WO2006082866A1 - p53の機能異常の検出方法、癌の分子診断方法及び癌治療に有効な化合物の評価方法 - Google Patents

p53の機能異常の検出方法、癌の分子診断方法及び癌治療に有効な化合物の評価方法 Download PDF

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Shinji Mizuarai
Kazunori Yamanaka
Hidehito Kotani
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Banyu Pharmaceutical Co., Ltd.
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Definitions

  • the present invention relates to a method for detecting functional abnormality of a tumor suppressor gene p53 and diagnosing cancer by measuring expression of a predetermined gene and the like.
  • the present invention also relates to a method for evaluating a compound based on the expression level of a predetermined gene.
  • p53 known as a tumor suppressor gene
  • T antigen of SV40 a tumor virus
  • Ci. Virol. 31st, 463, 1979 : Non-patent literature 1
  • the p53 gene is a tumor suppressor gene that is present in the short arm of chromosome 17 (17pl3), which is deleted in many cancers, and both alleles are inactivated by deletion and mutation. It became apparent (N. Engl. J. Med., 319, 525, 1988: Non-Patent Document 2).
  • the gene product is a transcriptional regulator with 393 amino acids, and has been shown to function by forming a tetramer.
  • a gene has been identified as a target gene for p53, and abnormalities in p53 are thought to cause abnormal transcriptional control of target genes.
  • mutations in the p53 gene were found to be 70% in lung cancer, 45% in gastric cancer, 30% in breast cancer, 65% in large intestine cancer, 61% in bladder cancer, and 70% in spleen cancer. Therefore (experimental medicine, pp. 19, 135, 2001: non-patent document 3), it is significantly higher than other tumor suppressor genes. In other words, functional abnormalities caused by mutations in the p53 gene have a significant effect on the onset of cancer.
  • Non-Patent Document 1 J. Virol., 31st pp. 463, 1979
  • Non-Patent Document 2 N. Engl. J. Med., 319, 525, 1988
  • Non-Patent Document 3 Experimental Medicine, Vol. 19, p. 135, 2001
  • Non-Patent Document 4 Nucleic Acids Res., Vol. 22, p. 3551, 1994
  • Non-Patent Document 5 Nature, 350, 427, 1991
  • Non-Patent Document 6 PNAS, No. 88, p. 10124, 1991
  • Non-Patent Document 7 Mol. Carcinogenesis, Vol. 19, 243, 1997
  • the mutation of p53 does not necessarily cause functional abnormality or disease. However, even if a mutation occurs, it may not affect the function of P53 at all.
  • the A3ZKAW cell derived from lymphoma contained p53 code. 213 and 234 have no missense mutations, but no abnormality was observed in transcriptional activity (Mol. Carcinogenesis, pp. 19, 243, 1997: Non-Patent Document 7). In such a case, there was a problem that even if the mutation of p53 was detected, it was not possible to infer a relationship with a functional abnormality or a disease.
  • the present invention has been made in view of the above-described problems of the prior art, and detects a p53 dysfunction regardless of the presence or absence of a p53 mutation and without directly detecting the p53 mutation. It is intended to provide a method for diagnosing cancer caused by abnormal functioning.
  • the method for detecting a p53 dysfunction of the present invention comprises at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 and GEF-HI in a test tissue or test cell.
  • the step of measuring the expression level of a gene functionally equivalent to the gene and the step of comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in normal tissue or normal cells, Or a step of determining whether or not the expression level of the gene in the test cell is significantly higher than the expression level of the gene in normal thread and tissue or normal cells.
  • the gene is preferably CARS or GEF-HI. By using such a gene, it becomes possible to detect P53 functional abnormality with higher accuracy.
  • the molecular diagnostic method for cancer (evaluation or determination method for cancer) of the present invention is selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI in a test tissue or a test cell. Measuring the expression level of at least one gene or a gene functionally equivalent to the gene, and comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in normal yarn and tissue or normal cells. process and, as a result of the comparison, dysfunctional P 53 by determining whether the expression level of the gene in a test tissue or HikenHoso cells significantly greater than the expression level of the gene in normal yarn ⁇ or normal cells And a step of predicting the above.
  • the gene is preferably CARS or GEF-HI.
  • Such genes By using, it becomes possible to perform molecular diagnosis of cancer with higher accuracy.
  • the method for determining drug sensitivity of the present invention includes at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI in a test tissue or a test cell, or the gene concerned.
  • the step of measuring the expression level of a gene functionally equivalent to the step of comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in normal tissue or normal cells, Predicting P53 dysfunction by determining whether the gene expression level in cells is significantly higher than the expression level of genes in normal yarn and tissue or normal cells.
  • the gene is preferably CARS or GEF-HI.
  • the present invention also includes an anticancer agent administration method (anticancer agent selection method) for selecting an anticancer agent to be administered based on the result obtained by the method for determining drug sensitivity.
  • the cancer diagnosis kit of the present invention comprises at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI.
  • An expression measuring means for measuring expression and a detecting means for detecting expression of the gene are included.
  • the expression measuring means is selected from the group consisting of a microarray and a PCR primer.
  • the method for evaluating a compound effective for cancer treatment of the present invention comprises a step of administering or contacting a test compound to a test animal or test cell, and in the test animal or test cell. Measuring the expression level of at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 and GEF-HI, or a gene functionally equivalent to the gene, And a step of confirming that the expression level of the gene is significantly changed by the administration or contact of the test compound as a result of comparison with the step of comparison or before the administration or contact of the test compound.
  • the gene is preferably GEF-HI.
  • the method for evaluating a compound effective for cancer treatment of the present invention comprises subjecting a test compound to a test animal. Or a step of administering or contacting a test cell, and the test compound is functionally equivalent to at least one protein selected from the group consisting of CARS, MOC OS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI, or the protein
  • the test compound is functionally equivalent to at least one protein selected from the group consisting of CARS, MOC OS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI, or the protein
  • the protein force GEF-HI is preferable. By using powerful genes, it is possible to evaluate compounds with higher accuracy.
  • the present invention it is possible to detect a p53 dysfunction without directly detecting a p53 mutation, and to diagnose a cancer caused by a strong dysfunction without imposing a burden on the subject. It becomes possible. Furthermore, according to the present invention, it is possible to evaluate compounds effective for the treatment of cancer involving p53.
  • Fig. 1 shows the expression of various recombinant p53 mutants confirmed at the protein level.
  • FIG. 2 shows the expression of various recombinant p53 mutants confirmed at the mRNA level.
  • FIG. 3 is a graph showing the relationship between various recombinant p53 mutants and p21 expression.
  • FIG. 4 is a diagram showing a relationship between the expression level of expression and GEF- HI various P 53 variant
  • FIG. 5 is a graph showing the relationship between GEF-HI activated by induction of expression of p53 mutant and RhoA activated by expression of GEF-HI.
  • FIG. 6 is a graph showing the expression level of GEF-HI in various cancer cells.
  • the mouth indicates cancer cells that express mutant P53
  • the triangle indicates cancer cells that express wild-type p53.
  • FIG. 7 is a graph showing the viable cell ratio after 3 days when HCT116 cells expressing wild-type p53 are suppressed! / And GEF-HI expression is suppressed.
  • indicates a control (Scramble), and ⁇ indicates the viable cell ratio when GEF-HI siRN A is introduced.
  • Fig. 8 is a graph showing the viable cell ratio after 3 days when the expression of GEF-HI is suppressed for A427 cells expressing wild-type p53. ⁇ indicates control (Scramble), ⁇ indicates GEF -The viable cell ratio when HI siRNA is introduced is shown.
  • FIG. 10 is a graph showing the viable cell ratio after 3 days when GEF-HI expression is suppressed in UMCU3 cells expressing mutant p53. ⁇ indicates a control (Scramble), and ⁇ indicates the viable cell ratio when GEF-HI siRNA is introduced.
  • FIG. 11 is a graph showing the percentage of viable cells after 3 days when GEF-HI expression is suppressed in SK O V3 cells expressing mutant p53. ⁇ indicates a control (Scramble), and ⁇ indicates the viable cell ratio when GEF-HI siRNA is introduced.
  • FIG. 12 is a graph showing the viable cell ratio after 3 days when GEF-HI expression is suppressed in ES-2 cells expressing mutant p53. ⁇ indicates a control (Scramble), and ⁇ indicates the viable cell ratio when GEF-HI siRNA is introduced.
  • test tissue in the present invention is a tissue that can be extracted from a living body subject to cancer testing, and is recognized as a cancer tissue that needs to examine the involvement of p53 or a need for cancer diagnosis.
  • the type is not particularly limited as long as it is an organization.
