WO2012081271A1 - 関節リウマチの検査方法及び関節リウマチ検査用キット - Google Patents

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憲政 津坂
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    • G01N2800/102—Arthritis; Rheumatoid arthritis, i.e. inflammation of peripheral joints

Definitions

  • the present invention relates to a method for testing rheumatoid arthritis and a kit for testing rheumatoid arthritis used in such a testing method.
  • Rheumatoid arthritis is a chronic inflammatory disease in which the synovial tissue of the joint is the main lesion, and the prevalence rate accounts for about 1% of the population. Rheumatoid arthritis develops synovitis in the initial stage, gradually invading cartilage and bone, and when it progresses, the joint is destroyed and deformed. In addition, the course of symptoms varies widely, such as cases where arthritis remissions and relapses are repeated and cured, and cases progress rapidly.
  • rheumatoid arthritis Diagnosis of rheumatoid arthritis is made mainly by symptoms, but in recent years, a diagnostic method using an autoantibody contained in a patient's serum as a marker has attracted attention.
  • autoantibodies rheumatoid factors (autoantibodies against denatured IgG), anti-cyclic citrullinated peptide antibodies (anti-CCP antibodies) and the like are known (see Non-Patent Document 1).
  • an object of the present invention is to search for a new marker that has not been known so far, and to provide a method for testing rheumatoid arthritis and a kit for testing rheumatoid arthritis based on the new marker found.
  • lymphocytes in the blood are activated and cell adhesion with vascular endothelial cells is enhanced, and at the same time, lymphocyte migration is also enhanced.
  • lymphocytes infiltrate outside the blood vessels, and these infiltrating lymphocytes It is known to cause various inflammations. Therefore, when searching for a novel marker, the inventor of the present invention uses Talin (Talin), a high molecular cytoskeleton protein that is expressed mainly in the cell adhesion region, particularly in the cell adhesion region, particularly in lymphocytes. ).
  • Talin Talin
  • Tallin is a protein composed of an N-terminal region having a molecular weight of 47 kDa including a FERM region and a C-terminal region having a molecular weight of 190 kDa composed of a bundle of ⁇ helices.
  • the FERM region is further divided from the N-terminal side into three subregions of F1, F2, and F3 domains.
  • the N-terminal region polypeptide cleaved by calpain, in particular the F3 domain binds to the integrin ⁇ subunit and enhances signal transduction of the integrin from the inside of the cell to cell adhesion and It is known to enhance cell migration.
  • the present inventor examined the presence of talin in plasma or serum of rheumatoid arthritis patients. As a result, it was surprisingly found that talin is predominantly present in plasma or serum in rheumatoid arthritis patients. Moreover, when rheumatoid arthritis resulted in low disease activity or remission by a therapeutic agent for rheumatoid arthritis, the amount of talin was found to be significantly reduced.
  • the present invention has been completed on the basis of such findings, and is specifically as follows.
  • a method for examining rheumatoid arthritis comprising a step of measuring the amount of talin in plasma or serum of a subject animal.
  • the method for examining rheumatoid arthritis according to (1) further comprising a step of obtaining plasma or serum from blood collected from the subject animal.
  • the method for testing rheumatoid arthritis according to (1) or (2) above wherein the amount of talin in the plasma or serum is measured using an antibody that binds to talin.
  • the method for examining rheumatoid arthritis according to the present invention includes a step of measuring the amount of talin in plasma or serum of a subject animal. This test method may further include a step of obtaining plasma or serum from blood collected from the subject animal.
  • the test animal is not particularly limited as long as it can suffer from rheumatoid arthritis, and can be selected according to the purpose.
  • Examples include humans, rats, mice, dogs, cows, cats, rabbits, guinea pigs, etc. Among them, humans are preferable.
  • the method for obtaining plasma and serum is not particularly limited, and it can be applied to a conventionally known method, for example, a method for separating plasma and serum obtained from blood as a specimen for clinical examination.
  • plasma can be obtained by taking blood in an EDTA tube or a heparin tube and centrifuging it.
  • serum can be obtained by taking blood in a test tube or the like and centrifuging it.
  • the amount of talin in the plasma or serum thus obtained is measured.
  • the amount of talin means the amount of protein of talin.
  • talin 1 and talin 2 there are two types of isoforms, talin 1 and talin 2.
  • the mRNA sequence and amino acid sequence of Talin 1 are shown in SEQ ID NOs: 1 and 2, respectively.
