WO2005062027A1 - 有害物質の評価方法、及び有害物質の評価用キット - Google Patents

有害物質の評価方法、及び有害物質の評価用キット Download PDF

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WO2005062027A1
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measurement
sample
light
solution
delayed fluorescence
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PCT/JP2004/018844
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Masakazu Katsumata
Hiroshi Tsuchiya
Takashi Koike
Masataka Nishikawa
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Hamamatsu Photonics K.K.
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    • G01N2021/635Photosynthetic material analysis, e.g. chrorophyll

Definitions

  • the present invention relates to a method for evaluating harmful substances and a kit for evaluating harmful substances.
  • Bio Atsui is used as a method for evaluating the effect of unknown chemical substances present in the environment on living organisms.
  • Bioassay is an existing physicochemical method because it can comprehensively detect biological effects such as the effects of unknown or unexpected substances, the interaction of chemical substances, and the effects of the environment. It has a complementary relationship with liquid chromatography, gas chromatography, atomic absorption measurement, and enzymimnoassy.
  • bioassay In this bioassay, a relatively large number of individuals can be statistically processed and have a relatively short life cycle. Small aquatic organisms are used, which have various biological functions and are easily affected by chemical substances. As a specific method of bioassay, there is a biological effect evaluation by an algal growth inhibition test prescribed in the guidelines of the Ministry of the Environment, Japan. The algal growth inhibition test is a method for evaluating the various toxicity of a test substance to algae.
  • Non-Patent Document 1 describes a method for measuring photosynthesis inhibition using chlorophyll fluorescence from algae.
  • Non-Patent Documents 2 and 3 also describe a measurement method using delayed fluorescence.
  • Non-Noon Document 1 Ulrich bchreiber et al., New type of dual-channel PAM chlorophyll fluorometer for highly sensitive water toxicity biotests ", Photosynthesis Research 74, p.317-330 (2002)
  • Non-special reference literature 2 Werner Schmidt and Horst Senger, "Long-term delayed luminescence in Scenedesmus obliquus. II. Influence of exogeneous factors, Biochimica et Biophysica Acta 891, p. 22-27 (1987)
  • Non-Patent Document 3 Joacnim Burger and Werner Schmidt, "Long term delayed
  • the present invention has been made in view of a powerful problem, and a harmful substance evaluation method capable of analyzing a wide range of harmful substances in a short time, and a kit for evaluating harmful substances.
  • the purpose is to provide
  • the method for evaluating a harmful substance is a method for evaluating a toxic substance that evaluates a toxic substance present in an aqueous solution sample to be tested.
  • a photosynthetic sample having a photosynthetic function is mixed with an aqueous solution sample to prepare a test measurement solution, the test measurement solution is left for a predetermined time, and the test measurement solution is irradiated with light for a predetermined irradiation time.
  • the first step of measuring the amount of delayed fluorescence generated and (2) leaving the comparative measurement solution prepared by mixing the photosynthetic sample in the comparative sampler for a predetermined period of time, and irradiating the comparative measurement solution with the predetermined irradiation time
  • a second step of preparing a comparative measurement result obtained by measuring the amount of delayed fluorescence generated (3) An evaluation value is calculated based on the amount of delayed fluorescence obtained in each of the first step and the second step, and a comparison value of the evaluation value is calculated, thereby determining a harmful substance present in the aqueous solution sample.
  • the evaluation value is an elapsed time at a characteristic point of a temporal change in the amount of the delayed fluorescence obtained in the first step and the second step. I do.
  • the harmful substance evaluation method according to the present invention is a harmful substance evaluation method for evaluating harmful substances present in an aqueous solution sample to be tested, wherein (1) a photosynthetic sample having a photosynthetic function in the aqueous solution sample To prepare a test measurement solution, leave the test measurement solution for a predetermined standing time, irradiate the test measurement solution with light for a predetermined irradiation time, and then measure the amount of delayed fluorescence generated. (2) The comparative measurement solution prepared by mixing the photosynthesis sample with the comparative sample was allowed to stand for a predetermined period of time, and after irradiating the comparative measurement solution with light for the predetermined irradiation time, the amount of delayed fluorescence generated was measured.
  • a second step of preparing the comparison measurement results and (3) calculating an evaluation value based on the amount of delayed fluorescence obtained in each of the first and second steps, and comparing the evaluation values.
  • the evaluation value is calculated based on the time of the amount of the delayed fluorescence obtained in the first and second steps. It is a characteristic change, and the comparison value is a value obtained by taking the difference of the temporal change.
  • a temporal change in the amount of delayed fluorescence emitted from a photosynthetic sample mixed with an aqueous solution sample to be evaluated is compared with a comparison sample prepared as a comparative object for an aqueous solution sample.
  • the characteristics obtained by comparing the temporal change in the amount of delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample in the comparative measurement solution containing the sample enable the simultaneous and accurate qualitative and quantitative determination of a plurality of harmful substances.
  • the measurement time can be shortened as a whole.
  • the evaluation value is calculated based on a characteristic point of a temporal change in the light amount of the delayed fluorescence acquired in the first step and the second step. It is overtime.
  • the characteristic point of the temporal change of the amount of delayed fluorescence is Since it changes depending on the type of chemical substance that becomes a harmful substance, by evaluating the elapsed time at the characteristic point, various harmful substances can be qualitatively and quantitatively more accurately.
  • the evaluation value is a temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained in the first step and the second step
  • the comparison value is a difference between the temporal changes.
  • the temporal change in the amount of delayed fluorescence acquired in the first step or the second step has a characteristic point. It is possible to use a method of evaluating a harmful substance by using a value obtained by taking the difference in the temporal change in the amount of delayed fluorescence over a predetermined range between the characteristic point of measurement and the measurement start point or another characteristic point as a comparison value. it can. Further, when there is no characteristic point in the temporal change in the amount of delayed fluorescent light, the value obtained by taking the difference in the temporal change in the amount of delayed fluorescent light over the entirety or a predetermined range can be used as the comparison value.
  • a value obtained by taking a difference in a temporal change in the amount of the delayed fluorescence acquired in the first step and the second step is further added to the first step or the second step
  • a method of evaluating a harmful substance can be used as a comparison value using a value obtained by calculating a ratio of the amount of delayed fluorescence obtained over time to the change over time.
  • a standard sample solution to be compared is used as a comparative sample
  • a photosynthetic sample sample is mixed with the standard sample to prepare a standard measurement solution as a comparative measurement solution
  • the standard measurement solution is allowed to stand for a predetermined period of time.
  • a method in which the standard measurement solution is allowed to stand and irradiated with light for a predetermined irradiation time, and then the amount of delayed fluorescence generated is measured to obtain a comparative measurement result.
  • it is preferable to use, as a standard sample a sample substantially free of harmful substances.
  • another aqueous sample is used as a comparative sample, and another test measurement solution that is a comparative measurement solution prepared by mixing a photosynthetic sample with another aqueous sample is obtained.
  • Prepared measurement results as comparison measurement results The method can be used. In this case, for example, the previous measurement result can be used as the comparison measurement result.
  • a method of preparing the comparative measurement result by measuring the amount of delayed fluorescence light for the comparative measurement solution can be used.
  • a method of preparing a measurement result obtained in advance for a comparative measurement solution as a comparative measurement result may be used. In such a case, it is preferable to store the comparison measurement results obtained in advance in a memory or the like, and read and use the data as necessary.
  • the light condition is changed for each measurement, the test measurement solution and the comparative measurement solution are left for a predetermined standing time, and in the third step, It is also preferable to evaluate the change of the comparison value according to the light condition.
  • the influence of the light conditions on the delayed fluorescence characteristics differs for each harmful substance, and the evaluation of the comparison value according to the change in the light conditions when left undisturbed allows the discrimination of the harmful substances in the aqueous solution sample. It becomes even easier.
  • the density of the photosynthetic sample in the test measurement solution and the comparative measurement solution is preferably in a range of density having a proportional relationship with the amount of delayed fluorescence.
  • the density of the photosynthetic sample is measured by measuring the absorbance and the like, and then the amount of the delayed fluorescence is corrected based on the density, thereby realizing more accurate evaluation of the harmful substance.
  • the test measurement solution and the comparative measurement solution it is also preferable to homogenize the test measurement solution and the comparative measurement solution before measuring the amount of delayed fluorescence. In this way, since the photosynthetic sample in the measurement solution is evenly distributed during the measurement, it is possible to evaluate harmful substances with even less error.
  • the photosynthetic sample to be mixed with the aqueous sample it is preferable to use a photosynthetic sample made of at least one selected from the group consisting of salt-resistant algae, alkali-resistant algae, and acid-resistant algae.
  • a photosynthetic sample is Spirulina.
  • the other harmful substance evaluation method is a harmful substance evaluation method for evaluating harmful substances present in an aqueous solution sample to be tested, and comprises: ( a ) photosynthesis having a photosynthesis function to an aqueous solution sample; A preparation step of mixing the sample to prepare a test measurement solution; (b) a step of leaving the test measurement solution for a predetermined time; and (c) a step of irradiating the test measurement solution with light for a predetermined irradiation time.
  • a measurement step for measuring the amount of delayed fluorescence to be measured (d) an evaluation step for evaluating harmful substances present in the aqueous solution sample based on the amount of delayed fluorescence obtained in the measurement step, and (e) a measurement step.
  • the step Before the step, perform a standby in the dark for a predetermined waiting time for the test measurement solution, or perform preliminary light irradiation and a standby in the dark for a predetermined waiting time on the test measurement solution. And an acclimation step including one of the preliminary irradiation steps.
  • a plurality of harmful substances can be simultaneously and simultaneously analyzed based on the characteristics obtained in the temporal change of the amount of delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample mixed with the aqueous solution sample to be evaluated. It can be qualitatively and quantitatively accurately.
  • measurement time can be shortened as a whole.
  • the predetermined standby time in the dark standby step is preferably 30 seconds or more and 1 hour or less.
  • the ratio of the preliminary light irradiation time and the dark standby time in the preliminary irradiation step is equal to the ratio of the light irradiation time and the dark standby time in the measurement step.
  • kits for evaluating harmful substances for evaluating harmful substances present in an aqueous solution sample to be tested comprising: a photosynthetic sample mixed with the aqueous solution sample;
  • a kit for evaluating harmful substances comprising: a mixed salt for adjusting the salt concentration and pH of an aqueous solution sample, and mixing means for separating and mixing a photosynthetic sample and a mixed salt into an aqueous sample.
  • the evaluation kit preferably includes a stabilizer for making the distribution density of the photosynthetic sample uniform. like this Examples of the stabilizer include a specific gravity adjuster and a thickener.
  • FIG. 1 is a diagram showing one embodiment of a delayed fluorescence measurement device.
  • FIG. 2 is a block diagram partially showing the delayed fluorescence measurement device of FIG. 1.
  • FIG. 3 is a flowchart showing a procedure of a method for evaluating a factor inhibiting biological growth according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 4 is a flow chart showing the operation of the delayed fluorescence measurement device 1 when measuring the amount of delayed fluorescence.
  • FIG. 5 is a diagram showing an example of a temporal change in the amount of delayed fluorescence light.
  • FIG. 6 (a) is a graph showing an example of the relationship between the absorbance at a wavelength of 665 nm and the amount of delayed fluorescence
  • (b) is a graph showing an example of the relationship between the absorbance at a wavelength of 750 nm and the amount of delayed fluorescence.
  • FIG. 7 is a graph showing a change in a comparative value VCP1 with respect to absorbance.
  • FIG. 8 (a) is a graph showing the evaluation value CP1 when the light intensity is changed, (b) is a graph showing the evaluation value CP2 when the light intensity is changed, and (c) Is a graph showing the evaluation value TP2 when the light intensity was changed.
  • FIG. 9 (a) is a graph showing the evaluation value CP1 when the light wavelength is changed, (b) is a graph showing the evaluation value CP2 when the light wavelength is changed, and (c) Is a graph showing the evaluation value TP2 when the light wavelength is changed.
  • FIG. 10 (a) is a graph showing a change in the comparative value VCP1 with respect to the atrazine concentration, (b) is a graph showing a change in the comparative value VCP2 with respect to the atrazine concentration, and (c) is a graph showing the change with respect to the atrazine concentration 9 is a graph showing a change in a comparative value VTP2.
  • FIG. 11 is a graph showing Curve values when the concentration of atrazine is changed.
  • FIG. 12 (a) is a graph showing a change in the comparative value VCP1 with respect to the DCMU concentration, (b) is a graph showing a change in the comparative value VCP2 with respect to the DCMU concentration, and (c) is a graph showing the change in the DCMU concentration 9 is a graph showing a change in a comparative value VTP2.
  • FIG. 13 is a graph showing a curve value when the DCMU concentration is changed.
  • FIG. 14 (a) in FIG. 14 is a graph showing the change in the comparative value VCP1 with respect to the paraquat concentration, (b) is a graph showing the change in the comparative value VCP2 with respect to the paraquat concentration, and (c) is a comparative value with respect to the paraquat concentration 6 is a graph showing a change in VTP2.
  • FIG. 15 is a graph showing the curve values when the paraquat concentration was changed.
  • Garden 16 (a) of FIG. 16 is a graph showing a change in the comparative value VCP1 with respect to the inorganic mercury concentration, (b) is a graph showing a change in the comparative value VCP2 with respect to the inorganic mercury concentration, and (c) is a graph showing the change in the inorganic mercury concentration 9 is a graph showing a change in a comparison value VTP2 with respect to a degree.
  • FIG. 17 is a graph showing Curve values when the concentration of inorganic mercury is changed.
  • FIG. 18 (a) is a graph showing a change in comparison value VCP1 with respect to free cyan concentration, (b) is a graph showing a change in comparison value VCP2 with respect to free cyan concentration, and (c) is a graph showing free cyanide concentration. 9 is a graph showing a change in a comparative value VTP2 with respect to a concentration.
  • FIG. 19 is a graph showing a curve value when the free cyan concentration is changed.
  • FIG. 20 (a) is a graph showing a change in comparison value VCP1 with respect to TPN concentration, (b) is a graph showing a change in comparison value VCP2 with respect to TPN concentration, (c) is a ratio with respect to TPN concentration 6 is a graph showing a change in a comparative value VTP2.
  • FIG. 21 is a graph showing a curve value when the TPN concentration is changed.
  • FIG. 22 (a) is a graph showing the comparison value VCP1 of each test measurement solution containing different types of biological growth inhibition factors, and (b) is a ratio of each test measurement solution containing different types of biological growth inhibition factors.
  • a graph showing the comparison value VCP2 and (c) is a graph showing the comparison value VTP2 of each test measurement solution containing different types of biological growth inhibiting factors.
  • Figure 23 (a) is a graph showing the comparison value VCP1 of each test measurement solution containing the same type of biological growth inhibition factor, and (b) is the ratio of each test measurement solution containing the same type of biological growth inhibition factor A graph showing the comparison value VCP2, and (c) is a graph showing the comparison value VTP2 of each test measurement solution containing the same kind of biological growth inhibiting factor.
  • FIG. 24 is a diagram showing a procedure for measuring delayed fluorescence using the kit for evaluating a factor inhibiting biological growth according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 25 is a kit for evaluating a biological growth inhibitory factor according to another embodiment of the present invention.
  • FIG. 6 is a diagram showing a procedure when measuring delayed fluorescence using the method shown in FIG.
  • FIG. 26 is a flowchart showing a procedure of an evaluation method of a biological growth inhibiting factor according to another embodiment of the present invention.
  • Figure 27 (a) is a graph showing the comparison values for TPN under various light conditions when left unattended, and (b) is a graph showing the comparison values for inorganic mercury under various light conditions when left unattended. It is.
  • FIG. 28 (a) is a graph showing the comparison value VCP1 calculated in Example 1
  • (b) is a graph showing the comparison value VCP2 calculated in Example 1
  • (c) is a graph showing the comparison value VCP2 calculated in Example 1.
  • 6 is a graph showing a comparison value VTP2 calculated in Example 1.
  • FIG. 29 is a graph showing the comparison value VCP1 calculated in Example 2.
  • FIG. 30 is a table showing an example of adjustment when an aqueous solution sample is adjusted using a high salt medium and a low salt medium.
  • FIG. 31 is a graph showing the change in the amount of delayed fluorescence with respect to the standing time under the conditions of no solution homogenization and addition of a thickener.
  • FIG. 32 is a schematic diagram showing an example of a continuous evaluation method for harmful substances.
  • FIG. 33 is a schematic view showing another example of a method for continuously evaluating harmful substances.
  • FIG. 34 is a diagram showing an example of a temporal change in the amount of delayed fluorescent light.
  • FIG. 35 is a diagram showing an example of a method of calculating a curve value when a characteristic point exists in a delayed fluorescence decay curve.
  • FIG. 36 is a diagram showing an example of a method of calculating a curve value when a feature point does not exist in a delayed fluorescence decay curve.
  • FIG. 37 is a graph showing Curve values when the simazine concentration and the dichlorophenol concentration were changed.
  • FIG. 38 is a graph showing VCurve values when simazine concentration and dichlorophenol concentration were changed.
  • FIG. 39 is a graph showing a change in the evaluation value CP1 depending on the number of times of measurement of the delayed fluorescence.
  • FIG. 40 is a table showing the measurement accuracy of the results of three measurements of delayed fluorescence Explanation of reference numerals
  • FIG. 1 is a diagram illustrating an embodiment of a delayed fluorescence measurement device
  • FIG. 2 is a block diagram partially illustrating the delayed fluorescence measurement device.
  • the delayed fluorescence measurement device 1 includes a light source 10, a first measurement unit 12, a second measurement unit 14, an analysis unit 16, and a control unit 18.
  • the light source 10 irradiates a solution to be measured with measurement light having a predetermined wavelength, and the wavelength is 280 nm and 800 nm.
  • the light source 10 may be a monochromatic light source or a light source combining a plurality of light sources.
  • the light emission of the light source 10 may be continued for a predetermined time or may be lighted in an arbitrary pattern. Further, a plurality of light sources having the same or different wavelength characteristics may emit light sequentially, or a plurality of light sources may emit light simultaneously.
  • the first measuring unit 12 measures the absorbance of the solution or the amount of scattered light with respect to the measurement light, and detects the transmitted light or the scattered light of the measurement light applied to the solution. And an absorbance or scattered light amount calculator 12b that calculates the absorbance or the amount of scattered light based on the signal detected and output by the first optical sensor 12a.
  • the second measurement unit 14 measures the amount of delayed fluorescence generated from the photosynthetic sample (details will be described later) due to the irradiation of the measurement light, and a second optical sensor that detects the delayed fluorescence. 14a and the delayed fluorescent light based on the signal detected and output by the second optical sensor 14a. And a delayed fluorescence amount calculator 14b for calculating the amount.
  • delayed fluorescence is generated as follows. In other words, in a biological reaction having a photosynthetic function, light energy absorbed by an assimilating dye (photosynthetic pigment) is transmitted as chemical energy through the electron transfer pathway during the biological reaction.
  • delayed fluorescence is sometimes referred to as delayed emission, and is hereinafter collectively referred to as delayed fluorescence.
  • the light source 10, the first measurement unit 12, and the second measurement unit 14 are housed in a housing 20 having a light shielding property.
  • the housing 20 itself may be formed of a light-blocking member that blocks light, or may be formed of a member coated with a paint or the like that blocks light.
  • the housing 20 has a main body 22 and a lid 24.
  • the main body 22 has an inlet 26 formed at one end thereof.
  • the inlet 26 is formed to allow the solution containing the photosynthetic sample to enter the housing 20, and is closed by the lid 24.
  • an installation section 28 in which a container (not shown) containing a solution can be installed is provided near the middle between the light source 10 and the first measurement section 12.
  • the installation section 28 has, for example, fixed claws for fixing the container, and the fixed claws are used to fix the container.
  • a filter 30, a condensing optical system 32, and a shirt 34 are provided between the installation section 28 and the second measurement section 14 in the housing 20.
  • the filter 30 is provided so as to be in contact with the inner wall surface of the housing 20, and transmits the delayed fluorescence.
