WO2017013695A1 - 糖アルコール混合液の有効活用 - Google Patents

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井村誠
岩切亮
濱澤和弘
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing yeast cells, wherein yeast is cultured using maltitol and sorbitol, which are sugar alcohols, as sugar sources (carbon sources). Furthermore, it is related with the manufacturing method of a yeast cell body which culture
  • sugar alcohols with low calorie and non-cariogenic functions have attracted attention as raw materials for various sugarless foods.
  • Demand is growing.
  • Sugar alcohol is produced by adding hydrogen to various sugars obtained from corn or potato starch as raw materials, or chickenpox, and in the production process, a mixture containing a large amount of maltitol and sorbitol is produced.
  • sorbitol is limited to microorganisms that can assimilate this, such as bacteria belonging to the genus Gluconobactor, which have excellent ability to oxidize various sugars and sugar alcohols.
  • maltitol which is another main component, can be assimilated by microorganisms.
  • yeast in order to obtain yeast cells that are raw materials for seasonings and the like, yeast is often cultured, but glucose is generally used as a sugar to be added to the medium. It accounts for part of the production cost.
  • the present invention has an object of producing yeast cells using maltitol or sorbitol as a sugar source, and producing yeast cells using a mixed solution containing maltitol or sorbitol as a sugar source.
  • the present inventor is able to assimilate maltitol and sorbitol, which are main components of sugar alcohol waste liquor, by edible yeast, Candida utilis, that is, culturing yeast cells using them as a sugar source.
  • the present invention (1) A method for culturing Candida utilis, characterized in that maltitol or sorbitol is assimilated by Candida utilis.
  • the present invention provides a cell body of Candida utilis obtained by the culture method of (1) above.
  • maltitol and sorbitol which have been difficult to assimilate by microorganisms, can be used as a cultured sugar source for Candida utilis.
  • This makes it possible to replace glucose for the medium with a mixed solution containing maltitol and sorbitol produced in the sugar alcohol production process.
  • the risk of contamination which is the most problematic in yeast culture, can be reduced compared to the case of using other sugar sources.
  • Maltitol and sorbitol used in the present invention are compounds belonging to sugar alcohols.
  • a mixed solution containing maltitol and sorbitol is produced.
  • maltitol and sorbitol are assimilated by Candida utilis, which is a kind of yeast.
  • yeasts include the genera Saccharomyces, Schizosaccharomyces, Candida, Yarrowia, Pichia, Hansenula, and Kluyveromyces.
  • So-called edible yeasts include what are commonly called brewer's yeast (Saccharomyces pastorianus, Saccharomyces cerevisiae), baker's yeast (Saccharomyces cerevisiae), and torula yeast (Candida utilis).
  • yeast strains commonly used for seasoning yeast extracts include Saccharomyces cerevisiae and Candida utilis.
  • the edible yeast Candida utilis has the ability to assimilate maltitol and sorbitol.
  • the Candida utilis strain used in the present invention is not particularly required to be genetically modified or transformed, and may be a commonly used strain.
  • maltitol and sorbitol can be added to the medium as part or all of the sugar source during the cultivation of Candida utilis.
  • the sugar alcohol to be added may be maltitol and sorbitol, which are commercially available products, or a mixed solution containing maltitol and sorbitol obtained from the sugar alcohol production process.
  • a mixed solution containing maltitol and sorbitol is used as a sugar source
  • the mixing ratio of maltitol and sorbitol may be arbitrary, and the content can be adjusted at the time of medium composition, and thus may be arbitrary.
  • the medium composition used for culture in the present invention only needs to contain a nitrogen source, a sulfur source, a phosphate, and a mineral.
  • a strain having an assimilability of sugar alcohol refers to a yeast containing a sugar alcohol-containing medium such as SM medium (0.67 w / v% yeast nitrogen base, 2 w / v% maltitol, pH 6.5).
  • SM medium 0.67 w / v% yeast nitrogen base, 2 w / v% maltitol, pH 6.5.
  • FIG. 1A shows a graph in which the OD 600 of the culture broth was measured as an indicator of bacterial cell growth and the change with time was plotted.
