WO2013094359A1 - セルロース／キチン系高分子発光材料 - Google Patents

セルロース／キチン系高分子発光材料 Download PDF

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WO2013094359A1
WO2013094359A1 PCT/JP2012/080241 JP2012080241W WO2013094359A1 WO 2013094359 A1 WO2013094359 A1 WO 2013094359A1 JP 2012080241 W JP2012080241 W JP 2012080241W WO 2013094359 A1 WO2013094359 A1 WO 2013094359A1
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chitin
ebaf
hcbd
cellulose
chimeric protein
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PCT/JP2012/080241
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英人 星野
浩一 上垣
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独立行政法人産業技術総合研究所
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    • C07K14/47—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C07K2319/60—Fusion polypeptide containing spectroscopic/fluorescent detection, e.g. green fluorescent protein [GFP]

Definitions

  • the present invention relates to a chimeric protein capable of binding to cellulose and / or chitin, DNA encoding the chimeric protein, a complementary strand thereof, and a luminescent material.
  • Polymeric hydrolase often has a binding domain for a substrate, for example, cellulase is known to have a cellulose binding domain, and chitinase is known to have a chitin binding domain.
  • Patent Document 1 Patent No. 4604185 discloses a domain that is heat resistant and binds to both chitin and cellulose.
  • Patent Document 2 discloses a fusion protein of luciferase and fluorescent protein with high efficiency of bioluminescence resonance energy transfer (BRET) based on BAF (BRET-based Auto-illuminated Fluorescent-protein) technology. ing.
  • BRET bioluminescence resonance energy transfer
  • An object of the present invention is to provide a new technique using a light emitting domain.
  • the present invention provides the following chimeric protein capable of binding to cellulose and / or chitin, DNA encoding the chimeric protein, its complementary strand, and a luminescent material.
  • Item 1 A chimeric protein comprising a luminescent domain and a cellulose and / or chitin binding domain, wherein the luminescent domain comprises at least one photoprotein selected from the group consisting of luciferase and fluorescent protein.
  • Item 2 The chimeric protein according to Item 1, wherein the luminescent domain and the cellulose and / or chitin-binding domain are bound directly or via a first linker.
  • Item 3 The chimeric protein according to Item 1 or 2, wherein the luminescent domain includes luciferase and a fluorescent luminescent protein, and energy transfer (BRET) from the luciferase to the fluorescent luminescent protein can occur.
  • Item 4 The chimeric protein according to Item 3, wherein the luciferase and the fluorescent protein are bound via a second linker.
  • Item 5 The chimeric protein according to any one of Items 1 to 4, wherein the fluorescent protein is GFP, YFP, BFP, CFP, OFP, DsRED, or RFP.
  • Item 6 The chimeric protein according to Item 5, wherein the fluorescent protein is YFP or RFP.
  • Item 7 The chimeric protein according to any one of Items 1 to 6, wherein the first linker and / or the second linker includes a protease cleavage sequence.
  • Item 8 DNA encoding the chimeric protein according to any one of Items 1 to 7, or a complementary strand thereof.
  • Item 9 A luminescent material obtained by binding the chimeric protein according to any one of Items 1 to 7 to particles, beads, sheets, or films containing cellulose or chitin.
  • the chimeric protein of the present invention can be bound to materials such as particles of biopolymer materials such as cellulose and chitin, beads, sheets, films, etc., and can retain activity for a long time in a dry state. Since the photoprotein generally deactivates when dried, the chimeric protein of the present invention is excellent as a luminescent material.
  • the procedure for evaluating the drying resistance (storage at room temperature) after air-drying of the chimeric protein-coated / bonded paper pieces is shown. Each process is as follows. (A) An aqueous solution of the chimeric protein is dropped onto a circular filter paper piece cut out by a punch to bind the chimeric protein to the filter paper. (A-1) Dry the filter paper piece. (A-2) Store the filter paper pieces at room temperature. (B) Add buffer. (B) This wets the filter paper pieces. (C) Add the aqueous luciferin solution to the buffer containing the filter paper pieces. (C) The luciferase activity is measured on the obtained wet filter paper piece. The room temperature dry storage performance of CBD-BAF bonded paper pieces is shown.
  • A An example in which a CBD-BAF-Ym3 binding paper piece (filter paper) stored dry at room temperature is reacted with a buffer and a luciferin aqueous solution is shown.
  • A A bright-field image, (b) a merged image, and (c) a chemiluminescent image are shown.
  • a a circular area at the center of the filter paper piece indicates a coated area of CBD-BAF-Ym3.
  • chemiluminescence image (c) green light emission was observed in the coated area of CBD-BAF.
  • the horizontal axis represents the storage period (weeks) of the filter paper pieces in a room temperature dry state.
  • the vertical axis represents the measured emission intensity (x10 8 RLU).
  • the dried filter paper was stored at a room temperature of 27 ° C.
  • the long-term room temperature dry storage performance of hCBD-eBAF-Ym3 bonded paper pieces is shown.
  • A A schematic diagram of the structure of hCBD-eBAF-Ym3 is shown. In order from the N-terminal side, hCBD which is a cellulose and / or chitin-binding domain and eBAF-Ym3 which is a luminescent domain are included.
  • the horizontal axis represents the storage period (weeks) of the filter paper pieces in a room temperature dry state.
  • the vertical axis represents the measured light emission intensity (RLU).
  • the dried filter paper was stored at room temperature of 22-27 ° C.
  • the storage period of 52 weeks indicates a storage period of one year.
  • the long-term room-temperature dry storage performance of hCBD-eBAF-R 3 binding paper pieces having a protease recognition sequence is shown.
  • a schematic diagram of the structure of hCBD-eBAF-R 3 is shown.
  • HRV-3C cleavage sequence is a protease recognition sequence is a cellulose and / or chitin-binding domain.
  • the horizontal axis represents the storage period (weeks) of the filter paper pieces in a room temperature dry state.
  • the vertical axis represents the measured light emission intensity (RLU).
  • the dried filter paper was stored at room temperature of 22-26 ° C.
  • the storage period of 52 weeks indicates a storage period of one year.
  • FIG. 1 A schematic diagram of the structure of hCBD-eBAF-R 4 is shown. In order from the N-terminal side, hCBD that is a cellulose and / or chitin-binding domain, a linker into which a HRV-3C cleavage sequence that is a protease recognition sequence is introduced, and eBAF-R 4 that is a luminescence domain.
  • the vertical axis represents the measured light emission intensity (RLU).
  • the dried filter paper was stored at room temperature of 26 ° C. The storage period of 52 weeks indicates a storage period of one year.
  • the procedure of the Example of a protease activity detection model system is shown.
  • (a) (a-1) A chimeric protein aqueous solution is dropped onto a piece of filter paper and bound to the filter paper. This was dried (i) to produce a chimeric protein-bound filter paper piece (i).
  • A-2) The reaction buffer (ii) was added and wetted sufficiently. Then, the buffer was removed, and a buffer solution (iii) containing protease was added again.
  • A-3) The obtained sample was allowed to stand at 4 ° C.
  • a model system mechanism is schematically shown.
  • A-1 A state in which the chimeric protein is bound to the filter paper is schematically shown.
  • the chimeric protein has, in order from the N-terminal side, hCBD that is a cellulose and / or chitin binding domain, a linker into which a HRV-3C cleavage sequence that is a protease recognition sequence is introduced, and BAF that is a luminescence domain.
  • the HRV-3C cleavage sequence is LEVLFQ / GP (/ indicates the cleavage site).
  • A-2) The chimeric protein is cleaved by the action of HRV-3C protease, and the BAF moiety is released to the aqueous layer.
  • (B) The chemiluminescence measurement result of the collected supernatant (aqueous layer) is shown.
  • the vertical axis represents the measured relative light emission intensity (RLU).
  • the aqueous layer of the sample (+) to which the cleaving enzyme (HRV-3C protease) was added measured 3000 times the luminescence compared to the aqueous layer of the sample ( ⁇ ) to which the cleaving enzyme was not added.
  • (C) shows the result of SDS-PAGE electrophoresis.
  • Samples from the left are the aqueous layer of the sample ( ⁇ ) without the addition of the cleavage enzyme (protease), the aqueous layer of the sample (+) with the addition of the cleavage enzyme, and the purified hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 sample (hCBD-BAF, Control).
  • the detected bands indicate (i) hCBD-BAF, (ii) the BAF portion that has been cut and released from the filter paper into the aqueous layer, and (iii) the HRV-3C enzyme, respectively.
  • D shows the GFP fluorescence of BAF in the aqueous layer.
  • the left is an aqueous layer of a sample to which no cleavage enzyme (protease) is added
  • the right is an aqueous layer of a sample to which a cleavage enzyme is added.
  • An example of the sequence of the chitin binding domain is shown.
  • A An example of the amino acid sequence of chitin-binding domain 2 (chBD2) derived from Pyrococcus furiosus and the base sequence encoding it are shown.
  • (B) An example of the amino acid sequence of ChBD2 (TN) in which Glu (E279) is replaced with Thr (T) and Asp (D281) is replaced with Asn (N) in the amino acid sequence of chBD2, and the base sequence encoding it. Show.
