WO2014007189A1 - 糖液の製造方法 - Google Patents

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WO2014007189A1
WO2014007189A1 PCT/JP2013/067977 JP2013067977W WO2014007189A1 WO 2014007189 A1 WO2014007189 A1 WO 2014007189A1 JP 2013067977 W JP2013067977 W JP 2013067977W WO 2014007189 A1 WO2014007189 A1 WO 2014007189A1
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solution
sugar
washing
producing
cellulose
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千晶 山田
栗原　宏征
山田　勝成
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東レ株式会社
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    • C12P19/14—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C13—SUGAR INDUSTRY
    • C13K—SACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K1/00—Glucose; Glucose-containing syrups
    • C13K1/02—Glucose; Glucose-containing syrups obtained by saccharification of cellulosic materials
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C13K—SACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
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    • C13K1/02—Glucose; Glucose-containing syrups obtained by saccharification of cellulosic materials
    • C13K1/04—Purifying

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a sugar liquid from cellulose-containing biomass.
  • Non-patent Document 1 a method of recovering enzyme components from crystalline cellulose by washing the hydrolysis residue after enzymatic saccharification with an aqueous sodium hydroxide solution having a pH of about 8
  • Non-patent Document 2 a method of recovering an enzyme adsorbed on the substrate by washing with an alkaline aqueous solution of pH 10-13.
  • the problem to be solved by the present invention is to increase the reusability of the filamentous fungus-derived cellulase recovered from the hydrolysis residue of the cellulose-containing biomass by the filamentous fungus-derived cellulase, and the fungus-derived cellulase used in the method for producing a sugar solution Is to reduce the amount of use.
  • the present inventors have found that when the hydrolysis residue of cellulose-containing biomass by filamentous fungus-derived cellulase is washed independently using an alkaline aqueous solution and an inorganic salt aqueous solution, the enzyme components are not biased. It was found that it was eluted, and the present invention was completed.
  • Step (1) Step of hydrolyzing cellulose-containing biomass with cellulase derived from filamentous fungi, and solid-liquid separation into sugar solution and hydrolysis residue
  • Step (2) a step of independently washing the hydrolysis residue of step (1) using an aqueous alkali solution and an aqueous inorganic salt solution, and collecting the filamentous fungus-derived cellulase adsorbed on the hydrolysis residue as a washing solution
  • Step (3) Filtering the washing liquid of Step (2) through an ultrafiltration membrane, collecting a sugar solution as a permeate, and collecting a filamentous fungus-derived cellulase as a non-permeate.
  • a method for producing a sugar solution [2]
  • the hydrolysis residue is washed with an alkaline aqueous solution, and after recovering the alkaline aqueous solution cleaning liquid as the first cleaning liquid, it is further washed with the inorganic salt aqueous solution and the inorganic salt aqueous solution cleaning liquid as the second cleaning liquid
  • the method for producing a sugar liquid according to [1], wherein [3] The method for producing a sugar liquid according to [1] or [2], wherein the pH of the alkaline aqueous solution in step (2) is in the range of 7.5 to 10.0.
  • step (2) The method for producing a sugar liquid according to any one of [1] to [3], wherein the temperature of the alkaline aqueous solution in step (2) is 40 ° C. or lower.
  • step (2) The method for producing a sugar liquid according to any one of [1] to [4], wherein the alkali in step (2) is ammonia, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium carbonate, or trisodium phosphate.
  • the inorganic salt of step (2) is one or more selected from the group consisting of sodium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, and ammonium sulfate.
  • the manufacturing method of the sugar liquid in any one.
  • the method includes the steps of filtering the sugar solution obtained in the step (3) through a nanofiltration membrane and / or a reverse osmosis membrane and recovering the concentrated sugar solution as a non-permeate solution [1] to [9]
  • the manufacturing method of the sugar liquid in any one of.
  • the enzyme component of the filamentous fungus-derived cellulase adsorbed on the hydrolysis residue of cellulose-containing biomass particularly the cellobiose-decomposing activity and the enzyme component related to xylan-degrading activity, are recovered with high efficiency and are recovered.
  • Filamentous cellulase can be used repeatedly.
  • FIG. 1 is a schematic view showing an embodiment of the method for producing a sugar liquid of the present invention.
  • FIG. 2 is a schematic diagram showing an apparatus for carrying out the method for producing a sugar liquid of the present invention.
  • Cellulose-containing biomass includes herbaceous biomass such as bagasse, switchgrass, napiergrass, eliansus, corn stover, beet pulp, cottonseed husk, palm husk, rice straw, straw, bamboo, straw, etc., or birch, beech, etc. Woody biomass such as wood and waste building materials. Since cellulose-containing biomass contains lignin, which is an aromatic polymer, in addition to cellulose and hemicellulose composed of sugar, hydrolysis efficiency by enzymes can be improved by pretreatment.
  • herbaceous biomass such as bagasse, switchgrass, napiergrass, eliansus, corn stover, beet pulp, cottonseed husk, palm husk, rice straw, straw, bamboo, straw, etc., or birch, beech, etc.
  • Woody biomass such as wood and waste building materials. Since cellulose-containing biomass contains lignin, which is an aromatic polymer, in addition to cellulose and hemicellulose composed of sugar, hydrolysis efficiency by enzymes can be improved by pretreatment
  • Examples of the pretreatment method for cellulose-containing biomass include acid treatment, sulfuric acid treatment, dilute sulfuric acid treatment, acetic acid treatment, alkali treatment, caustic soda treatment, ammonia treatment, hydrothermal treatment, subcritical water treatment, fine grinding treatment, and steaming treatment.
  • dilute sulfuric acid treatment is preferable.
  • cellulase derived from filamentous fungi is used for hydrolysis of biomass containing cellulose.
  • filamentous fungi include Trichoderma, Aspergillus, Cellulomonas, Clostridium, Streptomyces, Humicola, and Humicola.
  • microorganisms such as the genus Irpex (Irpex), the genus Mucor (Mucor), and the genus Talaromyces (Talaromyces).
  • a cellulase derived from a mutant strain in which cellulase productivity has been improved by subjecting these microorganisms to mutation treatment or irradiation with ultraviolet rays or the like may be used.
  • Cellulase derived from filamentous fungi hydrolyzes and / or saccharifies cellulose and / or hemicellulose containing multiple enzyme components such as cellobiohydrase, endoglucanase, exoglucanase, ⁇ -glucosidase, xylanase, ⁇ -xylosidase, xyloglucanase It is an enzyme composition having activity. Since the filamentous fungus-derived cellulase contains such a plurality of enzyme components, cellulose and / or hemicellulose can be efficiently hydrolyzed by the concerted effect or the complementary effect, and thus is preferably used in the present invention.
  • Cellulase is a general term for enzymes that hydrolyze cellulose. Specifically, cellobiohydrase, endoglucanase, exoglucanase, ⁇ -glucosidase and the like can be exemplified.
  • Cellobiohydrase is a general term for enzymes that start continuous hydrolysis from the reducing end or non-reducing end of cellulose and release cellobiose.
  • EC number: EC3.2.91 is the name of cellobiohydrase. The group of enzymes to which it belongs is described.
  • Endoglucanase is a general term for enzymes characterized in that they are hydrolyzed from the central part of cellulose molecular chain, and an enzyme group belonging to endoglucanase is described as EC number: EC3.2.1.4. .
  • Exoglucanase is a general term for enzymes characterized by hydrolysis from the end of cellulose molecular chain, and an enzyme group belonging to exoglucanase is described as EC number: EC3.2.1.74.
  • ⁇ -glucosidase is a general term for enzymes characterized by acting on cellooligosaccharide or cellobiose, and an enzyme group belonging to ⁇ -glucosidase is described as EC number: EC 3.2.1.21.
  • Xylanase is a general term for enzymes characterized by acting on hemicellulose or especially xylan, and an enzyme group belonging to xylanase is described as EC number: EC3.2.1.8.
  • ⁇ -xylosidase is a general term for enzymes characterized by acting on xylo-oligosaccharides, and an enzyme group belonging to xylosidase is described as EC number: EC 3.2.1.37.
  • Xyloglucanase is a general term for enzymes characterized by acting on hemicellulose or in particular xyloglucan, and an enzyme belonging to xyloglucanase as EC number: EC3.2.1.4 or EC3.2.1.151. Groups are listed.
  • cellulase components are separated by known methods such as gel filtration, ion exchange, and two-dimensional electrophoresis, and amino acid sequences (N-terminal analysis, C-terminal analysis, mass spectrometry) of the separated components are identified and identified by comparison with a database. can do.
  • the enzyme activity of filamentous fungus-derived cellulase can be evaluated by polysaccharide hydrolytic activity such as Avicel degrading activity, carboxymethylcellulose (CMC) degrading activity, cellobiose degrading activity, xylan degrading activity, mannan degrading activity and the like.
  • the main enzyme exhibiting Avicel-degrading activity is cellobiohydrase or exoglucanase, which has the characteristic of hydrolyzing from the terminal portion of cellulose.
  • the main enzyme exhibiting cellobiose degrading activity is ⁇ -glucosidase.
  • the main enzymes involved in CMC degradation activity are cellobiohydrase, exoglucanase and endoglucanase.
  • the main enzymes showing xylan degradation activity are xylanase and ⁇ -xylosidase.
  • the term “principal” is an expression from what is known to be most involved in degradation, and means that other enzyme components are also involved in the degradation.
  • the culture solution may be used as it is as a crude enzyme agent, or the enzyme group is purified by a known method and formulated into a filamentous fungus-derived cellulase mixture. May be used as When a filamentous fungus-derived cellulase is purified and used as a preparation, a substance added with a substance other than an enzyme such as a protease inhibitor, a dispersant, a dissolution accelerator, or a stabilizer may be used as a cellulase preparation. . In the present invention, among these, a crude enzyme product is preferably used.
  • the crude enzyme product is derived from a culture supernatant obtained by culturing the microorganism for an arbitrary period in a medium prepared so that Trichoderma microorganisms produce cellulase.
  • the medium components to be used are not particularly limited, but a medium to which cellulose has been added in order to promote cellulase production can be generally used.
  • the culture supernatant is preferably used as it is, or the culture supernatant from which Trichoderma cells are removed.
  • the weight ratio of each enzyme component in the crude enzyme product is not particularly limited.
  • the culture solution derived from Trichoderma reesei contains 50 to 95% by weight of cellobiohydrase, and the rest. These components contain endoglucanase, ⁇ -glucosidase and the like. Trichoderma microorganisms produce strong cellulase components in the culture solution, while ⁇ -glucosidase has low ⁇ -glucosidase activity in the culture solution because it is retained in the cell or on the cell surface. Therefore, a different or the same type of ⁇ -glucosidase may be added to the crude enzyme product.
  • ⁇ -glucosidase derived from Aspergillus can be preferably used.
  • ⁇ -glucosidase derived from the genus Aspergillus include Novozyme 188 commercially available from Novozyme.
  • a culture solution in which ⁇ -glucosidase activity is improved by introducing a gene into a microorganism of the genus Trichoderma, culturing the microorganism of the genus Trichoderma that has been genetically modified so as to be produced in the culture solution may be used.
  • Trichoderma spp. Can be preferably used in the present invention because an enzyme component having a high specific activity in the hydrolysis of cellulose is produced in a large amount in the culture solution.
