WO2018194089A1 - 遺伝子改変コクサッキーウイルス及び医薬組成物 - Google Patents

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楊 賈
将平 宮本
健一郎 原
篤文 岩永
憲三朗 谷
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国立大学法人東京大学
新日本製薬株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a genetically modified Coxsackie virus and a pharmaceutical composition applicable to cancer treatment.
  • the present invention is useful in the field of oncolytic viral therapy.
  • the oncolytic virus therapy is a treatment method in which a cancer cell is infected with a virus, and the cancer tissue is destroyed and killed using the oncolytic property of the virus while the virus is propagated in the cancer tissue.
  • Clinical studies using DNA viruses such as adenovirus and herpes simplex virus have been conducted on brain tumors and breast cancer, and results showing safety and efficacy are being reported.
  • Coxsackievirus group B type 3 (Non-Patent Documents 1 to 3) has a single-stranded plus-strand RNA genome, grows only in the cytoplasm, and has a low possibility of introducing mutations into the host cell genome. It is considered relatively safe in oncolytic virus therapy.
  • CVB3 is a common virus, and in many cases, it remains an inapparent infection.
  • remarkable oncolytic properties against human non-small cell lung cancer have been reported (Non-patent Document 4).
  • Coxsackievirus A21 (CVA21) is known as one of the viruses expected to be applied to oncolytic virus therapy (Patent Document 1).
  • CVA21 Coxsackievirus A21
  • Patent Document 1 By incorporating miRNA into the virus genome, the virus is tissue-specific. Has been reported to have grown (Non-patent Document 5).
  • CVB-WT wild-type CVB3
  • the proliferation of viruses is suppressed in normal cells other than the target cancer cells, not limited to the presence or absence of undesirable effects, and safety is further enhanced. There is a strong demand for improvement.
  • the present invention is applicable to the field of oncolytic virus therapy for treating cancer, and an object thereof is to provide a genetically modified Coxsackie virus excellent in antitumor effect and safety and a pharmaceutical composition.
  • the present inventors tried to insert a target sequence of tissue-specific microRNA (miRNA) into the genome 5 ′ untranslated region (UTR) and / or the genome 3 ′ UTR of CVB3-WT.
  • miRNA tissue-specific microRNA
  • UTR untranslated region
  • CVB3-WT genome 3 ′ UTR
  • the present inventors focused on the miR-34 family that has not been studied for any similar purpose.
  • This miR-34 family is located downstream of the p53 gene, which is one of the tumor suppressor genes, and has been reported to be involved in cell cycle, apoptosis, cell senescence, etc. in cells throughout the body (Fig. 1). reference). In addition, the miR-34 family is highly expressed in normal cells throughout the body (see FIG. 2). On the other hand, abnormalities such as deletion of the p53 gene are frequently observed in cancer cells. Along with this, the miR-34 family has also been reported to be deleted or decreased in expression in multiple cancer cells.
  • the present inventors pay attention to the above-described high expression in normal cells of the miR-34 family and deletion and decrease in expression in cancer cells, and insert the target sequence of miR-34 into the genome of CVB3-WT.
  • normal cells that are not cancerous we try to produce a genetically modified Coxsackie virus with excellent safety that can suppress virus growth in cancer cells and efficiently propagate the virus in cancer cells to exert oncolytic properties. did.
  • miRNA expressed in a tissue-specific manner in order to reduce the action caused by CVB-WT.
  • miR-217 which is said to be expressed specifically in the pancreas
  • miR-1 which is said to be expressed specifically in muscle tissue and normal cells.
  • the genetically modified Coxsackievirus of the present invention comprises at least a polynucleotide comprising a target sequence of normal cell-specific or tissue-specific microRNA (miRNA) in the genome of Coxsackievirus wild type (CVB3-WT).
  • the target sequence of the normal cell-specific miRNA includes a mutant genome that has been inserted, and the proliferation is specifically suppressed in normal cells, and has a configuration corresponding to at least one of miR-34a and miR-34c .
  • miRNA normal cell-specific or tissue-specific microRNA
  • CVB3-WT tissue-specific microRNA
  • Virus growth can be suppressed in existing tissues. That is, the RISC complex containing miRNA binds to the inserted target sequence, the viral protein translation is inhibited, and the virus growth can be suppressed in a tissue-specific manner.
  • the target sequence of the normal cell-specific miRNA corresponds to at least one of miR-34a and miR-34c
  • virus growth can be suppressed in tissues where miR-34a or miR-34c is present. That is, since the miR-34 family containing miR-34a or miR-34c is highly expressed in normal cells, it is possible to increase the safety by suppressing the growth of viruses in normal cells.
  • viruses can be propagated in tissues where miR-34a or miR-34c is not present, that is, cancer cells in which miR-34 family is deleted or decreased in expression, and the antitumor effect is selectively exerted. It becomes possible to make it.
  • the position where the polynucleotide is inserted is at least one of the 5′UTR region and the 3′UTR region of the CVB3-WT genome
  • replication is prevented during virus replication in the host cell. It becomes difficult. That is, since the 5′UTR region or the 3′UTR region is an untranslated region that is not translated into a protein, the influence of insertion of the target sequence into the CVB3-WT genome hardly affects the translation of viral RNA in the host cell. Thus, the translation of the viral RNA is properly performed. Along with this, protein synthesis and virus particle replication proceed, allowing the virus to grow and exhibiting an antitumor effect on cancer cells.
  • positions 7304 and 7305 are within the 3'UTR region of the CVB3-WT genome and is a stop codon that terminates translation of the CVB3-WT genome into protein (positions 7298, 7299, 7300 are stop codons) Is a position shifted by 4 bases downstream from the base sequence constituting the structure. That is, since it is located in the 3′UTR region and close to the termination codon, translation can be properly terminated while maintaining the 3′UTR three-dimensional structure necessary for replication. As a result, it is possible to more stably propagate the virus in the cancer cell and destroy the cancer cell.
  • positions 742 and 743 are within the 5′UTR region of the CVB3-WT genome and the initiation codon that initiates translation into the protein of the CVB3-WT genome (positions 743, 744, and 745 are the initiation codons) Is a position corresponding to immediately upstream of the base sequence that constitutes. That is, since it is in the 5′UTR region and is adjacent to the start codon, translation can be properly completed while maintaining the 3′UTR three-dimensional structure necessary for replication.
  • the polynucleotide inserted into the 5′UTR region was less likely to drop out of the genome than the polynucleotide inserted into the 3′UTR region. As a result, it becomes possible to more stably prevent virus growth in normal cells and efficiently propagate viruses in cancer cells to destroy cancer cells.
  • the probability that the RISC complex containing the miRNA binds to the target sequence in the tissue where the miRNA exists can be increased, and further, viral genome mutation occurs. In this case, it is possible to avoid deviation from miRNA, so that tissue-specific virus growth suppression can be further ensured.
  • the inserted polynucleotide is a polynucleotide having a sequence in which one to several nucleotides are deleted, substituted or added in the following (a) or (b), or (a) or (b) Is a sequence in which four target sequences of miR-34a or miR-34c are arranged via a spacer sequence.
  • the tissue where miR-34a or miR-34c is present the growth of the virus can be suppressed more reliably.
  • the virus can be propagated in a tissue in which miR-34a or miR-34c does not exist, that is, a cancer cell, and the antitumor effect can be selectively exerted.
  • the region into which the polynucleotide is inserted has a configuration only in the 5′UTR region of the CVB3-WT genome, a configuration only in the 3′UTR region of the CVB3-WT genome, and a 5 ′ of the CVB3-WT genome. It includes both the UTR region and the 3'UTR region.
  • the polynucleotide when the polynucleotide is inserted into the 5'UTR region and 3'UTR region of the CVB3-WT genome, the number of miR-34a or miR-34c target sequences to be inserted increases. Thus, in the tissue where miR-34a or miR-34c exists, it is possible to more reliably suppress the growth of the virus. In addition, even if the inserted polynucleotide is dropped from the genome in one region of the 5′UTR region or 3′UTR region, the presence of the inserted polynucleotide in the other region miR- In tissues where 34a or miR-34c is present, virus growth can be stably suppressed.
  • tissue-specific miRNA contains at least one of miR-1 and miR-217, it is possible to suppress the growth of the genetically modified Coxsackie virus in a tissue-specific manner in the pancreas, liver, or muscle tissue. That is, it is possible to reduce or suppress an undesirable effect that occurs when CVB3-WT is introduced into cells of the pancreas, liver, or muscle tissue.
  • the polynucleotide is a polynucleotide comprising a sequence obtained by deleting, substituting, or adding one to several nucleotides in the following (c) or (d), or (c) or (d), 2
  • the safety when using the genetically modified Coxsackie virus can be further enhanced.
  • CVB3-WT when CVB3-WT is used, unfavorable side effects are strongly generated in the pancreas, and miR-217 is highly expressed in the pancreas, so it is safe to suppress the occurrence of side effects in the pancreas. It contributes to the improvement of property.
  • a spacer sequence is interposed between individual target sequences.
  • the region into which the polynucleotide is inserted has a configuration only in the 5′UTR region of the CVB3-WT genome, a configuration only in the 3′UTR region of the CVB3-WT genome, and a 5 ′ of the CVB3-WT genome. It includes both the UTR region and the 3'UTR region.
  • the miR-34a and miR-217, or miR-34c and miR-217 targets The number of inserted sequences will increase, and virus growth can be more reliably suppressed in tissues where miR-34a and miR-217 or miR-34c and miR-217 are present.
  • the polynucleotide is a polynucleotide comprising a sequence obtained by deleting, substituting, or adding one to several nucleotides in the following (e) or (f), or (e) or (f), 2
  • the safety when using the genetically modified Coxsackie virus can be further enhanced.
  • a spacer sequence is interposed between individual target sequences.
  • the region into which the polynucleotide is inserted has a configuration only in the 5′UTR region of the CVB3-WT genome, a configuration only in the 3′UTR region of the CVB3-WT genome, and a 5 ′ of the CVB3-WT genome. It includes both the UTR region and the 3'UTR region.
  • the genetically modified Coxsackie virus according to the present invention can be applied in the field of oncolytic virus therapy for treating cancer, and is excellent in antitumor effect and safety.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention is applicable in the field of oncolytic virus therapy for treating cancer, and has excellent antitumor effects and safety.
  • FIG. 4 is a schematic block diagram showing expression of miR-34 family and involvement in cell cycle and the like. It is a graph which shows the expression level of each miRNA (miR-1, miR-217, miR-34a, and miR-34c) in each tissue in the human body. It is the schematic which shows the arrangement
  • One aspect of the genetically modified Coxsackievirus provided by the present invention is a mutant genome in which at least one polynucleotide comprising a target sequence of tissue-specific microRNA (miRNA) is inserted into the genome of Coxsackievirus B3 wild type (CVB3-WT). Is a genetically modified Coxsackie virus. Such a genetically modified Coxsackie virus can be suppressed in a tissue-specific manner.
  • miRNA tissue-specific microRNA
  • the normal cell-specific miRNA (and its target sequence) used in the present invention is at least one of miR-34a and miR-34c.
  • miR-34a or miR-34c is one member of the miR-34 family that is highly expressed in normal cells throughout the body. Only one type of miR-34a or miR-34c may be used, or two types may be used in combination.
  • FIG. 3 shows the sequence of miR-34a (SEQ ID NO: 1) and the sequence of miR-34c (SEQ ID NO: 2).
  • the position where the target sequence of normal cell or tissue-specific miRNA is inserted is preferably within the 5 ′ UTR region or 3 ′ UTR region of the CVB3-WT genome. Further, the position where the target sequence of normal cell or tissue-specific miRNA is inserted is more preferably in each of the 5′UTR region and 3′UTR region of the CVB3-WT genome.
  • the position is upstream from position 7344 or downstream from position 7345 of the CVB3-WT genome. More preferably, it is between positions 7304 and 7305.
  • the position where the target sequence of the tissue-specific miRNA is inserted is preferably within the 3 ′ UTR region of the CVB3-WT genome, and is upstream from position 7344 or downstream from position 7345 of the CVB3-WT genome. And more preferably between positions 7304 and 7305.
  • the target sequence of the tissue-specific miRNA is inserted within the 5 ′ UTR region of the CVB3-WT genome, it is preferably between the positions 742 and 743 of the CVB3-WT genome.
  • the number of miR-34a or miR-34c target sequences to be inserted is preferably a plurality, for example, 2 to 6.
  • the inserted polynucleotide is (a) or (b) below.
  • a polynucleotide comprising a sequence having at least 90%, preferably 95%, more preferably 98%, and even more preferably 99% sequence identity with the nucleotide sequence shown in (a) or (b).
  • a method for obtaining a polynucleotide having a sequence obtained by deleting, substituting, or adding one to several nucleotides in a nucleotide sequence, and a method for calculating sequence identity with respect to the nucleotide sequence Is well known to those skilled in the art. The same applies to the nucleotide sequences shown below.
  • the tissue-specific miRNA (and its target sequence) used in the present invention contains at least one of miR-1 and miR-217. May be. It is said that miR-217 is expressed specifically in the pancreas and miR-1 is expressed specifically in muscle tissue and normal cells. miR-1 and miR-217 are used in combination with at least one of miR-34a and miR-34c. Moreover, miR-1 and miR-217 may be combined.
  • the number of miR-1 or miR-217 target sequences to be inserted can be variously selected as long as the target effect is achieved, but a plurality of, for example, 2 to 6, is preferable.
  • the inserted polynucleotide is the following (c) or (d).
  • a polynucleotide comprising a sequence obtained by deleting, substituting, or adding one to several nucleotides in (c) or (d), which can function in the same manner as (c) or (d), That is, between positions 742 and 743 of the CVB3-WT genome (5′UTR region), between positions 7304 and 7305 of the CVB3-WT genome (3′UTR region), and position 742 of the CVB3-WT genome
  • it can suppress proliferation in a normal cell-specific manner.
  • a polynucleotide comprising a sequence having at least 90%, preferably 95%, more preferably 98%, and even more preferably 99% sequence identity with the nucleotide sequence shown in (c) or (d). , (C) or (d) that can function in the same way, that is, when inserted into each position of the CVB3-WT genome and constitute a genetically modified Coxsackie virus, suppresses proliferation in a normal cell-specific manner It is something that can be done.
  • the inserted polynucleotide is the following (e) or (f).
  • a polynucleotide comprising a sequence obtained by deleting, substituting or adding one to several nucleotides in (e) or (f), which can function in the same manner as (e) or (f), That is, between positions 742 and 743 of the CVB3-WT genome (5′UTR region), between positions 7304 and 7305 of the CVB3-WT genome (3′UTR region), and position 742 of the CVB3-WT genome
  • it can suppress proliferation in a normal cell / tissue-specific manner.
  • proliferation can be suppressed tissue-specifically in muscle tissue.
  • a polynucleotide comprising a sequence having at least 90%, preferably 95%, more preferably 98%, and even more preferably 99% sequence identity with the nucleotide sequence shown in (e) or (f).
