of a developing unit in which a labeled specific binding substance bound to a detection target is held so as to be eluted
  • a detection pad A specific binding substance is partially immobilized
  • a test piece containing a porous membrane serving as a developing part and a detecting part. That is, a typical immunochromatographic test strip of the present invention has the following configuration.
  • a sample pad to which an analyte is supplied (2) A conjugate pad disposed downstream of the sample pad and holding a conjugate sensitized with a first specific binding substance on a gold colloid surface so as to be eluted therefrom (3) a porous membrane which is disposed downstream of the conjugate pad and has on its surface a detection unit on which a second specific binding substance that binds to a complex of the conjugate and the detection target is immobilized; On the back side, the porous membrane on which the opaque substrate is disposed
  • the sample pad, the conjugate pad, and the porous membrane may each constitute a separate carrier, or two may constitute one carrier. From the upstream to the downstream, the sample pad, the conjugate Any embodiment is included as long as it is configured in the order of the pad and the porous membrane.
  • the immunochromatographic test piece also includes, in addition to the above configuration, one in which at least one of an absorption pad and a 3rd pad is further arranged and mounted.
  • the test pieces are usually arranged on a solid support such as a plastic adhesive sheet (hereinafter sometimes referred to as a backing sheet).
  • a polyester film or the like may be laminated to the test piece in order to increase the mechanical strength of the porous membrane on which the specific binding substance is immobilized and to prevent evaporation (drying) of water during the assay. .
  • the detection method using the immunochromatographic test strip of the present invention is performed as follows.
  • the detection target specifically binds to the labeled specific binding substance to form a complex.
  • the complex expands the developing portion in the downstream direction and binds to the specific binding substance immobilized on the detecting portion.
  • the detection target can be qualitatively determined. Quantitative analysis is possible.
  • the detection includes a method of detecting coloration by visual observation and a method of detecting an optical parameter derived from the label by an optical means. When using optical means, in addition to manual operation, it can be automated and continuous measurement can be performed.
  • sample pad is a part that serves as a sample supply unit that receives a sample, absorbs a liquid sample in a state molded into the pad, and allows the liquid and the component of the detection target to pass through. Any substance and form are included.
  • the sample pad of the present invention can be pre-treated to improve water permeability. When measuring whole blood, a hemagglutinating agent can be included. In this case, it is sufficient that the sample pad is included in at least a part of the sample pad, and the sample pad may be entirely included.
  • sample pad examples include, but are not limited to, glass fiber (glass fiber), acrylic fiber, hydrophilic polyethylene material, dried paper, paper pulp, woven fabric, and the like. Preferably, a glass fiber pad is used.
  • the sample pad can also have the function of a conjugate pad described later.
  • the sample pad may contain a commonly used blocking reagent, if necessary, as long as it does not deviate from the object of the present invention and does not affect the reaction system.
  • a conjugate refers to a substance in which a specific binding substance or a control substance that binds to a detection target is immobilized on a label.
  • the label used in the present invention can form a conjugate by sensitizing (immobilizing) a specific binding substance such as an antibody, and contact with a sample to detect an object (such as an antigen) in the sample.
  • Any method can be used as long as it can play a role as a label in the method, and examples thereof include colloidal gold particles, colloidal platinum particles, color latex particles, and magnetic particles, among which colloidal gold and colored latex And colloidal gold are even more desirable. These particle diameters may be adjusted according to each type so as to obtain a desired detection sensitivity of the measurement object.
  • the particle diameter of the colloidal gold particles is preferably 20 to 100 nm, more preferably The thickness is 30 to 100 nm, and particularly preferably 60 nm.
  • the conjugate of the present invention can also block a region where a specific binding substance is not bound on the surface of gold colloid or the like with a blocking agent.
  • the conjugate may exist as a conjugate pad, that is, in a state in which the conjugate pad is impregnated with a dedicated pad (conjugate pad) other than the sample pad, the third pad, and the porous membrane ( Type A), it may be present as a conjugate part in a part of the sample pad (type B). Furthermore, separately from the test strip, it may be present as an individual conjugate reagent so as to be mixed with the specimen (Type C).
  • FIG. 4 shows a test piece having such an arrangement example.
  • the complex is bonded and immobilized here.
  • the immobilized complex is detected by means for detecting absorbance, reflected light, fluorescence, magnetism, etc., derived from the labeling substance.
  • the sample supply section is a section for supplying a sample containing the detection target
  • the conjugate section is a section containing the conjugate
  • the sample supply section is on the upstream side of the conjugate section.
  • a test piece having a conjugate existence type C will be described.
  • the difference from the above type A test piece is that the conjugate pad does not exist as a test piece, and the conjugate exists as an individual conjugate reagent.
  • a filter chip in which a conjugate is incorporated in a filter may be mentioned. By filtering the sample using such a filter chip, the conjugate held in the filter and the detection target are bound to form a complex (aggregate). By supplying this to the same test piece as type A except that it does not have a conjugate pad, the detection target can be detected.
  • the “detection reagent” is specifically a solution containing at least a conjugate.
  • the detection reagent keeps the conjugate stable, and when mixed with the sample, promotes a specific binding substance such as an antibody immobilized on the conjugate to specifically react with the analyte.
  • it may contain, for example, one or more stabilizers, solubilizing agents, and the like.
  • stabilizer, solubilizing agent, and the like include bovine serum albumin (BSA), sucrose, casein, amino acids, and the like.
  • the detection reagent may contain a known sensitizer or chelating agent such as EDTA or EGTA as needed for the purpose of improving the detection sensitivity.
  • EDTA EDTA
  • EGTA EGTA
  • the term “detection” or “measurement” needs to be interpreted in the broadest sense, including proof and / or quantification of the presence of a detection target, and is limited in any sense. must not.
  • sample diluent may be used when the sample needs to be diluted according to the concentration of the detection target in the sample.
  • the diluting solution significantly inhibits the reaction between the target substance and the specific binding substance, or conversely, significantly accelerates the reaction, resulting in poor aggregation in the capillary phenomenon due to excessive aggregation of the labeled substance, and
  • a diluent of any composition may be used as long as a signal of the reaction between the detection target and the specific binding substance according to the concentration of the substance can be detected.
  • the “conjugate pad” is a material obtained by impregnating a material suitable for a conjugate pad described below with a detection reagent that specifically reacts with an object to be detected and drying the material.
  • the conjugate pad has a function of forming a complex between the detection reagent and the detection target when the sample passes through the conjugate pad.
  • the conjugate pad may be arranged so as to be in contact with the porous membrane on which the specific binding substance is immobilized by itself.
  • a sample placed in contact with the sample pad and passed through the sample pad by a capillary flow is received, and then the sample is transferred by a capillary flow to a 3rd Pad in contact with a surface different from the contact surface with the sample pad.
  • Suitable materials for the conjugate pad include, but are not limited to, paper, cellulose mixtures, nitrocellulose, polyester, acrylonitrile copolymer, glass fibers or non-woven fibers such as rayon. Preferably, a glass fiber pad is used.
  • the conjugate pad was, if necessary, labeled with a ⁇ control reagent '' for ensuring the reliability of the immunochromatographic detection method, for example, an antibody or a label that does not react with the analyte component labeled with the label. It may contain a high antigenic protein such as KLH (keyhole limpet hemocyanin).
  • control reagents are components (substances) that are unlikely to be present in the sample, and can be appropriately selected.
  • 3rd Pad is a component in which a component unnecessary for detection of an object to be detected among reaction components of a sample and a detection reagent is removed, and a component required for the reaction is immobilized with a specific binding substance.
  • the porous membrane can be disposed between the sample pad and the porous membrane for the purpose of allowing the porous membrane to be smoothly developed.
  • blood cells, insoluble lysed blood cells, and the like are desirably removed as components unnecessary for detection.
  • the 3rd Pad has a large enough size that the specific binding substance migrates to the immobilized membrane among the aggregates generated by the reaction between the measurement target substance and the specific binding substance, and cannot be developed smoothly. It is also possible to have an additional effect of previously removing aggregates that have become lost.
  • ⁇ 3rd ⁇ Pad includes any substance and form through which the liquid, the component to be detected, and the detection reagent can pass. Specific examples include, but are not limited to, glass fibers (glass fibers), acrylic fibers, hydrophilic polyethylene materials, dried paper, paper pulp, fabrics, and the like.
  • 3rd @ Pad is used for the purpose of separating blood cells, it may be called a blood cell separation membrane.
  • a blood cell separation membrane In the present invention, when whole blood is used as a specimen, it is desirable to use a blood cell separation membrane in order to more reliably separate and remove blood cells that could not be completely removed using only a sample pad.
  • Hemagglutinating agent when whole blood is used as a sample, it is desirable to use an erythrocyte agglutinating agent or a erythrocyte binding component in addition to the use of 3rd Pad.
  • the hemagglutinating agent and the erythrocyte binding component to be used in combination are not particularly limited, but known examples include polycationic hemagglutinating agents in addition to lectins, polyclonal antibodies, and monoclonal antibodies.
  • Examples of the known polycationic hemagglutinating agent include polybrene, polylysine, polyacrylamine, and polyalanine. Among them, polybrene is preferable. Polybrene has a chemical name of hexadimethrine bromide, and is a kind of cationic polymer having a CAS number of 28728-55-4.
  • the hemagglutinating agent and erythrocyte-binding component should be used in a sample diluent for diluting the sample, added directly to the sample, or included in the sample supply section (sample pad) of the immunochromatographic test strip.
