WO2016031936A1 - Ｋｉｒ２ｄｓ１に対するモノクローナル抗体 - Google Patents

Ｋｉｒ２ｄｓ１に対するモノクローナル抗体 Download PDF

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喜美子 黒木
宏 米田
秀雄 福原
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Definitions

  • the present invention relates to a monoclonal antibody against KIR2DS1 or a fragment containing the antigen-binding region thereof, a nucleic acid, an expression vector, a transformant, a method for producing a monoclonal antibody or a fragment containing the antigen-binding region, a monoclonal antibody or a fragment containing the antigen-binding region thereof Cells, pharmaceutical compositions, methods for screening for substances that bind to KIR2DL1, methods for detecting KIR2DS1 in a sample, and methods for measuring the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 in a sample .
  • KIR killer cell immunoglobulin-like receptor
  • NK cells play an important role in the control of cancer, infectious diseases, transplant rejection and autoimmune diseases.
  • a killer cell immunoglobulin-like receptor (hereinafter referred to as KIR) is present on the surface of NK cells.
  • KIR has a very high polymorphism and is one of a paired receptor family in which an inhibitory type and an active type form a family.
  • the activation of NK cells depends on the expression level ratio between inhibitory KIR and active KIR and the presence or absence of a ligand on the target cell.
  • the KIR family has a high sequence homology in the extracellular domain, and the inhibitory KIR and the active KIR often recognize the same ligand.
  • KIR2DS1 which is an active KIR, forms a paired receptor family with KIR2DL1, which is an inhibitory KIR.
  • KIR2DS1 regulates the activation of NK cells by recognizing some HLA-C, which is the same ligand as KIR2DL1, and an unknown non-self ligand.
  • Virus-infected cells and tumor cells express KIR2DS1 ligand, so that they are recognized by NK cells and activated NK cells try to remove the virus-infected cells and tumor cells.
  • an inappropriate immune reaction caused by excessive activation of NK cells is involved in autoimmune diseases and transplant rejection.
  • Patent Documents 1-3 disclose antibodies that bind to KIR2DL1, KIR2DL2, and KIR2DL3.
  • Non-Patent Documents 1-3 disclose IPH2101, an antibody that binds to KIR2DL1, KIR2DL2, and KIR2DL3 and exhibits an inhibitory action. More specifically, Non-Patent Document 1 includes a phase I study of IPH2101 for acute myeloid leukemia, Non-Patent Document 2 includes a phase I study of IPH2101 for multiple myeloma, and Non-Patent Document 3 describes The combined effect of IPH2101 and lenalidomide on multiple myeloma is described.
  • Non-Patent Document 4-5 discloses 1-7F9, which is an antibody that binds to KIR2DL1, KIR2DL2, and KIR2DL3 and exhibits an inhibitory action.
  • Patent Documents 1-3 and Non-Patent Documents 1-5 widely inhibit inhibitory KIR that originally functions so as not to attack self-cells. Is concerned. Further, no antibody has been reported so far that specifically binds to KIR2DS1.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and includes a novel monoclonal antibody against KIR2DS1 or a fragment containing an antigen-binding region thereof, a nucleic acid, an expression vector, a transformant, a monoclonal antibody or a fragment containing an antigen-binding region thereof.
  • Production method, cell producing monoclonal antibody or fragment containing antigen-binding region thereof, pharmaceutical composition, method for screening for substance binding to KIR2DL1, method for detecting KIR2DS1 in sample, and KIR2DS1 in sample It is an object to provide a method for measuring the population of KIR2DL1.
  • a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first aspect of the present invention or a fragment containing an antigen-binding region thereof CDR1 has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence
  • CDR2 has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or one or several conservatives in the amino acid sequence.
  • VH has, for example, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 as CDR1 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence, and 1 or 2 in CDR2 as the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or the amino acid sequence. It has an amino acid sequence containing several conservative amino acid substitutions, and has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 as CDR3 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence.
  • VH has, for example, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 as CDR1 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence, and 1 or 2 in CDR2 as the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or the amino acid sequence. It has an amino acid sequence containing several conservative amino acid substitutions, and has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 as CDR3 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence.
  • VH has, for example, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 as CDR1 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence, and 1 or 2 in CDR2 as the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or the amino acid sequence. It has an amino acid sequence containing several conservative amino acid substitutions, and has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9 as CDR3 or an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequence.
  • a fragment containing a monoclonal antibody against KIR2DS1 or an antigen-binding region thereof according to the second aspect of the present invention is a hybridoma having a deposit number of NITE BP-01853, a hybridoma having a deposit number of NITE BP-01855, and a deposit number of NITE BP.
  • the monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof is, for example, a chimeric antibody or a humanized antibody.
  • the nucleic acid according to the third aspect of the present invention includes a base sequence encoding a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing an antigen binding region thereof.
  • the expression vector according to the fourth aspect of the present invention includes the nucleic acid according to the third aspect of the present invention.
  • a transformant producing a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof is added to the third aspect of the present invention.
  • Such nucleic acid or the expression vector according to the fourth aspect of the present invention is included.
  • a method for producing a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing an antigen-binding region thereof the transformation according to the fifth aspect of the present invention Culturing the body and recovering the antibody or the fragment containing the antigen-binding region thereof from the culture.
  • the cell according to the seventh aspect of the present invention produces a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof.
  • the cell is, for example, at least one hybridoma selected from the group consisting of a hybridoma having a deposit number of NITE BP-01853, a hybridoma having a deposit number of NITE BP-01855, and a hybridoma having a deposit number of NITE BP-01854. .
  • the pharmaceutical composition according to the eighth aspect of the present invention includes a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing an antigen-binding region thereof.
  • the monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof acts as an agonist, for example.
  • the monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof acts as an antagonist, for example.
  • the monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof does not act as an agonist of KIR2DS1, and does not act as an antagonist of KIR2DS1, for example.
  • a method for screening a substance that binds to KIR2DL1 comprises: Administering a monoclonal antibody according to the first and second aspects of the present invention that does not act as an agonist of KIR2DS1 and does not act as an antagonist of KIR2DS1 or a fragment containing the antigen-binding region thereof to a cell population; Measuring the degree of activity A of KIR2DL1 in the cell population; Administering a candidate substance to the cell population; Measuring the degree of activity B of KIR2DL1 after administering the candidate substance to the cell population; Comparing the degree A and the degree B; including.
  • a method for detecting KIR2DS1 in a sample according to a tenth aspect of the present invention comprises: A step of bringing a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing an antigen-binding region thereof, and a sample derived from a subject, Determining whether the monoclonal antibody or a fragment comprising the antigen-binding region thereof binds to KIR2DS1 in the sample; including.
  • a method for measuring the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 in a sample according to the eleventh aspect of the present invention is as follows: A step of measuring the amount of KIR2DS1 in the sample by contacting a monoclonal antibody against KIR2DS1 according to the first and second aspects of the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof with a sample derived from a subject; Measuring the amount of KIR2DL1 in the sample; including.
  • VL means a light chain and “VH” means a heavy chain.
  • CDR1 means the first complementarity determining region of VL or VH
  • CDR2 means the second complementarity determining region of VL or VH
  • CDR3 means the third complementarity determining region of VL or VH.
  • the monoclonal antibody according to the present invention is a monoclonal antibody against KIR2DS1, that is, a monoclonal antibody that specifically binds to KIR2DS1.
  • “specifically binds” means binding with higher affinity to KIR2DS1 than to other proteins or peptides.
  • high affinity means a binding affinity that allows KIR2DS1 to be detected separately from other proteins or peptides using methods known in the art.
  • the dissociation constant (Kd) in this case is, for example, at least 1 ⁇ 10 ⁇ 7 M or less, preferably at least 1 ⁇ 10 ⁇ 8 M or less, more preferably 1 ⁇ 10 ⁇ 9 M or less.
  • the binding of the monoclonal antibody according to the present invention to KIR2DS1 can be evaluated by a method known in the art, for example, the binding can be determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) or surface plasmon resonance (SPR). Can be evaluated.
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • SPR surface plasmon resonance
  • the monoclonal antibody according to the present invention specifically binds to KIR2DS1, but does not bind to other KIRs such as KIR2DL1, KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3.
  • the “fragment containing the antigen binding region” includes the antigen binding region of a monoclonal antibody against KIR2DS1, for example, Fab, Fab ′, F (ab ′) 2, single chain antibody (scFv), etc. Means a fragment of Therefore, “a fragment containing the antigen-binding region” can also specifically bind to KIR2DS1 in the same manner as the whole monoclonal antibody.
  • a preparation method known to those skilled in the art can be used. For example, an antibody is digested by a proteolytic enzyme (eg, pepsin or papain) by a conventional method, and then a known protein is prepared. Examples thereof include a method of purification by a separation and purification method and a preparation method by gene recombination.
  • a proteolytic enzyme eg, pepsin or papain
  • monoclonal antibody according to the present invention or “monoclonal antibody of the present invention” is understood to include a fragment containing the antigen-binding region of the monoclonal antibody according to the present invention.
  • the monoclonal antibody according to the present invention comprises VL having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 as CDR1, having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 as CDR2, and having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 as CDR3;
  • CDR1 has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5
  • CDR2 has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6
  • CDR3 is any one selected from the group consisting of SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8, and SEQ ID NO: 9 VH having one amino acid sequence;
  • the VH of the monoclonal antibody according to the present invention has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 as CDR1, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 as CDR2, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 as CDR3.
  • Such clones are represented herein as IC7B8-G3, 1C7H12-B1, 1C7B8-E1, 1C7H12-E4 (Table 1).
  • the VH of the monoclonal antibody according to the present invention has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 as CDR1, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 as CDR2, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 as CDR3.
  • Such clones are represented herein as 3E11A5-E10, 3E11A5-G6 (Table 1).
  • the VH of the monoclonal antibody according to the present invention has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 as CDR1, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 as CDR2, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9 as CDR3.
  • Such clones are represented herein as 5B12D2-B3, 5B12D2-A4 (Table 1).
  • CDR1 to 3 may also include an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 1 to 9 in addition to the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 1 to 9.
  • conservative amino acid substitution means that a certain amino acid is replaced with an amino acid having similar properties to that amino acid. It is known in the art that a protein comprising an amino acid sequence containing one or several conservative amino acid substitutions in a particular amino acid sequence retains activity equivalent to a protein comprising that particular amino acid sequence.
  • a monoclonal antibody containing an amino acid sequence having such a conservative amino acid substitution and a fragment containing the antigen-binding region thereof can be included in the monoclonal antibody according to the present invention as long as it retains the binding property to KIR2DS1.
  • neutral (polar) amino acids Asn, Ser, Gln, Thr, Tyr, Cys
  • neutral (nonpolar, ie hydrophobic) amino acids Gly, Trp, Met, Pro, Phe, Ala, Val, Leu, Ile
  • acidic (polar) amino acids Asp, Glu
  • basic (polar) amino acids Arg, His, Lys
  • KIR2DS1 protein recombinantly expressed in E. coli can be purified and used.
  • Expression methods of KIR2DS1 include expression by a recombinant protein expression system using yeast and cell lines (human cultured cells (HEK, etc.), insect cells, etc.), and preparation of BmNPV virus genes in E. coli and direct silkworm expression. A method of inoculating and expressing an individual can also be used.
  • a KIR2DS1 protein to which an adjuvant is added in order to effectively immunize may be used.
  • adjuvants include Freund's complete adjuvant (FCA) and Freund's incomplete adjuvant (FIA).
  • the immunogen prepared as described above is administered to mammals such as rats, mice and rabbits. Immunization is performed, for example, by injecting subcutaneously (such as the buttocks), intraperitoneally, footpad, or intravenously.
  • the number of immunizations may be single, or may be 2 to 5 times at intervals of several days to several weeks.
  • Antibody producing cells are collected from lymph nodes, spleen, peripheral blood, etc. 3 to 20 days after the final immunization day.
  • myeloma cells are fused to obtain hybridomas.
  • myeloma cells can be used as myeloma cells, but cells having drug selectivity, that is, for example, in HAT selection medium (including hypoxanthine, aminopterin, and thymidine) in an unfused state. Those having the property that they cannot survive and can survive only in a state fused with antibody-producing cells are preferable.
  • myeloma cells for example, mouse myeloma cells (X63 / Ag8-653) can be used.
  • Antibody-producing cells and myeloma cells are mixed in a serum-free medium (for example, RPMI 1640 medium or the like), and the cells are fused in the presence of a cell fusion promoter (for example, polyethylene glycol or the like).
  • a cell fusion promoter for example, polyethylene glycol or the like.
  • cell fusion a cell fusion device using electroporation may be used.
  • the target hybridoma is selected. For example, a cell suspension diluted with a HAT selection medium containing inactivated FBS is seeded on a microplate, and cultured while appropriately changing the medium. Thereafter, cells that grow about 10 to 20 days after the start of culture can be obtained as hybridomas.
  • the culture supernatant of the hybridoma obtained as described above is screened to confirm the presence of an antibody that binds to KIR2DS1.
  • a screening method a known method can be used. For example, an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), an enzyme immunoassay (EIA), a radioimmunoassay (RIA), or the like can be used. Can be used. Cloning of the fused cells is performed by a limiting dilution method or the like to establish a hybridoma that produces the target monoclonal antibody.
  • Examples of a method for collecting a monoclonal antibody from an established hybridoma include a method of culturing using a Hybridoma-SFM medium and obtaining a monoclonal antibody from the culture supernatant.
  • the antibody is purified as necessary, and for example, a known method such as affinity chromatography, ammonium sulfate salting out method, ion exchange chromatography, gel filtration chromatography, or a combination thereof can be employed.
  • a hybridoma obtained according to the above-described method for producing a monoclonal antibody can be preferably used.
  • the present inventors established three types of hybridomas, 1C7_KIR2DS1, 3E11A5_KIR2DS1 and 5B12D2_KIR2DS1, as hybridomas producing monoclonal antibodies against KIR2DS1.
  • Hybridoma 1C7_KIR2DS1 produces 1C7B8-G3, 1C7H12-B1, 1C7B8-E1, and 1C7H12-E4 as clones
  • hybridoma 3E11A5_KIR2DS1 produces 3E11A5-E10 and 3E11A5-G6 as clones
  • the amino acid sequences of VL CDR1 to 3 and VH CDR1 to 3 of these clones are as shown in Table 1 above.
  • Table 2 shows the sequence numbers corresponding to the nucleotide sequences of the nucleic acids encoding the above-mentioned clones VL CDR1 to 3 and VH CDR1 to 3.
  • a chimeric antibody can be prepared, for example, by introducing a gene of a rat monoclonal antibody produced by the hybridoma described above into a gene of an antibody molecule derived from another mammal.
  • a method for producing a chimeric antibody for example, Takeda et al. , 1985, Nature, 314: 452-454; Morrison et al. , 1984, Proc. Natl. Acad. Sci. 81: 6851-6855; Neuberger et al. , 1984, Nature, 312: 604-608, and the like.
  • VL and / or VH variable regions of the above-described rat monoclonal antibody for example, SEQ ID NOs: 1 to 3 as CDRs 1 to 3 of the VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody and SEQ ID NOs: 4 to CDRs 1 to 3 of the VH, respectively.