  • proliferation can be suppressed tissue-specifically in muscle tissue.
  • the genetically modified virus of the present invention can be prepared by genetic manipulation of CVB3-WT.
  • CVB3-WT can be isolated from a specimen or the like by a known virus isolation method. Examples of virus isolation methods include centrifugation, propagation of virus by cultured cells, and the like.
  • virus isolation methods include centrifugation, propagation of virus by cultured cells, and the like.
  • CVB3 which is the source of genetic modification, may be selected by culturing naturally occurring viruses in cell lines over many passages so as to acquire high infectivity to cancer cells.
  • cell lines suitable for biological selection are cancer cell lines that express CAR, DAF, and the like.
  • Evaluation of genetically modified Coxsackie viruses prepared according to the present invention can be evaluated for various aspects such as safety, efficacy, titer, etc. by various means of in vitro or in vivo well known to those skilled in the art. .
  • aggressiveness serum, toxicity
  • Methods for testing cell line survival include, for example, a method of quantifying the number of viable stained cells by staining fixed cells with a staining solution, a method of quantifying a crystal violet method, an apoptosis-specific marker, etc. There is. Using these methods, cancer cells that have been incubated with CVB3 are used to quantify cancer cells that are alive after a certain amount of time, resulting in cancer that has died due to cytotoxicity caused by CVB3 infection. Cells can be quantified.
  • H1299 cells are suitable for genetically modified virus production and virus titration.
  • the present invention proposes the use of cells (eg, H1299 cells) in which the expression level of the corresponding normal cell-specific miRNA is not high for titration or propagation of the genetically modified Coxsackie virus.
  • One embodiment of the pharmaceutical composition provided by the present invention contains the above-described genetically modified CVB3 as an active ingredient.
  • the cancer types that are treated by the pharmaceutical composition are not particularly limited, and include solid cancers and liquid cancers.
  • CVB3 has cytotoxicity against cancer cells of solid and humoral cancers. Cytotoxicity of CVB3 on cancer cells is due to apoptosis caused by lysis of cancer cells caused by the virus infecting cancer cells and replicating in the cytoplasm of the cancer cells, or by activation of caspases in cancer cells caused by virus infection. by.
  • CVB3 recognizes CAR on the cell surface and can infect the cell.
  • the term “treatment” in relation to a disease or condition includes prevention and treatment.
  • CVB3 has cytotoxicity against cancer cells of solid cancer and humoral cancer.
  • cancer cells that are particularly solid cytotoxic and are induced to have strong cytotoxicity are small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, lung flatness.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment includes small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, lung squamous cell carcinoma, malignant mesothelioma, colon cancer, colorectal cancer, esophageal cancer, hypopharyngeal cancer, human B lymphoma, breast cancer And any one selected from the group consisting of cervical cancer.
  • Lung cancer is a cancer type with the highest number of affected individuals.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment can contribute to the treatment of more lung cancer patients. Colorectal cancer and colorectal cancer are increasing in morbidity and mortality in Japan, which has established a Western diet. It is beneficial for the patient that the pharmaceutical composition according to the present embodiment increases the options of therapeutic agents for colorectal cancer and colorectal cancer. Esophageal cancer has a high recurrence rate of 30 to 50% after surgical resection and is not sensitive to existing drugs. Improvement in the therapeutic results of esophageal cancer can be expected by the pharmaceutical composition according to the present embodiment.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment has strong cytotoxicity against CDDP-resistant, gefitinib-resistant or oxaliplatin-resistant cancer cells. Therefore, it is possible to provide an effective treatment for so-called intractable cancer that shows resistance to these anticancer agents.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment contains CVB3, it exhibits strong cytotoxicity against cancer stem cells.
  • Cancer stem cells are considered to be one of the causes of cancer recurrence and are useful for preventing cancer metastasis and recurrence.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment can be in various dosage forms and adopt various administration routes. That is, the pharmaceutical composition according to the present embodiment can be a topical preparation or a preparation for systemic administration. For example, it can be an injection or infusion, and can be intratumoral, intravenous, intrathoracic, or intraperitoneal depending on the type of cancer. In particular, in many digestive organ cancers such as esophageal cancer and colon cancer, the pharmaceutical composition can be directly injected into the tumor tissue while visually confirming the tumor tissue with an endoscope or the like. In this case, since the injected site can be confirmed with an endoscope or the like, there is also an advantage that it is easy to cope with bleeding. In addition, it may be administered orally or may be administered via muscle, subcutaneous, rectum, vagina, nasal cavity or the like.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment may contain a carrier, a diluent or an adjuvant in addition to the genetically modified CVB3.
  • a carrier for example, liposome, micelle and the like are preferable.
  • Liposomes contain a combination of lipids and steroids or steroid precursors that contribute to membrane stability.
  • examples of the lipid include phosphatidyl compounds such as phosphatidylglycerol, phosphatidylcholine, phosphatidylserine, sphingolipid, phosphatidylethanolamine, cerebroside, and ganglioside.
  • CVB3 covered with liposomes or micelles can reduce the host immune response.
  • Examples of the diluent include demineralized water, distilled water, and physiological saline, and examples of the adjuvant include plant oils, cellulose derivatives, polyethylene glycol, and fatty acid esters.
  • the pharmaceutical composition may contain a sweetener, a disintegrant, a diluent, a coating agent, a preservative and the like.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment is administered so that CVB3 is in an amount sufficient to treat cancer.
  • the dose is determined based on the patient's weight, age, sex, tumor tissue size, and the like.
  • CVB3 may be contained in 1 ml of the liquid at 1 ⁇ 10 2 to 1 ⁇ 10 10 TCID 50 (50% tissue culture infectious dose).
  • CVB3 may be contained in 1 ml of the liquid at 1 ⁇ 10 5 TCID 50 or more.
  • the pharmaceutical composition may be administered once or multiple times.
  • the pharmaceutical composition may be continuously administered as a sustained release preparation.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment may be used in combination with an anticancer agent.
  • An antitumor effect can be expected to be improved by using an anticancer agent having an action mechanism different from that of the pharmaceutical composition.
  • Anticancer agents are not particularly limited, but small cell lung cancer, non-small cell lung cancer, lung squamous cell carcinoma, malignant mesothelioma, colon cancer, colorectal cancer, esophageal cancer, hypopharyngeal cancer, human B lymphoma, cervical cancer and pancreatic cancer What is used for the treatment of these is desirable.
  • the anticancer agent is CDDP (cisplatin), gefitinib, oxaliplatin and the like.
  • the pharmaceutical composition according to the embodiment of the present invention may contain, as an active ingredient, a polynucleotide derived from CVB3 (including genetic variants, the same shall apply hereinafter) capable of infecting cancer cells.
  • the polynucleotide derived from CVB3 may be a viral RNA directly isolated from CVB3, a synthetic RNA, or a cDNA corresponding to the base sequence of the isolated viral RNA. Any method can be used to isolate viral RNA. Methods for isolating viral RNA are, for example, methods based on the use of phenol / chloroform extraction.
  • the polynucleotide may be a virus plasmid or an expression vector into which a polynucleotide for generating a virus is incorporated.
  • Expression vectors include, for example, plasmids that can express RNA encoding viral proteins necessary to generate viruses.
  • the expression vector may include a transcriptional regulatory control sequence to which the inserted polynucleotide is operably linked.
  • the transcriptional regulatory control sequence here is, for example, a promoter for initiating transcription, an expression control element for enabling ribosome binding to the transcribed mRNA, and the like.
  • expression vectors include pSV2neo, pEF-PGk. Puro, pTk2, non-replicating adenovirus shuttle vector, cytomegalovirus promoter, etc. can be used.
  • a cDNA encoding a viral protein necessary to give rise to a virus can be prepared by reverse transcription of viral RNA or a fragment thereof.
  • the pharmaceutical composition according to the present embodiment may contain a carrier such as a liposome in addition to a polynucleotide derived from CVB3 capable of infecting cancer cells.
  • a carrier such as a liposome
  • the polynucleotide derived from CVB3 includes, for example, a polynucleotide comprising the sequence of SEQ ID NO: 1 or 2 and / or a polynucleotide comprising any one of the sequences of SEQ ID NOs: 3 to 8, 19, 20, 25, 26 It may be.
  • Table 1 The contents shown in Table 1 below are given as an example of the type of target sequence of the tissue-specific miRNA in the present invention and the position of the CVB3-WT genome into which this target sequence is inserted.
  • Table 1 The contents of Table 1 are explained. From the left side of the table, the number, the virus name, the type of target sequence inserted between positions 742-743 bp in the genome 5 ′ untranslated region (UTR) of CVB3-WT, and CVB3-WT The type of target sequence inserted between positions 7304-7305bp in the genome 3'untranslated region (UTR). For example, in the case of No.7 virus (CVB3-34a & 217T-53), miR-34a between positions 742-743bp in 5'UTR and between positions 7304-7305bp in 3'UTR, respectively.
  • UTR untranslated region
  • a total of 8 miRNA target sequences are inserted into the genome as target sequences. That is, two miR-34a target sequences and two miR-217 target sequences are inserted between positions 742-743 bp in the 5 ′ UTR.
  • two miR-34a target sequences and two miR-217 target sequences are inserted between positions 7304-7305 bp in the 3 ′ UTR.
  • miR-34a or miR-34c target sequences between positions 742-743 bp in the 5'UTR and between positions 7304-7305 bp in the 3'UTR of the CVB3-WT genome, respectively.
  • a gene-modified virus was prepared by inserting four polynucleotides or by inserting a polynucleotide combining two target sequences of miR-34a and two target sequences of miR-217.
  • RISC complex with miR-34a, miR-34c or miR-217 highly expressed in normal cells binds to the inserted miR-34a, miR-34c or miR-217 target sequence and translates viral proteins, etc. Inhibits proliferation in normal cells.
  • miRNA target sequence (miR-34aT ⁇ 2 & miR-217T ⁇ 2 + (miR-34aT ⁇ 2 & miR-217T ⁇ 2-)) was created by combining two miR-34a target sequences and two miR-217 target sequences. did.
  • the target sequence of miR-34a or miR-34c was inserted between 7304-7305 bp of the CVB3 genome, respectively.
  • the target sequence of miR-34a or miR-34c was inserted between 742-743 bp of CVB3 genome, respectively.
  • miR-34a and miR-217 target sequences were inserted between 742-743 bp of the CVB3 genome and between 7304-7305 bp of the CVB3 genome, respectively.
  • the target sequence was inserted into the genome using the In-Fusion cloning (TaKaRa) method (see FIGS. 4, 5, and 6).
  • the In-Fusion cloning method can be easily carried out by purchasing a commercially available kit (TaKaRa).
  • Each of the gene-modified CVB3s (CVB3-miR-34aT, CVB3-miR-34cT) was found to proliferate in the lung cancer cell line (NCI-H1299 cells), and the gene-modified CVB3 was successfully produced.
  • FIG. 6 is a diagram showing the insertion position of the CVB3-WT genome into the 5′UTR.
  • four target sequences of miR-34c are located between positions 742-743 bp in the 5′UTR. The inserted sequence is shown.
  • CVB3-34aT-3 refers to the target sequence of miR-34a inserted into 4 (polynucleotide of SEQ ID NO: 3) 3'UTR
  • CVB3-34cT-3 refers to a target sequence of miR-34c inserted into 4 (polynucleotide of SEQ ID NO: 4) 3′UTR.
  • CVB3-34aT-5 refers to a target sequence of miR-34a inserted into 4 (polynucleotide of SEQ ID NO: 3) 5′UTR
  • CVB3-34aT-53 refers to four miR-34a target sequences (polynucleotide of SEQ ID NO: 3) inserted into 5′UTR and 3′UTR
  • CVB3-34a & 217T-53 refers to a polynucleotide consisting of two miR-34a target sequences and two miR-217 target sequences (polynucleotide of SEQ ID NO: 25), 5′UTR and 3′UTR.
  • Points to the one inserted in CVB3-1 & 217T refers to a polynucleotide consisting of two miR-1 target sequences and two miR-217 target sequences (polynucleotide of SEQ ID NO: 29) inserted in 3'UTR. Yes.
  • virus production and titer were measured using H1299 cells. More specifically, CVB3-WT, CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 viruses were introduced into virus-uninfected H1299 cell lines to produce viruses. The produced virus was collected and again infected with a virus-uninfected H1299 cell line, and the virus titer was measured.
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 obtained a result showing a sufficient oncolytic effect (see FIG. 9).
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 showed the same behavior as CVB3-WT in A549 cells, H1299 cells, and AsPC-1 cells.
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 showed the same behavior as CVB3-WT in A549 cells, H1299 cells, and AsPC-1 cells.
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 and CVB3-WT showed the same behavior as CVB3-WT in A549 cells, H1299 cells, and AsPC-1 cells.
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 and CVB3-WT showed the same behavior as CVB3-WT in A549 cells, H1299 cells, and AsPC-1 cells.
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 are capable of virus growth in cancer cells and exert an oncolytic effect.
  • CVB3-WT it was revealed that normal cells do not exert an oncolytic effect and virus growth is suppressed.
  • CVB3-34aT-3, CVB3-34aT-5, CVB3-34aT-53 and CVB3-34a & 217T-53 can proliferate in cancer cells and exert an oncolytic effect. It became clear. Furthermore, in cancer cells and normal cells in which miR-34a was forcibly highly expressed, unlike CVB3-WT, it was clarified that virus growth was suppressed without exhibiting an oncolytic effect.
  • CVB3-WT the growth of each virus of CVB3-WT, miR-1 & 217T, CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 in various cancer cells and normal cells and the presence or absence of an oncolytic effect were evaluated.
  • cancer cells the above-described NSCLC (H1299 cells) and BEAS-2B cells were used.
  • each virus of CVB3-WT, CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 produced in H1299 cells was infected with virus-uninfected BEAS-2B cells (1.0 ⁇ 10 4 cells), and after 24 hours, Cell viability after 48 hours and 72 hours was measured.
  • MOI 0.01
  • the cells of BEAS-2B cells after 72 hours in CVB3-WT are almost dead
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 the BEAS after 72 hours -2B cell survival was confirmed (see FIG. 14).
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 can proliferate virus in cancer cells and exert an oncolytic effect.
  • CVB3-WT it was revealed that virus growth was suppressed in normal cells and cytotoxicity was strongly suppressed.
  • FIG. 15 shows the cell viability of BEAS-2B cells (1.0 ⁇ 10 4 cells) and Het-1A cells (1.0 ⁇ 10 4 cells) after 72 hours.
  • the cell viability of Het-1A cells is higher in CVB3-34aT-3 than in CVB3-WT, and in CVB3-34cT- 3 showed a higher value.
  • MOI 0.001 in cancer cells, normal cells.
  • lung cancer cell lines NSCLC A549 cells (1.0 ⁇ 10 4 cells), H1299 cells (1.0 ⁇ 10 4 cells)), pancreatic cancer cell lines AsPC-1 cells (1.0 and ⁇ 10 4 cells), was used BEAS-2B cells (1.0 ⁇ 10 4 cells) respectively as normal cells shows cell viability after 72 hours.
