WO2014200030A1 - 人工多能性幹細胞の選別方法および血球への分化誘導方法 - Google Patents

人工多能性幹細胞の選別方法および血球への分化誘導方法 Download PDF

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善紀 吉田
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Definitions

  • the present invention relates to a novel method for producing hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, a method for promoting differentiation induction into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, and an agent for promoting differentiation induction.
  • the present invention also relates to a method for selecting induced pluripotent stem cells exhibiting high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, and reagents, microarrays and kits therefor. Furthermore, the present invention relates to a method for selecting induced pluripotent stem cells having high differentiation potential into blood cells, and reagents, microarrays and kits therefor.
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS artificial pluripotent stem cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS artificial pluripotent stem cells
  • Methods for inducing differentiation from ES cells and iPS cells into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells include methods by embryonic body formation and cytokine addition (Non-patent Document 1), heterologous stromal cells.
  • Patent Document 3 a method using a serum-free medium.
  • Patent Document 3 a method using a serum-free medium.
  • Establishment of a more efficient differentiation-inducing method, identification of a new differentiation-inducing factor, and a cell with high productivity at the stage before performing differentiation-inducing treatment The development of a method to select is required.
  • An object of the present invention is to provide a method for producing novel hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, and a novel factor that promotes differentiation induction into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells.
  • Another object of the present invention is to provide a method for selecting induced pluripotent stem cells exhibiting high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells.
  • an object of the present invention is to provide a method for selecting induced pluripotent stem cells having high differentiation potential into blood cells.
  • the present inventors have induced differentiation from pluripotent stem cells to hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells by adding IGF2 (insulin-like growth factor 2). Found to promote.
  • IGF2 insulin-like growth factor 2
  • the present inventors compared an iPS / ES cell line (Good line) having high differentiation potential to blood cells and RNA collected from an iPS / ES cell line (Bad line) having low differentiation potential to blood cells.
  • genes such as CTSF, FAM19A5, TRIM58, and TCERG1L had a positive correlation with the Good line.
  • the mixed colony number is high (ie, the iPS / ES cell line has a high differentiation potential into blood cells) and TRIM58, CSMD1 and It was found that the hypomethylation state of FAM19A5 shows a positive correlation.
  • the present invention has been completed based on the above findings.
  • a method for selecting iPS cells having high differentiation potential into blood cells comprising the following steps: (i) In a sample of induced pluripotent stem cells, from the group consisting of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and TCERG1L genes Measuring the level of expression of one or more genes selected, and (ii) the genes measured above compared to iPS cells or ES cells known to have high differentiation potential into blood cells A step of selecting induced pluripotent stem cells having the same or higher expression level, and / or the genes measured above in comparison with iPS cells or ES cells known to have low differentiation potential into blood cells Selecting an induced pluripotent stem cell having a high level of expression; Including the method.
  • a method for selecting induced pluripotent stem cells having a high differentiation potential into blood cells comprising the following steps: (i) in the induced pluripotent stem cells as samples, TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene A step of measuring the DNA methylation state, and (ii) the level of DNA methylation measured above is equal to or lower than that of iPS cells or ES cells known to have high differentiation potential into blood cells Steps for selecting induced pluripotent stem cells and / or induced pluripotency with a low level of DNA methylation as measured above compared to iPS cells or ES cells known to have low differentiation potential into blood cells Selecting stem cells; Including the method.
  • [3] One or more selected from the group consisting of red blood cells, platelets, monocytes, T cells, B cells, NK cells, neutrophils, eosinophils, basophils, granulocytes, and macrophages.
  • [4] The method according to any one of [1] to [3], wherein the induced pluripotent stem cell as the sample is a human iPS cell.
  • the iPS cells or ES cells known to have high differentiation potential into blood cells are 751A3, 783F1, 751B4, 692D2, 783A2, 744A2, 744B9, 609A2, 585B1, 784D1, 609A1, 648B1, 665A7,
  • the iPS cells or ES cells known to have a low differentiation potential into blood cells are 427F1, khES1, TIG1204F1, H9, Kep1, 454E2, 253G1, KRV-1, 457C1, 7-KE2, 201B7, The method according to any one of [1] to [5], wherein the cell is one or more cells selected from the group consisting of TIG1074F1, 246G1, 409B2, 201B6, 253G4, 404C2 and 588A4.
  • a kit for selecting induced pluripotent stem cells having a high differentiation potential into blood cells comprising a nucleic acid or artificial nucleic acid complementary to the gene sequence of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and / or TCERG1L.
  • a method for producing hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells comprising a step of culturing pluripotent stem cells in the presence of insulin-like growth factor 2 (IGF2).
  • IGF2 insulin-like growth factor 2
  • the step of culturing pluripotent stem cells in the presence of IGF2 includes the following steps: (i) culturing pluripotent stem cells in a medium containing BMP4 and IGF2, (ii) culturing the cells obtained in step (i) in a medium containing BMP4, bFGF and IGF2, (iii) culturing the cells obtained in step (ii) to VEGF, bFGF, IL-6, IL -3, culturing in a medium containing IL-11, SCF, Flt3L and IGF2, and (iv) culturing the cells obtained in step (iii) in a medium containing VEGF, IL-6, IL-3, IL-11, SCF, Flt3L, EPO, TPO and IGF2, [9 ] Method.
  • the pluripotent stem cell is cultured in the form of an embryoid body.
  • the pluripotent stem cell is an iPS cell.
  • the iPS cell is a human iPS cell.
  • iPS cell is an iPS cell selected by the following steps: (1) measuring the expression level of one or more genes selected from the group consisting of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and TCERG1L genes in candidate iPS cells; and (2) expression measured in step (1) Selecting iPS cells based on the level of.
  • iPS cell is an iPS cell selected by the following steps: (1) a step of measuring the DNA methylation state of TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene in candidate iPS cells, and (2) a step of selecting iPS cells based on the DNA methylation state measured in step (1) .
  • the present invention makes it possible to induce differentiation of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells more efficiently.
  • FIG. 1 shows the effect of IGF2 in inducing differentiation from human iPS cells to hematopoietic progenitor cells.
  • A The concentrations of IGF2 were divided into four groups of 0 ng / ml (not added), 20 ng / ml, 50 ng / ml, and 100 ng / ml for comparison.
  • B Anti-IGF1R antibody was added together with IGF2 (50 ng / ml), and it was confirmed that differentiation induction into hematopoietic progenitor cells was due to the effect of IGF2.
  • FIG. 2 shows the results of searching for genes whose expression varies in correlation with IGF2.
  • FIG. 3 shows the analysis result of microarray comparison of gene expression in the difference in differentiation ability into blood cells.
  • a scatter plot in which human iPS cell lines and human ES cell lines are divided into a cell group exhibiting high differentiation ability and a cell group exhibiting low differentiation ability into blood cells and gene expression patterns between the groups are compared is shown.
  • the straight line indicates that the gene expression level has changed by a factor of 5 or more.
  • Good indicates a cell exhibiting high differentiation ability into blood cells
  • bad indicates a cell exhibiting low differentiation ability into blood cells.
  • the present invention provides a method for producing hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells, comprising a step of culturing pluripotent stem cells in the presence of IGF2.
  • IGF2 is preferably human IGF2, for example, a basic peptide that has been processed into 67 amino acids by processing among proteins having the sequence represented by NCBI accession number NP_000603. IGF2 is available from Sigma-Aldrich or PeproTech.
  • the pluripotent stem cell that can be used in the present invention is a stem cell that has pluripotency that can be differentiated into all cells existing in a living body and also has a proliferative ability. Examples include, but are not limited to, embryonic stem (ES) cells, embryonic stem (ntES) cells derived from cloned embryos obtained by nuclear transfer, sperm stem cells (“GS cells”), embryonic germ cells (“EG cells”), Examples include induced pluripotent stem (iPS) cells. Preferred pluripotent stem cells are ES cells, ntES cells, and iPS cells.
  • Embryonic stem cells ES cells are stem cells established from the inner cell mass of early embryos (for example, blastocysts) of mammals such as humans and mice, and having pluripotency and proliferation ability by self-replication.
  • ES cells are embryonic stem cells derived from the inner cell mass of the blastocyst, the embryo after the morula, in the 8-cell stage of a fertilized egg, and have the ability to differentiate into any cell that constitutes an adult, so-called differentiation. And ability to proliferate by self-replication.
  • ES cells were discovered in mice in 1981 (MJ Evans and MH Kaufman (1981), Nature 292: 154-156), and then ES cell lines were established in primates such as humans and monkeys (JA Thomson et al. (1998), Science 282: 1145-1147, JA Thomson et al. (1995), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 92: 7844-7848, JA Thomson et al. (1996), Biol. Reprod , 55: 254-259 and JA Thomson and VS Marshall (1998), Curr. Top. Dev. Biol., 38: 133-165).
  • ES cells can be established by taking an inner cell mass from a blastocyst of a fertilized egg of a target animal and culturing the inner cell mass on a fibroblast feeder. Cell maintenance by subculture is performed using a medium supplemented with substances such as leukemia inhibitory factor (LIF) and basic fibroblast growth factor (bFGF). be able to.
  • LIF leukemia inhibitory factor
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • Methods for establishing and maintaining human and monkey ES cells are described in, for example, H. Suemori et al. (2006), Biochem. Biophys. Res. Commun., 345: 926-932, M. Ueno et al. (2006) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 103: 9554-9559, H. Suemori et al. (2001), Dev. Dyn., 222: 273-279 and H. Kawasaki et al. (2002), Proc. Natl. Aca
  • a medium for ES cell production for example, DMEM / F-12 medium supplemented with 0.1 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM non-essential amino acid, 2 mM L-glutamic acid, 20% KSR and 4 ng / ml bFGF, 37 Human ES cells can be maintained at 5 ° C. in a humidified atmosphere of 5% CO 2 . Also, ES cells need to be passaged every 3-4 days, where passage is eg 0.25% trypsin and 0.1 mg / ml collagenase IV in PBS containing 1 mM CaCl 2 and 20% KSR. Can be used.
  • ES cells can be selected using the expression of gene markers such as alkaline phosphatase, Oct-3 / 4, Nanog as an index.
  • gene markers such as alkaline phosphatase, Oct-3 / 4, Nanog as an index.
  • expression of gene markers such as OCT-3 / 4, NANOG, etc. can be detected by Real-Time PCR method, or cell surface antigens SSEA-3, SSEA-4, TRA-1 -60 and TRA-1-81 can be detected by immunostaining (Klimanskaya I, et al. (2006), Nature. 444: 481-485).
  • sperm stem cells are testis-derived pluripotent stem cells that are the origin of spermatogenesis. Like ES cells, these cells can be induced to differentiate into various types of cells, and have characteristics such as the ability to create chimeric mice when transplanted into mouse blastocysts (M. Kanatsu-Shinohara et al. ( 2003) Biol. Reprod., 69: 612-616; K. Shinohara et al. (2004), Cell, 119: 1001-1012).sperm stem cells are capable of self-replication in media containing glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) and repeated passage under the same culture conditions as ES cells (Takehashi Masanori et al. (2008), Experimental Medicine, Vol. 26, No. 5 (extra), pages 41-46, Yodosha (Tokyo, Japan)).
  • GDNF glial cell line-derived neurotrophic factor
  • Embryonic germ cells are cells that are established from embryonic primordial germ cells and have the same pluripotency as ES cells, such as LIF, bFGF, stem cell factor, etc. It can be established by culturing primordial germ cells in the presence of these substances (Y. Matsui et al. (1992), Cell, 70: 841-847; JL Resnick et al. (1992), Nature, 359: 550 -551).
  • iPS cells are cells that introduce a specific nuclear reprogramming substance into a somatic cell in the form of DNA or protein, or the endogenous nuclear reprogramming substance by a drug. It is an artificial stem cell derived from a somatic cell that has almost the same characteristics as ES cells, such as pluripotency of differentiation and proliferation ability by self-replication, which can be produced by increasing the expression of sex mRNA and protein ( K. Takahashi and S. Yamanaka (2006) Cell, 126: 663-676, K. Takahashi et al. (2007) Cell, 131: 861-872, J. Yu et al.
  • the nuclear reprogramming substance is not particularly limited as long as it is a gene specifically expressed in ES cells, a gene that plays an important role in maintaining undifferentiation of ES cells, or a gene product thereof.
  • nucleotide sequences of mouse and human cDNA of each nuclear reprogramming substance and amino acid sequence information of the protein encoded by the cDNA refer to NCBI accession numbers described in WO 2007/069666, and L-Myc, Lin28 , Lin28b, Esrrb, Esrrg and Glis1 mouse and human cDNA sequences and amino acid sequence information can be obtained by referring to the following NCBI accession numbers, respectively.
  • a person skilled in the art can prepare a desired nuclear reprogramming substance by a conventional method based on the cDNA sequence or amino acid sequence information.
  • nuclear reprogramming substances may be introduced into somatic cells in the form of proteins, for example, by lipofection, binding to cell membrane permeable peptides, microinjection, or in the form of DNA, for example, It can be introduced into somatic cells by techniques such as viruses, plasmids, artificial chromosomes, vectors, lipofection, liposomes, and microinjection.
  • Virus vectors include retrovirus vectors, lentivirus vectors (cell, 126, pp.663-676, 2006; Cell, 131, pp.861-872, 2007; Science, 318, pp.1917-1920, 2007 ), Adenovirus vectors (Science, 322, 945-949, 2008), adeno-associated virus vectors, Sendai virus vectors (Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-62, 2009) and the like.
  • artificial chromosome vectors include human artificial chromosomes (HAC), yeast artificial chromosomes (YAC), and bacterial artificial chromosomes (BAC, PAC).
  • a plasmid for mammalian cells can be used (Science, 322: 949-953, 2008).
  • the vector can contain regulatory sequences such as a promoter, an enhancer, a ribosome binding sequence, a terminator, and a polyadenylation site so that a nuclear reprogramming substance can be expressed.
  • promoter used examples include EF1 ⁇ promoter, CAG promoter, SR ⁇ promoter, SV40 promoter, LTR promoter, CMV (cytomegalovirus) promoter, RSV (rous sarcoma virus) promoter, MoMuLV (Moloney murine leukemia virus) LTR, HSV- A TK (herpes simplex virus thymidine kinase) promoter or the like is used.
  • EF1 ⁇ promoter, CAG promoter, MoMuLV LTR, CMV promoter, SR ⁇ promoter and the like can be mentioned.
  • drug resistance genes for example, kanamycin resistance gene, ampicillin resistance gene, puromycin resistance gene, etc.
  • thymidine kinase gene diphtheria toxin gene and other selectable marker sequences
  • green fluorescent protein (GFP) green fluorescent protein
  • GUS ⁇ -glucuronidase
  • reporter gene sequences such as FLAG, and the like.
  • the above vector contains a LoxP sequence before and after the gene or promoter encoding the nuclear reprogramming substance and the gene encoding the nuclear reprogramming substance that binds to it. You may have.
  • transposons include, for example, piggyBac, a transposon derived from lepidopterous insects (Kaji, K. et al., (2009), Nature, 458: 771-775, Woltjen et al., (2009), Nature, 458: 766-770, WO 2010/012077).
  • the vector replicates without chromosomal integration and is episomal, so that the origin and replication of lymphotropic herpesvirus (lymphotrophic herpes virus), BK virus and bovine papillomavirus
  • lymphotropic herpesvirus lymphotropic herpesvirus
  • BK virus BK virus
  • sequence which concerns on may be included. Examples include EBNA-1 and oriP or LargeLT and SV40ori sequences (WO 2009/115295, WO 2009/157201 and WO 2009/149233).
  • an expression vector for polycistronic expression may be used.
  • the gene coding sequence may be linked by an IRES or foot-and-mouth disease virus (FMDV) 2A coding region (Science, 322: 949-953, 2008 and WO 2009/092042, WO 2009/152529).
  • FMDV foot-and-mouth disease virus
  • HDAC histone deacetylase
  • VPA valproate PA
  • MC 1293 sodium butyrate
  • M344 small molecule inhibitors
  • siRNA and shRNA against HDAC e.g., HDAC1 siRNA (Smartpool® (Millipore), HuSH 29mer shRNA Nucleic acid expression inhibitors such as Constructs against HDAC1 (OriGene) etc.