  • the focusing optical system 32 focuses weak delayed fluorescence.
  • the shirt shirt 34 is openable and closable, and shuts off delayed fluorescence when closed.
  • the analysis unit 16 is connected to the first measurement unit 12 and the second measurement unit 14 via the first cable 36, and has a calculation unit 38, a storage unit 40, and a display unit 42.
  • the calculating unit 38 exists in the solution based on the absorbance or the amount of scattered light measured by the first measuring unit 12 and the amount of delayed fluorescence measured by the second measuring unit 14 according to a calculation method described later. To determine comparative values that correlate with hazardous substances.
  • the storage unit 40 sequentially stores the comparison values obtained by the calculation unit 38.
  • the display unit 42 displays or illustrates a plurality of comparison values sequentially stored in the storage unit 40.
  • the control unit 18 is connected to the analysis unit 16 via the second cable 44.
  • control unit 18 is connected to the first measurement unit 12 and the second measurement unit 14 via the second cable 44 and the first cable 36. Further, the control unit 18 transmits a control signal for controlling the opening and closing of the lid 24, the emission of light from the light source 10, the stop of emission, and the opening and closing of the shirt 34.
  • FIG. 3 is a flowchart showing a procedure of a method of evaluating a biological growth inhibiting factor as a harmful substance.
  • This evaluation method is to evaluate the factors inhibiting the growth of living organisms in the aqueous solution to be tested.
  • the biological growth inhibitory factor is a factor that exerts an adverse effect such as a growth inhibitory action or toxicity on a biological individual such as a bacterium, algae, daphnia and fish.
  • Step S01 an aqueous solution sample to be tested and an adjustment solution are mixed in a container such as a cuvette.
  • Examples of the aqueous solution sample include water directly collected from natural water sources such as lakes and marsh rivers and well water, water solutions containing extractable components obtained from solids such as soil and sludge by a general extraction method, and agricultural chemicals such as vegetables.
  • An aqueous solution containing an extractable component obtained by a general extraction method from excretions such as tissue fluid, blood, milk, and manure collected from animals can be used.
  • the aqueous solution sample may be used by previously separating or concentrating components having different properties such as a water-soluble substance and a hydrophobic substance by a fractionation treatment such as solvent extraction or solid phase extraction.
  • the adjustment solution is a solution containing various salts for adjusting the salt concentration and pH of the aqueous solution sample.
  • the aqueous sampler is an unknown aqueous solution, and its salt concentration, pH, and the like often vary. It is known that when the salt concentration and the pH are not in the appropriate ranges, the photosynthetic function of the photosynthetic sample is affected. Therefore, the adjustment solution is used to adjust the salt concentration and pH of the measurement solution.
  • the distribution density of the photosynthetic sample in the measurement solution is uniform and non-biased, and that no precipitates or floating substances are generated during measurement.
  • the adjustment solution contains a stabilizer for homogenizing the distribution density of the photosynthetic sample in the measurement solution so that no bias occurs.
  • homogenization can be achieved by giving the measurement solution a certain degree of viscosity or making the specific gravity match that of photosynthetic sample.
  • solute of the adjustment solution examples include mixed salts for adjusting the salt concentration and pH of the aqueous solution sample to conditions suitable for the photosynthetic sample, a stabilizer for uniforming the distribution density of the photosynthetic sample in the measurement solution, And minimum nutrients required for the photosynthetic reaction.
  • a stabilizer contained in the adjustment solution it is possible to use a specific gravity adjusting agent necessary for spatial stabilization of the photosynthetic sample during measurement, a gelling agent (thickening agent), and the like. By using such a specific gravity adjuster, the specific gravity of the measurement solution is adjusted so as to substantially match the photosynthetic sample. Further, this stabilizer may be included in a photosynthetic sample described later instead of the adjusting solution.
  • the photosynthetic sample is mixed with the aqueous solution sample adjusted by the adjustment solution in a container such as a cuvette, and is prepared as a test measurement solution (Step S02, preparation step).
  • the photosynthetic sample in the test and measurement solution is mixed so as to have a uniform concentration.
  • the photosynthetic sample has a photosynthetic function and is preferably a substance capable of emitting delayed fluorescence, such as algae or phytoplankton, cyanobacteria, photosynthetic bacteria, plants and leaves, and / or the like.
  • Examples include plant-derived cultured cells such as strips and calli, photosynthetic organelles and thylakoid membranes extracted from plants, and artificially synthesized membrane-protein complexes with photosynthetic-like functions.
  • Spi li na is blue-green algae
  • Selenastrum which is a green algae such a yellow algae Isochrysis also, Hourensou such force, such thylakoid membranes which are al extracted available.
  • the test measurement solution prepared as described above is left under a predetermined light condition for a predetermined leaving time (Step S03, leaving step).
  • the light conditions refer to the environmental conditions such as the wavelength and light amount of the light irradiated to the test and measurement solution when left unattended, and the wavelength and light amount of each component in the case of synthetic light. Then, as described below, the amount of delayed fluorescence emitted from the test measurement solution is measured, and the temporal change in the amount of delayed fluorescence is measured (step S04, measurement step).
  • FIG. 4 is a flowchart showing the operation of the delayed fluorescence measurement device 1 when measuring the amount of delayed fluorescence. It is assumed that a container containing the test measurement solution is installed in the installation section 28 in the housing 20.
  • the control unit 18 transmits a control signal for causing the light source 10 to emit light.
  • the light source 10 emits light (step S401).
  • the first measurement unit 12 measures the absorbance of the test measurement solution or the amount of scattered light (step S402).
  • the first measurement unit 12 transmits information on the absorbance or the amount of scattered light to the calculation unit 38.
  • the control unit 18 transmits a control signal for stopping the light source 10 from emitting light. Thereby, the light source 10 stops emitting light (step S403).
  • the above-described measurement of the absorbance or the amount of scattered light may be performed at the time of preliminary light irradiation.
  • the control unit 18 transmits a control signal for opening the shutter 34.
  • the shirt 34 opens (step S404).
  • the second measuring unit 14 measures the amount of delayed fluorescence (step S405).
  • the second measuring unit 14 transmits information on a temporal change in the amount of delayed fluorescence light at a predetermined measurement time to the calculating unit 38.
  • the control unit 18 transmits a control signal for closing the shutter 34.
  • the shirt 34 is closed (step S406).
  • the standard sample and the adjustment solution are mixed in another container such as a cuvette under the same conditions as in step S01 (step S05).
  • the standard sample is a solution known to be free of harmful substances such as biological growth inhibiting factors.
  • water from which impurities such as sterilized distilled water and pure water and fungi have been removed is used.
  • the photosynthetic sample is mixed with the standard sample prepared by the adjustment solution in a container such as a cuvette and used as a standard measurement solution. It is prepared (Step S06). Thereafter, the amount of delayed fluorescence of the standard measurement solution is measured in the same manner as in steps S03 to S04 (step S07 to step S08, the above is the second step).
  • step S401 and S406 The above-described measurement of the amount of delayed fluorescence (steps S401 and S406) is repeated a plurality of times with a test measurement solution or a standard measurement solution to increase the measurement accuracy, and the average value is calculated. Even if you do it,
  • the calculation unit 38 calculates the amount of the delayed fluorescence. Based on the temporal change, a comparative value correlating with the growth inhibiting factor is obtained (step S09).
  • FIG. 5 is a diagram showing an example of a temporal change in the amount of delayed fluorescence under standard measurement conditions.
  • the standard measurement conditions are as follows. First, as photosynthesis sample, light intensity 50 / i mol / m 2 / s, a blue-green algae are grown in a general way in the red monochromatic light of a wavelength of 665 nm Spirulina platensis, as a standard sample, sterile distilled of 1.8ml Prepare water. Next, 0.6 ml of an adjusting solution containing a standard mixed salt for culture of cyanobacteria having a 4-fold concentration and a mixed salt for adjusting pH and salt concentration is added to the standard sample.
  • the obtained delayed fluorescence decay curve shows a first peak (P1), which is the top of the attenuation curve that continues after the end of light irradiation. It has a second peak (P2) that appears around 25-35 seconds after the end of light irradiation. Also, the first peak (P1) and the second peak An inflection point (C1) appears near the PI between the peaks (P2).
  • Pl, P2, and CI characteristic points show characteristic changes depending on the type of biological growth inhibiting factor. This characteristic point shift is caused by a change in the sensitivity of the photosynthetic sample to a biological growth inhibiting factor.
  • the characteristic points are not limited to the above three points, and a minimum point between P1 and P2 or another inflection point in the delayed fluorescence decay curve can also be used.
  • the calculating unit 38 detects a characteristic point in the delayed fluorescence decay curve of the test measurement solution and the standard measurement solution, and calculates an evaluation value for evaluating the characteristic point.
  • the evaluation value the delayed fluorescence amount CP1 at P1, the delayed fluorescence amount CP2 at P2, and the elapsed time TP2 after the end of light irradiation at P2 are used.
  • the evaluation value for evaluating the inflection point C1 the value of the temporal change in the amount of delayed fluorescence of the test measurement solution and the standard measurement solution is used.
  • the calculation unit 38 also corrects the amount of delayed fluorescence or the evaluation value based on the absorbance (or the amount of scattered light) of each measurement solution at the time of measurement.
  • This correction is for correcting a measurement error caused by a difference in the concentration of the photosynthetic sample in the measurement solution.
  • This measurement error is caused by a change in the light irradiation amount and the optical path due to the arrangement of the photosynthetic sample in the installation section 28 or the arrangement of the installation section 28 itself, especially when evaluating a very small change area of the photosynthesis sample.
  • it is effective to use the cell density measured based on the absorbance (or the amount of scattered light).
  • the density of the photosynthetic sample in the test measurement solution and the standard measurement solution is in a range of density having a proportional relationship with the amount of delayed fluorescence associated therewith. That is, when the density of the photosynthetic sample in the measurement solution is equal to or less than a certain value, the absorbance (or the amount of scattered light) and the amount of delayed fluorescence show a high correlation with the density of the photosynthetic sample.
  • the upper limit of the density is appropriately set for each characteristic of photosynthetic sump-no-le.
  • the graph (a) shows an example of the relationship between the absorbance at a wavelength of 665 nm (OD665) and the delayed fluorescence amount CP1
  • the graph (b) shows the absorbance at a wavelength of 750nm (OD750) and the delayed fluorescence amount CP1.
  • An example of the relationship is shown below.
  • the calculation unit 38 calculates a comparison value for realizing the effect of the biological growth inhibiting factor in the aqueous solution sumpnole from the evaluation value.
  • comparative values include VCP1, VCP2, and VTP2 values obtained from the ratio of CP1, CP2, and TP2 obtained from the test measurement solution and the standard measurement solution, and the values obtained from the test measurement solution and the standard measurement solution.
  • the curve value obtained by taking the difference in the temporal change in the amount of delayed fluorescence is used.
  • CP1 is a delay from 0.1 seconds to 0.5 seconds after the end of light irradiation.
  • the accumulated amount of fluorescent light [counts] and TP2 is the appearance of a second peak (or a similar inflection point).
  • the elapsed time after the end of light irradiation [sec] CP2 is the time of appearance of the second peak (or a similar inflection point) ⁇ 0.5 second, the accumulated amount of delayed fluorescent light [counts], and the curve value is the first including C1.
  • VCP1, VCP2, and VTP2 values are the standard measurement solutions for CP1, CP2, and TP2, respectively. It shall be calculated as the ratio of the test measurement solution to. A specific method of calculating these evaluation values and comparison values may be appropriately selected as needed.
  • the density of the photosynthetic sample In order to detect a biological growth inhibiting factor with high sensitivity based on the comparison value calculated as described above, even if the density of the photosynthetic sample has a proportional relationship with the amount of delayed fluorescence described above, the density of the photosynthetic sample must be within the range. It is preferable that the photosynthetic sample has a sufficiently low density.
  • FIG. 7 shows the change in VCP1 value with respect to the absorbance at a wavelength of 665 nm.
  • This VCP1 value was obtained as a result of measurement of an aqueous solution sample containing DCMU at a concentration of O. lppb and a measurement solution obtained by mixing a photosynthetic sample Spirulina platensis.
  • the absorbance and the amount of delayed fluorescence showed a high correlation at an absorbance of 0.5 or less.
  • the correlation between the amount of delayed fluorescence and the density of the photosynthetic sample is maintained at around 0.5 absorbance. This reduces the amount of delayed fluorescence due to self-absorption. It can be seen that even in the range of the photosynthetic sample density which does not decline, the detection sensitivity of the biological growth inhibiting factor decreases when the photosynthetic sample density is relatively high.
  • step S10 when the comparison value is obtained, storage section 40 stores the comparison value (step S10), and display section 42 displays the stored comparison value (step Sll).
  • the display here is performed by, for example, displaying the stored comparison values in a graph. It is also preferable to display them side by side so that they can be compared with the comparative values of other aqueous solutions stored previously.
  • the displayed comparison value is compared with the comparison value of a known substance to analyze and qualitatively / quantitatively determine the factors that inhibit the growth of living organisms in the aqueous solution Sampnolet (Step S12, the third step above). , Evaluation step). Details of the analysis and evaluation method in step S12 will be described later.
  • the light conditions when the measurement solution is left in step S03 are preferably controlled to predetermined conditions in order to stably perform high-sensitivity measurement.
  • the photosynthetic sample when the photosynthetic sample is moved from a light place to a place, the photosynthetic sample gradually adapts to its environment over time. It is more preferable to measure the delayed fluorescence after a predetermined time has elapsed after changing the light environment in which the photosynthetic sample is placed or changing the light environment in which the photosynthetic sample is placed.
  • Fig. 8 shows an example of an evaluation value when the light intensity at the time of releasing the measurement solution is variously changed when Spimlina platensis is used as the photosynthetic sample.
  • graph (a) shows CP1 when the light intensity is changed
  • graph (b) shows CP2 when the light intensity is changed
  • graph (c) shows the case when the light intensity is changed.
  • CP1 changed to weak light that was larger than other light intensities.
  • TP2 is larger than other light intensities.
  • the delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample changes depending on the light intensity when left unattended, and as a result, the delayed fluorescence Measurement of attenuation curve ⁇ It is understood that it affects the evaluation result. For these reasons, controlling the light conditions when the measurement solution is left to stand to predetermined conditions is not sufficient in terms of reproducible and stable reproducibility of characteristic points such as the maximum point, the minimum point, and the inflection point in the delayed fluorescence decay curve. It is important for measurement and evaluation.
  • a photosynthetic sample mixed with the measurement solution grown under predetermined culture conditions is preferable to use in order to obtain good reproducibility and measurement results.
  • predetermined culture conditions are preferably under a constant light environment (for example, irradiation wavelength, irradiation intensity).
  • Cultures grown with a monochromatic light source should be stored in the dark or at a predetermined light irradiation intensity (for example, light intensity of 1 ⁇ mol / m 2 / S ) at low temperature, and the culture conditions should be such that proliferation was suppressed. Is more preferred.
  • Fig. 9 shows the evaluation values when the photosynthetic sample Spirulina platensis grown in different light environments was used.
  • graph (a) shows CP1 when the culture conditions (light wavelength) were changed
  • graph (b) shows CP2 when the light wavelength was changed
  • graph (c) shows the change in light wavelength. This shows TP2 when it is caused to occur.
  • the obtained evaluation value since the delayed fluorescence decay curve changes depending on the light environment, the obtained evaluation value also changes. For these reasons, it is important to grow photosynthetic sampnoles under specified culture conditions in order to perform standardized high-sensitivity measurements.
  • FIGS. 10 and 11 are graphs showing comparative values calculated for aqueous solution sampnoles containing atrazine at various concentrations.
  • graph (a) is a graph showing a change in VCP1 value with respect to atrazine concentration
  • graph (b) is a graph showing a change in VCP2 value with respect to atrazine concentration
  • graph (c) is a graph showing change in atrazine concentration.
  • 6 is a graph showing a change in VTP2 value.
  • FIG. 11 is a graph showing the curve value when the atrazine concentration was changed.
  • Atrazine was used as a hydrophobic herbicide that inhibits photosynthesis.However, at a concentration as low as about 20 xg / l, atrazine has an endocrine disrupting effect that causes teratogenic effects on potatoes, etc., and is subject to regulation. It is a chemical substance.
  • the atrazine concentration indicated in the figure is The final concentration in the test measurement solution adjusted to a total of 3 ml.
  • VCP1 value increases with the increase in the concentration of atrazine
  • VCP2 decreases.
  • VTP2 slightly decreases with increasing atrazine concentration.
  • the curve value changes to a plus side around 1 second after excitation and to a minus side around 3-4 seconds after excitation as the concentration becomes higher.
  • FIG. 12 and FIG. 13 are graphs showing comparison values calculated for aqueous solution samples containing DCMU (diurone) at various concentrations.
  • graph (a) is a graph showing a change in VCP1 value with respect to DCMU concentration
  • graph (b) is a graph showing a change in VCP2 value with respect to DCMU concentration
  • graph (c) is a VTP2 value with respect to DCMU concentration.
  • 6 is a graph showing the change of the graph.
  • FIG. 13 is a graph showing a curve value when the DCMU concentration is changed.
  • DCMU (diuron) like atrazine, has been widely used as a herbicide that inhibits photosynthesis, but has been shown to have adverse effects on living organisms and is subject to regulation.
  • the DCMU concentration shown in the figure is the concentration in the test measurement solution that was finally adjusted to a total of 3 ml.
  • FIG. 14 and FIG. 15 are graphs showing comparative values calculated for aqueous solution samples containing paraquat at various concentrations.
  • graph (a) is a graph showing a change in VCP1 value with respect to paraquat concentration
  • graph (b) is a graph showing a change in VCP2 value with respect to paraquat concentration
  • graph (c) is a graph showing VTP2 value with respect to nocot concentration.
  • 6 is a graph showing the change of the graph.
  • FIG. 15 is a graph showing the curve value when the paraquat concentration was changed. Paraquat is said to disturb the electron transfer of biological reactions or to generate reactive oxygen after it is taken into cells, causing damage to the cells, and is used as a herbicide.
  • the concentration of paraquat shown in the figure is 3 ml Is the concentration in the test measurement solution adjusted to.
  • the VCP2 value and the VTP2 value decrease as the paraquat concentration increases, but the decrease becomes slow at a high concentration. Also, as the concentration of paraquat increases, the VCP1 value decreases slightly at low concentrations. In addition, from FIG. 15, it was found that the curve value changed to a negative side at around 114 seconds after excitation as the concentration became higher.
  • FIG. 16 and FIG. 17 are graphs showing comparative values calculated for aqueous solution samples containing various concentrations of inorganic mercury.
  • graph (a) is a graph showing a change in VCP1 value with respect to the concentration of inorganic mercury
  • graph (b) is a graph showing a change in VCP2 value with respect to the concentration of inorganic mercury
  • graph (c) is a graph showing a change in the concentration of inorganic mercury.
  • 6 is a graph showing a change in VTP2 value.
  • FIG. 17 is a graph showing Curve values when the concentration of inorganic mercury is changed.
  • Inorganic mercury is a substance that is toxic not only to photosynthetic samples but also to general cells.
  • the inorganic mercury concentration shown in the figure is the concentration in terms of mercury ion concentration in the test measurement solution prepared as a mercury chloride solution and finally adjusted to a total of 3 ml.
  • VTP2 value increases as the inorganic mercury concentration increases
  • VCP2 value decreases.
  • the VCP1 value does not change much at low concentrations, but increases at high concentrations.
  • the time distribution of the curve value changes to the positive side around the elapsed time of 12 seconds as the concentration becomes higher.
  • FIG. 18 and FIG. 19 are graphs showing comparison values calculated for aqueous solution samples containing free cyanide at various concentrations.
  • the graph (a) shows the change in the VCP1 value with respect to the free cyan concentration
  • the graph (b) shows the change in the VCP2 value with respect to the free cyan concentration
  • the graph (c) shows the change with the free cyan concentration.
