WO2019225959A1 - 개선된 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵균 검출 및 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신와 같은 이차 주사제 및 스트렙토마이신 약제에 대한 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트 - Google Patents

개선된 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵균 검출 및 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신와 같은 이차 주사제 및 스트렙토마이신 약제에 대한 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트 Download PDF

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resistance
resistant
mycobacterium tuberculosis
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이혜영
김연
김서용
장연희
이수지
하선목
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연세대학교 원주산학협력단
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    • C12Q2600/16—Primer sets for multiplex assays

Definitions

  • the present invention provides a method for identifying tuberculosis bacteria based on a quanta matrix assay and diagnosing tuberculosis with resistance to rifampin, isoniazid, ethambutol, quinolone, secondary injection (amicasin, kanamycin, capreomycin) and streptomycin drug. And to the kit.
  • Tuberculosis is a major respiratory infection caused by Mycobacterium tuberculosis (MTB), which is a major public health problem with more than 2 billion people worldwide and 10 million new patients and 1.6 million deaths each year.
  • MTB Mycobacterium tuberculosis
  • the prevalence of tuberculosis and the incidence of new patients are gradually decreasing due to tuberculosis control programs, but the proportion of resistant tuberculosis is increasing. It is important to quickly determine the resistance of intractable Mycobacterium tuberculosis and to perform appropriate treatments to prevent treatment failure and to prevent the spread of resistant Mycobacterium tuberculosis.
  • tuberculosis susceptible to anti-tuberculosis drugs uses a combination of the primary anti-tuberculosis drugs rifampin (RIF), isoniazid (INH), ethambutol (EMB) and pyrazinamide (PZA).
  • Rifampin isoniazid
  • MDR-TB multidrug resistant tuberculosis
  • FQ fluoroquinolones
  • SID secondary line injectable drugs
  • amikacin, kanamycin, and capeomycin are used as second-line anti-tuberculosis drugs, which are resistant to rifampin and isoniazid.
  • SID amikacin
  • KM kanamycin
  • CAP capreomycin
  • Rifampin binds to the beta subunit of RNA polymerase and interferes with transcription. When resistance occurs in the gene corresponding to the rifampin binding site, resistance is known to be induced. More than 95% of tuberculosis bacteria that are resistant to rifampin are mutated at 81 base pairs of the rpo B gene known as rifampin resistance determining site. .
  • Quinolone-based antibiotics are typically used as secondary drugs for the treatment of tuberculosis.
  • the target site of the quinolone antibiotic is the DNA gyrase of Mycobacterium tuberculosis.
  • a mutation occurs in the quinolone resistance determination sites of the genes gyr A and gyr B, which encode the subunits A and B constituting the DNA gyrase, You will become resistant.
  • tuberculosis bacteria that are resistant to quinolone antibiotics have reported mutations in the gyr A gene, and resistance to quinolone drugs when mutations occur in the quinolone resistance-determining region (QRDR) of gyr A. Reported to appear. The most frequent site of mutation is known as amino acid 94, and other mutations at 88, 89, 90 and 91 have been reported.
  • Mutations in the gyr B gene are also found in Mycobacterium tuberculosis bacteria that are resistant to quinolone antibiotics, with mutations in the codons 500 and 538.
  • the most reported rrs A1401G mutation accounts for 30-90% of SLID-resistant tuberculosis bacteria and is known to be associated with amikacin, kanamycin, and capreomycin resistance.
  • Streptomycin is not included in the secondary injection of tuberculosis, but it is an aminoglycoside antibiotic that is resistant to amikacin and kanamycin and is used as an alternative treatment for SM.
  • SM resistance was reported at the mutations in the 43 and 88 codons of the rpsL gene and at the 530 loop region of the rrs gene. However, there is no cross-reaction with the same aminoglycoside family of amikacin and kanamycin resistance.
  • Mycobacterium tuberculosis drug susceptibility testing which is currently used as a standard method, is based on culture.
  • the drug sensitivity test based on the solid medium of the culture method has a disadvantage that takes a minimum of 4 weeks to a maximum of 8 weeks, and recently, a drug sensitivity test method using a liquid medium has been tried to reduce the test time.
  • the liquid medium drug sensitivity test method has limitations for each laboratory, and there is a limit that the reliability of the test result for the second drug is low.
  • M. tuberculosis Delayed treatment by resistant M. tuberculosis leads to the proliferation of local M. tuberculosis infection. Therefore, it is very important to determine whether M. tuberculosis is resistant during initial M. tuberculosis diagnosis.
  • the WHO recommends rapid screening using molecular biology-based rapid tolerance diagnostics, and the initiation of treatment.
  • the present invention has been made in view of the above necessity, and an object of the present invention is to detect a novel tuberculosis bacterium and provide a diagnostic method capable of confirming the resistance of tuberculosis to rifampin, asoniazid, ethambutol, quinolone, secondary injection, and streptomycin. It is.
  • Another object of the present invention is to provide a diagnostic kit that can detect the tuberculosis bacteria and detect whether the tuberculosis rifampin, asoniazide, etambutol, quinolone, aminoglycoside-based drug resistance.
  • the present invention provides a) PCR amplification from the DNA using a primer of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 22; and b) a disk to which the oligomer probe of SEQ ID NO: 23 to 89 is coupled; It provides a method for detecting tuberculosis and non-tuberculosis anti-bacterial bacterium comprising the hybridization of the PCR amplification product obtained in step a) and whether the resistance of the antibiotic drug of Mycobacterium tuberculosis.
  • the method preferably further comprises the step of additionally measuring the image of the disk via Quanta Matrix Assay Platform software after step b).
  • the method preferably amplifies target genes by multiplex PCR (multiplex PCR) to detect tuberculosis bacteria and to detect whether the anti-tuberculosis drug is not limited thereto.
  • multiplex PCR multiplex PCR
  • the antibiotic is preferably, but not limited to, rifampin, isoniazid, ethambutol, quinolone, and amikacin, kanamycin, capreomycin, and / or streptomycin.
  • the primer is preferably labeled with biotin, but is not limited thereto.
  • the present invention is to detect and identify tuberculosis bacteria and non-tuberculosis antibacterial bacterium comprising a disk coupled with the primers of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 22 and oligomer probes of SEQ ID NO: 23 to 89, and simultaneously determine whether the antibiotic resistance of Mycobacterium tuberculosis It provides a kit for.
  • the antibiotic is preferably, but not limited to, rifampin, isoniazid, ethambutol, quinolone, and secondary injections such as amikacin, kanamycin, capreomycin and / or streptomycin.
  • the kit is a reagent for performing a PCR amplification reaction, it is preferable to further include a DNA polymerase, dNTPs and buffer, but is not limited thereto.
  • the present invention is rifampin-resistant tuberculosis bacillus comprising the primers of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 22, isoniazid-resistant tuberculosis bacteria, etambutol-resistant tuberculosis bacteria, quinolone-based drug-resistant tuberculosis bacteria, secondary injections such as amikacin, kanamycin, capreomycin, streptomycin Provided are compositions for distinguishing susceptible mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium tuberculosis.
  • the composition preferably further comprises an oligomer probe of SEQ ID NOs: 23 to 89, but is not limited thereto.
  • the present invention is a rpo B gene amplification primer set comprising a tuberculosis specific, non-tuberculosis antibacterial detection site consisting of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; rifampin resistance-related rpo B gene amplification primer set consisting of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4
  • a set of isoniazid resistance related kat G gene amplification primers consisting of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; a set of isoniazide resistance related inh A gene amplification primers consisting of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; consisting of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10;
  • Quinolone drug resistance related gyr A gene amplification primer set consisting of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12
  • the primer is preferably labeled with biotin, but is not limited thereto.
  • the present invention is rifampin-resistant Mycobacterium tuberculosis, isoniazid-resistant Mycobacterium tuberculosis, Ethambutol-resistant Mycobacterium tuberculosis, Quinolone-based drug-resistant Mycobacterium tuberculosis, Secondary injections (Amycin, Kanamycin, Capreomycin), Streptomycin resistance Provided is a probe composition for distinguishing Mycobacterium tuberculosis and susceptible Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium tuberculosis.
  • QMAP QuantaMatrix assay Platform
  • the usefulness of the DNA of clinically isolated Mycobacterium tuberculosis bacterium with drug resistance was evaluated using a QMAP-based assay developed in Korea.
  • QMAP based anti-TB drugs Resistant diagnostic kit of the present invention is a biotin group for amplifying the rpo B gene regions (Patent Registration No. 10-1377070 (03/12/2014) and Lee pampim resistance associated regions of the species-specific polymorphisms exist adhesion primer and Isoniazid, ethanebutol, quinolone antibiotics, antituberculosis secondary injections (amicasin, kanamycin, capreomycin) and streptomycin-related genes kat G, inh A, emb B, gyr A, gyr B, eis, Multiplex PCR is performed including a primer to which a biotin group amplifies rrs and rps L genes.
  • the amplified PCR product is reacted with a microdisk that is attached to Mycobacterium tuberculosis and nonmycobacterium tuberculosis-specific probes and a specific probe that can identify the mutation of each gene.
  • a microdisk that is attached to Mycobacterium tuberculosis and nonmycobacterium tuberculosis-specific probes and a specific probe that can identify the mutation of each gene.
  • tuberculosis bacteria the detection of tuberculosis bacteria and the mixing of non-tuberculosis acidophilic bacteria through a single assay process and the presence or absence of mutations of the primary and secondary anti-tuberculosis resistance related genes of tuberculosis bacteria known to date.
  • Figure 3 is an example of the results of QMAP resistance analysis of primary tuberculosis drugs.