  • DNA methyltransferase inhibitors eg 5'-azacytidine
  • G9a Histone methyltransferase inhibitors e.g., small molecule inhibitors such as BIX-01294 (Cell Stem Cell, 2: 525-528 (2008)), siRNA and shRNA against G9a (eg, G9a siRNA (human) (Santa Cruz Biotechnology) Etc.), etc.], L-channel calcium agonist (for example, Bayk8644) (Cell Stem Cell, 3, 568-574 (2008)), p53 inhibitors (eg siRNA and shRNA against p53) (CellpStem Cell, 3, 475-479 (2008)), Wnt Signaling activator (eg soluble Wnt3a ) (Cell Stem Cell, 3, 132-135 (2008)), growth factors such as LIF or bFGF, ALK5 inhibitors (eg, SB431542) (Nat.
  • small molecule inhibitors such as BIX-01294 (Cell Stem Cell, 2: 525-528 (2008)), siRNA and shRNA against G9a (eg, G9a si
  • Examples of the drug in the method for increasing the expression of the endogenous protein of the nuclear reprogramming substance by the drug include 6-bromoindirubin-3'-oxime, indirubin-5-nitro-3'-oxime, valproic acid, 2- (3- (6-methylpyridin-2-yl) -lH-pyrazol-4-yl) -1,5-naphthyridine, 1- (4-methylphenyl) -2- (4,5,6,7-tetrahydro-2-imino- 3 (2H) -benzothiazolyl) ethanone HBr (pifithrin-alpha), prostaglandin J2, and prostaglandin E2 are exemplified (WO 2010/068955).
  • Examples of the culture medium for iPS cell induction include (1) DMEM, DMEM / F12 or DME medium containing 10-15% FBS (these media include LIF, penicillin / streptomycin, puromycin, L-glutamine). , (2) ES cell culture medium containing bFGF or SCF, such as mouse ES cell culture medium (for example, TX-WES medium, thrombos. X) or primate ES cell culture medium (for example, primate (human & monkey) ES cell culture medium (Reprocell, Kyoto, Japan), mTeSR-1).
  • mouse ES cell culture medium for example, TX-WES medium, thrombos. X
  • primate ES cell culture medium for example, primate (human & monkey) ES cell culture medium (Reprocell, Kyoto, Japan), mTeSR-1).
  • a somatic cell and a nuclear reprogramming substance are brought into contact with each other in a DMEM or DMEM / F12 medium containing 10% FBS in the presence of 5% CO 2 at 37 ° C.
  • Culture for ⁇ 7 days then re-spread the cells on feeder cells (eg, mitomycin C-treated STO cells, SNL cells, etc.), and bFGF-containing primate ES cells approximately 10 days after contact between the somatic cells and the nuclear reprogramming substance
  • the cells can be cultured in a culture medium and ES cell-like colonies can be generated about 30 to about 45 days or more after the contact.
  • the cells may be cultured under conditions of an oxygen concentration as low as 5-10%.
  • 10% FBS-containing DMEM medium for example, LIF, penicillin / streptomycin, puromycin, L-glutamine, mitomycin C-treated STO cells, SNL cells, etc.
  • Non-essential amino acids, ⁇ -mercaptoethanol, etc. can be included as appropriate.
  • ES-like colonies after about 25 to about 30 days or more.
  • the medium is replaced with a fresh medium once a day from the second day after the start of the culture.
  • the number of somatic cells used for nuclear reprogramming is not limited, but ranges from about 5 ⁇ 10 3 to about 5 ⁇ 10 6 cells per 100 cm 2 of culture dish.
  • a marker gene-expressing cell When a gene containing a drug resistance gene is used as a marker gene, a marker gene-expressing cell can be selected by culturing in a medium (selective medium) containing the corresponding drug.
  • the marker gene is a fluorescent protein gene
  • the marker gene-expressing cells can be obtained by observing with a fluorescence microscope, by adding a luminescent substrate in the case of a luminescent enzyme gene, and by adding a chromogenic substrate in the case of a chromogenic enzyme gene. Can be detected.
  • a “somatic cell” may be any cell other than a germ cell derived from a mammal (eg, human, mouse, monkey, pig, rat, etc.), for example, keratinized epithelial cell (Eg, keratinized epidermal cells), mucosal epithelial cells (eg, epithelial cells of the tongue surface), exocrine glandular epithelial cells (eg, mammary cells), hormone-secreting cells (eg, adrenal medullary cells), cells for metabolism and storage (Eg, hepatocytes), luminal epithelial cells that make up the interface (eg, type I alveolar cells), luminal epithelial cells (eg, vascular endothelial cells) in the inner chain, and ciliated cells that are capable of transporting (Eg, airway epithelial cells), extracellular matrix secreting cells (eg, fibroblasts), contractile cells (eg, smooth muscle cells), blood and immune system cells (e
  • undifferentiated progenitor cells including somatic stem cells
  • terminally differentiated mature cells can be used as the source of somatic cells in the invention.
  • undifferentiated progenitor cells include tissue stem cells (somatic stem cells) such as neural stem cells, hematopoietic stem cells, mesenchymal stem cells, and dental pulp stem cells.
  • the mammal individual from which somatic cells are collected is not particularly limited, but is preferably a human.
  • E Cloned embryo-derived ES cells obtained by nuclear transfer nt ES cells are cloned embryo-derived ES cells produced by nuclear transfer technology and have almost the same characteristics as ES cells derived from fertilized eggs (T. Wakayama et al. (2001), Science, 292: 740-743; S. Wakayama et al. (2005), Biol. Reprod., 72: 932-936; J. Byrne et al. (2007) , Nature, 450: 497-502).
  • an ES cell established from an inner cell mass of a clonal embryo-derived blastocyst obtained by replacing the nucleus of an unfertilized egg with the nucleus of a somatic cell is an nt ES (nuclear transfer ES) cell.
  • nt ES nuclear transfer ES
  • a combination of nuclear transfer technology JB Cibelli et al. (1998), Nat. Biotechnol., 16: 642-646) and ES cell production technology (above) is used ( Wakayama Kiyoka et al. (2008), Experimental Medicine, 26, 5 (extra number), 47-52).
  • reprogramming can be performed by injecting a somatic cell nucleus into an enucleated unfertilized egg of a mammal and culturing it for several hours.
  • (F) Fusion stem cell A stem cell that has the same pluripotency as a fused ES cell by fusing a somatic cell and an egg or ES cell, and also has a gene unique to the somatic cell (Tada M et al. al. Curr Biol. 11: 1553-8, 2001; Cowan CA et al. Science. 2005 Aug 26; 309 (5739): 1369-73).
  • Differentiation induction method to hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells As a method for inducing differentiation of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells, for example, a method by formation of embryoid bodies and addition of cytokines (Chadwick et al al. Blood 2003, 102: 906-15, Vijayaragavan et al. Cell Stem Cell 2009, 4: 248-62 and Saeki et al. Stem Cells 2009, 27: 59-67), co-culture with heterologous stromal cells (Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov; 221 (2): 367-77), a method using a serum-free medium (WO2011 / 115308), and the like, but are not limited thereto.
  • hematopoietic stem cells and “hematopoietic progenitor cells” mean cells positive for CD43 among cells committed to the blood lineage.
  • hematopoietic progenitor cell means a cell that has been differentiated more than “hematopoietic stem cell” and whose direction of cell differentiation has been determined. These cells can be detected by expression of markers such as KDR, CD34, CD90 and CD117, but the markers are not limited thereto.
  • hematopoietic stem cells have the ability to produce mature blood cells such as T cells, B cells, erythrocytes, platelets, eosinophils, monocytes, neutrophils, basophils, and have the ability to self-replicate Means a cell.
  • hematopoietic progenitor cells are not distinguished from “hematopoietic stem cells” unless otherwise specified.
  • the hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells induced to differentiate may be provided as a cell population containing other cell types, or may be a purified population.
  • pluripotent stem cells such as ES cells and iPS cells may be isolated by any method and induced by suspension culture, or adhesion culture using a coated culture dish. You may guide by.
  • a separation solution having protease activity and collagenase activity for example, Accutase (TM) and Accumax (TM), etc.
  • a separation solution having protease activity and collagenase activity for example, Accutase (TM) and Accumax (TM), etc.
  • TM Accutase
  • TM Accutase
  • TM Accutase
  • TM Accutase
  • TM Accutase
  • TM Accutase
  • the human pluripotent stem cell used is a colony cultured until it becomes 80% confluent with respect to the used dish.
  • a separation method using 0.25% trypsin / EDTA can be mentioned.
  • the suspension culture means that an embryoid body is formed by culturing cells in a non-adherent state on a culture dish, and is not particularly limited, but is artificial for the purpose of improving adhesion to cells.
  • a culture dish that has not been treated (for example, coated with an extracellular matrix) or that has been artificially inhibited from adhesion (for example, coated with polyhydroxyethyl methacrylic acid (poly-HEMA)) Can be done using.
  • the feeder cell means another cell that plays an auxiliary role used for adjusting the culture condition of the target cell.
  • a cell obtained from the AGM region of a mammalian fetus for example, AGM -S3 cell line: JP 2001-37471
  • mouse mesenchymal cells for example, C3H10T1 / 2 cell line: available from RIKEN BioResource Center
  • stromal cells derived from bone marrow for example, OP9 Cell lines
  • the coating agent include matrigel (BD), collagen, gelatin, laminin, heparan sulfate proteoglycan, entactin, and combinations thereof.
  • a medium for inducing hematopoietic progenitor cells can be prepared using a medium used for culturing animal cells as a basal medium.
  • the basal medium include IMDM medium, MediumMedi199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium, Vischer's medium , And mixed media thereof.
  • the medium may contain serum or may be serum-free.
  • the medium can be, for example, albumin, transferrin, Knockout Serum Replacement (KSR) (serum substitute for FBS during ES cell culture), N2 supplement (Invitrogen), B27 supplement (Invitrogen), fatty acid, insulin, collagen It may contain one or more serum replacements such as precursors, trace elements, 2-mercaptoethanol (2ME), thiol glycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, Glutamax (Invitrogen), non-essential amino acids, vitamins, It may also contain one or more substances such as growth factors, small molecule compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts.
  • KSR Knockout Serum Replacement
  • the medium for differentiation into hematopoietic progenitor cells preferably contains vascular endothelial growth factor (VEGF).
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • concentration of VEGF in the medium is, for example, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, 200 ng / ml, 300 ng / ml, 400 ng / ml, 500 ng / ml, 1 ⁇ g / ml, but not limited thereto.
  • it is 20 ng / ml.
  • a more preferable medium is an ⁇ MEM medium (also referred to as HPC differentiation medium) containing 10% FBS, VEGF, transferrin, L-glutamine, ⁇ -monothioglycerol (MTG) and ascorbic acid. obtain.
  • ⁇ MEM medium also referred to as HPC differentiation medium
  • the culture period is, for example, 20 days or less, preferably 12-14 days, and particularly preferably 13 days.
  • a step of removing feeder cells and concentrating / purifying hematopoietic progenitor cells can be included. This step can be achieved by collecting and removing only the feeder cells after the hematopoietic progenitor cells are peeled from the culture dish together with the feeder cells.
  • Examples of the method of peeling off from the culture dish include, but are not limited to, a method of separating mechanically, a separation method using a separation solution having protease activity and collagenase activity, or a separation solution having only collagenase activity.
  • a method using collagenase Type IV and / or Trypsin / EDTA is used.
  • 0.05% trypsin / EDTA is preferably used.
  • differentiation induction into hematopoietic progenitor cells may be performed, for example, by the following steps: (i) forming EB, (ii) primitive streak / mesoderm forming step; (iii) specializing in hematopoietic progenitor cells, and (iv) proliferating and expanding hematopoietic progenitor cells;
  • a medium in which an arbitrary substance necessary for the basic medium is added to induce a target cell or to achieve the object in each step can be used.
  • a medium supplemented with the following substances is used in each step: (i) BMP-4, (ii) BMP4 and bFGF, (iii) VEGF, bFGF, IL-6, IL-3, IL-11, SCF and Flt3L, and (iv) VEGF, IL-6, IL-3, IL-11, SCF, Flt3L, EPO and TPO.
  • the basal medium used in the steps (i) to (iv) is preferably StemPro-34 supplemented with L-glutamic acid, thioglycerol and ascorbic acid.
  • the concentration of BMP-4 in the medium of the steps (i) and (ii) may be any concentration as long as it can form EB, but preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, for example, 1 ng / ml, 5 ng / ml 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml and 100 ng / ml, particularly preferably 10 ng / ml.
  • the concentration of bFGF in the medium of step (ii) and (iii) is preferably 100 pg / ml to 20 ng / ml, for example, 100 pg / ml, 250 pg / ml, 500 pg / ml, 750 pg / ml, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10ng / ml, 20ng / ml, but not limited to these. Particularly preferred is 1 ng / ml or 5 ng / ml in each step.
  • the concentration of VEGF in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, such as 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, but not limited thereto. Particularly preferred is 10 ng / ml.
  • the concentration of IL-6 in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, for example, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, and 100 ng / ml, but are not limited thereto. Particularly preferred is 10 ng / ml.
  • the concentration of IL-3 in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, for example, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, and 100 ng / ml, but are not limited thereto. Particularly preferred is 40 ng / ml.
  • the concentration of IL-11 in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 500 pg / ml to 50 ng / ml, for example 500 pg / ml, 750 pg / ml, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml, and 50 ng / ml, but not limited thereto. Particularly preferred is 5 ng / ml.
  • the concentration of SCF in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 1 ng / ml to 500 ng / ml, for example 1 ng / ml, 25 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, 200 ng Although not limited to / ml, 300 ng / ml, 400 ng / ml, and 500 ng / ml. Particularly preferred is 100 ng / ml.
  • the concentration of FLT3L in the medium of step (iii) and (iv) is preferably 1 ng / ml to 500 ng / ml, for example 1 ng / ml, 25 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, 200 ng Although not limited to / ml, 300 ng / ml, 400 ng / ml, and 500 ng / ml. Particularly preferred is 100 ng / ml.
  • the concentration of EPO in the medium of step (iv) is preferably 1 U / ml to 10 U / ml, for example, 1 U / ml, 2 U / ml, 3 U / ml, 4 U / ml, 5 U / ml, 6 U / ml, 7 U Although not limited to / ml, 8U / ml, 9U / ml, and 10U / ml. Particularly preferred is 4 U / ml.
  • the concentration of TPO in the medium of step (iv) is preferably 1 ng / ml to 100 ng / ml, for example, 1 ng / ml, 5 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, but not limited thereto. Particularly preferred is 50 ng / ml.
  • the culture time in the step (i) is, for example, 5 days or less, preferably 1 to 3 days, particularly preferably 1 day.
  • the culture time in the step (ii) is, for example, 10 days or less, preferably 1 to 5 days, particularly preferably 3 days.
  • the culture time for the step (iii) is, for example, 10 days or less, preferably 2 to 6 days, and particularly preferably 4 days.
  • the culture time in the step (iv) is, for example, 20 days or less, preferably 5 to 15 days, and particularly preferably 12 days.
  • IGF2 is added to the culture medium in order to promote differentiation induction of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells.
  • IGF2 may be added throughout the whole step or may be added in a specific step.
  • IGF2 is performed in the following steps: (1) Step (i), (2) Step (i) and step (ii), (3) Step (i) to Step (iii), (4) Step (i) to Step (iv) (5) Step (i) and step (iii), (6) Step (i), Step (iii) and Step (iv), (7) Step (i) and step (iv), (8) Step (i), Step (ii) and Step (iv), (9) Step (ii), (10) Step (ii) and step (iii), (11) Step (ii) to Step (iv) (12) Step (ii) and step (iv), (13) Step (iii) or (14) Step (iii) and step (iv).
  • the concentration of IGF2 added in the above steps (i) to (iv) may be the same concentration throughout all the steps, or may be a different concentration for each step.
  • the concentration of IGF2 added in steps (i) to (iv) is preferably 1 ng / ml to 500 ng / ml, for example, 1 ng / ml, 25 ng / ml, 50 ng / ml, 75 ng / ml, 100 ng / ml, 200 ng / ml, 300 ng / ml, 400 ng / ml, and 500 ng / ml are not limited to these.
  • a step of purifying and purifying mesoderm cells after completion of the production step (ii) may be included.
  • any method that can separate the mesoderm cell group with high purity from the population of cells including the mesoderm cell group may be used, for example, by flow cytometry. Examples include purification and purification.
  • cells can be selected using SSEA-1-negative (ie, SSEA-1-) as an index so that undifferentiated cells are not included in the purified and purified mesoderm population.
  • the step of selecting Flk1-positive (ie, Flk1 +) and SSEA-1 ⁇ cells may be performed simultaneously or as separate steps. For example, selection of cells that are Flk1 + / SSEA-1- can be done simultaneously using flow cytometry.
  • the culture temperature is not limited to the following, but is about 30 to 40 ° C., preferably about 37 ° C., and the culture is performed in an atmosphere of CO 2 -containing air.