  • the cell viability of BEAS-2B cells was higher in each of the other viruses than CVB3-WT. Moreover, the cell survival rate of CVB3-34aT-53 and CVB3-34a & 217T-53 was higher than that of CVB3-34aT-3 and CVB3-34aT-5.
  • MOI 0.001 for cancer cells
  • MOI 0.1 for normal cells
  • the results showed that the cell viability of BEAS-2B cells was higher in each of the other viruses than CVB3-WT. Moreover, the cell survival rate of CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 was higher than that of miR-1 & 217T.
  • the tumor volume was observed to increase over time from the day when the cancer cell line (H1299) was administered.
  • the tumor was not enlarged, and eventually no tumor was confirmed.
  • the survival rate of the mice became 0% in about 30 days from the day when the cancer cell line (H1299) was administered.
  • the temporary body weight was 10 to 20 days from the day when the cancer cell line (H1299) was administered. A decrease was observed.
  • no decrease in body weight was observed in the untreated mice and the mice treated with the CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 viruses. Note that the decrease in body weight observed in mice administered with CVB3-WT is presumed to have been caused by the effects of side effects caused by administration of CVB3-WT.
  • each of the CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 viruses showed the same tumor as CVB3-WT against the human lung cancer cell line (H1299). It became clear that the solubility effect was exhibited.
  • the temporary weight loss that occurred in the mice administered with CVB3-WT does not occur, so the occurrence of side effects is suppressed. The result was suggested to be.
  • the amount of each component in the blood was measured with a dry clinical chemistry analyzer to evaluate the presence or absence of side effects.
  • the virus was administered into the tumor on the second day from the day when the cancer cell line (H1299) was administered, and the blood of the mouse was collected two days later.
  • the mice in the twice-administration group administered the virus intratumorally on the 2nd and 4th day from the day when the cancer cell line (H1299) was administered, and after 2 days, the blood of the mice was collected.
  • FIG. 22 shows the results of the mice in the second administration group in which the viruses CVB3-WT, CVB3-34a & 217T-53, CVB3-34aT -53 and miR-1 & 217T were administered into the tumor.
  • a large amount of each marker component was detected in mice administered with CVB3-WT and miR-1 & 217T, causing side effects.
  • the mice administered with CVB3-34aT-53 detected a higher amount of each marker component than the control, but resulted in a smaller amount of each marker component than CVB3-WT and miR-1 & 217T.
  • the amount of each marker component equal to or less than that of the control was shown.
  • each of 5'UTR (between positions 742-743bp) and 3'UTR (between positions 7304-7305bp) of CVB3 genome was inserted, and the virus after insertion of the target sequence was subcultured 3 or 6 times to confirm the presence or absence of the target sequence from the genome, and the retention stability of the target sequence was evaluated.
  • the base length of the CVB3 genome is about 400 bp
  • the base length of each target sequence inserted into the CVB3 genome is about 500 bp.
  • the CVB3 genome extracted from each sample was electrophoresed by a known electrophoresis method to confirm the base length. That is, when the target sequence is missing from the CVB3 genome, the base length is confirmed to be about 400 bp.
  • FIG. 23 (a) shows a target using a genome extracted from CVB3-WT without a target sequence and a genome extracted from CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 subcultured three times.
  • the results of electrophoresis obtained by amplifying the vicinity of the sequence insertion site by PCR reaction and electrophoresing the product are schematically shown.
  • FIG. 23 (b) shows a genome extracted from CVB3-WT without a target sequence, a genome extracted from CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 subcultured 6 times, and 10th passage.
  • FIG. 23 (b) shows a genome extracted from CVB3-WT without a target sequence, a genome extracted from CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 subcultured 6 times, and 10th passage.
  • FIG. 23 (a) and FIG. 23 (b) show the results of subculturing each virus by inserting the target sequence into 3′UTR.
  • FIG. 24 (a) to FIG. 24 (f) show the genome extracted from CVB3-WT in which no target sequence is inserted and the virus in which each target sequence is inserted three times, six times and ten times.
  • the results of electrophoresis in which the vicinity of the target sequence insertion site was amplified by PCR reaction using the genome extracted from the cultured one and the product was electrophoresed are schematically shown.
  • FIG. 24 (a) shows the results of a PCR reaction near the target sequence inserted into the 5′UTR in the CVB3-34aT-53 virus genome.
  • FIG. 24 (b) shows the results of the PCR reaction around the target sequence inserted into the 5 ′ UTR in the CVB3-34a & 217T-53 virus genome.
  • FIG. 24 (c) shows the results of the PCR reaction around the target sequence inserted into the 5 ′ UTR in the CVB3-34aT-5 viral genome.
  • FIG. 24 (d) shows the results of the PCR reaction around the target sequence inserted into the 5 ′ UTR in the CVB3-34cT-5 viral genome.
  • FIG. 24 (e) shows the results of a PCR reaction near the target sequence inserted into the 3′UTR in the CVB3-34aT-53 virus genome.
  • FIG. 24 (f) shows the result of PCR reaction around the target sequence inserted into 3′UTR in the CVB3-34a & 217T-53 virus genome. That is, FIGS.
  • FIG.24 (a) to 24 (d) show the results of subculturing each virus in which the target sequence is inserted into 5 ′ UTR. Moreover, FIG.24 (e) and FIG.24 (f) become a result of having subcultured each virus which inserted the target arrangement
  • CVB3-34aT-3 and CVB3-34cT-3 are retained on the genome when subcultured 3 times, but 6 times or 10 times It was revealed that the target sequence was missing from the genome at the time of subculture.
  • RNA to the dispensed Opti-MEM in a volume of 80 ⁇ g, and add Lipofectamine 2000 to 120 ⁇ l of the Opti-MEM dispensed to another tube. 2. Both were allowed to stand at room temperature for 5 minutes. 3. Mix both tubes and let stand at room temperature for 20 min. 4. After 20 min, add the entire mixture to the NCI-H1299 cells. After 5.4 h, replace with Growth medium. 6. Incubate at 37 ° C, 5% CO 2 for 24 hours. 7. 25 hours after Transfection, each NCI-H1299 cell is detached with a cell scraper without discarding the medium. 8. Collect the supernatant with cells in a 50 ml tube. 9.
  • NCI-H1299 cells were seeded in a 96-well flat plate at 5 ⁇ 10 3 cells / 100 ⁇ l / well in all wells. 2. Incubate at 37 ° C, 5% CO 2 for 7 hours. 3. Add 180 ⁇ l of Opti-MEM to the 96 well round plate from the 2nd row to the 12th row. For 4.1 column viral the thickest string (usually 10-2), was added 990 ⁇ l of Opti-MEM to 1.5 ml Tube, there 10 ⁇ l added virus stock to adjust the solid 10-2 solution pipetting . Five. Add 120 ⁇ l of the virus 10 -2 column solution to the first column of the 96 well round plate. 6.
  • ⁇ Cell viability measurement> (Materials & reagents) ⁇ 96 well plate (flat bottom) ⁇ NCI-H1299, BEAS-2B, Het-1A cells (1 ⁇ 10 4 cells / 80 ⁇ l / well) ⁇ RPMI1640 w / 10% FBS (Growth medium) Opti-MEM (registered trademark) I CellTiter 96 (registered trademark) Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay
  • Opti-MEM / animal with 29G needle, and the administration site should be sterilized with ethanol Administer intratumorally (administered every other day, up to 5 times: Day 2, 4, 6, 8, 10).
  • Opti-MEM / animal is administered into the tumor with a 29G needle after the site of administration is disinfected with ethanol (administered every other day, up to 5 times: Day 2, 4, 6, 8, 10). 4.
  • Opti-MEM / animal with 29G needle, and the administration site should be sterilized with ethanol Administered intratumorally.
  • 3.Day 2 When the major axis of the tumor reaches 0.4 cm, the mice in the treatment group receive 5 ⁇ 10 CVB3-WT or genetically modified CVB3 (CVB3-34a & 217T-53 or miR-1 & 217T) in a safety cabinet. 6 TCID 50 / 50 ⁇ ? Opti-MEM / animal is sterilized with ethanol using a 29G needle and administered into the tumor. 4. Day 4: 0.1ml / 10g (body weight) of 3 types of mixed anesthesia is administered intraperitoneally to mice with 26G needle (in the single administration group).
  • mice are dissected and blood is collected from the inferior vena cava with a 24G needle (approximately 600 mL). 5. (In the double administration group) On Day 4, administer Opti-MEM or virus into the tumor once more with a 29G needle. Blood is collected on Day 6. 6. Leave the blood at room temperature for 1 hour (to clot) and centrifuge at 1500 xg for 15 minutes at room temperature. 7. Transfer the supernatant (serum) to a new 1.5 mL tube. 8. Perform a blood biochemistry test with Spotchem (registered trademark).