  • a sample diluent for diluting the sample, added directly to the sample, or included in the sample supply section (sample pad) of the immunochromatographic test strip.
  • porous membrane used in the immunochromatographic test strip of the present invention is characterized in that a specific binding substance for detection is immobilized on the surface, and an opaque substrate is disposed on the back surface. .
  • the opaque substrate of the present invention disposed on the back surface of the porous membrane is a member disposed for lining the membrane because the membrane is porous, and a water-impermeable film or the like is used.
  • Such an opaque substrate of the present invention is sometimes called a so-called “backing member”.
  • the base material can be backed by bonding to the back surface of the porous membrane, or can be formed by previously laminating the porous membrane on the top surface of the water-impermeable film.
  • the opaque substrate of the present invention may be disposed on the back side of the porous membrane, may be in contact with an adhesive layer, or may be in contact without an adhesive layer if adhesiveness is ensured. Is also good.
  • the opaque substrate (backing member) of the present invention When a backing sheet described later is provided, it is arranged below the opaque substrate (backing member) of the present invention.
  • the base material on the back surface of the porous membrane has been conventionally transparent, but by using an opaque base material, the color of the relevant portion of the membrane is whiter than the surrounding colors, and the color is lost. It was possible to avoid the so-called “white spot phenomenon” (hereinafter, sometimes simply referred to as “white spots”).
  • the thickness of the opaque substrate of the present invention may be any as long as it can function as a backing member of the porous membrane, and is preferably 30 ⁇ m to 200 ⁇ m, more preferably 60 ⁇ m to 140 ⁇ m. Preferably, it is 80 ⁇ m or more and 120 ⁇ m or less.
  • Opaque refers to being non-transparent, the other side being invisible, and does not require complete opacity, but is more preferably completely opaque.
  • a substrate having a similar color to the porous membrane is preferable. If the porous membrane is white, the substrate of the present invention is also desirably a cream color or gray close to white, of which white is the most preferable. preferable.
  • Any opaque substrate may be used as long as it is impermeable and opaque, and any material can be used. For example, polyethylene, polyethylene terephthalate, polyester, nylons and the like can be mentioned.
  • any material can be used as the porous membrane (hereinafter sometimes simply referred to as a membrane).
  • a membrane examples include, but are not limited to, polyethylene, polyethylene terephthalate, nylons, glass, polysaccharides such as cellulose and cellulose derivatives, and porous membranes such as ceramics. Specific examples include glass fiber filter paper and nitrocellulose membrane sold by Merck Millipore, Toyo Roshi, GE Healthcare, and the like.
  • the pore size and structure of the porous membrane it is possible to control the speed at which the immune complex of the labeled specific binding substance and the detection target flows through the membrane. By controlling the flow rate through the membrane, the amount of the labeled specific binding substance that binds to the specific binding substance immobilized on the membrane can be adjusted. It is desirable to optimize in consideration of the combination of the immunochromatographic test piece with other constituent materials.
  • the immobilization of a specific binding substance such as an antibody to the detection target of the present invention on a porous membrane can be performed by a generally known method.
  • a specific binding substance such as an antibody to the detection target of the present invention on a porous membrane
  • the above-mentioned specific binding substance is adjusted to a predetermined concentration, and the liquid is applied to the porous membrane in a predetermined amount, in a specific symbol such as a dot or +.
  • a protein or compound that can bind to the conjugate is immobilized at a position different from the specific binding substance that binds to the detection target to form a “control line”. That is common.
  • the “specific control substance” that binds to the control reagent may be immobilized at a different position from the specific binding substance that binds to the detection target to form a “control line”.
  • the concentration of the specific binding substance is preferably from 0.1 to 5 mg / mL, more preferably from 0.5 to 3 mg / mL.
  • the amount of the specific binding substance immobilized on the porous membrane can be optimized by adjusting the coating amount dropped on the porous membrane in the case of the flow-through type, and in the case of the lateral flow type, It can be optimized by adjusting the discharge speed from the nozzle of the above-mentioned device.
  • the term "flow-through type membrane assay” refers to a method in which a sample liquid or the like is developed so as to pass perpendicularly to a porous membrane
  • the term “lateral flow type membrane assay” refers to: This refers to a method in which a sample liquid or the like is developed so as to move in a direction parallel to the porous membrane.
  • the detection reagent is developed from the conjugate pad by capillary action, and What is necessary is just to arrange
  • the line to which the specific binding substance that binds to the detection target is applied is located upstream, and the line to which the control specific binding substance is applied is located downstream. At this time, it is desirable that the distance between the lines be sufficiently long so that the signal of the label can be detected.
  • the application position of the specific binding substance that binds to the target object may be any position as long as the signal of the label can be detected.
  • the specific binding substance solution to be applied to the porous membrane can be usually prepared using a predetermined buffer.
  • a predetermined buffer examples include commonly used buffers such as a phosphate buffer, a Tris buffer, and a good buffer.
  • the pH of the buffer is preferably in the range of 6.0 to 9.5, and may be appropriately set according to the properties of the specific binding substance to be used.
  • a buffer of pH 8.0 can be used for the anti-cTnI antibody described below.
  • the buffer may further contain salts such as NaCl, stabilizers such as sucrose and preservatives, preservatives such as proclin and the like.
  • Salts include those added for adjusting the ionic strength, such as NaCl, and those added during the step of adjusting the pH of the buffer such as sodium hydroxide.
  • the blocking agent can be further coated with a commonly used blocking agent in the form of a solution or vapor to cover portions other than the specific binding substance immobilization site.
  • a porous membrane on which a specific binding substance is immobilized as described above may be referred to as a “specific binding substance-immobilized membrane”.
  • the absorption pad is a portion having a liquid absorbency that controls the development of the sample by absorbing the sample that has moved and passed through the porous membrane.
  • the absorption pad may be provided at the most downstream of the test piece, and in the flow-through type, it may be provided, for example, below the specific binding substance-immobilized membrane.
  • the absorbent pad for example, filter paper can be used, but it is not limited to this.
  • the backing sheet is a solid phase for supporting a test piece, and a sheet made of a plastic sheet to which an adhesive is adhered is usually used.
  • the material of the backing sheet include, but are not limited to, polystyrene, polyester, polypropylene, and vinyl chloride.
  • the color of the backing sheet is not particularly limited, but is preferably the same color as the membrane. When the membrane is white, the backing sheet is also preferably white.
  • the thickness of the backing sheet of the present invention is not particularly limited as long as it can exhibit the function as a support member for the test piece, and is preferably 10 ⁇ m to 600 ⁇ m, more preferably 150 ⁇ m to 350 ⁇ m, and still more preferably 200 ⁇ m Most preferably, it is 320 ⁇ m or less.
  • the top film refers to a sheet-like member covering the uppermost surface of a test piece, and increases the mechanical strength of a porous membrane on which a specific binding substance is immobilized, It is used to prevent evaporation (drying) of water.
  • the material of the top film any material can be used as long as the above-mentioned object can be achieved, and polyester and the like can be mentioned.
  • the top film can be coated on the test piece with an adhesive, or can be laminated. In the present invention, it has been found that the white spot phenomenon that is enhanced by coating the test piece with the top film can be reduced by making the backing member of the membrane opaque. Therefore, the effect of the present invention is more remarkable in the test piece provided with the top film.
  • the thickness of the top film of the present invention is not particularly limited as long as it can exert a function of protecting the membrane and preventing evaporation of water during the assay, and is preferably 10 ⁇ m to 150 ⁇ m, and more preferably 20 ⁇ m to 80 ⁇ m. Is even more preferred.
  • the test piece for immunochromatography of the present invention is suitable in consideration of the size of the test piece, the method and position of addition of the sample, the position of immobilizing the specific binding substance on the specific binding substance immobilized membrane, the signal detection method, and the like. It can be stored and mounted in a simple container (housing) for use, and the state of being stored and mounted in this way is called a "device". 5 and 6 show an example of the device of the present invention in a top view and a cross-sectional view.
  • the ⁇ porous membrane '' is a ⁇ solid phase ''
  • a specific binding substance such as an antigen or an antibody is physically or chemically supported on the porous membrane or the state in which it is supported is ⁇ fixed '' It may be expressed as "immobilization”, “immobilization”, “sensitization”, or "adsorption”.
  • the “specimen” containing the detection target refers to a biological sample such as blood, urine, sputum, saliva, nasal discharge, nasal swab, pharyngeal swab, other body fluids, feces, and the like.
  • the biological sample may be used as a sample as it is, and a sample obtained by appropriately diluting with a diluent, extracting and / or filtering is also included in the sample of the present invention.
  • Blood samples include whole blood, red blood cells, plasma, serum, and the like.
  • the blood sample also includes a sample collected from a blood collection tube to which an anticoagulant such as EDTA or heparin is added at the time of blood collection.
  • the detection target of the present invention is a substance present in a biological specimen such as blood (whole blood), red blood cells, serum, plasma, urine, saliva, or sputum, such as CRP (C-reactive protein), IgA, and IgG.
  • a biological specimen such as blood (whole blood), red blood cells, serum, plasma, urine, saliva, or sputum, such as CRP (C-reactive protein), IgA, and IgG.
