WO2013088537A1 - 細胞培養容器、それを用いた細胞自動継代培養装置および細胞継代培養方法 - Google Patents

細胞培養容器、それを用いた細胞自動継代培養装置および細胞継代培養方法 Download PDF

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広斌 周
志津 松岡
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株式会社日立製作所
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/04—Flat or tray type, drawers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34—Internal compartments or partitions

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture container for performing subculture of various cells, a cell automatic subculture apparatus, and a cell subculture method.
  • various cells are subcultured.
  • the adhesion-dependent cells grow by adhering to the bottom surface (culture surface) of the culture container, it is necessary to consider that the cell density is always in a certain range. If the cell density is too low and the distance between adjacent cells is increased, adhesion-dependent cells may die due to a reduced growth rate. On the other hand, if the cell density is too high and the distance between adjacent cells becomes small, the adhesion-dependent cells may stop cell proliferation and die as they are. Therefore, when culturing adhesion-dependent cells, it is necessary to perform subculture in which the cells are sequentially planted.
  • Patent Document 1 proposes a cell culture device in which a first culture unit and a second culture unit are connected by a pipe, and a medium exchange operation and a subculture operation are automatically performed in a timely manner by a cell culture program. Further, Patent Document 2 proposes a culture container having a culture region partitioned by a fixed partition piece for initial culture and an automatic subculture apparatus in the subculture container.
  • Patent Document 1 and Patent Document 2 when the cells are subcultured, the cell suspension is moved to the subculture region using a transfer pump. There are problems such as loss of cell, stress applied to cells, and complicated structure of the device. In addition, with the fixed partition structure of Patent Document 2, it is difficult to uniformly seed cells during subculture.
  • the present invention is a cell culture container that can perform passage of cells without performing a partitioning operation using a pipette, and can prevent contamination of bacteria in the culture container at the time of passage of the cells, It aims at providing an automatic subculture apparatus and a cell subculture method.
  • the cell culture container of the present invention has a first partition having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture container forming the second culture region in the culture container forming the first culture region capable of being sealed. And a means for raising and lowering the first partition member in a sealed state of the culture vessel.
  • the cell culture container of the present invention further includes a second partition member having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture container forming the third culture region in the second culture region, Means for raising and lowering the second partition member in a sealed state of the culture vessel is provided.
  • the cell culture container of the present invention further includes a third partition member having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture container, which forms a third culture region that does not overlap the second culture region. And a means for raising and lowering the third partition member in a sealed state of the culture vessel.
  • Another cell culture container of the present invention includes a fourth partition member that forms a culture region in a sealable culture vessel, and the culture region is moved by moving the fourth partition member in a sealed state of the culture container. It has a means to change the area.
  • the present invention it is possible to improve the subculture efficiency of the cell culture container, and it is possible to prevent contamination of bacteria in the culture container during cell passage.
  • 1 is a cell culture vessel
  • 2 is a ceiling substrate of the culture vessel
  • 3 is a bottom substrate of the culture vessel 1.
  • a region on the bottom substrate 3 partitioned by the frame of the culture vessel 1 is a first culture region (passage culture region).
  • 4 is a movable partition
  • 4A is a magnet fitted in the movable partition 4.
  • the movable partition 4 is lower than the wall surface of the culture vessel 1, and the region on the bottom substrate 3 of the partitioned culture vessel 1 is a second culture region (initial culture region).
  • Reference numerals 5 and 6 are support mechanisms outside the ceiling substrate of the culture vessel 1, 5A and 6A are magnets fitted into the support mechanisms 5 and 6, and 5B and 6B are rotation mechanisms that rotate the support mechanisms 5 and 6, respectively.
  • Reference numeral 7 is a first target cell
  • 8 is a medium for supplying nutrients of the cell.
  • 9 is an inlet and outlet of the culture medium 8
  • 10 is an inlet for a mixed gas (5% CO 2 , air with a humidity of 90% or more)
  • 11 is an outlet for the mixed gas.
  • Reference numeral 12 denotes a driving mechanism that shakes the culture vessel 1 for uniform seeding or cell detachment, or tilts the culture vessel 1 to discharge the medium or the like.
  • Reference numeral 13 denotes an observation mechanism for observing cells.
  • the initial culture of target cells is performed by supplying the culture medium 8 to the initial culture area in the movable partition 4 from the culture medium inlet / outlet 9 and then injecting the suspension of the target cells.
  • the magnets 5A and 6A in the support mechanisms 5 and 6 are in a state where the same polarity (N pole pair N pole) as the magnet 4A in the movable partition 4 is opposed, and the movable partition 4 is in close contact with the bottom substrate 3. ing.
  • the entire culture container 1 can be shaken by the drive mechanism 12 to uniformly seed the cells.
  • a mixed gas (5% CO 2 , air with a humidity of 90% or more) required for cell culture is supplied to the culture vessel 1 from the mixed gas inlet 10 for initial culture. Since the movable partition 4 is lower than the wall surface of the culture vessel 1, the mixed gas can be supplied to the initial culture region. The cell culture process is observed and measured by the observation mechanism 13.
  • the medium in the initial culture area is discharged and the cells are washed with PBS (physiological saline). Subsequently, trypsin is injected into the initial culture region to detach the cells from the culture surface, and then a medium is injected to float the cells in the medium.
  • the support mechanisms 5 and 6 are rotated 180 ° by the rotation mechanisms 5B and 6B, so that the magnets 5A and 6A in the support mechanisms 5 and 6 are different in polarity from the magnet 4A in the movable partition 4 ( S pole pair N pole) are set to face each other.
  • the movable partition 4 is detached from the bottom substrate 3 and raised to the ceiling substrate 2 of the culture vessel by the support mechanisms 5 and 6 outside the culture vessel by the attractive force of the magnet.
  • a gap is formed between the partition substrate 4 and the cell suspension in the initial culture region is transferred to the cell culture vessel 1 having a culture surface larger than the initial culture region.
  • a medium suitable for the culture area is injected into the subculture area from the medium inlet / outlet 9, and the cells are uniformly dispersed in the subculture area by rocking by the drive mechanism 12. After the cells adhere to the culture surface, subculture is performed by changing the medium in order to remove trypsin. After subculture, a cell suspension containing more cells can be collected by the same operation as in the above process.
  • the operation in the closed culture vessel is realized in a non-contact manner using a magnetic mechanism, thereby preventing contamination of the culture vessel during cell passage. Furthermore, since no transfer pump is required during the passage operation, cell loss and cell stress associated with transfer by the pump are not caused.
  • the ceiling substrate 2 and the bottom substrate 3 of the culture vessel 1 described above can be formed using glass, silicon, quartz, or a solid substrate such as plastics and polymers as a base material. More preferably, the bottom substrate 3 is made of a material capable of modifying the surface of the substrate by cleaning and pretreatment before attaching the cells to the surface. It is desirable to provide.
  • a magnet is used as a means for raising and lowering the partition member.
  • the principle of movement using a magnet will be described with reference to FIG.
  • the magnet is an object that has two magnetic poles (N pole and S pole) and serves as a source for generating a bipolar magnetic field (left side in FIG. 3).
  • the magnetic poles of the magnet do not exist independently, and both poles always make up a magnet.
  • different poles will be attracted (attracting force) (right side in FIG. 3), and the same pole will be repelled (repulsive) (center in FIG. 3).
  • permanent magnets ferrite magnets, neodymium magnets, etc.
  • the shape of the outer frame and the partition of the culture vessel has been described as a quadrangle, but it is needless to say that the shape may be a circle or a polygon.
  • the support mechanisms 5 and 6 for moving the partition 4 in the culture vessel 1 up and down are provided on the top of the ceiling substrate.
  • the support mechanisms 5 and 6 are provided outside the side surface of the culture vessel 1. Also good.
  • it can be realized by providing a vertical movement mechanism that moves the magnets 5A and 6A up and down instead of the rotation mechanism.
  • a hole may be provided in the culture vessel 1, a support member may be connected to the partition 4 through this hole, and the partition 4 may be moved by moving the support member. In this case, it is necessary to ensure sealing between the hole and the support member.
  • subculture using a culture vessel was described using subculture of adherent cells, but the culture vessel of this example can also be applied to subculture of suspension cells.
  • the operation from the initial culture to the subculture is described as being performed automatically.
  • the culture container of this example can also be applied to manual subculture. .
  • the cell subculture method of Example 1 is a partition having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture vessel forming the second culture region in the culture vessel forming the sealable first culture region.
  • the subculture efficiency of the cell culture container can be improved, and contamination can be prevented from entering the culture container at the time of cell subculture.
  • FIG. 5 shows a configuration example of the cell culture container of Example 2 of the present invention.
  • Example 2 is a cell culture vessel with a double passage structure.
  • the culture vessel of the present example is the culture vessel 1 that forms the third culture region (initial culture region) in the culture vessel 1 that forms the first culture region (second passage culture region) that can be sealed.
  • a movable partition 4 having a wall surface formed lower than the wall surface of the first partition, and has means for raising and lowering the partition in a sealed state.
  • a movable partition 14 having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture vessel 1 forming the subculture region), and has means for raising and lowering the partition in a sealed state of the culture vessel 1.
  • the culture vessel forming the first culture region that can be sealed has a wall surface formed lower than the wall surface of the culture vessel forming the second culture region.
  • the culture vessel having one partition member, having means for raising and lowering the first partition member in a sealed state of the culture vessel, and further forming a third culture region in the second culture region
  • a method of culturing cells in the third culture region with the second partition member lowered, and the second partition member with the first partition member lowered Raise the first Dispersing the cells cultured in the second culture region in the second culture region, and lowering the first partition member, the cells in the third culture region and the second culture region Culturing; raising the first partition member to disperse cells cultured in the third culture region and the second culture region in the first culture region; And culturing cells in the second
  • the culture container of this example can perform initial culture and subculture twice in one closed section, and can prevent contamination of bacteria in the culture container during cell passage. Furthermore, since no transfer pump is required during the passage operation, cell loss and cell stress associated with transfer by the pump are not caused.
  • Example 3 A cell culture container of Example 3 of the present invention will be described with reference to FIGS.
  • Example 3 is provided with a partition having a linear partition structure.
  • the culture container of this example is a movable partition, as shown in FIG. 7, in the frame of the culture container 1, after initial culture in an initial culture region with a small area, as shown in FIG. 7. 15 is moved to an appropriate position to secure a cell passage region.
  • the movement of the movable partition 15 may be performed by a magnet provided outside the culture vessel as shown in Example 1, or a hole is provided in the side surface of the culture vessel, and a support member is provided to the movable partition 15 through the hole. And the movable partition 15 may be moved by moving the support member.
  • this structure it is possible to freely provide a culture area for initial culture and subculture (may be several times) according to the cell type and seeding concentration, and non-contact operation in a closed culture vessel