  • a human chimeric antibody having an amino acid sequence and a human immunoglobulin constant region SEQ ID NOs: 1 to 3 as VL CDRs 1 to 3 of the above-mentioned rat monoclonal antibody and SEQ ID NOs: 5 and 3 respectively as CDRs 1 to 3 of VH
  • a human chimeric antibody having an amino acid sequence comprising No. 6 and SEQ ID No.
  • CDRs 1 to 3 of VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody and CDRs 1 to 3 of VH respectively
  • a human chimeric antibody having an amino acid sequence comprising SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, and a human immunoglobulin constant region, respectively; 3 and amino acids comprising SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, and SEQ ID NO: 9 as CDRs 1-3 of VH, respectively.
  • acid sequence can be exemplified human chimeric antibody having a human immunoglobulin constant region. Any method for producing a chimeric antibody that exhibits the effects of the present invention can be used as appropriate.
  • the humanized antibody has, for example, a part of a variable region including a variable region or a hypervariable region derived from a rat monoclonal antibody, and a human immunoglobulin constant region or a part of a human immunoglobulin variable region and a constant region. It is an antibody. In the case of a humanized antibody, it is desirable that the portion of the antibody region derived from rat is less than about 10% of the entire humanized antibody.
  • the humanized antibody according to the present invention is, for example, an amino acid comprising SEQ ID NOs: 1 to 3 as CDRs 1 to 3 of VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody and SEQ ID NOs: 4, 6, and 7 as CDRs 1 to 3 of VH, respectively.
  • SEQ ID NOs: 1 to 3 as VL CDRs 1 to 3 of VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody and amino acid sequences including SEQ ID NOs: 4, 6, and 8 respectively as CDRs 1 to 3 of VH; Amino acid sequences comprising SEQ ID NO: 1 to 3 as VL CDRs 1 to 3 and SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 6 and SEQ ID NO: 9 as CDRs 1 to 3 of VH respectively; Sequences as CDRs 1 to 3 of VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody Amino acids comprising SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, and SEQ ID NO: 7, respectively, as CDRs 1-3 of VH and VH CDRs 1-3 SEQ ID NOs: 1 to 3 as VL CDRs 1 to 3 of VL of the above-mentioned rat monoclonal antibody and amino acid sequences including SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6 and SEQ ID NO: 8
  • a method for producing a monoclonal antibody according to the present invention or a fragment containing an antigen-binding region thereof using a genetic engineering technique will be described.
  • MRNA is extracted from the hybridoma prepared as described above, and cDNA is synthesized.
  • This cDNA is inserted into a vector such as a phage or a plasmid to prepare a cDNA library.
  • a vector such as a phage or a plasmid to prepare a cDNA library.
  • a cDNA library from this library, using a constant region portion or a variable region portion of an antibody of a non-human animal (eg, a mouse antibody) as a probe, a recombinant phage, a recombinant plasmid, etc. having cDNA encoding VH or VL are isolated. To do.
  • the entire base sequence of VH or VL of the target antibody on the recombinant phage or recombinant plasmid is determined by a known base sequence determination method, and the total amino acid sequence of VH or VL is estimated based on the base sequence.
  • nucleotide sequences encoding the monoclonal antibodies according to the present invention for example, the nucleotide sequences of nucleic acids encoding CDRs 1 to 3 of VL and CDRs 1 to 3 of VH can include SEQ ID NOs: 10 to 18 (Table 2).
  • a nucleic acid containing a base sequence encoding VH or VL is a mutant having a base sequence encoding a protein having a deletion, substitution, addition or insertion of one or several bases and binding to KIR2DS1.
  • “one or several” refers to 1 to 20, preferably 1 to 15, more preferably 1 to 10.
  • the mutant may include a natural mutant and an artificial mutant.
  • the “stringent conditions” are not limited thereto, but for example, 3 to 4 ⁇ SSC (150 mM sodium chloride, 15 mM sodium citrate, pH 7.2) at 30 to 50 ° C., Hybridization in 0.1-0.5% SDS for 1-24 hours, more preferably at 40 ° C.-45 ° C., 3.4 ⁇ SSC, hybridization in 0.3% SDS for 1-24 hours, And subsequent cleaning.
  • washing conditions include conditions such as continuous washing at room temperature with a solution containing 2 ⁇ SSC and 0.1% SDS, and a 1 ⁇ SSC solution and a 0.2 ⁇ SSC solution.
  • the combinations of the above conditions are exemplary, and those skilled in the art will understand the above conditions or other factors that determine the stringency of hybridization (for example, the concentration, length and GC content of the hybridization probe, the hybridization It is possible to realize the same stringency as described above by appropriately combining the reaction time and the like.
  • the monoclonal antibody according to the present invention can be prepared using an expression vector containing a nucleic acid containing a base sequence encoding VH or VL of a monoclonal antibody according to the present invention or a variant thereof.
  • a nucleic acid containing a base sequence encoding VH or VL of a monoclonal antibody according to the present invention or a variant thereof is cloned and incorporated into an expression vector.
  • an expression vector for example, pAGE107 (Cytotechnology, 3, 133 (1990)), pAGE103 (J. Biochem., 101, 1307 (1987)), pQCxID (Clontech), pQCxIH (Clontech) and the like can be used.
  • a known promoter, enhancer, selection marker gene neomycin resistance gene, ampicillin resistance gene, etc.
  • a known promoter, enhancer, selection marker gene neomycin resistance gene, ampicillin resistance gene, etc.
  • selection marker gene neomycin resistance gene, ampicillin resistance gene, etc.
  • the expression vector constructed as described above is introduced into a host cell to obtain a transformant.
  • the host cell to be used can be used without particular limitation as long as it can express the nucleic acid on the introduced expression vector and produce the monoclonal antibody according to the present invention or a fragment containing the antigen-binding region thereof,
  • bacteria such as Escherichia coli
  • yeast such as Saccharomyces cerevisiae
  • animal cells such as COS cells and CHO cells
  • insect cells such as silkworms, Sf9 cells, and Sf21 cells
  • the introduction method into the host cell can be used without particular limitation as long as it is a known introduction method.
  • the introduction method into bacteria and yeast include the electroporation method, the spheroplast method, the lithium acetate.
  • methods for introducing the method into animal cells and insect cells include electroporation, calcium phosphate, and lipofection.
  • the transformant is selected using, for example, the properties of the marker gene that is configured in the nucleic acid to be introduced. For example, when a neomycin resistance gene is used, cells showing resistance to the G418 drug are selected.
  • the monoclonal antibody according to the present invention can be obtained by recovering from the culture obtained by culturing the above-described transformant in a medium.
  • the “culture” refers to a culture supernatant, cultured cells, cell debris and the like.
  • a usual method used for culturing host cells can be employed.
  • a medium when a transformant obtained by using bacteria or yeast as a host cell is cultured, it contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, etc., and the transformant can be cultured efficiently.
  • a medium either a natural medium or a synthetic medium may be used.
  • the culture is usually performed at about 20 to 40 ° C. for about 1 to 24 hours under aerobic conditions such as shaking culture or aeration and agitation culture. During the culture period, the pH is maintained near neutrality.
  • antibiotics such as ampicillin and tetracycline may be added to the medium as necessary.
  • a medium for culturing a transformant obtained by using animal cells as a host a medium in which fetal bovine serum or the like is added to these mediums, such as generally used RPMI 1640 medium, D-MEM medium or the like, is used.
  • the culture is usually performed at about 37 ° C. for about 1 to 7 days in the presence of 5% CO 2 .
  • antibiotics such as streptomycin and penicillin may be added to the medium as necessary.
  • the monoclonal antibody according to the present invention is recovered from the culture.
  • the antibody is recovered by extracting the protein from the disrupted cell or fungus body using a known method.
  • the antibody is recovered by a known method directly from the culture solution or from the culture solution from which the cell or cell body has been removed by centrifugation or the like.
  • the monoclonal antibody according to the present invention recovered from the culture can be purified by a known method, if necessary.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention comprises a monoclonal antibody according to the present invention that specifically binds to KIR2DS1. Therefore, when a pharmaceutical composition according to the present invention is administered to a subject, the monoclonal antibody according to the present invention binds to KIR2DS1 present on the surface of NK cells in the body of the subject, and acts as an agonist or antagonist of KIR2DS1 depending on the situation. it can.
  • the monoclonal antibody according to the present invention that acts as an agonist of KIR2DS1 By treating the monoclonal antibody according to the present invention that acts as an agonist of KIR2DS1 into fragments such as Fab, Fab ′, F (ab ′) 2, single chain antibody (scFv) by a known method, It may be converted to act as an antagonist of KIR2DS1 by crosslinking treatment. Conversely, the monoclonal antibody according to the present invention that acts as an antagonist of KIR2DS1 may be converted to act as an agonist of KIR2DS1 by performing the same treatment as described above.
  • the monoclonal antibody according to the present invention acts as an agonist of KIR2DS1, it activates KIR2DS1 and activates NK cells, so that it can be used as an immunostimulant (NK cell activator), anticancer agent, and the like.
  • AIDS acquired immunodeficiency syndrome
  • human immunodeficiency virus infection eg, Candida esophagitis, carini pneumonia, toxoplasmosis, tuberculosis, mycobacterium-avium complex infection, Putospodium disease, cryptococcal meningitis, cytomegalovirus infection, opportunistic infections such as progressive multifocal leukoencephalopathy
  • severe diseases eg cancer, aplastic anemia, leukemia, myelofibrosis, renal failure.
  • immune deficiency diseases including immunodeficiency associated with diabetes, liver disease or spleen disease
  • primary immune deficiency syndrome is expected.
  • chronic myelogenous leukemia (Chronic Myelogenous Leukemia; CML), chronic lymphocytic leukemia (Chronic Lymphatic Leukemia; CLL), adrenocortical cancer (Adrenocarcinal cancer, adrenocortical cancer).
  • the monoclonal antibody according to the present invention acts as an antagonist of KIR2DS1, it inactivates KIR2DS1 and inactivates NK cells. Therefore, autoimmune disease therapeutic agents, post-transplant immunosuppressants, etc. (NK cell inactivating agents) ).
  • autoimmune diseases include arthritis, autoimmune hepatitis, autoimmune glomerulonephritis, autoimmune pancreatitis, autoimmune orchitis, autoimmune ovitis, ulcerative colitis, Sjogren's syndrome, Crohn's disease , Behcet's disease, Wegener's granulomatosis, hypersensitivity vasculitis, nodular periarteritis, Hashimoto's disease, myxedema, Graves' disease, Addison's disease, autoimmune hemolytic anemia, idiopathic thrombocytopenia, pernicious anemia, severe muscle Asthenia, demyelinating disease, aortic inflammation group, psoriasis, pemphigus, pemphigoid, collagen disease (eg systemic lupus erythematosus, rheumatoid arthritis, generalized scleroderma, systemic progressive sclerosis, dermatomyositis, Nodular polyarte
  • immunosuppressants after transplantation include renal transplantation, liver transplantation, heart transplantation, rejection after lung transplantation, rejection in bone marrow transplantation, graft-versus-host disease, etc., and treatment and / or prevention for these The effect is expected.
  • the monoclonal antibody according to the present invention specifically binds to KIR2DS1 and does not cross-react with other KIRs (KIR2DL1, KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3), a more specific therapeutic and / or preventive effect can be expected.
  • the administration method of the pharmaceutical composition according to the present invention includes oral administration, intravenous administration, intraperitoneal administration, intradermal administration, subcutaneous administration, buccal administration, sublingual administration, intratracheal administration, rectal administration, intramuscular administration, etc. It can be selected appropriately.
  • the dosage form of this pharmaceutical composition may also be arbitrary, for example, oral solid preparations such as tablets, granules, powders and capsules, oral liquid preparations such as oral liquids and syrups, and parenterals such as injections. Liquid preparations, other sprays, suppositories, ointments, tapes and the like.
  • the dosage of the pharmaceutical composition according to the present invention can be appropriately selected depending on the applicable disease, dosage form, patient age, weight, and the like.
  • the monoclonal antibody of the present invention can also be used for companion diagnosis.
  • the method for detecting KIR2DS1 in a sample is as follows: (A) contacting the monoclonal antibody of the present invention with a subject-derived sample; (B) determining whether the monoclonal antibody of the present invention binds to KIR2DS1 in a sample derived from a subject; including.
  • sample derived from the subject
  • tissue or cell samples include tissue or cell samples (cancerous tissues or cells such as stomach, duodenum, large intestine, pancreas, gallbladder, bile duct, bronchi, and lung), biological fluid samples (gastric mucus, duodenum). Fluid, pancreatic juice, bile, ascites, sputum, bronchoalveolar lavage fluid, blood, serum, plasma, etc.).
  • tissue sample biopsy specimen, excised specimen
  • cytodiagnosis sample can be used.
  • the “contact” in the above-mentioned step (a) means that the KIR2DS1 in the sample is brought close to the monoclonal antibody of the present invention so that the monoclonal antibody of the present invention can bind, for example, the solution containing the sample and the monoclonal antibody according to the present invention are contained.
  • step (b) whether or not the monoclonal antibody of the present invention binds to KIR2DS1 in a sample derived from a subject is determined by immunohistochemical staining and immunoelectron microscopy, as well as immunoassay ELISA, EIA, and fluorescence immunoassay. Determination can be made using radioimmunoassay (RIA), immunochromatography, Western blotting, and the like.
  • RIA radioimmunoassay
  • immunohistochemical staining or immunoelectron microscopy it can be performed by in situ detection.
  • a histological sample can be collected from the subject (biopsy tissue sample, paraffin-embedded section of tissue, etc.), and the labeled monoclonal antibody of the present invention can be contacted with the histological sample.
  • the immunoassay may be performed in either a liquid phase system or a solid phase system. Further, the format of the immunoassay is not limited, and a direct solid phase method, a sandwich method, a competitive method, or the like may be used.
  • the complex of KIR2DS1 and the antibody may be separated by a known separation means (chromatography, salting-out method, alcohol precipitation method, enzyme method, solid phase method, etc.), and the label signal may be detected.
  • chromatography, salting-out method, alcohol precipitation method, enzyme method, solid phase method, etc. chromatography, salting-out method, alcohol precipitation method, enzyme method, solid phase method, etc.
  • an antibody or an antigen-binding fragment may be immobilized on a solid support or carrier (resin plate, membrane, bead, etc.), or a sample is immobilized. May be.
  • an antibody or antigen-binding fragment is immobilized on a solid support, and the support is washed with an appropriate buffer, and then treated with a sample. Next, the solid support is washed a second time with a buffer to remove unbound antibody or antigen-binding fragment. Then, by detecting the bound antibody or antigen-binding fragment on the solid support by conventional means, the binding between KIR2DS1 and the antibody or antigen-binding fragment in the sample can be detected. In addition, after the solid sample is treated with a solution containing an antibody or an antigen-binding fragment, followed by washing with a buffer to remove unbound antibody or antigen-binding fragment, the bound antibody on the solid sample Alternatively, antigen binding fragments can be detected by conventional means.
  • Detecting the binding between the antibody according to the present invention and KIR2DS1 in the sample may be performed indirectly by labeling the antibody for easy detection.
  • enzyme immunoassay for example, peroxidase, ⁇ -galactosidase, alkaline phosphatase, glucose oxidase, acetylcholinesterase, lactate dehydrogenase, amylase, etc., and enzyme inhibitors and coenzymes are bound to antibodies by known methods. Can be detected.
  • fluorescent immunoassay for example, fluorescein isothiocyanate (FITC), tetramethylrhodamine isothiocyanate (TRITC) or the like can be detected by binding to an antibody by a known method.
