WO2015151201A1 - 増幅装置、増幅方法及び増幅システム - Google Patents

増幅装置、増幅方法及び増幅システム Download PDF

Info

Publication number
WO2015151201A1
WO2015151201A1 PCT/JP2014/059560 JP2014059560W WO2015151201A1 WO 2015151201 A1 WO2015151201 A1 WO 2015151201A1 JP 2014059560 W JP2014059560 W JP 2014059560W WO 2015151201 A1 WO2015151201 A1 WO 2015151201A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
amplification
unit
amplicon
amount
reaction
Prior art date
Application number
PCT/JP2014/059560
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
麻生川 稔
喜典 三品
靖夫 飯村
萩原 久
亮 山崎
Original Assignee
日本電気株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日本電気株式会社 filed Critical 日本電気株式会社
Priority to JP2016511221A priority Critical patent/JP6424885B2/ja
Priority to US15/129,276 priority patent/US20170106370A1/en
Priority to PCT/JP2014/059560 priority patent/WO2015151201A1/ja
Publication of WO2015151201A1 publication Critical patent/WO2015151201A1/ja

Links

Images

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L7/00Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
    • B01L7/52Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices with provision for submitting samples to a predetermined sequence of different temperatures, e.g. for treating nucleic acid samples
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502707Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by the manufacture of the container or its components
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/50273Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by the means or forces applied to move the fluids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0809Geometry, shape and general structure rectangular shaped
    • B01L2300/0816Cards, e.g. flat sample carriers usually with flow in two horizontal directions
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0861Configuration of multiple channels and/or chambers in a single devices
    • B01L2300/0864Configuration of multiple channels and/or chambers in a single devices comprising only one inlet and multiple receiving wells, e.g. for separation, splitting
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0861Configuration of multiple channels and/or chambers in a single devices
    • B01L2300/0867Multiple inlets and one sample wells, e.g. mixing, dilution
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0861Configuration of multiple channels and/or chambers in a single devices
    • B01L2300/087Multiple sequential chambers
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0887Laminated structure
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/12Specific details about materials
    • B01L2300/123Flexible; Elastomeric
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/18Means for temperature control
    • B01L2300/1805Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks
    • B01L2300/1822Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks using Peltier elements
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0475Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
    • B01L2400/0481Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure squeezing of channels or chambers
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00Moving or stopping fluids
    • B01L2400/06Valves, specific forms thereof
    • B01L2400/0633Valves, specific forms thereof with moving parts
    • B01L2400/0655Valves, specific forms thereof with moving parts pinch valves

