WO2014045482A1 - 分析チップ、及び分析装置 - Google Patents

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喜典 三品
靖夫 飯村
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Definitions

  • Patent Document 1 discloses a microchannel structure in which a porous structure portion is provided in a part of a fine channel. A multiphase flow of liquid and gas passes through the porous structure. Furthermore, there is a description that the porous structure portion is subjected to a hydrophilic treatment or a hydrophobic treatment.
  • Patent Document 1 there is a possibility that a liquid sample cannot flow into a flow path such as a fine capillary. When a liquid sample flows into the channel, bubbles in the liquid may be mixed.
  • FIG. 1 is a diagram schematically showing a DNA analysis process using the analyzer according to the present embodiment.
  • FIG. 2 is a plan view schematically showing the configuration of the analysis chip.
  • a solution 60 containing DNA as a sample is injected.
  • a cleaning liquid for cleaning the flow path 64 and the like is injected into the cleaning liquid injection tank 62.
  • the solution 60 injected from the sample injection tank 61 is sent to the extraction unit 67 through the flow path 64.
  • the extraction unit 67 is provided with magnetic beads 65 for entanglement of DNA.
  • the surface of the magnetic material bead 65 has a characteristic to be compatible with DNA. Therefore, the magnetic beads 65 are entangled by mixing the magnetic beads 65 with the solution 60 so that the DNA is eluted. Thereafter, the magnetic beads 65 are washed with a washing solution. By using a magnet, the magnetic beads 65 can be easily fixed. Then, only the DNA is transferred to the next PCR reaction tank 68. Unnecessary cleaning liquid or the like is discharged from the discharge port 66.
  • a temperature control element such as a Peltier element is provided.
  • a temperature control element such as a Peltier element.
  • the temperature control element By repeating a predetermined temperature cycle by the temperature control element, only the repeated portion of the gene locus can be amplified. That is, DNA is PCR amplified by the temperature control element repeating heating and cooling.
  • the PCR reagent contains a fluorescent substance that serves as a label.
  • a fluorescent substance for labeling DNA for example, 5-FAM, JOE, NED, ROX and the like can be used. Thereby, a specific base can be labeled.
  • the sample can be guided to the inlet side of the capillary 73 due to the difference in wettability.
  • the bubbles 84 can be prevented from accumulating at the entrance of the capillary 73, and the sample can smoothly flow into the capillary 73.
  • bubbles can be prevented from entering the capillary 73. Therefore, the sample can surely flow into the capillary 73 and can be analyzed accurately.
  • the hydrophobic portion 69 c can be formed by partially applying a hydrophobic organic film or inorganic film to the bottom surface of the migration tank 69.
  • a hydrophobic process may be performed using a mask that covers a portion other than the portion to be the hydrophobized portion 69c.
  • the hydrophilic portion 69a is more hydrophilic than the hydrophobic portion 69c. That is, a hydrophilic distribution is provided on the bottom surface of the migration tank 69. In other words, the hydrophilicity of the bottom surface of the migration tank 69 is not uniform.
  • the liquid sample is a PCR product, but the liquid sample used for the analysis chip according to the present embodiment is not used for the PCR product.
  • the example in which the bottom surface of the electrophoresis tank 69 is made hydrophilic has been described.
  • the side surface of the electrophoresis tank 69 may be made hydrophilic or hydrophobic. That is, it is only necessary to provide a hydrophilic distribution in the migration tank 69 so that the bubbles 84 do not remain on the inlet side of the capillary 73.