  • IgM and other inflammation-related markers fibrin degradation products (eg D-dimer), soluble fibrin, coagulation / fibrinolysis markers such as TAT (thrombin-antithrombin complex), PIC (plasmin-plasmin inhibitor complex), oxidized LDL, Circulation-related markers such as BNP (brain natriuretic peptide), H-FABP (heart-type fatty acid binding protein), cardiac troponin I (cTnI), metabolism-related markers such as adiponectin, CEA (carcinoembryonic antigen), AFP ( ⁇ - Fetoprotein), CA19-9, CA125, PSA (prostate specific antigen) Tumor markers, HBV of (B hepatitis virus), HCV (C hepatitis virus), Chlamydia trachomatis, infections associated markers, such as Neisseria gonorrhoeae, allergen-specific IgE (immunoglobulin E), hormones, such as a drug
  • examples of specific binding substances for insoluble carrier particles such as colloidal gold and the substance to be measured carried on the porous membrane include proteins, peptides, amino acids, lipids, carbohydrates, DNA, RNA, receptors, haptens
  • proteins, peptides, amino acids, lipids, carbohydrates, DNA, RNA, receptors, haptens There are no particular restrictions on the origin of the molecular weight, such as high or low, natural or synthetic, and examples thereof include an antibody or an antigen that can be used in an immunological assay using an immune reaction.
  • the antibody to the detection target used in the present invention is not limited at all by the method for producing, as long as it is an antibody that specifically reacts with the detection target, and may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. You may. More preferably, it is a monoclonal antibody.
  • a hybridoma producing the antibody is a myeloma homologous to spleen cells of an animal immunized with a detection target as an immunogen according to the method of Kohler and Milstein (see Nature, 256: 495 (1975)). It can be produced by cell fusion with cells (myeloma cells).
  • a functional fragment of an antibody having an antigen-antibody reaction activity can be used in addition to the whole antibody molecule.
  • an antibody such as a chimeric specific binding substance, a humanized antibody, or a fully humanized antibody
  • Functional fragments of antibodies include F (ab ′) 2 , Fab ′ which are fragments having antigen-antibody reaction activity, and single-chain antibodies (scFv). Functional fragments of these antibodies can be produced by treating the antibody obtained as described above with a proteolytic enzyme (for example, pepsin or papain).
  • the antibody used in the measurement method for detecting a detection target by forming a so-called sandwich is a monoclonal antibody, an antibody for immobilizing a label (first antibody) and an antibody for immobilizing a porous membrane (second antibody)
  • first antibody an antibody for immobilizing a label
  • second antibody an antibody for immobilizing a porous membrane
  • the epitope of the first antibody is monovalent
  • the epitope of the second antibody is different from that of the first antibody
  • the epitope of the first antibody is polyvalent
  • the epitope of the antibody may be the same as or different from the first antibody.
  • a detection kit using the immunochromatographic test strip of the present invention is an immunochromatographic test strip including at least a porous membrane, a sample supply unit, a developing unit, and a detection unit in which an antibody is immobilized, wherein the detection unit is a porous membrane. What is necessary is just to include the test piece, wherein the test piece is fixed to the surface of the porous membrane and an opaque substrate is disposed on the back surface of the porous membrane.
  • This detection kit includes other reagents necessary for detection (for example, a detection reagent including a conjugate), a diluent of a sample, a test tube, a swab for collecting stool, an instruction manual, a housing for storing a test piece, and the like. May be.
  • a detection reagent including a conjugate for example, a detection reagent including a conjugate
  • a diluent of a sample for example, a test tube, a swab for collecting stool, an instruction manual,
  • Test for confirming effect of avoiding white spot phenomenon The effect of avoiding the white spot phenomenon when using the antibody-immobilized membrane lined with the white base material of the present invention is compared with the case where the conventional transparent base material is used for backing. did.
  • the solution was cooled in ice water to prepare a gold colloid solution having an average particle size of 60 nm.
  • the solution of the gold colloid having an average particle diameter of 60 nm was adjusted to 1 OD / mL in purified water by the absorbance at the maximum absorption wavelength of the gold colloid.
  • conjugate pad Anti-cTnI antibody conjugate 3 OD, KLH conjugate 0.75 OD, 0.5% LipidureBL-1301, 0.25 mg / ml Heteroblock, 2.4% lactose, 2.0% NPS , 20 mM MOPS (pH 7.2) and 1/6 amount of Conjugate Dilution Buffer with respect to the total amount to prepare a conjugate solution, and a fixed volume of a glass fiber pad (Merck Millipore) was used. .2 times the volume.
  • the conjugate pad was dried by heating at 70 ° C. for 45 minutes in a dry oven.
  • anti-cTnI monoclonal antibody immobilized membrane (10mM PB (0.09% NaN 3 containing containing 2.5% sucrose for making test line anti cTnI monoclonal antibody of the antibody immobilized membrane)) (pH 8.0) It was diluted to 3 mg / mL. Further, for the control line, it was diluted prepared to 1 mg / mL rabbit anti-KLH polyclonal antibody 10mM PB (0.09% NaN 3 containing) containing (Bethyl, Inc.) 2.5% sucrose (pH 7.2).
  • the above-mentioned anti-cTnI monoclonal antibody was applied to the inside of one end of the short side of the nitrocellulose membrane lined with a transparent or white base material shown in Table 1 at 1 ⁇ L / cm using a dispenser “XYZ3050” for immunochromatography (BIO DOT). , And the test solution was applied in a line to form a test line.
  • An anti-KLH polyclonal antibody was similarly applied at an interval of about 4 mm from the position of the test line to form a control line.
  • the membrane was dried at 70 ° C. for 45 minutes in a dry oven to obtain an antibody-immobilized membrane.
  • Sample Pad A 20 mM MOPS (pH 7.2) containing 0.5% lactose and 2% polybrene was adjusted to prepare a sample pad pretreatment solution. A glass fiber pad (Lydall) was appropriately cut to a necessary size, and a sample pad pretreatment solution was impregnated with 1.5 times the volume of the pad, and dried in a dry oven at 70 ° C. for 45 minutes. These were used as sample pads.
  • FIG. 4 shows a schematic configuration diagram of the immunochromatographic test piece. Further, the test piece may be stored and mounted in a dedicated plastic housing to form an immunochromatographic test detection device. 5 and 6 show a schematic top view and a schematic cross-sectional view of the immunochromatographic detection device (k). (N) shows the sample addition window, (o) shows the detection window, (L) and (m) show the housing, and (j) shows the immunochromatographic test piece.
  • Detection or measurement by immunochromatography method 120 ⁇ L of a plasma sample solution containing cardiac troponin I (cTnI) at any concentration in the range of 0 to 10 ng / mL is added to the sample pad window of the immunochromatography test detection device prepared above, After 15 minutes, the vicinity of the test line was visually observed, and the presence or absence of white spots was evaluated. Table 1 shows the results. ⁇ Evaluation criteria for white spots> Twelve or twenty samples were visually evaluated, and if even one white spot was recognized, white spots were determined to be “present”, and if zero spots were determined, white spots were determined to be “absent”.
  • Detection or measurement by immunochromatography method 120 ⁇ L of a plasma sample solution containing 40 or 60 pg / mL of cardiac troponin I (cTnI) is added to the sample pad window of the immunochromatography test device prepared above, and 15 minutes later, immunochromatography rapid pier (Sekisui The amount of coloration (absorbance) of the test line was measured using a medical company, and their CV values (variations) were calculated. CV is a coefficient of variation (Coefficient of Variation), which can be obtained by dividing a standard deviation by an average value. The results are shown in FIG.
  • Test Example 3 CV reduction effect confirmation test (low concentration side) A test was performed to determine whether the effect of reducing the variation of Test Example 2 was exhibited even when the concentration of the target substance was low.
  • Test Example 4 Confirmation test of CV reduction effect (high concentration side) A test was performed to determine whether the effect of reducing the variation of Test Example 2 was exhibited even when the concentration of the target substance was high.
  • An immunochromatographic test piece was produced in the same manner as in Test Example 1 except that the membrane (CN150) lined with a transparent substrate and the porous membrane (CN150) lined with a white substrate of the present invention were used. did.
  • An immunochromatographic test strip comprising at least a porous membrane of the present invention, a sample supply unit, a developing unit, and a detection unit having a specific binding substance immobilized thereon, wherein the detection unit is immobilized on the surface of the porous membrane. According to the test piece in which the opaque substrate is disposed on the back surface of the porous membrane, white spots near the test line can be avoided.