  • the CO 2 concentration is about 2-5%, preferably 5%.
  • This step can also be performed under low oxygen conditions, and the oxygen concentration in this case is not particularly limited, but is 1 to 10%, preferably 5%.
  • the culture medium may further contain a ROCK inhibitor.
  • a ROCK inhibitor is not particularly limited as long as it can suppress the function of Rho kinase (ROCK).
  • ROCK Rho kinase
  • Y-27632 can be used in the present invention.
  • the present invention relates to iPS cells established as described above, IGF2, T, HOXB4, GATA2, CEBPA, MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, Using only high or low expression of one or more genes selected from the group consisting of SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2 as an index, only cells showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells are selected. be able to.
  • the term “cell exhibiting high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells” is a cell having a relatively high directivity toward hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells. It means cells with high expression of genes important for mesoderm differentiation and / or genes important for hematopoietic stem cell differentiation.
  • Cells exhibiting high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells are, for example, 585A1, H9, TIG1204F1, KRV ⁇ when differentiation induction into hematopoietic cell lineages is performed by a conventional method in the art. It can be a cell from which a number of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells equal to or greater than 1, khES3, 7-KE2, TIG1074F1, 201B6, 454E2, 610B1, 665A7 or 253G4.
  • the term “cell showing low differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells” as used herein is a cell having a relatively low directionality to hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells. It means a cell with low expression of genes important for mesoderm differentiation and / or genes important for hematopoietic stem cell differentiation.
  • Cells showing low differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells are, for example, 589B1, 648B1, 751A3, 451F3, when differentiation induction into a hematopoietic cell lineage is performed by a conventional method in the art. It can be a cell from which a number of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells are derived that are equal to or less than 427F1, 609A1, 744A2, 751B4, 783F1, 784D1, 246G1 or 588A4.
  • genes important for mesoderm differentiation include, but are not limited to, IGF2, GATA6, GATA4, SNAI2, MESP1, T, EOMES, SOX17, BMP4, CDX2, MESP2, and SNAIL.
  • genes that are important for hematopoietic stem cell differentiation include, but are not limited to, GATA2, HOXB4, CEBPA, and RUNX1.
  • sequence information of human and mouse-derived genes for each gene can be obtained by referring to NCBI (US) accession numbers described in Table 1.
  • the method for detecting the gene is not particularly limited, and examples thereof include hybridization such as Northern blotting and in situ hybridization, RNase protection assay, PCR method, real-time PCR method, and microarray method.
  • the preferred detection method is to extract total RNA, including mRNA, from a biological sample, obtain mRNA using a poly-T column, synthesize cDNA by reverse transcription, amplify by phage or PCR cloning, and target DNA Hybridization with a probe having a size of about 20 to 70 ⁇ mer or larger, or quantitative PCR using a primer having a size of about 20 to 30 ⁇ mer, or the like.
  • a label in hybridization or PCR a fluorescent label can be used.
  • the fluorescent label cyan, fluorescamine, rhodamine and derivatives thereof such as Cy3, Cy5, FITC, TRITC and the like can be used.
  • iPS cells or embryonic stem cells that are known to show high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells
  • IGF2, T, HOXB4, GATA2, CEBPA detected by the above method for iPS cells or embryonic stem cells (ES cells) known to exhibit low differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells The expression level of one or more genes selected from the group consisting of MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2 is set as a reference value (negative reference value), which is higher than this reference value.
  • the target iPS cells may be selected as iPS cells showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells.
  • the expression level of one or more genes selected from the group consisting of CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2 is set as a reference value (negative reference value) and is less than this reference value Even if the target iPS cells are excluded as iPS cells showing low differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, iPS cells showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells can be selected. Good.
  • the expression level of one or more genes selected from the group consisting of CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2 is set as a reference value (positive reference value) and is equivalent to this reference value or
  • target iPS cells which are less than that, as iPS cells showing low differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, iPS cells showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells are excluded. You may sort.
  • the present invention relates to a method for selecting one or more genes selected from the group consisting of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and TCERG1L genes of iPS cells established as described above. Only cells having high differentiation ability into blood cells can be selected using low expression or hypomethylation or hypermethylation of DNA of TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene as an index.
  • the term “cell having high differentiation ability into blood cells” means a cell having a relatively high directivity to blood cells. “Has a high ability to differentiate into blood cells” means that, for example, at least one or more colonies can be formed in a colony formation assay.
  • Cells with high differentiation potential into blood cells '' are, for example, 751A3, 783F1, 751B4, 692D2, 783A2, 744A2, 744B9, 609A2, 585B1, 784D1, 609A1, 648B1, 665A7, 451F3, 610B1, in a colony formation assay. It can be a cell that can form as many or more colonies as 606A1, 648A1 or khES3.
  • ⁇ cells known to have high differentiation potential into blood cells '' for example, 751A3, 783F1, 751B4, 692D2, 783A2, 744A2, 744B9, 609A2, 585B1, 784D1, 609A1, 648B1, 665A7, 451F3, 610B1 , 606A1, 648A1, and / or khES3, but not limited to.
  • the term “cell having a low differentiation potential into blood cells” as used herein means a cell having a relatively low directivity to blood cells. “Has a low ability to differentiate into blood cells” means that, for example, a colony cannot be formed at all in the colony formation assay, or substantially the same.
  • Cells with low differentiation potential to blood cells '' are, for example, 427F1, khES1, TIG1204F1, H9, Kep1, 454E2, 253G1, KRV-1, 457C1, 7-KE2, 201B7, TIG1074F1, 246G1, in a colony formation assay. It may be a cell that forms a number of colonies equal to or less than 409B2, 201B6, 253G4, 404C2 or 588A4.
  • ⁇ cells known to have low differentiation potential into blood cells '' for example, 427F1, khES1, TIG1204F1, H9, Kep1, 454E2, 253G1, KRV-1, 457C1, 7-KE2, 201B7, TIG1074F1, 246G1 409B2, 201B6, 253G4, 404C2, and / or 588A4, etc., but are not limited thereto.
  • blood cell means a cell component present in blood, for example, red blood cells, platelets, monocytes, T cells, B cells, NK cells, neutrophils, eosinophils, basophils, granules. It can be, but is not limited to, one or more cells selected from the group consisting of spheres and macrophages.
  • the “blood cell” may be a cell generated by a colony assay, such as red blood cells, granulocytes and / or macrophages.
  • the method for detecting the gene is not particularly limited, and examples thereof include hybridization such as Northern blotting and in situ hybridization, RNase protection assay, PCR method, real-time PCR method, and microarray method.
  • the preferred detection method is to extract total RNA, including mRNA, from a biological sample, obtain mRNA using a poly-T column, synthesize cDNA by reverse transcription, amplify by phage or PCR cloning, and target DNA Hybridization with a probe having a size of about 20 to 70 ⁇ mer or larger, or quantitative PCR using a primer having a size of about 20 to 30 ⁇ mer, or the like.
  • a label in hybridization or PCR a fluorescent label can be used.
  • the fluorescent label cyan, fluorescamine, rhodamine and derivatives thereof such as Cy3, Cy5, FITC, TRITC and the like can be used.
  • TRIM58, CTSF, FAM19A5 detected by the above method for iPS cells or embryonic stem cells (ES cells) that are known to have high differentiation potential to blood cells when selecting iPS cells having high differentiation potential to blood cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • the expression level of one or more genes selected from the group consisting of TCERG1L is set as a reference value, and target iPS cells equal to or higher than this reference value (positive reference value) are transferred to blood cells. You may select as an iPS cell which has high differentiation potency.
  • the above gene expression level value may be set as a reference value (negative reference value), and target iPS cells higher than this reference value may be selected as iPS cells having high differentiation ability into blood cells.
  • IPS cells having differentiation ability may be selected.
  • IPS cells having high differentiation potential into blood cells may be selected.
  • iPS cells having a high differentiation potential into blood cells may be selected by measuring the methylation state of DNA involved in the control of gene expression of TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene regions.
  • a known methylation analysis method can be used as a method for measuring the DNA methylation state.
  • a method is known in which an unmethylated recognition sequence is cleaved and examined using a restriction enzyme.
  • DNA is treated with a methylation-sensitive restriction enzyme, the unmethylated recognition site is cleaved, and the resulting DNA is electrophoresed and then subjected to Southern blotting, etc. The presence or absence of methylation of can be determined.
  • methylation sensitive restriction enzyme examples include SmaI and HpaII, preferably SmaI.
  • Unmethylated sensitive enzymes that recognize the same recognition sequence as the methylation sensitive enzyme are readily known by those skilled in the art and can be combined with the methylation sensitive enzyme.
  • bisulfite can be used as a method for measuring the DNA methylation state.
  • DNA is bisulfite treated, only unmethylated cytosine is converted to uracil, and methylated cytosine is not converted and remains cytosine.
  • the bisulfite sequencing method it is possible to know the presence or absence of DNA methylation by PCR amplification of a bisulfite-treated genomic region, cloning, and sequencing. In addition, even if the presence or absence of DNA methylation is detected by cleaving the bisulfite-treated DNA using the COBRA (Combined bisulfite restriction) analysis and examining the presence or absence of the restriction enzyme recognition site. Good.
  • COBRA combined bisulfite restriction
  • methylation-specific PCR can be used in which the PCR primer is made to recognize the difference in sequence before and after bisulfite treatment, and the presence or absence of methylated DNA and unmethylated DNA is discriminated based on the presence or absence of PCR products.
  • a DNA sequence of a DNA methylated region is extracted using a methylation-specific oligonucleotide (MSO) microarray or a DNA methylation-specific antibody, and then subjected to PCR and sequencing.
  • MSO methylation-specific oligonucleotide
  • a chromosome immunoprecipitation method ChIP: Chromatin Immuno-Precipitation
  • ChIP Chromatin Immuno-Precipitation
  • TRIM58, CSMD1, and / or iPS cells or embryonic stem cells (ES cells) known to have high differentiation ability into blood cells were detected by the above method.
  • the DNA methylation value of both chromosomes is set as a reference value (positive reference value), and target iPS cells that are equal to or less than this reference value are iPS with high differentiation potential to blood cells You may select as a cell.
  • DNA methylation of both chromosomes for TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene regions detected by the above method for iPS cells or embryonic stem cells (ES cells) known to have low differentiation potential into blood cells May be set as a reference value (negative reference value), and target iPS cells lower than this reference value may be selected as iPS cells having high differentiation potential into blood cells.
  • iPS cells or embryonic stem cells (ES cells) that are known to have a high differentiation potential into blood cells can be detected by the above method for TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene regions.
  • a reference value negative reference value
  • target iPS cells that are higher than this reference value
  • iPS cells with high differentiation ability into blood cells are removed. You may sort.
  • iPS cells or embryonic stem cells (ES cells), which are known to have low differentiation potential into blood cells are detected by the above method for TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene regions.
  • a reference value positive reference value
  • target iPS cells that are equal to or higher than this reference value
  • high differentiation potential to blood cells IPS cells having the above may be selected.
  • a method for detecting the ratio of methylated DNA for example, in the case of a method in which a non-methylated recognition sequence is cleaved and examined using a restriction enzyme, DNA is fragmented and then quantified by Southern blotting. It can be calculated by comparing the amount of unfragmented DNA and fragmented DNA.
  • the bisulfite sequencing method arbitrarily selected chromosomes are sequenced. Therefore, a template obtained by cloning a PCR product is used a plurality of times, for example, 2 times or more, preferably 5 times or more, more preferably 10 times or more.
  • the ratio can be calculated by repeating sequencing and comparing the number of clones in which DNA methylation is detected with respect to the number of clones sequenced.
  • the pyrosequencing method when used, it can be directly measured by the ratio of cytosine and thymine.
  • ChIP Chromatin Immuno-Precipitation
  • the amount of target DNA precipitated and the amount of DNA before precipitation are detected by PCR and compared.
  • the methylation rate of DNA can be detected.
  • Kit for selecting cells showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells The present invention is a pluripotent stem cell showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells, preferably induced pluripotency
  • a kit useful for sorting stem cells is provided.
  • the cell selection kit showing high differentiation efficiency into hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells according to the present invention includes a gene measurement kit, a microarray, or a DNA methylation measurement kit based on the above-described measurement method. It is not limited.
  • the gene targeted for measurement is, for example, 1 selected from the group consisting of IGF2, T, HOXB4, GATA2, CEBPA, MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2. These genes can be used.
  • the IGF2 gene is the measurement target.
  • the gene measurement kit may include a nucleic acid or an artificial nucleic acid probe having a size of about 20 to 70 ⁇ mer or larger complementary to a target DNA or mRNA of a gene, or a primer having a size of about 20 to 30 ⁇ mer. .
  • Artificial nucleic acid probes can be modified bases such as adenine, cytosine, guanine or thymine to bases such as inosine, 5-methylcytosine, 2-aminopurine, 2-amino-6-chloropurine, 2,6-diaminopurine.
  • the iPS cell sorting kit according to the present invention can include a microarray prepared by binding these probes to a carrier.
  • the kit also comprises a reagent for extracting one or more genes selected from the group consisting of IGF2, T, HOXB4, GATA2, CEBPA, MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2.
  • a reagent for extracting one or more genes selected from the group consisting of IGF2, T, HOXB4, GATA2, CEBPA, MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4 and SNAI2.
  • An extraction reagent or a chromosome extraction reagent may also be included.
  • the kit of the present invention can also be used for diagnosis.
  • the diagnostic kit of the present invention is a discriminant analysis means, for example, a document or manual describing a discriminant analysis procedure, a program for causing a computer to execute the discriminant analysis procedure, the program list, a computer recording the program Further, a readable recording medium (for example, a flexible disk, an optical disk, a CD-ROM, a CD-R, and a CD-RW), a device or a system (such as a computer) that performs discriminant analysis may be included.
  • a readable recording medium for example, a flexible disk, an optical disk, a CD-ROM, a CD-R, and a CD-RW
  • a device or a system such as a computer
  • Kit for selecting cells having high differentiation ability into blood cells The present invention provides a kit useful for selecting induced pluripotent stem cells having high differentiation ability into blood cells.
  • the kit for selecting cells having high differentiation ability into blood cells according to the present invention includes, but is not limited to, a gene measurement kit, a microarray, or a DNA methylation measurement kit by the above-described measurement method.
  • the gene targeted for measurement may be, for example, one or more genes selected from the group consisting of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and TCERG1L genes.
  • the TRIM58 gene is the measurement target.
  • the gene measurement kit may include a nucleic acid or an artificial nucleic acid probe having a size of about 20 to 70 ⁇ mer or larger complementary to a target DNA or mRNA of a gene, or a primer having a size of about 20 to 30 ⁇ mer. .
  • Artificial nucleic acid probes can be modified bases such as adenine, cytosine, guanine or thymine to bases such as inosine, 5-methylcytosine, 2-aminopurine, 2-amino-6-chloropurine, 2,6-diaminopurine.
  • the iPS cell sorting kit according to the present invention can include a microarray prepared by binding these probes to a carrier.
  • the DNA methylation measurement kit may contain a methylation sensitive or insensitive restriction enzyme.
  • a methylation sensitive or insensitive restriction enzyme When DNA is treated with a methylation-sensitive restriction enzyme, the unmethylated recognition site is cleaved, and the resulting DNA is electrophoresed and then subjected to Southern blotting, etc. The presence or absence of methylation of can be determined.
  • a bisulfite reagent for detecting methylation of cytosine base using a bisulfite reaction can be included.
  • reagents and microarrays for use in the MSO (methylation-specific oligonucleotide) microarray method using the bisulfite reaction may also be included (Ideho Hatada, Experimental Medicine, Vol. 24, No. 8 (Special Issue), pp.212-219 ( 2006)).
  • the kit can contain a probe or primer specific to the target region (for example, the expression control region of TRIM58, CSMD1, and / or FAM19A5 gene) regardless of the presence or absence of bisulfite treatment.
  • a probe or primer specific to the target region for example, the expression control region of TRIM58, CSMD1, and / or FAM19A5 gene
  • MSO methylation-specific oligonucleotide
  • PCR is performed by selecting a bisulfite-treated DNA as a primer that does not change regardless of methylation (not including CpG sequence).
  • unmethylated cytosine is amplified as thymine
  • methylated cytosine is amplified as cytosine.
  • the DNA methylation measurement kit can contain reagents for amplifying target regions such as gene expression control regions, and components necessary for PCR such as DNA polymerase, appropriate buffer, magnesium salt, and dNTP. Can be included as appropriate.