  • SEQ ID NO: 1 miR-34a SEQ ID NO: 2: miR-34c SEQ ID NO: 3: miR-34aT x 4+ SEQ ID NO: 4: miR-34cT x 4+ SEQ ID NO: 5: miR-34aT ⁇ 2 & miR-217T ⁇ 2 + SEQ ID NO: 6: miR-34cT ⁇ 2 & miR-217T ⁇ 2 + SEQ ID NO: 7: miR-34aT ⁇ 2 & miR-1T ⁇ 2 + SEQ ID NO: 8: miR-34cT ⁇ 2 & miR-1T ⁇ 2 + SEQ ID NO: 9: miR-34a-Inverse Forward SEQ ID NO: 10: miR-34a-Inverse Reverse SEQ ID NO: 11: miR-34aT ⁇ 4- SEQ ID NO: 12: miR-34c-Inverse Forward SEQ ID NO: 13: miR-34c-Inverse Reverse SEQ ID NO: 14: miR

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Abstract

安全性および／または攻撃性において改善された、腫瘍溶解性ウイルス療法に用いる遺伝子改変コクサッキーウイルスを提供する。コクサッキーウイルスB3野生型(CVB3-WT)のゲノムに、miR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方の標的配列からなるポリヌクレオチドが少なくとも一つ挿入された変異ゲノムを含む、正常細胞での増殖が抑制された遺伝子改変コクサッキーウイルスを提供する。

Description

遺伝子改変コクサッキーウイルス及び医薬組成物
　本発明は、癌の処置に適用可能な、遺伝子改変コクサッキーウイルス及び医薬組成物に関する。本発明は、腫瘍溶解性ウイルス療法の分野で有用である。
　腫瘍溶解性ウイルス療法とは、ウイルスを癌細胞に感染させ、癌組織内でウイルスを増殖させながらウイルスが有する腫瘍溶解性を利用して癌組織を破壊・死滅させる治療法である。DNAウイルスであるアデノウイルスや単純ヘルペスウイルスを利用した臨床研究が、脳腫瘍や乳癌を対象として実施されており、安全性と有効性を示す結果が報告されつつある。
　コクサッキーウイルスB群3型(CVB3)は（非特許文献１～３）、１本鎖プラス鎖RNAゲノムを有し、細胞質内のみで増殖し、宿主細胞ゲノムに対する変異導入の可能性が低いために、腫瘍溶解性ウイルス療法において安全性が比較的高いと考えられている。また、CVB3はありふれたウイルスであり、多くの場合、感染しても不顕性感染に留まる。しかしながら、無菌性髄膜炎、ウイルス性心筋炎、膵炎との関連性に関する報告がある。また、CVB3に関しては、ヒト非小細胞肺癌に対する顕著な腫瘍溶解性が報告されている（非特許文献４）。
　一方、腫瘍溶解性ウイルス療法への適用が期待されるウイルスの一つとして、コクサッキーウイルスA21(CVA21)が知られており（特許文献１）、ウイルスゲノムにmiRNAを組み込むことにより、組織特異的にウイルスを増殖させたとの報告がある（非特許文献５）。
特表２００７－５２７７１９号公報
Liu Z. et al. Virology. 265: 206-17 (1999) Gauntt CJ. et al. Virus Res. 41: 89-99 (1996) Henke A. et al. Int J Med Microbiol. 298: 127-34 (2008) Miyamoto, S. et al. Cancer Res. 72 (10), 2609-21 (2012) Russell, SJ. et al. Nat Med. 14 (11), 1278-83 (2008)
　本発明者らのこれまでの検討によると、野生型CVB3(CVB-WT)をin vivoで評価した際に、血清生化学検査においてはAMY、CK、ASTおよびALTの上昇が生じ、また組織診では、膵臓における外分泌組織の破壊、心筋における炎症性湿潤、肝臓における炎症性湿潤が観られた。これらの好ましくない作用は軽減されることが望ましい。
　また、腫瘍溶解性ウイルス療法の利用において安全性を担保する観点からは、好ましくない作用の有無に限らず、ターゲットとなる癌細胞以外の正常細胞においてウイルスの増殖が抑制され、安全性をより一層向上させることが強く望まれている。
　本発明は、癌の処置を行う腫瘍溶解性ウイルス療法の分野で適用可能であり、抗腫瘍効果及び安全性に優れた遺伝子改変コクサッキーウイルス及び医薬組成物を提供することを目的とする。
　本発明者らはCVB3-WTのゲノム5'untranslated region(UTR)及び／またはゲノム3'UTRに組織特異的microRNA(miRNA)の標的配列を挿入することを試みた。これにより、miRNAが存在する組織においては、挿入した標的配列にmiRNAを含むRISC複合体が結合し、ウイルスタンパク質の翻訳が阻害されるため、組織特異的にウイルス増殖が抑制されることを期待した。
　その際、本発明者らは、これまで類似の目的での利用が一切検討されてこなかったmiR-34ファミリーに着目した。
　このmiR-34ファミリーは、癌抑制遺伝子の１種であるp53遺伝子の下流に位置しており、全身の細胞内で細胞周期、アポトーシス、細胞老化等に関与することが報告されている（図１参照）。また、miR-34ファミリーは、全身の正常細胞において高発現が認められている（図２参照）。一方、p53遺伝子は癌細胞において高頻度に欠落等の異常が認められ、これに伴い、miR-34ファミリーについても複数の癌細胞で欠失や発現の低下が報告されている。
　本発明者らは、上述した、miR-34ファミリーの正常細胞における高発現と、癌細胞における欠失や発現の低下に着目し、CVB3-WTのゲノムにmiR-34の標的配列を挿入することで、癌化していない正常細胞ではウイルスの増殖を抑制し、癌細胞ではウイルスを効率よく増殖させて腫瘍溶解性を発揮させることが可能な安全性に優れた遺伝子改変コクサッキーウイルスの作製を試みるものとした。
　更に、本発明者らは、CVB-WTが引き起こす作用を低減するために、組織特異的に発現しているmiRNAの利用についても検討を行うものとした。１つは膵臓特異的に発現しているといわれているmiR-217であり、もう1つは筋組織および正常細胞特異的に発現しているといわれているmiR-1である。
　また、特定のmiRNAの標的配列のゲノムへの挿入を検討する中で、3'UTR中であっても、挿入する位置によっては、ウイルスの複製が妨げられることが判明し、適切な挿入位置を見出す必要があるとの知見を得ている。そのため、miRNAの標的配列のゲノムへの挿入位置について最適な位置を決定した。また、5'UTR中における特定のmiRNAの標的配列のゲノムへの挿入位置を検討して、ウイルスの複製が妨げられることのない標的配列の挿入位置を決定した。
　更に、特定のmiRNAの標的配列のゲノムへの挿入位置として、5'UTRを利用することで、挿入した標的配列が、ウイルスのゲノムから脱落しにくくなる可能性があることに着目して検討を行った。
　上記の目的を達成するために、本発明の遺伝子改変コクサッキーウイルスは、コクサッキーウイルス野生型(CVB3-WT)のゲノムに、正常細胞特異的あるいは組織特異的microRNA(miRNA)の標的配列からなるポリヌクレオチドが少なくとも一つ挿入された変異ゲノムを含み、正常細胞において特異的に増殖が抑制される、前記正常細胞特異的miRNAの標的配列がmiR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方に対応する構成を備えている。
　ここで、コクサッキーウイルス野生型(CVB3-WT)のゲノムに、正常細胞特異的あるいは組織特異的microRNA(miRNA)の標的配列からなるポリヌクレオチドが少なくとも一つ挿入された変異ゲノムを含むことによって、miRNAが存在する組織においてウイルスの増殖を抑制可能となる。即ち、挿入した標的配列にmiRNAを含むRISC複合体が結合し、ウイルスタンパク質の翻訳が阻害され、組織特異的にウイルスの増殖を抑制することができる。
　また、正常細胞特異的miRNAの標的配列がmiR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方に対応することによって、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織でウイルスの増殖を抑制可能となる。即ち、miR-34aまたはmiR-34c を含むmiR-34ファミリーは、正常細胞において高発現しているため、正常細胞でのウイルスの増殖を抑制して、安全性を高めることができる。また、miR-34aまたはmiR-34cが存在しない組織、即ち、miR-34ファミリーの欠失や発現の低下が見られる癌細胞において、ウイルスを増殖させることができ、抗腫瘍効果を選択的に発揮させることが可能となる。
　また、ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内の少なくとも一方である場合には、宿主細胞内におけるウイルスの複製の際に、複製が妨げられにくくなる。即ち、5'UTR領域または3'UTR領域は、タンパク質に翻訳されない非翻訳領域であることから、標的配列のCVB3-WTゲノムへの挿入による影響が、宿主細胞でのウイルスＲＮＡの翻訳に及びにくくなり、ウイルスＲＮＡの翻訳が適正になされるものとなる。これに伴い、タンパク質の合成、ウイルス粒子の複製が進み、ウイルスの増殖が可能となり、癌細胞への抗腫瘍効果を発揮させることができる。
　また、ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの3'UTR領域内における位置7304と7305との間である場合には、宿主細胞内におけるウイルスの複製の際に、より一層、複製が妨げられにくいものとなる。
　この位置7304と7305との間とは、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内であり、かつ、CVB3-WTゲノムのタンパク質への翻訳を終了させる終始コドン（位置7298、7299、7300が終始コドンを構成）を構成する塩基配列から４塩基分下流にずれた位置である。即ち、3'UTR領域内であり、終始コドンに近い位置となっているため、複製に必要な3'UTRの立体構造を保持しつつ、翻訳が適切に終了することが可能となる。この結果、より安定的に、癌細胞においてウイルスを増殖させ癌細胞を破壊することが可能となる。
　また、ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内における位置742と743との間である場合には、宿主細胞内におけるウイルスの複製の際に、より一層、複製が妨げられにくいものとなる。また、ポリヌクレオチドがCVB3-WTゲノムに挿入された状態が維持されやすく、ポリヌクレオチドがゲノムから脱落しにくくすることができる。
　この位置742と743との間とは、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内であり、かつ、CVB3-WTゲノムのタンパク質への翻訳を開始する開始コドン（位置743、744、745が開始コドンを構成）を構成する塩基配列のすぐ上流に該当する位置である。即ち、5'UTR領域内であり、開始コドンに隣接する位置となっているため、複製に必要な5'UTRの立体構造を保持しつつ、翻訳が適切に終了することが可能となる。また、5'UTR領域に挿入したポリヌクレオチドは、3'UTR領域に挿入したポリヌクレオチドよりもゲノム上から脱落しにくくなっていた。この結果、より安定的に、正常細胞においてウイルスの増殖を妨げ、癌細胞においては効率よくウイルスを増殖させ癌細胞を破壊することが可能となる。
　また、標的配列からなるポリヌクレオチドが複数個挿入された場合には、miRNAが存在する組織において、miRNAを含むRISC複合体が標的配列に結合する確率を高めることができ、さらにウイルスゲノム変異が起きた場合にもmiRNAからの逸脱を回避することが可能になるため、組織特異的なウイルスの増殖抑制をより一層確実なものにできる。
　また、挿入されるポリヌクレオチドが、下記（ａ）若しくは（ｂ）、または（ａ）若しくは（ｂ）において１～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである場合には、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列がスペーサー配列を介して４つ並べられたものとなる。これにより、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織で、より一層確実に、ウイルスの増殖を抑制することができる。また、miR-34aまたはmiR-34cが存在しない組織、即ち、癌細胞において、ウイルスを増殖させることができ、抗腫瘍効果を選択的に発揮させることが可能となる。なお、ここでは、ポリヌクレオチドが挿入される領域は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内のみの構成、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内のみの構成、及びCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内の両方の構成を含むものである。
(a)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Atc acA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA
(b)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC Ttc acG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC T
　また、ポリヌクレオチドが、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内のそれぞれに挿入された場合には、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列の挿入される数が増えることとなり、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織で、更に一層確実に、ウイルスの増殖を抑制することができる。また、仮に、5'UTR領域内または3'UTR領域内の一方の領域で、挿入したポリヌクレオチドがゲノムから脱落したとしても、もう一方の領域に挿入したポリヌクレオチドが存在することで、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織で、安定して、ウイルスの増殖を抑制することができる。
　また、組織特異的miRNAがmiR-1及びmiR-217の少なくとも一方を含む場合には、膵臓や肝臓、または筋組織で組織特異的に、遺伝子改変コクサッキーウイルスの増殖を抑制可能となる。即ち、CVB3-WTを膵臓や肝臓、または筋組織の細胞に導入した際に生じる好ましくない作用を低減または抑止することができる。
　また、ポリヌクレオチドが、下記(c)若しくは(d)、または(c)若しくは(d)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである場合には、２つのmiR-34aの標的配列及び２つのmiR-217の標的配列から構成されたポリヌクレオチド、または、２つのmiR-34cの標的配列及び２つのmiR-217の標的配列から構成されたポリヌクレオチドが、miRNAのターゲットとなる配列として、CVB3-WTのゲノムに挿入される。これにより、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織だけでなく、miR-217が存在する組織、でウイルスの増殖を抑制可能となる。この結果、遺伝子改変コクサッキーウイルスを使用した際の安全性をより一層高めることができる。特に、CVB3-WTを用いた際に、好ましくない副作用が強く発生するのは膵臓であり、miR-217は膵臓での高発現が認められるため、膵臓での副作用の発生を抑止して、安全性の向上に寄与するものとなる。なお、ここでのポリヌクレオチドの配列では、個別の標的配列の間にスペーサー配列が介在している。また、ここでは、ポリヌクレオチドが挿入される領域は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内のみの構成、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内のみの構成、及びCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内の両方の構成を含むものである。
(c)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TAt cac TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TA
(d)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT Atc acT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT A
　また、ポリヌクレオチドが、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内のそれぞれに挿入された場合には、miR-34a及びmiR-217、またはmiR-34c及びmiR-217の標的配列の挿入される数が増えることとなり、miR-34a及びmiR-217、または、miR-34c及びmiR-217が存在する組織で、更に一層確実に、ウイルスの増殖を抑制することができる。また、仮に、5'UTR領域内または3'UTR領域内の一方の領域で、挿入したポリヌクレオチドがゲノムから脱落したとしても、もう一方の領域に挿入したポリヌクレオチドが存在することで、miR-34a及びmiR-217、または、miR-34c及びmiR-217が存在する組織で、安定して、ウイルスの増殖を抑制することができる。
　また、ポリヌクレオチドが、下記(e)若しくは(f)、または(e)若しくは(f)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである場合には、２つのmiR-34aの標的配列及び２つのmiR-1の標的配列から構成されたポリヌクレオチド、または、２つのmiR-34cの標的配列及び２つのmiR-1の標的配列から構成されたポリヌクレオチドが、miRNAのターゲットとなる配列として、CVB3-WTのゲノムに挿入される。これにより、miR-34aまたはmiR-34cが存在する組織だけでなく、miR-1が存在する組織、でウイルスの増殖を抑制可能となる。この結果、遺伝子改変コクサッキーウイルスを使用した際の安全性をより一層高めることができる。なお、ここでのポリヌクレオチドの配列では、個別の標的配列の間にスペーサー配列が介在している。また、ここでは、ポリヌクレオチドが挿入される領域は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内のみの構成、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内のみの構成、及びCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内の両方の構成を含むものである。
(e)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ATA CAT ACT TCT TTA CAT TCC Atc acA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA
(f)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA tca cAT ACA TAC TTC TTT ACA TTC CA