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Abstract

イムノクロマト試験片におけるいわゆる白抜け現象の発生を回避し、より視認性に優れた検出ができる試験片を提供することを課題とする。また、テストラインの検出値のばらつきを防止できるイムノクロマト試験片の提供も課題とする。 少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、特異的結合性物質が固定化された検出部を有するイムノクロマト試験片であって、検出部は多孔性メンブレンの表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏面に厚みが30μm以上200μm以下の不透明基材が配置されていることを特徴とする前記試験片により前記課題を解決する。

Description

イムノクロマト用試験片
 本発明はイムノクロマト用試験片および当該試験片を利用したイムノクロマト検出方法に関する。
 患者のそばで処置するというPOCT(ポイントオブケア)の普及に伴い、抗原抗体反応を利用した簡易な免疫測定として、ニトロセルロースメンブレン等の試験片を用いたラテラルフロー式のイムノクロマト検出法が広く普及している。
 イムノクロマトグラフィー用の試験片(以下単にイムノクロマト試験片ということがある)は、一般に、サンプル供給部、展開部、検出部とを備えた多孔性体からなるメンブレンであって、検出対象物に対する標識抗体が、検体(サンプル)との接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに検出用の抗体が展開部の一部に固定化され検出部を構成する構造となっている。
 ここで、検体がサンプル供給部に滴下されると、検体中に検出対象物が含まれていた場合、検出対象物が標識抗体と特異的に結合して複合体を形成し、該複合体は、展開部を下流方向に向かって展開して行き、検出部で検出用の固定化抗体に結合する。したがって、検出部において、標識抗体、検出対象物及び固定化抗体によるサンドイッチ型複合体を検出することで、検出対象物を定性または定量分析することが可能である。
 上記構成のイムノクロマト試験片の検出部において、被検出物質とコンジュゲートとの複合体を検出する方法として、標識体に由来する反射光の強度を測定して吸光度(反射吸光度)を算出する方法がある。反射吸光度は、例えば、検出部における被検出物質の検出ラインとその近傍の2部位の反射光強度を測定し、その比を用いて算出するが、該方法を使用する際、上記複合体が検出される検出部の上流側又は下流側付近の反射光強度が非特異的に上昇して測定波形に乱れがみられることがある。この場合、被検出物質が低濃度の場合は、測定波形の乱れを無視してベースラインを引くことができないため、特異的シグナル(ピーク)を正確に検出することができず、測定自体が不可能となることがある。
 このような測定波形の乱れの発生頻度と測定波形の乱れの程度は一定ではないため、測定の再現性が低下したり、測定の都度適切な測定値への補正を行うこと(いいかえれば測定波形の確認)が必要であった。
 白色のメンブレンを用いる通常のイムノクロマト検出法において、前記測定波形の乱れは、メンブレンにおける該当部位の色がその周辺の色よりも相対的に白く、色が抜けているように見える現象(いわゆる、白抜け現象、以下単に白抜けということがある)として目視でも観察されるため、標識体に由来する呈色を目視判定する際にも妨げとなり、判定結果の正確さを欠く原因となっていた。
 このような白抜けが発生する原因は定かではないが、試験片の製造ロット間の違い、試験片の保管状態の違い、試験片の前処理条件などの製造条件の違いなどが予想される。
 このような白抜け現象を解消するための方法として以下の文献が知られている。
 特許文献1は、イムノクロマト試験片を長期間保管した場合に観察されることの多い白抜けを防止するためにメタノールを添加したサンプル希釈液を用いたアッセイが開示されている。
 特許文献2には、イムノクロマト試験片の抗体固定化メンブレンをnーオクチルーβーDーグルコシドなどの特定の界面活性剤で処理することで白抜けや測定波形の乱れを防止する方法が開示されている。
国際公開WO2015/080286パンフレット 国際公開WO2010/001598パンフレット
 本発明の課題は、上記先行技術とは全く別のアプローチによりイムノクロマト試験片におけるいわゆる白抜け現象の発生を回避し、より視認性に優れた検出ができる試験片を提供することを課題とする。本発明は、また、テストラインの検出値のばらつきを防止できるイムノクロマト試験片の提供も課題とする。
 本発明者らは、上記課題を解決するためにイムノクロマト試験片の様々な要素の変更を試みたところ、驚くべきことに、多孔性メンブレンを含むイムノクロマト試験片において、抗体などの特異的結合性物質を表面に固定化した多孔性メンブレンの裏面に不透明基材を設けることによって、テストライン付近の白抜けが回避でき、また、検出値のばらつきを防止できることを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は以下の構成を有する。
(1)少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部とを有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレンの表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏面に不透明基材が配置されていることを特徴とする前記試験片。
(2)前記不透明基材が白色基材である(1)に記載のイムノクロマト試験片。
(3)前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である(1)又は(2)に記載のイムノクロマト試験片。
(4)前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている(1)~(3)のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
(5)前記サンプル供給部を担うサンプルパッド、及び金コロイド又は着色ラテックスで標識された特異的結合性物質を含むコンジュゲートパッドをさらに含む(1)~(4)のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
(6)特異的結合性物質が抗体である(1)~(5)のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
(7)光学的手段で検出するための試験片である、(1)~(6)のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
(8)(1)~(7)のいずれかに記載のイムノクロマト試験片を含むイムノクロマト検出キット。
(9)イムノクロマト検出方法であって、以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
少なくとも検出部を有する多孔性メンブレンを含み、前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されているイムノクロマト試験片。
(10)不透明基材が白色基材である(9)に記載のイムノクロマト検出方法。
(11)前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である(9)又は(10)に記載のイムノクロマト検出方法。
(12)前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている(9)~(11)のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
(13)前記試験片は、前記サンプル供給部を担うサンプルパッド、及び金コロイド又は着色ラテックスで標識された特異的結合性物質を含むコンジュゲートパッドをさらに含む(9)~(12)のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
(14)特異的結合性物質が抗体である(9)~(13)のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
(15)光学的手段により標識物質に由来する光学的パラメータを検出する工程を含む、(9)~(14)のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
(16)目視観察により標識物質に由来する呈色を判定する工程を含む、(9)~(15)のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
(17)イムノクロマト検出方法における測定値のばらつきを低減する方法であって、
以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部を有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレン表面に固定化されており、
前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されている試験片。
(18)不透明基材が白色基材である(17)に記載のばらつきを低減する方法。
(19)前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である(17)又は(18)に記載のばらつきを低減する方法。
(20)前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている(17)~(19)のいずれかに記載のばらつきを低減する方法。
(21)試験片を用いたイムノクロマト検出方法における、試験片の白抜けを低減する方法であって、以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部を有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレン表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されている試験片。
(22)不透明基材が白色基材である(21)に記載の試験片の白抜けを低減する方法。
(23)前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である(21)又は(22)に記載の試験片の白抜けを低減する方法。
(24)前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている(21)~(23)のいずれかに記載の試験片の白抜けを低減する方法。
 本発明によれば、テストライン付近の白抜けが回避できることから目視による検出時の視認性に優れ、また、光学的手段による測定値のばらつきの少ないイムノクロマト試験片を提供することができる。
裏打ち部材を透明基材(比較例)と白色基材(本発明)にした多孔性メンブレンを用いたイムノクロマト試験片によりイムノクロマト測定を行った場合の測定値のバラツキを示すグラフである。(試験例2、被検出物質が中濃度側) 裏打ち部材を透明基材(比較例)と白色基材(本発明)にした多孔性メンブレンを用いたイムノクロマト試験片によりイムノクロマト測定を行った場合の測定値のバラツキを示すグラフである。(試験例3、被検出物質が低濃度側) 裏打ち部材を透明基材(比較例)と白色基材(本発明)にした多孔性メンブレンを用いたイムノクロマト試験片によりイムノクロマト測定を行った場合の測定値のバラツキを示すグラフである。(試験例4、被検出物質が高濃度側) 本発明のイムノクロマト試験片を示す斜視図である。Aはイムノクロマト試験片全体であり、Bは多孔性メンブレンを示す。 本発明のイムノクロマト検出デバイスの上面図である。 図5で示されたデバイスを点線に沿って切断した場合の切断面を示す。
