WO2013002561A2 - 키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법 - Google Patents

키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법 Download PDF

Info

Publication number
WO2013002561A2
WO2013002561A2 PCT/KR2012/005099 KR2012005099W WO2013002561A2 WO 2013002561 A2 WO2013002561 A2 WO 2013002561A2 KR 2012005099 W KR2012005099 W KR 2012005099W WO 2013002561 A2 WO2013002561 A2 WO 2013002561A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
strain
tyrosinase
kitasatospora
dihydroxyindole
hair
Prior art date
Application number
PCT/KR2012/005099
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2013002561A3 (ko
Inventor
이동걸
강희철
한상근
이찬우
Original Assignee
지에프씨(주)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 지에프씨(주) filed Critical 지에프씨(주)
Priority to EP12804322.1A priority Critical patent/EP2727995A4/en
Publication of WO2013002561A2 publication Critical patent/WO2013002561A2/ko
Publication of WO2013002561A3 publication Critical patent/WO2013002561A3/ko

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/10Nitrogen as only ring hetero atom
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y114/00Oxidoreductases acting on paired donors, with incorporation or reduction of molecular oxygen (1.14)
    • C12Y114/18Oxidoreductases acting on paired donors, with incorporation or reduction of molecular oxygen (1.14) with another compound as one donor, and incorporation of one atom of oxygen (1.14.18)
    • C12Y114/18001Tyrosinase (1.14.18.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Definitions