  • FIG. 9A shows regions where various chimeric proteins are applied.
  • (B) (b-1) shows a bright field image of a fluorescent protein-chitin hybrid material stored for 3 days under a fluorescent lamp.
  • (B-2) A fluorescence image of the hybrid material stored for 3 days by excitation light irradiation is shown.
  • (B-3) shows a fluorescence image after storage for 10 months.
  • FIG. 1 A schematic diagram of the structure of hCBD-RLuc is shown. In order from the N-terminal side, it has cellulose and / or chitin-binding domain hCBD, a linker into which a protease recognition sequence HRV-3C cleavage sequence has been introduced, and luminescence domain RLuc.
  • the dried filter paper was stored at room temperature of 26 ° C.
  • the emission spectrum of eBAF-Ym3 and the chemiluminescence activity of the hCBD-eBAF-Ym3 binding chitin material when luciferin (luminescent substrate) is added (green) are shown.
  • a chitin material derived from the crab shell was used for the chitin.
  • (A) shows the emission spectrum of eBAF-Ym3.
  • the horizontal axis indicates the emission wavelength (Wavelength (nm)).
  • the vertical axis represents the measured relative light emission intensity (Relative Intensity).
  • (A) The emission spectrum of eBAF-R 3 is shown.
  • the horizontal axis indicates the emission wavelength (Wavelength (nm)).
  • the vertical axis represents the measured relative luminescence intensity (Relative Intensity).
  • a chitin material derived from the crab shell was used for the chitin.
  • the emission spectrum of eBAF-R 4 is shown. The horizontal axis indicates the emission wavelength (Wavelength (nm)). The vertical axis represents the measured relative luminescence intensity (Relative Intensity).
  • B About an example of a hCBD-eBAF-R 4 bond chitin hybrid material, (b-1) a bright field image, (b-2) a chemiluminescence image, and (b-3) a superimposed image are shown. Luminescence of hCBD-eBAF-Ym3 binding chitin hybrid material. Cicada shell was used as the chitin material.
  • A Comparison of hCBD-eBAF-Ym3 binding material and control.
  • A-1 shows a bright field image and (a-2) a chemiluminescence image.
  • the left is a hCBD-eBAF-Ym3 binding chitin material, and the right is a container (control) containing only buffer.
  • B An overall view of a semi-shelled shell bound with hCBD-eBAF-Ym3.
  • B-1) shows a bright field image and (b-2) a chemiluminescence image.
  • the chimeric protein of the present invention is a protein having a domain that binds to cellulose and / or chitin (cellulose / chitin-binding domain) and a luminescent domain.
  • the cellulose / chitin-binding domain is either a domain that can bind to cellulose (cellulose-binding domain), a domain that can bind to chitin (chitin-binding domain), or a domain that can bind to both cellulose and chitin. May be.
  • cellulose binding domain examples include a domain possessed by cellulase. Many cellulose-binding domains derived from various organisms such as microorganisms, plants, and animals are known, and these known cellulose-binding domains can be widely used.
  • chitin binding domain there is a domain possessed by chitinase.
  • Many chitin binding domains derived from various organisms such as microorganisms, plants and animals are known, and these known chitin binding domains can be widely used.
  • chitin binding domains include chitin binding domains possessed by chitinases derived from thermostable bacteria.
  • heat-resistant bacteria include bacteria belonging to the genus Thermococcus or Pyrococcus, and specific heat-resistant bacteria include Pyrococcus furiosus, Thermococcus litoralis, Pyrococcus sp.KOD1, Thermotoga ⁇ maritima.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 10 is chitin-binding domain 2 (ChBD2) derived from Pyrococcus furiosus, which is one preferred embodiment. This region corresponds to the region from amino acid 258 to amino acid 352 of chitinase derived from Pyrococcus cofuriosus.
  • examples of the cellulose / chitin binding domain include a cellulose / chitin binding domain derived from a heat-resistant bacterium as disclosed in JP 2007-075046 A. Specifically, a heat-resistant cellulose / chitin-binding domain obtained by introducing a mutation into the heat-resistant chitin-binding domain derived from the above-mentioned heat-resistant bacteria can be mentioned.
  • cellulose / chitin-binding domain in the amino acid sequence (SEQ ID NO: 10) of chitin-binding domain 2 (ChBD2) derived from Pyrococcus furiosus, an amino acid sequence in which two acidic amino acids (E279 and D281) are replaced with other amino acids.
  • SEQ ID NO: 10 amino acid sequence in which two acidic amino acids (E279 and D281) are replaced with other amino acids.
  • An amino acid sequence encoding a polypeptide having cellulose binding activity is exemplified.
  • Examples of other amino acids in which acidic amino acids are substituted include neutral amino acids with low hydrophobicity, such as Gln, Asn, Ala, Ser, Thr, Cys, Met, etc., preferably Gln, Asn, Ala, Ser, Thr, Cys, more preferably Gln, Asn, Ala, Ser, Thr.
  • Thr (T) is more preferable for substitution of Glu (E279)
  • Asn (N) is more preferable for substitution of Asp (D281).
  • ChBD2 (TN) sequence in which Glu (E279) is replaced with Thr (T) and Asp (D281) is replaced with Asn (N) in the amino acid sequence of ChBD2 (FIG. 8, SEQ ID NO: 11) .
  • Luminescent domain examples include various luciferases, fluorescent proteins, and fusion proteins thereof (for example, BAF).
  • Examples of the luciferase include various luciferases derived from fireflies, Iriomote fireflies, sea squirrels, railroad insects, red beetles, dinoflagellates, renilla mushrooms, and the like.
  • Fluorescent proteins include GFP, YFP, BFP, CFP, OFP, DsRED, RFP etc. are mentioned.
  • the luciferase or the fluorescent protein may be used alone as the luminescent domain, but preferably the luciferase and the fluorescent protein are bound directly or via a spacer of appropriate length, and the energy transfer between the luciferase and the fluorescent protein.
  • a protein producing (BRET) that is, a BAF protein (or simply BAF) is preferred as the luminescent domain.
  • a method for producing DNA encoding BAF is exemplified in Patent Document 2, for example, and can be obtained by binding a luciferase gene and a fluorescent protein gene via a DNA sequence corresponding to an appropriate second linker.
  • a chimeric protein whose luminescent domain is BAF may be referred to as “CBD-BAF”.
  • the chimeric protein of the present invention is a DNA encoding a chimeric protein in which a DNA encoding a cellulose / chitin binding domain and a DNA encoding a luminescent domain are linked directly or via a DNA sequence corresponding to the first linker. It can be obtained by introducing a gene construct or vector containing the above into a host cell (for example, E. coli) to give a transformant and culturing the transformant.
  • a host cell for example, E. coli
  • the first linker is composed of amino acids and is not particularly limited as long as the functions of the cellulose / chitin binding domain and the luminescent domain are not impaired.
  • the number of amino acids in the first linker may be one or more, 2 to 100, for example, 4 to 80, preferably 5 to 60, more preferably about 6 to 40, and further preferably 7 to 30. And about 8 to 16 in particular.
  • the second linker is not particularly limited as long as it is composed of an amino acid and does not hinder energy transfer from luciferase to the fluorescent protein.
  • the number of amino acids in the second linker is usually 8 to 26, preferably 8 to 16, more preferably 10 to 14, especially 12. When the number of amino acids in the linker is 7 or less or 27 or more, the energy transfer efficiency is greatly reduced.
  • a protease recognition sequence is introduced into the linker (first linker or second linker), the presence or absence of protease in the sample can be detected using the chimeric protein of the present invention.
  • a sample containing such a linker-binding substance can be detected or quantified by introducing an amino acid sequence in which a substance in the sample binds to the linker and thereby changes the luminescence activity.
  • protease recognition sequences, linker binding substances and the like are known and can be appropriately selected by those skilled in the art. Specific examples of the combination of protease and protease recognition sequence include, but are not limited to, HRV-3C protease and amino acid sequence LEVLFQ / GP (/: cleavage site).
  • luciferase natural luciferase may be used as the luciferase, or luciferase with improved properties such as stability and luminescent properties may be used.
  • the fluorescent protein a natural fluorescent protein may be used, or a fluorescent protein having improved properties such as stability and luminescent properties may be used.
  • Renilla luciferase when used as the luminescent domain, a natural Renilla luciferase (e.g., Rluc) may be used as the Renilla luciferase, and a Renilla luciferase (e.g., having improved properties such as stability and luminescent properties) may be used. Rluc8, Rluc8 / A123S / D162E / I163L) may be used.
  • luciferase includes both natural luciferase and any modified luciferase in which the properties of luciferase are changed.
  • fluorescent protein includes both a natural fluorescent protein and any modified fluorescent protein in which the characteristics of the fluorescent protein are changed.
  • the fluorescent fluorescent proteins are green fluorescent fluorescent protein (GFP), yellow fluorescent fluorescent protein (YFP), blue fluorescent fluorescent protein (BFP), cyan fluorescent fluorescent protein (CFP), orange fluorescent fluorescent protein (OFP), DsRED, red fluorescent Examples include photoprotein (RFP).
