JPWO2016204271A1

JPWO2016204271A1 - 免疫機能発達促進剤及び成長促進剤

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Publication number: JPWO2016204271A1
Application number: JP2017524858A
Authority: JP
Inventors: 和敏茶山
Original assignee: Shizuoka University NUC
Current assignee: Shizuoka University NUC
Priority date: 2015-06-19
Filing date: 2016-06-17
Publication date: 2018-04-05
Anticipated expiration: 2036-06-17
Also published as: WO2016204271A1; US10590180B2; US20180369335A1; JP6799327B2

Abstract

本発明は、ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を開示する。本発明の免疫機能発達促進剤を摂取することで、対象の免疫機能の発達を促進することができる。また、本発明の成長促進剤を摂取することで、対象の成長を促進することができる。

Description

本発明は、免疫機能発達促進剤及び成長促進剤に関する。

新生児の初期免疫機能獲得には母乳摂取が重要な役割を果たしている。特に、出産直後に分泌される初乳には、ＩｇＡ抗体や免疫機能に関与する物質が多く含まれており、新生児の感染防御に重要な役割を果たしている。その免疫機能関与物質の一つにケモカインと呼ばれるタンパク質があり、ＣＸＣＬ８（ＩＬ−８）、ＣＣＬ５（ＲＡＮＴＥＳ）及びＣＣＬ２８が母乳に含まれるケモカインとして知られている。しかしながら、例えば、初乳の製造・分泌時期には乳腺組織内でＣＣＬ２８の発現がほとんど見られないことが報告されている。このように、初乳の摂取による新生児の免疫獲得において、ケモカインがどのように関与しているかについては依然として不明である。

上記のケモカインの他、マウス、ヒトの胸腺で発見され、腸管免疫に関与するケモカインの一種に、Ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ（Ｃ−Ｃｍｏｔｉｆ）ｌｉｇａｎｄ２５（ＣＣＬ２５）がある。これまでに、母体におけるＣＣＬ２５の働きとして、乳腺組織内での初乳へのＩｇＡの移行にＣＣＬ２５が関わっている可能性が報告されている（非特許文献１）。しかしながら、ＣＣＬ２５についても初乳の摂取による新生児の免疫獲得における働きは明らかにされていない。

竹中正樹、茶山和敏、"妊娠および必乳中のマウス乳腺内におけるＣＣＬ２５ケモカインの発現"、２０１０年３月５日、第１１回静岡ライフサイエンスシンポジウム要旨集、ｐ．１９

本発明は、ＣＣＬ２５の新たな機能を同定することを目的とする。

本発明者らは、驚くべきことに、これまで母体で発現することによって乳汁へのＩｇＡの移行に関与していると考えられていたＣＣＬ２５が、乳汁自体に含まれており、乳汁を摂取する対象へ直接働きかけることで免疫機能の発達を促進する機能及び成長を促進する機能を有することを見出し、本発明を完成するに至った。すなわち、本発明は、以下の［１］〜［６］を提供する。
［１］ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤。
［２］乳児用である［１］の免疫機能発達促進剤。
［３］経口摂取用である［１］又は［２］の免疫機能発達促進剤。
［４］ＣＣＬ２５を含有する成長促進剤。
［５］乳児用である［４］の成長促進剤。
［６］経口摂取用である［４］又は［５］の成長促進剤。
さらに、本発明は、以下の［７］〜［２４］も提供する。
［７］免疫機能発達促進剤の製造のためのＣＣＬ２５の使用。
［８］免疫機能発達促進剤が乳児用である［７］の使用。
［９］免疫機能発達促進剤が経口摂取用である［７］又は［８］の使用。
［１０］成長促進剤の製造のためのＣＣＬ２５の使用。
［１１］成長促進剤が乳児用である［１０］の使用。
［１２］成長促進剤が経口摂取用である［１０］又は［１１］の使用。
［１３］対象の免疫機能発達促進に使用するためのＣＣＬ２５。
［１４］対象が乳児である［１３］のＣＣＬ２５。
［１５］対象がＣＣＬ２５を経口摂取する［１３］又は［１４］のＣＣＬ２５。
［１６］対象の成長促進に使用するためのＣＣＬ２５。
［１７］対象が乳児である［１６］のＣＣＬ２５。
［１８］対象がＣＣＬ２５を経口摂取する［１６］又は［１７］のＣＣＬ２５。
［１９］必要とする対象にＣＣＬ２５を投与する、対象の免疫機能発達を促進する方法。
［２０］対象が乳児である［１９］の方法。
［２１］ＣＣＬ２５を経口投与する［１９］又は［２０］の方法。
［２２］必要とする対象にＣＣＬ２５を投与する、対象の成長を促進する方法。
［２３］対象が乳児である［２２］の方法。
［２４］ＣＣＬ２５を経口投与する［２２］又は［２３］の方法。

本発明の免疫機能発達促進剤を摂取することで、対象の免疫機能の発達を促進することができる。また、本発明の成長促進剤を摂取することで、対象の成長を促進することができる。

ＣＣＬ２５を添加した人工乳を与えて人工哺育した新生仔マウス群（ＣＣＬ２５添加群）と、ＣＣＬ２５を添加していない人工乳を与えて人工哺育した新生仔マウス群（コントロール群）の体重増加を経時的に比較したグラフである。＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（Ｐ＞０．０５）。ＣＣＬ２５添加群とコントロール群における体重当たりの臓器重量を比較したグラフである。＊及び＊＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（＊：Ｐ＞０．０５、＊＊：Ｐ＞０．０１）。ＣＣＬ２５添加群とコントロール群の腸管におけるＩｇＡ産生細胞数を比較したグラフである。＊はコントロール群と比較して有意差があったことを示す（Ｐ＞０．０１）。ＣＣＬ２５添加群とコントロール群の胸腺中の総細胞数及び総細胞数あたりのリンパ球数を比較したグラフである。

本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、ヒト及び非ヒト動物を含む哺乳類を対象としており、ヒトを対象とすることが好ましい。

本実施形態において、免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、好ましくは乳児用であり、より好ましくは新生児用である。乳児とは、母乳又は人工乳で生育されている子供を意味する。出生からの経過期間に特に拘るものではないが、ヒトの場合、例えば乳児は出生後１年未満の子供を意味することができ、新生児は出生後２８日未満の子供を意味することができる。非ヒト動物においては、それぞれヒトの乳児及び新生児に対応する期間の個体を意味する。

本実施形態におけるＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤及び成長促進剤は、ＣＣＬ２５が活性を有する状態で含まれている組成物であれば特に限定されないが、母体から得られた乳汁そのものは含まれない。

ＣＣＬ２５は、公知の方法により製造したものを用いてもよく、市販のものを用いてもよい。

本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を対象に与える形式は、特に限定されず、経口摂取用、経腸摂取用、経静脈投与用等とすることができるが、経口摂取用とすることが好ましい。

本実施形態における免疫機能発達促進剤及び成長促進剤を対象の経口摂取用とする形態は、特に限定されず、対象が経口摂取するのに適当な媒体に添加して用いることができるが、人工乳に添加して用いることが好ましい。

人工乳は、母体から得られた乳汁をそのまま用いたものではなく、人工的に製造、加工された乳汁を意味し、例えば乳児用、未熟児用、医薬用の調製粉乳及び液体調製乳等が挙げられる。

免疫機能発達促進剤とは、その組成物を摂取した場合又は投与された場合に、対象の免疫機能の発達が、摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して促進していると認められるものを意味する。促進しているか否かについて判断するための指標としては、例えば免疫系に関与する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、腸管（大腸及び小腸）、脾臓、胸腺等の免疫系器官である臓器の体重あたりの重量、ＩｇＡ産生細胞、リンパ球（キラーＴ細胞及びヘルパーＴ細胞等のＴ細胞、Ｂ細胞及びナチュラルキラー細胞）、ダブルネガティブ細胞及びダブルポジティブ細胞等の免疫系に関与する細胞の数、小腸内のパイエル板の個数及び大きさ等を用いることができる。すなわち、その組成物を摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して、免疫機能が働いている際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、腸管、脾臓、胸腺の体重あたりの重量が有意に高い場合、ＩｇＡ産生細胞数、リンパ球数、パイエル板の個数が有意に多い場合、及びパイエル板の大きさが有意に大きい場合等には、その組成物の摂取又は投与により、免疫機能の発達が促進されていると判断することができる。

免疫機能が働いている際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質としては、例えば各種免疫細胞の表面マーカー類、各種サイトカイン類及びＩｇＡを含む免疫グロブリン等が挙げられる。免疫系器官としては、腸管、脾臓、胸腺の他にも、リンパ節、骨髄等が挙げられ、免疫系に関与する細胞としては、ＩｇＡ産生細胞の他にも、リンパ球（キラーＴ細胞及びヘルパーＴ細胞等のＴ細胞、Ｂ細胞及びナチュラルキラー細胞）、ダブルネガティブ細胞、ダブルポジティブ細胞、マクロファージ及び白血球等が挙げられる。

成長促進剤とは、その組成物を摂取した場合又は投与された場合に、対象の成長が、摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して促進していると認められるものを意味する。促進しているか否かについて判断するための指標としては、成長に関与する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、対象の体重、筋量、臓器重量等を用いることができる。すなわち、その組成物を摂取していない対象又は投与されていない対象と比較して、成長が促進される際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質の発現量、対象の体重、筋量、臓器重量等が有意に高い場合には、その組成物の摂取又は投与により、成長が促進されている判断することができる。

成長が促進される際に発現量が増加する遺伝子及び／又はタンパク質としては、例えば成長ホルモン、甲状腺ホルモン及び糖質コルチコイド等が挙げられる。

本発明を以下の実施例に基づいてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。

（新生仔マウス実験群）
交尾が確認できた日を妊娠０日目とし、出産する前日（妊娠１９日目）にメスを１匹に隔離した。そして、出産した日を０日目とし、生後０日目（親を帝王切開）、生後１日目、生後２日目、生後５日目、生後１０日目、生後２１日目（離乳後）の６群を作成し、各時期の新生仔から腸管（小腸及び大腸）を摘出した。

（腸管試料の作製）
マウス新生仔を、毒物の使用基準に従ってジエチルエーテル過剰吸入によって安楽死させ、腸管（小腸及び大腸）を摘出した。大腸はＲＮＡｌａｔｅｒ（ＴａＫａＲａ社）に漬けて一晩４℃で浸透させた後、−８０℃で保存した。小腸は３等分にし、それぞれを、（１）リアルタイムＰＣＲに用いるサンプルとして、ＲＮＡｌａｔｅｒ（ＴａＫａＲａ社）に漬けて一晩４℃で浸透させた後、−８０℃で保存し、（２）免疫染色に用いるサンプルとして、プラスチック製のクリオモルド（角型１号；ＳａｋｕｒａＦｉｎｅｔｅｋ社）に封入剤であるティシューテックＯ．Ｃ．Ｔ．コンパウンド（ＳａｋｕｒａＦｉｎｅｔｅｋ社）と共に入れ、ドライアイス上で速やかに凍結させ、凍結切片用のブロックを作製し、−８０℃で保存し、（３）ヘマトキシリン・エオジン（ＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎａｎｄＥｏｓｉｎＳｔａｉｎ；ＨＥＳｔａｉｎ）組織染色に用いるサンプルとして、４％パラホルムアルデヒド固定液に２４〜３６時間浸漬させ、固定処理を行った。組織染色用サンプルは固定処理後に１×ＰＢＳで３〜４回洗浄し、組織標本の作製のために７０％エタノール溶液中で保存した。

（リアルタイムＰＣＲ法）
トータルＲＮＡは、ＲＮｅａｓｙＭｉｎｉＫｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ社）を用いて、プロトコルに従って調製した。ｃＤＮＡの合成にはＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ（商標）Ｆｉｒｓｔ−ＳｔｒａｎｄＳｙｎｔｈｅｓｉｓＳｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用した。リアルタイムＰＣＲ用チューブにＦａｓｔＳｔａｒｔＥｓｓｅｎｔｉａｌＤＮＡＧｒｅｅｎＭａｓｔｅｒ２ｘｃｏｎｃ．（Ｒｏｃｈｅ社）１０μｌ、Ｓｅｎｓｅｐｒｉｍｅｒ（１０μＭ）１μｌ、Ａｎｔｉ−ｓｅｎｓｅｐｒｉｍｅｒ（１０μＭ）１μｌ、ｃＤＮＡ１μｌ、ＦａｓｔＳｔａｒｔＥｓｓｅｎｔｉａｌＤＮＡＧｒｅｅｎＭａｓｔｅｒＨ_２Ｏ（Ｒｏｃｈｅ社）７μｌを加えて全反応量を２０μｌとした。そして、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（商標）Ｎａｎｏ（Ｒｏｃｈｅ社）を使用してリアルタイムＰＣＲを行った。リアルタイムＰＣＲに用いたプライマー（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）は、ＧＡＰＤＨ（ＰＣＲ産物のサイズ１３６ｂｐ）：５’−ＧＧＧＴＧＴＧＡＡＣＣＡＴＧＡＧＡＡＧＴ−３’（配列番号１；フォワード）、５’−ＧＡＣＴＧＴＧＧＴＣＡＴＧＡＧＴＣＣＴ−３’（配列番号２；リバース）、ＣＣＬ２５（ＰＣＲ産物のサイズ１３１ｂｐ）：５’−ＣＣＡＴＣＡＧＣＡＧＣＡＧＴＡＡＧＡＧＧ−３’（配列番号３；フォワード）、５’−ＣＴＧＴＡＧＧＧＣＧＡＣＧＧＴＴＴＴＡＴ−３’（配列番号４；リバース）、ＣＣＲ９（ＰＣＲ産物のサイズ１１０ｂｐ）：５’−ＧＣＣＴＧＡＧＣＡＧＧＧＡＧＡＴＴＡＴ−３’（配列番号５；フォワード）、５’−ＧＡＧＣＡＧＡＣＡＧＡＧＴＧ−３’（配列番号６；リバース）である。解析する遺伝子としては、ＣＣＬ２５、ＣＣＲ９及び内部標準としてＧＡＰＤＨを用いた。それぞれ遺伝子の反応条件は、初期変性を９５℃で３分間行った後、ＣＣＬ２５：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５５℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４０サイクル、ＣＣＲ９：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５８℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４５サイクル、ＧＡＰＤＨ：熱変性（９５℃、６０秒）、アニーリング（５５℃、５０秒）、伸長反応（７２℃、６０秒）を全４５サイクル、の各条件で増幅を行った。

（免疫組織化学的染色）
−８０℃で保存した腸管組織を、切片作製の前に、−２０℃で約２０分間平衡化（切片作製時の粗砕を防止）した後、腸管組織ブロックをクリオスタットで８μｍの厚さに薄切し、シランコートした無蛍光スライドガラス（ＦＲＣ−１１；Ｍａｔｓｕｎａｍｉ社）に貼り付けた。切片がスライド上で乾いた後、冷アセトンで−２０℃で１０分間浸漬し、風乾した。洗浄バッファー（１ＸＰＢＳ）で切片を各５分間、３回洗浄した後、免疫染色を行った。免疫染色には、ＣＣＬ２５及びＩｇＡそれぞれについて一次抗体及び二次抗体を用いた。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳブロッキング液で、各切片を室温で１時間ブロッキング処理した。ブロッキング液を除去し、ブロッキング液で希釈した一次抗体を各切片に添加し、４℃で一晩インキュベートした。一次抗体液を除去し、１ＸＰＢＳで切片を各５分間、３回洗浄した。１％ＢＳＡ含有ＰＢＳブロッキング液で希釈した二次抗体を各切片に添加し、室温で２時間インキュベートした後、二次抗体を除去し、１ＸＰＢＳで切片を各５分間、３回洗浄した。その後、水溶性封入剤（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）にてスライドグラス上で封入し、実体蛍光顕微鏡（ＭＺ１０Ｆ；Ｌｅｉｃａ社）にて観察を行った。免疫組織化学的染色に使用した抗体は、ＣＣＬ２５：Ｇｏａｔａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅＣＣＬ２５／ＴＥＣＫａｎｔｉｂｏｄｙ（一次抗体；Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ社）、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（ＦＩＴＣ）−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅＲａｂｂｉｔＡｎｔｉ−Ｇｏａｔ^＋＋ＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（二次抗体；ＪａｃｋｓｏｎＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社）、ＩｇＡ：Ｇｏａｔａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅＩｇＡａｆｆｉｎｉｔｙＰｕｒｉｆｉｅｄ（一次抗体；ＢｅｔｈｙｌＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ（ＴＲＩＴＣ）−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅＤｏｎｋｅｙＡｎｔｉ−Ｇｏａｔ^＋＋ＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（二次抗体；ＪａｃｋｓｏｎＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社）であり、それぞれ１：１００の希釈倍率で用いた。

（統計学的解析）
実験結果に関するすべての統計処理は、ｔ−検定を用いて行い、統計学的有意水準は特に明示のない場合については５％（Ｐ＞０．０５）とした。

（人工乳汁の作製）
マウス用人工乳汁を用いた人工哺乳法に関する文献（Biosci. Biotechnol. Biochem.,2007, 71(10), 2420-2427及びExperimentalanimals, 2006, 55(4), 391-397）を参考に、脂肪の含有量を１６％から１８％に修正して、マウス用人工乳汁を作製した。以下に人工乳汁の作成方法を示す。初めに、Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅを作製した。
（ａ）セリン（０．２８７５ｇ）、システイン（０．２２５ｇ）及びトリプトファン（０．２７ｇ）の３種類のアミノ酸を、ＮａＯＨ（０．２５ｇ）及びＫＯＨ（１．５ｇ）を含む２００ｍｌのアルカリ水溶液に加えた（常にスターラーで撹拌、６０〜７０℃）。
（ｂ）カゼイン（４０．０ｇ）をアルカリ水溶液に加え、溶解した。このＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅを、沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。次に、カゼイン塩のミセルを作製した。
（ｃ）Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅにカルシウム及びマグネシウムを加えた。ＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ（１．７ｇ）、ＧｌｙＣａＰＯ_４（８ｇ）及びＭｇＣｌ_２・６Ｈ_２Ｏ（１．９ｇ）を５０ｍｌの蒸留水（１２１℃で１０分間オートクレーブ）に溶かし、ポリトロン様ミキサーでホモジナイズした。これをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた（ホモジナイザーで混ぜ続ける）。
（ｄ）ＣａＣＯ_３・２Ｈ_２Ｏ（２．５ｇ）及びＣａ−ｃｉｔｒａｔｅ（１．２ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブした後、Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた。
（ｅ）Ｎａ_２ＨＰＯ_４（０．８ｇ）及びＫＨ_２ＰＯ_４（０．０８ｇ）を１２．５ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブで滅菌した後Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｆ）ラクトース水溶液（ラクトース１８．９１ｇを５５ｍｌの蒸留水に溶かしたもの）をオートクレーブで滅菌した後、ゆっくりとＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｇ）ＦｅＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ（０．４８ｇ）及びＣｉｔｒａｔｅ−Ｈ_２Ｏ（０．０１ｇ）を５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの２．５ｍｌ、ＺｎＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ（０．３ｇ）、ＣｕＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ（０．０７５ｇ）及びＭｎＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ（０．０１２５ｇ）を６．２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１．２５ｍｌ、ＮａＦ（０．００７７５ｇ）及びＫＩ（０．０１２５ｇ）を６．２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１．２５ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。この操作は、ＭｉｌｌｉｐｏｒｅＦｉｌｔｒａｔｉｏｎ（０．４５μｍ）で滅菌した後に、常に撹拌しながら行った。
（ｈ）その後、ＷｈｅｙＰｒｏｔｅｉｎＩｓｏｌａｔｅ（４０ｇ）及びＷｈｅｙＰｒｏｔｅｉｎＨｙｄｒｏｌｙｓａｔｅ（５０ｇ）を２５０ｍｌの滅菌蒸留水に溶かした。この溶液を、撹拌しながら４０℃以下に冷ましたＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｉ）カルニチン（０．０８ｇ）、ピコリン酸（０．０４ｇ）、エタノールアミン（０．０６８ｇ）及びタウリン（０．３ｇ）を５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの２．５ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｊ）クエン酸二水素コリン（１．４７ｇ）を１８．３７５ｍｌの蒸留水に溶かした中和溶液（５ＮＮａＯＨでｐＨ７．０に中和）に、水溶性ビタミンｍｉｘｔｕｒｅ（シアノコバラミン（０．０１１９ｍｇ）、ビオチン（０．１８ｍｇ）、葉酸（０．７８ｍｇ）、チアミン塩酸塩（８．８１ｍｇ）、ピリドキシン塩酸塩（１．２５ｍｇ）、リン酸リボフラビンナトリウム（１２．１５ｍｇ）、パントテン酸カルシウム（２６．４３ｍｇ）、ｐ−アミノ安息香酸（４４．０４ｍｇ）、ニコチン酸（４９．８８ｍｇ）、アスコルビン酸ナトリウム（６７４ｍｇ）、及び４−イノシトール（４８７．２５ｍｇ））を溶かした。そのうちの１７．５ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｋ）脂溶性ビタミン（ビタミンＫ_３（１９．８２５ｍｇ）、ビタミンＥ：α−トコフェロール（２３．４５ｍｇ）及びビタミンＡとＤを含む混合物）並びに６種類の食用油（パーム油（５３．８５ｇ）、ココナッツ油（４４．９ｇ）、コーン油（１７．９５５ｇ）、中鎖脂肪酸油（２６．９３２５ｇ）、大豆油（３５．９１ｇ）及びコレステロール（０．４ｇ））を沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。この油性溶液を４０〜５０℃まで冷ました後、撹拌しながらＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｌ）この最終混合物を、高圧条件下（１８０ｋｇ／ｃｍ^２）で３回ホモジナイズした。
（ｍ）ホモジナイズの後、人工乳汁は無菌的に５０ｍｌ滅菌ポリプロピレンボトルに分注し、−２０℃で凍結させた。
（ｎ）冷凍した人工乳汁はガンマ線照射処理（３０ｋＧｙ）による滅菌をし、哺乳実験まで−２０℃で保存した。

（人工哺育実験に用いたマウス）
１０〜１２週齢のｄｄＹ系マウス（ＪａｐａｎＳＬＣ社）及びｄｄＹ系マウスの新生仔を用いた。

（人工哺育実験）
予備実験として、帝王切開して３時間以内に人工乳汁で人工哺育を開始した。３２匹の帝王切開による新生仔に人工哺育を行ったところ、３日目には約４３％(１４匹)の新生仔マウスが死亡した。そして、９日目までに全数の新生仔マウスが死亡した。このことから、本実施例においては、生後２日齢まで母乳哺育させた新生仔に、生後３日齢から、３時間に１回、人工乳汁を与えることとした。

（ヘマトキシン染色）
人工哺育したマウスの小腸を摘出し、小腸（十二指腸から空腸まで）をピンでとめて、１０％ホルマリン液中で３時間以上浸漬固定処理を行った。固定処理後に蒸留水で数回洗浄し、Ｍａｙｅｒ’ｓＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎＳｏｌｕｔｉｏｎで７分間染色した。その後、蒸留水で一回洗浄した後、一時間流水洗した。

（実施例１新生仔腸管内のＣＣＬ２５及びＣＣＲ９の発現とＩｇＡ産生細胞の経時的変化の観察）
リアルタイムＰＣＲにより、腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現について解析した。その結果、離乳時期である生後２１日目群の発現量を１とした時、小腸でのＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量は、生後０日目群で０．１２±０．０７、生後１日目群で０．０９±０．０６、生後２日目群で０．３９±０．０４、生後５日目群で０．６２±０．００３及び生後１０日目群で０．７０±０．０５であった。すなわち、ＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現量は、生後２日目から増加し始めて、その量は経時的に増加し、生後５日目群から生後２１日目群まで、その発現量は０日目群に比べて、有意に増加した。また、大腸での発現量は、生後０日目群で０．４１±０．０４、生後１日目群で０．３３±０．０１、生後２日目群で０．２７±０．０２、生後５日目群で０．０８±０．００６及び生後１０日目群で０．０９±０．００６であり、生後２１日目群が最も高かった。

ＣＣＬ２５の唯一のレセプターであるＣＣＲ９について、リアルタイムＰＣＲにより、腸管組織におけるｍＲＮＡの発現について解析した。その結果、小腸では、生後２１日目群を１とした時、生後０日目群で０．１５±０．０４、生後１日目群で０．２５±０．００６、生後２日目群で０．０２±０．０１、生後５日目群で０．５０±０．０１及び生後１０日目群で０．７±０．０１であった。すなわち、ＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は、生後０日目に比較して、生後５日目から有意に増加し始め、その量は経時的に増加していた。そして、生後２１日目群のＣＣＲ９ｍＲＮＡ量が最も高い値を示した。大腸での発現量は、生後０日目群で０．００６±０．０００５、生後１日目群で０．０３６±０．００８、生後２日目群で０．００５±０．００１、生後５日目群で０．００５±０．０００３及び生後１０日目群で０．００４±０．０００４であり、ＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は、生後１日目群、生後２日目群、生後５日目群及び生後１０日目群では低い値を示しており、生後２１日目群がピークになることが分かった。

次に、生後１０日目の大腸及び小腸におけるＣＣＬ２５及びＣＣＲ９のｍＲＮＡ発現量を比較した。その結果、小腸の発現量を１とした時、大腸のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量は０．０７±０．００９であった。また、ＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量は、小腸の発現量を１とした時、大腸のＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量は０．０６±０．００３であった。大腸のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ及びＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量は小腸に対して有意に低い値を示した。この結果から、新生仔腸管におけるＣＣＬ２５の発現も、腸管機能が確立されている離乳後と同様に、主に小腸で発現していることが確認された。

次に、ＣＣＬ２５抗体を用いた免疫組織化学的染色法により、小腸組織のＣＣＬ２５の経時的変化を確認した。ＣＣＬ２５−ＦＩＴＣ抗体を用いて小腸組織においてＣＣＬ２５の発現に免疫組織化学染色法を行った。蛍光実体顕微鏡で蛍光染色の陽性部位を観察した結果、生後０日目群、生後２日目群及び生後５日目群において小腸の絨毛上皮にＣＣＬ２５の発現はほとんど確認できなかったが、生後１日目群、生後１０日目群及び生後２１日目群では、絨毛上皮にＣＣＬ２５の発現が確認できた。

次に、免疫組織化学的染色法によるＩｇＡ抗体を用いて、小腸組織のＩｇＡ産生細胞の経時的変化を確認した。ＩｇＡ−ＲＩＴＣ抗体を用いて小腸組織においてＩｇＡ産生細胞の発現に免疫組織化学染色法を行った。蛍光実体顕微鏡で蛍光染色後に観察を行った結果、生後０日目群、生後２日目群及び生後５日目群では小腸の絨毛上皮にＩｇＡ産生細胞の発現はほとんど確認できなかったが、生後１０日目群では、ほとんどの、生後２１日目群ではすべての絨毛上皮にＩｇＡ産生細胞の存在が確認できた。

（実施例２ＣＣＬ２５が体重増加に与える影響）
新生仔マウスを、Yajima et al.の文献（Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10),2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4),391-397）に記載の方法に準じて、生後２日齢まで母乳哺育させた後に、３日齢から各人工乳汁を用いて人工哺育を開始した。新生仔マウスを（１）人工乳汁にＣＣＬ２５（ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＭｏｕｓｅＣＣＬ２５（ＴＥＣＫ）、Ｂｉｏ−Ｌｅｇｅｎｄ社）を０．５μｇ／ｍｌ添加した群（ＣＣＬ２５添加群）及び（２）人工乳汁ＣＣＬ２５抗原の無添加群（コントロール群）の２群に分けた。

人工哺育した新生仔マウスの体重変化を調べた結果、ＣＣＬ２５添加群の新生仔マウスの体重は、生後４日齢まではコントロール群とほぼ同等の体重だったが、５日齢以降は、コントロール群に比べて有意に増加した（図１）。

（実施例３ＣＣＬ２５が免疫器官の重量及びパイエル板に与える影響）
実施例２と同様に新生仔マウスをＣＣＬ２５添加群及びコントロール群に分け、１０日齢まで７日間人工保育した後に解剖し、腸管(小腸及び大腸)、脾臓及び胸腺を摘出し、各重量をＣＣＬ２５添加群及びコントロール群で比較した。免疫系器官である脾臓、胸腺、及び腸管の体重当たりの重量で比較した結果、コントロール群の脾臓（ＳＰ）が３．９５％±０．０５、胸腺（Ｔｈｙ）が４．００％±０．０６、大腸（ＬＩ）が７．０２％±０．０８及び小腸（ＳＩ）が５．４６％±０．１０であったのに対して、ＣＣＬ２５添加群の脾臓重量（ＳＰ）は４．９９％±０．０５８、胸腺重量（Ｔｈｙ）は４．９５％±０．０５９、大腸重量（ＬＩ）は６．９９％±０．０４及び小腸重量（ＳＩ）は６．４４％±０．０６であった。ＣＣＬ２５添加群では、コントロール群に対して、小腸の重量が高い傾向が見られ、さらに、脾臓及び胸腺の重さが有意に高かった（図２）。これに対して、体重あたりの大腸の重量はコントロール群とＣＣＬ２５添加群でほぼ同じ値を示した。

また、ヘマトキシン染色した小腸を顕微鏡で観察して、小腸内のパイエル板の数を数え、一匹当たりのパイエル板の数を算出した。さらに、一つ一つのパイエル板の長径及び短径を測定して、その平均を一つのパイエル板の大きさとし、一匹当たりのパイエル板の大きさを算出した。コントロール群及びＣＣＬ２５添加群について、パイエル板の個数及び大きさを比較した結果、個々のパイエル板の大きさには差がみられなかったが、パイエル板の個数はＣＣＬ２５添加群の方がコントロール群よりも多い傾向がみられた。

（実施例４ＣＣＬ２５が腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡ及びＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現に与える影響）
腸管組織のＣＣＬ２５ｍＲＮＡの発現について調べた結果、コントロール群の小腸ＣＣＬ２５ｍＲＮＡ発現量を１とした時、ＣＣＬ２５添加群での発現量は０．７９±０．１１であった。有意差はなかったが、コントロール群で発現量がより高い傾向が見られた。また、腸管組織のＣＣＲ９ｍＲＮＡの発現量について調べた結果、コントロール群の小腸ＣＣＲ９ｍＲＮＡ発現量を１とした時、ＣＣＬ２５添加群での発現量は１．２９±０．１６であった。有意差はなかったが、ＣＣＬ２５添加群で発現量がより高い傾向が見られた。

（実施例５ＣＣＬ２５が小腸の腸絨毛におけるＩｇＡ産生細胞数に与える影響）
ＩｇＡ−ＲＩＴＣ抗体を用いて小腸組織のＩｇＡ産生細胞の免疫組織化学染色を行った。一つの腸管（小腸）の絨毛を７本選び、その中で陽性を示したＩｇＡ産生細胞の数を数え、コントロール群及びＣＣＬ２５添加群で比較した。７本の絨毛内に確認できたＩｇＡ産生細胞数は、コントロール群では１．３３±０．２とほとんど見られなかったのに対し、ＣＣＬ２５添加群では４３．７５±１．２４と有意に大きかった（図３）。この結果から、乳汁中のＣＣＬ２５が出産後１０日目までのＩｇＡの誘引に必須であることが明らかとなった。

（実施例６ＣＣＬ２５が胸腺中の細胞数に与える影響）
実験動物は、１０〜２０週齢のｄｄＹ系マウス（ＪａｐａｎＳＬＣ社）及びｄｄＹ系マウスの新生仔を用いた。
新生仔マウスを、Yajima et al.の文献（Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10), 2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4), 391-397)に記載の方法に準じて、生後２日齢まで母乳哺育させた後に、２日齢から10日齢までの８日間、各人工乳汁を用いて人工哺育を行った。新生仔マウスを(１)人工乳汁にＣＣＬ２５（ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＭｏｕｓｅＣＣＬ２５（ＴＥＣＫ）、Ｂｉｏ−Ｌｅｇｅｎｄ社）を０．５μｇ／ｍＬ添加した群(ＣＣＬ２５添加群)及び(２)ＣＣＬ２５抗原の無添加群(コントロール群)の２つの実験群に分けた。

マウス用人工乳汁を用いた人工哺乳法に関する文献(Biosci. Biotechnol. Biochem., 2007, 71(10), 2420-2427及びExperimental animals, 2006, 55(4), 391-397)を参考に、脂肪の含有量を１６％から１８％に修正してマウス用人工乳汁を作製した。以下に人工乳汁の作成方法を示す。
（ａ）ＮａＯＨ（１ｇ）、ＫＯＨ（６ｇ）を８００ｍｌの蒸留水に溶かした（アルカリ水溶液）。セリン（１．１５ｇ）、システイン（０．９ｇ）及びトリプトファン（１．０８ｇ）の３種類のアミノ酸をアルカリ水溶液に加えた（常にスターラーで撹拌、６０〜７０℃）。
（ｂ）カゼイン（１６０．０ｇ）をアルカリ水溶液に加え、溶解した。このＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅを、沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。
（ｃ）ＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ（６．８ｇ）、ＧｌｙＣａＰＯ_４（３２ｇ）、ＭｇＣｌ_２・６Ｈ_２Ｏ（７．６ｇ）を２００ｍｌの蒸留水に溶かし、ポリトロン様ミキサーでホモジナイズした。これを、Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた（ホモジナイザーで混ぜ続ける）。
（ｄ）ＣａＣＯ_３・２Ｈ_２Ｏ（１０ｇ）、Ｃａ−ｃｉｔｒａｔｅ（４．８ｇ）を１００ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブした後、Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅにゆっくりと加えた。
（ｅ）Ｎａ_２ＨＰＯ_４（３．２ｇ）、ＫＨ_２ＰＯ_４（０．３２ｇ）を５０ｍｌの蒸留水に溶かし、オートクレーブでした後Ｃａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｆ）ラクトース水溶液（ラクトース７５．６４ｇを２２０ｍｌの蒸留水に溶かしたもの）をオートクレーブで滅菌した後、ゆっくりとＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｇ）ＦｅＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ（１．９２ｇ）、ｃｉｔｒａｔｅ−Ｈ_２Ｏ（０．０４ｇ）を２０ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１０ｍｌ、ＺｎＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ（１．２ｇ）、ＣｕＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ（０．３ｇ）、ＭｎＳＯ_４・５Ｈ_２Ｏ（０．０５ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの５ｍｌ、ＮａＦ（０．０３１ｇ）、ＫＩ（０．０５ｇ）を２５ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの５ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。この操作は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ（０．４５μｍ）で滅菌した後に、常に撹拌しながら行った。
（ｈ）ガンマ線照射による滅菌（３０ＫＧｙ）を行った、Ｗｈｅｙｐｒｏｔｅｉｎｉｓｏｌａｔｅ（１６０ｇ）及びＷｈｅｙｐｒｏｔｅｉｎｈｙｄｒｏｌｙｓａｔｅ（２００ｇ）を１０００ｍｌの滅菌蒸留水に溶かし、この溶液を撹拌しながら４０℃以下に冷ましたＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｉ）カルニチン（０．３２ｇ）、ピコリン酸（０．１６ｇ）、エタノールアミン（０．２７２ｇ）及びタウリン（１．２ｇ）を２０ｍｌの蒸留水に溶かした。そのうちの１０ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｊ）クエン酸二水素コリン（５．８８ｇ）を７３．５ｍｌの蒸留水に溶かした（６５℃のｗａｔｅｒｂａｔｈ中で）中和溶液（１ＮＮａＯＨでｐＨ７．０に中和）に、水溶性ビタミンｍｉｘｔｕｒｅ（シアノコバラミン（０．０４７６ｍｇ）、ビオチン（０．７２ｍｇ）、葉酸（３．１６ｍｇ）、チアミン塩酸塩（３５．２４ｍｇ）、ピリドキシン塩酸塩（５０．０ｍｇ）、リン酸リボフラビンナトリウム（５６．６ｍｇ）、パントテン酸カルシウム（１０５．７２ｍｇ）、ｐ−アミノ安息香酸（１７６．１６ｍｇ）、ニコチン酸（１９９．５２ｍｇ）、アスコルビン酸ナトリウム（２．６９６ｇ）、及び４−イノシトール（１．９８９ｇ））を溶かした。そのうちの７０ｍｌをＣａｓｅｉｎｍｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｋ）脂溶性ビタミン（ビタミンＫ_３（７９．３ｍｇ）、ビタミンＥ：α−トコフェロール（９３．８ｍｇ）、ビタミンＡとＤを含む混合物）と６種類の食用油（パーム油（１９１．５ｇ）、ココナッツ油（１５９．６ｇ）、コーン油（６３．８４ｇ）、中鎖脂肪酸油（９５．７６ｇ）、大豆油（１２７．６８ｇ）、コレステロール（１．６ｇ））を沸騰しているお湯の入ったバス中で３０分間滅菌した。この油性溶液を４０〜５０℃まで冷ました後、撹拌しながらＣａｓｅｉｎＭｉｘｔｕｒｅに加えた。
（ｌ）ホモジナイズの後、人工ミルクは無菌的に５０ｍｌ滅菌ポリプロピレンボトルに分注し、−８０℃で保存した。冷凍した人工ミルクはガンマ線照射（３０ＫＧｙ）による滅菌をし、−８０℃で保存した。