  • the kit for selecting cells having high differentiation ability into blood cells of the present invention is used as a negative control for target regions such as TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene expression control regions of cells having low differentiation ability into blood cells. It can contain methylated DNA. Further, as a positive control, unmethylated DNA of a target region such as an expression control region of TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene of a cell having high differentiation ability into blood cells can be contained.
  • the kit may also contain one or more gene extraction reagents, gene extraction reagents, or chromosome extraction reagents selected from the group consisting of TRIM58, CTSF, FAM19A5 and TCERG1L genes.
  • this kit may contain a TRIM58, CSMD1 and / or FAM19A5 gene extraction reagent, gene extraction reagent, or chromosome extraction reagent.
  • the kit of the present invention can also be used for diagnosis.
  • the diagnostic kit of the present invention is a discriminant analysis means, for example, a document or manual describing a discriminant analysis procedure, a program for causing a computer to execute the discriminant analysis procedure, the program list, a computer recording the program Further, a readable recording medium (for example, a flexible disk, an optical disk, a CD-ROM, a CD-R, and a CD-RW), a device or a system (such as a computer) that performs discriminant analysis may be included.
  • a readable recording medium for example, a flexible disk, an optical disk, a CD-ROM, a CD-R, and a CD-RW
  • a device or a system such as a computer
  • Cellular human ES cells include KhES1, KhES3 (Suemori H, et al. Biochem Biophys Res Commun. 345: 926-32, 2006) and H1, H9 (Thomson, JA, et al., Science 282: 1145-1147, 1998). ) was used. Moreover, the cells shown in Table 3 below were used as iPS cells.
  • ES cells and iPS cells were established and cultured by conventional methods (Takahashi K and Yamanaka S, Cell 126 (4), 663, 2006, Okita K, et al., Nature 448 (7151), 313 , 2007, Nakagawa M, et al., Nat Biotechnol 26 (1), 101, 2008, Aoi, T. et al., Science 321, 699-702, 2008 and Okita K, et al., Science 322, 949, 2008).
  • Embryoid bodies were prepared by culturing small nodules (10-20 cells) of iPS cells not containing feeder cells in an agglutination medium consisting of StemPro-34 (Invitrogen) supplemented with 24 hours.
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • bFGF 1 ng / mL
  • IL-6 interleukin-6
  • SCF stem cell factor
  • FLT3L human FLT3 ligand
  • VEGF erythropoietin
  • EPO erythropoietin
  • TPO thrombopoietin
  • SCF 100 ng / mL
  • FLT3L 100 ng / mL
  • IL-6 10 ng / mL
  • IL-11 5 ng / mL
  • IL-3 40 ng / mL
  • the cells were dissociated to a single cell suspension with a 1000 ml pipette, then the dissociated cells were passed through a 70 ⁇ m filter, The collected cells were evaluated by flow cytometry.
  • Embryoid bodies were prepared by culturing small nodules (10-20 cells) of iPS cells not containing feeder cells in an agglutination medium consisting of StemPro-34 (Invitrogen) supplemented with 24 hours.
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • bFGF 1 ng / mL
  • IL-6 interleukin-6
  • SCF stem cell factor
  • FLT3L human FLT3 ligand
  • VEGF erythropoietin
  • EPO erythropoietin
  • TPO thrombopoietin
  • SCF 100 ng / mL
  • FLT3L 100 ng / mL
  • IL-6 10 ng / mL
  • IL-11 5 ng / mL
  • IL-3 40 ng / mL
  • iPS / ES cell lines that highly express IGF2 are highly expressed in T, HOXB4, GATA2, CEBPA, MESP1, CDX2, BMP4, EOMES, SOX17, GATA6, GATA4, SNAI2, etc. ( Figure 2).
  • colony formation assay was performed using hematopoietic progenitor cells induced to differentiate from 4 ES cells and 35 iPS cells. Differentiation induction from ES cells and iPS cells into hematopoietic progenitor cells was performed by the following steps.
  • Embryoid bodies were prepared by culturing small nodules (10-20 cells) of iPS cells not containing feeder cells in an agglutination medium consisting of StemPro-34 (Invitrogen) supplemented with 24 hours.
  • VEGF vascular endothelial growth factor
  • bFGF 1 ng / mL
  • IL-6 interleukin-6
  • SCF stem cell factor
  • FLT3L human FLT3 ligand
  • VEGF erythropoietin
  • EPO erythropoietin
  • TPO thrombopoietin
  • SCF 100 ng / mL
  • FLT3L 100 ng / mL
  • IL-6 10 ng / mL
  • IL-11 5 ng / mL
  • IL-3 40 ng / mL
  • the cells were dissociated to a single cell suspension with a 1000 ml pipette. Thereafter, the dissociated cells were passed through a 70 ⁇ m filter, and CD43 + CD34 + CD38-lineage marker-fraction cells (hematopoietic progenitor cells) were collected by flow cytometry AriaII (Beckton Dickinson).
  • SCF stem cell factor
  • G-CSF G-CSF
  • GM-CSF G-CSF
  • IL-3 interleukin-3
  • IL-6 erythropoietin
  • erythropoietin MethodhoCult H4435 CD43 + CD34 + CD38-lineage marker-fraction cells
  • HDF-derived Good line good-HDF-iPS (4 strains)
  • Bad line bad-HDF-iPS (12 strains)
  • Table 6 The crystallization state was examined using Infinium methylation beads array 450k (Illumina). Good-HDF-iPS and bad-HDF-iPS are shown in Table 6 below. Each is shown from the top in order of the number of mixed colonies.
  • the method of the present invention makes it possible to induce differentiation of hematopoietic stem cells and / or hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells more efficiently.
  • Efficient and large volume of blood by inducing differentiation into hematopoietic stem cells, hematopoietic progenitor cells or blood cells by culturing selected pluripotent stem cells, hematopoietic progenitor cells or induced pluripotent stem cells having high differentiation potential into blood cells
  • Systemic cells can be supplied efficiently and can be used for transplantation treatment of various diseases of the blood system.

Abstract

IGF2の存在下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を製造する方法、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現のレベル、または、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAメチル化状態に基づいて、造血幹細胞および／または造血前駆細胞、または血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別する方法。

Description

人工多能性幹細胞の選別方法および血球への分化誘導方法
　本発明は、新規の造血幹細胞および／または造血前駆細胞の製造方法、ならびに造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導促進方法および分化誘導促進剤に関する。また本発明は、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す人工多能性幹細胞を選別する方法、ならびにそのための試薬、マイクロアレイおよびキットに関する。さらに本発明は、血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別する方法、ならびにそのための試薬、マイクロアレイおよびキットに関する。
　白血病に代表される血液関連疾患の治療や外科的な治療においては、その治療に必要な量の血液細胞を安定に増幅し、供給することは極めて重要なことである。そのため、これまでに多くの医療関係者によって、血液細胞を確保するための種々の手段が講じられてきた。例えば、ドナーからの献血により採取したり、臍帯血または骨髄細胞から分化誘導させることが従来から行われてきた。
　最近では、胚性幹細胞（ES細胞）や体細胞へ未分化細胞特異的遺伝子を導入することで得られる人工多能性幹（iPS）細胞（特許文献１および２）など多能性を有する細胞を用いて、血球を産生する元となる造血幹細胞または造血前駆細胞を効率的に増幅することが試みられている。
　ES細胞やiPS細胞からの造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導法としては、これまでに、胚様体の形成とサイトカインの添加による方法（非特許文献１）、異種由来のストローマ細胞との共培養法（非特許文献２）、無血清培地を用いる方法（特許文献３）などが報告されている。
　しかしながら、医療応用を可能にするためにはさらなる改善の必要があり、より効率の高い分化誘導方法の確立や新たな分化誘導因子の同定、分化誘導処理を施す前の段階で生産性が高い細胞を選択する方法などの開発が求められている。
USP 5,843,780 WO 2007/069666 WO 2011/115308
Chadwick et al. Blood 2003, 102:906-15 Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov;221(2):367-77
　本発明の目的は、新規造血幹細胞および／または造血前駆細胞の製造方法、および造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導を促進する新規因子を提供することにある。本発明の目的はまた、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す人工多能性幹細胞を選別する方法を提供することにある。さらには、本発明の目的は、血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別する方法を提供することにある。
　本発明者らは上記の課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、IGF2（インスリン様成長因子２）を添加することで、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導が促進することを見出した。
　また、本発明者らは、血球への高い分化能を有するiPS/ES細胞株（Good line）と、血球への低い分化能を有するiPS/ES細胞株（Bad line）から採取したRNAを比較することにより、 CTSF, FAM19A5, TRIM58、TCERG1Lなどの遺伝子がGood lineと正の相関を示すことが見出された。続いて、Good lineとBad lineのゲノムのメチル化状態を比較することにより、Mixed colony 数 が多いこと（すなわち、iPS/ES細胞株が血球への高い分化能を有すること）とTRIM58、CSMD1およびFAM19A5の低メチル化状態が正の相関を示すことが見出された。
　本発明は、以上のような知見を基にして完成されたものである。
　すなわち、本発明は、次に記載の事項を提供するものである。
[１]　血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別する方法であって、以下の工程：（i）サンプルとしての人工多能性幹細胞において、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現のレベルを測定する工程、および
（ii）血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定した遺伝子の発現のレベルが同等もしくはそれ以上の人工多能性幹細胞を選択する工程、および／または血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定した遺伝子の発現のレベルが高い人工多能性幹細胞を選択する工程、
を含む、方法。
[２]　血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別する方法であって、以下の工程：（i）サンプルとしての人工多能性幹細胞において、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAメチル化状態を測定する工程、および
（ii）血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定したDNAメチル化のレベルが同等もしくはそれ以下の人工多能性幹細胞を選択する工程、および／または血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定したDNAメチル化のレベルが低い人工多能性幹細胞を選択する工程、
を含む、方法。
[３]　前記血球が、赤血球、血小板、単球、T細胞、B細胞、NK細胞、好中球、好酸球、好塩基球、顆粒球およびマクロファージからなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、[１]または[２]に記載の方法。
[４]　前記サンプルとしての人工多能性幹細胞がヒト iPS細胞である、[１]から[３]のいずれかに記載の方法。
[５]　前記血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞が、751A3、783F1、751B4、692D2、783A2、744A2、744B9、609A2、585B1、784D1、609A1、648B1、665A7、451F3、610B1、606A1、648A1およびkhES3からなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、[１]から[４]のいずれかに記載の方法。
[６]　前記血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞が、427F1、khES1、TIG1204F1、H9、Kep1、454E2、253G1、KRV-1、457C1、7-KE2、201B7、TIG1074F1、246G1、409B2、201B6、253G4、404C2および588A4からなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、[１]から[５]のいずれかに記載の方法。
[７]　TRIM58、CTSF、FAM19A5および/またはTCERG1Lの遺伝子配列に相補的な核酸または人工核酸を含む、血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞の選別用キット。
[８]　前記相補的な核酸が、マイクロアレイとして提供される、[７]に記載のキット。
[９]　インスリン様成長因子２（IGF2）の存在下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を製造する方法。
[１０]　前記IGF2の存在下で多能性幹細胞を培養する工程が下記の工程：
(i) 多能性幹細胞をBMP4およびIGF2を含有する培地中で培養する工程、
(ii) 工程(i)で得られた細胞をBMP4、bFGFおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程、(iii) 工程(ii)で得られた細胞を VEGF、bFGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCF、Flt3LおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程、ならびに
(iv) 工程(iii)で得られた細胞を VEGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCF、Flt3L、EPO、TPOおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程
を含む、[９]に記載の方法。
[１１]　前記多能性幹細胞を培養する工程において、多能性幹細胞を胚様体の形態で培養する、[９]または[１０]に記載の方法。
[１２]　前記多能性幹細胞がiPS細胞である、[９]から[１１]のいずれかに記載の方法。
[１３]　前記iPS細胞がヒト iPS細胞である、[１２]に記載の方法。
[１４]　前記iPS細胞が、以下の工程により選択されたiPS細胞である、[１２]または[１３]に記載の方法：
（１）候補iPS細胞において、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現のレベルを測定する工程、および
（２）工程（１）において測定した発現のレベルに基づいてiPS細胞を選択する工程。
[１５]　前記iPS細胞が、以下の工程により選択されたiPS細胞である、[１２]または[１３]に記載の方法：