  • FITC fluorescein isothiocyanate
  • TRITC tetramethylrhodamine isothiocyanate
  • radioimmunoassay for example, tritium, iodine 125, iodine 131 and the like can be detected by binding them to an antibody by a known method.
  • the antibody or antigen-binding fragment of the present invention is reacted with the sample (primary reaction), The resulting complex is further reacted with a labeled secondary antibody (secondary reaction).
  • the primary reaction and the secondary reaction may be performed in the reverse order, may be performed simultaneously, or may be performed at different times.
  • a complex of KIR2DS1-antibody-labeled secondary antibody of the present invention or an antibody of the present invention-KIR2DS1-labeled secondary antibody is formed.
  • unbound labeled secondary antibody is separated, and the amount of KIR2DS1 in the sample can be measured from the amount of bound labeled secondary antibody or the amount of unbound labeled secondary antibody.
  • the biotinylated antibody When detecting the binding between the antibody according to the present invention and KIR2DS1 in a sample using the biotin-avidin complex system, the biotinylated antibody is reacted with the sample, and the resulting complex is labeled. React. Since avidin can specifically bind to biotin, the binding between the antibody and KIR2DS1 can be measured by detecting the signal of the label added to avidin.
  • the label added to avidin is not particularly limited, for example, an enzyme label (peroxidase, alkaline phosphatase, etc.) is preferable.
  • the detection of the label signal can also be performed according to a method known in the art.
  • a substrate that develops color by degradation by enzymatic action is added, and the enzyme activity is obtained by optically measuring the amount of degradation of the substrate.
  • the amount of antibody is calculated from the comparison.
  • the substrate varies depending on the type of enzyme used. For example, when peroxidase is used as the enzyme, 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMB), diaminobenzidine (DAB), etc.
  • TMB 5,5′-tetramethylbenzidine
  • DAB diaminobenzidine
  • alkaline phosphatase paranitrophenol or the like can be used.
  • the fluorescent label can be detected and quantified using, for example, a fluorescence microscope or a plate reader. When a radioactive label is used, the radiation dose emitted by the radioactive label is measured with a scintillation counter or the like.
  • KIR2DS1 and KIR2DL1 have high sequence homology in the extracellular domain and are thought to recognize the same ligand. For this reason, conventionally, an antibody that specifically binds to KIR2DS1 has not been found, and the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 in a sample could not be accurately quantified.
  • the monoclonal antibody according to the present invention that specifically binds to KIR2DS1 the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 in a sample can be measured. For example, the relationship between the onset of disease and the expression ratio of KIR2DS1 / KIR2DL1 Sex can be clarified and application to diagnosis of specific diseases is expected.
  • the method for measuring the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 in a sample is: Contacting the monoclonal antibody according to the present invention with a subject-derived sample and measuring the amount of KIR2DS1 in the sample; Measuring the amount of KIR2DL1 in the sample; including.
  • sample derived from the subject and “contact” are the same as described above, but peripheral blood can be suitably used as the sample derived from the subject.
  • amount of KIR2DL1 in the sample is determined, for example, by contacting the anti-KIR2DL1 antibody [2F9] (Abcam) with the sample, and in the same manner as described above, immunohistochemical staining and immunoelectron microscopy, and immunoassay ELISA, The measurement can be performed using EIA, fluorescent immunoassay, radioimmunoassay (RIA), immunochromatography, Western blotting, and the like.
  • EIA fluorescent immunoassay
  • RIA radioimmunoassay
  • the population of KIR2DS1 and KIR2DL1 can be accurately quantified.
  • the monoclonal antibody according to the present invention does not act as an agonist of KIR2DS1 and does not act as an antagonist of KIR2DS1, depending on the situation, that is, it does not need to input a signal to KIR2DS1.
  • the antibody acts as a KIR2DS1 agonist or antagonist by treating the antibody with a fragment such as Fab, Fab ′, F (ab ′) 2, single chain antibody (scFv) or by crosslinking. It may be converted as follows.
  • the antibody according to the present invention that acts as an agonist or antagonist of KIR2DS1 may be converted to an antibody that does not input a signal by performing the same treatment as described above.
  • a substance that binds to KIR2DL1 can be screened using such an antibody that does not give a signal to KIR2DS1.
  • This screening method is (A) administering the monoclonal antibody according to the present invention to a cell population; (B) measuring the degree of activity A of KIR2DL1 in the cell population; (C) a step of administering a candidate substance to the cell population; (D) a step of measuring the degree B of activity of KIR2DL1 after the candidate substance is administered to the cell population; (E) a step of comparing degree A and degree B; including.
  • administering to a cell population means, for example, administering (a monoclonal antibody or a candidate substance according to the present invention) to a transgenic animal (mouse, rat, rabbit, etc.) expressing KIR2DS1 and KIR2DL1, Adding a cultured antibody expressing KIR2DS1 and KIR2DL1 (monoclonal antibody or candidate substance according to the present invention).
  • candidate substances” and “substances” include compounds, antibodies, proteins, peptides, and the like.
  • the degree of activity of KIR2DL1 can be measured, for example, by evaluating phosphorylation of the KIR2DL1 intracellular motif.
  • the phosphorylation can be evaluated, for example, by detecting KIR2DL1 phosphorylation by Western blotting using an anti-phosphotyrosine antibody.
  • the ability of KIR2DL1 to suppress the activity of KIR2DL1-expressing NK cells can also be evaluated by measuring the activity of KIR2DL1-expressing NK cells against the target cells.
  • the monoclonal antibody according to the present invention specifically binds to KIR2DS1, so that a substance that specifically binds to KIR2DL1 can be screened.
  • the candidate substance when the degree of activity B of KIR2DL1 after administration of the candidate substance is greater than the degree of activity A of KIR2DL1 before administration of the candidate substance, the candidate substance is an agonist of KIR2DL1.
  • the degree of activity B of KIR2DL1 after administration of the candidate substance is smaller than the degree A of activity of KIR2DL1 before administration of the candidate substance, the candidate substance is an antagonist of KIR2DL1.
  • Example 1 A monoclonal antibody that specifically binds to KIR2DS1, which is one of NK cell activation receptors, was prepared as follows.
  • the modified pGMT7 vector was treated with NdeI and HindIII, and the KIR2DS1 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 19, amino acid sequence: SEQ ID NO: 20) was introduced.
  • the plasmid containing the KIR2DS1 extracellular region was transformed into E. coli (BL21 (DE3) pLysS) to form colonies on an ampicillin-containing agar medium. One colony was picked, cultured with shaking in an ampicillin-containing medium, and isopropyl- ⁇ -thiogalactopyranoside (IPTG) was added to 1 mM in the logarithmic growth phase, thereby Expression was induced.
  • E. coli BL21 (DE3) pLysS
  • coli is collected by centrifugation, suspended in a resuspension buffer (50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM NaCl) and sonicated, and then Triton wash buffer (50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM). Washed with NaCl, 0.5% Triton X-100).
  • a resuspension buffer 50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM NaCl
  • Triton wash buffer 50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM. Washed with NaCl, 0.5% Triton X-100).
  • the cell suspension was transferred to a tube and allowed to stand for 3 minutes, and then the upper layer was transferred to another tube and centrifuged (1200 rpm ⁇ 5 minutes).
  • the cells were suspended in RPMI 1640 medium and further centrifuged (1200 rpm ⁇ 5 minutes), and then the cells were suspended in 2 mL of RPMI 1640 medium to obtain iliac lymph node cell fluid (total 4 ⁇ 10 7 iliac lymph nodes). Node cells were obtained).
  • GIT-HAT medium (described later), and seeded at 100 ⁇ L / well on five 96-well plates. After culturing at 37 ° C. for 5 days, GIT-HAT medium was added to each well to the extent that the well was filled to about 80% after 5 days. On day 12 from the start of culture, colonies that could be confirmed as single clones appeared in 1 well in 233 wells.
  • the composition of GIT-HAT medium 400 mL is as follows. GIT medium (Nippon Pharmaceutical) 332mL Deactivated FBS (final 10%) 40mL BM-condimed H1 (Roche Diagnostics) (final 5%) 20 mL 50 x HAT (invitrogen) 8mL
  • the antigen protein solution for ELISA for the primary screening was prepared as follows.
  • a KIR2DS1 protein antigen solution and a KIR2DL1 protein antigen solution were prepared using E. coli strain Origami (DE3) as a competent cell. More specifically, the KIR2DS1 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 19, amino acid sequence: SEQ ID NO: 20) or KIR2DL1 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 21, amino acid sequence: SEQ ID NO: 22) is added to the same pGMT7 vector as described above. ) Was transformed into E. coli (Origami (DE3)) to form colonies on ampicillin-containing agar medium.
  • E. coli is collected by centrifugation, suspended in a resuspension buffer (50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM NaCl) and sonicated, and then Triton wash buffer (50 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM). Washed with NaCl, 0.5% Triton X-100).
  • ABTS solution 5 mL of citrate buffer, ABTS (Wako) 1 mg, hydrogen peroxide solution 3.3 ⁇ L
  • ABTS solution 5 mL of citrate buffer, ABTS (Wako) 1 mg, hydrogen peroxide solution 3.3 ⁇ L
  • the absorbance OD 415 nm
  • rat antiserum No. was used as a positive control.
  • 2 ⁇ 5000, ⁇ 2000
  • GIT-HAT medium 50 ⁇ L was used as a negative control.
  • KIR2DS1 protein was expressed in the same manner as described above using E. coli strain Origami (DE3) as a competent cell.
  • KIR2DL1 protein was expressed using silkworms. More specifically, a plasmid in which the KIR2DL1 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 21, amino acid sequence: SEQ ID NO: 22) was introduced into a pFastBac vector (a vector that can be used for Tn7 site-specific transposition) cell (Efficient large-scale protein production of larvae and pupae of silkworm by Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus bacmid system.Motohashi T, Shimojima T, Fukagawa T, Maenaka K, Park EY.Biochem Biophys Res Commun.2005 Jan 21; 326 (3): 564-9.
  • pFastBac vector a vector that can be used for Tn7 site-specific transposition
  • BmNPV bacmid previously reported was introduced into DH10B), cultured in a medium containing tetracycline and gentamicin, then plated on agar and cultured at 37 ° C. . Colonies were picked and colony PCR was performed.
  • a PCR solution was prepared as follows, and a Forward primer (5′-gtttccccattcacgac-3 ′, SEQ ID NO: 23) and a reverse primer (5′-cagagaacagtattagacac-3 ′, SEQ ID NO: 24) were used as primers.
  • Go Taq DNA polymerase Promega 4 ⁇ L Forward primer 1 ⁇ L Reverse primer 1 ⁇ L Milli Q 2 ⁇ L PCR conditions were 95 ° C.
  • ELISA was performed in the same manner as the primary screening. However, anti-rat IgG-HRP diluted 1/3000 with 0.1% Tween20-PBS ( ⁇ ) was used as the secondary antibody, and rat antiserum No. 2 ( ⁇ 5000, ⁇ 2000, ⁇ 1000) (50 ⁇ L) was used.
  • Antibody purification was performed as follows. When the hybridoma (50 mL / 75 cm 2 flask) that has been cultured has been acclimatized, 20 mL of the culture solution is added to 30 mL of Hybridoma-SFM medium (GIBCO, Life Technologies), and cultured at 37 ° C. until the number of cells increases. Cells were collected by centrifuging for minutes and cultured in 40 ml of Hybridoma-SFM medium.
  • the cells were collected by centrifuging 50 mL of the hybridoma culture solution at 1200 rpm for 3 minutes, washed with 10 mL of Hybridoma-SFM medium, centrifuged again, and the cells were collected, and the cells were collected in 40 mL of Hybridoma-SFM medium. Cultured. Large particles were removed from the culture supernatant using a syringe type filter (0.45 ⁇ m), and then purified by affinity chromatography using Protein G column Sepharose 4Fast Flow (GE Healthcare) (500 ⁇ L).
  • Example 2 About the hybridoma-producing monoclonal antibody (22 clones) monoclonally cloned in Example 1, KIR family proteins KIR2DS1, KIR2DL1, KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3 having high extracellular domain homology by ELISA and surface plasmon resonance (SPR) method The binding specificity for was verified.
  • KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3 protein solutions were added to the KIR2DS2 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 25, amino acid sequence: SEQ ID NO: 26) and KIR2DL2 extracellular region (base sequence: A plasmid introduced with SEQ ID NO: 27, amino acid sequence: SEQ ID NO: 28), or KIR2DL3 extracellular region (base sequence: SEQ ID NO: 29, amino acid sequence: SEQ ID NO: 30) was transformed into E. coli (BL21 (DE3) pLysS). Obtained in the same manner as described above.
  • ELISA-1 ELISA-2
  • Antigen 50 ng / 50 ⁇ L (/ well)
  • Primary antibody Purified antibody (1/100) 50 ⁇ L / well positive control-1: rat antiserum (x1000, 2000, 5000) control: Antibody (2B7C2-B3) before purification (culture supernatant (GIT), Flow Through during purification) negative control: 0.1M Glycine-HCl (Used as an elution buffer during antibody purification and neutralized)
  • Secondary antibody anti-rat IgG-HRP ( ⁇ 3000) 50 ⁇ L / well
  • Detection system ABTS (415 nm)
  • Antigen 50 ng / 50 ⁇ L (/ well)
  • Primary antibody Purified antibody (stock solution) 50 ⁇ L / well positive control-1: rat antiserum (x1000, 2000, 5000) positive control-2: Purified antibody (1C7B8-E1) ( ⁇ 100) negative control: 0.1M Glycine-HCl (used as an elution buffer during antibody purification, neutralized)
  • Secondary antibody anti-rat IgG-HRP ( ⁇ 3000) 50 ⁇ L / well Detection system: ABTS (415 nm)
  • KIR2DS1 and KIR2DL1 were biotinylated specifically at the C-terminus (Reaction buffer: 50 mM D-biotin, 100 mM ATP, 15 ⁇ MBirA), and gel filtration chromatography (Superdex 75) to KIR2DS1 and KIR2DL1, and residual biotin in the reaction buffer. Each was separated.
  • Biacore 3000 GE Healthcare
  • surface plasmon resonance experiment of the antibody produced with KIR was performed (measurement conditions: Biotin capture kit CAP chip (GE Healthcare), HBS-EPbuffer (107.5M Hep).
  • the antibody purified from the hybridoma culture supernatant using a protein G column was used after buffer substitution with HBS-EP (by ultrafiltration).
  • a CAP chip was used, and biotinylated KIR2DS1, KIR2DL1 and BSA as a negative control were immobilized on the chip in which SA in the Biotin capture kit was immobilized.
  • each antibody (35 ⁇ L) dissolved in HBS-EP as a running buffer was flowed at 2 ⁇ L / min.
  • the ELISA results of these 8 clones are shown in FIG. 1-2, and the SPR results are shown in FIG. 3-4 (in FIG. 3-4, solid line: KIR2DS1, dotted line: KIR2DL1, gray line: BSA).
  • the ELISA results and the SPR results were in agreement, indicating that these 8 clones did not bind to KIR2DL1, KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3, but specifically bound only to KIR2DS1.
  • the hybridoma produced (5B12D2_KIR2DS1) was transferred to the National Institute of Technology and Evaluation (NITE) Patent Microorganism Depositary Center (NPMD) (Kazusa-Kamazu 2-5-8, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan), May 2014.