  • Examples of powerful tissues include neuroblastoma, retinoblastoma, brain tumor, head and neck cancer, pituitary adenoma, glioma, acoustic schwannoma, oral cavity cancer, pharyngeal cancer, laryngeal cancer, thyroid cancer , Thymoma, mesothelioma, breast cancer, lung cancer, gastric cancer, esophageal cancer, colon cancer, liver cancer, spleen cancer, splenic endocrine tumor, biliary tract cancer, penile cancer, vulva cancer, renal pelvic and ureteral cancer, kidney cancer, testicular cancer, Prostate cancer, bladder cancer, uterine cancer, chorionic disease, vaginal cancer, ovarian cancer, fallopian tube cancer, ovarian germ cell tumor, skin cancer, mycosis fungoides, malignant melanoma, soft tissue sarcoma, bone tumor, malignant lymphoma, leukemia Tissue derived from
  • test cell in the present invention is also a tissue from which the vitality to be tested for cancer can be extracted, and cells derived from cancer tissue that need to examine the involvement of p53, Cancer diagnosis
  • the type of the cell is not particularly limited as long as it is derived from a tissue recognized as necessary.
  • Examples of such cells include, for example, neuroblastoma, retinoblastoma, brain tumor, head and neck cancer, pituitary adenoma, glioma, acoustic schwannoma, oral cancer, pharyngeal cancer, laryngeal cancer, thyroid cancer , Thymoma, mesothelioma, breast cancer, lung cancer, gastric cancer, esophageal cancer, colon cancer, liver cancer, spleen cancer, splenic endocrine tumor, biliary tract cancer, penile cancer, vulva cancer, renal pelvic and ureteral cancer, kidney cancer, testicular cancer , Prostate cancer, bladder cancer, uterine cancer, chorionic disease, vaginal cancer, ovarian cancer, fallopian tube cancer, ovarian germ cell tumor, skin cancer, mycosis fungoides, melanoma, soft tissue sarcoma, bone tumor, malignant lymphoma And cells derived from leuk
  • the protein encoded by the CARS gene (cysteinyl-tRNA synthetase: NM-001751: SEQ ID NO: 1) is an enzyme present in the cytoplasm and catalyzes the aminoacylation of tRNA.
  • the CARS gene has been shown to exist in 11 ⁇ 15.5 of the chromosome known as the site of the tumor suppressor gene (Genomics, 15th, 692, 1993) Q
  • MOCOS mobdenum cofactor sulfurase: NM-017947: SEQ ID NO: 2
  • MOCOS is a molecule with a coding region of 2667 bases and 888 amino acids.
  • the protein encoded by the TNFRSF9 gene belongs to the tumor necrosis factor (TNF) receptor family and is responsible for T cell proliferation. It is known to inhibit and induce apoptosis (Eur J. Immunol. 9: 2219, 1994).
  • Rho guanine exchange nucleotide factor—HI: NM —004723: SEQ ID NO: 4 binds to Rho, which is known as an oncogene, and forms an inactive Rho-GDP G. Biol Chem., 273, 34954, 1998, which is known as an enzyme that converts to active Rho.
  • CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 or GE F-H1 used in the present invention may be a gene functionally equivalent to these genes.
  • a gene functionally equivalent to at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI is compared with the gene, although the nucleotide sequence is different.
  • the gene which codes the protein which shows high homology and has the same or similar activity as each protein is shown.
  • the homology is not particularly limited as long as it is functionally equivalent, but the homology of the base sequence is preferably 70 to 100%, more preferably 80 to 100%. It is particularly preferably 90 to 100%. When the homology is lower than the lower limit, there is a high possibility that the same or similar function as the corresponding gene is not exhibited.
  • a gene with relatively high homology is a gene in which one or more bases in CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56 901, or GEF-HI are naturally or artificially substituted, deleted, added, Z, or inserted. It may be there.
  • the method for detecting a p53 dysfunction comprises a step of measuring the expression level of at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 and GEF-HI in a test tissue, As a result of comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in the normal tissue, it is determined whether the gene expression level in the test tissue is significantly higher than the gene expression level in the normal tissue. Including a step of performing.
  • the expression level of at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LO C56901, and GEF-HI in the test tissue is measured.
  • the method for measuring the expression level of the gene is not particularly limited. Examples include RT-PCR using genomic DNA extracted from the tissue strength as a cage, a method using a microarray on which the gene is plotted, and northern blotting.
  • the “expression level” of a gene refers to the absolute or relative amount of a gene transcript, and in the case of a relative amount, the expression level of the gene in a relative comparison with the expression level in normal tissues described later. Can be determined.
  • P53 dysfunction may be comprehensively determined based on the result of measuring the expression of two or more genes, which need not be one gene whose expression level is measured.
  • the expression level of the gene measured by the above method is compared with the expression level of the corresponding gene in normal tissue.
  • the "normal tissue or normal cell” is not particularly limited as long as it is a tissue or cell to be compared with a test tissue or test cell, and is derived from a healthy person. May be derived from a cancer patient. Further, it may be a normal tissue or a normal cell present in the vicinity of the cancer tissue.
  • the method for determining the significant difference is not particularly limited, but if it is tested using a statistical method known to those skilled in the art.
  • p53 dysfunction may include base deletion (eg, nonsense mutation), substitution (eg, missense mutation, point mutation), insertion, frame shift, etc. in the p53 gene.
  • the cause of the functional abnormality is not particularly limited, and includes functional abnormality caused by any of these.
  • Specific examples of p53 dysfunction include cases where the transcriptional activity of p53 protein is reduced or activated, or cases where transcription does not occur at all, but no abnormality is observed in the activity. In some cases, the encoded gene is mutated.
  • the procedure of the molecular diagnostic method for cancer of the present invention is carried out in the same manner as the method for detecting a p53 dysfunction described above until a p53 dysfunction is detected.
  • a p53 dysfunction is detected by this method, it can be determined that the tissue or cell is derived from cancer caused by an abnormality in the test tissue or test cell strength 53. That is, it is known that a cancerous tissue is known to be produced by a p53 abnormality in a test tissue or a tissue from which a test cell is derived.
  • Li-Fraumeni Syndrome Science, pp. 250, 1233, 1990
  • hepatocellular carcinoma Neture, pp.
  • the method for determining drug sensitivity of the present invention comprises the step of measuring the expression level of at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 and GEF-HI in a test tissue or test cell. And the step of comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in a normal tissue or normal cell, and as a result of comparison, the expression level of the gene in the test tissue or test cell is Predicting P53 dysfunction by determining whether it is significantly greater than the gene expression level.
  • the procedure of the molecular diagnostic method for cancer of the present invention is carried out in the same manner as the method for detecting a p53 dysfunction described above until a p53 dysfunction is detected.
  • a p53 dysfunction is detected by this method, it can be determined that the tissue or cell is derived from cancer caused by an abnormality in the test tissue or test cell strength 53.
  • drugs with a known relationship between p53 and drug efficacy predict how much drug efficacy can be expected when the drug is administered, and what side effects will occur and when drug sensitivity will be predicted. Can do.
  • Examples of such drugs that are known to have a relationship between p53 and drug efficacy include doxorubicin and anthracycline anticancer drugs, such as lung cancer caused by the presence of genetic mutations in the DNA binding region of p53 and these cancers. It has been suggested that there is a certain relationship to the response of anticancer drugs (Nat Med, Vol. 2, page 811, 1996).
  • the target drug is not limited to the above-mentioned anticancer drug, and after examining or investigating the relationship with p53 for any anticancer drug, the drug sensitivity can be judged. That's fine.
  • test tissue or test cell contains cancer cells involving p53 by the method for determining drug sensitivity of the present invention
  • administration of these anticancer drugs to the subject is performed.
  • it is possible to determine whether the force is effective and it is possible to determine whether the force is to be administered.
  • by selecting and administering an appropriate drug according to the determination it is possible to suppress side effects and perform highly effective medication.
  • the present invention relates to CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI.
  • a cancer diagnostic kit comprising an expression measuring means for measuring the expression of at least one gene selected from the group consisting of, and a detecting means for detecting the expression of the gene.
  • an expression measurement means for measuring the expression of at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI, for example, for amplifying the gene Primers, microarrays on which the gene is plotted, and probes for Northern blots.
  • the detection means for detecting the expression of the gene is not particularly limited, and examples thereof include a fluorescent labeling reagent and a radioisotope labeling reagent for visualizing a probe for Northern plotting.
  • a test tissue or cell is extracted and genomic DNA is extracted and the nucleotide sequence is confirmed to detect a p53 mutation. Easy and quick diagnosis of cancers involving P53.