Definitions

  • the present invention relates to an amplification device, an amplification method, and an amplification system.
  • the present invention relates to an amplification apparatus, an amplification method, and an amplification system that amplify a desired base sequence.
  • PCR Polymerase Chain Reaction
  • An apparatus for executing PCR that is, a thermal cycler has been developed (see, for example, Patent Document 1).
  • PCR protocols that are performed without adjusting the amount of template DNA (Deoxyribonucleic Acid)
  • the number of cycles is too many and amplicons are synthesized excessively, or conversely, the number of cycles is too few and the amount of amplicons May be insufficient. In such a case, a desired result may not be obtained.
  • the number of repeats in a repeat sequence is measured based on the base length of the amplicon. At this time, if the amplicon is synthesized excessively, the DNA band becomes smeared and the base length of the amplicon cannot be measured accurately.
  • the amount of amplicon is insufficient, the detection peak of the DNA band is too low and buried in noise, and the base length of the amplicon cannot be measured.
  • An object of the present invention is to provide an amplification device, an amplification method, and an amplification system that contribute to the synthesis of an appropriate amount of a desired base sequence.
  • the amplification unit that amplifies a desired base sequence and the amount of amplicon that is the base sequence amplified by the amplification unit are monitored.
  • An amplifying apparatus is provided that includes a monitoring unit and a control unit that terminates amplification processing by the amplifying unit based on the amount of amplicon monitored by the monitoring unit.
  • an amplification step of amplifying a desired base sequence by heating and cooling the sample solution a measurement step of measuring the amount of amplicon that is the amplified base sequence, and an amplification termination step of terminating amplification of the desired base sequence based on the measured amount of amplicon.
  • a microchip having a plurality of laminated elastic sheets and an amplification tank for amplifying a desired base sequence at an unbonded portion between the elastic sheets. And an amplification unit that amplifies the desired base sequence by heating and cooling the sample solution in the amplification tank, a monitoring unit that monitors the amount of amplicon in the amplification tank, and monitoring by the monitoring unit And an amplifying apparatus including a control unit that terminates the amplifying process by the amplifying unit based on the amount of amplicon to be provided.
  • an amplification device an amplification method, and an amplification system that contribute to amplifying a desired base sequence in an appropriate amount are provided.
  • the amplification device 300 includes an amplification unit 301, a monitoring unit 302, and a control unit 303.
  • the amplification device 300 starts amplification processing in the amplification unit 301 (step S01), and monitors the amount of amplicon that is the amplified base sequence in the monitoring unit 302 (step S02).
  • the amplification device 300 ends the amplification process by the amplification unit 301 based on the amount of amplicon monitored by the monitoring unit 302 under the control of the control unit 303.
  • the amplifying apparatus 300 continues the amplification process until the amount of amplicon reaches a preset threshold value (step S02, NO branch).
  • the amplification device 300 ends the amplification process (step S03).
  • the amplification device 300 can synthesize an amplicon to an appropriate amount even for a sample solution in which the amount of template DNA is not adjusted, and can synthesize an amplicon excessively. No. That is, the amplifying apparatus 300 can synthesize an amplicon in an appropriate amount.
  • the microchip control device 10 is a device that performs PCR and electrophoresis for DNA identification using microsatellite, and the number of sequence repeats is based on the base length of the amplicon measured by the microchip control device 10. It is measured.
  • a table 12 is disposed on a pedestal 11, and a temperature control unit 13 (also referred to as an amplification unit) and an electrophoresis unit 14 are disposed on the table 12. Further, the base 11 and the lid 15 are connected via a hinge 16 so that the lid 15 can be opened and closed.
  • a temperature control unit 13 also referred to as an amplification unit
  • electrophoresis unit 14 are disposed on the table 12. Further, the base 11 and the lid 15 are connected via a hinge 16 so that the lid 15 can be opened and closed.
  • the microchip 200 is placed at a predetermined position on the table 12 by fitting the pins 17A and 17B provided on the table 12 into the pin holes 217A and 217B provided on the microchip 200.
  • a part of the region where PCR is performed on the microchip 200 comes into contact with the temperature control unit 13.
  • the region where electrophoresis is performed in the microchip 200 comes into contact with the electrophoresis unit 14, and an electrode is provided in the electrode tank of the microchip 200 through the electrode hole provided in the microchip 200. 18 is inserted.
  • the details of the region for performing PCR and the region for performing electrophoresis of the microchip 200 will be described later.
  • the cover 15 is provided with a plurality of pressure holes 19.
  • the region of the lid 15 corresponding to these pressurizing holes 19 penetrates, and the pressurizing hole 19 is connected to the electromagnetic valve 22 via the tube 21. Further, by closing the lid 15, the pressure hole 19 and various control holes on the microchip 200 are connected.
  • the pressure hole 19 and the control hole are preferably in close contact with each other through a sealing mechanism such as an O-ring 20. Various control holes on the microchip 200 will be described later.
  • a pressure medium such as compressed air is sealed in the pressure accumulator 23, and the controller 24 controls the electromagnetic valve 22 so that the pressure medium is taken in and out of the control hole on the microchip 200 through the pressure hole 19. .
  • the internal pressure of the pressure accumulator 23 is controlled so as to maintain a predetermined pressure by a pressure sensor and a pump (not shown).
  • the lid 15 is provided with a DNA extraction unit 25 for extracting sample DNA or template DNA from the sample solution.
  • the DNA extraction unit 25 includes, for example, a neodymium magnet that adsorbs magnetic beads when sample DNA is extracted using magnetic beads (silica).
  • the DNA extraction unit 25 moves the neodymium magnet closer to the DNA extraction unit 244 or moves the neodymium magnet away from the DNA extraction unit 244 under the control of the controller 24.
  • Amplicon amount monitoring unit 27 is also arranged on lid 15. The configuration and function of the amplicon amount monitoring unit 27 will be described in detail later.
  • the temperature control unit 13 has a temperature control mechanism for executing PCR and denaturation treatment.
  • the temperature control unit 13 includes a temperature sensor, a heat transfer material, a Peltier element (thermoelectric element), a heat sink, and the like, acquires the temperature of the region where PCR is performed from the temperature sensor, and is based on the acquired temperature. By controlling the heat generation or cooling of the Peltier element, temperature control of the region where PCR is performed is realized.
  • the electrophoresis unit 14 is a mechanism for executing capillary electrophoresis and detection of a fluorescent label, and includes a fluorescent lamp detection mechanism, an excitation device such as a halogen lamp, a mercury lamp, and laser light, a filter, a camera, and the like.
  • a DC voltage was applied to the electrode 18 via the power supply unit 26 and capillary electrophoresis started, the electrophoresis unit 14 monitored the fluorescent label flowing in the capillary and showed the change in fluorescence luminance over time in a graph.
  • the detection result is output via the display unit 28.
  • the controller 24 can also be realized by a computer program that causes a computer mounted on the microchip control device 10 to execute the processing of the controller 24 described in detail later by using the hardware.
  • the microchip 200 includes a DNA extraction / PCR unit 240 and an electrophoresis unit 280 as shown in FIG.
  • the DNA extraction / PCR unit 240 includes a fourth elastic sheet 214 on the resin plate 215, a third elastic sheet 213 on the fourth elastic sheet 214, and a second elastic sheet 212 on the third elastic sheet 213.
  • the first elastic sheet 211 is laminated on the second elastic sheet 212, and the resin plate 216 is laminated on the first elastic sheet 211.
  • the elastic sheets 211 to 214 are bonded together except for a part.
  • the non-bonded portion can be expanded by injecting a medium such as liquid or air, and an intermediate layer is formed between the elastic sheets 211 to 214 at that time.
  • an intermediate layer between the first elastic sheet 211 and the second elastic sheet 212 is referred to as a first intermediate layer
  • an intermediate layer between the second elastic sheet 212 and the third elastic sheet 213 is referred to as a second intermediate layer.
  • the intermediate layer between the third elastic sheet 213 and the fourth elastic sheet 214 is referred to as a third intermediate layer.
  • the elastic sheets 211 to 214 have stretchability, heat resistance, and acid / alkali resistance.
  • the resin plates 215 and 216 are desirably hard enough to control the extension of the elastic sheets 211 to 214.
  • the resin plate 215 can also be provided on the base 11 of the microchip control device 10.
  • various control holes such as a pin hole 217A and a medium entrance / exit hole 220 are formed.
  • the electrophoresis unit 280 is provided with various control holes such as a pin hole 217B and an electrode hole 219. Note that FIG. 4 is partially simplified for clarity.
  • FIG. 5 is a schematic plan view showing an example of the DNA extraction / PCR section 240.
  • the DNA extraction / PCR unit 240 includes a sample solution injection unit 241, a washing buffer injection unit 242, and an elution buffer injection unit 243.
  • the DNA extraction unit 244, PCR A part 245 and a weighing part 246 are formed.
  • the PCR unit 245 is also referred to as an amplification tank.
  • the sample solution injection part 241 is connected to the flow path 250A.
  • the cleaning buffer injection part 242 is connected to the flow path 250B.
  • the elution buffer injection part 243 is connected to the flow path 250C.
  • the flow paths 250A to 250C merge at the merge point 248 and are connected to the DNA extraction unit 244 via the flow path 250D.
  • the DNA extraction unit 244 is also connected to the flow channel 250E.
  • the flow channel 250E is branched into a plurality of reaction paths (a sample solution is dispensed) at a branch point 249, and a plurality of PCR units are formed as the flow channel 250F. H.245.
  • Each PCR part 245 is connected to the weighing part 246 corresponding to each via the flow path 250G.
  • the weighing unit 246 is connected to the electrophoresis unit 280 via the flow path 250H.
  • the flow paths 250A to 250H and the like are non-adhesive portions between the first elastic sheet 211 and the second elastic sheet 212, and are formed by entering liquid or the like there. That is, a space 290 is provided between the fourth elastic sheet 214 and the resin plate 215, and the elastic sheet 214 is pushed down into the space 290 when the flow path 250 or the like is formed (see FIGS. 6 and 7). reference).
  • the reaction path means a single flow path from the flow path 250F through the PCR unit 245 to the sample flow path 281. In other words, “each reaction path” and “each PCR unit 245” are interpreted interchangeably.
  • the channels 250A, C, E, G Channel opening / closing portions 260A, C, E, and G are formed.
  • a flow path opening / closing portion 270B for the flow paths 250B, D, F, and H, D, F, and H are formed.
  • the flow path opening / closing section 260A has a medium flow path 261A on the upstream side of the flow path 250A (that is, the sample solution injection section 241 side), and the second elastic sheet 212, first The medium is connected to a pressure hole 19 provided in the lid 15 through a medium entrance / exit hole 220 ⁇ / b> A that penetrates the intermediate layer, the first elastic sheet 211, and the resin plate 216.
  • the flow path opening / closing section 270B has a medium flow path 271B on the upstream side of the flow path 250B (that is, the cleaning buffer injection section 242 side), and the third elastic sheet 213.
  • FIG. 5 only the medium flow path 261A, the medium entry / exit hole 220A, the medium flow path 271B, and the medium entry / exit hole 220B are shown, and the others are omitted.
  • the sample solution injection unit 241 is a through hole that penetrates the resin plate 216 and the first elastic sheet 211, and the sample solution is injected by an operator (manual operation or automatic injection unit) to cover Covered by film 241A.
  • the sample solution is a solution in which cells (eg, oral mucosa, blood, body fluid, etc.) collected from a subject are suspended in a lysis buffer (eg, SDS / LiOAc solution (sodium dodecyl sulfate / lithium acetate solution)).
  • a lysis buffer eg, SDS / LiOAc solution (sodium dodecyl sulfate / lithium acetate solution)
  • the sample solution injection part 241 is connected to the pressure hole 19 provided in the lid 15 via the cover film 241A and the O-ring 20.
  • the pressure hole 19 includes an O-ring 20, and the description of the O-ring 20 is omitted.
  • the microchip control device 10 injects a pressurized medium into the channel opening / closing sections 260C and E and the channel opening / closing section 270B to close the channels 250B, C, and E. Then, the pressurized medium is discharged from the channel opening / closing part 260A and the channel opening / closing part 270D to open the channels 250A, 250D. Then, as shown in FIG. 6B, the microchip control device 10 pushes the sample solution into the flow path 250A by applying a pressure medium to the sample solution injection unit 241 and pushing down the cover film 241A.
  • the washing buffer injection unit 242 has the same configuration as the sample solution injection unit 241 except that the channel opening / closing unit 270B for the channel 250B is arranged as the third intermediate layer, and the cleaning buffer is injected by the operator.
  • the washing buffer is, for example, a Tris (tris (hydroxymethyl) aminomethane) buffer.
  • the elution buffer injection unit 243 has the same configuration as the sample solution injection unit 241, and the elution buffer is injected by the operator.
  • the elution buffer is a buffer that elutes DNA from the DNA extraction unit 244 (specifically, magnetic beads). Furthermore, the amount of polymerase, dNTP mix (deoxyribonucleotide triphosphate mix), and amplicon that performs primer extension reaction is determined. Also includes fluorescent material for measurement.
