WO2006082763A1 - Ｄａｎｃｅまたはその発現を増強する因子による弾性線維再生の方法 - Google Patents

Ｄａｎｃｅまたはその発現を増強する因子による弾性線維再生の方法 Download PDF

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elastic fiber
elastic fibers
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Tomoyuki Nakamura
Maretoshi Hirai
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Kyoto University
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    • C12N2501/998—Proteins not provided for elsewhere

Definitions

  • the present invention relates to a novel method for producing elastic fibers, and elastic fibers obtained by the method.
  • fetal bovine serum is strictly limited for cultured artificial skin, such as cultured artificial blood vessels, which are premised on transplantation to humans, and the production of artificial skin and artificial blood vessels containing normal amounts of elastic fibers It is extremely difficult. It was confirmed that elastic fibers were formed in 3D culture with smooth muscle cells and fibroblasts in collagen gel or fibrin gel, and that elastic fiber formation was enhanced by the combined use of TGF] 3 1 and insulin. Have been reported [Long, JL et al. (2003) Matrix biology22 (4): 339-50]. However, since all of these cultures use a heterogeneous animal component of 10% fetal calf serum, it is not only problematic for transplantation into humans, but it is also unclear what is required for elastic fiber formation. is there. Also, the resulting elastic fibers are mottled and cannot be said to have a normal structure.
  • the present invention establishes a cell culture technique that enables simple and efficient formation or regeneration of elastic fibers that retain a normal structure, and formation or regeneration of elastic fibers in a serum-free medium. It is an object of the present invention to provide a means for enabling development of a cultured artificial skin or cultured artificial blood vessel including a pharmaceutical that controls regeneration and elastic fibers that maintain a normal structure.
  • DANCE developmental arteri es and neural cres tei dermal growth factor (EGF) in serum-free culture of cells having the ability to form elastic fibers.
  • -l ike also called f ibul in-5
  • TGF] 3 [Schiemann et al., J Biol Chera 277 (30): 27367-77 (2002)] known to be able to induce DAN CE expression in fibroblasts, has the same activity. I found it.
  • DANC E is a secreted protein that the present inventors have cleaved from the cardiovascular nascent stage [Nakamura et al., J Biol Chem 274 (32): 22476-83 (1999)], also produced by the present inventors.
  • ⁇ Analyzed DANC E gene-deficient mice show abnormal dysplasia, and DAN CE has been found to be essential for elastic fibril formation [Nakamura et al., Nature 415: 171-5 (2002) ].
  • the present discovery by the present inventors shows that DAN CE is not only essential for elastic fiber formation but can also be used for the regeneration of elastic fibers.
  • This elastic fiber regeneration technology using D AN CE and NO or fibu 1 in-4 or DANCE expression inducer is immediately used for the production of artificial skin, skin model or artificial blood vessel containing elastic fiber that retains normal amount and normal structure. In addition to being applicable, it is considered an essential technology for the regeneration of elastic fibers in vivo.
  • the present invention is as follows:
  • a method for producing elastic fibers comprising culturing cells having the ability to regenerate elastic fibers in the presence of D AN C E;
  • [1 1] A method for producing elastic fibers, comprising culturing cells having the ability to regenerate elastic fibers in the presence of f i b u l i n-4;
  • An elastic fiber regenerative agent comprising a substance that promotes the expression of f i b u l i n—4 or f i b u 1 i n—4;
  • the present invention provides a method for producing elastic fibers, comprising culturing cells having the ability to regenerate elastic fibers in the presence of DAN C E and / or f i b u 1in-4.
  • DANC E refers to human DANC E (for example, GenBank accession number: AF112152) or its solo solo Or their variants (including SNPs and haplotypes).
  • the ortholog of D ANC E is not particularly limited, and may be derived from any animal, preferably a mammal. Mammals include, for example, rabbits, hidges, pigs, goats, monkeys, rabbits, rats, hamsters, guinea pigs and mice.
  • DANCE is a secreted protein, and a signal sequence (for example, corresponding to amino acid residues 1 to 23 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1) can be removed by processing.
  • DANC E has also been confirmed to be cleaved by DANC E specific proteases. For example, taking the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 as an example, Arg—G 1 y (corresponding to the 7th to 78th amino acids in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1) is cleaved. Can be done. Since it has been confirmed that truncated DANC E has a weak ability to regenerate elastic fibers, the DANC E used in the present invention is preferably a full-length DANC E (that is, not cut as described above).
  • the DANC E mutant is not particularly limited as long as it can regenerate elastic fibers.
  • a DANC E mutant a mutant in which a mutation has been introduced into the protease cleavage site so as to be resistant to a DANC E-specific protease can be used as a DANC E mutant.
  • the protease cleavage site (A rg—G 1 y: amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 from the 7th 7th to the 7th to show resistance to DAN CE-specific protease) 7 Equivalent to the 8th amino acid) or nearby amino acid (for example, the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1) 7th to 8th, preferably 7th to 8th, 3rd, more preferably 7th to 8th, and even more preferably 7th to 7th to 9th amino acids) mutated ( For example, deletions, additions, substitutions) can be used.
  • “Resistant to DAN CE-specific protease” means that the ability to cleave DAN CE by DA NC E-specific protease is further reduced after mutation (eg, 1.5 times or more, preferably 2 times or more). The degree of reduction in cutting ability is not particularly limited. Whether or not the DANC E mutant is resistant to DAN CE-specific proteases is determined by normal DANC E and DAN CE mutant cleavage treatment (for example, see Reference Examples below), then normal DANC It can be confirmed by measuring and comparing the cleavage amounts of E, DAN CE mutants. Such a DAN CE variant is useful for use in the method of the present invention because it has a longer half-life than natural DANC E.
  • fibu 1 in—4 refers to human fibu 1 in—4 (for example, GenBank accession number: NM_021474) or its orthologs, or mutants thereof (including SNP and haplotype).
  • the orthobulg of fibulin-4 is not particularly limited, and may be derived from, for example, the above animals.
  • fibulin-4 is a secreted protein whose signal sequence can be removed by processing. In the method of the present invention, fibu 1 in-4 can be used either from which the signal sequence has been removed or from which the signal sequence has not been removed, but preferably from which the signal sequence has been removed.
  • the fibu 1 in—4 mutant is not particularly limited as long as it can regenerate elastic fibers.
  • Cells with the ability to regenerate elastic fibers are cells that secrete fertile fiber components and that can be cultivated in the presence of DANCE and / or fibu 1 in-4 to enable the formation of elastic fibers.
  • the cell having the ability to regenerate elastic fibers can be derived from any animal, preferably a mammal. Mammals include those from which DANCE and / or fibu 1 in — 4 orthologs are derived.
  • the cells having the ability to regenerate elastic fibers can also be non-transgenic cells or transgenic cells.
  • such cells can be cells derived from tissues in which elastic fibers are present, such as skin, blood vessels (eg, arteries), lungs or uterus.
  • Such cells can also be cells such as fibroblasts, smooth muscle cells, epithelial cells, endothelial cells and the like.
  • skin fibroblasts or vascular smooth muscle cells can be used as such cells.
  • the cells having the ability to regenerate elastic fibers can further be cells obtained by culturing undifferentiated cells such as primary cultured cells, cell lines derived from the primary cultured cells, and stem cells.
  • Such cells can be prepared by a method known per se (eg, Current Protocol Sin Cell Biology, John Wiley & Sons, Inc. (2001); isolation and culture of functional cells, Maruzen Shoten (19 See 8 7).
  • the cells having the ability to regenerate elastic fibers are gene-introduced cells
  • such cells can be ones into which one or more genes have been introduced so that their expression is possible.
  • the cell to be introduced is a cell that does not have or does not have enough elastic fiber regeneration ability, the elastic fiber constituents and other factors that promote the formation of the elastic fiber or z
  • an expressible vector into such a cell
  • a cell having acquired elastic fiber regeneration ability or a cell having improved elasticity fiber regeneration ability can be produced.
  • the elastic fibers are regenerated. Performance may be further improved.
  • DANCE is an elastic fiber Organize the constituents (more specifically, DANC E localizes the enzyme of lysyloxidase zefamily (enzyme that crosslinks elastin) on the microfibril as a scaffold, thus elastin) It is considered that fibr 1 in _ 4 may play an important role in elastic fiber formation. If the vector is introduced into cells that do not have or do not have enough, the introduced cells can secrete the necessary elastic fiber components, and DAN CE and Z or By culturing in the presence of fibu 1 in-4, elastic fibers can be born. Elastic fiber constituents and / or other factors that promote the formation of elastic fibers that should be expressed in cells that do not have or do not have sufficient capacity to regenerate are not particularly limited.
  • elastic fiber components include elastin, lysyloxidase (LOX), lysyloxidase-like 1_4 (LOXL 1-4), LTBP 2 and 4 Fibrillin 1 1 3, £ 1 ⁇ 1 and 1 ⁇ [1 and 2, 1 ⁇ 0? 1 and 2, and other factors that promote the formation of elastic fibers include versican ( versican) V 3 and hyaluronanidase.
  • a vector capable of expressing an elastic fiber component and / or other factor that promotes the formation of elastic fiber, and a method for introducing the vector into a cell include a DAN CE expression vector and / or fibu 1 in— described later. In addition to the expression vector, the same DAN CE inducer expression vector can be used.
  • Cultivation of cells with the ability to regenerate elastic fibers in the presence of 0 ⁇ 10 and / or £ ibulin-4 results in elasticity in a culture medium containing DAN CE and / or fibulin-4
  • the cell is not particularly limited as long as cells having a fiber regeneration ability are cultured. Therefore, at the start of culture, DAN CE and And / or fibu 1 in—4 protein may not be present in the medium.
  • DAN CE and And / or fibu 1 in—4 protein may not be present in the medium.
  • Elastic fibers in a culture medium supplemented with DAN CE and NO or fibulin-4 can be used to culture elastic fibers in the presence of DANC E and / or fibu 1 in-4.
  • the density of cells having the ability to regenerate elastic fibers when seeded in a culture medium is not particularly limited, but can be seeded so as to be subconfluent or confluent, for example.
  • DAN CE and / or fibu 1 in-4 added to the culture medium can be a natural protein or a recombinant protein.
  • D AN CE and fibu 1 in-4 can be prepared by a method known per se, for example, a) DANC E or fibu 1 in-4 from a biological sample (for example, blood) containing DANC E or fibu 1 in-4 B) Host cells (eg, Escherichia, Bacillus, yeast, insect cells, insects, animal cells) in a DAN CE expression vector or fibu 1 in_4 expression vector (described later) ) May be prepared, and DAN CE or fibulin-4 produced by the transformant may be recovered.