  • the mRNA sequence and amino acid sequence of talin 2 are shown in SEQ ID NOs: 3 and 4, respectively.
  • the amount of talin in the plasma or serum of a test animal can be measured by an immunochemical method using an antibody that binds to talin.
  • the antibody that binds to talin may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody, and in some cases, an antibody fragment such as Fab ′, Fab, F (ab ′) 2 can be used.
  • These antibodies can be prepared by a conventionally known method. Examples of commercially available products include H-18 antibody (Santa Cruz Biotechnology), H-300 antibody (Santa Cruz Biotechnology), TA205 antibody (Abcam), M54246M antibody (Biodesign).
  • Measurement of the amount of talin can be carried out by employing a method such as a known enzyme immunoassay (EIA), chemiluminescent immunoassay, radioimmunoassay (RIA), fluoroimmunoassay, latex agglutination method and the like.
  • EIA enzyme immunoassay
  • chemiluminescent immunoassay chemiluminescent immunoassay
  • RIA radioimmunoassay
  • fluoroimmunoassay fluoroimmunoassay
  • latex agglutination method e.g., a known enzyme immunoassay (EIA), chemiluminescent immunoassay, radioimmunoassay (RIA), fluoroimmunoassay, latex agglutination method and the like.
  • a competitive method using an antibody and a labeled antigen a sandwich EIA method using a combination of two monoclo
  • an antigen or antibody can be fixed to an appropriate solid phase carrier, if necessary.
  • the solid phase carrier include polystyrene, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride, polyester, polyacrylic ester, nylon, polyacetal, synthetic resins such as fluororesin, polysaccharides such as cellulose and agarose, glass, metal, and the like. It is done.
  • the solid phase carrier can have various shapes such as a microplate shape, a spherical shape, a fiber shape, a rod shape, a disk shape, a container shape, a cell, and a test tube.
  • antibodies and antigens labeled as necessary are used.
  • labels include enzymes (peroxidase, alkaline phosphatase, etc.), luminescent substances (acridinium esters, isoluminol, luciferin, etc.), radioisotopes ( 124 I, 14 C, 3 H), fluorescent substances ( Fluorescein isothiocyanate, etc.).
  • a method using a combination of biotin labeling and streptavidin can also be employed.
  • a predetermined threshold value can be set based on, for example, an average value in plasma or serum of a control animal not affected by rheumatoid arthritis.
  • the therapeutic effect of the therapeutic agent can be easily determined. That is, if the amount of talin after administration of the therapeutic agent for rheumatoid arthritis is significantly lower than the amount of talin before administration, it can be determined that the therapeutic agent is effective.
  • the therapeutic agent for rheumatoid arthritis can include conventionally known therapeutic agents and all therapeutic agents to be developed in the future.
  • conventionally known rheumatoid arthritis therapeutic agents include biological preparations, non-steroidal anti-inflammatory drugs (anti-inflammatory analgesics), steroid drugs, immunosuppressants and the like.
  • biological preparations include chimeric anti-TNF- ⁇ antibody preparations, soluble TNF receptors, fully human anti-TNF- ⁇ antibody preparations, and anti-IL-6 receptor antibody preparations.
  • Non-steroidal anti-inflammatory drugs include prostaglandin production inhibitors, which can reduce joint pain and swelling, but it is difficult to suppress the progression of the disease itself and the destruction of bones and joints. It is said.
  • Steroid drugs are used as a specific drug for rheumatoid arthritis because of their excellent anti-inflammatory effects, but their side effects are also a problem.
  • Immunosuppressants are intended to suppress rheumatoid arthritis inflammation and improve remission by improving immune abnormalities in patients with rheumatoid arthritis, and may prevent the progression of rheumatoid arthritis. It is also called sex antirheumatic drug. Since it takes time to develop the effect, it is also called a slow-acting anti-rheumatic drug.
  • the test method according to the present invention is useful for determining the degree of the effect of the therapeutic agent and selecting the most effective therapeutic agent.
  • the rheumatoid arthritis test kit according to the present invention is for use in the rheumatoid arthritis test method according to the present invention.
  • This diagnostic kit includes, for example, a solid phase carrier to which an antibody that binds to talin is fixed. Further, a labeled secondary antibody, a chromogenic substrate and the like may be contained.
  • Example 1 17 patients with rheumatoid arthritis (RA patients), 14 controls (8 osteoarthritis patients, 1 systemic lupus erythematosus patient, 1 diabetic patient, healthy 4 cases) were subjects.