  • Example 1 it carried out similarly to Example 1 except having used Saccharomyces cerevisiae NBRC101557 instead of Candida utilis. The result is shown in FIG. 1B.
  • Example 2 In Example 1, it carried out like Example 1 except having used Pichia pastoris NBRC0948 instead of Candida utilis. The result is shown in FIG. 1C.
  • Example 3 In Example 1, it carried out like Example 1 except having used Kluyveromyces marxianus NBRC1777 instead of Candida utilis. The result is shown in FIG. 1D.
  • Example 4 ⁇ Comparative Example 4>
  • Schizosaccharomyces pombe NBRC0340 was used instead of Candida utilis, and YE medium (yeast extract 0.5%, glucose 3%) was used instead of YPD medium for pre-culture, as in Example 1. went. The result is shown in FIG. 1E.
  • Example 1 As a result of Example 1 to Comparative Example 4, as is apparent from the graphs of FIGS. 1A to 1E, Candida utilis showed high ability to assimilate maltitol. In contrast, none of Saccharomyces cerevisiae, Pichia tori pastoris, Kluyveromyces marxianus, and Schizosaccharomyces pombe could assimilate maltitol.
  • Candida utilis NBRC0988 was pre-cultured overnight in 5 ml YPD medium (yeast extract 1%, polypeptone 2%, glucose 2%) in 100 ml SM medium (0.67w / v% yeast nitrogen base, 2w / v % Maltitol, pH adjusted to 6.5), 0.5% (v / v) was inoculated, cultured at 30 ° C. and 225 rpm, OD 600 of the culture was measured, and the change with time was observed.
  • YPD medium yeast extract 1%, polypeptone 2%, glucose 26%
  • 100 ml SM medium (0.67w / v% yeast nitrogen base, 2w / v % Maltitol, pH adjusted to 6.5
  • 0.5% (v / v) was inoculated, cultured at 30 ° C. and 225 rpm, OD 600 of the culture was measured, and the change with time was observed.
  • Example 2 a test was conducted in the same manner as in Example 2 using a medium containing glucose, fructose, sucrose, and maltose instead of maltitol in the SM medium. The OD 600 after 48 hours from the start of the culture was measured, and the results are shown in Table 1. Maltitol in Example 2 and glucose, fructose, sucrose, and maltose in Comparative Example 5 showed growth, but OD 600 per gram of sugar was highest in maltitol, and Candida utilis has a high ability to utilize sugar alcohol. The result showed that.
  • Example 3 Candida utilis NBRC0988 pre-cultured overnight in 5 ml YPD medium into 100 ml SM medium (0.67 w / v% yeast nitrogen base, 2 w / v% maltitol, pH adjusted to 6.5) 0.5 v / v% was inoculated, cultured at 30 ° C. and 225 rpm, the OD 600 of the culture was measured, and changes with time were observed.
  • Example 3 the test was performed in the same manner as in Example 3 except that sorbitol and mannitol were used instead of maltitol in the SM medium.
  • the OD 600 after 48 hours from the start of the culture was measured, and the results are shown in Table 2. Although there was a difference in the growth of bacterial cells depending on the type of sugar alcohol, growth was confirmed with any sugar alcohol.
  • Candida utilis NBRC0987 and Candida utilis NBRC0988 were pre-cultured overnight in 5 ml of YPD medium (yeast extract 1%, polypeptone 2%, glucose 2%) in 100 ml SD medium and SM medium 0.5% (v / V) Inoculated, cultured at 30 ° C. and 225 rpm, OD 600 of the culture was measured, and changes with time were observed. These two strains are standard strains of Candida utilis and can be obtained from NBRC.
  • FIG. 2A shows the time course of the growth of Candida utilis NBRC0987
  • FIG. 2B shows the time course of the growth of Candida utilis NBRC0988.
  • the sugar source is maltitol
  • the growth start of NBRC0987 was delayed from that of NBRC0988, but since all strains assimilated maltitol, strains belonging to Candida utilis are mostly maltitol. It was shown that it possessed the assimilation property.
