WO2006033384A1 - 放射線治療における副作用発症予測用dnaオリゴマー、遺伝子マーカー、dnaオリゴマーセット、および副作用発症予測方法 - Google Patents

放射線治療における副作用発症予測用dnaオリゴマー、遺伝子マーカー、dnaオリゴマーセット、および副作用発症予測方法 Download PDF

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WO2006033384A1
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Takashi Imai
Yoshinobu Harada
Mayumi Iwakawa
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National Institute Of Radiological Sciences
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
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    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
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    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers

Definitions

  • DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy genetic marker 1, DNA oligomer set, and method for predicting the occurrence of side effects
  • the present invention relates to a DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy using a single nucleotide polymorphism of a gene as an index for determination, a genetic marker for predicting the occurrence of side effects using a DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in the radiotherapy, DNA oligomer set (PCR primer) and DNA oligomer (elongation primer) to obtain DNA oligomers for predicting side effects in radiotherapy and determining SNPs, DNA oligomers for predicting side effects in radiotherapy
  • the present invention relates to a method for predicting the onset of side effects. Background art
  • Radiation therapy is one of the effective local therapies for cancer, but unlike surgery, it can be treated without excision of the lesion. It can be said that this is an excellent treatment method. In other words, since a scalpel is not put into the body like a surgical operation, the patient's mental burden is lightened and it is easy to return to society after the operation, so the quality of life (QOL) of the patient can be improved. This is a treatment method that is expected to develop greatly in the future.
  • radiation therapy has an advantage that it can be applied to patients and elderly people with complications that place little burden on the patient.
  • localization (target) radiotherapy technology has also been developed that can accurately determine the position, shape and size of a lesion on 3D coordinates based on image information such as CT and MRI, and concentrate the dose on the lesion.
  • radiation therapy is a very useful treatment method for cancer treatment.
  • the radiation radiation causes severe ulcers, intestinal perforations and pneumonia.
  • Some patients with cancer are highly sensitive, with significant side effects and, in some cases, radiation therapy must be discontinued.
  • This difference in sensitivity to radiation is considered to be related to the difference in the DNA base sequence of each cancer patient.
  • Such differences in DNA base sequence are generally Is called polymorphism and can be classified as follows. Ie
  • polymorphism in which 1 to several tens of bases are deleted or inserted (inserted Z deletion polymorphism)
  • inserted Z deletion polymorphism (2) a sequence of 2 to several tens of bases as one unit is repeated, Polymorphisms (VNTR and microsatellite polymorphisms), and (3) polymorphisms in which one base is replaced with another base (single nucleotide polymorphism).
  • SNP single nucleotide polymorphism
  • the sensitivity to radiation is also thought to be greatly influenced by differences in the DNA base sequences of genes including SNP. This means that it is possible to realize tailor-made radiotherapy if the degree of sensitivity of cancer patients to radiation can be known in advance by examining the DNA base sequence before radiotherapy. Conceivable.
  • DNA oligomers DNA oligomers, genetic markers, DNA oligomers for predicting the onset of side effects in radiotherapy It is desirable to provide a set (PCR primer set) and DNA oligomer (extension primer), and a method for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy! / Speak.
  • the inventors can solve the above problems by implementing SNP typing centering on cSNP (coding SNP), rSNP (regulatory SNP), and iSNP (intron SNP), and can realize tailor-made radiotherapy. I thought that I could do it, and worked hard on my research. As a result, the genes of patients who developed side effects after radiation therapy (hereinafter referred to as “onset group”) and those who did not develop side effects or had slight onset (hereinafter referred to as “non-onset group!”) Genes. As a result, the statistically significant difference between the frequency of occurrence of alleles in the onset group and the frequency of occurrence of alleles in the non-onset group can be found. The present invention has been completed o
  • the following DNA oligomer for predicting the onset of side effects in radiation therapy is provided.
  • a DNA oligomer for predicting that side effects may occur in cancer radiotherapy by determining whether a specific base in a DNA base sequence is a risk allele or a non-risk allele
  • the DNA base sequence shown in any one of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing has at least 10 to 241 continuous DNA base sequences including the 121st base.
  • a DNA oligomer which is SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: SEQ ID NO: 41, SEQ ID NO: 42, SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 44, SEQ ID NO: 46, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 56, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 64, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 68, SEQ ID NO: 70, SEQ ID NO: 71, SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 75, SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 80, SEQ ID NO: 83
  • DNA for predicting that side effects may occur in prostate cancer radiotherapy by determining whether a specific base in a DNA base sequence is a risk allele or a non-risk allele Oligomer, SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 21, SEQ ID NO: 24, SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 45, SEQ ID NO: 47, SEQ ID NO: 48 , SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 57, SEQ ID NO: No.
  • SEQ ID NO: 66 SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 79, SEQ ID NO: 81, SEQ ID NO: 84, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101 , SEQ ID NO: 102, SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 107, SEQ ID NO: 109, SEQ ID NO: 111, SEQ ID NO: 115, SEQ ID NO: 116, SEQ ID NO: 120, SEQ ID NO: 122, SEQ ID NO: 123, SEQ ID NO: 124, Sequence SEQ ID NO: 125, SEQ ID NO: 126, SEQ ID NO: 128, SEQ ID NO: 130, SEQ ID NO: 131, SEQ ID NO: 135, SEQ ID NO: 151, SEQ ID NO
  • a DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy characterized by having a continuous DNA base sequence of 1.
  • DNA oligomers for predicting that there is a risk of side effects are SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 50, SEQ ID NO: 51, SEQ ID NO: 54, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 63, SEQ ID NO: 67, SEQ ID NO: 74, SEQ ID NO: 82, SEQ ID NO: 85, SEQ ID NO: 88, SEQ ID NO: 97, SEQ ID NO: 172, or SEQ ID NO: 173
  • a DNA oligomer for predicting the onset of side effects in radiation therapy comprising a 121-base base and a continuous DNA base sequence of at least 10-241.
  • a DNA oligomer for predicting the presence of a sequence SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 43 SEQ ID NO: 44, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 56, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 64, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 70, SEQ ID NO: 71, SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 75, SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 80, SEQ ID NO: 86, SEQ ID NO: 89, SEQ ID NO: 91, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 98,
  • a DNA oligomer for predicting the onset of side effects in radiation therapy comprising: [13] Determining whether a specific base in a DNA base sequence is a risk allele or a non-risk allele may cause side effects at an early stage from the start of radiation therapy for prostate cancer DNA oligomers for predicting the sequence, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 24, SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 81, SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO: 102, SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 120, SEQ ID NO: 126, SEQ ID NO: 1 51, SEQ ID NO: 158, SEQ ID NO: 168, or SEQ ID NO: 169
  • a DNA oligomer for predicting the onset of side effects in radiation therapy comprising a DNA base sequence having
  • DNA oligomers for predicting this SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 21, SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 45 , SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 109, SEQ ID NO: 111, SEQ ID NO: 115, SEQ ID NO: 116, SEQ ID NO: 122, With respect to the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 123, SEQ ID NO: 124, SEQ ID NO: 125, SEQ ID NO: 128, SEQ ID NO: 5
  • DNA oligomers for predicting this SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 19 , SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 47, SEQ ID NO: 57, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 79, SEQ ID NO: 84, SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 102, As shown in SEQ ID NO: 107, SEQ ID NO: 130, SEQ ID NO: 131, SEQ ID NO: 135, SEQ ID NO: 164, or SEQ ID NO:
  • DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects according to [1] to [15], a DNA oligomer in which one or several bases other than the 121st base are deleted, substituted or added, or A DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy, which is a DNA oligomer having these complementary DNA base sequences.
  • the DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects according to any one of [17] [1] to [16], or the DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects It has a DNA oligomer that predicts side effects in radiation therapy, and is a DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519.
  • step (b) A step of amplifying DNA based on the DNA sample prepared in the step (a) to obtain a DNA product.
  • step (d) A step of analyzing the DNA base sequence of the DNA oligomer obtained in the step (c).
  • step (f) A step of determining whether the allele having the base verified in the step (e) is a risk allele or a non-risk allele.
  • step (g) A step of predicting a risk rate of developing a side effect due to radiation in a cancer patient scheduled to undergo the radiation therapy from the result determined in the step (f).
  • the DNA base sequence shown in any one of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing to be collated in the step (e) is a side effect in radiation therapy for breast cancer.
  • SEQ ID NO: 3 For the prediction of side effects in prostate cancer radiotherapy using the DNA base sequence of the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 3, No. 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 10, Sequence number 11, sequence number 12, sequence number 14, sequence number 16, sequence number 18, sequence number 18, sequence number 21, sequence number 21, sequence number 24, sequence number 25, sequence number 28, sequence number 33, sequence number 35, sequence SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 45, SEQ ID NO: 47, SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 55, SEQ ID NO: 57, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 69, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 79, SEQ ID NO: 81, SEQ ID NO: 84, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO
  • SEQ ID NO: 2 SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20, SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23, SEQ ID NO: 24, SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32, SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 44 , SEQ ID NO: 45, SEQ ID NO: 48, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 56, SEQ ID NO: 59, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 61, SEQ ID NO: 64, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 66, SEQ ID NO: 70, SEQ ID NO: 71, SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 73,
  • SEQ ID NO: 3 SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 30 SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 41, SEQ ID NO: 42, SEQ ID NO: 46, SEQ ID NO: 47, SEQ ID NO: 50, SEQ ID NO: 51, SEQ ID NO: 54, SEQ ID NO: 57 , SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 63, SEQ ID NO: No.
  • SEQ ID NO: 7 SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 32, SEQ ID NO: 44, Sequence number 45, Sequence number 59, Sequence number 61, Sequence number 65, Sequence number 73, Sequence number 78, Sequence number 90, Sequence number 91, Sequence number 94, Sequence number 98, Sequence number 106, Sequence number 11
  • SEQ ID NO: 113 Use the DNA base sequence of the DNA oligomer shown in 162, SEQ ID NO: 163, SEQ ID NO: 165, or SEQ ID NO: 167 to predict the onset of side effects in the stage 3 months from the start of radiation therapy for breast cancer.
  • SEQ ID NO: 49 Use the DNA base sequence of the DNA oligomer shown in 151, SEQ ID NO: 159, SEQ ID NO: 162, or SEQ ID NO: 170 to predict the onset of side effects at the stage of 6 months from the start of radiation therapy for breast cancer.
  • SEQ ID NO: 156 or arrangement Using the DNA base sequence of the DNA oligomer shown in No. 160 and predicting the onset of side effects at the stage 6 months from the start of radiation therapy for prostate cancer, see SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 9, Sequence SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39,
  • SNP single nucleotide polymorphism
  • DNA oligomer set (PCR primer) of the present invention DNA containing a specific single nucleotide polymorphism (SNP) based on a DNA sample prepared by a subject such as a cancer patient can be obtained. Amplification can be performed easily. Furthermore, if the DNA oligomer (extension primer) of the present invention is used, the base species of the specific SNP site can be easily determined. Therefore, it is possible to facilitate a method for predicting the risk rate of developing side effects from radiation therapy.
  • SNP single nucleotide polymorphism
  • the method for predicting the occurrence of side effects according to the present invention, it is possible to predict the risk rate of developing side effects due to radiation from SNP information contained in DNA samples collected from cancer patients who are scheduled to undergo radiation therapy. it can. In other words, it is possible to perform tailor-made radiation therapy.
  • the onset of radiation therapy Early (less than 3 months), late 3 months, risk of developing side effects at each stage of late 6 months
  • the rate can be predicted in advance.
  • FIG. 1 is a flow chart for explaining a method for predicting the onset of side effects in radiation therapy of the present invention.
  • the “DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy” in the present invention comprises the 121st base in the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention.
  • the length of the DNA base sequence is not particularly limited as long as it has 10 to 241 consecutive DNA base sequences including the 121st base. That is, as described above, it may be a DNA oligomer having 10 bases or more and 241 bases or less, or may be one having more than 241 bases.
  • a DNA oligomer longer than this for example, a continuous 250 base DNA oligomer containing the 121st base, or a 500 base DNA oligomer
  • SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention.
  • the 121st base is a risk allele.
  • “Risk allele” refers to the base in the allele (allele) of a person who is likely to develop side effects (disorders) after radiation treatment at a specific SNP site, and the presence of those who are less likely to develop side effects. An allele possessed by a base that is different from the base in the allele that is likely to cause the side effect. Therefore, if this risk allele can be recognized by performing SNP typing, it is possible to predict the risk of developing side effects due to radiation therapy.
  • the position in the DNA oligomer is not limited as long as it can be recognized as the 121st base specified in the present invention.
  • the risk allele SNP site can be located in the middle of the DNA base sequence, and can also be located at the 5 'end or 3' end.
  • an SNP site corresponding to the risk allele In the present invention an allele that is a base different from the risk allele present in FIG. [0021]
  • the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 determines whether a specific base in the DNA base sequence is a risk allele or a non-risk allele By doing so, it can be used to predict that side effects may occur in cancer radiotherapy. In particular, it can be suitably used in the embodiments described in (1) to (14) below.
  • SEQ ID NO: 1 Regarding the prediction of the occurrence of side effects in radiation therapy for breast cancer, SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 19, Sequence number 20, Sequence number 26, Sequence number 27, Sequence number 30, Sequence number 32, Sequence number 44, Sequence number 45, Sequence number 48, Sequence number 49, Sequence number 50, Sequence number 51, Sequence number 53, Sequence SEQ ID NO: 54, SEQ ID NO: 58, SEQ ID NO: 59, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 61, SEQ ID NO: 62, SEQ ID NO: 63, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 67, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 74, SEQ ID NO: 77, SEQ ID NO: 78 , SEQ ID NO: 82, SEQ ID NO: 85, SEQ ID NO: 88, SEQ ID NO:
  • SEQ ID NO: 134 SEQ ID NO: 139, SEQ ID NO: 141, SEQ ID NO: 142, SEQ ID NO: 144, SEQ ID NO: 146, SEQ ID NO: 149, SEQ ID NO: 150, SEQ ID NO: 152, SEQ ID NO: 153, SEQ ID NO: 154, SEQ ID NO: 155, SEQ ID NO:
  • the DNA base sequence of the DNA oligomer represented by No. 157, SEQ ID No. 161, or Z and SEQ ID No. 171 can be preferably used.
  • SEQ ID NO: 3 For predicting the occurrence of side effects in radiation therapy for prostate cancer, SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12 , SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 21, SEQ ID NO: 24, SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, Sequence number 40, sequence number 45, sequence number 47, sequence number 48, sequence number 55, sequence number 57, sequence number 66, sequence number 69, sequence number 73, sequence number 79, sequence number 81, sequence number 84, sequence SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101, SEQ ID
  • SEQ ID NO: 5 Regarding the onset of side effects at the stage of 3 months from the start of radiation therapy for cancer, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, Sequence number 18, Sequence number 21, Sequence number 33, Sequence number 45, Sequence number 48, Sequence number 49, Sequence number 53, Sequence number 55, Sequence number 58, Sequence number 69, Sequence number 77, Sequence number 87, Sequence SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 108, SEQ ID NO: 109, SEQ ID NO: 111, SEQ ID NO: 115, SEQ ID NO: 116, SEQ ID NO: 122, SEQ ID NO: 123, SEQ ID NO: 124, SEQ ID NO: 125, Sequence SEQ ID NO: 126, SEQ ID NO: 128, SEQ ID NO: 133, SEQ ID NO: 136, SEQ ID NO
  • SEQ ID NO: 34 SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 44, SEQ ID NO: 52, SEQ ID NO: 56, SEQ ID NO: 60, SEQ ID NO: 64, SEQ ID NO: 65, SEQ ID NO: 70, SEQ ID NO: 71, SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 75, SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 80, SEQ ID NO: 86, SEQ ID NO: 89, Sequence SEQ ID NO: 91, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 98, SEQ ID NO: 105, SEQ ID NO: 114, SEQ ID NO: 118, SEQ ID NO: 121, SEQ ID NO: 129, SEQ ID NO: 134, SEQ ID NO: 141, SEQ ID NO: 144, SEQ ID NO: 146, SEQ ID NO: 149 , SEQ ID NO: 150, SEQ ID NO: 152, SEQ ID NO: 153,
  • the DNA base sequence of the DNA oligomer represented by 158, SEQ ID NO: 168, or Z and SEQ ID NO: 169 can be preferably used.
  • the DNA oligomer containing the risk allele used in the present invention should be used as a continuous DNA oligomer of 10 to 241 bases containing the 121st base (risk allele) with an appropriate length set appropriately. Can do.
  • a powerful DNA oligomer when used as a genetic marker such as a labeled probe, for example, it is preferably 20 to 200 bases in length, but 30 to 150 bases in length, or 35 to: LOO bases.
  • the length can be as long as 200 bases or more. If an appropriate length is selected, specific hybridization and hybridization can be performed. In addition, for example, a difference in electrophoretic mobility can be easily recognized, and SNP typing can be performed appropriately. On the other hand, if the number of bases is too small, nonspecific iridescence may occur, and if the number of bases is too large, a difference occurs in the electrophoretic mobility, which is not suitable.
  • the present invention analyzes whether or not there is a genetic predisposition affecting the onset of side effects in radiotherapy by analyzing the DNA oligomer described above and detecting Z. This was done to predict the risk of developing side effects.
  • the analyzed DNA base sequence is compared with any one of the DNA base sequences of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing, and is matched with the risk allele specified in the present invention, Alternatively, by confirming whether it is a non-risk allele, it is a nucleotide sequence that is likely to cause side effects to radiation (onset group), or a nucleotide sequence that is less likely to cause side effects (non-onset group). Can be determined. In other words, it can be determined that a person with a risk allele is more likely to develop side effects in radiation therapy than a person with a non-risk allele, and has a genetic predisposition!
  • the DNA oligomer according to the present invention has one base other than the 121st base.
  • a plurality of deletions, substitutions or additions may be made, or the complementary strands may be used. That is, as long as it contains the SNP site specified in the claims and sequence listing of the present invention, even if base substitution, deletion, insertion, etc. occur elsewhere, it is substantially the same or
  • a DNA oligomer having a complementary DNA base sequence is equivalent to the DNA oligomer of the present invention.
  • DNA products replicated or amplified by various polymerases such as DNA polymerase, particularly heat-resistant polymerase (for example, Taq polymerase) can be preferably used.
  • the DNA oligomer of the present invention can be suitably used for directly analyzing the DNA base sequence it has.
  • a conventionally known DNA sequencer, mass spectrometer or the like can be suitably used for direct analysis of the DNA base sequence of this DNA oligomer.
  • DNA oligomer of the present invention can be suitably used as a gene marker such as a so-called probe.
  • a genetic marker labeled with a fluorescent dye or a radioisotope is labeled at the end of the DNA base sequence or any base in the DNA base sequence
  • Probe If it is a marker gene marker, it can be easily detected by measuring fluorescence intensity and radiation dose. For example, X-ray film can be exposed to fluorescent light or exposed to radiation. It can also be easily detected.
  • a conventionally known radiation detection device, fluorescence measurement device, or the like can be suitably used.
  • the fluorescent dye is labeled as described above, it can be appropriately analyzed by a DNA sequencer.
  • radioisotopes used for labeling include radioisotopes usually used such as 32 P and 35 S.
  • the fluorescent dyes used for labeling are usually FAM TM, Yakima Yellow TM, VIC TM, TAMRA TM, RO X TM, Cy3 TM, Cy5 TM, HEX TM, TET TM, FITC, etc.
  • the fluorescent dye used can be mentioned.
  • the DNA oligomer for predicting the occurrence of side effects in the radiotherapy of the present invention is preferably a single base by directly analyzing the DNA base sequence or using the DNA oligomer as a gene marker. Polymorphism detection, that is, SNP typing can be suitably performed.
  • polymorphism is defined as a change in the base present at a frequency of 1% or more in the population.
  • the “polymorphism” in the present invention is not limited to this definition. Changes in bases of less than 1% are also included in the “polymorphism”.
  • the DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 are preferably used as a DNA oligomer set in which two DNA oligomers are sequentially set from SEQ ID NO: 174.
  • any DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing is specifically amplified. be able to.
  • the DNA oligomer with the lower sequence number corresponds to the forward primer
  • the DNA oligomer with the higher sequence number corresponds to the reverse primer.
  • the region between the sequences corresponding to these two primers is the target to be amplified by the PCR amplification reaction.
  • the DNA oligomer set shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 of the sequence listing can be suitably used particularly when performing PCR (Polymerase Chain Reaction)
  • the DNA oligomer set of the present invention is It is preferably used as a primer set for PCR amplification. Therefore, when this primer set for PCR amplification is used, a DNA oligomer having a specific DNA base sequence, that is, a specific SNP site (121st in the present invention) shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing DNA oligomers containing the base at a specific SNP site) can be amplified reliably and simply.
  • Each DNA oligomer constituting this DNA oligomer set may be one in which one or several bases are deleted, substituted or added in the DNA base sequence of the DNA oligomer. Further, DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 If necessary, insert an appropriate restriction enzyme recognition sequence (for example, a DNA oligomer of about 10 bases such as “5′-ACGTTGGATG-3 ′” (SEQ ID NO: 693)) on the 5 ′ upstream side of the DNA oligomer. It may be used in addition to. The sequence added in this way has the effect of stabilizing the amplification reaction by PCR. The base sequence to be added is not limited to this, and any sequence can be used as long as it has the same effect.
  • the 3 ′ end of the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 has a base that is a specific SNP site. Designed to be adjacent. Therefore, if such a DNA oligomer is enzymatically extended from one to several bases, the resulting DNA oligomer will have a different length depending on the polymorphism. Also, this DNA oligomer can be one in which one or several bases are deleted, substituted or added in the DNA oligomer.
  • the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692 preferably has a length of 10 to 24 bases adjacent to the risk allele on the 3 'side, and a length of 15 to 24 bases. More preferably, the length is 17 to 24 bases. This length can be appropriately changed depending on the GC content of the DNA oligomer, the conditions for hybridization, and the like.
  • DNA polymerase which is a DNA synthase
  • ddNTP dideoxynucleoside triphosphate
  • dNTP dideoxynucleoside triphosphate
  • dNTP dideoxynucleoside triphosphate
  • the number of bases to be extended is preferably designed for each SNP site so that the length is most efficiently different from the sequence before and after the polymorphic site of each SNP site! /. [0048] [4. SNP typing]
  • Methods for performing SNP typing include a method based on primer extension, a method based on hybridization, a method based on hybridization, a method based on DNA cleavage, and a method based on ligation.
  • Examples of the method based on the primer extension include the above-described single base primer one extension method (Syvanen, AC et al., Genomics, 8, 684-692 (1990)), and MA LDI-TOFZMS method (Ross) using this method.
  • Single base primer one extension method Syvanen, AC et al., Genomics, 8, 684-692 (1990)
  • MA LDI-TOFZMS method Ross
  • P. et al. Nat Biotechnol, 16, 1347— 1351 (1998)
  • Buetow KH et al., Proc Natl Acad Sci USA, 98, 581-584 (2001); SNP gene polymorphism strategy, Kenichi Matsubara 'Yoshiyuki Tsuji, Nakayama Shoten, pp. 106-117), allele-specific primer tension method (Uggozzoli, L.
  • the MALDI-TOFZMS method is particularly suitable because it allows simple and large-scale sample SNP typing simultaneously.
  • This MALDI—TOF / MS (matrix assisted laser desorption ionization time—of—flht / mass spectrometry) method can directly determine and compare the DNA base sequences of DNA products obtained from DNA samples. It is a very efficient technique.
