WO2016204271A1 - 免疫機能発達促進剤及び成長促進剤 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to an immune function development promoter and a growth promoter.
  • Chemokine (CC motif) ligand 25 (CCL25) is one type of chemokine that has been found in mouse and human thymus and is involved in intestinal immunity. So far, as a function of CCL25 in the maternal body, the possibility that CCL25 is involved in the transfer of IgA to colostrum in mammary gland tissue has been reported (Non-patent Document 1). However, the action of CCL25 in acquiring immunity of newborns by ingesting colostrum has not been clarified.
  • the present invention aims to identify new functions of CCL25.
  • the inventors have surprisingly found that CCL25, which was previously thought to be involved in the transfer of IgA to milk by being expressed in the mother's body, is contained in the milk itself and ingests the milk.
  • the present inventors have found that it has a function of promoting the development of immune function and a function of promoting growth by directly acting on a subject, and has completed the present invention. That is, the present invention provides the following [1] to [6].
  • [2] The immune function development promoter of [1] for infants.
  • a growth promoter containing CCL25 [1] An immune function development promoter containing CCL25.
  • the present invention also provides the following [7] to [24].
  • CCL25 for use in promoting the development of immune function in a subject.
  • the ingestion of the immune function development promoter of the present invention can promote the development of the target immune function.
  • the growth of the target can be promoted.
  • the body weight increase of a newborn mouse group fed with artificial milk added with CCL25 (CCL25 added group) and a newborn mouse group fed with artificial milk not added with CCL25 (control group) over time It is the graph which compared. * Indicates that there was a significant difference compared to the control group (P> 0.05). It is the graph which compared the organ weight per body weight in a CCL25 addition group and a control group. * And ** indicate that there was a significant difference compared to the control group (*: P> 0.05, **: P> 0.01). It is the graph which compared the number of IgA producing cells in the intestinal tract of a CCL25 addition group and a control group.
  • the immune function development promoting agent and growth promoting agent in this embodiment are intended for mammals including humans and non-human animals, and preferably for humans.
  • the immune function development promoter and the growth promoter are preferably for infants, more preferably for newborns.
  • Infant means a child growing on breast milk or artificial milk.
  • an infant can mean a child less than one year after birth and a newborn can mean a child less than 28 days after birth.
  • non-human animals it means individuals with periods corresponding to human infants and newborns, respectively.
  • the immune function development promoter and growth promoter containing CCL25 in the present embodiment are not particularly limited as long as the composition contains CCL25 in an active state, but milk itself obtained from the mother is included. Absent.
  • CCL25 those produced by a known method may be used, or commercially available ones may be used.
  • the form of giving the immune function development promoter and growth promoter to the subject in the present embodiment is not particularly limited, and can be for oral intake, enteral intake, intravenous administration, etc. It is preferable to do.
  • the form in which the immune function development promoter and growth promoter in the present embodiment are for oral intake of the subject is not particularly limited, and can be used by adding to a medium suitable for oral intake by the subject. It is preferable to use it by adding it to milk.
  • Artificial milk does not use milk obtained from the mother as it is, but means artificially manufactured and processed milk, such as infant formulas, premature infant formulas, pharmaceutical formulas and liquid formulas for pharmaceutical use. Can be mentioned.
  • Immune function development promoter means that when the composition is ingested or administered, the development of the subject's immune function is promoted compared to a subject who has not been ingested or who has not been administered. It means what is recognized.
  • As an index for judging whether or not the gene is promoted for example, the expression level of genes and / or proteins involved in the immune system, the weight of an organ that is an immune system organ such as the intestinal tract (large and small intestine), spleen, and thymus Per unit weight, IgA producing cells, lymphocytes (T cells such as killer T cells and helper T cells, B cells and natural killer cells), the number of cells involved in the immune system such as double negative cells and double positive cells, small intestine The number and size of the Peyer plates can be used.
  • the expression level of genes and / or proteins whose expression level increases when the immune function is working compared to a subject who does not take the composition or is not administered, intestinal tract, spleen, thymus
  • the weight per body weight is significantly high, the number of IgA producing cells, the number of lymphocytes, the number of Peyer's patches are significantly increased, or the size of Peyer's patches is significantly large, etc. It can be determined that the development of immune function is promoted by administration.
  • genes and / or proteins whose expression level increases when the immune function is working include surface markers of various immune cells, various cytokines, and immunoglobulins containing IgA.
  • various immune cells include surface markers of various immune cells, various cytokines, and immunoglobulins containing IgA.
  • IgA immunoglobulins containing IgA.
  • lymphocytes killer T cells and helpers
  • T cells such as T cells, B cells and natural killer cells), double negative cells, double positive cells, macrophages and leukocytes.
  • Growth-promoting agent means that when the composition is ingested or administered, it is recognized that the growth of the subject is promoted compared to a subject who is not ingested or who is not administered To do.
  • the expression level of a gene and / or protein involved in growth, the body weight, muscle mass, organ weight, etc. of the subject can be used. That is, compared to a subject who does not take the composition or a subject who is not administered, the expression amount of a gene and / or protein whose expression level increases when growth is promoted, the subject's body weight, muscle mass, When the organ weight or the like is significantly high, it can be determined that growth is promoted by ingestion or administration of the composition.
  • genes and / or proteins whose expression level increases when growth is promoted include growth hormone, thyroid hormone, and glucocorticoid.
  • the day when mating was confirmed was defined as the 0th day of pregnancy, and one female was isolated the day before childbirth (19th day of pregnancy).
  • the day of birth is defined as day 0, day 0 after birth (parental cesarean section), day 1 after birth, day 2 after birth, day 5 after birth, day 10 after birth, day 21 after birth (after weaning) 6 groups were prepared, and the intestinal tract (small intestine and large intestine) was removed from the newborns at each period.
  • RNAlater (TaKaRa), allowed to permeate at 4 ° C. overnight, and stored at ⁇ 80 ° C.
  • the small intestine was divided into three equal parts, and each was (1) immersed in RNAlater (TaKaRa) as a sample for real-time PCR, allowed to permeate at 4 ° C overnight, and stored at -80 ° C.
  • RNA was prepared according to the protocol using RNeasy Mini Kit (QIAGEN).
  • Super Script TM First-Strand Synthesis System (Invitrogen) was used.
  • Fast Start Essential DNA Green Master 2 x conc. (Roche) 10 ⁇ l, Sense primer (10 ⁇ M) 1 ⁇ l, Anti-sense primer (10 ⁇ M) 1 ⁇ l, cDNA 1 ⁇ l, Fast Start Essential DNA Green Master H 2 O (Roche) 7 ⁇ l were added in a total volume of 20 ⁇ l.
  • real-time PCR was performed using Light Cycler (trademark) Nano (Roche).
  • Primers used for real-time PCR were GAPDH (PCR product size 136 bp): 5′-GGGTGTGAACCCATGAGAAGT-3 ′ (SEQ ID NO: 1; forward), 5′-GACTGTGGTCCATGAGTTCCT-3 ′ (SEQ ID NO: 2; Reverse), CCL25 (PCR product size 131 bp): 5′-CCATCAGCAGCAGTAAGAGGG-3 ′ (SEQ ID NO: 3; forward), 5′-CTGTAGGGGACGGGTTTTAT-3 ′ (SEQ ID NO: 4; reverse), CCR9 (PCR product size 110 bp) : 5′-GCCTGAGCAGGGAGATTAT-3 ′ (SEQ ID NO: 5; forward), 5′-GAGCAGACAGAGTG-3 ′ (SEQ ID NO: 6; reverse).