  • Figure 4 is an example of the results of QMAP resistance analysis of secondary tuberculosis drugs.
  • Specimens used in the present invention were performed on genomic DNA isolated from clinically isolated Mycobacterium tuberculosis stored in the International Tuberculosis Research Center (ITRC), and anti-tuberculosis susceptibility test of the Mycobacterium tuberculosis and line probe assay method (Hain lifescience).
  • ITRC International Tuberculosis Research Center
  • genomic DNA isolated from clinically isolated Mycobacterium tuberculosis stored in the International Tuberculosis Research Center (ITRC), and anti-tuberculosis susceptibility test of the Mycobacterium tuberculosis and line probe assay method (Hain lifescience).
  • ITRC International Tuberculosis Research Center
  • a synthetic DNA having a size including the primer site of the present invention was prepared and used as a PCR template.
  • non-tuberculosis mycobacterium gDNAs were extracted and used for QMAP-based assays.
  • Genomic DNA was isolated from clinically isolated tuberculosis strains and clinical specimens to amplify resistance-related genes using multiple PCR (multiplex PCR) method and used for QMAP-based assay.
  • Example 1-1 Tuberculosis strains gDNA isolation
  • Example 1-2 In clinical specimens gDNA isolation
  • Example 1-3 Gene Amplification of Mycobacterium Tuberculosis DNA
  • Example 1-1 or Example 1-2 To detect tuberculosis bacteria and non-tuberculosis antibacterial bacteria and anti-tuberculosis resistance-related genes from the Mycobacterium tuberculosis DNA isolated in Example 1-1 or Example 1-2, using the primers of Table 1 below at 94 ° C. 5 minutes, 45 cycles of 94 °C 20 seconds in the denaturation process and 60 seconds at 65 °C in the annealing and elongation process and then performed for 5 minutes at 72 °C to perform a PCR (multiplex PCR) to obtain a PCR product of 300bp to 122bp .
  • Table 1 To detect tuberculosis bacteria and non-tuberculosis antibacterial bacteria and anti-tuberculosis resistance-related genes from the Mycobacterium tuberculosis DNA isolated in Example 1-1 or Example 1-2, using the primers of Table 1 below at 94 ° C. 5 minutes, 45 cycles of 94 °C 20 seconds in the denaturation process
  • Table 1 shows the primer sequences used in the present invention.
  • the microdisk was washed three times at room temperature with washing buffer for 1 minute, and the MTB or NTM was detected by automatically measuring the disk image through the provided QMAP software.
  • the resistance of genes related to resistance of secondary injections (amicin, kanamycin, capreomycin) and streptomycin can be determined.
  • the probe (synthesized by Korea Bioneer) sequence used in the present invention is shown in Table 2.
  • Table 2 shows the results of the above probe sequences used in the present invention.
  • Table 3 shows rpo B associated with rifampin resistance induction. The specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • Rifampin resistance was codon 533 labeled with wild type probes (WT0 ⁇ WT5) and mutant probes in codon 504, a rifampin resistance-determining region (RRDR).
  • WT0 ⁇ WT5 probes are positive (red), and when there is a mutation, the wild type probe signal at that position is deleted.
  • Mutant genotypes with high frequency of detection are expressed as MT1 (531TTG), MT2 (516GTC), and MT5,6 (526 mutations).
  • MT4 (523GAG) is a probe that complements the voice coming from the WT3 (521-524).
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative (colorless) according to the cut-off criterion, and the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • the sequencing analysis showed double mutations of 505CTC and 531TTG. (531TTG) positive (red).
  • Table 4 below shows kat G associated with isoniazid resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • Isoniazid resistance is determined by the mutation of KatG, inhA.
  • MT1 S315T 1
  • MT2 S315T 2
  • MT3 S315N
  • MT1 S315T 1
  • MT2 S315T 2
  • MT3 S315N
  • katG WT probe indicates katG codon 314-317, positive for the wild type (red) and negative (colorless) for the codon 315 mutation.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Table 5 below shows inh A associated with isoniazid resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • WT probe of inhA is positive (red) when inhA promotor -8 ⁇ -17 position is wild type and negative (colorless) when there is a mutation, and each MT probe is positive (red) on the corresponding mutation type do.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Table 6 shows emb B associated with ethanbutol resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • codon 306 of the embB gene is mutated.
  • the WT porbe is negative (colorless), and the M306V and M306I mutations are positive (red) for the respective mutant probes MT1 and MT2.
  • the other mutant genotype M306L is only expressed as WT negative.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Table 7 shows gyr A associated with quinolone antibiotic resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • Quinolone antibiotic resistance is determined by gyrA and gyrB mutations.
  • the WT1 probe of gyrA is positive (red) or negative (colorless) according to the mutation of codons 88, 90 and 91 of gyrA, and the mutation of codon 94 of gyrA.
  • MT1 (G88C), MT2 (G88A), MT3 (A90V), MT4 (S91P), MT5 (D94A), MT6 (D94G), MT7 (D94H), MT8 (D94N), MT9 (D94Y) If present, it is positive (red).
  • mutations of gyrA codon A90V are marked WT1 negative, WT2 positive, MT3 positive, and D94A mutations are marked WT1 positive, WT2 negative, MT5 positive.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Mutations in gyrA or gyrB are considered to be resistant to quinolone antibiotics.
  • Table 8 shows gyr B associated with quinolone antibiotic resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • the WT probe of gyrB covers the wild type of gyrB codon 538-540 and is positive (red) for wild type and negative (colorless) for mutant. Each MT probe is marked positive (red) in the corresponding mutant.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Mutations in gyrA or gyrB are considered to be resistant to quinolone antibiotics.
  • Table 9 shows the rrs associated with the induction of secondary injection (SLID; AMK, KM, CAP) resistance. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • the resistance of the anti-tuberculosis secondary injection is determined by the mutation of the rrs and eis promoters.
  • the WT1 probe of rrs is positive (red) or negative (colorless) depending on the presence or absence of a mutation in the 1401-1402 nucleotide position of rrs, the WT2 probe is mutated at the 1445 nucleotide position, and the WT3 probe is mutant at the 1484 nucleotide position. Is indicated by).
  • the MT1 (A1401G), MT1-2 (C1402A), MT2 (C1445T), MT3 (G1484T) probes are positive (red) with each mutation. For example, A1401G mutations are marked WT1 negative, WT2 positive, WT3 positive, MT3 positive and G1484T mutations are marked WT1 positive, WT2 positive, WT3 negative, MT3 positive.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Table 10 shows the specificity of the QMAP probe according to mutation type of the eis gene associated with secondary injection (SLID; AMK, KM, CAP) resistance.
  • Antituberculous secondary injection resistance is determined by the mutation of the eis promoter.
  • the WT1 probe of eis is positive (red) or negative (colorless) depending on the presence or absence of a mutation at the promoter -8 ⁇ -14 position.
  • MT1 (C-8A), MT2 (G-10A / C), MT3 (C-12T), MT4 (C-14T), MT5 (C-37T) probes are positive (red) with each mutation Is displayed.
  • C-12T mutations are marked WT1 negative, WT2 positive, MT3 positive
  • C-37T mutations are marked WT1 positive, WT2 negative, WT5 positive.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Mutations in eis are considered to be resistant to Kanamycin and amikacin.
  • Table 11 shows the rpsL associated with streptomycin antibiotic resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • Streptomycin resistance is rpsL Judging by mutation.
  • the WT1 probe of rpsL is positive (red) or negative (colorless) depending on whether codon 43 is mutated or not.
  • the MT1 (K43R) and MT2 (K88R) probes are positive (red) with each mutation. For example, K43R mutations are marked WT1 negative, WT2 positive, MT1 positive, and K88R mutations are marked WT1 positive, WT2 negative, MT2 positive.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Mutations in psL are considered to be resistant to streptomycin.
  • Table 12 shows rrs associated with streptomycin antibiotic resistance induction. Specificity of QMAP probe by mutation type of gene is confirmed.
  • Streptomycin resistance is rrs Judging by mutation.
  • the WT probe of rrs is indicated as positive (red) or negative (colorless) depending on the presence or absence of mutations in the 514-517 nucleotiede position.
  • MT1 (A514C) and MT2 (C517T) probes are positive (red) with each mutation.
  • the A514C mutant is marked WT negative, MT1 positive, and the C517T mutant is marked WT positive, MT2 positive.
  • it is determined whether or not the mutation is performed by a negative result of the wild type probe without a mutation-specific probe.
  • the measured fluorescence signal value of each probe was determined to be positive (red) / negative according to the cut-off criterion.
  • the cut-off criterion of each probe is indicated at the bottom of the table.
  • Table 13 shows the specificity of the tuberculosis detection QMAP probe.
  • TB-specific probes to check for tuberculosis bacteria nontuberculous mycobacteria (Nontuberculous Mycobacteria, NTM) general purpose probes to determine whether NTM. It only checks for infection by non-tuberculosis mycobacteria and does not identify each species. This is the result of checking the specificity of TB probe and NTM probe for various NTM species. M. gordonae is not detected by both NTM and TB probes, but it is not a pathogenic bacterium and does not affect the test results. Since each probe is specific for TB and NTM, both positive means mixed infection of TB and NTM.
  • Table 14 shows the results and sequencing results of the rpo B mutant for detecting rifampin resistance in a total of 248 culture DNAs.
  • Table 15 shows kat G for detecting isoniazid resistance in a total of 248 culture DNAs. The results of this test and sequencing of the inhA mutation.