  • the present invention relates to a DG09 strain of the genus Kitasatospora, tyrosinase produced therefrom, and a method for producing 5,6-dihydroxyindole using the same. More specifically, the present invention relates to a genus DG09 strain isolated from soil, tyrosinase produced by the strain, and a method for producing 5,6-dihydroxyindole using the same.
  • the third section of hair that we can see is the hair shaft, which consists of the cuticle, the cortex, and the medulla.
  • the cortex covering the medulla is the thickest part of the hair (80-90%) and contains granules (particulates), a natural pigment called melanin.
  • the melanin pigment is synthesized in melanosomes, which are organelles in melanocytes, and migrates to the surrounding keratinocytes through the dendritic cavity of melanocytes. Tyrosinase is involved in oxidizing tyrosine in the synthesis route of melanin to dopa, and oxidizing it again to form dopaquinone, and the subsequent reaction is automatically oxidatively.
  • the starting material for making melanin is the amino acid normally present in the human body It is a kind of tyrosine. Tyrosine is oxidized by tyrosinase in melanocytes to turn into dopa (3,4-dihydroxyphenylalanine, abbreviated as "DOPA"), and DOPA is further oxidized to DOPA quinone. .
  • DOPA dopa
  • DOPA quinones then undergo an automatic oxidation reaction through 5,6-dihydroxyindole to form indole-5,6-quinone, which finally produces a dark brown melanin.
  • the brightness of the hair is determined by factors such as the degree and the unique hair color is revealed for each person. In other words, it can be determined that various hair colors such as black, red, and blonde are determined according to the type of melanin and the size of granules.
  • the color of the hair is the most common and darkest pigment, the two most melanin-colored granules in the cortex, the hair's cortex, which are brown and black hair.
  • Pheomelanin is a lighter shade of yellow blond and red.
  • the color of the red hair is represented by the red and black pigments, and the blond hair is the result of a mixture of red and yellow pigments.
  • Sandy brown hair is pigmented by a mixture of red, brown, and black pigments, while dark brown hair contains more black pigments than sandy brown hair.
  • gray hair is a hair color that can not represent a color without pigment grains.
  • Melanin is a complex complex of naturally produced proteins under the control of specific enzymes found in pigment-producing cells.
  • the different colors of the melanin pigment are believed to represent different stages of the melanin development process.
  • Another enzyme turns the red pigment into a black pigment.
  • Melanin is a protein that does not dissolve in water, giving color to the hair.
  • Tyrosine an amino acid produced from nipples, is an indulgence type (long diameter 0.8-1.8 ⁇ m, short diameter 0.3-0.4 ⁇ m) as a precursor of melanin.
  • White hair stops its action on DOPA quinones, so hair is keratinized and rises above the keratin, making it impossible to produce Tyrosinase enzymes as gray hair, or swordfish.
  • White hair is particularly evident in races with dark brown hair and is a type of aging that occurs because melanin production stops in melanocytes.
  • Dopaquinone proceeds in two ways. There is a path through which dopa chromium is formed to produce dark brown eumelanin and dopaquinone is combined with cysteine present in keratin protein and then reddish brown peomelanin.
  • the oxidative dyeing of the hair is an example of the polymerization (bonding) reaction in the hair.
  • aromatic amines and phenolmonomers are oxidatively polymerized and bind to amino acid residues in the hair.
  • Eumelanin is relatively large in size and can be easily destroyed chemically, whereas femelanin is relatively small in size and has a chemically stable structure.
  • the high cysteine-containing hair contains a lot of pheomelanin, and when the brown hair is bleached with H 2 O 2 , the color becomes slightly red because the eumelanin is first destroyed and the pheomelanin remains.
  • the present inventors produced a raw material to be used for hair dye using a recombinant strain using a material called 5,6-dihydroxyindole, which is a melanin precursor material, in order to improve that the existing hair dye is not irritating and efficient to the skin.
  • 5,6-dihydroxyindole which is a melanin precursor material
  • An object of the present invention is to provide a novel tyrosinase (tyrosinase) produced from Kita Sato spokes la in DG09 (Kitasatospora sp. DG09) strain and the strain.
  • tyrosinase tyrosinase
  • Another object of the present invention is to provide a method for producing 5,6-dihydroxyindole using the strain and tyrosinase produced from the strain.
  • the present invention provides a kitasatospora sp. DG09 JF917133 strain that produces tyrosinase, deposited under accession number KCCM11178P.
  • the present invention provides a tyrosinase produced from the above-mentioned chitosatospora DG09 strain.
  • the tyrosinase may have an amino acid sequence of SEQ ID NO: 2.
  • the tyrosinase may have a nucleic acid sequence of SEQ ID NO: 3.
  • the present invention provides a gene encoding the tyrosinase.
  • the present invention provides a recombinant vector comprising the gene, and a transformant into which the recombinant vector is introduced.
  • the present invention comprises the steps of culturing the kitasatospora sp. DG09 strain or the transformant of the genus Kitasatospora; And
  • It provides a method for producing 5,6-dihydroxyindole comprising recovering 5,6-dihydroxyindole from the obtained culture.
  • the present invention provides a novel strain Kitasatospora that produces tyrosinase.
  • the present invention also provides a method for producing 5,6-dihydroxyindole using the strain and tyrosinase produced from the strain.
  • FIG. 1 shows a recombinant vector comprising a gene encoding tyrosinase according to one embodiment of the present invention.
  • the present invention provides a kitasatospora sp.DG09 JF917133 strain, which produces tyrosinase.
  • the inventors have isolated a strain having a high yield of tyrosinase production from tyrosine with a high melanin production ability.
  • the inventors used a dilution solution obtained from soil in LDG medium containing tyrosine (Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, As a result of culturing in L-tyrosinase 2g / L) medium, the strains with the highest melanin production were selected. Then, the base sequence (JF917133) of the 16S rRNA of the selected strain was determined and searched through the Genebank database, and it was confirmed that it had 99% homology with the strain of the genus Kitasatospora. .
  • the strain was identified as belonging to the genus Kitasatospora and named 'Gitasatospora genus DG09', and received the JF917133 number from the genbank.
  • the selected strains were deposited with the Korea Microorganism Conservation Center (KCCM), an international microbial deposit institution, and received the accession number KCCM11178P as of March 2, 2011.
  • KCCM Korea Microorganism Conservation Center
  • the DG09 strain of the genus Kitasaspora is a Bacteria family, Actinobacteria phylum, Actinobacteria class, Actinomycetales order, Streptomycetaceae family, Kitasatospora genus, Kitasatospora paranensis species. Can be classified.
  • Kitasosa spp. DG09 strain has the culture characteristics as shown in Table 1 below
  • ISP2 media ISP3 media ISP4 media ISP5 media Growth moderate abundant moderate moderate Mycelium (aerial mycelium) white gray gray gray gray Reverse color yellowish brown brown brown brown
  • the DG09 strain of the genus Chitasaspora does not produce soluble pigments, but can produce melanoid pigments in peptone / yeast extract / iron and tyrosine agar.
  • the DG09 strain of the genus Kitasaspora rarely produces submerged spores in liquid culture.
  • the DG09 strain of the genus Kitasaspora has a growth temperature range of 10 ° C.-37 ° C. and an optimal growth temperature range of 25 ° C.-28 ° C.
  • the DG09 strain of the genus Kitasosa spp. Does not grow at 6 ° C or 40 ° C.
  • the DG09 strain of the genus Kitasosa spp has a pH range of pH 5.0-9.0 for good growth and does not grow at pH 4.0 or pH 9.5.