  • it can prevent that a miscellaneous germ mixes in a culture container at the time of a cell subculture. Furthermore, since no transfer pump is required during the passage operation, cell loss and cell stress associated with transfer by the pump are not caused.
  • the cell subculture method of Example 3 includes a partition member that forms a culture region in a sealable culture vessel, and moves the partition member in a sealed state of the culture vessel to change the area of the culture region.
  • a cell subculture method using a cell culture vessel having means for culturing cells in the culture region by placing the partition member in an initial position; and moving the partition member to move the partition member The method includes a step of expanding an area and a step of culturing cells in a culture region in which the area is expanded.
  • Example 4 relates to a cell culture container having a co-culture structure.
  • the portions other than the movable partition 16, the magnet 16A fitted into the movable partition 16, the second target cell 17, and the second target cell culture medium 18 in FIGS. 8 and 9 are the same as in Example 1.
  • the culture container of the present example uses the movable partition 4 and the movable partition 16 in the frame of the culture container 1 to store the first target cell and the second target cell in the respective initial culture regions.
  • the cells are cultured and subcultured, as shown in FIG. 9, by performing co-culture by opening the movable partition 4 and the movable partition 16, cell culture that can promote proliferation can be realized.
  • the culture vessel forming the sealable first culture region has a wall surface formed lower than the wall surface of the culture vessel forming the second culture region.
  • One partition member having means for raising and lowering the first partition member in a sealed state of the culture vessel, and further forming a third culture region that does not overlap the second culture region
  • a cell culture vessel comprising a third partition member having a wall surface formed lower than the wall surface of the culture vessel, and having means for raising and lowering the third partition member in a sealed state of the culture vessel
  • a cell subculture method wherein the cells are cultured in the second culture region and the third culture region with the first partition member and the third partition member lowered, and First partition And raising the third partition member to disperse the cells cultured in the second culture region and the third culture region in the first culture region, and the first culture region and the And co-culturing cells in the second culture region and the third culture region.
  • Example 5 of the present invention will be described with reference to FIG.
  • the same parts as those in the above embodiment are denoted by the same reference numerals and the description thereof will be omitted, and only different parts will be described.
  • 19 is a control processor and 20 is a monitor.
  • 21 is a mixed gas generator
  • 22 is a gas pump
  • 23 is a cultured cell suspension tank
  • 24 is a medium tank
  • 25 is a trypsin tank
  • 26 is a PBS tank
  • 23A, 24A, 25A, and 26A are respectively corresponding tanks.
  • the solenoid valve 27 to be connected is a liquid pump.
  • the broken line in FIG. 10 is an electric signal line connected to the control processor 19 and each electric control component. The control flowchart is shown in FIG.
  • initial culture of target cells is performed by supplying the medium 8 to the initial culture area in the movable partition 4 from the medium inlet / outlet 9 (ST1), and then suspending the target cell suspension in the cultured cell suspension. Inject from the turbid liquid tank (ST2). At this time, the magnets 5 ⁇ / b> A and 6 ⁇ / b> A in the support mechanisms 5 and 6 are in a state where the same polarity (N pole versus N pole) as the magnet 4 ⁇ / b> A in the movable partition 4 faces each other. The entire culture container is shaken by the drive mechanism 12 to uniformly seed the cells (ST3).
  • a mixed gas (5% CO 2 , air with a humidity of 90% or more) required for cell culture is supplied to the culture vessel from the mixed gas inlet 10 (ST4), and initial culture is performed (ST5). Since the movable partition 4 is lower than the wall surface of the culture vessel 1, the mixed gas can be supplied to the initial culture region.
  • the cell culture process is observed and measured by the observation mechanism 13.
  • the medium in the initial culture region is drained (ST6), and PBS (physiological saline) is injected from the PBS tank 26 to wash the cells (ST7).
  • trypsin is injected from the trypsin tank 25 into the initial culture region, and the cells are detached from the culture surface (ST8). Then, the medium is injected and the cells are suspended in the medium (ST9).
  • the support mechanisms 5 and 6 are rotated 180 ° by the rotation mechanisms 5B and 6B, so that the magnets 5A and 6A in the support mechanisms 5 and 6 are different in polarity from the magnet 4A in the movable partition 4 ( S pole pair N pole) are in a state of facing each other.
  • the movable partition 4 is detached from the bottom substrate 3 and raised to the culture vessel ceiling substrate 2 by the support mechanism 5 and 6 outside the culture vessel by the attractive force of the magnet.
  • the partition 4 By separating the partition 4 from the bottom substrate 3, there is a gap between the bottom substrate 3 and the cell suspension in the initial culture region is passed through the cell culture vessel 1 having a larger culture surface than the initial culture region. It diffuses into the culture area (ST10).
  • a medium suitable for the culture area is injected from the medium inlet / outlet 9 into the subculture area, and the cells are uniformly dispersed in the subculture area by rocking by the drive mechanism 12 (ST11). After the cells adhere to the culture surface, in order to remove trypsin, the medium is changed (ST12) and subculture is performed (ST13). After subculture, a cell suspension containing more cells can be collected by the same operation as in the above process (ST17).
  • Example 1 An example of cell culture using Example 1 will be described.
  • the cells used were 3T3 cells (fibroblast cell line derived from mouse skin), and the medium used was DMEM supplemented with calf serum and antibiotics.
  • the seeding density of 3T3 cells is 2 ⁇ 10 3 cells / cm 2 .
  • the initial culture was cultured for 3 days according to the procedure of Example 1, and about 2 ⁇ 10 6 cells were confirmed from the culture surface. Furthermore, in subculture, about 2 ⁇ 10 7 cells were able to be recovered from the culture surface by culturing for 3 days.
  • the present invention is not limited to the above embodiments as long as the characteristics of the present invention are not impaired, and other forms conceivable within the scope of the technical idea of the present invention are also included in the scope of the present invention.

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Abstract

ピペットを用いた分配作業を行うことなく細胞の継代を行うことができ、しかも、細胞の継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる細胞培養容器を提供する。細胞培養容器は、密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器（１）内に、第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する仕切り部材（４）を備え、当該仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有する。仕切り部材を上昇、降下させる手段としては、磁石（４Ａ，５Ａ，６Ａ）を用いる。

Description

細胞培養容器、それを用いた細胞自動継代培養装置および細胞継代培養方法
　本発明は、種々の細胞の継代培養を行う細胞培養容器、細胞自動継代培養装置および細胞継代培養方法に関する。
　従来、種々の細胞（浮遊系細胞、接着性細胞）の継代培養が行われている。特に、接着依存性細胞は、培養容器の底面（培養面）に接着して増殖するため、細胞密度が常に一定の範囲になるように配慮する必要がある。細胞密度が低すぎ、隣接する細胞間の距離が大きくなると、接着依存性細胞は、増殖速度が低下し死滅することがある。一方、細胞密度が高すぎ、隣接する細胞間の距離が小さくなると、接着依存性細胞は、細胞の増殖を停止し、そのまま死滅することがある。従って、接着依存性細胞を培養する場合には、順次培養容器へ植え継ぐ継代培養を行う必要がある。
　継代培養では、培養の初期に、培養面積の小さい培養容器で培養を行い、接着依存性細胞の密度が低くなりすぎないようにする。そこで、接着依存性細胞がある程度まで増殖したら、より培養面積の大きい培養容器、または同じ培養面積を有する複数の培養容器へ植え継ぐ。この作業を繰り返し、目的細胞数まで接着依存性細胞を増殖させる。従来、このような継代培養を含む細胞培養操作は、熟練オペレーターによりピペットを用いて、初期培養容器内の細胞を複数の継代培養容器に分配しなければならない。従来、この作業が煩雑であるという問題があった。
　特許文献１には、第１培養ユニットと第２培養ユニットを配管で接続し、細胞培養プログラムにより培地交換操作、継代培養操作をタイミングよく自動的に行う細胞培養装置が提案されている。また、特許文献２には、継代培養容器中に初期培養用の固定仕切り片で仕切られた培養領域を有する培養容器と自動継代培養装置が提案されている。
特開２００１－２７５６５９号公報 特開２００６－６２１９号公報
　しかしながら、特許文献１および特許文献２に記載されている細胞培養装置では、細胞を継代するとき、移動ポンプを用いて、細胞懸濁液を継代培養領域へ移動させるため、移動に伴う細胞のロスや細胞に与えるストレス、また装置の構造が複雑になるなどの課題があった。また、特許文献２の固定仕切り構造では、継代培養時に細胞を均一に播種することが困難である。
　本発明は、ピペットを用いた分配作業を行うことなく細胞の継代を行うことができ、しかも、細胞の継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる細胞培養容器、自動継代培養装置および細胞継代培養方法を提供することを目的とする。
　本願において開示される発明のうち代表的なものを挙げれば、次の通りである。
　本発明の細胞培養容器は、密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器内に、第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第一の仕切り部材を備え、当該第一の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有するものである。
　また、本発明の細胞培養容器は、更に、前記第二の培養領域に第三の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第二の仕切り部材を備え、当該第二の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有するものである。
　また、本発明の細胞培養容器は、更に、第二の培養領域とは重なり合わない第三の培養領域を形成する、前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第三の仕切り部材を備え、当該第三の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有するものである。
　本発明の他の細胞培養容器は、密閉可能な培養容器内に、培養領域を形成する第四の仕切り部材を備え、前記培養容器の密閉状態で当該第四の仕切り部材を移動させ前記培養領域の面積を変化させる手段を有するものである。
　本発明によれば、細胞培養容器の継代培養効率を向上することができ、また細胞の継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる。
本発明の実施例１の細胞培養容器の構成例を示す図である。 本発明の実施例１の細胞培養容器による継代培養を示す図である。 磁石の原理を示す図である。 本発明の実施例１の細胞培養容器の変形例を示す図である。 本発明の実施例２の細胞培養容器の構成例を示す図である。 本発明の実施例３の細胞培養容器の構成例を示す図である。 本発明の実施例３の細胞培養容器による継代培養を示す図である。 本発明の実施例４の細胞培養容器の構成例を示す図である。 本発明の実施例４の細胞共培養容器による細胞培養を示す図である。 本発明の実施例５の自動細胞継代培養システムを示す図である。 本発明の実施例５の自動細胞継代培養システムの制御フローチャートを示す図である。
　本発明の実施の形態を、図面を参照して説明する。各図面において、同一の構成要素には同一の番号を付与し、繰り返しの説明は省略する。
　本発明の実施例１の細胞培養容器の一構成例を、図１に基づいて説明する。
　図１において、１は細胞培養容器、２は培養容器１の天井基板、３は培養容器１の底面基板である。培養容器１の枠で仕切った底面基板３上の領域は第一の培養領域（継代培養領域）である。４は可動仕切り、４Ａは可動仕切り４中に嵌め込む磁石である。可動仕切り４は、培養容器１の壁面より低く、仕切った培養容器１の底面基板３上の領域は第二の培養領域（初期培養領域）である。５、６は培養容器１の天井基板外部にある支持機構、５Ａ、６Ａはそれぞれ支持機構５、６内に嵌め込む磁石、５Ｂ、６Ｂはそれぞれ支持機構５、６を回転させる回転機構である。７は第一目的細胞、８は細胞の栄養成分を供給する培地である。９は培地８の入口と出口、１０は混合ガス（５％ＣＯ２、湿度９０％以上の空気）の入口、１１は混合ガスの出口である。１２は、均一播種や細胞剥離のために培養容器１を揺らしたり、培地などの排出のために傾斜させたりする駆動機構である。１３は、細胞を観察する観察機構である。
　以下、図１と図２を用いて、本実施例の継代培養の流れを説明する。まず、目的細胞の初期培養は、図１に示すように、可動仕切り４内の初期培養領域に培地８を培地入口出口９より供給したあと、目的細胞の懸濁液を注入する。この時、支持機構５、６中の磁石５Ａ、６Ａは、可動仕切り４中の磁石４Ａと同極性（Ｎ極対Ｎ極）が対向する状態であり、可動仕切り４が底面基板３に密着している。この状態で、駆動機構１２により培養容器１全体を揺らして細胞を均一に播種することができる。さらに、培養容器１に細胞培養用に必要とされる混合ガス（５％ＣＯ２、湿度９０％以上の空気）を混合ガス入口１０より供給して初期培養する。可動仕切り４は、培養容器１の壁面より低いため、混合ガスを初期培養領域に供給することができる。細胞の培養過程を観察機構１３により観察し計測する。
　初期培養面における細胞増殖限界に到達する頃に、初期培養領域の培地を排出し、ＰＢＳ（生理食塩水）で細胞を洗浄する。続いて初期培養領域にトリプシンを注入し、細胞を培養面から剥離させたあと、培地を注入し細胞を培地に浮遊させる。次に、図２に示すように、回転機構５Ｂ、６Ｂにより支持機構５、６を１８０°回転させ、支持機構５、６中の磁石５Ａ、６Ａが可動仕切り４中の磁石４Ａと異極性（Ｓ極対Ｎ極）が対向する状態にする。その結果、磁石の引力により、培養容器外の支持機構５、６により、可動仕切り４を底面基板３から離脱させ培養容器の天井基板２まで上昇させる。仕切り４が底面基板３から離脱することにより、底面基板３との間に隙間ができ、初期培養領域中にある細胞懸濁液は、初期培養領域より大きな培養面をもつ細胞培養容器１の継代培養領域に拡散する。さらに、培地入口出口９より、継代培養領域に培養面積に合う培地を注入し、駆動機構１２による揺動で細胞を継代培養領域に均一に分散させる。細胞が培養面に接着したあと、トリプシンを除去するために、培地を交換して継代培養を実施する。継代培養後、上記過程と同様な操作でより多い細胞を含む細胞懸濁液を回収することができる。
　上述した継代培養は、磁石機構を利用して、閉鎖系培養容器内の操作を非接触で実現することによって、細胞継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる。さらに、継代操作時、移動ポンプは必要ないため、ポンプによる移動に伴う細胞のロスや細胞にストレス与えることがない。
　上述の可動仕切り４の部材は、ポリカーボン、ポリスチレンなど細胞培養に適する材料を使用することが望ましい。
　上述の培養容器１の天井基板２および底面基板３は、ガラス、シリコン、石英、またはプラスチック類およびポリマー類等の固体基板を基材として形成することが可能である。より望ましくは光学顕微鏡等での観察が可能な程度の光透過性を有し、さらに底面基板３は細胞を表面に付着させる前に、清浄化、前処理により基板の表面改質を行える材質を備えることが望ましい。
　本実施例においては、仕切り部材を上昇、降下させる手段として磁石を用いた。磁石を用いた移動の原理について、図３に基づいて説明する。磁石は、２つの磁極（Ｎ極、Ｓ極）をもち、双極性の磁場を発生させる源となる物体である(図３の左側）。磁石の磁極は単独で存在することはなく、必ず両極が一緒になって磁石を構成する。磁石同士を近づけると、異なる極は引き合う力（引力）(図３の右側）、同じ極は反発し合う力（斥力）(図３の中央）が働く。永久磁石（フェライト磁石、ネオジム磁石等）の他に、コイルを巻き通電することによって一時的に磁力を発生させる電磁石もある。
　なお、上記実施例では、培養容器の外枠と仕切りの形状について四角形のものを説明したが、円形状や多角形などの形状でもよいことは言うまでもない。
　また、本実施例では、培養容器１内の仕切り４を上下させる支持機構５、６を天井基板の上部に設けると説明したが、支持機構５、６を培養容器１の側面の外側に設けてもよい。この場合は、回転機構の代わりに、磁石５Ａ，６Ａを上下に移動する上下移動機構を設けることで実現できる。
　さらに、培養容器１に穴を設け、この穴を通して、仕切り４に支持部材を接続し、この支持部材を移動することにより仕切り４を移動するようにしても良い。この場合は、穴と支持部材との密閉性を確保する必要がある。
　さらに、本実施例では、接着性細胞の継代培養を用いて培養容器による継代培養を説明したが、本実施例の培養容器は浮遊性細胞の継代培養にも適用できる。
　また、本実施例では、初期培養から継代培養までの操作は自動的に行うと述べたが、図４に示すように、本実施例の培養容器は手作業による継代培養にも適用できる。
　実施例１の細胞継代培養方法は、密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器内に、第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する仕切り部材を備え、当該仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有する細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、前記仕切り部材を下降させた状態で、前記第二の培養領域において細胞を培養するステップと、前記仕切り部材を上昇させて、前記第二の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、前記第一の培養領域および前記第二の培養領域において細胞を培養するステップとから成るものである。
　本実施例によれば、細胞培養容器の継代培養効率を向上することができ、また細胞の継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる。
　図５に、本発明の実施例２の細胞培養容器の構成例を示す。実施例２は２回継代構造の細胞培養容器である。
　図５において、可動仕切り１４、可動仕切り１４に嵌め込む磁石１４Ａ以外の部分については実施例１と同様である。
　本実施例の培養容器は、密閉可能な第一の培養領域（２回目継代培養領域）を形成する培養容器１内に、第三の培養領域（初期培養領域）を形成する前記培養容器１の壁面よりも低く形成された壁面を有する可動仕切り４を備え、当該仕切りを密閉状態で上昇、下降させる手段を有し、また、前記第一の培養領域に第二の培養領域（１回目継代培養領域）を形成する前記培養容器１の壁面よりも低く形成された壁面を有する可動仕切り１４を備え、当該仕切りを前記培養容器１の密閉状態で上昇、下降させる手段を有するものである。
　実施例２の細胞継代培養方法は、密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器内に、第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第一の仕切り部材を備え、当該第一の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有し、更に、前記第二の培養領域に第三の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第二の仕切り部材を備え、当該第二の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有する細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、前記第二の仕切り部材を下降させた状態で、前記第三の培養領域において細胞を培養するステップと、前記第一の仕切り部材を下降させた状態で前記第二の仕切り部材を上昇させて、前記第三の培養領域で培養した細胞を、前記第二の培養領域に分散させるステップと、前記第一の仕切り部材を下降させた状態で、前記第三の培養領域および前記第二の培養領域において細胞を培養するステップと、前記第一の仕切り部材を上昇させて、前記第三の培養領域および前記第二の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、前記第一の培養領域および前記第二の培養領域および前記第三の培養領域において細胞を培養するステップとから成るものである。
　本実施例の培養容器は、一つの閉鎖区間内で初期培養および２回の継代培養を実施することができ、細胞継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる。さらに、継代操作時、移動ポンプは必要ないため、ポンプによる移動に伴う細胞のロスや細胞にストレス与えることがない。
　図６、図７を用いて、本発明の実施例３の細胞培養容器を説明する。実施例３は、直線仕切り構造の仕切りを備えたものである。
　ここで、図６、図７の可動仕切り１５、可動仕切り１５に嵌め込む磁石１５Ａ以外の部分については実施例１と同様である。
　本実施例の培養容器は、培養容器１の枠内において、図６に示すように、面積の狭い初期培養領域で初期培養後、細胞継代に応じて、図７に示すように、可動仕切り１５を適切な位置に移動させ細胞継代領域を確保するものである。可動仕切り１５の移動は、実施例１に示すような、培養容器の外側に設けた磁石により行っても良いし、また、培養容器の側面に穴を設け、この穴を通して可動仕切り１５に支持部材を接続し、この支持部材を移動することにより可動仕切り１５を移動するようにしてもよい。
　この構造によれば、細胞種や播種濃度に応じて自由に初期培養および継代培養（数回でも可）用の培養領域を設けることができ、また、閉鎖系培養容器内の操作を非接触で実現できることによって、細胞継代時に培養容器内に雑菌が混入することを防止することができる。さらに、継代操作時、移動ポンプは必要ないため、ポンプによる移動に伴う細胞のロスや細胞にストレス与えることがない。
　実施例３の細胞継代培養方法は、密閉可能な培養容器内に、培養領域を形成する仕切り部材を備え、前記培養容器の密閉状態で当該仕切り部材を移動させ前記培養領域の面積を変化させる手段を有する細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、前記仕切り部材を初期位置に配置して前記培養領域において細胞を培養するステップと、前記仕切り部材を移動させて前記培養領域の面積を拡大するステップと、前記面積が拡大された培養領域において細胞を培養するステップとから成るものである。
　図８、図９を用いて、本発明の実施例４の細胞培養容器を説明する。実施例４は、共培養構造の細胞培養容器に関するものである。
　ここで、図８および図９の可動仕切り１６、可動仕切り１６に嵌め込む磁石１６Ａ、第二目的細胞１７、第二目的細胞用培地１８以外の部分については実施例１と同様である。
　本実施例の培養容器は、培養容器１の枠内において、図８に示すように、可動仕切り４および可動仕切り１６を用いて、それぞれの初期培養領域で第一目的細胞および第二目的細胞を培養し、継代培養時、図９に示すように、可動仕切り４および可動仕切り１６を開いて共培養を実施することによって、お互いに増殖を促進できる細胞培養を実現できる。
　実施例４の細胞継代培養方法は、密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器内に、第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第一の仕切り部材を備え、当該第一の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有し、更に、第二の培養領域とは重なり合わない第三の培養領域を形成する、前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第三の仕切り部材を備え、当該第三の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有する細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、前記第一の仕切り部材および前記第三の仕切り部材を下降させた状態で、前記第二の培養領域および第三の培養領域において細胞を培養するステップと、前記第一の仕切り部材および前記第三の仕切り部材を上昇させて、前記第二の培養領域および第三の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、前記第一の培養領域および前記第二の培養領域および第三の培養領域において細胞を共培養するステップとから成るものである。
　図１０を用いて本発明の実施例５の自動細胞継代システムを説明する。以下、前記実施例と同じ部品には同符号を付してその説明を省略し、異なる部品のみを説明する。
　ここで、１９は制御処理器、２０はモニターである。２１は混合ガス発生装置、２２はガス用ポンプ、２３は培養細胞懸濁液タンク、２４は培地タンク、２５はトリプシンタンク、２６はＰＢＳタンク、２３Ａ、２４Ａ、２５Ａ、２６Ａはそれぞれ対応するタンクに接続する電磁弁、２７は液体用ポンプである。なお、図１０中の破線は制御処理器１９と各電気制御部品に繋ぐ電気信号線である。その制御フローチャートを図１１に示す。
　まず、目的細胞の初期培養は、図１に示すように、可動仕切り４内の初期培養領域に培地８を培地入口出口９より供給したあと（ＳＴ１）、目的細胞の懸濁液を培養細胞懸濁液タンクから注入する（ＳＴ２）。この時、支持機構５、６中の磁石５Ａ、６Ａは可動仕切り４中の磁石４Ａと同極性（Ｎ極対Ｎ極）が向き合う状態である。駆動機構１２で培養容器全体を揺らして細胞を均一に播種する（ＳＴ３）。さらに、培養容器に細胞培養用に必要とされる混合ガス（５％ＣＯ２、湿度９０％以上の空気）を混合ガス入口１０より供給して（ＳＴ４）、初期培養する（ＳＴ５）。可動仕切り４は、培養容器１の壁面より低いため、混合ガスを初期培養領域に供給することができる。細胞の培養過程を観察機構１３により観察計測する。初期培養面における細胞増殖限界に到達する頃に、初期培養領域の培地を排出させ（ＳＴ６）、ＰＢＳタンク２６からＰＢＳ（生理食塩水）を注入し細胞を洗浄する（ＳＴ７）。続いて初期培養領域にトリプシンタンク２５からトリプシンを注入し、細胞を培養面から剥離させたあと（ＳＴ８）、培地を注入し細胞を培地に浮遊させる（ＳＴ９）。
　次に、図２に示すように、回転機構５Ｂ、６Ｂにより支持機構５、６を１８０°回転させ、支持機構５、６中の磁石５Ａ、６Ａを可動仕切り４中の磁石４Ａと異極性（Ｓ極対Ｎ極）が向き合う状態にする。その結果、磁石の引力により、培養容器外の支持機構５、６により、可動仕切り４を底面基板３から離脱させ培養容器天井基板２までに上昇させる。仕切り４が底面基板３から離脱することにより、底面基板３との間に隙間ができ、初期培養領域中にある細胞懸濁液は初期培養領域より大きな培養面をもつ細胞培養容器１の継代培養領域に拡散する（ＳＴ１０）。さらに、培地入口出口９より、継代培養領域に培養面積に合う培地を注入し、駆動機構１２による揺動で細胞を継代培養領域に均一に分散させる（ＳＴ１１）。細胞が培養面に接着したあと、トリプシンを除去するため、培地を交換して（ＳＴ１２）継代培養を実施する（ＳＴ１３）。継代培養後、上記過程と同様な操作でより多い細胞を含む細胞懸濁液を回収できる（ＳＴ１７）。
　実施例１を用いた、細胞培養の一例を説明する。実施例１と同様構造の初期培養領域面積１００ｃｍ２、継代培養面積１０００ｃｍ２の培養容器を用いた。また、細胞は３Ｔ３細胞（マウスの皮膚に由来する繊維芽細胞培養細胞株）、培地はＤＭＥＭにコウシ血清と抗生物を添加したものを用いた。なお、３Ｔ３細胞の播種密度は２×１０３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２である。
  実施例１の手順で初期培養を３日培養し、培養面から約２×１０６ｃｅｌｌｓ細胞が確認できた。さらに、継代培養では３日培養して培養面から約２×１０７ｃｅｌｌｓ細胞を回収することができた。
　本発明の特徴を損なわない限り、本発明は上記実施例に限定されるものではなく、本発明の技術的思想の範囲内で考えられるその他の形態についても、本発明の範囲内に含まれる。
１‥培養容器
２‥培養容器天井基板
３‥培養容器底面基板
４‥可動仕切り
４Ａ‥磁石
５‥支持機構
５Ａ‥磁石
５Ｂ‥回転機構
６‥支持機構
６Ａ‥磁石
６Ｂ‥回転機構
７‥第一目的細胞
８‥培地
９‥培地入口出口
１０‥混合ガス入口
１１‥混合ガス出口
１２‥駆動機構
１３‥観察機構
１４‥可動仕切り
１４Ａ‥磁石
１５‥可動仕切り
１５Ａ‥磁石
１６‥可動仕切り
１６Ａ‥磁石
１７‥第二目的細胞
１８‥第二目的細胞用培地
１９‥制御処理器
２０‥モニター
２１‥混合ガス発生装置
２２‥ガス用ポンプ
２３‥培養細胞懸濁液タンク
２３Ａ‥電磁弁
２４‥培地タンク
２４Ａ‥電磁弁
２５‥トリプシンタンク
２５Ａ‥電磁弁
２６‥ＰＢＳタンク
２６Ａ‥電磁弁
２７‥液体用ポンプ