  • Table 16 shows the results of the test and the sequence analysis of the mutation test for detecting the ethanbutol resistance in a total of 248 culture bacteria DNA.
  • Table 17 shows the test results and sequencing results of the detection of gyr A and gyrB mutations for detection of quinolone antibiotic resistance in a total of 248 culture DNAs.
  • Table 18 shows the results of the test and sequencing of the detection of rrs and eis mutations to confirm the resistance of secondary injection (KM, AMK, CAP) antibiotics in a total of 248 cultured DNAs.
  • Table 19 shows the test results and sequencing results of the detection of rps L and rrs mutations for the determination of resistance to streptomycin in a total of 248 cultured DNAs.

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Abstract

본 발명은 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵 및 비결핵 항산균의 검출과 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탄부톨, 퀴놀론, 이차주사제(KM, AMK, CAP)와 스트렙토마이신 약제의 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트에 관한 것이다. 본 발명은 검체로부터 약제내성검사를 위한 분리배양에 걸리는 시간을 단축시키고, 다수의 검체를 대상으로 한 다제내성 및 광범위내성 결핵균의 효율적인 약제감수성검사가 가능하며, 이는 결핵환자의 치료에 있어 올바르고 빠른 항결핵제 선택을 할 수 있도록 하여 조기 치료와 감염확산을 방지함에 유용하게 사용될 수 있으며, 또한 비결핵 항산균에 의한 오염이나 혼합감염에 의해 발생할 수 있는 오진 및 잘못된 처방을 예방할 수 있다.

Description

개선된 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵균 검출 및 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신와 같은 이차 주사제 및 스트렙토마이신 약제에 대한 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트
본 발명은 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵균 동정 및 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 이차주사제(아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신) 및 스트렙토마이신 약제에 대한 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트에 관한 것이다.
결핵은 결핵균( Mycobacterium tuberculosis, MTB)이 원인이 되는 주요 호흡기감염질환으로 전세계적으로 20억명 이상이 감염되어 있고 매년 1,000만명의 신규환자와 160만명의 사망자가 발생하고 있는 중요 공중보건문제이다. 결핵관리 프로그램으로 결핵의 유병율과 신환자 발생은 조금씩 감소해 나고가 있으나 내성결핵의 비율은 증가하는 추세이다. 난치성 결핵균의 내성 여부를 신속하게 판별하여 적절한 치료를 시행하는 것이 치료 실패를 막고 내성결핵균의 확산을 막는데 중요하다.
항결핵제에 감수성인 결핵의 치료는 1차 항결핵제인 리팜핀(rifampin, RIF), 아이소니아지드(isoniazid, INH), 에탐부톨(ethambutol, EMB), 피라지나마이드(pyrazinamide, PZA)의 복합제재가 사용되며, 이중 리팜핀, 아이소니아지드 두가지 약제 이상에 내성을 갖는 경우, 다제내성결핵(Multidrug resistant-tuberculosis, MDR-TB)으로 정의하고 있다. MDR-TB인 경우 2차 항결핵제로 퀴놀론계(fluoroquinolones, FQ)약제와 2차 주사제(Second line injectable drugs(SLID); Amikacin, kanamycin, capeomycin)를 치료제로 사용하게 되는데, 리팜핀, 아이소니아지드 내성을 가지면서 한가지 이상의 퀴놀론계 약제내성과 한가지 이상의 2차 주사제(SLID; amikacin(AMK), kanamycin(KM), capreomycin(CAP))에 내성을 갖는 경우를 광범위 약제내성결핵(extensively drug resistant tuberculosis, XDR-TB)으로 정의하고 있다[World Health Organization, Global Tuberculosis Report 2017. Geneva, Switzerland.].
2017년 WHO 보고에 따르면 결핵 신환자의 5.8%인 600,000명에서 다제내성결핵이 확인되었다. 또한 다제내성결핵 환자의 9.7%가 광범위내성 결핵으로 보고되었다[WHO. Global TB report 2017].
리팜핀은 RNA 중합효소의 베타 소단위체에 결합하여 전사를 방해하는 역할을 한다. 리팜핀의 결합부위에 해당하는 유전자에 내성이 발생하면 내성을 유발하는 것으로 알려져 있으며, 리팜핀에 내성을 갖는 결핵균의 95% 이상이 리팜핀 내성 결정 부위라고 알려진 rpoB 유전자의 81 염기쌍 부위에 돌연변이가 일어나 있다.
리팜핀과 함께 일차치료약제로 사용되는 아이소니아자이드에 대한 결핵균의 내성은 더 복잡하고 다양한 유전자들의 돌연변이로 인해 발생한다. 가장 돌연변이가 빈번하게 일어나는 대표적인 유전자는 katG와 inhA 이다. 전세계적으로 아이소니아지드 내성 결핵균의 64%에서 katG 유전자 315 부위에 돌연변이가 발생하였으며, 19%에서 inhA 유전자 -15 부위에 돌연변이가 발생하였다.
embB 유전자의 306코돈에 돌연변이는 에탐부톨 약제내성균과 더불어 감수성인 균에서도 306코돈 돌연변이가 확인되기도하나, 에탐부톨 내성균에서의 돌연변이 비율이 감수성일 때보다 2배이상 높으며 최근에는 다제내성결핵균에서 embB 306코돈 돌연변이의 비율이 점차 높아지는 것으로 보고되고 있다.
결핵치료의 2차 약제로는 대표적으로 퀴놀론계 항생제가 사용된다. 퀴놀론계 항생제의 표적 부위는 결핵균의 DNA gyrase 로, DNA gyrase 를 구성하는 소단위체 A, B 를 암호화하고 있는 유전자인 gyrA, gyrB 의 퀴놀론 내성 결정 부위에 돌연변이가 발생하게 되면 퀴놀론계 항생제에 대한 내성을 갖게 된다.
퀴놀론계 항생제 내성을 보이는 결핵균의 50-90%는 gyrA 유전자에 돌연변이가 발생하였다고 보고되었으며, gyrA의 퀴놀론 내성 결정부위(QRDR; Quinolone resistance-determining region)에 돌연변이 발생 시, 퀴놀론 약제에 대한 내성으로 보이는 것으로 보고되었다. 이중 가장 돌연변이 발생빈도가 높은 부위는 아미노산 94번으로 알려져 있으며, 그 외 88, 89, 90, 91에서 의 돌연변이가 보고되어 있다.
gyrB 유전자에 돌연변이 또한 퀴놀론계 항생제에 내성을 보이는 결핵균에서 발견되고 있으며, 주로 코돈 500과 538부위에 돌연변이가 발생한다.
2차 주사제(SLID; AMK, KM, CAP) 내성 결핵균은 rrs 유전자 내 1401, 1402, 1484번 염기에 돌연변이 발생과 연관되어 있는 것으로 보고되며, 최근에는 eis promoter 의 돌연변이가 KM 내성발생과 연관하는 것으로 보고되었다.
가장 많이 보고 되는 rrs A1401G 변이는 SLID 내성 결핵균 중 30-90%를 차지하고 있고 알려져 있으며, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 내성과 관련되어 있음이 보고되어 있다.
스트렙토마이신(Streptomycin, SM)은 결핵치료의 2차 주사제에 포함되지는 않으나, 아미노글라이코사이드계 항생제로 amikacin, kanamycin에 내성이 있고 SM에 감수성인 경우, 대체 치료제로 사용되고 있다. rpsL 유전자의 43, 88 codon에 돌연변이 발생 시와 rrs 유전자의 530 loop 부위의 돌연변이 발생 시 SM 내성이 보고되었다. 그러나 같은 aminoglycoside 계열인 amikacin, kanamycin내성과는 교차반응이 없는 것으로 알려져 있다.
현재 표준방법으로 사용되고 있는 결핵균 약제 감수성 검사는 배양을 기반으로 한 방법이다. 배양 방법 중 고체배지를 기반으로 하는 약제 감수성 검사는 최소 4주에서 최대 8주까지의 시간이 걸리는 단점이 있어, 최근에는 검사시간을 감축하기 위해 액체배지를 이용한 약제 감수성 검사법이 시도되고 있다. 하지만 액체배지 약제 감수성 검사법은 시행하는데 있어 검사실 별로 제약이 있으며, 2차 약제에 대한 검사결과의 신뢰도가 낮다는 한계가 있다.
내성결핵균에 의한 치료지연은 내성결핵균의 지역 감염확산으로 이어지므로, 초기 결핵진단 시 결핵균의 내성 여부를 판단하는 것은 매우 중요하며, 이에 최근에는 분자생물학적 검사방법에 기반한 약제감수성 검사의 개발되고 사용이 증가하고 있고, WHO에서는 분자생물학적 기반의 신속 내성진단법을 이용한 빠른 검사와 이에 따른 치료 시작을 권장하고 있다.
반면, 현재 알려져 있는 항결핵약제별 내성유발 유전자의 종류 및 돌연변이의 수가 다양해 기존의 PCR, Line probe assay, real-time PCR 등의 방법으로는 한번에 검사를 진행하기가 용이하지 않다.
[선행 특허 문헌]
대한민국 특허공개번호 제1020130095454호
본 발명은 상기의 필요성에 의하여 안출된 것으로서 본 발명의 목적은 신규한 결핵균 검출 및 결핵균의 리팜핀, 아소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론 약제, 이차주사제, 및 스트렙토마이신의 내성여부를 확인할 수 있는 진단법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 신규한 방법으로 결핵균의 검출과 결핵균의 리팜핀, 아소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론 약제, 아미노글리코시드계 약제의 내성여부를 확인할 수 있는 진단용 키트를 제공하는 것이다.