  • the graph which compared the growth in case the glucose sources are glucose and maltitol in the comparative example 1, Saccharomyces cerevisiae cocoon.
  • the graph which contrasted the growth in case the glucose source is glucose and maltitol in the comparative example 2, Pichia pastoris.
  • the graph which contrasted the growth in case the glucose sources are glucose and maltitol in the comparative example 3, Kluyveromyces marxianus.
  • the graph which contrasted the growth in case the glucose sources are glucose and maltitol in the comparative example 4, Schizosaccharomyces pombes.
  • the growth graph which used maltitol as a sugar source in Example 4 Candida utilis NBRC0987.
  • the growth graph which used maltitol as a sugar source in Example 4 Candida utilis NBRC0988.
  • Candida utilis can assimilate maltitol and sorbitol, and therefore can be cultured using a sugar alcohol process liquid containing a large amount thereof as a sugar source.

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Abstract

【課題】糖アルコール廃液について、環境負荷の少ない処分方法、望ましくは利用方法を提供する。これまで微生物による資化が困難とされてきた糖アルコールのマルチトールやソルビトールを糖源に用いて、酵母菌体の製造を行う。 【解決手段】酵母菌株としてキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）を用い、培地の糖源としてマルチトールまたはソルビトールを用いて、菌体の培養を行う。

Description

糖アルコール混合液の有効活用
 本発明は、糖アルコールであるマルチトールとソルビトールを糖源（炭素源）として酵母を培養する、酵母菌体の製造法に関する。さらには、糖アルコール製造工程液を培地に用いて酵母を培養する、酵母菌体の製造法に関する。
 近年、肥満や生活習慣病の予防や、虫歯や口臭の予防といったオーラルケアへの関心が高まり、低カロリー・非齲蝕性などの機能性を持つ糖アルコールが、各種シュガーレス食品の原料として注目され、需要が伸びている。糖アルコールはトウモロコシやイモの澱粉などを原料として得られる種々の糖、水飴に水素を添加して製造されるが、その製造過程でマルチトールやソルビトールを多く含む混合液を生じる。このうちソルビトールは、これを資化できる微生物は多種の糖や糖アルコールを酸化する能力に長けているGluconobactor属細菌などに限定される。また、もう一つの主要成分であるマルチトールに至っては、微生物により資化できるといった報告はされていない。
 ところで他方、調味料等の原料となる酵母菌体を取得するために、酵母の培養が多く行われているが、その培地に添加する糖としてはグルコースが一般的であり、それが酵母菌体生産コストの一部を占めている。
Soemphol W. et al. : Characterization of genes involved in D-sorbitol oxidation in thermotolerant Gluconobacter frateurii. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry 76(8), 1497-505. 2012
 本発明は、マルチトール又はソルビトールを糖源として酵母菌体の製造を行うこと、及びマルチトールやソルビトールを含む混合液を糖源に用いて、酵母菌体の製造を行うことを課題とする。
 本発明者は、糖アルコール廃液の主要な成分であるマルチトールやソルビトールを、食用酵母であるキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）が資化できること、すなわちそれらを糖源として酵母菌体の培養ができることを見出し、本発明に到達した。
すなわち本発明は、
（１）  マルチトールまたはソルビトールをキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）に資化させることを特徴とする、キャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）の培養方法、
