WO2005090576A1 - 百日咳感染症予防用dna構築物 - Google Patents

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WO2005090576A1
WO2005090576A1 PCT/JP2005/004430 JP2005004430W WO2005090576A1 WO 2005090576 A1 WO2005090576 A1 WO 2005090576A1 JP 2005004430 W JP2005004430 W JP 2005004430W WO 2005090576 A1 WO2005090576 A1 WO 2005090576A1
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amino acid
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dna
dna construct
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PCT/JP2005/004430
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Kazunari Kamachi
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Japan Health Sciences Foundation
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to a polynucleotide for use in the prevention of pertussis infection and a polynucleotide expressing the polynucleotide.
  • Pertussis is an acute respiratory tract infection in children caused by infection with Bordetella pertussis. Vaccination is the most effective way to control this infection.
  • the pertussis vaccine currently inoculated in Japan is a cell-free vaccine that uses pertussis toxin and fibrillar hemagglutinin as major protective antigens.
  • the protective antigen used in this cell-free vaccine was fractionated from the culture supernatant of B. pertussis and then detoxified with formalin. The production of this cell-free vaccine requires a large-scale cultivation of B. pertussis. From the viewpoint of cost and biosafety, there is a need for the development of a new vaccine that is cheaper and safer to produce.
  • toxin antigens expressed as recombinant proteins can be mentioned as candidate substances for a new whooping cough vaccine, but it is difficult to induce a prophylactically effective toxin neutralizing antibody with these recombinant antigens. is there.
  • the DNA vaccine technology is a technology for inducing an immune response by directly expressing a vaccine antigen gene in a living body, and is expected to be able to produce a vaccine at a lower cost than a conventional vaccine. ing.
  • the effectiveness of DNA vaccines using the protective antigen genes for many infectious diseases has been studied.
  • the present inventors have now found that, in a peptide fragment consisting of amino acid 111-180 in the pertussis toxin S1 subunit, the ninth arginine residue is changed to a lysine residue and Z or By expressing a peptide fragment having a mutation of the 129th glutamic acid residue to a glycine residue, it is possible to suppress the toxic activity and induce a significant immunoprotective effect against B. pertussis. Was obtained.
  • the present invention is based on these findings.
  • an object of the present invention is to provide a polypeptide used for the prevention or treatment of pertussis infection, a DNA construct capable of expressing the polypeptide, and a pharmaceutical composition comprising the same.
  • polypeptide according to the present invention has an amino acid sequence of pertussis toxin S1 submit, which has 180 amino acids,
  • It has an amino acid sequence having at least one mutation selected.
  • the DNA construct according to the present invention comprises the DNA encoding the polypeptide in a form capable of expressing the same.
  • composition according to the present invention comprises the polypeptide or the DNA construct.
  • a polypeptide having no toxicity or a combination of the polypeptide gene is used. Since these DNA constructs are used as immunogens, there is no need to mass-cultivate B. pertussis at biosafety level 2 in their production.For example, biosafety level 1 Escherichia coli can be handled. Thus, a composition for preventing pertussis can be produced. Furthermore, according to the present invention, even if a polypeptide or DNA construct is directly inoculated into a living body, it is possible to prevent pertussis infection, which is highly safe for the host without causing toxin activity in the host cell.
  • FIG. 1 is a view showing the construction of a plasmid (pcDNA / C180-9K / 129G) into which a C180-9K / 129G gene has been inserted.
  • FIG. 1 shows the C200 gene lacking the N-terminal or C-terminal of the pertussis toxin S1 subunit.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of the C180 gene, C160 gene, and N40 gene.
  • FIG. 3 shows the results of Northern plot analysis in COS-7 cells into which the S1, C200, C180, C160, or N40 gene was introduced.
  • FIG. 4 shows the results of Western blot analysis in COS-7 cells into which the S1, C200, C180, C160, or N40 gene was introduced.
  • FIG. 5 shows the concentration of anti-pertussis toxin antibody in the serum of mice inoculated with truncated S1 gene (C200 gene, C180 gene, C160 gene, or N40 gene).
  • FIG. 6 shows the peripheral blood leukocyte count when pertussis toxin was administered to mice inoculated with truncated S1 gene.
  • FIG.7 shows a schematic diagram of the mutant C180 gene (C180-9K gene, C180-129G gene, C180-9K / 129G gene) and Western blot analysis of COS-7 cells transfected with the mutant C180 gene. The result is shown.
  • FIG. 8 shows the concentration of anti-pertussis toxin antibody in the serum of mice inoculated with the mutant C180 gene (C180-9K gene, J180-129 ⁇ gene, or C180-9KZ129G gene).
  • FIG. 9 shows the peripheral blood leukocyte count when pertussis toxin was administered to mice inoculated with the mutant C180 gene (C180-9K gene, J180-129 ⁇ gene, or C180-9KZ129G gene).
  • FIG. 10 is a photograph of a stable expression strain obtained by transfecting pcDNA, pcDNA / C180-9K, pcDNA / C180-129G, or pcDNA / C180-9K / 129G into CHO cells.
  • the amino acid sequence encoding the polypeptide according to the present invention comprises the first 180 amino acids (hereinafter referred to as “C180”) in the pertussis toxin S1 subunit, and further comprises (a) Mutation of the 9th arginine residue to a lysine residue (hereinafter referred to as “R9K mutation” and V), and (b) mutation of the 129th glutamic acid residue to a glycine residue (hereinafter “E129G mutation”) ) Having at least one mutation selected from the group consisting of:
  • the polypeptide according to the present invention has an R9K mutation (hereinafter, referred to as “C180-9K”).
  • the polypeptide according to the present invention has an E129G mutation (hereinafter, referred to as “C180-129G”). Furthermore, according to another preferred embodiment of the present invention, it has an R9K mutation and an E129G mutation (hereinafter, “C180-9KZ129G” t ⁇ ).
  • Examples of the amino acid sequence of C180 having no mutation include those having amino acids 2-181 in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2.
  • the first methionine residue in SEQ ID NO: 2 is one that is eliminated after translation.
  • the amino acid sequence of C180 having no mutation is the amino acid sequence represented by No. 2-181 in SEQ ID NO: 2 at a site other than R9K mutation and Z or E129G mutation. , Where one or several amino acids have been substituted, deleted or added.
  • the polypeptide according to the present invention, represented by the amino acid sequence of C180 without this mutation also has an immunity-inducing activity that can be used for prevention or treatment of pertussis infection.
  • the range of "one or several" means preferably about 113, more preferably about 112.
  • the amino acid sequence of C180 having no mutation is a partial sequence of the amino acid sequence represented by No. 2-181 of SEQ ID NO: 2, and It comprises a partial sequence containing the mutation and the site of the Z or E129G mutation.
  • the polypeptide according to the present invention, represented by such a subsequence, is also suitable for pertussis infection It has an immunity-inducing activity that can be used for prevention or treatment of the disease.
  • the partial sequence preferably includes a partial sequence represented by No. 3-180 in SEQ ID NO: 2.
  • residues 34-36 encode a lysine residue. It has a nucleotide sequence replaced by codons. Such substitution preferably includes substitution of residues 34-36 with an adenine residue (A), an adenine residue (A), and a guanine residue (G).
  • the DNA according to the present invention is a nucleotide sequence represented by the nucleotide sequence represented by No. 10-549 in SEQ ID NO: 1, in which the 394-396 residue is a glycine residue.
  • the DNA according to the present invention comprises the nucleotide sequence of Nos. 10 to 549 in SEQ ID NO: 1 in which residues 34 to 36 are lysine residues. And a nucleotide sequence in which residues 394-396 have been substituted with a codon encoding a glycine residue.
  • substitutions preferably include substitution of residues 34-36 with AAG and substitution of residues 395-396 with GC.
  • the DNA construct according to the present invention comprises a DNA encoding the polypeptide according to the present invention in a form capable of expressing the polypeptide, whereby the polypeptide according to the present invention can be expressed.