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Abstract

試料を確実にキャピラリに流入させることができる分析チップ、及び、その分析チップを用いた分析装置を提供する。 本発明の実施の形態にかかる分析チップ（１０）は、気体とともに液体の試料が流れる第１の流路（６４）と、第１の流路（６４）からの試料が流入される第２の流路と、第１の流路６４と第２の流路との間で試料を貯留する泳動槽（６９）であって、少なくとも第２の流路側の底面が液体の試料に対する濡れ性が高くなる処理がなされている泳動槽（６９）と、を備えたものである。

Description

分析チップ、及び分析装置
　本発明は、分析チップ、及び分析装置に関し、試料が流れる流路を備えた分析チップと分析装置に関する。
　特許文献１には、微細流路チャンネルの一部に多孔質構造部が設けられているマイクロチャンネル構造体が開示されている。液体と気体の混相流が多孔質構造部を通過している。さらに、多孔質構造部が親水化処理、又は疎水化処理されているとの記載がある。
特表２００３－５０８０４３号公報
　しかしながら、特許文献１では、液体の試料を微細なキャピラリなどの流路に流入することができない恐れがある。液体の試料を流路に流入する際に、液体中の気泡が混入する恐れがある。
　本発明は、液体の試料を確実にキャピラリに流入することができる分析チップ、及び分析装置を提供することを目的とする。
　本願発明の一態様にかかる分析チップは、液体の試料が流れる第１の流路と、前記流路からの前記試料が流入される第２の流路と、前記第１の流路と前記第２の流路との間で試料を貯留する試料槽であって、少なくとも前記第２の流路側の底面に前記液体に対する濡れ性を高くする処理がなされている試料槽と、を備えたものである。
　本発明によれば、液体の試料を確実にキャピラリに流入することができる分析チップ、及び分析装置を提供することができる。
本発明の実施の形態にかかるＤＮＡ解析の各工程を模式的に示す図である。 ＤＮＡ解析に用いられる分析チップの構成を模式的に示す平面図である。 泳動槽に液体の試料を移送する場合の問題点を示す平面図である。 実施の形態１にかかる分析チップに設けられた泳動槽の周辺を示す平面図である。 泳動槽に流入した気泡の挙動を示す平面図である。 実施の形態２にかかる分析チップに設けられた泳動槽の周辺を示す平面図である。 その他の実施の形態にかかる分析チップに設けられた泳動槽の周辺を示す側面図である。
　添付の図面を参照して本発明の実施形態を説明する。以下に説明する実施形態は本発明の実施例であり、本発明は、以下の実施形態に制限されるものではない。なお、本明細書及び図面において符号が同じ構成要素は、相互に同一のものを示すものとする。
実施の形態１．
　本実施の形態にかかる分析チップは、電気泳動法によるＤＮＡ解析を行うためのチップである。以下、分析チップを用いてＤＮＡ解析を行う手法について、図１及び図２を用いて説明する。図１は、本実施の形態にかかる分析装置を用いたＤＮＡ解析の工程を模式的に示す図である。図２は、分析チップの構成を模式的に示す平面図である。
　図１に示すように、ＤＮＡ解析方法は、検体収集工程Ａ、ＤＮＡ抽出工程Ｂ、ＰＣＲ増幅工程Ｃ、電気泳動工程Ｄを有している。検体収集工程Ａが分析チップ１０外で実施され、ＤＮＡ抽出工程Ｂ、ＰＣＲ増幅工程Ｃ、及び電気泳動工程Ｄは、分析チップ１０にて実施される。