  • Example 3 VL and VH of 8 monoclonal antibody clones obtained in Example 2 were cloned, and CDR sequences of VH and VL were determined.
  • VL 26 kinds of Forward primers (RatVL-F01 to 26, SEQ ID NOs: 31 to 56), 5 kinds of Reverse primers (RatVL-R01 to 05, SEQ ID NOs: 57 to 61) or 3 kinds (RatCL).
  • Primer mixtures of -R01-03, SEQ ID NOs 62-64) were used (Table 4).
  • VH the primer mix of 24 kinds of Forward primer (RatVH-F01 to 24, SEQ ID NO: 65 to 88) and 4 kinds of Reverse primer (RatVH-R01 to 04, SEQ ID NO: 89 to 92) were used (Table 5). ).
  • the PCR reaction conditions are as follows (Ex Taq (Takara Bio) was used in PCR).
  • Template (1/10 dilution) 1.0 ⁇ L 10 ⁇ Ex Taq buffer 5.0 ⁇ L dNTP (2.5mMeach) 4.0 ⁇ L Forward primer mixture 1.5 ⁇ L Reverse primer mixture 1.0 + 1.0 ⁇ L Ex Taq 0.25 ⁇ L Water 37.65 ⁇ L Total 50.0 ⁇ L PCR was performed at 95 ° C. for 2 minutes, 95 ° C. for 30 seconds-45 ° C. for 30 seconds-68 ° C. for 1 minute ⁇ 35 cycles, 68 ° C. for 1 minute, 4 ° C. ⁇ ⁇ . Thereafter, TA cloning was performed using pGEM-T Easy system I (Promega). After confirming the insert by colony PCR, plasmid DNA was extracted by miniprep and subjected to sequencing.
  • Table 6 shows the results of CDR sequence analysis. It was shown that the sequences of CDRs 1 to 3 of VL were all identical. On the other hand, for VH, the sequence of CDR2 was identical, but the sequences of CDR1 and CDR3 were different depending on the clone as shown in Table 6. As a result of CDR sequence analysis, 1C7B8-G3, 1C7H12-B1, 1C7B8-E1 and 1C7H12-E4 are likely to be the same clone, and 3E11A5-E10 and 3E11A5-G6 are likely to be the same clone. It was revealed that 5B12D2-B3 and 5B12D2-A4 are highly likely to be the same clone.
  • 3E11A5-E10 and 3E11A5-G6 were IgG2a / ⁇ and the others were IgG2b / ⁇ .

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Abstract

ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、ＣＤＲ１として配列番号１のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号２のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号３のアミノ酸配列を有するか、又は配列番号１－３で示される上記アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するＶＬと、ＣＤＲ１として配列番号４若しくは５のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７－９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を有するか、又は配列番号４－９で示される上記アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列をそれぞれ有するＶＨと、を有する。

Description

ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体
　本発明は、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント、核酸、発現ベクター、形質転換体、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントの産生方法、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する細胞、医薬組成物、ＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングするための方法、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１を検出するための方法、及びサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法に関する。
　ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞は、癌、感染症、移植時拒絶反応、自己免疫疾患などの制御に重要な役割を果たす。ＮＫ細胞の表面には、受容体分子であるｋｉｌｌｅｒ　ｃｅｌｌ　ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（以下、ＫＩＲという）が存在している。ＫＩＲは、非常に多型性が高く、抑制型と活性型とがファミリーを形成するペア型受容体ファミリーのひとつである。ＮＫ細胞の活性化は、抑制型ＫＩＲと活性型ＫＩＲとの発現量比、及び標的細胞上のリガンドの有無に依存している。また、ＫＩＲファミリーは細胞外ドメインの配列相同性が高く、抑制型ＫＩＲと活性型ＫＩＲとが同一のリガンドを認識する場合が多い。
　活性型ＫＩＲであるＫＩＲ２ＤＳ１は、抑制型ＫＩＲであるＫＩＲ２ＤＬ１とペア型受容体ファミリーを形成している。ＫＩＲ２ＤＳ１は、ＫＩＲ２ＤＬ１と同一リガンドである一部のＨＬＡ－Ｃ及び未知の非自己リガンドを認識することによって、ＮＫ細胞の活性化を制御している。
　ウイルス感染細胞や腫瘍細胞は、ＫＩＲ２ＤＳ１リガンドを発現することによって、ＮＫ細胞に認識され、活性化されたＮＫ細胞が該ウイルス感染細胞や腫瘍細胞を除去しようとする。一方、自己免疫疾患や移植時拒絶反応には、ＮＫ細胞が過剰に活性化することによって起こる不適切な免疫反応が関与している。
　ＮＫ細胞賦活化を目的として、抑制型ＫＩＲを認識する抗体を用いた臨床応用が進められており、いくつか報告がなされている。
　特許文献１－３には、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３に結合する抗体が開示されている。また、非特許文献１－３には、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３に結合して抑制作用を示す抗体であるＩＰＨ２１０１が開示されている。より具体的には、非特許文献１にはＩＰＨ２１０１の急性骨髄性白血病に対する第Ｉ相試験が、非特許文献２にはＩＰＨ２１０１の多発性骨髄腫に対する第Ｉ相試験が、非特許文献３には多発性骨髄腫に対するＩＰＨ２１０１とレナリドミドとの併用効果が記載されている。また、非特許文献４－５には、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３に結合して抑制作用を示す抗体である１－７Ｆ９が開示されている。
特表２００７－５２４６１２号公報 特表２００８－５０６３６８号公報 特表２００８－５２６８１２号公報
Ｎｏｒｂｅｒｔ　Ｖｅｙ　ｅｔ　ａｌ，Ｂｌｏｏｄ　２０１２　１２０：４３１７－４３２３ Ｄｏｎ　Ｍ．Ｂｅｎｓｏｎ　Ｊｒ　ｅｔ　ａｌ，Ｂｌｏｏｄ　２０１２　１２０：４３２４－４３３３ Ｄｏｎ　Ｍ．Ｂｅｎｓｏｎ，Ｊｒ　ｅｔ　ａｌ，Ｂｌｏｏｄ　２０１１　１１８：６３８７－６３９１ Ｓｕｓａｎｎｅ　Ｅ．Ｊｏｈａｎｓｓｏｎ　ｅｔ　ａｌ，Ｃｌｉｎｉｃａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（２０１０）１３４，１５８-１６８ Ｆｒａｎｃｏｉｓ　Ｒｏｍａｇｎｅ　ｅｔ　ａｌ，Ｂｌｏｏｄ　２００９　１１４：２６６７－２６７７
　しかしながら、特許文献１－３及び非特許文献１－５に記載の抗体は、本来自己細胞を攻撃しないように機能している抑制型ＫＩＲを広く阻害するため、自己免疫反応誘発などの副作用の発現が懸念される。また、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合する抗体については、今まで報告がなされていなかった。
　本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、ＫＩＲ２ＤＳ１に対する新規のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント、核酸、発現ベクター、形質転換体、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントの産生方法、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する細胞、医薬組成物、ＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングするための方法、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１を検出するための方法、及びサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法を提供することを目的とする。
　上記目的を達成するため、本発明の第１の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、
　ＣＤＲ１として配列番号１のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号２のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号３のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するＶＬと、
　ＣＤＲ１として配列番号４若しくは配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７、配列番号８及び配列番号９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するＶＨと、
　を有する。
　ＶＨは、例えば、ＣＤＲ１として配列番号４のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する。
　ＶＨは、例えば、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号８のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する。
　ＶＨは、例えば、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号９のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する。
　本発明の第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３であるハイブリドーマ、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５であるハイブリドーマ及び受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４であるハイブリドーマからなる群より選択される少なくとも１つのハイブリドーマにより産生される。
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、例えば、キメラ抗体又はヒト化抗体である。
　本発明の第３の観点に係る核酸は、本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントをコードする塩基配列を含む。
　本発明の第４の観点に係る発現ベクターは、本発明の第３の観点に係る核酸を含む。
　本発明の第５の観点に係る、本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する形質転換体は、本発明の第３の観点に係る核酸又は本発明の第４の観点に係る発現ベクターを含む。
　本発明の第６の観点に係る、本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントの産生方法は、本発明の第５の観点に係る形質転換体を培養し、培養物から抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを回収する工程を含む。
　本発明の第７の観点に係る細胞は、本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する。
　細胞は、例えば、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３であるハイブリドーマ、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５であるハイブリドーマ及び受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４であるハイブリドーマからなる群より選択される少なくとも１つのハイブリドーマである。
　本発明の第８の観点に係る医薬組成物は、本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを含む。
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、例えば、アゴニストとして作用する。
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、例えば、アンタゴニストとして作用する。
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントは、例えば、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用せず、かつ、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用しない。
　本発明の第９の観点に係るＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングするための方法は、
　ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用せず、かつ、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用しない本発明の第１及び第２の観点に係るモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを細胞集団に投与する工程と、
　前記細胞集団の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ａを測定する工程と、
　候補物質を前記細胞集団に投与する工程と、
　前記候補物質を前記細胞集団に投与した後の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ｂを測定する工程と、
　前記度合Ａと前記度合Ｂとを比較する工程と、
　を含む。
　本発明の第１０の観点に係るサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１を検出するための方法は、
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントと、被験者由来のサンプルと、を接触させる工程と、
　前記モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントが、前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１に結合するか否かを判定する工程と、
　を含む。
　本発明の第１１の観点に係るサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法は、
　本発明の第１及び第２の観点に係るＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントと、被験者由来のサンプルと、を接触させて、前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１量を測定する工程と、
　前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＬ１量を測定する工程と、
　を含む。
　本発明によれば、ＫＩＲ２ＤＳ１に対する新規のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント、核酸、発現ベクター、形質転換体、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントの産生方法、モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する細胞、医薬組成物、ＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングするための方法、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１を検出するための方法、及びサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法を提供することができる。
ＥＬＩＳＡの結果を示す図である。（ａ）は１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、（ｂ）は１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、（ｃ）は１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、（ｄ）は１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４のＥＬＩＳＡの結果を示す図である。 ＥＬＩＳＡの結果を示す図である。（ａ）は３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０、（ｂ）は３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６、（ｃ）は５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３、（ｄ）は５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４のＥＬＩＳＡの結果を示す図である。 ＳＰＲの結果を示す図である。（ａ）は１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、（ｂ）は１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、（ｃ）は１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、（ｄ）は１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４のＳＰＲの結果を示す図である。 ＳＰＲの結果を示す図である。（ａ）は３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０、（ｂ）は３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６、（ｃ）は５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３、（ｄ）は５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４のＳＰＲの結果を示す図である。