  • the fluorescent material includes, for example, an incalator that emits fluorescence when incorporated into double-stranded DNA (so-called incalator method).
  • the fluorescent substance may be an oligonucleotide probe (so-called TaqMan probe method) in which the 5 ′ end is modified with a fluorescent substance and the 3 ′ end is modified with a quencher substance.
  • a chimeric probe comprising RNA and DNA and having the 5 ′ end modified with a fluorescent substance and the 3 ′ end modified with a quencher substance can be used (so-called cycling probe method).
  • the elution buffer further contains RNaseH (ribonuclease H).
  • the flow path opening / closing mechanism and the liquid transport mechanism by the microchip control device 10 will be described.
  • the microchip control device 10 circulates the liquid through the first flow path
  • the microchip control device 10 opens the first flow path by releasing the medium from the first flow path opening / closing section and contracting the first flow path opening / closing section.
  • control is performed to close the second flow path by injecting the medium into the second flow path opening / closing section and expanding the second flow path opening / closing section.
  • a liquid transport mechanism in the microchip 200 when the liquid filled in the liquid tank 240A is moved to the liquid tank 240B via the flow path 250Y will be described with reference to FIG.
  • the liquid tank 240A is formed between the first elastic sheet 211 and the second elastic sheet 212, and is connected to the flow paths 250X and 250Y.
  • a portion of the resin plate 216 corresponding to the liquid tank 240A penetrates to form a control hole, and a pressurized medium can be taken in and out of the upper part of the liquid tank 240A through a pressure hole 19A provided in the lid 15.
  • the liquid tank 240B is connected to the flow paths 250Y and 250Z, and a pressurized medium can be taken in and out of the upper part of the liquid tank 240B through the pressure hole 19B.
  • the flow paths 250X and Y are closed.
  • the microchip control device 10 first injects a pressurized medium into the flow channel opening / closing part 270Z to close the flow channel 250Z, and then the flow channel The flow path 250Y is opened by releasing the pressurized medium from the opening / closing part 260Y. Then, the microchip control device 10 applies a pressurized medium to the liquid tank 240A through the pressurized hole 19A. As a result, as shown in FIG. 7B, the liquid pushed out from the liquid tank 240A reaches the liquid tank 240B through the flow path 250Y, pushes up the first elastic sheet 211, and accumulates in the liquid tank 240B. .
  • the microchip control device 10 determines that the pressure applied to the liquid tank 240A exceeds the predetermined value and has discharged the liquid from the liquid tank 240A, as shown in FIG. A pressurized medium is injected into the flow path opening / closing part 260Y from the upstream side of the path 250Y (that is, the liquid tank 240A side). As a result, the liquid in the flow path 250Y is pushed out to the liquid tank 240B, and the liquid transport is completed. Thereafter, since it is no longer necessary to close the flow path 250X, the microchip control device 10 releases the pressurized medium from the flow path opening / closing part 270X.
  • the DNA extraction unit 244 is a mechanism provided for extracting DNA from the sample solution.
  • magnetic beads silicon are enclosed in the DNA extraction unit 244 in advance, and sample DNA is extracted from the sample solution under the control of the controller 24 and the DNA extraction unit 25.
  • the microchip control device 10 has a neodymium magnet as the DNA extraction unit 25, and the DNA extraction unit 244 is pre-encapsulated with magnetic beads coated with silica.
  • the microchip control apparatus 10 moves the sample solution injected into the sample solution injection unit 241 to the DNA extraction unit 244, and adsorbs the DNA onto magnetic beads (silica) enclosed in the DNA extraction unit 244. Then, the magnetic beads are washed with the washing buffer in the washing buffer injection unit 242 to extract the DNA.
  • the microchip control device 10 discharges the sample solution and the washing buffer from a drain port (not shown). At this time, the magnetic beads are adsorbed by the neodymium magnet, so that the magnetic beads are put together with the sample solution and the washing buffer. Is prevented from being discharged.
  • the DNA extraction method can be modified, for example, by increasing the number of washings with reference to various protocols. Further, the DNA extraction method is not limited to the method using magnetic beads, and for example, a method using a column may be adopted.
  • the PCR unit 245 executes PCR under temperature control by the temperature control unit 13. Specifically, a primer set is enclosed in the PCR unit 245 in advance, and a desired base sequence in the sample DNA (template DNA) extracted by the DNA extraction unit 244 is amplified by the action of a polymerase contained in the elution buffer. The At that time, an incalator is incorporated into the double-stranded amplicon which is a PCR product.
  • the incalator is a fluorescent substance that emits fluorescence only when it is incorporated into double-stranded DNA. Therefore, the luminance of the fluorescence emitted from the incalator is an index indicating the amount of amplicon.
  • the resin plate 215 corresponding to the PCR unit 245 penetrates through the elastic sheets 212 to 214 so that the temperature control by the temperature control unit 13 can be performed.
  • the temperature control unit 13 is embedded in a region of the table 12 and includes a temperature sensor 131, a heat transfer material 132, a Peltier element 133, and a heat dissipation plate 134.
  • the temperature sensor 131 is connected to the controller 24, measures the temperature of the PCR unit 245, and transmits it to the controller 24.
  • One surface of the heat transfer material 132 is in contact with the temperature application surface of the Peltier element 133, and the surface of the heat transfer material 132 opposite to the Peltier element 133 is exposed from the surface of the table 12.
  • One surface of the exposed heat transfer material 132 comes into contact with the microchip 200, and the temperature of the heat transfer material 132 is transmitted to the PCR unit 245 through the elastic sheets 212 to 214.
  • the power line of the Peltier element 133 is connected to the controller 24.
  • the controller 24 acquires the temperature of the PCR unit 112 from the temperature sensor 131, and determines the direction of the current supplied to the Peltier element 133 based on the acquired temperature. As a result, the temperature of the Peltier element 133 is controlled. That is, the Peltier element 133 is means for heating and cooling the sample solution in the PCR unit 245.
  • the pressure hole 19 is also provided in the resin plate 216 corresponding to the PCR unit 245, and the pressure hole 19 is connected to the electromagnetic valve 22 through the tube 21.
  • an amplicon amount monitoring unit 27 is disposed in the hollow portion of the pressurizing hole 19 and the tube 21, and the pressurizing medium enters and exits through the outside of the amplicon amount monitoring unit 27.
  • the amplicon amount monitoring unit 27 includes a light source 27 a that emits excitation light and a light receiving unit 27 b that receives fluorescence, and is connected to the controller 24.
  • the light source 27a is a means for emitting light for exciting a fluorescent substance whose luminance changes with amplification of the amplicon, and includes, for example, an argon ion laser, a filter that passes only a specific wavelength, and the like.
  • the light receiving unit 27 b includes an image sensor such as a CCD (Charge Coupled Device), measures the luminance of the received light, and outputs the measured value to the controller 24.
  • the light source 27a and the light receiving unit 27b are arranged so that the laser light emitted from the light source 27a does not coincide with the optical axis of the fluorescence received by the light receiving unit 27b.
  • the amplicon amount monitoring unit 27 is not floated inside the pressure hole 19 and the tube 21 of the lid 15, but by a plurality of support rods extending from the lid 15. It is fixed. It is desirable that the gap between the support bars be wide enough to prevent the pressurizing medium from entering and exiting through the pressurizing hole 19. Further, when the tube 21 is penetrated and a control line for controlling the amplicon amount monitoring unit 27 is passed, it is desirable to reinforce the pressurized medium so as not to leak from the through hole.
  • the amplicon amount monitoring unit 27 (light source 27a, A light receiving part 27b) may be arranged.
  • the light source 27 a and the light receiving unit 27 b may be configured to receive the fluorescence by irradiating the sample solution in the PCR unit 245 with laser light from an oblique direction inside the lid 15.
  • holes 216A and 216B can be provided on the resin plate 216 so that the laser beam can reach the sample solution in the PCR unit 245, thereby ensuring an optical path.
  • cover 15 and ensures an optical path may be sufficient.
  • various arrangements of the amplicon amount monitoring unit 27 can be considered.
  • the laser light or the like irradiated from the light source 27a reaches the sample solution in the PCR unit 245, and the fluorescence enters the light receiving unit 27b. Any configuration can be used.
  • the configuration in which the temperature control unit 13 including the Peltier element 133 is disposed on the lower side of the microchip 200 has been described with reference to FIGS. 15 side). Or you may arrange
  • the flow path 250G that is the downstream path connected to the PCR unit 245 is closed, and the flow path 250F that is the upstream path connected to the PCR unit 245 is opened.
  • the sample solution is moved to the PCR unit 245 by applying a pressurized medium to the DNA extraction unit 244. Then, as shown in FIG.
  • the channel 250F which is a downstream path connected to the PCR unit 245, is closed, and the solution is confined in the PCR unit 245. . It is not essential to close the flow path 250F. For example, a state in which a pressurized medium is applied to the DNA extraction unit 244 may be maintained, and a part of the solution may remain in the flow path 250F.
  • a fifth elastic sheet 210 is added on the first elastic sheet 211, and a flow path is opened and closed above the PCR unit 245.
  • a liquid tank opening / closing part 272 having the same configuration as the parts 260 and 270 is provided. Since the PCR unit 245 is crushed by injecting the pressurized medium into the liquid tank opening / closing unit 272, the solution can be discharged from the PCR unit 245.
  • processing such as providing a large number of fine through holes in the temperature control unit 13 arranged on at least one of the upper side and the lower side, and applying a pressurized medium from the through holes to move the sample solution from the PCR unit 245 To be possible.
  • the shape of the heat radiating plate 134 and the like is appropriately changed so as not to prevent the application of the pressure medium.
  • the configuration is as follows.
  • the temperature control unit 13 on the lid 15 side is configured to be slidable up and down under the control of the controller 24.
  • the temperature control unit 13 on the lid 15 side is pushed down until it comes into contact with the elastic sheet 211 and transmits the temperature of the heat transfer material 132 to the PCR unit 245 via the elastic sheet 211.
  • the temperature control unit 13 may be further pushed down to compress the PCR unit 245 as shown in FIG. 11 to 13, illustration of control lines connecting the temperature control unit 13, the amplicon amount monitoring unit 27, and the controller 24 is omitted.
  • PCR initiation reaction is, for example, a hot start process for activating a polymerase.
  • the controller 24 controls the temperature control unit 13 to execute a cycle reaction (step S102).
  • the cycle reaction includes, for example, a step of performing a denature reaction that denatures double-stranded DNA into single-stranded DNA, a step of performing an annealing reaction that hybridizes a primer to template DNA, and a step of performing a primer extension reaction using a polymerase. It is a reaction in which a series of heating and cooling processes are repeatedly executed.
  • the controller 24 controls the amplicon amount monitoring unit 27 to measure the amplicon amount, and determines whether or not the amplicon amount has reached a preset threshold value. (Step S103). Specifically, the controller 24 instructs the amplicon amount monitoring unit 27 to perform laser irradiation toward the PCR unit 245. The amplicon amount monitoring unit 27 irradiates the PCR unit 245 with laser from the light source 27a. Further, the amplicon amount monitoring unit 27 receives the fluorescence emitted from the incalator by the excitation by the laser irradiation, and outputs it to the controller 24 as the fluorescence luminance. The controller 24 compares the measured value of the fluorescence luminance with a pre-registered allowable lower limit threshold value, and determines whether or not the amount of amplicon has reached the threshold value.
  • step S103 NO branch
  • the controller 24 controls the temperature control unit 13 to continue the cycle reaction (step S102).
  • step S104 the controller 24 controls the temperature control unit 13 to execute the final extension reaction (step S104).
  • the final extension reaction is, for example, a reaction for adenylating an amplicon (maintaining 60 ° C. for 5 minutes).
  • the controller 24 controls the electromagnetic valve 22 to move a part of the liquid in the PCR unit 245 to the weighing unit 246 (step S105), and ends the PCR.
  • the controller 24 heats and cools a solution containing sample DNA and the like, thereby amplifying a desired base sequence and a measuring step for measuring the amount of amplicon that is the amplified base sequence. And an amplification termination step of terminating amplification of a desired base sequence based on the measured amount of amplicon. More specifically, the controller 24 executes a determination process for determining whether or not the measured amplicon amount has reached a preset threshold value, and then the measured amplicon amount is preset. When reaching the threshold value, amplification of the desired base sequence is terminated.
  • the PCR conditions can be adjusted according to the length and base sequence of the DNA to be amplified.
  • the primer set is a primer set for amplifying DNA, that is, a DNA test, and the time for annealing reaction can be adjusted according to the TM (melting temperature) value of the primer. .
  • the weighing unit 246 shown in FIG. 5 is a mechanism for weighing a solution containing an amplicon.
  • the weighing unit 246 is configured to be smaller than the PCR unit 245, and the microchip control device 10 allows the solution in the PCR unit 245 to move completely to the weighing unit 246 during liquid transport of the PCR unit 245.
  • the flow path 250G is closed in a state where it is not.
  • the microchip control device 10 weighs the solution containing the amplicon by leaving a part of the solution in the PCR unit 245.