  • Example 3 5 RA patients were subjects.
  • Example 1 The blood of each subject was collected in an EDTA tube, and plasma was obtained by centrifuging at 2500 rpm for 10 minutes at room temperature.
  • the amount of talin in the plasma was measured by a sandwich ELISA method.
  • H-18 antibody (Santa Cruz Biotechnology Co., Ltd.) that recognizes the N-terminus of talin is diluted with phosphate buffer (PBS) to 1 ⁇ g / mL, and 96-well microwells to 100 ⁇ L / well.
  • PBS phosphate buffer
  • the plate was incubated overnight at 4 ° C., and then washed three times with a 200 ⁇ L / well washing solution.
  • the plasma of each subject was added to a 96-well microplate so as to be 100 ⁇ L / well, incubated at 25 ° C.
  • H-300 antibody (Santa Cruz Biotechnology) that recognizes the N-terminus of talin as a primary antibody is diluted with PBS to 2 ⁇ g / mL and added to a 96-well microplate to 100 ⁇ L / well. After incubating at 25 ° C. for 1 hour, the plate was washed 3 times with a 200 ⁇ L / well washing solution.
  • an HRP-labeled anti-goat IgG antibody (KPL) as a secondary antibody was diluted with PBS to 2 ⁇ g / mL, added to a 96-well microplate to 100 ⁇ L / well, and incubated at 25 ° C. for 1 hour. Then, it was washed 3 times with a 200 ⁇ L / well washing solution. Next, the substrate was added to a 96-well microplate at 100 ⁇ L / well and incubated at 25 ° C. for 15 minutes, and then the OD value at a wavelength of 630 nm was measured using a microplate reader.
  • KPL HRP-labeled anti-goat IgG antibody
  • Example 2 The amount of talin in plasma was measured by sandwich ELISA in the same manner as in Example 1 except that the M54246M antibody (Biodesign) that recognizes the C-terminus of talin was used as the primary antibody.
  • the ROC curve in Example 2 is shown in FIG. As a result of the ROC analysis, the area under the ROC curve (AUC) for FIG. 2 was 0.819.
  • Serum was obtained by collecting the blood of each subject in a blood collection tube for serum and centrifuging at 2500 rpm for 10 minutes at room temperature.
  • the anti-CCP antibody titer in the serum was measured using a commercially available kit (Mesa Cup CCP, MBL).
  • the ROC curve in Comparative Example 1 is shown in FIG.
  • AUC area under the ROC curve
  • Table 3 below shows whether the antibody titer is 6.60 when the cutoff value is 6.60.
  • talin is predominantly present in the blood of RA patients. Therefore, by measuring the amount of talin in the blood, it is possible to easily examine the morbidity of rheumatoid arthritis. . Moreover, the inspection method is superior in sensitivity to existing methods using anti-CCP antibodies.
  • Example 3 The therapeutic effect of rheumatoid arthritis drugs on 5 RA patients was confirmed by measuring the amount of talin.
  • the amount of talin was measured by measuring the OD value by the sandwich ELISA method using H-18 antibody and H-300 antibody in the same manner as in Example 1.
  • the amount of CRP and the amount of MMP-3 were also measured by the same method as usual clinical tests.
  • the score of DAS (Disase Activity Score) 28 recommended by the European Rheumatism Federation (EULAR) was also calculated.
  • the score of DAS28 is determined to be high disease activity of 5.1 or more, moderate disease activity of 3.2 or more and less than 5.1, and low disease activity of less than 3.2. The results are shown in Table 4 below.
  • Case 1 was a good responder (DAS28: 5.43 ⁇ 2.62) when applied to EULAR reactivity criteria by using ADA (adalimumab) in combination with treatment with MTX (methotrexate). It is.
  • the amount of talin was high (OD value: 0.568) in the case of MTX alone, but was normal (OD value: 0.139) by using ADA together.
  • the amount of MMP-3 did not show a significant decrease even with the combined use of ADA, and did not reflect the pathology of rheumatoid arthritis.
  • Case 2 is an example of being a none responder (DAS 28: 5.12 ⁇ 4.21) when applied to EULAR reactivity criteria even after treatment with SASP (Sarazosuffapyridine).
  • DAS 28 5.12 ⁇ 4.21
  • SASP Sarazosuffapyridine
  • the amount of talin remained high even after the SASP treatment (OD value: 0.258 ⁇ 0.294).