상기의 목적을 달성하기 위하여 본 발명은 a)서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머를 사용하여, 상기 DNA로부터 PCR 증폭하는 단계;및 b) 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브가 커플링된 디스크와 상기 단계 a)에서 얻어진 PCR 증폭산물을 하이브리드 형성시키는 단계를 포함하는 결핵균 및 비결핵 항산균 검출 및 결핵균의 항생제 약제의 내성 여부를 동시에 확인하는 방법을 제공한다.
본 발명의 일 구현 예에 있어서, 상기 방법은 b) 단계 후 추가적으로 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 소프트웨어를 통하여 상기 디스크의 이미지를 측정하는 단계를 더욱 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
본 발명의 다른 구현 예에 있어서, 상기 방법은 결핵균 검출 및 항결핵약제의 내성여부를 동시에 검출하기 위해 타겟 유전자들을 다중 PCR(multiplex PCR)로 증폭시키는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
본 발명의 또 다른 구현 예에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 및 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신, 및/또는 스트렙토마이신인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
본 발명의 또 다른 구현예에 있어서, 상기 프라이머는 바이오틴이 표지된 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또 본 발명은 서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머 및 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브가 커플링된 디스크를 포함하는 결핵균 및 비결핵 항산균 검출과 동정 및, 결핵균의 항생제의 내성 여부를 동시에 확인하기 위한 키트를 제공한다.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 및 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신와 같은 이차 주사제 및/또는, 스트렙토마이신인 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
본 발명의 다른 구현예에 있어서, 상기 키트는 PCR 증폭 반응을 수행하기 위한 시약으로, DNA 폴리머라제, dNTPs 및 버퍼를 더욱 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또한 본 발명은 서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머를 포함하는 리팜핀 내성결핵균, 아이소니아지드 내성 결핵균, 에탐부톨 내성 결핵균, 퀴놀론계 약제 내성 결핵균, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신와 같은 이차 주사제, 스트렙토마이신 감수성 결핵균 및 결핵균 구분을 위한 조성물을 제공한다.
본 발명의 일 구현 예에 있어서, 상기 조성물은 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브를 추가적으로 포함하는 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또한 본 발명은 서열번호 1 및 서열번호 2로 구성된 결핵균 특이, 비결핵 항산균 검출부위를 포함하는 rpoB 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 3 및 서열번호 4로 구성된 리팜핀 내성관련 rpoB 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 5 및 서열번호 6로 구성된 아이소니아지드 내성관련 katG 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 7 및 서열번호 8로 구성된 아이소니아지드 내성관련 inhA 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 9 및 서열번호 10로 구성된 에탐부톨 내성관련 embB 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 11 및 서열번호 12로 구성된 퀴놀론계 약제 내성관련 gyrA 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 13 및 서열번호 14로 구성된 퀴놀론계 약제 내성관련 gyrB 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 15 및 서열번호 16로 구성된 아미노글라이코사이드계 약제 내성관련 rrs 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 17 및 서열번호 18로 구성된 아미노글라이코사이드계 약제 내성관련 rrs 유전자 증폭 프라이머 세트;서열번호 19 및 서열번호 20으로 구성된 아미노글라이코사이드계 약제 내성관련 rpsL 유전자 증폭 프라이머 세트; 및 서열번호 21 및 서열번호 22로 구성된 아미노글라이코사이드계 약제 내성관련 eis 유전자 증폭 프라이머 세트로 이루어진 프라이머 조성물을 제공한다.
본 발명의 일 구현예에 있어서, 상기 프라이머는 바이오틴이 표지된 것이 바람직하나 이에 한정되지 아니한다.
또한 본 발명은 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브로 이루어진 리팜핀 내성결핵균, 아이소니아지드 내성 결핵균, 에탐부톨 내성 결핵균, 퀴놀론계 약제 내성 결핵균, 이차주사제(아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신), 스트렙토마이신 내성 결핵균과 감수성 결핵균 및 결핵균과 비결핵 항산균의 구분을 위한 프로브 조성물을 제공한다.
이하 본 발명을 설명한다.
본 발명에서는 QuantaMatrix assay Platform (QMAP) 기반 분자진단검사법을 개발하였다. QMAP은 퀀타매트릭스사의 원천기술 (특허 등록번호 1011013100000 (2011.12.26) / 1015823840000 (2015.12.28) 로 suspension array technology를 기반으로 하고 있으며 50μm 크기의 자성을 띠고 있는 디스크 (Microdisk)에 프로브를 결합시키고 PCR산물과 반응시킨 후, 돌연변이를 여부를 형광으로 확인할 수 있는 검사법으로 QMAP의 가장 큰 특징은 디스크에 고유의 코드를 새겨 이 코드로 간섭현상 없이 디스크를 구별하며 기술적으로 1024개의 코드가 가능하므로 각각 고유의 코드가 새겨진 1024종의 디스크를 이용한 다중검사가 가능하며 모든 과정이 96 well plate에서 진행되기 때문에 high throughput이 가능한 시스템이다 (도 1).
본 발명에서는 국내에서 개발된 QMAP기반 assay를 이용하여 약제내성결과가 있는 임상분리결핵균의 DNA 를 대상으로 유용성을 평가하였다.
본 발명의 QMAP 기반 항결핵약제 내성 진단키트는 종특이 다형성이 존재하는 rpoB 유전자 부위 (특허 등록번호 10-1377070 (2014.03.12)와 리팜핌 내성관련 부위를 증폭하는 biotin group이 부착된 프라이머 및 아이소니아지드, 에탄부톨, 퀴놀론계 항생제, 항결핵 이차주사제(아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신)과 스트렙토마이신의 내성관련 유전자인 katG, inhA, embB, gyrA, gyrB, eis , rrs, rpsL 유전자를 증폭하는 biotin group이 부착된 프라이머를 포함하여 다중PCR(multiplex PCR)을 수행한다.
증폭하고 얻어진 PCR산물을 결핵균 및 비결핵항산균 특이 프로브 및 각 유전자별로 돌연변이 유무를 확인할 수 있는 특이 probe가 부착되어있는 microdisk과 반응시키고 결합 여부에 따라 발현되는 형광시그널의 측정값과 probe별로 지정된 microdisk의 이미지를 구분함으로써 결핵균 검출과 동시에 항결핵제 약제에 대한 내성여부를 알 수 있는 분자진단 검사법으로 구성되었다.
자동화가 가능하여 96 테스트를 진행 시 PCR 진행 (1시간 40분), TB 검출과 항결핵제약제 내성여부 (1시간 30분) 총 3시간이면 확인이 가능한 부분이 큰 장점이다.
본 발명에서는 한번의 assay과정을 통해 결핵균 검출 및 비결핵 항산균의 혼재여부의 판독과, 현재까지 알려진 결핵균의 주요 1,2차 항결핵제 내성 관련 유전자의 돌연변이 유무를 판독하여 제공한다.
이에 따라 검체로부터 약제 내성검사를 위한 분리배양에 걸리는 시간을 단축시키고, 다수의 검체를 대상으로 한 다제내성 및 광범위내성 결핵균의 효율적인 약제감수성검사가 가능하다. 이는 결핵환자의 치료에 있어 올바르고 빠른 항결핵제 선택을 할 수 있도록 하여 조기 치료와 감염확산을 방지함에 유용하게 사용될 수 있다. 또한 비결핵 항산균에 의한 오염이나 혼합감염에 의해 발생할 수 있는 오진 및 잘못된 처방을 예방할 수 있을 것으로 판단된다.
도 1은 QMAP 시스템에 대한 그림,
도 2는 다중 PCR(multiplex PCR)의 실시예,
도 3은 1차 결핵약제의 QMAP 내성 분석결과의 실시예, 및
도 4는 2차 결핵약제의 QMAP 내성 분석결과의 실시예이다.
이하, 비한정적인 실시 예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명한다. 단 하기 실시 예는 본 발명을 예시하기 위한 의도로 기재된 것으로서 본 발명의 범위는 하기 실시 예에 의하여 제한되는 것으로 해석되지 아니한다.
본 발명에 사용된 검체는 국제결핵연구센터(ITRC)에서 보관 중인 임상분리 결핵균으로부터 분리된 genomic DNA를 대상으로 실시되었으며, 상기 결핵균의 항결핵제 감수성검사와 기존에 제공되고 있던 line probe assay 방법(Hain lifescience Inc., GenoType MTBDR plus, MTBDR sl )에 의한 내성관련 유전자의 검사결과는 ITRC에서 제공되었다.
본 발명의 프로브 유용성을 확인하기 위하여 상기 검체에서 발견되지 않은 돌연변이형의 경우, 본 발명의 프라이머 부위를 포함하는 크기의 합성DNA를 제작하여 이를 PCR주형으로 사용하였다.
본 발명의 프로브 유용성을 확인하기 위하여 25종의 비결핵 항산균 gDNA를 추출하여 QMAP기반 assay에 사용하였다.
본 발명의 결과와 기존 molecular DST와 불일치하는 경우, 이를 Sanger sequencing 분석의뢰를 통하여 염기서열을 확인하였다.
실시예 1. 결핵균 DNA의 분리
임상 분리배양된 결핵균주 및 임상검체에서 genomic DNA를 분리하여 다중PCR(multiplex PCR) 방법으로 내성관련 유전자들을 증폭하고 이를 QMAP기반 assay에 사용하였다.
실시예 1-1. 결핵균주에서의 gDNA분리
3% Ogawa 배지 또는 BACTEC MGIT 960 system에 접종하여 37℃에서 배양한 후, 배양액의 일부를 취하여 100℃에서 10분간 가열하고 13,000rpm에서 1분간 원심분리한 후 상층액을 취하는 방법을 이용하였다.