  • the electrophoresis unit 280 includes a sample channel 281, a capillary 282, and a polymer injection unit 283 as shown in FIG.
  • the microchip control device 10 executes electrophoresis by flowing a current through the capillary 282 via the electrode 18, monitors the label flowing in the capillary by the electrophoresis unit 14, and graphs changes in fluorescence luminance over time.
  • the detection results shown in (1) are output via the display unit 28.
  • the microchip control device 10 executes a DNA extraction process in the DNA extraction unit 25 as shown in FIG. 16 (step S201).
  • the microchip control device 10 executes PCR (step S202) and weighing process (step S203). Then, the microchip control apparatus 10 performs capillary electrophoresis and label detection processing in the electrophoresis unit 14 (step S204), and outputs a detection result via the display unit 28 (step S105).
  • the microchip control device 10 uses the amplicon amount monitoring unit 27 to amplify the amount of amplicon every time the cycle reaction is completed. To monitor. As a result, it is possible to amplify the amplicon to an appropriate amount even for a sample solution whose DNA amount is unknown. For example, when this device is used for human identification, it is possible to increase the amplicon to an appropriate amount even for a sample solution whose DNA amount is unknown, which is directly collected from a provider. Can be obtained.
  • the microchip 200 includes a plurality of PCR units 245, and the microchip control device 10 defines the pair of the temperature control unit 13 and the amplicon amount monitoring unit 27 as the PCR unit 245. A plurality of pairs are provided so as to correspond to each. Then, the controller 24 performs a final reaction on the pair of the temperature control unit 13 and the amplicon amount monitoring unit 27 in which the amplicon amount has reached a preset threshold value. On the other hand, the amplification processing by the temperature control unit 13 is continued for the pair of the temperature control unit 13 and the amplicon amount monitoring unit 27 in which the amount of the amplicon does not reach the preset threshold value. When the final extension reaction of all reaction paths is completed, the controller 24 moves the solution in the PCR unit 245 to the weighing unit 246.
  • the microchip 200 includes a plurality of reaction paths, and includes a PCR unit 245 and a final reaction unit 247 for executing a final reaction for each reaction path. .
  • the microchip 200 includes a final reaction unit 247 between the PCR unit 245 and the weighing unit 246 for each reaction path.
  • the reaction path means a straight line from the flow path 250F through the PCR unit 245 to the sample flow path 281 as described above.
  • the microchip control device 10 further includes a final reaction unit 29 that heats the sample solution in the final reaction unit 247 and executes a final reaction.
  • the microchip control device 10 includes a final reaction unit 29 between the temperature control unit 13 and the electrophoresis unit 14 as shown in FIG.
  • the temperature control unit 13 is configured to collectively heat and cool the sample solution in each PCR unit 245, and performs amplification reactions of a plurality of reaction paths in parallel.
  • the amplicon amount monitoring unit 27 is arranged in association with each PCR unit 245, and individually monitors the amount of amplicon in the PCR unit 245.
  • the final reaction unit 29 includes a heat transfer material, a Peltier element (thermoelectric element), a heat radiating plate, and the like, and is provided on the base 11 in the same manner as the temperature control unit 13.
  • the sample solution in the final reaction unit 247 is 60 ° C. To carry out the final reaction.
  • the controller 24 moves the sample solution of the PCR unit 245 into the final reaction unit 247 with respect to the reaction path in which the amount of amplicon has reached the preset threshold value, and the amount of amplicon becomes the preset threshold value.
  • the amplification process is continued for the reaction path that has not reached.
  • the controller 24 repeats a series of heating and cooling processes and measurement of the amount of amplicons until the amount of amplicons in all reaction paths reaches a threshold value, and moves the solutions in all reaction paths to the final reaction unit 247. After the elapsed time has reached a preset final reaction time, the solution in the final reaction unit 247 is moved to the weighing unit 246.
  • PCR is not limited to being performed on a microchip.
  • the contents of the present disclosure can be applied to PCR performed in a laboratory or the like. That is, the amplicon amount monitoring unit 27 may be mounted on the thermal cycler and programmed to increase or decrease the number of cycles according to the amplicon amount.
  • sample conditions, PCR conditions, amplicon amount measurement conditions, electrophoresis conditions, etc. can be variously changed.
  • the sample solution to be analyzed simultaneously is not limited to one obtained from the same subject, and may be one obtained from a plurality of subjects.
  • the amount of template DNA contained in the sample solution varies from sample solution to sample solution.
  • PCR conditions can be variously changed according to the types of sequences to be amplified, primers, polymerase, and the like.
  • RTPCR Real-time polymerase chain reaction
  • a double-stranded amplicon is electrophoresed, but electrophoresis may be performed after denaturation into a single strand.
  • the microchip 200 is provided with a denaturing unit between the PCR unit 245 and the weighing unit 246.
  • the microchip control device 10 includes a temperature control unit that controls the temperature of the denaturing unit to 98 ° C., for example. In this way, single-stranded amplicons can be electrophoresed.
  • the microchip 200 may be configured so that a denaturing agent such as formamide is added to the sample solution in the denaturing part.
  • [Appendix 1] The amplifying apparatus according to the first aspect described above.
  • Appendix 2 The amplifying apparatus according to appendix 1, wherein the control unit ends the amplifying process by the amplifying unit when the amount of the amplicon monitored by the monitoring unit reaches a preset threshold value.
  • Appendix 3 A plurality of pairs of the amplification unit and the monitoring unit; The control unit ends the amplification process by the amplification unit for the pair of the amplification unit and the monitoring unit in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold value, and performs a final reaction for heating the amplicon.
  • a microchip comprising a plurality of reaction paths, an amplification tank for amplifying the desired base sequence, and a final reaction tank for performing a final reaction for each reaction path, The amplification unit performs the amplification reactions of the plurality of reaction paths in parallel by heating and cooling the sample solutions in the amplification tanks of the plurality of reaction paths in a lump.
  • the monitoring unit individually monitors the amount of amplicon in the amplification tank for each of the plurality of reaction paths,
  • the control unit moves the sample solution in the amplification tank to the final reaction tank with respect to the reaction path in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold, and the amount of the amplicon is set to a predetermined threshold.
  • the amplification device according to appendix 1 or 2, further comprising a final reaction unit that performs a final reaction by heating the sample solution in the final reaction tank.
  • the amplification unit amplifies the desired base sequence by a cycle reaction that repeats a series of heating and cooling processes, The control unit determines whether to end or continue the amplification process by the amplification unit based on the amount of amplicon monitored by the monitoring unit each time the series of heating and cooling processes is completed once.
  • the amplification device according to any one of appendices 1 to 4, wherein the determination is made.
  • the monitoring unit is A light source that emits light that excites a fluorescent substance whose luminance changes with amplification of the amplicon; An amplifying apparatus according to any one of appendices 1 to 5, comprising means for receiving fluorescence emitted from the fluorescent substance.
  • the amplification unit includes a thermoelectric element that heats and cools the sample solution, and a temperature sensor that measures the temperature of the sample solution, The amplification device according to any one of appendices 1 to 6, wherein the control unit performs temperature control of the thermoelectric element based on a temperature measured by the temperature sensor.
  • the amplification device according to any one of appendices 1 to 6, wherein the control unit performs temperature control of the thermoelectric element based on a temperature measured by the temperature sensor.
  • This is the same as the amplification method according to the second aspect described above.
  • Appendix 9 A determination step of determining whether the measured amount of amplicon has reached a preset threshold; The amplification method according to appendix 8, wherein the amplification termination step ends amplification of the desired base sequence when the measured amount of amplicon reaches a preset threshold value.
  • the amplification step individually amplifies a desired base sequence by individually heating and cooling sample solutions dispensed into a plurality of reaction paths,
  • the measurement step measures the amount of the amplicon for each reaction path,
  • the determination step determines whether or not the measured amount of amplicon has reached a preset threshold for each reaction path,
  • the amplification end step ends amplification of the desired base sequence for the reaction path in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold value, and the amount of the amplicon reaches the preset threshold value.
  • the amplification method according to appendix 9 wherein amplification of the desired base sequence is continued with respect to a reaction path that is not present.
  • the amplification step amplifies a desired base sequence by collectively heating and cooling the sample solution dispensed into a plurality of reaction paths,
  • the measurement step measures the amount of the amplicon for each reaction path,
  • the determination step determines whether or not the measured amount of amplicon has reached a preset threshold for each reaction path,
  • the amplification end step ends amplification of the desired base sequence for a reaction path in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold value, and the measured amplicon amount is a preset threshold value.
  • the amplification method according to appendix 9 further including a step of performing a final reaction of heating the amplicon after the amplification of the desired base sequence.
  • Appendix 12 This is the same as the amplification system according to the third aspect described above.
  • Appendix 13 The amplification system according to appendix 12, wherein the control unit ends the amplification process by the amplification unit when the amount of the amplicon monitored by the monitoring unit reaches a preset threshold value.
  • the microchip has a plurality of the amplification tanks,
  • the amplification device has a plurality of pairs of the amplification unit and the monitoring unit so as to correspond to the amplification tank,
  • the control unit ends the amplification process by the amplification unit for the pair of the amplification unit and the monitoring unit in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold value, and heats the amplicon in the amplification tank
  • the amplification unit performs the final reaction to be performed, and the amplification process by the amplification unit is continued with respect to the pair of the amplification unit and the monitoring unit in which the amount of the amplicon does not reach a preset threshold value. Or 13 amplification systems.
  • the microchip includes a plurality of reaction paths, and each of the reaction paths includes the amplification tank and a final reaction tank for performing a final reaction,
  • the amplification apparatus further includes a final reaction unit that performs a final reaction by heating the sample solution in the final reaction tank,
  • the amplification unit performs the amplification reactions of the plurality of reaction paths in parallel by heating and cooling the sample solutions in the amplification tanks of the plurality of reaction paths in a lump.
  • the monitoring unit individually monitors the amount of amplicon in the amplification tank for each of the plurality of reaction paths,
  • the control unit moves the sample solution in the amplification tank to the final reaction tank with respect to the reaction path in which the amount of the amplicon has reached a preset threshold, and the amount of the amplicon is set to a predetermined threshold.
  • the amplification system according to appendix 12 or 13, wherein the amplification process by the amplification unit is continued with respect to a reaction path that has not reached A.
  • the amplification unit amplifies the desired base sequence by a cycle reaction that repeats a series of heating and cooling processes, The control unit determines whether to end or continue the amplification process by the amplification unit based on the amount of amplicon monitored by the monitoring unit each time the series of heating and cooling processes is completed once.
  • the amplification system according to any one of appendices 12 to 15, wherein the amplification system is determined.
  • the monitoring unit is A light source that emits light to excite a fluorescent material that is irradiated to the amplification tank and changes in luminance as the amplicon is amplified;
  • the amplification unit includes a thermoelectric element that heats and cools the sample solution, and a temperature sensor that measures the temperature of the sample solution, The amplification system according to any one of appendices 12 to 17, wherein the control unit performs temperature control of the thermoelectric element based on a temperature measured by the temperature sensor.
  • Amplification means for amplifying a desired base sequence by heating and cooling the sample; Measuring means for measuring the amount of amplicon that is an amplified base sequence; A program for causing a computer to control an amplification device comprising: A process of determining whether the measured amount of amplicon is an appropriate amount; When the amount of the measured amplicon is an appropriate amount, a process of terminating amplification by the amplification means; A program that executes This program can be recorded on a computer-readable storage medium.
  • the storage medium may be non-transient such as a semiconductor memory, a hard disk, a magnetic recording medium, an optical recording medium, or the like. That is, the present disclosure can be embodied as a computer program product.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