  • the first compound evaluation method of the present invention comprises a step of administering or contacting a test compound to a test animal or test cell, and CARS, M OCOS, TNFRSF9 in the test animal or test cell. Measuring the expression level of at least one gene selected from the group consisting of LOC56901 and GEF-HI, and comparing the expression level of the gene with the expression level of the corresponding gene in normal animals or cells And confirming whether or not the expression level of the gene in the test animal or tissue is significantly different from the expression level of the gene in the normal animal or tissue as a result of comparison with It is characterized by including.
  • the composite is evaluated according to the following procedure.
  • test compound is administered to or contacted with a test animal or a test cell.
  • the test compound is a drug candidate compound for the purpose of treating, preventing or diagnosing cancer.
  • the structure and properties are not limited, and the type of compound is not limited.
  • a suitable administration method may be selected each time without any particular limitation.
  • oral administration and parenteral administration for example, transdermal administration, Intramuscular injection, intravenous injection, subcutaneous injection.
  • the test compound There is no particular limitation on the method of contacting the test cell, for example, a method in which the cell and the test compound are mixed in a solution such as a culture solution or a buffer solution (for example, phosphate buffer solution), and both are brought into contact with each other.
  • the test animal or test cell at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC 56901, and GEF-HI, or a functional equivalent thereof.
  • the gene expression level is measured.
  • changes in the expression level of the gene can be measured using gene amplification methods such as RT-PCR, microarray methods, Northern plots, etc. What is necessary is just to detect and compare by.
  • an animal or cell into which a fusion gene between the expression control region of the gene and a reporter gene has been artificially introduced may be used.
  • the reporter gene includes, for example, a ⁇ -galatatosidase gene, a luciferase gene, or a green fluorescent protein gene.
  • a gene functionally equivalent to at least one gene selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI is compared with the gene, although the nucleotide sequence is different.
  • the gene which codes the protein which shows high homology and has the same or similar activity as each protein is shown.
  • the homology is not particularly limited as long as it is functionally equivalent, but the homology of the base sequence is preferably 70 to 100%, more preferably 80 to 100%. It is particularly preferably 90 to 100%. When the homology is lower than the lower limit, there is a high possibility that the same or similar function as the corresponding gene is not exhibited.
  • a gene with relatively high homology is a gene in which one or more bases in CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56 901, or GEF-HI are naturally or artificially substituted, deleted, added, Z, or inserted. It may be there.
  • the expression level of the gene measured in the previous step is measured before administration or contact with the test compound. Compare with That is, in this step, it is confirmed how the expression level of the gene to be measured changes before and after the test compound is applied or contacted. As a result of comparison, we investigated whether there was a significant difference in the expression level, and CARS, MOC OS, TNFRSF9, LOC56901 or GEF-H1 expression was significantly higher after administration or contact of the test compound In this case, it is judged that the effect of the compound is low.
  • the second compound evaluation method of the present invention comprises a step of administering or contacting a test compound to a test animal or a test cell, and the test compound comprising CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 and GEF-HI. Comparing the activity of at least one protein selected from the group consisting of or a protein functionally equivalent to the protein with a step of comparing the value of the activity with that before administration or contact with the test compound And confirming whether the activity of the protein has changed significantly before and after administration or contact.
  • the composite is evaluated according to the following procedure.
  • test compound is administered or brought into contact with a test animal or a test cell.
  • the test compound is a drug candidate compound for the purpose of treating, preventing or diagnosing cancer
  • its structure and properties are not limited, and the type of compound is not limited.
  • a suitable administration method may be selected each time without any particular limitation.
  • oral administration and parenteral administration for example, transdermal administration, Intramuscular injection, intravenous injection, subcutaneous injection.
  • parenteral administration for example, transdermal administration, Intramuscular injection, intravenous injection, subcutaneous injection.
  • the method of bringing the test compound into contact with the test cell For example, the cell and the test compound are mixed in a solution such as a culture solution or a buffer solution (for example, phosphate buffer solution), and both are mixed. The method of making it contact is mentioned.
  • At least one protein selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC 56901, and GEF-HI or a protein functionally equivalent to the protein.
  • Measure activity As a method for measuring the activity of these proteins, the aminoacylation activity of tRNA may be measured using, for example, CARS as a control before administration or contact without limitation.
  • a protein functionally equivalent to at least one protein selected from the group consisting of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901, and GEF-HI has a different amino acid sequence from the protein. These proteins exhibit relatively high homology and have the same or similar activity as the respective proteins.
  • the homology is not particularly limited as long as it is functionally equivalent, but the homology of the amino acid sequence is preferably 50 to: LOO%, more preferably 60 to 100%. Especially preferred is 70-100%. If the homology is lower than the lower limit, in some cases, it is likely that the same or similar activity as the corresponding protein is not exhibited. However, even if the homology is less than the lower limit, if the homology between the domain having a function specific to the corresponding protein and the amino acid sequence corresponding to the domain is high, the same or similar activity is obtained. May have. Such a protein can be suitably used even if the amino acid sequence homology is outside the above range.
  • a protein with relatively high homology is a protein in which one or more amino acids in CARS, MOCOS, TNF RSF9, LOC56901, or GEF-HI are naturally or artificially substituted, deleted, added, and Z or inserted. There may be.
  • the activity of the protein measured in the previous step is compared with that before administration or contact with the test compound. That is, in this step, it is confirmed how the activity of the gene to be measured has changed before and after administration of the test compound.
  • the comparison whether or not there is a significant difference in the activity difference is examined, and if the activity of CARS, MOCOS, TNFRSF9, LOC56901 or GEF-HI is predominantly high after administration or contact of the test compound, The effect is judged to be low, and if it is low, it is judged to be effective.
  • the p53 gene having wild-type and V157F, R175H, and R248Q mutations was cloned into the doxocycline-inducible vector pTRE-hyg. Next, these p53 expression vectors One was introduced into U20S, a cancer cell, to establish an inducible p53 mutant-expressing cell line.
  • Primer and probe sequences used in the real-time RT-PCR method are as follows.
  • MOCOS MOCOS, TNFRSF9, CARS, LOC56901, GEF— HI, SFPQ, CC
  • TaqMan probe 5′-CCGGGATGACCGGAGCACCTG-3 ′ (SEQ ID NO: 14).
  • GEF-HI expression by mutant p53 promotes the progression of canceration
  • expression of GEF-HI in wild-type and mutant p53 cell lines! was suppressed by siRNA and cell proliferation ability was examined. That is, GEF-H1 siRNA (Dharmacon) was transferred to cancer cells using Oligofectamine, and the viable cell rate was measured by the MTT method 3 days later.
  • FIGS. 7 to 9 cancer cell lines expressing wild type p53
  • FIGS. 10 to 12 cancer cell lines expressing mutant p53
  • suppression of GEF-HI expression significantly decreased the cell proliferation ability, and it became clear that it was well known.
  • the present invention it is possible to detect a p53 dysfunction without directly detecting a p53 mutation, and to diagnose a cancer caused by a strenuous dysfunction without imposing a burden on the subject. It becomes possible. Furthermore, according to the present invention, it is possible to evaluate compounds effective for the treatment of cancer involving p53.

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Abstract

 被検組織又は被検細胞に於ける、CARS、MOCOS、TNFRSF9、LOC56901及びGEF-H1からなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子と機能的に等価な遺伝子の発現量を測定する工程と、該遺伝子の発現量と正常組織又は正常細胞における対応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織又は被検細胞における遺伝子の発現量が正常組織又は正常細胞における遺伝子の発現量より有意に多いか否かを判断する工程と、を含む方法により、p53の機能異常の検出や癌の分子診断を行う。本発明の分子診断方法により、p53の変異の有無にかかわらず、また、p53の変異を直接検出することなくp53の機能異常を検出することや、かかる機能異常に起因する癌の診断を行うことが可能となる。

Description

明 細 書
p53の機能異常の検出方法、癌の分子診断方法及び癌治療に有効な化 合物の評価方法
技術分野
[0001] 本発明は、所定の遺伝子の発現等を測定することにより癌抑制遺伝子 p53の機能 異常の検出や癌の診断を行う方法に関する。また、所定の遺伝子の発現量等に基 づいて化合物の評価を行う方法に関する。
背景技術
[0002] 近年、ヒトゲノム計画の進展により、薬物感受性の個人差を遺伝子レベルで理解し 、医薬の開発に応用する薬理ゲノミタス(Pharmacogenomics)が急速に進展してい る。薬物感受性の個人差を遺伝子レベルで判断できるようになれば、副作用の強い 医薬を真に薬効の期待できる患者だけに投与することや、試行錯誤的な投薬を実施 することなぐ治療の初期から適切な投薬を実施する、いわゆるオーダーメイド医療が 可能となる。その結果、患者に無用の肉体的負担を負わせることもなくなり、また、近 年高騰する傾向にある医療費の削減にも寄与することとなる。中でも、抗癌剤は非常 に強い副作用を有する場合が多ぐオーダーメイド医療が強く望まれている。
[0003] また、個々人の疾患関連遺伝子の分子レベルでの解析が可能となることによって、 同じ疾患であっても原因となるメカニズムが異なる場合に、そのメカニズムに応じた治 療ゃ予防を行うことが可能となる。
[0004] 一方、癌抑制遺伝子として知られる p53は、当初、腫瘍ウィルスである SV40の T抗 原と複合体を形成する分子として発見された Ci. Virol.、第 31卷、 463頁、 1979年 :非特許文献 1)。その後、 p53遺伝子が多くの癌で欠失が見られる 17番染色体の短 腕(17pl3)に存在し、対立遺伝子の双方が欠失と変異により不活性化されている癌 抑制遺伝子であることが明ら力となった(N. Engl. J. Med.、第 319卷、 525頁、 19 88年:非特許文献 2)。また、その遺伝子産物は 393アミノ酸力もなる転写制御因子 で、 4量体を形成して機能することが明らかとなっている。さらに、細胞周期に関与す る p21、 14—3— 3、アポトーシスに関与する bax、 PIG3、 GADD45等、非常に多くの 遺伝子が p53の標的遺伝子として同定されており、 p53に異常が生じることにより標 的遺伝子の転写制御に異常を来たすと考えられる。
[0005] 実際、 p53遺伝子の変異は、肺癌では 70%、胃癌では 45%、乳癌では 30%、大 腸癌では 65%、膀胱癌では 61 %、脾臓癌では 70%にのぼることが明らかとなつてお り(実験医学、第 19卷、 135頁、 2001年:非特許文献 3)、他の癌抑制遺伝子と比較 しても顕著に高い。すなわち、 p53遺伝子の変異による機能異常が癌の発症に大き な影響を及ぼして 、ると 、える。
[0006] このような状況の下、 p53遺伝子の変異や機能異常と疾患との関連に関する研究 が盛んになされている。例えば、 Soussiらは 15000例以上にのぼる p53の変異をデ ータベース化しており(http:〃 p53.curie.fr/ : Nucleic Acids Res.、第 22卷、 355 1頁、 1994年:非特許文献 4)、 p53の DNA結合ドメイン領域内に位置するコドン 17 5、 245、 248、 273等には変異が頻発することを示している。また、ある種の肝細胞 癌では、 DNA結合ドメイン内のコドン 249には Argから Serへの変異が認められるこ とが明らかにされている(Nature、第 350卷、 427頁、 1991年:非特許文献 5)。また 、紫外線によって生じる皮膚癌においても p53遺伝子中の CCがチミンダイマー化し ていることが報告されている(PNAS、第 88卷、 10124頁、 1991年:非特許文献 6)
[0007] 非特許文献 1 :J. Virol.、第 31卷、 463頁、 1979年
非特許文献 2 : N. Engl. J. Med.、第 319卷、 525頁、 1988年
非特許文献 3 :実験医学、第 19卷、 135頁、 2001年
非特許文献 4 : Nucleic Acids Res.,第 22卷、 3551頁、 1994年
非特許文献 5 : Nature,第 350卷、 427頁、 1991年
非特許文献 6 : PNAS、第 88卷、 10124頁、 1991年
非特許文献 7 : Mol. Carcinogenesis,第 19卷、 243頁、 1997年
発明の開示
[0008] し力しながら、 p53の変異が必ずしも機能異常や疾患の原因となるわけではなぐ 変異が生じていても P53の機能には何ら影響を及ぼさない場合もある。例えば、 Li— Qurjiaらは、酵母を用いた実験で、リンパ腫由来の A3ZKAW細胞には p53のコド ン 213及び 234にミスセンス変異がありながら、転写活性には異常が認められなかつ たことを明らかにしている(Mol. Carcinogenesis、第 19卷、 243頁、 1997年:非特 許文献 7)。このような場合には、 p53の変異を検出しても機能異常や疾患との関連を 推測することができな 、と 、う問題があった。
[0009] 本発明は、上記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、 p53の変異 の有無にかかわらず、また、 p53の変異を直接検出することなく p53の機能異常を検 出することや、力かる機能異常に起因する癌の診断を行う方法等を提供することを目 的とする。
[0010] 本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意研究を重ねた結果、特定の遺伝子群の 発現量力 ¾53の機能異常とリンクして増減することを見出し、本発明を完成した。
[0011] すなわち、本発明の p53の機能異常の検出方法は、被検組織又は被検細胞に於 ける、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より 選択される少なくとも一つの遺伝子又は当該遺伝子と機能的に等価な遺伝子の発現 量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と正常組織又は正常細胞における対応 遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織又は被検細胞におけ る遺伝子の発現量が正常糸且織又は正常細胞における遺伝子の発現量より有意に多 いか否かを判断する工程と、を含むことを特徴とする。
[0012] ここで、前記遺伝子が CARS又は GEF— HIであることが好ましい。かかる遺伝子 を用いることにより、より精度高く P53の機能異常を検出することが可能となる。
[0013] また、本発明の癌の分子診断方法 (癌の評価又は判定方法)は、被検組織又は被 検細胞における、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIか らなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子と機能的に等価な遺伝 子の発現量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と正常糸且織又は正常細胞にお ける対応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織又は被検細 胞における遺伝子の発現量が正常糸且織又は正常細胞における遺伝子の発現量より 有意に多いか否かを判断することにより P53の機能異常を予測する工程と、を含むこ とを特徴とする。
[0014] ここで、前記遺伝子が CARS又は GEF— HIであることが好ましい。かかる遺伝子 を用いることにより、より精度高く癌の分子診断を行うことが可能となる。
[0015] また、本発明の薬剤感受性の判定方法は、被検組織又は被検細胞における、 CA RS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される 少なくとも一つの遺伝子又は当該遺伝子と機能的に等価な遺伝子の発現量を測定 する工程と、当該遺伝子の発現量と正常組織又は正常細胞における対応遺伝子の 発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織又は被検細胞における遺伝子 の発現量が正常糸且織又は正常細胞における遺伝子の発現量より有意に多いか否か を判断することにより P53の機能異常を予測する工程と、を含むことを特徴とする。
[0016] ここで、前記遺伝子が CARS又は GEF— HIであることが好ましい。かかる遺伝子 を用いることにより、より精度高く薬剤感受性の判定をすることが可能となる。
[0017] さらに、本発明は、上記薬剤感受性の判定方法によって得られた結果に基づき投 与する抗癌剤を選択する抗癌剤の投与方法 (抗癌剤の選択方法)をも包含する。
[0018] また、本発明の癌診断キット (検出キット、 p53の機能異常の検出キット)は、 CARS 、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少 なくとも一つの遺伝子の発現を測定する発現測定手段と、当該遺伝子の発現を検出 する検出手段と、を含むことを特徴とする。
[0019] ここで、前記発現測定手段が、マイクロアレイ、 PCR用プライマーからなる群より選 択される 、ずれか一つであることが好ま U、。
[0020] また、本発明の癌治療に有効な化合物の評価方法は、被検化合物を、被検動物又 は被検細胞に、投与又は接触させる工程と、当該被検動物又は被検細胞中におけ る、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選 択される少なくとも一つの遺伝子又は当該遺伝子と機能的に等価な遺伝子の発現量 を測定する工程と、当該発現量を被検化合物の投与又は接触前と比較する工程と 比較した結果、被検化合物の投与又は接触によって当該遺伝子の発現量が有意に 変化したことを確認する工程と、を含むことを特徴とする。
[0021] ここで、前記遺伝子が GEF— HIであることが好ましい。力かる遺伝子を使用するこ とにより、より精度高くィ匕合物の評価を行うことが可能となる。
[0022] さらに、本発明の癌治療に有効な化合物の評価方法は、被検化合物を、被検動物 又は被検細胞に、投与又は接触させる工程と、当該被検化合物が、 CARS, MOC OS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも 一つのタンパク質又は当該タンパク質と機能的に等価なタンパク質の活性を測定す る工程と、当該活性の値を被検化合物の投与又は接触前と比較する工程と、比較し た結果、投与又は接触前後で当該タンパク質の活性が有意に変化している力否かを 確認する工程と、を含むことを特徴とする。
[0023] ここで、前記タンパク質力GEF— HIであることが好ましい。力かる遺伝子を使用す ることにより、より精度高くィ匕合物の評価を行うことが可能となる。
[0024] 本発明によれば、 p53の変異を直接検出することなぐまた、被験者に負担をかけ ることなく p53の機能異常を検出することや、力かる機能異常に起因する癌の診断を 行うことが可能となる。さらに、本発明によれば、 p53が関与する癌の治療に有効な化 合物の評価が可能となる。
図面の簡単な説明
[0025] [図 1]図 1は、各種組換え p53変異体の発現をタンパク質レベルで確認した図である
[図 2]図 2は、各種組換え p53変異体の発現を mRNAレベルで確認した図である。
[図 3]図 3は、各種組換え p53変異体と p21の発現との関係を示す図である。
[図 4]図 4は、各種 P53変異体の発現と GEF— HIの発現量との関係を示す図である
[図 5]図 5は、 p53変異体の発現誘導によって活性ィ匕される GEF— HIと、 GEF— HI の発現によって活性ィ匕される RhoAとの関係を示す図である。
[図 6]図 6は、種々の癌細胞における GEF— HIの発現量を示す図である。図中、口 は変異型 P53を発現する癌細胞を示し、△は野生型 p53を発現する癌細胞を示す。
[図 7]図 7は、野生型 p 53を発現する HCT116細胞につ!/、て GEF— HIの発現を抑 制した場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、◊は GEF -HI siRN Aを導入した場合の生細胞率を示す。
[図 8]図 8は、野生型 p53を発現する A427細胞について GEF— HIの発現を抑制し た場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、◊は GEF -HI siRNAを導入した場合の生細胞率を示す。
[図 9]図 9は、野生型 p 53を発現する RT4細胞につ 、て GEF—HIの発現を抑制した 場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、◊は GEF— H 1 siRNAを導入した場合の生細胞率を示す。
[図 10]図 10は、変異型 p53を発現する UMCU3細胞について GEF— HIの発現を 抑制した場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、◊ は GEF -HI siRNAを導入した場合の生細胞率を示す。
[図 11]図 11は、変異型 p 53を発現する SK O V3細胞につ!/、て GEF— HIの発現 を抑制した場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、 ◊は GEF -HI siRNAを導入した場合の生細胞率を示す。
[図 12]図 12は、変異型 p53を発現する ES— 2細胞について GEF— HIの発現を抑 制した場合の 3日後の生細胞率を示す図である。□は対照(Scramble)を示し、◊は GEF -HI siRNAを導入した場合の生細胞率を示す。
発明を実施するための最良の形態
[0026] 以下、本発明の好適な実施形態について詳細に説明する。
[0027] 先ず、本発明にかかる用語にっ 、て説明する。
本発明における「被検組織」とは、癌の検査対象となる生体カゝら抽出可能な組織で あり、 p53の関与を検討する必要のある癌組織や、癌診断の必要があると認められる 組織であればその種類は特に限定されない。力かる組織の例としては、例えば、神 経芽腫、網膜芽細胞腫、脳腫瘍、頭頸部癌、下垂体腺腫、神経膠腫、聴神経鞘腫、 口腔が癌、咽頭癌、喉頭癌、甲状腺癌、胸腺腫、中皮腫、乳癌、肺癌、胃癌、食道癌 、大腸癌、肝臓癌、脾臓癌、脾内分泌腫瘍、胆道癌、陰茎癌、外陰癌、腎盂尿管癌 、腎臓癌、精巣癌、前立腺癌、膀胱癌、子宮癌、絨毛性疾患、膣癌、卵巣癌、卵管 癌、卵巣胚細胞腫瘍、皮膚癌、菌状息肉症、悪性黒色腫、軟部肉腫、骨腫瘍、悪性 リンパ腫、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、リンパ浮腫由来の組織が挙 げられる。
[0028] また、本発明における「被検細胞」も同様に、癌の検査対象となる生体力も抽出可 能な組織であり、 p53の関与を検討する必要のある癌組織由来の細胞や、癌診断の 必要があると認められる組織由来の細胞であればその種類は特に限定されない。か 力る細胞の例としては、例えば、神経芽腫、網膜芽細胞腫、脳腫瘍、頭頸部癌、下垂 体腺腫、神経膠腫、聴神経鞘腫、口腔が癌、咽頭癌、喉頭癌、甲状腺癌、胸腺腫、 中皮腫、乳癌、肺癌、胃癌、食道癌、大腸癌、肝臓癌、脾臓癌、脾内分泌腫瘍、胆 道癌、陰茎癌、外陰癌、腎盂尿管癌、腎臓癌、精巣癌、前立腺癌、膀胱癌、子宮癌 、絨毛性疾患、膣癌、卵巣癌、卵管癌、卵巣胚細胞腫瘍、皮膚癌、菌状息肉症、悪 性黒色腫、軟部肉腫、骨腫瘍、悪性リンパ腫、白血病、骨髄異形成症候群、多発性 骨髄腫、リンパ浮腫由来の細胞が挙げられる。
[0029] 次に、本発明にお 、て被検対象となる遺伝子、 CARS遺伝子、 MOCOS遺伝子、 TNFRSF9遺伝子、 LOC56901遺伝子及び GEF— HI遺伝子について説明する。
CARS遺伝子(cysteinyl—tRNA synthetase :NM— 001751:配列番号 1)に よりコードされるタンパク質は、細胞質に存在する酵素であり、 tRNAのアミノアシル 化を触媒する。また、 CARS遺伝子は、癌抑制遺伝子の存在部位として知られる染 色体の 11ρ15. 5に存在することが明らかにされている(Genomics、第 15卷、 692 頁、 1993年) Q
[0030] MOCOS遺伝子(molybdenum cofactor sulfurase :NM— 017947 :配列番 号 2)は、キサンチン尿症の原因遺伝子として同定された(Biochem. Biophys. Res . Commun.、第 282卷、 1194頁、 2001)。 MOCOSは、コード領域 2667塩基、 8 88アミノ酸力 なる分子である。
[0031] TNFRSF9遺 子 (tumor necrosis factor receptor superfamily, mem ber 9 :NM— 001561 :配列番号 3)によりコードされるタンパク質は、 Tumor necr osis factor (TNF)受容体ファミリーに属し、 T細胞の増殖を阻害し、アポトーシスを 誘導することが知られている(Eur J. Immunol.、第 9卷、 2219頁、 1994年)。
[0032] GEF— HI遺伝子(Rho guanine exchange nucleotide factor— HI :NM —004723 :配列番号 4)によりコードされるタンパク質は、癌遺伝子と知られる Rhoに 結合し、不活性型の Rho— GDPカゝら活性型の Rhoに変換する酵素として知られてい る G. Biol Chem.、第 273卷、 34954頁、 1998年)。
[0033] LOC56901遺伝子(NM 020142 :配列番号 5)によりコードされるタンパク質は 、電子を NADHから電子伝達系に輸送する酸化還元酵素 NDUFA4のホモログとし て知られる(Proc Natl Acad Sci USA.、第 99卷、 16899頁、 2002年)。
[0034] 本発明において使用される CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901又は GE F—H1は、これらの遺伝子と機能的に等価な遺伝子であってもよい。
[0035] ここで、「CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群 より選択される少なくとも一つの遺伝子と機能的に等価な遺伝子」とは、当該遺伝子 と塩基配列は異なるものの、比較的高い相同性を示し、それぞれのタンパク質と同じ 又は類似の活性を有するタンパク質をコードする遺伝子を示す。ここで、前記相同性 は、機能的に等価であれば特に制限はないが、塩基配列の相同性が 70〜 100%で あることが好ましぐ 80〜100%であることがより好ましぐ 90〜100%であることが特 に好ましい。相同性が前記下限より低い場合には対応する遺伝子と同じ又は類似の 機能を示さない可能性が高い傾向にある。し力しながら、相同性が前記下限未満で あっても、対応する遺伝子に特有の機能を有するドメインと、当該ドメインに対応する 塩基配列との相同性が高い場合には同じ又は類似の機能を有する場合がある。この ような遺伝子は、塩基配列の相同性が前記範囲外であっても好適に使用可能である 。また、比較的相同性の高い遺伝子とは、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56 901又は GEF— HIにおける 1又は 2以上の塩基が自然若しくは人為的に置換、欠 失、付加及び Z又は挿入した遺伝子であってもよ ヽ。
[0036] 次に、本発明の p53の機能異常の検出方法について説明する。
本発明の p53の機能異常の検出方法は、被検組織における、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つ の遺伝子の発現量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と正常組織における対 応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織における遺伝子の 発現量が正常組織における遺伝子の発現量より有意に多いか否かを判断する工程 とを含むことを特徴とする。
[0037] 本発明において、先ず、被検組織における、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LO C56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子の発現量 を測定する。遺伝子の発現量の測定の方法としては特に制限はないが、例えば、被 検組織力ゝら抽出したゲノミック DNAを铸型として RT— PCRを行う方法、前記遺伝子 がプロットされたマイクロアレイを用いる方法、ノーザンブロットが挙げられる。ここで、 遺伝子の「発現量」とは、遺伝子転写産物の絶対量又は相対量をいい、相対量の場 合は、後述する正常組織における発現量との相対的な比較において当該遺伝子の 発現量を決定すればよい。
[0038] また、本工程において、発現量を測定する遺伝子は一種である必要はなぐ二種以 上の遺伝子の発現を測定した結果より P53の機能異常を総合的に判断してもよい。
[0039] 次に、上記の方法により測定した遺伝子の発現量と正常組織における対応遺伝子 の発現量とを比較する。
[0040] ここで、「正常組織又は正常細胞」とは、被検組織又は被検細胞と比較の対象とな る組織又は細胞であればその由来は特に限定されず、健常人由来であっても癌患 者由来であってもよい。また、癌組織の近辺に存在する正常組織又は正常細胞であ つてもよい。
[0041] 本工程においては、被検組織又は細胞に発現する CARS、 MOCOS、 TNFRSF 9、LOC56901又は GEF— HI遺伝子と正常糸且織又は細胞に発現するこれらの遺 伝子 (対応遺伝子)の発現量を比較するが、発現量の絶対量を比較してもよぐまた、 比較による相対値を算出してもよい。
[0042] 次に、比較した結果、被検組織又は被検細胞における遺伝子の発現量が正常組 織又は正常細胞における遺伝子の発現量より有意に多いか否かを判断する。
[0043] 前記の有意差の判断手法としては特に制限はないが、当業者に公知の統計学的 手法を用いて検定すればょ 、。
[0044] 被検組織又は被検細胞と、正常組織又は正常細胞における前記遺伝子の発現量 の比較の結果、有意差をもって被検組織又は被検細胞にぉ 、て発現が高!、と認め られた場合には当該被検組織又は被検細胞における P53に機能異常が認められる と判断できる。この場合の p53の機能異常としては、 p53遺伝子における塩基の欠失 (例えばナンセンス変異)、置換 (例えば、ミスセンス変異、ポイントミューテーシヨン)、 挿入、フレームシフト等が考えられるが、本発明の対象としては、機能異常の原因は 特に限定されず、これらのいずれが原因となった機能異常も含まれる。 [0045] また、 p53の機能異常の具体例としては、 p53タンパク質の転写活性が低下又は活 性化する場合や、転写が全く起こらない場合が挙げられるが、活性には異常を認め な 、がコードされる遺伝子には変異を生じて 、る場合も含まれる。
[0046] 次に、本発明の癌の分子診断方法 (癌の評価又は判定方法)について説明する。
本発明の癌の分子診断方法は、被検組織又は被検細胞における、 CARS, MOC OS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF—H1からなる群より選択される少なくとも 一つの遺伝子の発現量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と正常組織又は正 常細胞における対応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検組織 又は被検細胞における遺伝子の発現量が正常組織又は正常細胞における遺伝子 の発現量より有意に多いか否かを判断することにより P53の機能異常を予測するェ 程と、を含む。
[0047] 本発明の癌の分子診断方法の手順としては、 p53の機能異常を検出するまでは上 述した p53の機能異常の検出方法と同様に行う。当該方法によって p53の機能異常 が検出された場合、被検組織又は被検細胞力 ¾53の異常によって生じる癌由来の組 織又は細胞であると判断できる。すなわち、被検組織又は被検細胞が由来する組織 にお 、て p53の異常により生じることが知られて 、る癌種を特定することができる。具 体的には、例えば、 p53との関与が示唆されている Li— Fraumeni Syndrome (Sc ience、第 250卷、 1233頁、 1990年)、肝細胞癌(Nature,第 350卷、 377頁、 199 1年)、骨原性肉腫(Proc Natl Acad Sci USA,第 84卷、 7716頁、 1987年)、 横紋筋肉種(Proc Natl Acad Sci USA、第 87卷、 5863頁、 1990年)、結腸 癌(Science,第 244卷、 217頁、 1989年)、肺癌(Science,第 246年、 491頁、 19 89年)、グリア芽細胞腫 (Am. J. Hum. Genet.、第 47卷 (suppl.)、 A4、 1990 年)、食道癌(Proc Natl Acad Sci USA、第 87卷、 9958頁、 1990年)、膀胱 癌(Science、第 252卷、 706頁、 1991年)、扁平上皮癌(Proc Natl Acad Sci US、第 88卷、 10124頁、 1991年)、子宮頸癌(Lancet、第 339卷、 1070頁、 19 92年)、肺癌(Proc Natl Acad Sci USA、第 89卷、 7262頁、 1992年)、白血 病'リンパ腫 Ci Clin Invest.、第 90卷、 653頁、 1992年)等と、被検組織又は被 検細胞との関係を診断することが可能となる。 [0048] 次に、本発明の薬剤感受性の判定方法について説明する。
本発明の薬剤感受性の判定方法は、被検組織又は被検細胞における、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少な くとも一つの遺伝子の発現量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と正常組織又 は正常細胞における対応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、被検 組織又は被検細胞における遺伝子の発現量が正常組織又は正常細胞における遺 伝子の発現量より有意に多いか否かを判断することにより P53の機能異常を予測す る工程と、を含む。
[0049] 本発明の癌の分子診断方法の手順としては、 p53の機能異常を検出するまでは上 述した p53の機能異常の検出方法と同様に行う。当該方法によって p53の機能異常 が検出された場合、被検組織又は被検細胞力 ¾53の異常によって生じる癌由来の組 織又は細胞であると判断できる。すなわち、 p53と薬効との関係が知られている薬剤 について、その薬剤を投与した場合にどの程度の薬効が期待できるか、あるいは、ど のような副作用が生じるかといつた薬剤感受性を予測することができる。その結果、副 作用が予想される薬剤の投与は避け、有効であると予想される薬剤を選択的に投与 することが可能となる。このような p53と薬効との関係が知られている薬剤としては、例 えば、ドキソルビシンやアントラサイクリン系の抗癌剤が挙げられ、 p53の DNA結合 領域に遺伝子変異が存在することにより生じる肺癌とこれらの抗癌剤の応答性に一 定の関係があることが示唆されている(Nat Med、第 2卷、 811頁、 1996年)。しか しながら、本発明の薬剤感受性の判定方法にお!ヽて対象となる薬剤は前記抗癌剤 に限定されず、あらゆる抗癌剤について p53との関連を検討あるいは調査したうえで 、薬剤感受性の判断をおこなえばよい。
[0050] すなわち、本発明の薬剤感受性の判定方法により、被検組織又は被検細胞が p53 の関与する癌細胞を含むことが明ら力となった場合に、被検体にこれらの抗癌剤の 投与が有効力どうか判断できることとなり、投与すべき力どうかの判定が可能となる。 また、当該判定によって適切な薬剤を選択し、投与することにより、副作用を抑え、治 療効果の高 ヽ投薬を行うことが可能となる。
[0051] また、本発明は、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIか らなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子の発現を測定する発現測定手段と、 当該遺伝子の発現を検出する検出手段と、を含む癌診断キットをも提供する。
[0052] CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択 される少なくとも一つの遺伝子の発現を測定する発現測定手段としては特に制限は ないが、例えば、当該遺伝子を増幅するためのプライマー、当該遺伝子がプロットさ れたマイクロアレイ、ノーザンブロット用のプローブが挙げられる。また、当該遺伝子 の発現を検出する検出手段としても特に制限はないが、例えば、ノーザンプロット用 のプローブを可視化するための蛍光標識試薬やラジオアイソトープ標識試薬が挙げ られる。