  • the amount of CRP was normal (0.19 mg / dL) after SASP treatment, and did not reflect the pathological condition of rheumatoid arthritis.
  • Case 3 is an example of a none responder (DAS 28: 4.87 ⁇ 3.95) despite the combined use of IFX (infliximab) for treatment with MTX (methotrexate). The amount of talin remained high (OD value: 0.205 ⁇ 0.223) even when IFX was used in combination.
  • Case 4 is an example of being a good responder (DAS 28: 4.55 ⁇ 2.45) by using ADA (adalimumab) in combination with treatment using BUC (bucilamine).
  • ADA adalimumab
  • BUC bucilamine
  • the amount of talin was high (OD value: 0.258) when only BUC was used, but it was normal (OD value: 0.164) when ADA was used in combination.
  • Case 5 is an example of being a none responder (DAS 28: 5.09 ⁇ 4.50) even after treatment with TCZ (tocilizumab). The amount of talin remained high even after TCZ treatment (OD value: 2.093 ⁇ 1.787).
  • the amount of talin in the blood was correlated with the pathological condition of rheumatoid arthritis, and more accurately reflected the pathological condition of rheumatoid arthritis than other factors such as CRP and MMP-3. Therefore, by measuring the amount of talin in the blood, the therapeutic effect of the rheumatoid arthritis therapeutic agent can be determined easily and accurately.

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Abstract

　新規な関節リウマチの検査方法、及びそのような検査方法に使用される関節リウマチ検査用キットを提供する。　本発明に係る関節リウマチの検査方法は、被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量を測定する工程を含むことを特徴とする。この測定は、例えば、タリンに結合する抗体を用いた免疫学的手法により行われる。本発明に係る関節リウマチ検査用キットは、このような検査方法に使用するためのものであり、例えば、タリンに結合する抗体を固着させた固相担体を含む。

Description

関節リウマチの検査方法及び関節リウマチ検査用キット
　本発明は、関節リウマチの検査方法、及びそのような検査方法に使用される関節リウマチ検査用キットに関する。
　関節リウマチ（Ｒｈｅｕｍａｔｏｉｄ　Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ：ＲＡ）は、関節の滑膜組織を病変の主座とする慢性炎症性疾患であり、有病率が人口の約１％を占める疾患である。関節リウマチは、その初期には滑膜炎を来し、次第に軟骨や骨が侵され、進行すると関節が破壊され変形する。また、症状の経過は、関節炎の寛解・再燃を繰り返し、完治する例や急速に進行する例など多彩である。
　関節リウマチの診断は主に症状によってなされるが、近年、患者の血清中に含まれる自己抗体をマーカーとした診断方法が注目されている。そのような自己抗体としては、リウマトイド因子（変性ＩｇＧに対する自己抗体）、抗環状シトルリン化ペプチド抗体（抗ＣＣＰ抗体）等が知られている（非特許文献１参照）。
　しかしながら、これまでの報告では、リウマトイド因子の感度は７５～８０％、特異度は５０～７０％、抗ＣＣＰ抗体の感度は５０～７５％、特異度は８５～９５％であり、必ずしも満足のいくものではなかった（非特許文献２，３参照）。