 アンプリコンを適量に増幅することに寄与する増幅装置を提供する。増幅装置は、増幅ユニットと、監視ユニットと、制御ユニットと、を備えている。増幅ユニットは、サンプル溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する手段である。監視ユニットは、増幅ユニットによって増幅される塩基配列であるアンプリコンの量を監視する手段である。制御ユニットは、監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づき、増幅ユニットによる増幅処理を終了する手段である。

Description

増幅装置、増幅方法及び増幅システム
  本発明は、増幅装置、増幅方法及び増幅システムに関する。特に、所望の塩基配列を増幅する増幅装置、増幅方法及び増幅システムに関する。
 PCR(Polymerase Chain Reaction)は、遺伝子工学分野などで行われる反応であり、所望の塩基配列を増幅してアンプリコンが合成される。そして、PCRを実行するための装置、すなわちサーマルサイクラーが開発されている(例えば、特許文献1を参照)。
特表2008-519600号公報
 テンプレートDNA(Deoxyribonucleic Acid)の量を調節せずに実行するPCRプロトコルでは、サイクル数が多過ぎてアンプリコンを過剰に合成してしまう場合や、逆に、サイクル数が少な過ぎてアンプリコンの量が不足する場合がある。このような場合には、所望の結果が得られないことがある。例えば、マイクロサテライトを利用したDNA鑑定では、アンプリコンの塩基長に基づいてリピート配列のリピート数が計測される。このときに、アンプリコンを過剰に合成し過ぎると、DNAバンドがスメア状になり、アンプリコンの塩基長を正確に測定できない。また、アンプリコンの量が不足した状態では、DNAバンドの検出ピークが低すぎてノイズに埋もれてしまい、アンプリコンの塩基長を測定できない。
 テンプレートDNAの量を調節するPCRプロトコルでは、予測されるアンプリコン量までアンプリコンを合成することができるが、テンプレートDNAの量を測定する手間がかかるため作業者にかかる負担が大きい。また、事件現場に残されたDNAを鑑定する時などは、取得可能なDNA量に制限があり、テンプレートDNAの量を調節できない場合もある。
 本発明は、所望の塩基配列を適量に合成することに寄与する増幅装置、増幅方法及び増幅システムを提供することを目的とする。
 本発明の第1の視点によれば、サンプル溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅ユニットと、前記増幅ユニットによって増幅される塩基配列であるアンプリコンの量を監視する監視ユニットと、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づき、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する制御ユニットと、を備えた増幅装置が提供される。
 本発明の第2の視点によれば、サンプル溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅工程と、増幅された塩基配列であるアンプリコンの量を測定する測定工程と、前記測定されたアンプリコンの量に基づき、前記所望の塩基配列の増幅を終了させる増幅終了工程と、を含む、増幅方法が提供される。
 本発明の第3の視点によれば、積層された複数の弾性シートを有し、前記弾性シート同士の間の未接着箇所に所望の塩基配列を増幅するための増幅槽が構成されるマイクロチップと、前記増幅槽内のサンプル溶液を加熱及び冷却することで、前記所望の塩基配列を増幅する増幅ユニットと、前記増幅槽内のアンプリコンの量を監視する監視ユニットと、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づき、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する制御ユニットとを備えた増幅装置と、を含む増幅システムが提供される。
 本発明の各視点によれば、所望の塩基配列を適量に増幅することに寄与する増幅装置、増幅方法及び増幅システムが、提供される。
一実施形態に係る増幅装置の構成を説明するための図である。 一実施形態に係る増幅装置の動作を説明するための図である。 第1の実施形態に係るマイクロチップ制御装置の全体構成の一例を示す斜視図である。 第1の実施形態に係るマイクロチップの一構成例を示す模式図である。 第1の実施形態に係るDNA抽出・PCR部の一例を示す平面模式図である。 第1の実施形態に係るマイクロチップの断面模式図の一例を示す図である。 マイクロチップ制御装置による流路開閉機構及び液体輸送機構を説明するための図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの別の一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの別の一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの別の一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの別の一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るPCR部、温度制御ユニット及びアンプリコン量監視ユニットの別の一例を示す断面図である。 第1の実施形態に係るコントローラによるPCR工程の一例を示すフローチャートである。 第1の実施形態に係る電気泳動部の一例を示す平面模式図である。 第1の実施形態に係るマイクロチップ制御装置によるDNA解析処理の一例を示すフローチャートである。 第2の実施形態に係るマイクロチップ制御装置の全体構成の一例を示す斜視図である。 第3の実施形態に係るマイクロチップ制御装置の全体構成の一例を示す斜視図である。 第3の実施形態に係る最終反応部の一例を示す平面模式図である。
 以下では好適な実施形態について図面を参照して詳細に説明するが、本願開示を図示の態様に限定することを意図するものではない。また、図面参照符号は、説明の理解を助けるために便宜上付記したものに過ぎない。
 まず、一実施形態に係る増幅装置の構成及び動作について図1、図2を用いて説明する。図1を参照すると、増幅装置300は、増幅ユニット301と、監視ユニット302と、制御ユニット303と、を備えている。
 増幅装置300は、図2に示すように、増幅ユニット301において増幅処理を開始し(ステップS01)、増幅された塩基配列であるアンプリコンの量を監視ユニット302において監視する(ステップS02)。増幅装置300は、制御ユニット303による制御の下で、監視ユニット302によって監視されるアンプリコンの量に基づき、増幅ユニット301による増幅処理を終了する。具体的には、増幅装置300は、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達するまでは増幅処理を継続する(ステップS02、NO分岐)。一方で、増幅装置300は、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達すると(ステップS02、YES分岐)、増幅処理を終了する(ステップS03)。
 このように、一実施形態に係る増幅装置300は、テンプレートDNAの量が調節されていないサンプル溶液についてもアンプリコンを適切な量まで合成することができるし、アンプリコンを過剰に合成することも無い。つまり、増幅装置300は、アンプリコンを適量に合成できる。
<第1の実施形態>
 以下では、図面を参照しつつ具体的な一例を挙げて、増幅装置及び増幅方法を説明する。第1の実施形態では、本願開示の増幅装置を、PCRを実行するためのマイクロチップ200及びマイクロチップ制御装置10に適用した増幅システムについて説明する。なお、マイクロチップ制御装置10はマイクロサテライトを利用したDNA鑑定のためにPCR及び電気泳動を実行する装置であり、マイクロチップ制御装置10によって測定されるアンプリコンの塩基長に基づいて配列リピート数が計測される。
 図3に示すように、マイクロチップ制御装置10は、台座11にテーブル12が配置され、テーブル12には、温度制御ユニット13(増幅ユニットとも称する)、電気泳動ユニット14が配置される。さらに、台座11と蓋15は、ヒンジ16を介して接続されており、蓋15の開閉が可能である。
 マイクロチップ200は、テーブル12に設けられたピン17Aとピン17Bを、マイクロチップ200に設けられたピン穴217Aと217Bに嵌合させることで、テーブル12上の所定の位置に載置される。マイクロチップ200をテーブル12に載置した状態で、蓋15を閉じると、マイクロチップ200にてPCRを実行する領域の一部が、温度制御ユニット13と接触する。また、蓋15を閉じることで、マイクロチップ200にて電気泳動を実行する領域が電気泳動ユニット14と接触すると共に、マイクロチップ200に設けられた電極孔を介してマイクロチップ200の電極槽に電極18が挿入される。なお、マイクロチップ200のPCRを実行する領域、電気泳動を実行する領域の詳細は後述する。
 蓋15には、複数の加圧穴19が設けられる。これらの加圧穴19に対応する蓋15の領域は貫通しており、加圧穴19はチューブ21を介して電磁弁22に接続されている。また、蓋15を閉じることで、加圧穴19と、マイクロチップ200上の各種制御孔とを接続する。なお、加圧穴19と制御孔とはO-リング20などの密封機構を介在させて密着することが好ましい。マイクロチップ200上の各種制御孔については、後述する。
 蓄圧器23には圧縮空気等の加圧媒体が封入されており、コントローラ24が電磁弁22を制御することで、加圧穴19を介してマイクロチップ200上の制御孔へ加圧媒体を出し入れする。なお、蓄圧器23の内部圧力は、図示しない圧力センサ及びポンプ等により、所定の圧力を維持するように制御される。
 蓋15には、サンプル溶液からサンプルDNAないしテンプレートDNAを抽出するためのDNA抽出ユニット25が配置される。DNA抽出ユニット25は、例えば、磁性ビーズ(シリカ)を用いてサンプルDNAを抽出する場合には、磁性ビーズを吸着するネオジム磁石を含む。DNA抽出ユニット25は、コントローラ24の制御の下でネオジム磁石をDNA抽出部244に近づける、又はDNA抽出部244からネオジム磁石を遠ざける。
 蓋15には、アンプリコン量監視ユニット27も配置される。アンプリコン量監視ユニット27の構成及び機能については後に詳述する。
 温度制御ユニット13は、PCR及び変性処理を実行するための温度制御機構を有する。具体的には、温度制御ユニット13は、温度センサ、伝熱材、ペルチェ素子(熱電素子)、放熱板等を含み、温度センサからPCRを実行する領域の温度を取得し、取得した温度に基づいてペルチェ素子の発熱又は冷却を制御することで、PCRを実行する領域の温度制御を実現する。
 電気泳動ユニット14は、キャピラリ電気泳動と蛍光標識の検出を実行する機構であり、蛍光標識検出機構としてハロゲンランプ、水銀灯、レーザ光などの励起装置及びフィルタやカメラなどを有する。電源部26を介して電極18に直流電圧が印加されてキャピラリ電気泳動が開始すると、電気泳動ユニット14は、キャピラリ内を流れる蛍光標識を監視し、経時的な蛍光輝度の変化をグラフに示した検出結果を表示部28を介して出力する。
 なお、コントローラ24は、マイクロチップ制御装置10に搭載されたコンピュータに、そのハードウェアを用いて、後に詳述するコントローラ24の処理を実行させるコンピュータプログラムにより実現することもできる。
 マイクロチップ200は、図4に示すように、DNA抽出・PCR部240と、電気泳動部280とを有する。DNA抽出・PCR部240は、樹脂プレート215上に第4の弾性シート214、第4の弾性シート214上に第3の弾性シート213を、第3の弾性シート213上に第2の弾性シート212を、第2の弾性シート212上に第1の弾性シート211を、第1の弾性シート211上に樹脂プレート216を積層して成る。弾性シート211~214同士は一部を除いて接着される。非接着箇所は液体や空気などの媒体を注入して膨張させることができ、その際に弾性シート211~214の間に中間層が形成される。ここで、第1の弾性シート211と第2の弾性シート212の中間層を第1中間層と称し、第2の弾性シート212と第3の弾性シート213の中間層を第2中間層と称し、第3の弾性シート213と第4の弾性シート214の中間層を第3中間層と称する。
 弾性シート211~214は、伸縮性、耐熱性、耐酸・アルカリ性を有することが望ましい。樹脂プレート215、216は、弾性シート211~214の伸張を制御可能な程度に硬質であることが望ましい。なお、樹脂プレート215は、マイクロチップ制御装置10の台座11に備えることも可能である。DNA抽出・PCR部240には、ピン穴217Aや媒体出入孔220などの各種制御孔が形成される。また、電気泳動部280には、ピン穴217Bや電極孔219などの各種制御孔が設けられる。なお、図4は、明瞭化のために一部簡略化している。
 図5は、DNA抽出・PCR部240の一例を示す平面模式図である。図5(A)に示すように、DNA抽出・PCR部240はサンプル溶液注入部241、洗浄バッファ注入部242、溶出バッファ注入部243を有し、第1中間層として、DNA抽出部244、PCR部245、秤量部246が形成される。なお、PCR部245は、増幅槽とも称される。サンプル溶液注入部241は流路250Aに接続される。洗浄バッファ注入部242は流路250Bに接続さる。溶出バッファ注入部243は流路250Cに接続される。流路250A~Cは合流点248において合流し、流路250Dを介してDNA抽出部244へ接続される。また、DNA抽出部244は、流路250Eとも接続され、流路250Eは分流点249において、複数の反応経路に枝分かれして(サンプル溶液が分注されて)、流路250Fとして複数のPCR部245に接続される。各PCR部245は、各々に対応する秤量部246へ流路250Gを介して接続される。秤量部246は流路250Hを介して電気泳動部280へ接続される。なお、流路250A~Hなどは、第1の弾性シート211と第2の弾性シート212の間の非接着箇所であり、そこへ液体などが入り込むことによって形成される。すなわち、第4の弾性シート214と樹脂プレート215の間には空間部290が設けられており、流路250などの形成時には、空間部290へ弾性シート214が押し下げられる(図6、図7を参照)。また、本願において、反応経路とは、流路250FからPCR部245を通り、サンプル流路281へ至る一筋の流路を意味するものとする。言い換えると、「反応経路ごと」と「PCR部245ごと」とは、互換的に解釈される。
 図5(B)に示すように、DNA抽出・PCR部240において、第2の弾性シート212と第3の弾性シート213の間の第2中間層として、流路250A、C、E、Gに対する流路開閉部260A、C、E、Gが形成される。また、図5(C)に示すように、第3の弾性シート213と第4の弾性シート214の間の第3中間層として、流路250B、D、F、Hに対する流路開閉部270B、D、F、Hが形成される。
 図5(B)に示すように、流路開閉部260Aは流路250Aの上流側(すなわち、サンプル溶液注入部241側)に媒体流路261Aを有し、第2の弾性シート212、第1中間層、第1の弾性シート211、樹脂プレート216を貫通する媒体出入孔220Aを介して、蓋15に設けられた加圧穴19に接続される。また、流路開閉部270Bは、図5(C)に示すように、流路250Bの上流側(すなわち、洗浄バッファ注入部242側)に媒体流路271Bを有し、第3の弾性シート213、第2中間層、第2の弾性シート212、第1中間層、第1の弾性シート211、樹脂プレート216を貫通する媒体出入孔220Bを介して、蓋15に設けられた加圧穴19に接続される。なお、図5では、媒体流路261A、媒体出入孔220A、媒体流路271B、媒体出入孔220Bに限り図示し、その他は省略している。
 サンプル溶液注入部241は、図6に示すように、樹脂プレート216及び第1の弾性シート211を貫通する貫通孔であり、操作者(マニュアル操作ないし自動注入部)によってサンプル溶液が注入され、カバーフィルム241Aによって覆われる。サンプル溶液は、リシスバッファ(例えば、SDS/LiOAc溶液(ドデシル硫酸ナトリウム/酢酸リチウム溶液))に被験者から採取した細胞(例えば、口腔内粘膜、血液、体液など)を懸濁した溶液である。具体的には、サンプル溶液注入部241は、カバーフィルム241A、O-リング20を介して蓋15に設けられた加圧穴19に接続される。なお、以下では、加圧穴19はO-リング20を含むものとし、O-リング20についての説明を省略する。
 次に、図5を参照しつつ、サンプル溶液注入部241から流路250A、Dを介して、DNA抽出部244へサンプル溶液を移動させる場合を考える。マイクロチップ制御装置10は、まず、流路開閉部260C、E及び流路開閉部270Bへ加圧媒体を注入して流路250B、C、Eを閉鎖する。そして、流路開閉部260A及び流路開閉部270Dから加圧媒体を放出して流路250A、Dを開放する。そして、図6(B)に示すように、マイクロチップ制御装置10は、サンプル溶液注入部241へ加圧媒体を印加してカバーフィルム241Aを押し下げることで、サンプル溶液を流路250Aへ押し出す。