  • Specific examples of cellulases derived from the genus Trichoderma include Trichoderma reesei QM9414 (Trichoderma reesei QM9414), Trichoderma reesei QM9123 (Trichoderma reesei QM9123), Trichoderma reesei Rutcdelma Rise C-30 (Trichoderma reesei RutC-30) (Trichoderma reesei PC3-7), Trichoderma reesei CL-847 (Trichoderma reesei CL-847), Trichoderma reesei MCG77 (Trichoderma reesei MCG77), Trichoderma reesei MCG80 (TriMCede MCGer 80) Trichoderma viride
  • filamentous fungus-derived cellulase is added to the cellulose-containing biomass to perform hydrolysis.
  • the temperature of the hydrolysis reaction is preferably in the range of 40 to 60 ° C., and more preferably in the range of 45 to 55 ° C., particularly when Trichoderma-derived cellulase is used.
  • the hydrolysis reaction time is preferably in the range of 2 hours to 200 hours. Less than 2 hours is not preferable because sufficient sugar production cannot be obtained. On the other hand, if it exceeds 200 hours, the enzyme activity decreases, which adversely affects the reusability of the recovered enzyme.
  • the pH of the hydrolysis reaction is preferably in the range of 4.0 to 6.0.
  • the optimum pH for the reaction is 5.0. Furthermore, since a change in pH occurs during the hydrolysis, it is preferable to add a buffer solution to the reaction solution or to maintain a constant pH using an acid or alkali.
  • the hydrolyzate obtained by the above hydrolysis can be separated into a sugar solution and a hydrolysis residue by solid-liquid separation.
  • the solid-liquid separation method include centrifugation and press filtration. In the present invention, it is preferable to recover the solid content by press filtration.
  • press filtration as solid-liquid separation is preferable are 1) the point that the recovery rate of the sugar solution is excellent, and 2) the point that a clear filtrate can be obtained.
  • the sugar remaining on the solid side during solid-liquid separation can increase the recovery rate by increasing the amount of water added when washing the residue.
  • an increase in the amount of water is not preferable because the sugar concentration of the sugar solution decreases. Therefore, from the viewpoint of obtaining a high sugar recovery rate while suppressing the amount of water used as much as possible, the apparatus for performing solid-liquid separation is a press filtration capable of recovering more sugar solution by one solid-liquid separation. Is preferred.
  • the sugar solution obtained by solid-liquid separation and the residue washing solution are passed through the ultrafiltration membrane to recover the enzyme component. Therefore, as the solution that passes through the ultrafiltration membrane, Less is preferable from the viewpoint of membrane fouling.
  • press filtration it can be preferably used in the present invention because it has a small solid content or fine particle component.
  • the sugar solution obtained in the step (1) may be subjected to a concentration treatment for further increasing the sugar concentration.
  • concentration treatment include evaporative concentration, vacuum concentration, membrane concentration, etc., but are described in WO2010 / 067785, which uses less energy and can separate the fermentation inhibitor contained in the sugar solution.
  • Step (2) The hydrolysis residue obtained in the step (1) is in a state where a relatively large amount of filamentous fungus-derived cellulase is adsorbed.
  • the hydrolysis residue is independently treated with an aqueous alkaline solution and an aqueous inorganic salt solution. By washing, the adsorbed cellulase component is dissolved in the washing solution and recovered.
  • the aqueous alkali solution used in the present invention is not particularly limited as long as the pH exceeds 7, but a pH in the range of 7.5 to 10.0 can be preferably used. If the pH is higher than 10.0, cellulase may be inactivated during washing, while if the pH is lower than 7.5, a sufficient enzyme recovery rate may not be obtained.
  • Alkaline aqueous solution can be prepared by dissolving alkali in water.
  • the alkali is not particularly limited as long as it is a substance showing a pH higher than 7 when dissolved in water, but alkali metal or alkaline earth metal hydroxide, ammonia, amine, alkali metal carbonate, alkali metal 1 type or 2 types or more selected from the phosphate of these can be illustrated.
  • ammonia, sodium hydroxide, potassium hydroxide, sodium carbonate, and trisodium phosphate are exemplified as more preferable alkalis from the viewpoint that they are well soluble in water and can be adjusted to a desired pH with a small amount. From the viewpoint of obtaining the maximum effect, ammonia can be exemplified as a more preferable alkali.
  • the alkali to be added may be a liquid or a solid, but it is preferable to use a liquid capable of quickly adjusting the pH.
  • Washing of the hydrolysis residue using an alkaline aqueous solution is preferably performed at a temperature of 40 ° C. or lower.
  • Cellulase is unstable under alkaline conditions, and if washed at a temperature higher than 40 ° C., the enzyme may be deactivated and the reusability of the enzyme may be reduced.
  • the washing time of the hydrolysis residue using an alkaline aqueous solution is not particularly limited, but is preferably in the range of 5 to 180 minutes. If it is less than 5 minutes, the cellulase adsorbed on the hydrolysis residue may not be sufficiently eluted, whereas if the washing time exceeds 180 minutes, the cellulase may be inactivated.
  • the inorganic salt aqueous solution in the present invention is not particularly limited, and examples thereof include one or more aqueous solutions selected from sodium salt, potassium salt, magnesium salt, sulfate, ammonium salt, hydrochloride, phosphate, and nitrate. it can. More preferable inorganic salts include sodium chloride, sodium sulfate, sodium hydrogen sulfate, sodium dihydrogen phosphate, disodium hydrogen phosphate, ammonium sulfate, potassium chloride, ammonium chloride, magnesium chloride, magnesium sulfate and the like having high water solubility. Of these, sodium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, and ammonium sulfate are most preferred. By adding such inorganic salts, a large amount of enzyme components particularly related to xylan decomposition activity can be recovered.
  • the addition concentration of water-soluble inorganic salt is preferably in the range of 0.05 to 5% by weight. If it is less than 0.05% by weight, the cellulase recovery efficiency may be low. On the other hand, if it exceeds 5% by weight, the deactivation of cellulase may be promoted, and this is economically disadvantageous.
  • the washing temperature is not particularly limited, but this range is preferable because cellulase can be efficiently recovered in the range of 40 to 60 ° C.
  • cleaning with an aqueous alkali solution and cleaning with an inorganic salt aqueous solution are performed independently, but either may be performed first. That is, the hydrolysis residue is washed with an alkaline aqueous solution, the alkaline aqueous solution cleaning solution is recovered as the first cleaning solution, the hydrolysis residue is further washed with the inorganic salt aqueous solution, and the inorganic salt aqueous solution cleaning solution is recovered as the second cleaning solution. Or the reverse order. For example, when washing is performed in the order of an aqueous alkali solution and an aqueous inorganic salt solution, a large amount of components involved in cellobiose decomposition activity can be recovered.
  • an inorganic salt aqueous solution and an alkaline aqueous solution a large amount of components involved in xylan decomposition activity can be recovered.
  • the enzyme component recovered differs depending on the washing order because the alkali or inorganic salt remaining in the hydrolysis residue is brought into the next washing product.
  • An optimal washing method can be determined according to the enzyme component to be collected more.
  • One of the objects of the present invention is to reuse the recovered enzyme component for hydrolysis of cellulose-containing biomass, and the crystalline cellulose decomposition activity involved in the decomposition of cellulose, which is the largest component of cellulose-containing biomass.
  • the amount of the cleaning liquid in the washing of the hydrolysis residue is not particularly limited, but in the first washing, it is preferable to add so that the solid concentration during washing is between 1 and 20% by weight.
  • the solid concentration is higher than 20% by weight, it is not efficient from the viewpoint of the amount of recovered enzyme.
  • the solid concentration is lower than 1% by weight, the amount of liquid increases. Filtration membrane treatment is not efficient.
  • the cleaning liquid in the second cleaning, it is preferable to add the cleaning liquid so that the solid concentration is between 1 and 10% by weight. If the solids concentration is higher than 10% by weight, the amount of alkali or inorganic salt used for the first washing is increased in the second washing, so that the enzyme component to be eluted in the second washing cannot be recovered. There is a case. For example, when the alkaline aqueous solution and the inorganic salt aqueous solution are washed in this order, the pH in the washing with the inorganic salt aqueous solution is affected by the washing with the previous alkaline aqueous solution. There is a possibility that the enzyme components involved in the inactivation.
  • the recovery rate of the xylan decomposition activity may decrease if the salt concentration in the washing using the alkaline aqueous solution is high.
  • the solid concentration is lower than 1% by weight, the amount of liquid increases as in the first washing, so that the ultrafiltration membrane treatment in step (3) described later is not efficient.
  • the hydrolysis residue is once immersed in water after the solid-liquid separation of the first cleaning product, and the alkali or inorganic remaining in the hydrolysis residue
  • the salt may be washed away.
  • the amount of the cleaning liquid added can be reduced to 20% by weight as in the first cleaning.
  • the cellulase may be adjusted to a stable pH by appropriately adding an acid when washing with the inorganic salt aqueous solution.
  • the acid to be added is not particularly limited, and sulfuric acid, hydrochloric acid, citric acid, acetic acid and the like can be used. Since the enzyme component involved in xylan decomposition activity can be recovered as the pH in washing using an inorganic salt aqueous solution is lower, and the enzyme component involved in cellobiose decomposition activity can be recovered more as the pH is higher, in washing using an inorganic salt aqueous solution.
  • the pH can be appropriately set according to the enzyme component to be collected more.
  • Step (3) the alkaline aqueous solution cleaning solution and the inorganic salt aqueous solution cleaning solution in the above step (2) are sequentially or simultaneously filtered through an ultrafiltration membrane, the sugar solution is recovered as a permeate, and the filamentous form as a non-permeate. It is characterized by recovering cellulase derived from bacteria.
  • the molecular weight cutoff of the ultrafiltration membrane used in the present invention is not limited as long as it is an ultrafiltration membrane capable of permeating monosaccharides such as glucose (molecular weight 180) and xylose (molecular weight 150) and blocking filamentous fungus-derived cellulase. .
  • the molecular weight cut off may be in the range of 500 to 50,000, and from the viewpoint of separating contaminants having an inhibitory action on the enzyme reaction from the enzyme, more preferably the molecular weight cut off is 5,000 to 50, 000, more preferably in the range of 10,000 to 30,000 molecular weight cut off.
  • Ultrafiltration membrane materials include polyethersulfone (PES), polysulfone (PS), polyacrylonitrile (PAN), polyvinylidene fluoride (PVDF), regenerated cellulose, cellulose, cellulose ester, sulfonated polysulfone, and sulfonated polyether.
  • PES polyethersulfone
  • PS polysulfone
  • PAN polyacrylonitrile
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • regenerated cellulose, cellulose, cellulose ester polyvinylidene fluoride
  • regenerated cellulose, cellulose, cellulose ester polymethyl methacrylate
  • polytetrafluoroethylene etc.
  • synthetic polymers such as PES and PVDF are used as materials. It is preferable to use an ultrafiltration membrane as described above.
  • the filtration method of the ultrafiltration membrane there are dead-end filtration and crossflow filtration. From the viewpoint of suppressing membrane fouling, crossflow filtration is preferable.