  • 6 is a graph showing a change in VTP2 value
  • FIG. 19 is a graph showing a curve value when the free cyan concentration is changed.
  • Free cyanide is toxic to general cells as well as photosynthetic samples.
  • the concentration of free cyan shown in the figure is the concentration in terms of cyanide ion in the test measurement solution, which was adjusted as a potassium cyanide solution and finally adjusted to a total of 3 ml.
  • the VTP2 value and the VCP2 value hardly change at a low concentration, but decrease at a high concentration, as the free cyanide concentration increases.
  • the VCP1 value hardly changes as the organic cyanide concentration increases. From Fig. 19, it was found that the curve value changed to the positive side as the concentration became higher, and the change was concentrated around 24 seconds after excitation.
  • FIG. 20 and FIG. 21 are graphs showing comparison values calculated for an aqueous solution sample containing various concentrations of TPN.
  • graph (a) is a graph showing a change in VCP1 value with respect to TPN concentration
  • graph (b) is a graph showing a change in VCP2 value with respect to TPN concentration
  • graph (c) is a VTP2 value with respect to TPN concentration.
  • 5 is a graph showing a change in the graph.
  • FIG. 21 is a graph showing a curve value when the TPN concentration is changed.
  • TPN is a component contained in pesticides that exhibit bactericidal action, and is a chemical substance that acts on respiratory metabolism, not photosynthesis, and inactivates enzymes related to ATP production, which is the energy of cells.
  • the TPN concentration shown in the figure is the TPN concentration equivalent in the test measurement solution adjusted to a total of 3 ml using a diluted fungicide containing only TPN as the main agent. .
  • FIG. 21 shows that as the concentration increases, the curve value changes to a positive value around 1 second after excitation, and changes to a negative value around 3-5 seconds after excitation.
  • TPN is a major fungicide that is regulated for pesticide residues in vegetables, and its regulated concentration is lppm.
  • the spray concentration of major commercial fungicides, mainly TPN, is 400 ppm.
  • the detection sensitivity of this method can be detected at a concentration of about 1 / 10,000 of the spray concentration, indicating that TPN below the regulatory standard can be sufficiently detected by obtaining an aqueous solution sample from the vegetable surface.
  • the comparative values in which the main changes appear in the comparative values used in the present embodiment are, for example, VCP1 value for DCMU, VCP2 value and VTP2 value for inorganic mercury. I have.
  • the comparison values that change in the delayed fluorescence decay curve simultaneously include different growth inhibiting factors the change in the overall comparison value appears additively.
  • Fig. 22 shows the test and measurement solution "DCMU” containing DCMU as a biological growth inhibitor at a concentration of O. lppb, and the test and measurement solution "Hg2 +" containing mercury ions at a concentration of 20ppb as a biological growth inhibitor.
  • DCMU + Hg '' the test measurement solution ⁇ DCMU + Hg '' containing DCMU at a concentration of O. lppb and mercury ions at a concentration of 20 ppb, respectively, and show the comparative values VCP1, VCP2, and VTP2 values. .
  • graph (a) is a graph showing the VCP1 value of each test measurement solution
  • graph (b) is a graph showing the VCP2 value of each test measurement solution
  • graph (c) is a VTP2 value of each test measurement solution. It is a graph which shows a value.
  • the evaluation value at which the main change appears is 116.0 in the case of "DCMU", which is the VCP1 value, and in the case of "DCMU + Hg” containing DCMU and mercury ions. , 129.6, and “Hg2 +” containing only mercury ions are 104.1, indicating that the change in VCP1 value is large when DCMU is included.
  • the VCP2 value is 59.9 in the comparative value force SVCP2 value “Hg2 +” where the main change appears.
  • the main change in the comparative value used in the present embodiment is Are both VCP1 values.
  • the comparison values that change in the delayed fluorescence decay curve simultaneously include the same biological growth inhibition factor the change in the overall comparison value appears additively.
  • Figure 23 shows the test and measurement solution “Atrazine” containing atrazine as a biological growth inhibitor at a concentration of 0.2 ppb, and the test and measurement solution “DCMU” containing DCMU as a biological growth inhibitor at a concentration of O. lppb. And the comparison values VCP1, VCP2, and VTP2 obtained from the test measurement solution “Atrazine + DCMU” containing DCMU at a concentration of O. lppb and atrazine at a concentration of 0.2 ppb.
  • VCP1, VCP2, and VTP2 obtained from the test measurement solution “Atrazine + DCMU” containing DCMU at a concentration of O. lppb and atrazine at a concentration of 0.2 ppb.
  • graph (a) is a graph showing the VCP1 value of each test measurement solution
  • graph (b) is a graph showing the VCP2 value of each test measurement solution
  • graph (c) is a graph showing the VCP1 value of each test measurement solution.
  • 5 is a graph showing VTP2 values.
  • the VCP1 value is 106.4 for "Atrazine", 125.6 for “DCMU”, and 132.2 for “Atrazine + DCMUJ", and includes both atrazine and DCMU.
  • VCP1 is additively increased
  • the VCP2 value is 90.0 for “Atrazine”, 84.6 for “DCMU”, and “Atrazine” as shown in graph (b) of FIG. + DCMU "is 86.0, indicating no significant change.
  • the VTP2 value was 100.0 for "Atrazine", 101.5 for "DCMU”, and 100.0 for "Atrazine + DCMU", and no significant change was seen. You can see.
  • kits for evaluating a factor inhibiting biological growth In order to easily carry out the above-described method for evaluating a biological growth inhibition factor, a kit for evaluating a biological growth inhibition factor can be used.
  • the kit for evaluating factors inhibiting biological growth consists of a concentrated photosynthetic sample mixed with an aqueous solution sample or a standard sample, and an aqueous sample mixed with the photosynthetic sample or an aqueous sample or a standard sample to adjust the salt concentration and pH. And a mixing solution that separates and mixes the photosynthetic sample and the adjustment solution into an aqueous solution sample.
  • the concentrated photosynthetic sample and / or the adjusted solution contain a stabilizing agent necessary for spatial stabilization of the photosynthetic sample.
  • a stabilizer that does not adversely affect the photosynthetic sample in the concentrated state is used.
  • a stabilizing agent that does not inhibit the action on the photosynthetic sample, such as adsorption or decomposition, against factors inhibiting growth in the aqueous solution sample is preferably used.
  • the stabilizer include polysaccharides such as agarose, and high molecular polymers.
  • a collection container having an arbitrary shape can be used as long as the photosynthetic sample and the adjustment solution can be separated and mixed into an aqueous solution sample in a collection container. Can be used.
  • Fig. 24 is a diagram showing a procedure for measuring delayed fluorescence using such a kit for evaluating factors inhibiting biological growth.
  • a predetermined amount of an aqueous solution sample 52 is collected in a predetermined liquid collection container 50, and thereafter, an adjustment solution 54 is mixed so that the salt concentration and the pH are in predetermined ranges.
  • the concentrated photosynthetic sample 56 is mixed with the sampling container 50.
  • the test measurement solution 58 prepared in the collection container 50 is left to stand, and then the collection container 50 is stored in the delayed fluorescence measurement device 1 to measure the amount of delayed fluorescence.
  • the liquid collecting container it is also preferable to use a container such as an injection cylinder or a dropper from which a predetermined amount of aqueous solution sample can be collected by suction or the like. It is also preferable that the adjusted solution containing the stabilizing agent in one or both of them and the concentrated photosynthetic sample are housed in the collection container in a separated state. In this case, when collecting the aqueous solution sample Since the adjustment solution, photosynthetic sample, and stabilizer can be mixed in one behavior, measurement can be performed more easily.
  • the adjusted solution and the concentrated photosynthetic sample are held at a position where they are mixed with the adjusted solution first and then mixed with the concentrated photosynthetic sample. Is more preferred.
  • the effect on the photosynthetic sample can be reduced by mixing the photosynthetic sample after adjustment with the adjustment solution.
  • FIG. 25 is a diagram showing a procedure for measuring delayed fluorescence using a dropper-type kit for evaluating factors inhibiting biological growth.
  • a dropper-type sampling container 60 contains an adjustment solution 54 and a concentrated photosynthetic sample 56 which are vertically separated from each other.
  • the sampling container 60 itself is provided with a separating means such as a wall or a solution pocket.
  • the preparation solution and the concentrated photosynthetic sample no.
  • each or one of the solutions may have high viscosity.
  • the aqueous solution sample 52 is sucked and collected up to the position where the adjustment solution 54 is stored, and the aqueous solution sample and the adjustment solution 54 are mixed. Thereafter, the aqueous solution sample 52 is sucked and collected in the sampling container 60 until a predetermined amount is reached, and mixed with the concentrated photosynthetic sample 56. After leaving the test measurement solution prepared in the sampling container 60 in this way, the sampling container 60 is housed in the delayed fluorescence measuring device 1 and the amount of delayed fluorescence is measured.
  • the photosynthetic sample and the adjusted solution containing a high concentration of salts are separately mixed with the aqueous sample, so that the photosynthetic sample of the salts is In this way, it is possible to prevent the death and damage of the photosynthetic sump nore due to the osmotic pressure difference and the like.
  • a solution mixed with an aqueous solution sample to be evaluated is mixed.
  • the decay curve of the delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample and the decay curve of the delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample in the solution without the requirement for inhibiting the growth of the organism are measured.
  • characteristic points such as peaks and inflection points are evaluated from the respective attenuation curves, and by comparing the two, the influence of the biological growth inhibition factor on the photosynthetic sample is evaluated.
  • the present invention is not limited to the above-described embodiment.
  • the light condition when the measurement solution is left to stand is controlled to a predetermined condition.
  • the comparison value may be evaluated by changing the light conditions variously for each measurement of the measurement solution.
  • FIG. 26 is a flowchart showing the procedure of the method for evaluating the factors inhibiting biological growth in this case.
  • a test measurement solution and a standard measurement solution are prepared in the same manner as in step S01, step S02, step S05, and step S06 (step S21—step S22).
  • Step S26 Step S27).
  • the light conditions for the first leaving are set (step S23, step S28).
  • the test measurement solution and the standard measurement solution are allowed to stand for a predetermined leaving time under the set light conditions (steps S24 and S29).
  • a comparison value is calculated from the amount of delayed fluorescence measured in the same manner as in steps S04 and S08 to S12 in FIG.
  • step S25, step S30 to step S34 the comparison value is evaluated (step S25, step S30 to step S34).
  • the process returns to step S23 and step S28, and after changing the light condition set last time, the comparison value is calculated again, and the evaluation of the change of the comparison value according to the light condition is repeatedly performed.
  • the measurement solution may be newly prepared for each light condition.
  • FIG. 27 is a graph showing an example of a comparison value calculated by variously changing the light condition when left unattended.
  • the graph (a) shows the comparison values for TPN for various light conditions
  • Panel (b) is a graph showing comparative values for inorganic mercury under various light conditions.
  • the light conditions at the time of standing were such that the irradiation light to the measurement solution was changed to three types of white fluorescent lamp, green monochromatic light (wavelength 530 nm), and red monochromatic light (wavelength 665 nm), and the light intensity of each irradiation light was changed.
  • VCP1, VCP2, and VTP2 values were calculated as comparison values.
  • the VTP2 value is 122 when the light condition when left is “white light”, 89 when “green light”, and “red light” In the case of 118, it becomes.
  • the VCP2 value is 47 when the light condition when left unattended is “white light”, 78 when “green light”, and 44 when “red light”.
  • the VCP1 value is 144 when the light conditions when left unattended are “white light”, 112 when “green light”, and 171 when “red light”.
  • the VTP2 value is 117 when the white light condition is “white light”, 113 when “green light”, and 114 for red light.
  • the VCP2 value is 77 when the light condition when left unattended is “white light”, 78 when “green light”, and 77 when “red light”.
  • the VCP1 value is 103 when the light condition when left unattended is “white light”, 96 when “green light”, and 98 when “red light”. Therefore, in the case of inorganic mercury, it can be seen that there is no significant difference in the change rate of the evaluation values of CPU CP2 and TP2 depending on the light conditions when left unattended.
  • the action of the biological growth inhibitory factor in the aqueous solution sample changes depending on the light conditions under standing conditions. This change differs for each biological growth inhibitory factor, and the effect is affected under specific light wavelength conditions. There are factors that increase, and there are factors that inhibit the growth of living organisms that are not affected by light conditions.
  • the test measurement solution obtained from the same aqueous sample is placed under different light conditions, and the measurement results are compared.
  • Information on the qualitative factors of biological growth inhibition can be obtained. For example, as shown in FIG. 27 (a), in the case of TPN, changes in VCP1, VCP2, and VTP2 in green light are smaller than those in white light and red light. Focusing on this fact, it is possible to discriminate it from other growth-inhibiting factors.
  • FIG. 28 shows the calculation result of the comparison value in the present example.
  • graph (a) shows VCP1 values calculated for well water and lake water
  • graph (b) shows VCP2 values calculated similarly
  • graph (c) shows VTP2 values calculated similarly.
  • VCP1 value increased to 137.1%.
  • the well water at the same site was sampled four times in 12 days and measured. As a result, a VCP1 value of about 120-140% was obtained in almost the same manner.
  • Comparative values were calculated in the same manner as in Example 1 under standard measurement conditions for the aqueous solution containing the well water and distilled water and the O. lppb concentration of DCMU in Example 1 as the aqueous solution samples to be evaluated.
  • DCMU is one of the known hydrophobic organic herbicides, and is similar to the well water in Example 1 in the characteristics of the change in the evaluation value.
  • each of aqueous solutions of well water, distilled water, and DCMU was subjected to adsorption treatment, and the VCP1 value was calculated for the adsorption-treated water solution.
  • activated carbon washed with high-density filter filtered water (water filtered by Millipore Mili-Q) and dried was used. Then, 0.8 g of activated carbon was added to 5 ml of each of distilled water, well water, and O. lppb concentration DCMU aqueous solution, and then slowly permeated for 1 hour. Each of the three solutions was filtered through a 0.45 ⁇ m filter, and the amount of delayed fluorescence was measured for the obtained solutions.
  • FIG. 29 shows the result of calculating the VCP1 value in this example.
  • the VCP1 value calculated for distilled water, well water, and DCMU aqueous solution sump The VCPl value calculated for each of the obtained aqueous solution samples is shown.
  • the VCP1 value was 117.1 for “well water” and 120.9 for “DCMU” compared to the result obtained from distilled water, and the change in CP1 obtained from well water was the O. lppb concentration. The result was almost the same as the change at DCMU.
  • the VCP1 value of distilled water "distilled water (after adsorption)" after the activated carbon adsorption treatment was 99.7 with respect to the VCP1 value of distilled water "distilled water” before adsorption of 100, which was 99.7. It was evaluated that there was almost no effect on change.
  • the respective VCP1 values after activated carbon adsorption treatment were 95.5 in “Well water (after adsorption)” and 95.5 in “DCMU (after adsorption)”. 96.3, which is equivalent to “distilled water” and “distilled water (after adsorption)”. Based on these results, it was evaluated that this well water contains substances similar to hydrophobic organic substances such as DCMU.
  • the method for evaluating harmful substances and the kit for evaluating harmful substances according to the present invention can be variously modified without being limited to the above-described embodiments and examples.
  • the photosynthetic sampler mixed with the aqueous solution sampler generally, as described above, those having a photosynthetic function and capable of emitting delayed fluorescence may be used.
  • a photosynthetic sample it is preferable to use a photosynthetic sample having at least one force selected from the group consisting of salt-resistant algae, alkali-resistant algae, and acid-resistant algae.
  • the salt-tolerant alga refers to an algae that can grow in a highly salty environment such as salt water or seawater.
  • Alkali-resistant algae and acid-resistant algae refer to algae that can grow in extreme pH environments. Examples of such photosynthetic sampnoles include Spirulina.
  • spirulina As photosynthetic sampnoles, spirulina (Spirulina), donariella (Dunaliella) known as salt-tolerant algae, spirulina (Spirulina) having alkali resistance, euglena (Euglena) having acid resistance, and other marine and When using algae that can withstand a high salt environment or an alkaline (high pH) or acidic (low pH) environment, such as algae that inhabit salt water lakes, freshwater samples with lower salt concentrations than those suitable for those algae The following advantages are obtained when measuring such factors as compared to the case where freshwater algae are used.
  • Spiruli an algae that can withstand high salt and alkaline environments
  • Spirulina is a cyanobacterium that inhabits both salty lakes, which have a high salinity environment, and freshwater lakes, which have a low salinity environment.
  • SOT medium high-salt medium
  • MA medium low-salt medium
  • aqueous solution samples are collected from various environments such as rivers, lakes and marshes, groundwater, and soil extraction water. For this reason, the salt concentration of the sample is not uniform, and as a result, important factors such as pH may not be uniform as an algal growth environment.
  • a method is possible in which the adjusted solution is mixed with the aqueous sample to be tested, the salt concentration and pH are adjusted, and then mixed with the photosynthetic sample. In this case, by adjusting the aqueous solution sample as a high-salt medium, pH and the like can be adjusted more easily than in the case of a low-salt medium.
  • Fig. 30 is a table showing an adjustment example when an aqueous solution sample is adjusted using a high salt medium and a low salt medium.
  • lake water, well water, tap water, and distilled water are used as aqueous solution samples.
  • the pH of the raw water itself is 7.44 for lake water, 6.03 for well water, 7.07 for tap water, and 5.46 for distilled water, with a standard deviation of 0. It was 91.
  • a high-salinity medium adjusted to a high salt concentration for a freshwater environment is more likely to improve the fluctuation of the salt concentration in the raw water than a low-salt medium.
  • algae that can withstand a high salt concentration alkaline or acidic environment such as algae that inhabit the ocean or saline lake, are used as the photosynthetic sampnore, they are suitable for those algae.
  • the solution to be measured for delayed fluorescence is made uniform before measuring the amount of delayed fluorescence.
  • the photosynthetic sample in the measurement solution precipitates and floats with the passage of time, the density of the photosynthetic sample in the visual field of the photodetector changes, and the measured value of the amount of emitted light changes.
  • the measurement accuracy may be reduced due to leaving for a predetermined time or elapse of time during measurement.
  • by making the solution uniform it is possible to evaluate harmful substances with few errors.
  • the evaluation kit used for evaluating harmful substances preferably includes a stabilizer for making the distribution density of the photosynthetic sample uniform.
  • a stabilizer for example, as described above, a specific gravity adjuster, a thickener (eg, a gelling agent) and the like can be used.
  • FIG. 31 is a graph showing the change in the amount of delayed fluorescence with respect to the standing time under the conditions of no solution homogenization and addition of a thickener.
  • a blue-green alga Spirulina platensis was used as a photosynthetic sample, and the amount of delayed fluorescence was measured by changing the standing time under the same conditions as the standard measurement conditions described above with reference to FIG.
  • such a thickener is added under the condition that the measurement of luminescence from the photosynthetic sample is not hindered or disturbed, and the weak luminescence can be measured.
  • a thickener that does not have fluorescence or phosphorescence, is transparent, and does not absorb the light emitted from the photosynthetic sample at a concentration that allows the photosynthetic sample to be uniform.
  • thickeners include agar agarose and methyl cellulose solution at low concentrations.
  • Means for homogenizing the photosynthetic sample prior to measurement include, in addition to the addition of a thickener, the prevention of sedimentation and floating of the photosynthetic sample in the measurement solution by a fine mesh or lattice structure, or It is also possible to maintain the uniformity by stirring from above.
  • the photosynthetic sample used for the measurement uses biological cells or organelles, membrane protein complexes, etc.
  • the decrease may cause a quantitative change.
  • Examples of the method for evaluating the photosynthetic sample described above include the following methods (1)-(3). (1) Evaluate whether the density of photosynthetic sample is within the range of density that is proportional to the amount of delayed fluorescence. Such evaluation can be performed, for example, using a calibration curve created based on the density of the photosynthetic sample and the amount of delayed fluorescence. (2) Evaluate whether the amount of delayed fluorescence with respect to the density of the photosynthetic sample has changed compared to the model data serving as the evaluation standard.