 洗浄バッファ注入部242は、流路250Bに対する流路開閉部270Bが第3中間層として配される他はサンプル溶液注入部241と同様の構成を有し、操作者によって洗浄バッファが注入される。洗浄バッファは、例えば、Tris(tris(hydroxymethyl)aminomethane)バッファである。
 溶出バッファ注入部243はサンプル溶液注入部241と同様の構成を有し、操作者によって溶出バッファが注入される。溶出バッファはDNA抽出部244(具体的には磁性ビーズ)からDNAを溶出するバッファであり、さらに、プライマー伸長反応を行うポリメラーゼ、dNTPミックス(デオキシリボヌクレオチド三リン酸のミックス)、アンプリコンの量を測定するための蛍光物質も含む。ここで蛍光物質は、例えば、二本鎖DNAに取り込まれた時に蛍光を発するインカレーター(いわゆるインカレーター法)を含む。また、蛍光物質は、5´末端を蛍光物質で、3´末端をクエンチャー物質で修飾したオリゴヌクレオチドプローブ(いわゆるTaqManプローブ法)であっても良い。また、蛍光物質としては、RNAとDNAとからなり、5´末端を蛍光物質で修飾し、3´末端をクエンチャー物質で修飾したキメラプローブを用いることもできる(いわゆるサイクリングプローブ法)。なお、サイクリングプローブ法を使用する場合には、溶出バッファはRNaseH(ribonuclease H)を更に含む。
 ここで、マイクロチップ制御装置10による流路開閉機構及び液体輸送機構について説明する。マイクロチップ制御装置10は、第1流路を介して液体を流通させる際に、第1流路開閉部から媒体を放出して第1流路開閉部を収縮させることで第1流路を開け、第2流路開閉部に媒体を注入して第2流路開閉部を膨張させることで第2流路を閉じるよう制御する。具体的な一例として、図7を参照しつつ、液体槽240Aに充填した液体を、流路250Yを介して液体槽240Bへ移動させる場合のマイクロチップ200内での液体輸送機構について説明する。液体槽240Aは、第1の弾性シート211と第2の弾性シート212の間に形成され、流路250X及び250Yに接続される。樹脂プレート216において液体槽240Aに対応する箇所は貫通して制御孔となっており、液体槽240Aの上部には蓋15に設けられた加圧穴19Aを介して加圧媒体が出し入れ可能である。同様に、液体槽240Bは流路250Y及び250Zに接続され、液体槽240Bの上部には加圧穴19Bを介して加圧媒体が出し入れ可能である。流路250X、Yは、閉鎖されている。
 このような前提の下、マイクロチップ制御装置10は、まず、図7(A)に示すように、流路開閉部270Zへ加圧媒体を注入して流路250Zを閉じ、次に、流路開閉部260Yから加圧媒体を放出することで流路250Yを開放する。そして、マイクロチップ制御装置10は、加圧穴19Aを介して液体槽240Aへ加圧媒体を印加する。その結果、図7(B)に示すように、液体槽240Aから押し出された液体は、流路250Yを通って液体槽240Bへ到達し、第1の弾性シート211を押し上げて液体槽240Bに溜まる。そして、マイクロチップ制御装置10は、液体槽240Aへの加圧媒体の印加圧が所定値を超えて、液体槽240Aから液体を排出したと判断すると、図7(C)に示すように、流路250Yの上流側(すなわち、液体槽240A側)から、流路開閉部260Yへ加圧媒体を注入する。その結果、流路250Y内の液体は液体槽240Bへ押し出され、液体輸送が完了する。その後、流路250Xを閉じる必要が無くなったため、マイクロチップ制御装置10は、流路開閉部270Xから加圧媒体を放出する。
 図5の説明に戻ると、DNA抽出部244は、サンプル溶液からDNAを抽出するために設けられた機構である。例えば、DNA抽出部244には、磁性ビーズ(シリカ)が予め封入され、コントローラ24及びDNA抽出ユニット25の制御によって、サンプル溶液からサンプルDNAが抽出される。
 DNA抽出処理について具体的に説明すると、マイクロチップ制御装置10は、DNA抽出ユニット25としてネオジム磁石を有し、DNA抽出部244にはシリカでコーティングされた磁性ビーズが予め封入される。マイクロチップ制御装置10は、サンプル溶液注入部241に注入されたサンプル溶液をDNA抽出部244に移動させて、DNA抽出部244に封入された磁性ビーズ(シリカ)にDNAを吸着させる。そして、洗浄バッファ注入部242内の洗浄バッファで磁性ビーズを洗浄することでDNAを抽出する。なお、マイクロチップ制御装置10は、サンプル溶液及び洗浄バッファを排水口(図示しない)から排出するが、その際にネオジム磁石に磁性ビーズを吸着させることで、サンプル溶液及び洗浄バッファと一緒に磁性ビーズが排出されることを防止する。
 DNA抽出方法は諸般のプロトコルなどを参照して、例えば、洗浄回数を増やすなど改変することができる。また、DNA抽出方法は、磁性ビーズを用いる方法に限定されるものでは無く、例えば、カラムを用いた方法を採用してもよい。
 PCR部245は、温度制御ユニット13による温度制御を受けてPCRを実行する。具体的には、PCR部245にはプライマーセットが予め封入されており、DNA抽出部244によって抽出されたサンプルDNA(テンプレートDNA)における所望の塩基配列が溶出バッファに含まれるポリメラーゼによる作用で増幅される。その際に、PCR産物である2本鎖のアンプリコンにはインカレーターが取り込まれる。ここで、インカレーターとは2本鎖DNAに取り込まれた際にのみ蛍光を発する蛍光物質であり、そのためインカレーターが発する蛍光の輝度はアンプリコンの量を示す指標となる。
 図8に示すように、PCR部245に対応する箇所の樹脂プレート215は、弾性シート212~214を介して温度制御ユニット13による温度制御を受けられるように貫通している。温度制御ユニット13は、テーブル12の一領域に埋め込まれて配置され、温度センサ131、伝熱材132、ペルチェ素子133及び放熱板134を有する。
 温度センサ131は、コントローラ24に接続され、PCR部245の温度を測定して、コントローラ24へ送信する。伝熱材132は一面でペルチェ素子133の温度印加面と接触しており、ペルチェ素子133と反対側の伝熱材132の面はテーブル12の表面から露出する。露出した伝熱材132の一面はマイクロチップ200と接触し、伝熱材132の温度が弾性シート212~214を介してPCR部245に伝えられる。
 ペルチェ素子133の電源線は、コントローラ24に接続されており、コントローラ24は、温度センサ131からPCR部112の温度を取得し、取得した温度に基づいてペルチェ素子133に供給する電流の方向を決定することで、ペルチェ素子133の温度制御を行う。即ち、ペルチェ素子133は、PCR部245内のサンプル溶液を加熱及び冷却する手段である。
 また、図8に示すように、PCR部245に対応する箇所の樹脂プレート216にも加圧穴19が設けられており、加圧穴19はチューブ21を介して電磁弁22に接続される。また、加圧穴19及びチューブ21の中空部にはアンプリコン量監視ユニット27が配置され、加圧媒体はアンプリコン量監視ユニット27の外側を通じて出入される。
 アンプリコン量監視ユニット27は、図8に示すように、励起光を照射する光源27aと、蛍光を受光する受光部27bとを有し、コントローラ24と接続される。光源27aは、アンプリコンの増幅に伴って輝度が変化する蛍光物質を励起するための光を発する手段であり、例えば、アルゴンイオンレーザ、特定の波長のみを通過するフィルタなどを含む。受光部27bは、CCD(Charge Coupled Device)などの撮像素子を含み、受光した光の輝度を測定して、測定値をコントローラ24に出力する。なお、光源27aと受光部27bは、光源27aから照射されるレーザ光と受光部27bが受光する蛍光の光学軸が一致しないように配置する。
 なお、図8における図示を省略しているが、アンプリコン量監視ユニット27は、蓋15の加圧穴19及びチューブ21の内部に浮遊しているのではなく、蓋15から伸びる複数の支持棒により固定されている。支持棒同士の間隙は、加圧穴19を介した加圧媒体の出入りに支障がない程度に広くすることが望ましい。また、チューブ21を貫通させて、アンプリコン量監視ユニット27を制御する制御線を通す場合には、貫通孔から加圧媒体が漏洩しないように補強することが望ましい。
 図8に示す構成は例示であって、種々の変形が可能である。例えば、図9に示すように、温度制御ユニット13の伝熱材132、ペルチェ素子133、放熱板134を貫通する孔を形成し、当該貫通孔の内部にアンプリコン量監視ユニット27(光源27a、受光部27b)を配置してもよい。または、図10に示すように、光源27aと受光部27bを蓋15の内部に、PCR部245内のサンプル溶液に対して斜め方向からレーザ光を照射し、蛍光を受光する構成としてもよい。この場合、レーザ光がPCR部245内のサンプル溶液に到達するように、樹脂プレート216上に穴部216A、Bを設けて、光路を確保することができる。あるいは、光源27aと受光部27bを、蓋15の上方に配置し、蓋15の一部を貫通させて光路を確保する形態であってもよい。いずれにしても、アンプリコン量監視ユニット27の配置には、種々の変形が考えられ、光源27aから照射されたレーザ光等がPCR部245内のサンプル溶液に到達し、蛍光が受光部27bに到達する構成であればよい。
 さらにまた、図8~図10を参照しつつ、マイクロチップ200の下側にペルチェ素子133を含む温度制御ユニット13を配置する構成について説明したが、温度制御ユニット13はマイクロチップ200の上側(蓋15の側)に配置されていてもよい。あるいは、マイクロチップ200を挟むように温度制御ユニット13を上下に配置してもよい。但し、この場合には、図11に示すように、PCR部245に接続された下流の経路である流路250Gを閉め、PCR部245に接続した上流の経路である流路250Fを開けた状態にて、DNA抽出部244に加圧媒体を印加することで、PCR部245にサンプル溶液を移動する。そして、図12に示すように、流路開閉部270Fに加圧媒体を注入することで、PCR部245に接続された下流の経路である流路250Fを閉めて、PCR部245に溶液を閉じ込める。なお、流路250Fの閉鎖は必須では無く、例えば、DNA抽出部244へ加圧媒体を印加した状態を保ち、流路250Fに溶液の一部が残存したままにしても良い。
 また、温度制御ユニット13をマイクロチップ200の上下に配置した場合には、例えば、第1の弾性シート211の上に第5の弾性シート210を追加して、PCR部245の上部に流路開閉部260、270と同様の構成を有する液体槽開閉部272を設ける。この液体槽開閉部272へ加圧媒体を注入することによってPCR部245が押し潰されるので、PCR部245からの溶液の排出が可能になる。あるいは、上側及び下側の少なくとも一方に配置された温度制御ユニット13に微細な貫通孔を多数設けるなどの加工を行い、当該貫通孔から加圧媒体を印加してPCR部245からサンプル溶液の移動が可能となるようにする。なお、温度制御ユニット13の伝熱材132、ペルチェ素子133、放熱板134に微細な貫通孔を設ける場合には、放熱板134等の形状を適宜変更し、加圧媒体の印加を妨げないような構成とする。
 あるいは、蓋15側の温度制御ユニット13が、コントローラ24の制御によって上下にスライド可能となるように構成する。その上で、PCRを実行する際には、蓋15側の温度制御ユニット13は、弾性シート211と当接するまで押し下げられ、伝熱材132の温度を弾性シート211を介してPCR部245に伝える。また、PCR部245からサンプル溶液を排出する際には、図13に示すように温度制御ユニット13は、さらに押し下げられてPCR部245を圧縮することで、サンプル溶液の移動を行ってもよい。なお、図11~図13において、温度制御ユニット13やアンプリコン量監視ユニット27とコントローラ24を接続する制御線の図示を省略している。
 ここで、コントローラ24による制御の下で行われるPCRの流れについて説明する。図14に示すように、サンプルDNAなどを含む溶液をDNA抽出部244からPCR部245へ移動させると、コントローラ24は、温度制御ユニット13を制御してPCR開始反応を実行する(ステップS101)。PCR開始反応とは、例えば、ポリメラーゼを活性化させるためのホットスタート処理などである。
 続いて、コントローラ24は、温度制御ユニット13を制御してサイクル反応を実行する(ステップS102)。サイクル反応とは、例えば、2本鎖DNAを1本鎖DNAへ変性するディネイチャ反応を行うステップ、プライマーを鋳型DNAにハイブリダイズするアニール反応を行うステップ、ポリメラーゼによるプライマー伸張反応を行うステップを含む一連の加熱及び冷却処理を繰り返し実行する反応である。
 一連の加熱及び冷却処理が終了すると、コントローラ24は、アンプリコン量監視ユニット27を制御してアンプリコンの量を測定し、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定する(ステップS103)。具体的には、コントローラ24は、アンプリコン量監視ユニット27に対して、PCR部245に向けたレーザ照射を指示する。アンプリコン量監視ユニット27は、PCR部245に対して光源27aからレーザを照射する。また、アンプリコン量監視ユニット27は、レーザ照射による励起によってインカレーターが発した蛍光を受光部27bで受光して、蛍光輝度としてコントローラ24に出力する。コントローラ24は、蛍光輝度の測定値と、予め登録された許容下限閾値とを比較して、アンプリコンの量が閾値に到達したか否かを判定する。
 アンプリコンの量が閾値未満であると判定した場合には(ステップS103、NO分岐)、コントローラ24は、温度制御ユニット13を制御してサイクル反応を継続する(ステップS102)。
 一方で、アンプリコンの量が閾値以上であると判定した場合には、(ステップS103、YES分岐)、コントローラ24は、温度制御ユニット13を制御して最終伸張反応を実行する(ステップS104)。最終伸張反応は、例えば、アンプリコンをアデニル化する反応(60℃を5分間維持)である。その後、コントローラ24は、電磁弁22を制御してPCR部245内の液体の一部を秤量部246へ移動させ(ステップS105)、PCRを終了する。
 以上のように、コントローラ24は、サンプルDNAなどを含む溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅工程と、増幅された塩基配列であるアンプリコンの量を測定する測定工程と、測定されたアンプリコンの量に基づき、所望の塩基配列の増幅を終了させる増幅終了工程と、を実行する。より具体的には、コントローラ24は、測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定する判定工程を実行した後、測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、所望の塩基配列の増幅を終了させる。
 なお、PCR条件は増幅目的のDNAの長さや塩基配列に応じて調節可能である。例えば、プライマーセットは、DNAを増幅するため、すなわち、DNA鑑定のためのプライマーセットなどであり、プライマーのTM(melting temperature)値に応じてアニール反応のための時間を調節することが可能である。
 図5に示す秤量部246は、アンプリコンを含む溶液を秤取るための機構である。具体的には、秤量部246はPCR部245よりも小さく構成され、マイクロチップ制御装置10は、PCR部245の液体輸送の際に、PCR部245内の溶液が秤量部246へ完全に移動していない状態で流路250Gを閉鎖する。言い換えると、マイクロチップ制御装置10は、PCR部245内に溶液の一部を残留させることで、アンプリコンを含む溶液を秤取る。
 電気泳動部280は、図15に示すように、サンプル流路281、キャピラリ282及びポリマ注入部283を有する。マイクロチップ制御装置10は、電極18を介してキャピラリ282に電流を流すことによって電気泳動を実行し、電気泳動ユニット14によってキャピラリ内を流れる標識を監視して、経時的な蛍光輝度の変化をグラフに示した検出結果を、表示部28を介して出力する。
 次に、マイクロチップ制御装置10によるDNA解析処理全体の流れを説明する。なお、マイクロチップ制御装置10による流路開閉処理などについては、説明の簡素化のために省略する。先ず、サンプル溶液、洗浄バッファ、溶出バッファ及びポリマが充填されたマイクロチップ200がユーザによってマイクロチップ制御装置10にセットされる。その後、マイクロチップ制御装置10は、図16に示すようにDNA抽出ユニット25においてDNA抽出処理を実行する(ステップS201)。
 次に、マイクロチップ制御装置10は、PCR(ステップS202)と、秤量処理(ステップS203)を実行する。そして、マイクロチップ制御装置10は、電気泳動ユニット14において、キャピラリ電気泳動と標識検出処理とを実行し(ステップS204)、表示部28を介して検出結果を出力する(ステップS105)。
 以上のように、第1の実施形態に係るマイクロチップ制御装置10は、アンプリコンを増幅する際に、アンプリコン量監視ユニット27を用いてサイクル反応が終了するごとに増幅されたアンプリコンの量を監視する。その結果、DNA量が不明なサンプル溶液についてもアンプリコンを適切な量まで増幅することができる。例えば、本装置をヒト鑑定に使用したときは、提供者から直接採取された、DNA量が不明なサンプル溶液についてもアンプリコンを適切な量まで増やすことができ、電気泳動において適切な強度の信号を得ることが可能になる。