실시예 1-2. 임상검체에서의 gDNA분리
결핵 의심 환자의 객담에 동량의 4% NaOH를 30분간 처리한 후, 3,200g에서 10분간 원심분리하여 상층액을 제거하고 멸균된 PBS buffer로 wash하여 다시 3,200g에서 10분간 원심분리하는 집균과정을 거친다. 도말, 배양검사에 이용하고 남은 pellet의 일부를 1.5ml tube에 옮긴 후, 5% chelex resin solution 또는 D.W를 50~100ul을 첨가하여 100℃에서 10분간 가열하고 13,000rpm에서 1분간 원심분리한 후 상층액을 취하는 방법을 이용하였다.
실시예 1-3. 결핵균 DNA의 유전자 증폭
상기 실시예 1-1 또는 실시예 1-2에서 분리한 결핵균 DNA로부터 결핵균 및 비결핵 항산균 검출 및 항결핵제 내성관련 유전자를 검출하기 위하여 하기 표 1의 프라이머를 이용하여 Pre-denaturation 과정으로 94℃에서 5분, denaturation 과정으로 94℃20초와 annealing과 elongation 과정으로 65℃에서 60초로 45사이클 시행하고 최종 72℃에서 5분간 실시하여 300bp~122bp의 PCR 산물을 얻는 다중 PCR(multiplex PCR)을 수행하였다.
유전자 이름 서열번호 염기서열(5'->3') 증폭산물 비고
rpoB 360_Fx1 서열번호1 TCAAGGAGAAGCGCTACGACC 267bp TB, NTM
250R-m3 서열번호2 Biotin-GGATCTGGTTYTGGATCAGCTC
rpoB rif_F5 서열번호3 CGATCAC ACCGCAGACGT T 179bp RIF 내성
TR8*-2 서열번호4 Biotin-CAG CCC GGC ACG CTC ACG T
katG katG_F3-1 서열번호5 G AGC AGA TGG GCTTGGGCT 122bp INH 내성
KatG_R3-1 서열번호6 Biotin-TCGAGGAAACTGTTGTCCCATTTCg
inhA inhA_F4 서열번호7 CAG TGC GAA AGT TCC CGC C 154bp INH 내성
inhA_R5 서열번호8 Biotin-TAACCAGGACTGAACGGGAT
embB embB_F2 서열번호9 accgacgccgtggtgatatt 182bp EMB 내성
embB_R5 서열번호10 Biotin-CAGGTTGTAATACCAGCCGAAGG
gyrA gyrA_F2 서열번호11 Biotin-GTCGGTTGCCGAGACCATG 153bp FQ 내성
gyrA_R5 서열번호12 GCCGCCGGTGGGTCATTG
gyrB gyrB_F3 서열번호13 TCGATGTTCCAGGCGATACTTCC 157bp FQ 내성
gyrB_R3 서열번호14 Biotin-GTA GCG CAG CTT GCC GAT ATC
rrs (2) rrs -2F3 서열번호15 gttAAGCGAATCCTTAAAAGCCG 300bp AMI,KM,CAP내성
rrs -2R4* 서열번호16 Biotin-CAG TTG GGG CGT TTT CGT GG
eis eis_F-1 서열번호17 GATCCTTTGCCAGACACTGTCGt 132bp KM 내성
eis_sR2 서열번호18 Biotin-GGCC AGT AGG AAC ATC CCC G
rpsL rpsL_200F3 서열번호19 CGTCGTGGTGTATGCACCCG 233bp SM 내성
rpsL_88R3* 서열번호20 Biotin-ACA CCC TGC GTA TCC AGC G
rrs (1) rrs _1F3 서열번호21 TT CAC CAT CGA CGA AGG TCC G 218bp SM 내성
rrs_1R3 서열번호22 Biotin-TGC AGT ACT CTA GTC TGC CCG
TB; tuberculosis, NTM; Non-tuberculosis mycobacteria, RIF; Rifampin, INH; isoniazid, EMB; ethambutol, FQ; fluoroquinolone, 2 nd line injectable drug(kanamycin, amikacin, capreomycin), SM; streptomycin
표 1은 본 발명에 사용된 프라이머 서열
실시예 2. QMAP 기반 항결핵약제 내성 검사 수행
상기 실시예 1-3으로부터 증폭된 PCR 산물에 1/10 볼륨의 10X Denaturation solution (1N NaOH, 1mM EDTA)을 섞어 실온에 5분간 방치한 후 hybridization buffer에 희석시켜 준비된 커플링된 disk (Quantamatrix, Seoul, Korea)에 넣은 후 35℃에서 30분간 반응시키고, WS (washing solution)을 이용하여 실온에서 1분간 3회 씻어준 후 1:2000 (v/v)으로 희석한 streptavidin R-phycoerythrin conjugate (Prozyme, San Leandro, CA)을 처리하여 실온에서 10분간 반응시켰다. 반응이 끝난 microdisk를 washing buffer로 실온에 1분간 3회 세척하고, 제공되는 QMAP software를 통해 자동으로 disk의 이미지를 측정하여 MTB 또는 NTM을 검출, 결핵균의 리팜핀, 아이소니아지드, 에탄부톨, 퀴놀론계 항생제, 이차주사제(아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신)과 스트렙토마이신의 내성관련 유전자 돌연변이 여부를 확인할 수 있다.
본 발명에서 사용된 프로브(한국 바이오니아에 의뢰하여 합성) 서열은 표 2에 기재하였다.
유전자 Oligomer 서열번호 염기서열(5'->3')* 비고
rpoB (ID) NTM 서열번호 23 GTCGCCACCATCGAGTACCTGGT NTM 표지
서열번호 24 CGTCGCGACCATCGAATACCTGGT
TB 서열번호 25 C GGC GAG CCC ATC ACG TCG t MTB complex 표지
rpoB (RIF) rpoB WT0 서열번호 26 AG TTC TTC GGC ACC AGC 504-509 wild type
rpoB WT1 서열번호 27 GC CAG CTG AGC CAA TT 510-514 wild type
rpoB WT2 서열번호 28 ATG GAC CAG AAC AAC CC 515-520 wild type
rpoB WT3 서열번호 29 CG CTG TCG GGG TTG AC 521-524 wild type
rpoB WT4 서열번호 30 G TTG ACC CAC AAG CGC CGA 524-529 wild type
rpoB WT5 서열번호 31 A CTG TCG GCG CTG G 529-533 wild type
rpoB MT1 서열번호 32 GA CTG TTG GCG CTG G 531TTG
rpoB MT2 서열번호 33 A ATG GTC CAG AAC AAC CCG 516GTC
rpoB MT3 서열번호 34 CAA TTC ATG TAC CAG AAC AA 516TAC
rpoB MT4 서열번호 35 G TCG GAG TTG ACC CAC A 523GAG
rpoB MT5 서열번호 36 TG ACC DAC AAG CGC CGA 526TAC, 526AAC, 526GAC
rpoB MT6 서열번호 37 G ACC CBC AAG CGC CG 526CCC, 526CTC, 526CGC
katG katG wt 서열번호 38 ATCACC AGC GGCATCG 315AGC wild type
katG MT1 서열번호 39 ATCACC ACC GGCATCG S315T(ACC)
katG MT2 서열번호 40 ATCACC ACA GGCATCGA S315T(ACA)
katG MT3 서열번호 41 ATCACC AAC GGCATCG S315N(AAC)
inhA inhA WT 서열번호 42 CGAGACGATAGGTTGTC inhA UPS wild type
inhA MT1 서열번호 43 AAAGCGAGATGATAGGTTGT 15UPS C→
inhA MT2 서열번호 44 AAGACGATAGGCTGTCGG 8UPS T→
inhA MT3 서열번호 45 AGACGATAGGATGTCGG 8UPS T→
inhA MT4 서열번호 46 GGCGAGGCGATAGGT 16UPS A→
inhA MT5 서열번호 47 GGCGATACGATAGGTTGT 17UPS G→
embB embB WT1 서열번호 48 GC TAC ATC CTG GGC ATG G 306M wild type
embB MT1 서열번호 49 TAC ATC CTG GGC GTG GC 306V(GTG)
embB MT2 서열번호 50 C TAC ATC CTG GGC ATH GC 306I(ATC), 306I(ATT)
서열번호 51 TAC ATC CTG GGC ATA GC 306I(ATA)
gyrA gyrA WT1 서열번호 52 GAT CGA CGC GTC I CC G 88-91 position wild type
gyrA WT2 서열번호 53 G CAC CAG GST GTC GTA G 94 position wild type
gyrA MT1 서열번호 54 GA CGC GTC GCA GTG C 88TGC
gyrA MT2 서열번호 55 CACCCG CAC GCC GAC G 88GCC
gyrA MT3 서열번호 56 TC GTA GAT CGA CAC GTC 92GTG
gyrA MT4 서열번호 57 AC GCG CCG ATC TAC GAC 91CCG
gyrA MT5 서열번호 58 GTCG ATC TAC GCC ACC C 94GCC
gyrA MT6 서열번호 59 AC CAG GST GCC GTA GA 94GGC
gyrA MT7 서열번호 60 CAG GsT GTG GTA GAT CG 94CAC
gyrA MT8 서열번호 61 G GsT GTT GTA GAT CGA C 94AAC
gyrA MT9 서열번호 62 GCGTCGATC TAC TAC AGC 94TAC
gyrB gyrB WT 서열번호 63 CTA AAG AAC ACC GAA GTT CA Wild type
gyrB MT1 서열번호 64 CTA AAG ACC ACC GAA GTT C N538T
gyrB MT2 서열번호 65 CTA AAG GAC ACC GAA GTT C N538D
gyrB MT3 서열번호 66 AAG AAC A AC GAA GTT CAG G 539N
gyrB MT4 서열번호 67 AAG AAC ACC GAC GTT CAG E540D
rrs (2) rrs (2)WT1 서열번호 68 GCC CGTC AC GTCAT GAA rrs 1401-1402 wild type
rrs (2) WT2 서열번호 69 AACCCTCGGGAGGGAGCT rrs 1445 Wild type
rrs (2)WT3 서열번호 70 GATTGGGAC GAAGTCGT rrs 1484 Wild type
rrs (2)MT1 서열번호 71 GTCGCGTCATGAAAGTCG A1401G
rrs (2)MT1-2 서열번호 72 CCCGTC AAGTCATGAAAGTC C1402A
rrs (2)MT2 서열번호 73 ACCCTTGGGAGGGAGCT C1445T
rrs (2)MT3 서열번호 74 GATTGGGACTAAGTCGT G1484T
eis eis WT1 서열번호 75 CATATGCCACAGTCGGATT Wild type (8-14UPS)
eis WT2 서열번호 76 CGTAATATTCACGTGCACG Wild type (37UPS)
eis MT1 서열번호 77 GCCACAGTAGGATTCTGT 8UPS C->A
eis MT2 서열번호 78 CATATGCCACAATCGGATTC 10UPS G->A
서열번호 79 CATATGCCACACTCGGATTC 10UPS G->C
eis MT3 서열번호 80 GCCATAGTCGGATTCTG 12UPS C->T
eis MT4 서열번호 81 ATGCTACAGTCGGATTCT 14UPS C->T
eis MT5 서열번호 82 ATTCACTTGCACGTGGCC 37UPS C->T