(イムノクロマト試験片)
  本発明のイムノクロマト試験片は、少なくとも「サンプル供給部」、「展開部」、「検出部」とを備えた多孔性のメンブレンを含み、検出対象物に結合する標識された特異的結合性物質が、検体との接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに検出用の特異的結合性物質が展開部の一部に固定化され検出部を構成している。
  これらを具現化する一例として、サンプル供給部を担うサンプルパッド、検出対象物に結合する標識された特異的結合性物質が溶出可能に保持され、展開部の一部を担うコンジュゲートパッド、検出用の特異的結合性物質が一部に固定化され、展開部および検出部を担う多孔性のメンブレンを含む試験片が挙げられる。すなわち、本発明の典型的なイムノクロマトグラフィー用試験片は以下の構成を有する。
(1)検体が供給されるサンプルパッド
(2)サンプルパッドの下流に配置され、金コロイド表面に第一の特異的結合性物質が感作されたコンジュゲートが溶出可能に保持されたコンジュゲートパッド
(3)コンジュゲートパッドの下流に配置され、コンジュゲートと検出対象物との複合体と結合する第二の特異的結合性物質が固定化された検出部を表面に有する多孔性のメンブレンであって、裏側には、不透明基材が配置されている前記多孔性メンブレン
 ここで、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、多孔性のメンブレンはそれぞれが別々の担体を構成する場合、あるいは2つが1つの担体を構成する場合もあり、上流から下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、多孔性のメンブレンの順序で構成されるものであればいずれの態様も含まれる。
  イムノクロマト試験片は、上記構成のほかに、吸収パッド、3rdパッドのいずれか一以上をさらに配置装着されたものも含む。
 該試験片は、通常、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上(以下、バッキングシートということがある)に配列させる。
 また、特異的結合性物質が固定化された多孔性のメンブレンの機械的強度を上げ、かつアッセイ中の水分の蒸発(乾燥)を防ぐ目的でポリエステルフィルムなどを試験片にラミネート加工することもある。
 本発明のイムノクロマト試験片を用いた検出方法は、以下のように行われる。
 検体がサンプル供給部に滴下されると、検体中に検出対象物が含まれていた場合、検出対象物は、標識された特異的結合性物質と特異的に結合して複合体を形成する。該複合体は、展開部を下流方向に向かって展開し、検出部に固定化された特異的結合性物質と結合する。検出部では、標識された特異的結合性物質、検出対象物及び固定化された特異的結合性物質によるサンドイッチ型複合体が形成されるため、これを検出することで、検出対象物を定性または定量分析することが可能である。検出は、目視観察による呈色の判定のほか、標識体に由来する光学的パラメーターを光学的手段により検出する方法が挙げられる。光学的手段を使う場合は、手動のほか、自動化もでき、また連続測定もできる。
(サンプルパッド)
 本発明において、「サンプルパッド」とは、サンプルを受け入れるサンプル供給部を担う部位であり、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物の成分とが通り抜けることができる物質及び形態であればいずれのものをも含む。
 本発明のサンプルパッドには、透水性の改善のために前処理をすることができる。
 また、全血を測定する場合には、赤血球凝集剤を含ませておくこともできる。この場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全体に含ませておくこともできる。
 サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。該サンプルパッドには、後述するコンジュゲートパッドの機能を併せ持たせることも出来る。また、サンプルパッドには、本発明の目的を逸脱せず、反応系に影響のない範囲において、必要に応じ通常使用されるブロッキング試薬を含ませることもできる。
(コンジュゲート)
  本発明においてコンジュゲートとは、標識体に、検出対象物に結合する特異的結合性物質又はコントロール用物質が固定化されたものをいう。
 本発明に用いる標識体は、抗体などの特異的結合性物質を感作(固定化)させてコンジュゲートを構成することができ、サンプルと接触させてサンプル中の対象物(抗原など)を検出する方法において標識体としての役割を担うことができるようなものであればいずれでもよく、金コロイド粒子、白金コロイド粒子、カラーラテックス粒子、磁性粒子などが挙げられ、このうちでも金コロイドや着色ラテックスが望ましく、金コロイドがよりいっそう望ましい。これらの粒子径は、それぞれの種類に応じて、測定対象物の所望の検出感度が得られるように調整すればよく、例えば、金コロイド粒子の粒径は、20~100nmが好ましく、より好ましくは30~100nmであり、特に60nmが好ましい。
  本発明のコンジュゲートは、金コロイド等の表面において特異的結合性物質が結合していない領域をブロッキング剤によりブロッキングすることもできる。
 コンジュゲートの存在様式としては、コンジュゲートパッドとして存在する様式、すなわち、サンプルパッド、サードパッド、多孔性メンブレン以外の専用のパッド(コンジュゲートパッド)に含浸された状態で存在してもよいし(タイプA)、サンプルパッドの一部にコンジュゲート部として存在してもよい(タイプB)。さらには、試験片とは別に、検体と混合されるように個別のコンジュゲート試薬として存在してもよい(タイプC)。
  以下、コンジュゲートの存在様式が上記タイプAの試験片の典型例について説明する。
  サンプルの流れ方向の上流より下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、サードパッド、多孔性メンブレンの順で配置され、それぞれ上下の層と少なくとも一部が重複するように配置される。このような配置例の試験片を図4に示す。
  このような試験片のサンプルパッドに、検出対象物を含有するサンプルが供給されると、検出対象物はサンプルパッドを通過して下流側のコンジュゲートパッドへと流れる。コンジュゲートパッドでは、検出対象物とコンジュゲートが接触して複合体を形成しながら当該パッドを通過する。その後、複合体はコンジュゲートパッドの下面に接触して配置されたサードパッドを通過し、多孔性メンブレンへと展開される。
  多孔性メンブレンには、その一部に検出対象物に結合する特異的結合性物質が固定化されているため、該複合体がここで結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、標識物質に由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
  次に、コンジュゲートの存在様式がタイプBの試験片について説明する。
  上記タイプAの試験片との違いは、サンプルパッドとコンジュゲートパッドが一体になった点であり、つまり、サンプルパッドの一部にサンプル供給部およびコンジュゲート部が構成されている点である。
  上記サンプル供給部は、検出対象物を含有するサンプルを供給する部位であり、上記コンジュゲート部は、コンジュゲートを含有する部位であり、サンプル供給部がコンジュゲート部の上流側となる。
  次に、コンジュゲートの存在様式がタイプCの試験片について説明する。
  上記タイプAの試験片との違いは、コンジュゲートパッドが試験片として存在せず、コンジュゲートは個別のコンジュゲート試薬として存在する点である。例えば、フィルター中にコンジュゲートが内蔵されたフィルターチップが挙げられる。このようなフィルターチップを使って、検体をフィルターろ過させることでフィルター内に保持されたコンジュゲートと検出対象物が結合し、複合体(凝集体)を形成する。これを、コンジュゲートパッドを有さないこと以外はタイプAと同一の前記試験片に供給することで、検出対象物を検出することができる。
(検出試薬)
  本発明において、「検出試薬」とは具体的には少なくともコンジュゲートを含有する溶液である。
  検出試薬は、コンジュゲートを安定な状態に保ち、サンプルと混合されたときにコンジュゲートに固定化された抗体などの特異的結合性物質が検出対象物と特異的に反応するのを促進する、あるいはコンジュゲートを迅速かつ効果的に溶解、流動化する目的で、例えば1種類以上の安定化剤、溶解補助剤等を含み得る。該安定化剤、溶解補助剤等としては、例えばウシ血清アルブミン(BSA)、スクロース、カゼイン、アミノ酸類などをあげることができる。
  また、検出試薬は、検出感度の向上を目的とし必要に応じて公知の増感剤やキレート剤であるEDTAやEGTAなども含み得る。
  なお、本明細書において、「検出」又は「測定」という用語は、検出対象の存在の証明及び/又は定量などを含めて最も広義に解釈する必要があり、いかなる意味においても限定的に解釈してはならない。
(サンプル希釈液)
  本発明において、検体中の検出対象物の濃度に応じて、検体の希釈が必要な場合は、希釈液を用いることがある。希釈液は、検出対象物と特異的結合性物質との反応を著しく阻害したり、または反対に著しく反応を促進して標識体が過凝集するために毛細管現象における展開不良を起こしたり、検出対象物の濃度に応じた検出対象物と特異的結合性物質との反応のシグナル検出が可能な範囲で、いずれの組成の希釈液を用いても良い。
(コンジュゲートパッド)
  本発明において、「コンジュゲートパッド」とは、検出対象物と特異的に反応する検出試薬を後述のコンジュゲートパッドに適した材料に含浸させて乾燥させたものである。コンジュゲートパッドは、サンプルが該コンジュゲートパッドを通過する際、検出試薬と検出対象物とが複合体を形成する機能を有する。該コンジュゲートパッドは、それ単独で特異的結合性物質が固定化された多孔性メンブレンに接するように配置されていてもよい。あるいは、前記サンプルパッドと接触して配置され、毛細管流によってサンプルパッドを通過した検体を受入れ、引き続き該検体を毛細管流によって前記サンプルパッドとの接触面とは異なる面で接触する3rd Padに移送するように配置してもよい。
 該コンジュゲートパッドに適した材料として、紙、セルロース混合物、ニトロセルロース、ポリエステル、アクリロニトリルコポリマー、ガラス繊維またはレーヨンのような不織繊維が挙げられるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。
 該コンジュゲートパッドには、必要に応じて、イムノクロマト検出法の信頼性を担保するための「コントロール試薬」、例えば、標識体で標識された検体成分とは反応しない抗体や標識体で標識されたKLH(スカシ貝ヘモシアニン)などの高抗原性タンパク質などを含み得る。これらのコントロール試薬は、サンプル中に存在する可能性が考えられない成分(物質)であり、適宜に選択可能である。
(3rd Pad)
  本発明において、3rd Padとは、検体と検出試薬との反応成分のうち、検出対象物の検出に不要な成分を除去し、反応に必要な成分が、特異的結合性物質が固定化された多孔性メンブレンをスムーズに展開できるようにすることを目的としてサンプルパッドと多孔性メンブレンの間に配置させることができる。例えば、血球や不溶性の血球破砕物などは、検出に不要な成分として除去されることが望ましい。また、この3rd  Padには、測定対象物と特異的結合性物質との反応により生成する凝集体のうち、特異的結合性物質が固定化されたメンブレンに移動し、スムーズに展開できない位に大きくなった凝集体をあらかじめ除去するという付加的な効果を併せ持たせることも可能である。