　まず、本発明によるモノクローナル抗体及びその抗原結合領域を含むフラグメントについて詳細に説明する。
　本発明書において、「ＶＬ」は軽鎖を、「ＶＨ」は重鎖を意味する。また、「ＣＤＲ１」はＶＬ又はＶＨの第１相補性決定領域を、「ＣＤＲ２」はＶＬ又はＶＨの第２相補性決定領域を、「ＣＤＲ３」はＶＬ又はＶＨの第３相補性決定領域を意味する。
　本発明によるモノクローナル抗体は、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体、すなわち、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合するモノクローナル抗体である。ここで「特異的に結合する」とは、他のタンパク質又はペプチドに対してよりも、ＫＩＲ２ＤＳ１に対して高い親和性で結合することを意味する。ここで、「高い親和性」とは、本技術分野で公知の方法を用いて、ＫＩＲ２ＤＳ１を他のタンパク質又はペプチドから区別して検出することが可能な程度の結合親和性を意味する。この場合の解離定数（Ｋｄ）については、例えば、少なくとも１×１０－７Ｍ以下、好ましくは少なくとも１×１０－８Ｍ以下、より好ましくは１×１０－９Ｍ以下又はそれより小さいものである。
　本発明によるモノクローナル抗体のＫＩＲ２ＤＳ１との結合性については、本技術分野で公知の方法により評価することができ、例えば、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）や表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）などによって結合性を評価することができる。
　本発明によるモノクローナル抗体は、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合する一方で、他のＫＩＲであるＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３には結合しない。
　本明細書において、「その抗原結合領域を含むフラグメント」とは、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体の抗原結合領域を含む、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）等のフラグメントを意味する。したがって、「その抗原結合領域を含むフラグメント」もまた、モノクローナル抗体全体と同様に、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合することができる。このようなフラグメントを作製する場合、当業者に公知の調製方法を用いることができるが、例えば、抗体を常法によりタンパク質分解酵素（例えば、ペプシンやパパイン等）によって消化し、その後、公知のタンパク質分離精製方法で精製する方法や、遺伝子組換えによる調製方法などを例示することができる。
　本明細書において、以下、「本発明によるモノクローナル抗体」又は「本発明のモノクローナル抗体」には、本発明によるモノクローナル抗体の抗原結合領域を含むフラグメントが含まれるものとして理解される。
　本発明によるモノクローナル抗体は、
　ＣＤＲ１として配列番号１のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号２のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号３のアミノ酸配列を有するＶＬと、
　ＣＤＲ１として配列番号４又は配列番号５のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７、配列番号８及び配列番号９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列を有するＶＨと、
　を有する。
　好ましくは、本発明によるモノクローナル抗体のＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号４のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７のアミノ酸配列を有する。このようなクローンは、本明細書において、ＩＣ７Ｂ８－Ｇ３、１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４として表される（表１）。
　また、好ましくは、本発明によるモノクローナル抗体のＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号８のアミノ酸配列を有する。このようなクローンは、本明細書において、３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０、３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６として表される（表１）。
　また、好ましくは、本発明によるモノクローナル抗体のＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号９のアミノ酸配列を有する。このようなクローンは、本明細書において、５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３、５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４として表される（表１）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　ＣＤＲ１～３は、前述の配列番号１～９のアミノ酸配列の他に、配列番号１～９のアミノ酸配列において１又は数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列をも含み得る。ここで「保存的アミノ酸置換」とは、あるアミノ酸が、そのアミノ酸と類似の性質を示すアミノ酸と置換されることを意味する。特定のアミノ酸配列において１又は数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を含むタンパク質が、その特定のアミノ酸配列を含むタンパク質と同等の活性を保持することは、本技術分野において公知である。本発明において、このような保存的アミノ酸置換を有するアミノ酸配列を含むモノクローナル抗体及びその抗原結合領域を含むフラグメントは、ＫＩＲ２ＤＳ１との結合性を保持している限り、本発明によるモノクローナル抗体に含まれ得る。例えば、中性（極性）アミノ酸（Ａｓｎ、Ｓｅｒ、Ｇｌｎ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｃｙｓ）、中性（非極性、すなわち疎水性）アミノ酸（Ｇｌｙ、Ｔｒｐ、Ｍｅｔ、Ｐｒｏ、Ｐｈｅ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ）、酸性（極性）アミノ酸（Ａｓｐ、Ｇｌｕ）、塩基性（極性）アミノ酸（Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ｌｙｓ）が、同じ性質を有するアミノ酸と置換され得る。
　次に、本発明によるモノクローナル抗体の作製方法について説明する。
　免疫原として、例えば、大腸菌において組換え発現させたＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質を精製して使うことができる。ＫＩＲ２ＤＳ１の発現方法としては、酵母、細胞株（ヒト培養細胞（ＨＥＫ等）、昆虫細胞等）を用いた組換え蛋白質発現系により発現させる方法や、大腸菌内でＢｍＮＰＶウイルス遺伝子を調製し、直接カイコ個体に接種して発現させる方法も用いることができる。
　免疫原の調製において、ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質に、免疫を効果的に行うためにアジュバントを添加したものを用いてもよい。用いられ得るアジュバントとしては、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）、フロイント不完全アジュバント（ＦＩＡ）等が例示される。
　上記の通り調製した免疫原を、哺乳類、例えば、ラット、マウス、ウサギなどに投与する。免疫は、例えば、皮下（臀部など）、腹腔内、足蹠、静脈内に注入することにより行われる。免疫の回数は、単回でもよく、数日から数週間間隔で２～５回程度でもよい。最終の免疫日から３～２０日後に、リンパ節、脾臓、末梢血等より、抗体産生細胞を採取する。
　次に、抗体産生細胞とミエローマ細胞とを細胞融合させて、ハイブリドーマを得る。ミエローマ細胞として、一般に入手可能な株化細胞を使用することができるが、薬剤選択性を有する細胞、すなわち、例えば、未融合の状態ではＨＡＴ選択培地（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジンを含む）で生存できず、抗体産生細胞と融合した状態でのみ生存できるような性質を有するものが好ましい。ミエローマ細胞として、例えば、マウスミエローマ細胞（Ｘ６３／Ａｇ８－６５３）を用いることができる。
　抗体産生細胞とミエローマ細胞とを、血清を含まない培地（例えば、ＲＰＭＩ　１６４０培地等）中で混合し、細胞融合促進剤（例えば、ポリエチレングリコール等）の存在下で細胞融合させる。なお、細胞融合において、エレクトロポレーションを利用した細胞融合装置を用いてもよい。
　細胞融合後、目的とするハイブリドーマを選別する。例えば、非働化済ＦＢＳ含有のＨＡＴ選択培地で希釈した細胞懸濁液をマイクロプレートに播種し、培地を適宜交換しながら培養する。その後、培養開始後１０～２０日程度で生育してくる細胞を、ハイブリドーマとして得ることができる。
　前述の通り得られたハイブリドーマの培養上清について、ＫＩＲ２ＤＳ１に結合する抗体の存在を確認するためにスクリーニングを行う。スクリーニングの方法としては、公知の方法を用いることができ、例えば、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、酵素免疫アッセイ（ＥＩＡ）、放射性免疫アッセイ（ＲＩＡ）等を用いることができるが、ＥＬＩＳＡを好適に用いることができる。融合細胞のクローニングは、限界希釈法等により行い、目的のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを樹立する。
　樹立したハイブリドーマからモノクローナル抗体を採取する方法として、例えば、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地を用いて培養し、その培養上清よりモノクローナル抗体を得る方法が挙げられる。抗体の精製については、必要に応じて行われ、例えば、アフィニティークロマトグラフィー、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー等の公知の方法、又はこれらの組み合わせを採用することができる。
　次に、本発明によるモノクローナル抗体を産生する細胞について説明する。
　本発明によるモノクローナル抗体を産生する細胞として、例えば、前述のモノクローナル抗体の作製方法に従って得られたハイブリドーマを好適に用いることができる。
[規則91に基づく訂正 02.10.2015]　
　本発明者らは、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして、１Ｃ７＿ＫＩＲ２ＤＳ１、３Ｅ１１Ａ５＿ＫＩＲ２ＤＳ１及び５Ｂ１２Ｄ２＿ＫＩＲ２ＤＳ１の３種類のハイブリドーマを樹立した。これらのハイブリドーマは各々、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（日本国２９２－０８１８千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８　１２２号室）に２０１４年５月９日（寄託の日付）付けで受託され、その後、ブタペスト条約の下での国際寄託に移管され（２０１５年７月８日付けで移管請求を受領）、各々、受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３、受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５及び受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４が付与されている（２０１５年７月２９日付けで受託証発行）。
　ハイブリドーマ１Ｃ７＿ＫＩＲ２ＤＳ１は、クローンとして１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、及び１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４を産生し、ハイブリドーマ３Ｅ１１Ａ５＿ＫＩＲ２ＤＳ１は、クローンとして３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０及び３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６を産生し、ハイブリドーマ５Ｂ１２Ｄ２＿ＫＩＲ２ＤＳ１は、クローンとして５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３及び５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４を産生する。なお、これらのクローンのＶＬのＣＤＲ１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列は、前述の表１の通りである。
　また、上述のクローンのＶＬ　ＣＤＲ１～３及びＶＨ　ＣＤＲ１～３をコードする核酸の塩基配列に対応する配列番号を、表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　次に、本発明のモノクローナル抗体のキメラ抗体及びヒト化抗体について説明する。
　キメラ抗体は、例えば、上述のハイブリドーマが産生するラットモノクローナル抗体の遺伝子を、他の哺乳動物由来の抗体分子の遺伝子に導入することで作製することができる。キメラ抗体の作製方法としては、例えば、Ｔａｋｅｄａ　ｅｔ　ａｌ．，１９８５，Ｎａｔｕｒｅ，３１４：４５２－４５４；Ｍｏｒｒｉｓｏｎ　ｅｔ　ａｌ．，１９８４，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，８１：６８５１－６８５５；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，１９８４，Ｎａｔｕｒｅ，３１２：６０４－６０８等に記載の方法を用いることができる。キメラ抗体として、上述のラットモノクローナル抗体のＶＬ及び／又はＶＨの可変領域、例えば、上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号７を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号８を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号９を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号７を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号８を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体；又は上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号９を含むアミノ酸配列と、ヒト免疫グロブリン定常領域と、を有するヒト型キメラ抗体を例示することができる。本発明の効果を奏するキメラ抗体の作製方法であれば、適宜用いることができる。
　ヒト化抗体は、例えば、ラットモノクローナル抗体由来の可変領域又は超可変領域を含む可変領域の一部と、ヒト免疫グロブリンの定常領域又はヒト免疫グロブリンの可変領域の一部及び定常領域と、を有する抗体である。ヒト化抗体の場合、ラット由来の抗体領域部分は、ヒト化抗体全体のうち約１０％未満であることが望ましい。本発明によるヒト化抗体は、例えば、上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号７を含むアミノ酸配列；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号８を含むアミノ酸配列；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号４、配列番号６、配列番号９を含むアミノ酸配列；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号７を含むアミノ酸配列；上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号８を含むアミノ酸配列；又は上述のラットモノクローナル抗体のＶＬのＣＤＲ１～３として各々配列番号１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３として各々配列番号５、配列番号６、配列番号９を含むアミノ酸配列を有する。本発明の効果を奏するヒト化抗体の作製方法であれば、適宜用いることができる。
　本発明によるモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを、遺伝子工学的手法を利用して作製する方法について説明する。
　例えば、以下の作製方法が例示される。前述の通り作製したハイブリドーマから、ｍＲＮＡを抽出し、ｃＤＮＡを合成する。このｃＤＮＡを、ファージ、プラスミド等のベクターに挿入し、ｃＤＮＡライブラリーを作製する。該ライブラリーより、ヒト以外の動物の抗体（例えばマウス抗体）の定常領域部分又は可変領域部分をプローブとして用いて、ＶＨ又はＶＬをコードするｃＤＮＡを有する組換えファージ、組換えプラスミド等を単離する。組換えファージ又は組換えプラスミド上の目的とする抗体のＶＨ又はＶＬの全塩基配列を公知の塩基配列決定方法により決定し、その塩基配列に基づきＶＨ又はＶＬの全アミノ酸配列を推定する。
　本発明によるモノクローナル抗体をコードする塩基配列、例えば、ＶＬのＣＤＲ１～３及びＶＨのＣＤＲ１～３をコードする核酸の塩基配列として配列番号１０～１８を挙げることができる（表２）。
　また、ＶＨ又はＶＬをコードする塩基配列を含む核酸において、１又は数個の塩基の欠失、置換、付加又は挿入を有し、かつＫＩＲ２ＤＳ１に結合するタンパク質をコードする塩基配列を含む変異体を用いることができる。ここで、「１又は数個」とは、１～２０個、好ましくは１～１５個、より好ましくは１～１０個を指す。なお、この場合の変異体には、天然の変異体及び人為的な変異体が含まれ得る。
　また、ＶＨ又はＶＬをコードする塩基配列の相補配列に対してストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつＫＩＲ２ＤＳ１と結合するタンパク質をコードする塩基配列を含む変異体を用いることもできる。ここで、「ストリンジェントな条件」とは、これに限定されるものではないが、例えば３０℃～５０℃で、３～４×ＳＳＣ（１５０ｍＭ塩化ナトリウム、１５ｍＭクエン酸ナトリウム、ｐＨ７．２）、０．１～０．５％　ＳＤＳ中で１～２４時間のハイブリダイゼーション、より好ましくは４０℃～４５℃で、３．４×ＳＳＣ、０．３％ＳＤＳ中で１～２４時間のハイブリダイゼーション、そしてその後の洗浄を含む。洗浄条件としては、例えば、２×ＳＳＣと０．１％ＳＤＳを含む溶液、および１×ＳＳＣ溶液、０．２×ＳＳＣ溶液による室温での連続した洗浄などの条件を挙げることができる。ただし、上記条件の組み合わせは例示であり、当業者であればハイブリダイゼーションのストリンジェンシーを決定する上記の条件又は他の要素（例えば、ハイブリダーゼーションプローブの濃度、長さ及びＧＣ含量、ハイブリダイゼーションの反応時間など）を適宜組み合わせることにより、上記と同様のストリンジェンシーを実現することが可能である。
　本発明によるモノクローナル抗体のＶＨ又はＶＬをコードする塩基配列を含む核酸又はその変異体を含む発現ベクターを用いて、本発明によるモノクローナル抗体を作製することができる。
　まず、例えば、本発明によるモノクローナル抗体のＶＨ又はＶＬをコードする塩基配列を含む核酸又はその変異体をクローニングし、発現ベクターに組み込む。発現ベクターとしては、例えば、ｐＡＧＥ１０７（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３，１３３（１９９０））、ｐＡＧＥ１０３（Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１０１，１３０７（１９８７））、ｐＱＣｘＩＤ（クロンテック）、ｐＱＣｘＩＨ（クロンテック）等を用いることができる。また、発現ベクターには、ＶＨ又はＶＬをコードする塩基配列を含む核酸又はその変異体の他、公知のプロモーター、エンハンサー、選択マーカー遺伝子（ネオマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子等）などを挿入してもよい。