  • the MALDI-TOFZMS method is one of the dienotyping methods for processing a large amount of samples at a high speed as described above.
  • This method is an application of SNP typing to a mass spectrometer that has been used in the field of biology and chemistry. Since the method is based on a mass spectrometer, the basic principle is to determine the base sequence by detecting the difference in the mass of the molecule by making the difference due to the polymorphism somehow correspond to the difference in the molecule.
  • the MALDI-TOFZMS method combines a mass spectrometer and a primer extension method to determine the base difference at the SNP site.
  • a cancer patient power DNA sample to be subjected to radiation therapy is extracted.
  • DNA containing a base at a site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is prepared by amplification using PCR or the like.
  • the PCR product is converted into a saddle type, and a genotyping primer (from the base from the 1st base to the 3 'base at the site corresponding to the SNP site shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing) DdNTP primer extension reaction of a primer having a complementary sequence, or a primer having a sequence complementary to the complementary strand in the case of a complementary strand of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing, Extend several bases from.
  • the PCR product used in this reaction is preferably a dienotyping primer (extension primer (SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692) in the sequence listing) that is preferably purified to remove the primer for PCR amplification.
  • a dienotyping primer extension primer (SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692) in the sequence listing) that is preferably purified to remove the primer for PCR amplification.
  • extension primer it is usually not limited to the ability to cover 10 times or more excess dienotyping primer to the PCR product.
  • Conditions for thermal cycling for performing PCR are suitably selected such that about 30 to 60% of the dienotyping primer can be extended. For example, appropriate elongation efficiency can be obtained by performing 25 times between two temperatures of 94 ° C and 37 ° C.
  • the primer extension reaction product is spotted on a MALDI plate, and then mass measurement is performed to prepare a mass spectrogram. Then, by analyzing the generated mass spectrogram, the DNA base sequence is determined, and the base at the site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention has side effects on radiation. It is possible to distinguish between cases that are likely to develop! /, Type of nucleotide sequence (onset group), and those that are unlikely to develop side effects! /, Type of nucleotide sequence (non-onset group) in a single reaction. Is possible.
  • a DNA base sequence can be directly determined using a mass spectrometer, and SNP typing can be realized in a large amount and at a high speed.
  • the DNA base sequence in the present invention can be realized. This is not the only way to decide.
  • SNP typing can be performed by a DNA sequencer using a slab gel or a multi-capillary.
  • Hybridization-based methods include, for example, TaqMan PCR (Livak, KJ et al., PCR Methods AppL, 4, 357-362 (1995); SNP gene polymorphism strategy, Kenichi Matsubara, Yoshiyuki Tsuji , Nakayama Shoten, pages 94-105).
  • TaqMan PCR Lik, KJ et al., PCR Methods AppL, 4, 357-362 (1995
  • SNP gene polymorphism strategy Kenichi Matsubara, Yoshiyuki Tsuji , Nakayama Shoten, pages 94-105.
  • a DNA oligomer (probe) for hybridizing to a DNA containing a base at a site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention selected in advance (SEQ ID NO: SEQ ID NO: 1 to the end of any DNA oligomer of SEQ ID NO: 173 or its complementary strand) is labeled with reporter fluorescence.
  • the reporter fluorescent substance is not limited to the force exemplified by the FAM and VIC described above.
  • a quencher substance is labeled at the end of the probe.
  • the quencher substance is not particularly limited as long as it is a substance that can quench the reporter fluorescence. Examples include Dabcyl, BHQ 1, BHQ2, Eclipse TM Dark Quencher, ElleQuencher TM.
  • a probe labeled with reporter fluorescence and a single quencher substance for hybridizing to DNA containing a base corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention Hybridize to DNA prepared from a cancer patient who is scheduled for radiation therapy.
  • DNA containing the base at the site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is amplified using a DNA polymerase having 5 ′ ⁇ 3 ′ exonuclease activity.
  • the reporter fluorescence label portion of the nucleotide probe labeled with the reporter fluorescence and the quencher substance is cleaved, and the reporter fluorescence is released.
  • the DNA polymerase having 5 ′ ⁇ 3 ′ exonuclease activity is not limited to this, and is capable of suitably exemplifying Taq DNA polymerase.
  • the released reporter fluorescence is then detected, and the emission of the reporter fluorescence is compared with the control.
  • the base at the site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is likely to cause side effects on radiation!
  • nucleotide sequence non-onset group
  • two types of nucleotide probes labeled with different reporter fluorescence can be used in one reaction. SNP typing is possible.
  • hybridization is, for example, allele-specific oligonucleotides.
  • a leotide (ASO: Allele Specific Oligonucleotide) hybridization method (Baner, J. et al, Nucleic Acids Res, 26, 5073-5078 (1998)) can be mentioned.
  • a DNA oligomer (gene marker) containing a base sequence that is considered to have a mutation is prepared in advance, and hybridization is performed with the DNA of the DNA sample. .
  • the efficiency of hybrid formation decreases if a mutation is present, which can be reduced by Southern blotting or a method that uses the property of quenching by intercalating a special fluorescent reagent into the hybrid gap.
  • SNP can be detected, and further, the type of the base related to SNP can be determined directly by using the detected base sequence in a DNA sequencer etc. Next, by comparing the determined base types, it has a type of base sequence (onset group) that is likely to cause side effects due to radiation! /, Or it is difficult to cause side effects! /, Type It is possible to perform SNP typing!
  • examples of the technique based on DNA cleavage include the Invader method.
  • a cancer patient power DNA sample to be subjected to radiation therapy is extracted.
  • a base sequence complementary to the 5 ′ base sequence from the base corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence table of the present invention and one base of the base
  • An allele probe is synthesized that does not hybridize with the 3 'base sequence from the 3' base but has a base sequence (flap) complementary to a part of the base sequence of the invader probe described later.
  • the base corresponding to the SNP site (arbitrary base) represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is the 3 ′ end, and one base 3 ′ of the base corresponding to the SNP site An invader probe having a sequence complementary to the base sequence on the 3 'side from the base on the side is synthesized.
  • these allele probes and invader probes are hybridized to the vertical DNA in the DNA sample.
  • the nucleotide corresponding to the base corresponding to the SNP site of the DNA base sequence represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is used.
  • the base of the reader probe (arbitrary base) enters between the vertical DNA and the allele probe.
  • Cleavase registered trademark
  • an enzyme having an endonuclease action that recognizes this invasion site and cleaves between the base of the allele probe corresponding to the site and the base on the one base side, the allele The flap part of the probe is cut and released.
  • the released flap is hybridized with a fluorescence resonance energy transfer (FRET) probe having a sequence complementary thereto and labeled with reporter fluorescence and a tenant substance.
  • FRET fluorescence resonance energy transfer
  • On the side of the FRET probe it has a base sequence that can be complementarily bound by itself. And on the 3 ′ side, it has a sequence complementary to the flap as described above.
  • reporter fluorescence is labeled at the end, and a quencher substance is labeled on the end side.
  • the reporter fluorescence of the probe enters the labeled complementary binding site, thereby generating a structure recognized by Cleavase (registered trademark).
  • the reporter fluorescence released by cleavage of the reporter fluorescent labeling moiety by Cleavase is measured, and the intensity of the measured fluorescence is compared, thereby making it possible to cause side effects due to radiation.
  • SNP typing that has a sequence (onset group) or is less likely to cause side effects! /, Or has a type base sequence (non-onset group)! /
  • DNA polymerase that does not have 3 'exonuclease activity forms circular single-stranded DNA as a cage, and synthesizes DNA over many turns while moving on it By doing so, it will synthesize long, complementary strand DNA.
  • alleles are identified by determining whether DNA is amplified by the RCA method.
  • the SNP set at the end of the linear DNA oligomer and the 5 'end in which the DNA oligomer that is the type of synthesis by DNA polymerase is linearized and the genomic DNA is the type of ligation reaction.
  • the DNA oligomer is not ligated, it will not become circular single-stranded DNA, and the RCA reaction will not proceed.
  • a DNA base having a base strength of 10 to 20 bases around the SNP site (121st base) shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 of the present invention A sequence is selected in advance. Then, the end of a 10-20 base DNA oligomer 5 ′ upstream of the SNP site is bound to the 3 ′ end of a single-stranded probe having a special sequence that serves as a knockbone. Then, the 3 ′ end of the DNA oligomer 3 ′ downstream of the SNP site is bound to the end of the single-stranded probe that becomes the knock bone.
  • the DNA base sequence upstream of the SNP site used at this time matches the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692.
  • the primer that serves as a scaffold for DNA polymerase when synthesizing DNA is RCA primers that have a DNA base sequence complementary to the backbone probe.
  • such a padlock probe can be a probe whose SNP site becomes the 3 'end when circular. That is, if the base of this SNP site is complementary to a DNA sample (genomic DNA) prepared by a cancer patient who is planning to perform radiation therapy, a single-stranded circular DNA is formed by a ligation reaction. Since it becomes a probe, the DNA polymerase is long with the circular single-stranded DNA as a cage as described above! Synthesize complementary strand DNA.
  • the SNP site bases are not complementary to the hybridizing genomic DNA!
  • the ligation reaction does not occur and the circular single-stranded DNA cannot be synthesized, and thus long complementary DNA cannot be synthesized. Therefore, whether or not a long complementary strand DNA is present can be easily determined by simply confirming by electrophoresis etc. whether or not it has the same base as the SNP site. There is an advantage in that it can be confirmed.
  • a primer having a DNA base sequence complementary to the complementary DNA synthesized by the DNA polymerase that is, the same DNA base sequence as the circular single-stranded DNA, in the DNA synthesis reaction system described above ( (Branching primer) is also more suitable because it can be synthesized with a higher molecular weight since the DNA to be synthesized can have a higher molecular weight.
  • PCR-S 3 ⁇ 4CP single-stranded conformation polymorphism
  • This method is particularly suitable for screening a large number of DNA samples because it has advantages such as relatively simple operation and a small amount of test sample.
  • the principle is as follows. When a double-stranded DNA fragment is dissociated into single strands, each strand forms its own higher order structure that depends on its base sequence. When this dissociated DNA strand is electrophoresed in a polyacrylamide gel that does not contain a denaturing agent, complementary single-stranded DNA of the same strand length moves to a different position depending on the difference in each higher-order structure. . Even when a single base is substituted, the higher-order structure of this single-stranded DNA changes, and shows different mobility compared to polyacrylamide gel electrophoresis. Therefore, if the mobility by electrophoresis in the case where the bases of the SNP sites are different, the single-stranded DNA can be SNP-typed by detecting the change in mobility.
  • DNA containing a base at a site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention is amplified by PCR or the like.
  • PCR reaction conditions are, for example, by performing 30 cycles of heat denaturation at 94 ° C for 40 seconds, annealing at 50 ° C for 1 minute, and extension reaction at 72 ° C for 2 minutes.
  • the present invention is not limited to this, and the conditions can be changed as appropriate.
  • the PCR product can be labeled by using a primer labeled with, for example.
  • PCR products can be labeled by adding a substrate base labeled with a radioisotope, fluorescent dye, or piotin to the PCR reaction solution and performing PCR.
  • labeling can also be performed by adding a substrate base labeled with a radioisotope, a fluorescent dye, piotin, or the like to the PCR product fragment using a talenou enzyme or the like after the PCR reaction.
  • a primer used here it is preferable to use a DNA oligomer set comprising DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 in the sequence listing.
  • the labeled PCR product fragments thus obtained are denatured by applying heat or the like, and electrophoresis is performed using a polyacrylamide gel containing no denaturing agent such as urea. At this time, by adding an appropriate amount (about 5 to 10%) of glycerol to the polyacrylamide gel, the conditions for separating the PCR product fragments can be improved. Electrophoretic conditions vary depending on the properties of each labeled PCR product, but are usually carried out at room temperature (20-25 ° C), and optimal transfer at temperatures up to 4-30 ° C when favorable separation cannot be obtained. The temperature that gives the degree is examined.
  • the mobility of the labeled PCR product is analyzed by detecting the signal with autoradiography using X-ray film or a scanner that detects fluorescence. If a band with a difference in mobility of the labeled PCR product is detected, this band is directly excised by gel force, re-amplified by PCR, and directly DNA sequenced to detect the presence of the mutation and the base. The type can be confirmed. In addition, if the difference in the mobility of the labeled PCR product depending on the SNP site base species is known, SNP typing can be easily performed by comparing this difference.
  • SNP typing methods used in the present invention include, for example, a method using restriction fragment length polymorphism (RFLP) and a PCR-RFLP method.
  • RFLP restriction fragment length polymorphism
  • a cancer patient power DNA sample to be subjected to radiation therapy is extracted.
  • the recognition site of the restriction enzyme is changed by substitution of the base with SNP.
  • the length of the restriction enzyme cleavage fragment changes. Therefore, SNP can be determined by comparing the size of the resulting DNA fragment between the onset group and the non-onset group. That is, a DNA sample containing this mutation is amplified by PCR and treated with each restriction enzyme, so that these mutations can be detected as a difference in mobility of bands after electrophoresis.
  • Southern blotting is performed using a probe containing a DNA oligomer represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention. Also, the presence or absence of mutation can be detected.
  • restriction enzyme used here can be appropriately selected according to each mutation.
  • RNA prepared from a cancer patient who is scheduled to undergo radiation therapy is converted to cDNA using reverse transcriptase, which is then cleaved with restriction enzymes and then subjected to Southern blotting. Therefore, it can be determined.
  • SNP typing can be performed with a sequence (non-onset group)! /.
  • the DNA oligomer having the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention and the information on the DNA base sequence are determined by directly decoding the DNA base sequence of genomic DNA.
  • it can be synthesized by a DNA synthesizer or the like and used as a probe for a DNA chip.
  • a preferred example of using the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention as a probe for a DNA chip is a DNA chip for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy. it can.
  • the DNA chip in the present invention is a DNA oligomer having a DNA base sequence represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing to be detected (SNP site probe) ) Are aligned (arrayed) on a substrate and fixed. Then, hybridization is performed with target DNA or target RNA fluorescently labeled on the substrate, and the fluorescent signal on the DNA probe is detected.
  • SNP site probe SNP site probe
  • a DNA oligomer fixed on a glass substrate becomes a probe
  • a labeled DNA in a solution becomes a target. Therefore, the DNA oligomer fixed on the glass substrate is used as a DNA chip probe.
  • Affymetrix method that synthesizes DNA on the glass surface
  • Stanford method that places cDNA on the glass surface. It is preferable to use the Affymetrix system for SN P typing! /, But! /, But the present invention is not limited to this, and the Stanford system can also be used.
  • the Affymetrix method combines photolithographic technology and photoirradiation chemical synthesis to synthesize a 20-25 bp DNA oligomer having SNP sites shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 on a glass substrate.
  • a DNA chip on which DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention are immobilized can be prepared.
  • fluorescently labeled cRNA is synthesized by in vitro transcription using the cDNA derived from the sample-derived DNA or cDNA synthesized by reverse transcription from the sample-derived RNA as a saddle, and the DNA chip probe according to the present invention is stringent.
  • the DNA chip probe fixed to the glass substrate is capable of detecting the base DNA polymorphism at the site corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing. If it is, it will not be restrict
  • the length of the probe for a DNA chip to be bonded to the substrate is usually preferably 10 to 100 bp, more preferably 10 to 50 bp, and more preferably 15 to 25 bp. Further preferred.
  • the reaction solution and reaction conditions of the hybridization in SNP typing using the DNA chip can be varied depending on various factors such as the length of the nucleotide probe immobilized on the substrate. Alternatively, it can be determined based on the melting temperature (Tm) of the target DNA that binds to the DNA chip probe. For example, as washing conditions after hybridization, stringent conditions of about “1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 37 ° C.” can be mentioned.
  • Tm melting temperature
  • stringent conditions of about “1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 37 ° C.”
  • the complementary strand that is immobilized on the DNA chip and hybridizes with the DNA chip probe is preferably one that maintains the target DNA and the hybridized state even when washed under such conditions.
  • stringent conditions are about ⁇ 0.5 X SSC, 0.1% SDS, 42 ° C '', and more stringent conditions are ⁇ 0.1 X SSC, 0.1%
  • the cleaning conditions are about “SDS, 65 ° C”.
  • the salt concentration such as NaCl and KC1 and the temperature conditions.
  • the salt concentration is 3M or less, 2.5M or less, 2M or less, 1.5M or less, more preferably 1M or less, 0.75M or less, 0.5M or less, or even 0, which is a severe stringent condition.
  • a salt concentration power of 25 M or less and 0.1 M or less can be appropriately selected.
  • the temperature condition it is possible to appropriately select at least about 15 ° C, about 20 ° C, about 25 ° C, and about 30 ° C as the temperature condition. Can be appropriately selected from the following conditions: 35 ° C or higher, 40 ° C or higher, 45 ° C or higher, 50 ° C or higher, 60 ° C or higher, 70 ° C or higher, and in some cases 80 ° C or higher .
  • a DNA oligomer having at least lObp containing a base corresponding to the SNP site represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention or a DNA oligomer complementary thereto are: It can be used as a probe (including a substrate on which the probe is immobilized) or a primer in SNP typing.
  • DNA oligomers represented by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention are used as primers.
  • the length is usually 10 to 241 bp, preferably 15 to 200 bp, more preferably 15 to: L00 bp, more preferably 17 to 50 bp, and most preferably 20 to 30 bp.
  • DNA oligomers are used as primers, it is preferable to use a DNA oligomer set in which the DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 are sequentially used as two sets of SEQ ID NO: 174, but the present invention is limited to this.
  • the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing is appropriately prepared. It is also possible to use it. It is also possible to create DNA oligomer sets using sequences outside these sequences on the human chromosome.
  • the probe is an SNP site (121) shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention.
  • SNP site (121) shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing of the present invention.
  • the probe usually has a length of at least 15 bp.
  • the DNA oligomer of the present invention can be suitably produced by, for example, a commercially available DNA synthesizer, but is not limited thereto.
  • Vector strength having the DNA base sequence transformed and introduced into Escherichia coli, etc. It may be prepared as a double-stranded DNA fragment that can be obtained by treatment with restriction enzymes.
  • X-rays, ⁇ -rays, heavy-particle beams, and electron beams can be preferably used as radiation that can be used for radiation therapy, but are not limited to these, such as proton beams and neutron beams. Radiation can also be used.
  • Information for SNP typing includes information on each gene described in NCBI dbSNP (http: //www.ncbi.nlm.nih.go v / SNP /), various literature information, etc., and JSNP DB Information on SNPs was obtained from information registered at (http://snp.ims.u-tokyo.ac.jp/).
  • FIG. 1 is a flowchart for explaining a method for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy according to the present invention.
  • the method for predicting the occurrence of side effects in radiotherapy includes the following steps (a) to (g), wherein the determination is also made using the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 173 in SEQ ID NO: 1 in the sequence listing. It is a waste.
  • Step Sl A step of preparing a DNA sample based on a sample collected from cancer patients scheduled to undergo radiation therapy
  • Step S2 A step of amplifying DNA based on the DNA sample prepared in the step (a) to obtain a DNA product
  • step S3 A step of performing an extension reaction using the DNA product amplified in the step (b) as a saddle type to obtain a DNA oligomer as an extension product (step S3),
  • step S4 analyzing the DNA base sequence of the DNA oligomer obtained in the step (c) (step S4),
  • step S5 The base corresponding to the 121st position in the DNA base sequence of the DNA oligomer analyzed in the step (d) and the 121st base of the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing The process of matching with the base (step S5),
  • step S6 a step of determining whether the allele having the base verified in the step (e) is a risk allele or a non-risk allele
  • step S7 A step of predicting an onset risk rate of side effects due to radiation in a cancer patient scheduled to undergo the radiation therapy from the result determined in the step (f) (step S7).
  • a DNA sample is prepared based on a sample collected from a cancer patient who is scheduled to undergo radiation therapy (Step Sl).
  • blood it is preferable to use blood as the collected sample, but it is not limited to this.
  • Any sample can be used as long as it contains DNA, such as a tissue excised by, for example. If a powerful sample is used, a DNA sample such as chromosomal DNA can be suitably extracted.
  • an automatic DNA extraction device that automatically extracts DNA from the blood is used. It is preferred to use. In addition to saving time for extracting large amounts of sample DNA, it is easy to operate. In addition, when using a powerful automatic DNA extraction device, it is desirable to extract DNA using the standard protocol attached to the device, but it is possible to modify the protocol as appropriate.
  • a DNA system may be extracted using a simple system or kit sold by each company.
  • DNA sample extraction methods include phenol-chloroform treatment and ethanol precipitation (BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Davis et al, P.16-21). It is possible.
  • purification of total RNA from samples collected from patients with strong cancer (Guanidine isothiocyanate cesium monochloride ultracentrifugation method; BASIC METHODS IN MOLECULAR BI OLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P .322- 328), poly A + —RNA isolation (BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P.344-349) and cDN A synthesis (First—Strand) Synthesis of cDNA; BASIC METH ODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P.515-522; ibid. P.136-137).
  • step (b) DNA is amplified based on the DNA sample in the above step to obtain a DNA product (step S2).
  • the PCR method can be suitably used.
  • primers used for PCR for example, it is preferable to use a primer set for PCR amplification in which a set of DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 is sequentially set as SEQ ID NO: 174.
  • PCR reaction conditions for example, after heat denaturation at 94 ° C for 2 minutes, 94 ° C for 40 seconds.
  • DNA amplification may be performed using DNA polymerase!
  • step (c) the DNA product amplified in the above step is subjected to an extension reaction using a cage shape to obtain a DNA oligomer as an extension product (step S3).
  • an extension primer for analyzing the DNA base sequence used at this time DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692 in the sequence listing of the present invention are preferably used.
  • the conditions for the extension reaction can be set and changed as appropriate, but it is preferable that the conditions are specified by each extension kit.
  • step S4 the DNA base sequence of the DNA oligomer subjected to the extension reaction in the above step is analyzed.
  • DNA base sequence analysis that is, SNP typing can be performed using the appropriate method described above.
  • step (e) the base corresponding to the 121st position in the DNA base sequence of the DNA oligomer analyzed in the above step, and SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the sequence listing.
  • the 121st base of the DNA base sequence shown is collated (step S5).
  • step S6 it is determined whether the allele having the base verified in the above step is a risk allele or a non-risk allele (step S6).
  • the DNA product corresponding to the base at position 21 in the DNA base sequence shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 in the base position is a risk allele or a non-risk allele
  • the DNA oligomer, gene marker, DNA for predicting the occurrence of side effects according to the present invention
  • the oligomer set and the method for predicting the onset of side effects in radiation therapy have been described in detail, the present invention should not be construed as being limited to these contents, and can be widely changed within the scope of the present invention. What can be done with modification is a matter of course! /.
  • the gene marker for predicting the occurrence of side effects in the radiotherapy of the present invention includes a fluorescent dye, a radioactive isotope, a fluorescent dye luminescent enzyme, or a protein having an ability to bind to a specific substance It can be set as the structure which added at least one.
  • a gene marker for predicting the occurrence of side effects in radiation therapy of the present invention includes a DNA oligomer having a DNA base sequence complementary to a risk allele and a DNA having a DNA base sequence complementary to a non-risk allele Oligomers can be configured to be added using different types of fluorescent dyes, radioactive isotopes, enzymes for emitting fluorescent dyes, or proteins having the ability to bind to specific substances, respectively.