　図２に示すように、分析チップ１０の上流側（図２中の左側）に、ＤＮＡ抽出工程Ｂが実施されるＤＮＡ抽出領域５１が設けられている。そして、ＤＮＡ抽出領域５１の下流側（図２中の右側）には、ＰＣＲ増幅工程Ｃが実施されるＰＣＲ増幅領域５２が設けられている。ＰＣＲ増幅領域５２の下流側には、電気泳動工程Ｄが実施される電気泳動領域５３が設けられている。そして、ＤＮＡ抽出領域５１、ＰＣＲ増幅領域５２、電気泳動領域５３の順で試料であるＤＮＡが移送されていく。
　検体収集工程Ａでは、まず、ユーザが試料となるＤＮＡを含む細胞を採取する。ユーザは、例えば、口腔内粘膜、血液、体液などを採取する。そして、試薬を用いて、細胞を破砕して、ＤＮＡが溶出した溶液を作成する。
　ＤＮＡ抽出工程Ｂでは、ＤＮＡが溶出した溶液６０が分析チップ１０に注入される。分析チップ１０は、サンプル注入槽６１、洗浄液注入槽６２、ＰＣＲ試薬注入槽６３、流路６４、磁性体ビーズ６５、排出口６６、反応槽６８、泳動槽６９、泳動槽７１を有している。サンプル注入槽６１、洗浄液注入槽６２、ＰＣＲ試薬注入槽６３、磁性体ビーズ６５、排出口６６、反応槽６８、泳動槽６９、及び泳動槽７１は流路６４を介して連通している。すなわち、溶液６０は、流路６４を通って、各槽に順次移送されていく。流路６４は、各槽よりも狭くなっている。
　サンプル注入槽６１は、サンプルであるＤＮＡを含む溶液６０が注入される。洗浄液注入槽６２は、流路６４などを洗浄するための洗浄液が注入される。サンプル注入槽６１から注入された溶液６０は、流路６４を通って、抽出部６７に送出される。抽出部６７は、ＤＮＡを絡み取るための磁性体ビーズ６５が設けられている。磁性体ビーズ６５の表面は、ＤＮＡとなじむ特性を有している。したがって、ＤＮＡが溶出したよう溶液６０に磁性体ビーズ６５を混合することによって、ＤＮＡが磁性体ビーズ６５に絡み取られる。その後、磁性体ビーズ６５を洗浄液で洗浄する。磁石を用いることで磁性体ビーズ６５を容易に固定化することができる。そして、ＤＮＡのみを次のＰＣＲ反応槽６８に移送する。不要となった洗浄液等は、排出口６６から排出される。
　ＰＣＲ試薬注入槽６３には、特定の遺伝子座を増幅するＰＣＲ試薬が注入される。ＰＣＲ試薬注入槽６３に注入されたＰＣＲ試薬は、ＰＣＲ反応槽６８に送出される。ＰＣＲ反応槽６８では、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって、ＤＮＡを増幅する。ここでは、図２に示すように、８つのＰＣＲ反応槽６８が設けられている。そして、ＤＮＡがＰＣＲ試薬とともに８つのＰＣＲ反応槽６８に分注される。２種類のＰＣＲ試薬を用いることで、一度に、１６（２×８）の遺伝子座を解析することができる。
　ＰＣＲ反応槽６８の直下には、例えば、ペルチェ素子などの温度制御素子（不図示）が設けられている。温度制御素子によって、所定の温度サイクルを繰り返すことによって、遺伝子座の繰り返し部分のみを増幅することができる。すなわち、温度制御素子が、加熱、降温を繰りかえることで、ＤＮＡがＰＣＲ増幅される。さらに、ＰＣＲ試薬には、標識となる蛍光物質が含まれている。ＤＮＡを標識するための蛍光物質としては、例えば、５－ＦＡＭ、ＪＯＥ、ＮＥＤ、ＲＯＸ等を用いることができる。これにより、特定の塩基を標識することができる。
　ＰＣＲ反応槽６８で増幅されたＰＣＲ産物は、泳動槽６９に送出される。泳動槽６９は、流路６４を介して、泳動槽７１に接続されている。すなわち、泳動槽６９に移送されたＰＣＲ産物は、流路６４を通って、泳動槽７１に泳動する。泳動槽６９と泳動槽７１との間には、電圧が印加される。ＤＮＡは負に帯電しているため、正極側の泳動槽７１に泳動する。泳動槽６９と泳動槽７１との間の流路６４は、１００μｍ程度の非常に細いキャピラリ７３になっている。