rpsL rpsL WT1 서열번호 83 AAGTACCACCACTCCGA AGAAGC codon 43 wild type
rpsL WT2 서열번호 84 CGGGTGA AGGACCTGC Codon 88 wild type
rpsL MT1 서열번호 85 ACCACTCCGA GGAAGCCGAAC 43AGG
rpsL MT2 서열번호 86 GGGTGA GGGACCTGCC 88AGG
rrs (1) rrs(1) WT 서열번호 87 TGCCAGCAGCCGCGGTA rrs 507-523 wild type
rrs(1) MT1 서열번호 88 GCCAGC CGCCGCGGTA A514C
rrs(1) MT3 서열번호 89 GTGCCAGCAGC TGCGGT C517T
1. 각 probe oligomer는 microdisk의 carboxyl기와 공유결합하여 고정되도록 5'에 Amine기를 표지하여 합성하였음.2. 각 probe oligomer는 microdisk에 고정시킨 후 고정여부를 확인하기 위한 poly T linker(15T)를 5'에 표지하여 합성하였음.
표 2는 본 발명에 사용된 프로브 서열상기 실시예의 결과를 하기에서 서술한다.
유전자별 돌연변이형 검출을 위한 프로브 특이도 확인
하기 표 3은 리팜핀 내성유발과 관련된 rpoB 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인 결과이다.
리팜핀 내성여부는 리팜핀 내성결정 부위(RIF resistance-determining region, RRDR)인 codon 504에서 codon 533을 wild type probe(WT0~WT5)와 mutant probe로 표지된다. 돌연변이가 없는 야생형의 경우 WT0~WT5 probe 모두 양성(붉은색)으로 표시되고, 돌연변이가 있을 시, 해당 위치의 wild type의 probe 시그널은 결손되어 표시된다. 발견빈도가 높은 돌연변이 유전형의 경우 MT1(531TTG), MT2(516GTC), MT5,6(526 mutation)으로 표시된다. MT4(523GAG)은 WT3(521-524)에서 음성으로 나오는 것을 보완하는 probe이다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성(무색)으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
예로 표 3의 두 번째 샘플의 경우, 염기서열 분석결과 505CTC, 531TTG의 double mutation을 가지며, 이는 WT0(504-509), WT5(529-533) 의 음성 결과와 WT1, 2, 3, 4와 MT1(531TTG)의 양성(붉은색)으로 표현된다.
실제 프로그램에서는 최종 결과표시는 cut-off기준에 따라 +/- 으로 표시된다. cut-off 기준을 표시해주려 형광수치값이 있는 표를 사용했다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000001
하기 표 4는 아이소니아지드 내성유발과 관련된 katG 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
아이소니아지드 내성 여부는 KatG, inhA의 돌연변이 여부로 판단한다. katG codon 315의 mutation 형에 따라 MT1(S315T 1), MT2(S315T 2), MT3(S315N)에 양성(붉은색)으로 표시되며, 그 외의 돌연변이 유전자형은 katG WT probe의 음성으로 표시된다. katG WT probe 는 katG codon 314-317을 표시하며, 야생형일 경우 양성(붉은색)으로, codon 315 mutation의 경우 음성(무색)으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
katG 에서 돌연변이가 있을 시 아이소니아지드에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000002
하기 표 5는 아이소니아지드 내성유발과 관련된 inhA 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
inhA의 WT probe는 inhA promotor -8~-17 position이 야생형일 경우 양성(붉은색)으로 돌연변이가 있을 시 음성(무색)으로 표시되며, 각 MT probe는 해당 돌연변이형에서 양성(붉은색)으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
inhA에서 돌연변이가 있을 시 아이소니아지드에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000003
하기 표 6은 에탄부톨 내성유발과 관련된 embB 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
embB 유전자의 codon 306의 돌연변이 여부를 판단한다. codon 306에 돌연변이가 있을 시, WT porbe는 음성(무색)으로 표시되며, M306V와 M306I 돌연변이는 각 mutant probe인 MT1, MT2에 양성(붉은색)으로 표시된다. 그 외의 돌연변이 유전자형인 M306L의 경우 WT 음성으로만 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000004
하기 표 7은 퀴놀론계 항생제 내성유발과 관련된 gyrA 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
퀴놀론계 항생제 내성 여부는 gyrA, gyrB의 돌연변이 여부로 판단한다. gyrA의 WT1 probe는 gyrA의codon 88, 90, 91부위의 돌연변이 유무에 따라, WT2 probe는 gyrA의 codon 94부위의 돌연변이 유무에 따라 양성(붉은색) 또는 음성(무색)으로 표시된다. MT1(G88C), MT2(G88A), MT3(A90V), MT4(S91P), MT5(D94A), MT6(D94G), MT7(D94H), MT8(D94N), MT9(D94Y)은 각각의 돌연변이형이 있을 시 양성(붉은색)으로 표시된다. 예로 gyrA codon A90V의 돌연변이 경우, WT1 음성, WT2 양성, MT3 양성으로 표시되고 D94A 돌연변이 경우, WT1 양성, WT2 음성, MT5 양성으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
gyrA 또는 gyrB에서 돌연변이가 있을 시 퀴놀론계 항생제 에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000005
하기 표 8은 퀴놀론계 항생제 내성유발과 관련된 gyrB 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
gyrB의 WT probe는 gyrB codon 538-540의 야생형을 표지하여 야생형일 경우 양성(붉은색)으로 돌연변이가 있을 경우 음성(무색)으로 표시된다. 각 MT probe는 해당 돌연변이형에서 양성(붉은색)으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
gyrA 또는 gyrB에서 돌연변이가 있을 시 퀴놀론계 항생제 에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000006
하기 표 9는 이차주사제(SLID; AMK,KM,CAP) 내성유발과 관련된 rrs 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
항결핵 이차주사제 내성 여부는 rrs, eis promoter의 돌연변이 여부로 판단한다. rrs의 WT1 probe는 rrs의 1401-1402 nucleotide 위치의 돌연변이 유무에 따라, WT2 probe는 1445 nucleotide 위치의 돌연변이 유무에 따라, WT3 probe는 1484 nucleotide 위치의 돌연변이 유무에 따라 양성(붉은색) 또는 음성(무색)으로 표시된다. MT1(A1401G), MT1-2(C1402A), MT2(C1445T), MT3(G1484T) probe는 각각의 돌연변이형이 있을 시 양성(붉은색)으로 표시된다. 예로 A1401G 돌연변이 경우, WT1 음성, WT2 양성, WT3 양성, MT3 양성으로 표시되고 G1484T 돌연변이 경우, WT1 양성, WT2 양성, WT3 음성, MT3 양성으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
rrs 에서 돌연변이가 있을 시 항결핵 이차주사제(SLID; AMK,KM,CAP)에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000007
하기 표 10은 이차주사제(SLID; AMK,KM,CAP) 내성유발과 관련된 eis 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
항결핵 이차주사제 내성 여부는 eis promoter의 돌연변이 여부로 판단한다. eis의 WT1 probe는 promoter -8~-14 위치의 돌연변이 유무에 따라, WT2 probe는 -37 위치의 돌연변이 유무에 따라 양성(붉은색) 또는 음성(무색)으로 표시된다. MT1(C-8A), MT2(G-10A/C), MT3(C-12T), MT4(C-14T), MT5(C-37T) probe는 각각의 돌연변이형이 있을 시 양성(붉은색)으로 표시된다. 예로 C-12T 돌연변이 경우, WT1 음성, WT2 양성, MT3 양성으로 표시되고 C-37T 돌연변이 경우, WT1 양성, WT2 음성, WT5 양성 으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
eis 에서 돌연변이가 있을 시 Kanamycin, amikacin에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000008
하기 표 11은 스트렙토마이신 항생제 내성유발과 관련된 rpsL 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
스트렙토마이신 내성 여부는 rpsL 돌연변이 여부로 판단한다. rpsL의 WT1 probe는 codon 43의 돌연변이 유무에 따라, WT2 probe는 codon 88의 돌연변이 유무에 따라 양성(붉은색) 또는 음성(무색)으로 표시된다. MT1(K43R), MT2(K88R) probe는 각각의 돌연변이형이 있을 시 양성(붉은색)으로 표시된다. 예로 K43R 돌연변이 경우, WT1 음성, WT2 양성, MT1 양성으로 표시되고 K88R 돌연변이 경우, WT1 양성, WT2 음성, MT2 양성으로 표시된다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
psL 에서 돌연변이가 있을 시 스트렙토마이신 에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000009
하기 표 12은 스트렙토마이신 항생제 내성유발과 관련된 rrs 유전자의 돌연변이 유형별 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
스트렙토마이신 내성 여부는 rrs 돌연변이 여부로 판단한다. rrs의 WT probe는 514-517 nucleotiede위치의 돌연변이 유무에 따라 양성(붉은색) 또는 음성(무색)으로 표시된다. MT1(A514C), MT2(C517T) probe는 각각의 돌연변이형이 있을 시 양성(붉은색)으로 표시된다. 예로 A514C 돌연변이 경우, WT 음성, MT1 양성으로 표시되고 C517T 돌연변이 경우, WT 양성, MT2 양성으로 표시된다. A514T 돌연변이의 경우 돌연변이 특이 프로브 없이 wild type 프로브의 음성결과로 돌연변이를 여부를 판단한다.