 3rd Padとしては、液体と検出対象の成分、および検出試薬とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。3rd Padは、血球を分離する目的で使用される場合は、血球分離膜と呼ばれることもある。本発明において、全血を検体とする場合は、サンプルパッドのみでは除去しきれなかった血球をより確実に分離除去するため、血球分離膜を用いることが望ましい。
(赤血球凝集剤)
  本発明において、全血を検体とする場合は、上記3rd Padの使用以外に、赤血球凝集剤や赤血球結合成分を併用することが望ましい。併用する赤血球凝集剤や赤血球結合成分は特に限定されないが、公知の例示としてレクチン、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体の他に、ポリカチオン性の赤血球凝集剤が使用できる。公知のポリカチオン性の赤血球凝集剤としてはポリブレンやポリリジン、ポリアクリルアミン、ポリアラニンなどが例示できるが、なかでもポリブレンが好ましい。ポリブレンは、その化学名を臭化ヘキサジメトリンといい、CAS番号28728-55-4が付与されたカチオン性ポリマーの1種である。
 赤血球凝集剤や赤血球結合成分の使用態様としては、検体を希釈する希釈液に添加したり、検体に直接添加する態様のほか、イムノクロマト試験片のサンプル供給部(サンプルパッド)に含ませておくことができる。このような使用態様により、全血中の赤血球が凝集される。
(多孔性メンブレン)
 本発明のイムノクロマト試験片に用いられる多孔性メンブレンは、その表面に検出用の特異的結合性物質が固定化されており、裏面には、不透明な基材が配置されていることを特徴とする。
 多孔性メンブレンの裏面に配置される本発明の不透明な基材は、メンブレンが多孔性であるため、メンブレンの裏打ちのために配置される部材であり、不透水性のフィルムなどが用いられる。このような本発明の不透明な基材は、いわゆる「裏打ち部材」と呼ばれることもある。当該基材は多孔性メンブレンの裏面に貼り合わせることによって裏打ちするか、あるいは、あらかじめ不透水性のフィルム上面に多孔性メンブレンを積層させることにより形成することができる。 
 本発明の不透明基材は、多孔性メンブレンの裏側に配置されていればよく、接着剤層を介して接してもよいし、接着性が担保されれば接着剤層を介さずに接していてもよい。なお、後述するバッキングシートを設ける場合は、本発明の不透明基材(裏打ち部材)の下側に配置する。
 本発明は、この多孔性メンブレンの裏面の基材を、従来透明であったところ、不透明な基材にすることによって、メンブレンの該当部位の色がその周辺の色よりも白く、色が抜けているように見えるいわゆる「白抜け現象」(以下、単に白抜けということがある)を回避することができた。
 上記の本発明の不透明な基材の厚み(接着剤層等を含まない)は、多孔性メンブレンの裏打ち部材としての機能を発揮できればよく、30μm以上200μm以下が好ましく、60μm以上140μm以下がよりいっそう好ましく、80μm以上120μm以下がもっとも好ましい。
 不透明とは、透明ではないこと、向こう側が透けて見えないことを言い、完全な不透明までは要求しないが、より好ましくは完全な不透明である。
 不透明な基材としては、多孔性メンブレンと同系色の基材がよく、多孔性メンブレンが白色の場合は、本発明の基材も白色に近いクリーム色やグレーなどが望ましく、そのうちでも白色が最も好ましい。
 不透明な基材としては、不透水性で不透明な基材であればいずれでもよく、任意の材質のものが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ポリエステル、ナイロン類等が挙げられる。
 また、多孔性メンブレンの裏面に本発明の不透明基材を設けることでテストラインにおける測定値のばらつきも抑えることができた。この理由は定かではないが、メンブレン表面と裏面の色合いが一致することで、表面成分(ニトロセルロース)の外観的な不均一性の減少及びメンブレンの下層に配置されるバッキングシートの光学的手段による反射光の影響が回避されることなどにより同時再現性が向上すると推測される。
 多孔性メンブレン(以下、単にメンブレンと記載することがある)としては、任意の材質のものが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類あるいはセラミックス等などの多孔性のメンブレンが挙げられるがこれらに限定されない。具体的には、メルクミリポア社、東洋濾紙社、GEヘルスケア社などより販売されているガラス繊維ろ紙やニトロセルロースメンブレンなどをあげることができる。また、この多孔性メンブレンの孔径と構造を適宜選択することにより、標識された特異的結合性物質と検出対象物との免疫複合体がメンブレン中を流れる速度を制御することが可能である。メンブレン中を流れる速度の制御により、メンブレンに固定化された上記特異的結合性物質に結合する標識された特異的結合性物質量を調節することができるため、メンブレンの孔径と構造は、本発明のイムノクロマト試験片のほかの構成材料との組み合わせを考慮して最適化することが望ましい。
(特異的結合性物質の多孔性メンブレンへの固定化)
  本発明の検出対象物に対する抗体などの特異的結合性物質の多孔性メンブレンへの固定化は、一般に周知の方法で実施することができる。例えば、フロースルー式の場合、上記の特異的結合性物質を所定の濃度に調整し、その液を一定量、点あるいは+など特定のシンボル状に、多孔性メンブレンに塗布する。またこの際、イムノクロマト検出法の信頼性を担保するため、コンジュゲートと結合できるタンパク質あるいは化合物を、検出対象物に結合する特異的結合性物質とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることが一般的である。また、前記のコントロール試薬に結合する特異的結合性物質を検出対象物に結合する特異的結合性物質とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることもできる。
  ラテラルフロー式の場合には、上記の特異的結合性物質を所定の濃度に調整しその液をノズルから一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、ライン状に多孔性メンブレンに塗布することにより行われる。この際、特異的結合性物質の濃度は0.1~5mg/mLが好ましく、0.5~3mg/mLがさらに好適である。また、特異的結合性物質の多孔性メンブレンへの固定化量は、フロースルー式の場合には多孔性メンブレンに滴下する塗付量を調節することによって最適化でき、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化できる。特に、ラテラルフロー式の場合、0.5~2μL/cmが好適である。
 なお、本発明において、「フロースルー式メンブレンアッセイ」という場合は、検体液等が多孔性メンブレンに対して垂直に通過するように展開する方式を指し、「ラテラルフロー式メンブレンアッセイ」という場合は、検体液等が多孔性メンブレンに対して並行方向に移動するように展開する方式を指す。
 また、本発明において、対象物に結合特異的結合性物質の多孔性メンブレンへの塗付位置については、ラテラルフロー式の場合、コンジュゲートパッドから、上記検出試薬が毛細管現象によって展開し、それぞれの特異的結合性物質が塗付されたラインを順に通過するように配置されれば良い。好ましくは検出対象物に結合する特異的結合性物質の塗付されたラインが上流にあり、コントロール特異的結合性物質の塗付されたラインはその下流に位置するように配置するのが好ましい。この際、それぞれのライン間の距離は標識体のシグナル検出が可能であるように十分の距離をとることが望ましい。フロースルー式の場合にも、対象物に結合する特異的結合性物質の塗付位置は標識体のシグナル検出が可能であるように配置されていれば良い。
 上記の多孔性メンブレンへ塗付する特異的結合性物質液は、通常所定の緩衝液を用いて調製することができる。その緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、Tris緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液を挙げることができる。緩衝液のpHは、6.0~9.5の範囲が好ましく、使用する特異的結合性物質の性質に応じ適宜設定すれば良い。
例えば、後述の抗cTnI抗体ではpH8.0の緩衝液が使用できる。緩衝液には、さらにNaClなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリンなどの防腐剤等を含んでもよい。塩類はNaClなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のpHを調整する工程で添加するようになるものも含まれる。多孔性メンブレンに特異的結合性物質を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして特異的結合性物質固定化部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。本明細書では、上記のように特異的結合性物質が固定化された多孔性メンブレンを「特異的結合性物質固定化メンブレン」ということがある。
(吸収パッド)
  本発明において、吸収パッドとは、多孔性メンブレンを移動・通過した検体を吸収することにより、検体の展開を制御する液体吸収性を有する部位である。ラテラルフロー式においては、試験片の最下流に設ければよく、フロースルー式においては、例えば特異的結合性物質固定化メンブレンの下部に設ければよい。該吸収パッドとしては、例えば、ろ紙を用いることができるが、これに限定されない。
(バッキングシート)
 本発明において、バッキングシートとは、試験片を支持するための固相であり、プラスチック製のシートに粘着材が付着したものが通常用いられる。バッキングシートの材質としては、ポリスチレン、ポリエステル、ポリプロピレン、塩化ビニルなどが挙げられるがこれに限定されない。バッキングシートの色は特に問わないが、メンブレンと同色であることが好ましく、メンブレンが白色である場合は、バッキングシートも白色であることが望ましい。
 上記の本発明のバッキングシートの厚み(粘着剤層等を含まない)は、試験片の支持部材としての機能を発揮できればよく、10μm以上600μm以下が好ましく、150μm以上350μm以下がよりいっそう好ましく、200μmより大きく320μm以下がもっとも好ましい。
(トップフィルム)
 本発明において、トップフィルムとは、試験片の最上面を被覆するシート状部材のことをいい、特異的結合性物質が固定化された多孔性のメンブレンの機械的強度を上げたり、アッセイ中の水分の蒸発(乾燥)を防ぐ目的で用いられる。トップフィルムの材質としては、前記目的が達成できる材質であればいずれでもよく、ポリエステルなどが挙げられ、粘着材により試験片上に被覆することもできるし、ラミネート加工することもできる。本発明において、トップフィルムを試験片に被覆することで強まる白抜け現象が、メンブレンの裏打ち部材を不透明にすることで当該現象を弱めることができることが判明した。したがって、トップフィルムを設けた試験片では本発明の効果がより顕著なものとなる。
 上記の本発明のトップフィルムの厚み(粘着剤層等を含まない)は、メンブレンを保護し、アッセイ中の水分の蒸発が防ぐ機能を発揮できればよく、10μm以上150μm以下が好ましく、20μm以上80μm以下がよりいっそう好ましい。
(検出デバイス)