  • “comprising an expressible form” refers to a mode that allows expression of a transgene (DNA) under the control of appropriate regulatory elements (eg, promoters, enhancers, transcription terminators, etc.). Means that the transgene has been inserted into the DNA construct.
  • the DNA encoding C180 can be cloned by preparing a PCR primer based on the sequence information of a known Bordetella pertussis gene, and performing a PCR reaction on Bordetella pertussis genomic DNA. These crawling, for example, It can be easily performed by those skilled in the art according to literature such as Molecular Cloning 2nd Edt., Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989).
  • the DNA encoding C180-9K, C180-129G, or C180-9K / 129G is a DNA encoding C180, for example, a mutagenesis method using PCR, site-directed mutagenesis. It can be easily obtained by applying an induction method or the like, and specifically, it can be easily performed with reference to the above-mentioned literature such as Molecular Cloning.
  • the DNA construct according to the present invention can be used in a form inserted into a non-viral vector or a viral vector so that it can be expressed.
  • a vector comprising a DNA construct according to the present invention.
  • Methods for preparing and administering these non-viral vectors and viral vectors are already known to those skilled in the art. For example, separate experimental medicine, basic technology of gene therapy, Yodosha, 1996; separate experimental medicine, gene Introductory & Expression Analysis Experimental Method, Yodosha, 1997; Gene Therapy Development Research Handbook, edited by The Japanese Society for Gene Therapy, NTS, 1999.
  • the non-viral vector is not particularly limited as long as it is a vector capable of expressing a target gene in a mammalian organism, and is preferably a plasmid.
  • the non-viral vector include pcDNA3.1, pZeoSV ⁇ pBK-CMV (Invitrogen, Stratagene) and pCAGGS (Gene 108, 193-200 (1991)), and preferably pcDNA3.1.
  • the vector according to the present invention can be prepared by inserting the above gene so that it can be expressed in the downstream region of the promoter of one of these expression vectors.
  • virus vector examples include adenovirus, adeno-associated virus, herpes virus, vaccinia virus, box virus, polio virus, symbisinores, Sendai virus, SV40, Powers that can include immunodeficiency virus (HIV) and the like are not limited thereto.
  • adenovirus adeno-associated virus
  • herpes virus vaccinia virus
  • box virus polio virus
  • symbisinores Sendai virus
  • SV40 Powers that can include immunodeficiency virus (HIV) and the like are not limited thereto.
  • HIV immunodeficiency virus
  • the polypeptide according to the present invention is obtained, for example, by introducing the above-described vector into a suitable host, culturing the host, and producing and accumulating the polypeptide according to the present invention in a culture.
  • the polypeptide according to the present invention can be more isolated and purified.
  • the host include Escherichia coli, insect cells and mammalian cells, and are preferably mammalian cells.
  • the method of introducing the vector into the host, the culture conditions of the host, etc. Is appropriately selected by those skilled in the art. For isolation and purification of the polypeptide according to the present invention, known methods can be used.
  • C180 contains not only a site for inducing immunity to pertussis toxin but also a toxic active site, but the polypeptide according to the present invention mainly efficiently induces antibody production and hardly expresses toxic activity. Therefore, the polypeptide according to the present invention can be suitably used for prevention of pertussis infection in mammals.
  • a method for preventing pertussis infection comprising administering to a subject a prophylactically effective amount of a polypeptide according to the present invention. Further, the polypeptide according to the present invention can be used for treatment of pertussis infection.
  • a method for treating pertussis infection comprising administering to a subject a therapeutically effective amount of a polypeptide according to the present invention.
  • treatment refers to amelioration of an established condition
  • prevention refers to preventing the establishment of a condition in the future.
  • the subject is usually a human, preferably an infant.
  • a known method for inducing immunity can be used.
  • a known adjuvant may be used together with a known adjuvant to prepare a solution or suspension. It can be administered by subcutaneous injection, intramuscular injection or oral administration.
  • the amount of the polypeptide according to the present invention to be administered may be a prophylactically or therapeutically effective amount, and the specific amount is determined by those skilled in the art.
  • the dose is preferably adjusted depending on the age, body weight, etc. of the subject, and such adjustment of the dose is appropriately performed by a physician.
  • the dose is usually 110 gZ kg body weight, preferably 2-5 ⁇ g Z body weight kg.
  • the polypeptides according to the present invention are pharmaceutically safe within the above dosage ranges.
  • the DNA construct according to the present invention which can express the polypeptide according to the present invention, can also be suitably used as a DNA vaccine for preventing pertussis infection in mammals.
  • a method for preventing pertussis infection comprising administering to a subject a prophylactically effective amount of a DNA construct or vector according to the present invention.
  • the DNA construct according to the invention can also be used for the treatment of pertussis infection. It is possible.
  • a method of treating pertussis infection comprising administering to a subject a therapeutically effective amount of a DNA construct or vector according to the present invention.
  • Examples of a method for introducing the DNA construct according to the present invention into a subject include, for example, an in vivo method in which the DNA construct is directly introduced into the body, and a method in which certain cells are removed from the subject and the DNA construct is introduced into the cells outside the body. There is an ex vivo method for returning the cells to the body (Gene Handbook for Research and Development of Gene Therapy, edited by The Japan Society for Gene Therapy, NTS, 1999).
  • an in vivo method for example, a DNA construct according to the present invention is dissolved in an appropriate solvent (a buffer solution such as PBS, physiological saline, sterilized water, etc.), and if necessary, sterilized by filtration with a filter or the like, followed by filtration.
  • an appropriate solvent a buffer solution such as PBS, physiological saline, sterilized water, etc.
  • An injection can be prepared by filling in a sterile container, and can be administered by injection to a subject.
  • the injection can be injected subcutaneously, intradermally, intravenously, or directly into the cerebrospinal fluid into the muscle or other tissue of the subject.
  • a conventional carrier or the like may be added to the injection, if necessary.
  • the DNA construct according to the present invention can be administered orally and nasally to respiratory mucosal cells.
  • the DNA construct according to the present invention is encapsulated in a ribosome made of a lipid bilayer, and the ribosome is fused with an inactivated Sendai virus (Hemagglutinating virus of Japan: HVJ) to form HVJ-ribosome.
  • Sendai virus Hemagglutinating virus of Japan: HVJ
  • the DNA construct according to the present invention may be coated on gold microparticles and transdermally delivered by a particle impactor or "gene gun" (Tang, 1992, Nature 356: 152-154).
  • the ex vivo method include a method of directly injecting the DNA construct according to the present invention into cells using an electoral poration method, a lipofection method, a calcium phosphate coprecipitation method, a DEAE-dextran method, a micro glass tube, or the like. No.
  • the amount of the DNA construct according to the present invention to be administered may be a prophylactically or therapeutically effective amount, and the specific amount is determined by those skilled in the field of gene therapy.
  • the dose is preferably adjusted according to the age, weight, etc. of the subject, and such adjustment of the dose is appropriately performed by a physician.
  • the dose is usually 2 to 40 gZ kg body weight, preferably 4 to 36 / z gZ body weight kg.
  • the DNA construct according to the present invention has the above-mentioned investment. It is pharmaceutically safe within the dosage range.
  • the polypeptide or DNA construct or vector according to the present invention can be administered to a subject as a pharmaceutical composition.
  • a pharmaceutical composition comprising a polypeptide according to the present invention.
  • a pharmaceutical composition comprising a DNA construct according to the present invention or a vector according to the present invention.
  • the above-mentioned pharmaceutical composition can be used for prevention and further treatment of pertussis infection.
  • a polypeptide according to the present invention in the manufacture of a prophylactic or therapeutic agent for pertussis infection.
  • the DNA construct or vector according to the present invention in the manufacture of a prophylactic or therapeutic agent for pertussis infection.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention can further include a pharmaceutically acceptable carrier.
  • pharmaceutically acceptable carriers such as vehicles, excipients, diluents, adjuvants and the like are appropriately selected by those skilled in the art according to the administration route and the like.