（１）候補iPS細胞において、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAメチル化状態を測定する工程、および
（２）工程（１）において測定したDNAメチル化状態に基づいてiPS細胞を選択する工程。
[１６]　有効成分としてIGF2を含有する、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。
　本発明により、より効率よく多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を分化誘導することが可能となる。また、分化誘導させる前の未分化なiPS細胞の段階でその細胞の血液分化における能力（造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化効率や血球への分化能）を評価することが可能となる。したがって、本発明の提供により、効率的に、かつ、大量の血液系細胞の供給が可能となり、産業応用上、極めて有用である。
図１は、ヒトiPS細胞から造血前駆細胞への分化誘導におけるIGF2の効果を示す。（A）IGF2の濃度を、0 ng/ml (加えない）、20 ng/ml、50 ng/ml、100 ng/mlの４群に振り分けて比較した。（B）IGF2（50 ng/ml）と共に抗IGF1R抗体を添加し、造血前駆細胞への分化誘導がIGF2の効果によるものであることを確認した。 図２は、IGF2と相関して発現が変動する遺伝子の探索の結果を示す。解析は、SPSS statistics（IBM）により行い、p<0.05(unpaired t-test)の遺伝子を有意とした。遺伝子間の発現の相関については、Pearsonの相関係数を用いることにより行った(相関係数をｒとして示す）。 図３は、血球への分化能の違いにおける遺伝子発現のマイクロアレイ比較の解析結果を示す。ヒトiPS細胞株およびヒトES細胞株を血球への高い分化能を示す細胞群と低い分化能を示す細胞群に分け、群間での遺伝子発現パターンについて比較したスキャタープロットを示す。直線は、遺伝子発現レベルが5倍以上変化していることを示す。図中、Goodは、血球への高い分化能を示す細胞、badは、血球への低い分化能を示す細胞を示す。 図４は、血球への分化能の違いにおけるゲノムのメチル化状態比較の解析結果を示す。TRIM58、CSMD1およびFAM19A5の低メチル化状態がMixed colony 数の多さと正に相関していることが見出された。
　本発明を以下に詳細に説明する。
　本発明は、IGF2の存在下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を製造する方法を提供する。
　本発明において、IGF2とは、ヒトIGF2が好ましく、例えば、NCBIのアクセッション番号NP_000603で示される配列を有するタンパク質のうち、プロセシングにより67アミノ酸に処理された塩基性ペプチドが例示される。IGF2は、Sigma-Aldrich社またはPeproTech社等から入手可能である。
＜多能性幹細胞＞
　本発明で使用可能な多能性幹細胞は、生体に存在するすべての細胞に分化可能である多能性を有し、かつ、増殖能をも併せもつ幹細胞であり、それには、以下のものに限定されないが、例えば胚性幹(ES)細胞、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹(ntES)細胞、精子幹細胞（「GS細胞」）、胚性生殖細胞（「EG細胞」）、人工多能性幹(iPS)細胞などが含まれる。好ましい多能性幹細胞は、ES細胞、ntES細胞、およびiPS細胞である。
(A) 胚性幹細胞
　ES細胞は、ヒトやマウスなどの哺乳動物の初期胚（例えば胚盤胞）の内部細胞塊から樹立された、多能性と自己複製による増殖能を有する幹細胞である。
　ES細胞は、受精卵の8細胞期、桑実胚後の胚である胚盤胞の内部細胞塊に由来する胚由来の幹細胞であり、成体を構成するあらゆる細胞に分化する能力、いわゆる分化多能性と、自己複製による増殖能とを有している。ES細胞は、マウスで1981年に発見され (M.J. Evans and M.H. Kaufman (1981), Nature 292:154-156)、その後、ヒト、サルなどの霊長類でもES細胞株が樹立された (J.A. Thomson et al. (1998), Science 282:1145-1147、J.A. Thomson et al. (1995), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 92:7844-7848、J.A. Thomson et al. (1996), Biol. Reprod., 55:254-259および J.A. Thomson and V.S. Marshall (1998), Curr. Top. Dev. Biol., 38:133-165)。
　ES細胞は、対象動物の受精卵の胚盤胞から内部細胞塊を取出し、内部細胞塊を線維芽細胞のフィーダー上で培養することによって樹立することができる。また、継代培養による細胞の維持は、白血病抑制因子(leukemia inhibitory factor (LIF))、塩基性線維芽細胞成長因子(basic fibroblast growth factor (bFGF))などの物質を添加した培地を用いて行うことができる。ヒトおよびサルのES細胞の樹立と維持の方法については、例えばH. Suemori et al. (2006), Biochem. Biophys. Res. Commun., 345:926-932、M. Ueno et al. (2006), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 103:9554-9559、H. Suemori et al. (2001), Dev. Dyn., 222:273-279およびH. Kawasaki et al. (2002), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99:1580-1585などに記載されている。
　ES細胞作製のための培地として、例えば0.1mM 2-メルカプトエタノール、0.1mM 非必須アミノ酸、2mM L-グルタミン酸、20% KSR及び4ng/ml bFGFを補充したDMEM/F-12培地を使用し、37℃、5% CO2湿潤雰囲気下でヒトES細胞を維持することができる。また、ES細胞は、3～4日おきに継代する必要があり、このとき、継代は、例えば1mM CaCl2及び20% KSRを含有するPBS中の0.25% トリプシン及び0.1mg/mlコラゲナーゼIVを用いて行うことができる。
　ES細胞の選択は、一般に、アルカリホスファターゼ、Oct-3/4、Nanogなどの遺伝子マーカーの発現を指標にして行うことができる。特に、ヒトES細胞の選択では、OCT-3/4、NANOG、などの遺伝子マーカーの発現をReal-Time PCR法で検出したり、細胞表面抗原であるSSEA-3、SSEA-4、TRA-1-60、TRA-1-81を免疫染色法にて検出することで行うことができる (Klimanskaya I, et al. (2006), Nature. 444:481-485)。
　ヒトＥＳ細胞株である例えばKhES-1、KhES-2及びKhES-3は、京都大学再生医科学研究所(京都、日本)から入手可能である。
(B) 精子幹細胞
　精子幹細胞は、精巣由来の多能性幹細胞であり、精子形成のための起源となる細胞である。この細胞は、ES細胞と同様に、種々の系列の細胞に分化誘導可能であり、例えばマウス胚盤胞に移植するとキメラマウスを作出できるなどの性質をもつ(M. Kanatsu-Shinohara et al. (2003) Biol. Reprod., 69:612-616; K. Shinohara et al. (2004), Cell, 119:1001-1012)。神経膠細胞系由来神経栄養因子(glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF))を含む培地で自己複製可能であるし、またES細胞と同様の培養条件下で継代を繰り返すことによって、精子幹細胞を得ることができる(竹橋正則ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊),41～46頁,羊土社(東京、日本))。
(C) 胚性生殖細胞
　胚性生殖細胞は、胎生期の始原生殖細胞から樹立される、ES細胞と同様な多能性をもつ細胞であり、LIF、bFGF、幹細胞因子(stem cell factor)などの物質の存在下で始原生殖細胞を培養することによって樹立しうる(Y. Matsui et al. (1992), Cell, 70:841-847; J.L. Resnick et al. (1992), Nature, 359:550-551)。
(D) 人工多能性幹細胞
　人工多能性幹 (iPS) 細胞は、ある特定の核初期化物質を、DNAまたはタンパク質の形態で体細胞に導入することまたは薬剤によって当該核初期化物質の内在性のmRNAおよびタンパク質の発現を上昇させることによって作製することができる、ES細胞とほぼ同等の特性、例えば分化多能性と自己複製による増殖能、を有する体細胞由来の人工の幹細胞である（K. Takahashi and S. Yamanaka (2006) Cell, 126: 663-676、K. Takahashi et al. (2007) Cell, 131: 861-872、J. Yu et al. (2007) Science, 318: 1917-1920、M. Nakagawa et al. (2008) Nat. Biotechnol., 26: 101-106、国際公開WO 2007/069666および国際公開WO 2010/068955）。核初期化物質は、ES細胞に特異的に発現している遺伝子またはES細胞の未分化維持に重要な役割を果たす遺伝子もしくはその遺伝子産物であればよく、特に限定されないが、例えば、Oct3/4, Klf4, Klf1, Klf2, Klf5, Sox2, Sox1, Sox3, Sox15, Sox17, Sox18, c-Myc, L-Myc, N-Myc, TERT, SV40 Large T antigen, HPV16 E6, HPV16 E7, Bmil, Lin28, Lin28b, Nanog, EsrrbまたはEsrrgが例示される。これらの初期化物質は、iPS細胞樹立の際には、組み合わされて使用されてもよい。例えば、上記初期化物質を、少なくとも１つ、２つもしくは３つ含む組み合わせであり、好ましくは４つを含む組み合わせである。
　上記の各核初期化物質のマウスおよびヒトcDNAのヌクレオチド配列並びに当該cDNAにコードされるタンパク質のアミノ酸配列情報は、WO 2007/069666に記載のNCBI accession numbersを参照すること、またL-Myc、Lin28、Lin28b、Esrrb、EsrrgおよびGlis1のマウスおよびヒトのcDNA配列およびアミノ酸配列情報については、それぞれ下記NCBI accession numbersを参照することにより取得できる。当業者は、当該cDNA配列またはアミノ酸配列情報に基づいて、常法により所望の核初期化物質を調製することができる。
遺伝子名　　マウス　　　　　ヒト
L-Myc　　　 NM_008506　　　 NM_001033081
Lin28　　　 NM_145833　　　 NM_024674
Lin28b　　　NM_001031772　　NM_001004317
Esrrb　　　 NM_011934　　　 NM_004452
Esrrg　　　 NM_011935　　　 NM_001438
Glis1　　　 NM_147221　　　 NM_147193
　これらの核初期化物質は、タンパク質の形態で、例えばリポフェクション、細胞膜透過性ペプチドとの結合、マイクロインジェクションなどの手法によって体細胞内に導入してもよいし、あるいは、DNAの形態で、例えば、ウイルス、プラスミド、人工染色体などのベクター、リポフェクション、リポソーム、マイクロインジェクションなどの手法によって体細胞内に導入することができる。ウイルスベクターとしては、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター（以上、Cell, 126, pp.663-676, 2006; Cell, 131, pp.861-872, 2007; Science, 318, pp.1917-1920, 2007）、アデノウイルスベクター(Science, 322, 945-949, 2008)、アデノ随伴ウイルスベクター、センダイウイルスベクター（Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 85, 348-62, 2009）などが例示される。また、人工染色体ベクターとしては、例えばヒト人工染色体(HAC)、酵母人工染色体(YAC)、細菌人工染色体(BAC、PAC)などが含まれる。プラスミドとしては、哺乳動物細胞用プラスミドを使用しうる(Science, 322:949-953, 2008)。ベクターには、核初期化物質が発現可能なように、プロモーター、エンハンサー、リボゾーム結合配列、ターミネーター、ポリアデニル化サイトなどの制御配列を含むことができる。使用されるプロモーターとしては、例えばEF1αプロモーター、CAGプロモーター、SRαプロモーター、SV40プロモーター、LTRプロモーター、CMV（サイトメガロウイルス）プロモーター、RSV（ラウス肉腫ウイルス）プロモーター、MoMuLV（モロニーマウス白血病ウイルス）LTR、HSV-TK（単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ）プロモーターなどが用いられる。なかでも、EF1αプロモーター、CAGプロモーター、MoMuLV LTR、CMVプロモーター、SRαプロモーターなどが挙げられる。さらに、必要に応じて、薬剤耐性遺伝子(例えばカナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子など)、チミジンキナーゼ遺伝子、ジフテリアトキシン遺伝子などの選択マーカー配列、緑色蛍光タンパク質(GFP)、βグルクロニダーゼ(GUS)、FLAGなどのレポーター遺伝子配列などを含むことができる。また、上記ベクターには、体細胞への導入後、核初期化物質をコードする遺伝子もしくはプロモーターとそれに結合する核初期化物質をコードする遺伝子を共に切除するために、それらの前後にLoxP配列を有してもよい。別の好ましい一実施態様においては、トランスポゾンを用いて染色体に導入遺伝子を組み込んだ後に、プラスミドベクターもしくはアデノウイルスベクターを用いて細胞に転移酵素を作用させ、導入遺伝子を完全に染色体から除去する方法が用いられ得る。好ましいトランスポゾンとしては、例えば、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンであるpiggyBac等が挙げられる（Kaji, K. et al., (2009), Nature, 458: 771-775、Woltjen et al., (2009), Nature, 458: 766-770 、WO 2010/012077）。さらに、ベクターには、染色体への組み込みがなくとも複製されて、エピソーマルに存在するように、リンパ指向性ヘルペスウイルス（lymphotrophic herpes virus）、BKウイルスおよび牛乳頭腫（Bovine papillomavirus）の起点とその複製に係る配列を含んでいてもよい。例えば、EBNA-1およびoriPもしくはLarge TおよびSV40ori配列を含むことが挙げられる（WO 2009/115295、WO 2009/157201およびWO 2009/149233）。また、複数の核初期化物質を同時に導入するために、ポリシストロニックに発現させる発現ベクターを用いてもよい。ポリシストロニックに発現させるためには、遺伝子をコードする配列の間は、IRESまたは口蹄病ウイルス（FMDV）2Aコード領域により結合されていてもよい（Science, 322:949-953, 2008およびWO 2009/092042、WO 2009/152529）。
　核初期化に際して、iPS細胞の誘導効率を高めるために、上記の因子の他に、例えば、ヒストンデアセチラーゼ（HDAC）阻害剤[例えば、バルプロ酸 (VPA)(Nat. Biotechnol., 26(7): 795-797 (2008))、トリコスタチンA、酪酸ナトリウム、MC 1293、M344等の低分子阻害剤、HDACに対するsiRNAおよびshRNA（例、HDAC1 siRNA Smartpool(登録商標) (Millipore)、HuSH 29mer shRNA Constructs against HDAC1 (OriGene)等）等の核酸性発現阻害剤など］、DNAメチルトランスフェラーゼ阻害剤（例えば5'-azacytidine）（Nat. Biotechnol., 26(7): 795-797 (2008))、G9aヒストンメチルトランスフェラーゼ阻害剤［例えば、BIX-01294 (Cell Stem Cell, 2: 525-528 (2008))等の低分子阻害剤、G9aに対するsiRNAおよびshRNA（例、G9a siRNA(human) (Santa Cruz Biotechnology)等）等の核酸性発現阻害剤など］、L-channel calcium agonist (例えばBayk8644) (Cell Stem Cell, 3, 568-574 (2008))、p53阻害剤（例えばp53に対するsiRNAおよびshRNA）(Cell Stem Cell, 3, 475-479 (2008))、Wnt Signaling activator（例えばsoluble Wnt3a）（Cell Stem Cell, 3, 132-135 (2008)）、LIFまたはbFGFなどの増殖因子、ALK5阻害剤（例えば、SB431542）（Nat. Methods, 6: 805-8 (2009)）、mitogen-activated protein kinase signalling阻害剤、glycogen synthase kinase-3阻害剤（PloS Biology, 6(10), 2237-2247 (2008))、miR-291-3p、miR-294、miR-295などのmiRNA (R.L. Judson et al., Nat. Biotech., 27:459-461 (2009))、等を使用することができる。
　薬剤によって核初期化物質の内在性のタンパク質の発現を上昇させる方法における薬剤としては、6-bromoindirubin-3'-oxime、indirubin-5-nitro-3'-oxime、valproic acid、2-(3-(6-methylpyridin-2-yl)-lH-pyrazol-4-yl)-1,5-naphthyridine、1-(4-methylphenyl)-2-(4,5,6,7-tetrahydro-2-imino-3(2H)-benzothiazolyl)ethanone HBr(pifithrin-alpha)、prostaglandin J2および prostaglandin E2等が例示される（WO 2010/068955）。
　iPS細胞誘導のための培養培地としては、例えば(1) 10～15％FBSを含有するDMEM、DMEM/F12またはDME培地（これらの培地にはさらに、LIF、penicillin/streptomycin、puromycin、L-グルタミン、非必須アミノ酸類、β-メルカプトエタノールなどを適宜含むことができる。）、(2) bFGFまたはSCFを含有するES細胞培養用培地、例えばマウスES細胞培養用培地(例えばTX-WES培地、トロンボＸ社)または霊長類ES細胞培養用培地（例えば霊長類（ヒト＆サル）ES細胞用培地（リプロセル、京都、日本）、mTeSR-1）、などが含まれる。
　培養法の例としては、たとえば、37℃、5％CO2存在下にて、10％FBS含有DMEMまたはDMEM/F12培地中で体細胞と核初期化物質 (DNAまたはタンパク質) を接触させ約4～7日間培養し、その後、細胞をフィーダー細胞 (たとえば、マイトマイシンC処理STO細胞、SNL細胞等) 上にまきなおし、体細胞と核初期化物質の接触から約10日後からbFGF含有霊長類ES細胞培養用培地で培養し、該接触から約30～約45日またはそれ以上ののちにES細胞様コロニーを生じさせることができる。また、iPS細胞の誘導効率を高めるために、5-10％と低い酸素濃度の条件下で培養してもよい。
　あるいは、その代替培養法として、フィーダー細胞 (たとえば、マイトマイシンC処理STO細胞、SNL細胞等) 上で10％FBS含有DMEM培地（これにはさらに、LIF、ペニシリン/ストレプトマイシン、ピューロマイシン、L-グルタミン、非必須アミノ酸類、β-メルカプトエタノールなどを適宜含むことができる。）で培養し、約25～約30日またはそれ以上ののちにES様コロニーを生じさせることができる。
　上記培養の間には、培養開始2日目以降から毎日1回新鮮な培地と培地交換を行う。また、核初期化に使用する体細胞の細胞数は、限定されないが、培養ディッシュ100cm2あたり約5×103～約5×106細胞の範囲である。
　マーカー遺伝子として薬剤耐性遺伝子を含む遺伝子を用いた場合は、対応する薬剤を含む培地（選択培地）で培養を行うことによりマーカー遺伝子発現細胞を選択することができる。またマーカー遺伝子が蛍光タンパク質遺伝子の場合は蛍光顕微鏡で観察することによって、発光酵素遺伝子の場合は発光基質を加えることによって、また発色酵素遺伝子の場合は発色基質を加えることによって、マーカー遺伝子発現細胞を検出することができる。
　本明細書中で使用する「体細胞」は、哺乳動物（例えば、ヒト、マウス、サル、ブタ、ラット等）由来の生殖細胞以外のいかなる細胞であってもよく、例えば、角質化する上皮細胞（例、角質化表皮細胞）、粘膜上皮細胞（例、舌表層の上皮細胞）、外分泌腺上皮細胞（例、乳腺細胞）、ホルモン分泌細胞（例、副腎髄質細胞）、代謝・貯蔵用の細胞（例、肝細胞）、境界面を構成する内腔上皮細胞（例、I型肺胞細胞）、内鎖管の内腔上皮細胞（例、血管内皮細胞）、運搬能をもつ繊毛のある細胞（例、気道上皮細胞）、細胞外マトリックス分泌用細胞（例、線維芽細胞）、収縮性細胞（例、平滑筋細胞）、血液と免疫系の細胞（例、Tリンパ球）、感覚に関する細胞（例、桿細胞）、自律神経系ニューロン（例、コリン作動性ニューロン）、感覚器と末梢ニューロンの支持細胞（例、随伴細胞）、中枢神経系の神経細胞とグリア細胞（例、星状グリア細胞）、色素細胞（例、網膜色素上皮細胞）、およびそれらの前駆細胞 (組織前駆細胞) 等が挙げられる。細胞の分化の程度や細胞を採取する動物の齢などに特に制限はなく、未分化な前駆細胞 (体性幹細胞も含む) であっても、最終分化した成熟細胞であっても、同様に本発明における体細胞の起源として使用することができる。ここで未分化な前駆細胞としては、たとえば神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、歯髄幹細胞等の組織幹細胞（体性幹細胞）が挙げられる。
　本発明において、体細胞を採取する由来となる哺乳動物個体は特に制限されないが、好ましくはヒトである。
(E) 核移植により得られたクローン胚由来のES細胞