  本発明のイムノクロマト用試験片は、試験片の大きさや、検体の添加方法・位置、特異的結合性物質固定化メンブレンにおける特異的結合性物質の固定化位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器(ハウジング)に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。図5、図6に、本発明のデバイスの一例を上面図と断面図で示した。
(その他)
  本明細書において、「多孔性メンブレン」を「固相」、抗原や抗体などの特異的結合性物質を多孔性メンブレンに物理的あるいは化学的に担持させることあるいは担持させた状態を「固定」、「固定化」、「固相化」、「感作」、「吸着」と表現することがある。
(検体)
 本発明の検出方法において検出対象物を含む「検体」とは、血液、尿、痰、唾液、鼻汁、鼻腔拭い液、咽頭拭い液、その他の体液、糞便等の生体試料等をいう。生体試料は、そのまま検体として用いてもよく、適宜希釈液によって希釈したり、抽出および/または濾過したものも本発明の検体に含まれる。血液検体は、全血のほか、赤血球、血漿、血清等が挙げられる。
  また、血液検体には、採血時にEDTAやヘパリンなどの抗凝固剤を添加した採血管により採血した検体も含まれる。
(検出対象物)
  本発明の検出対象物としては、血液(全血)、赤血球、血清、血漿、尿、唾液又は喀痰などの生物検体中に存在する物質で、例えば、CRP(C反応性タンパク)、IgA、IgG、IgMなどの炎症関係マーカー、フィブリン分解産物(例えばDダイマー)、可溶性フィブリン、TAT(トロンビン-アンチトロンビン複合体)、PIC(プラスミン-プラスミンインヒビター複合体)などの凝固・線溶マーカー、酸化LDL、BNP(脳性ナトリウム利尿ペプチド)、H-FABP(心臓型脂肪酸結合タンパク)、心筋トロポニンI(cTnI)などの循環関連マーカー、アディポネクチンなどの代謝関連マーカー、CEA(癌胎児性抗原)、AFP(α-フェトプロテイン)、CA19-9、CA125、PSA(前立腺特異抗原)などの腫瘍マーカー、HBV(B型肝炎ウイルス)、HCV(C型肝炎ウイルス)、クラミジアトラコマティス、淋菌などの感染症関連マーカー、アレルゲン特異IgE(免疫グロブリンE)、ホルモン、薬物などが例示される。これらの中でも、検体として全血を使用したいとする要望が高い、Dダイマー、CRP、BNP、H-FABP、cTnIなどがより好ましい。
(特異的結性合物質)
 本発明において、金コロイドなどの不溶性担体粒子や多孔性メンブレンに担持される測定対象物質に対する特異的結合性物質としては、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、脂質、糖質、DNA、RNA、受容体、ハプテンなどが挙げられ、分子量の高低および天然、合成といった由来に特に制限はないが、例えば、免疫反応を利用する免疫学的測定法に使用され得る抗体または抗原が挙げられる。
(本発明で用いられる抗体)
  本発明に用いられる検出対象物に対する抗体は、検出対象物に対して特異的に反応する抗体であれば、作製する方法によって何ら限定されるものではなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。より好ましくは、モノクローナル抗体である。一般的に当該抗体を産生するハイブリドーマは、KohlerとMilsteinの方法(Nature、第256巻495頁(1975年)参照)に準じ、検出対象物を免疫原として免疫した動物の脾臓細胞と同種のミエローマ細胞(骨髄腫細胞)とを細胞融合して作製することができる。
 本発明の抗体としては、抗体分子全体のほかに抗原抗体反応活性を有する抗体の機能性断片を使用することも可能である。一般的な動物(マウス、ヤギ、ヒツジなど)への免疫工程を経て得られたもののほか、遺伝子組み換え技術等により免疫原(測定対象物質)を免疫する動物とは異なる動物種のアミノ酸配列に変化させた抗体(キメラ特異的結合性物質、ヒト化抗体、又は完全ヒト化抗体等)であってもよい。抗体の機能性断片としては抗原抗体反応活性を有する断片であるF(ab')2、Fab'や一本鎖抗体(scFv)などが挙げられる。これらの抗体の機能性断片は前記のようにして得られた抗体をタンパク質分解酵素(例えば、ペプシンやパパインなど)で処理することにより製造できる。 
  ここで、いわゆるサンドイッチの形成により検出対象物を検出する測定法において用いられる抗体がモノクローナル抗体の場合、標識体固定化用抗体(第一の抗体)と多孔性メンブレン固定化用抗体(第二の抗体)の関係は、第一の抗体のエピトープが一価の場合は第二の抗体のエピトープは第一の抗体と異なるものが用いられ、第一の抗体のエピトープが多価の場合は第二の抗体のエピトープは第一の抗体と同じであってもよいし、異なるものであってもよい。
(キット)
  本発明のイムノクロマト試験片を利用した検出キットは、少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、抗体が固定化された検出部を有するイムノクロマト試験片であって、検出部は多孔性メンブレンの表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏面に不透明基材が配置されていることを特徴とする前記試験片を含むものであればよい。
 本検出キットは、他に検出に必要な試薬(例えばコンジュゲートを含む検出試薬)、検体の希釈液、試験用チューブ、便採取用の綿棒、取扱い説明書、試験片格納用のハウジングなどを含んでもよい。
 以下、本発明の具体的な実施例を記載するが例示にすぎず本発明はこれらに限定されるものではない。
〔試験例1〕白抜け現象回避効果の確認試験
 本発明の白色基材で裏打ちされた抗体固定化メンブレンを用いた場合の白抜け現象回避効果を従来の透明基材で裏打ちされた場合と比較した。
1.本発明のイムノクロマト検出デバイスの作製
1)金コロイド標識抗cTnIモノクローナル抗体(抗cTnI抗体コンジュゲート)の調製
(i)金コロイド溶液の調製(60nm)
 93℃に加温した5000mLの精製水に対し、7%(w/v)クエン酸三アンモニウム水溶液を10mL添加して攪拌混合した。続いて、5%(w/v)テトラクロロ金(III)酸水溶液を10mL添加し、攪拌しながら10分間反応させた後、反応液を沸騰させた。この後、氷水中で冷却し、平均粒子径が60nmの金コロイドの溶液を調製した。
 この平均粒子径が60nmの金コロイドの溶液を、精製水にて、金コロイドの極大吸収波長での吸光度で1 OD/mLに調整した。
(ii)抗cTnI抗体コンジュゲートの調製
 上記1 OD/mLの60nm金コロイド溶液(pH8.0)200mLに対し、2mM Tris-塩酸緩衝液(pH7.0)で69.3μg/mL希釈した抗cTnIモノクローナル抗体を10mL添加し、室温で10分間撹拌した。当該金コロイドと抗体との混合液に対し、0.5%(w/v)のNeo Protein Saver(東洋紡社、No.NPS-301)を含む精製水を10mL添加し、室温で5分間攪拌した。その後、10℃にて、11900×gで45分間遠心した。上清を除去した後、得られた沈渣に、0.2%(w/v)のNeo Protein Saver水溶液を10mL添加してコンジュゲートを懸濁し、抗cTnI抗体コンジュゲートを得た。
(iii)金コロイド溶液の調製(40nm)
 73℃に加温した5000mLの精製水に対し、5%(w/v)クエン酸三アンモニウム水溶液を10mL添加して攪拌混合した。続いて、5%(w/v)テトラクロロ金(III)酸水溶液を10mL添加し、攪拌しながら10分間反応させた後、反応液を沸騰させた。この後、氷水中で冷却し、平均粒子径が40nmの金コロイドの溶液を調製した。
 この平均粒子径が40nmの金コロイドの溶液を、精製水にて、金コロイドの極大吸収波長での吸光度で1 OD/mLに調整した。
(iv)コントロールライン用金コロイド標識KLH(KLHコンジュゲート)の調製
 上記1 OD/mLの40nm金コロイド溶液(pH6.1)200mLに対し、2mM リン酸緩衝液(pH6.1)で375μg/mLとなるよう溶解したKLH(シグマ社製)を2.67mL添加し、室温で10分間撹拌した。当該金コロイドとKLHとの混合液に対し、10%ウシ血清アルブミン(BSA)水溶液を20mL添加し、室温で5分間攪拌した。その後、10℃にて、45分間遠心し、上清を除去した後、得られた沈渣に、Conjugate Dilution Buffer(Scripps社)を10.7mL添加してコンジュゲートを懸濁し、KLHコンジュゲートを得た。
2)コンジュゲートパッドの作製
 抗cTnI抗体コンジュゲート3 OD、KLHコンジュゲートを0.75 OD、0.5% LipidureBL-1301、0.25mg/ml Heteroblock、2.4% ラクトース、2.0% NPS、20mM MOPS(pH7.2)、全量に対し6分の1量のConjugate Dilution Bufferを混合してコンジュゲート溶液を作製し、一定体積のグラスファイバー製パッド(メルクミリポア社)に該パッド体積の1.2倍容量滲みこませた。ドライオーブン内で70℃、45分間加温することにより乾燥させ、コンジュゲートパッドとした。
3)抗cTnIモノクローナル抗体固定化メンブレン(抗体固定化メンブレン)の作製
 テストライン用に抗cTnIモノクローナル抗体を2.5%スクロースを含む10mM PB(0.09%NaN入り)(pH8.0)で3mg/mLに希釈調製した。 
 また、コントロールライン用に、ウサギ抗KLHポリクローナル抗体(Bethyl社製)を2.5%スクロースを含む10mM PB(0.09%NaN入り)(pH7.2)で1mg/mLに希釈調製した。
 表1に示す透明あるいは白色の基材で裏打ちされたニトロセルロースメンブレンの短辺の一端の内側の位置に上記抗cTnIモノクローナル抗体をイムノクロマト用ディスペンサー「XYZ3050」(BIO DOT社)を用いて1μL/cmとなるよう設定し、ライン状に塗布し、テストラインを形成した。テストラインの位置から約4mmの間隔をあけて抗KLHポリクローナル抗体を同様に塗布し、コントロールラインを形成した。ドライオーブン内で70℃、45分乾燥し、抗体固定化メンブレンとした。
4)サンプルパッドの作製
 0.5%ラクトース、2%ポリブレン、を含む20mM MOPS(pH7.2)を調整し、サンプルパッド前処理溶液とした。
 グラスファイバー製パッド(Lydall社)を適宜必要な大きさにカットして、サンプルパッド前処理溶液を該パッド体積の1.5倍容量浸み込ませ、ドライオーブン内で70℃、45分乾燥したものをサンプルパッドとして用いた。
5)イムノクロマト試験片の作製
  バッキングシート(a)に上記各基材(b-2)で裏打ちされた抗体固定化多孔性メンブレン(b-1)を貼り、展開上流部側に抗cTnI抗体(c)、次いで抗KLH抗体(d)の順になるように塗布部が配置されており、さらにメンブレンの上に血球分離膜(3rd Pad)(e)を装着した。次いで、上記2)で作製したコンジュゲートパッド(f)を配置装着し、さらにこのコンジュゲートパッドに重なるように上記4)で作製したサンプルパッド(g)を配置装着し、反対側の端には吸収パッド(h)を配置装着した。
 最後に、吸収パッドと抗体固定化メンブレンの表面を、抗体固定化メンブレンの一部が露出するようにトップフィルム(i)で被覆した。このように各構成要素を重ね合わせた構造物に切断してイムノクロマト試験片を作製した。図4にイムノクロマト試験片の模式構成図を示した。
 また、該試験片を、プラスチック性の専用のハウジングに格納・搭載し、イムノクロマトテスト検出デバイスの形態にしてもよい。図5、図6にイムノクロマト検出デバイス(k)の上面模式図と断面模式図を示した。(n)はサンプル添加窓部であり、(o)は検出窓部であり、(L)、(m)はハウジング、(j)はイムノクロマト試験片を示す。
2.イムノクロマト法による検出又は測定