  • the DNA of the pertussis toxin S1 subunit was amplified by PCR using genomic DNA derived from Bordetella pertussis Tohama as type III using the following primers.
  • the following primers include restriction sites for Hindlll and BamHI (underlined), respectively.
  • mSl— R Reverse: 5 CGGGATCCTTACTAGAACGAATACGCGAT-3 '(SEQ ID NO:
  • the amplification by PCR was performed using Takara PCR thermal cycler MP (registered trademark: manufactured by Takara Shuzo Co., Ltd.).
  • the temperature conditions of the cycle reaction were one cycle of 94 ° C. for 20 seconds, 68 ° C. for 3 minutes, and 72 ° C. for 10 minutes, which was 30 cycles.
  • the PCR product was treated with Hindlll and BamHI, and incorporated into a eukaryotic cell expression vector (pcDNA. 3.1 (+); manufactured by Invitrogen).
  • the thus obtained pcDNAZSl plasmid was purified from E. coli JM109 strain using end-free plasmid preparation kits (manufactured by Qiagen).
  • the C180 gene encoding the N-terminal 180 amino acid residues of the pertussis toxin S1 subunit and its plasmid vector (pcDNAZC180) were produced in the same manner as in Reference Example 1 using the following primers.
  • C180—R reverse: 5 CGGGATCCTTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG-3 ′ (SEQ ID NO: 5).
  • the C200 gene encoding the N-terminal 200 amino acid residues of the pertussis toxin S1 subunit and its plasmid vector (pcDNAZC200) were produced in the same manner as in Reference Example 1 using the following primers.
  • C200—R Reverse: 5 CGGGATCCTTACTAAGCGCCTATCACCGGCGC-3 ′ (SEQ ID NO: 6).
  • the C160 gene encoding the N-terminal 160 amino acid residues of the pertussis toxin S1 subunit and its plasmid vector (pcDNAZC160) were produced in the same manner as in Reference Example 1 using the following primers.
  • C160—R reverse: 5 CGGGATCCTTACTACTCCGTGGTCGTGGTCTC-3 ′ (SEQ ID NO: 7).
  • N40 gene lacking the N-terminal 40 amino acid residues of the pertussis toxin S1 subunit and a plasmid vector (pcDNAZN40) incorporating the N40 gene were produced in the same manner as in Reference Example 1 using the following primers.
  • N40-F Forward: 5'- CCCAAGCTT
  • mSl— R Reverse: 5 CGGGATCCTTACTAGAACGAATACGCGAT-3 '(SEQ ID NO:
  • the C180 gene having the R9K mutation and the E129G mutation was produced by PCR using a combination of the following primers (mSl-9KZF, E129G / R, E129GZF and C180R) with the S1 gene as type III.
  • two types of PCR products were obtained by a PCR method using a combination of primers of mSl-9KZF and E129GZR, or E129GZF and C180R.
  • these two kinds of PCR products were purified according to a conventional method, and treated by a PCR method using mSl-9K / F and C180R primers to obtain a C180 gene having an R9K mutation and an E129G mutation.
  • the inserted plasmid vector (pcDNA / C180-9K / 129G) was produced in the same manner as in Reference Example 1.
  • the following primers contain Hindlll and BamHI restriction enzyme sites (underlined) and R9K and E129G gene mutations (in parentheses), respectively.
  • E129G / F 5'-CTGGCCACCTACCAGAGC [GGC]
  • E129G / R 5'-GCGCCGGTGTGCCAGATA [GCC]
  • FIG. 1 shows the constructed pcDNA / C180-9K / 129G.
  • the C180 gene having the R9K mutation was produced in the same manner as in Reference Example 1 using the S1 gene as type III and the following primers.
  • a plasmid vector (pcDNAZC180-9KZ129G) into which the C180 gene having the R9K mutation was inserted was produced in the same manner as in Reference Example 1.
  • the primers below contain the Hindlll and BamHI restriction enzyme sites (underlined) and the R9K mutation (in parentheses), respectively.
  • C180R reverse: 5, -CGO ⁇ TTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG-3, (sequence number 5).
  • Plasmid vector (ecDNA / C180—129G g3 ⁇ 4
  • the C180 gene having the E129G mutation with the S1 gene as (mSl-F, E129G / R, E129G / F, and CI 80R).
  • two types of PCR products were obtained by a PCR method using a combination of mSl-F and E129G / R, or a combination of E129G / F and C180R primers.
  • these two PCR products were purified according to a standard method.
  • the C180 gene having the E129G mutation was obtained by a PCR method using the primer 1801 ⁇ primer.
  • a plasmid vector (pcDNA / C180-129G) incorporating the gene thus obtained was produced in the same manner as in Reference Example 1.
  • the following primers contain Hindlll and BamHI restriction enzyme sites (underlined) and E129G gene mutation (in parentheses), respectively.
  • mSl-F 5,-CCCAAGCTTGCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC-3, (SEQ ID NO: 3);
  • E129G / F 5'-CTGGCCACCTACCAGAGC [GGC]
  • E129G / R 5'-GCGCCGGTGTGCCAGATA [GCC]
  • the following expression analysis was performed using pcDNA, pcDNA / S1, pcDNA / C200, pcDNA / C180, pcDNA / C160, and pcDNAZN40.
  • the peptide fragment expressed by the plasmid is as shown in the schematic diagram of FIG.
  • ECL For detection of pertussis toxin SI mRNA, ECL direct Using a pertussis toxin S1 gene that was labeled by a nucleic acid labeling and detection system (Amersham Pharmacia Bioteck), it was performed according to a conventional method. The results are as shown in Figure 3.o
  • pcDNA, pcDNA / Sl, pcDNA / C200, pcDNA / C180, pcDNA / C160, and pcDNAZN40 were each introduced into COS-7 cells using SuperFect Transfection Reagent (manufactured by Qiagen) and allowed to stand on a 60 mm dish for 48 hours. , Collected. The recovered cells were resuspended in SDS lysis buffer (100 ⁇ L). The sample thus obtained was heated for 3 minutes and then centrifuged. The supernatant was electrophoresed on a 14% SDS-PAGE gel. Then, the protein was transferred to a nitrocellulose membrane (Nippon Bio-Rad Laboratories).
  • the -trocellulose membrane was incubated with a mouse anti-pertussis toxin polyclonal antiserum, and further supplemented with goat anti-mouse IgG-horseradish peroxidase conjugate (Bio-RadLab.). Blotting detection reagents (manufactured by Amersham Biosciences) [trowel processing was performed and the expression of the antigen protein was analyzed. The result was as shown in FIG. It was confirmed that C180 and C200 were strongly expressed in COS-7 cells.
  • mice using pcDNA, pcDNA / Sl, pcDNA / C200, pcDNA / C180, pcDNA / C160, and pcDNAZN40, respectively, using a gene gun (Heilio Gene Gun; manufactured by Bio-Rad Lab .; helium gas pressure 400 psi). (5 weeks old; 5 animals, group Z) were intradermally inoculated three times at 14 day intervals. For each inoculation, 2 g of plasmid DNA and 0.5 mg of gold particles (manufactured by Bio-Rad Lab.) Were used. On days 17, 25, 33, and 41 from the start of the test, blood was collected from the tail vein of each mouse to obtain mouse serum.
  • anti-PT-IgG antibody An anti-pertussis toxin IgG antibody (hereinafter referred to as “anti-PT-IgG antibody”) in mouse serum was prepared using an alkaline phosphatase-labeled goat anti-mouse IgG antibody (southern Biotechnology Associates Inc., Birmingham, AL) as a secondary antibody. was measured by ELISA.
  • mice inoculated with pcDNA, pcDNA / Sl, pcDNA / C200, pcDNA / C180, pcDNAZC160, and pcDNA / N40 were perfused with pertussis toxin (2 g, manufactured by Seikagaku Corporation) in PBS. (0.5 mL) solution was intraperitoneally administered, and three days later, blood was collected from the tail vein. The peripheral blood leukocyte count (WBC) in this blood was measured using a Coulter counter (manufactured by Beckman Coultor K.K.). The result was as shown in FIG.