  • DAN CE or fibulin-4 produced by the transformant may be recovered.
  • DANC E or fibulin-4 may be synthesized by a cell-free system using a salt or the like.
  • DANC E and fibulin-4 are mainly methods such as salting out and solvent precipitation; dialysis, ultrafiltration, gel filtration, and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis.
  • the amount of DAN CE and Fibulin- 4 to be added to the culture medium is not particularly limited as long as it allows regeneration of elastic fiber, such that the final concentration in the culture medium, 0. 1 ⁇ 1 0 0 ⁇ 8 / An amount may be added such that ⁇ 1, preferably 0.5 to 50 / ⁇ ⁇ / ⁇ 1, more preferably 1 to 20 / z gZm l.
  • the DANC E inducing factor added to the culture medium is not limited as long as it can induce the expression of D AN CE.
  • TGF i3 for example, TG F] 3 1
  • the amount of DANC E-inducing factor added to the culture medium is not particularly limited as long as it induces DAN CE in an amount that enables elastic fiber regeneration.
  • TGF was used as the DANC E-inducing factor. If, final concentration in the culture medium, 0. 5 ⁇ 1 0 0 0 ng / 1 , preferably 1 ⁇ : L 0 0 n g / ml, more preferably such that 5 ⁇ 4 0 ng / m 1 An amount can be added.
  • the expression vector introduced into the cells having the ability to regenerate elastic fibers can be a betater that can express the above-mentioned DAN CE, fibulin-4 or DANCE inducer.
  • the polynucleotide encoding the target protein must be operably linked to a promoter capable of exhibiting promoter activity in the target cell.
  • the promoter used is not particularly limited as long as it can function in the target cell.
  • the SV 40-derived early promoter Cytomegaloinores LTR, Lous sarcoma Winores LTR, MoMu LV-derived LTR, adenovirus-derived early promoter, etc .
  • 3-actin gene promoter PGK gene promoter, transferrin gene promoter, etc.
  • Examples include mammalian structural protein gene promoters. Promoters are also cells that have the ability to regenerate elastic fibers such as fibroblast-specific promoters (eg, collagen promoters), smooth muscle cell-specific promoters (eg, SM 22 promoter, ⁇ -smooth muscle actin promoter). Specific promoters may be used.
  • the expression vector preferably contains a transcription termination signal, that is, a terminator region downstream of the polynucleotide encoding the target protein.
  • selectable marker genes for selection of transformed cells include plasmid vectors, and virus vectors such as retrovirus, adenovirus, adeno-associated virus, and Sendai virus.
  • the expression vector can be introduced into cells having the ability to form elastic fibers by a method known per se, such as an electoral poling method, a calcium phosphate precipitation method, a microinjection method, a ribosome, or a cationic lipid. This can be done depending on the method used. Further, a part or all of the expression vector may or may not be integrated into the genome of a cell having the ability to form elastic fibers.
  • a method known per se for integration of the expression vector into the intracellular genome, a method known per se, for example, a method using a retrovirus, a method using a targeting betater that enables homologous recombination, and the like can be used.
  • the cells coexisting with the cells having the ability to form elastic fibers in the culture medium are not particularly limited as long as DANC E, fibu 1 in-4, or DANC E inducer can be expressed.
  • the expression cell may be, for example, a cell obtained by introducing a DAN CE or fibu 1 in-4 or DANC E inducing factor into a host cell, a DAN CE or fibu 1 in 4 or DANC E inducing factor. It can be a natural cell that expresses.
  • Natural cells that express D AN CE can be cells derived from DANC E-expressing tissues (eg, heart, kidney, knee, testis, ovary, small intestine, colon, cartilage, artery, lung, uterus, skin). .
  • Natural cells that express fibu 1 in—4 include fibu 1 in—4 expressing tissues (eg, heart, brain, placenta, lung, liver, skeletal muscle, kidney, knee, spleen, prostate, testis, ovary Cells derived from the small intestine, large intestine, skin, and arteries).
  • tissues eg, heart, brain, placenta, lung, liver, skeletal muscle, kidney, knee, spleen, prostate, testis, ovary Cells derived from the small intestine, large intestine, skin, and arteries.
  • DANC E inducer include, for example, TGF] 3 as DANC E inducer: white blood cell, bone, placenta, spleen, small intestine, intestine, liver, kidney, heart, Cells derived from tissues such as brain, bone marrow, and cartilage can be used.
  • Cells expressing DANC E or fibu 1 in-4 or DANC E inducer can also be obtained by culturing undifferentiated cells such as primary cultured cells, cell lines derived from primary cultured cells, stem cells (eg, differentiated cells). ), Commercially available cell lines, cell lines available from cell banks, and the like.
  • the cells expressing DA NCE or fibu 1 in-4 or DAN CE inducer can also be cells derived from the same species as the cells having the ability to regenerate elastic fibers.
  • cells that have the ability to form elastic fibers and D ANC E or fibu 1 in-4 or DANC E inducer expressing cells are in physical contact, or these cells are in the same culture system.
  • Cultivation of cells having the ability to regenerate elastic fibers in the presence of DAN C E and / or f i b u 1 i n-4 as described above can be performed according to a normal cell culture method.
  • MEM medium, DMEM medium, RPMI 1640 medium, etc. can be used as the basal medium.
  • the basal medium may be supplemented with components such as amino acids, vitamins, lipids, antibiotics, and buffering agents.
  • the pH of the medium is, for example, about 6-8, preferably about 6.5-7.5.
  • the culture temperature is, for example, about 30 to 40 ° C, preferably about 37 ° C.
  • the culture period can be appropriately adjusted so as to obtain a sufficient amount of elastic fibers.
  • the above culture may be performed in any serum-free medium or serum medium (for example, containing 5% or less, 3% or less, or 1% or less of serum). From the viewpoint of reducing the risk of infection, it is preferable to use a serum-free medium. Furthermore, from the viewpoint of removal of heterogeneous animal-derived components (for example, to suppress the allergic reaction), DAN CE and Z or fibu 1 in-4 used in culture, cells with regenerative fiber regeneration ability, In addition, it is preferable to unify other components derived from the same species.
  • the medium used in the above culture also has elastic fiber components other than DAN CE and / or fibu 1 in-4 (for example, elastin) in order to efficiently form elastic fibers by cells having the ability to regenerate elastic fibers.
  • elastic fiber components other than DAN CE and / or fibu 1 in-4 for example, elastin
  • LOX Lysyloxidase
  • L OX L 1-4 lysyloxidase-like 1-4
  • LTBP 2 and 4 fibrillin 1-1-3
  • MA GP 1 and 2 eg, / or Or other factors that promote the formation of elastic fibers
  • eg, versican V 3, hyaluronidase eg, betaig—h 3, 67 k D elastin binding protein
  • White matter eg, betaig—h 3, 67 k D elastin binding protein
  • the culture can also be a two-dimensional culture or a three-dimensional culture.
  • Two-dimensional culture or three-dimensional culture can be performed by a method known per se. For example, as for techniques related to three-dimensional culture, Long, JL et al. (2003) Matrix biology 22 (4): 339-50, Muraguchi, T. et al., (1994) Plastic and Reconstructive Surgery 93 (3): 537 -See page 44.
  • the elastic fiber has been manufactured (that is, regenerated) can be confirmed by a method known per se. For example, a part of the culture is collected and confirmed by immunostaining with an antibody against elastic fiber components such as anti-DANCE antibody, anti-fib 1in-4 antibody, anti-elastin antibody and the like.
  • the present invention also provides artificial elastic fibers comprising DAN C E and f i b u 1 i n -4.
  • artificial elastic fiber shall mean elastic fiber regenerated at i n v i t ro.
  • the artificial elastic fiber of the present invention comprises DAN CE and / or fibu 1 in-4 used for culture, and an animal derived from a heterogeneous animal with respect to an animal derived from cells having elastic fiber regeneration ability used for culture or culture. May not be included. That is, the artificial elastic fiber of the present invention can consist of only components derived from a single animal species with respect to biological components derived from animals.
  • the above-described method of the present invention has made it possible for the first time to provide such an artificial elastic fiber. Therefore, the artificial elastic fiber of the present invention can be suitably used for allogeneic transplantation such as allogeneic transplantation.
  • cells having the ability to regenerate elastic fibers are used, and a medium that is completely free of xenogeneic animal components is used, so that elasticity that is suitably used for allogeneic syngeneic transplantation. Fiber is obtained.
  • the artificial elastic fiber of the present invention also contains elastic fiber components other than D AN CE and / or fibu 1 in 1 (for example, elastin, lysyloxide) (L OX), lysyloxidase-like 1-4 (LOX L 1-4), LT BP 2 and 4, fibrillin 1-3, EM ILIN 1 and 2, MAG P 1 and 2), and others Ingredients (eg, betaig—h 3, 67 kD elastin binding protein) may be included.
  • elastic fiber components other than D AN CE and / or fibu 1 in 1 for example, elastin, lysyloxide) (L OX), lysyloxidase-like 1-4 (LOX L 1-4), LT BP 2 and 4, fibrillin 1-3, EM ILIN 1 and 2, MAG P 1 and 2), and others Ingredients (eg, betaig—h 3, 67 kD elastin binding protein) may be included.
  • the artificial elastic fiber of the present invention can be further provided in a form involving cells having the ability to regenerate elastic fibers (that is, a composite comprising the artificial elastic fiber of the present invention and cells having the ability to regenerate elastic fibers).
  • a form involving cells having the ability to regenerate elastic fibers that is, a composite comprising the artificial elastic fiber of the present invention and cells having the ability to regenerate elastic fibers.
  • the culture obtained by the method of the present invention corresponds to such a form.
  • the artificial fertile fiber of the present invention can also be provided as a form without cells having the ability to regenerate elastic fibers. Such a form can be obtained by a method known per se.
  • the culture obtained by the method of the present invention is treated with cell removal treatment (for example, EDTA treatment), radiation (for example, ⁇ -ray) irradiation, cytopathic treatment (for example, freezing / thawing, lyophilization), etc.
  • cell removal treatment for example, EDTA treatment
  • radiation for example, ⁇ -ray
  • cytopathic treatment for example, freezing / thawing, lyophilization
  • the present invention further provides an artificial tissue including the elastic fiber.
  • the artificial tissue containing elastic fibers include artificial skin, artificial blood vessels (for example, artificial blood vessels), artificial lungs, and artificial eclampsia, but artificial skin and artificial blood vessels are preferred.