　本発明に係る遺伝子改変コクサッキーウイルスは、癌の処置を行う腫瘍溶解性ウイルス療法の分野で適用可能であり、抗腫瘍効果及び安全性に優れたものとなっている。
　また、本発明に係る医薬組成物は、癌の処置を行う腫瘍溶解性ウイルス療法の分野で適用可能であり、抗腫瘍効果及び安全性に優れたものとなっている。
miR-34ファミリーの発現と細胞周期等への関与を示す概略ブロック図である。 ヒトの生体内における各組織での各miRNA（miR-1、miR-217、miR-34a及びmiR-34c）の発現量を示すグラフである。 miR-34aの配列とmiR-34cの配列を示す概略図である。 miR-34aまたはmiR-34cの標的配列搭載CVB3の概略図である。図中に示した配列をpBluescript II-CVB3の7304と7305bpの間にIn-Fusionクローニング法を用いて挿入する。 CVB3のゲノム上の5'UTR領域内（位置742と743bpとの間）及び3'UTR領域内（位置7304と7305bpとの間）への標的配列の挿入位置を示す概略図である。 CVB3-WTのゲノムの5'UTR内の位置742-743bpの間にmiR-34cの標的配列を４つ挿入した配列を示している。 miR-34a及びmiR-217の標的配列、または、miR-34c及びmiR-217の標的配列搭載CVB3の概略図である。 肺がん細胞株NCI-H1299(H1299)細胞で産生したCVB3-WT及び遺伝子改変CVB3を用いて、H1299細胞でウイルス力価の測定を行った試験結果を示すグラフである。 癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3の腫瘍溶解効果の有無を示す模式図である。 通常の癌細胞、miRNA-34aを高発現させた癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34aT-5、CVB3-miR-34aT-53、CVB3-34a&217T-53の腫瘍溶解効果の有無を示す模式図である。 癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、CVB3-1&217T、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3の腫瘍溶解効果の有無を示す模式図である。 H1299細胞にCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3を感染させて（MOI=0.001）細胞生存率を評価したグラフである。 H1299細胞にCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3を感染させて（MOI=0.01）細胞生存率を評価したグラフである。 BEAS-2B細胞にCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3を感染させて（MOI=0.001）細胞生存率を評価したグラフである。 Het-1A細胞にCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3を感染させて（MOI=0.001またはMOI=0.01）72時間後の細胞生存率を示したグラフである。 癌細胞（MOI=0.001）及び正常細胞（MOI=0.1）にCVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3、CVB3-miR-34aT-53、CVB3-34a&217T-53を感染させて72時間後の細胞生存率を評価したグラフである。 癌細胞（MOI=0.001）及び正常細胞（MOI=0.1）にCVB3-WT、CVB3-1&217T、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3を感染させて72時間後の細胞生存率を評価したグラフである。 （ａ）は、治療群（CVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3）及び未治療群のマウスにおける腫瘍体積（NCI-H1299）の経時的変化を示すグラフであり、（ｂ）は、同マウスの生存率を示すグラフである。 治療群（CVB3-WT、CVB3-miR-34aT-3、CVB3-miR-34cT-3）及び未治療群のマウスにおける体重の変化を示すグラフである。 CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53、CVB3-1&217Tを投与したマウス（一回投与群）における血液生化学検査の結果を示すグラフである。 CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53、CVB3-1&217Tを投与したマウス（二回投与群）における血液生化学検査の結果を示すグラフである。 CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53、CVB3-miR-34aT-53、CVB3-1&217Tを投与したマウス（二回投与群）における血液生化学検査の結果を示すグラフである。 CVB3のゲノム及び標的配列を挿入したCVB3のゲノムにおける標的部位付近のPCR産物の電気泳動の結果を示す模式図である。 CVB3のゲノム及び標的配列を挿入したCVB3のゲノムにおける標的部位付近のPCR産物の電気泳動の結果を示す模式図である。
　本発明に関し、数値範囲を「X～Y」で表すときは、その範囲は両端の値XおよびYを含む。本発明に関し、「Aおよび／またはB」というときは、A、Bのうち、少なくとも一方を指す趣旨である。
［遺伝子改変コクサッキーウイルス］
＜miR標的配列挿入によるCVB3の安全性向上＞
　本発明によって提供される遺伝子改変コクサッキーウイルスの一態様は、コクサッキーウイルスB3野生型(CVB3-WT)のゲノムに、組織特異的microRNA(miRNA)の標的配列からなるポリヌクレオチドが少なくとも一つ挿入された変異ゲノムを含む、遺伝子改変コクサッキーウイルスである。このような遺伝子改変コクサッキーウイルスは、組織特異的に増殖が抑制されうる。
　本発明に用いる正常細胞特異的miRNA（およびその標的配列）は、miR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方である。miR-34aまたはmiR-34cは、全身の正常細胞において高発現が認められているmiR-34ファミリーの１つである。miR-34aまたはmiR-34cは、一種類のみ用いてもよく、２種類を組み合わせて用いてもよい。
　図３にmiR-34aの配列（配列番号１）と、miR-34cの配列（配列番号２）を示している。
　本発明では、正常細胞あるいは組織特異的miRNAの標的配列の挿入される位置は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内または3'UTR領域内であることが好ましい。また、正常細胞あるいは組織特異的miRNAの標的配列の挿入される位置は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内のそれぞれの領域であることが更に好ましい
　また、組織特異的miRNAの標的配列の挿入される位置は、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内である場合、CVB3-WTゲノムの位置7344より上流または位置7345より下流であることがより好ましく、位置7304と7305との間であることがさらに好ましい。
　本発明者らのこれまでの検討によると、一般的なCVB3産生細胞であるHeLa細胞において7304-7305bpの間に標的配列を挿入した遺伝子改変CVB3は増殖を認めたが、7344-7345bpの間に挿入した遺伝子改変CVB3は増殖を認めなかった。また、miRNAの発現抑制を行ったHaLa細胞においても同様の現象が見られた。したがって、上記のとおり、組織特異的miRNAの標的配列の挿入される位置は、CVB3-WTゲノムの3'UTR領域内であることが好ましく、CVB3-WTゲノムの位置7344より上流または位置7345より下流であることがより好ましく、位置7304と7305との間であることがさらに好ましい。
　また、組織特異的miRNAの標的配列の挿入される位置は、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内である場合、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間であることが好ましい。
　また、挿入されるmiR-34aまたはmiR-34cの標的配列の個数は、複数個、例えば2～6個であることが好ましい。
　特に好ましい態様においては、挿入されるポリヌクレオチドが、下記(a)または(b)である。あるいは、(a)または(b)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドであって、(a)または(b)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）、CVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）、及び、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）とCVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）のそれぞれの領域のうち、少なくとも１つに挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞特異的に増殖を抑制することができるものである。あるいは、(a)または(b)に示したヌクレオチド配列と、少なくとも90％、好ましくは95%、より好ましくは98%、さらに好ましくは99%の配列同一性を有する配列からなるポリヌクレオチドであって、(a)または(b)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの各位置に挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞特異的に増殖を抑制することができるものである。
(a) ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Atc acA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA （配列番号３）
(b) GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC Ttc acG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC T（配列番号４)
　なお、あるヌクレオチド配列において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列を有するポリヌクレオチドを得るための手法、およびヌクレオチド配列に関する配列同一性の計算方法（例えば、BLASTアルゴリズムを用いて計算することができる。）は、当業者にはよく知られている。この点は以下に示すヌクレオチド配列についても同様である。
　また、CVB3-WTの各組織での好ましくない作用を低減する観点から、本発明に用いる組織特異的miRNA（およびその標的配列）は、miR-1及びmiR-217の少なくとも一方を含むものであってもよい。miR-217は膵臓特異的に、miR-1は筋組織および正常細胞特異的に発現しているといわれている。miR-1及びmiR-217は、miR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方と組み合わせて用いられる。また、miR-1とmiR-217を組み合わせてもよい。
　挿入されるmiR-1またはmiR-217の標的配列の個数は、目的の効果を奏するものであれば、種々選択できるが、複数個、例えば2～6個であることが好ましい。
　また、その他の特に好ましい態様においては、挿入されるポリヌクレオチドが、下記(ｃ)または(ｄ)である。あるいは、(ｃ)または(ｄ)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドであって、(ｃ)または(ｄ)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）、CVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）、及び、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）とCVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）のそれぞれのうち、少なくとも１つに挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞特異的に増殖を抑制することができるものである。また、膵臓において組織特異的に増殖を抑制することができるものである（図７参照）。あるいは、(ｃ)または(ｄ)に示したヌクレオチド配列と、少なくとも90％、好ましくは95%、より好ましくは98%、さらに好ましくは99%の配列同一性を有する配列からなるポリヌクレオチドであって、(ｃ)または(ｄ)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの各位置に挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞特異的に増殖を抑制することができるものである。また、膵臓において組織特異的に増殖を抑制することができるものである。
(c) ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TAt cac TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TA （配列番号５）
(d) GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT Atc acT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT A（配列番号６)
　また、その他の特に好ましい態様においては、挿入されるポリヌクレオチドが、下記(e)または(f)である。あるいは、(e)または(f)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドであって、(e)または(f)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）、CVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）、及び、CVB3-WTゲノムの位置742と743との間（5'UTR領域）とCVB3-WTゲノムの位置7304と7305との間（3'UTR領域）のそれぞれのうち、少なくとも１つに挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞・組織特異的に増殖を抑制することができるものである。また、筋組織において組織特異的に増殖を抑制することができるものである。あるいは、(e)または(f)に示したヌクレオチド配列と、少なくとも90％、好ましくは95%、より好ましくは98%、さらに好ましくは99%の配列同一性を有する配列からなるポリヌクレオチドであって、(e)または(f)と同様に機能することができるもの、即ち、CVB3-WTゲノムの各位置に挿入され、遺伝子改変コクサッキーウイルスを構成したときに、正常細胞特異的に増殖を抑制することができるものである。また、筋組織において組織特異的に増殖を抑制することができるものである。
(e) ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ATA CAT ACT TCT TTA CAT TCC Atc acA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA（配列番号７）
(f) GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA tca cAT ACA TAC TTC TTT ACA TTC CA（配列番号８)
［遺伝子改変ウイルスの調製、その他］
　本発明の遺伝子改変ウイルスは、CVB3-WTを遺伝子操作することにより調製できる。CVB3-WTは、検体等から既知のウイルス単離方法によって単離できる。ウイルス単離方法の例は、遠心分離、培養細胞によるウイルスの増殖等である。いったん遺伝子改変コクサッキーウイルスが調製されれば、ウイルスの生産のための分子生物学的な種々の方法を用いて、当該遺伝子改変コクサッキーウイルスを増やすことができる。
　遺伝子改変の元となるCVB3は、癌細胞への高い感染性を獲得するよう、天然に存在しているウイルスを、多数回の継代にわたって細胞株において培養することによって生物選抜してもよい。生物選抜に好適な細胞株の例は、CAR、DAF等を発現する癌細胞株である。
　本発明にしたがって調製された遺伝子改変コクサッキーウイルスの評価は、当業者にはよく知られたin vitroまたはin vivoの種々の手段により、安全性、効力、力価等の様々な側面について評価することできる。例えば、癌細胞に対する攻撃性（溶解性、傷害性）は、CVB3に暴露された癌細胞の細胞株の生存を試験することで確認することができる。細胞株の生存を試験する方法には、例えば、固定した細胞を染色液で染色して、染色された生細胞の数を定量する方法、クリスタルバイオレット法、アポトーシス特異的なマーカーを定量する方法等がある。これらの方法を用いて、CVB3とインキュベーションされた癌細胞の細胞株について、所定時間後に生存している癌細胞を定量することで、結果的に、CVB3の感染による細胞傷害性によって、死滅した癌細胞を定量することができる。
　本発明者らが、遺伝子改変CVB3（miR-34aの標的配列またはmiR-34cの標的配列が挿入されたもの）の産生および力価の測定に関して、H1299細胞で産生した遺伝子改変CVB3を用いて、H1299細胞でウイルス力価の測定を行ったところ、遺伝子改変CVB3のウイルス力価はCVB3-WTのウイルス力価にやや劣るものの、充分なウイルス力価を有する結果を示した（図８参照）。したがって、本発明の一態様においては、遺伝子改変ウイルス産生およびウイルス力価測定には、H1299細胞が適切である。本発明により、遺伝子改変コクサッキーウイルスの、力価測定または増殖のためには、対応する正常細胞特異的miRNAの発現量が高くない細胞（例えば、H1299細胞）の使用が提案される。
［医薬組成物］
＜適用疾患＞
　本発明によって提供される医薬組成物の一態様は、上述の遺伝子改変CVB3を有効成分として含む。医薬組成物が処置の対象とする癌種は、特に限定されず、固形癌および液性癌を含む。CVB3は、固形癌および液性癌の癌細胞に対する細胞傷害性を有する。CVB3による癌細胞に対する細胞傷害性は、ウイルスが癌細胞に感染し、癌細胞の細胞質で複製することによる癌細胞の溶解によるか、ウイルスの感染に起因する癌細胞内のカスパーゼの活性化によるアポトーシスによる。CVB3は、細胞表面のCARを認識して、当該細胞に感染することができる。なお、本発明に関し、疾患または状態に関連して「処置（する）」というときは、予防および治療を含む。
　CVB3は、固形癌および液性癌の癌細胞に対する細胞傷害性を有するが、固形癌であって、特に強い細胞傷害性が誘導される癌細胞は、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺扁平上皮癌、悪性中皮腫、大腸癌、結腸直腸癌、食道癌、下咽頭癌、ヒトBリンパ腫、乳癌および子宮頸癌からなる群から選択されるいずれかの癌の細胞である。したがって本実施の形態に係る医薬組成物は、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺扁平上皮癌、悪性中皮腫、大腸癌、結腸直腸癌、食道癌、下咽頭癌、ヒトBリンパ腫、乳癌および子宮頸癌からなる群より選択されるいずれかを対象に適用されるのが好ましい。