　nt ES細胞は、核移植技術によって作製されたクローン胚由来のES細胞であり、受精卵由来のES細胞とほぼ同じ特性を有している（T. Wakayama et al. (2001), Science, 292:740-743; S. Wakayama et al. (2005), Biol. Reprod., 72:932-936; J. Byrne et al. (2007), Nature, 450:497-502）。すなわち、未受精卵の核を体細胞の核と置換することによって得られたクローン胚由来の胚盤胞の内部細胞塊から樹立されたES細胞がnt ES(nuclear transfer ES)細胞である。nt ES細胞の作製のためには、核移植技術（J.B. Cibelli et al. (1998), Nat. Biotechnol., 16:642-646）とES細胞作製技術(上記)との組み合わせが利用される(若山清香ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊), 47～52頁)。核移植においては、哺乳動物の除核した未受精卵に、体細胞の核を注入し、数時間培養することで再プログラム化することができる。
(F) 融合幹細胞
　体細胞と卵子もしくはES細胞とを融合させることにより、融合させたES細胞と同様な多能性を有し、さらに体細胞に特有の遺伝子も有する幹細胞である（Tada M et al. Curr Biol. 11:1553-8, 2001; Cowan CA et al. Science. 2005 Aug 26;309(5739):1369-73）。
造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導法
　多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を分化誘導する方法としては、例えば、胚様体の形成とサイトカインの添加による方法（Chadwick et al. Blood 2003, 102:906-15、Vijayaragavan et al. Cell Stem Cell 2009, 4:248-62およびSaeki et al. Stem Cells 2009, 27:59-67）、異種由来のストローマ細胞との共培養法（Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov;221(2):367-77）、無血清培地を用いる方法（WO2011/115308）などが挙げられるがこれらに限定されない。
　本発明において「造血幹細胞」および「造血前駆細胞」は、血液系列にコミットした細胞のうち、CD43に陽性の細胞を意味する。
　本発明において「造血前駆細胞」は、「造血幹細胞」より分化が進み、細胞の分化の方向が決定した細胞を意味する。これらの細胞は、KDR、CD34、CD90およびCD117のようなマーカーの発現により検出され得るが、マーカーはこれらに限定されない。一方、「造血幹細胞」は、T細胞、B細胞、赤血球、血小板、好酸球、単球、好中球、好塩基球などの成熟血液細胞を作り出す能力を有し、かつ自己複製能を有する細胞を意味する。本明細書における「造血前駆細胞」は、特に断りがない限り、「造血幹細胞」と区別するものではない。
　本発明において分化誘導された造血幹細胞および／または造血前駆細胞は、他の細胞種が含まれる細胞集団として提供されてもよく、あるいは純化された集団であってもよい。
　本発明の造血前駆細胞の誘導において、ES細胞、iPS細胞などの多能性幹細胞を任意の方法で分離し、浮遊培養により誘導してもよく、あるいはコーティング処理された培養皿を用いて接着培養により誘導してもよい。ここで、ヒト多能性幹細胞の分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液（例えば、Accutase(TM)およびAccumax(TM)など）またはコラゲナーゼ活性のみを有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられる。好ましくは、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液（特に好ましくは、Accutase(TM)）を用いてヒト多能性幹細胞を解離し、力学的に細かく単一細胞へ分散する方法が用いられる。ここで、使用されるヒト多能性幹細胞は、使用したディッシュに対して80％コンフルエントになるまで培養されたコロニーであることが好ましい。一方、マウス多能性幹細胞の分離方法としては、例えば、0.25% trypsin/EDTAを用いた分離方法が挙げられる。
　ここで、浮遊培養とは、細胞を培養皿へ非接着の状態で培養することで胚様体を形成させることであり、特に限定はされないが、細胞との接着性を向上させる目的で人工的に処理（例えば、細胞外マトリックスなどによるコーティング処理）されていない培養皿、若しくは、人工的に接着を抑制する処理（例えば、ポリヒドロキシエチルメタクリル酸（poly-HEMA）によるコーティング処理）した培養皿を使用して行うことができる。
　本発明において、接着培養を用いる場合、フィーダー細胞上で、またはコーティング処理された培養皿にて任意の培地中で培養してもよい。ここで、フィーダー細胞とは、目的の細胞の培養条件を整えるために用いる補助的役割を果たす他の細胞を意味するものであり、例えば、哺乳類胎仔のAGM領域から得られた細胞（例えば、AGM-S3細胞株：特開２００１－３７４７１）、マウス間葉系細胞（例えば、C3H10T1/2細胞株：理研BioResource Centerより入手可能）、または骨髄に由来する間質細胞(ストローマ細胞)（例えば、OP9細胞株）が用いられ得る。コーティング剤としては、例えば、マトリゲル（BD）、コラーゲン、ゼラチン、ラミニン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、またはエンタクチン、およびこれらの組み合わせが挙げられる。
　本発明において、造血前駆細胞を誘導する培地は、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地としては、例えば、IMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、StemPro34（invitrogen）、およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、トランスフェリン、Knockout Serum Replacement(KSR)(ES細胞培養時のFBSの血清代替物)、N2サプリメント（Invitrogen）、B27サプリメント（Invitrogen）、脂肪酸、インスリン、コラーゲン前駆体、微量元素、2-メルカプトエタノール（2ME）、チオールグリセロールなどの1つ以上の血清代替物を含んでもよいし、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、Glutamax（Invitrogen）、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類などの1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明において、接着培養を用いる場合、造血前駆細胞への分化における培地は、好ましくは、vascular endothelial growth factor (VEGF)を含んでいる。培地におけるVEGFの濃度は、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/ml、200ng/ml、300ng/ml、400ng/ml、500ng/ml、1μg/mlであるがこれらに限定されない。好ましくは、20ng/mlである。
　本発明において、接着培養を用いる場合、さらに好ましい培地は、10%FBS、VEGF、トランスフェリン、L-グルタミン、α-monothioglycerol(MTG)およびアスコルビン酸を含有するαMEM培地（HPC分化培地ともいう）であり得る。
　本発明において、接着培養を用いる場合、培養日数は、例えば20日以下の培養であり、好ましくは、12-14日、特に好ましくは、13日である。
　本発明において、接着培養を用いる場合、フィーダー細胞を除去して造血前駆細胞を濃縮・精製する工程を含むことができる。当該工程は、造血前駆細胞をフィーダー細胞と共に培養皿から引き剥がした後にフィーダー細胞のみを回収および除去することにより達成され得る。培養皿から引き剥がす方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液またはコラゲナーゼ活性のみを有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられるがこれらに限定されない。例えば、collagenase Type IVおよび／またはTrypsin/EDTAを用いた方法が使用される。造血前駆細胞の分離方法として、好ましくは、0.05%trypsin/EDTAが用いられる。
　本発明において、浮遊培養を用いる場合、造血前駆細胞への分化誘導は、例えば、下記の工程により行われてもよい：
(i) EBを形成する工程、
(ii) 原条(primitive streak)／中胚葉を形成する工程、
(iii) 造血前駆細胞へ特化させる工程、および
(iv)造血前駆細胞を増殖および拡大させる工程。
　上記各工程において、目的の細胞を誘導するため、あるいは各工程における目的を達成するために基本培地へ必要な任意の物質を添加した培地を用いることができる。例えば、各工程において下記の物質を添加した培地が用いられる：
(i) BMP-4、
(ii) BMP4およびbFGF、
(iii) VEGF、bFGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCFおよびFlt3L、ならびに
(iv) VEGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCF、Flt3L、EPOおよびTPO。
　前記工程(i)から(iv)において用いられる基礎培地は、好ましくは、L-グルタミン酸、チオグリセロールおよびアスコルビン酸を補充したStemPro-34である。
　前記工程(i)および(ii)の培地におけるBMP-4の濃度は、EBを形成できる濃度であればいくらでもよいが、好ましくは1ng/ml～100ng/ml、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/mlであり、特に好ましくは、10ng/mlである。
　前記工程(ii)および(iii)の培地におけるbFGFの濃度は、好ましくは100pg/ml～20ng/ml、例えば、100pg/ml、250pg/ml、500pg/ml、750pg/ml、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、各工程で1ng/mlまたは5ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるVEGFの濃度は、好ましくは1ng/ml～100ng/ml、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、10ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるIL-6の濃度は、好ましくは1ng/ml～100ng/ml、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、10ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるIL-3の濃度は、好ましくは1ng/ml～100ng/ml、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、40ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるIL-11の濃度は、好ましくは500pg/ml～50ng/ml、例えば、500pg/ml、750pg/ml、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、5ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるSCFの濃度は、好ましくは1ng/ml～500ng/ml、例えば、1ng/ml、25ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/ml、200ng/ml、300ng/ml、400ng/ml、500ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、100ng/mlである。
　前記工程(iii)および(iv)の培地におけるFLT3Lの濃度は、好ましくは1ng/ml～500ng/ml、例えば、1ng/ml、25ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/ml、200ng/ml、300ng/ml、400ng/ml、500ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、100ng/mlである。
　前記工程(iv)の培地におけるEPOの濃度は、好ましくは1U/ml～10U/ml、例えば、1U/ml、2U/ml、3U/ml、4U/ml、5U/ml、6U/ml、7U/ml、8U/ml、9U/ml、10U/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、4U/mlである。
　前記工程(iv)の培地におけるTPOの濃度は、好ましくは1ng/ml～100ng/ml、例えば、1ng/ml、5ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、30ng/ml、40ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/mlであるがこれらに限定されない。特に好ましくは、50ng/mlである。
　前記工程(i)の培養時間は、例えば5日以下の培養であり、好ましくは、1～3日であり、特に好ましくは1日である。
　前記工程(ii) の培養時間は、例えば10日以下の培養であり、好ましくは、1～5日であり、特に好ましくは3日である。
　前記工程(iii) の培養時間は、例えば10日以下の培養であり、好ましくは、2～6日であり、特に好ましくは4日である。
　前記工程(iv) の培養時間は、例えば20日以下の培養であり、好ましくは、5～15日であり、特に好ましくは12日である。
　本発明において、造血幹細胞および／または造血前駆細胞の分化誘導を促進するために、培養培地中にIGF2を添加する。前記工程(i)から(iv)において、IGF2は、全工程にわたって添加されてもよく、特定の工程において添加されてもよい。例えば、IGF2の添加は、下記の工程において行われる：
（１）工程(i)、
（２）工程(i)および工程(ii)、
（３）工程(i)～工程(iii)、
（４）工程(i)～工程(iv)、
（５）工程(i)および工程(iii)、
（６）工程(i)、工程(iii)および工程(iv)、
（７）工程(i)および工程(iv)、
（８）工程(i)、工程(ii)および工程(iv)、
（９）工程(ii)、
（１０）工程(ii)および工程(iii)、
（１１）工程(ii)～工程(iv)、
（１２）工程(ii)および工程(iv)、
（１３）工程(iii)、または
（１４）工程(iii)および工程(iv)。
　前記工程(i)から(iv)において添加されるIGF2の濃度は、全工程にわたって同一の濃度であってもよく、工程毎に異なる濃度であってもよい。前記工程(i)から(iv)において添加されるIGF2の濃度は、好ましくは1ng/ml～500ng/ml、例えば、1ng/ml、25ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/ml、200ng/ml、300ng/ml、400ng/ml、500ng/mlであるがこれらに限定されない。
　上記製造工程(ii)の終了後において中胚葉の細胞群を純化・精製する工程を含むことができる。中胚葉の細胞群の純化・精製は、中胚葉の細胞群を含む細胞の集団から中胚葉の細胞群を高い純度で分離できる方法であれば何を用いてもよく、例えば、フローサイトメトリーによる純化・精製が挙げられる。本発明においては、純化・精製された中胚葉の集団に未分化な細胞が含まれないよう、さらにSSEA-1陰性（すなわち、SSEA-1－）であることを指標として細胞を選択し得る。Flk1陽性（すなわち、Flk1+）およびSSEA-1－の細胞を選択する工程は同時に行われてもよく、別々の工程として行われてもよい。例えば、Flk1+/SSEA-1－である細胞の選択は、フローサイトメトリーを用いて同時に行うことができる。
　本工程において、培養温度は、以下に限定されないが、約30～40℃、好ましくは約37℃であり、CO2含有空気の雰囲気下で培養が行われる。CO2濃度は、約2～5％、好ましくは5％である。本工程は、低酸素条件下で行うことも可能であり、その場合における酸素濃度は、特に限定されないが、1～10%であり、好ましくは、5%である。
　本工程において、培地はさらに、ROCK阻害剤を含んでいてもよい。特に、本工程がヒト多能性幹細胞を単一細胞へ分散させる工程を含む場合には、培地にROCK阻害剤が含まれていることが好ましい。ROCK阻害剤は、Rhoキナーゼ(ROCK)の機能を抑制できるものである限り特に限定されないが、例えば、Y-27632が本発明において使用され得る。
造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞の選別方法
　本発明は前述のように樹立したiPS細胞の、IGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の高発現もしくは低発現を指標として、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞のみを選別することができる。
　本明細書において使用される「造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞」なる用語は、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への指向性が相対的に高い細胞であって、中胚葉分化に重要である遺伝子および／または造血幹細胞分化に重要である遺伝子の発現が高い細胞を意味する。「造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞」は、例えば、当分野における通常の方法により造血細胞系列への分化誘導を行った際に、585A1、H9、TIG1204F1、KRV-1、khES3、7-KE2、TIG1074F1、201B6、454E2、610B1、665A7または253G4と同等もしくはそれよりも多くの数の造血幹細胞および／または造血前駆細胞が誘導される細胞であり得る。一方、本明細書において使用される「造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示す細胞」なる用語は、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への指向性が相対的に低い細胞であって、中胚葉分化に重要である遺伝子および／または造血幹細胞分化に重要である遺伝子の発現が低い細胞を意味する。「造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示す細胞」は、例えば、当分野における通常の方法により造血細胞系列への分化誘導を行った際に、589B1、648B1、751A3、451F3、427F1、609A1、744A2、751B4、783F1、784D1、246G1または588A4と同等もしくはそれよりも少ない数の造血幹細胞および／または造血前駆細胞が誘導される細胞であり得る。
　中胚葉分化に重要である遺伝子としては、例えば、IGF2、GATA6、GATA4、SNAI2、MESP1、T、EOMES, SOX17, BMP4、CDX2、MESP2, SNAILが挙げられるが、これらに限定されない。造血幹細胞分化に重要である遺伝子としては、例えば、GATA2、HOXB4、CEBPA、RUNX1が挙げられるが、これらに限定されない。
　各遺伝子に関するヒト及びマウス由来の遺伝子の配列情報は、表１に記載されるNCBI（米国） accession numbersを参照することにより取得することができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　前記遺伝子を検出する方法は、特に限定されないが、例えば、ノーザンブロッティング、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションなどのハイブリダイゼーション、ＲＮａｓｅプロテクションアッセイ、ＰＣＲ法，リアルタイムＰＣＲ法、及びマイクロアレイ法などが挙げられる。
　好ましい検出方法は、生物学的試料からmRNAを含む全RNAを抽出し、ポリTカラムを用いてmRNAを取得し、逆転写反応によりcDNAを合成し、ファージもしくはPCRクローニング法で増幅し、標的DNAに相補的な約20 mer～70 mer又はそれ以上のサイズのプローブとのハイブリダイゼーション、或いは、約20 mer～30 merのサイズのプライマーを用いる定量PCR、などによって行うことができる。ハイブリダイゼーションやPCRでの標識としては、蛍光標識を使用することができる。蛍光標識は、シアン、フルオレサミン、ローダミン、それらの誘導体、例えばCy3, Cy5, FITC, TRITCなどを用いることができる。
　造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すiPS細胞を選別するに際し、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すことが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したIGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陽性基準値）として設定し、この基準値と同等もしくはそれ以上である対象iPS細胞を、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すiPS細胞として選別してもよい。
　同様に、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示すことが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したIGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値より高い対象iPS細胞を、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すiPS細胞として選別してもよい。
　また、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すことが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したIGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値未満である対象iPS細胞を、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示すiPS細胞として除外することにより、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すiPS細胞を選別してもよい。