  • the artificial tissue of the present invention can be prepared by a method known per se (for example, Long, JL et al. (2003) Matrix biology 22 (4): 339-50, Muraguchi, T. et al., (1994) Plastic and Reconstructive Surgery 93 (3): See 537-44).
  • the present invention also provides an elastic fiber regenerative agent containing a substance that promotes the expression of DAN CE and / or f i b u 1in-4 (protein) or DAN C E and or f i b u 1 iin-4.
  • the substance that promotes the expression of D ANC E is not particularly limited as long as it enables the expression of D ANC E, and examples thereof include a DAN CE expression vector, a DAN CE inducer, and a DAN CE inducer expression vector.
  • the substance that promotes the expression of fibu 1 in-4 is not particularly limited as long as it enables the expression of fibu 1 in-4, and examples thereof include a fibu 1 in-4 expression vector.
  • the regenerative agent of the present invention can be used by combining an arbitrary carrier, for example, a pharmaceutically acceptable carrier, with a state or disease in which elastic fiber regeneration is desired, such as emphysema, vascular injury, skin laxity, wound To prevent, treat or ameliorate elastic fiber degradation (eg caused by aging or UV rays), rough skin, arteriosclerosis, aortic aneurysm, age-related macular degeneration, perineal hernia, anal hernia Useful for beauty purposes such as removing slack and wrinkles.
  • the regulator of the present invention is also useful as a cell culture reagent having the ability to regenerate elastic fibers.
  • Examples of pharmaceutically acceptable carriers include sucrose, starch, mant, sonorebit, lactose, gnolecose, cellulose, tanolec, phosphate, calcium carbonate, excipients such as cellulose, Binders such as methylcellulose, hydroxypropylene cellulose, polypropylpyrrolidone, gelatin, arabia gum, polyethylene glycol, sucrose, starch, starch, canolepoxymethinorescenole mouthwater, hydroxypropyl starch, sodium-glycol Luster starch, sodium bicarbonate, calcium phosphate, calcium kennate and other disintegrants, magnesium stearate, air mouth gill, talc, lubricants such as sodium lauryl sulfate, citrate, menthol, glycyrrhizin ammonium salt, Fragrances such as glycine and orange powder, sodium benzoate, sodium bisulfite, methylparaben, propylparaben and other preservative
  • Preparations suitable for oral administration include solutions in which an effective amount of ligand is dissolved in a diluent such as water, physiological saline, orange juice, capsules containing an effective amount of the ligand as a solid or granule, and a sachet. Or a tablet in which an effective amount of ligand is suspended in an appropriate dispersion medium, an emulsion in which a solution in which an effective amount of ligand is dissolved is dispersed in an appropriate dispersion medium, and the like.
  • a diluent such as water, physiological saline, orange juice
  • capsules containing an effective amount of the ligand as a solid or granule and a sachet.
  • a tablet in which an effective amount of ligand is suspended in an appropriate dispersion medium
  • an emulsion in which a solution in which an effective amount of ligand is dissolved is dispersed in an appropriate dispersion medium, and the like.
  • Formulations suitable for parenteral administration include aqueous and non-aqueous isotonic sterile injection solutions. May contain antioxidants, buffers, antibacterial agents, isotonic agents and the like.
  • Aqueous and non-aqueous sterile suspensions can also be mentioned, which may contain suspending agents, solubilizers, thickeners, stabilizers, preservatives and the like.
  • the preparation can be enclosed in a unit dose or multiple doses like ampoules and vials.
  • the active ingredient and a pharmaceutically acceptable carrier can be lyophilized and stored in a state where it can be dissolved or suspended in a suitable sterile vehicle immediately before use.
  • the dose of the preparation of the present invention varies depending on the type of active ingredient, activity, severity of disease, animal species to be administered, drug acceptability of the administration target, body weight, age, etc.
  • the amount of active ingredient per day is about 0.05 to about 100 mg Z kg.
  • the present invention further includes any material used in the method of the present invention, such as serum-free medium, DANCE expression vector and FNO or fibu 1 in-4 expression vector, DANCE expression vector and Z or fibu 1 in — 4 expression.
  • a cell into which a vector has been introduced is provided.
  • DMEM Dulbecco's Modif ied Eagle Medium
  • DMEM / F12 Ham's Nutrient Mixture F12
  • BSA Bovine Serum Albumin
  • FI3165 was purchased from Sigma and fetal bovine serum (FBS) was purchased from JRH Bioscience.
  • the anti-mouse DANCE antibody BSYN1923 was prepared by immunizing a rabbit with a synthetic peptide corresponding to mouse DANCE 76-98 amino acids, and was affinity purified using a column to which the antigen peptide was immobilized.
  • Anti-Myc (9E10) antibody was purchased from Santa Cruz.
  • Polyclonal nanoanti-elastin antibody (PR533) was purchased from Elast in Products Company, INC. Anti-rabbit Al exa Fluor 488 antibody, anti-mouse Al exa Fluor 546 3 ⁇ 4ni body f. Microscope Cover Glass was purchased from Fisherbrand force, and Vectashiel d was purchased from Vector labolatori es.
  • a human DANCE stable expression cell line was prepared using 293T cells and a DANCE expression vector, and recombinant DANCE was purified from the culture supernatant using Ni-NTA agarose (Qiagen), and then desalted column (Amersham) For desalting.
  • Human fibroblasts were donated by Kyoto University Hospital Plastic Surgery. 24 Place Cover Glass on the bottom of the well plate and seed 7.5 x 10 4 human fibroblasts per well on top of it, 10 ° /. They were incubated at 37 ° C, 5% C0 2 at the added DMEM medium FBS. 30 After washing with PBS, change to DMEM / F12 medium without added FBS, purified DANCE protein, truncated DANCE protein 4 ⁇ g / ml, Alternatively, FBS was added. Subsequently incubated at 37 ° C, 5% C0 2 , fixed to 1 day 4, immunostaining was performed.
  • Fibroblasts are cultured from neonatal DANCE knockout mice (see Nature 415: 171 -175 (2002)) and their control litter skin, labeled with 35 S-Met and Cys for 24 hours, and then cultured. The supernatant was immunoprecipitated with BSYN antibody. Immunoprecipitates were developed by SDS-PAGE and detected by autography.
  • a human DANCE cDNA with FLAG tag and 6XHis tag at the end of carboxyxyl was transfected into 293T cells to establish a stable expression strain. From 800 ml of the serum-free culture supernatant, recombinant DANCE was purified using Ni_NTA agarose (Qiagen), developed on SDS-PAGE, and stained with Coomasie-Blue. Of the two major bands, the band corresponding to the truncated DANCE was excised, and the N-terminal amino acid sequence was analyzed by Edman degradation.
  • N-terminal amino acid sequence of the truncated DANCE was consistent with the amino acid sequence of the 78th and subsequent amino acids of DANCE.
  • this low molecular weight protein was thought to be produced by cleavage between the 7th and 7th amino acids of DANCE.
  • Reference Example 3 DANCE cleavage is inhibited by a serine protease inhibitor.
  • Human DANCE cDNA with FLAG tag and 6XHis tag at the carboxyl terminus is transferred to 293T cells in serum-free medium containing cysteine protease inhibitor (E64) or serine protease inhibitor (Aprotune).
  • E64 cysteine protease inhibitor
  • Aprotune serine protease inhibitor
  • the cultured protein was cultured for 48 hours and precipitated from the culture supernatant using Ni-NTA agarose.
  • the recombinant protein was developed by SDS-PAGE, and Western blotting was performed with anti-FLAG M2 antibody.
  • mutant DANCE with C-terminal FLAG, 6 X Hi s tag
  • normal type DANCE with C-terminal FLAG, 6 X Hi s tag
  • DANCE protein can induce elastic fiber form J3 ⁇ 4 in bloodless culture, seeded human skin fibroblasts to become confluent, serum-free medium Alternatively, the medium was cultured for 2 weeks instead of a medium containing 10% fetal calf serum, and the formation of elastic fibers was examined by immunostaining with an anti-elastin antibody.
  • lysyloxydase inhibitor BAPN (beta-aminopropionitri le) is combined with full-length DANCE.
  • elastic fibers were not formed due to inhibition of elastin cross-linking.
  • the added DANCE protein was distributed fibrously. In other words, it is considered that elastin is not required for DANCE to be distributed in a fibrous form.
  • fibul in-4 protein can induce fertile fiber formation in serum-free culture
  • the method of the present invention is useful for convenient and efficient regeneration of elastic fibers that retain normal structure. Since the method of the present invention does not require serum, it is useful for producing an artificial tissue (for example, artificial skin, artificial blood vessel) containing elastic fibers on the premise of transplantation into humans. Furthermore, since the method of the present invention does not require the use of serum, it is useful as an experimental system for identifying factors necessary for elastic fiber formation and regeneration.
  • the elastic fiber regenerative agent of the present invention is useful as a cell culture reagent, or as a cosmetic or pharmaceutical agent.
  • the method of the present invention it is possible to easily and efficiently regenerate elastic fibers that retain a normal structure. Since the method of the present invention does not require serum, an artificial tissue containing elastic fibers (for example, artificial skin and artificial blood vessel) can be prepared on the premise of transplantation into human. Furthermore, since the method of the present invention does not require the use of serum, it can be used as an experimental system for identifying factors necessary for elastic fiber formation / regeneration.
  • the elastic fiber regenerative agent of the present invention can be used as a cell culture reagent, or as a cosmetic or pharmaceutical agent.