각 probe의 측정된 형광신호값은 cut-off 기준에 따라 양성(붉은색)/음성으로 판단되며, 각 probe의 cut-off 기준은 표 하단에 표시하였다.
rrs에서 돌연변이가 있을 시 스트렙토마이신 에 내성을 갖는 것으로 판단한다.
Figure PCTKR2019006106-appb-img-000010
하기 표 13은 결핵균 검출 QMAP probe의 특이도 확인결과이다.
TB 특이 probe를 통해 결핵균 여부를 확인하고, 비결핵항산균(Nontuberculous Mycobacteria, NTM) 범용 probe를 통해 NTM 여부를 확인한다. 이는 비결핵항산균에 의한 감염여부만을 확인하는 것으로 각 균종을 동정하지는 않는다. 다양한 NTM 균종을 대상으로 TB probe와 NTM probe의 특이도를 확인한 결과이다. M. gordonae의 경우 NTM, TB probe에 모두 검출되지 않으나, 비병원성 환경오염균으로 검사결과에 영향을 미치지 않는다. 각각의 probe는 TB, NTM에 특이 하므로, 모두 양성인 경우 TB와 NTM 의 혼합감염을 의미한다.
Mycobacteria species QMAP Results ID probes
NTM TB
MTB complex Myc., MTB 165 705
M. avium Myc., NTM 6941 31
M. intracellulare Myc., NTM 4547 19
M. abscessus Myc., NTM 3817 5
M. asiaticum Myc., NTM 2246 47
M. celatum Myc., NTM 2500 4
M. chelonae Myc., NTM 2106 4
M. flavscence Myc., NTM 4372 5
M. fortuitum Myc., NTM 3464 4
M. gastri Myc., NTM 2206 7
M. genevense Myc., NTM 3984 365
M. gordonae N/A 592 2
M. kansasii Myc., NTM 3538 4
M. kubicae Myc., NTM 2250 70
M. leprae Myc., NTM 3900 5
M. malmoense Myc., NTM 2033 1
M. marinum Myc., NTM 6297 7
M. masilliense Myc., NTM 3645 3
M. mucogenicum Myc., NTM 4594 6
M. nonchromogenicum Myc., NTM 2259 6
M. scrofulaceum Myc., NTM 3801 287
M. smegmatis Myc., NTM 2163 47
M. szulgai Myc., NTM 4095 8
M.terrae Myc., NTM 3122 11
M. thermoresistance Myc., NTM 3163 4
M. triviale Myc., NTM 2511 54
M. ulcerance Myc., NTM 4276 64
M. xenopii Myc., NTM 3587 5
cut-off 2000 500
QMAP 기반 결핵균/ 비결핵 항산균 검출 및 항결핵약제 내성 검사법의 유용성 평가
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 리팜핀 내성의 유용성 평가를 진행하였다. 248 결핵 균주 중 리팜핀 내성유발유전자인 rpoB 유전자에 돌연변이가 확인된 159균주 중 코돈 531TTG 돌연변이가 87(54.7%)균주, 코돈526돌연변이 22(32.7%)균주, 코돈 516GTC돌연변이가 13(8.2%)균주, 코돈 516TAC돌연변이 5(3.1%)균주가 확인되었으며, 22(13.8%)균주는 코돈 510-533에 다양한 돌연변이로 확인되었다. 10(6.3%)균주는 2군데 이상의 double point mutation을 나타내었다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 14와 같다.
하기 표 14는 총 248개 배양균 DNA에서 리팜핀 내성여부 검출을 위한 rpoB 돌연변이의 본 검사법의 결과와 염기서열분석 결과이다.
QMAP assay results No. Sequence. No. Concordance rate(%)
530-533 mutant(531TTG) 87 S531L(TCG→TTG) 87 100
530-533 mutant 2 S531Q(TCG→CAG) 2 100
530-533 mutant 3 S531W(TCG→TGG) 3 100
530-533 mutant 6 L533P(CTG→CCG) 6 100
525-529 mutant(526TAC) 8 H526Y(CAC→TAC) 8 100
525-529 mutant(526DAC) 4 H526D(CAC→GAC) 4 100
525-529 mutant(526CBC) 1 H526P(CAC→CCC) 1 100
525-529 mutant(526CBC) 5 H526L(CAC→CTC) 5 100
525-529 mutant 4 H526R(CAC→CGC) 1 100
H526G(CAC→GGC) 1
H526C(CAC→TGC) 2
516GTC 13 D516V(GAC→GTC) 13 100
516TAC 5 D516Y(GAC→TAC) 5 100
515-519 mutant 3 D516L(GAC→CTC) 2 100
518deletion 1
521-524 mutant 2 S522W(TCG→TGG) 1 100
S522L(TCG→TTG) 1
510-513 mutant 6 L511P(CTG→CCG) 2 100
Q513L(CAA→CTA) 1
Q513K(CAA→AAA) 1
513-514 CAA Insertion 2
510-513mutant, 516TAC 1 Q513E(CAA→GAA)/D516Y(GAC→TAC) 1 100
510-513mutant, 523GAG, 2 Q513L(CAA→CTA)/G523E(GGG→GAG) 2 100
515-519 mutant 3 M515V(ATG→GTG)/D516G(GAC→GGC) 1 100
D516Y(GAC→TAC)/N518H(AAC→CAC) 1
D516N(GAC→AAC)/H526Y(CAC→AAC) 1
516TAC, 531TTG 1 D516Y(GAC→TAC)/S531L(TCG→TTG) 1 100
515-519 mutant, 530-533 mutant 3 D516G(CAC→GGC)/L533P(CTG→CCG) 3 100
No mutation
wild type 89 No mutations 89 100
Total N=248 248 　 248 100
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 아이소니아지드 내성검사의 유용성 평가를 진행하였다. 248 결핵 균주 중 아이소니아지드 내성유발유전자인 katG 유전자의 코돈315에서 돌연변이가 확인된 95균주 중 S315T(ACC)형이 89(93.6%)균주, S315T(ACA)형이 3(3.2%)균주, 그 외 유형이 3(3.2%)로 확인되었다. 또다른 아이소니아지드 내성유발유전자인 inhA 유전자의 promotor에서 돌연변이가 확인된 50균주 중 15UPS 돌연변이는 40(80%)균주, 8UPS 돌연변이 8(16%)균주, 17UPS 돌연변이가 2(4%)로 확인되었다. 이중 6균주는 katG , inhA에 모두 돌연변이가 확인되었다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 15과 같다.
하기 표 15는 총 248 배양균 DNA에서 아이소니아지드 내성여부 검출을 위한 katG, inhA 돌연변이의본 검사결과와 염기서열분석 결과이다.
QMAPassay results No. Sequence. No. Concordance rate(%)
katG only
315ACC 83 S315T (AGC→ACC) 83 100
315ACA 3 S315T (AGC→ACA) 3 100
315AAC 1 S315N (AGC→AAC) 1 100
315mutation 2 S315G (AGC→GGC) 2 100
S315R (AGC→AGA)
inhA only
C-15T 36 -15C→T 36 100
T-8C 3 -8T→C 3 100
T-8A 1 -8T→A 1 100
inhA mutation 2 -8T→G 2 100
G-17T 2 -17G→T 2 100
katG , inhA double mutation
315ACC, C15T 4 S315T (AGC→ACC)/-15C→T 4 100
315ACC, T8C 1 S315T (AGC→ACC)/-8T→C 1 100
315ACC, T8A 1 S315T (AGC→ACC)/-8T→A 1 100
No mutation
wild type 109 No mutations in katG or inhA 109 100
Total N=248 248 　 248 100
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 에탐부톨 내성검사의 유용성 평가를 진행하였다. 에탐부톨 내성유발유전자인 embB유전자의 306코돈에 돌연변이가 확인된 74균주 중 306V형이 27(36.5%)균주, 306I형이 41(55.4%)균주, 306L형이 6(8.1%)로 확인되었다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 16과 같다.