　次に、上述のとおり構築した発現ベクターを、宿主細胞に導入して、形質転換体を得る。用いられる宿主細胞としては、導入される発現ベクター上の核酸を発現し、本発明によるモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生できるものであれば、特に制限されずに用いることができ、例えば、細菌（大腸菌等）、酵母（サッカロミセス・セレビシエ等）、動物細胞（ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞等）、昆虫細胞（カイコ、Ｓｆ９細胞、Ｓｆ２１細胞等）などを用いることができる。また、宿主細胞への導入方法については、公知の導入方法であれば特に制限されずに用いることができ、細菌及び酵母への導入方法としては、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法等を、動物細胞及び昆虫細胞への導入方法としては、エレクトロポレーション法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法等を例示することができる。
　形質転換体は、例えば、導入する核酸内に構成されるマーカー遺伝子の性質を利用して選択される。例えば、ネオマイシン耐性遺伝子を用いた場合には、Ｇ４１８薬剤に抵抗性を示す細胞を選択する。
　本発明によるモノクローナル抗体は、上述の形質転換体を培地で培養した培養物から回収することにより、得ることができる。本明細書において、「培養物」とは、培養上清、培養細胞、細胞破砕物等である。
　形質転換体の培養方法としては、宿主細胞の培養に用いられる通常の方法が採用され得る。培地としては、細菌又は酵母を宿主細胞として得られた形質転換体を培養する場合には、炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。培養は、通常、振盪培養又は通気攪拌培養などの好気的条件下、約２０～４０℃で約１～２４時間行う。培養期間中、ｐＨは中性付近に維持される。培養中、必要に応じてアンピシリン、テトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。動物細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているＲＰＭＩ　１６４０培地、Ｄ－ＭＥＭ培地等、これらの培地にウシ胎児血清等を添加した培地が用いられる。培養は、通常、５％ＣＯ２存在下、約３７℃で約１～７日間行う。培養中は必要に応じてストレプトマイシン、ペニシリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　培養後、本発明によるモノクローナル抗体を培養物から回収する。例えば、細胞内又は菌体において抗体が産生される場合には、細胞又は菌体の破砕物より、公知の方法を用いてタンパク質を抽出することで、抗体を回収する。また、例えば、細胞外又は菌体外において抗体が産生される場合には、培養液から直接、又は遠心分離等により細胞又は菌体を除去した培養液から、公知の方法により抗体を回収する。培養物から回収された本発明によるモノクローナル抗体は、必要に応じて、公知の方法により精製され得る。
　このようにして得られた本発明によるモノクローナル抗体の、ＫＩＲ２ＤＳ１に対する結合活性については、前述の方法により確認することができる。
　次に、本発明による医薬組成物、及び本発明によるモノクローナル抗体のＫＩＲ２ＤＳ１に対する作用について説明する。
　本発明による医薬組成物は、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合する、本発明によるモノクローナル抗体を含む。したがって、本発明による医薬組成物を被験者に投与すると、本発明によるモノクローナル抗体が被験者の体内のＮＫ細胞表面に存在するＫＩＲ２ＤＳ１に結合し、状況に応じて、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニスト又はアンタゴニストとして作用することができる。
　なお、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用する本発明によるモノクローナル抗体を、公知の方法により、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）等のフラグメントに処理することで、また、架橋処理することで、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用するように変換してもよい。また、これとは逆に、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用する本発明によるモノクローナル抗体を、前述同様の処理を施すことで、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用するように変換してもよい。
　本発明によるモノクローナル抗体がＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用する場合、ＫＩＲ２ＤＳ１を活性化して、ＮＫ細胞を活性化させるため、免疫賦活剤（ＮＫ細胞活性剤）、抗癌剤等として用いることができる。
　免疫賦活剤として用いる場合、例えば、ヒト免疫不全ウイルス感染症による後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）（例えば、カンジダ食道炎、カリニ肺炎、トキソプラズマ症、結核、マイコバクテリウム－アビウム複合体感染症、クリプトスポリジウム症、クリプトコッカス髄膜炎、サイトメガロウイルス感染症、進行性多巣性白質脳症などの日和見感染症など）、重症疾患（例えば、癌、再生不良性貧血、白血病、骨髄線維症、腎不全、糖尿病、肝疾患もしくは脾疾患）に伴う免疫不全及び原発性免疫不全症候群などを含む免疫不全疾患の治療及び／又は予防の効果が期待される。
　抗癌剤として用いる場合、慢性骨髄性白血病（Ｃｈｒｏｎｉｃ　Ｍｙｅｌｏｇｅｎｏｕｓ　Ｌｅｕｋｅｍｉａ；ＣＭＬ）、慢性リンパ球性白血病（Ｃｈｒｏｎｉｃ　Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｉｃ　Ｌｅｕｋｅｍｉａ；ＣＬＬ）、副腎皮質癌（Ａｄｒｅｎｏｃｏｒｔｉｃａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、肛門癌（Ａｎａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、胆管癌（Ｂｉｌｉａｒｙ　ｃａｎａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、膀胱癌（Ｂｌａｄｄｅｒ　ｃａｎｃｅｒ）、乳癌（Ｂｒｅａｓｔ　ｃａｎｃｅｒ）、子宮頚癌（Ｃｅｒｖｉｃａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、大腸癌（Ｃｏｌｏｎ　ｃａｎｃｅｒ）、子宮内膜癌（Ｅｎｄｏｍｅｔｒｉａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、食道癌（Ｅｓｏｐｈａｇｅａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、ユーイング腫瘍（Ｅｗｉｎｇ’ｓ　ｃａｎｃｅｒ）、胆嚢癌（Ｇａｌｌ　ｂｌａｄｄｅｒ　ｃａｎｃｅｒ）、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓ　ｄｉｓｅａｓｅ）、下咽頭癌（Ｈｙｐｏｐｈａｒｙｎｇｅａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、喉頭癌（Ｌａｒｙｎｇｅａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、口唇口腔癌（Ｌｉｐ　ａｎｄ　Ｏｒａｌ　ｃａｎｃｅｒ）、肝臓癌（Ｌｉｖｅｒ　ｃａｎｃｅｒ）、非小細胞肺癌（Ｌｕｎｇ　ｃａｎｃｅｒ　－　ｎｏｎ－ｓｍａｌｌ　ｃｅｌｌ）、非ホジキンリンパ腫（Ｌｙｍｐｈｏｍａ　－　Ｎｏｎ－Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓ）、黒色腫（Ｍｅｌａｎｏｍａ）、中皮腫（Ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ）、多発性骨髄腫（Ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｍｙｅｌｏｍａ）、卵巣癌（Ｏｖａｒｉａｎ　ｃａｎｃｅｒ）、膵臓癌（Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｃａｎｃｅｒ）、前立腺癌（Ｐｒｏｓｔａｔｅ　ｃａｎｃｅｒ）、胃癌（Ｓｔｏｍａｃｈ　ｃａｎｃｅｒ）、睾丸癌（Ｔｅｓｔｉｃｕｌａｒ　ｃａｎｃｅｒ）、甲状腺癌（Ｔｈｙｒｏｉｄ　ｃａｎｃｅｒ）等の治療及び／又は予防の効果が期待される。
　本発明によるモノクローナル抗体がＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用する場合、ＫＩＲ２ＤＳ１を不活性化して、ＮＫ細胞を不活性化させるため、自己免疫疾患治療薬、移植後の免疫抑制薬等（ＮＫ細胞不活性化剤）として用いることができる。
　自己免疫疾患としては、例えば、関節炎、自己免疫性肝炎、自己免疫性糸球体腎炎、自己免疫性膵島炎、自己免疫性精巣炎、自己免疫性卵巣炎、潰瘍性大腸炎、シェーグレン症候群、クローン病、ベーチェット病、Ｗｅｇｅｎｅｒ肉芽腫症、過敏性血管炎、結節性動脈周囲炎、橋本病、粘液水腫、バセドウ病、アジソン病、自己免疫性溶血性貧血、突発性血小板減少症、悪性貧血、重症筋無力症、脱髄疾患、大動脈炎症群、乾癬、天疱瘡、類天疱瘡、膠原病（例えば、全身性エリテマトーデス、慢性関節リウマチ、汎発性強皮症、全身性進行性硬化症、皮膚筋炎、結節性多発性動脈炎およびリウマチ熱など）、ギラン・バレー症候群、多腺性自己免疫症候群ＩＩ型、原発性胆汁性肝硬変、尋常性白斑、１型糖尿病等が挙げられ、これらの疾患の治療及び／又は予防の効果が期待される。
　移植後の免疫抑制薬としては、例えば、腎移植、肝移植、心移植、肺移植後の拒絶反応、骨髄移植における拒絶反応、移植片対宿主病等が挙げられ、これらに対する治療及び／又は予防の効果が期待される。
　本発明によるモノクローナル抗体は、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合し、他のＫＩＲ（ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３）へクロス反応しないため、より特異的な治療及び／又は予防効果が期待できる。
　本発明による医薬組成物の投与方法は、経口投与、静脈内投与、腹腔内投与、皮内投与、皮下投与、口腔内投与、舌下投与、気道内投与、直腸内投与、筋肉内投与等、適宜選択され得る。この医薬組成物の剤型も任意であってよく、例えば、錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等の経口用固形製剤、内服液剤、シロップ剤等の経口用液体製剤、注射剤などの非経口用液体製剤、その他、噴霧剤、座剤、軟膏、テープ剤等に適宜調製することができる。
　本発明による医薬組成物には、通常用いられる賦形剤、結合剤、崩壊剤、増粘剤、分散剤、再吸収促進剤、矯味剤、緩衝剤、界面活性剤、溶解補助剤、保存剤、乳化剤、等張化剤、安定化剤、ｐＨ調製剤等を適宜含有させることができる。
　本発明による医薬組成物の投与量は、適用疾患、剤型、患者の年齢、体重等によって適宜選択され得る。
　本発明による医薬組成物を被験者に投与する場合、被験者がＫＩＲ２ＤＳ１を有するか否かについて、投与前に、本発明のモノクローナル抗体を用いて調べてもよい。日本人の約半数がＫＩＲ２ＤＳ１を有し、ＫＩＲ２ＤＳ１を有する被験者に該医薬組成物を投与することで治療及び／又は予防効果が期待できるからである。このように、本発明のモノクローナル抗体は、コンパニオン診断にも用いられ得る。
　次に、被験者がＫＩＲ２ＤＳ１を有するか否かについて調べるための、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１の検出方法について説明する。
　サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１の検出方法は、
（ａ）本発明のモノクローナル抗体と、被験者由来のサンプルと、を接触させる工程と、
（ｂ）本発明のモノクローナル抗体が、被験者由来のサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１に結合するか否かを判定する工程と、
　を含む。
　前述の被験者由来の「サンプル」としては、例えば、組織又は細胞サンプル（胃、十二指腸、大腸、膵臓、胆嚢、胆管、気管支、肺等の癌の組織又は細胞）、生体液サンプル（胃粘液、十二指腸液、膵液、胆汁、腹水、喀痰、気管支肺胞洗浄液、血液、血清、血漿等）などが挙げられる。例えば、免疫染色の場合には、組織サンプル（生検標本、切除標本）、細胞診サンプルを用いることができる。
　前述の工程（ａ）における「接触」とは、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１に、本発明のモノクローナル抗体が結合できるように近接させることを意味し、例えば、サンプル含む溶液と本発明によるモノクローナル抗体を含有する溶液とを混合すること、サンプルを含む固形物を本発明によるモノクローナル抗体を含有する溶液に浸漬すること、本発明による抗体を固相支持体（例えば、メンブレン、ビーズ等）に固定化したものをサンプルを含む溶液に浸漬すること等によりなされ得る。
　前述の工程（ｂ）において、本発明のモノクローナル抗体が、被験者由来のサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１に結合するか否かについて、免疫組織化学染色法及び免疫電顕法、並びに免疫アッセイＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ、蛍光免疫アッセイ、放射性免疫アッセイ（ＲＩＡ）、免疫クロマト法、ウエスタンブロット法等などを利用して判定することができる。
　免疫組織化学染色法又は免疫電顕法の場合、ｉｎ　ｓｉｔｕ検出により行うことができる。この場合、被験者から組織学的サンプルを採取し（生検組織サンプル、組織のパラフィン包埋切片など）、該組織学的サンプルに標識した本発明のモノクローナル抗体を接触させることができる。
　免疫アッセイは、液相系及び固相系のいずれで行ってもよい。また免疫アッセイの形式も限定されるものではなく、直接固相法の他、サンドイッチ法、競合法などであってもよい。ＫＩＲ２ＤＳ１と抗体との複合体を、公知の分離手段（クロマト法、塩析法、アルコール沈殿法、酵素法、固相法等）によって分離し、標識のシグナルを検出するようにしてもよい。免疫アッセイの一例として、例えば固相系を利用する場合、抗体又は抗原結合性フラグメントを固相支持体又は担体（樹脂プレート、メンブレン、ビーズなど）に固定してもよいし、あるいはサンプルを固定してもよい。例えば、抗体又は抗原結合性フラグメントを固相支持体に固定し、支持体を適当なバッファーで洗浄した後、サンプルを用いて処理する。次に固相支持体にバッファーを用いた２回目の洗浄を行って、未結合の抗体又は抗原結合性フラグメントを除去する。そして固体支持体上の結合した抗体又は抗原結合性フラグメントを、慣用的な手段により検出することによって、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１と抗体又は抗原結合性フラグメントとの結合を検出することができる。また、固形サンプルを抗体又は抗原結合性フラグメントを含む溶液で処理して、続いてバッファーを用いた洗浄を行って未結合の抗体又は抗原結合性フラグメントを除去した後、固形サンプル上の結合した抗体又は抗原結合性フラグメントを慣用的な手段により検出することができる。
　本発明による抗体とサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１との結合の検出については、検出を容易にするために、抗体を標識して間接的に検出を行ってもよい。酵素免疫アッセイの場合には、例えば、ペルオキシダーゼ、β－ガラクトシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、グルコースオキシダーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、アミラーゼ等、また、酵素阻害物質や補酵素等を、公知の方法により抗体に結合させて検出することができる。蛍光免疫アッセイの場合には、例えば、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）等を、公知の方法により抗体に結合させて検出することができる。放射性免疫アッセイの場合には、例えば、トリチウム、ヨウ素１２５及びヨウ素１３１等を、公知の方法により抗体に結合させて検出することができる。
　また例えば、標識二次抗体を用いて本発明による抗体とサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１との結合を検出する場合には、本発明の抗体又は抗原結合性フラグメントとサンプルとを反応させ（１次反応）、得られた複合体にさらに標識二次抗体を反応させる（２次反応）。１次反応と２次反応は逆の順序で行ってもよいし、同時に行ってもよいし、又は時間をずらして行ってもよい。１次反応及び２次反応により、ＫＩＲ２ＤＳ１－本発明の抗体－標識二次抗体の複合体、又は本発明の抗体－ＫＩＲ２ＤＳ１－標識二次抗体の複合体が形成される。そして定量を行う場合には、未結合の標識二次抗体を分離して、結合標識二次抗体量又は未結合標識二次抗体量よりサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１量を測定することができる。
　ビオチン－アビジン複合体系を利用して本発明による抗体とサンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１との結合を検出する場合には、ビオチン化した抗体とサンプルとを反応させ、得られた複合体に標識を付加したアビジンを反応させる。アビジンは、ビオチンと特異的に結合することができるため、アビジンに付加した標識のシグナルを検出することによって、抗体とＫＩＲ２ＤＳ１との結合を測定することができる。アビジンに付加する標識は特に限定されるものではないが、例えば酵素標識（ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼなど）が好ましい。
　標識シグナルの検出もまた、当技術分野で公知の方法に従って行うことができる。例えば、酵素標識を用いる場合には、酵素作用によって分解して発色する基質を加え、基質の分解量を光学的に測定することによって酵素活性を求め、これを結合抗体量に換算し、標準値との比較から抗体量が算出される。基質は、使用する酵素の種類に応じて異なり、例えば酵素としてペルオキシダーゼを使用する場合には、３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）、ジアミノベンジジン（ＤＡＢ）等を、また酵素としてアルカリフォスファターゼを用いる場合には、パラニトロフェノール等を用いることができる。蛍光標識は、例えば蛍光顕微鏡、プレートリーダー等を用いて検出及び定量することができる。放射性標識を用いる場合には、放射性標識の発する放射線量をシンチレーションカウンター等により測定する。
　次に、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法について説明する。
　ＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とでは、細胞外ドメインの配列相同性が高く、同一のリガンドを認識すると考えられている。このため、従来、ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合する抗体が見出されておらず、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを正確に定量することができなかった。ＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合する本発明によるモノクローナル抗体を用いることで、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定することができ、例えば、疾患発症と、ＫＩＲ２ＤＳ１／ＫＩＲ２ＤＬ１発現量比と、の関連性を明らかすることができ、特定の疾患の診断への応用が期待される。
　サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法は、
　本発明によるモノクローナル抗体と、被験者由来のサンプルと、を接触させて、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１量を測定する工程と、
　サンプル中のＫＩＲ２ＤＬ１量を測定する工程と、
　を含む。