　このように、泳動槽６９と泳動槽７１との間に電圧が印加されている。蛍光標識ラベルされたＰＣＲ産物をキャピラリに供給して、ゲル内で電気泳動する。電気泳動によって電圧が印加された状態では、ＤＮＡ断片のサイズによって、移動速度が異なる。塩基数が小さい程、泳動距離が長くなるため、ＤＮＡ断片をサイズ分離することができる。泳動槽６９と泳動槽７１の間にある検出位置７０で、キャピラリ内のＰＣＲ産物に光源からの励起光を照射すると、蛍光物質から蛍光が発生する。そして、蛍光物質から発生した蛍光を分光測定して、観測スペクトルデータを取得する。サイズ毎、すなわち移動速度毎に観測スペクトルデータは取得することができる。そして、これらの観測スペクトルデータを解析することで、特定の配列のＤＮＡを定量することができ、ＤＮＡ鑑定を行うことができる。
　また、本実施の形態では、分析チップがＤＮＡ鑑定に用いられるものとして説明したが、本実施の形態に係る分析チップの用途はＤＮＡ鑑定に限られるものでない。本実施の形態の分析チップは、種々の分析装置に適用可能である。例えば、核酸、たんぱく質、化合物などを分析することも可能である。さらに、蛍光物質以外の標識物質で試料に含まれる物質を標識してもよい。また、分光方法以外の方法を用いて分析を行うようにしてもよい。
　ここで、泳動槽６９とキャピラリ７３との接続部分で生じる問題点について、図３を用いて説明する。図３は、泳動槽６９の周辺の構成を示す平面図である。泳動槽６９には幅の異なるキャピラリ７３と流路６４が接続されている。ここで、流路６４にある試料を気体とともに移送した場合の問題点について説明する。なお、以下の説明では、ＰＣＲ産物を含む親水性の液体を試料としている。そして、液体の試料を気体とともに泳動槽６９に移送している。
　流路６４に気体を供給することで、流路６４にある液体を泳動槽６９に移送させる。ここで、気体とともに気泡８４が第１の流路である流路６４を流れてしまう。この気泡８４が、第２の流路であるキャピラリ７３の入り口側に溜まってしまうことがある。特にキャピラリ７３が流路６４に比べて細い場合、気泡８４によってキャピラリ７３の入り口が塞がれてしまう。このため、電圧を印加しても、試料であるＰＣＲ産物がキャピラリ７３内に移動しなくなってしまい、正確に分析することができなくなってしまう。さらに、気泡８４が試料と共にキャピラリ７３内に流入してしまう恐れもある。微細なキャピラリ７３内に気泡８４と試料が混在すると、正確に分析することができなくなってしまう。
　そこで、本実施の形態では、泳動槽６９を下記に示す構成とすることで、キャピラリ７３に試料を確実に流入させている。以下、泳動槽６９とその周辺の構成について図４を用いて説明する。図４は、泳動槽６９の周辺の構成を示す平面図である。
　泳動槽６９は、流路６４とキャピラリ７３とに接続されている。すなわち、泳動槽６９は、流路６４とキャピラリ７３との間で、試料を貯留する。キャピラリ７３は、流路６４よりも細くなっている。流路６４には、ＰＣＲ反応槽６８によって生成されたＰＣＲ産物が流れる。具体的には、気体を流路６４に供給することで、その気体とともにＰＣＲ産物を含む試料が流路６４を流れていく。そして、流路６４を流れてきた試料は、泳動槽６９に到達する。なお、キャピラリ７３は、液体の試料が流れる流路であれば、流路６４よりも細くなっている必要はない。
　泳動槽６９は、上記のように電気泳動の上流側に配置されており、電気泳動のための電圧が印加される。さらに、泳動槽６９の流路６４と反対側には、キャピラリ７３が設けられている。すなわち、流路６４とキャピラリ７３とは、泳動槽６９を介して対向配置されている。したがって、流路６４から泳動槽６９に流れてきた試料が、キャピラリ７３に流入する。