生まれた日を生後０日目として、生後０日目から２日目まで母乳哺育したマウス新生仔を親から離し、生後２日目から３時間に１回、哺乳器を用いて経口投与によって人工乳汁を授乳した。人工哺育期間中、哺乳量と体重を継時的に測定し、１０日目まで８日間人工哺育した後に、ジエチルエーテル過剰吸入によって安楽死させ、解剖して胸腺を摘出した。

摘出した胸腺の重量を測定し、０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）入りｐｈｏｓｐｈａｔｅ−ｂｕｆｆｅｒｅｄｂａｌａｎｃｅｄｓａｌｔｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＰＢＢＳ）の入ったシャーレへ取り出した。摘出した胸腺は、シャーレ内にて、ハサミで組織をある程度細切した後、スライドグラスのフロスト部分ですりつぶし、ピペットを用いて浮遊液を４２Ｋのメッシュで濾して、コニカルチューブに移した。８００ｒｐｍで５分間の遠心分離を行い、上清をデカンテーションによって除去した。残った胸腺細胞に、赤血球除去用塩化アンモニウム溶液（Ｔｒｉｓ−ｂｕｆｆｅｒｅｄａｍｍｏｎｉｕｍｃｈｌｏｒｉｄｅ：ＡＣＴＢ）を加えてピペッティングし、室温で５分放置して溶血処理を行った。その後、冷ＰＢＢＳを加え、８００ｒｐｍで５分間の遠心分離を行い、上清をデカンテーションにより除去した。洗浄のため、冷ＰＢＢＳを加えて、８００ｒｐｍで５分間の遠心分離及び上清除去の操作を２回行った後、エッペンチューブへ移した。得られた溶液を適宜希釈し、総細胞数及びリンパ球数を数え、コントロール群及びＣＣＬ２５添加群で比較した。実験結果に関するすべての統計処理は、ｔ−検定を用いて行った。

胸腺中の総細胞数は、コントロール群よりもＣＣＬ２５添加群で多い傾向にあった。また、総細胞数あたりもリンパ球数も、コントロール群よりもＣＣＬ２５添加群で多い傾向にあった（図４）。

以上の結果より、ＣＣＬ２５の添加による、免疫機能発達促進効果及び成長促進効果が確認された。

Claims

ＣＣＬ２５を含有する免疫機能発達促進剤。
乳児用である請求項１に記載の免疫機能発達促進剤。
経口摂取用である請求項１又は２に記載の免疫機能発達促進剤。
ＣＣＬ２５を含有する成長促進剤。
乳児用である請求項４に記載の成長促進剤。
経口摂取用である請求項４又は５に記載の成長促進剤。