<第2の実施形態>
 続いて、第2の実施形態について説明する。
 第2の実施形態では、図17に示すように、マイクロチップ200はPCR部245を複数有し、マイクロチップ制御装置10は、温度制御ユニット13とアンプリコン量監視ユニット27のペアをPCR部245に各々対応するように複数対有する。そして、コントローラ24は、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した温度制御ユニット13とアンプリコン量監視ユニット27のペアに関しては最終反応実行する。一方では、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない温度制御ユニット13とアンプリコン量監視ユニット27のペアに関しては温度制御ユニット13による増幅処理を継続する。そして、全ての反応経路の最終伸張反応を終了すると、コントローラ24は、PCR部245内の溶液を秤量部246へ移動させる。
 このようにすることで、反応経路間でアンプリコン合成効率に差があったとしても、適切な量までアンプリコンを合成することが可能である。例えば、プライマーの差など種々の原因によって反応経路間でアンプリコン合成効率の差があったとしても、各反応経路のアンプリコンを各々適切な量まで合成することができる。
<第3の実施形態>
 続いて、第3の実施形態について説明する。
 第3の実施形態では、図18に示すように、マイクロチップ200は、複数の反応経路を備え、反応経路ごとに、PCR部245と、最終反応を実行するための最終反応部247とを有する。具体的には、マイクロチップ200は、図19に示すように、反応経路ごとにPCR部245と秤量部246との間に最終反応部247を有する。ここで反応経路とは、上述のように流路250FからPCR部245を通り、サンプル流路281へ至る一筋の流路を意味するものとする。
 また、マイクロチップ制御装置10は、最終反応部247内のサンプル溶液を加熱して最終反応を実行する最終反応ユニット29を更に有する。具体的には、マイクロチップ制御装置10は、図18に示すように、温度制御ユニット13と、電気泳動ユニット14との間に最終反応ユニット29を有する。
 温度制御ユニット13は、各PCR部245内のサンプル溶液を一括して加熱及び冷却するように構成され、複数の反応経路の増幅反応を並列に実行する。また、アンプリコン量監視ユニット27は、PCR部245ごとに対応付けて配置され、各々PCR部245内のアンプリコンの量を個別に監視する。最終反応ユニット29は、伝熱材、ペルチェ素子(熱電素子)、放熱板等を含み、温度制御ユニット13と同様に台座11上に設けられ、例えば、最終反応部247内のサンプル溶液を60℃に加熱して最終反応を実行する。
 そして、コントローラ24は、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関してはPCR部245のサンプル溶液を最終反応部247内に移動させ、アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては増幅処理を継続する。コントローラ24は、全ての反応経路のアンプリコンの量が閾値に到達するまで、一連の加熱及び冷却処理とアンプリコン量の測定を繰り返し、全ての反応経路の溶液を最終反応部247へ移動させてからの経過時間が予め設定された最終反応時間に到達した後に、最終反応部247内の溶液を秤量部246へ移動させる。
 このようにすれば、反応経路の間でアンプリコン合成効率に差があったとしても、適切な量までアンプリコンを合成することが可能である。
 以下では、本願開示の他の実施形態について説明する。PCRはマイクロチップ上で行うものに限られない。例えば、研究室などで行うPCRにも本願開示の内容を適用することができる。すなわち、サーマルサイクラーにアンプリコン量監視ユニット27を搭載し、アンプリコン量に応じてサイクル数を増減するようにプログラムすれば良い。
 また、サンプル条件、PCR条件、アンプリコン量の測定条件、電気泳動条件などは多様に変更することが可能である。例えば、同時に解析するサンプル溶液は、同一の被験体から取得されたものに限られず、複数の被験体からされたものであってもよい。この場合には、サンプル溶液に含まれるテンプレートDNA量はサンプル溶液ごとに異なるが、本願開示によれば、いずれのサンプル溶液も適切な量までアンプリコンを合成することが可能である。
 また、PCR条件は、増幅する配列、プライマー、ポリメラーゼなどの種類に応じて様々に変更可能である。
 アンプリコン量の測定は、いわゆるインカレーション法、TaqManプローブ法やサイクリングプローブ法などの、種々のRTPCR(Real-time polymerase chain reaction)に関する技術を使用することができる。
 第1の実施形態では、2本鎖アンプリコンを電気泳動しているが、1本鎖に変性した後に電気泳動を行ってもよい。例えば、マイクロチップ200には、PCR部245と秤量部246との間に変性部を設ける。また、マイクロチップ制御装置10は、変性部を例えば、98℃に温度制御する温度制御ユニットを備える。このようにすれば、1本鎖アンプリコンを電気泳動することができる。なお、変性部においてサンプル溶液にホルムアミドなどの変性剤を添加するようにマイクロチップ200を構成してもよい。
 上記の実施形態の一部又は全部は、以下の付記のようにも記載され得るが、以下には限られない。
[付記1]
 上述の第1の視点に係る増幅装置のとおりである。
[付記2]
 前記制御ユニットは、前記監視ユニットによって監視される前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する、付記1の増幅装置。
[付記3]
 前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアを複数対有し、
 前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を終了して、前記アンプリコンを加熱する最終反応を前記増幅ユニットに実行させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、付記1又は2の増幅装置。
[付記4]
 複数の反応経路を備え、前記所望の塩基配列を増幅するための増幅槽と、最終反応を実行するための最終反応槽とを前記反応経路ごとに有するマイクロチップに対して、
 前記増幅ユニットは、前記複数の反応経路の前記増幅槽内のサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、前記複数の反応経路の増幅反応を並列に実行し、
 前記監視ユニットは、前記増幅槽内のアンプリコンの量を前記複数の反応経路ごとに個別に監視し、
 前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては前記増幅槽内のサンプル溶液を前記最終反応槽に移動させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続し、
 前記最終反応槽内のサンプル溶液を加熱して最終反応を実行する最終反応ユニットを更に有する付記1又は2の増幅装置。
[付記5]
 前記増幅ユニットは、一連の加熱及び冷却処理を繰り返すサイクル反応によって前記所望の塩基配列を増幅し、
 前記制御ユニットは、前記一連の加熱及び冷却処理が1回終了するごとに、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づいて、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了するか又は継続するかを判定する、付記1~4のいずれか1に記載の増幅装置。
[付記6]
 前記監視ユニットが、
 アンプリコンの増幅に伴って輝度が変化する蛍光物質を励起する光を発する光源と、
 前記蛍光物質が発する蛍光を受光する手段と、を備える付記1~5のいずれか1に記載の増幅装置。
[付記7]
 前記増幅ユニットが、前記サンプル溶液を加熱及び冷却する熱電素子と、前記サンプル溶液の温度を測定する温度センサとを備え、
 前記制御ユニットは、前記温度センサによって測定される温度に基づいて前記熱電素子の温度制御を行う、付記1~6のいずれか1に記載の増幅装置。
[付記8]
 上述の第2の視点に係る増幅方法のとおりである。
[付記9]
 前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定する判定工程を更に含み、
 前記増幅終了工程は、前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記所望の塩基配列の増幅を終了させる、付記8の増幅方法。
[付記10]
 前記増幅工程は、複数の反応経路に分注されたサンプル溶液を個別に加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を個別に増幅し、
 前記測定工程は、前記反応経路ごとに前記アンプリコンの量を測定し、
 前記判定工程は、前記反応経路ごとに前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定し、
 前記増幅終了工程は、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を終了させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を継続させる、付記9の増幅方法。
[付記11]
 前記増幅工程は、複数の反応経路に分注されたサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅し、
 前記測定工程は、前記反応経路ごとに前記アンプリコンの量を測定し、
 前記判定工程は、前記反応経路ごとに前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定し、
 前記増幅終了工程は、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を終了させ、前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を継続させ、
 前記所望の塩基配列の増幅が終了したアンプリコンを加熱する最終反応を実行する工程を更に含む付記9の増幅方法。
[付記12]
 上述の第3の視点に係る増幅システムのとおりである。
[付記13]
 前記制御ユニットは、前記監視ユニットによって監視される前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する、付記12の増幅システム。
[付記14]
 前記マイクロチップは、前記増幅槽を複数有し、
 前記増幅装置は、前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアを前記増幅槽に各々対応するように複数対有し、
 前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を終了して、前記増幅槽内のアンプリコンを加熱する最終反応を前記増幅ユニットに実行させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、付記12又は13の増幅システム。
[付記15]
 前記マイクロチップは複数の反応経路を備え、該反応経路ごとに、前記増幅槽と、最終反応を実行するための最終反応槽とを有し、
 前記増幅装置は、前記最終反応槽内のサンプル溶液を加熱して最終反応を実行する最終反応ユニットを更に有し、
 前記増幅ユニットは、前記複数の反応経路の前記増幅槽内のサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、前記複数の反応経路の増幅反応を並列に実行し、
 前記監視ユニットは、前記増幅槽内のアンプリコンの量を前記複数の反応経路ごとに個別に監視し、
 前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては前記増幅槽内のサンプル溶液を前記最終反応槽に移動させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、付記12又は13の増幅システム。
[付記16]
 前記増幅ユニットは、一連の加熱及び冷却処理を繰り返すサイクル反応によって前記所望の塩基配列を増幅し、
 前記制御ユニットは、前記一連の加熱及び冷却処理が1回終了するごとに、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づいて、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了するか又は継続するかを判定する、付記12~15のいずれか1に記載の増幅システム。
[付記17]
 前記監視ユニットが、
 前記増幅槽に対して照射され、前記アンプリコンの増幅に伴って輝度が変化する蛍光物質を励起するための光を発する光源と、
 前記増幅槽内の前記蛍光物質が発する蛍光を受光する手段と、を備える付記12~16のいずれか1に記載の増幅システム。
[付記18]
 前記増幅ユニットが、前記サンプル溶液を加熱及び冷却する熱電素子と、前記サンプル溶液の温度を測定する温度センサと、を備え、
 前記制御ユニットは、前記温度センサによって測定される温度に基づいて前記熱電素子の温度制御を行う、付記12~17のいずれか1に記載の増幅システム。
[付記19]
 サンプルを加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅手段と、
 増幅された塩基配列であるアンプリコンの量を測定する測定手段と、
 を備える増幅装置を制御するコンピュータに実行させるプログラムであって、
 前記測定されたアンプリコンの量が適量か否かを判定する処理と、
 前記測定されたアンプリコンの量が適量である場合に、前記増幅手段による増幅を終了させる処理と、
 を実行させるプログラム。
 なお、このプログラムは、コンピュータが読み取り可能な記憶媒体に記録することができる。記憶媒体は、半導体メモリ、ハードディスク、磁気記録媒体、光記録媒体等の非トランジェント(non-transient)なものとすることができる。即ち、本願開示をコンピュータプログラム製品として具現することも可能である。
 なお、上記の特許文献の各開示を、本書に引用をもって繰り込むものとする。本発明の全開示(請求の範囲を含む)の枠内において、さらにその基本的技術思想に基づいて、実施形態の変更・調整が可能である。また、本発明の全開示の枠内において種々の開示要素(各請求項の各要素、各実施形態の各要素、各図面の各要素等を含む)の多様な組み合わせ、ないし、選択が可能である。すなわち、本発明は、請求の範囲を含む全開示、技術的思想にしたがって当業者であればなし得るであろう各種変形、修正を含むことは勿論である。特に、本書に記載した数値範囲については、当該範囲内に含まれる任意の数値ないし小範囲が、別段の記載のない場合でも具体的に記載されているものと解釈されるべきである。
 10 マイクロチップ制御装置
 11 台座
 12 テーブル
 13 温度制御ユニット
 14 電気泳動ユニット
 15 蓋
 16 ヒンジ
 17A、B ピン
 18 電極
 19 加圧穴
 20 O-リング
 21 チューブ
 22 電磁弁
 23 蓄圧器
 24 コントローラ
 25 DNA抽出ユニット
 26 電源部
 27 アンプリコン量監視ユニット
 28 表示部
 29 最終反応ユニット
100 マイクロチップ
111 (第1の)弾性シート
112 (第2の)弾性シート
113 (第3の)弾性シート
114 (第4の)弾性シート
115 樹脂プレート
115A、B 凹状部
116 樹脂プレート
116A 制御孔
117 空間部
121~123 液体槽
131 温度センサ
132 伝熱材
133 ペルチェ素子
134 放熱板
141 (第1)流路開閉部
142 (第2)流路開閉部
143 流路開閉部
144 流路開閉部
200 マイクロチップ
210 (第5の)弾性シート
211 (第1の)弾性シート
212 (第2の)弾性シート
213 (第3の)弾性シート
214 (第4の)弾性シート
215 樹脂プレート
216 樹脂プレート
216A、B 穴部
217A、B ピン孔
219 電極孔
220A、B 媒体出入孔
240 DNA抽出・PCR部
240A、B 液体槽
241 サンプル溶液注入部
241A カバーフィルム
242 洗浄バッファ注入部
243 溶出バッファ注入部
244 DNA抽出部
245 PCR部
246 秤量部
247 最終反応部
248 合流点
249 分流点
250A~I、X、Y、Z 流路
260A、C、E、G、Y (第2中間層の)流路開閉部
261A 媒体流路
270B、D、F、H、X、Z (第3中間層の)流路開閉部
271B 媒体流路
272 液体槽開閉部
280 電気泳動部
281 サンプル流路
282 キャピラリ
283 ポリマ注入部
290 空間部
300 増幅装置
301 増幅ユニット
302 監視ユニット
303 制御ユニット