  • the difference of the light quantity of the model data with respect to the temporal change, the light quantity of the characteristic point and the time at which the characteristic point appears in the temporal change of the light quantity of the delayed fluorescence, or the inclination of the light quantity change between the two characteristic points can be performed by using the inclination of the light amount change in a specific time range.
  • data such as the absorbance of the photosynthetic sample, the amount of light scattering, the amount of delayed fluorescence, and its temporal change are used as exemplary data.
  • data stored in a rough measurement device or an analyzer or data recorded at the time of adjusting a photosynthetic sample can be used.
  • the measurement results using the standard measurement solution can be estimated from the results. In such a case, the data to be used is the same as above.
  • the density of the photosynthetic sample has a proportional relationship with the amount of the delayed fluorescence according to the evaluation method (1) described above. If the density is within the range, in each measurement result using photosynthetic samples with different densities, the amount of delayed fluorescence can be normalized by the density of the photosynthetic sample and compared. As a standardization method in such a case, for example, there is a method of dividing the amount of delayed fluorescence by the density of the photosynthetic sample.
  • a photosynthetic sample is mixed with an aqueous solution sample to prepare a test measurement solution, the test measurement solution is left for a predetermined standing time, and the test measurement solution is irradiated with light for a predetermined irradiation time.
  • the first step of measuring the amount of delayed fluorescent light generated and (2) a standard sample containing no harmful substances mixed with photosynthetic sample A second step of preparing a quasi-measurement solution, leaving the standard measurement solution for a predetermined standing time, irradiating the standard measurement solution with light for a predetermined irradiation time, and measuring the amount of delayed fluorescence generated, and 3) Evaluate harmful substances present in the aqueous solution sample by calculating evaluation values based on the amounts of delayed fluorescence measured in the first and second steps, respectively, and calculating comparison values of the evaluation values. It describes a method for evaluating hazardous substances that includes a third step.
  • Such a method for evaluating a harmful substance generally includes (1) preparing a test measurement solution by mixing a photosynthetic sample with an aqueous solution sample, and allowing the test measurement solution to stand for a predetermined period of time.
  • the third step is to evaluate the harmful substances present in the aqueous solution sample by calculating the evaluation value based on the amount of the delayed fluorescence obtained in step 2 and calculating the comparison value of the evaluation values.
  • the evaluation value is the elapsed time at the characteristic point of the temporal change in the amount of light of the delayed fluorescence obtained in the first step and the second step. Is preferred.
  • the evaluation value is a temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained in the first step and the second step, and the comparison value is preferably a value obtained by taking a difference between the temporal changes. ,.
  • the comparative sample and the comparative measurement result used in the second step were determined using various samples.
  • a standard sample solution to be compared is used as a comparative sample
  • a photosynthetic sample sample is mixed with the standard sample to prepare a standard measurement solution that is a comparative measurement solution
  • the standard measurement solution is subjected to a predetermined process.
  • a method in which the standard measurement solution is allowed to stand for a predetermined irradiation time and then irradiated with light for a predetermined irradiation time, and then the amount of delayed fluorescence generated is measured to obtain a comparative measurement result.
  • aqueous measurement sample is used as a comparative sample, and the measurement obtained for another test measurement solution that is a comparative measurement solution prepared by mixing a photosynthetic sample with an aqueous solution sample.
  • a method that prepares the results as comparative measurement results can be used. In this case, for example, the previous measurement result can be used as the comparison measurement result.
  • a method of preparing the comparative measurement result by measuring the amount of delayed fluorescence light for the comparative measurement solution can be used.
  • a method of preparing a measurement result obtained in advance for a comparative measurement solution as a comparative measurement result may be used.
  • the comparison measurement result obtained in advance is stored in a memory or the like, and the data is read and used as needed.
  • a continuous evaluation method (monitoring method) of harmful substances using the method according to the present invention will be described. Using such an evaluation method, it is possible to continuously measure aqueous solution samples such as rivers and groundwater, and to monitor changes in harmfulness.
  • FIG. 32 is a schematic diagram showing an example of a method for continuously evaluating harmful substances.
  • this evaluation method as the first measurement, measurement of a standard measurement solution and measurement of a test measurement solution using water collected from river J11 or the like as an aqueous solution sample are performed in accordance with the usual procedure. Then, by comparing those results, harmful substances contained in river water are evaluated. At this time, record the measurement result Cl of the standard measurement solution, the measurement result SI of the test measurement solution, and the evaluation result D1 of the harm of the aqueous sample corresponding to the comparison result.
  • FIG. 33 is a schematic view showing another example of a method for continuously evaluating harmful substances.
  • the first measurement is performed in the same procedure as above, and the measurement result Cl of the standard measurement solution and the measurement result SI of the test measurement solution are recorded.
  • the harmfulness evaluation result D1 of the aqueous solution sample corresponding to the comparison result is also recorded as necessary.
  • the change in the photosynthetic sample is a quantitative change such as a change in the density of the photosynthetic sample due to degradation, decomposition, death, or proliferation of the photosynthetic sample, or the elapsed time at a characteristic point of the temporal change in the amount of delayed fluorescence. And qualitative changes such as changes in the amount of delayed fluorescence. For such changes in photosynthetic samples, measurement of the amount of delayed fluorescence and measurement of the cell density of the photosynthetic sample were performed. After implementation, the following corrections can be made.
  • the cell density of the sample is measured together with the amount of delayed fluorescence from the measurement solution.
  • the cell density of the sample is measured together with the amount of delayed fluorescence from the measurement solution.
  • the temporal change in the amount of delayed fluorescence in the photosynthetic sample used for measurement If it is determined in advance that the feature point is within the allowable range compared to the model data, the correction can be performed based on the positional relationship between those feature points and the like.
  • FIG. 34 is a diagram showing an example of a temporal change in the amount of delayed fluorescence, in which the graph ( a ) shows the temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained in the first measurement, and the graph (b) shows the time variation. It shows the temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained by the measurement.
  • the evaluation values and comparative values used for evaluating harmful substances As an example, a temporal change in the amount of delayed fluorescence acquired in the first step and the second step may be used as an evaluation value, and a value obtained by taking a difference between the temporal changes may be used as a comparison value.
  • a comparative value is, for example, a curve value obtained by taking a difference in a temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained from the test measurement solution and the standard measurement solution.
  • various analysis methods can be used according to specific measurement results obtained for the test measurement solution and the standard measurement solution.
  • a curve value can be obtained for the whole or a predetermined range, and the curve value can be used as a comparison value for evaluation.
  • the curve value at each measurement point n is represented by (light emission amount of test measurement solution at measurement point n) ⁇ (light emission amount of standard measurement solution at measurement point n). Is required.
  • the delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample has a large amount of light emission in a time region where the time after excitation is early, and a small amount of light emission due to attenuation in a time region after the excitation. For this reason, if the time range in which the curve value is calculated is different, the magnitude of the difference in the light emission amount is different, and it may be difficult to evaluate the change in the different time range.
  • the curve value which is a value obtained by taking the difference in the temporal change of the amount of delayed fluorescence obtained for the test measurement solution and the standard measurement solution, is further added to the test measurement solution or
  • the ratio of the amount of delayed fluorescence obtained for the standard measurement solution (preferably, the amount of delayed fluorescence obtained for the standard measurement solution) to the standardized VCurve value is compared. It is effective to use it as a comparison value. This facilitates evaluating changes in different time zones.
  • the VCurve value at each measurement point n is obtained by (Curve value at measurement point n) / (light emission amount of standard measurement solution at measurement point n) ⁇ 100.
  • the VCmve value described above When the VCurve value described above is applied to a delayed fluorescence decay curve having a feature point, the VCmve value may be obtained by focusing on between feature points or between a measurement start point and a feature point. Alternatively, the VCurve value may be obtained for the whole or a predetermined range without considering the feature points.
  • a temporal change in the amount of delayed fluorescence obtained in the first step or the second step has a feature point.
  • step 3 a method of evaluating a harmful substance using a value obtained by taking a difference in a temporal change in the amount of delayed fluorescence in a predetermined range between one feature point and a measurement start point or another feature point as a comparison value Can be used. If there is no characteristic point in the temporal change in the amount of delayed fluorescent light, a value obtained by taking the difference in the temporal change in the amount of delayed fluorescent light over the whole or a predetermined range can be used as the comparison value.
  • FIG. 35 is a diagram showing an example of a method of calculating a curve value when a characteristic point exists in a delayed fluorescence decay curve.
  • the positions of the feature points may differ in those decay curves.
  • the calculation range of the curve value is the time range ⁇ b '' from the measurement start point to the appearance point of the minimum value in the standard measurement solution, and the time range from the measurement start point to the appearance point of the minimum value in the test measurement solution. It is preferable to compare “c” and select a time range “c” that is a time range common to both.
  • the graph (c) in Fig. 35 shows a case where the minimum point in the delayed fluorescence decay curve of the test measurement solution appears later than the minimum point in the standard measurement solution.
  • the calculation range of the curve value is the time range ⁇ d '' from the measurement start point to the appearance point of the minimum value in the standard measurement solution, and the time range from the measurement start point to the appearance point of the minimum value in the test measurement solution. It is preferable to compare “e” and select a time range “d” that is a time range common to both.
  • FIG. 36 is a diagram showing an example of a method of calculating a curve value when no characteristic point exists in the delayed fluorescence decay curve.
  • a photosynthetic sample Selenastmm, a green algae grown by a general method under a white fluorescent lamp with a light intensity of 50 ⁇ mol / m 2 / s
  • the delayed fluorescence decay curve of the standard measurement solution using capricornutum is shown.
  • the sample was prepared in the same manner as for Spirulina platensis.
  • no clear feature point appears in the delayed fluorescence decay curve. In such a case, evaluation using the curve value is effective because evaluation cannot be performed by focusing on the feature points.
  • Fig. 37 shows the results when (a) simazine concentration and (b) dichlorophenol concentration were changed.
  • FIG. 37 It is a graph which shows Curve value.
  • the graph (a) in Fig. 37 shows the measurement results of a test measurement solution that was exposed to simazine, a kind of herbicide, at a concentration of 25, 50, and 100 ppb, and the measurement results of a standard measurement solution. Curve values calculated for a time range of 0.1 second to 50 seconds after excitation are shown.
  • Graph (b) shows the time between excitation 0.1 seconds and 50 seconds from the measurement results of the test measurement solution to which dichlorophenol was exposed at concentrations of 1, 5, and 10 ppm and the measurement results of the standard measurement solution. The Curve value calculated for the area is shown.
  • Figure 38 shows the results when (a) simazine concentration and (b) dichlorophenol concentration were changed.
  • FIG. 38 It is a graph which shows VCurve value.
  • the graph (a) in Fig. 38 shows that the time after excitation was 0.1 sec. 1 based on the measurement results of the test measurement solution exposed to simazine at a concentration of 25, 50, and 100 ppb, and the measurement results of the standard measurement solution. It shows the VCurve value calculated for the time range of 50 seconds.
  • Graph (b) shows the measured time of 0.1 seconds to 50 seconds after excitation based on the measurement results of the test measurement solution to which dichlorophenol was exposed at concentrations of 1, 5, and 10 ppm and the measurement results of the standard measurement solution. It shows the VCurve value calculated for the time domain.
  • the Curve value corresponding to the difference in temporal change is standardized as a ratio with the light emission amount of the standard measurement sample. .
  • a method for evaluating a harmful substance including such an acclimation step is a method for evaluating a harmful substance present in an aqueous sample of an aqueous sample to be tested.
  • an acclimation step including any one of a preliminary irradiation step of performing standby in the dark for a long time.
  • a plurality of harmful substances can be simultaneously and simultaneously obtained from the characteristics obtained in the temporal change of the amount of delayed fluorescence emitted from the photosynthetic sample mixed with the aqueous solution sample to be evaluated. It can be qualitatively and quantitatively accurately.
  • measurement time can be shortened as a whole.
  • the predetermined standby time in the dark standby step is preferably 30 seconds or more and 1 hour or less.
  • the ratio of the time of preliminary light irradiation and the time of standby in the dark in the preliminary irradiation step is equal to the ratio of the time of light irradiation and the time of standby in the dark in the measurement step.
  • Delayed fluorescence used in the evaluation of harmful substances is a phenomenon in which light energy absorbed in a photosynthetic sample is released again after being distributed to various chemical reactions.
  • FIG. 39 is a graph showing a change in CP1 depending on the number of times of measurement of delayed fluorescence.
  • a standard measurement solution left for 15 minutes under white fluorescent light of 5 x mol / m 2 / S in terms of photosynthetically effective radiation was irradiated with 665 nm, 0.8 mW m 2 light for 2 seconds as measurement conditions. Later, the amount of delayed fluorescence is measured for 60 seconds in (1). This measurement is performed five times in succession, and the CP1 value is calculated for each.
  • a CP1 value of 15217 was obtained in the first measurement, 11693 in the second measurement, 10098 in the third measurement, 9690 in the fourth measurement, and 9627 in the fifth measurement.
  • the CP1 value varies especially in the first measurement and the third measurement.
  • the measurement result is stabilized at a certain value (for example, the value at the third time and the fifth time), and the reproducibility is improved. This indicates that the distribution power S of the photoenergy in the photosynthetic sample adapts to the measurement conditions from the standing conditions.
  • an acclimatization step for controlling the environmental history of the photosynthetic sample is added between the leaving step and the measuring step. Measurement results can be obtained with good reproducibility. Power. By performing such an acclimation step, for example, in the measurement results of FIG. 39, it is possible to obtain the third and subsequent measurement results from the first time.
  • the acclimatization step for acclimating the measurement solution to the measurement conditions includes (1) a dark standby step in which the measurement solution waits in the dark for a predetermined standby time, or (2) a standby for the test measurement solution. This can be achieved by adding one or both of the preliminary irradiation steps for performing a constant light irradiation and a standby in the dark for a predetermined standby time or between the leaving step and the measuring step.
  • FIG. 40 is a table showing the measurement accuracy of the results of three measurements of delayed fluorescence under various acclimation conditions. Specifically, three consecutive measurements are performed under various acclimation conditions, and the standard deviation is divided by the average of the three measurements and multiplied by 100 to calculate the measurement accuracy (%). . In other words, the measurement accuracy shown in FIG. 40 indicates the degree of error with respect to the average of the CP1 value forces obtained in three measurements.
  • photosynthetically active radiation in terms of 5 / i mol / m 2 / s of white fluorescent standard measurement and left for 15 minutes at lamp solution Nirre Te,, 665 nm as the measurement conditions, 0.8 After irradiating mW m 2 light for 2 seconds, the amount of delayed fluorescence light was measured for 60 seconds in the dark, and this measurement was performed three times to make this measurement. Before performing the main measurement, the acclimatization process is performed under various acclimation conditions (preliminary irradiation conditions), and the measurement accuracy of the three measurement results is determined for each.
  • the present invention can be used as a harmful substance evaluation method capable of analyzing a wide range of harmful substances in a short time, and as a kit for evaluating harmful substances.