  • GFP includes natural fluorescing proteins derived from jellyfish belonging to the genus Aequorea (for example, Aequorea victoria, Aequorea coerulescens, etc.) and the like, and various GFP derivatives such as EGFP. included.
  • YFP amino acid-substituted mutants such as EYFP, Topaz, Venus, and Citrine are widely included.
  • DsRED includes a natural fluorescent protein derived from the genus Discosoma genus, mutants with altered amino acid sequences (substitutions, additions, deletions, insertions, etc.), as well as multimeric natural DsRED
  • the monomer type for example, mCherry etc.
  • monomer type DsRED is preferable.
  • RFP includes natural red fluorescent protein derived from sea anemone (for example, Entacmaea quadricolor), etc. (however, it is understood that DsRED that emits red color is not included) and mutants whose amino acid sequence is modified. Widely included (for example, TurboRFP).
  • other fluorescent light-emitting proteins include naturally-occurring fluorescent light-emitting proteins and mutants in which amino acid sequences have been modified (substitution, addition, deletion, insertion, etc.).
  • a fluorescent protein with RLU Relative light unit, relative emission intensity
  • a fluorescence wavelength that varies depending on pH for example, YFP
  • the chimeric protein of the present invention can be used as a pH indicator.
  • substances such as GFP, whose RLU or wavelength does not change much depending on pH can be used for quantitative determination of substances such as the chimeric protein of the present invention or proteins labeled thereby without depending on pH.
  • the DNA of the present invention is a DNA encoding the chimeric protein of the present invention.
  • the chimeric protein of the present invention can be obtained by incorporating the gene of the present invention described later into an expression vector and expressing it in an appropriate host cell.
  • host cells include animal cells including mammalian cells, plant cells, eukaryotic cells such as yeast, prokaryotic cells such as Escherichia coli, Bacillus subtilis, algae, and fungi, and plant cells. Good.
  • E. coli and the like can be used as a preferred host cell.
  • the chimeric protein of the present invention is that its luminescence activity is maintained for a long time when it is attached to or bonded to any material such as a sheet, film, particle or bead composed of cellulose or chitin and dried. There is to be. Therefore, the chimeric protein of the present invention is useful as a luminescent material.
  • the chimeric protein of the present invention is also useful as a standard substance because its luminescence activity does not decrease during long-term storage.
  • cellulose either natural cellulose or regenerated cellulose can be used.
  • natural cellulose include refined pulp obtained from conifers and hardwoods, cellulose obtained from cotton linters and cotton lint, cellulose obtained from seaweeds such as valonia and falcon, cellulose obtained from sea squirts, and cellulose produced by bacteria.
  • regenerated cellulose include those obtained by once dissolving natural cellulose fibers and then regenerating them into fibers while maintaining the cellulose composition.
  • Chitin can be produced from crab shells, for example.
  • the chitin used in the present invention treats the washed crab shell with an acid such as hydrochloric acid to remove inorganic substances (such as calcium), and then treats with caustic soda to remove organic substances (e.g., proteins), Further, chitin obtained by treating with alcohol to remove lipids and obtaining an insoluble residue can be used.
  • the crab shell material may be pulverized into particles.
  • semi-shelled shells can be used as chitin. Cicada shells can be used without treatment because chitin is exposed on the inner surface.
  • CBD-BAF and “hCBD-BAF” are understood to be included in the “chimeric protein”.
  • Example 1 Preparation of plasmid (1) pCII-CBD-eBAF-Ym3 and pCII-CBD (TN) -eBAF-Ym3
  • a gene encoding CBD (wt) or CBD (TN) was amplified by PCR.
  • the primers used for PCR are as follows: chBD2-F-NdeI, 5'-GGAATTCCATATGACTACCCCTGTCCCAGTCTC-3 '; chBD2-R-NdeI, 5'-CGATATCCATATGAATTACTTGTCCGTTTATTTCTAG-3 '.
  • the PCR fragment was digested with NdeI and incorporated into the NdeI site of pCII-eBAF-Ym3 to construct pCII-CBD-eBAF-Ym3 and pCII-CBD (TN) -eBAF-Ym3.
  • eBAF-Ym3 is described in Patent Document 1. This is a BAF protein in which mutations A123S, D162E, and I163L are introduced into the RLuc8 portion of eBAF-Y.
  • the gene encoding CBD and CBD (TN) here is a sequence derived from the genome of a hyperthermophile.
  • the base sequence of the linking portion is 5'-GGTACCGGGGGATCCCATATG-3 ', and hCBD and eBAF-Ym3 are linked in-frame with the amino acid sequence of GTGGSH (ATG in the NdeI site is the start Met of eBAF-Ym3 Equivalent).
  • FIG. 3 shows the test results of the luminescence activity after adsorbing / binding to the chimeric protein filter paper expressed using pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 ⁇ NdeI and drying.
  • pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 3 and pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 4 pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF- Ym3 ⁇ NdeI was removed by digesting ,, EBAF-YM3 moiety with NdeI and XbaI, was inserted BAF-R 3 or BAF-R 4 instead.
  • BAF-R 3 and BAF-R 4 contain TurboRFP and mCherry as red fluorescent proteins, respectively.
  • BAF-R 3 and BAF-R 4 were prepared according to the method described in Patent Document 1.
  • Fig. 4 and Fig. 4 show test results of luminescence activity after adsorbing / binding to a chimeric protein filter paper expressed using pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 3 and pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 4 and drying. As shown in FIG.
  • FIG. 10 shows the test results of the luminescence activity after adsorbing / binding to the chimeric protein filter paper expressed using the obtained pCII-hCBD-HRV3Cs-RLuc, drying, and storing at room temperature.
  • Recombinant Protein was expressed as a His tag fusion protein in Escherichia coli BL21 strain by a cold shock inducible promoter system (TAKARA). Recombinant protein was purified using a Ni-NTA affinity column.
  • TAKARA cold shock inducible promoter system
  • FIG. 1 schematically shows an outline of the method.
  • Chimeric proteins include CBD-eBAF-Ym3, hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 ⁇ NdeI (hereinafter sometimes referred to as “hCBD-eBAF-Ym3”), hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 3 (hereinafter referred to as “hCBD”).
  • hCBD hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 3
  • hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 4 hereinafter sometimes referred to as" hCBD-eBAF-R 4
  • hCBD-HRV3Cs-RLuc hereinafter referred to as" hCBD-HRV3R ").
  • hCBD-RLuc sometimes referred to as “hCBD-RLuc”.
  • Luminescence image observation of chimera protein binding filter paper was cut out with an apple punch, and CBD-eBAF-Ym3 was bound to the center. Thereafter, a luciferin solution was added to the washed filter paper pieces, and yellow-green light emission was visually observed. After confirming that no diffusion from the coated part was observed, a luminescence image was obtained by exposure for 4 seconds in the High Resolution mode (minimum sensitivity) with LAS-4000. The results are shown in FIG. 2A.
  • CBD-eBAF-Ym3 having a CBD (chBD2 (TN) type, gene (base) sequence derived from a natural hyperthermophilic bacterium other than the mutagenized portion) as a cellulose / chitin binding domain. It was used. Except this example, all encoded the amino acid sequence of chBD2 (TN), but an artificially synthesized gene optimized for codon usage in E. coli was used (sometimes referred to as “hCBD”).
  • Luminescence measurement after storage at room temperature of chimeric protein-bound filter paper CBD-eBAF-Ym3 protein-bound filter paper was placed in a plastic petri dish, capped, and stored in the dark at room temperature (26 ° C to 27 ° C).
  • the dried filter paper piece was put in a measurement tube for luminometer (Nunc), and 200 ⁇ l of a luminescence reaction buffer (60 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH 8.0) was added and sufficiently wetted.
  • 200 ⁇ l of 1 ⁇ M luciferin solution was added, and luminescence measurement was performed. The amount of luminescence was measured by integrating for 10 seconds using Luminescencer-PSN (Ato).
  • FIG. 2B For hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 ⁇ NdeI, hCBD-eBAF-R 3 , hCBD-HRV3Cs-eBAF-R 4 and hCBD-HRV3Cs-RLuc, the amount of luminescence after storage was measured in the same manner. The results are shown in FIGS. 3 to 5 and FIG. 10, respectively.
  • FIGS. 6 and 7A An outline of an implementation system of the protease activity detection system is schematically shown in FIGS. 6 and 7A.
  • HCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 was induced for expression using pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3-containing E. coli, and then purified. Using the obtained hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3, the protein-bound dried filter paper piece was prepared.
  • the filter paper piece was placed in a 2.0 ⁇ m microcentrifuge tube, 100 ⁇ l of 1 ⁇ HRV-3C buffer (150 ⁇ mM NaCl, 50 ⁇ mM Tris-HCl, pH 7.5) was added and wetted sufficiently, and then the buffer was completely removed once.