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Abstract

正常構造を保持する弾性線維の簡便且つ効率的な再生技術を提供すること、並びに弾性線維を含むヒトに移植可能な人工組織（例えば、人工皮膚、人工血管）の作製を可能とする技術を提供する。具体的には、ＤＡＮＣＥ及び／又はｆｉｂｕｌｉｎ−４の存在下で弾性線維再生能を有する細胞を培養（例えば、無血清培地中で培養）することを含む、弾性線維の製造方法；ＤＡＮＣＥ及び／又はｆｉｂｕｌｉｎ−４を含む人工弾性線維；弾性線維再生剤；ＤＡＮＣＥ及び／又はｆｉｂｕｌｉｎ−４を含む無血清培地；並びにＤＡＮＣＥ発現ベクター、ｆｉｂｕｌｉｎ−４発現ベクター又はＤＡＮＣＥ誘導因子発現ベクターの少なくとも一方が導入された弾性線維再生能を有する細胞などを提供する。

Description

明細書
DANC Eまたはその発現を増強する因子による弾性線維再生の方法 技術分野
本発明は、 弾性線維の新規製造方法、 並びに当該方法により得られう る弾性線維などに関する。
背景技術
加齢に伴って弾性線維の劣化 ·分解がおこり、 体中の組織の弾性は失 われていく。 このことは単に体が硬くなるとか皮膚がたるむといった問 題だけではない。 高齢者の主要疾患である肺気腫や動脈中膜の硬化 · 大 動脈瘤、 さらに最近では加齢黄斑変性症なども弾性線維の劣化 · 分解が 直接原因であると考えられてきている [Hautamaki, R. D. et al. (1997) Science 277 (5334)： 2002-4； Shapiro, S. D. et al. (2003) American journal of pathology 163(6)： 2329 - 35； Stone, E. M. et al. (2004) The new England journal of medicine 351 (4): 346-53； Chong, N. H. et al. (2005) American journal of pathology 166(1)： 241 - 51]。 し力、し弾性 線維のターンオーバーは非常に遅く、 弾性線維が劣化 ·分解しても弾性 線維が再生されることはない。 弾性線維の再生の研究には弾性線維の形 成機構の解明が不可欠であるが、 弹性線維形成の分子メ力ニズムについ て知られていることは少ない。
弾性線維形成の研究が進まない大きな原因は、 よい in vitro弾性線維 形成系がなかったことである。 従来、 培養細胞を用いて弾性線維を形成 させるためには 1 0 %以上の牛胎仔血清を必要としていた。 このため、 血清中に含まれる何が弾性線維形成に必要なのか全くわからなかった。 例えば、 エラスチンを発現しない毛様体色素細胞細胞株の 2次元培養に おいて、 エラスチンを遺伝子導入すれば弾性線維が形成されることが報 告されている [Robb, B. W. et al. (1999) Molecular biology of the cell 10(11)： 3595-605]。 しかしゃはり培養には 1 0 %の牛胎仔血清を用いて おり、エラスチン以外の因子の弾性線維形成における役割は不明である。 また、 培養人工皮膚■培養人工血管など人への移植を前提とした医薬 品には牛胎仔血清を用いることは厳しく制限されており、 正常量の弾性 線維を含む人工皮膚や人工血管の作製は極めて困難である。 コラーゲン ゲルまたはフィブリンゲルに平滑筋細胞や線維芽細胞を蒔いた 3次元培 養において弾性線維が形成されたこと、 および T G F ]3 1 とインスリン の併用によつて弾性線維形成が増強されたことが報告されている [ Long, J. L. et al. (2003) Matrix biology22 (4)： 339-50]。 しかしこの培養 にはすべて 1 0 %の牛胎仔血清という異種動物由来成分を用いているた め、 ヒ トへの移植には問題が多いだけでなく、 何が弾性線維形成に必要 なのかも不明である。 また、 できた弾性線維もまだらで、 正常構造とは 云えない。
従って、 無血清でも弾性線維形成を誘導できる細胞培養技術を確立す ることは、 弾性線維形成の分子機構を解明する上で極めて重要であるだ けでなく、 弾性線維形成を制御する医薬の開発、 並びに正常構造を保持 する弾性線維を含む培養人工皮膚や培養人工血管の開発のためなどに切 望されている。
発明の開示
従って、 本発明は、 正常構造を保持する弾性線維の簡便且つ効率的な 形成又は再生、 並びに無血清培地における弾性線維の形成又は再生を可 能とする細胞培養技術を確立し、 以つて弾性線維再生を制御する医薬、 並びに正常構造を保持する弾性線維を含む培養人工皮膚や培養人工血管 の開発などを可能とする手段を提供することを目的とする。
本発明者らは、 上記課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、 弾性線 維の形成能を有する細胞の無血清培養において、 D A N C E ( deve lopmental arteri es and neural cres t e i dermal growth factor (EGF) - l ike ; f ibul in-5 ともいう） 及び/又は f i b u 1 i n— 4とい う分泌蛋白質を加えることにより効率よく弾性線維を再生できることを 見出した。 また、 線維芽細胞に DAN C Eの発現を誘導できることが知 られている TGF]3 [Schiemann et al. , J Biol Chera 277 (30) : 27367—77 (2002)] にも同じ活性があることを見出した。 DANC Eは、 本発明者 らが発生期の心血管よりクローユングした分泌蛋白質であり [Nakamura et al. , J Biol Chem 274 (32)： 22476-83 (1999)]、 同じく本発明者ら が作製 ·解析した DANC E遺伝子欠損マウスが弾性線維形成異常を来 したことから、 DAN C Eが弾性線維形成に必須であることが判明して いる [Nakamura et al.， Nature 415： 171-5 (2002)]。 本発明者らによ る今回の発見は、 D AN C Eが弾性線維形成に必須であるだけでなく、 弾性線維の再生に用いることができることを示している。
この D AN C E及びノ又は f i b u 1 i n— 4あるいは D A N C E発 現誘導因子による弾性線維再生技術は、 正常量 · 正常構造を保持する弾 性線維を含む人工皮膚、 皮膚モデルもしくは人工血管の作製に直ちに応 用できる他、 生体内での弾性線維再生にも必須の技術であると考えられ る。
本発明者らは、 以上の知見に基づき本発明を完成した。 即ち、 本発明 は下記の通りである ：
〔 1〕 D AN C Eの存在下で弾性線維再生能を有する細胞を培養するこ とを含む、 弾性線維の製造方法；
〔 2〕 培養が無血清培地中で行われる、 上記 〔 1〕 の方法；
〔 3〕 D ANC E及び 又は D ANC E誘導因子が添加された培地、 あ るいは DAN C E発現べクター及び/又は DAN C E誘導因子発現べク ターが導入された弾性線維再生能を有する細胞を用いる、 上記 〔 1〕 の 方法 ；
〔4〕 D ANC E誘導因子が T G F ]3である、 上記 〔 1〕 の方法； 〔 5〕 D ANC E及び弾性線維再生能を有する細胞がヒ トに由来するも のである、 上記 〔 1〕 の方法 ；
〔6〕 弾性線維再生能を有する細胞が線維芽細胞である、 上記 〔 1〕 の 方法；
〔 7〕 DANC Eを含み、 且つ DAN C Eが由来する動物に対して異種 動物由来の成分を含まない人工弾性線維；
〔 8〕 DANC E又は DAN C Eの発現を促進する物質を含有する、 弾 性線維再生剤；
〔 9〕 D AN C Eを含む無血清培地 ；
〔 1 0〕 D AN C E発現ベクター又は DAN C E誘導因子発現ベクター の少なく とも一方が導入された、 弾性線維再生能を有する細胞 ；
〔 1 1〕 f i b u l i n— 4の存在下で弾性線維再生能を有する細胞を 培養することを含む、 弾性線維の製造方法；
〔 1 2〕 培養が無血清培地中で行われる、 上記 〔 1 1〕 の方法；
〔 1 3〕 f i b u l i n— 4を含み、 且つ f i b u l i n— 4が由来す る動物に対して異種動物由来の成分を含まない人工弾性線維；
〔 1 4〕 f i b u l i n— 4又は f i b u 1 i n— 4の発現を促進する 物質を含有する、 弾性線維再生剤；
〔 1 5〕 f i b u l i n— 4を含む無血清培地；
〔 1 6〕 f i b u l i n - 4発現べクターが導入された、 弾性線維再生 能を有する細胞。 発明を実施するための最良の形態
本発明は、 D AN C E及び/又は f i b u 1 i n— 4の存在下で弾性 線維再生能を有する細胞を培養することを含む、 弾性線維の製造方法を 提供する。
「DANC E」 （fibulin - 5 とも呼ばれる） とは、 ヒ ト DANC E (例 えば、 GenBankァクセッショ ン番号： AF112152参照） 又はそのオノレソロ グ、 あるいはそれらの変異体 （S N P、 ハプロタイプを含む） をいう。 D ANC Eのオルソログは特に限定されず、 例えば任意の動物、 好まし くは哺乳動物に由来するものであり得る。 哺乳動物と しては、 例えばゥ シ、 ヒッジ、 ブタ、 ャギ、 サル、 ゥサギ、 ラッ ト、 ハムスター、 モルモ ッ ト、 マウスなどが挙げられる。 D ANC Eは分泌蛋白質であり、 プロ セシングによりシグナル配列 （例えば、 配列番号 1に示されるアミノ酸 配列における 1〜2 3番目のアミノ酸残基に相当） が除去され得る。 本 発明の方法では、 DAN C Eとしては、シグナル配列が除去されたもの、 シグナル配列が除去されていないもののいずれでも使用できるが、 シグ ナル配列が除去されたものが好ましい。 DANC Eはまた、 DANC E 特異的プロテアーゼにより切断されることが確認されている。 例えば、 配列番号 1に示されるアミノ酸配列を例に挙げると、 A r g— G 1 y (配 列番号 1で表されるァミノ酸配列において 7 7番目〜 7 8番目のァミノ 酸に相当） が切断され得る。 切断型 DANC Eは弾性線維再生能が弱い ことが確認されているので、 本発明で使用される DANC Eは全長型 D ANC E (即ち、 上記の通り切断されていないもの） が好ましい。