Claims (18)

  1.  サンプル溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅ユニットと、
     前記増幅ユニットによって増幅される塩基配列であるアンプリコンの量を監視する監視ユニットと、
     前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づき、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する制御ユニットと、
     を備えた増幅装置。
  2.  前記制御ユニットは、前記監視ユニットによって監視される前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する、請求項1の増幅装置。
  3.  前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアを複数対有し、
     前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を終了して、前記アンプリコンを加熱する最終反応を前記増幅ユニットに実行させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、請求項1又は2の増幅装置。
  4.  複数の反応経路を備え、前記所望の塩基配列を増幅するための増幅槽と、最終反応を実行するための最終反応槽とを前記反応経路ごとに有するマイクロチップに対して、
     前記増幅ユニットは、前記複数の反応経路の前記増幅槽内のサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、前記複数の反応経路の増幅反応を並列に実行し、
     前記監視ユニットは、前記増幅槽内のアンプリコンの量を前記複数の反応経路ごとに個別に監視し、
     前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては前記増幅槽内のサンプル溶液を前記最終反応槽に移動させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続し、
     前記最終反応槽内のサンプル溶液を加熱して最終反応を実行する最終反応ユニットを更に有する請求項1又は2の増幅装置。
  5.  前記増幅ユニットは、一連の加熱及び冷却処理を繰り返すサイクル反応によって前記所望の塩基配列を増幅し、
     前記制御ユニットは、前記一連の加熱及び冷却処理が1回終了するごとに、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づいて、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了するか又は継続するかを判定する、請求項1~4のいずれか1項に記載の増幅装置。
  6.  前記監視ユニットが、
     アンプリコンの増幅に伴って輝度が変化する蛍光物質を励起する光を発する光源と、
     前記蛍光物質が発する蛍光を受光する手段と、を備える請求項1~5のいずれか1項に記載の増幅装置。
  7.  前記増幅ユニットが、前記サンプル溶液を加熱及び冷却する熱電素子と、前記サンプル溶液の温度を測定する温度センサとを備え、
     前記制御ユニットは、前記温度センサによって測定される温度に基づいて前記熱電素子の温度制御を行う、請求項1~6のいずれか1項に記載の増幅装置。
  8.  サンプル溶液を加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅する増幅工程と、
     増幅された塩基配列であるアンプリコンの量を測定する測定工程と、
     前記測定されたアンプリコンの量に基づき、前記所望の塩基配列の増幅を終了させる増幅終了工程と、
     を含む、増幅方法。
  9.  前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定する判定工程を更に含み、
     前記増幅終了工程は、前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記所望の塩基配列の増幅を終了させる、請求項8の増幅方法。
  10.  前記増幅工程は、複数の反応経路に分注されたサンプル溶液を個別に加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を個別に増幅し、
     前記測定工程は、前記反応経路ごとに前記アンプリコンの量を測定し、
     前記判定工程は、前記反応経路ごとに前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定し、
     前記増幅終了工程は、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を終了させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を継続させる、請求項9の増幅方法。
  11.  前記増幅工程は、複数の反応経路に分注されたサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、所望の塩基配列を増幅し、
     前記測定工程は、前記反応経路ごとに前記アンプリコンの量を測定し、
     前記判定工程は、前記反応経路ごとに前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達したか否かを判定し、
     前記増幅終了工程は、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を終了させ、前記測定されたアンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては、前記所望の塩基配列の増幅を継続させ、
     前記所望の塩基配列の増幅が終了したアンプリコンを加熱する最終反応を実行する工程を更に含む請求項9の増幅方法。
  12.  積層された複数の弾性シートを有し、前記弾性シート同士の間の未接着箇所に所望の塩基配列を増幅するための増幅槽が構成されるマイクロチップと、
     前記増幅槽内のサンプル溶液を加熱及び冷却することで、前記所望の塩基配列を増幅する増幅ユニットと、前記増幅槽内のアンプリコンの量を監視する監視ユニットと、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づき、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する制御ユニットとを備えた増幅装置と、
     を含む増幅システム。
  13.  前記制御ユニットは、前記監視ユニットによって監視される前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した場合に、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了する、請求項12の増幅システム。
  14.  前記マイクロチップは、前記増幅槽を複数有し、
     前記増幅装置は、前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアを前記増幅槽に各々対応するように複数対有し、
     前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を終了して、前記増幅槽内のアンプリコンを加熱する最終反応を前記増幅ユニットに実行させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない前記増幅ユニットと前記監視ユニットのペアに関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、請求項12又は13の増幅システム。
  15.  前記マイクロチップは複数の反応経路を備え、該反応経路ごとに、前記増幅槽と、最終反応を実行するための最終反応槽とを有し、
     前記増幅装置は、前記最終反応槽内のサンプル溶液を加熱して最終反応を実行する最終反応ユニットを更に有し、
     前記増幅ユニットは、前記複数の反応経路の前記増幅槽内のサンプル溶液を一括して加熱及び冷却することで、前記複数の反応経路の増幅反応を並列に実行し、
     前記監視ユニットは、前記増幅槽内のアンプリコンの量を前記複数の反応経路ごとに個別に監視し、
     前記制御ユニットは、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達した反応経路に関しては前記増幅槽内のサンプル溶液を前記最終反応槽に移動させ、前記アンプリコンの量が予め設定された閾値に到達していない反応経路に関しては前記増幅ユニットによる増幅処理を継続する、請求項12又は13の増幅システム。
  16.  前記増幅ユニットは、一連の加熱及び冷却処理を繰り返すサイクル反応によって前記所望の塩基配列を増幅し、
     前記制御ユニットは、前記一連の加熱及び冷却処理が1回終了するごとに、前記監視ユニットによって監視されるアンプリコンの量に基づいて、前記増幅ユニットによる増幅処理を終了するか又は継続するかを判定する、請求項12~15のいずれか1項に記載の増幅システム。
  17.  前記監視ユニットが、
     前記増幅槽に対して照射され、前記アンプリコンの増幅に伴って輝度が変化する蛍光物質を励起するための光を発する光源と、
     前記増幅槽内の前記蛍光物質が発する蛍光を受光する手段と、を備える請求項12~16のいずれか1項に記載の増幅システム。
  18.  前記増幅ユニットが、前記サンプル溶液を加熱及び冷却する熱電素子と、前記サンプル溶液の温度を測定する温度センサと、を備え、
     前記制御ユニットは、前記温度センサによって測定される温度に基づいて前記熱電素子の温度制御を行う、請求項12~17のいずれか1項に記載の増幅システム。
PCT/JP2014/059560 2014-03-31 2014-03-31 増幅装置、増幅方法及び増幅システム WO2015151201A1 (ja)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016511221A JP6424885B2 (ja) 2014-03-31 2014-03-31 増幅装置、増幅方法及び増幅システム
US15/129,276 US20170106370A1 (en) 2014-03-31 2014-03-31 Amplification apparatus, amplification method and amplification system
PCT/JP2014/059560 WO2015151201A1 (ja) 2014-03-31 2014-03-31 増幅装置、増幅方法及び増幅システム

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/JP2014/059560 WO2015151201A1 (ja) 2014-03-31 2014-03-31 増幅装置、増幅方法及び増幅システム

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2015151201A1 true WO2015151201A1 (ja) 2015-10-08

Family

ID=54239570

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2014/059560 WO2015151201A1 (ja) 2014-03-31 2014-03-31 増幅装置、増幅方法及び増幅システム

Country Status (3)

Country Link
US (1) US20170106370A1 (ja)
JP (1) JP6424885B2 (ja)
WO (1) WO2015151201A1 (ja)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017138507A1 (ja) * 2016-02-10 2017-08-17 日本電気株式会社 Dna検査用チップ、dna検査方法、dna検査システム、及びdna検査チップ制御装置
KR102001172B1 (ko) * 2018-11-26 2019-07-18 바이오뱅크 주식회사 휴대용 dna분석장치
JP2021532802A (ja) * 2018-08-03 2021-12-02 ローベルト ボツシユ ゲゼルシヤフト ミツト ベシユレンクテル ハフツングRobert Bosch Gmbh リアルタイムpcrを実施する方法
JP2022058275A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出カセット及び核酸検出装置
JP2022058248A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出キット及び核酸検出装置
JP2022058149A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出箱及び核酸検出デバイス

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012086168A1 (ja) * 2010-12-21 2012-06-28 日本電気株式会社 試料の加熱方法及び加熱制御装置
JP2014023435A (ja) * 2012-07-24 2014-02-06 Hitachi High-Technologies Corp 核酸増幅分析装置及び核酸増幅分析方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2009150809A (ja) * 2007-12-21 2009-07-09 Konica Minolta Medical & Graphic Inc マイクロチップ

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012086168A1 (ja) * 2010-12-21 2012-06-28 日本電気株式会社 試料の加熱方法及び加熱制御装置
JP2014023435A (ja) * 2012-07-24 2014-02-06 Hitachi High-Technologies Corp 核酸増幅分析装置及び核酸増幅分析方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HISASHI HAGIWARA ET AL.: "Development of portable analysis system for rapid DNA typing", DNA KANTEI, vol. 3, 24 November 2011 (2011-11-24), pages 49 - 56 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017138507A1 (ja) * 2016-02-10 2017-08-17 日本電気株式会社 Dna検査用チップ、dna検査方法、dna検査システム、及びdna検査チップ制御装置
GB2563357A (en) * 2016-02-10 2018-12-12 Nec Corp DNA testing chip, DNA testing method, DNA testing system, and DNA testing chip control device
JP2021532802A (ja) * 2018-08-03 2021-12-02 ローベルト ボツシユ ゲゼルシヤフト ミツト ベシユレンクテル ハフツングRobert Bosch Gmbh リアルタイムpcrを実施する方法
KR102001172B1 (ko) * 2018-11-26 2019-07-18 바이오뱅크 주식회사 휴대용 dna분석장치
JP2022058275A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出カセット及び核酸検出装置
JP2022058248A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出キット及び核酸検出装置
JP2022058149A (ja) * 2020-09-30 2022-04-11 富佳生技股▲ふん▼有限公司 核酸検出箱及び核酸検出デバイス

Also Published As

Publication number Publication date
US20170106370A1 (en) 2017-04-20
JPWO2015151201A1 (ja) 2017-04-13
JP6424885B2 (ja) 2018-11-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2015151201A1 (ja) 増幅装置、増幅方法及び増幅システム
CA2865250C (en) Microfluidic cartridge
US10563253B2 (en) Cartridge interface module
US9939170B2 (en) Methods and compositions for rapid thermal cycling
JP6137301B2 (ja) マイクロチップ、dna解析方法及びdna解析システム
WO2013132645A1 (ja) 核酸増幅方法
US20080233634A1 (en) Nucleic acid detection device
US20190022644A1 (en) Real-time nucleic acid amplification measurement apparatus using surface measurement technique
JP2013526867A (ja) Pcr装置のための反応容器とpcrを行う方法
US12049619B2 (en) Microchip
CA3148775A1 (en) Systems and modules for nucleic acid amplification testing
JP2010139491A (ja) 反応液温度測定方法、反応液温度測定装置、反応液温度調整装置及び遺伝子の増幅反応処理を行うための装置
WO2014148193A1 (ja) 電気泳動装置及び電気泳動方法
WO2010072790A1 (en) Method for detecting the presence of liquids in a microfluidic device, detecting apparatus and corresponding microfluidic device
WO2015041282A1 (ja) マイクロチップ及びサンプル注入方法
US20230226540A1 (en) Test container, test device, and nucleic acid test method
US11873476B2 (en) Microchip, microchip controlling apparatus and microchip controlling system
Satsanarukkit et al. A free-standing and flexible parylene PCR device
US20240139738A1 (en) Cartridge for detecting target analyte
Lin et al. Rapid micro-PCR system for hepatitis C virus amplification
Fukuba et al. Simple method for quantitative PCR using fl ow-through PCR device
JP2017151035A (ja) マイクロチップ
TW201317342A (zh) 往復式溫度梯度熱循環系統

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 14888283

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15129276

Country of ref document: US

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2016511221

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 14888283

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1