（２）  上記（１）の培養方法により得られた、キャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）の菌体
を提供するものである。
 本発明により、これまで微生物による資化が困難とされていたマルチトールやソルビトールを、キャンディダ・ユーティリスの培養糖源として用いうるようになった。これにより、糖アルコール製造工程で生じる、マルチトールやソルビトールを含む混合液でも、培地用グルコースの代替をすることが可能となる。さらに、マルチトールやソルビトールを資化できる微生物がほとんど無いことから、他の糖源を用いた場合と比較して酵母の培養において最も問題となる汚染のリスクを軽減できる。
 以下、本発明を詳細に説明する。
 本発明において用いるマルチトール、ソルビトールは、糖アルコールに属する化合物である。
工業的に糖アルコールを製造する過程において、マルチトールやソルビトールを含む混合液が生じる。
本発明は、酵母の一種であるキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）に、マルチトール、ソルビトールを資化させるものである。
酵母には、Saccharomyces属、Schizosaccharomyces属、Candida属、Yarrowia属、Pichia属、Hansenula属、Kluyveromyces属等の種類が知られている。
いわゆる食用酵母には、通称ビール酵母（Saccharomyces pastorianus, Saccharomyces cerevisiae）、パン酵母（Saccharomyces cerevisiae）、トルラ酵母（Candida utilis）と呼ばれるものがある。そのうち調味料用の酵母エキスに一般的に用いられている酵母菌株には、サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）とキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）がある。
本発明は、上述した多種多様の酵母菌株のうち、食用酵母であるキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）に、マルチトール及びソルビトールを資化する能力があることを見出したものである。本発明に用いるキャンディダ・ユーティリス菌株は、特に遺伝子組み換えや形質転換等を行う必要はなく、一般的に用いられている菌株でよい。
本発明においては、マルチトール、ソルビトールを、キャンディダ・ユーティリスの培養の際に、糖源の一部または全部として、培地に添加することができる。
添加する糖アルコールは、販売されている精製品のマルチトール、ソルビトールでもよいし、糖アルコール製造工程から得られたマルチトールとソルビトールを含む混合液でもよい。マルチトールとソルビトールを含む混合液を糖源として用いる場合、マルチトールとソルビトールの混合比は任意でよく、含有量も培地組成時に調整できるため、任意でよい。
本発明で培養に使用する培地組成には、これらの糖源の他に、窒素源、硫黄源、リン酸塩、ミネラルが含まれていればよい。
 本発明において、糖アルコールの資化性を有する菌株とは、酵母を糖アルコール含有培地、例えば、SM培地（0.67w/v%イーストニトロゲンベース、2w/v％マルチトール、ｐHを６．５に調製） にて3日間培養したとき、菌体の生育が見られたもののことを言う。
以下に実施例および比較例を用いて、本発明を具体的に説明する。
本発明はこれらに限定されるものではない。
＜マルチトールを資化できる菌株＞
＜実施例１＞
 Candida utilis NBRC0988を５ ｍｌのYPD培地（酵母エキス１ｗ/ｖ％、ポリペプトン２ｗ/ｖ％、グルコース２ｗ/ｖ％）で一晩前培養した培養液を、１００ｍｌのSD培地（0.67w/v%イーストニトロゲンベース、2w/v%グルコース、pHを6.5に調整）とSM培地（0.67w/v%イーストニトロゲンベース、2w/v％マルチトール、ｐHを６．５に調整）にそれぞれ０．５ｖ/ｖ％植菌し、３０℃、２２５ｒｐｍで培養した。SD培地の糖源はグルコース、SM培地の糖源はマルチトールである。それぞれについて、菌体増殖の指標として培養液のOD600を測定し、その経時変化をプロットしたグラフを図１Aに示す。
＜比較例１＞
 実施例１において、Candida utilisの代わりにSaccharomyces cerevisiae NBRC101557を用いたこと以外は実施例１と同様に行った。その結果を図１Bに示す。
＜比較例２＞
 実施例１において、Candida utilisの代わりにPichia pastoris NBRC0948を用いたこと以外は実施例１と同様に行った。その結果を図１Cに示す。
＜比較例３＞
実施例１において、Candida utilisの代わりにKluyveromyces marxianus  NBRC1777を用いたこと以外は実施例１と同様に行った。その結果を図１Dに示す。
＜比較例４＞
実施例１において、Candida utilisの代わりにSchizosaccharomyces pombe   NBRC0340を用い、前培養にYPD培地の代わりにYE培地（酵母エキス０．５％、グルコース３％）を用いたこと以外は実施例１と同様に行った。その結果を図１Eに示す。