DANC E変異体は、 弾性線維の再生を可能とするものである限り特 に限定されず、 例えば、 配列番号 1に示されるアミノ酸配列において 1 もしくは 2以上 （例えば 1〜3 0個、 好ましくは 1〜 2 0個、 より好ま しくは 1〜 1 0個、最も好ましくは 1〜5個）のァミノ酸が置換、欠失、 挿入または付加されたアミノ酸配列である。 また、 DANC E変異体と して、 DANC E特異的プロテアーゼに抵抗性を示すようにプロテア一 ゼ切断部位に変異が導入されたものを使用できる。 例えば、 配列番号 1 で表されるアミノ酸配列において DAN C E特異的プロテアーゼに抵抗 性を示すようにプロテアーゼ切断部位 （A r g— G 1 y ：配列番号 1で 表されるァミノ酸配列において 7 7番目〜 7 8番目のアミノ酸に相当） 又はその近傍のアミノ酸 （例えば、 配列番号 1で表されるアミノ酸配列 において 7 0番目〜 8 5番目、 好ましくは 7 2番目〜 8 3番目、 より好 ましくは 7 4番目〜 8 1番目、 さらにより好ましくは 7 6番目〜 7 9番 目のアミノ酸） が変異 （例えば、 欠失、 付加、 置換） しているものを使 用できる。 「D AN C E特異的プロテアーゼに抵抗性を示す」 とは、 DA NC E特異的プロテアーゼによる DAN C Eの切断能が、 変異後におい てより低下 （例えば 1. 5倍以上、 好ましくは 2倍以上の低下） するこ とを意味し、 切断能の低下の程度は特に限定されない。 DANC E変異 体が DAN C E特異的プロテアーゼに対して抵抗性を示すか否かは、 正 常 DANC E、 D AN C E変異体の切断処理 （例えば、 後述の参考例を 参照） の後に、 正常 DANC E、 D AN C E変異体の切断量を測定 ' 比 較することで確認できる。 かかる DAN C E変異体は、 半減期が天然型 DANC Eより も長いと考えられるため、 本発明の方法での使用に有用 である。
f i b u 1 i n— 4とは、 ヒ ト f i b u 1 i n— 4 (例えば、 GenBank ァクセッショ ン番号： NM_021474 参照） 又はそのオルソログ、 あるいは それらの変異体 （S N P、 ハプロタイプを含む） をいう。 f i b u l i n— 4のオルソ口グは特に限定されず、 例えば上記の動物に由来するも のであり得る。 f i b u l i n— 4は分泌蛋白質であり、 プロセシング によりシグナル配列が除去され得る。 本発明の方法では、 f i b u 1 i n— 4としては、 シグナル配列が除去されたもの、 シグナル配列が除去 されていないもののいずれでも使用できるが、 シグナル配列が除去され たものが好ましい。 f i b u 1 i n— 4変異体は、 弾性線維の再生を可 能とするものである限り特に限定されず、 例えば、 f i b u 1 i n— 4 をコードするァミノ酸配列において 1もしくは 2以上 （例えば 1〜 3 0 個、 好ましくは 1〜 2 0個、 より好ましくは 1〜 1 0個、 最も好ましく は 1〜 5個） のアミノ酸が置換、 欠失、 挿入または付加されたアミノ酸 配列である。 「弾性線維再生能を有する細胞」 とは、 弹性線維構成成分を分泌し、 且つ D A N C E及び/又は f i b u 1 i n - 4の存在下で培養されるこ とにより弾性線維の新生を可能とする細胞をいう。 弾性線維再生能を有 する細胞は、 任意の動物、 好ましくは哺乳動物に由来するものであり得 る。 哺乳動物と しては、 D A N C E及び/又は f i b u 1 i n — 4のォ ルソログが由来するものと同様のものが挙げられる。 弾性線維再生能を 有する細胞はまた、 遺伝子非導入細胞又は遺伝子導入細胞であり得る。 弾性線維再生能を有する細胞が遺伝子非導入細胞である場合、 かかる 細胞は、 弾性線維が存在する組織、 例えば皮膚、 血管 （例、 動脈）、 肺又 は子宮に由来する細胞であり得る。 かかる細胞はまた、 線維芽細胞、 平 滑筋細胞、 上皮細胞、 内皮細胞等の細胞であり得る。 好ましくは、 かか る細胞としては、 皮膚線維芽細胞又は血管平滑筋細胞が用いられ得る。 弾性線維再生能を有する細胞はさらに、 初代培養細胞、 初代培養細胞か ら誘導された細胞株、 幹細胞等の未分化細胞の培養により得られる細胞 であり得る。 このような細胞は、 自体公知の方法により調製できる （例 ：は、 Current Protocol s i n Cel l Biology, John Wi l ey & Sons, Inc. (2001)； 機能細胞の分離と培養， 丸善書店 （ 1 9 8 7 ) 参照）。
弾性線維再生能を有する細胞が遺伝子導入細胞である場合、 かかる細 胞は、 1又は 2以上の遺伝子がその発現が可能なように導入されたもの であり得る。 導入対象である細胞が弾性線維再生能を有していない、 あ るいは十分に有していない細胞である場合、 弾性線維構成成分及ぴ z又 は弾性線維の形成を促進する他の因子を発現可能なベクタ をかかる細 胞に導入することにより、 弾性線維再生能を獲得した細胞、 あるいは弾 性線維再生能が改善された細胞が作製できる。 勿論、 先に言及した皮膚 線維芽細胞、 血管平滑筋細胞等の細胞に対して弾性線維構成成分及び 又は弾性線維の形成を促進する他の因子を発現可能なベクターを導入し、 その弾性線維再生能をより向上させてもよい。 D A N C Eは、 弾性線維 構成成分を組織化 （organize) する （詳細には、 DANC Eがミクロフ イブリルを足場としてリシルォキシダ一ゼファミ リーの酵素 （エラスチ ンをクロスリンクする酵素） をミクロフイブリル上に局在させ、 以つて エラスチンの沈着 · クロスリ ンクがミクロフイブリル上で起こるよ うに させている） と考えられるため、 また、 f i b u 1 i n _ 4も弾性線維 形成に重要な役割を果たし得ると考えられるため、 弾性線維再生能を有 していない、 あるいは十分に有していない細胞に対して、 かかるベクタ 一を導入すれば、 導入細胞は、 必要な弾性線維構成成分が分泌可能とな り、 且つ D AN C E及び Z又は f i b u 1 i n - 4の存在下で培養され ることにより弾性線維を新生できるようになると考えられる。 弾性線維 再生能を有していない、 あるいは十分に有していない細胞で発現される べき弾性線維構成成分及び/又は弾性線維の形成を促進する他の因子は 特に限定されず、細胞の種類に応じて当業者により適宜決定され得る力 例えば、 弾性線維構成成分と しては、 エラスチン、 リシルォキシダーゼ (L OX)、 リシルォキシダーゼ様 1 _ 4 (L O X L 1— 4 )、 L T B P 2及ぴ 4、 フイブリ リ ン 1一 3、 £1^ 1 し 1 ^[ 1及ぴ2、 1^ 0 ? 1及 び 2などが挙げられ、 弾性線維の形成を促進する他の因子としては、 バ ーシカン （versican) V 3、 ヒアル口ニダーゼなどが挙げられる。 なお、 弾性線維構成成分及び 又は弾性線維の形成を促進する他の因子を発現 可能なベクター及び該ベクターの細胞への導入方法としては、 後述する D AN C E発現べクタ一及び 又は f i b u 1 i n— 4発現べクター並 ぴに DAN C E誘導因子発現ベクターと同様のものを用いることができ る。
0 ^1〇 £及ぴ//又は £ i b u l i n— 4の存在下での弾性線維再生 能を有する細胞の培養は、 結果的に、 D AN C E及び/又は f i b u l i n - 4を含む培養培地中で弾性線維再生能を有する細胞を培養するこ ととなる限り特に限定されない。 従って、 培養開始時に、 DAN C E及 び/又は f i b u 1 i n— 4蛋白質が培地中に存在していなく とも構わ ない。 DANC E及ぴ /又は f i b u 1 i n— 4の存在下での弾性線維 再生能を有する細胞の培養としては、 例えば、 （ 1 ) DAN C E及びノ又 は f i b u l i n— 4を添加した培養培地における弾性線維再生能を有 する細胞の培養、 （ 2 ) D ANC E誘導因子を添加した培養培地における 弾性線維再生能を有する細胞の培養、 （ 3 ) D ANC E発現ベクター及ぴ ノ又は f i b u 1 i n— 4発現べクター並びにノあるいは DAN C E誘 導因子発現べクターを導入した弾性線維再生能を有する細胞の培養、 (4) DANC E発現細胞及び/又は ί i b u 1 i n— 4発現細胞並び に/あるいは DAN C E誘導因子発現細胞との弾性線維再生能を有する 細胞の共培養などが挙げられる。 本発明の方法において、 培養培地中に 播種する際の弾性線維再生能を有する細胞の密度は特に限定されないが、 例えばサブコンフルェン ト又はコンフルェン トになるよう播種され得る。 上記 （ 1 ) の場合、 培養培地に添加される DAN C E及び 又は f i b u 1 i n— 4は、 天然蛋白質又は組換え蛋白質であり得る。 D AN C E及び f i b u 1 i n— 4は、自体公知の方法により調製でき、例えば、 a ) DANC E又は f i b u 1 i n— 4を含有する生体試料 （例えば、 血液） から DANC E又は f i b u 1 i n - 4を回収してもよく、 b ) 宿主細胞 （例えば、 ェシエリ ヒア属菌、 バチルス属菌、 酵母、 昆虫細胞、 昆虫、 動物細胞） に DAN C E発現べクター又は f i b u 1 i n _ 4発 現ベクター （後述） を導入することにより形質転換体を作製し、 該形質 転換体により産生される DAN C E又は f i b u l i n— 4を回収して もよく、 c) ゥサギ網状赤血球ライセート、 コムギ胚芽ライセート、 大 腸菌ライセ一ト等を用いる無細胞系により DANC E又は f i b u l i n— 4を合成してもよい。 DANC E及び f i b u l i n— 4は、 塩析 や溶媒沈澱法などの溶解度を利用する方法；透析法、 限外ろ過法、 ゲル ろ過法、 および S D S—ポリアクリルァミ ドゲル電気泳動法などの主と して分子量の差を利用する方法； イオン交換クロマトグラフィーなどの 荷電の差を利用する方法； ァフィニティークロマトグラフィー、 DAN C E抗体の使用などの特異的親和性を利用する方法； 逆相高速液体クロ マトグラフィーなどの疎水性の差を利用する方法；等電点電気泳動法な どの等電点の差を利用する方法； これらを組合せた方法などにより適宜 精製される。 培養培地に添加される DAN C E及び f i b u l i n— 4 の量は、 弾性線維の再生を可能とする限り特に限定されないが、 例えば 培養培地中での最終濃度が、 0. 1〜 1 0 0 μ 8/πι 1、好ましくは 0. 5〜 5 0 /ζ § /πι 1、 より好ましくは l〜 2 0 /z gZm l となるような 量が添加され得る。
上記 （2) の場合、 培養培地に添加される DANC E誘導因子は、 D AN C Eの発現を誘導できるものである限り限定されないが、 例えば T G F i3 (例えば、 TG F ]3 1 ) などが挙げられる。 DANC E誘導因子 が蛋白質である場合、 天然蛋白質又は組換え蛋白質 （DANC Eと同様 に調製可能） を使用できる。 培養培地に添加される DANC E誘導因子 の量は、 弾性線維の再生を可能とする程度の量の DAN C Eを誘導する ものである限り特に限定されないが、 例えば DANC E誘導因子として T G F を用いた場合、 培養培地中での最終濃度が、 0. 5 ~ 1 0 0 0 n g / 1 好ましくは 1〜： L 0 0 n g / m l、 より好ましくは 5〜4 0 n g/m 1 となるような量が添加され得る。
上記 （3) の場合、 弾性線維再生能を有する細胞に導入される発現べ クタ一は、 上記 DAN C E又は f i b u l i n— 4あるいは DANC E 誘導因子を発現可能なベタターであり得る。 これらの発現ベクターは、 目的蛋白質をコードするポリヌクレオチドが、 目的とする細胞内でプロ モーター活性を発揮し得るプロモーターに機能的に連結されていなけれ ばならない。 使用されるプロモーターは、 目的の細胞で機能し得るもの であれば特に制限はないが、 例えば、 S V 4 0由来初期プロモーター、 サイ トメガロウイノレス L T R、 ラウス肉腫ウイノレス L T R、 M o M u L V由来 L T R、 アデノウィルス由来初期プロモーター等のウィルスプロ モーター、 並びに；3—ァクチン遺伝子プロモーター、 P G K遺伝子プロ モーター、 トランスフェ リ ン遺伝子プロモーター等の哺乳動物の構成タ ンパク質遺伝子プロモーターなどが挙げられる。 プロモーターはまた、 線維芽細胞特異的プロモーター （例えば、 コラーゲンプロモーター）、 平 滑筋細胞特異的プロモーター （例えば、 S M 2 2プロモーター、 α—平 滑筋ァクチンプロモーター） 等の弾性線維再生能を有する細胞に特異的 なプロモーターであってもよい。
発現ベクターは、 好ましくは目的蛋白質をコードするポリヌクレオチ ドの下流に転写終結シグナル、すなわちターミネーター領域を含有する。 さらに、 形質転換細胞選択のための選択マーカー遺伝子 （テ トラサイク リ ン、 アンピシリ ン、 カナマイシン、 ハイグロマイシン、 ホスフィ ノス リシン等の薬剤に対する抵抗性を付与する遺伝子、 栄養要求性変異を相 補する遺伝子等） をさらに含有することもできる。 また、 発現ベクター として使用される基本骨格のベクターは特に制限されないが、 例えば、 プラスミ ドべクター、 並びにレトロウィルス、 アデノウィルス、 アデノ 随伴ウィルス、 センダイウィルス等のウィルスベクターが挙げられる。 発現ベクターの弾性線維の形成能を有する細胞への導入は、 自体公知 の方法、 例えばエレク ト口ポレーシヨン法、 リン酸カルシウム沈殿法、 マイク ロインジェクショ ン法、 リ ボソーム、 陽イオン性脂質等の脂質を 使用する方法などにより行われ得る。 また、 該発現べクタ一の一部又は 全てが、弾性線維の形成能を有する細胞のゲノムに組み込まれていても、 組み込まれていなくてもよい。 発現ベクターの細胞内ゲノムへの組込み には、 自体公知の方法、 例えばレ トロ ウイルスを使用する方法、 相同組 換えを可能とするターグティングベタターを使用する方法などが用いら れ得る。 上記 （4) の場合、 培養培地中で弾性線維の形成能を有する細胞と共 存させる細胞は、 DANC E又は f i b u 1 i n— 4あるいは DANC E誘導因子を発現可能である限り特に限定されない。 該発現細胞は、 例 えば、 DAN C E又は f i b u 1 i n— 4あるいは DANC E誘導因子 の発現ベクターの宿主細胞への導入により得られる細胞、 DAN C E又 は f i b u 1 i n— 4あるいは DANC E誘導因子を発現する天然細胞 であり得る。 D AN C Eを発現する天然細胞としては、 DANC E発現 組織 （例えば、 心臓、 腎臓、 膝臓、 精巣、 卵巣、 小腸、 結腸、 軟骨、 動 脈、 肺、 子宮、 皮膚） 由来の細胞を使用できる。 f i b u 1 i n— 4を 発現する天然細胞としては、 f i b u 1 i n— 4発現組織 （例えば、 心 臓、 脳、 胎盤、 肺、 .肝臓、 骨格筋、 腎臓、 膝臓、 脾臓、 前立腺、 精巣、 卵巣、 小腸、 大腸、 皮膚、 動脈） 由来の細胞を使用できる。 DANC E 誘導因子を発現する天然細胞としては、 例えば、 DANC E誘導因子と して T G F ]3を意図する場合には、 白血球、 骨、 胎盤、 脾臓、 小腸、 結 腸、 肝臓、 腎臓、 心臓、 脳、 骨髄、 軟骨等の組織由来の細胞を使用でき る。 DANC E又は f i b u 1 i n— 4あるいは DANC E誘導因子の 発現細胞はまた、 初代培養細胞、 初代培養細胞から誘導された細胞株、 幹細胞等の未分化細胞の培養により得られる細胞 （例えば、 分化細胞）、 市販の細胞株、 セルバンクより入手可能な細胞株などであり得る。 DA NC E又は f i b u 1 i n— 4あるいは DAN C E誘導因子の発現細胞 はまた、弾性線維再生能を有する細胞と同種動物由来の細胞であり得る。 共培養としては、 弾性線維の形成能を有する細胞と D ANC E又は f i b u 1 i n - 4あるいは DANC E誘導因子の発現細胞とが物理的に 接触している場合や、 これら細胞が同じ培養系に存在するが物質の行き 来が可能な隔壁により隔てられ細胞自体の物理的接触ができない場合も 含まれる。 弾性線維の形成能を有する細胞と DAN C E又は f i b u 1 i n— 4あるいは DAN C E誘導因子の発現細胞が同じ培養系に存在す るが物質の行き来が可能な隔壁により隔てられ細胞自体の物理的接触が できない場合とは、例えば、通常の細胞培養に用いられるフィルター（例 えば、 カルチャーインサート） を用いて両細胞を隔てて培養する場合が 挙げられる。
上述した通りの D AN C E及び/又は f i b u 1 i n— 4存在下での 弾性線維再生能を有する細胞の培養は、 通常の細胞培養方法に準じて行 うことができる。 例えば、 基礎培地と しては、 MEM培地、 DMEM培 地、 R PM I 1 6 4 0培地等を使用できる。 基礎培地には、 アミノ酸、 ビタミン、 脂質、 抗生物質、 緩衝剤等の成分を補充してもよい。 培地の p Hは、 例えば約 6〜8、 好ましくは約 6. 5〜7. 5である。 培養温 度は、例えば約 3 0〜4 0°C、好ましくは約 3 7°Cである。培養期間は、 十分な量の弾性線維が得られるように適宜調製され得る。
なお、 上記培養は、 無血清培地、 血清培地 （例えば 5 %以下、 3 %以 下又は 1 %以下の血清を含有） 中のいずれで行われてもよいが、 未同定 成分の混入の防止、 感染リ スクの軽減などの観点から、 無血清培地で行 うことが好ましい。 さらに、 異種動物由来成分の除去の観点から （例え ば、 ァレルギ一反応抑制のため）、培養で用いられる DAN C E及ぴ Z又 は f i b u 1 i n— 4、 及ぴ弹性線維再生能を有する細胞、 並びにその 他の成分は、 同種動物に由来するもので統一することが好ましい。
上記培養で用いられる培地はまた、 弾性線維再生能を有する細胞によ り効率的に弾性線維を形成させるため、 D AN C E及び/又は f i b u 1 i n— 4以外の弾性線維構成成分 （例えば、 エラスチン、 リシルォキ シダーゼ （L O X)、 リシルォキシダーゼ様 1— 4 (L OX L 1— 4)、 L T B P 2及び 4、 フィプリ リ ン 1一 3、 EM I L I N 1及び 2、 MA G P 1及び 2)、及び/又は弾性線維の形成を促進する他の因子（例えば、 バーシカン （versican) V 3、 ヒアルロニダ一ゼ）、 並びに /あるいはそ の他の成分 （例えば、 b e t a i g— h 3、 6 7 k Dエラスチン結合蛋 白質） を含むことができる。
培養はまた、 二次元培養又は三次元培養であり得る。 二次元培養又は 三次元培養は、 自体公知の方法により行うことができる。 例えば、 三次 元培養に関する技術については、 Long, J. L. et al. (2003) Matrix biology22(4)： 339-50、 Muraguchi, T. et al. , (1994) Plastic and Reconstructive Surgery 93(3)： 537 - 44を参照のこと。
弾性線維が製造 （即ち、 再生） されたか否かは、 自体公知の方法によ り確認できる。 例えば、 培養物の一部を採取し、 抗 DANC E抗体、 抗 f i b u 1 i n— 4抗体、 抗エラスチン抗体等の弾性線維構成成分に対 する抗体を用いて免疫染色することにより確認が行われる。
本発明はまた、 D AN C E及ぴ 又は f i b u 1 i n - 4を含む人工 弾性線維を提供する。 本明細書中で使用される場合、 「人工弾性線維」 と は、 i n v i t r oにおいて再生された弾性線維を意味するものとす る。
本発明の人工弾性線維は、 培養に使用された DAN C E及び 又は f i b u 1 i n— 4、 並びにノあるいは培養に使用された弾性線維再生能 を有する細胞が由来する動物に対して異種動物由来の成分を含まないも のであり得る。 即ち、 本発明の人工弾性線維は、 動物由来の生体成分に ついて、 単一の動物種に由来する成分のみからなるものであり得る。 上 述した本発明の方法により、 このような人工弾性線維を提供することが 初めて可能となった。 従って、 本発明の人工弾性線維は、 同種異系移植 等の同種移植で好適に用いられ得る。 また、 弾性線維再生能を有する細 胞として、 移植が所望される個体由来の細胞を用い、 且つ異種動物由来 成分が一切混入していない培地を用いることで、 同種同系移植に好適に 用いられる弾性線維が得られる。
本発明の人工弾性線維はまた、 D AN C E及び/又は f i b u 1 i n 一 4以外の弾性線維構成成分 （例えば、 エラスチン、 リシルォキシダー ゼ （L OX)、 リシルォキシダーゼ様 1— 4 (LOX L 1— 4)、 LT B P 2及び 4、 フイブリ リ ン 1— 3、 EM I L I N 1及び 2、 MAG P 1 及び 2 )、 並びにその他の成分 （例えば、 b e t a i g— h 3、 6 7 k D エラスチン結合蛋白質） を含み得る。
本発明の人工弾性線維はさらに、 弾性線維再生能を有する細胞を伴う 形態 （即ち、 本発明の人工弾性線維及び弾性線維再生能を有する細胞を 含む複合物） で提供され得る。 例えば、 本発明の方法により得られる培 養物が、 かかる形態に対応する。 勿論、 本発明の人工弹性線維は、 弾性 線維再生能を有する細胞を伴わない形態としても提供され得る。 このよ うな形態は、 自体公知の方法により得られる。 例えば、 本発明の方法に より得られる培養物を、 細胞除去処理 （例えば、 ED T A処理）、 放射線 (例えば、 γ線） 照射、 細胞変性処理 （例えば、 凍結 ·融解、 凍結乾燥） などの処理に付すことにより、 弾性線維再生能を有する細胞を伴わない 人工弾性線維が得られる。
本発明はさらに、 上記弾性線維を含む人工組織を提供する。 弾性線維 を含む人工組織としては、 例えば人工皮膚、 人工血管 （例えば、 人工動 脈）、 人工肺、 人工子宫等が挙げられるが、 人工皮膚及ぴ人工血管が好ま しい。本発明の人工組織は、 自体公知の方法により作製できる （例えば、 Long, J. L. et al. (2003) Matrix biology22 (4)： 339 - 50、 Muraguchi, T. et al. , (1994) Plastic and Reconstructive Surgery 93(3)： 537-44 を参照）。