  • pcDNA control
  • pcDNA / C180-9K control
  • pcDNA / C180-129G pcDNAZC180-9KZ129G
  • pcDNAZC180-9KZ129G was transfected into COS-7 cells using SuperFect Transfection Reagent (manufactured by Qiagen).
  • stable expression strains were selected and cloned using 500 gZmL Geneticin (Sigma). The results were as shown in FIG.
  • Cell lines expressing C180-9KZ129G showed significantly less cytotoxicity to CHO cells with fewer dead cells than cell lines expressing C180-9K and C180-129G.

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Abstract

 180アミノ酸からなる百日咳毒素S1サブユニットのアミノ酸配列において、(a)第9番目のアルギニン残基のリジン残基への変異、および(b)第129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異からなる群から選択される少なくとも一つの変異を有するアミノ酸配列を有するポリペプチドが開示されている。さらに、上記ポリペプチドをコードするDNAを発現しうる形で含んでなる、DNA構築物が開示されている。

Description

明 細 書
百日咳感染症予防用 DNA構築物
発明の背景
[0001] 発明の分野
本発明は百日咳感染症の予防に用いる、ポリヌクレオチドおよびこれを発現する D
NA構築物に関する。
[0002] 背景 術
百日咳は、百日咳菌(Bordetella pertussis)の感染によって引き起こされる小児の急 性呼吸器感染症であり、この感染症対策としては、ワクチン接種による予防が最も効 果的である。現在、日本国で接種されている百日咳ワクチンは、百日咳毒素および 繊維状赤血球凝集素を主要防御抗原とする無細胞ワクチンである。そして、この無 細胞ワクチンに用いられる防御抗原は、百日咳菌の培養上清力 分画された後、ホ ルマリンで無毒化されたものである。この無細胞ワクチンの製造には、百日咳菌の大 量培養が必須であり、費用面およびバイオセーフティーといった安全性の面から、よ り安価で安全に製造できる新規ワクチンの開発が望まれている。
[0003] 1988年には、百日咳毒素遺伝子の全塩基配列が決定され、それ以降、各国の研 究グループにより遺伝子レベルでの新規百日咳ワクチンの研究開発が盛んに行わ れている。
[0004] 例えば、新規百日咳ワクチンの候補物質として、リコンビナント蛋白質として発現さ せた毒素抗原を挙げることができるが、これらのリコンビナント抗原によって予防上有 効な毒素中和抗体を誘導することは困難である。
[0005] 一方、 DNAワクチン技術は、ワクチン抗原遺伝子を直接生体内で発現させることに よって免疫応答を誘導する技術であり、従来のワクチンに比較して安価にワクチン製 造が行えるものと期待されている。そして、近年、多くの感染症に対し、その防御抗原 遺伝子を用いた DNAワクチンの有効性が検討されて 、る。
[0006] 例えば、 K. Kamachi et al., Vaccine, 21, 4609-4615, 2003には、百日咳毒素の S1 サブユニットを発現するプラスミド DNAをマウスに接種すると、百日咳毒素中和活性 が誘導されることが開示されて 、る。 [0007] また、 Castro MG, et al., Cell micorbiol, 3, 45-54, 2001には、 CHO細胞において 発現させた百日咳毒素の S1サブユニットは、毒性活性 (ADP—リボシルトランスフェラ ーゼ活性)を示すことが開示されている。
[0008] また、 Pizza M., et al., Science, 246, 497-500, 1989には、百日咳毒素 S1サブュ- ットの毒性活性発現に関与するアミノ酸は同定されており、その第 9番目のアルギ- ン残基のリジン残基への変異および第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基 への変異を導入することにより、その毒素活性が消失することが開示されている。 発明の概要
[0009] 本発明者らは、今般、百日咳毒素 S1サブユニットにおける第 1一 180番のアミノ酸 からなるペプチド断片において、その第 9番目のアルギニン残基のリジン残基への変 異および Zまたは第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異を有する ペプチド断片を発現させることにより、その毒性活性を抑制しつつ、百日咳菌に対す る顕著な免疫防御効果を誘導することが可能であるとの知見を得た。本発明はこれら の知見に基づくものである。
[0010] 従って、本発明は、百日咳感染症の予防または治療に用いるポリペプチド、これを 発現しうる DNA構築物ならびにこれらを含んでなる医薬組成物を提供することを目 的とする。
[0011] そして、本発明によるポリペプチドは、 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブュ- ットのアミノ酸配列において、
(a)第 9番目のアルギニン残基のリジン残基への変異、および
(b)第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異
力 なる群力 選択される少なくとも一つの変異を有するアミノ酸配列を有するもので ある。
[0012] また、本発明による DNA構築物は、前記ポリペプチドをコードする DNAを発現しう る形で含んでなるものである。
[0013] また、本発明による医薬組成物は、前記ポリペプチドまたは前記 DNA構築物を含 んでなるものである。
[0014] 本発明によれば、毒性の消失したポリペプチドまたはこのポリペプチド遺伝子を組 み込んだ DNA構築物を免疫原とすることから、それらの製造において、バイオセー フティーレベル 2の百日咳菌を大量培養する必要は無ぐ例えば、バイオセーフティ 一レベル 1の大腸菌を取り扱えばよいため、安全に百日咳予防用組成物を製造する ことが可能となる。さらに、本発明によれば、ポリペプチドまたは DNA構築物を直接 生体内に接種しても、宿主細胞内で毒素活性を生じることがなぐ宿主に対する安全 性の高い百日咳感染症の予防が可能となる。
図面の簡単な説明
[図 1]は、 C 180— 9K/129G遺伝子が挿入されたプラスミド(pcDNA/C 180— 9K /129G)の構築を示す図である。
[図 2]は、百日咳毒素 S1サブユニットの N末端または C末端を欠損する C200遺伝子
、 C 180遺伝子、 C 160遺伝子、および N40遺伝子の模式図である。
[図 3]は、 S1遺伝子、 C200遺伝子、 C180遺伝子、 C160遺伝子、または N40遺伝 子を導入した COS— 7細胞におけるノーザンプロット解析の結果を示す。
[図 4]は、 S1遺伝子、 C200遺伝子、 C180遺伝子、 C160遺伝子、または N40遺伝 子を導入した COS— 7細胞におけるウェスタンプロット解析の結果を示す。
[図 5]は、末端切断型 S1遺伝子 (C200遺伝子、 C180遺伝子、 C160遺伝子、また は N40遺伝子)を接種したマウス血清中の抗百日咳毒素抗体の濃度を示す。
[図 6]は、末端切断型 S1遺伝子を接種したマウスに百日咳毒素を投与した場合の末 梢血白血球数を示す。
[図 7]は、変異 C 180遺伝子(C 180— 9K遺伝子、 C180— 129G遺伝子、 C180—9K / 129G遺伝子)の模式図および上記変異 C 180遺伝子を導入した COS— 7細胞に おけるウェスタンブロット解析の結果を示す。
[図 8]は、変異 C 180遺伝子(C 180— 9K遺伝子、じ180—129〇遺伝子、または C 18 0— 9KZ129G遺伝子)を接種したマウス血清中の抗百日咳毒素抗体の濃度を示す
[図 9]は、変異 C 180遺伝子(C 180— 9K遺伝子、じ180—129〇遺伝子、または C 18 0— 9KZ129G遺伝子)を接種したマウスに百日咳毒素を投与した場合の末梢血白 血球数を示す。 [図 10]は、 pcDNA、 pcDNA/C180— 9K、 pcDNA/C 180-129G,または pcD NA/C 180-9K/ 129Gを CHO細胞に遺伝子導入して得た安定発現株の写真で ある。
発明の具体的説明
[0016] 本発明の一つの態様によれば、本発明によるポリペプチドをコードするアミノ酸配列 は、百日咳毒素 S1サブユニットにおける第 1一 180アミノ酸(以下「C180」という)から なり、さらに (a)第 9番目のアルギニン残基のリジン残基への変異 (以下「R9K変異」と V、う)および (b)第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異(以下「E12 9G変異」という)からなる群より選択される少なくとも一つの変異を有するものである。 そして、本発明の好ましい態様によれば、本発明によるポリペプチドは、 R9K変異を 有するものである(以下「C180—9K」という)。また、本発明の別の好ましい態様によ れば、本発明によるポリペプチドは E129G変異を有するものである(以下「C180— 1 29G」という)。さらに、本発明の別の好ましい態様によれば、 R9K変異および E129 G変異を有するものである(以下「C180— 9KZ129G」 t\ヽぅ)。
[0017] そして、変異を有さない C180のアミノ酸配列としては、配列番号 2で表されるァミノ 酸配列中の第 2— 181アミノ酸を有するものが挙げられる。配列番号 2中の第 1番目 のメチォニン残基は、翻訳後に脱離するものである。そして、本発明の好ましい態様 によれば、変異を有さない C180のアミノ酸配列は、配列番号 2における第 2— 181 番で表されるアミノ酸配列において、 R9K変異および Zまたは E129G変異以外の 部位において、 1個または数個のアミノ酸が置換、欠失もしくは付加したものである。 この変異を有さない C180のアミノ酸配列によって表される、本発明によるポリべプチ ドもまた、百日咳感染症に対する予防または治療に利用することが可能な免疫誘導 活性を有する。ここで、「1もしくは数個」の範囲は、好ましくは 1一 3個、より好ましくは 1一 2個程度を意味する。
[0018] また、本発明の別の好ましい態様によれば、変異を有さない C180のアミノ酸配列 は、配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列の部分配列であって R9 K変異および Zまたは E129G変異の部位を含む部分配列を含んでなるものである。 このような部分配列によって表される、本発明によるポリペプチドもまた、百日咳感染 症に対する予防または治療に利用することが可能な免疫誘導活性を有する。そして
、上記部分配列としては、好ましくは配列番号 2における第 3— 180番で表される部 分配列が挙げられる。
[0019] また、本発明によれば、本発明によるポリペプチドをコードする DNAが提供される。
そして、本発明の好ましい態様によれば、本発明による DNAは、配列番号 1におけ る第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列において、第 34— 36番残基がリジン残 基をコードするコドンへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである。このような置 換としては、好ましくは第 34— 36番残基のアデニン残基 (A)、アデニン残基 (A)、お よびグァニン残基 (G)への置換が挙げられる。また、本発明の別の好ましい態様によ れば、本発明による DNAは、配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオ チド配列において、第 394— 396番残基がグリシン残基をコードするコドンへ置換さ れたヌクレオチド配列を有するものである。このような置換としては、好ましくは第 395 一 396番残基のグァニン残基 (G)およびシトシン残基 (C)への変異が挙げられる。ま た、本発明の別の好ましい態様によれば、本発明による DNAは、配列番号 1におけ る第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列において、第 34— 36番残基がリジン残 基をコードするコドンへ置換され、かつ第 394— 396番残基がグリシン残基をコード するコドンへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである。このような置換としては 、好ましくは第 34— 36番残基の AAGへの置換および第 395— 396番残基の GCへ の置換が挙げられる。
[0020] そして、本発明による DNA構築物は、本発明によるポリペプチドをコードする DNA を発現しうる形で含んでなり、これにより本発明によるポリペプチドを発現することがで きる。ここで「発現しうる形で含んでなる」とは、適切な調節エレメント(例えば、プロモ 一ター、ェンハンサー、転写ターミネータ一など)の制御下に、導入遺伝子 (DNA) の発現を可能にする様式で、その DNA構築物中に該導入遺伝子が挿入されている ことを意味する。
[0021] C180をコードする DNAは、既に公知の Bordetella pertussis遺伝子の配列情報に 基づいて PCRプライマーを調製し、 Bordetella pertussisゲノム DNAに対して PCR反 応を行うことなどによりクローユングすることができる。これらのクローユングは、例えば Molecular Cloning 2nd Edt., Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989)等の文献に 従い、当業者ならば容易に行うことができる。そして、本発明において、 C180— 9K、 C180— 129G、または C180— 9K/129Gをコードする DNAは、 C180をコードする DNAに対して、例えば、 PCRを用いた変異導入法、部位特異的突然変異誘発法な どを適用することにより容易に得ることができ、具体的には上記 Molecular Cloning等 の文献を参考にして容易に行うことができる。
[0022] 本発明による DNA構築物は、非ウィルスベクターあるいはウィルスベクターに発現 可能なように挿入された形態で用いることができる。したがって、本発明によれば、本 発明による DNA構築物を含んでなるベクターが提供される。これらの非ウィルスべク ターおよびウィルスベクターの調製法、投与法などは既に当業者に公知であり、例え ば、別冊実験医学、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、 1996 ;別冊実験医学、遺伝子 導入 &発現解析実験法、羊土社、 1997 ;遺伝子治療開発研究ハンドブック、 日本遺 伝子治療学会編、ェヌ'ティー'エス、 1999などが参考とされる。非ウィルスベクターと しては、哺乳動物の生体内で目的遺伝子を発現させることのできるベクターであれば 特に限定されず、好ましくはプラスミドとされる。非ウィルスベクターとしては、例えば、 pcDNA3.1、 pZeoSVゝ pBK- CMV (Invitrogen社、 Stratagene社)や pCAGGS (Gene 108, 193-200(1991))などが挙げられ、好ましくは pcDNA3.1とされる。これらの発現べ クタ一のプロモーターの下流域に発現可能なように上記遺伝子を挿入することにより 、本発明によるベクターを調製することができる。また、本発明に用いることのできるゥ ィルスべクタ一の例としては、アデノウイルス、アデノ随伴ウィルス、ヘルぺスウィルス 、ワクシニアウィルス、ボックスウィルス、ポリオウイルス、シンビスゥイノレス、センダイゥ ィルス、 SV40、免疫不全症ウィルス(HIV)等を挙げることができる力 これらに限定さ れない。
[0023] そして、本発明によるポリペプチドは、例えば、上述のベクターを好適な宿主に導 入し、この宿主を培養し、培養物中に本発明によるポリペプチドを生成蓄積させ、そ の培養物より本発明によるポリペプチドを単離し、精製すること〖こより得ることができる 。上記宿主としては、大腸菌、昆虫細胞または哺乳類細胞などが挙げられるが、好ま しくは哺乳類細胞である。また宿主へのベクターの導入方法、宿主の培養条件等は 、当業者により適宜選択される。また、本発明によるポリペプチドの単離精製につい ては、公知手法を用いることができる。
[0024] C180には、百日咳毒素に対する免疫惹起部位のみならず、毒性活性部位も含ま れるが、本発明によるポリペプチドは、主に抗体産生を効率よく誘導し、毒性活性は ほとんど発現しない。よって、本発明によるポリペプチドは、哺乳動物における百日咳 感染症の予防に好適に用いることができる。したがって、本発明によれば、予防上有 効量の本発明によるポリペプチドを被験者に投与することを含んでなる、百日咳感染 症の予防方法が提供される。また、本発明によるポリペプチドは、百日咳感染症の治 療に用いることも可能である。したがって、本発明によれば、治療上有効量の本発明 によるポリペプチドを被検者に投与することを含んでなる、百日咳感染症の治療方法 が提供される。本明細書において、「治療」とは、確立された病態を改善することを意 味し、「予防」とは、将来における病態の確立を防止することを意味する。被験者は、 通常ヒトであり、好ましくは乳幼児とされる。
[0025] 本発明によるポリペプチドを被験者に投与する方法としては、免疫を誘導する公知 の方法を用いることが可能であり、例えば、所望により公知のアジュバントとともに、液 剤、懸濁剤などに調製し、皮下注射、筋肉注射または経口などにより投与することが できる。