  • the detection DNA oligomer of the present invention is the DNA oligomer of any one of [1] to [16] or [20] defined as aspects of the invention, or the DNA oligomer of [18] or [19] A configuration in which a fluorescent dye, a radioisotope, a fluorescent dye luminescent enzyme, or a protein capable of binding to a specific substance is added to at least one DNA oligomer in the DNA oligomer set.
  • the detection DNA oligomer of the present invention includes a DNA oligomer having a DNA base sequence complementary to a risk allele and a DNA oligomer having a DNA base sequence complementary to a non-risk allele. May be added using different types of fluorescent dyes, radioactive isotopes, enzymes for emitting fluorescent dyes, or proteins having the ability to bind to specific substances.
  • the method for predicting the occurrence of side effects in radiotherapy of the present invention is carried out using the DNA oligomers shown in SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692 in the sequence listing, and the following (a) to (e) It may be a method for predicting the onset of side effects in radiation therapy, comprising the steps of: (A) The power of cancer patients scheduled to undergo radiation therapy A step of preparing a DNA sample based on the collected sample, (b) The DNA sample prepared in the step (a), and the sequence table And (b) the step of (b) carrying out the noise hybridization with a DNA oligomer having the DNA base sequence shown in any one of SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692.
  • step (D) Analyzing the ddNTP base of the DNA oligomer that has been extended allele-specifically by one base in step (c) above.
  • step (E) a step of comparing the base of ddNTP analyzed in the step (d) with the 121st base of the DNA oligomer shown in any one of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 157 in the sequence listing: f) a step of determining whether the allele having the base verified in the step (e) is a risk allele or a non-risk allele; (g) from the result determined in the step (f) And predicting the risk of developing side effects due to radiation in cancer patients who are scheduled to undergo the radiation therapy.
  • the ddNTP may be added with a fluorescent dye, a radioisotope, an enzyme for emitting a fluorescent dye, or a protein capable of binding to a specific substance.
  • SNP typing was performed on groups classified by the determination of the occurrence of side effects due to radiation.
  • the subjects of the study were 218 breast cancer patients who received informed consent to conduct the study by December 2001, 2003 and received blood and medical information.
  • 57 patients and 71 prostate cancer patients were first analyzed for clinical data and stratified for polymorphism frequency analysis.
  • the incidence of side effects (disorders) due to radiation was targeted to skin disorders in breast cancer patients, bowel disorders (diarrhea) in cervical cancer patients, and bladder 'urethral disorders (dysuria) in prostate cancer patients. Based on the judgment results for each disorder, the starting power of radiation therapy was less than 3 months (early stage), 3 months (late 3 months stage), and 6 months (late 6 months stage). .
  • Tables 1 through 18 provide informed information about collecting DNA and performing SNP typing. For breast cancer patients, cervical cancer patients, and prostate cancer patients who have received consent, the early stage of starting radiation therapy, the stage of late 3 months (not described for cervical cancer), This is a table showing statistically the allele frequency at the 6-month stage. Each table shows the type of cancer, the time of confirmation of side effects (disorders) due to radiation therapy, and the site to be investigated.
  • Tables 1 to 3 show the allele frequencies of breast cancer patients in the early stage from the start of radiation therapy for breast cancer
  • Tables 4 and 5 show the breast cancer patient groups in the stage of 3 months from the start of radiation therapy.
  • Tables 6 and 7 show the allele frequencies of breast cancer patients at the stage of 6 months from the start of breast cancer radiation treatment
  • Tables 8 to 11 show the early allele frequencies of cervical cancer from the start of radiation therapy.
  • Table 12 shows the allele frequency of the cervical cancer patient group at the stage, and Table 12 shows the allele frequency of the cervical cancer patient group at the stage of 6 months from the start of radiation therapy for cervical cancer.
  • Figure 14 shows the allele frequency of prostate cancer patients at the early stage of prostate cancer.
  • Table 15 and Table 16 show the stage of 3 months from the start of radiation therapy for prostate cancer.
  • the allele frequencies of kicking prostate cancer patients, and Table 17 and Table 18 represent each prostate cancer patient group allele frequency with the at stage of late 6 months radiotherapy initiation of prostate cancer.
  • CZC and GZG are homozygotes of C (cytosine) binding (cytosine) and G (guanine) and G (guanine) in alleles
  • CZG is C ( Cytosine) and G (guanine) heterozygote It indicates that the disorder was observed in less than 3 months, the latter 3 months indicate that the disorder was observed within 6 months after 3 months after the radiation treatment, and the latter 6 months indicate that the radiation therapy It indicates that the disorder was observed after 6 months.
  • the related risk alleles may be reversed.
  • the ability of the CZC allele to be a risk allele at the early stage after radiation therapy for breast cancer is TZT at the stage 6 months after radiation treatment for prostate cancer shown in Table 17.
  • Alleles and TZC alleles are risk alleles. At present, it is difficult to explain the occurrence of such a phenomenon because the functional analysis of the gene has been completed, but it is difficult to explain this phenomenon when statistical analysis is performed.
  • the degree of side effects is GradeO, 1, 2, 3, 4, indicating that the higher the number, the more severe it is. Judgments for side effects in the early stage were in accordance with the international criteria N ClZ CTC (National and ancer Institute, ommon Toxicity and riteria). In addition, the determination of side effects (disorders) at the stage of 3 months and 6 months from the start of radiotherapy was in accordance with RTOG (Radiation Therapy Oncology Group), which is an international criterion. From the acquired clinical information, select items according to the type of cancer.
  • Relative risk also called risk ratio or risk factor
  • risk factor has a factor (it is radiosensitive (ie, there is a risk of developing side effects) as determined by each risk allele or a combination of these risk alleles)
  • the risk of developing side effects is determined to have no factors (mostly no side effects and radiation insensitivity (ie, no risk of developing side effects)). Divided by the risk of developing side effects. This relative risk indicates that the higher the value, the higher the risk of developing side effects.
  • Column G shows the sequence number of a DNA oligomer having a risk allele for predicting the occurrence of side effects in the radiotherapy of the present invention.
  • a DNA oligomer set consisting of one set of SEQ ID NOs shown in the H and I columns at each SNP site can be used as a primer set for PCR amplification.
  • Extension primer Shows the sequence number of the DNA oligomer (extension primer) used when SNP typing was performed.
  • extension primers of the present invention those having the DNA base sequence of the strand in the same direction as the DNA oligomer shown in SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173 and the DNA base sequence of the strand in the opposite direction are included. There is something to have.
  • the base complementary to the base added downstream of this is the 121st base (risk allele) shown in any of SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 173. The I win.
  • SNP ID: rs 1171097 shown at the top of Table 1 is breast cancer at an early stage (less than 3 months) after starting radiation therapy.
  • the patient's skin has been confirmed to be damaged, and its genotype is CZC homozygote (shown as “genotype” in column A in Tables 1 to 18; the same shall apply hereinafter). It shows that there is.
  • GZG homozygotes and CZG heterozygotes are non-risk alleles (column A).
  • the SEQ ID No. describing the DNA base sequence of the DNA oligomer having a strong risk allele is SEQ ID NO: 17 (column G), and PCR amplification used for the amplification of the strong DNA base sequence Among the primers, the forward primer has the SEQ ID NO: 206 (H column) and the reverse primer has the SEQ ID NO: 207 (I column). And the extension used to determine the DNA base of this SNP site (risk allele) The SEQ ID NO of the primer is SEQ ID NO: 487 (J column).
  • n 107 Fisher (p value) Relative risk [95% confidence interval]
  • rs227261B : Grade 2,3 Grade 0,1
  • SNP typing includes DNA extraction, DNA amplification, and determination of DNA base sequence by mass spectrometry. And done. Below, SNP typing is explained in detail.
  • cancer patients are categorized by cancer type, and the starting power of radiation therapy is less than 3 months (early stage), 3 months (late 3 months stage), 6 months (late 6 months stage)
  • the starting power of radiation therapy is less than 3 months (early stage), 3 months (late 3 months stage), 6 months (late 6 months stage)
  • We observed the occurrence of side effects in, and evaluated the severity see Tables 1 to 18).
  • disorders due to side effects that occur in less than 3 months from the start of treatment are referred to as early disorders, and disorders due to side effects that occur after 3 months from the start of treatment are referred to as late disorders.
  • Each forward primer, reverse primer, and extension primer used for SNP typing are based on the information on SNP described in [3] above, primer 3.0 (h ttp: // frodo.wi.mit.edu/ cgi-bin / primer J / pnmer3_www.cgi) and selected an appropriate 3 ⁇ 4a range.
  • Each primer was synthesized by consigning to SIGMA GENOSYS (Sigma Aldrich Japan) or PROLIGO (Proligo Japan).
  • SNP typing was performed by the MALDI-TOFZMS method.
  • a MassARRAY system manufactured by SEQUENOM was used as a mass spectrometer.
  • SNP typing by the MALDI-TOFZMS method is performed according to the following procedures (1) to (3).
  • a DNA oligomer appropriately selected from the forward primer and reverse primer shown in SEQ ID NO: 174 to SEQ ID NO: 519 to amplify the target nucleotide sequence using a DNA sample PCR reaction was performed using the set.
  • PCR reaction conditions are as follows. 0.5 1 of 10 13 ⁇ 4 3 & 1: Ding & Buffer, 0.21 MgCl, 0.04 ⁇ 1 of 25 mM dNTP, 1.1 of each 1 ⁇ M PCR
  • This PCR reaction solution was dispensed onto a 384 well plate, and the PCR reaction was carried out with the following program using a thermal cycler. After activation of HotStar Taq polymerase for 15 minutes at 95 ° C, (a) heat denaturation conditions of double-stranded DNA: 20 seconds at 95 ° C, (b) annealing conditions: 30 at 56 ° C Second, (c) Elongation condition: 1 minute at 72 ° C,! /, (A) to (c), 55 cycles of the reaction, and finally the extension reaction at 72 ° C for 3 minutes.
  • SAP Silicone Phosphatase reaction
  • As the SAP reaction solution add 0.117 1 111 ⁇ 5 buffer solution, 0.31 SAP solution, and 1.53 1 pure water to make the total volume 2. 0 1 SAP reaction solution. Add the PCR reaction solution after the PCR reaction, perform the reaction for 20 minutes at 37 ° C, and then perform the reaction for 5 minutes at 85 ° C.
  • PCR was performed using the extension primers shown in SEQ ID NO: 520 to SEQ ID NO: 692. This is to determine the base type of the DNA that will be the SNP.
  • the composition of the reaction solution was 0.21 dNTP / ddNTP mix, 0.054 ⁇ 1 100 ⁇ ⁇ extension primer, 0.018 1 Termo Sequenase, and 1.728 1 pure water.
  • a PCR product for analyzing SNPs was obtained.
  • SpectroCREAN 3mg which is demineralized resin per 9ml of reaction solution and pure water 16 1 was added and incubated at room temperature for 10 minutes to desalt the reaction solution.
  • the clinical application of the DNA oligomer, gene marker, DNA oligomer set and method for predicting the onset of side effects according to the present invention is as follows.
  • the power of cancer patients who are going to receive radiation therapy is also informed about DNA diagnosis.
  • sample force such as blood collected from patient force is extracted, amplified and analyzed using a DNA oligomer set.
  • SNP typing is performed using the ability to determine the base at the SNP site and match it with the DNA base sequence of the DNA oligomer according to the present invention, or a genetic marker subjected to fluorescent labeling or the like. Based on the appropriate risk allele or combination of risk alleles described above, the risk rate for the development of side effects after radiation therapy for this cancer patient is calculated.
  • the radiation therapy doctor in charge of the cancer patient uses the calculated risk factor as an index to develop a treatment plan, such as maintaining QOL by energizing the post-treatment management (car e) plan for that cancer patient. Can be done appropriately. In addition, it is possible to take measures such as avoiding patients who have a high risk of developing side effects in clinical studies with increased doses.

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Abstract

 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルであるかを判定することで、がんの放射線治療において副作用が発症する虞があることを予測することができるDNAオリゴマー、遺伝子マーカー、DNAオリゴマーセット(PCR用プライマーセット)とDNAオリゴマー(伸長用プライマー)、および放射線治療における副作用発症予測方法を提供する。前記放射線治療における副作用発症予測用DNAオリゴマーは、配列表の配列番号1から配列番号173のうちのいずれかに示されるDNA塩基配列について、121番目の塩基を含む、少なくとも10~241の連続したDNA塩基配列を有する。

Description

明 細 書
放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー、遺伝子マーカ 一、 DNAオリゴマーセット、および副作用発症予測方法
技術分野
[0001] 本発明は、遺伝子の一塩基多型を判定の指標とした放射線治療における副作用 発症予測用 DNAオリゴマー、当該放射線治療における副作用発症予測用 DNAォ リゴマーを用いた副作用発症予測用遺伝子マーカー、当該放射線治療における副 作用発症予測用 DNAオリゴマーを得て SNPの判定を行うための DNAオリゴマーセ ット (PCR用プライマー)と DNAオリゴマー (伸長プライマー)、当該放射線治療にお ける副作用発症予測用 DNAオリゴマーを用いた副作用発症予測方法に関する。 背景技術
[0002] 放射線治療は、がんに対する有効な局所療法の一つであるが、外科手術と異なり、 病巣部を切除せずに治療することが可能であるため、身体機能や形態の温存の観 点から優れた治療方法であるということができる。すなわち、外科手術のように身体に メスを入れないことから、患者の精神的な負担も軽ぐ手術後の社会復帰も容易であ るので、患者の QOL (Quality of Life)を高めることができるという利点もあって、 今後、大いに発展が望まれる治療方法である。
[0003] また、放射線治療は患者への負担も軽ぐ合併症を有する患者や高齢者にも適応 することができる利点もある。さらに、近年では、 CTや MRIなどの画像情報をもとに 病巣の位置,形状 ·大きさを 3次元座標上で正確に決定し、病巣へ線量を集中できる 定位 (的)放射線治療の技術も確立されて ヽる。
[0004] このように、放射線治療はがんの治療にぉ 、て非常に有用な治療方法であるが、 照射した放射線により皮膚に潰瘍が生じたり、腸穿孔や肺炎を合併するなどの重篤 な副作用を伴ったり、場合によっては放射線治療を中断しなければならな 、放射線 感受性の高 、がん患者が 、る。
[0005] このような放射線に対する感受性の違いは、それぞれのがん患者が有する DNA塩 基配列の相違に関連していると考えられる。このような DNA塩基配列の相違は一般 には多型 (ポリモルフィズム)と呼ばれ、以下のように分類することができる。すなわち
、(1) 1から数十塩基が欠失や挿入をしている多型 (挿入 Z欠失多型)、(2) 2塩基か ら数十塩基を 1単位とする配列が繰り返されて 、る多型 (VNTRやマイクロサテライト 多型)、そして、(3) 1個の塩基が他の塩基に置き換わっている多型(一塩基多型)、 である。
[0006] これらの中でも (3)の一塩基多型 (SNP; single nucleotide polymorphism)は、数百 塩基対から 1000塩基対に 1箇所の割合で存在していると推測され、ヒトの全ゲノム中 には 300万〜 1000万の SNPがあると考えられている。そして、この SNPが各人の顔 立ちや性格、医薬品に対する応答性などの、いわゆる"個性"に強い影響を及ぼして いると考えられている。
<参考文献 >
監修'松原謙一、榊佳之、編集'中村祐輔「ポストシークェンスのゲノム科学(1) S NP遺伝子多型の戦略」、中山書店、 2頁および 3頁、 2000年 6月出版
[0007] 放射線に対する感受性も、 SNPをはじめとする遺伝子の DNA塩基配列の相違が 大きく影響していると考えられる。これはすなわち、放射線治療前に DNA塩基配列 を調べることにより、がん患者の放射線に対する感受性の程度を予め知ることができ れば、オーダーメイド放射線治療を実現することが可能になることを意味すると考えら れる。
し力しながら、どのような遺伝子が放射線の感受性に関与し、また、どの SNPが放 射線の感受性に影響を与えて 、るのかと 、うことに関しては、ほとんど研究が進んで いない状況であった。そのため、オーダーメイド放射線治療を具現するための指標を 設定することができな力つた。
[0008] したがって、オーダーメイド放射線治療を具現ィ匕するために、がん患者の放射線に 対する感受性の程度を予め予測することのできる放射線治療における副作用発症予 測用 DNAオリゴマー、遺伝子マーカー、 DNAオリゴマーセット(PCR用プライマー セット)と DNAオリゴマー(伸長用プライマー)、および、放射線治療における副作用 発症予測方法を提供することが望まれて!/ヽる。
発明の開示 [0009] 発明者らは、 cSNP (coding SNP)や rSNP (regulatory SNP)、 iSNP (intron SNP)を 中心に SNPタイピングを行えば、前記課題が解決でき、オーダーメイド放射線治療 の実現を図ることができると考え、鋭意研究に励んだ。その結果、放射線治療後、副 作用を発症した患者 (以下、発症群という)と副作用を発症しな力つた、あるいは軽微 な発症であった患者 (以下、非発症群と!、う)の遺伝子の DNA塩基配列の決定を行 つた結果、発症群のアレル (allele;対立遺伝子)の出現頻度と、非発症群のアレルの 出現頻度との間に統計学的に有意な差を見出すことができ、本発明を完成するに至 つた o
[0010] すなわち、本発明の諸側面として、次のような放射線治療における副作用発症予 測用 DNAオリゴマーを提供する。
〔1〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、がんの放射線治療において副作用が発症する虞があること を予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の配列番号 1から配列番号 173 のうちのいずれかに示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少な くとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療にお ける副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔2〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、乳がんの放射線治療において副作用が発症する虞がある ことを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の配列番号 1、配列番号 4、 配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、 配列番号 26、配列番号 27、配列番号 30、配列番号 32、配列番号 44、配列番号 45 、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 53、配列番号 5 4、配列番号 58、配列番号 59、配列番号 60、配列番号 61、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 65、配列番号 67、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 77、配列番 号 78、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 90、配列番号 91、配列 番号 94、配列番号 97、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 108、配列番号 112 、配列番号 113、配列番号 116、配列番号 117、配列番号 126、配列番号 127、配 列番号 132、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 137、配列番号 138、配列番 号 140、配列番号 143、配列番号 145、配列番号 147、配列番号 148、配列番号 15 1、配列番号 157、配列番号 159、配列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配 列番号 165、配列番号 167、配列番号 170、配列番号 172、または配列番号 173に 示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連 続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予 測用 DN Aオリゴマー。
〔3〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、子宮頸がんの放射線治療において副作用が発症する虞が あることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の配列番号 2、配列番号 6、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 43、配列番 号 44、配列番号 46、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 60、配列番号 64、配列 番号 65、配列番号 68、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 75、配 列番号 76、配列番号 80、配列番号 83、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 91、 配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 110、配列番号 114、配列番 号 118、配列番号 119、配列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 13 9、配列番号 141、配列番号 142、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 149、配 列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 155、配列番 号 157、配列番号 161、または配列番号 171に示される DNA塩基配列について、 1 21番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを 特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔4〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、前立腺がんの放射線治療において副作用が発症する虞が あることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 8、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14 、配列番号 16、配列番号 18、配列番号 19、配列番号 21、配列番号 24、配列番号 2 5、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 35、配列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 45、配列番号 47、配列番号 48、配列番号 55、配列番号 57、配列番 号 66、配列番号 69、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 81、配列番号 84、配列 番号 87、配列番号 92、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 99、配列番号 100、 配列番号 101、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 104、配列番号 107、配列 番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 120、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128 、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 151、配列番号 156、配 列番号 158、配列番号 160、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 168、または 配列番号 169に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくと も 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療におけ る副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔5〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、がんの放射線治療開始から早期のステージにお 、て副作 用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の配 列番号 2、配列番号 5、配列番号 7、配列番号 8、配列番号 13、配列番号 15、配列番 号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 24、配列 番号 25、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 28、配列番号 29、配列番号 31、配 列番号 32、配列番号 33、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、 配列番号 45、配列番号 48、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 59、配列番号 60 、配列番号 61、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 66、配列番号 70、配列番号 7 1、配列番号 72、配列番号 73、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 78、配列番号 80、配列番号 81、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 90、配列番号 91、配列番 号 92、配列番号 93、配列番号 94、配列番号 96、配列番号 98、配列番号 99、配列 番号 102、配列番号 103、配列番号 105、配列番号 106、配列番号 112、配列番号 113、配列番号 114、配列番号 117、配列番号 118、配列番号 120、配列番号 121 、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 129、配列番号 132、配列番号 134、配 列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 141、配列番号 143、配列番 号 144、配列番号 146、配列番号 147、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 15 1、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 157、配列番号 158、配 列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配列番号 167、配列番 号 168、配列番号 169、または配列番号 171に示される DNA塩基配列について、 1 21番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを 特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔6〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおいて 副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表 の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 18 、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 5 3、配列番号 55、配列番号 58、配列番号 69、配列番号 77、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 108、配列番号 109、配列番号 111 、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配 列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 133、配列番号 136、配列番 号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 156、配列番号 159、配列番号 16 0、配列番号 162、または配列番号 170に示される DNA塩基配列について、 121番 目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴 とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔7〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおいて 副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表 の配列番号 1、配列番号 3、配列番号 4、配列番号 5、配列番号 6、配列番号 9、配列 番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配 列番号 30、配列番号 35、配列番号 37、配列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、 配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 47、配列番号 50、配列番号 51 、配列番号 54、配列番号 57、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 6 7、配列番号 68、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 79、配列番号 82、配列番号 83、配列番号 84、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 95、配列番号 96、配列番 号 97、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 110、配列番号 119、配列番号 130 、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 139、配列番号 142、配列番号 155、配 列番号 161、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 172、または配列番号 173に 示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連 続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予 測用 DN Aオリゴマー。
〔8〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、乳がんの放射線治療開始から早期のステージにお 、て副 作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列表の 配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、 配列番号 26、配列番号 27、配列番号 32、配列番号 44、配列番号 45、配列番号 59 、配列番号 61、配列番号 65、配列番号 73、配列番号 78、配列番号 90、配列番号 9 1、配列番号 94、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 112、配列番号 113、配列 番号 117、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 147、配列番号 157、配列番号 160、配列番号 162 、配列番号 163、配列番号 165、または配列番号 167に示される DNA塩基配列に ついて、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有 することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔9〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルで あるかを判定することで、乳がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおい て副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配列 表の配列番号 48、配列番号 49、配列番号 53、配列番号 58、配列番号 77、配列番 号 108、配列番号 116、配列番号 126、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 14 5、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 159、配列番号 162、または配列番号 1 70に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜24 1の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発 症予測用 DN Aオリゴマー。
〔10〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、乳がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配 列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 30、配列番号 50、配列番号 51、配列番 号 54、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 67、配列番号 74、配列 番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 97、配列番号 172、または配列番号 173に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜2 41の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用 発症予測用 DNAオリゴマー。
〔11〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、子宮頸がんの放射線治療開始から早期のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配 列表の配列番号 2、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番号 31、配列番 号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 52、配列番号 56、配列 番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72、配 列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 91、 配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 114、配列番号 118、配列番 号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 141、配列番号 144、配列番号 14 6、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配 列番号 157、または配列番号 171に示される DNA塩基配列について、 121番目の 塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とす る放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔12〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、子宮頸がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージ において副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって 、配列表の配列番号 6、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配 列番号 46、配列番号 68、配列番号 83、配列番号 110、配列番号 119、配列番号 1 39、配列番号 142、配列番号 155、または配列番号 161に示される DNA塩基配列 について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を 有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。 〔13〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から早期のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、配 列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番 号 33、配列番号 48、配列番号 66、配列番号 81、配列番号 92、配列番号 96、配列 番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 120、配列番号 126、配列番号 1 51、配列番号 158、配列番号 168、または配列番号 169に示される DNA塩基配列 について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を 有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
〔14〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージ において副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって 、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列 番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 55、配 列番号 69、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123 、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 128、配列番号 156、または配列番号 16 0に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241 の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発 症予測用 DN Aオリゴマー。
〔15〕 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレル であるかを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージ において副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって 、配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列 番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 35、配列番号 38、配 列番号 39、配列番号 40、配列番号 47、配列番号 57、配列番号 73、配列番号 79、 配列番号 84、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 164、または配列番号 166に示され る DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 D NAオリゴマー。
〔16〕 〔1〕から〔15〕に記載の副作用発症予測用 DNAオリゴマーにおいて、 121番 目の塩基以外の塩基が 1個若しくは数個欠失、置換若しくは付加して 、る DNAオリ ゴマー、または、これらの相補的な DNA塩基配列を有する DNAオリゴマーであるこ とを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[0011] また、本発明の他の諸側面として、〔17〕 〔1〕から〔16〕のうちいずれか一つに記載 の副作用発症予測用 DNAオリゴマー、または、この副作用発症予測用 DNAオリゴ マーとストリンジェントな条件下でノヽイブリダィズする DNAオリゴマーであることを特徴 とする放射線治療における副作用発症予測用遺伝子マーカーや、〔18〕配列表の 配列番号 174から配列番号 519に示す DNA塩基配列を有する DNAオリゴマーのう ち、配列番号 174から順次 2つの DNAオリゴマーを 1セットとして用いることを特徴と する DNAオリゴマーセットや、〔19〕配列表の配列番号 174から配列番号 519に示 す DNA塩基配列を有する DNAオリゴマー、または、当該 DNAオリゴマーのうち、 1 個若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加したことを特徴とする〔11〕に記載 の DNAオリゴマーセットや、〔20〕配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す DNA塩基配列を有する DNAオリゴマー、または、当該 DNAオリゴマーのうち、 1個 若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加したことを特徴とする DNAオリゴマー 、を提供する。
[0012] 本発明のさらに他の側面として、〔21〕配列表の配列番号 1から配列番号 173のい ずれかに示す DNAオリゴマーを用いて判定を行う、下記 (a)〜 (g)の工程を含むこと を特徴とする放射線治療における副作用発症予測方法を提供する。
(a)放射線治療が施行される予定のがん患者カゝら採取した試料をもとに DNA試料 を調製する工程。
(b)前記(a)の工程で調製した前記 DNA試料をもとに DNAを増幅して DNA産物 を得る工程。
(c)前記 (b)の工程で増幅した DNA産物を铸型として伸長反応を行 ヽ、伸長産物 である DNAオリゴマーを得る工程。
(d)前記 (c)の工程で得られた DNAオリゴマーの DNA塩基配列を解析する工程。
(e)前記(d)の工程で解析された DNAオリゴマーの DNA塩基配列のうち 121番目 の位置に相当する塩基と、配列表の配列番号 1から配列番号 173のいずれかに示 す DNA塩基配列の 121番目の塩基とを照合する工程。
(f)前記 (e)の工程で照合された塩基を有するアレルがリスクアレルであるか非リス クアレルであるかを判定する工程。
(g)前記 (f)の工程で判定した結果から、前記放射線治療が施行される予定のがん 患者における放射線による副作用の発症危険率を予測する工程。
本発明のさらに他の側面として、 [22]前記 (e)の工程で照合する配列表の配列番 号 1から配列番号 173のいずれかに示す DNA塩基配列は、乳がんの放射線治療に おける副作用の発症予測については、配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 30、配列番号 32、配列番号 44、配列番号 45、配列番 号 48、配列番号 49、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 53、配列番号 54、配列 番号 58、配列番号 59、配列番号 60、配列番号 61、配列番号 62、配列番号 63、配 列番号 65、配列番号 67、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 77、配列番号 78、 配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 90、配列番号 91、配列番号 94 、配列番号 97、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 108、配列番号 112、配列 番号 113、配列番号 116、配列番号 117、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140 、配列番号 143、配列番号 145、配列番号 147、配列番号 148、配列番号 151、配 列番号 157、配列番号 159、配列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番 号 165、配列番号 167、配列番号 170、配列番号 172、または配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、子宮頸がんの放射線治療における副作 用の発症予測については、配列表の配列番号 2、配列番号 6、配列番号 22、配列番 号 23、配列番号 29、配列番号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 37、配列 番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 46、配 列番号 52、配列番号 56、配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 68、 配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80 、配列番号 83、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 9 8、配列番号 105、配列番号 110、配列番号 114、配列番号 118、配列番号 119、配 列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 139、配列番号 141、配列番 号 142、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 15 2、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 155、配列番号 157、配列番号 161、ま たは配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、前立腺がんの 放射線治療における副作用の発症予測については、配列表の配列番号 3、配列番 号 5、配列番号 8、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 18、配列番号 19、配列番号 21、配列番号 24、配列番 号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 35、配列番号 38、配列番号 39、配列 番号 40、配列番号 45、配列番号 47、配列番号 48、配列番号 55、配列番号 57、配 列番号 66、配列番号 69、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 81、配列番号 84、 配列番号 87、配列番号 92、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 99、配列番号 10 0、配列番号 101、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 104、配列番号 107、配 列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 120、配列番 号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 12 8、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 151、配列番号 156、配 列番号 158、配列番号 160、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 168、または 配列番号 169に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、がんの放射線治療 開始から早期のステージにおける副作用の発症予測については、配列表の配列番 号 2、配列番号 5、配列番号 7、配列番号 8、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 1 7、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 28、配列番号 29、配列番号 31、配列番 号 32、配列番号 33、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列 番号 45、配列番号 48、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 59、配列番号 60、配 列番号 61、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 66、配列番号 70、配列番号 71、 配列番号 72、配列番号 73、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 78、配列番号 80 、配列番号 81、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 90、配列番号 91、配列番号 9
2、配列番号 93、配列番号 94、配列番号 96、配列番号 98、配列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 105、配列番号 106、配列番号 112、配列番号 113 、配列番号 114、配列番号 117、配列番号 118、配列番号 120、配列番号 121、配 列番号 126、配列番号 127、配列番号 129、配列番号 132、配列番号 134、配列番 号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 141、配列番号 143、配列番号 14 4、配列番号 146、配列番号 147、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 151、配 列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 157、配列番号 158、配列番 号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配列番号 167、配列番号 16 8、配列番号 169、または配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を 用い、がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予測 については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番 号 12、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列 番号 49、配列番号 53、配列番号 55、配列番号 58、配列番号 69、配列番号 77、配 列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 108、配列番 号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 12
3、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 133、配 列番号 136、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 156、配列番 号 159、配列番号 160、配列番号 162、または配列番号 170に示す DNAオリゴマー の DNA塩基配列を用い、がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおけ る副作用の発症予測については、配列表の配列番号 1、配列番号 3、配列番号 4、 配列番号 5、配列番号 6、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配 列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 30、配列番号 35、配列番号 37、 配列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46 、配列番号 47、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 54、配列番号 57、配列番号 6 0、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 67、配列番号 68、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 79、配列番号 82、配列番号 83、配列番号 84、配列番号 85、配列番 号 88、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 97、配列番号 102、配列番号 107、配 列番号 110、配列番号 119、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番 号 139、配列番号 142、配列番号 155、配列番号 161、配列番号 164、配列番号 16 6、配列番号 172、または配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を 用い、乳がんの放射線治療開始から早期のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番 号 19、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 32、配列番号 44、配列 番号 45、配列番号 59、配列番号 61、配列番号 65、配列番号 73、配列番号 78、配 列番号 90、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 11
2、配列番号 113、配列番号 117、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 137、配 列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 147、配列番号 157、配列番 号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、または配列番号 167に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、乳がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月 のステージにおける副作用の発症予測については、配列表の配列番号 48、配列番 号 49、配列番号 53、配列番号 58、配列番号 77、配列番号 108、配列番号 116、配 列番号 126、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 145、配列番号 148、配列番 号 151、配列番号 159、配列番号 162、または配列番号 170に示す DNAオリゴマー の DNA塩基配列を用い、乳がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにお ける副作用の発症予測については、配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 30 、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 54、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 6