　さらに、本実施の形態では、泳動槽６９が親水化部６９ａと非親水化部６９ｂを有している。親水化部６９ａは、泳動槽６９のキャピラリ７３側の底面を親水処理することで形成されている。すなわち、泳動槽６９の底面の一部を親水化することで、親水性の高い親水化部６９ａが形成されている。例えば、ＲＩＥ（Ｒｅａｃｔｉｖｅ　Ｉｏｎ　Ｅｔｃｈｉｎｇ）によるプラズマ処理などを用いて、親水処理を行うことができる。あるいは、親水性のある有機膜、又は無機膜を底面に塗布することで、親水処理を行ってもよい。親水処理を行うことで、試料に対する濡れ性が高くなり、親水化部６９ａに対する試料の接触角が小さくなる。換言すると、親水化部６９ａでは、キャピラリ７３や流路６４を含むその他の部分よりも濡れ性が高く、試料の接触角が小さくなる。
　さらに、泳動槽６９において、親水処理が行われた親水化部６９ａ以外の底面が非親水化部６９ｂとなっている。親水化部６９ａは、非親水化部６９ｂよりも親水性が高くなっている。すなわち、泳動槽６９の底面に、親水性の分布を設けている。換言すると、泳動槽６９の底面の親水性が均一となっていいない。なお、泳動槽６９の底面を一様に親水化するようにしてもよい。
　非親水化部６９ｂでは、親水化部６９ａよりも試料に対する濡れ性が低く、試料の接触角が大きくなる。非親水化部６９ｂでの濡れ性、及び接触角は、キャピラリ７３が流路６４を含むその他の部分と同じとなっている。換言すると、親水化処理がなされた親水化部６９ａのみが、分析チップ１０のその他の箇所よりに、親水性の液体に対する濡れ性が高くなっている。なお、泳動槽６９の底面を部分的に親水化する場合、親水化しない領域をマスクした状態で親水処理を行えばよい。
　したがって、濡れ性の違いによって、試料をキャピラリ７３の入り口側に誘導することができる。これにより、図５に示すように、気泡８４がキャピラリ７３の入り口に溜まるのを防ぐことができ、試料をスムーズにキャピラリ７３に流入することができる。また、気泡がキャピラリ７３に混入するのを防ぐことができる。よって、確実に試料をキャピラリ７３に流入することができ、正確に分析することができる。
実施の形態２．
　本実施の形態にかかる分析チップ１０の構成について、図６を用いて説明する。図６は泳動槽６９の周辺の構成を示す平面図である。実施の形態２では、泳動槽６９の構成が実施の形態と異なっている。なお、泳動槽６９以外の構成については、実施の形態と同様であるため、説明を省略する。
　本実施の形態では、泳動槽６９が親水化部６９ａと疎水化部６９ｃとを備えている。すなわち、泳動槽６９には、非親水化部６９ｂの代わりに、疎水化部６９ｃが設けられている。泳動槽６９の底面のうち、キャピラリ７３の入り口側が、親水化部６９ａとなっており、流路６４の出口側が疎水化部６９ｃとなっている。親水化部６９ａは、実施の形態１と同様である。疎水化部６９ｃでは、疎水処理が行われている。例えば、泳動槽６９の底面に、疎水性を有する有機膜、又は無機膜を部分的に塗布することで、疎水化部６９ｃを形成することができる。泳動槽６９の底面を部分的に疎水化する場合、疎水化部６９ｃにしたい部分以外を覆うマスクを用いて、疎水処理を行えばよい。
　親水化部６９ａは、疎水化部６９ｃよりも親水性が高くなっている。すなわち、泳動槽６９の底面に、親水性の分布を設けている。換言すると、泳動槽６９の底面の親水性が均一となっていない。