  • 1xHRV-3CHR buffer solution or 120 ⁇ l of 1xHRV-3C buffer solution containing 4U HRV-3C protease (Novagen) was added again and allowed to stand at 4 ° C for 64 hours. After the reaction, the microcentrifuge tube was centrifuged, and 40 ⁇ l of the supernatant was separated into another tube.
  • FIG. 9B shows a bright field image under a fluorescent lamp, and (b-2) shows a fluorescent image.
  • (B-1) and (b-2) in FIG. 9B are photographs taken from the same angle. The negative control and the uncoated part are green because the irradiated green light is reflected. Furthermore, the fluorescence image after storing the same sample at room temperature for 10 months is shown in (b-3) of FIG. 9B.
  • HCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3 was applied directly to the semi-shell.
  • the hybrid material was immersed in the above-described reaction buffer, a luciferin solution was added, and the state of luminescence was recorded with a digital camera. The results are shown in FIG.

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Abstract

　本発明は、BAFを用いた新たな技術を提供することを主な課題とする。　斯かる課題を解決する発明として、次が提供される。発光ドメインとセルロース及び／又はキチン結合ドメインを含むキメラ蛋白質であって、前記発光ドメインがルシフェラーゼ及び蛍光発光蛋白質からなる群から選ばれる少なくとも１種の発光蛋白質を含む、キメラ蛋白質。

Description

セルロース／キチン系高分子発光材料
［関連出願の相互参照］
　本出願は、2011年12月19日に出願された日本国出願第2011-277363号明細書および2012年1月27日に出願された日本国出願第2012-014817号明細書（それらの開示全体が参照により本明細書中に援用される）に基づく優先権を主張する。
　本発明は、セルロース及び／又はキチンに結合可能なキメラ蛋白質及び該キメラタンパク質をコードするDNA又はその相補鎖、発光材料に関する。
　高分子の加水分解酵素は、基質に対する結合ドメインを持つことが多く、例えばセルラーゼはセルロース結合ドメインを有し、キチナーゼはキチン結合ドメインを有することが知られている。特許文献1（特許第4604185号）は、耐熱性であって、キチンとセルロースの両方に結合するドメインを開示している。
　さらに、特許文献2は、BAF（BRET-based Auto-illuminated Fluorescent-protein）技術に基づき、生物発光共鳴エネルギー移動（Bioluminescence Resonance Energy Transfer, BRET）の効率の高いルシフェラーゼと蛍光タンパク質の融合蛋白質を開示している。
特許第4604185号 特開2008-283959
　本発明は、発光ドメインを用いた新たな技術を提供することを目的とする。
　本発明は、以下のセルロース及び／又はキチンに結合可能なキメラ蛋白質及び該キメラタンパク質をコードするDNA又はその相補鎖、発光材料を提供するものである。
　項１：発光ドメインとセルロース及び／又はキチン結合ドメインを含むキメラ蛋白質であって、前記発光ドメインがルシフェラーゼ及び蛍光発光蛋白質からなる群から選ばれる少なくとも１種の発光蛋白質を含む、キメラ蛋白質。
　項２：発光ドメインとセルロース及び／又はキチン結合ドメインが直接又は第１リンカーを介して結合されてなる、項１に記載のキメラ蛋白質。
　項３：前記発光ドメインがルシフェラーゼ及び蛍光発光蛋白質を含み、ルシフェラーゼから蛍光発光蛋白質へのエネルギー移動（ＢＲＥＴ）が生じ得るものである、項１又は２に記載のキメラ蛋白質。
　項４：ルシフェラーゼと蛍光発光蛋白質が第２リンカーを介して結合されてなる、項３に記載のキメラ蛋白質。
　項５：蛍光発光蛋白質が、ＧＦＰ、ＹＦＰ、ＢＦＰ、ＣＦＰ、ＯＦＰ、DsREDまたはＲＦＰである項１～４のいずれか１項に記載のキメラ蛋白質。
　項６：蛍光発光蛋白質がＹＦＰまたはＲＦＰである、項５に記載のキメラ蛋白質。
　項７：第１リンカー及び／又は第２リンカーがプロテアーゼ切断配列を含む、項１～６のいずれか１項に記載のキメラ蛋白質。
　項８：項１～７のいずれかに記載のキメラ蛋白質をコードするＤＮＡまたはその相補鎖。
　項９：項１～７のいずれかに記載のキメラ蛋白質をセルロース又はキチンを含む粒子、ビーズ、シート又はフィルムに結合させてなる、発光材料。
　本発明のキメラ蛋白質は、セルロース、キチンなどの生体高分子材料の粒子、ビーズ、シート、フィルムなどの材料に結合させ、乾燥した状態で長期間活性を保持することができる。発光蛋白質は、一般に乾燥すると失活するので、本発明のキメラ蛋白質は、発光材料として優れている。
キメラ蛋白質塗布・結合紙片の風乾後の耐乾燥性能（室温保存）評価操作手順を示す。各工程は、以下の通りである。（Ａ）キメラ蛋白質の水溶液を、パンチで切り抜いた円形濾紙片へ滴下し、キメラ蛋白質を濾紙へ結合させる。（a-1）濾紙片を乾燥させる。（a-2）濾紙片を、室温で保存する。（Ｂ）バッファーを添加する。（b）これにより、濾紙片を湿潤化する。（Ｃ）ルシフェリン水溶液を濾紙片を含むバッファーへ添加する。（c）得られた湿潤濾紙片について、ルシフェラーゼの活性測定をする。 CBD-BAF結合紙片の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）室温で乾燥保存したCBD-BAF-Ym3結合紙片（濾紙）を、バッファー及びルシフェリン水溶液で反応した例を示す。（ａ）明視野像、（ｂ）マージ像、及び（ｃ）化学発光像をそれぞれ示す。明視野像（a）において、濾紙片中心の円形領域は、CBD-BAF-Ym3の塗布領域を示す。マージ像（b）と化学発光像（c）において、CBD-BAFの塗布領域で緑色の発光が認められた。（Ｂ）保存期間を通じた、発光強度の測定結果を示す（N=5）。横軸は、濾紙片の室温乾燥状態での保存期間（週）を示す。縦軸は、測定した発光強度（x108 RLU）を示す。乾燥状態の濾紙は、室温27℃で保存した。 hCBD-eBAF-Ym3結合紙片の長期間の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）hCBD-eBAF-Ym3の構造の模式図を示す。Ｎ末端側から順に、セルロース及び／又はキチン結合ドメインであるhCBD及び発光ドメインであるeBAF-Ym3を有する。（Ｂ）保存期間を通じた、発光強度の測定結果を示す（N=5）。横軸は、濾紙片の室温乾燥状態での保存期間（週）を示す。縦軸は、測定した発光強度（RLU）を示す。乾燥状態の濾紙は、室温22～27℃で保存した。なお、保存期間52週は、保存期間1年間を示す。 プロテアーゼ認識配列を有するhCBD-eBAF-R3結合紙片の長期間の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）hCBD-eBAF-R3の構造の模式図を示す。Ｎ末端側から順に、セルロース及び／又はキチン結合ドメインであるhCBD、プロテアーゼ認識配列であるHRV-3C切断配列を導入したリンカー、及び発光ドメインであるeBAF-R3を有する。（Ｂ）保存期間を通じた、発光強度の測定結果を示す（N=3）。横軸は、濾紙片の室温乾燥状態での保存期間（週）を示す。縦軸は、測定した発光強度（RLU）を示す。乾燥状態の濾紙は、室温22～26℃で保存した。なお、保存期間52週は、保存期間1年間を示す。 プロテアーゼ認識配列を有するhCBD-eBAF-R4結合紙片の長期間の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）hCBD-eBAF-R4の構造の模式図を示す。Ｎ末端側から順に、セルロース及び／又はキチン結合ドメインであるhCBD、プロテアーゼ認識配列であるHRV-3C切断配列を導入したリンカー、及び発光ドメインであるeBAF-R4を有する。（Ｂ）保存期間を通じた、発光強度の測定結果を示す（N=3）。横軸は、濾紙片の室温乾燥状態での保存期間（週）を示す。縦軸は、測定した発光強度（RLU）を示す。乾燥状態の濾紙は、室温26℃で保存した。なお、保存期間52週は、保存期間1年間を示す。 プロテアーゼ活性検出モデル系の実施例の手順を示す。（Ａ）（a-1）キメラ蛋白質水溶液を濾紙片へ滴下し、濾紙へ結合させる。これを乾燥させ（i）キメラ蛋白質結合濾紙片（i）を作製した。（a-2）反応バッファー（ii）を加えてこれを十分湿潤させた後、バッファーを除去し、プロテアーゼを含むバッファー溶液（iii）を改めて添加した。（a-3）得られた試料を4℃にて64時間静置し、プロテアーゼ反応を行なった。