　前述の「被験者由来のサンプル」及び「接触」については、前述同様であるが、被験者由来のサンプルとしては、末梢血を好適に用いることができる。また、サンプル中のＫＩＲ２ＤＬ１量は、例えば、Ａｎｔｉ－ＫＩＲ２ＤＬ１抗体［２Ｆ９］（アブカム）と、サンプルと、を接触させて、前述同様に、免疫組織化学染色法及び免疫電顕法、並びに免疫アッセイＥＬＩＳＡ、ＥＩＡ、蛍光免疫アッセイ、放射性免疫アッセイ（ＲＩＡ）、免疫クロマト法、ウエスタンブロット法等などを利用して測定することができる。このように、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１量とＫＩＲ２ＤＬ１量とを各々測定することで、ＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを正確に定量することができる。
　次に、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用せず、かつ、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用しないモノクローナル抗体について説明する。
　本発明によるモノクローナル抗体は、状況に応じて、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用せず、かつ、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用しない、つまり、ＫＩＲ２ＤＳ１に対してシグナルを入れなくてもよい。この場合、この抗体を、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）等のフラグメントに処理することで、また、架橋処理することで、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニスト又はアンタゴニストとして作用するように変換してもよい。また、これとは逆に、ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニスト又はアンタゴニストとして作用する本発明による抗体に、前述同様の処理を施すことで、シグナルを入れない抗体に変換してもよい。
　また、このようなＫＩＲ２ＤＳ１に対してシグナルを入れない抗体を用いて、ＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングすることができる。このスクリーニング方法は、
　（Ａ）本発明によるモノクローナル抗体を細胞集団に投与する工程と、
　（Ｂ）細胞集団の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ａを測定する工程と、
　（Ｃ）候補物質を細胞集団に投与する工程と
　（Ｄ）候補物質を細胞集団に投与した後の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ｂを測定する工程と、
　（Ｅ）度合Ａと度合Ｂとを比較する工程と、
　を含む。
　前述の「細胞集団に投与する」とは、例えば、ＫＩＲ２ＤＳ１及びＫＩＲ２ＤＬ１を発現している遺伝子導入動物（マウス、ラット、ウサギ等）に（本発明によるモノクローナル抗体又は候補物質を）投与することや、ＫＩＲ２ＤＳ１及びＫＩＲ２ＤＬ１を発現している培養細胞に（本発明によるモノクローナル抗体又は候補物質を）添加することを含む。また、前述の「候補物質」及び「物質」には、化合物、抗体、タンパク質、ペプチド等が含まれる。なお、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合は、例えば、ＫＩＲ２ＤＬ１細胞内モチーフのリン酸化を評価することで、測定することができる。リン酸化の評価は、例えば、抗リン酸化チロシン抗体を用いたウエスタンブロッティングによるＫＩＲ２ＤＬ１リン酸化を検出することで可能である。また、例えば、ＫＩＲ２ＤＬ１発現ＮＫ細胞の標的細胞に対する傷害活性測定によりＫＩＲ２ＤＬ１による活性抑制能を評価することも可能である。
　あらかじめ細胞集団に本発明によるモノクローナル抗体を投与しておくと、本発明によるモノクローナル抗体がＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合するため、ＫＩＲ２ＤＬ１に特異的に結合する物質をスクリーニングすることができる。なお、候補物質投与前のＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ａより、候補物質投与後のＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ｂが大きい場合は、該候補物質は、ＫＩＲ２ＤＬ１のアゴニストである。一方、候補物質投与前のＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ａより、候補物質投与後のＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ｂが小さい場合は、該候補物質は、ＫＩＲ２ＤＬ１のアンタゴニストである。
　以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
（実施例１）
　以下の通り、ＮＫ細胞活性化受容体のひとつであるＫＩＲ２ＤＳ１に特異的に結合するモノクローナル抗体を作製した。
（１．抗原タンパク質の調製）
　抗原タンパク質として、大腸菌において組換え発現させたＫＩＲ２ＤＳ１を用いた。
　改変したｐＧＭＴ７ベクターをＮｄｅＩ及びＨｉｎｄＩＩＩ処理し、ＫＩＲ２ＤＳ１細胞外領域（塩基配列：配列番号１９、アミノ酸配列：配列番号２０）を導入した。このＫＩＲ２ＤＳ１細胞外領域を含むプラスミドを、大腸菌（ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ）にトランスフォーメーションし、アンピシリン含有寒天培地上にコロニーを形成させた。１個のコロニーを採取し、アンピシリン含有培地中にて振とう培養し、対数増殖期にイソプロピル－β－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を１ｍＭとなるように添加することにより、組換えタンパクの発現を誘導した。遠心することで大腸菌を集菌し、再懸濁バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１００ｍＭ　ＮａＣｌ）に懸濁して超音波破砕し、その後、Ｔｒｉｔｏｎ洗浄バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１００ｍＭ　ＮａＣｌ、０．５％　Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００）により洗浄した。グアニジン溶液（６Ｍ　ＧｕＨＣｌ、５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１０ｍＭ　ＥＤＴＡ）により可溶化させた後、巻き戻しバッファー（１００ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、４００ｍＭ　Ｌ－アルギニン塩酸塩、２ｍＭ　ＥＤＴＡ、３．７３ｍＭ　Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ、６．７３ｍＭ　Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ）を徐々に加えて巻き戻しを行った。クロスフローろ過システム（ビバフロー　ＭＷ１０，０００）を用いて濃縮した後、限外ろ過（Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　ＭＷ１０，０００）により濃縮した。その後、ゲルろ過クロマトグラフィー（ＡＫＴＡシステム）（カラム：Ｓｕｐｅｒｄｅｘ７５）を用いて精製し、タンパク液（抗原）を得た。このタンパク液とアジュバントコンプリートフロイント（Ｄｉｆｃｏ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）とを、１：１で、超音波処理により混合し、抗原液とした。
（２．ラットの免疫及び腸骨リンパ節細胞液の調製）
　Ｗｉｓｔｅｒラット（８週齢、雌）（三協ラボサービス）を４匹用意した。ラットに１匹あたり抗原２５０μｇを免疫注射した。より具体的には、０．５ｍｇ／ｍＬのＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質の抗原液をラット１匹あたり５００μＬ、ラットの臀部に注射した。免疫２週間後に心採血を行うとともに、腸骨リンパ節を摘出した。摘出された腸骨リンパ節をディッシュ中のＲＰＭＩ　１６４０培地（Ｌ－グルタミン、フェノールレッド含有）（ＷＡＫＯ）に入れ、該培地中ですりつぶし、細胞懸濁液とした。細胞懸濁液をチューブに移して３分間静置した後、上層を別のチューブに移して遠心した（１２００ｒｐｍ×５分間）。細胞をＲＰＭＩ　１６４０培地に懸濁し、さらに遠心した（１２００ｒｐｍ×５分間）後、細胞を２ｍＬのＲＰＭＩ　１６４０培地に懸濁し、腸骨リンパ節細胞液とした（合計で４×１０７個の腸骨リンパ節細胞を得た）。
（３．細胞融合）
　上記にて得られたＲＰＭＩ　１６４０培地中の腸骨リンパ節細胞４×１０７個と、２ｍＬのＲＰＭＩ　１６４０培地に懸濁されたマウスミエローマ細胞（Ｘ６３／Ａｇ８－６５３）４×１０６個と、を混合し、５０ｍＬチューブに移し、細胞混合液を遠心した（１５００ｒｐｍ×５分間）。ＲＰＭＩ培地　１６４０を除いた後、チューブ内の沈殿をよくほぐした。５０％ＰＥＧ溶液（ＰＥＧ１５００、ロシュディアグノスティック）１ｍＬを添加し、チューブを回転させて１分間混合させた。ＲＰＭＩ　１６４０培地２ｍＬとおだやかに懸濁させ、さらにＲＰＭＩ　１６４０培地８ｍＬとおだやかに懸濁させた。細胞混合液を遠心（１０００ｒｐｍ×１０分間）した後、細胞を５０ｍＬのＧＩＴ－ＨＡＴ培地（後述）に懸濁し、９６ウェルプレート５枚に１００μＬ／ウェルで播種した。３７℃で５日間培養し、５日後に、ウェルが８割位満たされる程度に各ウェルにＧＩＴ－ＨＡＴ培地を足した。培養開始１２日目に、１ウェルの中でシングルクローンと確認できたコロニーが出現していたのは、２３３ウェルであった。
　なお、ＧＩＴ－ＨＡＴ培地（４００ｍＬ）の組成は以下の通りである。
　　ＧＩＴ培地（日本製薬）　　　　　　　　３３２ｍＬ
　　非働化済ＦＢＳ（ｆｉｎａｌ　１０％）　４０ｍＬ
　　ＢＭ－ｃｏｎｄｉｍｅｄ　Ｈ１（ロシュディアグノスティック）（ｆｉｎａｌ　５％）
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２０ｍＬ
　　５０×ＨＡＴ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）　８ｍＬ
（４．１次スクリーニング）
　前述の通り得られた培養上清を用いて、ＥＬＩＳＡ法による１次スクリーニングを行った。
　１次スクリーニングのＥＬＩＳＡ用抗原タンパク質液の調製は以下の通り行った。ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌとして大腸菌株Ｏｒｉｇａｍｉ（ＤＥ３）を用いて、ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質抗原液及びＫＩＲ２ＤＬ１タンパク質抗原液を調製した。より具体的には、前述同様のｐＧＭＴ７ベクターにＫＩＲ２ＤＳ１細胞外領域（塩基配列：配列番号１９、アミノ酸配列：配列番号２０）又はＫＩＲ２ＤＬ１細胞外領域（塩基配列：配列番号２１、アミノ酸配列：配列番号２２）を導入したプラスミドを、大腸菌（Ｏｒｉｇａｍｉ（ＤＥ３））にトランスフォーメーションし、アンピシリン含有寒天培地上にコロニーを形成させた。１個のコロニーを採取し、アンピシリン含有培地中にて振とう培養し、対数増殖期にイソプロピル－β－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を１ｍＭとなるように添加することにより、組換えタンパクの発現を誘導した。遠心することで大腸菌を集菌し、再懸濁バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１００ｍＭ　ＮａＣｌ）に懸濁して超音波破砕し、その後、Ｔｒｉｔｏｎ洗浄バッファー（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１００ｍＭ　ＮａＣｌ、０．５％　Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００）により洗浄した。グアニジン溶液（６Ｍ　ＧｕＨＣｌ、５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、１０ｍＭ　ＥＤＴＡ）により可溶化させた後、巻き戻しバッファー（１００ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｐＨ８．０、４００ｍＭ　Ｌ－アルギニン塩酸塩、２ｍＭ　ＥＤＴＡ、３．７３ｍＭ　Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ、６．７３ｍＭ　Ｃｙｓｔａｍｉｎｅ）を徐々に加えて巻き戻しを行った。クロスフローろ過システム（ビバフロー　ＭＷ１０，０００）を用いて濃縮した後、限外ろ過（Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　ＭＷ１０，０００）により濃縮した。その後、ゲルろ過クロマトグラフィー（ＡＫＴＡシステム）（カラム：Ｓｕｐｅｒｄｅｘ７５）を用いて精製し、タンパク液（ＫＩＲ２ＤＳ１、ＫＩＲ２ＤＬ１）を得た。各抗原液のタンパク質濃度は、５０ｎｇ／５０μＬであった。
　ＥＬＩＳＡを以下の通り行った。炭酸－炭酸塩バッファー（Ｎａ２ＣＯ３：ＮａＨＣＯ３＝１：１．８２５）で抗原タンパク質液を希釈し、マイクロタイタープレート（９６ウェル、Ｎｕｎｃ　Ｍａｘｉｓｏｒｐ）に、１穴あたり抗原タンパク質５０ｎｇとなるよう分注し、室温で２時間静置した。その後、洗浄バッファー（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０－ＰＢＳ（－））で３回洗浄し、ブロッキング溶液（ブロックエース（雪印）を１×ＰＢＳ（－）で１／４希釈）を１５０μＬ加え、３７℃で１時間インキュベートした後、前述と同様に３回洗浄した。前述の通り得られた培養上清１００μＬを各ウェルに分注し、３７℃で１時間インキュベートした。その後、前述と同様に３回洗浄し、２次抗体溶液（２次抗体（ａｎｔｉ－ｒａｔ　ＩｇＧ－ＨＲＰ）を０．１％Ｔｗｅｅｎ２０－ＰＢＳ（－）で１／５０００希釈したもの）を各ウェルに５０μＬ分注し、３７℃で１時間インキュベートした。その後、前述と同様に３回洗浄し、ＡＢＴＳ溶液（クエン酸バッファー５ｍＬ、ＡＢＴＳ（和光）１ｍｇ、過酸化水素水３．３μＬ）を各ウェルに１００μＬ添加し、室温で５－３０分間静置した後、吸光度（ＯＤ４１５ｎｍ）を測定した。なお、ＥＬＩＳＡにおいて、ポジティブコントロールとしてｒａｔ抗血清Ｎｏ．２（×５０００、×２０００）（５０μＬ）、ネガティブコントロールとしてＧＩＴ－ＨＡＴ培地（５０μＬ）を用いた。
　１次スクリーニングの結果、ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質抗原に対する陽性クローン１６／２３３を得た。
（５．２次スクリーニング）
　１次スクリーニングで得られた１６の陽性クローンを用いて、ＥＬＩＳＡ法による２次スクリーニングを行った。
　２次スクリーニングのＥＬＩＳＡ用抗原タンパク質液の調製は以下の通り行った。
　ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質は、ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌとして大腸菌株Ｏｒｉｇａｍｉ（ＤＥ３）を用いて、前述同様に発現させた。
　ＫＩＲ２ＤＬ１タンパク質は、カイコを用いて発現させた。より具体的には、ｐＦａｓｔＢａｃベクター（Ｔｎ７部位特異的トランスポジションに使用できるベクター）にＫＩＲ２ＤＬ１細胞外領域（塩基配列：配列番号２１、アミノ酸配列：配列番号２２）を導入したプラスミドを、自作ＤＨ１０Ｂａｃ　ＢｍＮＰＶ　ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ　ｃｅｌｌ（Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ　ｌａｒｇｅ－ｓｃａｌｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｌａｒｖａｅ　ａｎｄ　ｐｕｐａｅ　ｏｆ　ｓｉｌｋｗｏｒｍ　ｂｙ　Ｂｏｍｂｙｘ　ｍｏｒｉ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓ　ｖｉｒｕｓ　ｂａｃｍｉｄ　ｓｙｓｔｅｍ．Ｍｏｔｏｈａｓｈｉ　Ｔ，　Ｓｈｉｍｏｊｉｍａ　Ｔ，Ｆｕｋａｇａｗａ　Ｔ，Ｍａｅｎａｋａ　Ｋ，Ｐａｒｋ　ＥＹ．Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ｒｅｓ　Ｃｏｍｍｕｎ．２００５　Ｊａｎ　２１；３２６（３）：５６４－９．で既報のＢｍＮＰＶのバクミドをＤＨ１０Ｂに導入したもの）にトランスポジションし、テトラサイクリン及びゲンタマイシン含有培地中で培養し、その後、寒天培地上に撒き、３７℃で培養した。コロニーを釣菌し、コロニーＰＣＲを行った。ＰＣＲ溶液を以下の通り調製し、プライマーとして、Ｆｏｒｗａｒｄプライマー（５’－ｇｔｔｔｔｃｃｃａｇｔｃａｃｇａｃ－３’、配列番号２３）及びＲｅｖｅｒｓｅプライマー（５’－ｃａｇｇａａａｃａｇｃｔａｔｇａｃ－３’、配列番号２４）を用いた。
　Ｇｏ　Ｔａｑ　ＤＮＡポリメラーゼ（プロメガ）　４μＬ
　Ｆｏｒｗａｒｄプライマー　　　　　　　　　　　１μＬ
　Ｒｅｖｅｒｓｅプライマー　　　　　　　　　　　１μＬ
　Ｍｉｌｌｉ　Ｑ　　　　　　　　　　　　　　　　２μＬ
　ＰＣＲの条件は、９５℃５分間、９５℃３０秒間－５０℃３０秒間－７２℃３分３０秒間×２５サイクル、７２℃１０分間、４℃×∞であった。陽性のコロニーをカナマイシン及びゲンタマイシン含有培地に植え、３７℃で一晩培養した。培養した菌を集菌し、バクミドを、Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｍｉｄｉ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて精製した。精製したバクミド１μｇ（Ｍｉｌｌｉ　Ｑ　５０μＬ中）に、ＤＭＲＩＥ－Ｃ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）３μＬを加え、５齢のカイコ（愛媛蚕種株式会社）に接種した。接種６日後、カイコを解剖して体液及び脂肪体を回収し、Ｎｉ　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　６　Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いてＨｉｓ－ｔａｇタンパク質精製を行い、タンパク液（ＫＩＲ２ＤＬ１）を得た。抗原液のタンパク質濃度は、５０ｎｇ／５０μＬであった。
　ＥＬＩＳＡは、１次スクリーニングと同様に行った。ただし、２次抗体としてａｎｔｉ－ｒａｔ　ＩｇＧ－ＨＲＰを０．１％Ｔｗｅｅｎ２０－ＰＢＳ（－）で１／３０００希釈したものを用い、ポジティブコントロールとしてｒａｔ抗血清Ｎｏ．２（×５０００、×２０００、×１０００）（５０μＬ）を用いた。
　２次スクリーニングの結果、ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質抗原に対する陽性クローン１１／１６を得た。
（６．限界希釈）
　前述の通り得られた陽性クローンをスケールアップし、限界希釈を繰り返して、単クローン化した。
　限界希釈を以下の通り行った。細胞１個／１００μＬとなるように培養液を調製し、９６ウェルプレートの各ウェルに１００μＬずつ分注した。３７℃で培養し、コロニーが形成されたら、シングルクローンのウェルについて、前述の２次スクリーニングと同様にＥＬＩＳＡ法によるスクリーニングを行い、陽性クローンをスケールアップした。その後、前述同様の限界希釈を再度行い、ＫＩＲ２ＤＳ１タンパク質抗原に対する陽性クローン１１×２＝２２クローンをストックした。
（７．抗体の精製）
　前述の通り得られた２２クローンを各々精製した。
　抗体の精製を以下の通り行った。培養していたハイブリドーマ（５０ｍＬ／７５ｃｍ２フラスコ）について、馴化を経た場合、培養液２０ｍＬをＨｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地（ＧＩＢＣＯ、ライフテクノロジーズ）３０ｍＬに加え、３７℃で細胞が増えるまで培養した後、１２００ｒｐｍで３分間遠心することで細胞を集めて、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地４０ｍＬ中で培養した。一方、馴化を経ない場合、ハイブリドーマの培養液５０ｍＬを、１２００ｒｐｍで３分間遠心することで細胞を集め、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地１０ｍＬで洗い、再び遠心して細胞を集めて、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地４０ｍＬ中で培養した。培養上清をシリンジタイプのフィルター（０．４５μｍ）を用いて大きな粒子を除去した後、Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｇカラム　Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　４Ｆａｓｔ　Ｆｌｏｗ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）（５００μＬ）を用いたアフィニティークロマトグラフィーより精製を行った。