  • a membrane form of the ultrafiltration membrane to be used those having an appropriate form such as a flat membrane type, a spiral type, a tubular type, and a hollow fiber type can be used.
  • a device as shown in FIG. 2 is illustrated as an example of the device form.
  • the hydrolysis tank 2 includes a heat retention facility (hydrolysis tank) 1, a cellulose-containing biomass inlet 3, and a stirring device (hydrolysis tank) 4.
  • the solid-liquid separator comprises a press filtration device 8 and a compressor 9.
  • the hydrolyzate of cellulose-containing biomass obtained in the hydrolysis tank 2 is charged into the press filtration device 8 from the hydrolyzate charging port 14.
  • squeezing is performed by the compressor 9 to separate the solid and the liquid.
  • the aqueous alkaline solution used for washing the hydrolysis residue is supplied from the aqueous alkaline solution supply tank 6 and sent to the press filtration device through the washing liquid water inlet 15. Thereafter, the cleaning liquid can be circulated through the circulation line 10 from the press filtration device 8.
  • the alkaline aqueous solution supply tank 6 includes a water supply line (alkaline aqueous solution supply tank) 5, a heat retaining device (alkaline aqueous solution supply tank) 7 that adjusts the cleaning liquid to a desired temperature, a pH sensor 16 that measures the pH of the cleaning liquid, and the pH of the cleaning liquid
  • a concentrated alkali supply tank 17 is provided for dripping concentrated alkali to adjust the pH of the cleaning liquid.
  • the concentrated alkali supply tank 17 has a stirring device (concentrated alkali supply tank) 18.
  • the inorganic salt aqueous solution is supplied from the inorganic salt aqueous solution supply tank 20.
  • the inorganic salt aqueous solution supply tank 20 includes a heat retention facility (inorganic salt aqueous solution supply tank) 21 for adjusting the cleaning liquid to a desired temperature, a water supply line (inorganic salt aqueous solution supply tank) 19, and a stirring device (inorganic salt aqueous solution supply tank) 22. Is provided.
  • a filtrate recovery tank 11 and an ultrafiltration device 12 as devices for performing the step (3).
  • the washing liquid obtained in the step (2) is held in the filtrate collection tank 11 and filtered by the ultrafiltration membrane device 12 so that cellulase and sugar can be separated.
  • the recovered cellulase can be recovered and / or reused through the cellulase recovery line 13.
  • the apparatus of FIG. 2 has a simple apparatus configuration in which the hydrolysis residue is washed using a press filtration apparatus 8 as a solid-liquid separation apparatus, and has an advantage that the apparatus cost can be kept low.
  • the method for producing a sugar solution of the present invention can also be implemented by an apparatus configuration in which the hydrolysis residue is transferred from the solid-liquid separator to the washing tank and the hydrolysis residue is washed in the washing tank.
  • Various chemicals can be produced by growing microorganisms having the ability to produce chemicals using the sugar solution obtained by the present invention as a fermentation raw material.
  • growing a microorganism as a fermentation raw material means that a sugar component or an amino source contained in a sugar solution is used as a nutrient for the microorganism to propagate and maintain the growth of the microorganism.
  • Specific examples of chemical products include substances that are mass-produced in the fermentation industry, such as alcohols, organic acids, amino acids, and nucleic acids. Such chemical products are accumulated and produced as chemical products inside and outside the body in the process of metabolism using the sugar component in the sugar solution as a carbon source.
  • chemicals that can be produced by microorganisms include ethanol, 1,3-propanediol, 1,4-butanediol, glycerol and other alcohols, acetic acid, lactic acid, pyruvic acid, succinic acid, malic acid, itaconic acid, citric acid.
  • examples thereof include organic acids such as acids, nucleosides such as inosine and guanosine, nucleotides such as inosinic acid and guanylic acid, and amine compounds such as cadaverine.
  • the sugar solution of the present invention can be applied to the production of enzymes, antibiotics, recombinant proteins and the like.
  • the microorganism used for the production of such a chemical product may be any microorganism that can efficiently produce the target chemical product, and microorganisms such as Escherichia coli, yeast, filamentous fungi, and basidiomycetes can be used.
  • Trichoderma genus cellulase was prepared by the following method.
  • This preculture medium was inoculated with Trichoderma reesei PC3-7 at 1 ⁇ 10 5 cells / mL and cultured with shaking at 28 ° C. and 180 rpm for 72 hours to obtain a preculture solution (shaking apparatus: TAITEC). BIO-SHAKER BR-40LF).
  • the amount of enzyme that produces 1 ⁇ mol of glucose per minute in the above reaction system was defined as 1 U, and the activity value (U / mL) was calculated according to the following formula.
  • Cellobiose degradation activity (U / mL) glucose concentration (g / L) ⁇ 1000 ⁇ 505 ( ⁇ L) / (180.16 ⁇ reaction time (min) ⁇ 5 ( ⁇ L)).
  • a substrate solution was prepared by suspending xylan (Xylan from Birchwood, manufactured by Fluka) in 50 mM sodium acetate buffer (pH 5.2) to 1% by weight. 5 ⁇ L of enzyme solution was added to 500 ⁇ L of the dispensed substrate solution, and reacted at 50 ° C. while rotating and mixing. Although the reaction time was basically 4 hours, the reaction time was appropriately set according to the height of activity. After the reaction, the tube was centrifuged, and the xylose concentration of the supernatant component was measured. The xylose concentration was measured by the method described in Reference Example 2.
  • the amount of enzyme that produces 1 ⁇ mol of xylose per minute in the above reaction system was defined as 1 U, and the activity value (U / mL) was calculated according to the following formula.
  • Xylan decomposition activity (U / mL) xylose concentration (g / L) ⁇ 1000 ⁇ 505 ( ⁇ L) / (150.13 ⁇ reaction time (min) ⁇ 5 ( ⁇ L)).
  • Step 1 hydrolysis of cellulose-containing biomass
  • 1 g each of cellulose-containing biomass treated with diluted sulfuric acid and ammonia-treated product are weighed into four 50 mL centrifuge tubes, and ultrapure water is added so that the final concentration of pretreated biomass is 10% (w / w).
  • the pH of the composition was adjusted to the range of 4.0 to 6.0 using diluted sulfuric acid or diluted sodium hydroxide aqueous solution.
  • 30 mg of Trichoderma genus cellulase was added to the pH-adjusted composition, and the resulting mixture was rotated and mixed at 50 ° C. for 24 hours using a hybridization rotator (SN-06BN manufactured by Nisshin Rika).
  • the obtained hydrolyzate was subjected to solid-liquid separation by centrifugation (8,000 G, 10 minutes) to obtain 8 g of sugar solution and 2 g of hydrolysis residue.
  • Step 2 Washing of hydrolysis residue with aqueous alkali solution
  • Ultrapure water was added to two of the hydrolysis residues obtained in step 1 so that the total weight was 10 g, and one was adjusted to pH 9 using a diluted sodium hydroxide aqueous solution. For the other, no alkali was added for comparison (no pH adjustment).
  • These washings were mixed by rotation at 25 ° C. for 1 hour using a hybridization rotator (SN-06BN manufactured by Nisshin Rika). Thereafter, the washed product was subjected to solid-liquid separation by centrifugation (8,000 G, 10 minutes) to obtain 8 g of washing solution and 2 g of hydrolysis residue.
  • Step 2 washing of hydrolysis residue with inorganic salt aqueous solution
  • a 2% by weight aqueous sodium chloride solution was added to two of the hydrolysis residues obtained in step 1 so that the total weight would be 10 g, and one was not adjusted to pH.
  • the other was adjusted to pH 9 using diluted caustic soda for comparison.
  • These washed products were mixed by rotation for 1 hour using a hybridization rotator (SN-06BN manufactured by Nisshin Rika). Washing was performed at 25 ° C. for pH 9 and at 50 ° C. for pH unadjusted. Thereafter, the washed product was subjected to solid-liquid separation by centrifugation (8,000 G, 10 minutes) to obtain 8 g of washing solution and 2 g of hydrolysis residue.
  • Step 3 Ultrafiltration
  • the sugar solution obtained in Step 1 and the washing solution obtained in Step 2 or Step 2 ′ are combined and filtered through an ultrafiltration membrane (VIVASPIN 20 material: PES, manufactured by Sartorius Steady Biotech) having a molecular weight cut-off of 10,000.
  • the solution was centrifuged at 8,000 G until the non-permeate side became 1 mL or less.
  • the non-permeate was diluted 10 times or more with ultrapure water and centrifuged again at 8,000 G, and the non-permeate was used as a recovered enzyme solution.
  • activity was measured according to Reference Example 4 (Table 1).
  • Comparative Example 2 Enzyme Recovery by Washing Residue Two Times Using the Same Kind of Washing Solution
  • the first washing is performed on the hydrolysis residue obtained by performing solid-liquid separation in Step 2 or Step 2 ′ of Comparative Example 1.
  • a second washing was performed by adding the same washing solution used in the above.
  • the sugar solution, the first washing solution, and the second washing solution were all combined, and a recovered enzyme solution was obtained in the same manner as in Step 3 of Comparative Example 1.
  • the activity was measured according to Reference Example 4 (Table 2).
  • Example 1 Combination effect of different cleaning solutions
  • the enzyme recovery amount when both Step 2 and Step 2 'of Comparative Example 1 are performed is shown below. Specifically, after the first washing with an aqueous sodium hydroxide solution (pH 9, 25 ° C.), the second washing with an inorganic salt aqueous solution (2% by weight sodium chloride, 50 ° C.) or vice versa. The hydrolysis residue was washed. The recovered enzyme was obtained from the sugar solution and the washing solution in the same manner as in Step 3 of Comparative Example 1, and the activity was measured according to Reference Example 4. The results are summarized in Tables 3 and 4 in terms of relative activity.
  • Example 2 Relationship between the type of alkali used for the first washing and the amount of recovered enzyme
  • Example 1 dilute sulfuric acid treatment product
  • sodium hydroxide, potassium hydroxide, ammonia, carbonic acid as the alkali of the first washing solution
  • Sodium and trisodium phosphate were used, respectively, adjusted to pH 9 and washed at 25 ° C. for 1 hour.
  • a 2% by weight sodium chloride aqueous solution was added as a second washing solution and washed at 50 ° C. for 1 hour.
  • activity was measured according to Reference Example 4 using the recovered enzyme solution obtained by the same method as in Step 3 of Comparative Example 1.
  • Example 3 Effect of washing pH (first washing with sodium hydroxide)
  • the pH was adjusted to 7.5 to 12.0 using sodium hydroxide as the alkali of the first cleaning solution, and after washing at 25 ° C. for 1 hour, As a washing solution, 2% by weight aqueous sodium chloride solution was added and washing was performed at 50 ° C. for 1 hour.
  • Activity was measured according to Reference Example 4 using the recovered enzyme solution obtained in the same manner as in Step 3 of Comparative Example 1. The results are shown in Table 6 in terms of relative activity, based on the activity of the enzyme recovered under the same conditions as in the second washing in the same manner. .
  • Example 4 Effect of washing pH (first washing with ammonia)
  • a dilute sulfuric acid treatment product was used as the cellulose-containing biomass, and ammonia was used as the alkali of the first cleaning liquid.
  • the second washing was performed in the same manner as in Example 3 to obtain a recovered enzyme solution.