　肺癌は、罹患者数が上位の癌種である。本実施の形態に係る医薬組成物により、より多くの肺癌患者の治療に貢献できる。大腸癌、結腸直腸癌は、欧米型食生活の定着した日本において罹患率が増加しており、死亡率も増加している。本実施の形態に係る医薬組成物により、大腸癌、結腸直腸癌に対する治療薬の選択肢が増えることは患者にとって有益である。食道癌は、手術切除後の再発率が30～50％と高く、既存の薬剤に対する感受性が低い。本実施の形態に係る医薬組成物によって食道癌の治療成績の向上が期待できる。
　また、本実施の形態に係る医薬組成物は、CDDP抵抗性、ゲフィチニブ抵抗性またはオキサリプラチン抵抗性の癌の細胞に対して強い細胞傷害性を有する。このため、これらの抗癌剤に抵抗性を示す、いわゆる難治性癌に対する有効な治療を提供することができる。
　また、本実施の形態に係る医薬組成物は、CVB3を含む場合、癌幹細胞に対しても強い細胞傷害性を示す。癌幹細胞は、癌再発の原因の1つと考えられており、癌の転移および再発の防止に有用である。
＜剤形、用法、用量＞
　また、本実施の形態に係る医薬組成物は、種々の剤形とし、種々の投与経路を採ることができる。すなわち、本実施の形態に係る医薬組成物は、局所用の製剤とすることもでき、全身投与用の製剤とすることもできる。例えば、注射剤または点滴剤とし、癌種に応じて腫瘍内投与、静脈投与、胸腔内投与、腹腔内投与とすることができる。特に、食道癌、大腸癌等の消化器癌の多くは、内視鏡等で腫瘍組織を視認しながら、医薬組成物を腫瘍組織に直接注射できる。この場合、内視鏡等で注射した部位を確認できるため、出血しても対処しやすいという利点もある。他に、経口投与でもよいし、筋肉、皮下、直腸、膣 、鼻腔等を介して投与してもよい。
　本実施の形態に係る医薬組成物は、遺伝子改変CVB3に加えて、キャリア、希釈剤または補助剤等を含むようにしてもよい。キャリアとしては、例えば、リポソーム、ミセル等が好ましい。リポソームは、脂質と膜安定性に寄与するステロイドまたはステロイド前駆体との組み合わせを含む。この場合、脂質としては、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、スフィンゴ脂質、ホスファチジルエタノールアミン、セレブロシド、ガングリオシド等のホスファチジル化合物が挙げられる。リポソームまたはミセルで覆われたCVB3は、宿主の免疫応答を低下させることができる。
　希釈剤としては、例えば、脱塩水、蒸留水および生理的食塩水等が挙げられる、また、補助剤としては、植物系オイル、セルロース誘導体、ポリエチレングリコールおよび脂肪酸エステル等が挙げられる。
　経口投与の場合、当該医薬組成物は、甘味剤、崩壊剤、希釈剤、コーティング剤、保存剤等を含有してもよい。
　本実施の形態に係る医薬組成物は、CVB3が、癌を治療するのに充分な量となるように投与される。投与量は、患者の体重、年齢、性別、腫瘍組織の大きさ等に基づいて決定される。例えば、当該医薬組成物を液剤とする場合、CVB3が液剤1mlに1×102～1×1010 TCID50（50％組織培養感染量）含まれていればよい。好ましくは、CVB3が液剤1mlに1×105 TCID50以上含まれていればよい。当該医薬組成物は、単回で投与してもよいし、複数回で投与してもよい。また、当該医薬組成物は、徐放製剤として持続的に投与してもよい。
＜他の製剤との併用＞
　本実施の形態に係る医薬組成物は、抗癌剤と併用してもよい。当該医薬組成物と異なる作用機序を有する抗癌剤を併用することで、抗腫瘍効果の向上が期待できる。抗癌剤は、特に限定されないが、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺扁平上皮癌、悪性中皮腫、大腸癌、結腸直腸癌、食道癌、下咽頭癌、ヒトBリンパ腫、子宮頸癌および膵癌等の治療に用いられるものが望ましい。具体的には、抗癌剤は、CDDP（シスプラチン）、ゲフィチニブ、オキサリプラチンなどである。
［その他］
　本発明の実施の形態に係る医薬組成物は、癌細胞に感染可能な、CVB3（遺伝子改変体を含む。以下同様。）に由来するポリヌクレオチドを有効成分として含んでいてもよい。CVB3に由来するポリヌクレオチドは、それぞれCVB3から直接単離されたウイルスRNA、合成RNA、単離されたウイルスRNAの塩基配列に対応するcDNAであってもよい。ウイルスRNAを単離するには、任意の方法を使用することができる。ウイルスRNAを単離する方法は、例えば、フェノール／クロロホルム抽出の使用に基づく方法等である。また、当該ポリヌクレオチドは、ウイルスを生じさせるためのポリヌクレオチドを組み込んだウイルスプラスミドや発現ベクターであってもよい。発現ベクターには、例えば、ウイルスを生じさせるために必要なウイルスタンパク質をコードするRNAを発現することができるプラスミドが含まれる。発現ベクターには、挿入されたポリヌクレオチドが機能的に連結された転写調節制御配列が含まれてもよい。ここでの転写調節制御配列は、例えば、転写を開始させるためのプロモーター、転写されたmRNAに対するリボソームの結合を可能にするための発現制御エレメント等である。
　発現ベクターとしては、例えば、pSV2neo、pEF－PGk．puro 、pTk2、非複製アデノウイルスシャトルベクター、サイトメガロウイルスプロモータ等を用いることができる。ウイルスを生じさせるために必要なウイルスタンパク質をコードするcDNAは、ウイルスRNAまたはそのフラグメントを逆転写することによって調製することができる。
　本実施の形態に係る医薬組成物は、癌細胞に感染可能な、CVB3に由来するポリヌクレオチドに加えて、例えば、リポソーム等のキャリアを含むようにしてもよい。CVB3に由来するポリヌクレオチドは、例えば配列番号1または2の配列からなるポリヌクレオチド、および／または配列番号3～8、19、20、25、26のいずれか一の配列からなるポリヌクレオチドを含むものであってもよい。
　以下、本発明の実施例を説明するが、本発明の範囲は、実施例に限定されない。
　本発明における組織特異的miRNAの標的配列の種類と、この標的配列が挿入されるCVB3-WTゲノムの位置の一例として、以下の表１に示す内容を挙げる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１の内容を説明すると、表の左側から番号、ウイルス名称、CVB3-WTのゲノム5' untranslated region（UTR）内の位置742-743bpの間に挿入された標的配列の種類、及びCVB3-WTのゲノム3' untranslated region（UTR）内の位置7304-7305bpの間に挿入された標的配列の種類となっている。例えば、No.7のウイルス（CVB3-34a&217T-53）であれば、5'UTR内の位置742-743bpの間と、3'UTR内の位置7304-7305bpの間とのそれぞれに、miR-34aの標的配列２つとmiR-217の標的配列２つとを組み合わせたポリヌクレオチドが挿入された改変ウイルスとなっている。標的配列としては合計８つのmiRNA標的配列がゲノム上に挿入されている。即ち、5'UTR内の位置742-743bpの間に、miR-34aの標的配列２つとmiR-217の標的配列２つが挿入されている。また、3'UTR内の位置7304-7305bpの間に、miR-34aの標的配列２つとmiR-217の標的配列２つが挿入されている。
I. miRNA標的配列挿入によるCVB3の安全性向上
　本研究の目的は、腫瘍溶解性野生型CVB3（CVB-WT）の遺伝子改変ウイルスについて正常細胞での増殖を抑制する点にある。我々はCVB3-WTのゲノム3' untranslated region（UTR）、特にCVB3ゲノムの7304-7305bpの間に、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列を挿入し、遺伝子改変ウイルスを作製した。また、我々は、CVB3-WTのゲノム5' untranslated region（UTR）、特にCVB3ゲノムの742-743bpの間に、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列を挿入し、遺伝子改変ウイルスを作製した。更に我々は、CVB3-WTのゲノムの5'UTR内の位置742-743bpの間と、3'UTR内の位置7304-7305bpの間とのそれぞれに、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列を4つ挿入、あるいはmiR-34aの標的配列２つとmiR-217の標的配列２つとを組み合わせたポリヌクレオチドを挿入し、遺伝子改変ウイルスを作製した。挿入したmiR-34a、miR-34cまたはmiR-217の標的配列に、正常細胞で高発現したmiR-34a、miR-34cまたはmiR-217を有したRISC複合体が結合し、ウイルスタンパク質の翻訳等を阻害するため、正常細胞での増殖抑制が可能となる。
I-1. 標的配列のCVB3ゲノムへの挿入とウイルス力価
　我々は、全身の正常細胞において高発現が認められているmiR-34ファミリーを構成する２つのmiRNA、即ち、miR-34a及びmiR-34cに着目し、各miRNAの標的配列が４つ連続している二種類のmiRNA標的配列（miR-34aT×4+(miR-34aT×4-)、miR-34cT×4+(miR-34cT×4-)）を作製した。
　また、miR-34aの標的配列２つとmiR-217の標的配列２つとを組み合わせたmiRNA標的配列(miR-34aT×2&miR-217T×2+(miR-34aT×2&miR-217T×2-))を作製した。
　miR-34aまたはmiR-34cの標的配列をそれぞれCVB3ゲノムの7304-7305bpの間に挿入した。また、miR-34aまたはmiR-34cの標的配列をそれぞれCVB3ゲノムの742-743bpの間に挿入した。更に、miR-34a及びmiR-217の標的配列を、CVB3ゲノムの742-743bpの間と、CVB3ゲノムの7304-7305bpの間のそれぞれに挿入した。標的配列のゲノムへの挿入は、In-Fusionクローニング（TaKaRa社）法を用いて行った（図４、図５及び図６参照）。In-Fusionクローニング法は、市販のキットを購入することで、容易に実施することができる（TaKaRa社）。各遺伝子改変CVB3はどちらも（CVB3-miR-34aT、CVB3-miR-34cT）肺癌細胞株（NCI-H1299細胞）において増殖を認め、遺伝子改変CVB3の作製に成功した。なお、図６は、CVB3-WTのゲノムの5'UTR内への挿入位置を示す図であり、例として5'UTR内の位置742-743bpの間に、miR-34ｃの標的配列を４つ挿入した配列を示している。
　以降、特に記載した場合を除き、
　CVB3-34aT-3とは、miR-34aの標的配列を４つ（配列番号３のポリヌクレオチド）3'UTRに挿入したものを指し、
　CVB3-34cT-3とは、miR-34cの標的配列を４つ（配列番号４のポリヌクレオチド）3'UTRに挿入したものを指している。
　また、CVB3-34aT-5とは、miR-34aの標的配列を４つ（配列番号３のポリヌクレオチド）5'UTRに挿入したものを指し、
　CVB3-34aT-53とは、miR-34aの標的配列を４つずつ（配列番号３のポリヌクレオチド）5'UTR及び3'UTRに挿入したものを指している。
　更に、CVB3-34a&217T-53とは、miR-34aの標的配列を２つ及びmiR-217の標的配列を２つからなるポリヌクレオチド（配列番号２５のポリヌクレオチド）を、5'UTR及び3'UTRに挿入したものを指している。
　また、CVB3-1&217Tとは、miR-1の標的配列を２つ及びmiR-217の標的配列を２つからなるポリヌクレオチド（配列番号２９のポリヌクレオチド）を3'UTRに挿入したものを指している。
　次に、遺伝子改変CVB3のウイルス力価を評価するため、CVB-WTとの間でウイルス力価を比較した。ここでは、H1299細胞を用いてウイルス産生および力価の測定を行った。より詳細には、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスをウイルス未感染のH1299細胞株に導入してウイルスを産生させた。産生したウイルスを回収して、再度、ウイルス未感染のH1299細胞株に感染させてウイルス力価を測定した。H1299細胞でのCVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスの力価は、CVB-WTのウイルス力価にやや劣るものの、TCID50/mlの値が1.0×108を超えており非臨床試験に供するに充分な力価を有するものであることが明らかとなった（図８参照）。
I-2. 癌細胞及び正常細胞に対する遺伝子改変ウイルスの腫瘍溶解性活性の評価
　次に、各種癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスの増殖と腫瘍溶解効果の有無について評価した。癌細胞として、肺癌細胞株であるNSCLC（A549細胞、H1299細胞）、膵癌細胞株であるAsPC-1細胞、乳癌細胞株であるZR-75-1細胞を、正常細胞として、正常気道上皮細胞であるBEAS-2B細胞、食道正常扁平上皮細胞であるHet-1A細胞を用いるものとした。
　その結果、各癌細胞において、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は充分な腫瘍溶解効果を示す結果が得られた（図９参照）。特に、A549細胞、H1299細胞及びAsPC-1細胞において、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、CVB3-WTと同様の挙動を示すものとなった。一方、正常細胞においては、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3と、CVB3-WTとの間で腫瘍溶解効果に差が生じており、BEAS-2B細胞では、CVB3-WTと比較して100倍のウイルス量を感染しても腫瘍溶解効果が見られないということが明らかとなった（図９参照）。また、Het-1A細胞においてもCVB3-WTと比較して10倍のウイルス量を感染しても腫瘍溶解効果が見られないということが明らかとなった（図９参照）。
　以上のことから、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、癌細胞においてウイルスの増殖が可能であり、腫瘍溶解性効果を発揮することが明らかとなった。また、CVB3-WTと異なり、正常細胞において腫瘍溶解効果を発揮せず、ウイルス増殖が抑制されていることが明らかとなった。
　次に、各種癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、CVB3-34aT-3、CVB3-34aT-5、CVB3-34aT-53及びCVB3-34a&217T-53の各ウイルスの増殖と腫瘍溶解効果の有無について評価した。癌細胞として、上述したNSCLC（H1299細胞：通常）と、既知の方法でmiR-34aを強制的に高発現させたNSCLC（H1299細胞：高発現）と、上述したBEAS-2B細胞を用いるものとした。なお、miR-34aを強制的に高発現させたH1299細胞の準備については既知の方法を用いた為、その作成方法については説明を省略する。
　その結果、通常のH1299細胞では、各ウイルスが充分な腫瘍溶解効果を示す結果が得られた（図１０の上図参照）。また、miR-34aを高発現させたH1299細胞では、CVB3-WTと、その他のウイルスとの間で腫瘍溶解効果に差が生じており、CVB3-WTと比較して100倍のウイルス量を感染しても腫瘍溶解効果が見られないということが明らかとなった（図１０の左下図参照）。また、BEAS-2B細胞でも、CVB3-WTと、その他のウイルスとの間で腫瘍溶解効果に差が生じており、CVB3-WTでは、ウイルス濃度が大きなサンプル（MOI=10-1及びMOI=1）で、腫瘍溶解性効果が確認されたが、その他のウイルスでは、最もウイルス濃度が大きなサンプル（MOI=1）でも腫瘍溶解性効果が確認されなかった（図１０の右下図参照）。
　以上のことから、CVB3-34aT-3、CVB3-34aT-5、CVB3-34aT-53及びCVB3-34a&217T-53は、癌細胞においてウイルスの増殖が可能であり、腫瘍溶解性効果を発揮することが明らかとなった。更に、miR-34aを強制的に高発現させた癌細胞や正常細胞において、CVB3-WTと異なり、腫瘍溶解効果を発揮せず、ウイルス増殖が抑制されていることが明らかとなった。
　次に、各種癌細胞及び正常細胞におけるCVB3-WT、miR-1&217T、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスの増殖と腫瘍溶解効果の有無について評価した。癌細胞として、上述したNSCLC（H1299細胞）と、BEAS-2B細胞を用いるものとした。
　その結果、H1299細胞では、各ウイルスが充分な腫瘍溶解効果を示す結果が得られた（図１１の左図参照）。正常細胞においては、CVB3-WTとmiR-1&217TはMOI=10-2のウイルス濃度で、それぞれ腫瘍溶解性効果が確認された。一方、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3では、最もウイルス濃度が大きなサンプル（MOI=1）でも腫瘍溶解性効果が確認されなかった（図１１の右図参照）。
　以上のことから、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、癌細胞においてウイルスの増殖が可能であり、腫瘍溶解性効果を発揮することが明らかとなった。更に、正常細胞において、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、miR-1&217TやCVB3-WTと異なり、腫瘍溶解効果を発揮せず、ウイルス増殖が抑制されていることが明らかとなった。
　続いて、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを感染させた癌細胞及び正常細胞の細胞生存性試験をMTS法にて評価した。H1299細胞で産生したCVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを、ウイルス未感染のH1299細胞（1.0×104 cells）に感染させ、24時間後、48時間後及び72時間後の細胞生存率を測定した。MOI=0.001の試験では、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3のいずれも、72時間後のH1299細胞はほぼ死滅していた（図１２参照）。また、MOI=0.01の試験では、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3のいずれも、72時間後のH1299細胞はほぼ死滅していた（図１３参照）。
　また、H1299細胞で産生したCVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを、ウイルス未感染のBEAS-2B細胞（1.0×104 cells）に感染させ、24時間後、48時間後及び72時間後の細胞生存率を測定した。MOI=0.01の試験では、CVB3-WTにおいて72時間後のBEAS-2B細胞の細胞はほぼ死滅しているのに対して、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3では、72時間後のBEAS-2B細胞の生存が確認された（図１４参照）。
　以上のことから、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、癌細胞においてウイルスの増殖が可能であり、腫瘍溶解性効果を発揮することが明らかとなった。また、CVB3-WTと異なり、正常細胞においてはウイルス増殖が抑制され、細胞傷害性が強く抑制されていることが明らかとなった。
　更に、72時間後のBEAS-2B細胞（1.0×104 cells）と、Het-1A細胞（1.0×104 cells）の細胞生存率を図１５で示す。
　図１５で示すように、MOI=0.001及びMOI=0.01で、Het-1A細胞の細胞生存率が、CVB3-WTよりもCVB3-34aT-3が高く、CVB3-34aT-3よりもCVB3-34cT-3が更に高い値を示した。
　続いて、以下、図１６では、CVB3-WT、CVB3-34aT-3、CVB3-34aT-5、CVB3-34aT-53及びCVB3-34a&217T-53の各ウイルス（癌細胞ではMOI=0.001、正常細胞ではMOI=0.1）を感染させた癌細胞及び正常細胞の細胞生存性試験を、上記と同様にMTS法にて評価した結果を示す。図１６に示す試験では、癌細胞として、肺癌細胞株であるNSCLC（A549細胞（1.0×104 cells）、H1299細胞（1.0×104 cells））、膵癌細胞株であるAsPC-1細胞（1.0×104 cells）と、正常細胞としてBEAS-2B細胞（1.0×104 cells）をそれぞれ用いた、72時間後の細胞生存率を示している。