  • CCL25 and CCR9 and GAPDH as an internal standard were used.
  • the reaction conditions of each gene were as follows: initial denaturation at 95 ° C. for 3 minutes, CCL25: heat denaturation (95 ° C., 60 seconds), annealing (55 ° C., 50 seconds), extension reaction (72 ° C., 60 seconds) 40 cycles in total, CCR9: heat denaturation (95 ° C, 60 seconds), annealing (58 ° C, 50 seconds), elongation reaction (72 ° C, 60 seconds), 45 cycles in total, GAPDH: heat denaturation (95 ° C, 60 seconds) , Annealing (55 ° C., 50 seconds) and extension reaction (72 ° C., 60 seconds) were carried out under a total of 45 cycles.
  • the intestinal tissue stored at ⁇ 80 ° C. was equilibrated at ⁇ 20 ° C. for about 20 minutes before preparation of the slice (to prevent crushing during the preparation of the slice), and then the intestinal tissue block was made to a thickness of 8 ⁇ m with a cryostat. It was sliced and attached to a silane-coated non-fluorescent glass slide (FRC-11; Matsunami). After the sections were dried on the slide, they were immersed in cold acetone at ⁇ 20 ° C. for 10 minutes and air-dried. The sections were washed three times for 5 minutes each with a washing buffer (1 ⁇ PBS), and then immunostained.
  • FRC-11 silane-coated non-fluorescent glass slide
  • primary and secondary antibodies were used for CCL25 and IgA, respectively.
  • Each section was blocked with 1% BSA-containing PBS blocking solution for 1 hour at room temperature.
  • the blocking solution was removed, and the primary antibody diluted with the blocking solution was added to each section and incubated overnight at 4 ° C.
  • the primary antibody solution was removed, and the sections were washed 3 times with 1 ⁇ PBS for 5 minutes each.
  • a secondary antibody diluted with a 1% BSA-containing PBS blocking solution was added to each section and incubated at room temperature for 2 hours. Then, the secondary antibody was removed, and the section was washed 3 times with 1 ⁇ PBS for 5 minutes each.
  • Casein (40.0 g) was added to the alkaline aqueous solution and dissolved. This Casein mixture was sterilized for 30 minutes in a bath with boiling water. Next, casein salt micelles were prepared.
  • C Calcium and magnesium were added to Casein mixture. CaCl 2 ⁇ 2H 2 O (1.7 g), GlyCaPO 4 (8 g) and MgCl 2 ⁇ 6H 2 O (1.9 g) are dissolved in 50 ml of distilled water (autoclave at 121 ° C. for 10 minutes) and homogenized with a polytron-like mixer. did. This was slowly added to the Casein mixture (keep mixing with a homogenizer).
  • the small intestine of an artificially bred mouse was removed, the small intestine (from the duodenum to the jejunum) was pinned, and immersion fixation was performed in a 10% formalin solution for 3 hours or more. After the fixing treatment, the plate was washed several times with distilled water, and stained with Mayer's Hematoxylin Solution for 7 minutes. Then, after washing once with distilled water, it was washed with running water for 1 hour.
  • Example 1 Observation of CCL25 and CCR9 expression in the neonatal intestinal tract and changes in IgA-producing cells over time
  • the expression of CCL25 mRNA in intestinal tissue was analyzed by real-time PCR.
  • the expression level in the 21-day-old group at the weaning time is 1, the expression level of CCL25 mRNA in the small intestine is 0.12 ⁇ 0.07 in the 0-day group and 0 in the 1-day group. 0.09 ⁇ 0.06, 0.39 ⁇ 0.04 in the 2nd day group, 0.62 ⁇ 0.003 in the 5th day group, and 0.70 ⁇ 0.05 in the 10th day group. It was.
  • the expression level of CCL25 mRNA begins to increase from the second day after birth, and the amount increases with time. From the fifth day group to the 21st day group, the expression level is higher than that of the 0th day group. Increased significantly. Moreover, the expression level in the large intestine is 0.41 ⁇ 0.04 in the 0th day group, 0.33 ⁇ 0.01 in the 1st day group, and 0.27 ⁇ 0.02 in the 2nd day group. The value was 0.08 ⁇ 0.006 in the 5th day group and 0.09 ⁇ 0.006 in the 10th day group, and was highest in the 21st day group.
  • CCR9 the only receptor of CCL25
  • the 21st day group is set to 1, 0.15 ⁇ 0.04 in the 0th day group, 0.25 ⁇ 0.006 in the 1st day group, and the second day group 0.02 ⁇ 0.01, 0.50 ⁇ 0.01 in the 5th day group, and 0.7 ⁇ 0.01 in the 10th day group. That is, the expression level of CCR9 mRNA began to increase significantly from the fifth day after birth compared with the first day after birth, and the amount increased with time. And the amount of CCR9 mRNA of the 21st day group showed the highest value.
  • the expression level in the large intestine is 0.006 ⁇ 0.0005 in the 0th day group, 0.036 ⁇ 0.008 in the 1st day group, 0.005 ⁇ 0.001 in the 2nd day group, after birth It is 0.005 ⁇ 0.0003 in the 5th day group and 0.004 ⁇ 0.0004 in the 10th day group, and the expression level of CCR9 mRNA is the 1st day group, the 2nd day group, and the 5th day after birth.
  • the eye group and the 10th day group showed low values, and it was found that the 21st day group was the peak.
  • the mRNA expression levels of CCL25 and CCR9 in the large intestine and small intestine on the 10th day after birth were compared.
  • the expression level of the small intestine was 1
  • the expression level of CCL25 mRNA in the large intestine was 0.07 ⁇ 0.009.
  • the CCR9 mRNA expression level was 0.06 ⁇ 0.003 when the expression level of the small intestine was 1, and the CCR9 mRNA expression level in the large intestine was 0.06 ⁇ 0.003.
  • the expression levels of CCL25 mRNA and CCR9 mRNA in the large intestine were significantly lower than those in the small intestine. From this result, it was confirmed that the expression of CCL25 in the neonatal intestinal tract was mainly expressed in the small intestine as well as after weaning in which the intestinal tract function was established.
  • Example 3 Effect of CCL25 on immune organ weight and Peyer's patch
  • newborn mice were divided into a CCL25-added group and a control group, and the animals were dissected after being artificially incubated for 7 days until the age of 10 days. Comparison was made between the addition group and the control group.
  • the spleen (SP) in the control group was 3.95% ⁇ 0.05
  • the thymus (Thy) was 4.00% ⁇ 0.00.
  • the large intestine (LI) was 7.02% ⁇ 0.08 and the small intestine (SI) was 5.46% ⁇ 0.10
  • the spleen weight (SP) of the CCL25 addition group was 4.99. % ⁇ 0.058, thymus weight (Thy) 4.95% ⁇ 0.059
  • large intestine weight (LI) 6.99% ⁇ 0.04 and small intestine weight (SI) 6.44% ⁇ 0.06 Met In the CCL25 addition group, the weight of the small intestine tended to be higher than that of the control group, and the spleen and thymus weights were significantly higher (FIG. 2). In contrast, the weight of the large intestine per body weight was almost the same in the control group and the CCL25 added group.