本発明はまた、 D AN C E及び 又は f i b u 1 i n— 4 (蛋白質） 又は DAN C E及び 又は f i b u 1 i n— 4の発現を促進する物質を 含有する、 弾性線維再生剤を提供する。
D ANC Eの発現を促進する物質は、 D ANC Eの発現を可能とする 限り特に限定されず、 例えば、 DAN C E発現ベクター、 DAN C E誘 導因子、 D AN C E誘導因子発現ベクターが挙げられる。 f i b u 1 i n - 4の発現を促進する物質は、 f i b u 1 i n— 4の 発現を可能とする限り特に限定されず、 例えば、 f i b u 1 i n— 4発 現べクターが挙げられる。
本発明の再生剤は、 任意の担体、 例えば、 医薬上許容される担体を配 合することにより、弾性線維の再生が所望される状態又は疾患、例えば、 肺気腫、 血管損傷、 皮膚弛緩症、 創傷、 弾性線維劣化 (例えば、 加齢又 は紫外線により引き起こされるもの）、 肌荒れ、 動脈硬化、 大動脈瘤、 加 齢黄斑変性症、 会陰ヘルニア、 肛門ヘルニアの予防、 治療又は改善のた め、 あるいは皮膚のたるみやしわをとるといった美容の目的のために有 用である。 本発明の調節剤はまた、 弾性線維の再生能を有する細胞の培 養用試薬として有用である。
医薬上許容される担体と しては、 例えば、 ショ糖、 デンプン、 マン- ッ ト、 ソノレビッ ト、 乳糖、 グノレコース、 セルロース、 タノレク、 リ ン酸力 ルシゥム、炭酸カルシウム等の賦形剤、セルロース、 メチルセルロース、 ヒ ドロキシプロ ピノレセルロース、 ポリ プロ ピルピロ リ ドン、 ゼラチン、 ァラビアゴム、ポリエチレングリコール、ショ糖、デンプン等の結合剤、 デンプン、カノレポキシメチノレセノレ口ース、ヒ ドロキシプロ ピルスターチ、 ナトリウムーグリ コールースターチ、 炭酸水素ナトリ ウム、 リン酸カル シゥム、 クェン酸カルシウム等の崩壌剤、 ステアリ ン酸マグネシウム、 エア口ジル、 タルク、 ラウリル硫酸ナトリ ウム等の滑剤、 クェン酸、 メ ントール、 グリシルリシン ' アンモニゥム塩、 グリシン、 オレンジ粉等 の芳香剤、 安息香酸ナトリ ウム、 亜硫酸水素ナトリウム、 メチルパラべ ン、 プロピルパラベン等の保存剤、 クェン酸、 クェン酸ナトリウム、 酢 酸等の安定剤、 メチルセルロース、 ポリビュルピロリ ドン、 ステアリン 酸アルミニウム等の懸濁剤、 界面活性剤等の分散剤、 水、 生理食塩水、 オレンジジュース等の希釈剤、 カカオ脂、 ポリエチレングリコール、 白 灯油等のベースワ ックスなどが挙げられるが、 それらに限定されるもの ではない。
経口投与に好適な製剤は、 水、 生理食塩水、 オレンジジュースのよ う な希釈液に有効量のリガンドを溶解させた液剤、 有効量のリガンドを固 体や顆粒として含んでいるカプセル剤、 サッシェ剤または錠剤、 適当な 分散媒中に有効量のリガンドを懸濁させた懸濁液剤、 有効量のリガンド を溶解させた溶液を適当な分散媒中に分散させ乳化させた乳剤等である。 非経口的な投与 （例えば、 静脈内注射、 皮下注射、 筋肉注射、 局所注 入、 腹腔内投与など） に好適な製剤としては、 水性および非水性の等張 な無菌の注射液剤があり、 これには抗酸化剤、 緩衝液、 制菌剤、 等張化 剤等が含まれていてもよい。 また、 水性および非水性の無菌の懸濁液剤 が挙げられ、 これには懸濁剤、 可溶化剤、 增粘剤、 安定化剤、 防腐剤等 が含まれていてもよい。 当該製剤は、 'アンプルやバイアルのように単位 投与量あるいは複数回投与量ずつ容器に封入することができる。 また、 有効成分および医薬上許容される担体を凍結乾燥し、 使用直前に適当な 無菌のビヒクルに溶解または懸濁すればよい状態で保存することもでき る。
本発明の製剤の投与量は、 有効成分の種類，活性、 病気の重篤度、 投 与対象となる動物種、 投与対象の薬物受容性、 体重、 年齢等によって異 なるが、 通常、 成人 1 日あたり有効成分量として約 0 . 0 5〜約 1 0 0 m g Z k gである。
本発明はさらに、 本発明の方法において用いられる任意の物、 例えば 無血清培地、 D A N C E発現ベクター及ぴノ又は f i b u 1 i n— 4発 現ベクター、 D A N C E発現ベクター及び Z又は f i b u 1 i n — 4発 現ベクターが導入された細胞等を提供する。
本明細書中で挙げられた全ての刊行物に記載された内容は、 本明細書 での引用により、 その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込ま れるものである。 以下の実施例により本発明をより具体的に説明するが、 実施例は本発 明の単なる例示にすぎず、 本発明の範囲を何ら限定するものではない。
実施例
1 . 材料及び方法
1 . 1 . 材料
Dulbecco s Modif ied Eagle Medium (DMEM)、 Dulbecco s Modi fi ed Eagl e ' s Medium/Ham' s Nutrient Mixture F12 (DMEM/F12)、 牛血清ァ ルブミン （BSA)、モノクローナル抗 FLAG. M2抗体 （FI3165) は Si gmaから 購入、牛胎仔血清 （FBS)は JRH Biosc ienceから購入した。抗マウス DANCE 抗体 BSYN1923は、 マウス DANCE76 - 98アミノ酸に対応する合成ぺプチ ドをゥサギに免疫して作製し、 抗原べプチドを固定したカラムを用いて ァフィ二ティー精製した。 抗 Myc (9E10) 抗体は Santa Cruzより購入し た。 ポリクローナノレ抗エラスチン抗体 (PR533) は Elast in Products Company, INCから購入した。 抗ゥサギ Al exa Fluor 488抗体、 抗マウ ス Al exa Fluor 546 ¾ni体 fま Mol ecular Probes力 ら貝再人し 7こ。 Microscope Cover Glassは Fi sherbrand力 ら、 Vectashiel dは Vector labolatori es から購入した。
1 . 2 . 組換え DANCE
293T細胞と DANCE発現べクターを用いてヒ ト DANCE安定発現細胞株を 作製し、その培養上清から Ni- NTAァガロース （Qiagen) を用いて組換え DANCEを精製した後、 脱塩カラム （Amersham) を用いて脱塩した。
1 . 3 . 線維芽細胞培養
ヒ ト線維芽細胞は京都大学附属病院形成外科より供与して頂いた。 24 ゥエルプレートの底に Cover Glassを置き、 その上にヒ ト線維芽細胞を 1ゥエルあたり 7. 5 X 104個播種し、 10°/。FBSを添加した DMEM培地にて 37°C、 5%C02で培養した。 3 0目に PBSで洗浄後、 FBSを添加していない DMEM/F12 培地に換え、 精製した DANCE蛋白質、 切断型の DANCE蛋白質 4 μ g/ml、 もしくは FBS を添加した。 引き続き 37°C、 5%C02で培養し、 1 4日目に 固定、 免疫染色を行った。
1 . 4 . 免疫染色
培養 日 目に、 lml の PBSにて 3回洗浄後、 100%メタノールにて、- 20。C で 30分間固定した。 PBSにて洗浄後、 2%BSAを含む PBSにて、 室温で 30 分間ブロッキングした後、 ポリクローナル抗エラスチン抗体 （1/100)、 および、モノクローナル抗 FLAG抗体 （1八 00)と室温で 1時間以上ィンキ ュベートした。 PBS で洗浄し、 さらに抗ゥサギ Al exa Fluor 488 抗体 (1/100)、 抗マゥス Alexa Fluor 546抗体 （1八 00)と室温で 1時間ィン キュペートした。 PBS で洗浄後、 4%パラホルムアルデヒ ドにて、 室温で 10分間固定し、 ふたたび PBSで洗浄後、 DAPI含有の Vectashi el dにてス ライ ドガラス上にサンプルをマウントした。 観察は共焦点レーザースキ ヤン顕微鏡 LSM510, Zeis sを用いて行った。 参考例 1 ： DANCEの一部は in vitro, in vivoにおいて N末端が切断さ れている
1 . 1 . ヒ ト及びマウス DANCEの 293T細胞での強制発現
シグナルペプチド切断部位直下に FLAG タグをつけたヒ ト及ぴマウス DANCE cDNA を 293T細胞にトランスフエクシヨ ンし、 無血清培地に交換 後 48時間培養を続け、 その培養上清 15 1を SDS- PAGEで展開し、 ゥェ スタンブロッ トを行った。 抗体はマゥス DANCEの 76-98番目のアミノ酸 に対応するぺプチドをゥサギに免疫して得られた BSYN、および抗 FLAG M2 抗体を用いた。
その結果、 BSYNはヒ ト DANCEを認識せず、 マウス DANCEは 2本のバン ドとして検出された。これに対して抗 FLAG M2抗体は、ヒ ト 'マウス DANCE を 1本のバンドと して検出した。
1 . 2 . マウス由来皮膚線維芽細胞での DANCEの発 ¾ 新生仔期の DANCEノックアウ トマウス（Nature 415： 171 -175 (2002) 参 照）およびその同腹のコントロールマウス皮膚より線維芽細胞を培養し、 35S-Met , Cysで 24時間ラベルした後、 培養上清を BSYN抗体で免疫沈降 した。 免疫沈降物は SDS-PAGEで展開し、 ォートラジォグラフィ一で検出 した。
その結果、 DANCE+/+マウス由来の皮膚線維芽細胞では 2本のパンドが 検出され、 DANCE -/-マウス由来の皮膚線維芽細胞ではバンドが検出され なかった。
1 . 3 . マウス肺組織のウェスタンプロッ ト
12週齢の DANCEノックアウ トマウスおょぴその同腹のコント口ールマ ウスの肺組織抽出物を SDS- PAGE にて展開し、 BSYN抗体でゥエスタンブ 口ッ ト ¾r行つ 7こ。
その結果、 DANCE+/+マウスの肺組織では、 DANCE 力 2本のバンドと し て検出され、 DANCE- /-マウスの肺組織ではバン ドが検出されなかった。 参考例 2 ：切断型 DANCEの N末端は、 DANCEの 7 8番目以降のァミノ酸 と一致する
カルポキシル末端に FLAGタグと 6 X Hi sタグのついたヒ ト DANCE cDNA を 293T細胞にトランスフエクシヨ ンし、安定発現株を樹立した。 その無 血清培養上清 800 ml より Ni_NTA ァガロース （Qi agen)を用いて組換え DANCEを精製し、 SDS- PAGEで展開して Coomas i e - B lueで染色した。 主要 なバンド 2本のうち、 切断型 DANCEに相当するバンドを切り出し、 エド マン分解により N末端ァミノ酸配列を解析した。
その結果、 切断型 DANCEの N末端アミノ酸配列は、 DANCEの 7 8番目 以降のアミノ酸配列と一致していた。
以上より、 この低分子量タンパク質は、 DANCE の 7 7番目のアミノ酸 と 7 8番目のアミノ酸との間での切断により生じると考えられた。 参考例 3 ： DANCE の切断はセリンプロテアーゼインヒ ビターで阻害され .