Ｍａｒｔｉｎｕｓ　Ａ．　Ｍ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ　Ｒｅｓ．　Ｔｈｅｒ．，　４：　８７－９３，　２００２ Ａｖｏｕａｃ　Ｊ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ａｎｎ．　Ｒｈｅｕｍ．　Ｄｉｓ．　６５：　８４５－８５１，　２００６ ｖａｎ　Ｖｅｎｒｏｏｉｊ　ＷＪ．　ｅｔ　ａｌ．　Ａｎｎ．　Ｎ．Ｙ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　１１４３：　２６８－２８５，　２００８
　そこで本発明は、これまでに知られていない新規マーカーの探索を行い、見出された新規マーカーをもとに関節リウマチの検査方法及び関節リウマチ検査用キットを提供することを目的とする。
　関節リウマチ患者では、血中のリンパ球が活性化されて血管内皮細胞との細胞接着が亢進するのと同時にリンパ球遊走も亢進する結果、血管外にリンパ球が浸潤し、この浸潤リンパ球が様々な炎症を引き起こすことが知られている。そこで本件発明者は、新規マーカーの探索を行うにあたり、細胞と基質とが接着する領域、特にリンパ球内では細胞接着領域に主に集中して発現される高分子細胞骨格タンパク質であるタリン（Ｔａｌｉｎ）に着目した。
　タリンは、ＦＥＲＭ領域を含む分子量４７ｋＤａのＮ末端領域と、一束のαヘリックスからなる分子量１９０ｋＤａのＣ末端領域とから構成されるタンパク質である。ＦＥＲＭ領域はさらに、Ｎ末端側からＦ１ドメイン、Ｆ２ドメイン、Ｆ３ドメインの３つのサブ領域に分けられている。生体内では、カルパイン（Ｃａｌｐａｉｎ）によって切断されたＮ末端領域のポリペプチド、その中でもＦ３ドメインがインテグリンβサブユニットに結合し、インテグリンの細胞内から細胞外へのシグナル伝達を増強させ、細胞接着や細胞遊走を亢進することが知られている。
　本件発明者は、関節リウマチ患者の血漿又は血清中におけるタリンの存在について検討した。その結果、意外にも、関節リウマチ患者においてはタリンが血漿又は血清中に優位に存在することを見出した。また、関節リウマチ治療薬によって関節リウマチが低疾患活動性又は寛解に至った場合には、タリン量が有意に低下することを見出した。
　本発明は、このような知見に基づいて完成されたものであり、具体的には以下のとおりである。
　（１）　被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量を測定する工程を含む関節リウマチの検査方法。
　（２）　上記被検動物より採取された血液から血漿又は血清を得る工程をさらに含む上記（１）記載の関節リウマチの検査方法。
　（３）　タリンに結合する抗体を用いて、上記血漿中又は血清中のタリン量を測定する上記（１）又は（２）記載の関節リウマチの検査方法。
　（４）　上記被検動物がヒトである上記（１）から（３）のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法。
　（５）　関節リウマチの診断又は関節リウマチ治療薬の治療効果の判定のために行われる上記（１）から（４）のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法。
　（６）　上記（１）から（５）のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法に使用するための関節リウマチ検査用キット。
　（７）　タリンに結合する抗体を固着させた固相担体を含む上記（６）記載の関節リウマチ検査用キット。
　本発明によれば、新規な関節リウマチの検査方法、及びそのような検査方法に使用される関節リウマチ検査用キットを提供することができる。
Ｈ－１８抗体及びＨ－３００抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法による関節リウマチ診断（実施例１）のＲＯＣ曲線を示す図である。 Ｈ－１８抗体及びＭ５４２４６Ｍ抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法による関節リウマチ診断（実施例２）のＲＯＣ曲線を示す図である。 抗ＣＣＰ抗体を用いた関節リウマチ診断（比較例１）のＲＯＣ曲線を示す図である。
＜関節リウマチの検査方法＞
　本発明に係る関節リウマチの検査方法は、被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量を測定する工程を含むものである。この検査方法は、被検動物より採取された血液から血漿又は血清を得る工程をさらに含んでいてもよい。
　被検動物としては、関節リウマチに罹患し得る動物であれば特に制限はなく、目的に応じて選択することができる。例えば、ヒト、ラット、マウス、イヌ、ウシ、ネコ、ウサギ、モルモット等が挙げられるが、その中でもヒトが好ましい。
　また、血漿及び血清の取得方法は特に限定されず、従来公知の方法、例えば血液から臨床検査用検体として取得する血漿、血清の分離方法に準じることができる。例えば、血液をＥＤＴＡ管やヘパリン管等に採り、遠心分離することにより、血漿を得ることができる。また、血液を試験管等に採り、遠心分離することにより、血清を得ることができる。