3、配列番号 67、配列番号 74、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 97、配列番号 172、または配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列 を用い、子宮頸がんの放射線治療開始から早期のステージにおける副作用の発症 予測については、配列表の配列番号 2、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、 配列番号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 52 、配列番号 56、配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 70、配列番号 7 1、配列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 114、配列 番号 118、配列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 141、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153 、配列番号 154、配列番号 157、または配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DN A塩基配列を用い、子宮頸がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおけ る副作用の発症予測については、配列表の配列番号 6、配列番号 37、配列番号 39 、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 68、配列番号 83、配列番号 1 10、配列番号 119、配列番号 139、配列番号 142、配列番号 155、または配列番号 161に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、前立腺がんの放射線治療開 始から早期のステージにおける副作用の発症予測については、配列表の配列番号 5 、配列番号 8、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 48 、配列番号 66、配列番号 81、配列番号 92、配列番号 96、配列番号 99、配列番号 1 02、配列番号 103、配列番号 120、配列番号 126、配列番号 151、配列番号 158、 配列番号 168、または配列番号 169に示す DN Aオリゴマーの DN A塩基配列を用 い、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症 予測については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配 列番号 12、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、 配列番号 55、配列番号 69、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122 、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 128、配列番号 156、ま たは配列番号 160に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、前立腺がんの 放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予測については、 配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番 号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 35、配列番号 38、配列 番号 39、
配列番号 40、配列番号 47、配列番号 57、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 84 、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 130、配列 番号 131、配列番号 135、配列番号 164、または配列番号 166に示す DNAオリゴマ 一の DNA塩基配列を用いる、ことを特徴とする〔21〕に記載の放射線治療における 副作用発症予測方法、を提供する。
[0013] 本発明の放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマーや副作用発症 予測用遺伝子マーカーを用いて、遺伝子の DNA塩基配列のうちの、特定の一塩基 多型 (SNP)を検出することで、放射線治療による副作用を発症する危険率を予測す ることができる。したがって、本発明によれば、オーダーメイド放射線治療の実現に資 することとなる。
[0014] また、本発明の DNAオリゴマーセット(PCR用プライマー)を用いれば、がん患者 等の被験者カゝら調製した DNA試料をもとに特定の一塩基多型(SNP)を含む DNA の増幅を容易に行うことができる。さらに、本発明の DNAオリゴマー(伸長プライマー )を用いれば、容易にその特定の SNPサイトの塩基種を判定することが可能となる。 したがって、放射線治療による副作用を発症する危険率を予測する方法を容易化す ることがでさる。
[0015] 本発明の副作用発症予測方法によれば、放射線治療を施行する予定であるがん 患者力 採取した DNA試料に含まれる SNP情報から、放射線による副作用を発症 する危険率を予測することができる。すなわち、オーダーメイド放射線治療を行うこと が可能となる。
[0016] 本発明によれば、乳がん、子宮頸がん、および前立腺がんについて、放射線治療 の開始力 早期(3ヶ月未満)、晩期 3ヶ月、晩期 6ヶ月の各ステージにおける副作用 の発症する危険率を予め予測することが可能となる。
[0017] 前記した本発明の諸側面及び効果、並びに、他の効果及びさらなる特徴は、添付 の図面を参照して後述する本発明の例示的かつ非制限的な実施の形態の詳細な説 明により、一層明ら力となるであろう。
図面の簡単な説明
[0018] [図 1]本発明の放射線治療における副作用発症予測方法を説明するためのフローチ ヤートである。
発明を実施するための最良の形態
[0019] 以下、本発明を実施するための最良の形態について説明するが、本発明の内容は 以下に説明する内容に限定されるものではない。 〔1. DNAオリゴマー(1)および遺伝子マーカー〕
本発明における「放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー」とは、 本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173に示されている DNA塩基配列のう ち、 121番目の塩基を含んでなる、少なくとも 10〜241塩基のオリゴヌクレオチド (D NA才リゴマー)をいう。
ただし、本発明においては 121番目の塩基を含む 10〜 241の連続した DN A塩基 配列を有していればよぐ DNA塩基配列の長短について特に限定されるものではな い。すなわち、前記したように、 10塩基以上 241塩基以下の DNAオリゴマーであつ てもよく、また、 241塩基を超えるものであっても構わない。例えば、染色体上にかか る DNA塩基配列が存在していれば、これよりもさらに長い DN Aオリゴマー(例えば、 121番目の塩基を含む、連続した 250塩基の DNAオリゴマーや、 500塩基の DNA オリゴマー、あるいは、さらに長い DNAオリゴマー)であっても本発明の配列表の配 列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーに該当することはいうまでもない。 本発明においては、 121番目に示す塩基がリスクアレルとなる。「リスクアレル」とは 、特定の SNPサイトにおいて、放射線治療行った後に副作用(障害)の発症しやす い者の有するアレル (allele ;対立遺伝子)中の塩基と、副作用の発症しにくい者の有 するアレル中の塩基と、が異なる塩基であって、当該副作用の発症しやすいものが 有するアレルをいう。したがって、 SNPタイピングを行ってこのリスクアレルを認識する ことができれば、放射線治療による副作用の発症の危険率を予測することが可能とな る。
なお、本発明で指定する 121番目の塩基であることを認識することができれば、 DN Aオリゴマーにおける位置は限定されない。すなわち、当該リスクアレルとなる SNPサ イトは DNA塩基配列中の中ほどに位置するようにすることができるほか、 5' 末端や 3' 末端に位置するようにすることも可能である。
これに対し、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173のいずれかと同一ま たは実質的に同一である DNA塩基配列を含む遺伝子または染色体 DNAにおいて 、前記のリスクアレルに相当する SNPサイトに存在するリスクアレルとは異なる塩基で あるアレルを本発明では「非リスクアレル」と呼ぶこととする。 [0021] 配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマー(またはその DNA 塩基配列の情報)は、 DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか 非リスクアレルであるかを判定することで、がんの放射線治療において副作用が発症 する虞があることを予測するために用いることができる。特に、下記の(1)から(14)に 記載する態様で好適に用いることができる。
[0022] (1)乳がんの放射線治療における副作用の発症予測については、配列表の配列 番号 1、配列番号 4、配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番 号 19、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 30、配列番号 32、配列 番号 44、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 50、配列番号 51、配 列番号 53、配列番号 54、配列番号 58、配列番号 59、配列番号 60、配列番号 61、 配列番号 62、配列番号 63、配列番号 65、配列番号 67、配列番号 73、配列番号 74 、配列番号 77、配列番号 78、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 9 0、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 97、配列番号 98、配列番号 106、配列番 号 108、配列番号 112、配列番号 113、配列番号 116、配列番号 117、配列番号 12 6、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 137、配 列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 145、配列番号 147、配列番 号 148、配列番号 151、配列番号 157、配列番号 159、配列番号 160、配列番号 16 2、配列番号 163、配列番号 165、配列番号 167、配列番号 170、配列番号 172、ま たは Zおよび、配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用 いることがでさる。
[0023] (2)子宮頸がんの放射線治療における副作用の発症予測については、配列表の 配列番号 2、配列番号 6、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番号 31、 配列番号 34、配列番号 36、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42 、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 46、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 6 0、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 68、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 83、配列番号 86、配列番 号 89、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 110、配 列番号 114、配列番号 118、配列番号 119、配列番号 121、配列番号 129、配列番 号 134、配列番号 139、配列番号 141、配列番号 142、配列番号 144、配列番号 14 6、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配 列番号 155、配列番号 157、配列番号 161、または Zおよび、配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0024] (3)前立腺がんの放射線治療における副作用の発症予測については、配列表の 配列番号 3、配列番号 5、配列番号 8、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列 番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 18、配列番号 19、配列番号 21、配 列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 35、配列番号 38、 配列番号 39、配列番号 40、配列番号 45、配列番号 47、配列番号 48、配列番号 55 、配列番号 57、配列番号 66、配列番号 69、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 8 1、配列番号 84、配列番号 87、配列番号 92、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 99、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 104、 配列番号 107、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列 番号 120、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 151 、配列番号 156、配列番号 158、配列番号 160、配列番号 164、配列番号 166、配 列番号 168、または Zおよび、配列番号 169に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配 列を好適に用いることができる。
[0025] (4)がんの放射線治療開始力も早期のステージにおける副作用の発症予測につい ては、配列表の配列番号 2、配列番号 5、配列番号 7、配列番号 8、配列番号 13、配 列番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 22、配列番号 23、 配列番号 24、配列番号 25、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 28、配列番号 29 、配列番号 31、配列番号 32、配列番号 33、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 4 3、配列番号 44、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 59、配列番号 60、配列番号 61、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 66、配列番 号 70、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 73、配列番号 75、配列番号 76、配列 番号 78、配列番号 80、配列番号 81、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 90、配 列番号 91、配列番号 92、配列番号 93、配列番号 94、配列番号 96、配列番号 98、 配列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 105、配列番号 106、配列 番号 112、配列番号 113、配列番号 114、配列番号 117、配列番号 118、配列番号 120、配列番号 121、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 129、配列番号 132 、配列番号 134、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 141、配 列番号 143、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 147、配列番号 149、配列番 号 150、配列番号 151、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 15 7、配列番号 158、配列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配 列番号 167、配列番号 168、配列番号 169、または Zおよび、配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0026] (5)がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予測 については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番 号 12、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列 番号 49、配列番号 53、配列番号 55、配列番号 58、配列番号 69、配列番号 77、配 列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 108、配列番 号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 12 3、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 133、配 列番号 136、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 156、配列番 号 159、配列番号 160、配列番号 162、または Zおよび、配列番号 170に示す DN Aオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0027] (6)がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予測 については、配列表の配列番号 1、配列番号 3、配列番号 4、配列番号 5、配列番号 6、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 1 6、配列番号 19、配列番号 30、配列番号 35、配列番号 37、配列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 47、配列番 号 50、配列番号 51、配列番号 54、配列番号 57、配列番号 60、配列番号 62、配列 番号 63、配列番号 67、配列番号 68、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 79、配 列番号 82、配列番号 83、配列番号 84、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 95、 配列番号 96、配列番号 97、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 110、配列番 号 119、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 139、配列番号 14 2、配列番号 155、配列番号 161、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 172、ま たは Zおよび、配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用 いることがでさる。
[0028] (7)乳がんの放射線治療開始力 早期のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番 号 19、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 32、配列番号 44、配列 番号 45、配列番号 59、配列番号 61、配列番号 65、配列番号 73、配列番号 78、配 列番号 90、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 11 2、配列番号 113、配列番号 117、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 137、配 列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 147、配列番号 157、配列番 号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、または Zおよび、配列番号 1 67に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0029] (8)乳がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 48、配列番号 49、配列番号 53、配列番号 58、 配列番号 77、配列番号 108、配列番号 116、配列番号 126、配列番号 133、配列 番号 136、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 159、配列番号 162、または Zおよび、配列番号 170に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好 適に用いることができる。
[0030] (9)乳がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 30、配列番号 50、配列 番号 51、配列番号 54、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 67、配 列番号 74、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 97、配列番号 172 、または Zおよび、配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に 用!/、ることができる。
[0031] (10)子宮頸がんの放射線治療開始力 早期のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 2、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配 列番号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 52、 配列番号 56、配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 70、配列番号 71 、配列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 86、配列番号 8 9、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 114、配列 番号 118、配列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 141、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153 、配列番号 154、配列番号 157、または Zおよび、配列番号 171に示す DN Aオリゴ マーの DNA塩基配列好適に用いることができる。
[0032] (11)子宮頸がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の 発症予測については、配列表の配列番号 6、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 68、配列番号 83、配列番号 110、配列 番号 119、配列番号 139、配列番号 142、配列番号 155、または Zおよび、配列番 号 161に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0033] (12)前立腺がんの放射線治療開始力 早期のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 24、配列番号 25、配列 番号 28、配列番号 33、配列番号 48、配列番号 66、配列番号 81、配列番号 92、配 列番号 96、配列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 120、配列番号 126、配列番号 151、配列番号 158、配列番号 168、または Zおよび、配列番号 16 9に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いることができる。
[0034] (13)前立腺がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の 発症予測については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 1 1、配列番号 12、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 55、配列番号 69、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列 番号 104、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 128、配列番号 156 、または Zおよび、配列番号 160に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に 用!/、ることができる。
[0035] (14)前立腺がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の 発症予測については、配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 9、配列番号 10 、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 3 5、配列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 47、配列番号 57、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 84、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 102、配列 番号 107、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 164、または/ および、配列番号 166に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を好適に用いること ができる。
[0036] 本発明で用いるリスクアレルを含んだ DN Aオリゴマーは、 121番目の塩基(リスクァ レル)を含んだ 10〜241塩基の連続した DNAオリゴマーとして、適宜適切な長さを 設定して用いることができる。
例えば、力かる DNAオリゴマーを標識プローブなどの遺伝子マーカーとして用いる 場合は、例えば、 20〜200塩基の長さとするのが好ましいが、 30〜150塩基の長さ とすることや、 35〜: LOO塩基の長さとすることもできるし、また 200塩基以上であって もよい。適切な長さを選択すれば、特異的なノ、イブリダィズを行うことができるほか、 例えば電気泳動の泳動度の差異を容易に認識することができ、適切に SNPタイピン グを行うことができる。一方、塩基数が少なすぎると非特異的なノ、イブリダィズが生じ る虞があり、塩基数が多すぎると泳動度に差異が生じに《なるので不適である。
[0037] 本発明は、前記で説明した DNAオリゴマーを解析 Z検出することで、放射線治療 における副作用の発症のしゃすさに影響する遺伝的素因を有するか否かを解析し、 その結果力 放射線による副作用を発症する危険性を予測するためになされたもの である。
したがって、解析した DNA塩基配列と、配列表の配列番号 1から配列番号 173のう ちの、、ずれかの DNA塩基配列とを対比し、本発明で特定されて 、るリスクアレルと 合致するか、あるいは、非リスクアレルに該当するかを確認することで、放射線に対し て副作用を発症しやすい型の塩基配列 (発症群)であるか、副作用を発症しにくい型 の塩基配列(非発症群)であるかを判定することができる。すなわち、リスクアレルを有 する者は、非リスクアレルを有する者よりも放射線治療における副作用を発症しやす V、遺伝的素因を有して!/、る、と判断することができる。
[0038] ここで、本発明に係る DNAオリゴマーは、当該 121番目の塩基以外の塩基が、 1個 または複数個欠失、置換若しくは付加していてもよぐまた、その相補鎖であっても構 わない。すなわち、本発明の特許請求の範囲と配列表で特定する SNPサイトを含む ものであれば、それ以外の箇所に塩基の置換、欠失、挿入等が起こっていても、実 質的に同一またはこれと相補的な DNA塩基配列を有している DNAオリゴマーであ れば本発明の DNAオリゴマーと同等のものである。
[0039] さらに、このような DNAオリゴマーは、 DNAポリメラーゼ、特に耐熱性ポリメラーゼ( 例えば Taqポリメラーゼ)などの種々のポリメラーゼによって複製あるいは増幅された DNA産物を好適に用いることができる。
そして、本発明の DNAオリゴマーは、それが有する DNA塩基配列を直接解析す るために好適に用いることができる。この DNAオリゴマーの DNA塩基配列の直接的 な解析には、従来公知の DNAシーケンサーや質量分析機などを好適に用いること ができる。
また、本発明の DNAオリゴマーは、いわゆるプローブなどの遺伝子マーカーとして 好適に用いることができる。
[0040] 本発明の DNAオリゴマーを遺伝子マーカーとして用いる場合は、 DNA塩基配列 の末端、または、 DNA塩基配列中のいずれかの塩基を蛍光色素や放射性同位元 素などで標識化した遺伝子マーカー (標識プローブ)とするのがより好ま 、。標識遺 伝子マーカーとすれば、蛍光強度や放射線量を測定することによって容易に検出可 能となるほか、例えば、 X線フィルムを蛍光で感光させる、あるいは、放射線で感光さ せるなどして、容易に検出することも可能となる。なお、放射線量や蛍光強度の測定 は、従来公知の放射線検出装置や蛍光測定装置などを好適に用いることができる。 また、このように蛍光色素を標識ィ匕しておけば、 DNAシーケンサーによって適切に 解析することができる。
[0041] 標識ィ匕するために用いる放射性同位元素としては、例えば、 32Pや35 Sなどの通常 用いられる放射性同位元素を挙げることができる。また、標識ィ匕するために用いる蛍 光色素としては、例えば、 FAM™、 Yakima Yellow™, VIC™, TAMRA™, RO X™、 Cy3™、 Cy5™、 HEX™, TET™、 FITCなどの通常用いられる蛍光色素を 挙げることができる。 [0042] 以上説明したように、本発明の放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴ マーは、その DNA塩基配列を直接解析することや、当該 DNAオリゴマーを遺伝子 マーカーとして用いることにより、好適に一塩基多型の検出、すなわち SNPタイピン グを好適に行うことができる。なお、一般的に「多型」とは、人口中 1%以上の頻度で 存在している塩基の変化と定義されているが、本発明における「多型」は、この定義 に限定されず、 1%未満の塩基の変化も「多型」に含めることとする。
[0043] [2. DNAオリゴマーセット〕
配列表の配列番号 174から配列番号 519に示す DNAオリゴマーは、配列番号 17 4から順次 2つの DNAオリゴマーを 1セットとする DNAオリゴマーセット、として用いる のが好ましい。
かかる DNAオリゴマーセットの中から適宜適切な 1セットの DNAオリゴマーセットを 選択して DNAの増幅に用いれば、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す任 意の DNAオリゴマーを特異的に増幅することができる。なお、この DNAオリゴマーセ ットのうち、配列番号の小さい DNAオリゴマーがフォワードプライマーであり、配列番 号の大きい DNAオリゴマーがリバースプライマーに該当する。これら 2種類のプライ マーに対応する配列に挟まれた部分が PCR増幅反応によって増幅される対象となる
[0044] このように、配列表の配列番号 174から配列番号 519に示す DNAオリゴマーセット は、特に PCR (Polymerase Chain Reaction)を行う際に好適に用いることができること から、本発明の DNAオリゴマーセットは、 PCR増幅用のプライマーセットとして用いる ことが好ましい。したがって、この PCR増幅用のプライマーセットを用いれば、特定の DNA塩基配列を有する DNAオリゴマー、すなわち、配列表の配列番号 1から配列 番号 173に示す、特定の SNPサイト(本発明においては 121番目の塩基が特定の S NPサイトである。)を含む DNAオリゴマーを確実、簡便かつ特異的に増幅することが できる。
なお、この DNAオリゴマーセットを構成するそれぞれの DNAオリゴマーは、それが 有する DNA塩基配列のうち、 1個若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加し たものであってもよい。また、配列番号 174から配列番号 519に示す DNAオリゴマー には、必要に応じて適宜の制限酵素認識配列(例えば「5' -ACGTTGGATG-3'」(配 列番号 693)のような 10塩基程度の DNAオリゴマー)を、 DNAオリゴマーの 5' 上 流側に付加して用いてもよい。このように付加した配列は、 PCRによる増幅反応を安 定化させる効果を有する。なお、付加する塩基配列はこれに限られることはなぐ同 様の効果を奏するものであればどのような配列でも用いることができる。
[0045] 〔3. DNAオリゴマー(2)〕
また、配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す DNAオリゴマーは、その 3 ' 末端が、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーのうち、特 定の SNPサイトである塩基に隣接するように設計している。したがって、かかる DNA オリゴマーを用いて酵素的に 1から数塩基伸長すれば、生じた DNAオリゴマーは多 型に応じて長さが異なったものとなる。また、この DNAオリゴマーも、当該 DNAオリゴ マーのうち、 1個若しくは数個の塩基が欠失、置換若しくは付加したものとすることが 可能である。
[0046] そして、配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す DNAオリゴマーは、 3' 側がリスクアレルに隣接する 10〜 24塩基の長さとするのが好ましく、 15〜 24塩基の 長さとするのがより好ましぐ 17〜24塩基の長さとするのがさらに好ましい。かかる長 さは DNAオリゴマーの有する GC含量やハイブリダィズさせる条件等によって適宜変 更することが可能である。
[0047] なお、酵素的に 1から数塩基付加するには、例えば、 DNA合成酵素である DNAポ リメラーゼと、デォキシヌクレオシド三リン酸(dNTP)のアナログであるジデォキシヌク レオシド三リン酸(ddNTP)を用いることによって、 1塩基のみ伸長した DNAオリゴマ 一を得ることができる(1塩基プライマー伸長法)。したがって、かかる DNAオリゴマー は、リスクアレルである塩基を解析する SNPタイピングに好適に用いることができる。 このようにすると、例えば、一方のアレルは 1塩基伸長させ、他方のアレルは 3塩基 伸長させるなどすることにより、 DNA産物の長さの違いを正確に質量分析計で検出 できるようにすることができる(MassEXTEND™法、 SEQUENOM社)。なお、何 塩基伸長させるかは、各 SNPサイトの多型部位の前後の配列から、最も効率よく長さ が違うように、 SNPサイト毎にデザインするのが好まし!/、。 [0048] 〔4. SNPタイピング〕
SNPタイピングを行う手法としては、プライマー伸長に基づく手法、ノ、イブリダィゼ ーシヨンに基づく手法、 DNAの切断に基づく手法、ライゲーシヨンに基づく手法など がある。
[0049] (4- 1. SNPタイピングの手法〜その 1)
プライマーエクステンションに基づく手法としては、例えば、前記した 1塩基プライマ 一伸長法(Syvanen, A.C. et al., Genomics, 8, 684- 692(1990))や、これを用いた MA LDI—TOFZMS法(Ross, P., et al. Nat Biotechnol, 16, 1347— 1351(1998) ;Buetow , K.H. et al., Proc Natl Acad Sci USA, 98, 581- 584(2001) ; SNP遺伝子多型の戦略 、松原謙一'榊佳之、中山書店、 106〜117頁)のほか、アレル特異的プライマーェ タステンション法(Uggozzoli, L. et al., Genet Anal Tech Appl, 9, 107- 112(1992))、 A PEX (in the arrayed primer extension)法 (Shumaker, J.M. et al., Hum Mutat, 7, 346 -354(1996))などを挙げることができる。これらの中でも、 MALDI—TOFZMS法を 用いれば、簡易かつ大量のサンプルの SNPタイピングを同時に行うことが可能であ るので特に好適である。
[0050] この MALDI— TOF/MS (matrix assisted laser desorption ionization time— of— flig ht/mass spectrometry)法は、 DNA試料から得られた DNA産物の DNA塩基配列を 直接決定して比較することができる、非常に効率的な手法である。
MALDI— TOFZMS法は、前記したように大量のサンプルを高速度で処理する ジエノタイピング法の一つである。この方法は、以前から生物学'化学の分野で使用 されてきた質量分析機を SNPタイピングに適用したものである。質量分析機による方 法であるので、多型による差異を何らかの形で分子の違いに対応させ、その分子の 質量の差を検出することで塩基の配列を決定することを基本原理としている。すなわ ち、 MALDI— TOFZMS法は、質量分析機とプライマー伸長法とを組み合わせ、 S NPサイトにおける塩基の違いを判定する。
[0051] 具体的には、まず、放射線治療を行う予定のがん患者力 DNA試料を抽出する。
この際、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SNPサイトに相 当する部位の塩基を含む DNAを、 PCRなどを使用して増幅することで調製する。次 いで、 PCR産物を铸型として、ジヱノタイピングプライマー(配列表の配列番号 1から 配列番号 173で示される SNPサイトに相当する部位における塩基の 1塩基 側の 塩基から 3' 側の塩基配列に相補的な配列を有するプライマー、または、配列表の 配列番号 1から配列番号 173の相補鎖の場合は、その相補鎖と相補的な配列を有 するプライマー)の ddNTPプライマー伸長反応を行い、 1個から数個の塩基を伸長 する。なお、この反応に用いる PCR産物は、 PCR増幅用のプライマーを除去するた めの精製が行われていることが好ましぐジエノタイピングプライマー(伸長プライマー (配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す))は、通常、 15bp以上の長さを 有するのが好ましい。また、プライマー伸長反応においては、通常、 PCR産物に対し て 10倍以上の過剰のジエノタイピングプライマーをカ卩える力 これに制限されるもの ではない。 PCRを行うためのサーマルサイクルの条件は適宜選択しうる力 ジエノタイ ビングプライマーのうち 30〜60%程度が伸長する条件が好適である。例えば、 94°C と 37°Cの 2温度間で 25回程度行うことで適当な伸長効率を得ることができる。次いで 、プライマー伸長反応産物の MALDIプレートへのスポットを行い、次いで、質量測 定を行って、マススペクトログラムを作成する。そして、作成されたマススペクトログラム を解析することで DNA塩基配列を判定し、本発明の配列表の配列番号 1から配列 番号 173で示される SNPサイトに相当する部位の塩基が放射線に対して副作用を 発症しやす!/、型の塩基配列 (発症群)である場合と、副作用を発症しにく!/、型の塩基 配列 (非発症群)である場合を 1回の反応で判別することが可能である。
[0052] このように、 MALDI— TOFZMS法では質量分析機を用いて DNA塩基配列を直 接判定し、大量かつ高速で SNPタイピングを実現することができるが、本発明におけ る DNA塩基配列を決定する手段としてはこれに限定されな ヽ。 DNA試料を用いて DNAの塩基配列の決定を行う手段として、例えば、スラブゲルあるいはマルチキヤピ ラリーを用いた DNAシーケンサ一等によっても SNPタイピングを行うことができる。
[0053] (4- 2. SNPタイピングの手法〜その 2)
ハイブリダィゼーシヨンに基づく手法としては、例えば、 TaqMan PCR法(Livak, K. J. et al., PCR Methods AppL, 4, 357- 362(1995) ; SNP遺伝子多型の戦略、松原謙 一'榊佳之、中山書店、 94-105頁)を好適に挙げることができる。 [0054] 具体的には、まず、放射線治療を行う予定のがん患者力 DNA試料を抽出する。 そして、予め選定した本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される S NPサイトに相当する部位の塩基を含む DNAにハイブリダィズするための DNAオリ ゴマー(プローブ)(配列表の配列番号 1から配列番号 173のうちの任意の DNAオリ ゴマーまたはその相補鎖)の 末端にレポーター蛍光を標識する。本発明におい て、レポーター蛍光物質としては、前記した FAMや VICなどが例示できる力 これら に限定されない。さらに、前記プローブの 末端にクェンチヤ一物質を標識する。 本発明において、クェンチヤ一物質としては、レポーター蛍光を消光できる物質であ れば特に制限されない。例えば、 Dabcyl、 BHQ 1、 BHQ2、 Eclipse™ Dark Que ncher、 ElleQuencher™などを挙げることができる。
次いで、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SNPサイトに 相当する部位の塩基を含む DNAにハイブリダィズするための、レポーター蛍光およ びクェンチヤ一物質が標識されたプローブを、放射線治療を行う予定のがん患者か ら調製した DNAにハイブリダィズさせる。次いで、本発明の配列表の配列番号 1から 配列番号 173で示される SNPサイトに相当する部位の塩基を含む DNAを、 5' →3 ' ェキソヌクレアーゼ活性を有する DNAポリメラーゼを用いて増幅する。その結果、 レポーター蛍光とクェンチヤ一物質を標識したヌクレオチドプローブのレポーター蛍 光標識部分が切断され、レポーター蛍光が遊離する。本発明において、 5' →3' ェ キソヌクレアーゼ活性を有する DNAポリメラーゼとしては、 TaqDNAポリメラーゼを好 適に例示することができる力 これに限定されるものではない。この方法においては、 次いで、遊離したレポーター蛍光を検出し、さらに、当該レポーター蛍光の発光を対 照と比較する。なお、当該方法においては、本発明の配列表の配列番号 1から配列 番号 173で示される SNPサイトに相当する部位の塩基が放射線に対して副作用を 発症しやす!/、型の塩基配列 (発症群)である場合と、副作用を発症しにく!/、型の塩基 配列 (非発症群)である場合で異なるレポーター蛍光を標識した 2種類のヌクレオチド プローブを用いることで、 1回の反応で SNPタイピングを行うことが可能である。
[0055] (4 - 3. SNPタイピングの手法〜その 3)
ノ、イブリダィゼーシヨンに基づく他の手法としては、例えば、アレル特異的オリゴヌク レオチド(ASO : Allele Specific Oligonucleotide)ハイブリダィゼーシヨン法(Baner, J. et al, Nucleic Acids Res, 26, 5073- 5078(1998))を挙げることができる。
すなわち、特定位置の変異のみを検出するために、変異が存在すると考えられる 塩基配列を含む DNAオリゴマー(遺伝子マーカー)を予め作製し、これと DNA試料 の DNAとでハイブリダィゼーシヨンを行わせる。その結果、変異が存在するとハイブリ ッド形成の効率が低下するので、それをサザンブロット法や、特殊な蛍光試薬がハイ ブリツドのギャップにインターカレーシヨンすることにより消光する性質を利用した方法 等により SNPを検出することができ、さらに、検出された塩基配列を DNAシーケンサ 一等に供することによって直接 SNPに係る塩基の種類を判定することができる。次 ヽ で、判定された塩基種を比較することで、放射線による副作用を発症しやすい型の 塩基配列 (発症群)を有して!/、るか、副作用を発症しにく!/、型の塩基配列 (非発症群 )を有して!/、るかの SNPタイピングを行うことができる。
[0056] また、 DNAの切断に基づく手法としては、例えば、 Invader法を挙げることができる
(Lyamichev, V. et al., Nat Biotechnol, 17,292- 296(1999) ; SNP遺伝子多型の戦略 、松原謙一 ·榊佳之、中山書店、 94〜105頁)。
[0057] 具体的には、まず、放射線治療を行う予定のがん患者力 DNA試料を抽出する。
そして、予め選定した本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される S NPサイトに相当する部位の塩基から 5' 側の塩基配列と相補的な塩基配列、および 当該塩基の 1塩基 3' 側の塩基から 3' 側の塩基配列とはハイブリダィズしないが、 後記のインベーダープローブの一部の塩基配列と相補的な塩基配列(フラップ)、を 有するアレルプローブを合成する。
また、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SNPサイトに対 応する塩基 (任意の塩基)を 3' 末端とし、当該 SNPサイトに相当する部位の塩基の 1塩基 3' 側の塩基から 3' 側の塩基配列と相補的な配列を有するインベーダープ ローブを合成する。
次!、で、これらアレルプローブおよびインベーダープローブを DNA試料中の铸型 DNAにハイブリダィズさせる。この際、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 1 73で示される DNA塩基配列の SNPサイトに相当する部位の塩基に対応するインべ ーダープローブの塩基 (任意の塩基)が铸型 DNAとアレルプローブとの間に侵入す る。この侵入部位を認識して、該部位に対応するアレルプローブの塩基と該塩基の 1 塩基 側の塩基の間を切断するエンドヌクレアーゼ作用を有する酵素である Cleav ase (登録商標)を用いて、アレルプローブのフラップ部分を切断し、遊離させる。次 いで、遊離したフラップを、これと相補的な配列を有し、かつ、レポーター蛍光とタエ ンチヤー物質とが標識されている FRET (fluorescence resonance energy transfer)プ ローブをハイブリダィズさせる。当該 FRETプローブの 側には、自身で相補的に 結合できる塩基配列を有している。そして、 3' 側には、前記したようにフラップと相補 的な配列を有している。また、 自身で相補的に結合できる 側において、 末端 にはレポーター蛍光が標識され、当該 末端の 側にはクェンチヤ一物質が標 識されている。遊離したフラップの 末端の塩基が、 FRETプローブにハイブリダィ ズする結果、当該プローブのレポーター蛍光が標識された相補結合部位に侵入する ことで、 Cleavase (登録商標)が認識する構造が生成される。したがって、当該方法 においては、 Cleavase (登録商標)によるレポーター蛍光標識部分の切断によって 遊離したレポーター蛍光を測定し、測定した蛍光の強度を比較することで、放射線に よる副作用を発症しやすい型の塩基配列 (発症群)を有しているか、副作用を発症し にく!/、型の塩基配列(非発症群)を有して!/、るかの SNPタイピングを行うことができる
(4-4. SNPタイピングの手法〜その 4)
そして、ライゲーシヨンに基づく手法としては、例えば、 RCA (rolling circle amplifica tion)法を挙げることができる(Lizardi, P.M et al., Nat Genet, 19, 225- 232(1998) ; Ma gnus J., TECHNOLOGY DEVELOPMENT FOR GENOME AND POLYMORPHISM ANALYSIS, 23-24(2003), Karolinska University Press, Stockholm, Sweden; SNP遺 伝子多型の戦略、松原謙一 ·榊佳之、中山書店、 118〜127頁)。
RCA法は、特定の条件下で →3' ェキソヌクレアーゼ活性を有しない DNAポ リメラーゼが環状の一本鎖 DNAを铸型として、その上を移動しながら何周にもわたつ て DNAを合成し続けることで、長 、相補鎖 DNAを合成するものである。
したがって、 RCA法ではアレルの識別を RCA法による DNAの増幅の有無を判定 することで行う。すなわち、 DNAポリメラーゼによる合成の铸型になる DNAオリゴマ 一を直鎖にしておき、ゲノム DNAをライゲーシヨン反応の铸型とする、当該直鎖の D NAオリゴマーの 末端と、 5' 末端に設定した SNP部位でライゲーシヨン反応を 行う。このとき、ライゲーシヨンが完成して環状の一本鎖 DNAとなれば、 RCA反応が 進み、長い相補鎖 DNAを得ることができる。一方、 DNAオリゴマーがライゲーシヨン しなければ、環状の一本鎖 DNAとはならず、 RCA反応は進まない。このような RCA 反応を行うためには、ゲノム DNAとァニールし、かつ、環状になりうる一本鎖プロ一 ブ (パドロックプローブ)を作製する必要がある。
[0059] 具体的には、まず、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す SNPサ イト(121番目の塩基)を中心として、前後が 10〜20塩基の塩基力もなる DNA塩基 配列を予め選択しておく。そして、ノ ックボーンとなる特殊な配列を有する一本鎖の プローブの 3' 末端に、 SNPサイトの 5' 上流側の 10〜20塩基の DNAオリゴマー の 末端を結合する。そして、ノ ックボーンとなる一本鎖のプローブの 末端に、 SNPサイトの 3' 下流側の DNAオリゴマーの 3' 末端を結合する。なお、このとき用 いる SNPサイトの 上流側の DNA塩基配列は、配列表の配列番号 520から配列 番号 692に示す DNA塩基配列と一致する。なお、 DNAの合成を行う際の DNAポリ メラーゼの足場となるプライマーは、バックボーンとなるプローブと相補的な DNA塩 基配列を有する RCAプライマーが担う。
[0060] このような構成とすると、かかるパドロックプローブは、環状にしたときに SNPサイト が 3' 末端となるプローブとすることができる。すなわち、この SNPサイトの塩基がハ イブリダィズする、放射線治療を行う予定のがん患者カゝら調製した DNA試料 (ゲノム DNA)と相補的である場合は、ライゲーシヨン反応によって一本鎖の環状の DNAプ ローブとなるので、前記したように DNAポリメラーゼが当該環状の一本鎖 DNAを铸 型として長!、相補鎖 DNAを合成する。
これに対し、 SNPサイトの塩基がハイブリダィズするゲノム DNAと相補的でな!、とき はライゲーシヨン反応が起こらず、環状の一本鎖 DNAとはならないので、長い相補 鎖 DNAを合成することができない。したがって、長い相補鎖 DNAが存在するカゝ否か を電気泳動等で確認するだけで容易に SNPサイトと同じ塩基を有して ヽるか否かを 確認し得る点で利点がある。
なお、前記した DNA合成反応系に、当該 DNAポリメラーゼによって合成された相 補鎖 DNAに対して相補的な DNA塩基配列、すなわち、前記環状の一本鎖 DNAと 同じ DNA塩基配列、を有するプライマー(ブランチングプライマーという)も一緒に合 成系に入れておくことによって、合成する DNAをより大きな分子量とすることができる ので DNAの合成の有無が確実となり、より好適である。
[0061] (4- 5. SNPタイピングの手法〜その 5)
さらに、本発明に用いられる他の SNPタイピングの手法としては、例えば、 PCR-S ¾CP (single- strand conformation polymorphism;一本鎖尚次構造多型)法 (uenomic s, 12, 139-146(1992) ; Oncogene, 6, 1313- 1318(1991) ;PCR Methods Appl, 4, 275-2 82(1995))が挙げられる。
この方法は操作が比較的簡便であり、また被検試料の量も少なくて済む等の利点 を有するため、特に多数の DNA試料をスクリーニングするのに好適である。その原 理は次の通りである。二本鎖 DNA断片を一本鎖に解離すると、各鎖はその塩基配 列に依存した独自の高次構造を形成する。この解離した DNA鎖を、変性剤を含まな いポリアクリルアミドゲル中で電気泳動すると、それぞれの高次構造の差に応じて、 相補的な同じ鎖長の一本鎖 DNAが異なる位置に移動する。一塩基の置換によって もこの一本鎖 DNAの高次構造は変化し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動にぉ 、て異 なる移動度を示す。従って、 SNPサイトの塩基が異なる場合における電気泳動による 移動度が予め分力つていれば、その移動度の変化を検出することによって、一本鎖 DNAについての SNPタイピングを行うことができる。
[0062] 具体的には、まず、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SN Pサイトに相当する部位の塩基を含む DNAを PCR等によって増幅する。増幅される 範囲としては、通常 200〜400bp程度の長さが好ましい。 PCRの反応条件は、例え ば、熱変性を 94°Cで 40秒間行い、ァニールを 50°Cで 1分間行い、伸長反応を 72°C で 2分間行うというサイクルを 30回繰り返すことにより行うことができるがこれに限定さ れることはなぐ適宜条件を変更して行うことが可能である。
また、 PCRの際に、前記した各種の放射性同位元素、蛍光色素、またはピオチン 等によって標識したプライマーを用いることにより、 PCR産物を標識することができる 。あるいは、 PCR反応液に放射性同位元素、蛍光色素、またはピオチン等によって 標識された基質塩基を加えて PCRを行うことにより、 PCR産物を標識することも可能 である。さらに、 PCR反応後にタレノウ酵素等を用いて、放射性同位元素、蛍光色素 、またはピオチン等によって標識された基質塩基を、 PCR産物の断片に付加すること によっても標識を行うことができる。なお、ここで用いるプライマーとしては、配列表の 配列番号 174から配列番号 519に示す DNAオリゴマーからなる DNAオリゴマーセ ットを用いるのが好ましい。
こうして得られた標識化 PCR産物の断片を、熱を加えるなどして変性させ、尿素な どの変性剤を含まないポリアクリルアミドゲルを用いて電気泳動を行う。この際、ポリア クリルアミドゲルに適量(5〜10%程度)のグリセロールを添加することにより、 PCR産 物の断片の分離の条件を改善することができる。また、泳動条件は各標識化 PCR産 物の性質により変動するが、通常、室温(20〜25°C)で行い、好ましい分離が得られ ないときには 4〜30°Cまでの温度で最適の移動度を与える温度の検討を行う。電気 泳動後、標識化 PCR産物の移動度を、 X線フィルムを用いたオートラジオグラフィー や、蛍光を検出するスキャナ一等でシグナルを検出し、解析を行う。標識化 PCR産 物の移動度に差があるバンドが検出された場合、このバンドを直接ゲル力 切り出し 、 PCRによって再度増幅し、それを直接 DNAシークェンシングすることにより、変異 の存在と塩基の種類を確認することができる。また、 SNPサイトの塩基種による標識 ィ匕 PCR産物の移動度の差が既知である場合は、これと対比することによって、容易 に SNPタイピングを行うことができる。
[0063] (4-6. SNPタイピングの手法〜その 6)
さらに、本発明に用いられる他の SNPタイピングの手法としては、例えば、制限酵 素断片長多型(RFLP : Restriction Fragment Length Polymorphism)を利用した方法 や PCR— RFLP法が挙げられる。
[0064] 具体的には、まず、放射線治療を行う予定のがん患者力 DNA試料を抽出する。
ここで、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SNPサイトに相 当する部位において、 SNPによる塩基の置換により制限酵素の認識部位に変化を 生じた場合には、制限酵素切断断片の長さが変化する。したがって、生じる DNA断 片の大きさを、発症群と非発症群とを比較することで SNPの判定を行うことができる。 すなわち、この変異を含む DNA試料を PCR法によって増幅し、それぞれの制限酵 素で処理することによって、これらの変異を電気泳動後のバンドの移動度の差として 検出することができる。
また、染色体 DNAを制限酵素処理して電気泳動した後、本発明の配列表の配列 番号 1から配列番号 173で示す DNAオリゴマーを含んでなるプローブを用いてサザ ンブロッテイングを行うことによつても、変異の有無を検出することができる。
なお、ここで用いる制限酵素は、それぞれの変異に応じて適宜選択することができ る。また、この方法では、染色体 DNA以外にも放射線治療を行う予定のがん患者か ら調製した RNAを逆転写酵素で cDNAにし、これをそのまま制限酵素で切断した後 、サザンブロッテイングを行うことによつても判定することが可能である。
このように、制限酵素の認識部位における SNPの有無を検出することで放射線によ る副作用を発症しやすい型の塩基配列 (発症群)を有しているか、副作用を発症しに くい型の塩基配列(非発症群)を有して!/、るかの SNPタイピングを行うことができる。
[0065] (4- 7. SNPタイピングの手法〜その 7)
前述したように、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNA塩基 配列を有する DNAオリゴマーおよびその DNA塩基配列の情報は、ゲノム DNAの D NA塩基配列を直接解読して判定することの他、 DNA合成機等により合成して DN Aチップ用のプローブ等として用いることもできる。そして、本発明の配列表の配列番 号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーを DNAチップ用のプローブとして用い る態様の一つとして、放射線治療における副作用発症予測用 DNAチップを好適に 挙げることができる。
[0066] ここで、本発明における DNAチップとは、検出対象となる、配列表の配列番号 1か ら配列番号 173に示す DNA塩基配列を有する、 SNPサイトを含む DNAオリゴマー (DNAチップ用のプローブ)を基板上に整列(アレイ)化し、固定したものをいう。そし て、その基板上で蛍光標識されたターゲット DNAまたはターゲット RNAとのノ、イブリ ダイゼージョンを行い、 DNAプローブ上の蛍光シグナルを検出するものである。なお 、 DNAチップにおいては、一般的にガラス基板に固定した DNAオリゴマーがプロ一 ブとなり、溶液中のラベルした DNAがターゲットとなる。したがって、ガラス基板に固 定された前記 DNAオリゴマーを DNAチップ用プローブとする。
DNAチップには大きく分けて 2種類あり、 DNAをガラス表面上で合成して!/、く Affy metrix社方式と、 cDNAをガラス表面上に載せていくスタンフォード方式がある。 SN Pタイピングには Affymetrix社方式を用いるのが好まし!/、とされて!/、るが、本発明に ぉ 、てはこれに限定されず、スタンフォード方式を用いることもできる。
[0067] 以下、 Affymetrix社方式の DNAチップを適用した場合の、本発明の配列表の配 列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマー(DNAチップ用プローブ)を用い た DNAチップにつ 、て説明する。
Affymetrix社方式では、フォトリソグラフィック技術と光照射化学合成を組み合わ せて、ガラス基板上で、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す SNPサイトを 有する 20〜25bp程度の DNAオリゴマーを合成することで、本発明の配列表の配列 番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーを固定ィ匕した DNAチップを作製す ることができる。そして、サンプル由来の DNA力 合成した cDNA、またはサンプル 由来の RNAから逆転写によって合成した cDNAを铸型として in vitro transcriptionに よって蛍光標識 cRNAを合成し、本発明における DNAチップ用プローブとストリンジ ェントな条件下でノ、イブリダィゼーシヨンし、専用スキャナーによる蛍光イメージの測 定を行うことで、容易に放射線による副作用を発症しやすい型の塩基配列 (発症群) を有して!/ヽるカゝ、副作用を発症しにく ヽ型の塩基配列(非発症群)を有して!/ヽるかに つ!、ての SNPタイピングを行うことができる。
[0068] なお、ガラス基板に固定する DNAチップ用プローブは、配列表の配列番号 1から 配列番号 173で示される SNPサイトに相当する部位におけるターゲット DNAの塩基 の多型を検出することができるものであれば特に制限されない。すなわち、当該 DN Aチップ用プローブは、例えば、配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される S NPサイトに相当する部位の塩基を含むターゲット DNAにハイブリダィズするようなプ ローブであって、特異的なハイブリダィズが可能であれば、配列表の配列番号 1から 配列番号 173で示される SNPサイトに相当する部位の塩基を含む DNAに対し、完 全に相補的である必要はなぐ 1個若しくは複数個の塩基が欠失、置換若しくは挿入 したものであってもよい。また、本発明において基板に結合させる DNAチップ用プロ ーブの長さは、通常 10〜100bpとするのが好ましぐ 10〜50bpとするのがより好まし く、 15〜25bpとするのがさらに好ましい。
[0069] 当該 DNAチップを用いた SNPタイピングにおける前記ハイブリダィゼーシヨンの反 応液および反応条件は、基板に固定するヌクレオチドプローブの長さ等の諸要因に より変動し得る力 すなわち、複合体あるいは DNAチップ用プローブと結合するター ゲット DNAの融解温度 (Tm)に基づいて決定することができる。例えば、ハイブリダ ィズ後の洗浄条件として、通常「1 X SSC、 0. 1%SDS、 37°C」程度のストリンジェン トな条件を挙げることができる。 DNAチップに固定されて!、る DNAチップ用プローブ とハイブリダィズする相補鎖は、かかる条件で洗浄しても対象とするターゲット DNAと ノ、イブリダィズ状態を維持するものであることが好ましい。特に制限されないが、より 厳しいストリンジェントな条件として「0. 5 X SSC、0. 1%SDS、 42°C」程度、さらに厳 しいストリンジェントな条件として「0. 1 X SSC、0. 1%SDS、 65°C」程度の洗浄条件 を挙げることができる。なお、この他にも適宜 NaClや KC1といった塩濃度や温度条件 などを適宜変更することによってもノ、イブリダィズさせた DNAを洗浄することが可能 である。例えば、塩濃度を 3M以下、 2. 5M以下、 2M以下、 1. 5M以下、より好適に は、厳しいストリンジェントな条件である 1M以下、 0. 75M以下、 0. 5M以下、さらに は、 0. 25M以下、 0. 1M以下の塩濃度力も適宜に選択することができる。また、温 度条件としては、その温度条件を少なくとも約 15°C、約 20°C、約 25°C、約 30°Cの中 力も適宜選択することができ、より好適には、厳しいストリンジェントな条件である 35°C 以上、 40°C以上、 45°C以上、 50°C以上、 60°C以上、 70°C以上、場合によっては 80 °C以上の中から適宜選択することができる。
[0070] 以上述べたように、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で示される SN Pサイトに相当する部位の塩基を含む少なくとも lObp有する DNAオリゴマーやこれ と相補的な DNAオリゴマーは、 SNPタイピングにおけるプローブ(当該プローブが固 定化された基板を含む)やプライマーとして用いることができる。
[0071] 本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーをプライマ 一として用いる場合、その長さは、通常 10〜241bpであり、好ましくは 15〜200bp、 より好ましくは 15〜: L00bp、さらに好ましくは 17〜50bp、最も好ましくは 20〜30bp である。そして、 DNAオリゴマーをプライマーとして用いる場合は、配列番号 174から 配列番号 519に示す DNAオリゴマーを、配列番号 174力も順次 2つを 1セットとして 用いる DNAオリゴマーセットを用いることが好ましいが、これに限定されることはなぐ リスクアレルである SNPサイト( 121番目の塩基)を含んで増幅することができるもので あれば配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNA塩基配列を参考に適宜 作製して用いることも可能である。また、ヒト染色体上のこれら配列の外側にある配列 を使って DNAオリゴマーセットを作成することも可能である。
[0072] また、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNAオリゴマーをプローブとし て用いる場合、当該プローブは、本発明の配列表の配列番号 1から配列番号 173で 示される SNPサイト(121番目の塩基)に相当するサイトの塩基を含む DNAに特異 的にハイブリダィズするものであれば、特に限定されることはない。当該プローブは、 通常少なくとも 15bp以上の長さを有するのが好ましい。
そして、本発明の DNAオリゴマーは、例えば、市販の DNA合成機により好適に作 製することができるがこれに限定されることはなぐ大腸菌等に形質転換導入した当 該 DNA塩基配列を有するベクター力 制限酵素処理等することによって取得できる 二本鎖 DNA断片として作製してもよ 、。
[0073] [5.放射線治療に用いる放射線〕
本発明において、放射線治療に用いることのできる放射線としては、 X線、 γ線、重 粒子線、電子線を好適に用いることができるが、これに限定されることはなぐ陽子線 、中性子線といった放射線も用いることができる。
[0074] 〔6. SNP情報〕
SNPタイピングを行うための情報は、 NCBIの dbSNP (http://www.ncbi.nlm.nih.go v/SNP/)や種々の文献情報等に記載されている各遺伝子の情報、および JSNP DB (http://snp.ims.u-tokyo.ac.jp/)に登録された情報から SNPに関する情報を得た。
[0075] [7.放射線治療における副作用発症予測方法〕
次に、図 1を参照して、被験者(がん患者)から採取した試料力も調整した DNA試 料の DNA塩基配列を直接解析して、本発明の放射線治療における副作用発症予 測用 DNAオリゴマーの DNA塩基配列における SNPサイト(121番目の塩基)と合致 する力否かを判定する放射線治療における副作用発症予測方法について説明する 。図 1は、本発明の放射線治療における副作用発症予測方法を説明するためのフロ 一チャートである。
[0076] 本発明に係る放射線治療における副作用発症予測方法は、配列表の配列番号 1 力も配列番号 173に示す DNAオリゴマーを用いて判定を行う、下記 (a)〜 (g)のェ 程を含むものである。
(a)放射線治療が施行される予定のがん患者カゝら採取した試料をもとに DNA試料を 調製する工程 (ステップ Sl)、
(b)前記(a)の工程で調製した前記 DNA試料をもとに DNAを増幅して DNA産物を 得る工程 (ステップ S 2)、
(c)前記 (b)の工程で増幅した DNA産物を铸型として伸長反応を行 、、伸長産物で ある DNAオリゴマーを得る工程 (ステップ S3)、
(d)前記 (c)の工程で得られた DNAオリゴマーの DNA塩基配列を解析する工程 (ス テツプ S4)、
(e)前記(d)の工程で解析された DNAオリゴマーの DNA塩基配列のうち 121番目 の位置に相当する塩基と、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示す DNA塩基 配列の 121番目の塩基とを照合する工程 (ステップ S 5)、
(f)前記 (e)の工程で照合された塩基を有するアレルがリスクアレルであるか非リスク アレルであるかを判定する工程 (ステップ S6)、
(g)前記 (f)の工程で判定した結果から、前記放射線治療が施行される予定のがん 患者における放射線による副作用の発症危険率を予測する工程 (ステップ S7)。
[0077] 以下、本発明の放射線治療における副作用発症予測方法の各工程について詳細 に説明する。
まず、(a)の工程では、放射線治療が施行される予定のがん患者から採取した試料 をもとに DNA試料を調製する (ステップ Sl)。このとき、採取した試料としては、血液 を用いるのが好ましいが、これに限定されず、例えば、皮膚、口腔粘膜、毛髪、手術 等によって切除された組織など、 DNAを含む試料であればどのようなものでも用いる ことができる。力かる試料を用いれば、染色体 DNAなどの DNA試料を好適に抽出 することができる。
この工程にぉ 、て、放射線治療が施行される予定のがん患者力 採取した血液( 試料)から DNA試料を抽出するには、血液から自動的に DNAを抽出する、自動 DN A抽出装置を用いるのが好適である。大量のサンプルの DNAを抽出する時間を節 約することができるうえに操作が簡便だ力もである。また、力かる自動 DNA抽出装置 を用いる場合は、装置に添付の標準のプロトコルにより DNAを抽出することが望まし V、が、適宜プロトコルを改変して用いることも可能である。
[0078] また、他の簡便に DNA試料を抽出する方法として、各社から販売されている簡易 なシステムまたはキットを用いて DNA試料の抽出を行ってもょ 、。
さらに、他の DNA試料の抽出する方法としては、フエノールークロロホルム処理と エタノール沈殿(BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Da vis et al, P.16-21)を行うことでも DNA試料を抽出することが可能である。また、力 S ん患者カゝら採取した試料から、必要に応じてトータル RNAの精製 (グァ二ジンイソチ オシァネート一塩化セシウム超遠心分離法; BASIC METHODS IN MOLECULAR BI OLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P.322- 328)や、ポリ A+— RNAの単離(BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P.344- 349頁 )や、これらを基にして cDN Aの合成(First— Strand cDNAの合成; BASIC METH ODS IN MOLECULAR BIOLOGY 2nd EDITION, Davis et al., P.515- 522 ;同著 P. 136- 137)を行ってもよい。さらに、これらの各操作を、各社から販売されている試薬 やキット等を用いることも可能である。
[0079] 次に、(b)の工程では、前記の工程で DNA試料をもとに DNAを増幅して DNA産 物を得る(ステップ S2)。この工程で DNA試料の DNAを増幅する方法としては、 PC R法を好適に用いることができる。 PCRに用いるプライマーとしては、例えば、配列表 の配列番号 174から配列番号 519に示す DNAオリゴマーのセットを配列番号 174 力 順次 1セットとした PCR増幅用のプライマーセットを用いるのが好ましい。そして、 PCRの反応条件としては、例えば、 94°Cで 2分間の熱変性の後、 94°Cで 40秒間の 熱変性と、 50°Cで 1分間のアニーリングと、 72°Cで 2分間の伸長反応と、いうサイクル を 30回繰り返した後、 72°Cで 5分間の最終伸長反応を行うことを好適に示すことがで きるがこれに限定されることはなぐ適宜に条件を変更することも可能である。また、 P CR法に拠らな 、でも DNA産物を増幅できる場合には、 DNAポリメラーゼ等を用い て DNAの増幅を行ってもよ!、。
[0080] 次に、(c)の工程では、前記の工程で増幅した DNA産物を铸型として伸長反応を 行い、伸長産物である DNAオリゴマーを得る(ステップ S3)。このとき用いる DNA塩 基配列を解析するための伸長用のプライマーとしては、本発明の配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す DNAオリゴマーを用いるのが好ましい。また、伸長反 応の条件は、適宜に設定 ·変更することが可能であるが、各伸長用のキットで指定さ れて 、る条件とするのが好ま 、。
[0081] 次に、(d)の工程では、前記の工程で伸長反応を行った DNAオリゴマーの DNA 塩基配列を解析する (ステップ S4)。
ここで、 DNA産物の DNA塩基配列を解析する方法としては、前記で詳述した DN A塩基配列を直接解析する方法である、 MALDI— TOFZMS法を好適に用いるこ とができる力 これに限定されることはなぐ前述した適宜の手法を用いて DNA塩基 配列の解析、すなわち、 SNPタイピングを行うことができる。
[0082] 次に、(e)の工程では、前記の工程で解析された DNAオリゴマーの DNA塩基配 列のうち 121番目の位置に相当する塩基と、配列表の配列番号 1から配列番号 173 に示す DNA塩基配列の 121番目の塩基とを照合する (ステップ S 5)。
そして、次の(f)の工程では、前記の工程で照合された塩基を有するアレルがリスク アレルであるか非リスクアレルであるかを判定する(ステップ S6)。
[0083] このようにして、配列表の配列番号 1から配列番号 173に示した DNA塩基配列の 1 21番目の位置の塩基に相当する DNA産物の塩基力 リスクアレルであるか非リスク アレルであるかを判定した結果と、その他の SNPサイトにおけるアレル頻度等を総合 的に勘案して、次の(g)の工程において、放射線治療が施行される予定のがん患者 における放射線による副作用の発症危険率を予測する (ステップ S7)。
[0084] 以上、本発明に係る副作用発症予測用 DNAオリゴマー、遺伝子マーカー、 DNA オリゴマーセット、および、放射線治療における副作用発症予測方法について詳細 に説明してきたが本発明はこれらの内容に限定して解してはならず、本発明の趣旨 を逸脱しな 、範囲で広く変更 ·改変して行うことができることは 、うまでもな!/、。
[0085] 例えば、(1)本発明の放射線治療における副作用発症予測用遺伝子マーカーに、 蛍光色素、放射性同位元素、蛍光色素発光用酵素、または、特定の物質との結合能 を有するタンパク質のうちの少なくとも一つを付加した構成とすることができる。
[0086] 例えば、(2)本発明の放射線治療における副作用発症予測用遺伝子マーカーは、 リスクアレルと相補的な DNA塩基配列を有する DNAオリゴマーと、非リスクアレルと 相補的な DNA塩基配列を有する DNAオリゴマーとを、異なる種類の蛍光色素、放 射性同位元素、蛍光色素発光用酵素、または、特定の物質との結合能を有するタン パク質、を用いてそれぞれ付加した構成とすることができる。
[0087] 本発明の検出用 DNAオリゴマーは、前記発明の諸側面として定義した〔1〕から〔1 6〕または〔20〕のうちいずれかの DNAオリゴマー、または、〔18〕または〔19〕の DNA オリゴマーセットのうち少なくとも一方の DNAオリゴマーに、蛍光色素、放射性同位 元素、蛍光色素発光用酵素、または、特定の物質との結合能を有するタンパク質、を 付加した構成とすることができる。
[0088] 例えば、(3)本発明の検出用 DNAオリゴマーは、リスクアレルと相補的な DNA塩 基配列を有する DNAオリゴマーと、非リスクアレルと相補的な DNA塩基配列を有す る DNAオリゴマーとを、異なる種類の蛍光色素、放射性同位元素、蛍光色素発光用 酵素、または、特定の物質との結合能を有するタンパク質、を用いてそれぞれ付加し た構成とすることができる。
[0089] 例えば、(4)本発明の放射線治療における副作用発症予測方法は、配列表の配 列番号 520から配列番号 692に示す DNAオリゴマーを用いて判定を行う、下記(a) 〜 (e)の工程を含むことを特徴とする、放射線治療における副作用発症予測方法とし てもよい。(a)放射線治療が施行される予定のがん患者力 採取した試料をもとに D NA試料を調製する工程、(b)前記 (a)の工程で調製した前記 DNA試料と、配列表 の配列番号 520から配列番号 692のうちいずれかに示す DNA塩基配列を有する D NAオリゴマーと、をノヽイブリダィズさせる工程、(c)前記 (b)の工程でノヽイブリダィズ した前記 DNAオリゴマーを、 ddNTPを用いてアレル特異的に 1塩基伸長する反応 を行う工程、 (d)前記 (c)の工程でアレル特異的に 1塩基伸長した DNAオリゴマーの ddNTPの塩基を解析する工程、 (e)前記 (d)の工程で解析された ddNTPの塩基と 、配列表の配列番号 1から配列番号 157のいずれかに示す DNAオリゴマーの 121 番目の塩基と、を照合する工程、(f)前記 (e)の工程で照合された塩基を有するァレ ルがリスクアレルであるか非リスクアレルであるかを判定する工程、(g)前記 (f)のェ 程で判定した結果から、前記放射線治療が施行される予定のがん患者における放 射線による副作用の発症危険率を予測する工程。
[0090] そして(5)前記の ddNTPが、蛍光色素、放射性同位元素、蛍光色素発光用酵素、 または、特定の物質との結合能を有するタンパク質、を付加したものとすることができ る。
実施例
[0091] 次に、本発明に係る副作用発症予測用 DNAオリゴマー、遺伝子マーカー、 DNA オリゴマーセット(PCR用プライマー)と DNAオリゴマー(伸長プライマー)、および、 放射線治療における副作用発症予測方法を、実施例を参考にしてさらに具体的に 説明する。
[0092] 副作用の発症危険率を予測するための SNPの検討は、(1)ヒト培養細胞株におけ る放射線感受性の遺伝子の解析と (2)マウス系統差における放射線感受性の遺伝 子の解析を行い、(3)文献調査を行い、(4)放射線による副作用の発症に関連した 遺伝統計学的解析を行った。
[0093] まず、〔1〕ヒト培養細胞株における放射線感受性の遺伝子については、放射線感 受性に関わる遺伝子についてこれまでにも多くの報告がある。それらは一部の DNA 修復遺伝子など、特定の機能を持った遺伝子に焦点が当てられたものであった。本 発明においては、これらの遺伝子についても検討をカ卩えている力 ヒトゲノムの全 DN A塩基配列が決定されたことを受けてその DNA塩基配列情報の解析カゝら遺伝子ま たは遺伝子候補と考えた 21, 000種類を選択し、 Agilent社 (CA, USA)に委託し てこれらの遺伝子特異的な 60塩基の DNA塩基配列を持ったオリゴアレイを作製して 、独自に放射線感受性の分類に有効な遺伝子の検索を行った。 まず 60種類のヒト培養細胞株の線量—生存率曲線を求め、感受性の異なる 32細 胞株を選択して X線照射前後の遺伝子発現プロファイルを細胞間で比較し、 D
10、 D q
, α / βなどの複数のモデルのパラメータ別に細胞株の分類に有効な遺伝子を同 定し、放射線感受性遺伝子候補とした。この中には細胞増殖、細胞周期調節、レドッ タス、 DNA損傷修復などに関わると考えられる遺伝子が含まれて 、た。
[0094] 次に、〔2〕マウス系統差の解析については、放射線感受性の異なる AZJ, C3H/ HeMs, C57BL6Jの 3系統のマウスに関して、皮膚 '肺'腸管等各種臓器における放 射線照射後の損傷 Z修復過程を判定した (M. Iwakawa et al, Radiation Res. , 44, 7- 13 (2003)) oまた同時に、マイクロアレイを用いて対象臓器での放射線照射後の遺伝 子発現プロファイルを比較し、系統差に関連すると考えられる遺伝子群を抽出した。 そして、これら遺伝子のヒトホモログを感受性遺伝子候補とした。この中には、シグナ ルトランスダクシヨン、アポトーシス、免疫関連の遺伝子が含まれていた。
[0095] 〔3〕放射線による副作用の発症に関連した遺伝統計学的解析では、候補遺伝子 上の多型マーカー(SNPサイト)に関する DNA塩基配列情報は、 UCSC Genome Biomformatics (ノ ~~ンヨン: Uし SC Human April 2003 (http:// genome.ucsc.edu/) ) 、 J¾NP DB (http:// snp.ims.u— tokyo.ac.jp/)、 doSNP (http://www.ncbi.nlm.nih.gov /SNP/)から得た。我々が収集した健常人集団(非発症群の SNPアレルを有する集 団)を用いてこれらのアレルの多型頻度を解析し、解析するアレルの選択を行った。 次に、放射線による副作用の発症の判定などによって分類した集団に対して SNP タイピングを行った。研究の対象は、 2001年 10月力 2003年 12月までに当該研究 を行うことについてのインフォームド 'コンセントを取得するとともに血液および診療情 報の提供を受けた乳がん患者 218人、子宮頸がん 57人、前立腺がん 71人について まず診療データ解析を行い、多型頻度解析のために層別化を行った。放射線による 副作用(障害)の発症は、乳がん患者は皮膚障害、子宮頸がん患者では腸管障害( 下痢)、前立腺がん患者では膀胱'尿道障害 (排尿障害)を対象とした。そして、各障 害別に放射線治療開始力 3ヶ月未満 (早期のステージ)、 3ヶ月(晩期 3ヶ月のステ 一ジ)、 6ヶ月(晩期 6ヶ月のステージ)での判定結果により 2群に分類した。
[0096] 表 1から表 18は、 DNAを採取し、 SNPタイピングを行うことについてインフォームド •コンセントを得た乳がん患者、子宮頸がん患者、前立腺がん患者について、それぞ れ放射線治療開始力も早期のステージ、晩期 3ヶ月のステージ (子宮頸がんについ ては記載していない)、晚期 6ヶ月のステージにおけるアレル頻度を統計学的に求め て示した表である。がん種、放射線治療による副作用(障害)を確認した時期、および 調査対象部位を各表ごとに示す。
[0097] すなわち、表 1から表 3は、乳がんの放射線治療開始から早期のステージにおける 乳がん患者群のアレル頻度を、表 4および表 5は、放射線治療開始から晩期 3ヶ月の ステージにおける乳がん患者群のアレル頻度を、表 6および表 7は、乳がんの放射線 治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける乳がん患者群のアレル頻度を、表 8から 表 11は、子宮頸がんの放射線治療開始から早期のステージにおける子宮頸がん患 者群のアレル頻度を、表 12は、子宮頸がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステ ージにおける子宮頸がん患者群のアレル頻度を、表 13および表 14は、前立腺がん の放射線治療開始力 早期のステージにおける前立腺がん患者群のアレル頻度を、 表 15および表 16は、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにお ける前立腺がん患者群のアレル頻度を、および、表 17および表 18は、前立腺がん の放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける前立腺がん患者群のアレル頻 度をそれぞれ表す。
[0098] そして、表 1から表 18の A欄から J欄は、以下の内容を示す。
A欄:各 SNPに割り当てられて!/、る公共データバンク(NCBIや JSNP (IMS— JST SNP) )に登録されている SNP IDと遺伝子型、つまり、確認できたアレル頻度を示す ものである。なお、乳がんについては皮膚障害、子宮頸がんについては腸管障害、 前立腺がんについては尿道障害を調査対象とした。
ここで示される遺伝子型にお!、て上段のアレルがリスクアレルを示し、下段のアレル が非リスクアレルを示す。ここで、例えば CZCや GZGは、対立遺伝子において C ( シトシン)とじ(シトシン)のホモ接合体、 G (グァニン)と G (グァニン)のホモ接合体であ ることを示し、 CZGは、 C (シトシン)と G (グァニン)のへテロ接合体であることを示す また、放射線治療による副作用を確認した時期について、早期とは、放射線治療後 3ヶ月未満に障害が認められたことを示し、晩期 3ヶ月とは、放射線治療後 3ヶ月を経 過した後 6ヶ月以内に障害が認められたことを示し、晩期 6ヶ月とは、放射線治療後 6 ヶ月を経過した後に障害が認められたことを示す。
[0099] なお、注目する障害によっては、関係するリスクアレルが逆になる場合もある。例え ば、表 1に示す rs2561829のサイトでは、乳がんの放射線治療後早期のステージで は CZCのアレルがリスクアレルとなる力 表 17に示す前立腺がんの放射線治療後 晚期 6ヶ月のステージでは、 TZTのアレルと TZCのアレルがリスクアレルとなる。現 在のところ遺伝子の機能解析が完了して ヽな ヽことから、かかる現象が生じること〖こ ついての説明は難しいが、統計的解析を行うとこのような結果となる。これは、リスクァ レルと非リスクアレルの違いが、発現する遺伝子やタンパク質の機能、発症部位や時 期によってベクトル (すなわち、遺伝子の転写 ·翻訳の方向)が逆方向になる可能性 や、各アレル力 の発現量のバランスなどが影響するものと考えられる。このような SN Pサイトとしては、前記の rs2561829の他に、 rs4818 (表 3と表 4参照)、 rs791041 ( 表 2と表 17参照)、 rs704227 (表 12と表 15参照)、 rs2283264 (表 2と表 17参照)、 rs73234 (表 2と表 9と表 14参照)、 rs518116 (表 3と表 12参照)、 rsl l71097 (表 1 と表 15参照)、 rs791040 (表 2と表 17参照)、 rsl 145720 (表 3と表 18参照)、 rsl l 44153 (表 2と表 17参照)、 rs2267437 (表 1と表 8と表 13参照)、 rs2270390 (表 1 2と表 16参照)、 rs2072817 (表 7と表 8参照)が挙げられる。
[0100] B欄:放射線治療を行った後に障害が認められた症例数 (n)と、そのグレード (Gra del〜4)を示す。
C欄:障害が認められな 、 (GradeO)力 障害が軽微であった (Gmdel)症例数 (n )を示す。
副作用の度合いは、 GradeO, 1, 2, 3, 4と、数字が大きくなる程重症であることを 示す。早期のステージにおける副作用に対する判定は、国際的な判定基準である N ClZ CTC (Nationalし ancer Institute, し ommon Toxicityし riteria)に従った。また、放 射線治療開始から 3ヶ月と 6ヶ月のステージにおける副作用(障害)に対する判定は、 国際的な判定基準である RTOG (Radiation Therapy Oncology Group)に従った。な お、取得した臨床情報から、がん種に応じて項目を選択し、例えば乳がんでは年齢、 喫煙、飲酒、合併症、家族病歴、 TNM分類、病理検査、化学療法、照射方法、再燃 •転移等に関する 38項目について解析し、標準化を行い、条件に合致しない症例は 多型頻度解析から除外した。
[0101] D欄:フィッシャー (Fisher)の正確確率検定(直接確率)による P値を示す。生物学 における統計学的には P値が 0. 05以下である場合、それらには有意な差があるとし て評価することができる。なお、本発明では、自由度は全て 1としている。
E欄:相対危険度を表す。相対危険度は、リスク比または危険率ともいわれ、要因を 有する場合(それぞれのリスクアレルあるいはこれらのリスクアレルの組み合わせによ る判定から、放射線感受性である(すなわち、副作用を発症する危険がある)と判定さ れること)に副作用(障害)を発症するリスクを、要因を有さない場合 (ほとんど副作用 を発症せず、放射線非感受性である (すなわち、副作用を発症する危険がない)と判 定されること)に副作用を発症するリスクで除算した値である。この相対危険度は、そ の値が高いほど副作用を発症する危険が高いアレルであることを示す。
F欄: 95%信頼区間を示す。なお、各表には、サンプルの一部のアレル頻度が「0」 であるために、相対危険度や 95%信頼区間が求めることができないデータもある(表 1から表 18中において「一」で示す)。
[0102] G欄:リスクアレルを有する、本発明の放射線治療における副作用発症予測用 DN Aオリゴマーの配列番号を示す。
H欄: PCRに用いた DNAオリゴマー(フォワードプライマー)の配列番号を示す。
I欄: PCRに用いた DNAオリゴマー(リバースプライマー)の配列番号を示す。
なお、各 SNPサイトにおいて H欄と I欄に示す配列番号の 1セットからなる DNAオリ ゴマーのセットは、 PCR増幅用のプライマーセットとして用いることができる。
[0103] J欄: SNPタイピングを行った際に使用した DNAオリゴマー(伸長プライマー)の配 列番号を示す。なお、本発明の伸長プライマーの中には、配列番号 1から配列番号 1 73に示す DNAオリゴマーと同じ向きのストランドの DNA塩基配列を有するものと、こ れと逆向きのストランドの DNA塩基配列を有するものがある。逆向きのストランドであ る伸長プライマーの場合は、これの 下流側に付加される塩基と相補的な塩基が、 配列番号 1から配列番号 173のいずれかに示す 121番目の塩基(リスクアレル)に該 当する。
[0104] 具体的に一例をもってその説明を行うと、例えば、表 1の一番上に示す SNP ID:rs 1171097は、放射線治療を開始してから早期のステージ(3ヶ月未満)における乳が ん患者の皮膚に障害が確認されたものであって、その遺伝子型は、 CZCのホモ接 合体 (表 1から表 18の A欄では「遺伝子型」として表記する。以下同じ。)がリスクァレ ルであることを示している。なお、この SNPにおいては、 GZGのホモ接合体および C ZGのへテロ接合体は非リスクアレルである (A欄)。
[0105] より詳細に見ていくと、放射線治療開始力 早期に皮膚に障害が認められた (Gmd el, 2, 3)乳がん患者の総計は 135人 (B欄)、皮膚に障害が認められな力つた (Gra deO)乳がん患者の総計は 12人であった (C欄)。
ここで、皮膚に障害が認められた乳がん患者にぉ 、て czcのホモ接合体を有して いた人数は 88人であるのに対し、皮膚に障害が認められな力つた乳がん患者にお V、て GZGのホモ接合体力 CZGのへテロ接合体のホモ接合体を有して 、た人数は 47人である(B欄)。
一方、皮膚に障害が認められな力つた乳がん患者において CZCのホモ接合体を 有していた人数は 3人であるのに対し、皮膚に障害が認められな力つた乳がん患者 にお 、て GZGのホモ接合体力 CZGのへテロ接合体のホモ接合体を有して!/、た人 数は 9人である(C欄)。
[0106] これらの結果をフィッシャーの直接確率検定により統計学的に解析した結果、乳が ん患者にぉ 、て、 CZCのホモ接合体を有する者と GZGのホモ接合体力 CZGのへ テロ接合体のホモ接合体を有する者との間において有意差 (P値 =0. 01041)を得 ることができた (D欄)。また、力かるリスクアレルの相対危険度は 1. 15であり(E欄)、 95%信頼区間は 1. 02-1. 30であった (F欄)。
[0107] そして、力かるリスクアレルを有する DNAオリゴマーの DNA塩基配列が記載されて いる配列番号は、配列番号 17であり(G欄)、力かる DNA塩基配列の増幅のために 用いた PCR増幅用プライマーのうち、フォワードプライマーの配列番号は、配列番号 206であり(H欄)、リバースプライマーの配列番号は、配列番号 207である(I欄)。そ して、かかる SNPサイト(リスクアレル)の DNA塩基を決定するために用いられた伸長 プライマーの配列番号は、配列番号 487である (J欄)。
以上、本発明で示した表について一例をもって説明を行ったが、これは、表 1から 表 18で示す SNP全てに共通するものである。
[表 1]
Figure imgf000051_0001
2]
Figure imgf000052_0001
3]
Figure imgf000053_0001
rs4818 : Grade 2,3 Grade 0,1
n = 40 n = 107 Fisher (p懺) 相対危険度 [95¾信頼区闐]
遺伝子型 132 436 437 651
G/G 7 1 0.00047 3.69
6/C or C/C _ 33
Figure imgf000053_0002
Γ82232242 Grade 2,3 Grade 0,1
n = 40 n = 106 Fisher (p値) 相対危険度 [95%信頼区間]
遗伝子型 E 59 290 291 578
A/A 35 73 0.03308 2.46
A G or G/G — 5 _
Grade 2,3 Grade 0,1
n = 107 Fisher (p値) 相対危険度 [95%信頼区間]
遺伝子型 98 368 369
T/T or T/C 27 50 0.0239 Z.02
C/C 12
rs24^ 7 Grade 2,3 Grade 0,1
n = 39 n = t07 Fisher (p fil) 相対危険度 [95¾ffi竊区間〗
遺伝子型 91 354 K 355 or T/C 27 50 0.0239 2.02
12
Γ8243336 Grade 2,3 Grade 0,1
n = 40 n = 107 Fisher (p値) 相対危険度 [95%信頼区間]
遺伝子型 90 352
C/C or C/G 29 57 0.03962 1.87
G/G 11
rs1 385 Grade 2,3 Grade 0,1
n = 4D n = 107 Fisher (p ffi) 相対危険度 [95¾信頼区間]
遺伝子型 19 BB 210 SB 21 1 BE 538 or G/A 38
2
rs3750496 Grade 2,3 Grade 0,1
n = 40 n = 107 Fisher【p値) 相対危 IS度 [95¾ffi頼区間]
遗伝子型 406 BB 636
A/A 40
A/G or—G/G _ 0
rs518l:l€: :;:::: Grade 2.3 Grade 0,1
n = 39 n = 107 Fisher (p値) 相対危険度 [95%信頼区間]
遺伝子型 SB 138 448 E 449 657
5 0.01497 2.92
A/G or G/G 34
rs227261B: : Grade 2,3 Grade 0,1
π = 40 n = 107 Fisher (p ffi) 相対危険度 [95信頼区間]
遺伝子型 73 318 319 SE 592 or G/A 18 29 0.04756 1.74
22
st530i7 : Grade 2,3 Grade 0,1
n = 40 n = 106 Fisher (p値) 相対 険度 [95%信頼区間]
遺伝子型 26 224 E 225 IE 545
A/A 24 0.03965 1.82
A/G or G/G 16
Γ549835 8;; Grade 2,3
π = 40 Fisher (p値) 相対危険度 [95%信頼区間]
遺伝子型 137 446 447 6£ 656
C/C 36 0.01661 2.92
C/T or T/T 4
4] 櫊 棚 櫊 櫊 F糊 棚 櫊 I欄 櫊 値)
1
i¾222 ,2,3 0
[95¾
3 3 577
11
88
rs3809*54 ; ,2,3 0
値) ft [95%
3
Figure imgf000054_0001
5]
Figure imgf000055_0001
値) 相対危険度 信頼区閱] 遺伝子型 相対危険度 信頓区間] 遺伝子型 相対危険度 頼区間] 遺伝子型 値) 相対危険度 信賴区 遺伝子型
値) 相対危険度 信頼区間] 遺伝子型 値) 相対危険度 倌頼区間] 逸伝子型 §S5S3S
fit) 相対危険度 借頼区間] 遺伝子型
6]
Figure imgf000056_0001
7] 6
欄 棚 欄 棚 櫊 櫊 檲 櫊 rs2072817-
Figure imgf000057_0001
rs2073747. : ,2,3 0
[95 S
Figure imgf000057_0002
8] ΒΜ cm GW W 値) 相対危険度 倍頼区間]
τ/τ
Figure imgf000058_0001
n 値) 相対危険 S 信頼区間]
1.14
G or
値) 相対危晚度 信頼区間]
4
Figure imgf000058_0002
値) 相対危険度 信頼区間]
Figure imgf000058_0003
n n 値) 相対危険度 信頼区 M]
9] SSI
AtBB ciM 櫊 禰 棚 櫊 櫊 rS224857 r : ,2,3 0
Cp fii) [95¾
ea 3oc 301 583
Figure imgf000059_0001
10] BH 棚 «B 欐 欄 棚 糊 棚 227053 、
T
Figure imgf000060_0001
rsfi09557 2,3 0、 1
S
T
11]
Figure imgf000061_0001
rs2274760 2
13 相対危険度 ほ頼区閒]
®伝子型 rs3 0,
13 29 値) 相対危険度 [95¾僧頼区間]
逸伝子型 rs270b 2,3 0,
13 29 値) 相対危険度 倌頼区間]
遺伝子 S S rs2433fi7
値) 相対危険度 [95¾傷頼区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 頼区間]
5伝子型 相対危険度 信頼区間]
遣伝子型 rs38037^:
相対危険度 信頼区間]
遗伝子型 値) 相対危 ¾度 信頼区間]
遗伝子型 rs227055
13 値) 相対危険度 信頼区間]
遣伝子型
3.45
12]
Figure imgf000062_0001
- :
値) 相対危険度 頼区
遺伝子型 rsI047347
値) 相対危険度 区
遠伝子型 S 値) 相対危険度 信頼区間]
遺伝子翌
or /G
rs5l8116
値) 相対危険度 信頼区間]
遺伝子型 S rsl 862555
値) 相対危険度 信賴
遣伝子型 "5T3S§2ひ
値) 相対危晚度 信頼区間]
伝子型
Figure imgf000062_0002
値) 相対危険度 〖 儅頼区間]
伝子型
Figure imgf000062_0003
相対危険度 倌頼区閱]
遣伝子型 S 細さ 6
値) 相対危険度 頼区間]
逸伝子型 ;
相対危険度 %mffi
遺伝子型 値) 相対危険度 頼区間]
遺伝子型
13]
Figure imgf000063_0001
14]
Figure imgf000064_0001
蘭 376: : Grade 1,2,3 Grade 0
n = 32 π = 38 Fisher (p値) 相対危険度 短区間]
遣伝子型 5 SB 182 § 183 ί
T/T or /C H 6 0.01603 1.94 1.22 3.10
C/C 18 32
ris282065 ;- . Grade 1 ,2,3 Grade 0
n = 32 n = 38 Fisher (p値) 相対危険度 [S5¾倌頼区間]
遗伝子型 103 378 379 f
11 5 0.04713 1.77 1.10 2.83
G/G 21
Γ52750 0.; Grade 1,2,3 Grade 0
n = 32 π = 38 Fisher Cp fit) 相対危険度 [95%信頼区間]
®伝子型 102 SB 376 BB 377 ί or /C 12 5 0.02536 1.87 1.18 2.97
20 33 _
rs2616023 Grade 1,2,3 Grade 0
π = 32 n = 38 Fisher (p値) 相対危険度 [95¾fg頼区間]
遺伝子型 96 364 365 615 or G/A 12 5 0.02536 1.87 1.1B 2.97
20 33
TS228783Q Grade 1,2,3 Grade 0
n = 32 n = 38 Fisher (p ffi) 相対危険度 [95¾信頼区間]
遺伝子型 335 ί or T/G 4 0 0.03922 - — ―
G/G 28 38 ―
rs73234 Grade 1,2,3 Grade 0
n = 32 n = 38 Fisher Cp 相対危険度 [95¾信頼区間]
遣伝子型 158 488 489 K ί
C/C or C/G 32 31 0.01334 - -
G/G Q 7 ―
rs.18012?0 Grade 1,2,3 Grade 0
π = 31 π = 3θ Fisher (p値) 相対危険度 [95%倌賴区聞]
遺伝子 S 33 238 239 S3 552 or C/A 29 27 0.02815
2 11 _
TS1520483 Grade 1,2,3 Grade 0
n = 32 η = 38 Fishef (p値) 相対危険度 [95¾ίΙ頼区間]
遗伝子型
or T/C 27 23 0.03528 2.16 0.97 4.81
C/C 5 15
Figure imgf000064_0002
15] 前立腺がん _ 晩期 ヶ月のステージ
-in ~ -m- om CP" 値) 相対危険度 頼区間]
S伝子型 S :
相対危険度 [95 S頼区間]
遗伝子型 rs3BQ6201
値) 相対危険度 核区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 儅垤区間]
遗伝子型 S ;
値) 相対危険度 倌箱区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 信頼区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 信頼区間]
遗伝子型 ;
値) 相対危険度 信頼区間]
遺伝子型 相対危険度 信額区間]
遠伝子型 相対危険虔 ^g頼区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 悝賴区間]
遺伝子型 値) 相対危険度 垤区間]
遗伝子型 S S 二
値) 相対危険度 [95¾ほ接区間]
a伝子型
16] 3 s
" ~ W
7s380655T
Figure imgf000066_0001
17] 櫂 湖 棚 糰 櫊 櫊 稱 湖 棚
Figure imgf000067_0001
18] "~B cisr 棚 一 ΠΓ
Figure imgf000068_0001
次に、本発明において行った SNPタイピングの方法について説明する。 SNPタイ ビングは、 DNAの抽出と、 DNAの増幅と、質量分析による DNAの塩基配列の決定 とで行われる。以下に、 SNPタイピングについて詳細に説明する。
(DNA試料の抽出)
まず、放射線治療を施行するがん患者および健常人からインフォームド 'コンセント を取得した上で血液を採取し、 DNAを抽出した。がん患者はがん種ごとに分類し、 放射線治療の開始力 3ヶ月未満 (早期のステージ)、 3ヶ月の時点(晩期 3ヶ月のス テージ)、 6ヶ月の時点(晩期 6ヶ月のステージ)での副作用発症の有無の観察を行つ て、その重症度を評価した (表 1〜表 18参照)。なお、一般的には、治療開始時から 3ヶ月未満に発症する副作用による障害を早期障害といい、治療開始時から 3ヶ月以 降に発症する副作用による障害を晩期障害という。
そして、前記の各がん患者力 採取した血液力 の DNAの抽出は、クラボウ社製 N A— 3000を用いて、力かる装置に添付の標準プロトコルで行った。
[0127] (プライマーの選択と作製)
SNPタイピングに用いた各フォワードプライマーおよびリバースプライマー、並びに 伸長プライマーは、前記〔3〕で述べた SNPに関する情報をもとに、プライマー 3. 0 (h ttp:/ / frodo.wi.mit.edu/ cgi-bin/ primer J/ pnmer3_www.cgi) 用いて適 適切な ¾a囲 を選択して作製した。各プライマーは、 SIGMA GENOSYS社(シグマアルドリッチ ジャパン株式会社)または PROLIGO社 (プロリゴ ·ジャパン株式会社)に委託して合 成した。
[0128] (SNPタイピング)
抽出した DNA試料を用いて、 MALDI— TOFZMS法により SNPタイピングを行 つた。なお、質量分析機は SEQUENOM社製の MassARRAY systemを用いた 。 MALDI—TOFZMS法による SNPタイピングは、下記の(1)〜(3)の手順で行わ れる。
(l) DNAの増幅:
DNA試料を用いて目的とする塩基配列を増幅するため、配列表の配列番号 174 から配列番号 519に示すフォワードプライマー(Forward primer)、および、リバースプ ライマー(Reverse primer)の中から適宜選択した DNAオリゴマーセットを用いて PC R反応を行った。 PCRの反応条件としては以下の通りである。 0. 5 1の10 1¾ 3 &1:丁& 緩衝液 と、 0. 2 1の MgClと、 0. 04 μ 1の 25mM dNTPと、 1. 1の各 1 μ M PCRプラ
2
イマ一と、 0. 02 μ 1の HotStar Taq溶液と、 1. 0 ^ 1の DNA溶液(2. 5ng/ μ 1)と、 2. 24 μ 1の純水をカ卩え、全量で 5 μ 1の PCR反応溶液を調製した。
この PCR反応溶液を 384ゥエルプレートに分注し、サーマルサイクラ一により以下 のプログラムで PCR反応を行った。 95°Cで 15分間の HotStar Taqポリメラーゼの活 性化を行った後、(a)二本鎖 DNAの熱変性条件: 95°Cで 20秒間、(b)ァニール条 件: 56°Cで 30秒間、(c)伸長条件: 72°Cで 1分間と!/、う、 (a)〜(c)の順に行う反応を 55サイクル行い、最後に 72°Cで 3分間の伸長反応を行う。
[0129] (2) SAP反応:
DNAの脱リン酸化反応のために、 SAP (Shrimp Alkaline Phosphatase)反応を行つ た。 SAP反応溶液として、 0. 17 1の111^5緩衝液と、 0. 3 1の SAP溶液と、 1. 53 1の純水を加えて全量 2. 0 1とした SAP反応溶液を、先の PCR反応を行った後の PCR反応溶液にカ卩え、 37°Cで 20分間の反応を行った後、 85°Cで 5分間の反応を行
[0130] (3)伸長反応:
次いで、配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す伸長プライマーを用いて PCR反応を行った。 SNPとなる DNAの塩基種を決定するためである。反応溶液の 組成としては、 0. 2 1の dNTP/ddNTPミックスと、 0. 054 μ 1の 100 μ Μ伸長プラ イマ一と、 0. 018 1の Termo Sequenaseと、 1. 728 1の純水をカ卩えて全量 2. 0 μ 1とした伸長反応溶液を、先の PCR反応溶液と SAP反応溶液とを混合した反応溶 液(7 1)に加え、以下の PCR反応条件で PCR反応を行うことで SNPを解析するた めの PCR産物を得た。まず、サーマルサイクラ一により 94°Cで 2分間の二本鎖 DNA の熱変性を行った後、(a)二本鎖 DNAの熱変性条件: 94°Cで 5秒間、(b)ァニール 条件:52°Cで 5秒間、(c)伸長条件:72°Cで 5秒間という、(a)〜 (c)の順に行う反応 を 55サイクル行った。
[0131] (4)脱塩処理:
その後、反応溶液 9mlあたり脱塩榭脂である SpectroCREAN3mgと、純水 16 1 を加え、室温で 10分間インキュベートして反応溶液を脱塩した。
[0132] (5)質量分析:
こうして得られた全量 25 μ 1の SNPタイピング用の反応溶液の内、約 0. 01 μ 1を質 量分析用 Spectro Chipにスポットし、質量分析を行い、配列表の配列番号 1から配 列番号 173に示す DNAオリゴマーのリスクアレル( 121番目の塩基)の SNPタイピン グを行った。
産業上の利用可能性
[0133] (臨床への応用)
本発明に係る DNAオリゴマー、遺伝子マーカー、 DNAオリゴマーセット、および副 作用発症予測方法の、臨床における応用は以下の如くである。
例えば、放射線治療をこれから受けようとするがん患者力も DNA診断についてのィ ンフォームド 'コンセントを取得した後、患者力 採取した血液等の試料力 DNAを 抽出し、 DNAオリゴマーセットを用いて増幅、解析、 SNPサイトにおける塩基を判定 し、本発明に係る DNAオリゴマーの DNA塩基配列と照合させる力、または、蛍光標 識等を行った遺伝子マーカーを用いて SNPのタイピングを行う。前述した該当するリ スクアレル、あるいはリスクアレルの組み合わせをもとに、このがん患者の放射線治療 後による副作用の発症の危険率を算出する。そして、当該がん患者の放射線治療担 当医は、算出された危険率を指標として、そのがん患者に対する治療後の管理 (car e)計画に活力して QOLを保持するなどの治療計画を適切に行うことができる。また、 線量増加臨床研究において、副作用発症の危険率が高い患者は避ける、などの対 策が可能になる。
[0134] このように、本発明の DNAオリゴマー、遺伝子マーカー、 DNAオリゴマーセット、 および副作用発症予測方法を用いることによって、現在、何ら予測手段をもたない放 射線による副作用の発症のリスクに対し、科学的根拠をもった予測を行うことが可能と なる。

Claims

請求の範囲
[1] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、がんの放射線治療において副作用が発症する虞があることを 予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 1から配列番号 173のうちのいずれかに示される DNA塩基配 列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配 列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー
[2] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、乳がんの放射線治療において副作用が発症する虞があること を予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列 番号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 30、配 列番号 32、配列番号 44、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 50、 配列番号 51、配列番号 53、配列番号 54、配列番号 58、配列番号 59、配列番号 60 、配列番号 61、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 65、配列番号 67、配列番号 7 3、配列番号 74、配列番号 77、配列番号 78、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 90、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 97、配列番号 98、配列番 号 106、配列番号 108、配列番号 112、配列番号 113、配列番号 116、配列番号 11 7、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 133、配列番号 136、配 列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 145、配列番 号 147、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 157、配列番号 159、配列番号 16 0、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配列番号 167、配列番号 170、配 列番号 172、または配列番号 173に示される DNA塩基配列について、 121番目の 塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とす る放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[3] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、子宮頸がんの放射線治療において副作用が発症する虞がある ことを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 2、配列番号 6、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列 番号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配 列番号 42、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 46、配列番号 52、配列番号 56、 配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 68、配列番号 70、配列番号 71 、配列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 83、配列番号 8 6、配列番号 89、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番 号 110、配列番号 114、配列番号 118、配列番号 119、配列番号 121、配列番号 12 9、配列番号 134、配列番号 139、配列番号 141、配列番号 142、配列番号 144、配 列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番 号 154、配列番号 155、配列番号 157、配列番号 161、または配列番号 171に示さ れる DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続し た DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DN Aオリゴマー。
DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、前立腺がんの放射線治療において副作用が発症する虞がある ことを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 8、配列番号 9、配列番号 10、配列番 号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 18、配列番号 19、配列 番号 21、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 35、配 列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 45、配列番号 47、配列番号 48、 配列番号 55、配列番号 57、配列番号 66、配列番号 69、配列番号 73、配列番号 79 、配列番号 81、配列番号 84、配列番号 87、配列番号 92、配列番号 95、配列番号 9 6、配列番号 99、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 102、配列番号 103、配 列番号 104、配列番号 107、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番 号 116、配列番号 120、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 12 5、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配 列番号 151、配列番号 156、配列番号 158、配列番号 160、配列番号 164、配列番 号 166、配列番号 168、または配列番号 169に示される DNA塩基配列について、 1 21番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを 特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[5] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、がんの放射線治療開始から早期のステージにおいて副作用が 発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 2、配列番号 5、配列番号 7、配列番号 8、配列番号 13、配列番 号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 22、配列番号 23、配列 番号 24、配列番号 25、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 28、配列番号 29、配 列番号 31、配列番号 32、配列番号 33、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、 配列番号 44、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 59 、配列番号 60、配列番号 61、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 66、配列番号 7 0、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 73、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 78、配列番号 80、配列番号 81、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 90、配列番 号 91、配列番号 92、配列番号 93、配列番号 94、配列番号 96、配列番号 98、配列 番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 105、配列番号 106、配列番号 1 12、配列番号 113、配列番号 114、配列番号 117、配列番号 118、配列番号 120、 配列番号 121、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 129、配列番号 132、配列 番号 134、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 141、配列番号 143、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 147、配列番号 149、配列番号 150 、配列番号 151、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 157、配 列番号 158、配列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配列番 号 167、配列番号 168、配列番号 169、または配列番号 171に示される DNA塩基 配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基 配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマ
[6] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおいて副 作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、 配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列 番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配 列番号 53、配列番号 55、配列番号 58、配列番号 69、配列番号 77、配列番号 87、 配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 108、配列番号 109、配列 番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 133、配列番号 136 、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 156、配列番号 159、配 列番号 160、配列番号 162、または配列番号 170に示される DNA塩基配列につい て、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有する ことを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[7] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおいて副 作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 1、配列番号 3、配列番号 4、配列番号 5、配列番号 6、配列番 号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番 号 19、配列番号 30、配列番号 35、配列番号 37、配列番号 38、配列番号 39、配列 番号 40、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 47、配列番号 50、配 列番号 51、配列番号 54、配列番号 57、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、 配列番号 67、配列番号 68、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 79、配列番号 82 、配列番号 83、配列番号 84、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 95、配列番号 9 6、配列番号 97、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 110、配列番号 119、配 列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 139、配列番号 142、配列番 号 155、配列番号 161、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 172、または配列 番号 173に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10 〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副 作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[8] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、乳がんの放射線治療開始から早期のステージにおいて副作用 が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配 列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 32、配列番号 44、配列番号 45、 配列番号 59、配列番号 61、配列番号 65、配列番号 73、配列番号 78、配列番号 90 、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 112、配列番 号 113、配列番号 117、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 137、配列番号 13 8、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 147、配列番号 157、配列番号 160、配 列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、または配列番号 167に示される DNA 塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA 塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAォ リゴマー。
[9] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、乳がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおいて 副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 48、配列番号 49、配列番号 53、配列番号 58、配列番号 77、 配列番号 108、配列番号 116、配列番号 126、配列番号 133、配列番号 136、配列 番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 159、配列番号 162、または配 列番号 170に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における 副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[10] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、乳がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおいて 副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 30、配列番号 50、配列番号 51、配列 番号 54、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 67、配列番号 74、配 列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 97、配列番号 172、または配列番 号 173に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜 241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作 用発症予測用 DNAオリゴマー。
[11] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、子宮頸がんの放射線治療開始から早期のステージにお 、て副 作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 2、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番号 31、配 列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 52、配列番号 56、 配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72 、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 9 1、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 114、配列番号 118、配列 番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 141、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154 、配列番号 157、または配列番号 171に示される DNA塩基配列について、 121番 目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴 とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[12] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、子宮頸がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、 配列表の配列番号 6、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配 列番号 46、配列番号 68、配列番号 83、配列番号 110、配列番号 119、配列番号 1 39、配列番号 142、配列番号 155、または配列番号 161に示される DNA塩基配列 について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を 有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマー。
[13] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から早期のステージにおいて副 作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、
配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列 番号 33、配列番号 48、配列番号 66、配列番号 81、配列番号 92、配列番号 96、配 列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 120、配列番号 126、配列番 号 151、配列番号 158、配列番号 168、または配列番号 169に示される DNA塩基 配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基 配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 DNAオリゴマ
[14] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、 配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列 番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 55、配 列番号 69、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123 、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 128、配列番号 156、または配列番号 16 0に示される DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241 の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発 症予測用 DN Aオリゴマー。
[15] DNA塩基配列中における特定の塩基がリスクアレルであるか非リスクアレルである かを判定することで、前立腺がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにお いて副作用が発症する虞があることを予測するための DNAオリゴマーであって、 配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列 番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 35、配列番号 38、配 列番号 39、配列番号 40、配列番号 47、配列番号 57、配列番号 73、配列番号 79、 配列番号 84、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 164、または配列番号 166に示され る DNA塩基配列について、 121番目の塩基を含む、少なくとも 10〜241の連続した DNA塩基配列を有することを特徴とする放射線治療における副作用発症予測用 D NAオリゴマー。
[16] 請求の範囲第 1項力 第 15項のうちいずれか一項に記載の副作用発症予測用 D NAオリゴマーにおいて、 121番目の塩基以外の塩基が 1個若しくは数個欠失、置換 若しくは付加している DNAオリゴマー、または、これらの相補的な DNA塩基配列を 有する DNAオリゴマーであることを特徴とする放射線治療における副作用発症予測 用 DN A才リゴマー。
[17] 請求の範囲第 1項力 第 16項のうちいずれか一項に記載の副作用発症予測用 D NAオリゴマー、または、この副作用発症予測用 DNAオリゴマーとストリンジェントな 条件下でノ、イブリダィズする DNAオリゴマーであることを特徴とする放射線治療にお ける副作用発症予測用遺伝子マーカー。
[18] 配列表の配列番号 174から配列番号 519に示す DNA塩基配列を有する DNAォ リゴマーのうち、配列番号 174から順次 2つの DNAオリゴマーを 1セットとして用いる ことを特徴とする DNAオリゴマーセット。
[19] 配列表の配列番号 174から配列番号 519に示す DNA塩基配列を有する DNAォ リゴマー、または、当該 DNAオリゴマーのうち、 1個若しくは数個の塩基が欠失、置換 若しくは付加したことを特徴とする請求の範囲第 11項に記載の DNAオリゴマーセッ
[20] 配列表の配列番号 520から配列番号 692に示す DNA塩基配列を有する DNAォ リゴマー、または、当該 DNAオリゴマーのうち、 1個若しくは数個の塩基が欠失、置換 若しくは付加したことを特徴とする DNAオリゴマー。
[21] 配列表の配列番号 1から配列番号 173のいずれかに示す DNAオリゴマーを用い て判定を行う、下記 (a)〜 (g)の工程を含むことを特徴とする放射線治療における副 作用発症予測方法。
(a)放射線治療が施行される予定のがん患者カゝら採取した試料をもとに DNA試料を 調製する工程
(b)前記(a)の工程で調製した前記 DNA試料をもとに DNAを増幅して DNA産物を 得る工程
(c)前記 (b)の工程で増幅した DNA産物を铸型として伸長反応を行 、、伸長産物で ある DNAオリゴマーを得る工程
(d)前記 (c)の工程で得られた DNAオリゴマーの DNA塩基配列を解析する工程 (e)前記(d)の工程で解析された DNAオリゴマーの DNA塩基配列のうち 121番目 の位置に相当する塩基と、配列表の配列番号 1から配列番号 173のいずれかに示 す DNA塩基配列の 121番目の塩基とを照合する工程
(f)前記 (e)の工程で照合された塩基を有するアレルがリスクアレルであるか非リスク アレルであるかを判定する工程
(g)前記 (f)の工程で判定した結果から、前記放射線治療が施行される予定のがん 患者における放射線による副作用の発症危険率を予測する工程
前記 (e)の工程で照合する配列表の配列番号 1から配列番号 173のいずれかに示 す DN A塩基配列は、
乳がんの放射線治療における副作用の発症予測にっ 、ては、配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19 、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 30、配列番号 32、配列番号 4 4、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 53、配列番号 54、配列番号 58、配列番号 59、配列番号 60、配列番号 61、配列番 号 62、配列番号 63、配列番号 65、配列番号 67、配列番号 73、配列番号 74、配列 番号 77、配列番号 78、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 90、配 列番号 91、配列番号 94、配列番号 97、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 10 8、配列番号 112、配列番号 113、配列番号 116、配列番号 117、配列番号 126、配 列番号 127、配列番号 132、配列番号 133、配列番号 136、配列番号 137、配列番 号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 145、配列番号 147、配列番号 14 8、配列番号 151、配列番号 157、配列番号 159、配列番号 160、配列番号 162、配 列番号 163、配列番号 165、配列番号 167、配列番号 170、配列番号 172、または 配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、
子宮頸がんの放射線治療における副作用の発症予測にっ 、ては、配列表の配列 番号 2、配列番号 6、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番号 31、配列 番号 34、配列番号 36、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配列番号 42、配 列番号 43、配列番号 44、配列番号 46、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 60、 配列番号 64、配列番号 65、配列番号 68、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72 、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 83、配列番号 86、配列番号 8 9、配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 110、配列 番号 114、配列番号 118、配列番号 119、配列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 139、配列番号 141、配列番号 142、配列番号 144、配列番号 146 、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配 列番号 155、配列番号 157、配列番号 161、または配列番号 171に示す DNAオリゴ マーの DNA塩基配列を用い、
前立腺がんの放射線治療における副作用の発症予測につ!、ては、配列表の配列 番号 3、配列番号 5、配列番号 8、配列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 18、配列番号 19、配列番号 21、配列番 号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 35、配列番号 38、配列 番号 39、配列番号 40、配列番号 45、配列番号 47、配列番号 48、配列番号 55、配 列番号 57、配列番号 66、配列番号 69、配列番号 73、配列番号 79、配列番号 81、 配列番号 84、配列番号 87、配列番号 92、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 99 、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 104、配 列番号 107、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番 号 120、配列番号 122、配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 12 6、配列番号 128、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 151、配 列番号 156、配列番号 158、配列番号 160、配列番号 164、配列番号 166、配列番 号 168、または配列番号 169に示す DN Aオリゴマーの DN A塩基配列を用い、 がんの放射線治療開始力も早期のステージにおける副作用の発症予測について は、配列表の配列番号 2、配列番号 5、配列番号 7、配列番号 8、配列番号 13、配列 番号 15、配列番号 17、配列番号 19、配列番号 20、配列番号 22、配列番号 23、配 列番号 24、配列番号 25、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 28、配列番号 29、 配列番号 31、配列番号 32、配列番号 33、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43 、配列番号 44、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 52、配列番号 56、配列番号 5 9、配列番号 60、配列番号 61、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 66、配列番号 70、配列番号 71、配列番号 72、配列番号 73、配列番号 75、配列番号 76、配列番 号 78、配列番号 80、配列番号 81、配列番号 86、配列番号 89、配列番号 90、配列 番号 91、配列番号 92、配列番号 93、配列番号 94、配列番号 96、配列番号 98、配 列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 105、配列番号 106、配列番 号 112、配列番号 113、配列番号 114、配列番号 117、配列番号 118、配列番号 12 0、配列番号 121、配列番号 126、配列番号 127、配列番号 129、配列番号 132、配 列番号 134、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 141、配列番 号 143、配列番号 144、配列番号 146、配列番号 147、配列番号 149、配列番号 15 0、配列番号 151、配列番号 152、配列番号 153、配列番号 154、配列番号 157、配 列番号 158、配列番号 160、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、配列番 号 167、配列番号 168、配列番号 169、または配列番号 171に示す DNAオリゴマー の DNA塩基配列を用い、
がんの放射線治療開始から晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予測につ いては、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 1
2、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配列番号 49、配列番号 53、配列番号 55、配列番号 58、配列番号 69、配列番号 77、配列番 号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 104、配列番号 108、配列番号 109 、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、配列番号 123、配 列番号 124、配列番号 125、配列番号 126、配列番号 128、配列番号 133、配列番 号 136、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 156、配列番号 15 9、配列番号 160、配列番号 162、または配列番号 170に示す DNAオリゴマーの D NA塩基配列を用い、
がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予測につ いては、配列表の配列番号 1、配列番号 3、配列番号 4、配列番号 5、配列番号 6、配 列番号 9、配列番号 10、配列番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配 列番号 19、配列番号 30、配列番号 35、配列番号 37、配列番号 38、配列番号 39、 配列番号 40、配列番号 41、配列番号 42、配列番号 46、配列番号 47、配列番号 50 、配列番号 51、配列番号 54、配列番号 57、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 6
3、配列番号 67、配列番号 68、配列番号 73、配列番号 74、配列番号 79、配列番号 82、配列番号 83、配列番号 84、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 95、配列番 号 96、配列番号 97、配列番号 102、配列番号 107、配列番号 110、配列番号 119、 配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 139、配列番号 142、配列 番号 155、配列番号 161、配列番号 164、配列番号 166、配列番号 172、または配 列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、
乳がんの放射線治療開始力も早期のステージにおける副作用の発症予測につい ては、配列表の配列番号 7、配列番号 13、配列番号 15、配列番号 17、配列番号 19 、配列番号 20、配列番号 26、配列番号 27、配列番号 32、配列番号 44、配列番号 4 5、配列番号 59、配列番号 61、配列番号 65、配列番号 73、配列番号 78、配列番号 90、配列番号 91、配列番号 94、配列番号 98、配列番号 106、配列番号 112、配列 番号 113、配列番号 117、配列番号 127、配列番号 132、配列番号 137、配列番号 138、配列番号 140、配列番号 143、配列番号 147、配列番号 157、配列番号 160 、配列番号 162、配列番号 163、配列番号 165、または配列番号 167に示す DNA オリゴマーの DNA塩基配列を用い、
乳がんの放射線治療開始力 晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 48、配列番号 49、配列番号 53、配列番号 58、配列 番号 77、配列番号 108、配列番号 116、配列番号 126、配列番号 133、配列番号 1 36、配列番号 145、配列番号 148、配列番号 151、配列番号 159、配列番号 162、 または配列番号 170に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、
乳がんの放射線治療開始から晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 1、配列番号 4、配列番号 30、配列番号 50、配列番号 51、配列番号 54、配列番号 60、配列番号 62、配列番号 63、配列番号 67、配列番 号 74、配列番号 82、配列番号 85、配列番号 88、配列番号 97、配列番号 172、また は配列番号 173に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、
子宮頸がんの放射線治療開始力 早期のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 2、配列番号 22、配列番号 23、配列番号 29、配列番 号 31、配列番号 34、配列番号 36、配列番号 43、配列番号 44、配列番号 52、配列 番号 56、配列番号 60、配列番号 64、配列番号 65、配列番号 70、配列番号 71、配 列番号 72、配列番号 75、配列番号 76、配列番号 80、配列番号 86、配列番号 89、 配列番号 91、配列番号 93、配列番号 98、配列番号 105、配列番号 114、配列番号 118、配列番号 121、配列番号 129、配列番号 134、配列番号 141、配列番号 144 、配列番号 146、配列番号 149、配列番号 150、配列番号 152、配列番号 153、配 列番号 154、配列番号 157、または配列番号 171に示す DNAオリゴマーの DNA塩 基配列を用い、
子宮頸がんの放射線治療開始力 晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 6、配列番号 37、配列番号 39、配列番号 41、配 列番号 42、配列番号 46、配列番号 68、配列番号 83、配列番号 110、配列番号 11 9、配列番号 139、配列番号 142、配列番号 155、または配列番号 161に示す DNA オリゴマーの DNA塩基配列を用い、
前立腺がんの放射線治療開始力 早期のステージにおける副作用の発症予測に ついては、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 24、配列番号 25、配列番号 28、配列番号 33、配列番号 48、配列番号 66、配列番号 81、配列番号 92、配列番 号 96、配列番号 99、配列番号 102、配列番号 103、配列番号 120、配列番号 126、 配列番号 151、配列番号 158、配列番号 168、または配列番号 169に示す DNAォ リゴマーの DNA塩基配列を用い、
前立腺がんの放射線治療開始力 晩期 3ヶ月のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 5、配列番号 8、配列番号 10、配列番号 11、配列 番号 12、配列番号 18、配列番号 21、配列番号 33、配列番号 45、配列番号 48、配 列番号 55、配列番号 69、配列番号 87、配列番号 100、配列番号 101、配列番号 1 04、配列番号 109、配列番号 111、配列番号 115、配列番号 116、配列番号 122、 配列番号 123、配列番号 124、配列番号 125、配列番号 128、配列番号 156、また は配列番号 160に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用い、
前立腺がんの放射線治療開始力 晩期 6ヶ月のステージにおける副作用の発症予 測については、配列表の配列番号 3、配列番号 5、配列番号 9、配列番号 10、配列 番号 11、配列番号 12、配列番号 14、配列番号 16、配列番号 19、配列番号 35、配 列番号 38、配列番号 39、配列番号 40、配列番号 47、配列番号 57、配列番号 73、 配列番号 79、配列番号 84、配列番号 95、配列番号 96、配列番号 102、配列番号 1 07、配列番号 130、配列番号 131、配列番号 135、配列番号 164、または配列番号 166に示す DNAオリゴマーの DNA塩基配列を用いる、
ことを特徴とする請求の範囲第 21項に記載の放射線治療における副作用発症予 測方法。
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