  • the small intestine stained with hematoxin was observed with a microscope, the number of Peyer's patches in the small intestine was counted, and the number of Peyer's patches per animal was calculated. Further, the major axis and the minor axis of each Peyer plate were measured, and the average was taken as the size of one Peyer plate, and the size of the Peyer plate per animal was calculated. As a result of comparing the number and size of Peyer's plates for the control group and the CCL25 addition group, there was no difference in the size of each Peyer's plate, but the number of Peyer's plates was the control group in the CCL25 addition group. There were more trends.
  • Example 4 Effect of CCL25 on CCL25 mRNA and CCR9 mRNA Expression in Intestinal Tissue
  • the expression level of the small intestine CCL25 mRNA in the control group was 1
  • the expression level in the CCL25 addition group was 0.79 ⁇ 0.11.
  • the control group showed a higher expression level.
  • the expression level in the CCL25 addition group was 1.29 ⁇ 0.16. Although there was no significant difference, there was a tendency for the expression level to be higher in the CCL25 addition group.
  • Example 5 Effect of CCL25 on the number of IgA-producing cells in the intestinal villi of the small intestine Immunohistochemical staining of IgA-producing cells in small intestine tissues was performed using IgA-RITC antibody. Seven villi of one intestinal tract (small intestine) were selected, and the number of IgA-producing cells that showed positive among them was counted and compared between the control group and the CCL25 addition group. The number of IgA-producing cells that could be confirmed in the 7 villi was hardly seen at 1.33 ⁇ 0.2 in the control group, whereas it was significantly larger at 43.75 ⁇ 1.24 in the CCL25 addition group. (FIG. 3). From this result, it became clear that CCL25 in milk is essential for attracting IgA until the 10th day after delivery.
  • Example 6 Effect of CCL25 on the number of cells in the thymus Experimental animals used were 10-20 week old ddY mice (Japan SLC) and newborns of ddY mice. In accordance with the method described in the literature of Yajima et al. (Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71 (10), 2420-2427 and Experimental animals, 2006, 55 (4), 391-397) After breastfeeding until 2 days after birth, artificial breast feeding was performed using each artificial milk for 8 days from 2 days to 10 days of age.
  • Newborn mice were (1) a group in which 0.5 ⁇ g / mL of CCL25 (Recombinant Mouse CCL25 (TECK, Bio-Legend)) was added to artificial milk (CCL25 added group) and (2) a group in which no CCL25 antigen was added (control) Divided into two experimental groups.
  • CCL25 Recombinant Mouse CCL25 (TECK, Bio-Legend)
  • the artificial milk for mice was prepared by correcting the content of selenium from 16% to 18%.
  • the method for producing artificial milk is shown below.
  • (A) NaOH (1 g) and KOH (6 g) were dissolved in 800 ml of distilled water (alkaline aqueous solution). Three amino acids, serine (1.15 g), cysteine (0.9 g) and tryptophan (1.08 g) were added to the alkaline aqueous solution (always stirred with a stirrer, 60-70 ° C.).
  • Casein (160.0 g) was added to the alkaline aqueous solution and dissolved. This Casein mixture was sterilized for 30 minutes in a bath with boiling water.
  • C CaCl 2 ⁇ 2H 2 O (6.8 g), GlyCaPO 4 (32 g) and MgCl 2 ⁇ 6H 2 O (7.6 g) were dissolved in 200 ml of distilled water and homogenized with a polytron-like mixer. This was slowly added to the Casein mixture (keep mixing with a homogenizer).
  • CaCO 3 .2H 2 O (10 g) and Ca-citrate (4.8 g) were dissolved in 100 ml of distilled water, autoclaved, and then slowly added to Casein mixture.
  • the artificial milk was aseptically dispensed into 50 ml sterile polypropylene bottles and stored at ⁇ 80 ° C.
  • the frozen artificial milk was sterilized by gamma irradiation (30 KGy) and stored at ⁇ 80 ° C.
  • the newborn mouse that was breastfed from the 0th day to the 2nd day was separated from the parent on the day of birth as the 0th day after birth, and artificially administered by oral administration using a sucker once every 3 hours from the 2nd day of birth. Lactated milk.
  • the amount of mammals and body weight were measured over time, and after 8 days of artificial nursing until the 10th day, they were euthanized by excessive inhalation of diethyl ether, dissected, and the thymus was removed.
  • the weight of the extracted thymus was measured and taken out into a petri dish containing a phosphate-buffered salted salt solution (PBBS) containing 0.1% bovine serum albumin (BSA).
  • PBBS phosphate-buffered salted salt solution
  • BSA bovine serum albumin
  • the remaining thymocytes were added with ammonium chloride solution for removing red blood cells (Tris-buffered ammonium chloride: ACTB), pipetted, and allowed to stand at room temperature for 5 minutes for hemolysis. Then, cold PBBS was added, centrifugation was performed at 800 rpm for 5 minutes, and the supernatant was removed by decantation. For washing, cold PBBS was added, centrifugation at 800 rpm for 5 minutes and supernatant removal were performed twice, and then transferred to an Eppendorf tube. The obtained solution was appropriately diluted, the total number of cells and the number of lymphocytes were counted, and compared in the control group and the CCL25 addition group. All statistical processing on experimental results was performed using t-test.
  • the total number of cells in the thymus tended to be higher in the CCL25 added group than in the control group. Moreover, the number of lymphocytes per total cell number tended to be higher in the CCL25 addition group than in the control group (FIG. 4).