実施例１～比較例４の結果、図１Ａ～図１Ｅのグラフから明らかなように、 Candida utilisは高いマルチトール資化能力を示した。それに対して、Saccharomyces cerevisiae、Pichia pastoris、Kluyveromyces marxianus、Schizosaccharomyces pombeはいずれもマルチトールを資化することができなかった。
＜マルチトール資化の特異性＞
＜実施例２＞
 Candida utilis  NBRC0988を５ ｍｌのYPD培地（酵母エキス１％、ポリペプトン２％、グルコース２％）で一晩前培養した培養液を１００ｍｌのSM培地（0.67w/v%イーストニトロゲンベース、2w/v％マルチトール、ｐHを６．５に調整）に０．５％（ｖ／ｖ）植菌し、３０℃、２２５ｒｐｍで培養し、その培養液のOD600を測定し、経時変化を見た。
＜比較例５＞
 実施例２において、SM培地のマルチトールの代わりに、各々グルコース、フルクトース、スクロース、マルトースを配合した培地を用い、実施例２と同様に試験を行った。
 培養開始から４８時間後のOD600を測定し、その結果を表１に示す。実施例２のマルチトール、比較例５のグルコース、フルクトース、スクロース、マルトースともに増殖は見られたが、糖１ｇあたりのOD600はマルチトールが一番高く、Candida utilisの糖アルコール資化能力が高いことを示す結果となった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
＜多様な糖アルコール資化性＞
＜実施例３＞
Candida utilis NBRC0988を５ ｍｌのYPD培地で一晩前培養した培養液を、１００ｍｌのSM培地（0.67w/v%イーストニトロゲンベース、2w/v％マルチトール、ｐHを６．５に調整）に０．５ｖ/ｖ％植菌し、３０℃、２２５ｒｐｍで培養し、その培養液のOD600を測定し、経時変化を見た。
＜比較例６＞
 実施例３において、SM培地のマルチトールの代わりに、各々ソルビトール、マンニトールを用いたこと以外は実施例３と同様に試験を行った。
培養開始から４８時間後のOD600を測定し、その結果を表２に示す。糖アルコールの種類によって菌体の増殖に差は見られたものの、いずれの糖アルコールでも増殖は確認できた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
＜菌株間の増殖速度の差異＞
＜実施例４＞
 Candida utilis NBRC0987とCandida utilis NBRC0988を５ ｍｌのYPD培地（酵母エキス１％、ポリペプトン２％、グルコース２％）で一晩前培養した培養液を１００ｍｌのSD培地とSM培地に０．５％（ｖ／ｖ）植菌し、３０℃、２２５ｒｐｍで培養し、その培養液のOD600を測定し、経時変化を見た。
なお、この２菌株ともCandida utilisのスタンダードな菌株であり、NBRCから入手できる。
図２AにCandida utilis NBRC0987の増殖の経時変化を、図２BにCandida utilis NBRC0988の増殖の経時変化を示す。糖源がマルチトールの時、NBRC0987はNBRC0988より増殖の立ち上がりが遅れたが、いずれの菌株もマルチトールを資化していることから、キャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）に属する菌株は概ねマルチトールの資化性を保有していることが示された。
実施例１、Candida utilisにおいて糖源がグルコースとマルチトールの場合の増殖を対比したグラフ。 比較例１、Saccharomyces cerevisiae において糖源がグルコースとマルチトールの場合の増殖を対比したグラフ。 比較例２、Pichia pastoris において糖源がグルコースとマルチトールの場合の増殖を対比したグラフ。 比較例３、Kluyveromyces marxianus において糖源がグルコースとマルチトールの場合の増殖を対比したグラフ。 比較例４、Schizosaccharomyces pombesにおいて糖源がグルコースとマルチトールの場合の増殖を対比したグラフ。 実施例４、Candida utilis NBRC0987においてマルチトールを糖源とした増殖のグラフ。 実施例４、Candida utilis NBRC0988においてマルチトールを糖源とした増殖のグラフ。
 以上説明してきたように、本発明によると、キャンディダ・ユーティリスはマルチトールやソルビトールを資化できることから、それらを多く含む糖アルコール工程液を糖源として、培養することができる。
 

Claims (2)

  1. マルチトールまたはソルビトールをキャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）に資化させることを特徴とする、キャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）の培養方法。
  2. 請求項１に記載の培養方法により得られた、キャンディダ・ユーティリス（Candida utilis）の菌体。
     
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