（実施例２）
　実施例１にて単クローン化したハイブリドーマ産生モノクローナル抗体（２２クローン）について、ＥＬＩＳＡ及び表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法により、細胞外ドメインの相同性が高いＫＩＲファミリータンパク質ＫＩＲ２ＤＳ１、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３に対する結合特異性を検証した。
　ＥＬＩＳＡを前述同様に３回行った。ただし、１次抗体、２次抗体、検出系等については、以下の通りである。なお、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２、ＫＩＲ２ＤＬ３のタンパク液（抗原）については、前述同様のｐＧＭＴ７ベクターにＫＩＲ２ＤＳ２細胞外領域（塩基配列：配列番号２５、アミノ酸配列：配列番号２６）、ＫＩＲ２ＤＬ２細胞外領域（塩基配列：配列番号２７、アミノ酸配列：配列番号２８）、又はＫＩＲ２ＤＬ３細胞外領域（塩基配列：配列番号２９、アミノ酸配列：配列番号３０）を導入したプラスミドを、大腸菌（ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ）にトランスフォーメーションし、前述同様に得た。
（ＥＬＩＳＡ－１、ＥＬＩＳＡ－２）
　抗原：５０ｎｇ／５０μＬ（／ｗｅｌｌ）
　１次抗体：精製抗体（１／１００）５０μＬ／ｗｅｌｌ
　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ－１：ラット抗血清（×１０００、２０００、５０００）
　ｃｏｎｔｒｏｌ：精製前抗体（２Ｂ７Ｃ２‐Ｂ３）（培養上清（ＧＩＴ）、精製時のＦｌｏｗ　Ｔｈｒｏｕｇｈ）
　ｎｅｇａｔｉｖｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ：０．１Ｍ　Ｇｌｙｃｉｎｅ－ＨＣｌ
　（抗体精製時にｅｌｕｔｉｏｎ　ｂｕｆｆｅｒとして使用、中和済み）
　２次抗体：ａｎｔｉ－ｒａｔ　ＩｇＧ－ＨＲＰ（×３０００）５０μＬ／ｗｅｌｌ
　検出系：ＡＢＴＳ（４１５ｎｍ）
（ＥＬＩＳＡ－３）
　抗原：５０ｎｇ／５０μＬ（／ｗｅｌｌ）
　１次抗体：精製抗体（原液）５０μＬ／ｗｅｌｌ
　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ－１：ラット抗血清（×１０００、２０００、５０００）
　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ－２：精製抗体（１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１）（×１００）
　ｎｅｇａｔｉｖｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ：０．１Ｍ　Ｇｌｙｃｉｎｅ－ＨＣｌ（抗体精製時にｅｌｕｔｉｏｎ　ｂｕｆｆｅｒとして使用、中和済み）
　２次抗体：ａｎｔｉ－ｒａｔ　ＩｇＧ－ＨＲＰ（×３０００）５０μＬ／ｗｅｌｌ
　検出系：ＡＢＴＳ（４１５ｎｍ）
　ＳＰＲを以下の通り行った。まず、ＫＩＲ２ＤＳ１及びＫＩＲ２ＤＬ１をＣ末端特異的にビオチン化し（Ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｂｕｆｆｅｒ：５０ｍＭ　Ｄ－ｂｉｏｔｉｎ、１００ｍＭ　ＡＴＰ、１５μＭＢｉｒＡ）、ゲルろ過クロマトグラフィー（Ｓｕｐｅｒｄｅｘ７５）によりＫＩＲ２ＤＳ１及びＫＩＲ２ＤＬ１と、ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｂｕｆｆｅｒ内の残存ビオチンと、に各々分離した。ＳＰＲ測定には、Ｂｉａｃｏｒｅ３０００（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を使用し、ＫＩＲと作製した抗体の表面プラズモン共鳴実験を行った（測定条件：Ｂｉｏｔｉｎ　ｃａｐｔｕｒｅ　ｋｉｔ　ＣＡＰ　ｃｈｉｐ（ＧＥ　Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）、ＨＢＳ－ＥＰｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ　ＨｅｐｅｓｐＨ７．５、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、３．４ｍＭ　ＥＤＴＡ、０．００５％Ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ　Ｐ２０）、２５℃）。抗体はハイブリドーマ培養上清からプロテインＧカラムによって精製したものをＨＢＳ－ＥＰにｂｕｆｆｅｒ置換して（限外濾過により）使用した。チップはＣＡＰチップを使用し、Ｂｉｏｔｉｎ　ｃａｐｔｕｒｅ　ｋｉｔ内のＳＡを固定化したチップ上にビオチン化ＫＩＲ２ＤＳ１、ＫＩＲ２ＤＬ１とネガティブコントロールであるＢＳＡを固定化した。次に、ランニングバッファーであるＨＢＳ－ＥＰに溶解した各抗体（３５μＬ）を２μＬ／分で流した。
　結果を表３に示す。表３中、“○”は該当するＫＩＲファミリータンパク質と結合したことを表し、“×”は該当するＫＩＲファミリータンパク質と結合しなかったことを表す。結合特異性の評価を行った２２クローンのうち、１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４、３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０、３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６、５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３、及び５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４の８クローンについては、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３には結合せず、ＫＩＲ２ＤＳ１のみに特異的に結合することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　これら８クローンのＥＬＩＳＡの結果を図１－２に、ＳＰＲの結果を図３－４に示す（図３－４中、実線：ＫＩＲ２ＤＳ１、点線：ＫＩＲ２ＤＬ１、灰色線：ＢＳＡ）。ＥＬＩＳＡの結果とＳＰＲの結果とは一致しており、これら８クローンは、ＫＩＲ２ＤＬ１、ＫＩＲ２ＤＳ２、ＫＩＲ２ＤＬ２及びＫＩＲ２ＤＬ３には結合せず、ＫＩＲ２ＤＳ１のみに特異的に結合することが示された。
　なお、１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１、及び１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４を産生したハイブリドーマ（１Ｃ７＿ＫＩＲ２ＤＳ１）、３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０及び３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６を産生したハイブリドーマ（３Ｅ１１Ａ５＿ＫＩＲ２ＤＳ１）、並びに５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３及び５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４を産生したハイブリドーマ（５Ｂ１２Ｄ２＿ＫＩＲ２ＤＳ１）は、独立行政法人製品評価技術基盤機構（ＮＩＴＥ）特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（日本国２９２－０８１８千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に２０１４年５月９日（寄託の日付）付けで受託され、その後、ブタペスト条約の下での国際寄託に移管され（２０１５年７月８日付けで移管請求を受領）、各々、受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３、受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５及び受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４が付与されている（２０１５年７月２９日付けで受託証発行）。
（実施例３）
　実施例２で得られたモノクローナル抗体８クローンのＶＬ、ＶＨのクローニングを行い、ＶＨ、ＶＬのＣＤＲ配列を決定した。
　ハイブリドーマ（１Ｃ７＿ＫＩＲ２ＤＳ１、３Ｅ１１Ａ５＿ＫＩＲ２ＤＳ１及び５Ｂ１２Ｄ２＿ＫＩＲ２ＤＳ１）より、ＴＲＩＺＯＬ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてＲＮＡを抽出し、ＢｃａＢＥＳＴ　ＲＮＡ　ＰＣＲ　Ｋｉｔ　Ｖｅｒ．１．１（タカラバイオ社）を用いてＲＴ反応を行い、ＰＣＲサンプルとした。ＰＣＲは、表４及び表５に示すプライマーｍｉｘｔｕｒｅを用いて行った。より具体的には、ＶＬに関しては、Ｆｏｒｗａｒｄプライマー２６種（ＲａｔＶＬ－Ｆ０１～２６、配列番号３１～５６）、Ｒｅｖｅｒｓｅプライマー５種（ＲａｔＶＬ－Ｒ０１～０５、配列番号５７～６１）又は３種（ＲａｔＣＬ－Ｒ０１～０３、配列番号６２～６４）のプライマーｍｉｘｔｕｒｅを使用した（表４）。また、ＶＨに関しては、Ｆｏｒｗａｒｄプライマー２４種（ＲａｔＶＨ－Ｆ０１～２４、配列番号６５～８８）、Ｒｅｖｅｒｓｅプライマー４種（ＲａｔＶＨ－Ｒ０１～０４、配列番号８９～９２）のプライマーｍｉｘｔｕｒｅを使用した（表５）。ＰＣＲ反応条件は、下記の通りである（ＰＣＲにおいて、Ｅｘ　Ｔａｑ（タカラバイオ社）を用いた）。
　テンプレート（１／１０希釈）　　　　　　　１．０μＬ
　　１０×Ｅｘ　Ｔａｑ　ｂｕｆｆｅｒ　　　　５．０μＬ
　　ｄＮＴＰ（２．５ｍＭ　ｅａｃｈ）　　　　４．０μＬ
　Ｆｏｒｗａｒｄプライマー　ｍｉｘｔｕｒｅ　１．５μＬ
　Ｒｅｖｅｒｓｅプライマー　ｍｉｘｔｕｒｅ　１．０＋１．０μＬ
　　　　　　　　Ｅｘ　Ｔａｑ　　　　　　　　０．２５μＬ
　　　　　　　　水　　　　　　　　　　　　３７．６５μＬ
　　　　　　　　　　　　　　　　　　計　　５０．０μＬ
　ＰＣＲを、９５℃２分間、９５℃３０秒間－４５℃３０秒間－６８℃１分間×３５サイクル、６８℃１分間、４℃×∞で行った。その後、ｐＧＥＭ－Ｔ　Ｅａｓｙ　ｓｙｓｔｅｍ　Ｉ（プロメガ社）を用いてＴＡ　ｃｌｏｎｉｎｇを行った。ｃｏｌｏｎｙ　ＰＣＲによってインサートを確認した後、ミニプレップによりプラスミドＤＮＡを抽出し、シークエンスに供した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　ＣＤＲ配列解析の結果を表６に示す。ＶＬのＣＤＲ１～３の配列はいずれも一致していることが示された。一方、ＶＨについては、ＣＤＲ２の配列が一致していたが、ＣＤＲ１及び３の配列は表６の通りクローンによって異なっていた。ＣＤＲ配列解析の結果、１Ｃ７Ｂ８－Ｇ３、１Ｃ７Ｈ１２－Ｂ１、１Ｃ７Ｂ８－Ｅ１及び１Ｃ７Ｈ１２－Ｅ４は同一のクローンである可能性が高く、３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０及び３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６は同一のクローンである可能性が高く、５Ｂ１２Ｄ２－Ｂ３及び５Ｂ１２Ｄ２－Ａ４は同一のクローンである可能性が高いことが明らかとなった。
　また、ＲＡＴ　ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ　ＡＮＴＩＢＯＤＹ　ＩＳＯＴＹＰＩＮＧ　ＫＩＴ（コスモバイオ）を用いて各抗体のアイソタイプを判定した結果、３Ｅ１１Ａ５－Ｅ１０及び３Ｅ１１Ａ５－Ｇ６はＩｇＧ２ａ／κであり、それ以外はＩｇＧ２ｂ／κであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　なお、本発明は、本発明の広義の精神と範囲を逸脱することなく、様々な実施形態及び変形が可能とされるものである。また、上述した実施形態は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。つまり、本発明の範囲は、実施形態ではなく、特許請求の範囲によって示される。そして、特許請求の範囲内及びそれと同等の発明の意義の範囲内で施される様々な変形が、本発明の範囲内とみなされる。
　本出願は、２０１４年８月２９日に出願された日本国特許出願２０１４－１７６０９４号に基づくものであり、その明細書、特許請求の範囲、図面および要約書を含むものである。上記日本国特許出願における開示は、その全体が本明細書中に参照として含まれる。

Claims (19)

  1. 　ＣＤＲ１として配列番号１のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号２のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号３のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するＶＬと、
    　ＣＤＲ１として配列番号４若しくは配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７、配列番号８及び配列番号９からなる群より選択されるいずれか１つのアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するＶＨと、
    　を有する、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  2. 　ＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号４のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号７のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する、
    　ことを特徴とする請求項１に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  3. 　ＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号８のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する、
    　ことを特徴とする請求項１に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  4. 　ＶＨは、ＣＤＲ１として配列番号５のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ２として配列番号６のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有し、ＣＤＲ３として配列番号９のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１若しくは数個の保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有する、
    　ことを特徴とする請求項１に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  5. 　受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３であるハイブリドーマ、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５であるハイブリドーマ及び受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４であるハイブリドーマからなる群より選択される少なくとも１つのハイブリドーマにより産生される、ＫＩＲ２ＤＳ１に対するモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  6. 　キメラ抗体又はヒト化抗体である、
    　ことを特徴とする請求項１乃至５のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  7. 　請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントをコードする塩基配列を含む核酸。
  8. 　請求項７に記載の核酸を含む発現ベクター。
  9. 　請求項７に記載の核酸又は請求項８に記載の発現ベクターを含み、請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する形質転換体。
  10. 　請求項９に記載の形質転換体を培養し、培養物から抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを回収する工程を含む、請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントの産生方法。
  11. 　請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを産生する細胞。
  12. 　受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５３であるハイブリドーマ、受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５５であるハイブリドーマ及び受託番号がＮＩＴＥ　ＢＰ－０１８５４であるハイブリドーマからなる群より選択される少なくとも１つのハイブリドーマである、
    　ことを特徴とする請求項１１に記載の細胞。
  13. 　請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを含む医薬組成物。
  14. 　ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用する、
    　ことを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  15. 　ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用する、
    　ことを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  16. 　ＫＩＲ２ＤＳ１のアゴニストとして作用せず、かつ、ＫＩＲ２ＤＳ１のアンタゴニストとして作用しない、
    　ことを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメント。
  17. 　請求項１６に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントを細胞集団に投与する工程と、
    　前記細胞集団の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ａを測定する工程と、
    　候補物質を前記細胞集団に投与する工程と、
    　前記候補物質を前記細胞集団に投与した後の、ＫＩＲ２ＤＬ１の活性の度合Ｂを測定する工程と、
    　前記度合Ａと前記度合Ｂとを比較する工程と、
    　を含むＫＩＲ２ＤＬ１に結合する物質をスクリーニングするための方法。
  18. 　請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントと、被験者由来のサンプルと、を接触させる工程と、
    　前記モノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントが、前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１に結合するか否かを判定する工程と、
    　を含む、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１を検出するための方法。
  19. 　請求項１乃至６のいずれか１項に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合領域を含むフラグメントと、被験者由来のサンプルと、を接触させて、前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１量を測定する工程と、
    　前記サンプル中のＫＩＲ２ＤＬ１量を測定する工程と、
    　を含む、サンプル中のＫＩＲ２ＤＳ１とＫＩＲ２ＤＬ１とのポピュレーションを測定するための方法。
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