カルボキシル末端に FLAGタグと 6 X Hi sタグのついたヒ ト DANCE cDNA を 293T細胞にトランスフエクシヨ ンし、システィンプロテアーゼィンヒ ビター （E64) またはセリンプロテアーゼインヒ ビター （ァプロチュン） を含む無血清培地で 48時間培養し、 培養上清から Ni-NTAァガロースを 用いて沈降させた,組換えタンパク質を SDS- PAGE で展開し、 抗 FLAG M2 抗体でゥエスタンブロッ トを行った。
その結果、 DANCE の切断は E64で阻害されなかったが、 ァプロチュン により阻害された。
以上より、 DANCE はセリンプロテアーゼにより切断されることが示唆 された。 参考例 4 ： DANCEの Arg77を Al aに置換すると切断されにく くなる
DANCEの 77番目のアルギニンをァラニンに置換した変異型 DANCE ( C 末端 FLAG, 6 X Hi s タグつき） の発現ベクター、 及ぴ正常型 DANCE ( C 末端 FLAG, 6 X Hi sタグつき） の発現ベクターを 293T細胞にトランスフ ェクシヨンし、 無血清培地で 48時間培養した培養上清から Ni- NTAァガ ロースを用いて沈降させた組換えタンパク質を SDS- PAGE で展開し、 抗 FLAG M2抗体でゥエスタンブロッ トを行った。
その結果、 この変異型 DANCEは、 プロテアーゼによる切断に対して抵 抗性を示すことが明らかとなった。 実施例 1 ： DANCE 蛋白質は無血 接養において弾性線維形 J¾を誘導でき ヒ ト皮膚線維芽細胞をコンフルェントになるよ う播種し、 無血清培地 もしくは 1 0 %牛胎仔血清を含有する培地に替えて 2週間培養して弾性 線維の形成を抗ェラスチン抗体による免疫染色で検討した。
その結果、 1 0 %の牛胎仔血清を含有する培地では弾性線維の形成が みられた。 無血清培地でも細胞は生存していたが、 弾性線維はほとんど 形成されなかった。 しかし無血清培地に組換え MNCE蛋白質を 4 μ g/ml になるように加えておく と、 血清含有培地と同等以上の弾性線維が形成 された。 このとき加えた組換え DANCEの局在を抗 FLAG抗体で見ると、形 成された弾性線維と共局在していた。 なお、 組換え DANCE のかわりに、 DANCEの発現誘導が報告されている TGF ]3 1 10ng/ralを加えても同様の弹 性線維の形成が観察された。 実施例 2 ： DANCE による弾性線維形成の誘導はインテグリンに依存しな いがアミノ末端ドメインを必要とする
次に、 DANCE による弾性線維形成の誘導に細胞表面インテグリ ンとの 結合が必要かどうカ また、 プロテアーゼによるァミノ末端ドメイン切 断が活性に影響するかどうかを検証した。 なお、 組換え蛋白質はすべて 4 /X g/ralの濃度になるよう加えた。
その結果、 無血清培地での培養では弾性線維形成はほとんど認められ ず、 組換え DANCE蛋白質を加えた培地では多くの弾性線維の形成が確認 された。 インテグリンとほとんど結合しないことが確認されている変異 蛋白質 （インテグリ ン結合部位 RGDを RGEに変異させたもの） を加えた 培地においても同等の弾性線維形成がみられたため、 弾性線維形成にお いては DANCE とィンテグリンとの結合は必要ではないと考えられた。 こ れに対して、 ァミノ末端ドメイン切断型 DANCE ( Δ ND-DANCE) を加えた 培地では弾性線維形成が非常に少なく、 切断型 DANCEには弾性線維形成 活性がほとんどないか、 あっても非常に弱いと考えられた。 リシルォキ シダーゼ阻害薬 BAPN (beta-aminopropionitri le) を全長 DANCE ととも に加えておく と、 エラスチンのクロスリンクが阻害されるため弾性線維 は形成されなかった。 しかし、 この時でも加えた DANCE蛋白質は線維状 に分布していた。 すなわち、 DANCE が線維状に分布するためにはエラス チンを必要としていないと考えられる。 実施例 3 ： f ibul in-4 蛋白質は無血清培養において弹性線維形成を誘導 できる
次いで、 実施例 1 と同様の方法にて、 ヒ ト皮膚線維芽細胞をコンフル ェントになるよう播種し、 無血清培地もしくは 1 0 %牛胎仔血清を含有 する培地に替えて 2週間培養して弾性線維の形成を抗エラスチン抗体に よる免疫染色で検討した。
その結果、 1 0 %の牛胎仔血清を含有する培地では弾性線維の形成が みられた。 無血清培地でも細胞は生存していたが、 弾性線維はほとんど 形成されなかった。 しかし無血清培地に組換え f ibul in- 4蛋白質を 4 Z g/mlになるように加えておく と、血清含有培地と同等以上の弾性線維が 形成された。このとき加えた組換え fibul in- 4の局在を抗 FLAG抗体で見 ると、 形成された弾性線維と共局在していた。 考察
今まで in vitro細胞培養で弾性線維を形成させるには 1 0 %の牛胎仔 血清が必須とされてきたため、 血清に含まれる弾性線維形成に必要な因 子が何か不明であった。本発明者は、 DANCEもしくは f ibul in- 4又は DANCE 遺伝子発現を増強する因子 （TGF ]3 ) を培地に加えるだけで、 ヒ ト皮膚線 維芽細胞に効率よく弾性線維を作らせることができることを示した。 こ れらの結果は、 ヒ ト皮膚線維芽細胞に弾性線維形成を誘導するには DANCEもしくは fibul in- 4又は DANCE遺伝子発現を増強する因子（TGF ]3 ) があれば十分であることを示唆している。 産業上の利用可能性
本発明の方法は、 正常構造を保持する弾性線維の簡便且つ効率的な再 生に有用である。 本発明の方法はまた、 血清を必要と しないため、 ヒ ト への移植を前提とする、 弾性線維を含む人工組織 (例えば、 人工皮膚、 人工血管） の作製に有用である。 本発明の方法はさらに、 血清を用いる 必要がないため、 弾性線維形成■再生に必要な因子を同定するための実 験系として有用である。 本発明の弾性線維再生剤は、 細胞培養用試薬と して、 あるいは美容剤又は医薬と して有用である。
本発明の方法によれば、 正常構造を保持する弾性線維の簡便且つ効率 的な再生が可能となる。本発明の方法はまた、血清を必要としないため、 ヒ トへの移植を前提とする、 弾性線維を含む人工組織 （例えば、 人工皮 膚、 人工血管） の作製を可能とする。 本発明の方法はさらに、 血清を用 いる必要がないため、 弾性線維形成 · 再生に必要な因子を同定するため の実験系として使用できる。 本発明の弾性線維再生剤は、 細胞培養用試 薬として、 あるいは美容剤又は医薬と して使用できる。
本出願は、 日本で出願された特願 2 0 0 5— 0 3 0 8 6 4 (出願日 ： 2 0 0 5年 2月 7 日） を基礎としており、 その内容は本明細書に全て包 含されるものである。

Claims

請求の範囲
1. DANC Eの存在下で弾性線維再生能を有する細胞を培養すること を含む、 弾性線維の製造方法。
2. 培養が無血清培地中で行われる、 請求の範囲 1記載の方法。
3. D AN C E及び/又は DAN C E誘導因子が添加された培地、 ある いは DAN C E発現べクター及び Z又は DAN C E誘導因子発現べクタ 一が導入された弾性線維再生能を有する細胞を用いる、 請求の範囲 1記 載の方法。
4. D AN C E誘導因子が TG F ]3である、 請求の範囲 1記載の方法。
5. D AN C E及び弾性線維再生能を有する細胞がヒ トに由来するもの である、 請求の範囲 1記載の方法。
6. 弾性線維再生能を有する細胞が線維芽細胞である、 請求の範囲 1記 載の方法。
7. DANC Eを含み、 且つ DANC Eが由来する動物に対して異種動 物由来の成分を含まない人工弾性線維。
8. DANC E又は DAN C Eの発現を促進する物質を含有する、 弾性 線維再生剤。
9. D AN C Eを含む無血清培地。
1 0. D AN C E発現ベクター又は D AN C E誘導因子発現ベクターの 少なく とも一方が導入された、 弾性線維再生能を有する細胞。
1 1. f i b u 1 i n— 4の存在下で弾性線維再生能を有する細胞を培 養することを含む、 弾性線維の製造方法。
1 2. 培養が無血清培地中で行われる、 請求の範囲 1 1記載の方法。
1 3. i i b u l i n— 4を含み、 且つ f i b u l i n— 4が由来する 動物に対して異種動物由来の成分を含まない人工弾性線維。
1 4. f i b u l i n— 4又は f i b u l i n— 4の発現を促進する物 質を含有する、 弾性線維再生剤。
1 5. f i b u l i n— 4を含む無血清培地。
1 6. f i b u l i n一 4発現ベクターが導入された、 弾性線維再生能 を有する細胞。
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