　本発明に係る関節リウマチの検査方法では、このようにして得られた血漿中又は血清中におけるタリン量を測定する。ここで、「タリン量」とは、タリンのタンパク質量を意味する。タリンが複数のアイソフォームを有する場合、そのいずれを測定してもよい。例えばヒトの場合、タリン１、タリン２の２種類のアイソフォームが存在する。タリン１のｍＲＮＡ配列、アミノ酸配列をそれぞれ配列番号１，２に示す。また、タリン２のｍＲＮＡ配列、アミノ酸配列をそれぞれ配列番号３，４に示す。
　被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量は、タリンに結合する抗体を用いて、免疫化学的方法により測定することができる。
　タリンに結合する抗体は、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよく、場合によっては、抗体のフラグメント、例えばＦａｂ’、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２を用いることができる。これらの抗体は、従来公知の方法により作製することができる。
　市販品としては、Ｈ－１８抗体（サンタクルーズ・バイオテクノロジー社）、Ｈ－３００抗体（サンタクルーズ・バイオテクノロジー社）、ＴＡ２０５抗体（アブカム社）、Ｍ５４２４６Ｍ抗体（バイオデザイン社）等が挙げられる。
　タリン量の測定は、公知のエンザイムイムノアッセイ（ＥＩＡ）、ケミルミネッセントイムノアッセイ、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、フルオロイムノアッセイ、ラテックス凝集法等の方法を採用して実施できる。具体的には、例えば、抗体及び標識抗原を用いる競合法、抗原に対する認識部位が異なる２種類のモノクローナル抗体又はポリクローナル抗体（あるいはモノクローナル抗体及びポリクローナル抗体）を組み合わせて用いるサンドイッチＥＩＡ法、抗体を固着させたラテックス粒子を用いるラテックス凝集法等が挙げられる。
　これら測定法においては、必要に応じて、抗原又は抗体を適当な固相担体に固着させることができる。固相担体としては、例えば、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエステル、ポリアクリル酸エステル、ナイロン、ポリアセタール、フッ素樹脂等の合成樹脂、セルロース、アガロース等の多糖類、ガラス、金属等が挙げられる。この固相担体は、マイクロプレート状、球状、繊維状、棒状、盤状、容器状、セル、試験管等の種々の形状とすることができる。
　上述のような免疫化学的方法において、抗体や抗原は必要に応じて標識したものが使用される。このような標識としては、酵素（ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ等）、発光物質（アクリジニウムエステル、イソルミノール、ルシフェリン等）のほか、放射性同位元素（１２４Ｉ、１４Ｃ、３Ｈ）、蛍光物質（フルオレッセインイソチオシアネート等）等が挙げられる。このほか、ビオチン標識とストレプトアビジンとを組み合わせて用いる方法も採用できる。
　以上のようにして被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量を測定・定量することにより、関節リウマチへの罹患を簡便に診断することができる。すなわち、血漿中又は血清中におけるタリン量が所定の閾値よりも多い場合には、関節リウマチに罹患していると判断することができる。この所定の閾値は、例えば、関節リウマチに罹患していない対照動物の血漿又は血清における平均値等に基づいて設定することができる。
　また、関節リウマチ治療薬の投与前後におけるタリン量を測定・定量することにより、該治療薬による治療効果を簡便に判定することができる。すなわち、関節リウマチ治療薬の投与後におけるタリン量が投与前におけるタリン量よりも有意に低下していれば、その治療薬が有効であると判定することができる。
　ここで、関節リウマチ治療薬としては、従来公知の治療薬及び今後開発される全ての治療薬を含めることができる。従来公知の関節リウマチ治療薬としては、例えば生物学的製剤、非ステロイド性抗炎症薬（消炎鎮痛薬）、ステロイド薬、免疫抑制剤等が挙げられる。
　生物学的製剤としては、キメラ型抗ＴＮＦ－α抗体製剤、可溶性ＴＮＦレセプターや、完全ヒト型抗ＴＮＦ－α抗体製剤、抗ＩＬ－６レセプター抗体製剤等が挙げられる。非ステロイド性抗炎症薬としては、プロスタグランジン産生抑制剤が挙げられ、関節の痛みや腫れを軽減化させることはできるが、疾患自体の進行や骨・関節の破壊を抑制することは困難といわれている。ステロイド薬は、優れた抗炎症効果により、関節リウマチの特効薬として利用されているが、その副作用も問題である。免疫抑制剤は、関節リウマチ患者の免疫異常を改善させることにより関節リウマチの炎症を抑制し、寛解導入を目的とするものであり、関節リウマチの進行を阻止する可能性があることから、疾患修飾性抗リウマチ薬ともいわれている。効果発現までに時間を要することから遅効性抗リウマチ薬とも呼ばれている。
　上記のように、関節リウマチ治療薬は多種類存在するが、治療薬の効果の程度を判定し、最も効果的な治療薬を選択するためにも、本発明に係る検査方法は有用である。
＜関節リウマチ検査用キット＞
　本発明に係る関節リウマチ検査用キットは、本発明に係る関節リウマチの検査方法に使用するためのものである。この診断用キットには、例えば、タリンに結合する抗体を固着させた固相担体が含まれる。また、標識された２次抗体や発色基質等が含まれていてもよい。
　以下、本発明を実施例によって詳細に説明するが、本発明は以下の記載によって何ら限定して解釈されるものではない。なお、以下の実施例１，２、比較例１では、関節リウマチ患者（ＲＡ患者）１７例、コントロール１４例（変形性関節症患者８例、全身性エリテマトーデス患者１例、糖尿病患者１例、健常者４例）を被検者とした。また、以下の実施例３では、ＲＡ患者５例を被検者とした。
＜実施例１＞
　各被検者の血液をＥＤＴＡ管に採り、室温で１０分間、２５００ｒｐｍで遠心分離することにより血漿を得た。
　この血漿中におけるタリン量をサンドイッチＥＬＩＳＡ法により測定した。
　まず、タリンのＮ末端を認識するＨ－１８抗体（サンタクルーズ・バイオテクノロジー社）を１μｇ／ｍＬとなるようにリン酸緩衝液（ＰＢＳ）で希釈し、１００μＬ／ｗｅｌｌとなるように９６穴マイクロプレートに加え、４℃で一晩インキュベートした後、２００μＬ／ｗｅｌｌの洗浄液で３回洗浄した。次いで、各被検者の血漿を１００μＬ／ｗｅｌｌとなるように９６穴マイクロプレートに加え、２５℃で１時間インキュベートした後、２００μＬ／ｗｅｌｌの洗浄液で３回洗浄した。次いで、一次抗体としてタリンのＮ末端を認識するＨ－３００抗体（サンタクルーズ・バイオテクノロジー社）を２μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳで希釈し、１００μＬ／ｗｅｌｌとなるように９６穴マイクロプレートに加え、２５℃で１時間インキュベートした後、２００μＬ／ｗｅｌｌの洗浄液で３回洗浄した。次いで、二次抗体としてＨＲＰ標識抗ヤギＩｇＧ抗体（ＫＰＬ社）を２μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳで希釈し、１００μＬ／ｗｅｌｌとなるように９６穴マイクロプレートに加え、２５℃で１時間インキュベートした後、２００μＬ／ｗｅｌｌの洗浄液で３回洗浄した。
　次いで、基質を１００μＬ／ｗｅｌｌとなるように９６穴マイクロプレートに加え、２５℃で１５分間インキュベートした後、マイクロプレートリーダーを用いて波長６３０ｎｍのＯＤ値を測定した。
　実施例１におけるＲＯＣ曲線を図１に示す。ＲＯＣ解析の結果、図１についてのＲＯＣ曲線下面積（ＡＵＣ）は０．９５４であった。また、ＯＤ＝０．２０をカットオフ値とした場合の陽性、陰性の別を下記表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　この結果から、Ｈ－１８抗体及びＨ－３００抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法による関節リウマチ診断は、感度が１４／１７×１００＝８２．４％、特異度が１４／１４×１００＝１００％であった。
＜実施例２＞
　一次抗体としてタリンのＣ末端を認識するＭ５４２４６Ｍ抗体（バイオデザイン社）を用いたほかは実施例１と同様にして、血漿中におけるタリン量をサンドイッチＥＬＩＳＡ法により測定した。
　実施例２におけるＲＯＣ曲線を図２に示す。ＲＯＣ解析の結果、図２についてのＲＯＣ曲線下面積（ＡＵＣ）は０．８１９であった。また、ＯＤ＝０．０５をカットオフ値とした場合の陽性、陰性の別を下記表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　この結果から、Ｈ－１８抗体及びＭ５４２４６Ｍ抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法による関節リウマチ診断は、感度が１５／１７×１００＝８８．２％、特異度が１１／１４×１００＝７８．６％であった。
＜比較例１＞
　各被検者の血液を血清用採血管に採り、室温で１０分間、２，５００ｒｐｍで遠心分離することにより血清を得た。この血清中における抗ＣＣＰ抗体価を、市販キット（メサカップＣＣＰ、ＭＢＬ社）を用いて測定した。
　比較例１におけるＲＯＣ曲線を図３に示す。ＲＯＣ解析の結果、図３についてのＲＯＣ曲線下面積（ＡＵＣ）は０．８３８であった。また、抗体価＝６．６０をカットオフ値とした場合の陽性、陰性の別を下記表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　この結果から、抗ＣＣＰ抗体を用いた関節リウマチ診断は、感度が１１／１７×１００＝６４．７％、特異度が１３／１４×１００＝９２．９％であった。
　以上の結果から分かるように、ＲＡ患者の血中にはタリンが優位に存在し、したがって、血中のタリン量を測定することにより、関節リウマチへの罹患を簡便に検査することが可能である。しかも、その検査方法は、抗ＣＣＰ抗体を用いた既存の方法よりも感度に優れたものである。
＜実施例３＞
　５名のＲＡ患者に対する関節リウマチ治療薬の治療効果を、タリン量の測定により確認した。タリン量の測定は、実施例１と同様に、Ｈ－１８抗体及びＨ－３００抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法によりＯＤ値を測定することにより行った。また、通常の臨床検査と同手法により、ＣＲＰ量、ＭＭＰ－３量の測定も行った。さらに、ヨーロッパリウマチ連盟（ＥＵＬＡＲ）が推奨するＤＡＳ（Ｄｉｓｅａｓｅ　Ａｃｔｉｖｉｔｙ　Ｓｃｏｒｅ）２８のスコアも算出した。ＤＡＳ２８のスコアは、５．１以上が高疾患活動性、３．２以上５．１未満が中疾患活動性、３．２未満が低疾患活動性と判断される。結果を下記表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　症例１は、ＭＴＸ（メトトレキサート）を用いた治療にＡＤＡ（アダリムマブ）を併用することによって、ＥＵＬＡＲの反応性基準に当てはめたときにｇｏｏｄ　ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ（ＤＡＳ２８：５．４３→２．６２）であった一例である。タリン量は、ＭＴＸのみの場合には高値（ＯＤ値：０．５６８）であったが、ＡＤＡを併用することによって正常値（ＯＤ値：０．１３９）となっていた。一方、ＭＭＰ－３量は、ＡＤＡの併用によっても有意な低下を示さず、関節リウマチの病態を反映していなかった。
　症例２は、ＳＡＳＰ（サラゾスフファピリジン）を用いた治療によっても、ＥＵＬＡＲの反応性基準に当てはめたときにｎｏｎｅ　ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ（ＤＡＳ２８：５．１２→４．２１）であった一例である。タリン量は、ＳＡＳＰ治療によっても高値のまま（ＯＤ値：０．２５８→０．２９４）であった。一方、ＣＲＰ量はＳＡＳＰ治療後に正常値（０．１９ｍｇ／ｄＬ）となっており、関節リウマチの病態を反映していなかった。
　症例３は、ＭＴＸ（メトトレキサート）を用いた治療にＩＦＸ（インフリキシマブ）を併用したにも関わらず、ｎｏｎｅ　ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ（ＤＡＳ２８：４．８７→３．９５）であった一例である。タリン量は、ＩＦＸの併用によっても高値のまま（ＯＤ値：０．２０５→０．２２３）であった。
　症例４は、ＢＵＣ（ブシラミン）を用いた治療にＡＤＡ（アダリムマブ）を併用することによって、ｇｏｏｄ　ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ（ＤＡＳ２８：４．５５→２．４５）であった一例である。タリン量は、ＢＵＣのみの場合には高値（ＯＤ値：０．２５８）であったが、ＡＤＡを併用することによって正常値（ＯＤ値：０．１６４）となっていた。
　症例５は、ＴＣＺ（トシリズマブ）を用いた治療によっても、ｎｏｎｅ　ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ（ＤＡＳ２８：５．０９→４．５０）であった一例である。タリン量は、ＴＣＺ治療によっても高値のまま（ＯＤ値：２．０９３→１．７８７）であった。
　以上の結果から分かるように、血中のタリン量は、関節リウマチの病態と相関しており、しかも、ＣＲＰやＭＭＰ－３といった他の因子よりも関節リウマチの病態を正確に反映していた。したがって、血中のタリン量を測定することにより、関節リウマチ治療薬による治療効果を簡便且つ正確に判定することができる。

Claims (7)

  1. 　被検動物の血漿中又は血清中におけるタリン量を測定する工程を含む関節リウマチの検査方法。
  2. 　前記被検動物より採取された血液から血漿又は血清を得る工程をさらに含む請求項１記載の関節リウマチの検査方法。
  3. 　タリンに結合する抗体を用いて、前記血漿中又は血清中のタリン量を測定する請求項１又は２記載の関節リウマチの検査方法。
  4. 　前記被検動物がヒトである請求項１から３のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法。
  5. 　関節リウマチの診断又は関節リウマチ治療薬の治療効果の判定のために行われる請求項１から４のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法。
  6. 　請求項１から５のいずれか１項記載の関節リウマチの検査方法に使用するための関節リウマチ検査用キット。
  7. 　タリンに結合する抗体を固着させた固相担体を含む請求項６記載の関節リウマチ検査用キット。
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