  • the DG09 strain of the genus Kitasaspora is aerobic, gram positive and non-acid-fast actinomycete during the culture process.
  • the DG09 strain of the genus Kitasaspora produces yellowish brown to dark brown mycelium and gray aerial spore mass and produces an acidic substance in glycerol asparagine, mineral salt / starch, oatmeal and yeast extract / malt extract agar. I never do that.
  • the strain of the present invention has a high yield of tyrosinase, and the culture conditions thereof are LDG medium (Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L) was found to grow well.
  • LDG medium Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L
  • the medium is LDG medium (Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L) and 25 It can grow well at °C.
  • LDG medium Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L
  • the present invention provides the gene of tyrosinase, and encoding the generated from the north Sato spokes la in DG09 (Kitasatospora sp. JF917133 DG09) strains.
  • the present inventors generated tyrosinase from the above- mentioned Kitasatospora sp.DG09 JF917133 strain, and used a shotgun cloning technique for cloning the resulting tyrosinase.
  • the base sequence identified through the shotgun cloning technique was amplified by PCR and the base sequence of tyrosinase was determined.
  • the tyrosinase may have an amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 2.
  • the tyrosinase may have a nucleotide sequence set forth in SEQ ID NO: 3.
  • Tyrosinase of the present invention was found to be a new tyrosinase as a result of a Genebank database search. This base sequence contains a base sequence different from the known Tyrosinase (NC_003279.6), and has a different activity due to the base sequence obtained from another base sequence and a different time. The final melanin color produced also showed a different difference.
  • the tyrosinase may exhibit activity at a temperature of 20 ° C. to 35 ° C., and may exhibit maximum activity at 25 ° C.
  • the present invention provides a recombinant vector comprising the gene encoding the tyrosinase, and a transformant into which the recombinant vector is introduced.
  • Chitasaspora genus DG09 strain and tyrosinase of the present invention is a novel sequence with different sequence and biochemical properties, and revealed the nucleotide sequence of a gene encoding tyrosinase isolated from the strain, a conventional method known in the art By using the recombinant vector containing the gene and the transformed vector can be prepared.
  • the present invention provides a method for saengsang the 5,6-dihydroxy-indole using the Kita SARS Fora in DG09 (Kitasatospora sp. JF917133 DG09) strain or the transformant. Specifically, the method
  • It may include a method for producing 5,6-dihydroxyindole comprising the step (step 2) recovering 5,6-dihydroxyindole from the obtained culture.
  • the strains and transformants can be prepared according to the method described above.
  • the medium is not particularly limited as long as it contains tyrosine, but LDG medium (Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L) can be used. Can be.
  • the conditions for culturing the strain or transformant in the medium are not particularly limited, but may be cultured at about 25 ° C.-37 ° C. for about 2 days.
  • step 2 5,6-dihydroxyindole is recovered from the obtained culture. 5,6-dihydroxyindole can be recovered by centrifugation.
  • Soil was collected, shaken in sterile distilled water, and the supernatant of the sample solution was taken and diluted. The obtained dilution was carried out in a medium containing tyrosine (LDG medium (Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl) 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-tyrosinase 2g / L )). Then, microorganisms in single colonies that were incubated at (2 days at 25 ° C.-37 ° C.) to form black colonies by oxidizing tyrosine Kitasatospora sp. DG09 JF917133 was isolated.
  • LDGG medium Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl
  • LDG medium Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-DOPA 3g / L
  • LDG medium Glucose 1g / L, NaCl 5g / L, 0.1 CaCl 2, 10g Tryptone 10g / L, Casein 5g / L, L-DOPA 3g / L
  • the absorbance was measured at 530 nm to determine the degree of formation of black colonies, i.e., melanin, and microbial strains having the highest melanin production rate were selected.
  • the base sequence of 16S rDNA was examined.
  • the genomic DNA of the strain was isolated and amplified by PCR. PCR reaction was carried out 50 ⁇ l reaction with the following composition.
  • Primers were synthesized for amplification of polynucleotides corresponding to 16S rDNA sites of prokaryotic bacteria.
  • the PCR reaction was performed for 5 minutes at 95 ° C, followed by 30 seconds of denaturation at 95 ° C, 45 seconds of annealing at 52 ° C, and 45 seconds of extension at 72 ° C, and finally extended to 8 minutes at 72 ° C. And maintained at 4 ° C.
  • the nucleotide sequence of the obtained amplified fragment was determined to obtain the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 (JF917133).
  • Genebank database search showed homology of 98% with the genus Kitasatospora strain.
  • the isolate was identified as belonging to Kitasatospora sp. DG09 '. Said Kitasatospora sp. On March 2, 2011, the DG09 strain was deposited with the Korea Microorganism Conservation Center (Accession No .; KCCM 11178P).
  • Tyrosinase produced from the strain was purified as follows and the amino acid sequence and nucleotide sequence were identified.
  • strain was analyzed as follows.
  • the amino acid sequence of the isolated tyrosinase was analyzed by the NCBI blast program.
  • the tyrosinase identified from this was confirmed to have an amino acid sequence of JF917133.
  • the sequence of the isolated tyrosinase was analyzed by the NCBI blast program.
  • the tyrosinase identified from this was confirmed to have the nucleotide sequence of JF917133.
  • the nucleic acid extracted from the DG09 strain was recombined with E. coli.
  • the recombinant vector is not particularly limited, but has been introduced into the pET-28a vector.
  • pUC19 vector required for recombination (invitrogen USA) and the isolated Kitasatospora sp.
  • the nucleic acid extracted from DG09 was treated with restriction enzymes ECOR1 and BamH1 at 37 ° C for 2 hours. Restriction enzyme-treated nucleic acid (about 10Kb) and pUC19 vector (about 2.6Kb) was confirmed the size through electrophoresis, and purified using a nucleic acid purification kit. Purified nucleic acids were recombined at 19 ° C. for 12 hours using T4 ligase. The recombinant nucleic acid and the vector was reconfirmed in size by electrophoresis, and the size was found to be about 12Kb.
  • the recombinant pUC19 vector confirmed by electrophoresis was transformed into E. coli DH5a by heat shock method.
  • the transformed E. coli was incubated for about 12 hours in LB medium. After incubation for 12 hours, colonies that formed colonies in white through selective strain selection were cultured separately in LB medium, and cells were recovered by centrifugation from the culture. Plasmid separation was performed from the cells.
  • the separated plasmids were digested using restriction enzymes EcoR1 and BamH1, and the digested nucleic acids were separated and purified by nucleic acid having a size of about 2 kb by electrophoresis. The purified nucleic acid was recombined again to the PET28a vector in the same manner as above.
  • FIG. 1 An example of the prepared recombinant vector is shown in FIG. 1.
  • the recombinant PET28a vector was inserted into BL21 (DE3) Escherichia coli, transformed, and cultured in LB medium for 12 hours at 28 ° C. At this time, induction with IPTG 1mM was induced to express the protein of the gene.
  • Kitasatospora sp The culture medium produced from the DG09 strain was reacted with L-DOPA for about 1 hour. At this time, the reaction was carried out in a sealed container with oxygen to prevent natural oxidation by reacting with carbon dioxide and oxygen. After the reaction, the reaction product was concentrated to remove water and other by-products, and the concentrated product was corrected using an amine-based solution as an antioxidant and NaOH to increase pH.
  • SEQ ID NO: 3 nucleic acid sequence of tyrosinase
  • SEQ ID NO 4 Forward primer sequence