  • the activity of the obtained recovered enzyme solution was measured according to Reference Example 4.
  • the results are shown in Table 7 in terms of relative activity based on the activity of the enzyme recovered under the same conditions as in the second washing in the same manner. .
  • Even when ammonia is used as the alkali of the first cleaning solution more enzyme is recovered in the pH range of 7.5 to 10.0 than when no pH adjustment is performed, as in the case of using sodium hydroxide. I was able to.
  • Example 5 Relationship between cleaning pH and temperature
  • the first cleaning was performed in the range of 25 to 50 ° C. Thereafter, a 2% by weight aqueous sodium chloride solution was added as a second washing solution, and washing was performed at 50 ° C. for 1 hour.
  • Activity measurement was performed.
  • cellulase is deactivated when the washing temperature with the alkaline aqueous solution exceeds 40 ° C., and the pH is in the range of 7.5 to 10.0. In all, the amount of enzyme recovered was 40 ° C. or lower.
  • Example 6 Relationship between kind of inorganic salt and amount of recovered enzyme Using dilute sulfuric acid treatment product, sodium hydroxide was used as an alkali in the first washing in the same manner as in Example 1, and at pH 9 and 25 ° C. Washing was performed for 1 hour, and an alkaline aqueous solution cleaning solution was recovered as the first cleaning solution. Then, the 2nd washing
  • the inorganic salt potassium chloride, magnesium chloride, and ammonium sulfate were used in addition to sodium chloride.
  • the concentration of the aqueous inorganic salt solution was 2% by weight as in Example 1, and the washing conditions were 50 ° C. and 1 hour.
  • the sugar solution, the first washing solution, and the second washing solution were all combined, and a recovered enzyme solution was obtained in the same manner as in Step 3 of Comparative Example 1.
  • the amount of enzyme recovered in the second washing with potassium chloride, magnesium chloride, and ammonium sulfate was equal to or greater than that with sodium chloride.
  • the sugar solution obtained in the present invention can be used as a sugar raw material for various fermentation products.

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Abstract

　以下の工程（１）～（３）を含むセルロース含有バイオマスからの糖液の製造方法により、セルロース含有バイオマスの加水分解残渣から回収する糸状菌由来セルラーゼの再利用性を高め、糖液の製造方法で使用される糸状菌由来セルラーゼの使用量を削減することができる。 工程（１）：セルロース含有バイオマスを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解し、糖液と加水分解残渣に固液分離する工程、 工程（２）：工程（１）の加水分解残渣を、アルカリ水溶液および無機塩水溶液を使用して独立して洗浄し、加水分解残渣に吸着した糸状菌由来セルラーゼを洗浄液として回収する工程、 工程（３）：工程（２）の洗浄液を限外濾過膜に通じて濾過し、透過液として糖液を回収し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収する工程、を含むことを特徴とする、糖液の製造方法。

Description

糖液の製造方法
　本発明は、セルロース含有バイオマスから糖液を製造する方法に関する。
　近年、特にエネルギー使用量および環境負荷が少なく、かつ糖収量が多い、酵素を使用したセルロース含有バイオマスの加水分解方法が広く検討されている。しかしながら、酵素を使用する方法の欠点として、酵素費が高いといった課題があった。
　こうした技術課題を解決する手法として、加水分解に使用した酵素を回収再利用する方法が提案されており、中でも、加水分解残渣に吸着した酵素をアルカリ水溶液で洗浄することにより回収する方法は安価で酵素費の削減という目的に最も適しており、多くの検討がなされてきた。
　具体的には、酵素糖化後の加水分解残渣をｐＨ８程度の水酸化ナトリウム水溶液で洗浄することで結晶セルロースから酵素成分を回収する方法（非特許文献１）、結晶セルロースまたは希硫酸処理したコーンストーバーに吸着した酵素をｐＨ１０～１３のアルカリ性水溶液で洗浄することにより回収する方法（非特許文献２）が知られている。
　本発明者が従来の酵素回収方法を検討した結果、回収される酵素の種類に偏りがあり、回収後の酵素の再利用性が十分ではないことを見いだした。そこで本発明の解決しようとする課題は、糸状菌由来セルラーゼによるセルロース含有バイオマスの加水分解残渣から回収する糸状菌由来セルラーゼの再利用性を高め、糖液の製造方法で使用される糸状菌由来セルラーゼの使用量を削減することにある。
　本発明者は、上記課題を解決するため鋭意検討した結果、糸状菌由来セルラーゼによるセルロース含有バイオマスの加水分解残渣をアルカリ水溶液および無機塩水溶液を用いて独立して洗浄した場合、酵素成分が偏りなく溶離されるということを見出し、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は以下の［１］～［１０］の構成を有する。
［１］セルロース含有バイオマスからの糖液の製造方法であって、
工程（１）：セルロース含有バイオマスを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解し、糖液と加水分解残渣に固液分離する工程、
工程（２）：工程（１）の加水分解残渣を、アルカリ水溶液および無機塩水溶液を使用して独立して洗浄し、加水分解残渣に吸着した糸状菌由来セルラーゼを洗浄液として回収する工程、
工程（３）：工程（２）の洗浄液を限外濾過膜に通じて濾過し、透過液として糖液を回収し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収する工程、を含むことを特徴とする、糖液の製造方法。
［２］工程（２）において、前記加水分解残渣をアルカリ水溶液で洗浄し、第一の洗浄液としてアルカリ水溶液洗浄液を回収した後、さらに無機塩水溶液で洗浄し、第二の洗浄液として無機塩水溶液洗浄液を回収することを特徴とする、［１］に記載の糖液の製造方法。
［３］工程（２）のアルカリ水溶液のｐＨが７．５～１０．０の範囲であることを特徴とする、［１］または［２］に記載の糖液の製造方法。
［４］工程（２）のアルカリ水溶液の温度が４０℃以下であることを特徴とする、［１］から［３］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［５］工程（２）のアルカリがアンモニア、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウムまたはリン酸三ナトリウムである、[１]から［４］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［６］工程（２）の無機塩が、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、硫酸アンモニウムからなる群から選ばれる１種または２種以上であることを特徴とする、［１］から［５］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［７］工程（１）の糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ属微生物由来であることを特徴とする、［１］から［６］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［８］工程（１）において、セルロース含有バイオマスの希硫酸処理物を加水分解することを特徴とする、［１］から［７］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［９］工程（１）において、プレス濾過により加水分解残渣を得ることを特徴とする、［１］から［８］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［１０］工程（３）で得られた糖液をナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、非透過液として濃縮糖液を回収する工程を含む、［１］から［９］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
　本発明によれば、セルロース含有バイオマスの加水分解残渣に吸着した糸状菌由来セルラーゼの酵素成分、とりわけセロビオース分解活性、キシラン分解活性に関わる酵素成分が偏りなく高効率で回収されるため、回収された糸状菌由来セルラーゼを繰り返し使用することができる。
図１は、本発明の糖液の製造方法の実施の形態を示した略図である。 図２は、本発明の糖液の製造方法を実施するための装置の形態を示した略図である。
　以下、本発明を実施するための形態について工程順に説明する。
　[工程（１）]
　セルロース含有バイオマスは、バガス、スイッチグラス、ネピアグラス、エリアンサス、コーンストーバー、ビートパルプ、綿実殻、パーム殻房、稲わら、麦わら、竹、笹、などの草本系バイオマス、あるいはシラカバ、ブナなどの樹木、廃建材などの木質系バイオマスを挙げることができる。セルロース含有バイオマスは糖から構成されるセルロースおよびヘミセルロースの他に、芳香族高分子であるリグニンなどを含有しているため、前処理を施すことにより酵素による加水分解効率を向上させることができる。セルロース含有バイオマスの前処理方法としては、酸処理、硫酸処理、希硫酸処理、酢酸処理、アルカリ処理、苛性ソーダ処理、アンモニア処理、水熱処理、亜臨界水処理、微粉砕処理、蒸煮処理が挙げられるが、後述の工程（２）で幅広い酵素成分を効率よく回収するという観点においては希硫酸処理が好ましい。
　本発明ではセルロース含有バイオマスの加水分解のために糸状菌由来セルラーゼを使用する。糸状菌としては、トリコデルマ属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、セルロモナス属（Ｃｅｌｌｕｌｏｍｏｎａｓ）、クロストリジウム属（Ｃｈｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、フミコラ属（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）、アクレモニウム属（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）、イルペックス属（Ｉｒｐｅｘ）、ムコール属（Ｍｕｃｏｒ）、タラロマイセス属（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）、などの微生物を挙げることができる。また、これら微生物に変異剤あるいは紫外線照射などで変異処理を施すことによりセルラーゼ生産性が向上した変異株由来のセルラーゼであってもよい。
　糸状菌由来セルラーゼは、セロビオハイドラーゼ、エンドグルカナーゼ、エキソグルカナーゼ、β－グルコシダーゼ、キシラナーゼ、β－キシロシダーゼ、キシログルカナーゼなどの複数の酵素成分を含む、セルロースおよび／またはヘミセルロースを加水分解して糖化する活性を有する酵素組成物である。糸状菌由来セルラーゼにはこうした複数の酵素成分が含まれるため、その協奏効果あるいは補完効果により効率的なセルロースおよび／またはヘミセルロースの加水分解を実施することができるため、本発明において好ましく使用される。
　セルラーゼとは、セルロースを加水分解する酵素群の総称である。具体的には、セロビオハイドラーゼ、エンドグルカナーゼ、エキソグルカナーゼ、β－グルコシダーゼなどを例示することができる。
　セロビオハイドラーゼとは、セルロースの還元末端または非還元末端から持続的加水分解を開始し、セロビオースを放出する酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．９１としてセロビオハイドラーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　エンドグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の中央部分から加水分解することを特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．４としてエンドグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　エキソグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の末端から加水分解することを特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．７４としてエキソグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　β－グルコシダーゼとは、セロオリゴ糖あるいはセロビオースに作用することをと特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．２１としてβ－グルコシダーゼに帰属する酵素群が記載されている。
　キシラナーゼとは、ヘミセルロースあるいは特にキシランに作用することを特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．８としてキシラナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　β－キシロシダーゼとは、キシロオリゴ糖に作用することを特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．３７としてキシロシダーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　キシログルカナーゼとは、ヘミセルロースあるいは特にキシログルカンに作用することを特徴とする酵素の総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．４またはＥＣ３．２．１．１５１としてキシログルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
　こうしたセルラーゼ成分は、ゲル濾過、イオン交換、二次元電気泳動などの公知手法により分離し、分離した成分のアミノ酸配列（Ｎ末端分析、Ｃ末端分析、質量分析）を行い、データベースとの比較により同定することができる。
　また、糸状菌由来セルラーゼの酵素活性は、アビセル分解活性、カルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ）分解活性、セロビオース分解活性、キシラン分解活性、マンナン分解活性などといった多糖の加水分解活性によって評価することができる。アビセル分解活性を示す主たる酵素は、セルロース末端部分から加水分解する特徴を有するセロビオハイドラーゼあるいはエキソグルカナーゼである。セロビオース分解活性を示す主たる酵素は、β－グルコシダーゼである。ＣＭＣ分解活性に関与する主たる酵素は、セロビオハイドラーゼ、エキソグルカナーゼ、エンドグルカナーゼである。キシラン分解活性を示す主たる酵素はキシラナーゼ、β－キシロシダーゼである。ここで“主たる”という意味は、最も分解に関与することが知られていることからの表現であり、これ以外の酵素成分もその分解に関与していることを意味している。
　糸状菌は、培養液中にセルラーゼを産生するため、その培養液を粗酵素剤としてそのまま使用してもよいし、公知の方法で酵素群を精製し、製剤化したものを糸状菌由来セルラーゼ混合物として使用してもよい。糸状菌由来セルラーゼを精製し、製剤化したものとして使用する場合、プロテアーゼ阻害剤、分散剤、溶解促進剤、安定化剤など、酵素以外の物質を添加したものをセルラーゼ製剤として使用してもよい。なお、本発明ではこれらの中でも粗酵素物が好ましく使用される。粗酵素物は、トリコデルマ属の微生物がセルラーゼを産生するよう調製した培地中で、任意の期間該微生物を培養した培養上清に由来する。使用する培地成分は特に限定されないが、セルラーゼの産生を促進するためにセルロースを添加した培地が一般的に使用できる。そして、粗酵素物として、培養液をそのまま、あるいはトリコデルマ菌体を除去したのみの培養上清が好ましく使用される。
　粗酵素物中の各酵素成分の重量比は特に限定されるものではないが、例えば、トリコデルマ・リーセイ由来の培養液には、５０～９５重量％のセロビオハイドラーゼが含まれており、残りの成分にエンドグルカナーゼ、β－グルコシダーゼなどが含まれている。また、トリコデルマ属の微生物は、強力なセルラーゼ成分を培養液中に生産する一方で、β－グルコシダーゼに関しては、細胞内あるいは細胞表層に保持しているため培養液中のβ－グルコシダーゼ活性は低い。そこで、粗酵素物に、さらに異種または同種のβ－グルコシダーゼを添加してもよい。異種のβ－グルコシダーゼとしては、アスペルギルス属由来のβ－グルコシダーゼが好ましく使用できる。アスペルギルス属由来のβ－グルコシダーゼとして、ノボザイム社より市販されているＮｏｖｏｚｙｍｅ１８８などを例示することができる。また、トリコデルマ属の微生物に遺伝子を導入し、その培養液中に産生されるよう遺伝子組み換えされたトリコデルマ属の微生物を培養し、β－グルコシダーゼ活性の向上した培養液を用いてもよい。
　糸状菌の中でもトリコデルマ属は、セルロースの加水分解において比活性の高い酵素成分を培養液中に大量に生産するため本発明において好ましく使用することができる。トリコデルマ属由来セルラーゼの具体例としては、トリコデルマ・リーセイＱＭ９４１４（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＱＭ９４１４）、トリコデルマ・リーセイＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＱＭ９１２３）、トリコデルマ・リーセイＲｕｔＣ－３０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＲｕｔＣ－３０）、トリコデルマ・リーセイＰＣ３－７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＰＣ３－７）、トリコデルマ・リーセイＣＬ－８４７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＣＬ－８４７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ７７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＭＣＧ７７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ８０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ　ＭＣＧ８０）、トリコデルマ・ビリデＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｖｉｒｉｄｅ　ＱＭ９１２３）由来のセルラーゼが挙げられるが、中でもトリコデルマ・リーセイ由来セルラーゼがより好ましい。
　本発明では、前述セルロース含有バイオマスに糸状菌由来セルラーゼを添加して加水分解を行う。加水分解反応の温度は、４０～６０℃の範囲であることが好ましく、特にトリコデルマ属由来セルラーゼを使用する場合、４５～５５℃の範囲であることがより好ましい。加水分解反応の時間は、２時間～２００時間の範囲であることが好ましい。２時間未満であると、十分な糖生成が得られず好ましくない。一方で、２００時間を超えると酵素活性が低下し、回収酵素の再利用性に悪影響を及ぼすため好ましくない。加水分解反応のｐＨは、４．０～６．０の範囲であることが好ましい。また、糸状菌由来セルラーゼとしてトリコデルマ属由来セルラーゼを使用する場合、その反応最適ｐＨは５．０である。さらに、加水分解の過程でｐＨの変化が起きるため、反応液に緩衝液を添加する、あるいは酸やアルカリを用いて一定ｐＨを保持しながら実施することが好ましい。
　前述の加水分解によって得られた加水分解物は、固液分離することで、糖液および加水分解残渣に分離することができる。固液分離の方法としては、遠心分離、プレス濾過が挙げられるが、本発明においてはプレス濾過により固形分を回収することが好ましい。
　固液分離としてのプレス濾過が好ましい理由として、１）糖溶液の回収率が優れる点、２）澄明な濾液を得られる点、が挙げられる。固液分離の際に固形物側に残った糖は、残渣を洗浄する際の加水量を増加させることでその回収率を上げることができる。ただし、加水量が増えると、糖溶液の糖濃度が低くなるため好ましくない。したがって、極力水の使用量を抑えつつ、高い糖回収率を得るという観点で、固液分離を行うための装置は１回の固液分離でより多くの糖溶液を回収できるプレス濾過であることが好ましい。また、本発明では固液分離で得られた糖溶液および残渣の洗浄液を限外濾過膜に通じて酵素成分の回収を行うため、この限外濾過膜に通じる液として、固形分あるいは微粒子成分の少ないことが膜ファウリングの観点で好ましい。プレス濾過の場合、固形分あるいは微粒子成分が少ないため、本発明で好ましく使用することができる。
　また工程（１）で得た糖液は、さらに糖濃度を高める濃縮処理を行ってもよい。濃縮処理は、蒸発濃縮、減圧濃縮、膜濃縮などを例示することができるが、エネルギー使用量が少なく、糖液に含まれる発酵阻害物質を分離することが可能なＷＯ２０１０／０６７７８５号に記載される方法で、糖成分が濃縮された濃縮糖液を得ることができる。
　［工程（２）］
　前記工程（１）で得られた加水分解残渣には比較的大量の糸状菌由来セルラーゼが吸着した状態にあり、工程（２）において、加水分解残渣をアルカリ水溶液および無機塩水溶液を用いて独立して洗浄することにより、吸着したセルラーゼ成分を洗浄液に溶解させて回収を行う。
　本発明で用いるアルカリ水溶液とは、ｐＨが７を超えるものであれば特に限定されないが、ｐＨ７．５～１０．０の範囲のものを好ましく用いることができる。ｐＨが１０．０よりも高いと洗浄中にセルラーゼが失活することがあり、一方、ｐＨが７．５よりも低いと十分な酵素回収率が得られないことがある。
　アルカリ水溶液はアルカリを水に溶解して調製することができる。アルカリとは、水に溶解した際に７よりも高いｐＨを示す物質であれば特に限定されないが、アルカリ金属あるいはアルカリ土類金属の水酸化物、アンモニア、アミン、アルカリ金属の炭酸塩、アルカリ金属のリン酸塩から選択される１種または２種以上を例示できる。特に、水によく溶け、少量で所望のｐＨに調整できるという観点から、より好ましいアルカリとして、アンモニア、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、リン酸三ナトリウムが例示され、また、本発明において最大の効果を得るという観点から、さらに好ましいアルカリとしてはアンモニアを例示することができる。
　アルカリ水溶液を用いて加水分解残渣の洗浄を行う際、洗浄中に加水分解残渣から抽出される成分によるｐＨの低下が起きるため、適宜アルカリを添加してｐＨを一定に保つことが望ましい。添加するアルカリは液体でも固体でもよいが、速やかにｐＨ調整を行える液体を用いるほうが好ましい。
　アルカリ水溶液を用いた加水分解残渣の洗浄は、４０℃以下の温度で行うことが好ましい。セルラーゼはアルカリ性条件下で不安定であり、４０℃よりも高い温度で洗浄を行うと酵素が失活し、酵素の再利用性が低くなることがある。
　アルカリ水溶液を用いた加水分解残渣の洗浄時間は特に限定されないが、５～１８０分の範囲であることが好ましい。５分未満であると、加水分解残渣に吸着したセルラーゼが十分に溶離しないことがあり、一方、洗浄時間が１８０分を超えるとセルラーゼが失活することがある。
　本発明での無機塩水溶液は特に限定されないが、ナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、硫酸塩、アンモニウム塩、塩酸塩、リン酸塩、硝酸塩から選択される１種または２種以上の水溶液を例示できる。より好ましい無機塩としては、水溶性の高い塩化ナトリウム、硫酸ナトリウム、硫酸水素ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム、硫酸アンモニウム、塩化カリウム、塩化アンモニウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウムなどである。このうち最も好ましくは塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、硫酸アンモニウムであり、こうした無機塩を添加することにより、特にキシラン分解活性に関わる酵素成分を多く回収することができる。
　水溶性無機塩の添加濃度は０．０５～５重量％の範囲が好ましい。０．０５重量％未満であるとセルラーゼの回収効率が低いことがあり、また一方で５重量％を超えるとセルラーゼの失活が促進されることがあり、かつ経済的にも不利になる。また、洗浄の温度は特に限定されないが、４０～６０℃の範囲で効率よくセルラーゼを回収できるため、この範囲が好ましい。
　本発明において、アルカリ水溶液を用いた洗浄と無機塩水溶液を用いた洗浄は独立して実施するが、どちらを先に実施してもよい。すなわち、加水分解残渣をアルカリ水溶液で洗浄し、第一の洗浄液としてアルカリ水溶液洗浄液を回収した後に、さらに加水分解残渣を無機塩水溶液で洗浄し、第二の洗浄液として無機塩水溶液洗浄液を回収してもよいし、あるいはその逆の順序でもよい。例えば、アルカリ水溶液、無機塩水溶液の順に洗浄を実施する場合、セロビオース分解活性に関与する成分を多く回収することができる。逆に無機塩水溶液、アルカリ水溶液の順に洗浄を実施する場合、キシラン分解活性に関与する成分を多く回収することができる。洗浄の順序によって回収される酵素成分が異なるのは、加水分解残渣に残ったアルカリまたは無機塩が次の洗浄物に持ち込まれるためである。より多く回収したい酵素成分に応じて最適な洗浄方法を定めることができる。なお、本発明の目的の一つは回収された酵素成分をセルロース含有バイオマスの加水分解に再利用することであり、セルロース含有バイオマスの最大の構成成分であるセルロースの分解に関与する結晶セルロース分解活性およびセロビオース分解活性をより多く回収できるという点で、本発明においてはアルカリ水溶液、無機塩水溶液の順に洗浄することが好ましい。
　加水分解残渣の洗浄における洗浄液の量は特に限定されないが、第一の洗浄においては洗浄時の固形物濃度が１～２０重量％の間になるよう添加することが好ましい。２０重量％より固形物濃度が多い場合、酵素回収量の観点で効率的でなく、一方、１重量％より固形物濃度が少ない場合、液量が増えるため、後述工程（３）での限外濾過膜処理が効率的でない。
　第二の洗浄においては、洗浄液の液量は固形物濃度が１～１０重量％の間になるよう添加することが好ましい。１０重量％より固形物濃度が高い場合、第一の洗浄に用いたアルカリあるいは無機塩の第二の洗浄への持ち込み量が多くなるため、第二の洗浄において溶離されるべき酵素成分が回収できない場合がある。例えば、アルカリ水溶液、無機塩水溶液の順に洗浄を行った場合、無機塩水溶液を用いた洗浄におけるｐＨは先のアルカリ水溶液による洗浄の影響を受けるため、無機塩水溶液による洗浄で回収すべきキシラン分解活性に関与する酵素成分が失活する可能性がある。一方、無機塩水溶液、アルカリ水溶液の順に洗浄を行った場合、アルカリ水溶液を用いた洗浄における塩濃度が高いとキシラン分解活性の回収率が低下する場合がある。また、逆に固形物濃度が１重量％より低い場合、第一の洗浄と同様に液量が増えるため、後述工程（３）での限外濾過膜処理が効率的でない。
　なお、上述のような第一の洗浄液の影響を回避するために、第一の洗浄物の固液分離を行った後に加水分解残渣を一旦水に浸漬し、加水分解残渣に残ったアルカリまたは無機塩を洗い流してもよい。この場合、第二の洗浄においても第一の洗浄と同様に洗浄液の添加量を２０重量％まで減らすことができる。
　あるいは、アルカリ水溶液、無機塩水溶液の順に洗浄を実施する場合に限っては、無機塩水溶液による洗浄の際、適宜酸を添加してセルラーゼが安定なｐＨに調整してもよい。添加する酸は特に限定されないが、硫酸、塩酸、クエン酸、酢酸などを用いることができる。無機塩水溶液を用いた洗浄におけるｐＨが低いほどキシラン分解活性に関与する酵素成分が、逆にｐＨが高いほどセロビオース分解活性に関与する酵素成分が多く回収できるため、無機塩水溶液を用いた洗浄におけるｐＨはより多く回収したい酵素成分に応じて適宜設定することができる。
　［工程（３）］
　本発明では、前述工程（２）のアルカリ水溶液洗浄液および無機塩水溶液洗浄液を逐次的、あるいは同時的に限外濾過膜に通じて濾過し、透過液として糖液を回収し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収することを特徴とする。
　本発明で使用する限外濾過膜の分画分子量は、単糖であるグルコース（分子量１８０）やキシロース（分子量１５０）を透過でき、糸状菌由来セルラーゼを阻止できる限外濾過膜であれば限定されない。具体的には分画分子量５００～５０，０００の範囲であればよく、酵素反応に阻害的作用を示す夾雑物質を酵素と分離するという観点から、より好ましくは分画分子量５，０００～５０，０００の範囲であり、さらに好ましくは分画分子量１０，０００～３０，０００の範囲である。
　限外濾過膜の素材としては、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）、ポリスルホン（ＰＳ）、ポリアクリロニトリル（ＰＡＮ）、ポリフッ化ビニルデン（ＰＶＤＦ）、再生セルロース、セルロース、セルロースエステル、スルホン化ポリスルホン、スルホン化ポリエーテルスルホン、ポリオレフィン、ポリビニルアルコール、ポリメチルメタクリレート、ポリ４フッ化エチレンなどを使用することができるが、再生セルロース、セルロース、セルロースエステルはセルラーゼによる分解を受けるため、ＰＥＳ、ＰＶＤＦなどの合成高分子を素材とした限外濾過膜を使用することが好ましい。
　限外濾過膜の濾過方式として、デッドエンド濾過、クロスフロー濾過があるが、膜ファウリング抑制の観点から、クロスフロー濾過であることが好ましい。また使用する限外濾過膜の膜形態としては、平膜型、スパイラル型、チューブラー型、中空糸型など適宜の形態のものが使用できる。具体的には、ＤＥＳＡＬ社のＧ－５タイプ、Ｇ－１０タイプ、Ｇ－２０タイプ、Ｇ－５０タイプ、ＰＷタイプ、ＨＷＳＵＦタイプ、ＫＯＣＨ社のＨＦＭ－１８０，ＨＦＭ－１８３、ＨＦＭ－２５１、ＨＦＭ－３００、ＨＦＫ－１３１、ＨＦＫ－３２８、ＭＰＴ－Ｕ２０、ＭＰＳ－Ｕ２０Ｐ、ＭＰＳ－Ｕ２０Ｓ、Ｓｙｎｄｅｒ社のＳＰＥ１、ＳＰＥ３、ＳＰＥ５、ＳＰＥ１０、ＳＰＥ３０、ＳＰＶ５、ＳＰＶ５０、ＳＯＷ３０、旭化成株式会社製のマイクローザ（登録商標）ＵＦシリーズの分画分子量３，０００から１０，０００に相当するもの、日東電工株式会社製のＮＴＲ７４１０、ＮＴＲ７４５０などが挙げられる。
　［装置］
　本発明の糖液の製造方法を実施するための装置について説明するが、その装置形態は必ずしも以下に限定されるものではない。
　装置形態の一例として、図２に示されるような装置が例示される。工程（１）を実施するための装置として、加水分解槽２とプレス濾過装置８がある。加水分解槽２は保温設備（加水分解槽）１、セルロース含有バイオマス投入口３、攪拌装置（加水分解槽）４を備える。固液分離装置はプレス濾過装置８とコンプレッサー９からなる。加水分解槽２で得られたセルロース含有バイオマスの加水分解物は、加水分解物投入口１４よりプレス濾過装置８に投入される。ここでコンプレッサー９による圧搾を行い、固液分離する。
　工程（２）を実施するための装置として、アルカリ水溶液供給槽６、無機塩水溶液供給槽２０、および循環ライン１０がある。
　まずアルカリ水溶液を用いた洗浄を行うための装置形態について説明する。加水分解残渣の洗浄に用いるアルカリ水溶液は、アルカリ水溶液供給槽６から供給され、洗浄液通水口１５を通ってプレス濾過装置内へ送られる。その後、プレス濾過装置８から循環ライン１０を通じて洗浄液を循環させることができる。アルカリ水溶液供給槽６は水供給ライン（アルカリ水溶液供給槽）５、洗浄液を所望の温度に調節する保温設備（アルカリ水溶液供給槽）７、洗浄液のｐＨを測定するｐＨセンサ１６、洗浄液のｐＨに応じて濃アルカリを滴下し、洗浄液のｐＨを調整するための濃アルカリ供給槽１７を備える。濃アルカリ供給槽１７は攪拌装置（濃アルカリ供給槽）１８を有する。
　次に無機塩水溶液を用いた洗浄を行うための装置形態について説明する。無機塩水溶液は、無機塩水溶液供給槽２０から供給される。無機塩水溶液供給槽２０は、洗浄液を所望の温度に調節する保温設備（無機塩水溶液供給槽）２１、水供給ライン（無機塩水溶液供給槽）１９、および攪拌装置（無機塩水溶液供給槽）２２を備える。
　続いて、工程（３）を実施するための装置として、濾液回収タンク１１および限外濾過装置１２がある。工程（２）で得られた洗浄液は、濾液回収タンク１１に保持され、限外濾過膜装置１２で濾過され、セルラーゼと糖を分離することができる。回収されたセルラーゼは、セルラーゼ回収ライン１３を通じて回収および／または再利用することができる。
　なお、図２の装置では、固液分離装置としてのプレス濾過装置８を用いて加水分解残渣の洗浄を実施するという単純な装置構成であり、装置コストを低く抑えることができる利点を有する。
　その他、加水分解残渣を固液分離装置から洗浄槽に移送し、洗浄槽で加水分解残渣の洗浄を行う装置形態などによっても本発明の糖液の製造方法を実施することができる。
　［糖液の用途］
　本発明により得られた糖液を発酵原料として化学品を生産する能力を有する微生物を生育させることで、各種化学品を製造することができる。ここでいう発酵原料として微生物を生育させるとは、糖液に含まれる糖成分あるいはアミノ源を微生物の栄養素として利用し、微生物の増殖、生育維持を行うことを意味している。化学品の具体例としては、アルコール、有機酸、アミノ酸、核酸など発酵工業において大量生産されている物質を挙げることができる。こうした化学品は、糖液中の糖成分を炭素源として、その代謝の過程において生体内外に化学品として蓄積生産する。微生物によって生産可能な化学品の具体例として、エタノール、１，３－プロパンジオール、１，４－ブタンジオール、グリセロールなどのアルコール、酢酸、乳酸、ピルビン酸、コハク酸、リンゴ酸、イタコン酸、クエン酸などの有機酸、イノシン、グアノシンなどのヌクレオシド、イノシン酸、グアニル酸などのヌクレオチド、カダベリンなどのアミン化合物を挙げることができる。さらに、本発明の糖液は、酵素、抗生物質、組換えタンパク質などの生産に適用することも可能である。こうした化学品の製造に使用する微生物に関しては、目的の化学品を効率的に生産可能な微生物であればよく、大腸菌、酵母、糸状菌、担子菌などの微生物を使用することができる。
　以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されるものではない。
　（参考例１）セルロース含有バイオマスの調製
　１．セルロース含有バイオマスの希硫酸処理
　セルロース含有バイオマス（コーンコブ）を硫酸１％水溶液に浸し、１５０℃で３０分オートクレーブ（日東高圧製）にて処理した。処理後、固液分離を行い、硫酸水溶液（以下、希硫酸処理液）と硫酸処理セルロースに分離した。次に固形分濃度が１０重量％となるように硫酸処理セルロースと希硫酸処理液とを攪拌混合した後、水酸化ナトリウムによって、ｐＨを５付近に調整した。得られた希硫酸処理物を以下の実施例に使用した。
　２．セルロース含有バイオマスのアンモニア処理
　セルロース含有バイオマス（エリアンサス）を小型反応器（耐圧硝子工業製、ＴＶＳ－Ｎ２　３０ｍＬ）に投入し、液体窒素で冷却した。この反応器にアンモニアガスを流入し、試料を完全に液体アンモニアに浸漬させた。リアクターの蓋を閉め、室温で１５分ほど放置した。次いで、１５０℃のオイルバス中にて１時間処理した。処理後、反応器をオイルバスから取り出し、ドラフト中で直ちにアンモニアガスをリーク後、さらに真空ポンプで反応器内を１０Ｐａまで真空引きし乾燥させた。得られたアンモニア処理物を以下の実施例に使用した。
　（参考例２）糖濃度の測定
　グルコース濃度の測定にはグルコースＣＩＩ－テストワコー（和光純薬製）を、キシロース濃度の測定には、Ｄ－ＸＹＬＯＳＥ　ＡＳＳＡＹ　ＫＩＴ（Ｍｅｇａｚｙｍｅ製）を用いた。
　（参考例３）トリコデルマ属由来セルラーゼの調製
　トリコデルマ属由来セルラーゼは以下の方法で調製した。
　［前培養］
　コーンスティープリカー５％（ｗ／ｖ）、グルコース２％（ｗ／ｖ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖ）、硫酸アンモニウム０．１４％（ｗ／ｖ）、リン酸二水素カリウム０．１４％（ｗ／ｖ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖ）、塩化鉄（ＩＩＩ）六水和物０．０１％（ｗ／ｖ）、硫酸銅（ＩＩ）後水和物０．００４％（ｗ／ｖ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖ）、ホウ酸０．０００６％（ｗ／ｖ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．０２６％（ｗ／ｖ）となるよう蒸留水に溶解し、１００ｍＬを５００ｍＬ容バッフル付き三角フラスコに入れ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ－ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．０１％（ｗ／ｖ）となるよう添加した。この前培養培地にトリコデルマ・リーセイＰＣ３－７を１×１０５個／ｍＬになるよう植菌し、２８℃、１８０ｒｐｍにて７２時間振とう培養し、前培養液とした（振とう装置：ＴＡＩＴＥＣ製　ＢＩＯ－ＳＨＡＫＥＲ　ＢＲ－４０ＬＦ）。
　［本培養］
　コーンスティープリカー５％（ｗ／ｖ）、グルコース２％（ｗ／ｖ）、セルロース（アビセル）１０％（ｗ／ｖ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖ）、硫酸アンモニウム０．１４％（ｗ／ｖ）、リン酸二水素カリウム０．２％（ｗ／ｖ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖ）、塩化鉄（ＩＩＩ）六水和物０．０１％（ｗ／ｖ）、硫酸銅（ＩＩ）五水和物０．００４％（ｗ／ｖ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖ）、ホウ酸０．００６％（ｗ／ｖ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．００２６％（ｗ／ｖ）となるよう蒸留水に溶解し、２．５Ｌを５Ｌ容ジャーファーメンター（ＡＢＬＥ製　ＤＰＣ－２Ａ）に入れ、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ－ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．０１％（ｗ／ｖ）となるよう添加し、前記の方法にて得た前培養液を２５０ｍＬ接種した。その後、２８℃、３００ｒｐｍ、通気量１ｖｖｍにて８７時間培養を行った。得られた培養液をそのまま粗酵素液として以下実施例に使用した。
　（参考例４）セルラーゼ活性測定方法
　セルラーゼ活性は、１）結晶セルロース分解活性、２）セロビオース分解活性、３）キシラン分解活性、の３種について以下の手順で測定評価した。
　１）結晶セルロース分解活性
　５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．２）に、１重量％になるよう結晶セルロース（Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ　ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｒｉｎｅ、Ｍｅｒｋ製）を懸濁したものを基質溶液とした。５００μＬの基質溶液に酵素液５μＬを添加し、５０℃で回転混和しながら反応させた。反応時間は２４時間で、反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法で測定した。上記反応系にて１分間に１μｍｏｌのグルコースを生成する酵素量を１Ｕと定義し、活性値（Ｕ／ｍＬ）を下記式に従って算出した。
結晶セルロース分解活性（Ｕ／ｍＬ）＝グルコース濃度（ｇ／Ｌ）×１０００×５０５（μＬ）／（１８０．１６×反応時間（分）×５（μＬ））。
　２）セロビオース分解活性
　５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．２）に、１５ｍＭとなるようＤ（＋）－セロビオース（和光純薬製）を溶解したものを基質溶液とした。５００μＬの基質溶液に酵素液５μＬを添加し、５０℃で回転混和しながら反応させた。反応時間は０．５時間を基本としたが、活性の高さに応じて適宜反応時間を設定した。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法で測定した。上記反応系にて１分間に１μｍｏｌのグルコースを生成する酵素量を１Ｕと定義し、活性値（Ｕ／ｍＬ）を下記式に従って算出した。
セロビオース分解活性（Ｕ／ｍＬ）＝グルコース濃度（ｇ／Ｌ）×１０００×５０５（μＬ）／（１８０．１６×反応時間（分）×５（μＬ））。
　３）キシラン分解活性
　５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．２）に、１重量％になるようキシラン（Ｘｙｌａｎ　ｆｒｏｍ　Ｂｉｒｃｈ　ｗｏｏｄ、Ｆｌｕｋａ社製）を懸濁したものを基質溶液とした。分注した５００μＬの基質溶液に酵素液５μＬを添加し、５０℃で回転混和しながら反応させた。反応時間は４時間を基本としたが、活性の高さに応じて適宜反応時間を設定した。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のキシロース濃度を測定した。キシロース濃度は、参考例２に記載の方法で測定した。上記反応系にて１分間に１μｍｏｌのキシロースを生成する酵素量を１Ｕと定義し、活性値（Ｕ／ｍＬ）を下記式に従って算出した。
キシラン分解活性（Ｕ／ｍＬ）＝キシロース濃度（ｇ／Ｌ）×１０００×５０５（μＬ）／（１５０．１３×反応時間（分）×５（μＬ））。
　（比較例１）残渣の１回洗浄による酵素の回収
　比較例として、アルカリ水溶液または無機塩水溶液のどちらか一方のみを用いて加水分解残渣の洗浄を実施した場合の酵素回収量について以下に示す。
　（工程１：セルロース含有バイオマスの加水分解）
　セルロース含有バイオマスの希硫酸処理物およびアンモニア処理物を各１ｇずつ、５０ｍＬ遠沈管４本に秤量し、前処理バイオマスの終濃度が１０％（ｗ／ｗ）となるよう超純水を加え、さらに希釈硫酸あるいは希釈水酸化ナトリウム水溶液を用いて本組成物のｐＨを４．０～６．０の範囲に調整した。ｐＨを調整した本組成物にトリコデルマ属由来セルラーゼ３０ｍｇを添加し、ハイブリダイゼーションローテーター（日伸理化製　ＳＮ－０６ＢＮ）を用いて５０℃で２４時間回転混和した。得られた加水分解物を遠心分離（８，０００Ｇ、１０分間）にて固液分離し、糖液８ｇと加水分解残渣２ｇを得た。
　（工程２：アルカリ水溶液による加水分解残渣の洗浄）
　工程１で得られた加水分解残渣のうち２つに総重量が１０ｇとなるよう超純水を添加し、一方は希釈水酸化ナトリウム水溶液を用いてｐＨ９に調整した。もう一方は比較のためにアルカリを一切添加しなかった（ｐＨ無調整）。これらの洗浄物をハイブリダイゼーションローテーター（日伸理化製　ＳＮ－０６ＢＮ）を用いて２５℃で１時間回転混和した。その後、本洗浄物を遠心分離（８，０００Ｇ、１０分間）にて固液分離し、洗浄液８ｇと加水分解残渣２ｇを得た。
　（工程２’：無機塩水溶液による加水分解残渣の洗浄）
　工程１で得られた加水分解残渣のうち２つに総重量が１０ｇとなるよう２重量％の塩化ナトリウム水溶液を添加し、一方はｐＨ無調整とした。もう一方は比較のために希釈苛性ソーダを用いてｐＨ９に調整した。これらの洗浄物をハイブリダイゼーションローテーター（日伸理化製　ＳＮ－０６ＢＮ）を用いて１時間回転混和した。ｐＨ９のものは２５℃、ｐＨ無調整のものは５０℃で洗浄した。その後、本洗浄物を遠心分離（８，０００Ｇ、１０分間）にて固液分離し、洗浄液８ｇと加水分解残渣２ｇを得た。
　（工程３：限外濾過）
　工程１で得られた糖溶液と工程２または工程２’で得られた洗浄液を合一し、分画分子量１０，０００の限外濾過膜（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ　ｓｔｅｄｉｍ　ｂｉｏｔｅｃｈ製　ＶＩＶＡＳＰＩＮ　２０　材質：ＰＥＳ）で濾過し、非透過側が１ｍＬ以下になるまで８，０００Ｇにて遠心した。非透過液を超純水で１０倍以上に希釈し、再度８，０００Ｇにて遠心分離し、非透過液を回収酵素液とした。得られた回収酵素液を用い、参考例４に従って活性測定を行った（表１）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　（比較例２）同種の洗浄液を用いた残渣の２回洗浄による酵素の回収
　比較例１の工程２または工程２’において固液分離を行って得られた加水分解残渣に対し、第一の洗浄で用いたのと同じ洗浄液を加え、第二の洗浄を行った。糖溶液、第一の洗浄液、および第二の洗浄液全てを合一し、比較例１の工程３と同様の方法にて回収酵素液を得た。上記回収酵素液を用い、参考例４に従って活性測定を行った（表２）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　（実施例１）異なる洗浄液の組み合わせ効果
　比較例１の工程２および工程２’の両方を実施した場合の酵素回収量について以下に示す。具体的には、水酸化ナトリウム水溶液（ｐＨ９、２５℃）で第一の洗浄を行った後に無機塩水溶液（２重量％塩化ナトリウム、５０℃）で第二の洗浄を、あるいはその逆の順序で加水分解残渣の洗浄を行った。糖溶液および洗浄液から比較例１の工程３と同様の方法で回収酵素を得、参考例４に従って活性測定を行った。その結果を相対活性で表３および表４にまとめた。希硫酸処理物、アンモニア処理物のいずれを用いても、１回のみの洗浄あるいは同種の洗浄液を用いた２回の洗浄よりも、異なる洗浄液を用いて２回洗浄を行った場合により多くの酵素成分が回収され、特に希硫酸処理物を用いた場合に顕著な効果が得られた。また、水酸化ナトリウム水溶液、無機塩水溶液の順に用いて洗浄を実施した場合にはセロビオース分解活性が、無機塩水溶液、水酸化ナトリウム水溶液の順に用いて洗浄を実施した場合にはキシラン分解活性が多く回収されるという傾向が認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　（実施例２）第一の洗浄に使用するアルカリの種類と回収酵素量の関係
　実施例１（希硫酸処理物）において、第一の洗浄液のアルカリとして水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア、炭酸ナトリウム、リン酸三ナトリウムを使用し、それぞれｐＨ９に調整後２５℃で１時間洗浄を行い、さらに第二の洗浄液として２重量％塩化ナトリウム水溶液を添加して５０℃で１時間洗浄を行った。その他は比較例１の工程３と同様の方法で得られた回収酵素液を用い、参考例４に従って活性測定を行った。ｐＨ無調整で第一の洗浄のみを行った条件で回収した酵素の活性を基準（活性＝１．０）として、相対活性で結果を表５に記した。第一の洗浄液のアルカリとして水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア、炭酸ナトリウム、リン酸三ナトリウムのいずれを用いた場合にも、第一の洗浄にアルカリを使用しない場合に比べより多くの酵素成分を回収することができた。中でもアンモニアを使用した場合に結晶セルロース分解活性に関与する酵素成分を最も多く回収することができた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　（実施例３）洗浄ｐＨの影響（水酸化ナトリウムによる第一の洗浄）
　実施例１（アンモニア処理物）において、第一の洗浄液のアルカリとして水酸化ナトリウムを使用してｐＨを７．５～１２．０に調整し、２５℃で１時間洗浄を行った後、第二の洗浄液として２重量％塩化ナトリウム水溶液を添加して５０℃で１時間洗浄を行った。比較例１の工程３と同様の方法で得られた回収酵素液を用い、参考例４に従って活性測定を行った。ｐＨ無調整で第一の洗浄を行い、その他は同様に第二の洗浄を行った条件で回収した酵素の活性を基準（活性＝１．０）として、相対活性で結果を表６に記した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　ｐＨ７．５～１０．０の範囲においてｐＨ無調整の場合よりもより多くの酵素を回収することができた。また、第一の洗浄におけるｐＨが低い場合にはキシラン分解活性が、ｐＨが高い場合には結晶セルロースおよびセロビオース分解活性が多く回収された。
　（実施例４）洗浄ｐＨの影響（アンモニアによる第一の洗浄）
　実施例３において、セルロース含有バイオマスとして希硫酸処理物を用い、第一の洗浄液のアルカリとしてアンモニアを使用した。その他は実施例３と同様の方法で第二の洗浄を実施し、回収酵素液を得た。得られた回収酵素液について、参考例４に従って活性測定を行った。ｐＨ無調整で第一の洗浄を行い、その他は同様に第二の洗浄を行った条件で回収した酵素の活性を基準（活性＝１．０）として、相対活性で結果を表７に記した。第一の洗浄液のアルカリとしてアンモニアを使用した場合にも、水酸化ナトリウムを使用した場合と同様にｐＨ７．５～１０．０の範囲においてｐＨ無調整の場合よりもより多くの酵素を回収することができた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　（実施例５）洗浄ｐＨと温度の関係
　実施例３および実施例４において、第一の洗浄を２５～５０℃の範囲で行った。その後、第二の洗浄液として２重量％塩化ナトリウム水溶液を添加して５０℃で１時間洗浄を行い、比較例１の工程３と同様の方法で得られた回収酵素液を用いて参考例４に従って活性測定を行った。それぞれのｐＨにおいて、第一の洗浄を２５℃で行った条件を基準（活性＝１．０）として、第一の洗浄のアルカリとして水酸化ナトリウムを用いた結果を表８、アンモニアを用いた結果を表９に相対活性で記した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　第一の洗浄液のアルカリとして水酸化ナトリウム、アンモニアのどちらを用いた場合にも、アルカリ水溶液による洗浄の温度が４０℃を超えるとセルラーゼの失活が認められ、ｐＨ７．５～１０．０の範囲において酵素回収量が高いのはいずれも４０℃以下であった。
　（実施例６）無機塩の種類と回収酵素量の関係
　希硫酸処理物を使用し、実施例１と同様の方法で第一の洗浄におけるアルカリとして水酸化ナトリウムを用い、ｐＨ９、２５℃にて一時間洗浄を行い、第一の洗浄液としてアルカリ水溶液洗浄液を回収した。その後、無機塩水溶液を用いた第二の洗浄を行い、第二の洗浄液として無機塩水溶液洗浄液を回収した。ただし、無機塩として塩化ナトリウムの他、塩化カリウム、塩化マグネシウム、硫酸アンモニウムをそれぞれ用いた。無機塩水溶液の濃度は実施例１と同様に２重量％、洗浄条件は５０℃、１時間とした。糖溶液、第一の洗浄液、および第二の洗浄液全てを合一し、比較例１の工程３と同様の方法にて回収酵素液を得た。上記回収酵素液を用い、参考例４に従って活性測定を行った。それぞれの条件において、塩化ナトリウム水溶液を用いて第二の洗浄を行ったものを基準（活性＝１．０）として表１０に記した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　塩化カリウム、塩化マグネシウム、硫酸アンモニウムを用いて第二の洗浄を行った場合の回収酵素量は、塩化ナトリウムを用いた場合と同等もしくはそれ以上だった。
　本発明で得られる糖液は、種々の発酵産物の糖原料として使用することができる。
１　保温設備（加水分解槽）
２　加水分解槽
３　セルロース含有バイオマス投入口
４　攪拌装置（加水分解槽）
５　水供給ライン（アルカリ水溶液供給槽）
６　アルカリ水溶液供給槽
７　保温設備（アルカリ水溶液供給槽）
８　プレス濾過装置
９　コンプレッサー
１０　循環ライン
１１　濾液回収タンク
１２　限外濾過膜装置
１３　セルラーゼ回収ライン
１４　加水分解物投入口
１５　洗浄液通水口
１６　ｐＨセンサ
１７　濃アルカリ供給槽
１８　攪拌装置２（濃アルカリ供給槽）
１９　水供給ライン２（無機塩水溶液供給槽）
２０　無機塩水溶液供給槽
２１　保温設備３（無機塩水溶液供給槽）
２２　攪拌装置３（無機塩水溶液供給槽）

Claims (10)

  1. 　セルロース含有バイオマスからの糖液の製造方法であって、
    工程（１）：セルロース含有バイオマスを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解し、糖液と加水分解残渣に固液分離する工程、
    工程（２）：工程（１）の加水分解残渣を、アルカリ水溶液および無機塩水溶液を使用して独立して洗浄し、加水分解残渣に吸着した糸状菌由来セルラーゼを洗浄液として回収する工程、
    工程（３）：工程（２）の洗浄液を限外濾過膜に通じて濾過し、透過液として糖液を回収し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収する工程、を含むことを特徴とする、糖液の製造方法。
  2. 　工程（２）において、前記加水分解残渣をアルカリ水溶液で洗浄し、第一の洗浄液としてアルカリ水溶液洗浄液を回収した後、さらに無機塩水溶液で洗浄し、第二の洗浄液として無機塩水溶液洗浄液を回収することを特徴とする、請求項１に記載の糖液の製造方法。
  3. 　工程（２）のアルカリ水溶液のｐＨが７．５～１０．０の範囲であることを特徴とする、請求項１または２に記載の糖液の製造方法。
  4. 　工程（２）のアルカリ水溶液の温度が４０℃以下であることを特徴とする、請求項１から３のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  5. 　工程（２）のアルカリがアンモニア、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウムまたはリン酸三ナトリウムである、請求項１から４のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  6. 　工程（２）の無機塩が、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、硫酸アンモニウムからなる群から選ばれる１種または２種以上であることを特徴とする、請求項１から５のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  7. 　工程（１）の糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ属微生物由来であることを特徴とする、請求項１から６のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  8. 　工程（１）において、セルロース含有バイオマスの希硫酸処理物を加水分解することを特徴とする、請求項１から７のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  9. 　工程（１）において、プレス濾過により加水分解残渣を得ることを特徴とする、請求項１から８のいずれかに記載の糖液の製造方法。
  10. 　工程（３）で得られた糖液をナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、非透過液として濃縮糖液を回収する工程を含む、請求項１から９のいずれかに記載の糖液の製造方法。
     
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014103185A1 (ja) * 2012-12-28 2014-07-03 川崎重工業株式会社 濃縮糖化液製造方法
WO2014208493A1 (ja) * 2013-06-25 2014-12-31 東レ株式会社 糖液の製造方法
JP2016106562A (ja) * 2014-12-04 2016-06-20 本田技研工業株式会社 麹菌変異株、形質転換体及び糖化酵素の生産方法
EP2960338A4 (en) * 2013-02-20 2016-10-19 Toray Industries SUGAR SOLUTION PROCESS
JP2020523019A (ja) * 2017-06-07 2020-08-06 ピーティーティー グローバル ケミカル パブリック カンパニー リミテッド セルラーゼとキシラナーゼとを生産するための変異株クロストリジウム・サーモセラムおよびその調製方法

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9777303B2 (en) 2015-07-23 2017-10-03 Fluid Quip Process Technologies, Llc Systems and methods for producing a sugar stream
MY186792A (en) 2016-02-04 2021-08-20 Ind Tech Res Inst Method for separating hydrolysis product of biomass
US11053557B2 (en) 2018-03-15 2021-07-06 Fluid Quip Technologies, Llc System and method for producing a sugar stream using membrane filtration
US11519013B2 (en) 2018-03-15 2022-12-06 Fluid Quip Technologies, Llc System and method for producing a sugar stream with front end oil separation
US11505838B2 (en) 2018-04-05 2022-11-22 Fluid Quip Technologies, Llc Method for producing a sugar stream
US10480038B2 (en) 2018-04-19 2019-11-19 Fluid Quip Technologies, Llc System and method for producing a sugar stream
US10995351B1 (en) 2020-09-14 2021-05-04 Fluid Quip Technologies, Llc System and method for producing a carbohydrate stream from a cellulosic feedstock

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011115039A1 (ja) * 2010-03-15 2011-09-22 東レ株式会社 糖液の製造方法およびその装置
JP2012223113A (ja) * 2011-04-18 2012-11-15 Nippon Shokubai Co Ltd バイオマスの糖化方法
WO2013039137A1 (ja) * 2011-09-14 2013-03-21 東レ株式会社 糖液の製造装置及び糖液の製造システム

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4770987B2 (ja) * 2008-12-09 2011-09-14 東レ株式会社 糖液の製造方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011115039A1 (ja) * 2010-03-15 2011-09-22 東レ株式会社 糖液の製造方法およびその装置
JP2012223113A (ja) * 2011-04-18 2012-11-15 Nippon Shokubai Co Ltd バイオマスの糖化方法
WO2013039137A1 (ja) * 2011-09-14 2013-03-21 東レ株式会社 糖液の製造装置及び糖液の製造システム

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DESPHANDE,M.V. ET AL.: "Reutilization of enzymes for saccharification of lignocellulosic materials.", ENZYME MICROB. TECHNOL., vol. 6, no. 8, August 1984 (1984-08-01), pages 338 - 340 *
OTTER,D.E. ET AL.: "Desorption of Trichoderma reesei cellulase from cellulose by a range of desorbents.", BIOTECHNOL. BIOENG., vol. 34, no. 3, July 1989 (1989-07-01), pages 291 - 298 *
OTTER,D.E. ET AL.: "Elution of Trichoderma reesei cellulase from cellulose by pH adjustment with sodium hydroxide", BIOTECHNOL. LETT., vol. 6, no. 6, June 1984 (1984-06-01), pages 369 - 74 *
SINITSYN,A.P. ET AL.: "Recovery of enzymes from the insoluble residue of hydrolyzed wood.", APPL. BIOCHEM. BIOTECHNOL., vol. 8, no. 1, February 1983 (1983-02-01), pages 25 - 29 *
XU,J. AND CHEN,H.: "A novel stepwise recovery strategy of cellulase adsorbed to the residual substrate after hydrolysis of steam exploded wheat straw.", APPL. BIOCHEM. BIOTECHNOL., vol. 143, no. 1, October 2007 (2007-10-01), pages 93 - 100 *
ZHU,Z. ET AL.: "Direct quantitative determination of adsorbed cellulase on lignocellulosic biomass with its application to study cellulase desorption for potential recycling.", ANALYST, vol. 134, no. 11, November 2009 (2009-11-01), pages 2267 - 2272 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014103185A1 (ja) * 2012-12-28 2014-07-03 川崎重工業株式会社 濃縮糖化液製造方法
EP2960338A4 (en) * 2013-02-20 2016-10-19 Toray Industries SUGAR SOLUTION PROCESS
US9605291B2 (en) 2013-02-20 2017-03-28 Toray Industries, Inc. Sugar-solution production method
WO2014208493A1 (ja) * 2013-06-25 2014-12-31 東レ株式会社 糖液の製造方法
JP2016106562A (ja) * 2014-12-04 2016-06-20 本田技研工業株式会社 麹菌変異株、形質転換体及び糖化酵素の生産方法
JP2020523019A (ja) * 2017-06-07 2020-08-06 ピーティーティー グローバル ケミカル パブリック カンパニー リミテッド セルラーゼとキシラナーゼとを生産するための変異株クロストリジウム・サーモセラムおよびその調製方法
JP7019926B2 (ja) 2017-06-07 2022-02-16 ピーティーティー グローバル ケミカル パブリック カンパニー リミテッド セルラーゼとキシラナーゼとを生産するための変異株クロストリジウム・サーモセラムおよびその調製方法

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