[0026] 投与される本発明によるポリペプチドの量は予防上または治療上有効量であれば よいが、具体的な量は当業者により決定される。また、投与量は、被検者の年齢、体 重等によって調整することが好ましいが、このような投与量の調整は、医師によって適 宜行なわれる。例えば、投与量は、通常 1一 10 gZ体重 kgであり、好ましくは 2— 5 μ gZ体重 kgとされる。本発明によるポリペプチドは上記の投与量の範囲内において 、医薬上安全である。
[0027] さらに、本発明によるポリペプチドを発現しうる、本発明による DNA構築物もまた、 DNAワクチンとして、哺乳動物における百日咳感染症の予防に好適に用いることが できる。したがって、本発明によれば、予防上有効量の本発明による DNA構築物ま たはベクターを被験者に投与することを含んでなる、百日咳感染症の予防方法が提 供される。また、本発明による DNA構築物は、百日咳感染症の治療に用いることも 可能である。したがって、本発明によれば、治療上有効量の本発明による DNA構築 物またはベクターを被検者に投与することを含んでなる、百日咳感染症の治療方法 が提供される。
[0028] また、本発明による DNA構築物を被験者に導入する方法としては、例えば、 DNA 構築物を直接体内に導入する in vivo法、被験者からある種の細胞を取り出して体外 で DNA構築物を細胞に導入し、その細胞を体内に戻す ex vivo法などがある(遺伝 子治療開発研究ハンドブック、日本遺伝子治療学会編、ェヌ ·ティー ·エス、 1999)。 in vivo法としては、例えば、本発明による DNA構築物を適当な溶剤(PBS等の緩衝 液、生理食塩水、滅菌水など)に溶解した後、必要に応じてフィルタ一等で濾過滅菌 し、次いで無菌的な容器に充填して注射剤を調製して、被験者へ注射することにより 投与することができる。この注射剤は、被験者の筋肉または他の組織に、皮下、皮内 、静脈内、または脊髄液に直接注射することができる。注射剤には必要に応じて慣用 の担体等をカ卩えてもよい。また、本発明による DNA構築物は、経口および経鼻的に 呼吸器粘膜細胞に投与することができる。また、脂質二重膜で作られたリボソーム中 に本発明による DNA構築物を封入し、さらにこのリボソームと不活ィ匕したセンダイゥ ィルス(Hemagglutinating virus of Japan: HVJ)とを融合させ、 HVJ—リボソームとして 投与することもできる (実験医学別冊、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、 1996 ;遺伝 子導入 &発現解析実験法、羊土社、 1994)。また、本発明による DNA構築物を金微 小粒子にコーティングして、粒子衝突装置、または「遺伝子銃」によって経皮輸送して もよい(Tang、 1992、 Nature 356 : 152— 154)。 ex vivo法としては、例えば、エレクト口 ポレーシヨン法、リポフエクシヨン法、リン酸 カルシウム共沈法、 DEAE—デキストラン 法、微小ガラス管などを用いて細胞内へ本発明による DNA構築物を直接注入する 方法などが挙げられる。
[0029] 投与される本発明による DNA構築物の量は予防上または治療上有効量であれば よいが、具体的な量は遺伝子治療分野の当業者により決定される。また、投与量は、 被検者の年齢、体重等によって調整することが好ましいが、このような投与量の調整 は、医師によって適宜行なわれる。例えば、投与量は、通常 2— 40 gZ体重 kgで あり、好ましくは 4一 36 /z gZ体重 kgとされる。本発明による DNA構築物は上記の投 与量の範囲内において、医薬上安全である。
[0030] また、本発明による、ポリペプチドまたは DNA構築物もしくはベクターは、医薬組成 物として被験者に投与することができる。したがって、本発明の一つの態様によれば 、本発明によるポリペプチドを含んでなる、医薬組成物が提供される。さらに、本発明 の別の態様によれば、本発明による DNA構築物または本発明によるベクターを含ん でなる、医薬組成物が提供される。そして、上記の医薬組成物は、百日咳感染症の 予防、さらには治療に用いることができる。したがって、本発明の一つの態様によれ ば、百日咳感染症の予防剤または治療剤の製造における、本発明によるポリべプチ ドの使用が提供される。さらに、本発明の別の態様によれば、百日咳感染症の予防 剤または治療剤の製造における、本発明による DNA構築物またはベクターの使用 が提供される。
[0031] 本発明による医薬組成物は、医薬上許容される担体をさらに含むことができる。こ のような医薬上許容される担体、例えば、べヒクル、賦形剤、希釈液、アジュバント等 は、投与経路などに応じて、当業者により適宜選択される。
実施例
[0032] 以下、本発明を実施例によってより具体的に説明するが、本発明はこれら実施例に 限定されるものではない。
[0033] 参考例 1
百曰晐毒素 S 1サブユニット (PT-S 1)を発現するプラスミドベクター(OCDNAZS I )の構築
百日咳毒素 S 1サブユニットの DNAは、 Bordetella pertussis Tohama由来のゲノム DNAを铸型として、以下のプライマーを用いる PCRにて増幅した。ここで、下記のプ ライマーは、 Hindlllおよび BamHIの制限部位(下線部)をそれぞれ含んで 、る。
[0034] プライマー
mSl— F:フォワード: 5'— CCCMGCII
GCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC-3' (配列番号 3);
mSl— R:リバース :5し CGGGATCCTTACTAGAACGAATACGCGAT- 3' (配列番号
4)。 [0035] この PCRによる増幅は、 Takara PCR thermal cycler MP (登録商標:宝酒造株式会 社製)を用いて行った。サイクル反応の温度条件は、 94°Cで 20秒間、 68°Cで 3分間 、および 72°Cで 10分間を 1サイクルとし、これを 30サイクルとした。 PCR生成物は、 H indlllおよび BamHIにて処理し、真核細胞発現ベクター(pcDNA. 3. 1 (+ ); Invitrogen社製)に組み込んだ。こうして得た pcDNAZSlプラスミドは、 end-free plasmid preparation kits(Qiagen社製)を用いて、大腸菌 . coli) JM109株から精製し た。
[0036] 参考例 2
プラスミドベクター(r»cDNAZC180)の構築
百日咳毒素 S1サブユニットの N末端 180アミノ酸残基をコードする C180遺伝子お よびそのプラスミドベクター(pcDNAZC180)は、以下のプライマーを用いて、参考 例 1と同様の方法により製造した。
[0037] プライマー
mS 1-F:フォワード: 5'— CCCAAGCTT
GCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC-3' (配列番号 3);
C180— R:リバース :5し CGGGATCCTTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG- 3' (配 列番号 5)。
[0038] 参者例 3
プラスミドベクター(OCDNAZC200)の構築
百日咳毒素 S1サブユニットの N末端 200アミノ酸残基をコードする C200遺伝子お よびそのプラスミドベクター(pcDNAZC200)は、以下のプライマーを用いて、参考 例 1と同様の方法により製造した。
[0039] プライマー
mS 1-F:フォワード: 5'— CCCAAGCTT
GCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC-3' (配列番号 3);
C200— R:リバース :5し CGGGATCCTTACTAAGCGCCTATCACCGGCGC- 3' (配 列番号 6)。
[0040] 参考例 4 プラスミドベクター(r»cDNAZC160)の構築
百日咳毒素 S1サブユニットの N末端 160アミノ酸残基をコードする C160遺伝子お よびそのプラスミドベクター(pcDNAZC160)は、以下のプライマーを用いて、参考 例 1と同様の方法により製造した。
[0041] プライマー
mS 1-F:フォワード: 5'— CCCAAGCTT
GCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC-3' (配列番号 3);
C160— R:リバース :5し CGGGATCCTTACTACTCCGTGGTCGTGGTCTC- 3' (配 列番号 7)。
[0042] 参者例 5
プラスミドベクター(OCDNAZN40)の構築
百日咳毒素 S1サブユニットの N末端 40アミノ酸残基が欠損する N40遺伝子および これを組み込んだプラスミドベクター(pcDNAZN40)は、以下のプライマーを用い て、参考例 1と同様の方法により製造した。
[0043] プライマー
N40-F:フォワード: 5'- CCCAAGCTT
GCCACCATGTCCTGCCAGGTCGGCAGC-3' (配列番号 8);
mSl— R:リバース :5し CGGGATCCTTACTAGAACGAATACGCGAT- 3' (配列番号
4)。
[0044] 実施例 1