（Ｂ）（b-1）反応前の状態を模式的に示す。バッファー中で、キメラ蛋白質結合濾紙（紙片）は微量遠心チューブの底に沈む。バッファー中には、プロテアーゼ（p）が存在する。（b-2）定温静置により、反応を進行させる。（b-3）反応後の状態を模式的に示す。プロテアーゼにより切断されたBAF部分は、水層中へ遊離する。（b-4）反応後の試料の上清を分取又は分離し、発光（又は蛍光）を測定する。 プロテアーゼ活性検出モデル系の実施例の結果を示す。（Ａ）モデル系の機構を模式的に示す。（a-1）キメラ蛋白質が濾紙に結合した状態を、模式的に示す。キメラ蛋白質は、Ｎ末端側から順に、セルロース及び／又はキチン結合ドメインであるhCBD、プロテアーゼ認識配列であるHRV-3C切断配列を導入したリンカー、及び発光ドメインであるBAFを有する。HRV-3C切断配列は、LEVLFQ/GP（/は、切断部位を示す。）である。（a-2）HRV-3Cプロテアーゼの作用によりキメラ蛋白質は切断され、BAF部分は水層へ遊離する。（Ｂ）回収した上清（水層）の化学発光測定結果を示す。縦軸は、測定した相対発光強度（RLU）を示す。切断酵素（HRV-3Cプロテアーゼ）を添加した試料（+）の水層は、切断酵素を添加しない試料（-）の水層に対して、3000倍の発光が測定された。（Ｃ）SDS-PAGE電気泳動の結果を示す。試料は、左から切断酵素（プロテアーゼ）を添加しない試料（-）の水層、切断酵素を添加した試料（+）の水層、及びhCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3精製標品（hCBD-BAF、コントロール）である。検出されたバンドは、（i）hCBD-BAF、（ii）切断され濾紙から水層中へ遊離したBAF部分、及び（iii）HRV-3C酵素をそれぞれ示す。（Ｄ）水層のBAFのGFP蛍光を示す。左は切断酵素（プロテアーゼ）を添加しない試料の水層、右は切断酵素を添加した試料の水層である。 キチン結合ドメインの配列の例を示す。（Ａ）Pyrococcus furiosus由来のキチン結合ドメイン２（chBD2）のアミノ酸配列およびこれをコードする塩基配列の例を示す。（Ｂ）chBD2のアミノ酸配列において、Glu(E279)がThr(T)に及びAsp(D281)がAsn(N)に置換されたChBD2(TN)のアミノ酸配列およびこれをコードする塩基配列の例を示す。 プロテアーゼ認識配列を有するキメラ蛋白質結合キチン素材の長期間の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）カニ甲羅に由来するキチン素材に、hCBD-eBAF-Ym3、hCBD-eBAF-R3及びhCBD-eBAF-R4の各々のキメラ蛋白質を塗布した。図９Ａは、各種キメラ蛋白質を塗布した領域を各々示す。（Ｂ）（b-1）3日間保存した発光蛋白質－キチンハイブリッド素材の蛍光灯下での明視野像を示す。（b-2）3日間保存した該ハイブリッド素材の、励起光照射による蛍光像を示す。（b-3）10か月保存した後の蛍光像を示す。 プロテアーゼ認識配列を有するhCBD-RLuc結合紙片の長期間の室温乾燥保存性能を示す。（Ａ）hCBD-RLucの構造の模式図を示す。Ｎ末端側から順に、セルロース及び／又はキチン結合ドメインであるhCBD、プロテアーゼ認識配列であるHRV-3C切断配列を導入したリンカー、及び発光ドメインであるRLucを有する。（Ｂ）保存期間を通じた、発光強度の測定結果を示す（N=3）。横軸は、濾紙片の室温乾燥状態での保存期間（週）を示す。縦軸は、測定した発光強度（RLU）を示す。乾燥状態の濾紙は、室温26℃で保存した。 eBAF-Ym3の発光スペクトル及びhCBD-eBAF-Ym3結合キチン素材の、ルシフェリン（発光基質）添加時の化学発光活性を示す（緑色）。キチンには、カニ甲羅に由来するキチン素材を用いた。（Ａ）eBAF-Ym3の発光スペクトルを示す。横軸は、発光波長（Wavelength(nm)）を示す。縦軸は、測定した相対発光強度（Relative Intensity）を示す。（Ｂ）hCBD-eBAF-Ym3結合キチンハイブリッド素材の一例について、（b-1）明視野像、（b-2）化学発光像、及び（b-3）重ね合わせ像（解説図）を示す。（b-3）において、矢印でhCBD-eBAF-Ym3を塗布した領域を指し示す。 eBAF-R３の発光スペクトル及びhCBD-eBAF-R3結合キチン素材の、ルシフェリン（発光基質）添加時の化学発光活性を示す。（オレンジ色）キチンには、カニ甲羅に由来するキチン素材を用いた。（Ａ）eBAF-R３の発光スペクトルを示す。横軸は、発光波長（Wavelength(nm)）を示す。縦軸は、測定した相対発光強度（Relative Intensity）を示す。（Ｂ）hCBD-eBAF-R3結合キチンハイブリッド素材の一例について、（b-1）明視野像、（b-2）化学発光像及び（b-3）重ね合わせ像を示す。 eBAF-R4の発光スペクトル及びhCBD-eBAF-R4結合キチン素材の、ルシフェリン（発光基質）添加時の化学発光活性を示す（白色）。キチンには、カニ甲羅に由来するキチン素材を用いた。（Ａ）eBAF-R4の発光スペクトルを示す。横軸は、発光波長（Wavelength(nm)）を示す。縦軸は、測定した相対発光強度（Relative Intensity）を示す。（Ｂ）hCBD-eBAF-R4結合キチンハイブリッド素材の一例について、（b-1）明視野像、（b-2）化学発光像、及び（b-3）重ね合わせ像を示す。 hCBD-eBAF-Ym3結合キチンハイブリッド素材の発光。キチン素材として、セミの抜け殻を用いた。（Ａ）hCBD-eBAF-Ym3結合素材とコントロールとの対比を示す。（a-1）明視野像及び（a-2）化学発光像を示す。左がhCBD-eBAF-Ym3結合キチン素材、右がバッファーのみを含む容器（コントロール）を示す。（Ｂ）hCBD-eBAF-Ym3を結合したセミの抜け殻の全体像を示す。（b-1）明視野像及び（b-2）化学発光像を示す。
　本発明のキメラ蛋白質は、セルロースおよび／またはキチンに結合するドメイン（セルロース／キチン結合ドメイン）と発光ドメインを有する蛋白質である。
（１）セルロース／キチン結合ドメイン
　セルロース／キチン結合ドメインは、セルロースに結合できるドメイン（セルロース結合ドメイン）、キチンに結合できるドメイン（キチン結合ドメイン）、セルロール及びキチンの両方に結合できるドメインのいずれであってもよい。
　セルロース結合ドメインとしては、セルラーゼが有するドメインが挙げられる。微生物、植物、動物などの各種生物由来のセルロース結合ドメインが多数知られており、これらの公知のセルロース結合ドメインを広く使用することができる。
　キチン結合ドメインとしては、キチナーゼが有するドメインが挙げられる。微生物、植物、動物などの各種生物由来のキチン結合ドメインが多数知られており、これらの公知のキチン結合ドメインを広く使用することができる。
　キチン結合ドメインの具体例として、耐熱性菌由来のキチナーゼが有するキチン結合ドメインが挙げられる。耐熱性菌としては、Thermococcus属またはPyrococcus属に属する菌が挙げられ、具体的な耐熱性菌としては、Pyrococcus furiosus、Thermococcus litoralis、Pyrococcus sp.KOD1、Thermotoga maritimaが挙げられる。配列番号10に示すアミノ酸配列は、好ましい態様の１つであるPyrococcus furiosus由来のキチン結合ドメイン２（ChBD2）である。当該領域は、Pyrococcus furiosus由来のキチナーゼの、258番目のアミノ酸～352番目のアミノ酸の領域に相当する。
　また、セルロース／キチン結合ドメイン（キチンとセルロースの両方に結合できるドメイン）としては、特開2007-075046に開示されるような耐熱性菌由来のセルロース／キチン結合ドメインが挙げられる。具体的には、上記の耐熱性菌由来の耐熱性キチン結合ドメインに変異を導入して得られる耐熱性セルロース／キチン結合ドメインが挙げられる。
　セルロース／キチン結合ドメインの具体例として、Pyrococcus furiosus由来のキチン結合ドメイン２（ChBD2）のアミノ酸配列（配列番号10）において、二つの酸性アミノ酸（E279とD281）を他のアミノ酸に置換したアミノ酸配列であって、セルロース結合活性を有するポリペプチドをコードするアミノ酸配列が例示される。酸性アミノ酸が置換される他のアミノ酸としては、Gln、Asn、Ala、Ser、Thr、Cys、Met、などに代表される疎水性の低い中性アミノ酸が挙げられ、好ましくはGln、Asn、Ala、Ser、Thr、Cys、より好ましくはGln、Asn、Ala、Ser、Thrが挙げられる。なお、Glu(E279)の置換にはThr(T)がより好ましく、Asp(D281)の置換にはAsn(N)がより好ましい。具体例として、ChBD2のアミノ酸配列において、Glu(E279)がThr(T)に及びAsp(D281)がAsn(N)に置換されたChBD2(TN)配列が挙げられる(図8、配列番号11)。
（２）発光ドメイン
　発光ドメインは、各種ルシフェラーゼ、蛍光発光蛋白質、あるいはこれらの融合蛋白質(例えばBAF)が挙げられる。ルシフェラーゼとしては、ホタル、イリオモテボタル、ウミボタル、鉄道虫、ヒカリコメツキムシ、渦鞭毛藻、ウミシイタケなどに由来する各種ルシフェラーゼが挙げられ、蛍光発光蛋白質としては、ＧＦＰ、ＹＦＰ、ＢＦＰ、ＣＦＰ、ＯＦＰ、DsRED、ＲＦＰなどが挙げられる。