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Abstract

 この生物生育阻害要因の評価方法は、水溶液サンプルに光合成サンプルを混合して試験計測溶液を調製し、試験計測溶液を放置し、試験計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第1のステップと、生物生育阻害要因が存在しない標準サンプルに、光合成サンプルを混合して標準計測溶液を調製し、標準計測溶液を放置し、標準計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第2のステップと、第1のステップ及び第2のステップでそれぞれ計測された遅延蛍光の光量に基づいて評価値を算出し、評価値の比較値を求めることにより生物生育阻害要因を評価する第3のステップと、を備える。これにより、短時間で幅広い阻害要因の分析を行うことが可能な生物生育阻害要因の評価方法が実現される。

Description

明 細 書
有害物質の評価方法、及び有害物質の評価用キット
技術分野
[0001] 本発明は、有害物質の評価方法、及び有害物質の評価用キットに関するものであ る。
背景技術
[0002] 従来から、環境中に存在する未知化学物質の生物に対する影響を評価する方法と して、細菌、藻類、ミジンコ、魚類等の生物個体に対する生育阻害を検査する生物学 的な毒性検査「バイオアツセィ」が用いられている。バイオアツセィは、未知物質や想 定外の物質による影響、化学物質の相互作用、及び環境による影響等の生物学的 な影響を総合的に検出可能な点で、既存の物理化学的方法である、液体クロマトグ ラフィー、ガスクロマトグラフィー、原子吸光計測法、ェンザィムィムノアッセィ等と相 補関係にある。
[0003] このバイオアツセィにおいては、多量の個体を統計的に処理可能な、かつライフサ イタルの短い細菌、藻類などの単細胞生物、また小形甲殻類 (ミジンコ)、及び小形 魚類などの、比較的に高等な生物機能を有しつつ化学物質等の影響を受けやすい 小形水生生物等が用いられている。バイオアツセィの具体的手法としては、 日本国環 境省の指針において規定されている藻類増殖阻害試験による生体影響評価が挙げ られる。藻類増殖阻害試験は、藻類に対する被験物質の様々な毒性を評価する方 法である。
[0004] また、その他の手法として、発光バクテリアの発光計測により呼吸阻害を計測する 方法が考案されている。また、非特許文献 1には、藻類からのクロロフィル蛍光を用い た光合成阻害性の計測方法が記載されている。また、非特許文献 2、 3にも、遅延蛍 光を用いた計測方法についての記載がある。
非特午文献 1: Ulrich bchreiber et al., New type of dual-channel PAM chlorophyll fluorometer for highly sensitive water toxicity biotests", Photosynthesis Research 74, p.317-330 (2002) 非特言午文献 2 : Werner Schmidt and Horst Senger, "Long-term delayed luminescence in Scenedesmus obliquus. II. Influence of exogeneous factors, Biochimica et Biophysica Acta 891, p.22-27 (1987)
非特許文献 3 : Joacnim Burger and Werner Schmidt, "Long term delayed
luminescence: A possible fast and convenient assay for nutrition deficiencies and environmental pollution damages in plants, Plant and Soil 109, p.79 - 83 (1988) 発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0005] し力しながら、上述した藻類増殖阻害試験による生体影響評価方法においては、 生物の増殖能を試験対象とするため操作が煩雑となるとともに、試験結果を得るまで 24時間一 72時間という長時間を要する。これに対して、上記非特許文献 1等に記載 の計測方法においては、試験時間の短縮化は一部実現されているが未だ充分では なレ、。カロえて、いずれの評価方法においても未知化学物質等の幅広い有害物質の 定性的及び定量的な分析を実現するには至っていない。また、非特許文献 2、 3に記 載の計測方法においても、有害物質の定性的及び定量的な分析の具体的な方法に っレ、ての検討は充分にはなされてレ、なレ、。
[0006] そこで、本発明は力かる課題に鑑みて為されたものであり、短時間でかつ幅広い有 害物質の分析を行うことが可能な有害物質の評価方法、及び有害物質の評価用キッ トを提供することを目的とする。
課題を解決するための手段
[0007] このような目的を達成するために、本発明による有害物質の評価方法は、試験対象 の水溶液サンプル中に存在する有害物質(a toxic substance)を評価する有害物質 の評価方法であって、(1)水溶液サンプルに光合成機能を有する光合成サンプルを 混合して試験計測溶液を調製し、試験計測溶液を所定の放置時間放置し、試験計 測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する 第 1のステップと、 (2)比較サンプノレに光合成サンプルを混合して調製された比較計 測溶液を所定の放置時間放置し、比較計測溶液に所定の照射時間光を照射した後 に、発生する遅延蛍光の光量を計測した比較計測結果を用意する第 2のステップと、 (3)第 1のステップ及び第 2のステップでそれぞれ取得された遅延蛍光の光量に基づ いて評価値を算出し、評価値の比較値を求めることにより、水溶液サンプル中に存在 する有害物質を評価する第 3のステップとを備え、(4)評価値は、第 1のステップ及び 第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点における経過 時間であることを特徴とする。
[0008] あるいは、本発明による有害物質の評価方法は、試験対象の水溶液サンプル中に 存在する有害物質を評価する有害物質の評価方法であって、(1)水溶液サンプルに 光合成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測溶液を調製し、試験計測 溶液を所定の放置時間放置し、試験計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に 、発生する遅延蛍光の光量を計測する第 1のステップと、(2)比較サンプルに光合成 サンプルを混合して調製された比較計測溶液を所定の放置時間放置し、比較計測 溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測した比 較計測結果を用意する第 2のステップと、 (3)第 1のステップ及び第 2のステップでそ れぞれ取得された遅延蛍光の光量に基づいて評価値を算出し、評価値の比較値を 求めることにより、水溶液サンプノレ中に存在する有害物質を評価する第 3のステップ とを備え、 (4)評価値は、第 1のステップ及び第 2のステップで取得された遅延蛍光の 光量の時間的変化であり、比較値は、時間的変化の差をとつた値であることを特徴と する。
[0009] このような有害物質の評価方法では、評価対象の水溶液サンプルに混合された光 合成サンプルから発せられる遅延蛍光の光量の時間的変化と、水溶液サンプルに対 する比較対象として用意された比較サンプルを含む比較計測溶液中の光合成サン プルから発せられる遅延蛍光の光量の時間的変化とを比較して得られる特徴から、 複数の有害物質を同時に、かつ精度良く定性、定量することができる。また、遅延蛍 光の光量を計測して評価することにより、計測時間を全体的に短縮化することができ る。
[0010] また、上記した評価方法のうちで第 1の評価方法では、評価値は、第 1のステップ及 び第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点における経 過時間であることとしている。この場合、遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点は 有害物質となる化学物質種などに応じて変化するため、その特徴点における経過時 間を評価することで、より的確に各種有害物質を定性及び定量することができる。
[0011] また、第 2の評価方法では、評価値は、第 1のステップ及び第 2のステップで取得さ れた遅延蛍光の光量の時間的変化であり、比較値は、時間的変化の差をとつた値で あることとしてレ、る。こうすれば、遅延蛍光量の時間的変化における変化の集中する 時間や、変曲点といった特徴を得ることができ、有害物質となる化学物質種などの特 定が容易に為される。
[0012] また、上記した第 2の評価方法では、第 1のステップまたは第 2のステップで取得さ れた遅延蛍光の光量の時間的変化が特徴点を有し、第 3のステップにおいて、一の 特徴点と、計測始点または他の特徴点との間の所定範囲について遅延蛍光の光量 の時間的変化の差をとつた値を比較値として有害物質を評価する方法を用レ、ること ができる。また、遅延蛍光の光量の時間的変化に特徴点がない場合には、その全体 または所定範囲について遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつた値を比較値と すること力 Sできる。
[0013] あるいは、第 3のステップにおいて、第 1のステップ及び第 2のステップで取得された 遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつた値について、さらに第 1のステップまたは 第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化との比をとつた値を比較 値として有害物質を評価する方法を用いることができる。
[0014] ここで、第 2のステップで用いられる比較サンプル、及び比較計測結果については 、様々なものを用いて良レ、。例えば、第 2のステップにおいて、比較サンプルとして比 較対象となる標準サンプノレを用い、標準サンプルに光合成サンプノレを混合して比較 計測溶液である標準計測溶液を調製し、標準計測溶液を所定の放置時間放置し、 標準計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計 測して、比較計測結果を取得する方法を用いることができる。この場合、標準サンプ ノレとしては、有害物質が実質的に存在しないサンプノレを用いることが好ましい。
[0015] あるいは、第 2のステップにおいて、比較サンプノレとして他の水溶液サンプルを用 レ、、他の水溶液サンプノレに光合成サンプルを混合して調製された比較計測溶液で ある他の試験計測溶液について取得された計測結果を比較計測結果として用意す る方法を用いること力 Sできる。この場合、比較計測結果としては、例えば、前回の計測 結果を用いることができる。
[0016] また、第 2のステップでの比較計測結果の取得については、第 1のステップと同様に 、比較計測溶液に対して遅延蛍光の光量の計測を行うことによって比較計測結果を 用意する方法を用いることができる。あるいは、第 2のステップにおいて、比較計測結 果として、比較計測溶液についてあらかじめ取得された計測結果を比較計測結果と して用意する方法を用いても良い。このような場合、あらかじめ取得した比較計測結 果をメモリ等に記憶しておき、必要に応じてデータを読み出して用いることが好ましい
[0017] またさらに、第 1のステップ及び第 2のステップにおいては、計測毎に光条件を変化 させて、試験計測溶液及び比較計測溶液を所定の放置時間放置し、第 3のステップ においては、光条件に応じた比較値の変化を評価することも好ましい。かかる方法と すれば、光条件の遅延蛍光特性に対する影響が有害物質毎に異なるので、放置時 の光条件の変化に応じた比較値を評価することにより、水溶液サンプル中の有害物 質の判別が更に容易となる。
[0018] さらにまた、試験計測溶液中及び比較計測溶液中における光合成サンプルの密度 は、遅延蛍光の光量と比例関係を有する密度の範囲であることも好ましい。この場合 、例えば、吸光度等を測定して光合成サンプルの密度を計測した後、この密度に基 づいて遅延蛍光の光量を補正することにより、より精度の高い有害物質の評価が実 現される。
[0019] 力 Qえて、第 1のステップ及び第 2のステップにおいては、遅延蛍光の光量を計測す る前に、試験計測溶液及び比較計測溶液を均一化させることも好ましレ、。このように すれば、計測中において計測溶液中の光合成サンプノレが均一に分布されるので、さ らに誤差の少ない有害物質の評価が可能となる。
[0020] また、水溶液サンプノレに混合される光合成サンプルについては、耐塩性藻類、耐 アルカリ性藻類、及び耐酸性藻類からなる群から選択される少なくとも一種からなる 光合成サンプノレを用いることが好ましい。このような光合成サンプルとしては、例えば スピルリナ(Spirulina)が挙げられる。 [0021] 本発明による他の有害物質の評価方法は、試験対象の水溶液サンプル中に存在 する有害物質を評価する有害物質の評価方法であって、(a)水溶液サンプルに光合 成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測溶液を調製する調製ステップと 、(b)試験計測溶液を所定の放置時間放置する放置ステップと、 (c)試験計測溶液 に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する計測ス テツプと、(d)計測ステップで取得された遅延蛍光の光量に基づいて、水溶液サンプ ル中に存在する有害物質を評価する評価ステップと、(e)計測ステップの前に、試験 計測溶液に対して所定の待機時間での暗中待機を行う暗中待機ステップ、または試 験計測溶液に対して予備的な光照射及び所定の待機時間での暗中待機を行う予備 照射ステップのいずれか一方を含む順化ステップとを備えることを特徴とする。
[0022] このような有害物質の評価方法では、評価対象の水溶液サンプルに混合された光 合成サンプルから発せられる遅延蛍光の光量の時間的変化において得られる特徴 から、複数の有害物質を同時に、かつ精度良く定性、定量することができる。また、遅 延蛍光の光量を計測して評価することにより、計測時間を全体的に短縮化することが できる。また、計測ステップの前に試験計測溶液に対して順化ステップを行うことによ り、遅延蛍光の計測、及びその計測結果による有害物質の評価の精度を向上するこ とができる。
[0023] このように、計測ステップの前に順化ステップを実施する場合、暗中待機ステップに おいて、所定の待機時間は 30秒以上 1時間以下の時間であることが好ましい。また、 予備照射ステップにおける予備的な光照射の時間及び暗中待機の時間の比が、計 測ステップにおける光の照射の時間及び暗中待機の時間の比と等しいことが好まし レ、。
[0024] そして、このような評価のために、試験対象の水溶液サンプル中に存在する有害物 質を評価するための有害物質の評価用キットであって、水溶液サンプルに混合され る光合成サンプルと、水溶液サンプノレの塩濃度及び pHを調整するための混合塩類 と、光合成サンプルと混合塩類とを、水溶液サンプルに分離して混合させる混合手段 と、を備える有害物質の評価用キットが提供される。また、評価用キットは、光合成サ ンプルの分布密度を均一化するための安定化剤を備えることが好ましい。このような 安定化剤としては、例えば、比重調整剤、増粘剤が挙げられる。
発明の効果
[0025] 本発明の有害物質の評価方法によれば、短時間でかつ幅広い有害物質の分析を 行うことができる。
図面の簡単な説明
[0026] [図 1]図 1は、遅延蛍光計測装置の一実施形態を示す図である。
[図 2]図 2は、図 1の遅延蛍光計測装置を部分的に示すブロック図である。
[図 3]図 3は、本発明の実施形態にかかる生物生育阻害要因の評価方法の手順を示 すフローチャートである。
[図 4]図 4は、遅延蛍光の光量を測定する際の遅延蛍光計測装置 1の動作を示すフ ローチャートである。
[図 5]図 5は、遅延蛍光の光量の時間的変化の一例を示す図である。
[図 6]図 6の(a)は、波長 665nmの吸光度と遅延蛍光量との関係の一例を示すグラフ、
(b)は、波長 750nmの吸光度と遅延蛍光量との関係の一例を示すグラフである。
[図 7]図 7は、吸光度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフである。
[図 8]図 8の(a)は、光強度を変化させた場合の評価値 CP1を示すグラフ、(b)は、光 強度を変化させた場合の評価値 CP2を示すグラフ、(c)は、光強度を変化させた場合 の評価値 TP2を示すグラフである。
[図 9]図 9の(a)は、光波長を変化させた場合の評価値 CP1を示すグラフ、(b)は、光 波長を変化させた場合の評価値 CP2を示すグラフ、(c)は、光波長を変化させた場合 の評価値 TP2を示すグラフである。
[図 10]図 10の(a)は、アトラジン濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、 (b )は、アトラジン濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、(c)は、アトラジン濃 度に対する比較値 VTP2の変化を示すグラフである。
[図 11]図 11は、アトラジン濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。
[図 12]図 12の(a)は、 DCMU濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、 (b) は、 DCMU濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、 (c)は、 DCMU濃度に 対する比較値 VTP2の変化を示すグラフである。 [図 13]図 13は、 DCMU濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。
園 14]図 14の(a)は、パラコート濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、 (b )は、パラコート濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、 (c)は、パラコート 濃度に対する比較値 VTP2の変化を示すグラフである。
園 15]図 15は、パラコート濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。 園 16]図 16の(a)は、無機水銀濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、 (b )は、無機水銀濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、 (c)は、無機水銀濃 度に対する比較値 VTP2の変化を示すグラフである。
園 17]図 17は、無機水銀濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。 園 18]図 18の(a)は、遊離シアン濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、 ( b)は、遊離シアン濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、(c)は、遊離シァ ン濃度に対する比較値 VTP2の変化を示すグラフである。
園 19]図 19は、遊離シアン濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。
[図 20]図 20の(a)は、 TPN濃度に対する比較値 VCP1の変化を示すグラフ、(b)は、 TPN濃度に対する比較値 VCP2の変化を示すグラフ、 (c)は、 TPN濃度に対する比 較値 VTP2の変化を示すグラフである。
園 21]図 21は、 TPN濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。
園 22]図 22の(a)は、異種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液の比較値 VCP1を示すグラフ、(b)は、異種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液の比 較値 VCP2を示すグラフ、(c)は、異種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液 の比較値 VTP2を示すグラフである。
園 23]図 23の(a)は、同種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液の比較値 VCP1を示すグラフ、(b)は、同種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液の比 較値 VCP2を示すグラフ、(c)は、同種の生物生育阻害要因を含む各試験計測溶液 の比較値 VTP2を示すグラフである。
[図 24]図 24は、本発明の一実施形態にかかる生物生育阻害要因の評価用キットを 用いて遅延蛍光の計測を行う際の手順を示す図である。
園 25]図 25は、本発明の他の実施形態に力、かる生物生育阻害要因の評価用キット を用いて遅延蛍光の計測を行う際の手順を示す図である。
園 26]図 26は、本発明の他の実施形態にかかる生物生育阻害要因の評価方法の 手順を示すフローチャートである。
園 27]図 27の(a)は、放置時の様々な光条件に対する TPNに関する比較値を示すグ ラフ、(b)は、放置時の様々な光条件に対する無機水銀に関する比較値を示すダラ フである。
園 28]図 28の(a)は、実施例 1において算出された比較値 VCP1を示すグラフ、 (b) は、実施例 1において算出された比較値 VCP2を示すグラフ、(c)は、実施例 1におい て算出された比較値 VTP2を示すグラフである。
園 29]図 29は、実施例 2において算出された比較値 VCP1を示すグラフである。
[図 30]図 30は、高塩性培地及び低塩性培地を用いて水溶液サンプルを調整した場 合の調整例を示す表である。
園 31]図 31は、溶液の均一化なし、及び増粘剤添加の条件での放置時間に対する 遅延蛍光量の変化を示すグラフである。
園 32]図 32は、有害物質の連続的な評価方法の一例を示す模式図である。
[図 33]図 33は、有害物質の連続的な評価方法の他の例を示す模式図である。
[図 34]図 34は、遅延蛍光の光量の時間的変化の例を示す図である。
園 35]図 35は、遅延蛍光減衰カーブに特徴点が存在する場合の Curve値の算出方 法の例について示す図である。
[図 36]図 36は、遅延蛍光減衰カーブに特徴点が存在しない場合の Curve値の算出 方法の例について示す図である。
[図 37]図 37は、シマジン濃度及びジクロロフヱノール濃度を変化させた場合の Curve 値を示すグラフである。
[図 38]図 38は、シマジン濃度及びジクロロフヱノール濃度を変化させた場合の VCurve値を示すグラフである。
園 39]図 39は、遅延蛍光の計測回数による評価値 CP1の変化を示すグラフである。
[図 40]図 40は、遅延蛍光の計測を 3回行った結果における計測精度を示す表である 符号の説明
[0027] 1…遅延蛍光計測装置、 10…光源、 12…第 1測定部、 12a…第 1光センサ、 12b …散乱光量算出部、 14…測定部、 14a…第 2光センサ、 14b…遅延蛍光量算出部、 16…解析部、 18…制御部、 20…筐体、 22…本体部、 24…蓋部、 26…導入口、 28 ■· -設置 、 30· · ·フイノレタ、 32· · ·集光光学系、 34· · ·シャツタ、 36, 44· · ·ケープノレ、 38 …算出部、 40…記憶部、 42…表示部、 50…採液容器、 52…水溶液サンプル、 54 …調整溶液、 56…濃縮化光合成サンプル、 58…試験計測溶液、 60…採液容器。 発明を実施するための最良の形態
[0028] 本発明の実施形態について図面を参照して説明する。なお、各図において、同一 要素には同一符号を付して重複する説明を省略する。
[0029] (遅延蛍光計測装置)
まず、本発明による有害物質の評価方法を実施するための遅延蛍光計測装置に ついて説明する。図 1は、遅延蛍光計測装置の一実施形態を示す図であり、図 2は、 遅延蛍光計測装置を部分的に示すブロック図である。
[0030] 遅延蛍光計測装置 1は、光源 10、第 1測定部 12、第 2測定部 14、解析部 16および 制御部 18を備えてレ、る。光源 10は、測定対象の溶液に所定波長の測定光を照射す るものであって、その波長は、 280nm 800nmである。ここで、光源 10は、単色光 源であっても、複数の光源を組み合せた光源であってもよい。光源 10の発光は、所 定時間連続してもよいし、任意のパターンでノ^レス点灯させてもよい。また、同一また は異なる波長特性を有する複数の光源を順番に発光させたり、複数の光源を同時に 発光させたりしてもよい。
[0031] 第 1測定部 12は、測定光に対する溶液の吸光度または散乱光の光量を測定するも のであり、溶液に照射された測定光の透過光または散乱光を検知する第 1光センサ 1 2aと、第 1光センサ 12aが検知して出力する信号に基づいて吸光度または散乱光の 光量を算出する吸光度または散乱光量算出部 12bとを有している。
[0032] 第 2測定部 14は、測定光が照射されたことによって光合成サンプル (詳細は、後述 する。)から生じる遅延蛍光の光量を測定するものであり、遅延蛍光を検知する第 2光 センサ 14aと、第 2光センサ 14aが検知して出力する信号に基づいて遅延蛍光の光 量を算出する遅延蛍光量算出部 14bとを有している。ここで、遅延蛍光は以下のよう にして生じる。つまり、光合成機能を有する生物反応において、同化色素(光合成色 素)に吸収された光エネルギーが、電子伝達経路により化学的エネルギーとして生物 反応中に伝達される。その伝達過程で、化学エネルギーの一部が逆反応を起こし、 光合成色素がその化学エネルギーにより再励起される。このようにして再励起された 光合成色素から蛍光発光が生じる。なお、遅延蛍光は遅延発光と呼ばれることもあり 、以下総称して遅延蛍光とする。
[0033] 光源 10、第 1測定部 12および第 2測定部 14は、遮光性を有する筐体 20に収容さ れている。筐体 20は、それ自体が光を遮断する遮光部材で形成されてもよぐ光を遮 断する塗料等を塗布した部材で形成されてもょレヽ。
[0034] 筐体 20は、本体部 22と蓋部 24とを有している。本体部 22は、その一端側に導入 口 26が形成されている。導入口 26は、筐体 20内に光合成サンプルを含む溶液を入 れるために形成されており、蓋部 24により閉塞されるようになっている。
[0035] また、筐体 20内には、溶液を入れた容器(図示せず)を設置可能な設置部 28が光 源 10と第 1測定部 12との中間付近に設けられている。設置部 28は、例えば、容器固 定用の固定爪を有し、この固定爪で容器を固定するようになっている。
[0036] 筐体 20内の設置部 28と第 2測定部 14との間には、フィルタ 30、集光光学系 32お よびシャツタ 34が設けられている。フィルタ 30は、筐体 20の内壁面に接するように設 けられ遅延蛍光を透過するものである。集光光学系 32は、微弱な遅延蛍光を集光す るものである。シャツタ 34は、開閉自在にされており、閉じているときは遅延蛍光を遮 断するようになっている。
[0037] 解析部 16は、第 1ケーブル 36を介して第 1測定部 12と第 2測定部 14とに接続され ており、算出部 38、記憶部 40および表示部 42を有している。算出部 38は、第 1測定 部 12により測定された吸光度または散乱光の光量、および第 2測定部 14により測定 された遅延蛍光の光量に基づいて、後述する演算方法に従って、溶液中に存在す る有害物質に相関する比較値を求める。記憶部 40は、算出部 38により求められた比 較値を順次記憶するものである。表示部 42は、記憶部 40に順次記憶された複数の 比較値を表示又は図示するものである。 [0038] 制御部 18は、第 2ケーブル 44を介して解析部 16に接続されている。すなわち、制 御部 18は、第 2ケーブル 44および第 1ケーブル 36を介して、第 1測定部 12および第 2測定部 14に接続されていることとなる。また、制御部 18は、蓋部 24の開閉、光源 1 0の発光や発光の停止およびシャツタ 34の開閉を制御する制御信号を送信する。
[0039] (有害物質の評価方法)
次いで、本発明による有害物質の評価方法について詳細に説明する。図 3は、有 害物質としての生物生育阻害要因の評価方法の手順を示すフローチャートである。 この評価方法は、試験対象の水溶液サンプノレ中に存在する生物生育阻害要因を評 価するためのものである。ここで、生物生育阻害要因とは、細菌、藻類、ミジンコ、魚 類等の生物個体に対して生育阻害作用や毒性等の悪影響を与える要因のことであ る。
[0040] まず、キュベット等の容器内において試験対象となる水溶液サンプノレと調整溶液と を混合する (ステップ S01)。
[0041] 水溶液サンプルとしては、湖沼河川や井戸水など天然の水源から直接採取した水 、土壌や汚泥など固形物から一般的な抽出手法によって得られる抽出成分を含む水 溶液、野菜等農薬が散布された物体の表面を洗い流した水溶液、ガス成分を液体に 吸収させることにより得られる水溶液、植物や動物など (野菜や食肉など)から一般的 な抽出手法によって得られる抽出成分を含む水溶液、及び植物や動物から採取され た組織液、血液、乳汁、糞尿などの排泄物から一般的な抽出手法によって得られる 抽出成分を含む水溶液などが利用できる。また、上記水溶液サンプルは、予め溶媒 抽出や固相抽出などによる分画処理により、水溶性物質、疎水性物質等の特性の異 なる成分に分離または濃縮したものを用いることができる。
[0042] 調整溶液は、水溶液サンプルの塩濃度、 pHを調整するための各種塩類を含む溶 液である。光合成サンプノレを用いた遅延蛍光計測に用いる計測溶液を調製する場 合、水溶液サンプノレは未知の水溶液であり、その塩濃度、 pHなどが多様である場合 が多い。なお、塩濃度、 pHが適切な範囲に無い場合は光合成サンプルの光合成機 能に影響を与えることが知られている。そこで、調整溶液は、計測溶液の塩濃度、 pH を調整するために用いられる。さらに、高感度な計測を行うためには、キュベット中の 計測溶液における光合成サンプルの分布密度が均一で偏りがなレ、こと、計測中に沈 殿物や浮上物が生じないことが好ましい。このために、調整溶液は、計測溶液におけ る光合成サンプルの分布密度に偏りが発生しないよう均一化するための安定化剤を 含有することが好ましい。例えば、計測溶液にある程度の粘性を持たせたり、比重を 光合成サンプノレと一致させたりすることにより均一化が可能である。
[0043] 調整溶液の溶質としては、例えば、水溶液サンプルの塩濃度、 pHを光合成サンプ ルに適した条件に調整する混合塩類、光合成サンプルの計測溶液における分布密 度を均一化する安定化剤、及び光合成反応に最低限必要な栄養塩類などが挙げら れる。また、調整溶液に含まれる安定化剤としては、計測中の光合成サンプノレの空 間的安定化に必要な比重調整剤や、ゲル化剤 (増粘剤)などを用いることが可能で ある。このような比重調整剤を用いることにより、計測溶液の比重が光合成サンプルと ほぼ一致するように調整される。また、この安定化剤は、調整溶液に代えて、後述す る光合成サンプルに含ませておいても良い。
[0044] 次に、キュベット等の容器内にぉレ、て、調整溶液によって調整された水溶液サンプ ルに光合成サンプルが混入され、試験計測溶液として調製される(ステップ S02、調 製ステップ)。この場合、試験計測溶液中の光合成サンプノレが均一の濃度となるよう に混合される。
[0045] 光合成サンプルとは、光合成機能を有するものであって、遅延蛍光を発光可能なも のであればよぐ例えば藻類又は植物性プランクトン、シァノバクテリア、光合成細菌 、植物体や葉や又はその細片、カルスなどの植物性培養細胞、植物から抽出された 光合成小器官やチラコイド膜、さらには人工的に合成された光合成様機能を持つ膜 •タンパク複合体などが挙げられる。好適には、例えば、藍藻類である Spi lina、緑藻 類である Selenastrumや、黄色藻類である Isochrysis、また、ホウレンソゥなど力、ら抽出 されたチラコイド膜などが利用できる。
[0046] 上記のようにして調製された試験計測溶液を所定の光条件のもとで所定の放置時 間放置する(ステップ S03、放置ステップ)。光条件とは、放置時において試験計測 溶液に照射される光の波長、光量、合成光である場合の各成分の波長及び光量とい うような環境条件のことをレ、うものとする。 [0047] そして、以下のようにして、試験計測溶液から発せられる遅延蛍光の光量を計測し て、遅延蛍光の光量の時間的変化を測定する(ステップ S04、計測ステップ)。
[0048] 図 4は、遅延蛍光の光量を測定する際の遅延蛍光計測装置 1の動作を示すフロー チャートである。なお、筐体 20内の設置部 28には、試験計測溶液を入れた容器が設 置されているものとする。
[0049] まず、制御部 18は、光源 10を発光させる制御信号を送信する。これにより、光源 1 0は発光する (ステップ S401)。この発光は、光合成サンプルを計測光に順応させる ための予備的な光照射を試験計測溶液に対して行った後、遅延蛍光を生じさせるた めの光照射を所定の照射時間行う。光源 10が発光すると、第 1測定部 12は試験計 測溶液の吸光度または散乱光の光量を測定する (ステップ S402)。測定後、第 1測 定部 12は、吸光度または散乱光の光量に関する情報を算出部 38に送信する。その 後、制御部 18は光源 10の発光を停止させる制御信号を送信する。これにより、光源 10は発光を停止する(ステップ S403)。なお、上記した吸光度または散乱光の光量 の測定は、予備的な光照射の際に行っても良い。
[0050] 発光停止後、制御部 18はシャツタ 34を開動作させる制御信号を送信する。これに より、シャツタ 34は開動作する(ステップ S404)。シャツタ 34が開動作すると、第 2測 定部 14は遅延蛍光の光量を測定する (ステップ S405)。測定後、第 2測定部 14は、 所定の計測時間における遅延蛍光の光量の時間的変化に関する情報を算出部 38 に送信する。その後、制御部 18は、シャツタ 34を閉動作させる制御信号を送信する 。これにより、シャツタ 34は閉動作する(ステップ S406)。
[0051] ここまでの処理で試験計測溶液に関する遅延蛍光量の計測(第 1のステップ)が完 了する。
[0052] 次に、図 3に戻って、ステップ S01と同一の条件で、キュベット等の別の容器内にお レ、て標準サンプルと調整溶液とを混合する(ステップ S05)。ここで、標準サンプルは 、生物生育阻害要因といった有害物質が存在しないことが既知の溶液であり、例え ば、滅菌蒸留水や純水等の不純物、菌類が取り除かれた水が用いられる。
[0053] そして、ステップ S02と同一の条件で、キュベット等の容器内において調整溶液に よって調整された標準サンプノレに光合成サンプルが混入され、標準計測溶液として 調製される(ステップ S06)。以下、ステップ S03— S04と同様にして、標準計測溶液 の遅延蛍光量の計測が行われる(ステップ S07—ステップ S08、以上、第 2のステツ プ)。
[0054] なお、上述した遅延蛍光量の計測 (ステップ S401 S406)は、計測精度を上げる ために、試験計測溶液又は標準計測溶液にっレ、て複数回繰り返し行って、その平均 値を算出するようにしても良レ、。
[0055] 試験計測溶液及び標準計測溶液の遅延蛍光量の時間的変化、及びそれぞれの 測定時の吸光度 (又は散乱光の光量)が計測されると、算出部 38は、それらの遅延 蛍光量の時間的変化に基づいて、生物生育阻害要因に相関する比較値を求める( ステップ S09)。
[0056] 図 5は、標準的測定条件下の遅延蛍光の光量の時間的変化の例を示す図である。
ここで標準的測定条件とは、以下の通りである。まず、光合成サンプルとして、光強度 50 /i mol/m2/s、波長 665nmの赤色単色光下で一般的な方法で育成された藍藻類で ある Spirulina platensis,標準サンプルとして、 1.8mlの滅菌蒸留水を用意する。次に、 4倍濃度の標準的な藍藻培養用混合塩類と、 pH及び塩濃度を調整するための混合 塩類とを含む 0.6mlの調整溶液を標準サンプルに添加する。次いで、 665nmの吸光 度に換算して、 OD=0.1程度で均一である Spirulina platensisと、ゲル化剤として 0.5重 量%の寒天とを含む 0.6mlの光合成サンプノレを混合して、 3mlの計測溶液を調製する。
[0057] その後、光強度 1.5 μ mol/ m2/sの白色蛍光灯下で 15分程度放置する。そして、遅 延蛍光計測装置 1を用いて、光合成サンプルを計測光条件に順応させるための予備 的な光照射として 665nm、 0.8mWん m2の光を 2秒照射後に、 60秒間暗黒下で待機さ せる。その後、再度 665nm、 0.8mWん m2の励起光を 2秒照射後に、時間分解能 0.1秒 で 60秒間の遅延蛍光の光量を計測する。上記 60秒間の計測を 3回実行して、その平 均値から遅延蛍光の光量の時間的変化が得られる。なお、水溶液サンプルについて も同様である。
[0058] 図 5に示されるように、得られる遅延蛍光減衰カーブ(遅延蛍光の光量の時間的変 ィ匕)は、光照射終了後から続く減衰カーブの頂点である第 1ピーク (P1)と、光照射終 了後 25— 35秒近辺に現れる第二ピーク(P2)を有する。また、第 1ピーク(P1)と第 2ピ ーク(P2)の間における PIの近傍には、変曲点(C1)が現れる。これら Pl、 P2、及び CI (特徴点)は生物生育阻害要因の種類により特徴的な変化を示す。この特徴点の変 ィ匕は、光合成サンプルの生物生育阻害要因に対する感受性の変化からもたらされる 。また、この特徴点としては、上記 3つの点には限られず、 P1と P2の間の極小点や、 遅延蛍光減衰カーブにおけるその他の変曲点を用いることもできる。
[0059] ここで、算出部 38は、試験計測溶液及び標準計測溶液の遅延蛍光減衰カーブ中 の特徴点を検出し、その特徴点を評価する評価値を算出する。この評価値としては、 P1における遅延蛍光量 CP1、 P2における遅延蛍光量 CP2、及び P2における光照射 終了後の経過時間 TP2が用いられる。また、変曲点 C1を評価するための評価値とし ては、試験計測溶液及び標準計測溶液の遅延蛍光の光量の時間的変化の値を用 いる。
[0060] そして、算出部 38は、それぞれの計測溶液の測定時の吸光度(又は散乱光の光量 )に基づいて遅延蛍光の光量又は評価値を補正することも行う。この補正は、計測溶 液中の光合成サンプルの濃度差により生ずる測定誤差を補正するためのものである 。この測定誤差は、特に光合成サンプルの極微量変化領域を評価する場合に、設置 部 28での光合成サンプルの配置、あるいは設置部 28自身の配置などで光照射量、 光路が変化することにより生ずる。この補正には、吸光度 (又は散乱光の光量)を基 にして計測された細胞密度を用いることが有効である。
[0061] 上記補正を精度良く行うためには、試験計測溶液中及び標準計測溶液中における 光合成サンプノレの密度は、それぞれに関する遅延蛍光の光量と比例関係を有する 密度の範囲であることが好ましい。つまり、計測溶液中の光合成サンプル密度がある 値以下では、吸光度(又は散乱光の光量)と、遅延蛍光の光量とは、光合成サンプル 密度と高い相関を示す。この密度の上限値は、光合成サンプノレの特性毎に適宜設 定される。
[0062] 図 6において、グラフ(a)は、波長 665nmの吸光度(OD665)と遅延蛍光量 CP1との 関係の一例、グラフ(b)は、波長 750nmの吸光度(OD750)と遅延蛍光量 CP1との関 係の一例を示す。図 6の例によれば、吸光度と遅延蛍光量 CP1は、吸光度(OD) =0.5 付近まで高い相関がある。しかし、 OD=0.5以上では、光合成サンプノレ自体の自己吸 収により遅延蛍光量が見かけ上減少している事がわかる。従って、この場合、吸光度 力 S〇D=0.5以下の範囲内であれば、それを元に遅延蛍光量の補正が高精度に為され 得る。
[0063] 次いで、算出部 38は、評価値から水溶液サンプノレ中の生物生育阻害要因による 影響を顕在化させるための比較値を算出する。比較値の例としては、試験計測溶液 及び標準計測溶液から得られた CP1、 CP2、 TP2の比をとつて得られた VCP1値、 VCP2値、 VTP2値、試験計測溶液及び標準計測溶液から得られた遅延蛍光の光量 の時間的変化の差をとつて得られた Curve値が用いられる。これら比較値を評価する ことで光合成サンプノレの生物生育阻害要因に対する感受性が適切に評価される。
[0064] なお、以下本明細書において、 CP1は、光照射終了後 0.1秒から 0.5秒までの遅延 蛍光量積算量 [counts]、 TP2は、第 2ピーク(又は類似の変曲点)の現れる光照射終 了後経過時間 [sec]、 CP2は、第 2ピーク(又は類似の変曲点)の現れる時刻 ± 0.5秒 の遅延蛍光量積算量 [counts] , Curve値は、 C1を含む第 1ピークと第二ピークとの間 の遅延蛍光減衰カーブの、試験計測溶液と標準計測溶液との差 [counts]、 VCP1値 、 VCP2値、 VTP2値は、それぞれ CP1、 CP2、 TP2の、標準計測溶液に対する試験計 測溶液の比として算出されるものとする。これらの評価値及び比較値の具体的な算 出方法については、必要に応じて適宜選択して良い。
[0065] また、このように算出された比較値により高感度で生物生育阻害要因を検出するた めには、上述した遅延蛍光の光量と比例関係を有する光合成サンプル密度の範囲 内であっても、光合成サンプノレは十分に低密度であることが好ましい。
[0066] 図 7には、波長 665nmの吸光度に対する VCP1値の変化を示す。この VCP1値は、濃 度 O. lppbの DCMUを含む水溶液サンプル、及び光合成サンプル Spirulina platensisを 混合した計測溶液を対象に計測を行った結果得られたものである。また、標準計測 溶液を計測対象にした場合、吸光度 0.5以下において吸光度と遅延蛍光の光量とが 高い相関を示した。
[0067] 図 7により示されるように、光合成サンプル密度が OD=0.はり高くなるに従レ、、 VCP1 値(%)が低下する。一方では遅延蛍光の光量と光合成サンプル密度の相関は、吸 光度 0.5付近まで保たれている。このことから、遅延蛍光の光量が自己吸収により減 衰しない光合成サンプル密度の範囲においても、光合成サンプル密度が比較的高 い場合、生物生育阻害要因の検出感度が低下することがわかる。光合成サンプルへ の生物生育阻害性は、水溶液サンプル中の化学物質が光合成サンプル中に浸透吸 収されて、特定の標的生体分子と直接もしくは間接的に相互作用することにより発生 する。このため、極低濃度の化学物質に対して、過剰の光合成サンプル(=標的生 体分子)が存在する場合には影響が低下する結果となる。
[0068] 図 3に戻って、比較値が求められると、記憶部 40は比較値を記憶し (ステップ S10) 、表示部 42は記憶された比較値を表示する (ステップ Sl l)。ここでの表示は、例え ば、記憶された比較値をグラフ表示等することによって行われる。また、以前記憶され た他の水溶液サンプルに関する比較値と対比できるように並べて表示等することも好 ましい。最後に、表示された比較値を既知物質の比較値と対比して解析することによ り、水溶液サンプノレにおける生物生育阻害要因の定性 ·定量が行われる (ステップ S 12、以上、第 3のステップ、評価ステップ)。ステップ S12における解析 ·評価方法の 詳細については後に詳述する。
[0069] なお、ステップ S03における計測溶液の放置時の光条件は、安定して高感度計測 を行うために所定の条件に制御することが好ましい。また、光合成サンプルを明所か ら喑所に移動した場合などには、光合成サンプルが経時的に徐々にその環境に適 応してレ、くために、測定前から光合成サンプノレを一定の光条件で保存してぉレ、たり、 光合成サンプノレを置く光環境を変化させた後、所定時間経過後に遅延蛍光の計測 を行うとより好適である。
[0070] 図 8には、光合成サンプノレとして Spimlina platensisを使用した場合に、計測溶液放 置時の光強度を様々変化させた場合の評価値の一例を示す。図 8において、グラフ( a)は、光強度を変化させた場合の CP1、グラフ(b)は、光強度を変化させた場合の CP2、グラフ(c)は、光強度を変化させた場合の TP2を示す。図 8に示すように、測定 前に強光下での明所においた計測溶液では、 CP1が他の光強度に比して大きぐ弱 光にぉレ、た計測溶液では、 CP2が他の光強度に比して大きぐ暗黒にぉレ、た計測溶 液では、 TP2が他の光強度に比して大きくなつている。このように、光合成サンプルか ら発せられる遅延蛍光は、放置状態での光強度により変化し、その結果、遅延蛍光 減衰カーブの計測 ·評価結果に影響する事がわかる。このような理由から、計測溶液 の放置時の光条件を所定の条件に制御することは、遅延蛍光減衰カーブ中の極大 点、極小点、変曲点などの特徴点を再現性良く安定して測定 ·評価するために重要 である。