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

본 발명은 키타사토스포라 속 DG09 균주, 이로부터 생산되는 티로시나제, 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법에 관한 것이다. 보다 구체적으로, 본 발명은 토양에서 분리한 키타사토스포라 속 DG09 균주, 상기 균주가 생산하는 티로시나제, 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법에 관한 것이다.

Description

키타사토스포라 속 DG09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법
본 발명은 키타사토스포라 속 DG09 균주, 이로부터 생산된 티로시나제, 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법에 관한 것이다. 보다 구체적으로, 본 발명은 토양에서 분리한 키타사토스포라 속 DG09 균주, 상기 균주가 생산하는 티로시나제, 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법에 관한 것이다.
모발 중 우리가 눈으로 볼 수 있는 제3의 영역인 모간(hair shaft)은 모표피(cuticle), 모피질(cortex), 모수질(medulla)로 구성되어 있다. 모수질을 감싸고 있는 모피질은 모발에서 가장 두터운 부분(80∼90%)으로서 melanin이라는 자연색소 물질인 과립(미립자)을 포함하고 있다. melanin 색소는 멜라노사이트(melanocyte) 내의 소기관인 멜라노좀(melanosome)에서 합성되며, 멜라노사이트의 수지강 돌기를 통하여 주위의 케라티노사이트(keratinoside)로 이행한다. 멜라닌의 합성 경로에서 티로신(tyrosine)을 산화하여 도파(DOPA)로, 다시 산화하여 도파퀴논(DOPA-quinone)이 생성되는 단계에서 티노시나제(tyrosinase)가 관여하며 그 후의 반응은 자동 산화적으로 진행되지만, 효소의 존재로서 보다 가속화되는 것도 알려져 있다. 한편, 사람의 인체나 모발에서는 자연적으로 발생하는 활성 산소나 유리기 (free radical) 등을 소거하기 위하여 또는 자외선의 투과를 막기 위해 멜라닌을 생성하는데, 멜라닌을 만드는 출발물질은 인체에 정상적으로 존재하는 아미노산의 일종인 티로신(tyrosine)이다. 티로신은 멜라닌세포 (melanocyte) 내에서 티로시나아제 (tyrosinase)에 의해 산화되어 도파 (3,4-dihydroxyphenylalanine, 이하 "DOPA"로 약칭함)로 변하고, DOPA는 더욱 산화되어 DOPA 퀴논 (quinone)으로 바뀐다. 그 후 DOPA 퀴논은 자동 산화반응이 일어나 5,6-디히드록시인돌 (5,6-dihydroxyindole)을 거치면서 인돌-5,6-퀴논이 형성되고 최종적으로 흑갈색의 멜라닌을 만들어 낸다. 인체 내에는 단백질로 구성된 다양한 자연화학 물질들이 있다. 각 화학물질인 아미노산은 각각의 역할을 하나 이중 특히 색상에 관계되는 아미노산인 tyrosine을 원료로 하여 형성되는 흑멜라닌, 적멜라닌, 혼합멜라닌등은 과립(granule)을 형성 멜라닌의 유형과 분포양에 따른 정도 등의 요인에 의해 모발의 밝기를 결정시켜 사람마다 독특한 모발색을 드러낸다. 다시 말해 멜라닌의 유형과 과립의 크기에 따른 흑색, 적색, 금발 등의 다양한 모발색상을 결정한다고 볼 수 있다. 모발의 색은 모발의 가운데층인 모피질(cortex)에 있는 두 종류의 멜라닌(melanin) 색조 알갱이인 유멜라닌(Eumelanin) 혹은 티로신(Tyrosine)은 가장 흔하고 제일 진한 색소로서 갈색과 검정 머리의 색을 만든다. 페오멜라닌(pheomelanin)은 보다 옅은 색의 색조로서 금발머리(yellow blond), 그리고 붉은 색조를 띄게 한다. 붉은 머리의 색상은 붉은 색소와 검정 색소에 의해 나타나며, 금발머리는 붉은 색소와 노랑색소의 혼합인 결과색이다. 모래빛 갈색머리는 붉은 색, 갈색, 검정색 색소의 혼합에 의해 색소가 나타나며 짙은 갈색머리는 모래빛 갈색머리보다 검정색 색소가 더 많이 들어있다. 그리고 흰머리에는 색소 알갱이가 없는 색을 나타낼 수 없는 머리색이다. 멜라닌(melanin)은 색소를 생성하는 세포에서 발견되는 특정한 효소의 조절을 받으면서 자연적으로 생성되는 단백질(protein)을 상당히 복잡하게 변형시켜 신체를 구성한다. 멜라닌(melanin) 색소의 여러 가지 다른 색들은 멜라닌 발달과정의 여러 단계를 나타내는 것이라 여겨진다. 우선 노란 색소가 형성되고 그 다음에 어떤 효소가 노란 색소를 붉은 색소로 변화시킨다. 다른 효소가 그 붉은 색소를 검정 색소로 변화시키게 된다. 모든 사람들이 멜라닌(melanin)을 이렇게 전체적인 색분광에 따라 바꿀 수 있는 능력을 갖춘 것은 아니다. 어떤 사람들은 검정 색소만을 만들어낸다. 이들은 검정색소를 얼마나 생성해 내는가에 따라 짙은 갈색이 포함된 검정머리를 지니게 된다. 또 다른 사람들은 오르지 붉은 색소나 노랑색소만을 생성할 수 있기 때문에 금발머리나 붉은 머리를 가졌다. 이러한 색소를 생성해내는 능력은 현존하는 색소에 의해 결정이 되며 또한 그 사람의 유전 정보 인자에 의해 나타난다.
멜라닌은 물에 용해되지 않는 단백질로서 두발에 색상을 부여한다. 모유두에서 생성된 아미노산인 티로신은 멜라닌의 전조제로서 방종형(장경 0.8∼1.8㎛, 단경 0.3∼0.4㎛)이다. 백모는 DOPA quinone에서 그 작용을 멈추므로 모발이 케라틴화 되어 각화 위로 올라가면서 gray hair 즉 새치로서 Tyrosinase 효소를 만들지 못하기 때문에 산화작용이 이루어지지 못한 상태이다. 백모는 특히 흑갈색계의 모발을 갖는 인종에서 더욱 명료하게 나타나며, 멜라노사이트에서 멜라닌 생성이 멈추기 때문에 일어나는 현상으로 일종의 노화현상이다.