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Abstract

本発明は、ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を開示する。本発明の免疫機能発達促進剤を摂取することで、対象の免疫機能の発達を促進することができる。また、本発明の成長促進剤を摂取することで、対象の成長を促進することができる。

Description

免疫機能発達促進剤及び成長促進剤
　本発明は、免疫機能発達促進剤及び成長促進剤に関する。
　新生児の初期免疫機能獲得には母乳摂取が重要な役割を果たしている。特に、出産直後に分泌される初乳には、ＩｇＡ抗体や免疫機能に関与する物質が多く含まれており、新生児の感染防御に重要な役割を果たしている。その免疫機能関与物質の一つにケモカインと呼ばれるタンパク質があり、ＣＸＣＬ８（ＩＬ－８）、ＣＣＬ５（ＲＡＮＴＥＳ）及びＣＣＬ２８が母乳に含まれるケモカインとして知られている。しかしながら、例えば、初乳の製造・分泌時期には乳腺組織内でＣＣＬ２８の発現がほとんど見られないことが報告されている。このように、初乳の摂取による新生児の免疫獲得において、ケモカインがどのように関与しているかについては依然として不明である。
　上記のケモカインの他、マウス、ヒトの胸腺で発見され、腸管免疫に関与するケモカインの一種に、Ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ（Ｃ－Ｃ　ｍｏｔｉｆ）ｌｉｇａｎｄ２５（ＣＣＬ２５）がある。これまでに、母体におけるＣＣＬ２５の働きとして、乳腺組織内での初乳へのＩｇＡの移行にＣＣＬ２５が関わっている可能性が報告されている（非特許文献１）。しかしながら、ＣＣＬ２５についても初乳の摂取による新生児の免疫獲得における働きは明らかにされていない。
竹中正樹、茶山和敏、"妊娠および必乳中のマウス乳腺内におけるＣＣＬ２５ケモカインの発現"、２０１０年３月５日、第１１回静岡ライフサイエンスシンポジウム要旨集、ｐ．１９
　本発明は、ＣＣＬ２５の新たな機能を同定することを目的とする。
　本発明者らは、驚くべきことに、これまで母体で発現することによって乳汁へのＩｇＡの移行に関与していると考えられていたＣＣＬ２５が、乳汁自体に含まれており、乳汁を摂取する対象へ直接働きかけることで免疫機能の発達を促進する機能及び成長を促進する機能を有することを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、以下の［１］～［６］を提供する。
［１］ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤。
［２］乳児用である［１］の免疫機能発達促進剤。
［３］経口摂取用である［１］又は［２］の免疫機能発達促進剤。
［４］ＣＣＬ２５を含有する成長促進剤。
［５］乳児用である［４］の成長促進剤。
［６］経口摂取用である［４］又は［５］の成長促進剤。
　さらに、本発明は、以下の［７］～［２４］も提供する。
［７］免疫機能発達促進剤の製造のためのＣＣＬ２５の使用。
［８］免疫機能発達促進剤が乳児用である［７］の使用。
［９］免疫機能発達促進剤が経口摂取用である［７］又は［８］の使用。
［１０］成長促進剤の製造のためのＣＣＬ２５の使用。
［１１］成長促進剤が乳児用である［１０］の使用。
［１２］成長促進剤が経口摂取用である［１０］又は［１１］の使用。
［１３］対象の免疫機能発達促進に使用するためのＣＣＬ２５。
［１４］対象が乳児である［１３］のＣＣＬ２５。
［１５］対象がＣＣＬ２５を経口摂取する［１３］又は［１４］のＣＣＬ２５。
［１６］対象の成長促進に使用するためのＣＣＬ２５。
［１７］対象が乳児である［１６］のＣＣＬ２５。
［１８］対象がＣＣＬ２５を経口摂取する［１６］又は［１７］のＣＣＬ２５。
［１９］必要とする対象にＣＣＬ２５を投与する、対象の免疫機能発達を促進する方法。
［２０］対象が乳児である［１９］の方法。
［２１］ＣＣＬ２５を経口投与する［１９］又は［２０］の方法。
［２２］必要とする対象にＣＣＬ２５を投与する、対象の成長を促進する方法。
［２３］対象が乳児である［２２］の方法。
［２４］ＣＣＬ２５を経口投与する［２２］又は［２３］の方法。
　本発明の免疫機能発達促進剤を摂取することで、対象の免疫機能の発達を促進することができる。また、本発明の成長促進剤を摂取することで、対象の成長を促進することができる。
ＣＣＬ２５を添加した人工乳を与えて人工哺育した新生仔マウス群（ＣＣＬ２５添加群）と、ＣＣＬ２５を添加していない人工乳を与えて人工哺育した新生仔マウス群（コントロール群）の体重増加を経時的に比較したグラフである。＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（Ｐ＞０．０５）。 ＣＣＬ２５添加群とコントロール群における体重当たりの臓器重量を比較したグラフである。＊及び＊＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（＊：Ｐ＞０．０５、＊＊：Ｐ＞０．０１）。 ＣＣＬ２５添加群とコントロール群の腸管におけるＩｇＡ産生細胞数を比較したグラフである。＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（Ｐ＞０．０１）。 ＣＣＬ２５添加群とコントロール群の胸腺中の総細胞数及び総細胞数あたりのリンパ球数を比較したグラフである。
　本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、ヒト及び非ヒト動物を含む哺乳類を対象としており、ヒトを対象とすることが好ましい。
　本実施形態において、免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、好ましくは乳児用であり、より好ましくは新生児用である。乳児とは、母乳又は人工乳で生育されている子供を意味する。出生からの経過期間に特に拘るものではないが、ヒトの場合、例えば乳児は出生後１年未満の子供を意味することができ、新生児は出生後２８日未満の子供を意味することができる。非ヒト動物においては、それぞれヒトの乳児及び新生児に対応する期間の個体を意味する。
　本実施形態におけるＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、ＣＣＬ２５が活性を有する状態で含まれている組成物であれば特に限定されないが、母体から得られた乳汁そのものは含まれない。
　ＣＣＬ２５は、公知の方法により製造したものを用いてもよく、市販のものを用いてもよい。
　本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を対象に与える形式は、特に限定されず、経口摂取用、経腸摂取用、経静脈投与用等とすることができるが、経口摂取用とすることが好ましい。
　本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を対象の経口摂取用とする形態は、特に限定されず、対象が経口摂取するのに適当な媒体に添加して用いることができるが、人工乳に添加して用いることが好ましい。
　人工乳は、母体から得られた乳汁をそのまま用いたものではなく、人工的に製造、加工された乳汁を意味し、例えば乳児用、未熟児用、医薬用の調製粉乳及び液体調製乳等が挙げられる。
　免疫機能発達促進剤とは、その組成物を摂取した場合又は投与された場合に、対象の免疫機能の発達が、摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して促進していると認められるものを意味する。促進しているか否かについて判断するための指標としては、例えば免疫系に関与する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、腸管（大腸及び小腸）、脾臓、胸腺等の免疫系器官である臓器の体重あたりの重量、ＩｇＡ産生細胞、リンパ球（キラーＴ細胞及びヘルパーＴ細胞等のＴ細胞、Ｂ細胞及びナチュラルキラー細胞）、ダブルネガティブ細胞及びダブルポジティブ細胞等の免疫系に関与する細胞の数、小腸内のパイエル板の個数及び大きさ等を用いることができる。すなわち、その組成物を摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して、免疫機能が働いている際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、腸管、脾臓、胸腺の体重あたりの重量が有意に高い場合、ＩｇＡ産生細胞数、リンパ球数、パイエル板の個数が有意に多い場合、及びパイエル板の大きさが有意に大きい場合等には、その組成物の摂取又は投与により、免疫機能の発達が促進されていると判断することができる。
　免疫機能が働いている際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質としては、例えば各種免疫細胞の表面マーカー類、各種サイトカイン類及びＩｇＡを含む免疫グロブリン等が挙げられる。免疫系器官としては、腸管、脾臓、胸腺の他にも、リンパ節、骨髄等が挙げられ、免疫系に関与する細胞としては、ＩｇＡ産生細胞の他にも、リンパ球（キラーＴ細胞及びヘルパーＴ細胞等のＴ細胞、Ｂ細胞及びナチュラルキラー細胞）、ダブルネガティブ細胞、ダブルポジティブ細胞、マクロファージ及び白血球等が挙げられる。
　成長促進剤とは、その組成物を摂取した場合又は投与された場合に、対象の成長が、摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して促進していると認められるものを意味する。促進しているか否かについて判断するための指標としては、成長に関与する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、対象の体重、筋量、臓器重量等を用いることができる。すなわち、その組成物を摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して、成長が促進される際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、対象の体重、筋量、臓器重量等が有意に高い場合には、その組成物の摂取又は投与により、成長が促進されている判断することができる。
　成長が促進される際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質としては、例えば成長ホルモン、甲状腺ホルモン及び糖質コルチコイド等が挙げられる。
　本発明を以下の実施例に基づいてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
　（新生仔マウス実験群）
　交尾が確認できた日を妊娠０日目とし、出産する前日（妊娠１９日目）にメスを１匹に隔離した。そして、出産した日を０日目とし、生後０日目（親を帝王切開）、生後１日目、生後２日目、生後５日目、生後１０日目、生後２１日目（離乳後）の６群を作成し、各時期の新生仔から腸管（小腸及び大腸）を摘出した。
　（腸管試料の作製）
　マウス新生仔を、毒物の使用基準に従ってジエチルエーテル過剰吸入によって安楽死させ、腸管（小腸及び大腸）を摘出した。大腸はＲＮＡｌａｔｅｒ（ＴａＫａＲａ社）に漬けて一晩４℃で浸透させた後、－８０℃で保存した。小腸は３等分にし、それぞれを、（１）リアルタイムＰＣＲに用いるサンプルとして、ＲＮＡｌａｔｅｒ（ＴａＫａＲａ社）に漬けて一晩４℃で浸透させた後、－８０℃で保存し、（２）免疫染色に用いるサンプルとして、プラスチック製のクリオモルド（角型１号；Ｓａｋｕｒａ　Ｆｉｎｅｔｅｋ社）に封入剤であるティシューテックＯ．Ｃ．Ｔ．コンパウンド（Ｓａｋｕｒａ　Ｆｉｎｅｔｅｋ社）と共に入れ、ドライアイス上で速やかに凍結させ、凍結切片用のブロックを作製し、－８０℃で保存し、（３）ヘマトキシリン・エオジン（Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ　ａｎｄ　Ｅｏｓｉｎ　Ｓｔａｉｎ；ＨＥ　Ｓｔａｉｎ）組織染色に用いるサンプルとして、４％パラホルムアルデヒド固定液に２４～３６時間浸漬させ、固定処理を行った。組織染色用サンプルは固定処理後に１×ＰＢＳで３～４回洗浄し、組織標本の作製のために７０％エタノール溶液中で保存した。
　（リアルタイムＰＣＲ法）
　トータルＲＮＡは、ＲＮｅａｓｙ　Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて、プロトコルに従って調製した。ｃＤＮＡの合成にはＳｕｐｅｒ　Ｓｃｒｉｐｔ（商標）Ｆｉｒｓｔ－Ｓｔｒａｎｄ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用した。リアルタイムＰＣＲ用チューブにＦａｓｔ　Ｓｔａｒｔ　Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ　ＤＮＡ　Ｇｒｅｅｎ　Ｍａｓｔｅｒ　２ｘｃｏｎｃ．（Ｒｏｃｈｅ社）１０μｌ、Ｓｅｎｓｅ　ｐｒｉｍｅｒ（１０μＭ）１μｌ、Ａｎｔｉ－ｓｅｎｓｅ　ｐｒｉｍｅｒ（１０μＭ）１μｌ、ｃＤＮＡ１μｌ、Ｆａｓｔ　Ｓｔａｒｔ　Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ　ＤＮＡ　Ｇｒｅｅｎ　Ｍａｓｔｅｒ　Ｈ２Ｏ（Ｒｏｃｈｅ社）７μｌを加えて全反応量を２０μｌとした。そして、Ｌｉｇｈｔ　Ｃｙｃｌｅｒ（商標）Ｎａｎｏ（Ｒｏｃｈｅ社）を使用してリアルタイムＰＣＲを行った。リアルタイムＰＣＲに用いたプライマー（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社）は、ＧＡＰＤＨ（ＰＣＲ産物のサイズ　１３６ｂｐ）：５’－ＧＧＧＴＧＴＧＡＡＣＣＡＴＧＡＧＡＡＧＴ－３’（配列番号１；フォワード）、５’－ＧＡＣＴＧＴＧＧＴＣＡＴＧＡＧＴＣＣＴ－３’（配列番号２；リバース）、ＣＣＬ２５（ＰＣＲ産物のサイズ　１３１ｂｐ）：５’－ＣＣＡＴＣＡＧＣＡＧＣＡＧＴＡＡＧＡＧＧ－３’（配列番号３；フォワード）、５’－ＣＴＧＴＡＧＧＧＣＧＡＣＧＧＴＴＴＴＡＴ－３’（配列番号４；リバース）、ＣＣＲ９（ＰＣＲ産物のサイズ　１１０ｂｐ）：５’－ＧＣＣＴＧＡＧＣＡＧＧＧＡＧＡＴＴＡＴ－３’（配列番号５；フォワード）、５’－ＧＡＧＣＡＧＡＣＡＧＡＧＴＧ－３’（配列番号６；リバース）である。解析する遺伝子としては、ＣＣＬ２５、ＣＣＲ９及び内部標準としてＧＡＰＤＨを用いた。それぞれ遺伝子の反応条件は、初期変性を９５℃で３分間行った後、ＣＣＬ２５：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５５℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４０サイクル、ＣＣＲ９：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５８℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４５サイクル、ＧＡＰＤＨ：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５５℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４５サイクル、の各条件で増幅を行った。
　（免疫組織化学的染色）
　－８０℃で保存した腸管組織を、切片作製の前に、－２０℃で約２０分間平衡化（切片作製時の粗砕を防止）した後、腸管組織ブロックをクリオスタットで８μｍの厚さに薄切し、シランコートした無蛍光スライドガラス（ＦＲＣ－１１；Ｍａｔｓｕｎａｍｉ社）に貼り付けた。切片がスライド上で乾いた後、冷アセトンで－２０℃で１０分間浸漬し、風乾した。洗浄バッファー（１ＸＰＢＳ）で切片を各５分間、３回洗浄した後、免疫染色を行った。免疫染色には、ＣＣＬ２５及びＩｇＡそれぞれについて一次抗体及び二次抗体を用いた。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳブロッキング液で、各切片を室温で１時間ブロッキング処理した。ブロッキング液を除去し、ブロッキング液で希釈した一次抗体を各切片に添加し、４℃で一晩インキュベートした。一次抗体液を除去し、１ＸＰＢＳで切片を各５分間、３回洗浄した。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳブロッキング液で希釈した二次抗体を各切片に添加し、室温で２時間インキュベートした後、二次抗体を除去し、１ＸＰＢＳで切片を各５分間、３回洗浄した。その後、水溶性封入剤（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）にてスライドグラス上で封入し、実体蛍光顕微鏡（ＭＺ１０Ｆ；Ｌｅｉｃａ社）にて観察を行った。免疫組織化学的染色に使用した抗体は、ＣＣＬ２５：Ｇｏａｔ　ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ　ＣＣＬ２５／ＴＥＣＫ　ａｎｔｉｂｏｄｙ（一次抗体；Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓ社）、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（ＦＩＴＣ）－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ　Ｒａｂｂｉｔ　Ａｎｔｉ－Ｇｏａｔ＋＋　ＩｇＧ　（Ｈ＋Ｌ）（二次抗体；Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）、ＩｇＡ：Ｇｏａｔ　ａｎｔｉ－ｍｏｕｓｅ　ＩｇＡ　ａｆｆｉｎｉｔｙ　Ｐｕｒｉｆｉｅｄ（一次抗体；Ｂｅｔｈｙｌ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ（ＴＲＩＴＣ）－ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ　ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ　Ｄｏｎｋｅｙ　Ａｎｔｉ－Ｇｏａｔ＋＋　ＩｇＧ　（Ｈ＋Ｌ）（二次抗体；Ｊａｃｋｓｏｎ　Ｉｍｍｕｎｏ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）であり、それぞれ１：１００の希釈倍率で用いた。
　（統計学的解析）
　実験結果に関するすべての統計処理は、ｔ－検定を用いて行い、統計学的有意水準は特に明示のない場合については５％（Ｐ＞０．０５）とした。
　（人工乳汁の作製）
　マウス用人工乳汁を用いた人工哺乳法に関する文献（Biosci. Biotechnol. Biochem.,2007, 71(10), 2420-2427及びExperimentalanimals, 2006, 55(4), 391-397）を参考に、脂肪の含有量を１６％から１８％に修正して、マウス用人工乳汁を作製した。以下に人工乳汁の作成方法を示す。初めに、Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅを作製した。
（ａ）セリン（０．２８７５ｇ）、システイン（０．２２５ｇ）及びトリプトファン（０．２７ｇ）の３種類のアミノ酸を、ＮａＯＨ（０．２５ｇ）及びＫＯＨ（１．５ｇ）を含む２００ｍｌのアルカリ水溶液に加えた（常にスターラーで撹拌、６０～７０℃）。
（ｂ）カゼイン（４０．０ｇ）をアルカリ水溶液に加え、溶解した。このＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅを、沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。次に、カゼイン塩のミセルを作製した。
（ｃ）Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅにカルシウム及びマグネシウムを加えた。ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ（１．７ｇ）、ＧｌｙＣａＰＯ４（８ｇ）及びＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ（１．９ｇ）を５０ｍｌの蒸留水（１２１℃で１０分間オートクレーブ）に溶かし、ポリトロン様ミキサーでホモジナイズした。これをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた（ホモジナイザーで混ぜ続ける）。
（ｄ）ＣａＣＯ３・２Ｈ２Ｏ（２．５ｇ）及びＣａ－ｃｉｔｒａｔｅ（１．２ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブした後、Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた。
（ｅ）Ｎａ２ＨＰＯ４（０．８ｇ）及びＫＨ２ＰＯ４（０．０８ｇ）を１２．５ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブで滅菌した後Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｆ）ラクトース水溶液（ラクトース１８．９１ｇを５５ｍｌの蒸留水に溶かしたもの）をオートクレーブで滅菌した後、ゆっくりとＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｇ）ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ（０．４８ｇ）及びＣｉｔｒａｔｅ－Ｈ２Ｏ（０．０１ｇ）を５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの２．５ｍｌ、ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ（０．３ｇ）、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ（０．０７５ｇ）及びＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ（０．０１２５ｇ）を６．２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１．２５ｍｌ、ＮａＦ（０．００７７５ｇ）及びＫＩ（０．０１２５ｇ）を６．２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１．２５ｍｌをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。この操作は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ　Ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ（０．４５μｍ）で滅菌した後に、常に撹拌しながら行った。
（ｈ）その後、Ｗｈｅｙ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｉｓｏｌａｔｅ（４０ｇ）及びＷｈｅｙ　Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｈｙｄｒｏｌｙｓａｔｅ（５０ｇ）を２５０ｍｌの滅菌蒸留水に溶かした。この溶液を、撹拌しながら４０℃以下に冷ましたＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｉ）カルニチン（０．０８ｇ）、ピコリン酸（０．０４ｇ）、エタノールアミン（０．０６８ｇ）及びタウリン（０．３ｇ）を５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの２．５ｍｌを　Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｊ）クエン酸二水素コリン（１．４７ｇ）を１８．３７５ｍｌの蒸留水に溶かした中和溶液（５Ｎ　ＮａＯＨでｐＨ７．０に中和）に、水溶性ビタミンｍｉｘｔｕｒｅ（シアノコバラミン（０．０１１９ｍｇ）、ビオチン（０．１８ｍｇ）、葉酸（０．７８ｍｇ）、チアミン塩酸塩（８．８１ｍｇ）、ピリドキシン塩酸塩（１．２５ｍｇ）、リン酸リボフラビンナトリウム（１２．１５ｍｇ）、パントテン酸カルシウム（２６．４３ｍｇ）、ｐ－アミノ安息香酸（４４．０４ｍｇ）、ニコチン酸（４９．８８ｍｇ）、アスコルビン酸ナトリウム（６７４ｍｇ）、及び４－イノシトール（４８７．２５ｍｇ））を溶かした。そのうちの１７．５ｍｌをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｋ）脂溶性ビタミン（ビタミンＫ３（１９．８２５ｍｇ）、ビタミンＥ：α－トコフェロール（２３．４５ｍｇ）及びビタミンＡとＤを含む混合物）並びに６種類の食用油（パーム油（５３．８５ｇ）、ココナッツ油（４４．９ｇ）、コーン油（１７．９５５ｇ）、中鎖脂肪酸油（２６．９３２５ｇ）、大豆油（３５．９１ｇ）及びコレステロール（０．４ｇ））を沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。この油性溶液を４０～５０℃まで冷ました後、撹拌しながらＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｌ）この最終混合物を、高圧条件下（１８０ｋｇ／ｃｍ２）で３回ホモジナイズした。
（ｍ）ホモジナイズの後、人工乳汁は無菌的に５０ｍｌ滅菌ポリプロピレンボトルに分注し、－２０℃で凍結させた。
（ｎ）冷凍した人工乳汁はガンマ線照射処理（３０ｋＧｙ）による滅菌をし、哺乳実験まで－２０℃で保存した。
　（人工哺育実験に用いたマウス）
　１０～１２週齢のｄｄＹ系マウス（ＪａｐａｎＳＬＣ社）及びｄｄＹ系マウスの新生仔を用いた。
　（人工哺育実験）
　予備実験として、帝王切開して３時間以内に人工乳汁で人工哺育を開始した。３２匹の帝王切開による新生仔に人工哺育を行ったところ、３日目には約４３％(１４匹)の新生仔マウスが死亡した。そして、９日目までに全数の新生仔マウスが死亡した。このことから、本実施例においては、生後２日齢まで母乳哺育させた新生仔に、生後３日齢から、３時間に１回、人工乳汁を与えることとした。
　（ヘマトキシン染色）
　人工哺育したマウスの小腸を摘出し、小腸（十二指腸から空腸まで）をピンでとめて、１０％ホルマリン液中で３時間以上浸漬固定処理を行った。固定処理後に蒸留水で数回洗浄し、Ｍａｙｅｒ’ｓ　Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎで７分間染色した。その後、蒸留水で一回洗浄した後、一時間流水洗した。
（実施例１　新生仔腸管内のＣＣＬ２５及びＣＣＲ９の発現とＩｇＡ産生細胞の経時的変化の観察）
　リアルタイムＰＣＲにより、腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現について解析した。その結果、離乳時期である生後２１日目群の発現量を１とした時、小腸でのＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量は、生後０日目群で０．１２±０．０７、生後１日目群で０．０９±０．０６、生後２日目群で０．３９±０．０４、生後５日目群で０．６２±０．００３及び生後１０日目群で０．７０±０．０５であった。すなわち、ＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現量は、生後２日目から増加し始めて、その量は経時的に増加し、生後５日目群から生後２１日目群まで、その発現量は０日目群に比べて、有意に増加した。また、大腸での発現量は、生後０日目群で０．４１±０．０４、生後１日目群で０．３３±０．０１、生後２日目群で０．２７±０．０２、生後５日目群で０．０８±０．００６及び生後１０日目群で０．０９±０．００６であり、生後２１日目群が最も高かった。
　ＣＣＬ２５の唯一のレセプターであるＣＣＲ９について、リアルタイムＰＣＲにより、腸管組織におけるｍＲＮＡの発現について解析した。その結果、小腸では、生後２１日目群を１とした時、生後０日目群で０．１５±０．０４、生後１日目群で０．２５±０．００６、生後２日目群で０．０２±０．０１、生後５日目群で０．５０±０．０１及び生後１０日目群で０．７±０．０１であった。すなわち、ＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は、生後０日目に比較して、生後５日目から有意に増加し始め、その量は経時的に増加していた。そして、生後２１日目群のＣＣＲ９ｍＲＮＡ量が最も高い値を示した。大腸での発現量は、生後０日目群で０．００６±０．０００５、生後１日目群で０．０３６±０．００８、生後２日目群で０．００５±０．００１、生後５日目群で０．００５±０．０００３及び生後１０日目群で０．００４±０．０００４であり、ＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は、生後１日目群、生後２日目群、生後５日目群及び生後１０日目群では低い値を示しており、生後２１日目群がピークになることが分かった。
　次に、生後１０日目の大腸及び小腸におけるＣＣＬ２５及びＣＣＲ９のｍＲＮＡ発現量を比較した。その結果、小腸の発現量を１とした時、大腸のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量は０．０７±０．００９であった。また、ＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量は、小腸の発現量を１とした時、大腸のＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量は０．０６±０．００３であった。大腸のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ及びＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は小腸に対して有意に低い値を示した。この結果から、新生仔腸管におけるＣＣＬ２５の発現も、腸管機能が確立されている離乳後と同様に、主に小腸で発現していることが確認された。
　次に、ＣＣＬ２５抗体を用いた免疫組織化学的染色法により、小腸組織のＣＣＬ２５の経時的変化を確認した。ＣＣＬ２５－ＦＩＴＣ抗体を用いて小腸組織においてＣＣＬ２５の発現に免疫組織化学染色法を行った。蛍光実体顕微鏡で蛍光染色の陽性部位を観察した結果、生後０日目群、生後２日目群及び生後５日目群において小腸の絨毛上皮にＣＣＬ２５の発現はほとんど確認できなかったが、生後１日目群、生後１０日目群及び生後２１日目群では、絨毛上皮にＣＣＬ２５の発現が確認できた。
　次に、免疫組織化学的染色法によるＩｇＡ抗体を用いて、小腸組織のＩｇＡ産生細胞の経時的変化を確認した。ＩｇＡ－ＲＩＴＣ抗体を用いて小腸組織においてＩｇＡ産生細胞の発現に免疫組織化学染色法を行った。蛍光実体顕微鏡で蛍光染色後に観察を行った結果、生後０日目群、生後２日目群及び生後５日目群では小腸の絨毛上皮にＩｇＡ産生細胞の発現はほとんど確認できなかったが、生後１０日目群では、ほとんどの、生後２１日目群ではすべての絨毛上皮にＩｇＡ産生細胞の存在が確認できた。
（実施例２　ＣＣＬ２５が体重増加に与える影響）
　新生仔マウスを、Yajima et al.の文献（Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10),2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4),391-397）に記載の方法に準じて、生後２日齢まで母乳哺育させた後に、３日齢から各人工乳汁を用いて人工哺育を開始した。新生仔マウスを（１）人工乳汁にＣＣＬ２５（Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　Ｍｏｕｓｅ　ＣＣＬ２５（ＴＥＣＫ）、Ｂｉｏ－Ｌｅｇｅｎｄ社）を０．５μｇ／ｍｌ添加した群（ＣＣＬ２５添加群）及び（２）人工乳汁ＣＣＬ２５抗原の無添加群（コントロール群）の２群に分けた。
　人工哺育した新生仔マウスの体重変化を調べた結果、ＣＣＬ２５添加群の新生仔マウスの体重は、生後４日齢まではコントロール群とほぼ同等の体重だったが、５日齢以降は、コントロール群に比べて有意に増加した（図１）。
（実施例３　ＣＣＬ２５が免疫器官の重量及びパイエル板に与える影響）
　実施例２と同様に新生仔マウスをＣＣＬ２５添加群及びコントロール群に分け、１０日齢まで７日間人工保育した後に解剖し、腸管(小腸及び大腸)、脾臓及び胸腺を摘出し、各重量をＣＣＬ２５添加群及びコントロール群で比較した。免疫系器官である脾臓、胸腺、及び腸管の体重当たりの重量で比較した結果、コントロール群の脾臓（ＳＰ）が３．９５％±０．０５、胸腺（Ｔｈｙ）が４．００％±０．０６、大腸（ＬＩ）が７．０２％±０．０８及び小腸（ＳＩ）が５．４６％±０．１０であったのに対して、ＣＣＬ２５添加群の脾臓重量（ＳＰ）は４．９９％±０．０５８、胸腺重量（Ｔｈｙ）は４．９５％±０．０５９、大腸重量（ＬＩ）は６．９９％±０．０４及び小腸重量（ＳＩ）は６．４４％±０．０６であった。ＣＣＬ２５添加群では、コントロール群に対して、小腸の重量が高い傾向が見られ、さらに、脾臓及び胸腺の重さが有意に高かった（図２）。これに対して、体重あたりの大腸の重量はコントロール群とＣＣＬ２５添加群でほぼ同じ値を示した。
　また、ヘマトキシン染色した小腸を顕微鏡で観察して、小腸内のパイエル板の数を数え、一匹当たりのパイエル板の数を算出した。さらに、一つ一つのパイエル板の長径及び短径を測定して、その平均を一つのパイエル板の大きさとし、一匹当たりのパイエル板の大きさを算出した。コントロール群及びＣＣＬ２５添加群について、パイエル板の個数及び大きさを比較した結果、個々のパイエル板の大きさには差がみられなかったが、パイエル板の個数はＣＣＬ２５添加群の方がコントロール群よりも多い傾向がみられた。
（実施例４　ＣＣＬ２５が腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ及びＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現に与える影響）
　腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現について調べた結果、コントロール群の小腸ＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量を１とした時、ＣＣＬ２５添加群での発現量は０．７９±０．１１であった。有意差はなかったが、コントロール群で発現量がより高い傾向が見られた。また、腸管組織のＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量について調べた結果、コントロール群の小腸ＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量を１とした時、ＣＣＬ２５添加群での発現量は１．２９±０．１６であった。有意差はなかったが、ＣＣＬ２５添加群で発現量がより高い傾向が見られた。
（実施例５　ＣＣＬ２５が小腸の腸絨毛におけるＩｇＡ産生細胞数に与える影響）
　ＩｇＡ－ＲＩＴＣ抗体を用いて小腸組織のＩｇＡ産生細胞の免疫組織化学染色を行った。一つの腸管（小腸）の絨毛を７本選び、その中で陽性を示したＩｇＡ産生細胞の数を数え、コントロール群及びＣＣＬ２５添加群で比較した。７本の絨毛内に確認できたＩｇＡ産生細胞数は、コントロール群では１．３３±０．２とほとんど見られなかったのに対し、ＣＣＬ２５添加群では４３．７５±１．２４と有意に大きかった（図３）。この結果から、乳汁中のＣＣＬ２５が出産後１０日目までのＩｇＡの誘引に必須であることが明らかとなった。
（実施例６　ＣＣＬ２５が胸腺中の細胞数に与える影響）
　実験動物は、１０～２０週齢のｄｄＹ系マウス（ＪａｐａｎＳＬＣ社）及びｄｄＹ系マウスの新生仔を用いた。
　新生仔マウスを、Yajima et al.の文献（Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10), 2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4), 391-397)に記載の方法に準じて、生後２日齢まで母乳哺育させた後に、２日齢から10日齢までの８日間、各人工乳汁を用いて人工哺育を行った。新生仔マウスを(１)人工乳汁にＣＣＬ２５（Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　Ｍｏｕｓｅ　ＣＣＬ２５（ＴＥＣＫ）、　Ｂｉｏ－Ｌｅｇｅｎｄ社）を０．５μｇ／ｍＬ添加した群(ＣＣＬ２５添加群)及び(２)ＣＣＬ２５抗原の無添加群(コントロール群)の２つの実験群に分けた。
　マウス用人工乳汁を用いた人工哺乳法に関する文献(Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10), 2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4), 391-397)を参考に、脂肪の含有量を１６％から１８％に修正してマウス用人工乳汁を作製した。以下に人工乳汁の作成方法を示す。
（ａ）ＮａＯＨ（１ｇ）、ＫＯＨ（６ｇ）を８００ｍｌの蒸留水に溶かした（アルカリ水溶液）。セリン（１．１５ｇ）、システイン（０．９ｇ）及びトリプトファン（１．０８ｇ）の３種類のアミノ酸をアルカリ水溶液に加えた（常にスターラーで撹拌、６０～７０℃）。
（ｂ）カゼイン（１６０．０ｇ）をアルカリ水溶液に加え、溶解した。このＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅを、沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。
（ｃ）ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ（６．８ｇ）、ＧｌｙＣａＰＯ４（３２ｇ）、ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ（７．６ｇ）を２００ｍｌの蒸留水に溶かし、ポリトロン様ミキサーでホモジナイズした。これを、Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた（ホモジナイザーで混ぜ続ける）。
（ｄ）ＣａＣＯ３・２Ｈ２Ｏ（１０ｇ）、Ｃａ－ｃｉｔｒａｔｅ（４．８ｇ）を１００ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブした後、Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた。
（ｅ）Ｎａ２ＨＰＯ４（３．２ｇ）、ＫＨ２ＰＯ４（０．３２ｇ）を５０ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブでした後Ｃａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｆ）ラクトース水溶液（ラクトース７５．６４ｇを２２０ｍｌの蒸留水に溶かしたもの）をオートクレーブで滅菌した後、ゆっくりとＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｇ）ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ（１．９２ｇ）、ｃｉｔｒａｔｅ－Ｈ２Ｏ（０．０４ｇ）を２０ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１０ｍｌ、ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ（１．２ｇ）、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ（０．３ｇ）、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ（０．０５ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの５ｍｌ、ＮａＦ（０．０３１ｇ）、ＫＩ（０．０５ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの５ｍｌをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。この操作は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ　ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ（０．４５μｍ）で滅菌した後に、常に撹拌しながら行った。
（ｈ）ガンマ線照射による滅菌（３０ＫＧｙ）を行った、Ｗｈｅｙ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｉｓｏｌａｔｅ（１６０ｇ）及びＷｈｅｙ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｈｙｄｒｏｌｙｓａｔｅ（２００ｇ）を１０００ｍｌの滅菌蒸留水に溶かし、この溶液を撹拌しながら４０℃以下に冷ましたＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｉ）カルニチン（０．３２ｇ）、ピコリン酸（０．１６ｇ）、エタノールアミン（０．２７２ｇ）及びタウリン（１．２ｇ）を２０ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１０ｍｌをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｊ）クエン酸二水素コリン（５．８８ｇ）を７３．５ｍｌの蒸留水に溶かした（６５℃のｗａｔｅｒ　ｂａｔｈ中で）中和溶液（１Ｎ　ＮａＯＨでｐＨ７．０に中和）に、水溶性ビタミンｍｉｘｔｕｒｅ（シアノコバラミン（０．０４７６ｍｇ）、ビオチン（０．７２ｍｇ）、葉酸（３．１６ｍｇ）、チアミン塩酸塩（３５．２４ｍｇ）、ピリドキシン塩酸塩（５０．０ｍｇ）、リン酸リボフラビンナトリウム（５６．６ｍｇ）、パントテン酸カルシウム（１０５．７２ｍｇ）、ｐ－アミノ安息香酸（１７６．１６ｍｇ）、ニコチン酸（１９９．５２ｍｇ）、アスコルビン酸ナトリウム（２．６９６ｇ）、及び４－イノシトール（１．９８９ｇ））を溶かした。そのうちの７０ｍｌをＣａｓｅｉｎ　ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｋ）脂溶性ビタミン（ビタミンＫ３（７９．３ｍｇ）、ビタミンＥ：α－トコフェロール（９３．８ｍｇ）、ビタミンＡとＤを含む混合物）と６種類の食用油（パーム油（１９１．５ｇ）、ココナッツ油（１５９．６ｇ）、コーン油（６３．８４ｇ）、中鎖脂肪酸油（９５．７６ｇ）、大豆油（１２７．６８ｇ）、コレステロール（１．６ｇ））を沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。この油性溶液を４０～５０℃まで冷ました後、撹拌しながらＣａｓｅｉｎ　Ｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｌ）ホモジナイズの後、人工ミルクは無菌的に５０ｍｌ滅菌ポリプロピレンボトルに分注し、－８０℃で保存した。冷凍した人工ミルクはガンマ線照射（３０ＫＧｙ）による滅菌をし、－８０℃で保存した。
　生まれた日を生後０日目として、生後０日目から２日目まで母乳哺育したマウス新生仔を親から離し、生後２日目から３時間に１回、哺乳器を用いて経口投与によって人工乳汁を授乳した。人工哺育期間中、哺乳量と体重を継時的に測定し、１０日目まで８日間人工哺育した後に、ジエチルエーテル過剰吸入によって安楽死させ、解剖して胸腺を摘出した。
　摘出した胸腺の重量を測定し、０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）入りｐｈｏｓｐｈａｔｅ－ｂｕｆｆｅｒｅｄ　ｂａｌａｎｃｅｄ　ｓａｌｔ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＰＢＢＳ）の入ったシャーレへ取り出した。摘出した胸腺は、シャーレ内にて、ハサミで組織をある程度細切した後、スライドグラスのフロスト部分ですりつぶし、ピペットを用いて浮遊液を４２Ｋのメッシュで濾して、コニカルチューブに移した。８００ｒｐｍで５分間の遠心分離を行い、上清をデカンテーションによって除去した。残った胸腺細胞に、赤血球除去用塩化アンモニウム溶液（Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒｅｄ　ａｍｍｏｎｉｕｍ　ｃｈｌｏｒｉｄｅ：ＡＣＴＢ）を加えてピペッティングし、室温で５分放置して溶血処理を行った。その後、冷ＰＢＢＳを加え、８００ｒｐｍで５分間の遠心分離を行い、上清をデカンテーションにより除去した。洗浄のため、冷ＰＢＢＳを加えて、８００ｒｐｍで５分間の遠心分離及び上清除去の操作を２回行った後、エッペンチューブへ移した。得られた溶液を適宜希釈し、総細胞数及びリンパ球数を数え、コントロール群及びＣＣＬ２５添加群で比較した。実験結果に関するすべての統計処理は、ｔ－検定を用いて行った。
　胸腺中の総細胞数は、コントロール群よりもＣＣＬ２５添加群で多い傾向にあった。また、総細胞数あたりもリンパ球数も、コントロール群よりもＣＣＬ２５添加群で多い傾向にあった（図４）。
　以上の結果より、ＣＣＬ２５の添加による、免疫機能発達促進効果及び成長促進効果が確認された。

Claims (6)

  1. 　ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤。
  2. 　乳児用である請求項１に記載の免疫機能発達促進剤。
  3. 　経口摂取用である請求項１又は２に記載の免疫機能発達促進剤。
  4. 　ＣＣＬ２５を含有する成長促進剤。
  5. 　乳児用である請求項４に記載の成長促進剤。
  6. 　経口摂取用である請求項４又は５に記載の成長促進剤。
     
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