　図１６に示すように、BEAS-2B細胞の細胞生存率が、CVB3-WTよりもその他の各ウイルスにおいて高くなる結果を示した。また、CVB3-34aT-3及びCVB3-34aT-5と比べて、CVB3-34aT-53及びCVB3-34a&217T-53の細胞生存率が高くなる結果を示した。
　続いて、以下、図１７では、CVB3-WT、miR-1&217T、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルス（癌細胞ではMOI=0.001、正常細胞ではMOI=0.1）を感染させた癌細胞及び正常細胞の細胞生存性試験を、上記と同様にMTS法にて評価した結果を示す。図１７に示す試験では、癌細胞として、H1299細胞（1.0×104 cells）を、正常細胞として、BEAS-2B細胞（1.0×104 cells）をそれぞれ用いた、72時間後の細胞生存率を示している。
　図１７に示すように、BEAS-2B細胞の細胞生存率が、CVB3-WTよりもその他の各ウイルスにおいて高くなる結果を示した。また、miR-1&217Tと比べて、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の細胞生存率が高くなる結果を示した。
I-3. マウスを用いた腫瘍形成実験（in vivo）
　次に、マウスに癌細胞株（H1299）を投与して腫瘍を形成し、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを腫瘍内に投与して、腫瘍の変化を観察した。詳細な試験内容は後述するが、一定期間観察を行い、腫瘍の体積（図１８（ａ）参照）、マウスの生存率（図１８（ｂ）参照）及びマウスの体重（図１９参照）について評価を行った。マウスの腫瘍の長径が0.4cmに達したところで、治療群のマウスには、各ウイルスを隔日で最大５回（Day 2, 4, 6, 8, 10）まで投与した。また、未治療群のマウスには、Opti-MEMを隔日で最大５回（Day 2, 4, 6, 8, 10）まで投与した。各ウイルスまたはコントロールあたりn=4の数で検討した。
　その結果、図１８（ａ）に示すように未治療群（untreated）のマウスでは、癌細胞株（H1299）を投与した日から経時的に腫瘍体積が大きくなる結果が観察された。一方、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを投与した治療群のマウスにおいては、腫瘍は大きくならず、最終的には腫瘍が確認されない結果となった。また、図１８（ｂ）に示すように、未治療群（untreated）のマウスでは、癌細胞株（H1299）を投与した日から約３０日でマウスの生存率が0%となった。一方、CVB3-WT、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを投与した治療群のマウスにおいては、癌細胞株（H1299）を投与した日から約６０日経過後も生存率が100%となった。なお、生存率は、n=3または4のマウスの試験数から算出している。
　更に、図１９に示すように、マウスの体重変化においては、CVB3-WTを投与した治療群のマウスにおいて、癌細胞株（H1299）を投与した日から１０日～２０日で一時的な体重の減少が観察された。一方、未治療群（untreated）のマウスと、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを投与した治療群のマウスでは、体重の減少は観察されなかった。なお、CVB3-WTを投与したマウスで見られた体重の減少は、CVB3-WTを投与することで生じる副作用の影響により生じたものと推定される。
　以上の結果から、マウスを用いたin vivoの試験においても、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスが、ヒト肺癌細胞株（H1299）に対して、CVB3-WTと同様の腫瘍溶解性効果を発揮することが明らかとなった。また、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3の各ウイルスを投与したマウスでは、CVB3-WTを投与したマウスで生じた一時的な体重の減少が生じないことから、副作用の発生が抑制されている可能性が示唆された結果となった。
I-4. マウスを用いた血液生化学検査（in vivo）
　次に、マウスに癌細胞株（H1299）を投与して腫瘍を形成し、CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53及びmiR-1&217Tの各ウイルスを腫瘍内に投与して、各ウイルスの一回投与群のマウス及び二回投与群のマウスから血液を採取して、血液生化学検査を行った。詳細は後述するが、血液生化学検査では、CVB3-WTの投与により生じる副作用のマーカーであるGOP/AST（肝臓、心筋）、LDH（肝臓、心筋及び腎臓）、GPT/ALT（肝臓、心筋）及びAmy（膵臓）について、乾式臨床化学分析装置にて血液中の各成分量を測定して、副作用の有無を評価した。なお、一回投与群のマウスは、癌細胞株（H1299）を投与した日から２日目にウイルスを腫瘍内に投与して、その２日後にマウスの血液を採取した。また、二回投与群のマウスは、癌細胞株（H1299）を投与した日から２日目及び４日目にウイルスを腫瘍内に投与して、更に２日後にマウスの血液を採取した。各ウイルスまたはコントロールあたりn=3または4の数で検討した。
　その結果、図２０に示すように一回目投与群では、CVB3-WTを投与したマウスにおいて各マーカーの成分量が多く検出され、副作用が生じていた。一方、CVB3-34a&217T-53及びmiR-1&217Tの各ウイルスを投与したマウスはコントロールと同程度の成分量が検出された。また、図２１に示すように、二回目投与群では、miR-1&217Tを投与したマウスにおいて、各マーカーの成分量が最も多く検出された。一方、CVB3-34a&217T-53を投与したマウスでは、コントロールと同程度かそれ以下の成分量を示す結果となった。なお、二回目投与群でCVB3-WTを投与したマウスの成分量がそれほど多く検出されなかったのは、一回目投与のタイミングで、既に各マーカーの成分量が上がり、その後減少したことが推定される。
　また、図２２には、CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53、CVB3-34aT -53及びmiR-1&217Tの各ウイルスを腫瘍内に投与した、二回目投与群のマウスの結果を示している。この結果、CVB3-WT及びmiR-1&217Tを投与したマウスにおいて各マーカーの成分量が多く検出され、副作用が生じていた。一方、CVB3-34aT-53を投与したマウスは、コントロールよりも各マーカーの成分量が多く検出されたものの、CVB3-WT及びmiR-1&217Tよりも各マーカーの成分量が少ない結果となり、これらのウイルスよりも副作用が抑えられていることが確認された。更に、CVB3-34a&217T-53を投与したマウスでは、コントロールと同等かそれ以下の各マーカーの成分量を示すものとなった。
　以上の結果から、マウスを用いた血液生化学検査において、CVB3-34a&217T-53及びCVB3-34aT-53を投与したマウスでは、CVB3-WTを投与したマウスで生じた副作用の発生が抑制されていた。また、CVB3-34a&217T-53とmiR-1&217Tを比較すると、CVB3-34a&217T-53の方がより副作用の発生を抑制しうることが明らかとなった。更に、CVB3-34a&217T-53とCVB3-34aT-53を比較すると、CVB3-34a&217T-53の方がより一層副作用の発生を抑制しうることが明らかとなった。
I-5 標的配列の挿入位置としての5'UTRと3'UTRの比較
　次に、CVB3ゲノムの5'UTR（位置742-743bpの間）と3'UTR（位置7304-7305bpの間）に各標的配列を挿入して、標的配列挿入後のウイルスを３回または６回継代培養して、標的配列のゲノムからの脱落の有無を確認し、標的配列の保持安定性を評価した。CVB3ゲノムの塩基長は約400bpであり、各標的配列をCVB3ゲノムに挿入した塩基長は約500bpである。各試料から抽出したCVB3ゲノムを、既知の電気泳動法で泳動して、塩基長を確認した。即ち、CVB3ゲノムから標的配列の脱落が生じていると、塩基長が約400bpとして確認される。
　図２３（ａ）には、標的配列を挿入していないCVB3-WTから抽出したゲノムと、３回継代培養したCVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3から抽出したゲノムを用いて、標的配列挿入部位付近をPCR反応で増幅し、その産物を電気泳動した泳動結果を模式的に示している。また、図２３（ｂ）には、標的配列を挿入していないCVB3-WTから抽出したゲノム、６回継代培養したCVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3から抽出したゲノム、１０回継代培養したCVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3から抽出したゲノムを用いて、標的配列挿入部位付近をPCR反応で増幅し、その産物を電気泳動した泳動結果を模式的に示している。即ち、図２３（ａ）及び図２３（ｂ）には、3'UTRに標的配列を挿入して、各ウイルスを継代培養した結果となる。
　また、図２４（ａ）乃至図２４（ｆ）には、標的配列を挿入していないCVB3-WTから抽出したゲノムと、各標的配列を挿入したウイルスを3回、6回及び１０回継代培養したものから抽出したゲノムを用いて、標的配列挿入部位付近をPCR反応で増幅し、その産物を電気泳動した泳動結果を模式的に示している。図２４（ａ）は、CVB3-34aT-53ウイルスゲノムにおける5'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。図２４（ｂ）は、CVB3-34a&217T-53ウイルスゲノムにおける5'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。図２４（ｃ）は、CVB3-34aT-5ウイルスゲノムにおける5'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。図２４（ｄ）は、CVB3-34cT-5ウイルスゲノムにおける5'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。図２４（ｅ）は、CVB3-34aT-53ウイルスゲノムにおける3'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。図２４（ｆ）は、CVB3-34a&217T-53ウイルスゲノムにおける3'UTRに挿入した標的配列付近のPCR反応の結果である。即ち、図２４（ａ）乃至図２４（ｄ）は、5'UTRに標的配列を挿入した各ウイルスを継代培養した結果となる。また、図２４（ｅ）及び図２４（ｆ）は、3'UTRに標的配列を挿入した各ウイルスを継代培養した結果となる。
　その結果、図２３（ａ）及び図２３（ｂ）から、CVB3-34aT-3及びCVB3-34cT-3は、３回継代培養した時点ではゲノム上に保持されているが、６回または１０回継代培養した時点で、標的配列がゲノム上から脱落していることが明らかとなった。
　また、図２４（ａ）乃至図２４（ｄ）から、5'UTRに各標的配列を挿入したウイルスでは、３回、６回及び１０回継代培養した時点でもゲノム上から脱落せずに標的配列が保持されていることが明らかとなった。更に、図２４（ｅ）及び図２４（ｆ）から、3'UTRに各標的配列を挿入したウイルスでは、３回、６回または１０回継代培養した時点で、標的配列がゲノム上から脱落していることが明らかとなった。以上の結果から、miRNAの表的配列を挿入する位置として、CVB3のゲノム上では、5'UTR（位置742-743bpの間）の方が、3'UTR（位置7304-7305bpの間）よりも標的配列を安定的に保持できるものであることが明らかとなった。
I-6. METHODS SUMMARY
　以下のプロトコールにしたがって、本研究は行われた。
［各遺伝子改変ウイルスの作製］
＜作成したウイルスの名称＞
・CVB3-34aT-3
・CVB3-34cT-3
・CVB3-34aT-5
・CVB3-34cT-5
・CVB3-34aT-53
・CVB3-34a&217T-53
・miR-1&217T
＜ベクター構築＞
(Materials & reagents)
・CVB3 Plasmid
・KOD -Plus-neo
・UltraPure
・Primer(CVB3-miR-34aT)
miR-34aT-Inverse Forward
AACCAGCTAAGACACTGCCAGAGACAATTTGAAATAATTTAGATTGG (10pmol/μl)（配列番号９）
miR-34aT-Inverse Reverse
GCAGTGTCTTAGCTGGTTGTTAATCTAAAAGGAGTCCAACC (10pmol/μl)
（配列番号１０）
miR-34aT×4+
ACAACCAGCTAAGACACTGCCAcgatACAACCAGCTAAGACACTGCCAaccggtACAACCAGCTAAGACACTGCCAtcacACAACCAGCTAAGACACTGCCA (1umol/μl)
（配列番号３）
miR-34aT×4-
TGGCAGTGTCTTAGCTGGTTGTgtgaTGGCAGTGTCTTAGCTGGTTGTaccggtTGGCAGTGTCTTAGCTGGTTGTatcgTGGCAGTGTCTTAGCTGGTTGT (1umol/μl)
（配列番号１１）
・Primer(CVB3-miR34cT)
miR-34cT-Inverse Forward
ATCAGCTAACTACACTGCCTGAGACAATTTGAAATAATTTAGATTGG (10pmol/μl)
（配列番号１２）
miR-34cT-Inverse Reverse
CAGTGTAGTTAGCTGATTGCTAATCTAAAAGGAGTCCAACC (10pmol/μl)
（配列番号１３）
miR-34cT×4+
GCAATCAGCTAACTACACTGCCTcgatGCAATCAGCTAACTACACTGCCTaccggtGCAATCAGCTAACTACACTGCCTtcacGCAATCAGCTAACTACACTGCCT (10umol/μl)
（配列番号４）
miR-34cT×4-
AGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGCgtgaAGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGCaccggtAGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGCatcgAGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGC (10umol/μl)
（配列番号１４）
CVB3-34a-5-Reverse
GCAGTGTCTTAGCTGGTTGTTTTGCTGTATTCAACTTAACAATG (10pmol/μl)
（配列番号１５）
CVB3-34a-5-Forward
AACCAGCTAAGACACTGCCAATGGGAGCTCAAGTATCAAC (10pmol/μl)
（配列番号１６）
CVB3-34c-5-Reverse
GCTTTGCTGTATTCAACTTAACAATGAATTG (10pmol/μl)
（配列番号１７）
CVB3-34c-5-Forward
ATGGGAGCTCAAGTATCAAC (10pmol/μl)
（配列番号１８）
CVB3-in-34c-5+
GTTGAATACAGCAAAGCAATCAGCTAACTACACTGCCTCGATGCAATCAG
CTAACTACACTGCCTACCGGTGCAATCAGCTAACTACACTGCCTTCACGC
AATCAGCTAACTACACTGCCTATGGGAGCTCAAGTA (1μmol/μl)
（配列番号１９）
CVB3-in-34c-5-
TACTTGAGCTCCCATAGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGCGTGAAGGCAGTG
TAGTTAGCTGATTGCACCGGTAGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGCATCGAG
GCAGTGTAGTTAGCTGATTGCTTTGCTGTATTCAAC (1μmol/μl)
（配列番号２０）
CVB3-34a&217-5-Reverse
GCAGTGTCTTAGCTGGTTGTTTTGCTGTATTCAACTTAACAATG (10pmol/μl)
（配列番号２１）
CVB3-34a&217-5-Forward
AATCAGTTCCTGATGCAGTAATGGGAGCTCAAGTATCAACGC (10pmol/μl)
（配列番号２２）
CVB3-34a&217-3-Reverse
GCAGTGTCTTAGCTGGTTGTTAATCTAAAAGGAGTCCAACCACTTC (10pmol/μl)
（配列番号２３）
CVB3-34a&217-3-Forward
AATCAGTTCCTGATGCAGTAGAGACAATTTGAAATAATTTAGATTG (10pmol/μl)
（配列番号２４）
miR-34a×2 & miR-217×2+
ACAACCAGCTAAGACACTGCCACGATACAACCAGCTAAGACACTGCCAAC
CGGTTCCAATCAGTTCCTGATGCAGTATCACTCCAATCAGTTCCTGATGC
AGTA (1μmol/μl)
（配列番号２５）
miR-34a×2 & miR-217×2-
TACTGCATCAGGAACTGATTGGAGTGATACTGCATCAGGAACTGATTGGA
ACCGGTTGGCAGTGTCTTAGCTGGTTGTATCGTGGCAGTGTCTTAGCTGG
TTGT (1μmol/μl)
（配列番号２６）
CVB3-miR-Forward
CAGGTCTTTGAGGGGAACAA (20 pmol/μl)
（配列番号２７）
CVB3-miR-Reverse
ATTAATGCAGCTGGCACGAC (20 pmol/μl)
（配列番号２８）
miR-1&217T Forward
ttaATACATACTTCTTTACATTCCAcgatATACATACTTCTTTACATTCCAaccggtTCCAATCAGTTCCTGATGCAGTAtcacTCCAATCAGTTCCTGATGCAGTAgagacaatttgaaataatttag (20 pmol/μl)
（配列番号２９）
miR-1&217T Reverse
ctcTACTGCATCAGGAACTGATTGGAgtgaTACTGCATCAGGAACTGATTGGAaccggtTGGAATGTAAAGAAGTATGTATatcgTGGAATGTAAAGAAGTATGTATtaatctaaaaggagtccaacca (20 pmol/μl) 
（配列番号３０）
 (Methods)
1.On iceで以下の順に0.2 ml PCR tubeに混合する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
2．タッピングもしくは緩やかなピペッティングで攪拌し、軽くスピンダウンして溶液を集める。Eppendorf社のサーマルサイクラーで次のプログラムを実行する。
3．（１）miR-34aT: 94℃ 2:00、98℃ 0:10、60℃ 0:30、68℃ 6:30（28 cycle）、72℃ 7:00
  （２）miR-34cT: 94℃ 2:00、98℃ 0:10、57℃ 0:30、68℃ 6:30（28 cycle）、72℃ 7:00
4．PCR産物を精製し、Dpn Iで1時間制限酵素処理する。
5．制限酵素処理産物を用いてアガロースゲル電気泳動を行い、目的のバンドを切り出す。