　また、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示すことが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したIGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陽性基準値）として設定し、この基準値と同等もしくはそれ以下である対象iPS細胞を、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示すiPS細胞として除外することにより、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すiPS細胞を選別してもよい。
血球への高い分化能を有する細胞の選別方法
　本発明は前述のように樹立したiPS細胞の、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の高発現もしくは低発現、或いは、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAの低メチル化もしくは高メチル化を指標として、血球への高い分化能を有する細胞のみを選別することができる。
　本明細書において使用される「血球への高い分化能を有する細胞」なる用語は、血球への指向性が相対的に高い細胞を意味する。「血球への高い分化能を有する」とは、例えば、コロニー形成アッセイにおいて少なくとも１つ以上のコロニーを形成することができることを意味する。「血球への高い分化能を有する細胞」は、例えば、コロニー形成アッセイにおいて、751A3、783F1、751B4、692D2、783A2、744A2、744B9、609A2、585B1、784D1、609A1、648B1、665A7、451F3、610B1、606A1、648A1またはkhES3と同等もしくはそれよりも多くの数のコロニーを形成することができる細胞であり得る。「血球への高い分化能を有することが既知である細胞」としては、例えば、751A3、783F1、751B4、692D2、783A2、744A2、744B9、609A2、585B1、784D1、609A1、648B1、665A7、451F3、610B1、606A1、648A1および／またはkhES3等が挙げられるが、これらに限定されない。一方、本明細書において使用される「血球への低い分化能を有する細胞」なる用語は、血球への指向性が相対的に低い細胞を意味する。「血球への低い分化能を有する」とは、例えば、コロニー形成アッセイにおいて全くコロニーを形成することができないか、あるいは実質的にそれと同一であることを意味する。「血球への低い分化能を有する細胞」は、例えば、コロニー形成アッセイにおいて、427F1、khES1、TIG1204F1、H9、Kep1、454E2、253G1、KRV-1、457C1、7-KE2、201B7、TIG1074F1、246G1、409B2、201B6、253G4、404C2または588A4と同等もしくはそれよりも少ない数のコロニーを形成する細胞であり得る。「血球への低い分化能を有することが既知である細胞」としては、例えば、427F1、khES1、TIG1204F1、H9、Kep1、454E2、253G1、KRV-1、457C1、7-KE2、201B7、TIG1074F1、246G1、409B2、201B6、253G4、404C2および／または588A4等が挙げられるが、これらに限定されない。
　本発明において「血球」は、血液中に存在する細胞成分を意味し、例えば、赤血球、血小板、単球、T細胞、B細胞、NK細胞、好中球、好酸球、好塩基球、顆粒球およびマクロファージからなる群から選択される１またはそれ以上の細胞であり得るが、これらに限定されない。好ましくは、「血球」は、コロニーアッセイにより発生する細胞、例えば、赤血球、顆粒球および／またはマクロファージであり得る。
　各遺伝子に関するヒト及びマウス由来の遺伝子の配列情報は、表２に記載されるNCBI（米国） accession numbersを参照することにより取得することができる。ただし、遺伝子配列は種差等により変化（variation）が存在するため、これらの配列には限定されない。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　前記遺伝子を検出する方法は、特に限定されないが、例えば、ノーザンブロッティング、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションなどのハイブリダイゼーション、ＲＮａｓｅプロテクションアッセイ、ＰＣＲ法，リアルタイムＰＣＲ法、及びマイクロアレイ法などが挙げられる。
　好ましい検出方法は、生物学的試料からmRNAを含む全RNAを抽出し、ポリTカラムを用いてmRNAを取得し、逆転写反応によりcDNAを合成し、ファージもしくはPCRクローニング法で増幅し、標的DNAに相補的な約20 mer～70 mer又はそれ以上のサイズのプローブとのハイブリダイゼーション、或いは、約20 mer～30 merのサイズのプライマーを用いる定量PCR、などによって行うことができる。ハイブリダイゼーションやPCRでの標識としては、蛍光標識を使用することができる。蛍光標識は、シアン、フルオレサミン、ローダミン、それらの誘導体、例えばCy3, Cy5, FITC, TRITCなどを用いることができる。
　血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別するに際し、血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1Lからなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値として設定し、この基準値（陽性基準値）と同等もしくはそれ以上である対象iPS細胞を、血球への高い分化能を有するiPS細胞として選別してもよい。
　同様に、血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1Lからなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値より高い対象iPS細胞を、血球への高い分化能を有するiPS細胞として選別してもよい。
　また、血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1Lからなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値未満である対象iPS細胞を、血球への低い分化能を有するiPS細胞として除外することにより、血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別してもよい。
　また、血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1Lからなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現レベルの値を基準値（陽性基準値）として設定し、この基準値と同等もしくはそれ以下である対象iPS細胞を、血球への低い分化能を有するiPS細胞として除外することにより、血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別してもよい。
　さらに本発明において、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子領域の遺伝子発現の制御に関与するDNAのメチル化状態を測定することで、血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別してもよい。
　DNAメチル化状態の測定方法としては、公知のメチル化解析方法を用いることができる。例えば、制限酵素を用いて非メチル化認識配列を切断して調べる方法が知られている。DNAをメチル化感受性制限酵素で処理すると、メチル化されていない認識部位は切断され、生じたDNAを電気泳動後、サザンブロッティング等を行い、検出したバンドの長さの違いから、対象となる領域のメチル化の有無を判定することができる。
　メチル化感受性制限酵素は、SmaI及びHpaIIを例示することができ、好ましくはＳｍａＩである。メチル化感受性酵素と同じ認識配列を認識する非メチル化感受性酵素は当業者が容易に知ることができ、これをメチル化感受性酵素と組み合わせることができる。
　また、DNAメチル化状態の測定方法として、亜硫酸水素塩(バイサルファイト)を用いることができる。DNAをバイサルファイト処理すると、非メチル化シトシンのみがウラシルに変換され、メチル化シトシンは変換されずシトシンのままとなる。バイサルファイトシークエンス法では、バイサルファイト処理したゲノム領域をPCR増幅してクローニング後、シークエンシングを行うことにより、DNAメチル化の有無を知ることができる。また、COBRA（Combined bisulfite restriction analysis）法を用いてバイサルファイト処理後のDNAを、制限酵素で切断して制限酵素認識部位の残存の有無を調べることにより、DNAメチル化の有無を検出してもよい。さらに、バイサルファイト処理前後の配列の違いをPCRプライマーに認識させ、PCR産物の有無によって、メチル化DNA及び非メチル化DNAの有無を判別するメチル化特異的PCRを用いることができる。この他にも、メチル化特異的オリゴヌクレオチド（MSO）マイクロアレイ、もしくはDNAメチル化特異的抗体を用いてDNAメチル化されている領域のDNA配列を抽出し、PCRを行いシークエンシングする方法により特定の領域のDNAのメチル化状態を検出する染色体免疫沈降法（ChIP：Chromatin Immuno-Precipitation）を用いてもよい。
　血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別するに際し、血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子領域について両染色体のDNAのメチル化の値を基準値（陽性基準値）として設定し、この基準値と同等もしくはそれ以下である対象iPS細胞を、血球への高い分化能を有するiPS細胞として選別してもよい。
　同様に、血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子領域について両染色体のDNAのメチル化の値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値より低い対象iPS細胞を、血球への高い分化能を有するiPS細胞として選別してもよい。
　また、血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子領域について両染色体のDNAのメチル化の値を基準値（陰性基準値）として設定し、この基準値より高い対象iPS細胞を、血球への低い分化能を有するiPS細胞として除外することにより、血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別してもよい。
　また、血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹細胞（ES細胞）について上記の方法で検出したTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子領域について両染色体のDNAのメチル化の値を基準値（陽性基準値）として設定し、この基準値と同等もしくはそれ以上である対象iPS細胞を、血球への低い分化能を有するiPS細胞として除外することにより、血球への高い分化能を有するiPS細胞を選別してもよい。
　メチル化されたDNAの割合を検出する方法としては、例えば、制限酵素を用いて非メチル化認識配列を切断して調べる方法の場合、DNAを断片化した後、サザンブロッティング法により定量し、断片化されなかったDNAと断片化されたDNAの量を比較することで算出することができる。一方、バイサルファイトシークエンス法の場合、任意に選択された染色体がシークエンシングされるため、PCR産物をクローニングしたテンプレートを、複数回、例えば２回以上、好ましくは５回以上、より好ましくは10回以上、繰り返しシークエンシングし、シークエンシングしたクローン数に対するDNAのメチル化が検出されたクローン数を比較することで割合を算出することができる。ここで、パイロシークエンス法を用いた場合では、シトシンとチミンの割合により直接測定することもできる。また、DNAメチル化特異的抗体を用いた染色体免疫沈降法（ChIP：Chromatin Immuno-Precipitation）の場合は、沈降した目的のDNAの量と沈降前の該DNA量とをPCRで検出し、比較することで、DNAのメチル化の割合を検出することができる。
造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞の選別用キット
　本発明は、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す多能性幹細胞、好ましくは人工多能性幹細胞を選別するために有用なキットを提供する。本発明に係る造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す細胞の選別用キットは、前述の測定方法による遺伝子測定用キット、マイクロアレイ、またはDNAメチル化測定用キットを含むがこれらに限定されない。
　本発明において、測定の標的とされる遺伝子は、例えば、IGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子であり得る。好ましくは、IGF2遺伝子が測定の対象となる。
　遺伝子測定用キットは、遺伝子の標的DNAまたはmRNAに相補的な約20 mer～70 mer又はそれ以上のサイズの核酸或いは人工核酸プローブ、または約20 mer～30 merのサイズのプライマーを含むことができる。
　人工核酸プローブは、修飾塩基（例えばアデニン、シトシン、グアニンまたはチミンの、イノシン、5-メチルシトシン、2-アミノプリン、2-アミノ-6-クロロプリン、2,6-ジアミノプリンなどの修飾塩基への変換）、ホスホジエステル結合のホスホロチオエート結合への変換、リボースの2'-ヒドロキシル基の2'-O-メチル基または2'-O-メトキシエチル基への変換、リボースの2'位と4'位がメチレン基を介して架橋された構造のLNA(Locked Nucleic Acid)もしくはBNA(Bridged Nucleic Acid)、主鎖がN-(2-アミノエチル)グリシンのペプチド結合からなるPNA(Peptide Nucleic Acid)などを含むことができる(例えば、A.A. Koshikin et al., Tetrahedron 54:3607 (1998)、S. Obika et al., Tetrahedron Lett. 39:5401 (1998)、P.E. Nielson et al., Science 254:1497 (1991)、特開2010-150280、特開2010-090159など)。
　本発明に係るiPS細胞選別用キットには、これらのプローブを担体に結合して作製されたマイクロアレイを含めることができる。
　また、このキットは、IGF2、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4およびSNAI2からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の抽出用試薬、遺伝子抽出用試薬または染色体抽出試薬などを含んでもよい。
　本発明のキットは、診断用としても使用することができる。本発明の診断用キットは、判別分析手段、例えば、判別分析の手順を記載した書面や説明書、判別分析の手順をコンピューターに実行させるためのプログラム、当該プログラムリスト、当該プログラムを記録した、コンピューターに読み取り可能な記録媒体（例えば、フレキシブルディスク、光ディスク、CD-ROM、CD-R、及びCD-RWなど）、判別分析を実行する装置又はシステム（コンピューターなど）を含んでもよい。
血球への高い分化能を有する細胞の選別用キット
　本発明は、血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別するために有用なキットを提供する。本発明に係る血球への高い分化能を有する細胞の選別用キットは、前述の測定方法による遺伝子測定用キット、マイクロアレイ、またはDNAメチル化測定用キットを含むがこれらに限定されない。
　本発明において、測定の標的とされる遺伝子は、例えば、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子であり得る。好ましくは、TRIM58遺伝子が測定の対象となる。
　遺伝子測定用キットは、遺伝子の標的DNAまたはmRNAに相補的な約20 mer～70 mer又はそれ以上のサイズの核酸或いは人工核酸プローブ、または約20 mer～30 merのサイズのプライマーを含むことができる。
　人工核酸プローブは、修飾塩基（例えばアデニン、シトシン、グアニンまたはチミンの、イノシン、5-メチルシトシン、2-アミノプリン、2-アミノ-6-クロロプリン、2,6-ジアミノプリンなどの修飾塩基への変換）、ホスホジエステル結合のホスホロチオエート結合への変換、リボースの2'-ヒドロキシル基の2'-O-メチル基または2'-O-メトキシエチル基への変換、リボースの2'位と4'位がメチレン基を介して架橋された構造のLNA(Locked Nucleic Acid)もしくはBNA(Bridged Nucleic Acid)、主鎖がN-(2-アミノエチル)グリシンのペプチド結合からなるPNA(Peptide Nucleic Acid)などを含むことができる(例えば、A.A. Koshikin et al., Tetrahedron 54:3607 (1998)、S. Obika et al., Tetrahedron Lett. 39:5401 (1998)、P.E. Nielson et al., Science 254:1497 (1991)、特開2010-150280、特開2010-090159など)。
　本発明に係るiPS細胞選別用キットには、これらのプローブを担体に結合して作製されたマイクロアレイを含めることができる。
　DNAメチル化測定用キットはメチル化感受性もしくは非感受性の制限酵素を含むことができる。DNAをメチル化感受性制限酵素で処理すると、メチル化されていない認識部位は切断され、生じたDNAを電気泳動後、サザンブロッティング等を行い、検出したバンドの長さの違いから、対象となる領域のメチル化の有無を判定することができる。
　また、バイサルファイト反応を利用してシトシン塩基のメチル化を検出するためのバイサルファイト試薬を含むことができる。また、バイサルファイト反応を利用したMSO(methylation-specific oligonucleotide)マイクロアレイ法に使用するための試薬やマイクロアレイを含んでもよい（畑田出穂,実験医学,24巻8号（増刊）, pp.212-219 (2006)）。
　また、キットにはバイサルファイト処理の有無に関わらず、標的領域（例えば、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子の発現制御領域など）に特異的なプローブまたはプライマーを含むことができる。メチル化特異的オリゴヌクレオチド（MSO）マイクロアレイ法では、バイサルファイト処理されたDNAをメチル化に関係なく変化のない（CpG配列を含まない）配列をプライマーに選んでPCRを行う。その結果、メチル化されていないシトシンはチミンとして、またメチル化されているシトシンはシトシンとして増幅する。
　また、DNAメチル化測定用キットは、遺伝子の発現制御領域などの標的領域を増幅させるための試薬を含むことができ、DNAポリメラーゼ、適当な緩衝液、マグネシウム塩、dNTP等のPCRに必要な成分を適宜含むことができる。
　さらに、本発明の血球への高い分化能を有する細胞の選別用キットは、陰性対照として血球への低い分化能を有する細胞のTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子の発現制御領域などの標的領域のメチル化DNAを含有することができる。また、陽性対照として、血球への高い分化能を有する細胞のTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子の発現制御領域などの標的領域の非メチル化DNAを含有することができる。
　また、このキットは、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の抽出用試薬、遺伝子抽出用試薬または染色体抽出試薬などを含んでもよい。あるいは、このキットはTRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子の抽出用試薬、遺伝子抽出用試薬または染色体抽出試薬などを含んでもよい。
　本発明のキットは、診断用としても使用することができる。本発明の診断用キットは、判別分析手段、例えば、判別分析の手順を記載した書面や説明書、判別分析の手順をコンピューターに実行させるためのプログラム、当該プログラムリスト、当該プログラムを記録した、コンピューターに読み取り可能な記録媒体（例えば、フレキシブルディスク、光ディスク、CD-ROM、CD-R、及びCD-RWなど）、判別分析を実行する装置又はシステム（コンピューターなど）を含んでもよい。
[実施例]
　以下に実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明がこれらに限定されないことは言うまでもない。
細胞
　ヒトES細胞として、KhES1、KhES3（Suemori H, et al. Biochem Biophys Res Commun. 345:926-32, 2006）およびH1、H9（Thomson，J.A.，et al.，Science 282：1145-1147，1998）を用いた。また、iPS細胞として、下記の表3に示す細胞を用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　ES細胞の培養およびiPS細胞の樹立および培養は、従来の方法で行った（Takahashi K and Yamanaka S, Cell 126 (4), 663, 2006、Okita K, et al., Nature 448 (7151), 313, 2007、Nakagawa M, et al., Nat Biotechnol 26 (1), 101, 2008、Aoi, T. et al., Science 321, 699-702, 2008およびOkita K, et al., Science 322, 949, 2008）。
造血前駆細胞分化におけるIGF2の効果
　ヒトiPS細胞から造血前駆細胞への分化誘導におけるIGF2の効果を調べるために、造血前駆細胞分化誘導実験を行った。造血前駆細胞への分化誘導は、簡潔には、下記の手順により行った。
（day0-day1）得られたiPS細胞を6ウェル低クラスタープレート（Corning Incorporated）を用いて、37℃, 5% CO2, 5% O2, および90% N2の環境で、human bone morphogenetic protein-4 (BMP-4; 10 ng/mL), Y27632（10μM）, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol（Sigma-Aldrich）, および50 μg/mL ascorbic acid（Sigma-Aldrich）を補充したStemPro-34（Invitrogen）からなる凝集培地中、フィーダー細胞を含まないiPS細胞の小塊(10-20細胞)を24時間培養することにより胚様体(EBs)を作製した。