　疎水化された疎水化部６９ｃでは、試料に対する濡れ性が低くなり、試料の接触角が大きくなる。疎水化部６９ｃの濡れ性は、キャピラリ７３が流路６４を含むその他の部分よりも低くなっている。換言すると、疎水化部６９ｃでの試料の接触角は、キャピラリ７３が流路６４を含むその他の部分よりも大きくなっている。これにより、気泡８４が疎水化部６９ｃにより留まりやすくなるため、気泡８４の位置を制御することができる。したがって、キャピラリ７３の入り口近傍に気泡８４が留まるのを防ぐことができ、確実にキャピラリ７３に試料を流入することができる。さらに、細かな気泡８４がキャピラリ７３に混入するのを防ぐことができる。これにより、正確な分析を行うことができる。
その他の実施の形態．
　実施の形態１、２では、液体の試料がＰＣＲ産物であったが、本実施の形態にかかる分析チップに利用される液体の試料はＰＣＲ産物に利用されるものでない。なお、上記の説明では、泳動槽６９の底面を親水化する例を説明したが、泳動槽６９の側面を親水化、あるいは疎水化するようにしてもよい。すなわち、キャピラリ７３の入り口側に気泡８４が留まらないように、泳動槽６９に親水性の分布を設ければよい。
　例えば、図７の側面断面図に示すように、泳動槽６９の底面全体に対して親水化処理を行うことで親水化部６９ａを設け、泳動槽６９の側面に疎水化処理を行うことで、疎水化部６９ｃを設けるようにしてもよい。この構成を採用することで、よって。気泡８４が泳動槽６９の上方に誘導され、キャピラリ７３の入り口近傍に留まるのを防ぐことができる。試料を確実にキャピラリ７３に流入させることができる。また、側面を疎水化する場合においても、泳動槽６９の底面に親水性の分布を設けてもよい。さらに、泳動槽６９の側面の一部のみ疎水化するようにしてもよい。
　例えば、泳動槽６９の流路６４側の側面、すなわち、図７の左側の側面を疎水化することが好ましい。この構成によって、流路６４の流路６４側に気泡８４を移動することができ、キャピラリ７３への気泡８４の混入を防ぐことができる。また、泳動槽６９のキャピラリ７３側の側面、すなわち、図７の右側の側面を疎水化しなくてもよい。さらには、泳動槽６９のキャピラリ７３側の側面、すなわち、図７の右側の側面を親水化して、親水化部６９ａとするようにしてもよい。このように、泳動槽６９のキャピラリ７３側の側面に親水性を持たせ、流路６４側の側面に疎水性を持たせる。これにより、液体の試料をキャピラリ７３側に誘導することができるため、確実に試料をキャピラリ７３に流入させることができる。
　上記の説明では、電気泳動領域５３の泳動槽６９に対して、親水性の分布を設けたが、泳動槽６９以外の槽に親水性の分布を設けてもよい。例えば、流路６４とキャピラリ７３との間で試料を貯留する試料槽に対して、上記の構成を採用することができる。すなわち、気体とともに液体の試料が流れる流路に接続され、かつキャピラリ７３に接続された試料槽であえば、上記と同様の効果を得ることができる。分析装置は、上記の分析チップを備えている。そして、分析装置は、上記の分析チップのキャピラリに試料を泳動することで分析を行う。こうすることで、正確に資料を分析することができる。よって、ＤＮＡ鑑定の精度を向上することができる。
　上記の説明では、気体を供給して液体の試料を移送したが、疎水性の液体を供給して、液体の試料を移送してもよい。例えば、試料を含む液体と濡れ性の異なる油などの流体を輸送用に供給することができる。油は疎水性であり、親水性の液体と異なる性質を有している。上記のように、流路６４に液体の試料とともに油を供給することで、泳動槽６９に液体の試料を移送する。このとき、試料の液体よりも疎水性の高い油は親水化部６９ａに留まらない。すなわち、油は非親水化部６９ｂや疎水化部６９ｃに誘導されるため、キャピラリ７３の入り口側には誘導されず、キャピラリ７３に油が流入するのを防ぐことができる。よって、液体の試料のみを確実にキャピラリ７３に流入することができる。このように、気体や油などの流体を液体の試料とともに供給すれば、上記の効果を得ることができる。