도파퀴논은 두 가지 경로로 반응이 진행된다. 도파크롬(DOPA chrome)을 거쳐 흑갈색의 유멜라닌(eumelanin)을 생성하는 경로와 도파퀴논이 케라틴 단백질에 존재하는 시스테인(cysteine)과 결합한 후 적갈색의 페오멜라닌(pheomelanin)을 생성하는 경로가 있다. 이와 같이 모발의 산화 염색반응은 모발에서의 중합(결합)반응의 한 예이다. 이 반응에서는 방향족 아민과 페놀모노머(phenolmonoer)가 산화 중합하고, 또한 모발중의 아미노산 잔기와 결합한다. 유멜라닌은 비교적 크기가 크고 화학적으로 쉽게 파괴될 수 있는데 반하여 페오멜라닌은 비교적 크기가 작고 화학적으로 안정된 구조를 하고 있다. 시스테인 함량이 많은 모발에는 페오멜라닌이 많이 존재하며, 흑갈색의 모발을 H2O2로 탈색시켰을 때 색상이 약간 붉게 보이는 것은 바로 유멜라닌이 먼저 파괴되고 페오멜라닌이 남아 있기 때문이다.
본 발명자들은 기존의 염모제가 피부에 자극적이고 효율적인 염색이 되지 않는다는 것을 개선하기 위해 멜라닌 전구체 물질인 5,6-디하이드록시인돌 이라는 물질을 이용하여 염모제에 사용될 원료를 재조합 균주를 이용하여 생산하였다. 실제 지원자 모발을 대상으로 평가를 실시한 결과 염색에 상당히 효과가 있음을 확인하였으며 본 발명의 재조합 플라스미드 벡터로 형질전환 된 대장균 및 이를 이용한 5,6-디하이드록시인돌 생산방법을 확립함으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09) 균주 및 상기 균주로부터 생산된 신규한 티로시나아제(tyrosinase)를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 상기 균주 및 상기 균주로부터 생산된 티로시나제를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명은 기탁번호 KCCM11178P로 수탁된 티로시나제를 생산하는 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09 JF917133) 균주를 제공한다.
본 발명은 상기 키타사토스포라 속 DG09 균주로부터 생산된 티로시나제를 제공한다.
일 구체예에서, 상기 티로시나제는 서열번호 2의 아미노산 서열을 가질 수 있다.
일 구체예에서, 상기 티로시나제는 서열번호 3의 핵산 서열을 가질 수 있다.
본 발명은 상기 티로시나제를 코딩하는 유전자를 제공한다.
본 발명은 상기 유전자를 포함하는 재조합 벡터, 및 상기 재조합 벡터가 도입된 형질전환체를 제공한다.
본 발명은 상기 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09) 균주 또는 상기 형질전환체를 배양하는 단계; 및
얻은 배양액으로부터 5,6-디히드록시인돌을 회수하는 단계를 포함하는 5,6-디히드록시인돌을 제조하는 방법을 제공한다.
본 발명은 티로시나제를 생산하는 신규한 균주 키타사토스포라를 제공하였다. 또한, 본 발명은 상기 균주 및 상기 균주로부터 생산된 티로시나제를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법을 제공하였다.
도 1은 본 발명의 일 구체예에 따라 티로시나제를 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터를 나타낸 것이다.
본 발명은 티로시나제를 생산하는 키타사스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09 JF917133) 균주를 제공한다.
본 발명자는 티로신으로부터 멜라닌 생성 능력이 현저하게 높아 티로시나제 생산 수율이 높은 균주를 분리하였고, 균주의 생리학적 특성을 조사하여 본 발명의 균주를 동장하였다.
본 발명자들은 상기 조건을 만족시키는 균주를 탐색하기 위하여 토양으로부터 얻은 희석액을 티로신이 함유된 LDG 배지(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-tyrosinase 2g/L) 배지에서 배양한 결과, 멜라닌 생성능이 가장 뛰어난 균주를 선별하였다. 그런 다음, 상기 선별한 균주의 16S rRNA의 염기 서열(JF917133)을 결정하고 유전자원 은행 데이터베이스(Genebank database)를 통해 검색한 결과, 키타사토스포라 속 균주와 99%의 상동성을 가지는 것을 확인하였다. 이에, 상기 균주는 키타사토스포라 속인 것으로 동정하였으며 '키타사토스포라 속 DG09'으로 명명하였고, genbank 로부터 JF917133 번호를 부여받았다. 또한, 선별한 균주를 국제미생물기탁기관인 한국미생물보존센터(KCCM)에 기탁하였으며, 2011년 3월 2일자로 기탁번호 KCCM11178P를 받았다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 Bacteria 계(kingdom), Actinobacteria 문(phylum), Actinobacteria 강(class), Actinomycetales order(목), Streptomycetaceae 과(family), Kitasatospora 속(genus), Kitasatospora paranensis 종(species)로 분류될 수 있다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 하기 표 1에서와 같은 배양 특성을 갖는다
표 1
ISP2 media ISP3 media ISP4 media ISP5 media
성장 정도(growth) moderate abundant moderate moderate
균사체(aerial mycelium) white gray gray gray
최종 성장하였을 때의 색상(reverse colour) yellowish brown brown brown brown