Claims (13)

  1. 　細胞培養容器であって、
    　密閉可能な第一の培養領域を形成する培養容器内に、
    　第二の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第一の仕切り部材を備え、
    　当該第一の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有することを特徴とする細胞培養容器。
  2. 　請求項１に記載の細胞培養容器であって、更に、
    　前記第二の培養領域に第三の培養領域を形成する前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第二の仕切り部材を備え、
    　当該第二の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有することを特徴とする細胞培養容器。
  3. 　請求項１に記載の細胞培養容器であって、更に、
    　第二の培養領域とは重なり合わない第三の培養領域を形成する、前記培養容器の壁面よりも低く形成された壁面を有する第三の仕切り部材を備え、
    　当該第三の仕切り部材を前記培養容器の密閉状態で上昇、下降させる手段を有することを特徴とする細胞培養容器。
  4. 　請求項１乃至請求項３のいずれか一つに記載の細胞培養容器において、
    　前記仕切り部材を上昇、降下させる手段として磁石を用いたことを特徴とする細胞培養容器。
  5. 　請求項１乃至請求項３のいずれか一つに記載の細胞培養容器において、
    　前記仕切り部材を上昇、降下させる手段として前記仕切り部材に接続した支持部材を用いたことを特徴とする細胞培養容器。
  6. 　細胞培養容器であって、
    　密閉可能な培養容器内に、
    　培養領域を形成する第四の仕切り部材を備え、前記培養容器の密閉状態で当該第四の仕切り部材を移動させ前記培養領域の面積を変化させる手段を有することを特徴とする細胞培養容器。
  7. 　請求項６に記載の細胞培養容器において、
    　前記仕切り部材を移動させ培養領域の面積を変化させる手段として磁石を用いたことを特徴とする細胞培養容器。
  8. 　請求項６に記載の細胞培養容器において、
    　前記仕切り部材を移動させ培養領域の面積を変化させる手段として前記仕切り部材に接続した支持部材を用いたことを特徴とする細胞培養容器。
  9. 　請求項１乃至請求項８のいずれか一つに記載の細胞培養容器と、
    　該培養容器に培地を供給する培地供給機構と、
    　該培養容器に混合ガスを供給する混合ガス供給機構と
    　該培養容器の培養面を観察する細胞観察機構と、を有することを特徴とする自動継代培養装置。
  10. 　請求項１に記載の細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、
    　前記第一の仕切り部材を下降させた状態で、前記第二の培養領域において細胞を培養するステップと、
    　前記第一の仕切り部材を上昇させて、前記第二の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、
    　前記第一の培養領域および前記第二の培養領域において細胞を培養するステップとから成る細胞継代培養方法。
  11. 　請求項２に記載の細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、
    　前記第二の仕切り部材を下降させた状態で、前記第三の培養領域において細胞を培養するステップと、
    　前記第一の仕切り部材を下降させた状態で前記第二の仕切り部材を上昇させて、前記第三の培養領域で培養した細胞を、前記第二の培養領域に分散させるステップと、
    　前記第一の仕切り部材を下降させた状態で、前記第三の培養領域および前記第二の培養領域において細胞を培養するステップと、
    　前記第一の仕切り部材を上昇させて、前記第三の培養領域および前記第二の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、
    　前記第一の培養領域および前記第二の培養領域および前記第三の培養領域において細胞を培養するステップとから成る細胞継代培養方法。
  12. 　請求項３に記載の細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、
    　前記第一の仕切り部材および前記第三の仕切り部材を下降させた状態で、前記第二の培養領域および第三の培養領域において細胞を培養するステップと、
    　前記第一の仕切り部材および前記第三の仕切り部材を上昇させて、前記第二の培養領域および第三の培養領域で培養した細胞を、前記第一の培養領域に分散させるステップと、
    　前記第一の培養領域および前記第二の培養領域および第三の培養領域において細胞を共培養するステップとから成る細胞継代培養方法。
  13. 　請求項６に記載の細胞培養容器を用いた細胞継代培養方法であって、
    　前記第四の仕切り部材を初期位置に配置して前記培養領域において細胞を培養するステップと、
    　前記第四の仕切り部材を移動させて前記培養領域の面積を拡大するステップと、
    　前記面積が拡大された培養領域において細胞を培養するステップとから成る細胞継代培養方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016121292A1 (ja) * 2015-01-30 2016-08-04 東洋製罐グループホールディングス株式会社 細胞培養方法、及び細胞培養装置

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016145290A1 (en) 2015-03-12 2016-09-15 The Trustees Of The University Of Pennsylvania System, method, and device for high-throughput, automated culturing of genetically modified organisms
US20200024561A1 (en) * 2017-03-30 2020-01-23 Agency For Science, Technology And Research Device for cell culture and method for culturing cells
KR102019365B1 (ko) * 2017-12-29 2019-09-09 한국과학기술연구원 세포군 이동 실험 장치 및 방법

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000125848A (ja) * 1998-10-19 2000-05-09 Agriculture Forestry & Fisheries Technical Information Society 細胞培養用具及び前記細胞培養用具を用いる簡易細胞培養方法
JP2001275659A (ja) 2000-03-31 2001-10-09 Masahito Taya 細胞培養方法、細胞培養装置及び記録媒体
JP2004089136A (ja) * 2002-09-03 2004-03-25 Olympus Corp 培養容器
JP2006006219A (ja) 2004-06-25 2006-01-12 Sanyo Electric Co Ltd 培養容器、自動継代培養装置及び継代培養方法
WO2008136371A1 (ja) * 2007-04-27 2008-11-13 Toyo Seikan Kaisha, Ltd. 細胞培養装置、細胞培養システム及び細胞培養方法
WO2009123173A1 (ja) * 2008-04-01 2009-10-08 東洋製罐株式会社 培養容器、培養方法、及び培養装置

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6001643A (en) * 1997-08-04 1999-12-14 C-Med Inc. Controlled hydrodynamic cell culture environment for three dimensional tissue growth
AU2073801A (en) * 1999-12-09 2001-06-18 Cellomics, Inc. A system for cell-based screening
JP2004097047A (ja) * 2002-09-06 2004-04-02 Olympus Corp 培養装置および培養方法
JP2008048644A (ja) * 2006-08-23 2008-03-06 Nikon Corp 培養器具及び培養装置
WO2009093585A1 (ja) * 2008-01-21 2009-07-30 Nikon Corporation 培養装置
US8058057B2 (en) * 2008-05-30 2011-11-15 Corning Incorporated Cell culture apparatus and method
JP2010158185A (ja) * 2009-01-07 2010-07-22 Nikon Corp 培養観察装置
EP2550357B1 (en) * 2010-05-12 2016-09-14 Xpand Biotechnology BV Cell-culture-bag
US8491497B2 (en) * 2010-05-13 2013-07-23 Ethicon Endo-Surgery, Inc. Method and apparatus for morcellating tissue

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000125848A (ja) * 1998-10-19 2000-05-09 Agriculture Forestry & Fisheries Technical Information Society 細胞培養用具及び前記細胞培養用具を用いる簡易細胞培養方法
JP2001275659A (ja) 2000-03-31 2001-10-09 Masahito Taya 細胞培養方法、細胞培養装置及び記録媒体
JP2004089136A (ja) * 2002-09-03 2004-03-25 Olympus Corp 培養容器
JP2006006219A (ja) 2004-06-25 2006-01-12 Sanyo Electric Co Ltd 培養容器、自動継代培養装置及び継代培養方法
WO2008136371A1 (ja) * 2007-04-27 2008-11-13 Toyo Seikan Kaisha, Ltd. 細胞培養装置、細胞培養システム及び細胞培養方法
WO2009123173A1 (ja) * 2008-04-01 2009-10-08 東洋製罐株式会社 培養容器、培養方法、及び培養装置

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP2792738A4

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016121292A1 (ja) * 2015-01-30 2016-08-04 東洋製罐グループホールディングス株式会社 細胞培養方法、及び細胞培養装置
US10731122B2 (en) 2015-01-30 2020-08-04 Toyo Seikan Group Holdings, Ltd. Cell culture method and cell culture apparatus
US11390842B2 (en) 2015-01-30 2022-07-19 Toyo Seikan Group Holdings, Ltd. Cell culture method and cell culture apparatus

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