[0053] このような癌診断キットを使用することにより、被検組織ゃ被検細胞カゝらゲノム DNA を抽出して塩基配列を確認することにより p53の変異を検出するという工程を経ること なぐ簡易 ·迅速に P53が関与する癌の診断をすることが可能となる。
[0054] 次に、本発明の化合物の評価方法について説明する。
本発明の第一の化合物の評価方法は、被検化合物を、被検動物又は被検細胞に 、投与又は接触させる工程と、当該被検動物又は被検細胞中における、 CARS, M OCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なく とも一つの遺伝子の発現量を測定する工程と、当該遺伝子の発現量と、正常動物又 は正常細胞における対応遺伝子の発現量とを比較する工程と、比較した結果、該被 検動物又は被検組織における遺伝子の発現量が該正常動物又は正常組織におけ る遺伝子の発現量と有意に差が認められるか否かを確認する工程と、を含むことを特 徴とする。
[0055] 具体的には、以下の手順でィ匕合物の評価を行う。
先ず、被検化合物を被検動物又は被検細胞に投与又は接触させる。ここで、被検 化合物としては、癌に治療、予防又は診断を目的とする薬剤候補の化合物であれば
、その構造や性質は問わず、化合物種も限定されない。
[0056] また、被検化合物を被検動物に投与する方法としては特に制限はなぐその都度 好適な投与方法を選択すればよいが、例えば、経口投与、非経口投与 (例えば、経 皮投与、筋肉内注射、静脈内注射、皮下注射)が挙げられる。また、被検化合物を被 検細胞に接触させる方法としても特に制限はなぐ例えば、細胞と被検化合物を培養 液や緩衝液 (例えば、リン酸緩衝液)等の溶液中で混合し、両者を接触させる方法が 挙げられる。
[0057] 次に、被検動物又は被検細胞中における、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC 56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺 伝子と機能的に等価な遺伝子の発現量を測定する。これらの遺伝子の発現量の測 定方法としては、特に制限はなぐ投与又は接触前を対照として、当該遺伝子の発現 量の変化を RT—PCRのような遺伝子増幅法、マイクロアレイを用いる方法、ノーザン プロット等によって検出し、比較すればよい。また、発現量の測定には、前記遺伝子 の発現調節領域とレポーター遺伝子との融合遺伝子を人為的に導入した動物又は 細胞を用いてもよい。この場合、レポーター遺伝子としては、例えば、 β—ガラタトシ ダーゼ遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子又はグリーンフルォレツセンスプロテイン遺伝 子が挙げられる。
[0058] ここで、「CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群 より選択される少なくとも一つの遺伝子と機能的に等価な遺伝子」とは、当該遺伝子 と塩基配列は異なるものの、比較的高い相同性を示し、それぞれのタンパク質と同じ 又は類似の活性を有するタンパク質をコードする遺伝子を示す。ここで、前記相同性 は、機能的に等価であれば特に制限はないが、塩基配列の相同性が 70〜 100%で あることが好ましぐ 80〜100%であることがより好ましぐ 90〜100%であることが特 に好ましい。相同性が前記下限より低い場合には対応する遺伝子と同じ又は類似の 機能を示さない可能性が高い傾向にある。し力しながら、相同性が前記下限未満で あっても、対応する遺伝子に特有の機能を有するドメインと、当該ドメインに対応する 塩基配列との相同性が高い場合には同じ又は類似の機能を有する場合がある。この ような遺伝子は、塩基配列の相同性が前記範囲外であっても好適に使用可能である 。また、比較的相同性の高い遺伝子とは、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56 901又は GEF— HIにおける 1又は 2以上の塩基が自然若しくは人為的に置換、欠 失、付加及び Z又は挿入した遺伝子であってもよ ヽ。
[0059] 次に、前工程で測定した当該遺伝子の発現量を、被検化合物の投与又は接触前 と比較する。すなわち、本工程では、測定対象の遺伝子の発現量が被検化合物の投 与又は接触前後でどのように変化したかを確認する。比較の結果、発現量の差に有 意差が認められるカゝ否かを検討し、被検化合物の投与又は接触後で CARS、 MOC OS、 TNFRSF9、 LOC56901又は GEF—H1の発現が優位に高い場合には化合 物の効果が低いと判断し、低い場合には有効と判断する。
[0060] 次に、本発明の第二の化合物の評価方法について説明する。
本発明の第二の化合物の評価方法は、被検化合物を、被検動物又は被検細胞に 、投与又は接触させる工程と、当該被検化合物が、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9 、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つのタンパク質 又は該タンパク質と機能的に等価なタンパク質の活性を測定する工程と、当該活性 の値を被検化合物の投与又は接触前と比較する工程と、比較した結果、投与又は接 触前後で該タンパク質の活性が有意に変化しているカゝ否かを確認する工程と、を含 むことを特徴とする。
[0061] 具体的には、以下の手順でィ匕合物の評価を行う。
先ず、被検化合物を、被検動物又は被検細胞に、投与又は接触させる。ここで、被 検化合物としては、癌に治療、予防又は診断を目的とする薬剤候補の化合物であれ ば、その構造や性質は問わず、化合物種も限定されない。
[0062] また、被検化合物を被検動物に投与する方法としては特に制限はなぐその都度 好適な投与方法を選択すればよいが、例えば、経口投与、非経口投与 (例えば、経 皮投与、筋肉内注射、静脈内注射、皮下注射)が挙げられる。また、被検化合物を被 検細胞に接触させる方法としても特に制限はなぐ例えば、細胞と被検化合物を培養 液や緩衝液 (例えば、リン酸緩衝液)等の溶液中で混合し、両者を接触させる方法が 挙げられる。
[0063] 次に、被検動物又は被検細胞中における、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC 56901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つのタンパク質又は該 タンパク質と機能的に等価なタンパク質の活性を測定する。これらのタンパク質の活 性の測定方法としては、特に制限はなぐ投与又は接触前を対照として、例えば、 C ARSであれば tRNAのアミノアシル化活性を測定すればよい。 [0064] ここで、「CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群 より選択される少なくとも一つのタンパク質と機能的に等価なタンパク質」とは、当該タ ンパク質とアミノ酸配列は異なるものの、比較的高い相同性を示し、それぞれのタン ノ^質と同じ又は類似の活性を有するタンパク質を示す。ここで、前記相同性は、機 能的に等価であれば特に制限はないが、アミノ酸配列の相同性が 50〜: LOO%である ことが好ましぐ 60〜 100%であることがより好ましぐ 70〜 100%であることが特に好 ま 、。相同性が前記下限より低 、場合には対応するタンパク質と同じ又は類似の 活性を示さない可能性が高い傾向にある。し力しながら、相同性が前記下限未満で あっても、対応するタンパク質に特有の機能を有するドメインと、当該ドメインに対応 するアミノ酸配列との相同性が高い場合には同じ又は類似の活性を有する場合があ る。このようなタンパク質は、アミノ酸配列の相同性が前記範囲外であっても好適に使 用可能である。また、比較的相同性の高いタンパク質とは、 CARS、 MOCOS、 TNF RSF9、LOC56901又は GEF— HIにおける 1又は 2以上のアミノ酸が自然若しくは 人為的に置換、欠失、付加及び Z又は挿入したタンパク質であってもよい。
[0065] 次に、前工程で測定した当該タンパク質の活性を、被検化合物の投与又は接触前 と比較する。すなわち、本工程では、測定対象の遺伝子の活性が被検化合物の投与 又は接触前後でどのように変化したかを確認する。比較の結果、活性の差に有意差 が認められるカゝ否かを検討し、被検化合物の投与又は接触後で CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、LOC56901又は GEF— HIの活性が優位に高い場合には効果が低 いと判断し、低い場合には有効と判断する。
[0066] 以上説明したような本発明の化合物の評価方法によれば、癌治療や予防に有用な 化合物のスクリーニングや、これら薬剤の有効性又は安全性の評価が可能となる。 実施例
[0067] 以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する力 本発明は以下の実施 例に限定されるものではない。
[0068] まず、変異型 p53発現ベクタープラスミドを構築した。
野生型及び V157F、 R175H、 R248Qの各変異を持つ p53遺伝子をドキソサイク リン誘導型ベクター pTRE— hygへクローユングした。次に、これらの p53発現べクタ 一を癌細胞である U20Sへ導入し、誘導性の p53変異体発現細胞株を榭立した。
[0069] 次に、野生型及び各変異型 p53遺伝子を有する細胞株の p53の発現を確認した。
タンパク質レベルでの発現をウェスタンブロット法にて(図 1)、 mRNAレベルでの発 現をリアルタイム RT— PCR法にて測定した (図 2)。 RT— PCRに用いたプライマー及 びプローブの配列は下記のとおりである。
フォワードプライマー: 5, -TCCCCGGACGATATTGAACA-3,(配列番号 6) リバースプライマー: 5, - GCATTCTGGGAGCTTCATCTG- 3,(配列番号 7) TaqManプローブ: 5, - TGGTTCACTGAAGACCCA- 3,(配列番号 8)。
[0070] その結果、誘導後は 10倍以上の野生型及び変異体 p53の発現誘導があった。