　ルシフェラーゼ又は蛍光発光蛋白質は、単独で発光ドメインとして用いてもよいが、好ましくはルシフェラーゼと蛍光発光蛋白質を直接又は適当な長さのスペーサーを介して結合し、ルシフェラーゼと蛍光発光蛋白質の間にエネルギー移動（BRET)が生じる蛋白質、即ちBAF蛋白質（もしくは単にBAF)が発光ドメインとして好ましい。BAFをコードするDNAの製造法は、例えば特許文献2に例示されており、ルシフェラーゼ遺伝子と蛍光発光蛋白質遺伝子を適当な第２リンカーに対応するＤＮＡ配列を介して結合させて得ることができる。本明細書において、発光ドメインがBAFであるキメラ蛋白質を、「CBD-BAF」と呼ぶ場合がある。
（３）キメラ蛋白質
　本発明のキメラ蛋白質は、セルロース／キチン結合ドメインをコードするＤＮＡと発光ドメインをコードするＤＮＡを直接又は第１リンカーに対応するＤＮＡ配列を介して連結したキメラ蛋白質をコードするＤＮＡを含む遺伝子構築物またはベクターを宿主細胞（例えば大腸菌）に導入して形質転換体とし、この形質転換体を培養することにより得ることができる。
（４）リンカー
　第１リンカーは、アミノ酸からなり、セルロース／キチン結合ドメインと発光ドメインの各々の機能を損なわない限り特に限定されない。第１リンカーのアミノ酸の数は、１個以上であればよく、２～１００個、例えば４～８０個、好ましくは５～６０個、より好ましくは６～４０個程度、さらに好ましくは７～３０個、特に８～１６個程度が挙げられる。
　第２リンカーは、アミノ酸からなり、ルシフェラーゼから蛍光発光蛋白質へのエネルギー移動を妨げないものであれば特に限定されない。第２リンカーのアミノ酸の数は、通常８～２６個、好ましくは８～１６個、より好ましくは１０～１４個、特に１２個である。リンカーのアミノ酸数が７個以下或いは２７個以上になるとエネルギー移動効率は大きく低下する。
　リンカー(第１リンカー又は第２リンカー)にプロテアーゼ認識配列を導入しておけば、サンプル中のプロテアーゼの有無を本発明のキメラ蛋白質を用いて検出することができる。あるいは、リンカーにサンプル中の物質が結合し、それにより発光活性が変化するようなアミノ酸配列を導入することにより、そのようなリンカー結合物質を含むサンプルを検出ないし定量することができる。このようなプロテアーゼ認識配列、リンカー結合物質などは公知であり、当業者であれば適宜選択することができる。プロテアーゼとプロテアーゼ認識配列との組み合わせの具体例としては、HRV-3Cプロテアーゼ及びアミノ酸配列LEVLFQ／GP（／：切断部位）が挙げられるが、これに限定されない。
（５）その他
　本明細書において、ルシフェラーゼは、天然のルシフェラーゼを使用してもよく、安定性や発光特性などの性質が改善されたルシフェラーゼを使用してもよい。
　本明細書において、蛍光発光蛋白質は、天然の蛍光発光蛋白質を使用してもよく、安定性や発光特性などの性質が改善された蛍光発光蛋白質を使用してもよい。
　例えば発光ドメインとしてウミシイタケルシフェラーゼを使用する場合、ウミシイタケルシフェラーゼとしては天然のウミシイタケルシフェラーゼ(例えばRluc)を使用してもよく、安定性や発光特性などの性質が改善されたウミシイタケルシフェラーゼ(例えばRluc8、Rluc8/A123S/D162E/I163L)を使用してもよい。本明細書において、「ルシフェラーゼ」は、天然型のルシフェラーゼとルシフェラーゼの特性を変化させた任意の改変型ルシフェラーゼの両者を含むものである。同様に、本明細書において、「蛍光発光蛋白質」は、天然型の蛍光発光蛋白質と、蛍光発光蛋白質の特性を変化させた任意の改変型蛍光発光蛋白質との両者を含むものである。
　蛍光発光蛋白質としては、グリーン蛍光発光蛋白質（GFP）、黄色蛍光発光蛋白質（YFP）、青色蛍光発光蛋白質（ＢＦＰ）、シアン蛍光発光蛋白質（ＣＦＰ）、オレンジ蛍光発光蛋白質（ＯＦＰ）、DsRED、赤色蛍光発光蛋白質（ＲＦＰ）などが例示される。なお、ＧＦＰには、Aequorea属のクラゲ（例えば、Aequorea victoria、Aequorea coerulescensなど。）などに由来する天然型のグリーン蛍光発光蛋白質（例えば、AvGFP、AcGFPなど。）及びEGFPなどの種々のＧＦＰ誘導体が含まれる。ＹＦＰについても、EYFP、Topaz、Venus、Citrineなどのアミノ酸置換した変異体が広く含まれる。DsREDには、Discosoma属の珊瑚に由来する天然型の蛍光発光蛋白質及びそのアミノ酸配列を改変(置換、付加、欠失、挿入など)した変異体、さらには多量体型である天然型のDsREDを改変した単量体型（例えば、mCherryなど。）が広く含まれる。DsREDとしては、単量体型のDsREDが好ましい。ＲＦＰには、イソギンチャク（例えば、Entacmaea quadricolor。）などに由来する天然型の赤色蛍光発光蛋白質（ただし、赤色を発するDsREDは含まれないと理解される。）及びそのアミノ酸配列を改変した変異体が広く含まれる（例えば、TurboRFPなど）。他の蛍光発光蛋白質についても同様に、天然型の蛍光発光蛋白質や、アミノ酸配列を改変(置換、付加、欠失、挿入など)した変異体が広く含まれる。
　蛍光発光蛋白質として、pHに依存してRLU（Relative light unit、相対発光強度）ないし蛍光波長が変化するもの（例えばＹＦＰなど）を使用すれば、これら蛍光発光蛋白質の存在する場所のpHを測定することができ、本発明のキメラ蛋白質はpHインジケータとして使用することができる。また、ＧＦＰなどのpHによりRLUないし波長があまり変化しないものは、pHに依存することなく、本発明のキメラ蛋白質あるいはそれにより標識された蛋白質等の物質を定量等することができる。
　本発明のＤＮＡは、本発明のキメラ蛋白質をコードするＤＮＡである。
　本発明のキメラ蛋白質は，後述する本発明の遺伝子を発現ベクターに組み込み，適当な宿主細胞内で発現させることにより得ることができる。宿主細胞としては哺乳動物細胞を含む動物細胞、植物細胞、酵母などの真核生物細胞、大腸菌、枯草菌、藻類、真菌類などの原核生物細胞、植物細胞が挙げられ、そのいずれを用いてもよい。好ましい宿主細胞としては、大腸菌などを用いることができる。
　本発明キメラ蛋白質の特徴の一つは、セルロース又はキチンから構成されるシート、フィルム、粒子、ビーズなどの任意の材料に付着ないし結合させ、乾燥させたときに、その発光活性が長期間保持されることにある。従って、本発明のキメラ蛋白質は、発光材料として有用である。また、本発明のキメラ蛋白質は、長期保存中にも発光活性が低下しないため、標準物質としても有用である。
　本明細書において、セルロースとしては、天然セルロース、再生セルロースのいずれも使用できる。天然セルロースとしては、針葉樹や広葉樹から得られる精製パルプ、コットンリンターやコットンリントより得られるセルロース、バロニアやシオグサなどの海草より得られるセルロース、ホヤより得られるセルロース、バクテリアの生産するセルロース等が挙げられる。再生セルロースとしては、天然セルロース繊維をいったん溶解した後、セルロースの組成のままで繊維状に再生したものが挙げられる。
　キチンは、例えばカニの甲羅から製造することができる。好ましい実施形態では、本発明で使用するキチンは、水洗したカニ殻を、塩酸などの酸で処理して無機質(カルシウムなど)を除き、次いで苛性ソーダで処理して有機質(例えば蛋白質)を除去し、さらにアルコール処理して脂質を除去し、不溶の残分として得られたキチンを使用することができる。カニ甲羅素材を粉砕して粒子状としてもよい。
　また、キチンとして、セミ類の抜け殻を用いることもできる。セミ類の抜け殻は、キチンが内表面に露出しているため、無処理で使用することができる。
　以下、本発明を実施例を用いてより詳細に説明するが、本発明がこれら実施例に限定されないことはいうまでもない。本実施例において、「CBD-BAF」及び「hCBD-BAF」は、「キメラ蛋白質」に含まれるものと理解される。
実施例１
プラスミドの作製
（１）pCII-CBD-eBAF-Ym3及びpCII-CBD(TN)-eBAF-Ym3
　CBD-eBAF-Y発現ベクターを作製するために、CBD(wt)又はCBD(TN)をコードする遺伝子をPCRにより増幅した。PCRに用いられたプライマーは次の通りである：
chBD2-F-NdeI,5’-GGAATTCCATATGACTACCCCTGTCCCAGTCTC-3’;
chBD2-R-NdeI, 5’-CGATATCCATATGAATTACTTGTCCGTTTATTTCTAG-3’。
PCR断片をNdeIで消化し、pCII-eBAF-Ym3のNdeI部位へ組み込み、pCII-CBD-eBAF-Ym3及びpCII-CBD(TN)-eBAF-Ym3を構築した。
　なお、eBAF-Ym3は、特許文献１に記載されている。eBAF-YのRLuc8部分に、A123S、D162E、I163Lの変異を導入したBAF蛋白質のことである。ここでのCBDとCBD(TN)をコードする遺伝子は、超高熱菌のゲノムに由来する配列である。
（２）pCII-hCBD-eBAF-Y
　大腸菌での効率的な蛋白質発現のために、大腸菌でのコドン最適化を目的としたCBD遺伝子の人工合成を行った（CBD(TN)のみ）。当該人工合成CBD(TN)遺伝子（以下hCBDと呼称して区別するが、アミノ酸配列はCBD(TN)と同一である）を、上記pCII-CBD(TN)-eBAF-Ym3のCBD(TN)部分と置換したpCII-hCBD-eBAF-Ym3を構築した。またこの時、後々の組換えに備え、人工遺伝子設計に際し、hCBD配列の3’側にAsp718-BamHI-NdeI部位を付加した。その結果、連結部分の塩基配列は、5’-GGTACCGGGGGATCCCATATG-3’となり、G-T-G-G-S-Hのアミノ酸配列でhCBDとeBAF-Ym3をインフレームに連結することになる（NdeI部位のATGはeBAF-Ym3の開始Metに相当）。
（３）pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3
pCII-hCBD-eBAF-Ym3のAsp718-BamHI部位に、AspHRV3CsBam-Sens:5’-GTACCGGTGGTTCCGCGGGTCTGGAAGTTCTGTTCCAGGGGCCCTCCGCGGGTtccggtg-3’とAspHRV3CsBam-Anti:GATCCACCGGAACCCGCGGAGGGCCCCTGGAACAGAACTTCCAGACCCGCGGAACCACCGからなる合成２重鎖DNAを挿入し、HRV-3Cプロテアーゼの切断配列を挿入した。Asp718部位からBamHI部位までに対応するアミノ酸配列は、G-T-G-G-S-A-G-L-E-V-L-F-Q-G-P-S-A-G-S-G-G-Sであり、中央のLEVLFQ／GPが当該プロテアーゼの切断配列である（／：切断部位）。　　　　  
（４）pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeI
　pCII-eBAF-Yで代表される各種BAFの大腸菌発現ベクターにおいて、2008年に開発済の400種類を超える各種BAFは全てNdeI-XbaI部位でクローニングされている。一方でpCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3は、hCBD部分がNdeI部位で挿入されており、BAFの置換体を作製するためにhCBD部分の5’側のNdeI部位が新たなBAF置換体作製の障害になる。そのため、hCBDdelNdeIoligo-Sens: 5’-TCATCATCATCATCAcATGACCACTCCGGTG-3’、hCBDdelNdeIoligo-Anti: 5’-CACCGGAGTGGTCATgTGATGATGATGATGA-3’を用いて、1塩基の塩基置換変異導入により、NdeI部位を破壊した、pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeIを作製した。なお、この一塩基変異導入にはストラタジーン社のQuickExchenge systemを用いた。
　pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeIを用いて発現させたキメラ蛋白質濾紙に吸着／結合させて乾燥した後の発光活性の試験結果を図３に示す。
（５）pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3及びpCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R4
　pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeIをNdeI及びXbaIを用いて消化し、、eBAF-Ym3部分を除去して、その代わりにBAF-R3又はBAF-R4を挿入した。かくして、pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3及びpCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R4を作製した。なお、BAF-R3及びBAF-R4は、それぞれ赤色蛍光発光蛋白質として、TurboRFP及びmCherryを含んでいる。BAF-R3及びBAF-R4は、特許文献１に記載の方法に準じて作製した。
　pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3及びpCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-R4を用いて発現させたキメラ蛋白質濾紙に吸着／結合させて乾燥した後の発光活性の試験結果を図４、図５に示す。
（６）pCII-hCBD-RLuc
　上記（５）と同様にして、pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeIからeBAF-Ym3部分を除去して、その代わりにRLuc（ウミシイタケルシフェラーゼ）を挿入した。得られたpCII-hCBD-HRV3Cs-RLucを用いて発現させたキメラ蛋白質濾紙に吸着／結合させて乾燥させ、室温保存した後の発光活性の試験結果を図１０に示す。
リコンビナント蛋白質の調製
　各キメラ蛋白質について、リコンビナント蛋白質をHisタグ融合蛋白質として、大腸菌BL21株において低温ショック誘導性プロモーターシステム（TAKARA）により発現させた。リコンビナント蛋白質は、Ni-NTAアフィニティーカラムを用いて精製した。
各種キメラ蛋白質結合濾紙の作製
　穴あけパンチで作製した直径6mmの丸形濾紙（ADVANTEC）片をパラフィルム上に置き、当該濾紙片にHisタグ精製した各種キメラ蛋白質の高濃度水溶液を数μlずつ滴下、次いで乾燥の工程を繰り返した。十分量のキメラ蛋白質を結合後、大量の精製水にて、当該濾紙片を洗浄し、未結合のCBD-BAFを除去した。洗浄後の濾紙片をパラフィルム上で風乾することで、各種キメラ蛋白質結合濾紙を作製した。図１に、方法の概要を模式的に示す。キメラ蛋白質としては、CBD-eBAF-Ym3、hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeI（以下、「hCBD-eBAF-Ym3」と記載する場合がある。）、hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3（以下、「hCBD-eBAF-R3」と記載する場合がある。）、hCBD-HRV3Cs-eBAF-R4（以下、「hCBD-eBAF-R4」と記載する場合がある。）及びhCBD-HRV3Cs-RLuc（以下、「hCBD-RLuc」と記載する場合がある。）を用いた。
キメラ蛋白質結合濾紙の発光像観察
　リンゴ型パンチで切り抜き、中央部にCBD-eBAF-Ym3を結合させた。その後、洗浄した濾紙片に対し、ルシフェリン溶液を添加して、黄緑色発光を視認観察した。塗布部からの拡散が見られないことを確認後、LAS-4000にて、High Resolution mode（感度最低）で4秒間露光により、発光画像を取得した。結果を、図２Ａに示す。
　なお、本実施例のみ、セルロース／キチン結合ドメインとしてCBD（chBD2(TN)型で、変異導入部分以外は天然型の超好熱性細菌由来の遺伝子（塩基）配列）を有する、CBD-eBAF-Ym3を使用した。本実施例以外は、全てchBD2(TN)のアミノ酸配列をコードするが、大腸菌でのコドン使用に最適化した人工合成遺伝子を使用した（「hCBD」と呼ぶ場合がある。）。
キメラ蛋白質結合濾紙の室温乾燥保存後の発光量測定
　CBD-eBAF-Ym3蛋白質結合濾紙をプラスチックペトリディッシュに入れ、フタをした後、室温（26℃～27℃）暗所にて保存した。測定直前に、当該乾燥濾紙片をルミノメータ用測定チューブ（Nunc）に入れ、発光反応バッファー（60 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH8.0）200 μlを加えて、十分湿潤させた。当該チューブに、1 μMルシフェリン溶液200 μlを添加し、発光測定を行った。発光量はLuminescencer-PSN (アトー)を用いて、10秒間の積算により測定した。結果を図２Ｂに示す。
　hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3ΔNdeI、hCBD-eBAF-R3、hCBD-HRV3Cs-eBAF-R4及びhCBD-HRV3Cs-RLucについても、同様に保存後の発光量を測定した。結果を、図３～５及び図１０にそれぞれ示す。
プロテアーゼ活性検出系の実施
　系の概要を、図６及び図７Ａに模式的に示す。
　hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3を、pCII-hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3含有大腸菌を用いて、発現誘導し、次いでこれを精製した。得られたhCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3を用いて、当該蛋白質結合乾燥濾紙片を調製した。
　濾紙片を2.0 ml 微量遠心チューブに入れ、1xHRV-3C バッファー（150 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl,pH7.5）100 μlを加えて、十分湿潤させた後、一旦バッファーを完全に除去した。バッファー湿潤濾紙片を含む当該チューブに、1xHRV-3C バッファー溶液もしくは4UのHRV-3Cプロテアーゼ（Novagen）を含む1xHRV-3C バッファー溶液120 μlを改めて添加し、4℃にて64時間静置した。反応後、当該微量遠心チューブを遠心し、上清40 μlを別チューブに分取した。回収上清4 μlずつをSDS-PAGEに供し、電気泳動による分離後、CBB染色を行った。尚、コントロールとして、未反応のhCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3精製標品を用いた。結果を図７Ｃに示す。
　また、回収上清2 μlを発光反応バッファー（60 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH8.0）200 μlに希釈し、等量の0.5 μMルシフェリン溶液を加えて発光測定を３回行った。発光量はLuminescencer-PSN (アトー)を用いて、10秒間の積算により測定した。結果を、図７Ｂに示す。
　また、回収上清を青色ＬＥＤトランスイルミネーターとオレンジ色アクリル板を用いて、蛍光観察を行った。画像取得は、デジタルカメラ（Nikon D-70）を用いた写真撮影により行った。結果を図７Ｄに示す。
各種hCBD-BAF蛋白質結合キチン素材の作製
　カニ甲羅を塩酸処理（脱カルシウム）、NaOH処理（除タンパク）、次いでアルコール処理（除脂質）を順次施し、キチン素材（カニ甲羅キチン素材）を得た。得られたキチン素材に、３種のhCBD-BAF蛋白質（hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3、hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3及びhCBD-HRV3Cs-eBAF-R4）を、領域を分けて塗布（図９Ａ）して、これを乾燥した。室温にて3日間保存した後、505nmの緑色LEDイルミネータを照射し、オレンジ色フィルターを透過する光をデジカメで撮影した。図９Ｂの（b-1）は蛍光灯下での明視野像、（b-2）は蛍光像をそれぞれ示す。図９Ｂの（b-1）及び（b-2）は、同一アングルから撮影した写真である。陰性対照と未塗布部分が緑色なのは、照射緑色光が反射しているためである。さらに、同一試料を室温にて10か月乾燥保存した後の蛍光像を、図９Ｂの（b-3）に示す。
hCBD-BAFに用いた各種BAFのスペクトル測定
　３種のhCBD-BAF蛋白質（hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3、hCBD-HRV3Cs-eBAF-R3及びhCBD-HRV3Cs-eBAF-R4）に用いた各種BAF蛋白質単体（eBAF-Ym3、eBAF-R3及びeBAF-R4）について、特許文献２に記載の方法に準じてスペクトル測定を行なった。結果を、図１１～１３に示す。
セミ抜け殻へのCBD-BAF蛋白質の結合及び発光観察
　キチン素材として、セミ抜け殻を用いた。セミ抜け殻に直接hCBD-HRV3Cs-eBAF-Ym3を塗布した。当該ハイブリッド材料を前述の反応バッファーに浸し、ルシフェリン溶液を添加した後、発光の様子をデジタルカメラで記録した。結果を図１４に示す。

Claims (9)

  1. 発光ドメインとセルロース及び／又はキチン結合ドメインを含むキメラ蛋白質であって、前記発光ドメインがルシフェラーゼ及び蛍光発光蛋白質からなる群から選ばれる少なくとも１種の発光蛋白質を含む、キメラ蛋白質。
  2. 発光ドメインとセルロース及び／又はキチン結合ドメインが直接又は第１リンカーを介して結合されてなる、請求項１に記載のキメラ蛋白質。
  3. 前記発光ドメインがルシフェラーゼ及び蛍光発光蛋白質を含み、ルシフェラーゼから蛍光発光蛋白質へのエネルギー移動（ＢＲＥＴ）が生じ得るものである、請求項１又は２に記載のキメラ蛋白質。
  4. ルシフェラーゼと蛍光発光蛋白質が第２リンカーを介して結合されてなる、請求項３に記載のキメラ蛋白質。
  5. 蛍光発光蛋白質が、ＧＦＰ、ＹＦＰ、ＢＦＰ、ＣＦＰ、ＯＦＰ、DsREDまたはＲＦＰである請求項１～４のいずれか１項に記載のキメラ蛋白質。
  6. 蛍光発光蛋白質がＹＦＰまたはＲＦＰである、請求項５に記載のキメラ蛋白質。
  7. 第１リンカー及び／又は第２リンカーがプロテアーゼ切断配列を含む、請求項１～６のいずれか１項に記載のキメラ蛋白質。
  8. 請求項１～７のいずれかに記載のキメラ蛋白質をコードするＤＮＡまたはその相補鎖。
  9. 請求項１～７のいずれかに記載のキメラ蛋白質をセルロース又はキチンを含む粒子、ビーズ、シート又はフィルムに結合させてなる、発光材料。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013173889A (ja) * 2012-02-27 2013-09-05 Denki Kagaku Kogyo Kk 粘着性放熱シートおよび粘着性放熱シートの粘着力増加方法
JP2015029472A (ja) * 2013-08-02 2015-02-16 東洋ビーネット株式会社 プロテアーゼ活性測定法
JP2019068869A (ja) * 2019-02-18 2019-05-09 東洋ビーネット株式会社 プロテアーゼ活性測定法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001507569A (ja) * 1996-10-28 2001-06-12 ノボ ノルディスク アクティーゼルスカブ バチルス菌を用いたセルロース結合ドメインの細胞外発現
JP2002507410A (ja) * 1998-03-27 2002-03-12 プロルーム・リミテッド ルシフェラーゼ、蛍光タンパク質、ルシフェラーゼおよび蛍光タンパク質をコードする核酸および、診断、高処理スクリーニングおよび新規アイテムにおけるその使用
JP2003526364A (ja) * 2000-03-15 2003-09-09 プロルーム・リミテッド Ｒｅｎｉｌｌａｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓ蛍光タンパク質、その蛍光タンパク質をコードする核酸、および診断、ハイスループットスクリーニングおよび新規アイテムにおけるその使用
JP2007075046A (ja) * 2005-09-16 2007-03-29 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 耐熱性セルロース結合ドメイン
JP2008283959A (ja) * 2006-10-13 2008-11-27 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 高いエネルギー移動効率を有するｂｒｅｔ発現系
JP2009085831A (ja) * 2007-10-01 2009-04-23 Canon Inc 捕捉体部材及びバイオセンサー素子
JP2010004774A (ja) * 2008-06-25 2010-01-14 Kansai Chemical Engineering Co Ltd キチン結合ドメインを用いる細胞表層提示方法

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001507569A (ja) * 1996-10-28 2001-06-12 ノボ ノルディスク アクティーゼルスカブ バチルス菌を用いたセルロース結合ドメインの細胞外発現
JP2002507410A (ja) * 1998-03-27 2002-03-12 プロルーム・リミテッド ルシフェラーゼ、蛍光タンパク質、ルシフェラーゼおよび蛍光タンパク質をコードする核酸および、診断、高処理スクリーニングおよび新規アイテムにおけるその使用
JP2003526364A (ja) * 2000-03-15 2003-09-09 プロルーム・リミテッド Ｒｅｎｉｌｌａｒｅｎｉｆｏｒｍｉｓ蛍光タンパク質、その蛍光タンパク質をコードする核酸、および診断、ハイスループットスクリーニングおよび新規アイテムにおけるその使用
JP2007075046A (ja) * 2005-09-16 2007-03-29 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 耐熱性セルロース結合ドメイン
JP2008283959A (ja) * 2006-10-13 2008-11-27 National Institute Of Advanced Industrial & Technology 高いエネルギー移動効率を有するｂｒｅｔ発現系
JP2009085831A (ja) * 2007-10-01 2009-04-23 Canon Inc 捕捉体部材及びバイオセンサー素子
JP2010004774A (ja) * 2008-06-25 2010-01-14 Kansai Chemical Engineering Co Ltd キチン結合ドメインを用いる細胞表層提示方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ICHIOKA,F. ET AL.: "Identification of Rab GTPase-activating protein-like protein (RabGAPLP) as a novel Alix/AIPl-interacting protein", BIOSCI.BIOTECHNOL.BIOCHEM., vol. 69, no. 4, 2005, pages 861 - 865 *
KIM,S.Y. ET AL.: "Extracellular ATP in plants. Visualization, localization, and analysis of physiological significance in growth and signaling", PLANT PHYSIOL., vol. 142, no. 3, 2006, pages 984 - 992 *
YANO,S. ET AL.: "N-terminal region of chitinase I of Bacillus circulans KA-304 contained new chitin-biding domain", BIOSCI.BIOTECHNOL. BIOCHEM., vol. 75, no. 2, February 2011 (2011-02-01), pages 299 - 304 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013173889A (ja) * 2012-02-27 2013-09-05 Denki Kagaku Kogyo Kk 粘着性放熱シートおよび粘着性放熱シートの粘着力増加方法
JP2015029472A (ja) * 2013-08-02 2015-02-16 東洋ビーネット株式会社 プロテアーゼ活性測定法
JP2019068869A (ja) * 2019-02-18 2019-05-09 東洋ビーネット株式会社 プロテアーゼ活性測定法

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