하기 표 16은 총 248 배양균 DNA에서 에탄부톨 내성여부 검출을 위한 돌연변이 검사의 본 검사법결과와 염기서열 분석 결과이다.
QMAPassay results (No.) Sequence. (No). Concordance rate(%)
306V 27 M306V(ATG→GTG) 27 100
306I 41 M306I(ATG→ATA) 27 100
306I M306I(ATG→ATT) 6
306I M306I(ATG→ATC) 8
306 mutation 6 M306L(ATG→CTG) 5 100
74 M306L(ATG→TTG) 1
No mutation
Wild type 174 No mutations in embB 174 　
Total N=248 322 Total N=248 248 100
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 퀴놀론계 약제 내성검사의 유용성 평가를 진행하였다. 248 결핵 균주 중 퀴놀론계 약제 내성유발유전자인 gyrA유전자에 돌연변이가 확인된 70균주 중 코돈 90의 돌연변이가 26(37.1%)균주, 코돈 91의 돌연변이가 3 (4.3%)균주, 코돈 94의 돌연변이가 33(47.1%)균주로 확인되었다. 4개(5.7%)의 균주에서는 코돈 90, 94의 double point mutation이 확인되었다. 또다른 퀴놀론계 약제 내성유발유전자인 gyrB유전자에 돌연변이가 확인된 6균주에서는 코돈 538,539,540에서 각각 돌연변이가 확인되었다. 이중 2균주에서는 gyrA, gyrB에서 double mutation이 확인되었다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 17과 같다.
하기 표 17은 총 248 배양균 DNA에서 퀴놀론계 항생제 내성여부 검출을 위한 gyrA, gyrB 돌연변이 검출의 본 검사결과와 염기서열 분석 결과이다.
QMAP assay results No. Sequence. No. Concordance rate(%)
gyrA only
A90V 24 A90V(GCG→GTG) 24 100
S91P 3 S91P(TCG→CCG) 3 100
D94A 9 D94A(GAC→GCC) 9 100
D94G 16 D94G(GAC→GGC) 16 100
D94N 4 D94N(GAC→AAC) 4 100
D94Y 4 D94Y(GAC→TAC) 4 100
88-91 mutation 4 A90V(GCG→GTG)/S91P(TCG→CCG) 3 100
D89N(GAC→AAC) 1
A90V, D94G 2 A90V(GCG→GTG)/D94G(GAC→GGC) 2 100
A90V, D94N 1 A90V(GCG→GTG)/D94N(GAC→AAC) 1 100
A90V, D94Y 1 A90V(GCG→GTG)/D94Y(GAC→TAC) 1 100
gyrB only
N538D 1 N538D (ACC→GAC) 1 100
E540D 3 E540D (GAA→GAC) 3 100
gyrA , gyrB double mutation
A90V, N538T 1 A90V(GCG→GTG)/ N538T(ACC→GCC) 1 100
A90V, E538D 1 A90V(GCG→GTG) mix, /E538D(ACC→GAC) 1 100
No mutation
wild type 174 No mutations in gyrA and gyrB 174 100
Total N=248 248 　 248 100
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 이차주사제(아미카신,카나마이신,카프레오마이신) 내성검사의 유용성 평가를 진행하였다. 248 결핵 균주 중 이차주사제 내성유발유전자인 rrs , eis 유전자에 돌연변이와 염기서열을 확인하였다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 18과 같다.
하기 표 18은는 총 248 배양균 DNA에서 이차주사제(KM, AMK, CAP) 항생제 내성여부 확인을 위한 rrs , eis 돌연변이 검출의 본 검사결과와 염기서열 분석 결과이다.
QMAPassay results No. Sequence. No. Concordance rate(%)
rrs only
A1401G mutant 40 1401A→G 40 100
rrs , eis double mutation
A1401G/ C14T mutant 2 1401A→G/-14 C→T 2 100
eis only
C8A mutant 1 -8 C→A 1 100
G10A/C mutant 7 -10 G→A 6 100
-10 G→C 1 100
C12T mutant 4 -12 C→T 4 100
C14T mutant 1 -14 C→T 1 100
G37T mutant 1 -37 G→T 1 100
No mutation
wild type 192 No mutation 192
Total N=248 248 Total N=248 248 100
고체배양 248 균주를 대상으로 QMAP 기반 스트렙토마이신 내성검사의 유용성 평가를 진행하였다. 248 결핵 균주 중 스트렙토마이신 내성유발 유전자인 rpsL , rrs 유전자에 돌연변이와 염기서열을 확인하였다. 각 돌연변이별 QMAP기반 assay 결과와 염기서열 분석결과는 아래 표 19와 같다.
하기 표 19는 총 248 배양균 DNA에서 스트렙토마이신 내성여부확인을 위한 rpsL, rrs 돌연변이 검출의 본 검사결과와 염기서열 분석 결과이다.
QMAPassay results No. Sequence. No. Concordance rate(%)
rpsL only
K43R 29 K43R (AAG→AGG) 29 100
K88R 2 K88R (AAG→AGG) 2 100
rrs only
A514C 8 514 A→C 8 100
500-514 mutant 1 514 A→T 1 100
C517T 5 517 C→T 5 100
No mutation
wild type 203 No mutations in rpsL and rrs 203 100
Total N=248 248 Total N=248 248 100

Claims (15)

  1. a)서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머를 사용하여, 상기 DNA로부터 PCR 증폭하는 단계;및
    b) 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브가 커플링된 디스크와 상기 단계 a)에서 얻어진 PCR 증폭산물을 하이브리드 형성시키는 단계를 포함하는
    결핵균 및 비결핵 항산균 검출 및 결핵균의 항생제 약제의 내성 여부를 동시에 확인하는 방법.
  2. 제 1항에 있어서, 상기 방법은 b) 단계 후 추가적으로 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 소프트웨어를 통하여 상기 디스크의 이미지를 측정하는 단계를 더욱 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  3. 제 1항에 있어서, 상기 방법은 결핵균 검출 및 항결핵약제의 내성여부를 동시에 검출하기 위해 타겟 유전자들을 다중 PCR(multiplex PCR)로 증폭시키는 것을 특징으로 하는 방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 항결핵 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 및 스트렙토마이신으로 구성된 군으로부터 선택된 하나 이상의 항생제인 것을 특징으로 하는 방법.
  5. 제1항에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 항결핵 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 및 스트렙토마이신인 것을 특징으로 하는 방법.
  6. 제1항에 있어서, 상기 프라이머는 바이오틴이 표지된 것을 특징으로 하는 방법.
  7. 서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머 및
    서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브가 커플링된 디스크를 포함하는 결핵균 및 비결핵 항산균 검출 및, 결핵균의 항생제의 내성 여부를 동시에 확인하기 위한 키트.
  8. 제7항에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 항결핵 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 및 스트렙토마이신으로 구성된 군으로부터 선택된 하나 이상의 항생제인 것을 특징으로 하는 키트.
  9. 제7항에 있어서, 상기 항생제는 리팜핀, 아이소니아지드, 에탐부톨, 퀴놀론, 항결핵 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 및 스트렙토마이신인 것을 특징으로 하는 키트.
  10. 제7항에 있어서, 상기 키트는 PCR 증폭 반응을 수행하기 위한 시약으로, DNA 폴리머라제, dNTPs 및 버퍼를 더욱 포함하는 것을 특징으로 하는 키트.
  11. 서열번호 1 내지 서열번호 22의 프라이머를 포함하는 리팜핀 내성결핵균, 아이소니아지드 내성 결핵균, 에탐부톨 내성 결핵균, 퀴놀론계 약제 내성 결핵균, 항결핵 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 및 스트렙토마이신 내성결핵균과 감수성 결핵균 및 결핵균과 비결핵 항산균의 구분을 위한 조성물.
  12. 제11항에 있어서, 상기 조성물은 서열번호 23 내지 88의 올리고머 프로브를 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 조성물.
  13. 서열번호 1 및 서열번호 2로 구성된 결핵균 특이, 비결핵 항산균 검출부위를 포함하는 rpoB 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 3 및 서열번호 4로 구성된 리팜핀 내성관련 rpoB 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 5 및 서열번호 6로 구성된 아이소니아지드 내성관련 katG 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 7 및 서열번호 8로 구성된 아이소니아지드 내성관련 inhA 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 9 및 서열번호 10로 구성된 에탐부톨 내성관련 embB 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 11 및 서열번호 12로 구성된 퀴놀론계 약제 내성관련 gyrA 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 13 및 서열번호 14로 구성된 퀴놀론계 약제 내성관련 gyrB 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 15 및 서열번호 16로 구성된 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 내성관련 rrs 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 17 및 서열번호 18로 구성된 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 내성관련 eis 유전자 증폭 프라이머 세트;
    서열번호 19 및 서열번호 20으로 구성된 스트렙토마이신 내성관련 rpsL 유전자 증폭 프라이머 세트; 및
    서열번호 21 및 서열번호 22로 구성된 스트렙토마이신 내성관련 rrs 유전자 증폭 프라이머 세트로 이루어진 프라이머 세트 조성물.
  14. 제13항에 있어서, 상기 프라이머는 바이오틴이 표지된 것을 특징으로 하는 조성물.
  15. 서열번호 23 내지 89의 올리고머 프로브로 이루어진 리팜핀 내성결핵균, 아이소니아지드 내성 결핵균, 에탐부톨 내성 결핵균, 퀴놀론계 약제 내성 결핵균, 아미카신, 카나마이신, 카프레오마이신 내성결핵균, 스트렙토마이신 내성결핵과 감수성 결핵균 및 결핵균과 비결핵 항산균의 구분을 위한 프로브 조성물.
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