 0~10ng/mLの範囲内で何れかの濃度の心筋トロポニンI(cTnI)を含む血漿検体液120μLを上記で作成したイムノクロマトテスト検出デバイスのサンプルパッド窓部に添加し、15分後にテストライン付近を目視観察し、白抜けの有無を評価した。
結果を表1に示す。
<白抜け評価基準>
目視でサンプルを12もしくは20個評価し、1個でも白抜けを認めた場合に白抜け「有り」とし、0個の場合を白抜け「無し」とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
3.結果
 透明基材で裏打ちされたニトロセルロースメンブレンを抗体固定化メンブレンとして用いた場合は、いずれもテストラインの少し前で白抜けの現象が観察されたが、本発明の白色基材で裏打ちされたニトロセルロースメンブレンを抗体固定化メンブレンとして用いた場合は、白抜けの現象が見られなかった。したがって、イムノクロマト試験の目視評価において視認性が向上することにより、より正しい評価が可能となる。
 また、今回は、目視観察により白抜けを判定・評価したが、仮に装置による光学的な測定の場合には、波形の乱れが回避されベースラインを正しく設定することが可能となる。
〔試験例2〕CV低減効果の確認試験
 本発明の白色基材で裏打ちされた抗体固定化メンブレンを用いて光学測定した場合の測定値のばらつきを従来の透明基材で裏打ちされた場合と比較した。
1.イムノクロマトデバイスの製造
 透明基材で裏打ちされたメンブレン2種類(HF180、CN140)と本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレン(CN150)を使用した以外は試験例1と同様にしてイムノクロマト試験片を製造した。
2.イムノクロマト法による検出又は測定
 40又は60pg/mLの心筋トロポニンI(cTnI)を含む血漿検体液120μLを上記で作成したイムノクロマトテストデバイスのサンプルパッド窓部に添加し、15分後にイムノクロマトリーダーラピッドピア(積水メディカル社)を用いてテストラインの呈色量(吸光度)を測定し、それらのCV値(バラツキ)をそれぞれ算出した。CVは変動係数(Coefficient of Variation) のことであり、標準偏差を平均値で割ることにより求めることができる。結果を図1に示す。
3.結果
 本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレンを抗体固定化メンブレンとして用いた場合は、透明基材で裏打ちされたメンブレンを抗体固定化メンブレンとした場合に比べてCV値が減少し、測定の再現性が向上した。
〔試験例3〕CV低減効果の確認試験(低濃度側)
 被検出物質が低濃度の場合であっても試験例2のバラツキ低減効果が現われるかどうか試験を行った。
1.イムノクロマトデバイスの製造
 透明基材で裏打ちされたメンブレン(CN150)と本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレン(CN150)の2ロットを用いたこと以外は試験例1と同様にしてイムノクロマト試験片を製造した。
2.イムノクロマト法による検出又は測定
 15pg/mLの心筋トロポニンI(cTnI)を含む血漿検体液を用いた以外は試験例2同様に測定し、CV値(バラツキ)をそれぞれ算出した。結果を図2に示す。
3.結果
 本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレンを抗体固定化メンブレンとして用いた場合は、被検出対象の濃度が低濃度であっても、透明基材で裏打ちされたメンブレンを抗体固定化メンブレンとした場合に比べてCV値が減少し、測定の再現性が向上した。また、異なるロット2種類で行っても同様の結果が得られた。
〔試験例4〕CV低減効果の確認試験(高濃度側)
 被検出物質が高濃度の場合であっても試験例2のバラツキ低減効果が現われるかどうか試験を行った。
1.イムノクロマトデバイスの製造
 透明基材で裏打ちされたメンブレン(CN150)と本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレン(CN150)を用いたこと以外は試験例1と同様にしてイムノクロマト試験片を製造した。
2.イムノクロマト法による検出又は測定
 400pg/mLの心筋トロポニンI(cTnI)を含む血漿検体液を用いた以外は試験例2と同様に測定し、CV値(バラツキ)をそれぞれ算出した。結果を図3に示す。
3.結果
 本発明の白色基材で裏打ちされた多孔性メンブレンを抗体固定化メンブレンとして用いた場合は、被検出対象の濃度が高濃度であっても、透明基材で裏打ちされた多孔性メンブレンを抗体固定化メンブレンとした場合に比べてCV値が大幅に減少し、測定の再現性が大幅に向上した。
 本発明の少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、特異的結合性物質が固定化された検出部を有するイムノクロマト試験片であって、検出部は多孔性メンブレンの表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏面に不透明基材が配置されている試験片によれば、テストライン付近の白抜けが回避できる。
 また、測定値のばらつきの少ないイムノクロマト試験片を提供することができる。
 本発明によれば、試験片の白抜け回避により目視判定における視認性が向上することはもちろんのこと、光学測定における測定値のばらつきも低減されるため、いずれの検出方法においてもより正確な測定が実現できる。
(a)バッキングシート
(b)抗体固定化メンブレン
(b-1)多孔性メンブレン
(b-2)裏打ち基材
(c)抗cTnI抗体(テストライン)
(d)抗KLH抗体(コントロールライン)
(e)血球分離膜(3rd Pad)
(f)コンジュゲートパッド
(g)サンプルパッド
(h)吸収パッド
(i)トップフィルム
(j)イムノクロマト試験片
(k)イムノクロマト検出デバイス
(L)上部ハウジング
(m)下部ハウジング
(n)サンプル添加窓部
(o)検出窓部
 

Claims (24)

  1. 少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部とを有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレンの表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏面に不透明基材が配置されていることを特徴とする前記試験片。
  2. 前記不透明基材が白色基材である請求項1に記載のイムノクロマト試験片。
  3. 前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である請求項1又は2に記載のイムノクロマト試験片。
  4. 前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている請求項1~3のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
  5. 前記サンプル供給部を担うサンプルパッド、及び金コロイド又は着色ラテックスで標識された特異的結合性物質を含むコンジュゲートパッドをさらに含む請求項1~4のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
  6. 特異的結合性物質が抗体である請求項1~5のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
  7. 光学的手段で検出するための試験片である、請求項1~6のいずれかに記載のイムノクロマト試験片。
  8. 請求項1~7のいずれかに記載のイムノクロマト試験片を含むイムノクロマト検出キット。
  9. イムノクロマト検出方法であって、以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
    少なくとも検出部を有する多孔性メンブレンを含み、前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されているイムノクロマト試験片。
  10. 不透明基材が白色基材である請求項9に記載のイムノクロマト検出方法。
  11. 前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である請求項9又は10に記載のイムノクロマト検出方法。
  12. 前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている請求項9~11のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
  13. 前記試験片は、前記サンプル供給部を担うサンプルパッド、及び金コロイド又は着色ラテックスで標識された特異的結合性物質を含むコンジュゲートパッドをさらに含む請求項9~12のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
  14. 特異的結合性物質が抗体である請求項9~13のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
  15. 光学的手段により標識物質に由来する光学的パラメータを検出する工程を含む、請求項9~14のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
  16. 目視観察により標識物質に由来する呈色を判定する工程を含む、請求項9~15のいずれかに記載のイムノクロマト検出方法。
  17. イムノクロマト検出方法における測定値のばらつきを低減する方法であって、
    以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
    少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部を有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレン表面に固定化されており、
    前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されている試験片。
  18. 不透明基材が白色基材である請求項17に記載のばらつきを低減する方法。
  19. 前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である請求項17又は18に記載のばらつきを低減する方法。
  20. 前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている請求項17~19のいずれかに記載のばらつきを低減する方法。
  21. 試験片を用いたイムノクロマト検出方法における、試験片の白抜けを低減する方法であって、以下の試験片を用いることを特徴とする前記方法;
    少なくとも多孔性メンブレンを含み、サンプル供給部、展開部、検出部を有するイムノクロマト試験片であって、前記検出部は多孔性メンブレン表面に固定化されており、前記多孔性メンブレンの裏側に不透明基材が配置されている試験片。
  22. 不透明基材が白色基材である請求項21に記載の試験片の白抜けを低減する方法。
  23. 前記不透明基材の厚みが30μm以上200μm以下である請求項21又は22に記載の試験片の白抜けを低減する方法。
  24. 前記不透明基材が前記多孔性メンブレンの裏打ちのために配置された部材であり、さらに、前記不透明基材の下にバッキングシートが配置されている請求項21~23のいずれかに記載の試験片の白抜けを低減する方法。
     
     
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