[0071] また、計測溶液に混合される光合成サンプルは、再現性の良レ、計測結果を得るた めに所定の培養条件で育成したものを用いることが好ましい。このような所定の培養 条件としては、一定の光環境下 (例えば、照射波長、照射強度)であることが好ましい 。また、単色光源で育成したものを低温下にて暗黒もしくは所定の光照射強度(例え ば、光強度 1 μ mol/m2/S)で保存して、増殖が抑制された培養条件であることがより好 ましい。
[0072] 図 9には、異なる光環境で育成された光合成サンプル Spirulina platensisを使用した 場合の評価値を示す。図 9において、グラフ (a)は、培養条件 (光波長)を変化させた 場合の CP1、グラフ(b)は、光波長を変化させた場合の CP2、グラフ(c)は、光波長を 変化させた場合の TP2を示す。図 9に示すように、遅延蛍光減衰カーブは光環境によ り変化することから、得られる評価値も変動する。このような理由から、所定の培養条 件で光合成サンプノレを育成することは、規格化された高感度計測を行うために重要 である。
[0073] (既存物質の計測)
以下、上述した標準的測定条件下において、生物生育阻害要因となる既存化学物 質を含む水溶液サンプルについての遅延蛍光計測の解析結果を示す。
[0074] 図 10及び図 11は、アトラジンを様々な濃度で含む水溶液サンプノレを対象に算出さ れた比較値を示すグラフである。図 10において、グラフ(a)は、アトラジン濃度に対す る VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、アトラジン濃度に対する VCP2値の変 化を示すグラフ、グラフ(c)は、アトラジン濃度に対する VTP2値の変化を示すグラフ である。また、図 11は、アトラジン濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフであ る。アトラジンは光合成を阻害する疎水性除草剤として利用されていたが、 20 x g/l程 度の低濃度で力エル等に催奇形作用をしめす内分泌撹乱作用が認められ、規制の 対象になつている化学物質である。なお、図中に表記されているアトラジン濃度は、 最終的に合計 3mlに調整された試験計測溶液中での濃度である。
[0075] 図 10に示すように、アトラジン濃度の増加に応じて、 VCP1値が増大する一方、
VCP2値が減少することがわかる。また、アトラジン濃度の増加に応じて、 VTP2値は若 干減少する。また、図 11により、 Curve値は高濃度になるにつれて、励起後時間 1秒 付近でプラス側に、励起後時間 3— 4秒付近ではマイナス側に変化してレ、くことが判 明した。
[0076] また、図 12及び図 13は、 DCMU (ジゥロン)を様々な濃度で含む水溶液サンプルを 対象に算出された比較値を示すグラフである。図 12において、グラフ(a)は、 DCMU 濃度に対する VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、 DCMU濃度に対する VC P2値の変化を示すグラフ、グラフ(c)は、 DCMU濃度に対する VTP2値の変化を示 すグラフである。また、図 13は、 DCMU濃度を変化させた場合の Curve値を示すダラ フである。 DCMU (ジゥロン)はアトラジンと同様に、光合成を阻害する除草剤として幅 広く利用されてきたが、生物への悪影響が指摘されており、規制の対象となっている 。なお、図中に表記されている DCMU濃度は、最終的に合計 3mlに調整された試験 計測溶液中での濃度である。
[0077] 図 12に示すように、 DCMU濃度の増加に応じて、 VCP1値が増大する一方、 VCP2 値が減少することがわかる。また、 DCMU濃度の増加に応じて、 VTP2値はほとんど変 化しない。また、図 13により、 Curve値は高濃度になるにつれて、励起後時間 1秒付 近でプラス側に、励起後時間 3— 5秒付近ではマイナス側に変化してレ、くことが判明 した。
[0078] また、図 14及び図 15は、パラコートを様々な濃度で含む水溶液サンプルを対象に 算出された比較値を示すグラフである。図 14において、グラフ(a)は、パラコート濃度 に対する VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、パラコート濃度に対する VCP2 値の変化を示すグラフ、グラフ(c)は、ノ コート濃度に対する VTP2値の変化を示 すグラフである。また、図 15は、パラコート濃度を変化させた場合の Curve値を示すグ ラフである。パラコートは細胞中に取り込まれた後に、生体反応の電子伝達を撹乱し たり、活性酸素を発生することにより細胞に障害を起こすとされており、除草剤として 利用されている。なお、図中に表記されているパラコート濃度は、最終的に合計 3ml に調整された試験計測溶液中での濃度である。
[0079] 図 14に示すように、パラコート濃度の増加に応じて、 VCP2値及び VTP2値が減少す るが、高濃度でその減少が鈍くなる。また、パラコート濃度の増加に応じて、 VCP1値 は低濃度において若干減少する。また、図 15により、 Curve値は、高濃度になるにつ れて励起後時間 1一 4秒付近でマイナス側に変化することが判明した。
[0080] また、図 16及び図 17は、無機水銀を様々な濃度で含む水溶液サンプルを対象に 算出された比較値を示すグラフである。図 16において、グラフ(a)は、無機水銀濃度 に対する VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、無機水銀濃度に対する VCP2 値の変化を示すグラフ、グラフ(c)は、無機水銀濃度に対する VTP2値の変化を示す グラフである。また、図 17は、無機水銀濃度を変化させた場合の Curve値を示すダラ フである。無機水銀は、光合成サンプルだけでなく一般的な細胞にも毒性を示す物 質である。なお、図中に表記されている無機水銀濃度は、塩化水銀溶液として調製 し、最終的に合計 3mlに調整された試験計測溶液中での水銀イオン濃度換算での濃 度である。
[0081] 図 16に示すように、無機水銀濃度の増加に応じて、 VTP2値が増加する一方、
VCP2値は減少する。また、無機水銀濃度の増加に応じて、 VCP1値は、低濃度にお いてはあまり変化しないが、高濃度においては増加する。また、図 17により、 Curve値 は、高濃度になるにつれて経過時間 1一 2秒付近で時間分布がプラス側に変化する ことが判明した。
[0082] また、図 18及び図 19は、遊離シアンを様々な濃度で含む水溶液サンプルを対象 に算出された比較値を示すグラフである。図 18において、グラフ(a)は、遊離シアン 濃度に対する VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、遊離シアン濃度に対する VCP2値の変化を示すグラフ、グラフ(c)は、遊離シアン濃度に対する VTP2値の変 化を示すグラフである。また、図 19は、遊離シアン濃度を変化させた場合の Curve値 を示すグラフである。遊離シアンは、光合成サンプルだけでなく一般的な細胞にも毒 性を示す。なお図中に表記されている遊離シアン濃度は、シアンィ匕カリウム溶液とし て調整し、最終的に合計 3mlに調整された試験計測溶液中でのシアン化イオン換算 の濃度である。 [0083] 図 18に示すように、遊離シアン濃度の増加に応じて、 VTP2値及び VCP2値は、低 濃度においてはほとんど変化しないが、高濃度において減少する。また、有機シアン 濃度の増加に応じて、 VCP1値は、ほとんど変化しない。また、図 19により、 Curve値 は、高濃度になるにつれてプラス側に変化し、その変化は、励起後時間 2 4秒付近 に集中することが判明した。
[0084] また、図 20及び図 21は、 TPNを様々な濃度で含む水溶液サンプノレを対象に算出 された比較値を示すグラフである。図 20において、グラフ(a)は、 TPN濃度に対する VCP1値の変化を示すグラフ、グラフ(b)は、 TPN濃度に対する VCP2値の変化を示 すグラフ、グラフ(c)は、 TPN濃度に対する VTP2値の変化を示すグラフである。また 、図 21は、 TPN濃度を変化させた場合の Curve値を示すグラフである。 TPNは殺菌作 用を示す農薬等に含まれる成分で、細胞のエネルギーである ATP生産に関わる酵素 を失活させる、光合成ではなく呼吸代謝に作用する化学物質である。なお、図中に 表記されている TPN濃度は、 TPNのみを主剤として含む殺菌剤を希釈して用い、最 終的に合計 3mlに調整された試験計測溶液中での TPN濃度換算の濃度である。
[0085] 図 20に示すように、 TPN濃度の増加に応じて、 VCP1値及び VTP2値は増加する一 方、 VCP2値は減少する。また、図 21により、 Curve値は高濃度になるにつれて、励起 後時間 1秒付近でプラス側に変化し、励起後時間 3— 5秒付近でマイナス側に変化 することが判明した。
[0086] TPNは野菜における残留農薬の規制対象になつている殺菌剤の主要なもので、法 定の規制濃度は lppmとなっている。また、 TPNを主剤とする主要な市販殺菌剤にお ける散布濃度は 400ppmである。本法における検出感度は、散布濃度の 10000分の 1 程度の濃度で検出可能であり、野菜の表面から水溶液サンプルを得ることにより規制 基準以下の TPNも十分に検出できることを示している。
[0087] (生物生育阻害要因の解析 '評価)
実際の水溶液サンプルの計測においては、その中に複数の生物生育阻害要因が 同時に存在することがあり得る。生物生育阻害要因の評価方法により得られた遅延 蛍光減衰カーブは、各種生育阻害要因による影響が時間的に分離されており、生物 生育阻害要因に対して相加的に現れる。そのため、複数の生物生育阻害要因が存 在した場合には、それぞれを別個に推定することが可能であると同時に、それら変化 を積算して評価することも可能である。このように、生物生育阻害要因の定性的な評 価と定量的な評価とが同時に行われる。
[0088] 水溶液サンプル中に異種の生物生育阻害要因が存在している場合、例えば、
DCMUと無機水銀が存在している場合、本実施形態において用いている比較値の 中での主たる変化の現れる比較値は、例えば、 DCMUでは VCP1値、無機水銀では VCP2値及び VTP2値となっている。このように、遅延蛍光減衰カーブ中に変化が現 れる比較値が異なる生物生育阻害要因を同時に含む場合、全体の比較値の変化は 相加的に現れる。
[0089] 図 22は、生物生育阻害要因としての DCMUを濃度 O. lppbで含有する試験計測溶 液「DCMU」と、生物生育阻害要因としての水銀イオンを濃度 20ppbで含有する試験 計測溶液「Hg2+」と、 DCMUを濃度 O. lppb及び水銀イオンを濃度 20ppbで含有する試 験計測溶液「DCMU + Hg」とのそれぞれから得られた比較値 VCP1値、 VCP2値、及 び VTP2値を示している。図 22において、グラフ(a)は、各試験計測溶液の VCP1値を 示すグラフ、グラフ(b)は、各試験計測溶液の VCP2値を示すグラフ、グラフ(c)は、各 試験計測溶液の VTP2値を示すグラフである。
[0090] 図 22のグラフ(a)で示されるように、 VCP1値では、主な変化の現れる評価値が VCP1値である「DCMU」では 116.0、 DCMUと水銀イオンを含む「DCMU+Hg」では、 129.6、水銀イオンのみを含む「Hg2+」では、 104.1となっており、 DCMUを含む場合に は VCP1値の変化が大きいことがわかる。また、図 22のグラフ(b)で示されるように、 VCP2値では、主な変化の現れる比較値力 SVCP2値である「Hg2+」では 59.9、 DCMUと 水銀イオンを含む「DCMU+Hg」では、 44.9、 DCMUのみを含む「DCMU」では、 88.0と なっており、水銀イオンを含む場合には、 CP2の変化が大きいことがわかる。また、図 22のグラフ(c)で示されるように、 VTP2値では、主な変化の現れる比較値力 VTP2値 である「Hg2+」では 144.9、 DCMUと水銀イオンを含む「DCMU+Hg」では、 149.9、 DCMUのみを含む「DCMU」では、 100.0となっており、水銀イオンを含む場合には、 TP2の変化が大きレ、ことがわかる。
[0091] 以上の結果から、 DCMUと水銀イオンを含む「DCMU+Hg」では、 DCMUでの主な変 化の現れる VCP1値と水銀イオンでの主な変化の現れる比較値 VCP2値及び VTP2値 に変化が現れており、 DCMUと水銀イオンとを同時に含有している事が同時に計測 可能であることがわかる。
[0092] 一方、水溶液サンプル中に同種の生物生育阻害要因が存在している場合、例えば 、アトラジンと DCMUとが存在している場合、本実施形態において用いている比較値 の中での主たる変化の現れる比較値は、ともに VCP1値となっている。このように、遅 延蛍光減衰カーブ中に変化が現れる比較値が同じ生物生育阻害要因を同時に含 む場合、全体の比較値の変化は相加的に現れる。
[0093] 図 23は、生物生育阻害要因としてのアトラジンを濃度 0.2ppbで含有する試験計測 溶液「アトラジン」と、生物生育阻害要因としての DCMUを濃度 O. lppbで含有する試 験計測溶液「DCMU」と、 DCMUを濃度 O. lppb及びアトラジンを濃度 0.2ppbで含有す る試験計測溶液「アトラジン + DCMU」とのそれぞれから得られた比較値 VCP1値、 VCP2値、及び VTP2値を示している。図 23において、グラフ(a)は、各試験計測溶液 の VCP1値を示すグラフ、グラフ(b)は、各試験計測溶液の VCP2値を示すグラフ、グ ラフ(c)は、各試験計測溶液の VTP2値を示すグラフである。
[0094] 図 23のグラフ(a)で示されるように、 VCP1値は、「アトラジン」では 106.4、「DCMU」 で 125.6、「アトラジン + DCMUJでは、 132.2となっており、アトラジンと DCMUを同時に 含む場合には VCP1が相加的に増加していることがわかる。また、図 23のグラフ(b) で示されるように、 VCP2値は、「アトラジン」では 90.0、「DCMU」で 84.6、「アトラジン + DCMU」では、 86.0となっており、大きな変化が見られないことがわかる。また、図 23 のグラフ(c)で示されるように、 VTP2値は、「アトラジン」では 100.0、「DCMU」で101.5 、「アトラジン + DCMU」では、 100.0となっており、大きな変化が見られないことがわか る。
[0095] 以上の結果から、アトラジンと DCMUを含む「アトラジン + DCMU」では、ともに主な 変化の現れる比較値である VCP1値において相加的に値が増加している。このように 、同種の生物生育阻害要因は遅延蛍光の計測結果に相加的に影響を与えるので、 同種の生物生育阻害要因となる化学物質に対する生物生育阻害要因の総合的な評 価結果が得られる。 [0096] (生物生育阻害要因の評価用キット)
続いて、本発明による生物生育阻害要因の評価用キットについて詳細に説明する 。上述した生物生育阻害要因の評価方法を簡便に実施するために、生物生育阻害 要因の評価用キットを用いることができる。生物生育阻害要因の評価用キットは、水 溶液サンプノレ又は標準サンプルに混合される濃縮化光合成サンプルと、光合成サン プノレが混合された水溶液サンプノレ又は標準サンプノレの塩濃度及び pHを調整するた めの濃縮された混合塩類、栄養塩類を含む調整溶液と、光合成サンプルと調整溶液 とを水溶液サンプルに分離して混合させる混合手段と、を含むものである。
[0097] ここで、上記した濃縮化光合成サンプル、調整溶液のレ、ずれか、又はその両方に は、光合成サンプルの空間的な安定化に必要な安定化剤を含むことが好ましい。な お、濃縮化光合成サンプルに安定化剤を含ませる場合には、濃縮状態で光合成サ ンプルに悪影響を与えないような安定化剤が用いられる。また、水溶液サンプル中の 生育阻害要因に対して吸着や分解など、光合成サンプルへの作用を阻害しない安 定化剤が好適に用いられる。安定化剤としては、例えば、ァガロース等の多糖類や、 高分子ポリマーが挙げられる。
[0098] また、混合手段としては、採液容器中にぉレ、て光合成サンプルと調整溶液とを水溶 液サンプノレに分離して混合することができるものであれば任意の形状の採液容器を 用いることができる。
[0099] 図 24は、このような生物生育阻害要因の評価用キットを用いて遅延蛍光の計測を 行う際の手順を示す図である。同図に示されるように、所定の採液容器 50に所定量 の水溶液サンプル 52が採取され、その後、塩濃度及び pHが所定の範囲になるよう に調整溶液 54が混合される。さらに、採液容器 50に濃縮化光合成サンプル 56が混 ぜ合わされる。その後、採液容器 50内で調製された試験計測溶液 58を放置後、採 液容器 50を遅延蛍光計測装置 1に収納させて遅延蛍光の光量の計測を行う。
[0100] また、採液容器としては、吸引などにより所定量の水溶液サンプノレが採取可能な注 射筒やスポイトのような容器を採液容器として用いることも好ましい。この採液容器内 に、どちらかまたは双方に安定化剤を含む調整溶液及び濃縮化光合成サンプルを 分離した状態で収容させておくことも好ましい。この場合、水溶液サンプル採取の際 の一挙動で調整溶液、光合成サンプル、安定化剤の混合が可能であるため計測を より簡便に行うことができる。
[0101] また、水溶液サンプノレが吸引された場合に、先に調整溶液と混合され、次に濃縮 化光合成サンプルと混合されるような位置に、調整溶液及び濃縮化光合成サンプル が保持されていることがより好ましい。これにより、水溶液サンプルの塩濃度、 pHが光 合成サンプノレに影響を与えうる範囲であっても、調整溶液で調整後に光合成サンプ ルを混合することにより光合成サンプノレに対する影響を低減することができる。
[0102] 図 25は、スポイト型の生物生育阻害要因の評価用キットを用いて遅延蛍光の計測 を行う際の手順を示す図である。同図に示されるように、スポイト型の採液容器 60内 には、調整溶液 54と濃縮化光合成サンプル 56とが上下に分離して収容されている。 採液容器 60中で、調整溶液と濃縮化光合成サンプルを分離して保持するために、 採液容器 60自体に壁や溶液ポケット等の分離手段が備えられてレ、ても良レ、。また、 採液容器 60の構造の単純化、コストの低減化の観点からは、調整溶液と濃縮化光合 成サンプノレそれぞれに濃縮されたゲルィヒ剤などの安定化剤が含まれていることによ り、それぞれもしくは片方の溶液が高粘性を持っていても良い。
[0103] このような採液容器 60において、調整溶液 54が収容されている位置まで水溶液サ ンプル 52が吸引採取され、水溶液サンプルと調整溶液 54とがー且混合される。その 後、採液容器 60に水溶液サンプル 52が所定量に達するまで吸引採取され、濃縮化 光合成サンプル 56と混ぜ合わされる。このようにして採液容器 60内で調製された試 験計測溶液を放置後、採液容器 60を遅延蛍光計測装置 1に収納させて遅延蛍光の 光量の計測を行う。
[0104] 以上説明した生物生育阻害要因の評価用キットを用いることにより、水溶液サンプ ルに対して高濃度の塩類を含む調整溶液と光合成サンプルとが別々に混合されるの で、塩類の光合成サンプルに対する影響を最小限化して、浸透圧差などによる光合 成サンプノレの死亡'破損を防止することができる。
[0105] 以下、本発明の実施形態にかかる生物生育阻害要因の評価方法の作用効果につ いて説明する。
[0106] 生物生育阻害要因の評価方法によれば、評価対象の水溶液サンプルに混合され た光合成サンプルから発せられる遅延蛍光の減衰カーブと、生物生育阻害要件の 存在しない溶液中の光合成サンプルから発せられる遅延蛍光の減衰カーブとが計 測される。そして、それぞれの減衰カーブから、ピークや変曲点等の特徴点を評価し 、両者を比較することにより生物生育阻害要因の光合成サンプルに対する影響が評 価される。そのような評価を行うことにより、複数の化学物質を同時に、かつ精度良く 定性、定量することができる。また、遅延蛍光の光量を計測して評価することにより、 計測時間を全体的に短縮化することができる。
[0107] なお、本発明は上述した実施形態に限定されるものではなぐ例えば、本実施形態 にかかる生物生育阻害要因の評価方法では、計測溶液の放置時の光条件は所定 の条件に制御されていたが、これは、計測溶液の計測毎に光条件を様々変化させて 比較値を評価するようにしても良い。
[0108] 図 26は、この場合の生物生育阻害要因の評価方法の手順を示すフローチャートで ある。図 3における手順との相違点を中心に説明すると、まず、ステップ S01、ステツ プ S02及びステップ S05、ステップ S06と同様にして、試験計測溶液及び標準計測 溶液が調製される(ステップ S21—ステップ S22,ステップ S26—ステップ S27)。そし て、初回の放置時の光条件が設定される (ステップ S23、ステップ S28)。その後、設 定された光条件のもとで試験計測溶液及び標準計測溶液を所定の放置時間放置す る(ステップ S24、ステップ S29)。その後、図 3におけるステップ S04、ステップ S08— S12と同様にして計測された遅延蛍光の光量から比較値が算出され、その比較値が 評価される(ステップ S25、ステップ S30—ステップ S34)。そして評価が終了すると、 ステップ S23及びステップ S28に戻って、前回設定した光条件を変化させた後、再度 比較値を算出し、光条件に応じた比較値の変化の評価を繰り返し行う。なお、計測溶 液は、各光条件毎に新しく調製してもよい。
[0109] また、放置時における光条件としては、生物生育阻害要因の変化をより細かく計測 するために、可視光領域の単色光またはその組み合わせ、赤外光や紫外光などの 光を単独又は組み合せて用いることが可能である。
[0110] 図 27は、放置時の光条件を様々変えて算出された比較値の一例を示すグラフであ る。図 27において、グラフ(a)は、様々な光条件に対する TPNに関する比較値、ダラ フ(b)は、様々な光条件に対する無機水銀に関する比較値を示すグラフである。ここ で、放置時の光条件は、計測溶液に対する照射光を、白色蛍光灯、緑色単色光(波 長 530nm)、及び赤色単色光(波長 665nm)の 3種類に変化させ、各照射光の光量を 1.5 μ mol/m2/sに設定した。比較値としては VCP1値、 VCP2値、 VTP2値を算出した。