키타사스포라 속 DG09 균주는 가용성 색소(soluble pigment)를 생성하지 않지만, 그러나 펩톤/이스트 추출물/철 및 티로신 아가에서 멜라노이드(melanoid) 색소는 생성할 수 있다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 액상 배양액에서 submerged spore를 거의 생성하지 않는다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 성장 온도 범위가 10℃-37℃이고, 최적 성장 온도 범위는 25℃-28℃이다. 키타사스포라 속 DG09 균주는 6℃ 또는 40℃에서는 성장하지 않는다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 양호한 성장을 위한 pH 범위가 pH 5.0-9.0이고, pH 4.0 또는 pH 9.5에서는 성장하지 않는다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 호기성, 그람 양성이고, 배양 과정에서 산성 물질을 생성하지 않는(non-acid-fast) actinomycete이다.
키타사스포라 속 DG09 균주는 글리세롤아스파라긴, 무기염/스타치, 오트밀 및 효모 추출물/말트(malt) 추출물 아가에서 yellowish brown 내지 dark brown의 균사체와 회색의 aerial spore mass를 생성하고 산성을 띄는 물질을 생성하지 않는다.
이러한 본 발명의 균주는 하기 실시예로부터 알 수 있는 바와 같이, 티로시나제의 생산 수율이 높고, 그 배양 조건은 LDG 배지(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-tyrosinase 2g/L)에서 잘 자라는 것으로 확인되었다.
본 발명의 균주 배양의 일 례로서, 상기 배지는 LDG 배지(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-tyrosinase 2g/L) 및 25℃에서 잘 자랄 수 있다.
본 발명은 상기 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09 JF917133) 균주로부터 생성된 티로시나제, 및 이를 코딩하는 유전자를 제공한다.
본 발명자는 상기 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09 JF917133) 균주로부터 티로시나제를 생성하고, 생성된 티로시나제의 클로닝을 위해 숏건 클로닝(shotgun cloning) 기법을 활용하였다. 숏건 클로닝 기법을 통하여 확인된 염기서열을 PCR로 증폭하고 티로시나제의 염기 서열을 결정하였다.
상기 티로시나제는 서열번호 2로 기재된 아미노산 서열을 가질 수 있다. 상기 티로시나제는 서열번호 3으로 기재된 염기 서열을 가질 수 있다. 본 발명의 티로시나제는 유전자원 은행 데이타베이스(Genebank database) 검색 결과, 새로운 티로시나제로 판명되었다. 이 염기서열은 기존에 알려진 Tyrosinase(NC_003279.6) 와 다른 염기서열을 포함하고 있으며, 기존의 염기서열과 다른 숙주로부터 획득된 염기서열 이라 다른 활성을 나타내고 있다 차이점으로는 멜라닌이 생성되는 시간이 차이가 나며, 생성된 최종 멜라닌 색깔 역시 다른 차이를 나타내었다.
상기 티로시나제는 20℃∼35℃ 온도에서 활성을 나타내며, 25℃에서 최대 활성을 나타낼 수 있다.
본 발명은 상기 티로시나제를 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 벡터, 및 상기 재조합 벡터가 도입된 형질전환체를 제공한다.
본 발명의 키타사스포라 속 DG09 균주 및 티로시나제는 서열 및 생화학적 특성이 차이가 있는 신규한 것으로서, 상기 균주로부터 분리한 티로시나제를 코딩하는 유전자의 염기 서열을 밝혔으므로, 당업계에 공지된 통상의 방법을 이용하여 상기 유전자를 포함하는 재조합 벡터 및 재조합 벡터가 도입된 형질전환체를 제작할 수 있다.
본 발명은 상기 키타사스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09 JF917133) 균주 또는 상기 형질전환체를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생상하는 방법을 제공한다. 구체적으로 상기 방법은
키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09) 균주 또는 상기 형질전환체를 배양하는 단계(단계 1); 및
얻은 배양액으로부터 5,6-디히드록시인돌을 회수하는 단계(단계 2)를 포함하는 5,6-디히드록시인돌을 제조하는 방법을 포함할 수 있다.
단계 1에서, 상기 균주 및 형질전환체는 상기 기술된 방법에 따라 제조될 수 있다. 상기 배지는 티로신을 포함하는 것이라면 특별히 제한되지 않지만, LDG 배지(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-tyrosinase 2g/L)를 사용할 수 있다. 상기 균주 또는 형질전환체를 상기 배지에서 배양하는 조건은 특별히 제한되지 않지만, 약 25℃-37℃에서 약 2일간 배양할 수 있다.
단계 2에서, 얻은 배양액으로부터 5,6-디히드록시인돌을 회수한다. 5,6-디히드록시인돌은 원심분리방법으로 회수할 수 있다.
이하 본 발명을 하기 실시예 및 도면을 통해 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 본 발명이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
실시예
<균주의 분리 및 선별>