（day1-day4）得られたEBsを回収、洗浄し、5 ng/mL bFGF, 10 ng/mL BMP-4, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol, および50 μg/mL ascorbic acidを補充したStemPro-34でさらに3日間培養して、原条(primitive streak)/中胚葉形成を誘導した。
（day4-day8）4日目に、EBsを再び回収し、vascular endothelial growth factor (VEGF;10 ng/mL), bFGF (1 ng/mL), interleukin-6 (IL-6; 10 ng/mL), IL-3 (40 ng/mL), IL-11 (5 ng/mL), stem cell factor (SCF; 100 ng/mL), およびhuman FLT3 ligand (FLT3L;100ng/ml)を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞への特化および発生のために4日間再培養した。
（day8-day15）8日目に、EBsを5% CO2/air環境に移し、VEGF (10 ng/mL), erythropoietin (EPO; 4 U/mL), thrombopoietin (TPO; 50 ng/mL), SCF（100 ng/mL）, FLT3L（100 ng/mL）, IL-6（10 ng/mL）, IL-11（5 ng/mL）, およびIL-3（40 ng/mL）を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞成熟（赤芽球および巨核芽球系前駆細胞への成熟）および拡張のためにさらに7日間培養した。0.25% Trypsin-EDTAを用いて37℃で5-10分間のインキュベーション後、1000 mlピペットにより細胞を単一細胞懸濁液にまで解離させ、次いで、解離させた細胞を70μmフィルターに通過させて、回収した細胞をフローサイトメトリーにより評価した。
　上記（day0-day1）、（day1-day4）、（day4-day8）および（day8-day15）の工程を通して、種々の濃度（20 ng/mL、50 ng/mLおよび100 ng/mL）のIGF2を加えて、IGF2の効果を調べた。また、IGF2と共に、抗IGF1R抗体を添加することにより、造血前駆細胞への分化誘導効果がIGF2特異的に起こっているか否かを調べた。
　その結果、IGF2は、濃度依存的にヒトiPS細胞の血液分化誘導効率を高めることが分かった（図１(A)）。また、その効果は、IGF2の効果によるものであることが確認された（図１(B)）。
造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化効率の確認
　造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化効率を確認するため、次の工程を含むEB法を用いて、4株のES細胞および35株のiPS細胞をCD43陽性細胞へ分化誘導した。
（day0-day1）得られたiPS細胞を6ウェル低クラスタープレート（Corning Incorporated）を用いて、37℃, 5% CO2, 5% O2, および90% N2の環境で、human bone morphogenetic protein-4 (BMP-4; 10 ng/mL), Y27632（10μM）, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol（Sigma-Aldrich）, および50 μg/mL ascorbic acid（Sigma-Aldrich）を補充したStemPro-34（Invitrogen）からなる凝集培地中、フィーダー細胞を含まないiPS細胞の小塊(10-20細胞)を24時間培養することにより胚様体(EBs)を作製した。
（day1-day4）得られたEBsを回収、洗浄し、5 ng/mL bFGF, 10 ng/mL BMP-4, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol, および50 μg/mL ascorbic acidを補充したStemPro-34でさらに3日間培養して、原条(primitive streak)/中胚葉形成を誘導した。
（day4-day8）4日目に、EBsを再び回収し、vascular endothelial growth factor (VEGF;10 ng/mL), bFGF (1 ng/mL), interleukin-6 (IL-6; 10 ng/mL), IL-3 (40 ng/mL), IL-11 (5 ng/mL), stem cell factor (SCF; 100 ng/mL), およびhuman FLT3 ligand (FLT3L;100ng/ml)を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞への特化および発生のために4日間再培養した。
（day8-day15）8日目に、EBsを5% CO2/air環境に移し、VEGF (10 ng/mL), erythropoietin (EPO; 4 U/mL), thrombopoietin (TPO; 50 ng/mL), SCF（100 ng/mL）, FLT3L（100 ng/mL）, IL-6（10 ng/mL）, IL-11（5 ng/mL）, およびIL-3（40 ng/mL）を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞成熟（赤芽球および巨核芽球系前駆細胞への成熟）および拡張のためにさらに7日間培養した。0.25% Trypsin-EDTAを用いて37℃で5-10分間のインキュベーション後、1000 mlピペットにより細胞を単一細胞懸濁液にまで解離させ、次いで、解離させた細胞を70μmフィルターに通過させて、回収した細胞をフローサイトメトリーにより評価した。
　得られた細胞のうち、CD43陽性細胞への分化効率が高い１２株を”High productive line”とし、CD43陽性細胞への分化効率が低い１２株を”Nonproductive line” と名付けて、以下のアッセイに使用した。”High productive line”および”Nonproductive line”を下記の表4に示す。それぞれ、CD43陽性細胞への分化効率が高い順に上から示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示すマーカー遺伝子の同定
　造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率を示す１２株のHigh productive lineと、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への低い分化効率を示す１２株のNonproductive lineからRNAを採取し、マクロアレイ（Agilent technology）を用いてRNAの発現を測定し、解析を行った。統計解析による有意検定は、Gene spring 12.1 (Agilent technologie）を用いて行い、p<0.05(unpaired t-test)、False discovery ratio (FDR:Benjamini-Hochberg法による）<0.05、Fold change > 2を基準として、それらの基準に該当する遺伝子およびプローブを有意とした。
　その結果、High productive lineとNonproductive lineの比較において最も２群間で遺伝子発現の差が大きく、かつ、High productive lineと正の相関を示す遺伝子は IGF2であった。
IGF2と相関を示すマーカー遺伝子の同定
　実施例４により、IGF2の発現量がiPS/ES細胞の造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率と正に相関することが分かったので、造血幹細胞および／または造血前駆細胞への高い分化効率と正に相関する他の遺伝子を同定するために、同じマイクロアレイのデータを用いてIGF2と相関して発現が変動する遺伝子を調べた。
　解析は、SPSS statistics（IBM）により行い、p<0.05(unpaired t-test)の遺伝子を有意とした。遺伝子間の発現の相関については、Pearsonの相関係数を用いることにより行った。
　その結果、IGF2を高発現しているiPS/ES細胞株は、T、HOXB4、GATA2、CEBPA、MESP1、CDX2、BMP4、EOMES、SOX17、GATA6、GATA4、SNAI2などを高く発現していることが見出された（図２）。
血球への分化能の確認
　血球への分化能を確認するため、4株のES細胞および35株のiPS細胞から分化誘導した造血前駆細胞を用いてコロニー形成アッセイを行った。ES細胞およびiPS細胞から造血前駆細胞への分化誘導は、下記の工程により行った。
（day0-day1）得られたiPS細胞を6ウェル低クラスタープレート（Corning Incorporated）を用いて、37℃, 5% CO2, 5% O2, および90% N2の環境で、human bone morphogenetic protein-4 (BMP-4; 10 ng/mL), Y27632（10μM）, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol（Sigma-Aldrich）, および50 μg/mL ascorbic acid（Sigma-Aldrich）を補充したStemPro-34（Invitrogen）からなる凝集培地中、フィーダー細胞を含まないiPS細胞の小塊(10-20細胞)を24時間培養することにより胚様体(EBs)を作製した。
（day1-day4）得られたEBsを回収、洗浄し、5 ng/mL bFGF, 10 ng/mL BMP-4, 2mM glutamine, penicillin/streptomycin, 4 × 10-4 M monothioglycerol, および50 μg/mL ascorbic acidを補充したStemPro-34でさらに3日間培養して、原条(primitive streak)/中胚葉形成を誘導した。
（day4-day8）4日目に、EBsを再び回収し、vascular endothelial growth factor (VEGF;10 ng/mL), bFGF (1 ng/mL), interleukin-6 (IL-6; 10 ng/mL), IL-3 (40 ng/mL), IL-11 (5 ng/mL), stem cell factor (SCF; 100 ng/mL), およびhuman FLT3 ligand (FLT3L;100ng/ml)を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞への特化および発生のために4日間再培養した。
（day8-day15）8日目に、EBsを5% CO2/air環境に移し、VEGF (10 ng/mL), erythropoietin (EPO; 4 U/mL), thrombopoietin (TPO; 50 ng/mL), SCF（100 ng/mL）, FLT3L（100 ng/mL）, IL-6（10 ng/mL）, IL-11（5 ng/mL）, およびIL-3（40 ng/mL）を補充したStemPro-34中で、造血前駆細胞成熟（赤芽球および巨核芽球系前駆細胞への成熟）および拡張のためにさらに7日間培養した。0.25% Trypsin-EDTAを用いて37℃で5-10分間のインキュベーション後、1000 mlピペットにより細胞を単一細胞懸濁液にまで解離させた。その後、解離させた細胞を70μmフィルターに通過させて、フローサイトメトリーAriaII(Beckton Dickinson社）によりCD43+CD34+CD38-lineage marker-画分の細胞（造血前駆細胞）を回収した。
　次いで、コロニー形成アッセイを行うために、35 mm培養皿を用いて、stem cell factor (SCF), G-CSF, GM-CSF, interleukin-3 (IL-3), IL-6, erythropoietin (MethoCult H4435)を含む2 mlのメチルセルロース培地中に、CD43+CD34+CD38-lineage marker-画分の細胞を播種した。15日後、顕微鏡下でMixed colony 数を計測することで、iPS/ES細胞由来造血前駆細胞の多分化能の評価を行った。
　Mixed colony 数が多い１８株を血球への高い分化能を有する”Good line”とし、Mixed colony 数が少ない１８株を血球への低い分化能を有する"Bad line"と名付けて、以下のアッセイに使用した。”Good line”および"Bad line"を下記の表5に示す。それぞれ、Mixed colony 数が多い順に上から示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　また、Mixed colony 数は、血小板への分化能や赤血球分化能とも相関していることが見出された（すなわち、Good lineでは血小板や赤血球への高い分化能を示し、Bad lineでは血小板や赤血球への低い分化能を示した）。
血球への高い分化能を示すマーカー遺伝子の同定
　血球への高い分化能を有する１８株のGood lineと、血球への低い分化能を有する１８株のBad lineからRNAを採取し、マクロアレイ（Agilent technology）を用いてRNAの発現を測定し、解析を行った。統計解析による有意検定は、Gene spring 12.1 (Agilent technologie）を用いて行い、p<0.05(unpaired t-test)、False discovery ratio (FDR:Benjamini-Hochberg法による）<0.05、Fold change > 2を基準として、それらの基準に該当する遺伝子およびプローブを有意とした。
　その結果、Good line がBad lineと比べて有意に発現が上昇している遺伝子として、CTSF, FAM19A5, TRIM58、TCERG1Lなどが見出された（図３）。
血球への分化能に関連するメチル化の同定
　血球への高い分化能を有する１８株のGood lineと、血球への低い分化能を有する１８株のBad lineのゲノムのメチル化状態を、Infinium methylation beads array　450k（Illumina） を用いて調べた。統計解析による有意検定は、Gene spring 12.1 (Agilent technologie）を用いて行い、p<0.05(Mann Whitney u test)、False discovery ratio (FDR:Benjamini-Hochberg法による）<0.05、両群間のメチル化（β値: mini 0 － max 1） の差が0.2 以上を基準として、それらの基準に該当する遺伝子およびプローブを有意とした。
　その結果、Mixed colony 数 が多いこととTRIM58、CSMD1およびFAM19A5の低メチル化状態が有意に正相関していることが見出された。
　また、表３の３５株のiPS細胞株からHDF由来のGood line（good-HDF-iPS（４株））およびBad line（bad-HDF-iPS（１２株））をそれぞれ選択し、ゲノムのメチル化状態をInfinium methylation beads array　450k（Illumina） を用いて調べた。good-HDF-iPSおよびbad-HDF-iPSについては、下記の表6において示す。それぞれ、Mixed colony 数 が多い順に上から示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　その結果、HDF由来のiPS細胞株においても、Mixed colony 数 が多いこととTRIM58、CSMD1およびFAM19A5の低メチル化状態が有意に正相関していることが見出された（図４）。
　本発明の方法により、より効率よく多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を分化誘導することが可能となる。また、分化誘導させる前の未分化なiPS細胞の段階でその細胞の血液分化における能力（造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化効率や血球への分化能）を評価することが可能となる。選択された造血幹細胞、造血前駆細胞または血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を培養して造血幹細胞、造血前駆細胞または血球に分化誘導することで、効率的、かつ、大量の血液系細胞の供給を効率よく行うことが可能となり、血液系の種々の疾患の移植治療などにおいて利用することができる。
　本発明は、好ましい実施形態に重点をおいて記載されたが、好ましい実施形態が改変され得ることは当業者に明らかである。本発明は、本発明が本明細書中に詳細に記載られたもの以外の方法により実施され得ることを意図する。従って、本発明は、要約及び添付の「特許請求の範囲」の範囲に包含される全ての改変を包含する。
　本明細書中に引用される任意の刊行物（特許および特許出願を含む）中に開示される内容は、それらが本明細書中で開示された程度まで、参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる。

Claims (16)

  1. 　血球への高い分化能を有する人工多能性幹（iPS）細胞を選別する方法であって、以下の工程：（i）サンプルとしての人工多能性幹細胞において、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現のレベルを測定する工程、および
    （ii）血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくは胚性幹（ES）細胞と比較して上記で測定した遺伝子の発現のレベルが同等もしくはそれ以上の人工多能性幹細胞を選択する工程、および／または血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定した遺伝子の発現のレベルが高い人工多能性幹細胞を選択する工程、
    を含む、方法。
  2. 　血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞を選別する方法であって、以下の工程：（i）サンプルとしての人工多能性幹細胞において、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAメチル化状態を測定する工程、および
    （ii）血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定したDNAメチル化のレベルが同等もしくはそれ以下の人工多能性幹細胞を選択する工程、および／または血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞と比較して上記で測定したDNAメチル化のレベルが低い人工多能性幹細胞を選択する工程、
    を含む、方法。
  3. 　前記血球が、赤血球、血小板、単球、T細胞、B細胞、NK細胞、好中球、好酸球、好塩基球、顆粒球およびマクロファージからなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、請求項１または２に記載の方法。
  4. 　前記サンプルとしての人工多能性幹細胞が、ヒト iPS細胞である、請求項１から３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　前記血球への高い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞が、751A3、783F1、751B4、692D2、783A2、744A2、744B9、609A2、585B1、784D1、609A1、648B1、665A7、451F3、610B1、606A1、648A1およびkhES3からなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、請求項１から４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 　前記血球への低い分化能を有することが既知であるiPS細胞もしくはES細胞が、427F1、khES1、TIG1204F1、H9、Kep1、454E2、253G1、KRV-1、457C1、7-KE2、201B7、TIG1074F1、246G1、409B2、201B6、253G4、404C2および588A4からなる群から選択される１またはそれ以上の細胞である、請求項１から５のいずれか１項に記載の方法。
  7. 　TRIM58、CTSF、FAM19A5および/またはTCERG1Lの遺伝子配列に相補的な核酸または人工核酸を含む、血球への高い分化能を有する人工多能性幹細胞の選別用キット。
  8. 　前記相補的な核酸が、マイクロアレイとして提供される、請求項７に記載のキット。
  9. 　インスリン様成長因子２（IGF2）の存在下で多能性幹細胞を培養する工程を含む、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞を製造する方法。
  10. 　前記IGF2の存在下で多能性幹細胞を培養する工程が下記の工程：
    (i) 多能性幹細胞をBMP4およびIGF2を含有する培地中で培養する工程、
    (ii) 工程(i)で得られた細胞をBMP4、bFGFおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程、(iii) 工程(ii)で得られた細胞を VEGF、bFGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCF、Flt3LおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程、ならびに
    (iv) 工程(iii)で得られた細胞を VEGF、IL-6、IL-3、IL-11、SCF、Flt3L、EPO、TPOおよびIGF2を含有する培地中で培養する工程
    を含む、請求項９に記載の方法。
  11. 　前記多能性幹細胞を培養する工程において、多能性幹細胞を胚様体の形態で培養する、請求項９または１０に記載の方法。
  12. 　前記多能性幹細胞がiPS細胞である、請求項９から１１のいずれか１項に記載の方法。
  13. 　前記iPS細胞がヒト iPS細胞である、請求項１２に記載の方法。
  14. 　前記iPS細胞が、以下の工程により選択されたiPS細胞である、請求項１２または１３に記載の方法：
    （１）候補iPS細胞において、TRIM58、CTSF、FAM19A5およびTCERG1L遺伝子からなる群から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現のレベルを測定する工程、および
    （２）工程（１）において測定した発現のレベルに基づいてiPS細胞を選択する工程。
  15. 　前記iPS細胞が、以下の工程により選択されたiPS細胞である、請求項１２または１３に記載の方法：
    （１）候補iPS細胞において、TRIM58、CSMD1および／またはFAM19A5遺伝子のDNAメチル化状態を測定する工程、および
    （２）工程（１）において測定したDNAメチル化状態に基づいてiPS細胞を選択する工程。
  16. 　有効成分としてIGF2を含有する、多能性幹細胞から造血幹細胞および／または造血前駆細胞への分化誘導促進剤。
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