プラスミドベクター(r»cDNAZC180—9KZl29G)の構築
R9K変異および E129G変異を有する C180遺伝子は、 S1遺伝子を铸型として、 下記のプライマー(mSl— 9KZF、 E129G/R, E129GZFおよび C180R)の組み 合わせを用いた PCR法により製造した。具体的には、 mSl— 9KZFおよび E129G ZR、または E129GZFおよび C180Rのプライマーの組み合わせを用いた PCR法 により、 2種の PCR産物を得た。次に、この 2種の PCR産物を常法に従って精製し、 mSl— 9K/Fおよび C180Rプライマーを用いた PCR法にて処理し、 R9K変異およ ひE129G変異を有する C180遺伝子を得た。さらに、このようにして得た遺伝子を組 み込んだプラスミドベクター(pcDNA/C180— 9K/129G)を、参考例 1と同様の方 法により製造した。ここで、下記のプライマーは、 Hindlllおよび BamHIの制限酵素 部位(下線部)ならびに R9Kおよび E129Gの遺伝子変異 (かっこ内)をそれぞれ含 んでいる。
mSl-9K/F: 5, - CCCAAGCTT GCCG-3' (配列番号 9);
E129G/F: 5 ' -CTGGCCACCTACCAGAGC[GGC]
TATCTGGCACACCGGCGC-3 ' (配列番号 10);
E129G/R: 5 ' -GCGCCGGTGTGCCAGATA[GCC]
GCTCTGGTAGGTGGCCAG- 3,(配列番号 11);
C180R: 5, - CGGGATCCTTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG- 3, (配列番号 5)。 構築した pcDNA/C180— 9K/129Gは図 1の通りである。
[0045] 実飾 12
プラスミドベクター(OCDNAZC180— 9K)の構築
R9K変異を有する C180遺伝子は、 S1遺伝子を铸型として以下のプライマーを用 いて、参考例 1と同様の方法により製造した。また、 R9K変異を有する C 180遺伝子 を組み込んだプラスミドベクター(pcDNAZC 180— 9KZ129G)は、参考例 1と同様 の方法により製造した。ここで下記のプライマーは Hindlllおよび BamHIの制限酵素 部位(下線部)および R9K変異 (かっこ内)をそれぞれ含んで 、る。
mSl— 9K/F:フォワード: 5 ' -CCCAAGCTT
GCCG-3' (配列番号 9);
C180R:リバース: 5,- CGO ^TTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG- 3,(配 列番号 5)。
[0046] 実施例 3
プラスミ ベクター(ecDNA/C180— 129G の g¾
E129G変異を有する C180遺伝子は、 S 1遺伝子を铸型として、下記のプライマー (mSl—F、 E129G/R, E129G/F,および CI 80R)の組み合わせを用いた PCR 法により製造した。具体的には、 mSl—FぉょびE129G/R、または E129G/Fおよ び C180Rのプライマーの組み合わせを用いた PCR法により、 2種の PCR産物を得 た。次に、この 2種の PCR産物を常法に従って精製し、 11131—?ぉょびじ1801^プラィ マーを用いた PCR法にて処理し、 E129G変異を有する C180遺伝子を得た。さらに 、このようにして得た遺伝子を組み込んだプラスミドベクター(pcDNA/C180— 129 G)を、参考例 1と同様の方法により製造した。ここで、下記のプライマーは、 Hindlll および BamHIの制限酵素部位(下線部)ならびに E129Gの遺伝子変異 (かっこ内) をそれぞれ含んでいる。
mSl-F: 5, - CCCAAGCTTGCCACCATGGACGATCCTCCCGCCACC- 3, (配列 番号 3) ;
E129G/F: 5 ' -CTGGCCACCTACCAGAGC[GGC]
TATCTGGCACACCGGCGC-3 ' (配列番号 10);
E129G/R: 5 ' -GCGCCGGTGTGCCAGATA[GCC]
GCTCTGGTAGGTGGCCAG- 3, (配列番号 11);
C180R: 5, - CGGGATCCTTACTACGATGTGTAGGGGTTGGG- 3, (配列番号 5) [0047] 試験例 1
百曰梭羞泰 Siサブユニットの N末端または C末端 指する末端切断型 Si遣伝 早の 頊,解析
pcDNA、 pcDNA/Sl, pcDNA/C200, pcDNA/C180, pcDNA/C160, および pcDNAZN40を用いて以下の発現解析を行った。ここで、上記プラスミドの 発現するペプチド断片は、図 2の模式図の通りである。
[0048] ノーザンブロット解析
pcDNA、 pcDNA/Sl, pcDNA/C200, pcDNA/C180, pcDNA/C160, および pcDNAZN40をそれぞれ、 Superfect Transfection Reagent (Qiagen社製) を用いて COS— 7細胞へ遺伝子導入し、 24時間後、細胞を回収した。回収した細胞 から、常法に従って全 RNA画分を分離精製した。そして、 5 /^の全1^^\を1%ァガ ロースゲル電気泳動に供試した。百日咳毒素 SI mRNAの検出は、 ECL direct nucleic acid labelling and detection system (Amersham Pharmacia Bioteck)により、標 識された百日咳毒素 S1遺伝子を用いて常法に従って行った。結果は図 3の通りであ つた o
[0049] ウェスタンブロット解析
pcDNA、 pcDNA/Sl, pcDNA/C200, pcDNA/C180, pcDNA/C160, および pcDNAZN40をそれぞれ、 SuperFect Transfection Reagent(Qiagen社製)を 用いて COS— 7細胞へ導入し、 48時間 60mm皿に静置し、回収した。この回収した 細胞は、 SDS lysis buffer (100 μ L)に再懸濁した。こうして得たサンプルを 3分間加 熱後、遠心分離した。この上清を 14% SDS-PAGEゲルにて電気泳動した。そして、二 トロセルロース膜(Nippon Bio-Rad Laboratories製)に蛋白を転写した。この-トロセ ルロース膜を、マウス抗百日咳毒素ポリクローナル抗血清とともにインキュベートし、さ らに、ャギ抗マウス IgG—西洋ヮサビペルォキシダーゼコンジュゲート(Bio-RadLab.製 )ぉょび5しし Western blotting detection reagents(Amersham Biosciences製)【こて処 理し、抗原タンパク質の発現を解析した。この結果は図 4の通りであった。 C180およ び C200は、 COS— 7細胞にて強く発現することが確認された。
[0050] 試験例 2
pcDNA、 pcDNA/Sl, pcDNA/C200, pcDNA/C180, pcDNA/C160, および pcDNAZN40をそれぞれ、遺伝子銃(Heilio Gene Gun ; Bio-Rad Lab.社製; ヘリウムガス圧 400psi)を用いて Balb/cマウス(5週齢; 5匹 Z群)に 14日間隔で計 3 回皮内接種した。 1回の接種には 2 gのプラスミド DNAおよび 0. 5mgの gold particle (Bio-Rad Lab.社製)を使用した。そして、試験開始から、 17、 25、 33、およ び 41日目にマウスの尾静脈よりそれぞれ採血し、マウス血清を得た。
[0051] マウス血清中の抗百日晐毒素 IgG抗体の検出
マウス血清中の抗百日咳毒素 IgG抗体 (以下「抗 PT— IgG抗体」という。 )は、 2次抗 体としてアルカリホスファターゼ標識ャギ抗マウス IgG抗体(southern Biotechnology Associates Inc., Birmingham, AL)を用い、 ELISAによって測定した。
その結果を図 5の通りであった。マウス血清中の抗体価については、 pcDNAZC18 0がより高い値を示した。 [0052] 試験例 3
CI 80遺伝子接糠マウスの百日晐毒素攻擊に対する防御能
試験例 2と同様の方法により、 pcDNA、 pcDNA/Sl, pcDNA/C200, pcDN A/C180, pcDNAZC160、および pcDNA/N40を接種したマウスに、百日咳 毒素(2 g :生化学工業社製)の PBS (0. 5mL)溶液を腹腔内投与し、 3日後に尾 静脈から採血した。この血液における末梢血白血球数 (WBC)をコールターカウンタ 一(Beckman Coultor K.K.製)を用いて測定した。その結果は図 6の通りであった。
[0053] 試験例 4
栾異導人した百日晐毒素 C180遺伝子の発現解析
PT— Sl、 C180— 9K、 C180— 129G、および C180— 9KZ129Gを用いて、試験 1 と同様の方法により、 COS— 7細胞におけるタンパク質の発現についてウェスタンブ ロット解析した。結果は図 7の通りであった。 C180— 9K、 C180— 129G、および C18 0-9K/ 129Gは 、ずれも、変異 C 180抗原を発現することが確認された。
[0054] 試験例 5
虽 C1 80遣伝早榇糠による杭百日梭羞泰杭体の謙
pcDNA、 pcDNAZC180、 pcDNAZC180— 9K、 pcDNA/C180-129G,お よび C180— 9KZ129Gを用いて、試験例 2と同様の試験を行った。その結果は、図 8の通りであった。 pcDNA/C180— 9K、 pcDNA/C 180-129G,および C180— 9KZ129Gはいずれも、マウスに抗 PT— IgG抗体を誘導することが確認された。
[0055] 試験例 6
pcDNA、 pcDNAZC180、 pcDNAZC180— 9K、 pcDNA/C180-129G,お よび pcDNAZC180— 9KZ129Gを用いて、試験例 3と同様の試験を行った。その 結果は、図 9の通りであった。 pcDNA/C180— 9K、 pcDNA/C180-129G,お よび pcDNAZC180—9KZl29Gはいずれも、マウスにおいて百日咳毒素の攻撃 に対する中和活性を誘導することを示して 、る。
[0056] 試験例 7
^¾C180遺伝子の安定発現株の形態
pcDNA (コントロール)、 pcDNA/C180—9K、 pcDNA/C180-129G,および pcDNAZC180— 9KZ129Gをそれぞれ、 SuperFect Transfection Reagent (Qiage n社製)を用いて、 COS— 7細胞に遺伝子導入した。遺伝子導入された細胞について は、 500 gZmL Geneticin(Sigma社製)を用いて、安定発現株の選択およびクロー ン化を行った。結果は図 10に示す通りであった。 C180— 9KZ129Gを発現する細 胞株は C180— 9Kおよび C180— 129Gを発現する細胞株よりも死細胞が少なぐ C HO細胞に対する細胞毒性が顕著に低いことが示された。

Claims

請求の範囲
[1] 180アミノ酸力 なる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配列において、
(a)第 9番目のアルギニン残基のリジン残基への変異、および
(b)第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異
力もなる群力も選択される少なくとも一つの変異を有するアミノ酸配列を有する、ポリ ペプチド。
[2] 変異を有さない、前記 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配 列が、配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配 列において、前記 (a)および Zまたは (b)の変異以外の部位において、 1個または数 個のアミノ酸が置換、欠失もしくは付加したものである、請求項 1に記載のポリべプチ ド、。
[3] 変異を有さない、前記 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配 列力 配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列の部分配列であって 前記 (a)および Zまたは (b)の変異の部位を含む部分配列、を含んでなるものである 、請求項 1に記載のポリペプチド。
[4] 前記 (a)の変異を有するものである、請求項 1に記載のポリペプチド。
[5] 前記 (b)の変異を有するものである、請求項 1に記載のポリペプチド。
[6] 前記 (a)および前記 (b)の変異を有するものである、請求項 1に記載のポリペプチド
[7] 請求項 1一 6のいずれか一項に記載のポリペプチドをコードする、 DNA。
[8] 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列において、第 34— 3
6番残基が AAGへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである、請求項 7に記載 の DNA。
[9] 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列において、第 395— 396番残基が GCへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである、請求項 7に記 載の DNA。
[10] 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列において、第 34— 3 6番残基が AAGへ置換され、かつ第 395— 396番残基が GCへ置換されたヌクレオ チド配列を有するものである、請求項 7に記載の DNA。
[11] 180アミノ酸力 なる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配列において、
(a)第 9番目のアルギニン残基のリジン残基への変異、および
(b)第 129番目のグルタミン酸残基のグリシン残基への変異
力 なる群力も選択される少なくとも一つの変異を有するアミノ酸配列をコードする D NAを発現しうる形で含んでなる、 DNA構築物。
[12] 変異を有さない、前記 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配 列が、配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列である、請求項 11に 記載の DNA構築物。
[13] 変異を有さない、前記 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配 列が、配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列、または該アミノ酸配 列において、前記 (a)および Zまたは (b)の変異以外の部位において、 1個または数 個のアミノ酸が置換、欠失もしくは付加したものである、請求項 11に記載の DNA構 築物。
[14] 変異を有さない、前記 180アミノ酸力もなる百日咳毒素 S1サブユニットのアミノ酸配 列力 配列番号 2における第 2— 181番で表されるアミノ酸配列の部分配列であって 前記 (a)および Zまたは (b)の変異の部位を含む部分配列、を含んでなるものである
、請求項 11に記載の DNA構築物。
[15] 前記 DNAによりコードされるアミノ酸配列が、前記 (a)の変異を有するものである、 請求項 11一 14の 、ずれか一項に記載の DNA構築物。
[16] 前記 DNA力 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列にお
V、て、第 34— 36番残基が AAGへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである、 請求項 15に記載の DNA構築物。
[17] 前記 DNAによりコードされるアミノ酸配列が、前記 (b)の変異を有するものである、 請求項 11一 14の 、ずれか一項に記載の DNA構築物。
[18] 前記 DNA力 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列にお いて、第 395— 396番残基が GCへ置換されたヌクレオチド配列を有するものである
、請求項 17に記載の DNA構築物。
[19] 前記アミノ酸配列が、前記 (a)および前記 (b)の変異を有するものである、請求項 1
1一 14のいずれか一項に記載の DNA構築物。
[20] 前記 DNA力 配列番号 1における第 10— 549番で表されるヌクレオチド配列にお いて、第 34— 36番残基が AAGへ置換され、かつ第 395— 396番残基が GCへ置換 されたヌクレオチド配列を有するものである、請求項 19に記載の DNA構築物。
[21] 請求項 11一 20のいずれか一項に記載の DNA構築物を含んでなる、ベクター。
[22] 請求項 1一 6のいずれか一項に記載のポリペプチドを含んでなる、医薬組成物。
[23] 請求項 11一 20のいずれか一項に記載の DNA構築物または請求項 21に記載の ベクターを含んでなる、医薬組成物。
[24] 百日咳感染症の予防または治療に用いられるものである、請求項 22または 23に記 載の医薬組成物。
[25] 百日咳感染症の予防剤または治療剤の製造における、請求項 1一 6の ヽずれか一 項に記載のポリペプチドの使用。
[26] 百日咳感染症の予防剤または治療剤の製造における、請求項 11一 20の 、ずれか 一項に記載の DNA構築物または請求項 21に記載のベクターの使用。
[27] 予防または治療上有効量の請求項 1一 6の 、ずれか一項に記載のポリペプチドを 被検者に投与することを含んでなる、百日咳感染症の予防または治療する方法。
[28] 予防または治療上有効量の請求項 11一 20の 、ずれか一項に記載の DNA構築 物または請求項 21に記載のベクターを被検者に投与することを含んでなる、百日咳 感染症の予防または治療する方法。
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