토양을 채취하고 멸균 증류수에서 진탕한 후 시료액의 상등액을 취하여 희석하였다. 얻은 희석액을 티로신(tyrosine)이 함유된 배지(LDG 배지(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-tyrosinase 2g/L ))에 도말하였다. 그런 다음, (25℃-37℃에서 2일)에서 배양하여, 티로신을 산화함으로써 검은색 집락을 형성하는 단일 콜로니로 된 미생물 Kitasatospora sp. DG09 JF917133을 분리하였다. 1차 분리된 미생물을 L-DOPA를 첨가한 배지 LDG medium(Glucose 1g/L, NaCl 5g/L, 0.1 CaCl2, 10g Tryptone 10g/L, Casein 5g/L, L-DOPA 3g/L) 에 넣고 48시간 동안 25℃에서 배양하였다. 배양 후, 검은색 집락 즉 멜라닌을 형성시키는 정도를 530nm에서 흡광도를 측정함으로써, 멜라닌 생성율이 최대인 미생물 균주를 선별하였다.
<분리된 균주의 동정>
상기 토양으로부터 분리된 최종 균주를 동정하기 위해, 16S rDNA의 염기 서열을 조사하였다. 분리된 균주의 16S rDNA 염기서열 결정을 위하여 균주의 게놈 DNA를 분리하였으며 PCR로 증폭하였다. PCR 반응물은 다음과 같은 조성으로 50 ㎕의 반응을 실시하였다. 1 ㎕의 게놈 DNA(50 ~ 100 ng/㎕)에 10배의 Tag DNA중합효소 완충액(MgCl2 첨가) 2 ㎕, 2.5 mM dNTPs 2 ㎕, 10 pmol의 정방향 프라이머(27f: 5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3': 서열번호 4)와 역방향 프라이머(1492r: 5'-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3', 서열번호 5)를 각각 1 ㎕, 1 ~ 2 단위의 Tag DNA 중합효소(Promega, USA)를 첨가하여 최종 50 ㎕ 반응액이 되도록 증류수를 더하였다. 프라이머들은 원핵 세균의 16S rDNA 부위에 해당하는 폴리뉴클레오티드의 증폭을 위해 합성하였다. PCR 반응은 95℃에서 5분간의 변성을 수행한 후 95℃에서 30초의 변성, 52℃에서 45초의 어닐링, 72℃에서 45초의 연장을 30회 반복한 후 마지막으로 72℃에서 8분간 연장으로 마무리하고 4℃에서 유지되었다. 그 결과, 확보된 증폭 단편의 염기 서열을 결정하여 서열번호 1의 염기 서열(JF917133)을 얻었다. 유전자원 은행 데이타베이스(Genebank database) 검색 결과, 키타사토스포라 속 균주와 98%의 상동성을 나타내었다. 따라서, 상기 분리균은 키타사토스포라 sp.에 속하는 것으로 동정하였으며 '키타사토스포라 sp. DG09'로 명명하였다. 상기 키타사토스포라 sp. DG09 균주는 2011년 3월 2일자로 국제기탁기관인 한국미생물보존센터에 기탁하였다(기탁번호; KCCM 11178P).
<티로시나제의 분리 및 정제>
상기 균주로부터 생산된 티로시나제를 다음과 같이 순수 분리하고, 아미노산 서열 및 염기 서열을 밝혀내었다.
구체적으로, 상기 균주를 다음과 같이 분석하였다
상기 분리한 티로시나제의 아미노산 서열을 NCBI blast 프로그램으로 분석하였다. 이로부터 확인된 티로시나제는 JF917133의 아미노산 서열을 갖는 것으로 확인되었다.
상기 분리한 티로시나제의 염기 서열을 NCBI blast 프로그램으로 분석하였다. 이로부터 확인된 티로시나제는 JF917133의 염기 서열을 갖는 것으로 확인되었다.
<재조합 벡터 및 형질 전환체의 제조>
상기 키타사토스포라 sp. DG09 균주로부터 추출된 핵산을 대장균에 재조합을 실시하였다. 상기 재조합 벡터는 특별히 제한되지 않지만, pET-28a 벡터에 도입하였다.
구체적으로, 재조합에 필요한 pUC19 벡터(invitrogen USA) 및 상기 분리한 키타사토스포라 sp. DG09 로부터 추출한 핵산에 대해 제한효소 ECOR1 과 BamH1처리를 37℃ 2시간 실시하였다. 제한효소 처리가 된 핵산(약 10Kb)과 pUC19 벡터(약 2.6Kb)는 전기영동을 통해 사이즈를 확인하였고, 핵산 정제 키트를 사용하여 정제를 실시하였다. 정제된 핵산들을 T4 리가제를 사용하여 19℃에서 12시간 재조합을 실시하였다. 재조합이 완료된 핵산과 벡터는 전기영동을 통해 그 크기를 재확인 하였으며, 그 크기는 약 12Kb 정도인 것으로 확인되었다.
전기영동을 통해 확인한 재조합 pUC19 벡터를 DH5a 대장균에 Heat shock 방법을 통해 형질전환을 실시하였다. 형질전환된 대장균을 LB 배지에서 약 12시간정도 배양을 실시하였다. 12시간 배양 후 선택적인 균주 선별을 통하여 흰색으로 집락을 형성한 콜로니만 따로 LB 배지에서 배양을 실시하고, 배양된 배양액으로부터 균체를 원심 분리하여 회수하였다. 균체로부터 플라스미드 분리를 실시하였다. 분리된 플라스미드를 제한효소 EcoR1 과 BamH1 을 사용하여 절단시키고, 절단된 핵산은 전기영동을 통해 크기를 확인하여 약 2kb 정도의 핵산만을 따로 분리 정제하였다. 정제된 핵산을 상기와 동일한 방법으로 PET28a 벡터에 다시 재조합을 실시하였다. 제조된 재조합 벡터의 일 례를 도 1에 나타내었다. 재조합된 PET28a 벡터를 BL21(DE3) 대장균에 삽입하여 형질전환하여 LB medium에 12시간 가량 28℃에서 배양하였다. 이때 IPTG 1mM로 인덕션시켜 유전자의 단백질이 발현되도록 유도하였다.
<5,6-디히드록시인돌의 생산>
5,6-디히드록시인돌 은 Kitasatospora sp. DG09 균주로부터 생산된 배양액을 L-DOPA 와 약 1시간 반응을 실시하였다. 이때 산소와 밀폐된 용기에서 반응을 실시하여, 이산화탄소 및 산소와 반응하여 자연산화가 일어나지 않도록 방지하였다. 반응 후 에는 물과 다른 부산물을 제거하기 위해 농축을 실시하여 제거하고, 농축된 산물에는 산화방지제인 아민계열 용액과 pH를 높이기 위해 NaOH를 사용하여 보정하였다.
서열번호 1: Kitasatospora sp. DG09 균주의 16S rDNA 서열
서열번호 2: 티로시나아제의 아미노산 서열
서열번호 3: 티로시나아제의 핵산 서열
서열번호 4: 정방향 프라이머 서열
서열번호 5: 역방향 프라이머 서열로
서열번호 1-5의 총 5개의 서열입니다.
Figure PCTKR2012005099-appb-I000001