　さらに、試料を含む液体として親水性の液体を用いたが、試料を含む液体が疎水性の液体であってもよい。この場合、キャピラリ側の泳動槽６９の底面を疎水化すれば、少なくとも親水化部６９ａでは試料に対する濡れ性が高くなるため、同様の効果を得ることができる。すなわち、少なくともキャピラリ７３側の泳動槽６９の底面に、液体の試料に対する濡れ性が高くなる処理を施す。親水化部６９ａに対応する箇所では、分析チップ１０の他の箇所よりも試料の液体に対する濡れ性が高くなる。これにより、親水化部６９ａに対応する箇所に、液体の試料を誘導することができ、試料と性質の異なる流体が、親水化部６９ａに留まることがない。さらに、疎水化部６９ｃに対応する個所に、濡れ性が低くなる処理を施すようにしてもよい。また、泳動槽６９の側面に濡れ性を低くする処理がなされていてもよい。
　また、液体とともに流れる移送用の流体は、液体、及び気体のいずれであってもよく、移送用の流体は、親水性、非親水性のいずれであってもよい。さらに、移送用の流体を用いずに、液体の試料のみを移送させるようにしてもよい。この場合、泳動槽６９に存在していた気体が、気泡８４となってキャピラリ７３側に留まったり、キャピラリ７３に混入することを防ぐことができる。
　上記したように、プラズマ処理や塗布処理等によって、泳動槽６９の表面の濡れ性を変化させることができる。また、泳動槽６９の表面を微細に加工することで、泳動槽６９の濡れ性を変化させてもよい。あるいは、電界を印加するelectrowettingを用いることで、濡れ性を変化させてもよい。
　以上、実施の形態を参照して本願発明を説明したが、本願発明は上記によって限定されるものではない。本願発明の構成や詳細には、発明のスコープ内で当業者が理解し得る様々な変更をすることができる。
　この出願は、２０１２年９月１９日に出願された日本出願特願２０１２－２０６０２４を基礎とする優先権を主張し、その開示の全てをここに取り込む。
　本発明に係る分析チップは、ＤＮＡ、核酸、たんぱく質、化合物などの分析に適用することが可能である。
　１０　分析チップ
　５１　ＤＮＡ抽出領域
　５２　ＰＣＲ増幅領域
　５３　電気泳動領域
　６０　溶液
　６１　サンプル注入槽
　６２　洗浄液注入槽
　６３　ＰＣＲ試薬注入槽
　６４　流路
　６５　磁性体ビーズ
　６６　排出口
　６７　抽出部
　６８　ＰＣＲ反応槽
　６９　泳動槽
　６９ａ　親水化部
　６９ｂ　非親水化部
　６９ｃ　疎水化部
　７０　検出位置
　７１　泳動槽
　７３　キャピラリ

Claims (5)

  1. 　液体の試料が流れる第１の流路と、
    　前記第１の流路からの前記試料が流入される第２の流路と、
    　前記第１の流路と前記第２の流路との間で試料を貯留する試料槽であって、少なくとも前記第２の流路側の底面に前記液体に対する濡れ性を高くする処理がなされている試料槽と、を備えた分析チップ。
  2. 　前記試料槽の底面に濡れ性の分布が設けられている請求項１に記載の分析チップ。
  3. 　前記試料槽の前記第１の流路側の底面に、前記液体に対する濡れ性を低くする処理がなされている請求項１、又は２に記載の分析チップ。
  4. 　前記試料槽の前記第２の流路側の側面に前記濡れ性を高くする処理がなされている請求項１～３のいずれか１項に記載の分析チップ。
  5. 　請求項１～４のいずれか１項に記載の分析チップを備え、
    　前記第２の流路に前記試料を泳動することで、分析を行う分析装置。
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