[0071] 次に、これらの細胞株において導入した変異型 p53により内在性の p53の機能が 喪失して!/ヽることを確かめた。
[0072] まず、 p53の転写活性化能を p21の遺伝子発現誘導を測定することにより調べた。
リアルタイム RT— PCR法に用いたプライマー及びプローブの配列は下記のとおりで ある。
フォワードプライマー: 5, -TGGAGACTCTCAGGGTCGAAA-3,(配列番号 9) リバースプライマー: 5, -GGCGTTTGGAGTGGTAGAAATC-3,(配列番号 10) TaqManプローブ: 5 ' - CGGCGGCAGACCAGCATGAC- 3 ' (配列番号 11)。
[0073] 調製した細胞株にドキソサイクリンを添加し、野生型及び変異型 p53を誘導したとこ ろ、誘導後 10時間において野生型 p53発現細胞では p21が 10倍以上転写活性ィ匕 されているのに対して、 3種の変異型細胞では、全く P21の転写活性ィ匕が見られなか つた(図 3)。このことにより、変異型 P53では、転写活性ィ匕能は失われていることが確 認できた。
[0074] 次に、変異型 p53によって発現が誘導される遺伝子を探索するために、野生型、変 異型 P53発現細胞株及びコントロールの U20S細胞株の網羅的遺伝子発現をマイ クロアレイを用いて測定した。変異型 P53発現誘導後 0、 12、 15時間の各細胞力も m RNAを抽出し、逆転写反応によって cDNAに変換後、オリゴヌクレオチドマイクロア レイ(Affymetrix社製)でハイブリダィゼーシヨンし、解析を行った。 3種類全ての変 異型 P53発現細胞株で遺伝子発現が上昇している遺伝子群を次のように抽出した。 すなわち、変異型 p53誘導前と誘導 15時間後を比較して、少なくとも一つの変異体 細胞で 1. 5倍以上の発現上昇があり、全ての変異体で有意に発現上昇を示す遺伝 子群を抽出した。また、野生型 p53の発現誘導によっては、遺伝子発現は変化をし ないことを条件とした。この条件下で以下の 12遺伝子が抽出された。
Gene symbol: C9orf48, CCNB1IP1, MRPL46, ZNF24, CARS,
MOCOS, TNFRSF9, CARS, LOC56901, GEF— HI, SFPQ, CC
NL1
[0075] これらの遺伝子群の発現亢進の有無は、癌細胞において p53の状態が野生型か 変異型かを判別することに有用と考えられる。さらに、遺伝子抽出の基準値を全ての 変異型 P53により 1. 5倍以上の発現上昇を示す遺伝子群を抽出したところ、 GEF- Hl(Rno guanine nucleotide exchange factor HlJと CAR;5(cysteinyl— t RNA synthetase)の二つであった。
[0076] 次に GEF— HIに注目し、変異型 p53による GEF— HIの誘導をリアルタイム RT— PCR法により確認した。用いたプライマー及びプローブの配列は下記のとおりである フォワードプライマー: 5, - TGAGATGTACGAGGTGCACACA- 3,(配列番号 12) リバースプライマー: 5, -CGCACGCTCTGCTGAATG-3,(配列番号 13)
TaqManプローブ: 5 ' - CCGGGATGACCGGAGCACCTG- 3 ' (配列番号 14)。
[0077] ドキシサイクリンによる p53発現誘導後の GEF— HI発現の経時変化を調べたとこ ろ、 24〜48時間後には全ての変異 p53細胞株において発現量が 5倍以上上昇して いた(図 4)。さらに、 GEF— HIは癌遺伝子の RhoAを活性化することが知られてい るので変異型 p53発現誘導後の RhoAの活性ィ匕状態を測定した。変異型及び野生 型 p53の発現誘導時間が 24、 48時間の各細胞株から、細胞抽出液を作成し全体の RhoAの発現量と活性型 RhoAの量をキット(Rho activation assay kit, cyto skeleton, Inc. )を用いて次のように測定した。 GST— Rhotekin—RBD (Rho Binding Domain)は活性型 Rhoに結合するので GST— Rhotekin—RBDを用い てプルダウンした。プルダウンされた活性型 GTPaseは RhoA特異抗体を用いたゥェ スタンプロッテイングで検出した。結果として、変異型 p53を発現し GEF—H1が誘導 されている細胞株では、 RhoAの活性が 5倍以上上昇していることが判明した(図 5)
[0078] 次に様々なガン細胞(29種類)において p53の変異と GEF—H1遺伝子発現量の 相関を調べた。図 6に示すように GEF— H 1の遺伝子発現は変異細胞株群において 有意に上昇していることが判った (Pく 0. 01)。
[0079] 次に、変異型 p53による GEF— HIの発現が癌化の進行を促進しているかどうかを 調べるため、野生型及び変異型 p 53細胞株にお!/、て GEF -HIの発現を siRNAに て抑制し、細胞増殖能を調べた。すなわち、 GEF—H1の siRNA(Dharmacon社) を Oligofectamineを用いて癌細胞へトランスフエクシヨンし、 3日後に MTT法にて生 細胞率を測定した。
[0080] 図 7〜9 (野生型 p53を発現する癌細胞株)及び図 10〜12 (変異型 p53を発現する 癌細胞株)に示すように、野生型 p53を発現する細胞群に比して変異型 p53を発現 する細胞群では GEF -HIの発現抑制により、有意に細胞増殖能が低下して 、るこ とが明ら力となった。
産業上の利用可能性
[0081] 本発明によれば、 p53の変異を直接検出することなぐまた、被験者に負担をかけ ることなく p53の機能異常を検出することや、力かる機能異常に起因する癌の診断を 行うことが可能となる。さらに、本発明によれば、 p53が関与する癌の治療に有効な化 合物の評価が可能となる。

Claims

請求の範囲
[1] 被検組織又は被検細胞における、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901 及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子と機 能的に等価な遺伝子の発現量 (E )を測定する工程と、
発現量 (E )と、正常糸且織又は正常細胞における対応遺伝子の発現量 (E )とを比
1 0 較する工程と、
比較した結果、発現量 (E )が発現量 (E )より有意に多いか否かを判断する工程と
1 0
、を含む p53の機能異常の検出方法。
[2] 前記遺伝子が CARS又は GEF— HIである請求項 1に記載の p53の機能異常の 検出方法。
[3] 被検組織又は被検細胞における、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901 及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子と機 能的に等価な遺伝子の発現量 (E )を測定する工程と、
発現量 (E )と、正常糸且織又は正常細胞における対応遺伝子の発現量 (E )とを比
1 0 較する工程と、
比較した結果、発現量 (E )が発現量 (E )より有意に多いか否かを判断することに
1 0
より p53の機能異常を予測する工程と、を含む癌の分子診断方法。
[4] 前記遺伝子が CARS又は GEF— HIである請求項 3に記載の癌の分子診断方法
[5] 被検組織又は被検細胞における、 CARS、 MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901 及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子と機 能的に等価な遺伝子の発現量 (E )を測定する工程と、
発現量 (E )と、正常糸且織又は正常細胞における対応遺伝子の発現量 (E )とを比
1 0 較する工程と、
比較した結果、発現量 (E )が発現量 (E )より有意に多いか否かを判断することに
1 0
より p53の機能異常を予測する工程と、を含む薬剤感受性の判定方法。
[6] 前記遺伝子が CARS又は GEF— HIである請求項 5に記載の薬剤感受性の判定 方法。
[7] 請求項 5又は 6に記載の薬剤感受性の判定方法によって得られた結果に基づき投 与する抗癌剤を選択する抗癌剤の選択方法。
[8] CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HIからなる群より選択 される少なくとも一つの遺伝子の発現を測定する発現測定手段と、
該遺伝子の発現を検出する検出手段と、を含む癌診断キット。
[9] 前記発現測定手段が、マイクロアレイ及び PCR用プライマーカもなる群より選択さ れる 、ずれか一つである請求項 8に記載の癌診断キット。
[10] 被検化合物を、被検動物又は被検細胞に、投与又は接触させる工程と、
該被検動物又は被検細胞中における、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56 901及び GEF— HIからなる群より選択される少なくとも一つの遺伝子又は該遺伝子 と機能的に等価な遺伝子の発現量を測定する工程と、
該発現量を被検化合物の投与又は接触前と比較する工程と
比較した結果、被検化合物の投与又は接触によって該遺伝子の発現量が有意に 変化したことを確認する工程と、を含む癌治療に有効な化合物の評価方法。
[11] 前記遺伝子が GEF -HIである請求項 10に記載の評価方法。
[12] 被検化合物を、被検動物又は被検細胞に、投与又は接触させる工程と、
該被検化合物が、 CARS, MOCOS、 TNFRSF9、 LOC56901及び GEF— HI 力もなる群より選択される少なくとも一つのタンパク質又は該タンパク質と機能的に等 価なタンパク質の活性を測定する工程と、
該活性の値を被検化合物の投与又は接触前と比較する工程と、
比較した結果、投与又は接触前後で該タンパク質の活性が有意に変化しているか 否かを確認する工程と、を含む癌治療に有効な化合物の評価方法。
[13] 前記タンパク質が GEF -HIである請求項 12に記載の評価方法。
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