Claims (5)

  1. 기탁번호 KCCM11178P로 수탁된, 티로시나제를 생산하는 키타사토스포라 속 DG09(Kitasatospora sp. DG09) 균주.
  2. 제1항의 균주로부터 생산된 티로시나제.
  3. 제2항에 있어서, 상기 티로시나제는 서열번호 2의 아미노산 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 티로시나제.
  4. 제2항에 있어서, 상기 티로시나제는 서열번호 3의 핵산 서열을 갖는 것을 특징으로 하는 티로시나제.
  5. (1)제1항의 키타사토스포라 속 DG09 균주 또는 제2항의 티로시나제를 코딩하는 염기서열을 포함하는 형질전환체를 배양하는 단계;
    (2)얻은 배양액으로부터 5,6-디히드록시인돌을 회수하는 단계를 포함하는 5,6-디히드록시인돌의 제조방법.
PCT/KR2012/005099 2011-06-28 2012-06-28 키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법 WO2013002561A2 (ko)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP12804322.1A EP2727995A4 (en) 2011-06-28 2012-06-28 STRAIN KITASATOSPORA SP. DG09 AND PROCESS FOR PRODUCING 5,6-DIHYDROXYINDOLE USING THE SAME

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR10-2011-0063137 2011-06-28
KR1020110063137A KR101099666B1 (ko) 2011-06-28 2011-06-28 키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2013002561A2 true WO2013002561A2 (ko) 2013-01-03
WO2013002561A3 WO2013002561A3 (ko) 2013-02-28

Family

ID=45507092

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2012/005099 WO2013002561A2 (ko) 2011-06-28 2012-06-28 키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP2727995A4 (ko)
KR (1) KR101099666B1 (ko)
WO (1) WO2013002561A2 (ko)

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100589822B1 (ko) * 2004-05-14 2006-06-14 서주원 항암물질을 생산하는 희귀 방선균 키타사토스포라엠제이엠-383과 생산물의 제조방법.
KR100724770B1 (ko) 2006-01-27 2007-06-04 한국생명공학연구원 아실 호모세린 락톤의 경쟁적 저해활성을 가지는키타사토스포라 속 ar030054
WO2009025761A2 (en) * 2007-08-17 2009-02-26 Massachusetts Institute Of Technology Methods for identifying bacterial strains that produce l-tyrosine
JP5511268B2 (ja) 2009-08-27 2014-06-04 月桂冠株式会社 メラニン前駆体含有溶液及びその製造方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
None
See also references of EP2727995A4

Also Published As

Publication number Publication date
EP2727995A2 (en) 2014-05-07
WO2013002561A3 (ko) 2013-02-28
EP2727995A4 (en) 2014-12-17
KR101099666B1 (ko) 2011-12-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Blümel et al. Molecular cloning and characterization of the gene coding for the aerobic azoreductase from Xenophilus azovorans KF46F
Goodfellow et al. The Streptomyces violaceusniger clade: a home for streptomycetes with rugose ornamented spores
Bains et al. Laccase from a non-melanogenic, alkalotolerant γ-proteobacterium JB isolated from industrial wastewater drained soil
WO2017122931A1 (ko) L-시스테인 생산용 변이미생물 및 이를 이용한 l-시스테인의 제조방법
Petrosyan et al. Streptomyces mexicanus sp. nov., a xylanolytic micro-organism isolated from soil
WO2011046249A1 (ko) 프로테아제 활성이 강화된 아스퍼질러스 소재 변이주 및 이를 이용한 천연 맛 향상제의 제조방법
US6825016B1 (en) α-glycated amino acid releasing enzyme
KR940005597B1 (ko) 멜라닌 제조방법
WO2017010833A1 (ko) 신규 알파-1,3-글루카나제
WO2013002561A2 (ko) 키타사토스포라 속 dg09 균주 및 이를 이용하여 5,6-디히드록시인돌을 생산하는 방법
CN101659698A (zh) 紫色杆菌素合成相关蛋白质系统及其编码基因簇与应用
Zhao et al. Micromonospora taraxaci sp. nov., a novel endophytic actinomycete isolated from dandelion root (Taraxacum mongolicum Hand.-Mazz.)
Sigoillot et al. Laccase production by a monokaryotic strain of Pycnoporus cinnabarinus derived from a dikaryotic strain
US20070212693A1 (en) Factor reca from bacillus licheniformis and reca-inactivated safety stems used for biotechnological production
EP2298879B1 (en) Method for amplification of dna in cell
KR100984480B1 (ko) β-글루코시다아제를 코딩하는 유전자를 포함하는 형질전환미생물 및 그를 이용한 인디고 염료의 생산 방법
KR100526662B1 (ko) 자일라나제를 코딩하는 유전자와 그 형질전환체를 이용하여 생산된 재조합 자일라나제
DE19935268A1 (de) N-Acetylaminosäureracemase
KR20110067308A (ko) 아미노산 탈아미노화 효소를 생산하는 프로테우스 불가리스 p2―1 균주 및 이를 이용한 유기산 생산방법
Tomida et al. Branchiibius cervicis sp. nov., a novel species isolated from patients with atopic dermatitis
US6013502A (en) Gene of cell wall lytic enzyme, and vector containing said gene and transformant
Baker Aspergillus genomics and DHN-melanin conidial pigmentation
KR101513853B1 (ko) 세균주를 이용한 인디고의 환원염색
JP4643873B2 (ja) 耐熱性ラッカーゼおよびその製造方法
KR20010075562A (ko) 식품발효를 위한 바실러스 서브틸리스군의 신규한 균주

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 12804322

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2

REEP Request for entry into the european phase

Ref document number: 2012804322

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2012804322

Country of ref document: EP

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE