WO2010055900A1 - 樹状細胞の製造方法 - Google Patents

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泰次 上田
米満　吉和
結 原田
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    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/11—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from blood or immune system cells

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a dendritic cell, the produced dendritic cell and use thereof.
  • DC cells are one of the antigen-presenting cell cells (APCs) that exist in peripheral blood, skin, lymphoid organs, and thymus, and are widely distributed in lymphoid and non-lymphoid tissues (Steinman, R. M. 1991, Ann. Rev. Immunol. 9: 271; Banchereau, JB and RM Steinman, 1998, Nature 392: 245).
  • APCs antigen-presenting cell cells
  • Dendritic cells have a strong antigen-presenting ability, and express antigen peptides in class I and class II on dendritic cells to activate CD4 and CD8 T cells, respectively. This induces an in vivo immune response to a specific antigen (such as an antigen of a pathogenic microorganism, a tumor-associated antigen, or a transplanted antigen).
  • DCs stimulated with Sendai virus have a potent antitumor effect in mice (S. Shibata et al., J. Immunol, 2006 177: 3564-3576; Yoneyama, Y. et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 2007, 355: 129-135).
  • the antitumor effect depends on the number of inoculated DCs. In clinical practice, the amount of DC inoculated is considered to be greatly related to the therapeutic effect, but the number of DC progenitors that can be collected is expected to be limited depending on the patient's condition.
  • the present invention has been made in view of the above situation, and the problem to be solved by the present invention is to provide a method for efficiently producing high dendritic cells having the ability to produce a large amount of IL-12. That is.
  • the inventors have recently developed a method for efficiently amplifying DC.
  • DCs produced by this method were found to have extremely low IL-12 production ability. Therefore, even if this DC is used in vivo, there is a possibility that a sufficient anticancer effect cannot be expected. Therefore, the present inventors have made extensive studies and invented a method for efficiently producing DC having a high IL-12 production amount.
  • the present invention relates to a method for producing a dendritic cell, a produced dendritic cell, use thereof and the like.
  • a method for producing dendritic cells comprising the following steps (1) and (2): (1) (a) (i) Dendritic cell progenitor cells are granulocyte / macrophage colony stimulating factor (GM-CSF), (ii) interleukin-3 (IL-3), (iii) thrombopoietin (TPO), ( iv) Flt-3 ligand (Flt-3L), and (v) any of (i) to (v) selected from the group consisting of Flt-3L, TPO, and IL-6, and (b) stem cell factor A step of culturing in the presence of (SCF), and (2) a step of culturing the cells cultured in the step of (1) in the presence of GM-CSF and IL-4.
  • GM-CSF granulocyte / macrophage colony stimulating factor
  • IL-3 interleukin-3
  • TPO thrombopoietin
  • Flt-3L Flt-3 ligand
  • stem cell factor A
  • GM-CSF granulocyte / macrophage colony stimulating factor
  • SCF stem cell factor
  • dendritic cells Since dendritic cells have high immunity-inducing ability, dendritic cells obtained by the method of the present invention are useful as dendritic cell (DC) vaccines useful for immunotherapy such as cancer and infectious diseases.
  • DC dendritic cell
  • tumor immunotherapy in order to present dendritic cells with tumor antigens, they are mixed with cell lysate cells (cell lysates) of tumor cells, pulsed with peptides, or methods of introducing tumor antigen genes into dendritic cells, etc. By presenting the antigen, it can be used for DC therapy for tumors.
  • the method of the present invention it is possible to prepare DC having a sufficient number of cells to obtain a therapeutic effect even if the number of DC collected from a patient is small.
  • shaft of the graph of the following FIG. 1 shall mean the following. 1.E + 04, 1e4, or 1.00E + 04: 1.0 ⁇ 10 4 (pieces) 1.E + 05 or 1.00E + 05: 1.0 ⁇ 10 5 (pieces) 1.E + 06 or 1.00E + 06: 1.0 ⁇ 10 6 (pieces) 1.E + 07 or 1.00E + 07: 1.0 ⁇ 10 7 (pieces) 1.E + 08 or 1.00E + 08: 1.0 ⁇ 10 8 (pieces) 1.E + 09 or 1.00E + 09: 1.0 ⁇ 10 9 (pieces) 1.E + 10 or 1.00E + 10: 1.0 ⁇ 10 10 (pieces) 1.E + 11 or 1.00E + 11: 1.0 ⁇ 10 11 (pieces)
  • IL-3 ⁇ GMIL-4 a sample obtained by culturing CD34 + cells for 28 days under the conditions of the IL-3 administration group and then culturing for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group.
  • SCFIL-3 ⁇ GMIL-4 a sample of CD34 + cells cultured for 28 days under the conditions of the IL-3SCF administration group and then cultured for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group.
  • TPO / SCF ⁇ GMIL-4 A sample of CD34 + cells cultured for 28 days under the conditions of the TPOSCF administration group and then cultured for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group.
  • “Flt3-L / SCF ⁇ GMIL-4” A sample of CD34 + cells cultured for 28 days under the conditions of the FS administration group and then cultured for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group.
  • “CD34 + cells were cultured for 28 days under the conditions of the GMSCF administration group, and then cultured for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group.” It is.
  • the title “iDC treatment” in the figure represents a photograph of the cells obtained by iDC treatment of the cells.
  • the title “OK432 treatment” in the figure represents a photograph of the cells obtained by treating the cells with OK432.
  • dendritic cells dendrites can be seen by “OK432 treatment”.
  • dendrites were not observed in the iDC-treated group, but dendrites were confirmed in the OK432-treated group. Therefore, “CD34 + cells cultured for 28 days under the conditions of the GMSCF administration group and then cultured for 7 days under the conditions of the GMIL-4 administration group” are considered dendritic cells.
  • A It is the figure which showed the result of having measured the amount of cytokine (IL-12) production about the cell which culture
  • the unit of the numerical value on the vertical axis is “pg / ml / 48h” (however, 1 ⁇ 10 6 cells were cultured in 1 ml of medium). A 3.5 cm diameter dish was used for the culture. IL-12 production was measured using an ELISA method. In the figure, the cells were cultured for 35 days in a medium containing each predetermined cytokine.
  • the numbers in parentheses indicate the numerical values on the vertical axis for each sample (obtained to the second decimal place by rounding off the third decimal place).
  • FIG. 3 is a graph showing the results of culturing human umbilical cord blood-derived CD34 + cells under the following conditions (1) to (3) and performing amplification and differentiation.
  • FIG. 5 is a diagram showing the results of measuring the CD11c positive cell rate of cells cultured under each condition at the time indicated by the asterisk (*) in FIG. 4 (35 day culture time).
  • the titles of the figures are as follows.
  • GMSCF cultured under the conditions of the GMSCF administration group.
  • GMSCF0.1 cultured under the conditions of 0.1 GMSCF administration group.
  • GMSCF0.01 cultured under the conditions of 0.01 GMSCF administration group. It is the figure which showed the result of having cultured and amplified and differentiated the CD14 + precursor (monocyte) in human peripheral blood in the culture medium containing a predetermined cytokine.
  • GMSCF monocytes cultured for 25 days under the conditions of the GMSCF administration group.
  • GMIL-4 monocytes cultured under the conditions of the GMIL-4 administration group. This culturing method is a conventionally known method (Japanese Patent Publication No. 2008-5151439).
  • the present invention relates to a method for producing dendritic cells, comprising a step of culturing dendritic cell precursor cells in the presence of a plurality of cytokines. More specifically, this invention relates to the method of manufacturing a dendritic cell including the process as described in (1) and (2) below. (1) culturing dendritic cell progenitor cells in the presence of cytokine and stem cell factor (SCF) selected from the group consisting of (i) to (v) below, and (2) culturing in the step of (1) Culturing the cultured cells in the presence of GM-CSF and IL-4.
  • SCF stem cell factor
  • (i) to (v) mean the following.
  • a cytokine here means that the cytokine is contained at least, and other cytokines may be further contained. Preferably, it contains only that cytokine, for example it does not contain other cytokines.
  • the culture period is not limited, but is preferably about 3 weeks to about 5 weeks, preferably about 3 weeks to about 4 weeks, for example, 15 days or more, 16 days or more, 18 days or more, 19 days or more, 20 days or more, 21 22 days or more, 23 days or more, 24 days or more, 25 days or more, 38 days or less, 35 days or less, 30 days or less, 29 days or less, 28 days or less, 27 days or less, 26 days or less, 25 days or less 24 days or less, 22 days or less, 21 days or less, or 20 days or less.
  • a dendritic cell refers to a cell that has a dendritic form in a mature state and has the ability to present an antigen and activate T cells.
  • a dendritic cell progenitor cell is an appropriate cytokine (for example, G-CSF, GM-CSF, TNF- ⁇ , IL-4, IL-13, SCF (c-kit ligand), Flt-3 ligand, Or a combination thereof), which can differentiate into DCs, preferably within 4 weeks, more preferably within 20 days, more preferably within 18 days, more preferably within 16 days. It is a cell.
  • Such cells include CD34 + stem cells, hematopoietic progenitor cells, bone marrow mononuclear cells and the like. These cells can be prepared, for example, as a cell fraction.
  • a cell fraction is a cell population obtained by separation (or fractionation) of cells.
  • the cell fraction may be a composition comprising cells and a pharmaceutically acceptable carrier.
  • the carrier include a desired solution capable of suspending living cells, such as physiological saline, phosphate buffered saline (PBS), culture solution, and serum.
  • Dendritic cells include bone marrow cell-derived dendritic cells distributed in various tissue organs in vivo, and bone marrow or blood-derived stem cells that have undergone differentiation induction using cytokines etc. in vitro. Cells having a dendritic form distributed in body tissue organs, and a group of cells equivalent thereto are included.
  • the dendritic cells include, for example, lymphoid dendritic cells (which may induce Th2 induction or immune tolerance), myeloid dendritic cells (commonly used trees).
  • Dendritic cells including immature and mature dendritic cells), Langerhans cells (dendritic cells important for skin antigen-presenting cells), interconnected cells (lymph nodes, spleen T cell region, to T cells) Cells that are thought to be involved in antigen presentation), follicular dendritic cells (important as antigen-presenting cells to B cells, antigen-antibody complex, antigen-complement complex as antibody receptor, complement receptor And the like, and presents antigens to B cells by presenting them on dendritic cells.)
  • MHC class I and class II are highly expressed, and more preferably, CD11c is expressed. It is an expressing cell.
  • DC or DC progenitor cells are more preferably used from cells collected from bone marrow, umbilical cord blood, or peripheral blood.
  • DC precursor cells include CD34 positive cells.
  • the species from which DC is derived is not particularly limited, and may be primates such as humans and monkeys, rodents such as mice and rats, and DCs of mammals such as rabbits, cows and goats.
  • the dendritic cells have a dendritic morphology and are two or more surface markers selected from the group consisting of CD11c, HLA-class II (HLA-DR, -DP, or -DQ), CD40, and CD1a. May be positive cells.
  • the dendritic cells are more preferably HLA-class II + and CD11c + cells, more preferably CD1a + , HLA-class II + , and CD11c + cells, and the lineage marker is negative (Lin ⁇ ), That is, cells that do not express T cell marker (CD3), B cell marker (CD19, CD20), NK cell marker (CD56), neutrophil marker (CD15), monocyte marker (CD14).
  • CD11b is further expressed.
  • CD11b + CD11c + cells are included in DC in the present invention.
  • CD8 may be further expressed.
  • the dendritic cells include mature dendritic cells and immature dendritic cells.
  • An immature dendritic cell refers to a dendritic cell that has a significantly lower ability to activate T cells than a mature state.
  • immature dendritic cells have an antigen presenting ability of less than 1/2, preferably 1/4 compared to dendritic cells in which maturation was induced by adding LPS (1 ⁇ g / ml) and culturing for 2 days. Less than.
  • Antigen presenting ability is, for example, allo T cell activation ability (mixed lymphocyte test; mixed culture of allo T cells and dendritic cells, the ratio of T cells to dendritic cells is 1:10, preferably the ratio is The cultured cells were changed, and 3H-thymidine was added 8 hours before the end of the cultivation, and the T cell proliferation ability was quantified by the amount of T cells incorporated into the DNA; Literature Gene Therapy 2000; 7; 249- 254), or specific cytotoxic T cell (CTL) inducing ability test using peptides (dendritic cells are collected by adding a known class IV-restricted peptide with a certain antigen to dendritic cells.
  • CTL cytotoxic T cell
  • Co-cultured T cells from the same healthy human peripheral blood as the above was 25 U / ml, preferably 100 U / ml after the 3rd day) (preferably stimulated by dendritic cells 3 times for 21 days, more preferably (Stimulate dendritic cells twice for 14 days) and the resulting effector cells and 51Cr-labeled target cells Peptide-restricted Class IV positive tumor cells) from 100: 1 to 2.5: 1 (100: 1, 50: 1, 25: 1, 20: 1, 12.5: 1, 10: 1, 5: 1, or 2.5: 1), preferably 10: 1 and mixed culture for 4 hours, and quantified by the amount of 51Cr released by the target cells (literature Arch Dermatol Res 2000; 292; 325-332)).
  • immature dendritic cells preferably have antigen phagocytosis, more preferably low expression of receptors that induce costimulation for T cell activation (for example, LPS-induced mature DCs as described above). Significantly) or negative.
  • mature dendritic cells refer to dendritic cells that have significantly higher antigen-presenting ability for T cell activation and the like than immature states. Specifically, mature dendritic cells are added with LPS 1/2 (1 ⁇ g / ml) and cultured for 2 days to induce maturation at least 1/2, preferably equal to or higher than the antigen presenting ability.
  • mature dendritic cells are preferably those that have low or no antigen phagocytosis, and more preferably positive expression of receptors that induce costimulation for T cell activation.
  • the activation of dendritic cells refers to the transition from immature dendritic cells to mature dendritic cells. In activated dendritic cells, mature dendritic cells and costimulation are induced by activation stimuli. Included in the category are intermediate dendritic cells that increase the expression of CD80, CD86.
  • Mature human dendritic cells are positive for CD40, CD80, CD86 and HLA-class II expression.
  • immature dendritic cells and mature dendritic cells can be distinguished based on a marker selected from the group consisting of CD80 and CD86. These markers are weak or preferably negative in immature dendritic cells, but positive in mature dendritic cells.
  • immature dendritic cells usually have high phagocytic ability.
  • LPS (1 ⁇ g / ml) is added to dendritic cells and cultured for 2 days, dendritic cells are activated and their phagocytic ability decreases.
  • Phagocytosis can be determined by measuring the amount of small molecules taken up into dendritic cells or the proportion of cells taken up.
  • phagocytic ability is determined by the amount of small molecules taken up into dendritic cells. For example, using colored beads having a diameter of about 1 ⁇ m, the uptake of beads into dendritic cells can be measured. Subtract the positive background at 4 ° C and quantify.
  • High phagocytic ability means that the amount of small molecules taken into dendritic cells is 4 times or more, more preferably 5 times that of dendritic cells stimulated with LPS (1 ⁇ g / ml) for 2 days as described above.
  • the phagocytic ability is more than twice, more preferably more than 6 times.
  • the ratio of small molecule uptake cells is 2 times or more, more preferably 3 times or more.
  • Low phagocytic capacity means that the amount of small molecules taken into dendritic cells is less than 4 times, more preferably less than 2 times, more preferably 1.5 times that of dendritic cells stimulated with LPS (1 ⁇ g / ml) for 2 days. Is less than. Alternatively, it is less than 2-fold, more preferably less than 1.5-fold, as measured by the proportion of small molecule uptake cells.
  • CD11c is an adhesive glycoprotein (p150, “integrin ⁇ chain”) of about 150 kD.
  • CD11c binds to CD18 to form a CD11c / CD18 complex, has binding ability to fibrinogen, and has been reported to be a receptor for iC3b and ICAM-1.
  • CD11c / CD18 has also been reported to act as an adhesion molecule that binds to stimulated epithelial receptors (Knapp, W.
  • CD1a is a polypeptide of about 49 kD and binds to ⁇ 2 microglobulin. CD1a is structurally similar to MHC class I antigen and is considered to function for antigen presentation (Knapp, W. et al., Eds., 1989, Leucocyte Typing IV: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Schlossman, S. et al., Eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Hanau, D. et al., 1990, J. Investigative Der503: 95 Calabi, F. and A. Bradbury., 1991., Tissue Antigens 37:) 1).
  • CD11b is a type I transmembrane glycoprotein having a molecular weight of about 165 to about 170, also called integrin ⁇ M chain, Mac-1, CR3, iC3bR (complement receptor type 3), Mo1. It functions as a receptor for complement (iC3b), fibrinogen, and coagulation factor X, and is involved in phagocytic motility (Todd (RF et al. J. Immunol., 126,1435-1442 (1981); 1981Leong ASY Appl. Immunohistochem. Surg Pathol., 120-128 (1993); Todd RF et al. Hybridoma, 1, 329-337 (1982); Cobbold S. et al.
  • CD11c (integrin ⁇ X subunit or p150 leukocyte surface antigen) is a molecule of the integrin family and, like other leukocyte integrins (CD11a, CD11b, CD11d), noncovalently binds to integrin ⁇ 2 subunit (CD18). Are connected.
  • CD11c is a transmembrane glycoprotein with a molecular weight of 145-150 kDa and is well known as a marker for dendritic cells (Molica S. et al. Blood, 81, 2466 (1993); Van der Vieren M. et al. Immunity , 3, 683-690 (1995); Hogg N. et al. Leucocyte Typing III, 576-602 (1987)).
  • CD14 is a 53-55 kD glycosylphosphatidylinositol (GPI) anchored single-chain glycoprotein that is expressed in reticulated dendritic cells and certain Langerhans cells.
  • CD14 was identified as a high-affinity surface receptor for the complex of LPS and serum LPS-binding protein LP (LPB) M (McMichael, AJ et al., Eds., 1987, Leucocyte Typing III: White Cell DifferentiationensAntigens, OxfordityUniversity Press, New York; Knapp, W. et al., Eds., 1989, Leucocyte Typing IV: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Schlossman, S. et al., Eds., T : White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Wright, SD et al., 1990, Science 249: 1434).
  • CD40 is a 45-48 kD type I membrane-integrated protein (type I integra membrane glycoprotein), and anti-CD40 antibody is often used as a cell marker (Schlossman, S. et al., Eds., 1995, Leucocyte) Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Galy, AHM; and H. Spits, 1992, J. Immunol. 149: 775; Clark, EA and JA Ledbetter, 1986, Proc.cad. . 83: 4494; Itoh, H. et al., 1991, Cell 66: 233; Barclay, NA et al., 1993, The Leucocyte Antigen Facts Book., Academic Press).
  • CD80 is a transmembrane glycoprotein of about 60 kD and is a member of the Ig supergene family.
  • CD80 is a ligand for CD28 and CD152 (CTLA-4) expressed on T cells (Schlossman, S. et al., Eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, Schwarts , RH, 1992, Cell 71: 1065; Azuma, 65M. Etzal., 1993, J. Exp. Med. 177: 845; Koulova, L. et al., 1991, J. Exp. Med. 173: 759; Freeman, GJ et al., 1998, J. Immunol.
  • CD83 is a transmembrane protein of about 45 kD and a member of the Ig superfamily. CD83 has a short V-type Ig extracellular domain and a C-terminal cytoplasmic tail. CD83 is mainly expressed on follicular dendritic cells, circulating dendritic cells, interdigitating ⁇ ⁇ ⁇ dendritic cells of lymphoid tissues, dendritic cells generated in vitro, and thymic dendritic cells (Zhou, LJ. , And TF Tedder, 1995, J. Immunol. 154. 3821; Zhou, LJ. Et al., 1992, J. Immunol. 149: 735; Summers, KL et al., 1995, Clin Exp. Immunol. 100: 81 Weissman, D. et al., 1995, Proc. Natl. Acad. Sci USA. 92: 826; Hart, DNJ, 1997, Blood 90: 3245).
  • CD86 (B70 / B7-2) is a cell surface protein of about 75 kD and is a secondary ligand for CD28 and CTLA-4 and plays an important role in T-cell costimulation in the initial immune response (Azuma M. et al , 1993, Nature 366: 76; Nozawa Y. et al., 1993, .J. Pathology 169: 309; Engle, P. et al. 1994., Blood 84: 1402; Engel, P. et al., CD86 Workshop Report. In: Leukocyte Typing V. Schlossman, SF et al.
  • CCR7 is a seven-transmembrane G protein-coupled receptor, also called BLR-2, EBI-1, and CMKBR7, and CC chemokines MIP-3 ⁇ / Exodus 3 / ELC / CCL19 and 6Ckine / Exodus 2 / SLC / TCA4 / CCL21 (Sallusto, F. et al., 1999, Nature 401: 708-12; Lipp, M. et al., 2000, Curr. Top. Microbiol. Immunol. 251: 173-9; Birkenbach , M.et al., 1993, J. Virol. 67: 2209-20; Schweickart, V. L.
  • HLA-class II has DR, DP,, and DQ, and can be comprehensively detected by antibodies that bind to all of them (Pawelec, G. et al., 1985, Human Immunology 12: 165; Ziegler, A. et al., 1986, Immunobiol. 171: 77).
  • HLA-DR is one of the MHC human class II antigens and is a transmembrane glycoprotein consisting of ⁇ chain (36 kDa) and ⁇ subunit (27 kDa) ⁇ . It is coexpressed with CD1a antigen in Langerhans cells of the epidermis. CD1a plays a major role in cell interactions in antigen presentation (Barclay, N.A. et al., 1993, The Leucocyte Antigen Facts Book. P. 376. Academic Press).
  • dendritic cells can be identified for humans and non-human mammals.
  • Antibodies against these markers can be obtained from, for example, BD Biosciences (BD PharMingen), details of which can be found on the website of the company or distributor.
  • Dendritic cells or their progenitor cells can be prepared according to or according to known methods. For example, it can be isolated from blood (eg peripheral blood or umbilical cord blood), bone marrow, lymph nodes, other lymphoid organs, spleen, skin, etc. (Bishop et al., Blood 83: 610-616, 1994; Bontkes, HJ et al. (2002) J. Leukoc. Biol. 72, 321-329; Katsuaki, S. et al. (1998) CRYOBIOLOGY 37, 362-371; Ladan, K. et al. (2006) Stem Cells 24, 2150 -2157; Ueda, T. et al. (2000) J. Clin. Invest.
  • blood eg peripheral blood or umbilical cord blood
  • lymph nodes e.g., lymph nodes, other lymphoid organs, spleen, skin, etc.
  • dendritic cells are obtained from blood or bone marrow for use in the present invention.
  • the dendritic cells used in the present invention may be skin Langerhans cells, imported lymphatic veil cells, follicular dendritic cells, splenic dendritic cells, and lymphoid finger-like cells.
  • the dendritic cells used in the present invention are CD34 + derived dendritic cells, bone marrow derived dendritic cells, monocyte derived dendritic cells, spleen derived dendritic cells, skin derived dendritic cells, follicular dendritic cells, and Dendritic cells selected from the group consisting of germinal center dendritic cells are included.
  • hematopoietic stem cells or hematopoietic progenitor cells obtained from bone marrow, umbilical cord blood, or peripheral blood are particularly preferable.
  • Hematopoietic stem cells or hematopoietic progenitor cells can be isolated by negative selection using a commercially available kit or the like, or positive selection such as CD34 + (see US Patent Application 08 / 539,142).
  • methods for isolating cells using surface antigens using magnetic beads, sorting with fluorescent labels, biotin or avidin binding carriers, etc. are known (Berenson et al., J. Immunol. Meth., 91:11, 1986; WO 93/08268).
  • DC-granulocytes precursors J. Exp. Med., 1998, 187: 1019-1028; Blood, 1996, 87: 4520-4530
  • ⁇ ⁇ remain unremoved and adherent CD14 cells It is considered possible to collect not only DC differentiated from but also DC differentiated from their precursors. This can be expected to reduce cytotoxicity when a vector is introduced into DC.
  • DC DC by removing these cells using antibodies specific for T cells, NK cells, B cells, and the like.
  • a surface marker selected from CD2, CD3, CD8, CD19, CD56, CD66b or any combination thereof is low or negative. More preferably, all of CD2, CD3, CD8, CD19, CD56, and CD66b are low or negative cells.
  • cells expressing these markers may be removed using antibodies against these markers (Hsu et al. (1996) Nature Med. 2: 52).
  • the negative selection can be performed using a multivalent antibody, or the same selection can be performed using beads or the like for magnetic cell separation basket (MACS).
  • DC precursor cells prepared by enriching monocytes from a cell solution obtained from a living body and performing negative selection on the enriched monocytes can be suitably used in the present invention.
  • Magnetic cell sorting is described in, for example, “Miltenyi et al.,” 1990, “Cytometry 11: 231-238”.
  • DC precursor cells are amplified in a medium containing one or more cytokines. For example, it is possible to amplify DC precursor cells over about 10 days with IL-3 alone. However, longer-term amplification is not seen with IL-3 alone.
  • the present inventors have found that by culturing DC precursor cells in a medium containing SCF and IL-3, cells capable of differentiating into DC can be amplified with extremely high efficiency. Therefore, it is preferable to combine IL-3 and SCF for amplification over 2 weeks.
  • the present invention includes a medium containing IL-3 and SCF and not FLT-3L and IL-6, a medium containing FLT-3L, SCF and IL-3 and not IL-6, or SCF, IL-3, And a method for producing DC, comprising the step of amplifying DC precursor cells in a medium containing IL-6 but not FLT-3L.
  • the present invention also includes a medium containing FLT-3L, SCF, IL-3, and IL-6, for example, one containing them, selected from G-CSF, GM-CSF, IL-4, and TNF- ⁇ .
  • the present invention also relates to a method for producing DC, comprising the step of amplifying DC precursor cells in a medium that does not significantly contain the above cytokines (or any combination thereof).
  • cytokines in the culture in the presence of the combination of cytokines described in the present specification, other cytokines may be further contained (that is, cultured in the further presence of other cytokines) or not. Good. Further, the step of culturing in the presence of the other cytokine may be further included, and the step of culturing in the presence of the other cytokine may not be included.
  • any selection from the group consisting of GM-CSF, SCF, IL-4, IL-3, TPO, Flt-3L, and IL-6 It is also possible to be present in the presence of one or more combinations, or to include one or more combinations arbitrarily selected from this group.
  • the method may further include culturing in the presence of one or more combinations arbitrarily selected from this group, or culturing in the presence of one or more combinations arbitrarily selected from this group.
  • the case where no process is included is also disclosed.
  • GM-CSF and SCF are included, from the group consisting of cytokines excluding them from the above group, that is, from the group consisting of IL-4, IL-3, TPO, Flt-3L, and IL-6
  • It may be in the further presence of one or more arbitrarily selected combinations or may not include one or more combinations arbitrarily selected from this group.
  • a step of culturing in the presence of the one or more combinations may or may not be included.
  • GM-CSF for example, human GM-CSF
  • GM-CSF is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or may not be included.
  • SCF for example, human SCF
  • SCF is 50 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ⁇ ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ⁇ ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or not included.
  • IL-4 (eg human IL-4) is 50 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or not included .
  • IL-3 (eg, human IL-3) is 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or not included.
  • TPO (for example, human TPO) is 50 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or not included.
  • Flt3-L (for example, human Flt3-L) is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml
  • the following may or may not be included.
  • IL-6 (for example, human IL-6) is 25 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml or less, 0.00001 ng / ml or less, or not included .
  • G-CSF (eg, human G-CSF) is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 25 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml ml, 0.1 ng / ml, 0.05 ng / ml, 0.01 ng / ml, 0.005 ng / ml, 0.001 ng / ml, 0.0005 ng / ml, 0.0001 ng / ml, 0.00005 ng / ml 0.00001 ng / ml or less, or may not be included.
  • TNF- ⁇ (eg human TNF- ⁇ ) is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 25 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml ml, 0.1 ng / ml, 0.05 ng / ml, 0.01 ng / ml, 0.005 ng / ml, 0.001 ng / ml, 0.0005 ng / ml, 0.0001 ng / ml, 0.00005 ng / ml 0.00001 ng / ml or less, or may not be included.
  • c-kit ligand (for example, human c-kit ligand) is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 25 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml or less, 0.1 ng / ml or less, 0.05 ng / ml or less, 0.01 ng / ml or less, 0.005 ng / ml or less, 0.001 ng / ml or less, 0.0005 ng / ml or less, 0.0001 ng / ml or less, 0.00005 ng / ml ml or less, 0.00001 ng / ml or less.
  • IL-13 (eg human IL-13) is 100 ng / ml or less, 50 ng / ml or less, 25 ng / ml or less, 10 ng / ml or less, 5 ng / ml or less, 1 ng / ml or less, 0.5 ng / ml ml, 0.1 ng / ml, 0.05 ng / ml, 0.01 ng / ml, 0.005 ng / ml, 0.001 ng / ml, 0.0005 ng / ml, 0.0001 ng / ml, 0.00005 ng / ml 0.00001 ng / ml or less, or may not be included. These can be combined in any combination. The combination is taught here.
  • FLT-3L (Fms-like tyrosine kinase 3 ligand) is a ligand of Flt-3 and promotes differentiation and proliferation of hematopoietic progenitor cells (Namikawa® R. et al., BLOOD 87: 1881-1890, 1996).
  • a group of polypeptides described in EP 0627487 A2 and WO 94/2839 are included in Flt-3L in the present invention.
  • Human FLT-3L cDNA can be obtained from American Type Culture Collection (ATCC) as accession number ATCC 69382.
  • SCF is also called c-kit ligand, mast cell growth factor (MGF), or steel factor (Zsebo et al., Cell 63: 195-201, 1990; Huan, E. Cell 63: 225-233; Williams, DE Cell 63: 167-174, 1990; ozToksoz. D et al, PNAS 89: 7350-7354, 1992).
  • MCF mast cell growth factor
  • SCF includes the polypeptides described in EP 423,980.
  • IL (interleukin) -3 is a hematopoietic factor produced by activated T cells, mast cells, and eosinophils.
  • IL-3 includes the IL-3 polypeptide described in US Pat. No. 5,108,910.
  • the DNA sequence encoding human IL-3 protein is available as accession number ATCC 67747.
  • IL-6 was discovered as a B cell differentiation-inducing factor and has various physiological activities, including not only antibody production systems but also induction of hepatic stem cell proliferation based on induction of biosynthesis of acute phase proteins in the liver and synergy with IL-3 (Paul SR et al., Blood, 1991, 77: 1723-1733).
  • IL-4 is mainly produced from helper T cells and has a wide range of physiological activities on T cells, B cells, and other blood cells (Mosley et al., Cell 59: 335 (1989); Idzerda et al., J Exp. Med. 171: 861 (1990); Galizzi et al., Intl. Immunol. 2: 669 (1990)).
  • GM-CSF is a cytokine isolated as a factor that stimulated the growth of colonies containing macrophages or granulocytes (US Pat. Nos. 5,108,910 and 5,229,496).
  • GM-CSF is an essential factor for the growth and development of granulocyte and macrophage progenitor cells and stimulates myeloblasts and monoblasts to induce differentiation.
  • TPO thrombopoietin, also called thrombopoietin or thrombopoietin
  • TPO thrombopoietin, also called thrombopoietin or thrombopoietin
  • thrombopoietin is a type of hematopoietic cytokine that acts specifically on the process of making megakaryocytes from hematopoietic stem cells and has the function of promoting the production of megakaryocytes (Patent No. 3083553).
  • each cytokine may be adjusted as appropriate, but for FLT-3L, for example, 5 ng / ml or more, 10 ng / ml or more, 20 ng / ml or more, or 30 ng / ml or more, 800 ng / ml or less, 600 ng / ml or less, 500 ng / ml or less, 300 ng / ml or less, 200 ng / ml or less, or 100 ng / ml or less, for example, about 5 to 35 ng / ml, preferably about 10 to 30 ng / ml, more preferably about 15 to 25 ng / ml More preferably, it is about 20 ng / ml.
  • GM-CSF for example, 0.5 ng / ml or more, 1 ng / ml or more, 5 ng / ml or more, 10 ng / ml or more, 20 ng / ml or more, or 30 ng / ml or more, 800 ng / ml or less, 600 ng / ml or less, 500 ng / ml or less, 300 ng / ml or less, 200 ng / ml or less, or 100 ng / ml or less.
  • SCF for example, 0.25 ng / ml or more, 0.5 ng / ml or more, 1 ng / ml or more, 5 ng / ml or more, 10 ng / ml or more, 20 ng / ml or more, or 30 ng / ml or more, 800 ng / ml or less, 600 ng / ml, 500 ng / ml, 300 ng / ml, 200 ng / ml, 100 ng / ml, or 50 ng / ml or less.
  • IL-4 for example 0.5 ng / ml or more, 1 ng / ml or more, 5 ng / ml or more, 10 ng / ml or more, 20 ng / ml or more, or 30 ng / ml or more, 800 ng / ml or less, 600 ng / ml or less, 500 ng / ml Below, it can be 300 ng / ml or less, 200 ng / ml or less, 100 ng / ml or less, or 50 ng / ml or less.
  • IL-6, TPO, and other cytokines for example, 1 ng / ml or more, 2 ng / ml or more, 5 ng / ml or more, 10 ng / ml or more, 20 ng / ml or more, or 30 ng / ml or more, 800 ng / ml or less, 600 ng / It can be less than ml, less than 500 ng / ml, less than 300 ng / ml, less than 200 ng / ml, less than 100 ng / ml, less than 50 ng / ml, less than 25 ng / ml, or less than 10 ng / ml.
  • a GM-CSF-free medium such as FS36
  • about 3 to 20 ng / ml preferably about 5 to 15 ng / ml, more preferably 7 It is about -12 ng / ml, more preferably about 10 ng / ml, but is not limited thereto.
  • the medium for example, RPMI1640 or IMDM can be used.
  • 5 to 20%, preferably about 10% serum, preferably fetal bovine serum (FBS) is appropriately added.
  • the culture of DC precursor cells can be started from about 1 ⁇ 10 5 to 5 ⁇ 10 5 cells / ml, for example, about 2.5 ⁇ 10 5 cells / ml. Passage is preferably performed every 3 to 4 days. It is preferable to adjust the number of cells so that the concentration is 2 ⁇ 10 6 / ml or less during passage.
  • GM-CSF is, for example, about 1 to 500 ng / ml (about 1 to 200 ng / ml) Or about 1 to 100 ng / ml), more preferably about 2 to 300 ng / ml, such as about 5 to 200 ng / ml, preferably about 10 to 150 ng / ml, more preferably about 20 to 120 ng / ml. More preferably, about 30 to 100 ng / ml is used.
  • SCF is about 0.5 to 500 ng / ml (about 0.5 to 100 ng / ml or about 0.5 to 50 ng / ml), more preferably about 1 to 300 ng / ml, more preferably about 2 to 200 ng / ml, More preferably about 5 to 100 ng / ml, for example about 10 to 70 ng / ml, more preferably about 20 to 60 ng / ml, more preferably about 25 to 50 ng / ml.
  • IL-3 is, for example, about 0.1 to 10 ng / ml, preferably about 1 to 10 ng / ml, more preferably Should be used at about 10 ng / ml.
  • SCF is about 0.5 to 500 ng / ml (about 0.5 to 100 ng / ml or about 0.5 to 50 ng / ml), more preferably about 1 to 300 ng / ml, more preferably about 2 to 200 ng / ml, More preferably about 5 to 100 ng / ml, for example about 10 to 70 ng / ml, more preferably about 20 to 60 ng / ml, more preferably about 25 to 50 ng / ml.
  • TPO is, for example, about 0.5 to 50 ng / ml, preferably about 5 to 50 ng / ml, more preferably 50 ng / ml. It is good to use with about ml.
  • SCF is about 0.5 to 500 ng / ml (about 0.5 to 100 ng / ml or about 0.5 to 50 ng / ml), more preferably about 1 to 300 ng / ml, more preferably about 2 to 200 ng / ml, More preferably about 5 to 100 ng / ml, for example about 10 to 70 ng / ml, more preferably about 20 to 60 ng / ml, more preferably about 25 to 50 ng / ml.
  • Flt-3L is, for example, about 1 to 100 ng / ml, preferably about 10 to 100 ng / ml, more preferably Should be used at about 100 ng / ml.
  • SCF is about 0.5 to 500 ng / ml (about 0.5 to 100 ng / ml or about 0.5 to 50 ng / ml), more preferably about 1 to 300 ng / ml, more preferably about 2 to 200 ng / ml, More preferably about 5 to 100 ng / ml, for example about 10 to 70 ng / ml, more preferably about 20 to 60 ng / ml, more preferably about 25 to 50 ng / ml.
  • Flt-3L is, for example, about 1 to 100 ng / ml, preferably 10 to 100 ng. / ml, more preferably about 100 ng / ml.
  • SCF is about 0.5 to 500 ng / ml (about 0.5 to 100 ng / ml or about 0.5 to 50 ng / ml), more preferably about 1 to 300 ng / ml, more preferably about 2 to 200 ng / ml, More preferably about 5 to 100 ng / ml, for example about 10 to 70 ng / ml, more preferably about 20 to 60 ng / ml, more preferably about 25 to 50 ng / ml.
  • TPO may be used at about 0.5 to 50 ng / ml, preferably about 5 to 50 ng / ml, more preferably about 50 ng / ml.
  • IL-6 may be used at about 0.25 to 25 ng / ml, preferably about 2.5 to 25 ng / ml, more preferably about 25 ng / ml.
  • GM-CSF is, for example, about 1 to 500 ng / ml (about 1 to 200 ng / ml or 1 to About 100 ng / ml), more preferably about 2 to 300 ng / ml, such as about 5 to 200 ng / ml, preferably about 10 to 150 ng / ml, more preferably about 20 to 120 ng / ml, more preferably Should be used at about 30-100 ng / ml.
  • IL-4 may be used at about 0.5 to 50 ng / ml, preferably about 5 to 50 ng / ml, more preferably about 50 ng / ml.
  • the present inventors have found that the efficiency of subsequent differentiation into DC can be remarkably increased by setting the amplification period of DC precursor cells to about 3 to 4 weeks. If cells are cultured for a longer period, more cells can be obtained, but the efficiency of differentiation into DC is reduced. In particular, DC progenitor cells amplified for 5 weeks in FS36 medium have a markedly reduced DC differentiation efficiency. Therefore, for example, when using a GM-CSF-free medium such as FS36, the culture period of DC precursor cells is preferably about 3 weeks to about 4 weeks, preferably about 3 weeks, for example, 18 to 24 days.
  • the cells are cultured in a DC differentiation medium as described below to differentiate DCs.
  • a DC differentiation medium as described below to differentiate DCs.
  • FLT-3L, SCF, IL-3, and IL-6 after culturing for the above period, FLT-3L, SCF, IL-3, and IL-6 It is cultured in a medium other than the one containing all.
  • the present invention also includes a step of culturing cells amplified in a medium containing one or more cytokines in the presence of GM-CSF and IL-4.
  • the culture period in the presence of GM-CSF and IL-4 is about 3 days to about 14 days, preferably about 7 days (for example, 5 days or more, preferably 6 days or more, 9 days or less, preferably 8 days or less). It is preferable to make it.
  • the method of the present invention can produce dendritic cells having high IL-12 production ability.
  • IL-12 production ability can be determined, for example, as follows.
  • human umbilical cord blood-derived CD34 + cells are cultured for 4 weeks in the first step of the method of the present invention, that is, in the presence of cytokine and stem cell factor (SCF) selected from the group consisting of (i) to (v) below: .
  • SCF cytokine and stem cell factor
  • IMDM supplemented with 10% FBS can be used as the medium.
  • the second step ie, the above cells are then cultured for 1 week in the presence of GM-CSF and IL-4. After that, the cells were cultured for 2 days (48h) in 10% FBS-added IMDM containing OK432 treated, that is, OK432 (0.5KE / ml) (Chugai Pharmaceutical Japan Standard Product Classification No. 874299). IL-12 released during the cleansing is quantified by ELISA or the like.
  • the method of the present invention is, for example, 50 or more, preferably 60 or more, 70 or more, 80 or more, 90 or more, 100 or more, 150 or more, 200 or more, 250 or more, 300 or more, 400 or more,
  • a method that can produce IL-12 at 500 or more, 1000 or more, 2000 or more, 3000 or more, 4000 or more, 5000 or more, 6000 or more, 7000 or more, or 8000 or more is there.
  • GM-CSF when used in the first step, for example, 50 or more, 100 or more, preferably 200 or more, and when (ii) IL-3 is used in the first step, For example, 20 or more, 30 or more, 40 or more, preferably 50 or more.
  • TPO when used in the first step, for example, 100 or more, 200 or more, 500 or more, 1000 or more, 3000 or more, 4000 or more.
  • (iv) Flt-3L in the first step for example, 100 or more, 200 or more, 500 or more, 1000 or more, 3000 or more, 4000 or more, preferably 5000 or more
  • (v) Flt-3L, TPO, and IL-6 are used in the first step, for example, 100 or more, 200 or more, 500 or more, 1000 or more, 3000 or more, 4000 or more, preferably 5000 or more
  • It may be a method capable of producing IL-12.
  • primate CD34 + cells for example, cord blood-derived CD34 + cells, bone marrow-derived CD34 + cells, peripheral blood-derived CD34 + cells, and the like can be used.
  • a desired medium can be appropriately used.
  • DMEM Dynamic Eagle Medium
  • MEM Minimum Essential Medium
  • RPMI-1640 X-VIVOTM
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • serum is preferably bovine serum, most preferably fetal calf serum (FCS).
  • FCS fetal calf serum
  • the culture temperature is not limited, but can be, for example, 32 to 39 ° C, 35 to 38 ° C, or about 37 ° C.
  • CO 2 is not limited, but can be, for example, about 5% (4-6%).
  • the present invention includes a composition for amplifying dendritic cells, a composition for preparing dendritic cells, and a composition for producing dendritic cells, comprising the cytokine and SCF according to any one of the following groups (i) to (v): A dendritic cell amplification medium, a dendritic cell preparation medium, and a dendritic cell production medium.
  • the composition for amplifying dendritic cells are: In addition to the cytokine and SCF described in any one of the groups (i) to (v), GM-CSF and IL-4 may be included.
  • the composition of the present invention may contain sterilized water, buffer solution, salt and the like as appropriate. Examples of the medium include, but are not limited to, the culture solutions described above. The medium may or may not contain serum. In addition, antibiotics may or may not be included.
  • the present invention also relates to the use of cytokines and SCFs described in any one of the following groups (i) to (v) in the production of these compositions or media.
  • GM-CSF Granulocyte / macrophage colony stimulating factor
  • IL-3 IL-3
  • TPO IL-3
  • Flt-3L Flt-3L
  • IL-6 Granulocyte / macrophage colony stimulating factor
  • the present invention also relates to the use of cytokines and SCFs described in any one of groups (i) to (v) above, and GM-CSF and IL-4 in the production of the composition or the medium.
  • the present invention also relates to a dendritic cell amplification kit, a dendritic cell preparation kit, and a dendritic cell production kit comprising the above (i) to (v) and SCF as kit elements.
  • the kit may further include a culture solution (eg, no serum) or a powder for preparing the culture solution (containing amino acids, salts, etc., and not containing serum, antibiotics, etc.).
  • These compositions, media, and kits are preferably for amplifying, preparing, and producing primate dendritic cells including humans, more preferably IL-12 from primate CD34 + cells including humans. It is for amplifying, preparing, and producing dendritic cells with high productivity. These preferably do not contain TNF- ⁇ and / or IL-4.
  • the concentration of TNF- ⁇ and IL-4 in the composition and the medium, if serum is included does not significantly exceed that in serum (eg normal FCS) compared to each concentration contained in serum. It is preferably 3, 2 or 1 times or less of each cytokine concentration, preferably 1/2 or less, more preferably 1/3 or less, or 1/5 or less, specifically 50 ng / ml or less, preferably Is less than 40, 30, 20, 10, 5, 3, or 1 ng / ml.
  • serum preferably only GM-CSF and SCF are included as cytokines.
  • DC from CD34 + cells is, for example, 10 2 times, preferably 0.5 ⁇ 10 3 times, more preferably 1 ⁇ 10 3 times, more preferably 0.5 ⁇ 10 4 times, more preferably 1 ⁇ . 10 4 times, more preferably 0.5 ⁇ 10 5 times, more preferably 1 ⁇ 10 5 times, more preferably 0.5 ⁇ 10 6 times or more.
  • the cells can be increased, for example, at a rate of 5 times, preferably 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, or 13 times or more in one week of culture.
  • Amplified cells are highly pure and contain DC (iDC).
  • the CD11c positive rate of amplified cells is, for example, 30% or more, preferably 40% or more, more preferably 50% or more, 60% or more, 70% or more, 75% or more 80% or more, or 85% or more.
  • mature DC can be obtained by treating iDC with LPS or Poly (I: C), Sendai virus, OK432 or the like.
  • Dendritic cells with high IL-12 production ability obtained by the method of the present invention are useful as DC vaccines useful for immunotherapy of infectious diseases, cancer, and other desired diseases that can be expected to have a beneficial effect by immune induction.
  • tumor immunotherapy in order to present dendritic cells with tumor antigens, they are mixed with cell lysate cells (cell lysates) of tumor cells, pulsed with peptides, or methods of introducing tumor antigen genes into dendritic cells, etc. By presenting the antigen, it can be used for DC therapy for tumors.
  • tumor antigen presentation time can be expected to be longer in vivo than tumor lysates and peptide pulses, and HLA restriction (in the case of peptides; peptides are peptides derived from antigens)
  • HLA restriction in the case of peptides; peptides are peptides derived from antigens
  • due to the binding relationship with HLA if the type of HLA changes, the site of the peptide used in the antigen changes).
  • RNA viruses such as minus-strand RNA viruses can be used for gene transfer when used for immunostimulation (such as tumor immunity), and in addition, RNA virus infection itself causes activation of dendritic cells.
  • the activation process with cytokines can be omitted, and it is thought to contribute to maintenance of cell viability, cost reduction, and further reduction of operation time in ex ⁇ vivo.
  • activated T cells required for T cell transfer therapy especially tumor-specific cytotoxic T cells, etc., can be efficiently and quickly excised in vivo.
  • DC can be appropriately combined with a pharmaceutically acceptable carrier to form a composition.
  • the carrier include a desired solution capable of suspending living cells, such as physiological saline, phosphate buffered saline (PBS), culture solution, and serum.
  • the composition may also contain an antigenic peptide that is presented to dendritic cells.
  • an immunostimulant such as cytokine, cholera toxin, salmonella toxin or the like can be added to the vaccine composition in order to enhance immunogenicity.
  • Vaccines can also be combined with adjuvants such as alum, incomplete Freund's adjuvant, MF59 (oil emulsion), MTP-PE (muramyl tripeptide derived from mycobacterial cell walls), and QS-21 (derived from soapbark tree Quilaja saponaria)) .
  • adjuvants such as alum, incomplete Freund's adjuvant, MF59 (oil emulsion), MTP-PE (muramyl tripeptide derived from mycobacterial cell walls), and QS-21 (derived from soapbark tree Quilaja saponaria)
  • the antigen can be presented to the DC by mixing it with a cell lysate used as an antigen, a peptide pulse, or introducing an antigen gene encoded by a vector into the DC.
  • Antigens include desired antigens associated with infectious microorganisms, viruses, parasites, pathogens, cancers and the like. These may be structural or nonstructural proteins. Such antigens (or their processed peptides) bind to MHC molecules on the surface of dendritic cells and are presented on the cell surface, inducing an immune response.
  • an epitope of an antigenic protein of an infectious microorganism can be analyzed and expressed or presented in dendritic cells.
  • antigens derived from pathogens include hepatitis A virus, hepatitis B virus, hepatitis C virus, hepatitis delta virus, papilloma virus antigen, herpes simplex virus (HSV), varicella-zoster virus (VZV), Epstein -Bar virus, cytomegalovirus (CMV), HIV, malaria and other proteins or partial peptides thereof (GL Mandell et al.
  • DCs presenting these antigens can be used prophylactically and therapeutically against infectious diseases.
  • infectious diseases for example, in the case of influenza, the envelope of the highly virulent strain H5N1 and the like, and in the case of Japanese encephalitis, for example, the Japanese encephalitis virus envelope protein (Vaccine, vol. 17, No. 15-16, 1869-1882 (1999) )
  • AIDS include, for example, HIV gag or SIV gag protein (J. Immunology (2000) vol. 164, 4968-4978), HIV envelope protein, Nef protein, and other viral proteins.
  • cholera for example, the cholera toxin B subunit (CTB) (Arakawa T, et al., Nature Biotechnology (1998) 16 (10): 934-8, Arakawa T, et al., Nature Biotechnology (1998) 16 ( 3): 292-7)
  • rabies for example, rabies virus glycoprotein (Lodmell DL et al., 1998, Nature Medicine 4 (8): 949-52), for cervical cancer, human papillomavirus type 6 And capsid protein L1 (J. Med. Virol, 60, 200-204 (2000)).
  • JE-E antigen protein of Japanese encephalitis JP-A 64-74982, JP-A 1-2854978
  • gD2 protein of human herpes simplex virus JP-A 5-252965
  • polypeptide derived from hepatitis C virus JP 5-192160
  • pseudo-pseudo-rabies virus-derived polypeptide Japanese Patent Publication No. 7-502173
  • cells derived from patients infected with these pathogenic microorganisms may be analyzed to identify epitopes of antigen proteins presented in antigen-presenting cells (APC) and used. It is also preferable to identify and use an epitope for a desired HLA type by appropriately selecting the HLA type.
  • APC antigen-presenting cells
  • a tumor-associated antigen can be obtained, for example, by preparing a crude extract of tumor cells or by partially purifying the antigen (Cohen et al., Cancer Res. 54: 1055 (1994); Cohen et al Eur. J. Immunol. 24: 315 (1994); Itoh et al., J. Immunol. 153: 1202 (1994)).
  • the resulting tumor antigen may be further purified, or may be synthesized or expressed as a recombinant peptide.
  • the present invention provides a composition comprising a DC produced by the method of the present invention and presenting the antigen, and use thereof for immunotherapy.
  • the compositions of the invention can be administered by injection, continuous infusion, sustained release from an implant, or other suitable technique to stimulate an immune response.
  • a composition comprising dendritic cells is administered with a physiologically acceptable carrier, excipient or diluent.
  • Carriers are those that are not significantly toxic to the administered individual at the dosage and concentration used, and include, for example, physiological saline.
  • tumor antigens are specific to tumor cells (ie, are present in tumor cells but not in non-tumor cells), they are present at higher levels in tumor cells than in non-tumor cells of the same type It may be a thing.
  • Administration of these dendritic cells stimulates the immune system.
  • CTL acts as a main effector
  • a desired tumor antigen expressed inside or outside the cell can be used as the antigen.
  • an antigen that appears on the cell surface is preferred,
  • a cell surface receptor or a cell adhesion protein can be used.
  • tumor antigens examples include Muc-1 or Muc-1-like mucin tandem repeat peptide (US Pat. No. 5,744,144), human papilloma virus proteins E6 and E7 that cause cervical cancer, melanoma antigen MART- 1, MAGE-1, -2, -3, gp100 and tyrosinase, prostate cancer antigen PSA, as well as CEA (Kim, C. et al., Cancer Immunol. Immunother. 47 (1998) 90-96), and Her2neu (HER2p63-71, p780-788; Eur. J. Immunol. 2000; 30: 3338-3346) and the like.
  • Muc-1 or Muc-1-like mucin tandem repeat peptide US Pat. No. 5,744,144
  • human papilloma virus proteins E6 and E7 that cause cervical cancer melanoma antigen MART- 1, MAGE-1, -2, -3, gp100 and tyrosinase
  • PSA
  • the dendritic cells prepared according to the present invention are useful in effective immunotherapy against cancer and infectious diseases, and are stimulated with dendritic cells into which tumor antigens or infectious disease related antigen genes have been introduced or dendritic cells thereof. Immunization with T cells provides an effective way to induce anti-tumor or anti-infective immunity in patients.
  • the invention also relates to the use of dendritic cells obtained by the method of the invention in the induction of an immune response. That is, the present invention relates to the use of dendritic cells obtained by the method of the present invention in immunotherapy, specifically, for example, in the treatment of tumors or infectious diseases.
  • the present invention also relates to the use of dendritic cells obtained by the method of the present invention in the production of an immune activator. That is, the present invention relates to the use of dendritic cells obtained by the method of the present invention in the production of an immunotherapeutic agent.
  • an immune activator that is, the present invention relates to the use of dendritic cells obtained by
  • a peptide of an insulin fragment may be used as an epitope in a type I diabetes patient or a model animal thereof (Coon, B. et al., J. Clin. Invest., 1999, 104 (2) : 189-94).
  • the DC composition may further comprise a soluble cytokine receptor or cytokine or other immune regulatory molecule (Schrader, J.W. Mol. Immunol. 28: 295 (1991)).
  • cytokines can be prepared as a composition separate from the DC composition and administered simultaneously, separately or sequentially with the DC.
  • the immune system is stimulated to increase the immune response against infectious microorganisms or cancer. It is useful in the treatment of diseases for which cytokine treatment is considered effective.
  • Dendritic cells into which a vector carrying a gene encoding an immunostimulatory cytokine is introduced are effective immunity inducers.
  • interleukin eg, IL-1 ⁇ , IL-1 ⁇ , IL-2, IL-3, IL-4, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL -10, IL-12, IL-15, IL-18, IL-19, IL-20, IL-21, IL-23, IL-27
  • interferon eg, IFN- ⁇ , IFN- ⁇ , IFN- ⁇
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • TGF tumor necrosis factor
  • IL-4 for example, Arai et al. (1989), J. Immunol. (142 (1) 274-282, and for IL-6, for example, Yasukawa (1987), EMBO J., 6 (10): 2939-2945, IL-12, for example, Wolf et al. (1991), J. Immunol. 146 (9): 3074-3081
  • IFN- ⁇ is, for example, Gren et al. (1984) J. Interferon Res. 4 (4): 609-617, and Weismann et al. (1982) Princess Takamatsu Symp. 12: 1-22, TNF, for example, Pennica et al.
  • examples of the nucleic acid sequence encoding GM-CSF include a sequence containing the 84th to 461st sequences of ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ Accession number144NM_000758 (the amino acid sequence is 18th to 144th of NP_000749).
  • nucleic acid sequence encoding IL-4 examples include sequences including the 443th to 829th sequences of Accession number NM_000589 (the amino acid sequence is the 25th to 153th positions of NP_000580). Utilizing the natural genes encoding these cytokines or the degeneracy of the genetic code, vectors containing mutant genes that still encode functional cytokines can be designed and introduced into dendritic cells.
  • genetic modification may be performed to express a modified form of these cytokines.
  • a cytokine having two forms of a precursor and a mature body for example, one that generates an active fragment by cleavage of a signal peptide, or one that generates an active fragment by limited degradation of a protein
  • the precursor or mature body may be genetically modified to express any one of the above.
  • Other variants eg, fusion proteins between an active fragment of a cytokine and a heterologous sequence (eg, a heterologous signal peptide) may be used.
  • Dendritic cells are useful for stimulating a patient's own T cells in vivo, or dendritic cells are also useful for stimulating T cells in vitro.
  • Sensitized T cells can be administered to a patient to stimulate the patient's immune system via ex vivo immunotherapy.
  • T cells stimulated by dendritic cells can be created by contacting mature dendritic cells presenting an antigen with T cells.
  • the antigen to be presented in the dendritic cells may be a protein (or processed product thereof) expressed from the vector, or may be pulsed to the dendritic cells from the outside.
  • CTL is induced by activated T cells.
  • the present invention also relates to a method for stimulating the immune system using dendritic cells produced by the method of the present invention.
  • treatment that stimulates the immune system can be performed in patients suffering from infection or cancer.
  • This method is a method comprising the step of administering dendritic cells or T cells.
  • This method is specifically a method comprising the step of administering to a patient a therapeutically effective amount of DC produced according to the present invention or T cells stimulated by the DC.
  • an antigenic peptide By immunizing dendritic cells with an antigenic peptide to present the desired antigen, immunity against the desired antigen can be induced.
  • the dose of the composition containing DC or T cells to an individual varies depending on the disease, patient weight, age, sex, symptom, purpose of administration, form of administration composition, administration method, etc. It is possible to determine.
  • the administration route can be appropriately selected. For example, it is preferably administered to the affected site. In general, it can be injected by intramuscular, intraperitoneal, subcutaneous or intravenous injection, or direct injection into the lymph nodes. Preferably, it is administered to the patient by subcutaneous, intraperitoneal injection or direct injection into the lymph nodes.
  • the dendritic cells can generally be administered to the patient at 10 5 to 10 9 cells, preferably 10 6 to 10 8 cells, more preferably about 10 7 cells.
  • the number of administration can be one time or multiple times within the range of clinically acceptable side effects.
  • the administration target is not particularly limited, but for example, birds, mammals (human and non-human) including chicken, quail, mouse, rat, dog, pig, cat, cow, rabbit, sheep, goat, monkey, and human Mammals), and other vertebrates.
  • Dendritic cells are useful as antitumor agents.
  • tumor growth can be suppressed by administering a dendritic cell presenting a tumor antigen to a tumor site.
  • the tumor site refers to an area of the tumor or its surroundings (for example, within 5 mm, preferably within 3 mm from the tumor).
  • a higher effect can be obtained by contacting the tumor antigen with the dendritic cell before administering the dendritic cell to the tumor.
  • Tumor antigens can be contacted with dendritic cells by mixing dendritic cells with tumor cell lysate (cell lysate), pulsing tumor antigen peptides into dendritic cells, or dendritic cells with tumor antigens.
  • a method of introducing and expressing a gene can be used.
  • T cells are about 10 5 to 10 9 cells, preferably 10 6 to 10 9 cells, more preferably 10 8 to 10 cells per 1 m 2 of body surface area.
  • 10 9 cells may be administered by intravenous infusion (Ridell et al, 1992, Science 257: see 238-241).
  • the infusion can be repeated at a desired interval (eg, monthly).
  • the recipient after administration may be monitored during or after the T cell infusion for any side effects as needed.
  • the T cells are preferably obtained from the same patient from whom the dendritic cells were obtained.
  • the dendritic cells that are collected from the patient and used to stimulate the T cells may be derived from an HLA-compatible healthy donor.
  • dendritic cells may be collected from the patient and the T cells may be derived from a healthy donor that is HLA compatible.
  • the cells containing dendritic cells which are the active ingredients of the vaccine produced according to the present invention, are inoculated into the human body as a therapeutic vaccine, cell proliferation can be eliminated in order to increase safety.
  • umbilical cord blood-derived monocytes are known to have an extremely low proliferation ability by inducing differentiation.
  • heat treatment, radiation treatment, or mitomycin C (MMC) ) Proliferation can be eliminated while leaving the function as a vaccine.
  • MMC mitomycin C
  • irradiation can be performed with a total radiation dose of 1000 to 3300 Rad.
  • mitomycin C treatment method for example, 25-50 ⁇ g / ml mitomycin C can be added to dendritic cells and incubated at 37 ° C. for 30-60 minutes.
  • heat treatment can be performed at 50 to 65 ° C. for 20 minutes.
  • the predetermined administration group refers to the following composition.
  • GMSCF administration group IMDM supplemented with 10% FBS containing recombinant human GM-CSF (100 ng / ml) (Peprotech), recombinant human SCF (Stem cell factor; SCF) (50 ng / ml) (Peprotech) 0.1
  • GMSCF administration group IMDM supplemented with 10% FBS containing recombinant human GM-CSF (10 ng / ml) (Peprotech), recombinant human SCF (Stem cell factor; SCF) (5 ng / ml) (Peprotech) 0.01
  • GMSCF administration group IMDM supplemented with 10% FBS containing recombinant human GM-CSF (1 ng / ml) (Peprotech), recombinant human SCF (Stem cell factor; SCF) (0.5 ng / ml)
  • FST6 administration group recombinant human Flt3-L (100 ng / ml) (Richter-HELM BioLogics GmbH & Co.
  • SCF administration group IMDM supplemented with 10% FBS containing recombinant human SCF (50 ng / ml) (Peprotech)
  • (1) iDC processing and (2) OK432 processing refer to the following processing.
  • (1) iDC treatment Incubation in a medium with the following concentration for 2 days.
  • IMDM with 10% FBS (2) OK432 treatment: Incubation in a medium with the following concentration for 2 days.
  • IMDM with 10% FBS containing OK432 0.5KE / ml
  • the culture medium was IMDM supplemented with 10% FBS and cultured at 37 ° C. and 5% CO 2 .
  • Example 1 Production of dendritic cells from human-derived dendritic cell progenitor cells by using a predetermined cytokine Human umbilical cord blood-derived CD34 + cells (purchased from Lonza) in a medium containing the predetermined cytokine, 35 Cultured for days, amplified and differentiated. From the results shown in FIG. 1, a large amount of cells were obtained by the method of culturing human umbilical cord blood-derived CD34 + cells in the GMSCF administration group for a predetermined period and then in the GMIL-4 administration group (FIG. 1 (FIG. 1)). "GMSCF ⁇ GMIL-4”))).
  • Example 2 Measurement of IL-12 production amount of dendritic cells produced by using predetermined cytokines About dendritic cells produced from human umbilical cord blood-derived CD34 + cells using predetermined cytokines, IL-12 Productivity was examined. In the experiment, Human Inflammation Kit (catalog number: 551811) manufactured by Becton Dickinson and Company (BD) was used (FIG. 3).
  • Example 3 CD14 + precursor human peripheral blood by using a given cytokine (monocytes) dendritic cells
  • CD14 + precursor produced human peripheral blood from a (monocytes), given cytokine was cultured in a medium containing for 28 days, followed by amplification and differentiation. From the results shown in FIG. 6, compared to the conventionally known method of culturing in a medium containing GM-CSF and IL-4, the method of culturing in a medium containing GM-CSF and SCF is more dendritic from monocytes. It is suggested that it is suitable as a method for producing a large number of cells.
  • the present invention makes it possible to produce a large amount of dendritic cells having IL-12 production ability.
  • the produced dendritic cells can be used as an anti-tumor dendritic cell vaccine by presenting a cancer antigen.
  • By using the method of the present invention it has become possible to efficiently produce a large amount of dendritic cells even if there are few DC precursor cells obtained from a patient.
  • Dendritic cells obtained by this production method have high antitumor effects and are useful as dendritic cell vaccines useful for immunotherapy such as cancer and infectious diseases.
  • the present invention is expected to greatly contribute to immunotherapy for cancer.
  • the following method refers to “a method of culturing CD34 + cells in a predetermined medium for a predetermined period and further culturing for 1 week under the conditions of the GMIL-4 administration group”.
  • the “predetermined medium” refers to “a medium containing GM-CSF at a concentration higher than 1 ng / ml and SCF at a concentration higher than 0.5 ng / ml”.
  • FIG. 5 shows the CD11c positive cell rate at the 35-day culture time point, and there is a fact that all the administration groups have a high CD11c positive cell rate (FIG. 5).

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Abstract

【課題】本発明は、複数のサイトカインの存在下でDC前駆細胞を培養する工程を含む、DCの製造方法、製造された樹状細胞およびその利用を提供することを課題とする。 【解決手段】本発明者らは、複数のサイトカインの存在下でDC前駆細胞を培養した後、GM-CSF及びIL-4の存在下で1週間程度培養を行うことにより、IL-12産生能の高い樹状細胞が得られることを見出した。本発明により、少ないDC前駆細胞から大量の、かつIL-12産生能の高いDCを得ることが可能となるので、DCを用いた抗腫瘍免疫療法および感染症治療などにおいて投与するDC数を増やすことが容易になり、DCワクチンの効果の増大が期待される。

Description

樹状細胞の製造方法
　本発明は樹状細胞の製造方法、製造された樹状細胞およびその利用に関する。
　樹状細胞 (dendritic cell; DC) は末梢血液、皮膚、リンパ器官及び胸腺などに存在する抗原提示細胞 (APC) の１つであり、リンパ組織及び非リンパ組織に広く分布している （Steinman, R. M. 1991, Ann. Rev. Immunol. 9:271; Banchereau, J.B. および R.M. Steinman, 1998, Nature 392:245 参照）。樹状細胞は強力な抗原提示能を有し、樹状細胞上のクラスI、クラスIIに抗原ペプチドを発現させ、それぞれ、CD4、CD8 T細胞を活性化する。これにより特定の抗原（病原微生物の抗原、腫瘍関連抗原、移植抗原など）に対する生体内の免疫応答を誘導する。
　DCが持つ高い免疫誘導能は、多くの腫瘍に対する免疫療法（DC治療）に有用である。本発明者らは以前、マウスにおいてセンダイウイルス (SeV) で刺激したDCが強力な抗腫瘍効果を持つことを示してきた (S. Shibata et al., J. Immunol, 2006 177: 3564-3576; Yoneyama, Y. et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 2007, 355:129-135)。ところで抗腫瘍効果は接種するDCの数に依存する。臨床においても、接種するDCの数量が治療効果に大きく関与すると考えられるが、患者の容態によっては、採取可能なDC前駆細胞（DC progenitors）の数が限られる場合が多くあると予想され、結果的に得られるDCの数が十分でないために治療効果が不十分となる可能性がある。従って、限られたDC前駆細胞を効率的に増幅する方法が求められている。更に、抗癌作用を発揮するために、インターロイキン12（IL-12）産生量の高いDCを効率的に作製する方法が求められている（Cancer Immunol Immunother (2005) 54: 721-728）（特表2008-515439）。
　なお、本発明の先行技術文献を以下に示す。
Steinman, R. M., 1991, Ann. Rev. Immunol. 9: 271-296 Banchereau, J.B. および R.M. Steinman, 1998, Nature 392: 245-252 Shibata, S. et al., J. Immunol, 2006 177: 3564-3576 Yoneyama, Y. et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 2007, 355:129-135 Knutson, K. L. et al., Cancer Immunol Immunother (2005) 54: 721-728
特表2008-515439
　本発明は上記状況に鑑みてなされたものであり、本発明が解決しようとする課題は、大量のIL-12を産生する能力を有するが高い樹状細胞を効率的に製造する方法を提供することである。
　本発明者らは最近、DCを効率的に増幅する方法を開発した。しかし、この方法で作製したDCは、IL-12産生能が極めて低いことが判明した。そのため、このDCを生体内で用いても、十分な抗癌効果を期待できない恐れがあった。そこで本発明者らは、鋭意研究を重ね、IL-12産生量の高いDCを効率的に作製する方法に関する発明をした。本発明は、樹状細胞の製造方法、製造された樹状細胞およびその利用等に関する。より具体的には、
〔１〕
樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）（ａ）(i) 樹状細胞前駆細胞を顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、(ii) インターロイキン-3（IL-3）、(iii) トロンボポエチン（TPO）、(iv) Flt-3リガンド（Flt-3L）、および (v) Flt-3L、TPO、およびIL-6 からなる群から選択される(i)から(v)のいずれか、および（ｂ）幹細胞因子（SCF）の存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔２〕
〔１〕に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）樹状細胞前駆細胞を顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）および幹細胞因子（SCF）の存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔３〕
〔１〕に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）樹状細胞前駆細胞をIL-3およびSCFの存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔４〕
〔１〕に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）樹状細胞前駆細胞をTPOおよびSCFの存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔５〕
〔１〕に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）樹状細胞前駆細胞をFlt-3LおよびSCFの存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔６〕
〔１〕に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
（１）樹状細胞前駆細胞をFlt-3L、TPO、IL-6、およびSCFの存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程、
〔７〕
樹状細胞前駆細胞は、ヒト由来の細胞である、〔１〕から〔６〕に記載の方法、及び
〔８〕
ヒト由来の細胞は、臍帯血由来CD34+ 細胞である、〔７〕に記載の方法。
等に関する。
　なお上記の各項において、同一の項を引用する各項に記載の発明の２つまたはそれ以上を任意に組み合わせた発明は、それらに引用される上位の項に記載の発明において、既に意図されている。また、本明細書に記載した任意の発明要素およびその任意の組み合わせは、本明細書において意図されている。また、それらの発明において、本明細書に記載の任意の要素またはその任意の組み合わせを除外した発明も、本明細書に意図されている。また本明細書は、明細書中に例えば好ましいとしてある特定の態様を記載した場合、それを開示するのみならず、その態様を含むより上位の本明細書に開示された発明から、その態様を除外した発明も開示するものである。
　樹状細胞は高い免疫誘導能を有するため、本発明の方法により得られた樹状細胞は、癌および感染症などの免疫治療に有用な樹状細胞（DC）ワクチンとして有用である。例えば、腫瘍免疫治療に関しては、樹状細胞に腫瘍抗原を提示させるために、腫瘍細胞のcell lysate (細胞溶解物) と混合、ペプチドでパルス、または樹状細胞に腫瘍抗原遺伝子を導入する方法などにより抗原を提示させ、腫瘍に対するDC治療に用いることができる。本発明の方法を用いれば、患者から採取したDCが少なくても、治療効果を得るのに十分な細胞数のDCを調製することが可能となる。
　尚、下記図1のグラフの縦軸の目盛の標記は、以下を意味するものとする。
　1.E＋04、1e4、または1.00E+04：1.0×104（個）
　1.E＋05または1.00E+05：1.0×105（個）
　1.E＋06または1.00E+06：1.0×106（個）
　1.E＋07または1.00E+07：1.0×107（個）
　1.E＋08または1.00E+08：1.0×108（個）
　1.E＋09または1.00E+09：1.0×109（個）
　1.E＋10または1.00E+10：1.0×1010（個）
　1.E＋11または1.00E+11：1.0×1011（個）
ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞を、所定のサイトカインを含む培地で培養し、増幅と分化を行った結果を、曲線で示した図である。詳細は、以下の通りである。尚、図中のアスタリスク（*）は、28日目の時点を示している。「GMSCF」：CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で35日間培養したサンプル。「GMSCF⇒GMIL-4」 ：CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。「IL-3⇒GMIL-4」：CD34+ 細胞を、IL-3投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。「SCFIL-3⇒GMIL-4」：CD34+ 細胞を、IL-3SCF投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。「TPO/SCF⇒GMIL-4」：CD34+ 細胞を、TPOSCF投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。「Flt3-L/SCF⇒GMIL-4」：CD34+ 細胞を、FS投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。「FST6⇒GMIL-4」：CD34+ 細胞を、FST6投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養したサンプル。 「CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養した」細胞について、樹状突起の有無についての確認した結果を示した図である。図の標記「iDC処理」は、上記細胞をiDC処理した細胞の写真を表している。一方、図の標記「OK432処理」は、上記細胞をOK432処理した細胞の写真を表している。樹状細胞であれば、「OK432処理」により、樹状突起が見られるようになる。図面で示している写真において、iDC処理群の方では樹状突起が見られないが、OK432処理群の方では樹状突起が確認できた。よって、「CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で28日間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で7日間培養した」細胞は、樹状細胞と考えられる。 （A）ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞等を各所定のサイトカインを含む培地で35日間培養した細胞についてのサイトカイン（IL-12）産生量を測定した結果を示した図である。縦軸の数値の単位は、「pg/ml/48h」である（但し1×106 細胞を1 mlの培地で培養した）。培養には、直径3.5cmディッシュを用いた。ＥＬＩＳＡ法を用いてIL-12産生量を測定した。図中では、各所定のサイトカインを含む培地で35日間培養した。35日間培養した細胞にiDC処理を行ったサンプル（図中「iDC処理群」と標記している）、各所定のサイトカインを含む培地で35日間培養した細胞にiDC処理（iDCにOK432処理を行ったもの）を行ったサンプル（図中「OK432処理群」と標記している）のIL-12産生量を示している。図中では、「iDC処理群」と比べ、「OK432処理」という樹状細胞を活性化する処理をしたサンプル（「OK432処理群」）でのIL-12の産生量を測定した結果を示している。図中で示している（１）～（８）のサンプルの詳細は以下の通りである。尚、括弧内の数字は、各サンプルについての、縦軸の数値（小数第３位を四捨五入して、小数第２位まで求めた）を示している。（１）：CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で5週間培養したサンプル（iDC処理群では0.02、OK432投与群では5.96）。（２）：CD34+ 細胞を、IL-3投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0、OK432投与群では21.12）。（３）：CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0.42、OK432投与群では210.55）。（４）：CD34+ 細胞を、IL-3SCF投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0、OK432投与群では71.40）。（５）：CD34+ 細胞を、TPOSCF投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0、OK432投与群では8891.03）。（６）：CD34+ 細胞を、FS投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0.22、OK432投与群では5333.57）。（７）：CD34+ 細胞を、FST6投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0、OK432投与群では6631.32）。（８）：単球由来CD14＋細胞を、GMIL4投与群の条件で1週間培養したサンプル（iDC処理群では0.55、OK432投与群では283.76）。この培養したサンプルは、従来からIL-12を産生する樹状細胞であることが知られており（特表2008-515439）、ここでは、実験のコントロールとして示している。（B)図（A）で示したデータにおいて、一部のサンプルについての更なる詳細なデータを示した。縦軸には、図（A）と同様に、IL-12産生量を示した。縦軸の数値の単位は、図（A）と同様に、「pg/1e6 cell/ml/48h」である。ＥＬＩＳＡ法を用いてIL-12産生量を測定した。図中で示している（１）～（４）及び（８）のサンプルの詳細は、図（A)と同様である。 ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞を、下記 (1)～(3) の条件で培養し、増幅と分化を行った結果を、曲線で示した図である。(1)：GMSCF投与群の条件で培養したもの（図の標記は、「GMSCF」）。(2)：0.1GMSCF投与群の条件で培養したもの（図の標記は、「GMSCF0.1」）。(3)：0.01GMSCF投与群の条件で培養したもの（図の標記は、「GMSCF0.01」）。 上記図4のアスタリスク（*）で示した時点（35日間培養時点）における各条件で培養した細胞のCD11c陽性細胞率を測定した結果を示した図である。図の標記は以下の通りである。GMSCF：GMSCF投与群の条件で培養したもの。GMSCF0.1：0.1GMSCF投与群の条件で培養したもの。GMSCF0.01：0.01GMSCF投与群の条件で培養したもの。 ヒト末梢血中のCD14＋前駆体（単球）を所定のサイトカインを含む培地で培養し、増幅と分化を行った結果を、曲線で示した図である。詳細は、以下の通りである。「GMSCF」：単球を、GMSCF投与群の条件で25日間培養したもの。「GMIL-4」：単球を、GMIL-4投与群の条件で培養したもの。この培養法は、従来から知られている方法（特表2008-5151439）である。
　本発明は、樹状細胞前駆細胞を複数のサイトカインの存在下で培養する工程を含む、樹状細胞を製造する方法に関する。より具体的には本発明は、以下（１）及び（２）に記載の工程を含む、樹状細胞を製造する方法に関する。
（１）樹状細胞前駆細胞を以下（i）から（v）からなる群より選択されるサイトカイン及び幹細胞因子（SCF）の存在下で培養する工程、及び
（２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
　尚、(i)から(v)とは、以下をいう。
(i) 顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）
(ii) IL-3
(iii) TPO
(iv) Flt-3L
(v) Flt-3L、TPO、およびIL-6
　上記工程により、DC前駆細胞を効率的に増幅および/または分化させることができる。またIL-12産生量の高いDCを効率的に作製することが出来る。ここであるサイトカインの存在下とは、そのサイトカインが少なくとも含まれることを言い、他のサイトカインがさらに含まれていてもよい。好ましくは、そのサイトカインをもっぱら含むものであり、例えば他のサイトカインを含まないものである。培養期間は制限はないが、好ましくは約３週間から約５週間、好ましくは約３週間から約４週間、例えば15日以上、16日以上、18日以上、19日以上、20日以上、21日以上、22日以上、23日以上、24日以上、25日以上、38日以下、35日以下、30日以下、29日以下、28日以下、27日以下、26日以下、25日以下、24日以下、22日以下、21日以下、20日以下であってよい。
　本発明において樹状細胞（Dendritic cell; DC）とは、成熟状態において樹枝状形態をとり、抗原を提示してT細胞を活性化する能力を持つ細胞をいう。また本発明において樹状細胞前駆細胞とは、適当なサイトカイン（例えばG-CSF、GM-CSF、TNF-α、IL-4、IL-13、SCF (c-kitリガンド)、Flt-3リガンド、またはそれらの組み合わせ）の存在下でDCに分化する細胞を言い、好ましくは4週間以内、より好ましくは20日以内、より好ましくは18日以内、より好ましくは16日以内に樹状細胞に分化できる細胞である。このような細胞には、CD34+幹細胞、造血始原細胞、骨髄単核球等が挙げられる。これらの細胞は、例えば細胞画分として調製することができる。細胞画分とは、細胞の分離（または分画）により得られた細胞集団である。細胞画分は、細胞および薬学的に許容される担体を含む組成物であってよい。担体としては、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）、培養液、血清など、生細胞を懸濁することができる所望の溶液が挙げられる。
　樹状細胞には、生体内各種組織器官に分布する骨髄細胞由来の樹枝状形態をとる細胞群、および骨髄または血液由来の幹細胞から、in vitroでサイトカイン等を利用して分化誘導をかけた生体内組織器官に分布する樹枝状形態をとる細胞、およびそれと同等の細胞群が含まれる。具体的には、樹状細胞には、例えばリンパ球系樹状細胞（Th2への誘導または免疫寛容を誘導するものであってもよい）、骨髄球系樹状細胞（一般的に用いられる樹状細胞。未熟樹状細胞および成熟樹状細胞を含む）、ランゲルハンス細胞（皮膚の抗原提示細胞で重要な樹状細胞）、相互連結細胞（リンパ節、脾臓のT細胞領域にあり、T細胞への抗原提示に働いていると考えられている細胞）、ろ胞樹状細胞（B細胞への抗原提示細胞として重要、抗原と抗体複合体、抗原と補体複合体を抗体レセプター、補体レセプターにより、樹状細胞上に提示することで、B細胞に抗原提示している。）などを含むものであり、好ましくは、MHCクラスIおよびクラスIIを高発現しており、さらに好ましくはCD11cを発現している細胞である。本発明においては、より好ましくは、骨髄、臍帯血、または末梢血から回収された細胞からDCまたはDC前駆細胞が用いられる。DC前駆細胞としては、例えばCD34陽性細胞が挙げられる。またDCの由来する生物種は特に限定されず、ヒト、サルなどの霊長類、マウス、ラットなどのげっ歯類、ウサギ、ウシ、ヤギなどの哺乳類のDCであってよい。
　また、樹状細胞は、樹枝状形態を有し、CD11c、HLA-class II (HLA-DR、-DP、または -DQ)、CD40、およびCD1aからなる群より選択される表面マーカーの２つ以上が陽性の細胞であってよい。本発明において樹状細胞は、より好ましくは、HLA-class II+およびCD11c+の細胞、より好ましくはCD1a+、HLA-class II+、およびCD11c+の細胞で、かつ系統マーカーが陰性（Lin-）、すなわちT細胞マーカー（CD3）、B細胞マーカー（CD19、CD20）、NK細胞マーカー（CD56）、好中球マーカー（CD15）、単球マーカー（CD14）を発現してない細胞である。骨髄球系樹状細胞（Myeloid DC）の場合、CD11bをさらに発現していることが好ましい。例えば、CD11b+ CD11c+細胞は、本発明においてDCに含まれる。リンパ球系樹状細胞（Lymphoid DC）においては、CD8をさらに発現していてよい。
　また、本発明において樹状細胞には成熟樹状細胞および未成熟樹状細胞が含まれる。未成熟樹状細胞とは、成熟状態に比べT細胞活性化能力が有意に低い樹状細胞を言う。具体的には、未成熟樹状細胞は、LPS (1μg/ml) を添加し2日間培養して成熟を誘導した樹状細胞に比べ、抗原提示能が1/2未満、好ましくは1/4未満のものであってよい。抗原提示能は、例えばアロT細胞活性化能（混合リンパ球試験；アロT細胞と樹状細胞の混合培養で、T細胞対樹状細胞の割合は1：10で培養、好ましくはその比率を変化させて培養したもので、培養終了8時間前に3H-thymidineを添加し、そのT細胞のDNA内の取込み量によって、T細胞増殖能力を定量したもの；文献 Gene Therapy 2000; 7; 249-254）、あるいはペプチドを用いた特異的細胞傷害性T細胞（CTL）の誘導能試験（樹状細胞に、ある抗原のあるClass I 拘束性の既知のペプチドを添加して、樹状細胞を採取したのと同じ健常人末梢血のT細胞を共培養（3日目以降はIL-2を25U/ml、好ましくは100U/ml)（好ましくは21日間３回の樹状細胞による刺激、更に好ましくは14日間2回の樹状細胞の刺激）し、得られたエフェクター細胞と51Crでラベルされたターゲット細胞（ペプチドの拘束性のClass I陽性の腫瘍細胞）を100:1～2.5:1（100:1、50:1、25:1、20:1、12.5:1、10:1、5:1、または 2.5:1）、好ましくは10:1 で４時間混合培養してターゲット細胞の51Cr遊出量で定量したもの（文献 Arch Dermatol Res 2000; 292; 325-332））により定量することができる。また未成熟樹状細胞は、好ましくは抗原貪食能を持ち、更に好ましくはT細胞活性化のための副刺激を誘導する受容体の発現が低発現（例えば上記のようにLPS誘導した成熟DCに比べ有意に）あるいは陰性である。一方で、成熟樹状細胞とはT細胞活性化などの為の抗原提示能力が未成熟状態に比べて有意に高い樹状細胞を言う。具体的には、成熟樹状細胞は、LPS (1μg/ml) を添加し2日間培養して成熟を誘導した樹状細胞の抗原提示能の1/2以上、好ましくは同等以上の抗原提示能を持つ細胞であってよい。また成熟樹状細胞は、好ましくは抗原貪食能が低いか、または持たず、更に好ましくはT細胞活性化のための副刺激を誘導する受容体の発現が陽性のものをいう。また、樹状細胞の活性化とは、未成熟樹状細胞から成熟樹状細胞への移行を言い、活性化樹状細胞には、成熟樹状細胞、および、活性化刺激により副刺激を誘導するCD80、CD86の発現を上昇させている途中経過の樹状細胞が、その範疇に含まれる。
　成熟ヒト樹状細胞は、CD40、CD80、CD86およびHLA-class IIの発現が陽性の細胞である。例えば、CD80、およびCD86からなる群より選択されるマーカーを基に、未成熟樹状細胞と成熟樹状細胞を見分けることができる。未成熟樹状細胞ではこれらのマーカーは弱いか、好ましくは陰性であるが、成熟樹状細胞では陽性である。
　上記のように、未成熟樹状細胞は、通常、高い貪食能を保持している。樹状細胞にLPS (1μg/ml) を添加し2日間培養すると、樹状細胞は活性化され貪食能は低下する。貪食能は、樹状細胞内への小分子の取り込み量または取り込み細胞の割合を測定して知ることができる。好ましくは、貪食能は、樹状細胞内への小分子の取り込み量で決定される。例えば、直径 1μm程度の着色ビーズを用いて、樹状細胞内へのビーズの取り込みを測定することができる。4℃で陽性となるバックグランドを差し引いて定量する。高い貪食能とは、樹状細胞内への小分子の取り込み量が、樹状細胞を上記のようにLPS (1μg/ml) で2日間刺激した樹状細胞の4倍以上、より好ましくは5倍以上、より好ましくは6倍以上の貪食能を言う。あるいは、小分子の取り込み細胞の割合が2倍以上、より好ましくは3倍以上である。低い貪食能とは、樹状細胞内への小分子の取り込み量が、LPS (1μg/ml) で2日間刺激した樹状細胞の4倍未満、より好ましくは2倍未満、より好ましくは1.5倍未満である。あるいは、小分子の取り込み細胞の割合で測定した場合に、2倍未満、より好ましくは1.5倍未満である。
　成熟樹状細胞の判別は当業者が通常行っており、上記の各マーカーおよびその発現の測定方法も当業者に周知である。例えばCD11cは約150 kDの接着糖蛋白 (p150, インテグリンα鎖) である。CD11cはCD18と結合してCD11c/CD18複合体を形成し、フィブリノーゲンへの結合力を有し、また、iC3bおよびICAM-1の受容体となることが報告されている。また、CD11c/CD18は刺激を受けた上皮の受容体に結合する接着分子として働きうることが報告されている（Knapp, W. et al., eds., 1989, Leucocyte Typing IV: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Barclay, N.A. et al., eds., 1993, The Leucocyte Antigen FactsBook, CD11 Section, Academic Press Inc., San Diego, California, p. 124; Stacker, S.A. and T.A. Springer, 1991, J. Immunol. 146:648）。
　CD1aは約49 kDのポリペプチドでβ 2ミクログロブリンと結合する。CD1aはMHC class I抗原と構造的に類似しており、抗原提示に機能するとみなされる（Knapp, W. et al., eds., 1989, Leucocyte Typing IV: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Schlossman, S. et al., eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Hanau, D. et al., 1990, J. Investigative Dermatol. 95: 503; Calabi, F. and A. Bradbury., 1991., Tissue Antigens 37: 1）。
　CD11bは、インテグリンαM鎖、Mac-1、CR3、iC3bR（complement receptor type 3）、Mo1とも呼ばれる、分子量が約165～約170のI型膜貫通糖蛋白質である。補体 (iC3b)、フィブリノーゲン、凝固因子X のレセプターとして機能し、食細胞運動に関与する（Todd R.F. et al. J. Immunol.,126,1435-1442 (1981); Leong A.S.Y. Appl. Immunohistochem. Surg. Pathol.,120-128 (1993); Todd R.F. et al. Hybridoma, 1, 329-337 (1982); Cobbold S. et al. Leucocyte Typing III, 788-803 (1987); Keizer G. et al. Eur. J. Immunol., 15,1142-1148. (1985); Laffon A. et al. J.Clin. Invest., 88, 546-552 (1991); Acevedo A. et al. J. Invest. Dermatol., 97, 659-666 (1991)）。
　CD11c（インテグリンαXサブユニット、もしくはp150白血球表面抗原）は、インテグリンファミリーの分子であり、他の白血球インテグリン（CD11a、CD11b、CD11d）と同様に、インテグリンβ2サブユニット（CD18）と非共有結合的に結合している。CD11cは、分子量145-150kDaの膜貫通糖タンパクで、樹状細胞のマーカーとしてよく知られている（Molica S. et al. Blood, 81, 2466 (1993); Van der Vieren M. et al. Immunity, 3, 683-690 (1995); Hogg N. et al. Leucocyte Typing III, 576-602 (1987)）。
　CD14は53-55 kDのグリコシルホスファチジルイノシトール (GPI) アンカー型単鎖糖蛋白で、細網樹状細胞およびある種のランゲルハンス細胞で発現する。CD14はLPSと血清LPS結合蛋白質 (LPB) の複合体に対する高親和性の表面受容体として同定された（McMichael, A.J. et al., eds., 1987, Leucocyte Typing III: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Knapp, W. et al., eds., 1989, Leucocyte Typing IV: White Cell Differentiation Antigens, Oxford University Press, New York; Schlossman, S. et al., eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Wright , S.D. et al., 1990, Science 249:1434）。
　CD40は45-48 kDのI型膜嵌入型蛋白質（type I integral membrane glycoprotein）であり、抗CD40抗体は細胞マーカーとしてよく使用されている（Schlossman, S. et al., eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Galy, A.H.M.; and H. Spits, 1992, J. Immunol. 149: 775; Clark, E.A. and J.A. Ledbetter, 1986, Proc. Natl. Acad. Sci. 83: 4494; Itoh, H. et al., 1991, Cell 66: 233; Barclay, N.A. et al., 1993, The Leucocyte Antigen Facts Book., Academic Press）。
　CD80は約60 kDの膜貫通型糖蛋白であり Ig supergene familyの一員である。CD80はT細胞で発現するCD28およびCD152 (CTLA-4) のリガンドである（Schlossman, S. et al., eds., 1995, Leucocyte Typing V: White Cell Differentiation Antigens. Oxford University Press, New York; Schwarts, R.H., 1992, Cell 71: 1065; Azuma, M. et al., 1993, J. Exp. Med. 177: 845; Koulova, L. et al., 1991, J. Exp. Med. 173: 759; Freeman, G.J. et al., 1998, J. Immunol. 161: 2708; Behrens, L. et al., 1998, J. Immunol., 161(11):5943; Guesdon, J.-L. et al., 1979, J. Histochem. Cytochem. 27: 1131-1139）。
　CD83は約45 kDの膜貫通蛋白質でIg superfamilyの一員である。CD83は短鎖のV型Igの細胞外ドメインとC末の細胞質tailを持つ。CD83は主にろ胞樹状細胞、循環樹状細胞、リンパ組織の相互連結 (interdigitating) 樹状細胞、in vitroで生成させた樹状細胞、および胸腺樹状細胞に発現する（Zhou, L-J., and T.F. Tedder, 1995, J. Immunol. 154. 3821; Zhou, L-J. et al., 1992, J. Immunol. 149: 735; Summers, K.L. et al., 1995, Clin Exp. Immunol. 100:81; Weissman, D. et al., 1995, Proc. Natl. Acad. Sci USA. 92: 826; Hart, D.N.J., 1997, Blood 90: 3245）。
　CD86 (B70/B7-2) は約75 kDの細胞表面蛋白質でCD28およびCTLA-4の第2のリガンドであり初期免疫応答におけるT細胞の副刺激に重要な役割を持つ（Azuma M. et al., 1993, Nature 366: 76; Nozawa Y. et al., 1993, J. Pathology 169: 309; Engle, P. et al. 1994., Blood 84: 1402; Engel, P. et al., CD86 Workshop Report. In: Leukocyte Typing V. Schlossman, S.F. et al. eds., 1994, Oxford University Press; Yang, X.F. et al., 1994, Upregulation of CD86 antigen on TPAstimulated U937 cells, 1994, (abstract). American Society of Hematology, Nashville, TN; Guesdon, J.-L.et al., 1979, J. Histochem. Cytochem. 27: 1131-1139）。
　CCR7はBLR-2、EBI-1、およびCMKBR7とも呼ばれる7回膜貫通型G蛋白質結合受容体であり、CCケモカインである MIP-3β/Exodus 3/ELC/CCL19 および 6Ckine/Exodus 2/SLC/TCA4/CCL21 の受容体である（Sallusto, F. et al., 1999, Nature 401:708-12; Lipp, M. et al., 2000, Curr. Top. Microbiol. Immunol. 251:173-9; Birkenbach, M.et al., 1993, J. Virol. 67:2209-20; Schweickart, V. L. et al., 1994, Genomics 23:643-50; Burgstahler, R. et al., 1995, Biochem. Biophys. Res. Commun. 215:737-43; Yoshida, R. et al., 1997, J. Biol. Chem. 272:13803-9; Yoshida, R. et al., 1998, J. Biol. Chem. 273:7118-22; Yoshida, R. et al., 1998, Int. Immunol. 10:901-10; Kim, C. H. et al., 1998, J. Immunol. 161:2580-5; Yanagihara, S. et al., 1998, J. Immunol. 161:3096-102）。
　HLA-class IIはDR, DP, およびDQがあり、その全てに結合する抗体により網羅的に検出することができる（Pawelec, G. et al., 1985, Human Immunology 12:165; Ziegler, A. et al., 1986, Immunobiol. 171:77）。HLA-DRはMHCのヒトclass II抗原の1つでα鎖 (36 kDa) とβサブユニット (27 kDa) からなる膜貫通糖蛋白質である。表皮のランゲルハンス細胞ではCD1a抗原と共発現する。CD1aは抗原提示において細胞の相互作用に主要な役割を果たす（Barclay, N.A. et al., 1993, The Leucocyte Antigen Facts Book. p. 376. Academic Press）。
　上記のマーカー遺伝子およびそれらの相同遺伝子産物を指標に、ヒトおよびヒト以外の哺乳動物に関して樹状細胞を特定することができる。これらのマーカーに対する抗体は、例えばBD Biosciences社（BD PharMingen）より入手することができ、その詳細は同社または販売代理店のウェブサイトで知ることができる。
　また、樹状細胞マーカーに関しては、以下のKiertscherらおよびOehlerらの文献も参照のこと（Kiertscher SM, Roth MD, Human CD14+ leukocytes acquire the phenotype and function of antigen-presenting dendritic cells when cultured in GM-CSF and IL-4, J. Leukoc. Biol., 1996, 59(2):208-18; Oehler, L. et al., Neutrophil granulocyte-committed cells can be driven to acquire dendritic cell characteristics., J. Exp. Med., 1998, 187(7):1019-28）。また、フローサイトメトリーに関しては、Okanoら、およびStitesらの文献を参照することができる（Okano, S. et al., Recombinant Sendai virus vectors for activated T lymphocytes., Gene Ther., 2003, 10(16):1381-91; Stites, D. et al., Flow cytometric analysis of lymphocyte phenotypes in AIDS using monoclonal antibodies and simultaneous dual immunofluorescence., Clin. Immunol. Immunopathol., 1986, 38:161-177）。各マーカーの発現については、例えば、isotype control antibodyで染色した時に、陽性率が1％以下の蛍光強度を境界として、それ以上は陽性、それ未満は陰性と判断される。
　樹状細胞またはその前駆細胞の調製は、公知の方法に従ってまたは準じて行うことができる。例えば、血液（例えば末梢血または臍帯血）、骨髄、リンパ節、他のリンパ器官、脾臓、皮膚などから分離することができる（Bishop et al., Blood 83: 610-616, 1994; Bontkes, H. J. et al. (2002) J. Leukoc. Biol. 72, 321-329; Katsuaki, S. et al. (1998) CRYOBIOLOGY 37, 362-371; Ladan, K. et al. (2006) Stem Cells 24, 2150-2157; Ueda, T. et al. (2000) J. Clin. Invest. 105: 1013-1021）。好ましくは、樹状細胞は、本発明に使用するために血液または骨髄から得られる。また、本発明で用いられる樹状細胞は、皮膚のランゲルハンス細胞、輸入リンパ管のベール細胞、ろ胞樹状細胞、脾臓の樹状細胞、およびリンパ器官の指状突起細胞などであってもよい。また本発明で用いられる樹状細胞は、CD34+由来樹状細胞、骨髄由来樹状細胞、単球由来樹状細胞、脾細胞由来樹状細胞、皮膚由来樹状細胞、濾胞樹状細胞、および胚中心樹状細胞からなる群から選択される樹状細胞が含まれる。DC前駆細胞としては、特に骨髄、臍帯血、または末梢血から得られた造血幹細胞または造血始原細胞等が好ましい。造血幹細胞または造血始原細胞は、市販のキットなどを用いたネガティブセレクションや、CD34+ などのポジティブセレクションにより単離することができる（米国特許出願 08/539,142参照）。例えば、磁気ビーズ、蛍光ラベルによるソーティング、ビオチンまたはアビジン結合担体等により、表面抗原を利用した細胞の単離方法が知られている（Berenson et al., J. Immunol. Meth., 91:11, 1986; WO 93/08268）。
　DCやDC前駆細胞とそれ以外の細胞とを含む組成物からDCやDC前駆細胞を選択（または濃縮）する場合は、DCおよびDC前駆細胞以外の細胞を取り除くいわゆるネガティブ選択を実施することが好ましい。ネガティブ選択を用いることにより、DC-granulocytesのprecursor（J. Exp. Med., 1998, 187: 1019-1028; Blood, 1996, 87: 4520-4530) が除去されずに残り、接着性のCD14細胞から分化したDCだけでなく、それらのprecursorから分化したDCをあわせて回収することが可能と考えられる。これにより、DCにベクターを導入する際などにおける細胞障害性を軽減することが期待できる。
　例えば、T細胞、NK細胞、B細胞などに特異的な抗体を用いて、これらの細胞を取り除くことにより、DCを濃縮することが可能である。具体的には、例えば、CD2、CD3、CD8、CD19、CD56、CD66bから選択される表面マーカーまたはその任意の組み合わせの発現がlowまたはnegativeの細胞を得ることが好ましい。より好ましくは、CD2、CD3、CD8、CD19、CD56、およびCD66bの全てがlowまたはnegativeの細胞である。そのために、これらのマーカーに対する抗体を用いて、これらのマーカーを発現する細胞を除去するとよい（Hsu et al. (1996) Nature Med. 2: 52）。なお、ネガティブ選択においては多価抗体を用いて行うことができるし、あるいは磁気細胞分離 (MACS) のためにビーズ等を用いても、同様のセレクションを実施することが可能である。血球分離等を用いて単核球を採取するなど、細胞を大量に調製する場合は、ビーズを用いることが好ましい。例えば生体から得た細胞溶液から単球をエンリッチし、これに対してネガティブ選択を行って調製したDC前駆細胞を本発明において好適に用いることができる。
　樹状細胞の具体的な単離方法は、例えば Cameron et al., 1992, Science 257: 383、Langhoff et al., 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 7998、Chehimi et al., 1993,J. Gen. Viol. 74: 1277、Cameron et al., 1992, Clin．Exp．Immunol. 88: 226、Thomas et al., 1993, J. Immunol. 150: 821、Karhumaki et al.， 1993, Clin．Exp．Immunol. 91: 482 などに記載されている。また、フローサイトメトリーによる樹状細胞の単離については、例えば、Thomas et al., 1994, J．Immunol. 153: 4016、Ferbas et al., 1994, J．Immunol. 152: 4649、および O'Dohelrty et al., 1994, Immunology 82: 487 に記載されている。また、磁気細胞選別については、例えば Miltenyi et al., 1990, Cytometry 11: 231-238 に記述されている。
　また、例えばヒト樹状細胞の単離および増殖に関しては、Macatonia et al., 1991, Immunol. 74: 399-406、O'Doherty et al., 1993, J. Exp. Med. 178: 1067-1078、Markowicz et al., 1990, J. Clin. Invest. 85: 955-961、Romani et al., 1994, J. Exp. Med. 180: 83-93、Sallusto et al., 1994, J. Exp. Med. 179: 1109-1118、Berhard et al., 1995, J. Exp. Med. 55: 1099-1104 などに記載の方法を用いてもよい。また、骨髄、臍帯血、または末梢血等から得られるCD34+細胞および末梢血由来の単核細胞からの樹状細胞形成については Van Tendeloo et al., 1998, Gene Ther. 5: 700-707 に記載の方法を用いて実施してもよい。
　DC前駆細胞は、１または複数のサイトカインを含む培地中で増幅される。例えば、IL-3単独でも約10日にわたりDC前駆細胞を増幅することが可能である。しかし、より長期に渡る増幅は、IL-3単独では見られない。本発明者らは、SCFおよびIL-3を含む培地でDC前駆細胞を培養することにより、極めて高い効率でDCへの分化能を持つ細胞を増幅できることを見出した。従って、２週以上の増幅にはIL-3とSCFの組合せることが好ましい。特に、FLT-3L、SCF、IL-3、およびIL-6の４種のサイトカインを含む培地でDC前駆細胞を培養することにより、DCへの高い分化能を持つDC前駆細胞を大量に得ることができる。本発明は、IL-3およびSCFを含みFLT-3LおよびIL-6を含まない培地、FLT-3L、SCF、およびIL-3を含みIL-6を含まない培地、あるいはSCF、IL-3、およびIL-6を含みFLT-3Lを含まない培地でDC前駆細胞を増幅する工程を含む、DCの製造方法に関する。また本発明は、FLT-3L、SCF、IL-3、およびIL-6を含む培地、例えばそれらを含み、G-CSF、GM-CSF、IL-4、およびTNF-αから選択される１つ以上（またはそれらの任意の組み合わせ）のサイトカインを有意に含まない培地でDC前駆細胞を増幅する工程を含む、DCの製造方法にも関する。
　また本明細書に記載したサイトカインの組み合わせの存在下による培養においては、それ以外のサイトカインをさらに含んでいてもよいし（すなわちそれ以外のサイトカインの更なる存在下で培養する）、含まなくてもよい。また、該それ以外のサイトカインの存在下で培養する工程をさらに含んでもよいし、該それ以外のサイトカインの存在下で培養する工程を含まなくてもよい。例えば、本明細書に記載したサイトカインの組み合わせの存在下による培養においては、GM-CSF、SCF、IL-4、IL-3、TPO、Flt-3L、およびIL-6からなる群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせの存在下であってもよいし、この群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせを含まない場合も開示する。この群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせの存在下で培養する工程をさらに含んでもよいし、この群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせの存在下で培養する工程を含まない場合も開示する。例えば、GM-CSFおよびSCFを含むと言った場合、上記の群からそれらを除いたサイトカインからなる群、すなわちIL-4、IL-3、TPO、Flt-3L、およびIL-6からなる群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせのさらなる存在下であってもよいし、この群から任意に選択される１つまたはそれ以上の組み合わせを含まない場合であってもよい。該１つまたはそれ以上の組み合わせの存在下で培養する工程をさらに含んでもよいし、該工程を含まない場合でもよい。例えば、TPOを含まない場合、Flt-3Lを含まない場合、IL-6を含まない場合、TPOおよびFlt-3Lを含まない場合、TPOおよびIL-6を含まない場合、Flt-3LおよびIL-6を含まない場合、Flt-3L、TPO、およびIL-6を含まない場合、であってもよい。他のサイトカインの組み合わせの存在下の場合も同様であって、すべての組み合わせがここに教示されるものとする。
　例えば、本発明の培養において、GM-CSF（例えばヒトGM-CSF）は、100 ng/ml以下、50 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくてよい。SCF（例えばヒトSCF）は、50 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。IL-4（例えばヒトIL-4）は、50 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。IL-3（例えばヒトIL-3）は、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。TPO（例えばヒトTPO）は、50 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。Flt3-L（例えばヒトFlt3-L）は、100 ng/ml以下、50 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。IL-6（例えばヒトIL-6）は、25 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。G-CSF（例えばヒトG-CSF）は、100 ng/ml以下、50ng/ml以下、25 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。TNF-α（例えばヒトTNF-α）は、100 ng/ml以下、50ng/ml以下、25 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。c-kitリガンド（例えばヒトc-kitリガンド）は、100 ng/ml以下、50ng/ml以下、25 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。IL-13（例えばヒトIL-13）は、100 ng/ml以下、50ng/ml以下、25 ng/ml以下、10 ng/ml以下、5 ng/ml以下、1 ng/ml以下、0.5 ng/ml以下、0.1 ng/ml以下、0.05 ng/ml以下、0.01 ng/ml以下、0.005 ng/ml以下、0.001 ng/ml以下、0.0005 ng/ml以下、0.0001 ng/ml以下、0.00005 ng/ml以下、0.00001 ng/ml以下、または含まなくよい。これらは任意の組み合わせで組み合わせることができる。その組み合わせはここに教示される。
　FLT-3L （Fms様チロシンキナーゼ3リガンド）は、Flt-3のリガンドであり、造血系前駆細胞の分化、増殖を促す (Namikawa R. et al., BLOOD 87: 1881-1890, 1996)。EP 0627487 A2およびWO 94/2839に記載されている一群のポリペプチドは、本発明においてFlt-3Lに含まれる。ヒトFLT-3L cDNAは、accession number ATCC 69382 としてAmerican Type Culture Collection (ATCC) より入手できる。SCFは、c-kitリガンド、マスト細胞増殖因子(MGF)、またはスチール因子とも呼ばれる（Zsebo et al., Cell 63: 195-201, 1990; Huan, E. Cell 63: 225-233; Williams, D.E., Cell 63: 167-174, 1990; Toksoz. D et al, PNAS 89: 7350-7354, 1992）。SCFとしては、EP 423,980 に記載されているポリペプチドが含まれる。
　IL（インターロイキン）-3は、活性化T細胞、肥満細胞、好酸球によって産生される造血因子である。本発明においてIL-3には、米国特許第5,108,910号に記載されているIL-3ポリペプチドが含まれる。ヒトIL-3蛋白質をコードするDNA配列は、accession number ATCC 67747として入手可能である。IL-6はB細胞の分化誘導因子として発見され、抗体産生系のみならず、肝における急性期蛋白の生合成誘導やIL-3との相乗作用に基づく造血幹細胞の増殖促進など多彩な生理活性を有する (Paul SR et al., Blood, 1991, 77: 1723-1733)。IL-4は主にヘルパーT細胞より産生され、T細胞、B細胞および他の血球細胞に広汎な生理活性を有する (Mosley et al., Cell 59: 335 (1989); Idzerda et al., J. Exp. Med. 171: 861 (1990); Galizzi et al., Intl. Immunol. 2: 669 (1990))。GM-CSFは、マクロファージまたは顆粒球を含有するコロニーの成長を刺激した因子として単離されたサイトカインである（米国特許第5,108,910号および5,229,496号）。GM-CSFは、顆粒球およびマクロファージの前駆細胞の成長および発生に必須の因子であり、骨髄芽球および単芽球を刺激し分化を誘導する。
　TPO（thrombopoietin；トロンボポイエチンまたはトロンボポエチンとも言う）は、造血系サイトカインの一種であり、造血幹細胞から巨核球が作られる過程に特異的に作用し、巨核球の産生を促進するという機能を有するものである（特許第3058353号）。
　各サイトカインの濃度は適宜調整してよいが、FLT-3Lであれば例えば 5ng/ml以上、10ng/ml以上、20ng/ml以上、または 30ng/ml以上、800ng/ml以下、600ng/ml以下、500ng/ml以下、300ng/ml以下、200ng/ml以下、または 100ng/ml以下、例えば 5～35 ng/ml程度、好ましくは 10～30 ng/ml程度、より好ましくは 15～25 ng/ml程度、より好ましくは約20 ng/ml 程度である。GM-CSFであれば例えば 0.5ng/ml以上、1ng/ml以上、5ng/ml以上、10ng/ml以上、20ng/ml以上、または 30ng/ml以上、800ng/ml以下、600ng/ml以下、500ng/ml以下、300ng/ml以下、200ng/ml以下、または 100ng/ml以下にすることができる。SCFであれば例えば 0.25ng/ml以上、0.5ng/ml以上、1ng/ml以上、5ng/ml以上、10ng/ml以上、20ng/ml以上、または 30ng/ml以上、800ng/ml以下、600ng/ml以下、500ng/ml以下、300ng/ml以下、200ng/ml以下、100ng/ml以下、または 50ng/ml以下にすることができる。IL-4、例えば 0.5ng/ml以上、1ng/ml以上、5ng/ml以上、10ng/ml以上、20ng/ml以上、または 30ng/ml以上、800ng/ml以下、600ng/ml以下、500ng/ml以下、300ng/ml以下、200ng/ml以下、100ng/ml以下、または 50ng/ml以下にすることができる。IL-6、TPO、その他のサイトカインについては例えば 1ng/ml以上、2ng/ml以上、5ng/ml以上、10ng/ml以上、20ng/ml以上、または 30ng/ml以上、800ng/ml以下、600ng/ml以下、500ng/ml以下、300ng/ml以下、200ng/ml以下、100ng/ml以下、50ng/ml以下、25ng/ml以下、または 10ng/ml以下にすることができる。
　SCF、IL-3、IL-6については、例えばFS36などのGM-CSF不含の培地を用いる場合は、3～20 ng/ml程度、好ましくは 5～15 ng/ml程度、より好ましくは 7～12 ng/ml程度、より好ましくは約10 ng/ml 程度であるが、これらに限定されない。これらは任意に組み合わせることができ、そのすべての組み合わせはここに教示される。培地としては、例えばRPMI1640またはIMDMを用いることができる。培地には、5～20％、好ましくは約10％の血清、好ましくはウシ胎児血清 (FBS) を適宜添加する。DC前駆細胞は、1×105 ～ 5×105細胞/ml程度、例えば約2.5×105細胞/mlから培養を開始することができる。好ましくは3日～4日ごとに継代する。継代時には、2×106 /ml 以下の濃度となるように細胞数を調整することが好ましい。ヒトCD34+細胞、ヒトCD14+細胞などの霊長類DC前駆細胞をGM-CSFとSCFを組み合わせて培養する場合は、GM-CSFは例えば 1～500 ng/ml程度（1～200 ng/ml程度 または 1～100 ng/ml程度）、より好ましくは 2～300 ng/ml程度、例えば 5～200 ng/ml程度、好ましくは 10～150 ng/ml程度、より好ましくは 20～120 ng/ml程度、より好ましくは 30～100 ng/ml程度 で用いるとよい。SCFは例えば 0.5～500 ng/ml程度（0.5～100 ng/ml程度 または 0.5～50 ng/ml程度）、より好ましくは 1～300 ng/ml程度、より好ましくは 2～200 ng/ml程度、より好ましくは 5～100 ng/ml程度、例えば 10～70 ng/ml程度、より好ましくは 例えば 20～60 ng/ml程度、より好ましくは 25～50 ng/ml 程度で用いるとよい。
　ヒトCD34+細胞などの霊長類DC前駆細胞をIL-3とSCFを組み合わせて培養する場合は、IL-3は例えば 0.1～10 ng/ml程度、好ましくは 1～10 ng/ml程度、より好ましくは10 ng/ml程度で用いるとよい。SCFは例えば 0.5～500 ng/ml程度（0.5～100 ng/ml程度 または 0.5～50 ng/ml程度）、より好ましくは 1～300 ng/ml程度、より好ましくは 2～200 ng/ml程度、より好ましくは 5～100 ng/ml程度、例えば 10～70 ng/ml程度、より好ましくは 例えば 20～60 ng/ml程度、より好ましくは 25～50 ng/ml 程度で用いるとよい。
　ヒトCD34+細胞などの霊長類DC前駆細胞をTPOとSCFを組み合わせて培養する場合は、TPOは例えば 0.5～50 ng/ml程度、好ましくは 5～50 ng/ml程度、より好ましくは 50 ng/ml程度で用いるとよい。SCFは例えば 0.5～500 ng/ml程度（0.5～100 ng/ml程度 または 0.5～50 ng/ml程度）、より好ましくは 1～300 ng/ml程度、より好ましくは 2～200 ng/ml程度、より好ましくは 5～100 ng/ml程度、例えば 10～70 ng/ml程度、より好ましくは 例えば 20～60 ng/ml程度、より好ましくは 25～50 ng/ml 程度で用いるとよい。
　ヒトCD34+細胞などの霊長類DC前駆細胞をFlt-3LとSCFを組み合わせて培養する場合は、Flt-3Lは例えば 1～100 ng/ml程度、好ましくは 10～100 ng/ml程度、より好ましくは 100 ng/ml程度 で用いるとよい。SCFは例えば 0.5～500 ng/ml程度（0.5～100 ng/ml程度 または 0.5～50 ng/ml程度）、より好ましくは 1～300 ng/ml程度、より好ましくは 2～200 ng/ml程度、より好ましくは 5～100 ng/ml程度、例えば 10～70 ng/ml程度、より好ましくは 例えば 20～60 ng/ml程度、より好ましくは 25～50 ng/ml 程度で用いるとよい。
　ヒトCD34+細胞などの霊長類DC前駆細胞をFlt-3LとSCFとTPOとIL-6を組み合わせて培養する場合は、Flt-3Lは例えば 1～100 ng/ml程度、好ましくは 10～100 ng/ml程度、より好ましくは 100 ng/ml程度 で用いるとよい。SCFは例えば 0.5～500 ng/ml程度（0.5～100 ng/ml程度 または 0.5～50 ng/ml程度）、より好ましくは 1～300 ng/ml程度、より好ましくは 2～200 ng/ml程度、より好ましくは 5～100 ng/ml程度、例えば 10～70 ng/ml程度、より好ましくは 例えば 20～60 ng/ml程度、より好ましくは 25～50 ng/ml 程度で用いるとよい。TPOは例えば 0.5～50 ng/ml程度、好ましくは 5～50 ng/ml程度、より好ましくは 50 ng/ml程度で用いるとよい。IL-6は例えば 0.25～25 ng/ml程度、好ましくは 2.5～25 ng/ml程度、より好ましくは 25 ng/ml程度で用いるとよい。
　ヒトCD34+細胞などの霊長類DC前駆細胞をGM-CSFとIL-4を組み合わせて培養する場合は、GM-CSFは例えば 1～500 ng/ml程度（1～200 ng/ml程度 または 1～100 ng/ml程度）、より好ましくは 2～300 ng/ml程度、例えば 5～200 ng/ml程度、好ましくは 10～150 ng/ml程度、より好ましくは 20～120 ng/ml程度、より好ましくは 30～100 ng/ml程度 で用いるとよい。IL-4は例えば 0.5～50 ng/ml程度、好ましくは 5～50 ng/ml程度、より好ましくは 50 ng/ml程度で用いるとよい。
　本発明者らは、DC前駆細胞の増幅期間を約３～４週間とすることで、その後のDCへの分化効率を顕著に高められることを見出した。これより長い期間培養すれば、より多くの細胞を得ることができるが、DCへの分化効率は低下する。特にFS36培地において５週間増幅させたDC前駆細胞は、DCへの分化効率が顕著に低下する。従って、例えばFS36などのGM-CSF不含の培地を用いる場合は、DC前駆細胞の培養期間は約３週間から約４週間、好ましくは約３週間にすることが好ましく、例えば 18～24日間、より好ましくは20～22日間培養し、その期間を超えて同じサイトカインの組み合わせを含む培地でDC前駆細胞を増幅させることは避けることが好ましい。その期間培養した後、以下に記載するようにDC分化培地で培養し、DCを分化させる。例えば、FLT-3L、SCF、IL-3、およびIL-6を含む培地でDC前駆細胞を培養する場合は、上記の期間培養後、FLT-3L、SCF、IL-3、およびIL-6の全て含む培地以外の培地で培養される。
　また本発明は、１または複数のサイトカインを含む培地中で増幅された細胞をGM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程を含む。GM-CSF及びIL-4の存在下での培養期間は約3日から約14日間、好ましくは約7日間（例えば5日間以上、好ましくは6日間以上。9日間以下、好ましくは8日間以下）にすることが好ましい。
　本発明の方法は、好ましい態様において、高いIL-12産生能を有する樹状細胞を生産することができる。IL-12の産生能は、例えば次のようにして決定することができる。例えばヒト臍帯血由来CD34+ 細胞を本発明の方法の第一の工程、すなわち下記（i）から（v）からなる群より選択されるサイトカイン及び幹細胞因子（SCF）の存在下で4週間培養する。培地には、10%FBS添加IMDMを用いることができる。
　(i) GM-CSF、(ii) IL-3、(iii) TPO、(iv) Flt-3L、(v) Flt-3L、TPO、およびIL-6
　次に第二の工程、すなわち、上記の細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で1週間培養する。その後、その細胞をOK432処理、すなわち、OK432（0.5KE/ml）（中外製薬　日本標準商品分類番号874299）を含む10%FBS添加IMDMで２日（48h）間培養し、その２日間に培養上清中に放出されたIL-12をELISA等により定量する。
　本発明の方法は、上記のOK432処理下において、例えば50以上、好ましくは、60以上、70以上、80以上、90以上、100以上、150以上、200以上、250以上、300以上、400以上、500以上、1000以上、2000以上、3000以上、4000以上、5000以上、6000以上、7000以上、または 8000以上（単位は図３の説明と同じ）で、IL-12を産生させることができる方法である。特に上記第一の工程で(i) GM-CSFを用いた場合は、例えば50以上、100以上、好ましくは200以上で、上記第一の工程で(ii) IL-3を用いた場合は、例えば20以上、30以上、40以上、好ましくは50以上で、上記第一の工程で(iii) TPOを用いた場合は、例えば100以上、200以上、500以上、1000以上、3000以上、4000以上、好ましくは5000以上で、上記第一の工程で(iv) Flt-3Lを用いた場合は、例えば100以上、200以上、500以上、1000以上、3000以上、4000以上、好ましくは5000以上で、上記第一の工程で(v) Flt-3L、TPO、およびIL-6を用いた場合は、例えば100以上、200以上、500以上、1000以上、3000以上、4000以上、好ましくは5000以上で、IL-12を産生させることができる方法であってよい。
　霊長類CD34+ 細胞としては、例えば臍帯血由来CD34+ 細胞、骨髄由来CD34+ 細胞、および末梢血由来CD34+ 細胞等を用いることができる。
　培養液としては、適宜所望の培地を用いることができるが、例えば DMEM（Dulbecco's Modified Eagle Medium）、MEM（Minimum Essential Medium）、RPMI-1640、X-VIVOTM（Lonza）、IMDM（Iscove's Modified Dulbecco's Medium）等が挙げられる。最も好ましくは IMDM が用いられる。適宜血清を添加することが好ましく、例えば 1～20％（v/v）、より好ましくは 2～20％、より好ましくは 5～15％、より好ましくは 5～10％（例えば 約10％）を添加する。血清は、ウシ由来の血清が好ましく、最も好ましくはウシ胎児血清（FCS）である。培養温度は制限はないが、例えば32～39℃、35～38℃、約37℃とすることができる。CO2 は制限はないが、例えば約5％（4～6％）とすることができる。
　本発明は、以下(i）から(v)のうちいずれか一つの群に記載のサイトカインおよびSCFを含む、樹状細胞増幅用組成物、樹状細胞調製用組成物、樹状細胞製造用組成物、樹状細胞増幅用培地、樹状細胞調製用培地、および樹状細胞製造用培地を提供する。
(i）顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）
(ii)IL-3
(iii)TPO
(iv)Flt-3L
(v)Flt-3L、TPO、およびIL-6
　なお本発明の樹状細胞増幅用組成物、樹状細胞調製用組成物、樹状細胞製造用組成物、樹状細胞増幅用培地、樹状細胞調製用培地、および樹状細胞製造用培地は、以上（i）から（v）のうちいずれか一つの群に記載のサイトカインおよびSCFに加え、GM-CSF及びIL-4を含んでもよい。
　さらに本発明の組成物は、適宜滅菌水、緩衝液、塩等を含んでもよい。また培地としては、上記に記載した培養液などが挙げられるが、それらに限定されない。培地は、血清を含んでもよいし、含まなくてもよい。また、抗生物質を含んでもよいし、含まなくてもよい。
　また本発明は、これらの組成物または培地の製造における、以下（i）から（v）のうちいずれか一つの群に記載のサイトカインおよびSCFの使用にも関する。
(i）顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）
(ii)IL-3
(iii)TPO
(iv)Flt-3L
(v)Flt-3L、TPO、およびIL-6
　また本発明は、組成物または培地の製造における、上記(i）から（v）のうちいずれか一つの群に記載のサイトカインおよびSCF、並びに、GM-CSF及びIL-4の使用に関する。
　また本発明は、上記(i）～(v)およびSCFをキットの要素として含む、樹状細胞増幅用キット、樹状細胞調製用キット、樹状細胞製造用キットにも関する。当該キットは、培養液（例えば血清を含まない）または培養液を調製するための粉末（アミノ酸や塩等を含み、血清や抗生物質等が含まれていないもの）をさらに含んでもよい。これらの組成物、培地、およびキットは、好ましくはヒトを含む霊長類樹状細胞を増幅、調製、および製造するためのものであり、より好ましくはヒトを含む霊長類CD34+細胞からIL-12産生能の高い樹状細胞を増幅、調製、および製造するためのものである。これらは、TNF-αおよび/またはIL-4を含まないことが好ましい。例えば組成物および培地中のTNF-αおよびIL-4濃度は、血清を含む場合は血清中に含まれる各濃度と比較して、それを著しく超えない範囲、例えば血清（例えば正常FCS）中の各サイトカイン濃度の3、2、または1倍以下であることが好ましく、好ましくは 1/2以下、より好ましくは1/3以下、または1/5以下、具体的には 50 ng/ml以下、好ましくは 40、30、20、10、5、3、または 1 ng/ml 以下である。血清を含まない場合は、好ましくはサイトカインとしてはGM-CSFおよびSCFのみを含む。
　本発明の方法に従えば、CD34+ 細胞からDCを例えば 102倍、好ましくは 0.5×103倍、より好ましくは 1×103倍、より好ましくは 0.5×104倍、より好ましくは 1×104倍、より好ましくは 0.5×105倍、より好ましくは 1×105倍、より好ましくは 0.5×106倍以上に増幅して得ることができる。細胞は、例えば１週間の培養で5倍、好ましくは6、7、8、9、10、11、12、または13倍以上の速度で増加させることができる。増幅された細胞は、高純度でDC（iDC）を含む。増幅された細胞のCD11c陽性率（全細胞中のCD11c+細胞の割合）は、例えば30％以上、好ましくは40％以上、より好ましくは50％以上、60％以上、70％以上、75％以上、80％以上、または85％以上である。また、iDCをLPSまたはPoly(I:C)、あるいはセンダイウイルス、OK432等で処理することにより、成熟DCを得ることができる。
　本発明の方法により得られるIL-12産生能の高い樹状細胞は、感染症、癌、その他、免疫誘導により有益な効果を期待できる所望の疾患の免疫治療に有用なDCワクチンとして有用である。例えば、腫瘍免疫治療に関しては、樹状細胞に腫瘍抗原を提示させるために、腫瘍細胞のcell lysate (細胞溶解物) と混合、ペプチドでパルス、または樹状細胞に腫瘍抗原遺伝子を導入する方法などにより抗原を提示させ、腫瘍に対するDC治療に用いることができる。
　例えば樹状細胞に腫瘍抗原を遺伝子導入すれば、腫瘍ライセートおよびペプチドパルスよりもin vivoでの腫瘍抗原提示時間の延長が期待でき、さらにHLAの制限（ペプチドの場合; ペプチドは抗原由来のあるペプチドを使用するが、HLAとの結合の関係上、HLAの種類が変われば、その抗原の中の使用するペプチドの部位が変化する）などを受けなくなる利点を有する。
　例えば本発明の方法により増幅したDC前駆細胞を、GM-CSFおよびSCFの存在下で培養し、さらにGM-CSF及びIL-4の存在下で培養してDCに分化させた後に、OK432またはRNAウイルス等の存在下で培養することにより、DCを活性化させる。培養期間は適宜調整してよいが、例えば２～７日間である。例えばマイナス鎖RNAウイルスなどのRNAウイルスは、免疫賦活（腫瘍免疫など）に使用するにあたって遺伝子導入に利用できることに加え、RNAウイルスの感染自体が樹状細胞の活性化を惹起するため、導入後のサイトカインなどでの活性化処理の工程が省略可能で、細胞のviabilityの維持やコスト削減、さらなるex vivoでの操作時間の削減に寄与するものと考えられる。また、RNAウイルスベクターで遺伝子導入された樹状細胞を用いて、T細胞移入療法に必要な活性化T細胞、特に腫瘍特異的細胞傷害性T細胞などをex vivoで効率良く、短期間、簡単に誘導できる（WO2005/042737；WO2006/001122）。
　DCは、適宜薬学的に許容される担体と組み合わせて組成物とすることができる。担体としては、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）、培養液、血清など、生細胞を懸濁することができる所望の溶液が挙げられる。また組成物は、樹状細胞に提示させる抗原ペプチドが含まれていてもよい。また、DCをワクチンとして使用する場合、ワクチン組成物には、免疫原性を高めるために、サイトカイン、コレラ毒素、サルモネラ毒素等の免疫促進剤を添加することもできる。またワクチンには、ミョウバン、不完全Freund'sアジュバント、MF59 (オイルエマルジョン)、MTP-PE (マイコバクテリア細胞壁由来の muramyl tripeptide)、および QS-21 (soapbark tree Quilaja saponaria 由来）などのアジュバントを組み合わせることもできる。
　抗原は、抗原とする細胞ライセートとの混合、ペプチドパルス、またはベクターにコードさせた抗原遺伝子をDCに導入することによりDCに提示させることができる。抗原としては、感染微生物、ウイルス、寄生虫、病原体、および癌などに関連する所望の抗原が挙げられる。これらは、構造タンパク質または非構造タンパク質であってよい。このような抗原（またはそのプロセスされたペプチド）は、樹状細胞表面のMHC分子に結合して細胞表面に提示され、免疫応答が誘導される。
　ワクチンとして用いる場合、例えば腫瘍、感染症、およびその他の一般的な疾患に対して適用することができる。感染症の治療としては、例えば感染性微生物の抗原蛋白のエピトープを解析し、これを樹状細胞で発現または提示させることができる。
　例えば病原体由来の抗原としては、A型肝炎ウイルス、B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、デルタ型肝炎ウイルス、乳頭腫ウイルス抗原、単純ヘルペスウイルス（HSV）、水痘－帯状疱疹ウイルス（VZV）、エプスタイン－バーウイルス、サイトメガロウイルス（CMV）、HIV、およびマラリアなどが有する蛋白質またはその部分ペプチドが挙げられる（G.L. Mandell et al. (Ed.) Hinman et al., Principles and Practice of Infectious Diseases，3rd Ed., Churchill Livingstone Inc., NY, pp. 2320-2333）。これらの抗原を提示するDCを、感染症に対して予防的および治療的に用いることができる。具体的には、例えばインフルエンザにおいては、強毒株H5N1型等のエンベロープ、日本脳炎においては、例えば日本脳炎ウイルスのエンベロープ蛋白質（Vaccine, vol. 17, No. 15-16, 1869-1882 (1999)）、エイズにおいては、例えばHIV gagまたは SIV gag 蛋白質（J. Immunology (2000) vol. 164, 4968-4978）、HIVエンベロープ蛋白質、Nef蛋白質、その他のウイルス蛋白質などが挙げられる。コレラにおいては、例えばコレラ毒素のBサブユニット（CTB）（Arakawa T, et al., Nature Biotechnology (1998) 16(10): 934-8、Arakawa T, et al., Nature Biotechnology (1998) 16(3): 292-7）、狂犬病においては、例えば狂犬病ウイルスの糖タンパク（Lodmell DL et al., 1998, Nature Medicine 4(8):949-52）、子宮頚癌においては、ヒトパピローマウイルス6型のカプシドタンパクL1（J. Med. Virol, 60, 200-204 (2000)）などが挙げられる。また、日本脳炎のJE-E抗原タンパク質（特開昭64-74982、特開平1-285498）、ヒト単純ヘルペスウイルスの gD2タンパク質（特開平5-252965）、Ｃ型肝炎ウイルス由来ポリペプチド（特開平5-192160）、仮性偽狂犬病ウイルス由来ポリペプチド（特表平7-502173）などを用いることもできる。例えば、これらの病原性微生物に感染した患者由来の細胞を解析して、抗原提示細胞（APC）において提示された抗原蛋白のエピトープを同定し、これを用いてもよい。HLA型を適宜選択することにより、所望のHLA型に対するエピトープを同定して用いることも好ましい。
　腫瘍に対する免疫応答を特異的に促進させるには、１以上の腫瘍抗原を樹状細胞に提示させる。腫瘍関連抗原は、例えば腫瘍細胞の粗抽出液を調製したり、または抗原を部分的に精製することにより得ることができる（Cohen et al., Cancer Res. 54: 1055 (1994); Cohen et al., Eur. J. Immunol. 24: 315 (1994); Itoh et al., J. Immunol. 153: 1202 (1994)）。得られた腫瘍抗原はさらに精製してもよく、また、組み換えペプチドとして合成または発現させてもよい。
　精製した樹状細胞に抗原をパルス（暴露）しDCに抗原を取り込ませると、抗原はDCにより処理され、細胞表面に提示される（Germain, R.N., Cell 76: 287 (1994)）。樹状細胞を抗原でパルスする多数の方法が知られており、当業者であれば、提示させる抗原に応じて適用な方法を選択することは日常行われている。本発明は、本発明の方法により製造したDCに抗原を提示させたものを含む組成物およびその免疫治療への使用を提供する。本発明の組成物は、免疫応答を刺激するために、インジェクション、連続点滴、インプラントからの持続的放出、もしくは他の適当な技術によって投与され得る。典型的には、生理学的に受容可能な担体、賦形剤もしくは希釈剤とともに、樹状細胞を含む組成物を投与する。担体としては、使用される薬量および濃度において投与個体に有意な毒性が無いものであり、例えば生理食塩水が挙げられる。
　腫瘍抗原は腫瘍細胞に特異的なもの（すなわち、腫瘍細胞に存在するが、非腫瘍細胞には存在しないもの）であっても、同じタイプの非腫瘍細胞よりも腫瘍細胞に高レベルで存在するものであってもよい。この樹状細胞を投与することにより免疫系が刺激される。CTLが主なエフェクターとして働く場合は、抗原としては細胞内外に発現する所望の腫瘍抗原を用いることができる。樹状細胞を用いて、CD4 T細胞の活性化から引き続くB細胞の活性化による抗体産生を惹起し、抗体をエフェクターとして作用させる場合には、抗原としては細胞表面に表出するものが好ましく、例えば、細胞表面受容体または細胞接着蛋白質を用いることができる。腫瘍抗原の例としては、卵巣癌等にするMuc-1 または Muc-1様ムチンタンデムリピートペプチド（米国特許第 5,744,144号）、子宮頸癌を引き起こすヒト乳頭腫ウイルス蛋白質E6およびE7、メラノーマ抗原MART-1、MAGE-1、-2、-3、gp100およびチロシナーゼ、前立腺癌抗原PSA、その他にも、CEA（Kim, C. et al., Cancer Immunol. Immunother. 47 (1998) 90-96）、およびHer2neu（HER2p63-71、p780-788; Eur. J. Immunol. 2000; 30: 3338-3346）などが挙げられる。
　本発明によって調製される樹状細胞は、癌および感染症に対する有効な免疫療法において有用であり、腫瘍抗原もしくは感染症関連抗原の遺伝子が導入された樹状細胞またはその樹状細胞で刺激されたT細胞による免疫感作は、患者において抗腫瘍または抗感染症免疫を誘導する有効な方法となる。本発明は、本発明の方法により得られた樹状細胞の免疫反応の誘導における使用にも関する。すなわち本発明は、本発明の方法により得られた樹状細胞の、免疫療法における使用、具体的には、例えば腫瘍または感染症の治療における使用に関する。また本発明は、本発明の方法により得られた樹状細胞の、免疫活性化剤の製造における使用に関する。すなわち本発明は、本発明の方法により得られた樹状細胞の、免疫治療剤の製造における使用、具体的には、例えば抗腫瘍剤（腫瘍増殖抑制剤）または感染症治療薬の製造における使用に関する。
　また、一般病への適用も考えられる。糖尿病においては、例えばI型糖尿病患者またはそのモデル動物において、インシュリン断片のペプチドをエピトープとして利用することが考えられる（Coon, B. et al., J. Clin. Invest., 1999, 104(2):189-94）。
　DC組成物には、可溶性サイトカイン受容体もしくはサイトカインまたは他の免疫制御分子をさらに含んでもよい（Schrader, J.W. Mol. Immunol. 28: 295 (1991)）。これらのサイトカインは、DC組成物とは別の組成物として調製し、DCと同時に、別々に、または逐次的に投与することもできる。また、樹状細胞からサイトカイン類を発現させれば、免疫系を刺激して、感染微生物または癌に対する免疫応答を高めることから、サイトカインをコードする遺伝子を導入した樹状細胞も、癌やその他のサイトカイン治療が有効と考えられる疾患の治療において有用である。免疫刺激性サイトカインをコードする遺伝子を搭載するベクターが導入された樹状細胞は効果的な免疫誘導剤となる。例えば、免疫刺激性サイトカインとして、インターロイキン（例えば、IL-1α、IL-1β、IL-2、IL-3、IL-4、IL-6、IL-7、IL-8、IL-9、IL-10、IL-12、IL-15、IL-18、IL-19、IL-20、IL-21、IL-23、IL-27）、インターフェロン（例えば、IFN-α、IFN-β、IFN-γ）、腫瘍壊死因子（TNF）、トランスフォーミング増殖因子(TGF)-β、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、マクロファージコロニー刺激因子（M-CSF）、GM-CSF、IL-3とGM-CSFを含む融合蛋白質、インスリン様増殖因子 (IGF)-Ｉ、IGF-2、Flt-3リガンド、Fasリガンド、およびc-kitリガンド、CD40リガンド (CD40L)、ならびに他の免疫調節タンパク質（ケモカインおよびコスティミュラトリー分子など）が含まれる。これらは単独もしくは組み合わせて用いられ得る。
　これらのサイトカインのアミノ酸配列は当業者には周知であり、IL-4については、例えば、Araiら (1989)、J. Immunol. 142(1) 274-282、IL-6については、例えば、Yasukawaら (1987)、EMBO J.、6(10): 2939-2945、IL-12は、例えば、Wolfら (1991)、J. Immunol. 146(9): 3074-3081、IFN-αは、例えば、Grenら (1984) J. Interferon Res. 4(4): 609-617、およびWeismannら (1982) Princess Takamatsu Symp. 12: 1-22、TNFは、例えば、Pennicaら (1984) Nature 312: 724-729、G-CSFは、例えば、Hiranoら (1986) Nature 324:73-76、GM-CSFは、例えば、Cantrellら (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 82(18): 6250-6254 を参照することができる。より具体的には、GM-CSFをコードする核酸配列としては Accession number NM_000758の84～461番目の配列（アミノ酸配列はNP_000749の18～144番目）を含む配列が挙げられる。IL-4をコードする核酸配列としては、Accession number NM_000589の443～829番目の配列（アミノ酸配列はNP_000580の25～153番目）を含む配列が挙げられる。これらのサイトカインをコードする天然の遺伝子または遺伝子暗号の縮重を利用して、機能的サイトカインをなおコードする変異遺伝子を含むベクターを設計し、樹状細胞に導入することができる。
　また、これらのサイトカインの改変体を発現するように遺伝子改変してもよい。例えば、前駆体および成熟体の２つの形態を持つサイトカイン（例えば、シグナルペプチドの切断により活性フラグメントを生成するもの、または蛋白質の限定分解により活性フラグメントを生成するものなど）について、前駆体または成熟体のいずれかを発現するように遺伝子改変してもよい。その他の改変体（例えば、サイトカインの活性フラグメントと異種配列（例えば、異種シグナルペプチド）との間の融合タンパク質）を用いてもよい。
　樹状細胞は、患者自身のT細胞をin vivoで刺激するのに有用であり、あるいは樹状細胞はT細胞をin vitroで刺激するのにも有用である。感作したT細胞を患者に投与し、エクスビボ免疫療法を介して患者の免疫系を刺激することもできる。例えば、抗原を提示させた成熟樹状細胞をT細胞に接触させることで、樹状細胞により刺激されたT細胞を作り出すことができる。樹状細胞で提示させる抗原は、ベクターから発現させた蛋白質（またはそのプロセスされた産物）であってもよいし、外から樹状細胞にパルスしてもよい。活性化されたT細胞によりCTLが誘導される。
　また本発明は、本発明の方法により製造した樹状細胞を用いて、免疫系を刺激する方法に関する。例えば感染症または癌などに罹患した患者において免疫系を刺激する治療を行うことができる。この方法は、樹状細胞またはT細胞を投与する工程を含む方法である。この方法は、具体的には本発明により製造されたDCまたは該DCにより刺激されたT細胞の治療上有効量を患者に投与する工程を含む方法である。樹状細胞に、抗原ペプチドをパルスして、所望の抗原を提示させることで、所望の抗原に対する免疫を誘導することができる。インビトロでT細胞と樹状細胞を接触させる場合、患者からT細胞を採取して、エクスビボ投与を行うことが好ましい。
　DCまたはT細胞を含む組成物の個体への投与量は、疾患、患者の体重、年齢、性別、症状、投与目的、投与組成物の形態、投与方法等により異なるが、当業者であれば適宜決定することが可能である。投与経路は適宜選択することができ、例えば罹患部位に投与されることが好ましい。一般的には、筋肉内、腹腔内、皮下もしくは静脈内注射、あるいは、リンパ節への直接注入によって注入することができる。好ましくは皮下、腹腔内注射またはリンパ節への直接注入により、患者に投与する。樹状細胞は、一般的には105～109細胞、好ましくは106～108細胞、より好ましくは約107細胞を患者に投与することができる。投与回数は、１回または臨床上容認可能な副作用の範囲で複数回可能である。投与対象としては特に制限はないが、例えば、ニワトリ、ウズラ、マウス、ラット、イヌ、ブタ、ネコ、ウシ、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、サル、およびヒトなどを含む鳥類、哺乳動物（ヒトおよび非ヒト哺乳動物）、およびその他の脊椎動物が挙げられる。
　樹状細胞は、抗腫瘍剤として有用である。例えば腫瘍抗原を提示させた樹状細胞を腫瘍部位に投与することによって、腫瘍の増殖を抑制することができる。腫瘍部位とは、腫瘍またはその周囲（例えば腫瘍から5 mm以内、好ましくは3 mm以内）の領域を言う。樹状細胞を腫瘍に投与する前に、樹状細胞に腫瘍抗原を接触させるとより高い効果を得ることができる。樹状細胞への腫瘍抗原の接触は、樹状細胞と腫瘍細胞のcell lysate (細胞溶解物) とを混合する方法、腫瘍抗原ペプチドを樹状細胞にパルスする方法、あるいは樹状細胞に腫瘍抗原遺伝子を導入して発現させる方法などを用いることができる。
　樹状細胞により活性化したT細胞を投与する場合は、例えばT細胞は、1 m2の体表面積あたり約105～109細胞、好ましくは106～109細胞、より好ましくは108～109細胞の用量で、静脈内注入によって投与され得る（Ridellら、1992、Science 257: 238-241 を参照）。注入は、所望の間隔（例えば、毎月）で繰り返され得る。投与後のレシピエントは、必要に応じて任意の副作用について、T細胞注入の間または注入後にモニターされてよい。このとき、T細胞は樹状細胞を得た患者と同じ患者から得ることが好ましい。あるいは、T細胞を患者から採取し、T細胞を刺激するために用いる樹状細胞は、HLA適合性の健常なドナーに由来してもよい。または逆に、樹状細胞を患者から採取し、T細胞はHLA適合性の健常なドナーに由来してもよい。
　本発明により製造されるワクチンの有効成分である樹状細胞を含む細胞は、ヒト体内に治療用のワクチンとして接種することから、安全性を高めるために細胞増殖性を無くしておくこともできる。例えば、臍帯血由来の単球は分化誘導することにより増殖能が極度に低下することが知られているが、細胞ワクチンとしてより安全に利用するため、加熱処理、放射線処理、あるいはマイトマイシンC（MMC）処理などで処理し、ワクチンとしての機能を残したまま、増殖性をなくすことができる。例えば、X線照射を利用する場合、総放射線量1000～3300 Radで照射することができる。マイトマイシンC処理法は、例えば、樹状細胞に25～50μg/mlのマイトマイシン Cを添加し、37℃、30～60分間保温処理することができる。熱による細胞処理方法は、例えば、50～65℃で20分間加熱処理を行うことができる。
　以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に制限されるものではない。また、本明細書中に引用された文献は、すべて本明細書の一部として組み込まれる。
　以下、実施例及び実施例に係る図面において、所定の投与群とは、以下の組成をいう。
　　　GMSCF投与群：組換えヒトGM-CSF（100 ng/ml）（Peprotech）、組換えヒトSCF（Stem cell factor；SCF）（50 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　0.1 GMSCF投与群：組換えヒトGM-CSF（10 ng/ml）（Peprotech）、組換えヒトSCF（Stem cell factor；SCF）（5 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　0.01 GMSCF投与群：組換えヒトGM-CSF（1 ng/ml）（Peprotech）、組換えヒトSCF（Stem cell factor；SCF）（0.5 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　GMIL-4投与群：組換えヒトGM-CSF（100 ng/ml）（Peprotech）、組換えヒトIL-4（50 ng/ml）（Wako,Japan）を含む10%FBS添加IMDM
　　　IL-3投与群：IL-3（10 ng/ml）（R&D Systems, Inc.）を含む10%FBS添加IMDM
　　　IL-3SCF投与群：IL-3（10 ng/ml）（R&D Systems, Inc.）、組換えヒトSCF（50 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　TPOSCF投与群：組換えヒトTPO（50 ng/ml）（Wako, Japan）、組換えヒトSCF（50 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　FS投与群：組換えヒトFlt3-L（100 ng/ml）（Richter-HELM BioLogics GmbH & Co.KG）、組換えヒトSCF（50 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　　　FST6投与群：組換えヒトFlt3-L（100 ng/ml）（Richter-HELM BioLogics GmbH & Co.KG）、組換えヒトSCF（50 ng/ml）（Peprotech）、組換えヒトTPO（50 ng/ml）（Wako, Japan）、組換えヒトIL-6（25 ng/ml）を含む10%FBS添加IMDM
　　　SCF投与群：組換えヒトSCF（50 ng/ml）（Peprotech）を含む10%FBS添加IMDM
　以下、実施例に係る図面において、（１）iDC処理、（2）OK432処理とは以下の処理をいう。
（1）iDC処理：下記濃度の培地で２日間インキュベーションすることである。
　　　　　　　　10%FBS添加IMDM
（2）OK432処理：下記濃度の培地で２日間インキュベーションすることである。
　　　　　　　　OK432（0.5KE/ml）（中外製薬　日本標準商品分類番号874299）を含む10%FBS添加IMDM
　なお、特に断らない限り、培地は10%FBS添加IMDMを使用し、37℃、5％ CO2 で培養を行った。
〔実施例1〕所定のサイトカインを用いることによるヒト由来樹状細胞前駆細胞からの樹状細胞の生産
　ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞 (Lonza社より購入)を、所定のサイトカインを含む培地で、35日間培養し、増幅と分化を行った。
　図1に示した結果より、ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞 をGMSCF投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法により、大量に細胞を得ることができた（図1（図の標記では「GMSCF⇒GMIL-4」））。その細胞の形態を観察したが、OK432処理という樹状細胞を活性化する処理を行った細胞において、樹状突起が確認できた（図2）。上記方法から得られた大量の細胞は、樹状細胞と考えられる。
　また、図１に示すように、IL-3SCF投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法、TPOSCF投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法、FS投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法、またはFST6投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法においても、GMSCF投与群で所定の期間培養後GMIL-4投与群で培養する方法と比べ、得られる細胞数は減る方法はあるものの、大量に細胞を得ることができた（図1（図の標記では「SCFIL-3⇒GMIL-4」、「TPO/SCF⇒GMIL-4」、「Flt3-L/SCF⇒GMIL-4」、「FST6⇒GMIL-4」））。
　尚、図１には示していないが、上記ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞をSCF投与群で培養した実験も行った。培養開始から１週間目までは、細胞の増幅が見られた（培養開始時の細胞数は1.0×105（個）で、培養開始から１週間目の細胞数は約2.25×105（個）であった）。しかし、１週間目以降は、細胞の増幅がみられず、細胞数が減少した。
〔実施例2〕所定のサイトカインを用いることにより生産した樹状細胞のIL-12産生量の測定
　ヒト臍帯血由来CD34+ 細胞から、所定のサイトカインを用いて生産した樹状細胞について、IL-12産生能を調べた。実験においては、ベクトン・ディッキンソン アンド カンパニー（ＢＤ）社のHuman Inflammation Kit（カタログ番号：551811）を用いた（図3）。
　OK432の刺激により、全投与群においてIL-12の産生能が高まった。しかし、図3（A）（B）に示している結果より、図3記載の（３）～（７）のサンプルは、他のサンプル（図3記載の（8）のコントロールサンプルは除く）と比べ、より高いIL-12の産生能を有することが明らかとなった。
〔実施例3〕所定のサイトカインを用いることによるヒト末梢血中のCD14＋前駆体（単球）からの樹状細胞の生産
　ヒト末梢血中のCD14＋前駆体（単球）を、所定のサイトカインを含む培地で、28日間培養し、増幅と分化を行った。
　図6に示した結果より、従来から知られているGM-CSF及びIL-4を含む培地で培養する方法と比べ、 GM-CSF及びSCFを含む培地で培養する方法が、単球から樹状細胞を多く生産する方法として適していることが示唆される。
　本発明により、IL-12産生能を有する樹状細胞を大量に製造することが可能となった。製造された樹状細胞は、癌抗原を提示させて抗腫瘍樹状細胞ワクチンとして利用することができる。本発明の方法を用いれば、患者から得られるDC前駆細胞が少なくても大量の樹状細胞を効率よく製造することが可能となった。この製造方法により得られた樹状細胞は、高い抗腫瘍効果があり、癌および感染症などの免疫治療に有用な樹状細胞ワクチンとして有用である。本発明は、癌に対する免疫療法に大きく貢献することが期待される。
　この発明は、上記実施例の説明に記載された方法に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。
　尚、上記実施例においては、IL-12産生能を有する樹状細胞を大量に製造する方法の一例として、具体的に「CD34+ 細胞を、GMSCF投与群の条件で4週間培養し、その培養後GMIL-4投与群の条件で1週間培養する方法」を示した。しかし、例えば、以下の方法も可能と考えられる。それは以下の事実による。
　以下の方法とは、「CD34+ 細胞を、所定の培地で所定期間培養後、更にGMIL-4投与群の条件で1週間培養する方法」をいう。
　ここで、「所定の培地」とは、「GM-CSF が1 ng/mlより高い濃度およびSCFが 0.5 ng/ml より高い濃度含まれる培地」をいう。
　以下の事実とは、GM-CSF (100 ng/ml) および SCF (50 ng/ml) の濃度を1/10に低下させても（10 ng/ml GM-CSF, 5 ng/ml SCF）、細胞数は若干低下するものの高い増殖性は維持された。GM-CSF (100 ng/ml) および SCF (50 ng/ml) の濃度を1/100に低下させた場合（1 ng/ml GM-CSF, 0.5 ng/ml SCF）でも、樹状細胞を生産できるという事実をいう（図4）。そして、35日間培養時点におけるCD11c陽性細胞率について図5で示しているが、いずれの投与群も、CD11ｃ陽性細胞率が高い（図5）という事実がある。

Claims (8)

  1. 樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）（ａ）(i) 樹状細胞前駆細胞を顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、(ii) インターロイキン-3（IL-3）、(iii) トロンボポエチン（TPO）、(iv) Flt-3リガンド（Flt-3L）、および (v) Flt-3L、TPO、およびIL-6 からなる群から選択される(i)から(v)のいずれか、および（ｂ）幹細胞因子（SCF）の存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  2. 請求項１に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）GM-CSFおよびSCFの存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  3. 請求項１に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）樹状細胞前駆細胞をIL-3およびSCFの存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  4. 請求項１に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）樹状細胞前駆細胞をTPOおよびSCFの存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  5. 請求項１に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）樹状細胞前駆細胞をFlt-3LおよびSCFの存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  6. 請求項１に記載の樹状細胞を製造する方法であって、下記（１）及び（２）の工程を含む方法；
    （１）樹状細胞前駆細胞をFlt-3L、TPO、IL-6、およびSCFの存在下で培養する工程、及び
    （２）（１）の工程で培養した細胞を、GM-CSF及びIL-4の存在下で培養する工程。
  7. 樹状細胞前駆細胞は、ヒト由来の細胞である、請求項１から６に記載の方法。
  8. ヒト由来の細胞は、臍帯血由来CD34+ 細胞である、請求項７記載の方法。
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