6. 二本鎖のインサートを作製する。配列番号３と１１、また配列番号４と１４をそれぞれ１μlずつチューブに入れ、annealing bufferで94℃ 10:00、-１℃/1minで25℃まで冷やし、25℃　5:00　反応する。
7．ゲル精製後、制限酵素処理後CVB3 plasmid (150 ng)と二本鎖のインサート (60 ng)をin-fusionを用いて、50℃、15min反応させる。
8．In-fusion産物をコンピテントセルに導入し、37℃で培養する。
9．翌日、コロニーを拾い、LB培地にて培養する。
10．培養物からプラスミドを回収し、miRNA標的配列の挿入の有無を確認する。
＜ウイルスRNA作製＞
(Materials & reagents)
・MEGAscript(登録商標)Kit　　Ambion　Cat# AM1333 ＊Store at -20℃
・CVB3 plasmid（CVB3-WT、CVB3-miR-1&217T、CVB3-miR-217T）
・Phenol:Chloroform 5:1, Acid-equilibrated : pH 4.7 Sigma Cat# P1944-100ML Lot#010M1574
・Chloroform　　nacalai tesque　　Cat# 08402-55 Lot# V6K0595
・75% Ethanol（Nuclease-free water使用）
・10 mol/l-Ammonium Acetate Solution　　nacalai tesque　　Cat# 02432-74 Lot# L2B2291
・UltraPure
 (Methods)
1．室温で以下の順に0.2 ml PCRチューブに混合する。（Total 20 μl）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
2．サーマルサイクラーで37℃、3h反応させる。（Bio-Rad社サーマルサイクラー使用）
3．3h後、反応中のチューブにTURBO DNaseを1μl加え、よく攪拌し、追加で37℃、15min。
4．事前に1.5mlチューブにUltraPure 114μlと付属のAmmonium Acetate Stop Solutionを15μl混合した溶液を本数分×1.1倍作製しておく。
5．反応後、チューブに上記の混合液を129μl加え、ピペッティング。
6．全量を0.7mlチューブに移す。
7．そこに、150μlのPhenol : Chloroformを加え、ピペッティング&転倒混和。
8．室温、10,000×g、2 min遠心。
9．上澄み（約150μl）を別の新しい0.7mlチューブに移す。
10．その水層にChloroformを150μl加え、転倒混和。
21．室温、10,000×g、2 min遠心。
22．上澄み（約100μl）を別の新しい0.7mlチューブに移す。
23．冷5 M Ammonium acetateを、その水層に150μl加え、ピペッティング。
24．On ice、10 min静置。
25．4℃、10,000×g、15 min遠心。
26．ピペットマンでゆっくり上清を除去する。
27．75% Ethanolを200μl緩やかに加える。
28．4℃、10,000×g、10 min遠心。
29．ピペットマンでゆっくり上清をギリギリまで除去する。
30．ペレットにUltraPureを70μl加え溶解。
＜ウイルス作製＞
(Materials & reagents)
・NCI-H1299 細胞 (1 ×107 cells/30 ml/dish)
・RPMI 1640 w/10% FBS (Growth medium)
・Opti-MEM（登録商標）I
・LipofectamineTM 2000 Reagent Invitrogen Cat# 11668-019
・In vitro transcription産物
 (Methods)
1．分注したOpti-MEMにRNAを80μgになるように液中に加え、もう別チューブに分注したOpti-MEMにLipofectamine 2000を120μl液中に加える。
2．両者、室温、5min静置。
3．両チューブを混合し、室温、20min静置。
4．20 min後、混合液全量をNCI-H1299細胞に添加する。
5．4 h後、Growth mediumに置換する。
6．37℃、5%CO2、24hインキュベート。
7．Transfectionから25h後、培地を捨てないまま各NCI-H1299細胞をセルスクレーパーで剥離する。
8．細胞ごと上清を50mlチューブに回収する。
9．50mlチューブをLiquid N2に浸けて凍結させる。
10．37℃ウォーターバスで解凍。
11．5～6の凍結融解を2回繰り返す。(計3回Freeze-Thaw)
12．4℃、3,000rpm、15min遠心。
13．上清を移すNCI-H1299細胞の培地を新鮮な培地に置換する。（15ml）
14．遠心後の上清全量をNCI-H1299細胞に加える。
15．37℃、5%CO2、6~8hインキュベート
16．CPEが60～70%以上確認された時点に、培養上清を除去。
17．Opti-MEM（登録商標）Iを2ml加える。
18．セルスクレーパーで細胞を剥離。
19．細胞ごとOpti-MEM（登録商標）Iを全量、15mlチューブに回収する。
20．この15 mlチューブをLiquid nitrogenに浸けて凍結させる。(約2min)
21．37℃ウォーターバスで解凍。(約10min)
22．20～21の凍結融解を2回繰り返す (計3回Freeze-Thaw)
23．4℃、3,000rpm、15min遠心。
24．上清を-80℃で保存。
＜ウイルス力価測定＞
(Materials & reagents)
・96 well plate（flat bottom）
・NCI-H1299 細胞 (5×103 cells/100 μl/well)
・RPMI1640 w/10%FBS (Growth medium)
・96 well plate（round bottom）
・Opti-MEM（登録商標）I
(Methods)
1．NCI-H1299細胞を96 well Flat plateに5×103 cells/100μl/wellで全wellに播種。
2．37℃、5%CO2、7hインキュベート。
3．Opti-MEMを96 well Round plateに180μlずつ、2列目から12最終列まで加える。
4．1列目のウイルス最濃列(通常10-2)の為、1.5ml tubeにOpti-MEMを990μl加え、そこにウイルス原液を10μl添加、ピペッティングをしっかりし10-2液を調整する。
5．ウイルス10-2の列の液を96 well Round plateの1列目に120μlずつ添加する。
6．1列目のウイルス液を、電動8連ピペッターを使用して20μlずつ2列目に移す。
7．そこで一度ピペッティングを行い、チップを変える。
8．直前に希釈した列から20μlずつ取り、隣の列に移す。
9．一度ピペッティングを行い、チップを変える。
10．8.～9.を11列まで繰り返す。
11．NCI-H1299細胞を播種したFlat plateをインキュベーターから取り出す。
12．8連ピペッターを用いて、Round plateの薄い12列目から順に、Flat PlateのNCI-H1299細胞に50μlずつ加える。
13．37℃、5%CO2、120h（5日間）インキュベート。
14．50%CPEが見られたwellをカウントする。以下の式を用いてTiterを算出する
　　Log10 (TCID50) = L + d (S - 0.5) + log10 (1/v)
＜細胞生存率測定＞
(Materials & reagents)
・96 well plate（flat bottom）
・NCI-H1299、BEAS-2B、Het-1A細胞(1×104 cells/80 μl/well)
・RPMI1640 w/10%FBS (Growth medium)
・Opti-MEM（登録商標）I
・CellTiter 96（登録商標） Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay
 (Methods)
1．1．NCI-H1299、BEAS-2B、Het-1A細胞を96 well Flat plateに1×104 cells/80μl/wellで播種。
2．37℃、5%CO2、7 hインキュベート。
3. Opti-MEMでウイルスをMOI=0.1もしくはMOI=1になるように希釈する。
4. ウイルス希釈液を20μlずつ各wellに入れる。
5．24、48、72時間後CellTiter 96 Reagentを20μlずつ入れ、１時間インキュベート、Enspireで490nmの吸光度を測定する。
＜腫瘍形成実験（in vivo）＞
(Materials & reagents)
・マウス：BALB/c nu-nu, 5週齢、メス、N=4/グループ
・ウイルス：CVB3-WT、CVB3-34aT-3、CVB3-34cT-3
・腫瘍：NCI-H1299 (5×106個/100μ? PBS)
・コントロール：Opti-MEM（登録商標）
 (Methods)
1.Day0：三種混合麻酔（塩酸メデトミジン0.3g+ミダゾラム4mg＋酒石酸ブトルファノール5mg/kg 混合麻酔）0.1 ml/10g（体重）をマウス腹腔内に26G針で投与する。マウスの右側腹部あるいは左側腹部に癌細胞株（H1299）5×106個/100μ? PBS /匹の癌細胞を27G針で皮下投与する。
2.Day2：１日間置きに観察し、腫瘍の長径が0.4cmに達した際に、未治療群のマウスには50μ? Opti-MEM /匹を29G針で、投与部位をエタノール消毒した上で腫瘍内に投与する（隔日投与、最大5回:Day 2, 4, 6, 8, 10）。
3.Day2：腫瘍の長径が0.4 cmに達した際に、治療群のマウスには安全キャビネット内で、CVB3-WTまたは遺伝子改変CVB3（CVB3-34aT-3またはCVB3-34cT-3）を5×106 TCID50/50μ? Opti-MEM /匹を29G針で、投与部位をエタノール消毒した上で腫瘍内に投与する（隔日投与、最大5回: Day 2, 4, 6, 8, 10）。
4.隔日に体重及び腫瘍径を測定し、腫瘍長径が10mmを超えた時、もしくは腫瘍が潰瘍になった時、速やかに安楽死させる（腫瘍体積＝長径×短径×短径/2）。
5.腫瘍が3週間経過しても形成されなかった場合、もしくは腫瘍を完全に拒絶したマウスでも最大150日までの観察期間とし、速やかに安楽死させる。
＜血液生化学検査（in vivo）＞
(Materials & reagents)
・マウス：BALB/c nu-nu, 5週齢、メス、N=4/グループ
・ウイルス：CVB3-WT、CVB3-34a&217T-53、miR-1&217T
・腫瘍：NCI-H1299 (5×106個/100μ? PBS)
・コントロール：Opti-MEM（登録商標）
 (Methods)
1.Day0：三種混合麻酔（塩酸メデトミジン0.3g+ミダゾラム4mg＋酒石酸ブトルファノール5mg/kg 混合麻酔）0.1 ml/10g（体重）をマウス腹腔内に26G針で投与する。マウスの右側腹部あるいは左側腹部に癌細胞株（H1299）5×106個/100μ? PBS /匹の癌細胞を27G針で皮下投与する。
2.Day2：１日間置きに観察し、腫瘍の長径が0.4cmに達した際に、未治療群のマウスには50μ? Opti-MEM /匹を29G針で、投与部位をエタノール消毒した上で腫瘍内に投与する。
3.Day 2：腫瘍の長径が0.4cmに達した際に、治療群のマウスには安全キャビネット内で、CVB3-WTまたは遺伝子改変CVB3（CVB3-34a&217T-53またはmiR-1&217T）を5×106 TCID50/50μ? Opti-MEM /匹を29G針で、投与部位をエタノール消毒した上で腫瘍内に投与する。
4.（一回投与群においては）Day4：三種混合麻酔0.1ml/10g（体重）をマウス腹腔内に26G針で投与する。マウスを解剖して、下大静脈から24G針で採血する（約600mL）。
5.（二回投与群においては）、Day4にもう一回マウスにOpti-MEMもしくはウイルスを29G針で腫瘍内に投与する。Day6に採血する。
6.血液は室温で一時間放置して（凝固させるため）、1,500 xgで、室温で15分遠心する。
7.上清（血清）を新しい1.5mLチューブに移す。
8.スポットケム（登録商標）で血液生化学検査を行う。
配列番号1: miR-34a
配列番号2: miR-34c
配列番号3: miR-34aT×4+
配列番号4: miR-34cT×4+
配列番号5: miR-34aT×2 & miR-217T×2+
配列番号6: miR-34cT×2 & miR-217T×2+
配列番号7: miR-34aT×2 & miR-1T×2+
配列番号8: miR-34cT×2 & miR-1T×2+
配列番号9: miR-34a-Inverse Forward
配列番号10: miR-34a-Inverse Reverse
配列番号11: miR-34aT×4-
配列番号12: miR-34c-Inverse Forward
配列番号13: miR-34c-Inverse Reverse
配列番号14: miR-34cT×4-
配列番号15: CVB3-34a-5-Reverse
配列番号16: CVB3-34a-5-Forward
配列番号17: CVB3-34c-5-Reverse
配列番号18: CVB3-34c-5-Forward
配列番号19: CVB3-in-34c-5+
配列番号20: CVB3-in-34c-5-
配列番号21: CVB3-34a&217-5-Reverse
配列番号22: CVB3-34a&217-5-Forward
配列番号23: CVB3-34a&217-3-Reverse
配列番号24: CVB3-34a&217-3-Forward
配列番号25: miR-34a×2 & miR-217×2+
配列番号26: miR-34a×2 & miR-217×2-
配列番号27: CVB3-miR-Forward
配列番号28: CVB3-miR-Reverse
配列番号29: miR-1&217T Forward
配列番号30: miR-1&217T Reverse

Claims (16)

  1. 　コクサッキーウイルス野生型(CVB3-WT)のゲノムに、正常細胞特異的あるいは組織特異的microRNA(miRNA)の標的配列からなるポリヌクレオチドが少なくとも一つ挿入された変異ゲノムを含み、正常細胞において特異的に増殖が抑制され、
    　前記正常細胞特異的miRNAの標的配列がmiR-34a及びmiR-34cの少なくとも一方に対応する
    　遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  2. 　前記ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内の少なくとも一方である
    　請求項１に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  3. 　前記ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの前記3'UTR領域内における位置7304と7305との間である
    　請求項１または請求項２に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  4. 　前記ポリヌクレオチドが挿入される位置がCVB3-WTゲノムの前記5'UTR領域内における位置742と743との間である
    　請求項１または請求項２に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  5. 　前記ポリヌクレオチドが複数個挿入された
    　請求項１乃至請求項４のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  6. 　癌細胞において増殖が可能な
    　請求項１乃至請求項５のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  7. 　前記ポリヌクレオチドが、下記（ａ）若しくは（ｂ）、または（ａ）若しくは（ｂ）において１～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである
    　請求項１乃至請求項６のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
    (a)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Atc acA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA
    (b)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC Ttc acG CAA TCA GCT AAC TAC ACT GCC T
  8. 　前記ポリヌクレオチドが、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内のそれぞれに挿入された
    　請求項７に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  9. 　前記組織特異的miRNAがmiR-1及びmiR-217の少なくとも一方を含む
    　請求項１乃至請求項６のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  10. 　前記ポリヌクレオチドが、下記(c)若しくは(d)、または(c)若しくは(d)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである
    　請求項９に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
    (c)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TAt cac TCC AAT CAG TTC CTG ATG CAG TA
    (d)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT Atc acT CCA ATC AGT TCC TGA TGC AGT A
  11. 　前記ポリヌクレオチドが、CVB3-WTゲノムの5'UTR領域内及び3'UTR領域内のそれぞれに挿入された
    　請求項１０に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
  12. 　前記ポリヌクレオチドが、下記(e)若しくは(f)、または(e)若しくは(f)において1～数個のヌクレオチドを欠失、置換若しくは付加した配列からなるポリヌクレオチドである
    　請求項９に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
    (e)　ACA ACC AGC TAA GAC ACT GCC Acg atA CAA CCA GCT AAG ACA CTG CCA acc ggt ATA CAT ACT TCT TTA CAT TCC Atc acA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA
    (f)　GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTc gat GCA ATC AGC TAA CTA CAC TGC CTa ccg gtA TAC ATA CTT CTT TAC ATT CCA tca cAT ACA TAC TTC TTT ACA TTC CA
  13. 　請求項１乃至請求項９のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルスを含む
    　医薬組成物。
  14. 　癌（好ましくは肺癌、乳癌および悪性中皮腫）またはその前癌状態の処置（予防または治療）のための
    　請求項１３に記載の医薬組成物。
  15. 　局所用または全身投与用の製剤である
    　請求項１３または１４に記載の医薬組成物。
  16. 　癌（好ましくは肺癌、乳癌および悪性中皮腫）またはその前癌状態の処置（予防または治療）において使用するための
    　請求項１乃至請求項９のいずれか１項に記載の遺伝子改変コクサッキーウイルス。
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