[0111] 図 27のグラフ(a)に示されるように、 TPNの場合、 VTP2値は、放置時の光条件が「 白色光」の場合 122、「緑色光」の場合 89、「赤色光」の場合 118、となる。 VCP2値は、 放置時の光条件が「白色光」の場合 47、「緑色光」の場合 78、「赤色光」の場合 44、と なる。 VCP1値は、放置時の光条件が「白色光」の場合 144、「緑色光」の場合 112、「 赤色光」の場合、 171となる。この結果から、 TPNの場合、放置時の光条件が「緑色光 」の場合は VCP1、 VCP2、 VTP2の全ての評価値の変化率が低下し、生物生育阻害 要因の検出感度が低下することがわかる。
[0112] また、図 27のグラフ(b)に示されるように、無機水銀の場合、 VTP2値は、放置時の 光条件が「白色光」の場合 117、「緑色光」の場合 113、「赤色光」の場合 114、となる。 VCP2値は、放置時の光条件が「白色光」の場合 77、「緑色光」の場合 78、「赤色光」 の場合 77、となる。 VCP1値は、放置時の光条件が「白色光」の場合 103、「緑色光」の 場合 96、「赤色光」の場合 98、となる。このため無機水銀の場合、放置時の光条件に よる、 CPU CP2、 TP2の評価値の変化率に大きな差がないことがわかる。
[0113] 上記結果より、水溶液サンプル中の生物生育阻害要因の作用は、放置条件での光 条件により変化するが、この変化は生物生育阻害要因毎に異なり、特定の光波長条 件で影響が増大するものや、光条件による影響を受けない生物生育阻害要因などが あること力 S理角军できる。
[0114] 従って、光条件を様々変化させて比較値を評価することにより、同一の水溶液サン プルから得られる試験計測溶液を異なる光条件に置レ、て、それらの計測結果を比較 して、生物生育阻害要因の定性に関する情報を得ることができる。例えば、図 27 (a) において示されるように、 TPNの場合、白色光および赤色光における場合と比較して 、緑色光において VCP1、 VCP2、及び VTP2の変化が減少する。このことに着目して、 他の生物生育阻害要因との判別が可能である。
[0115] 以下、本発明の好適な実施例についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれら の実施例に限定されるものではない。
[0116] (実施例 1)
評価対象の水溶液サンプルとして井戸水、湖沼水から得た水溶液、標準サンプノレ として蒸留水を用い、上述した標準的な測定条件のもとでの、比較値を算出した。図 28には、本実施例における比較値の算出結果を示す。図 28において、グラフ(a)は 、井戸水及び湖沼水を対象に算出された VCP1値、グラフ (b)は、同様に算出された VCP2値、グラフ(c)は、同様に算出された VTP2値を示すグラフである。
[0117] 図 28に示されるように、「井戸水」において、 VCP1値が 137.1%と増加した力 「湖沼 水」では顕著な変化が認められなかった。また、 VCP2値及び VTP2値に顕著な変化 は認められなかった。さらに、同一地点の井戸水について 12日間に 4回採水し計測を 行った結果、ほぼ同様に 120— 140%程度の VCP1値が得られた。
[0118] 本実施例の結果において、 VCP1値のみが 120— 140%程度となる生物生育阻害要 因として考えられる既知の化学物質は、 0.5ppb以下の極低濃度レベルの DCML;、アト ラジンなどの疎水性除草剤である。従って、試験に用いた井戸水には、 DCMUまたは アトラジンに類する疎水性化学物質系の農薬が含まれていると推測された。
[0119] (実施例 2)
評価対象の水溶液サンプルとして、実施例 1における井戸水及び蒸留水、 O. lppb 濃度の DCMUを含む水溶液について、標準的な測定条件のもとで、実施例 1と同様 にして比較値を算出した。 DCMUは、既知の疎水性有機物系除草剤の一つであり、 実施例 1における井戸水と評価値の変化の特徴が似ているものである。
[0120] また、井戸水、蒸留水、及び DCMUの各水溶液を吸着処理し、吸着処理された水 溶液を対象に VCP1値を算出することも行った。吸着には、高密度フィルタ濾過水( Millipore社 mili-Qにより濾過された水)により洗浄した後に乾燥させた活性炭を用い た。そして、蒸留水、井戸水、 O. lppb濃度 DCMUのそれぞれの水溶液 5mlに対し 0.8g の活性炭をカ卩えた後、 1時間緩やかに浸透した。この 3種の溶液をそれぞれ、 0.45 μ mのフィルタに濾過させて得られたものを対象に遅延蛍光量の測定を行った。
[0121] 図 29には、本実施例における VCP1値の算出結果を示す。図 29においては、蒸留 水、井戸水、 DCMUの各水溶液サンプノレについて算出された VCP1値と、吸着処理さ れたそれぞれの各水溶液サンプルについて算出された VCPl値を示す。図 29に示さ れるように、 VCP1値は、蒸留水から得られた結果に対し、「井戸水」で 117.1、「DCMU 」で 120.9となり、井戸水から得られた CP1の変化は、 O. lppb濃度の DCMUにおける変 化とほぼ同一の結果となった。
[0122] また、吸着前の蒸留水「蒸留水」の VCP1値 100に対する、活性炭吸着処理の後の 蒸留水「蒸留水(吸着後)」の VCP1値は、 99.7となり、活性炭吸着処理の VCP1の変 化に対する影響はほとんど無いと評価された。活性炭吸着処理前に VCP1の増加が 見られた「井戸水」と「DCMU」では、活性炭吸着処理後のそれぞれの VCP1値が、「 井戸水(吸着後)」で 95.5、「DCMU (吸着後)」で 96.3となり、「蒸留水」および「蒸留水 (吸着後)」と同等の値となった。この結果より、この井戸水には DCMUなど疎水性有 機物に類する物質が含まれているということが評価された。
[0123] 本発明による有害物質の評価方法及び有害物質の評価用キットは、上記した実施 形態及び実施例に限られるものではなぐ様々な変形が可能である。例えば、水溶 液サンプノレに混合される光合成サンプノレについては、一般には、上述したように、光 合成機能を有するものであって、遅延蛍光を発光可能なものを用いれば良い。
[0124] また、このような光合成サンプノレとしては、耐塩性藻類、耐アルカリ性藻類、及び耐 酸性藻類からなる群から選択される少なくとも一種力もなる光合成サンプルを用いる ことが好ましい。ここで、耐塩性藻類とは、塩水や海水などの高塩性の環境で生育可 能な藻類を指す。また、耐アルカリ性藻類、耐酸性藻類とは、極端な pH環境で生育 可能な藻類を指す。このような光合成サンプノレとしては、例えばスピルリナ(Spirulina) が挙げられる。
[0125] すなわち、光合成サンプノレとして、耐塩性藻類として知られるスピルリナ(Spirulina) 、ドナリエラ(Dunaliella)、耐アルカリ性を有するスピルリナ(Spirulina)、耐酸性を有す るユーグレナ(Euglena)や、その他の海洋や塩水湖に生息する藻類など、高塩環境 やアルカリ性 (高 pH)または酸性 (低 pH)環境に耐えられる藻類を使用した場合、そ れらの藻類に適した環境よりも塩濃度が低い淡水試料などを計測する際に、淡水性 藻類等を用いた場合に比べて以下の利点が生じる。
[0126] ここでは、一例として、高塩性、アルカリ性の環境に耐えられる藻類であるスピルリ ナを用いる場合について説明する。スピルリナは、高塩性の環境である塩水湖と、低 塩性の環境である淡水湖のどちらにも生息する藍藻類である。このため、スピルリナ を用いれば、塩水湖の環境に相当する高塩性培地(SOT培地)と、淡水湖の環境に 相当する低塩性培地 (MA培地)の両方の環境で、遅延蛍光を計測することができる
[0127] 一般に、試料となる水溶液サンプルは、河川や湖沼水、地下水、土壌抽出水など 様々な環境から採取される。このため、サンプルの塩濃度は均一ではなぐその結果 、 pHなど藻類の生育環境として重要な要素が均一ではない場合がある。これに対し て、試験対象となる水溶液サンプノレに調整溶液を混合して塩濃度、 pHを調整し、そ の後に光合成サンプノレと混合する方法が可能である。この場合、水溶液サンプルを 高塩性培地として調整することにより、低塩性培地の場合に比べて pHなどをより容易 に調整することができる。
[0128] 図 30は、高塩性培地及び低塩性培地を用いて水溶液サンプルを調整した場合の 調整例を示す表である。ここでは、水溶液サンプルとして、湖水、井戸水、水道水、 及び蒸留水を用いている。これらの調整例では、原水そのものの pHは、湖水で 7. 4 4、井戸水で 6. 03、水道水で 7. 07、蒸留水で 5. 46であり、そのサンプル間の標準 偏差は 0. 91であった。
[0129] これに対し、 5倍濃度の高塩性培地を調整溶液として調整を行った場合の pHは、 湖水で 9. 68、井戸水で 9. 71、水道水で 9. 72、蒸留水で 9. 69となった。このとき の標準偏差は 0. 02であり、原水に比べて水溶液サンプノレの違いによる pHの差が改 善した。一方、 5倍濃度の低塩性培地を調整溶液として調整を行った場合の pHは、 湖水で 8. 13、井戸水で 7. 77、水道水で 8. 14、蒸留水で 8. 29となった。このとき の標準偏差は 0. 22であり、原水に比べて改善はしたものの、高塩性培地に比べて 劣る結果となった。
[0130] 一般的な塩濃度に関しても、淡水環境に対して高塩濃度で調整する高塩性培地の 方が、低塩性培地に比べて原水における塩濃度の変動を改善しやすい。このように 、光合成サンプノレとして、例えば海洋や塩水湖に生息する藻類など、高塩濃度ゃァ ルカリ性または酸性環境に耐えられる藻類を使用した場合、それらの藻類に適した 環境よりも塩濃度が低い淡水サンプノレなどを計測する際において、淡水性藻類を用 レ、た場合に比べて、原水の pH、塩濃度などの変動を改善する上で利点がある。
[0131] また、遅延蛍光の計測対象となる溶液については、遅延蛍光の光量を計測する前 に均一化させることが好ましい。時間経過にしたがって計測溶液中の光合成サンプ ルが沈殿、浮上すると、光検出器の視野内における光合成サンプルの密度が変化し 、発光量の計測値が変化する。その結果、所定時間の放置や計測中の時間経過に より、その計測精度が低下する場合がある。これに対して、溶液を均一化することによ り、誤差の少ない有害物質の評価が可能となる。このような溶液の均一化については 、光合成サンプノレの分布密度を均一化するための安定化剤を用いることが好ましレ、 。また、有害物質の評価に用いられる評価用キットについては、光合成サンプルの分 布密度を均一化するための安定化剤を備えることが好ましい。このような安定化剤と しては、例えば、上述したように比重調整剤や増粘剤 (ゲル化剤など)などを用いるこ とができる。
[0132] 図 31は、溶液の均一化なし、及び増粘剤添加の条件での放置時間に対する遅延 蛍光量の変化を示すグラフである。ここでは、光合成サンプルとして藍藻スピルリナ( Spirulina platensis)を用い、図 5に関して上述した標準的測定条件と同様の条件下で 、放置時間を変えて遅延蛍光の光量の計測を行った。
[0133] 増粘剤の添加に関しては、「均一化なし」では、増粘剤に相当するゲル化剤として の寒天を添加せずに調整された計測溶液を用い、「増粘剤添加」では、増粘剤として の寒天を全体に対して 0. 1重量%となるように添加した計測溶液を用いた場合の計 測結果を示している。また、計測は、溶液の調整直後(0分)から 15分後まで放置時 間の経過にしたがって実施し、遅延蛍光量として光照射終了後 0.1秒から 0.5秒まで の遅延蛍光量積算量である CP1を求めた。
[0134] 図 31に示すように、増粘剤を含まなレ、「均一化なし」のグラフでは、放置時間の経 過に伴って CP1が低下している。これは、時間経過にしたがって光合成サンプルが沈 殿、浮上していくためである。これに対し、「増粘剤添加」のグラフでは、時間経過後 においても CP1の計測値に大きな変化はみられない。以上のことから、計測溶液につ いては、光合成サンプルを均一化する手段を講じた上で計測に用いることが、計測 精度を向上するために有効であることがわかる。
[0135] このような増粘剤は、光合成サンプルからの発光の計測を阻害、力べ乱せず、微弱 な発光を計測可能な条件で添加することが好ましい。具体的には、増粘剤としては、 光合成サンプルの均一化が可能な濃度において、蛍光や燐光を持たず、透明で光 合成サンプノレの発光を吸収しないものを用いることが好ましい。このような増粘剤の 例としては、低濃度の寒天ゃァガロース、メチルセルロース溶液などを用いることがで きる。また、計測前に光合成サンプルを均一化させる手段としては、増粘剤の添加の 他に、微細な網や格子構造により計測溶液中での光合成サンプノレの沈降、浮上を 抑制したり、あるいは、外部からの攪拌によって均一性を保持することも可能である。
[0136] また、遅延蛍光の光量等については、計測溶液中の光合成サンプルの濃度差によ り生じる測定誤差に対して、必要に応じて補正等を行うことが好ましい。すなわち、計 測に用いる光合成サンプルは、生物細胞または細胞内小器官、膜タンパク複合体な どを用レ、る性質上、その操作中や保存中に細胞生長 ·分裂による増加や死亡 ·分解 による減少により、量的変化を生じる場合がある。また、量的変化がない場合でも、遅 延蛍光の発光能力の変化や光量の時間的変化上の特徴などの質的変化が生じる 場合もある。
[0137] このような変化は、計測評価での誤差となるため、計測に先立って、使用する光合 成サンプノレに変化が生じていないかを評価する評価方法を用いることが有効である 。光合成サンプルの量的変化、質的変化を検出することにより、計測結果の精度が 管理される。このような評価方法により、光合成サンプルの異常が検出された場合に は、それが許容範囲にあるかどうかを判断し、必要に応じて計測者に対して何らかの 警告を示すなどの方法を用いることができる。
[0138] 上記した光合成サンプルの評価方法としては、例えば以下の(1)一(3)の方法があ る。 (1)光合成サンプノレの密度が、遅延蛍光の光量と比例関係を有する密度の範囲 であるかどうかを評価する。このような評価は、例えば、光合成サンプルの密度と遅延 蛍光の光量とにより作成される検量線を用いて行うことができる。 (2)光合成サンプル の密度に対する遅延蛍光の光量が、評価基準となる模範データと比較して変化して レ、なレ、かを評価する。例えば、光合成サンプノレの密度と遅延蛍光の光量とにより作 成される検量線において、その検量線に示される光合成サンプノレの密度当たりの発 光量の関係式に、一定の誤差範囲で相関が得られるかについて評価を行う。 (3)遅 延蛍光の光量の時間的変化が評価基準となる模範データと比較して変化していない かを評価する。例えば、模範データの光量の時間的変化に対する差や、遅延蛍光の 光量の時間的変化における特徴点の光量及び特徴点の現れる時間、あるいは、 2箇 所の特徴点の間の光量変化の傾き、特定の時間範囲での光量変化の傾きなどを用 いて評価を行うことができる。
[0139] 上記した光合成サンプルの評価において、模範データとしては、例えば、光合成サ ンプルの吸光度や光散乱量、遅延蛍光光量、及びその時間的変化などのデータが 用いられる。また、このような模範データや許容範囲を示すデータについては、あら 力、じめ計測装置または解析装置に記憶されているデータ、または光合成サンプルの 調整時に記録されたデータなどを用いることができる。また、同様の評価を水溶液サ ンプルと混合前の光合成サンプノレにっレ、て実施すれば、その結果から標準計測溶 液などでの計測結果を推測することができる。このような場合にも、使用するデータに ついては上記と同様である。
[0140] また、光合成サンプノレを評価することにより、その変化が検出された場合、必要に 応じて計測に対して補正を行うことが好ましい。そのような補正方法の例としては、光 合成サンプノレに生じている変化が量的変化の場合、上記した(1)の評価方法により 、光合成サンプルの密度が、遅延蛍光の光量と比例関係を有する密度の範囲である ならば、密度が異なる光合成サンプルを用いた各計測結果において、遅延蛍光の光 量を光合成サンプルの密度によって規格化し、比較すること力 Sできる。このような場合 の規格化方法としては、例えば、遅延蛍光の光量を光合成サンプルの密度によって 除算する方法などがある。
[0141] 本発明による有害物質の評価方法について、さらに説明する。
[0142] 上記した実施形態では、主として、(1)水溶液サンプルに光合成サンプルを混合し て試験計測溶液を調製し、試験計測溶液を所定の放置時間放置し、試験計測溶液 に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第 1のス テツプと、(2)有害物質が存在しない標準サンプルに、光合成サンプノレを混合して標 準計測溶液を調製し、標準計測溶液を所定の放置時間放置し、標準計測溶液に所 定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第 2のステツ プと、 (3)第 1のステップ及び第 2のステップでそれぞれ計測された遅延蛍光の光量 に基づいて評価値を算出し、評価値の比較値を求めることにより、水溶液サンプル中 に存在する有害物質を評価する第 3のステップとを備える有害物質の評価方法につ いて説明している。
[0143] このような有害物質の評価方法は、一般には、(1)水溶液サンプルに光合成サンプ ルを混合して試験計測溶液を調製し、試験計測溶液を所定の放置時間放置し、試 験計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測 する第 1のステップと、 (2)比較サンプルに光合成サンプノレを混合して調製された比 較計測溶液を所定の放置時間放置し、比較計測溶液に所定の照射時間光を照射し た後に、発生する遅延蛍光の光量を計測した比較計測結果を用意する第 2のステツ プと、 (3)第 1のステップ及び第 2のステップでそれぞれ取得された遅延蛍光の光量 に基づいて評価値を算出し、評価値の比較値を求めることにより、水溶液サンプル中 に存在する有害物質を評価する第 3のステップとによって構成することができる。
[0144] また、上述したように、このような評価方法において、評価値は、第 1のステップ及び 第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点における経過 時間であることが好ましい。あるいは、評価値は、第 1のステップ及び第 2のステップ で取得された遅延蛍光の光量の時間的変化であり、比較値は、時間的変化の差をと つた値であることが好ましレ、。
[0145] ここで、第 2のステップで用いられる比較サンプル、及び比較計測結果については 、様々なものを用いて良レ、。例えば、第 2のステップにおいて、比較サンプルとして比 較対象となる標準サンプノレを用レ、、標準サンプルに光合成サンプノレを混合して比較 計測溶液である標準計測溶液を調製し、標準計測溶液を所定の放置時間放置し、 標準計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計 測して、比較計測結果を取得する方法を用いることができる。この場合、標準サンプ ノレとしては、図 3に関して上述したように、有害物質が実質的に存在しないサンプル を用いることが好ましい。 [0146] あるいは、第 2のステップにおいて、比較サンプルとして他の水溶液サンプルを用 レ、、水溶液サンプノレに光合成サンプルを混合して調製された比較計測溶液である他 の試験計測溶液について取得された計測結果を比較計測結果として用意する方法 を用いることができる。この場合、比較計測結果としては、例えば、前回の計測結果を 用いることができる。
[0147] また、第 2のステップでの比較計測結果の取得については、第 1のステップと同様に 、比較計測溶液に対して遅延蛍光の光量の計測を行うことによって比較計測結果を 用意する方法を用いることができる。あるいは、第 2のステップにおいて、比較計測結 果として、比較計測溶液についてあらかじめ取得された計測結果を比較計測結果と して用意する方法を用いても良い。このような場合、あらかじめ取得した比較計測結 果をメモリ等に記憶しておき、必要に応じてデータを読み出して用いることが好ましい 。このように、第 2のステップにおいて用いられる比較サンプル、比較計測溶液、及び 比較計測結果の取得方法等については、様々な変形が可能である。
[0148] (有害物質の連続的な評価方法)
本発明による方法を用いた有害物質の連続的な評価方法 (モニタリング方法)につ いて説明する。このような評価方法を用いれば、河川や地下水などの水溶液サンプ ルを連続的に計測して、その有害性の変化を監視することができる。
[0149] 図 32は、有害物質の連続的な評価方法の一例を示す模式図である。この評価方 法では、まず 1回目計測として、通常の手順にしたがって、標準計測溶液の計測と、 河 J 11などから採取した水を水溶液サンプルとした試験計測溶液の計測とを行う。そし て、それらの結果を比較して、河川水に含まれる有害物質の評価を行う。この際、標 準計測溶液の計測結果 Cl、試験計測溶液の計測結果 SI、及びそれらの比較結果 に対応する水溶液サンプノレの有害性の評価結果 D1を記録しておく。
[0150] その後、計測時間間隔として設定された所定の時間経過後に、 2回目計測として、 再び、標準計測溶液の計測と、新たに採取した河川水を水溶液サンプルとした試験 計測溶液の計測と、それらの結果の比較とを行い、標準計測溶液の計測結果 C2、 試験計測溶液の計測結果 S2、及び有害性の評価結果 D2を記録する。
[0151] その後同様に、所定の時間経過毎に計測を実施し、例えば、 n回目計測において 、標準計測溶液の計測結果 Cn、試験計測溶液の計測結果 Sn、及び有害性の評価 結果 Dnを記録する。これらの記録された水溶液サンプルの有害性の評価結果 D1、 D2、 · · ·、 Dnを連続的に比較することにより、河川水などにおける有害物質による汚 染の変化を監視することができる。
[0152] 図 33は、有害物質の連続的な評価方法の他の例を示す模式図である。この評価 方法では、まず上記と同様の手順で 1回目計測を実施し、標準計測溶液の計測結果 Cl、及び試験計測溶液の計測結果 SIを記録する。また、この際、それらの比較結 果に対応する水溶液サンプルの有害性の評価結果 D1についても、必要に応じて記 録しておく。
[0153] その後、所定の時間経過後に、 2回目計測として、新たに採取した河川水を水溶液 サンプルとした試験計測溶液の計測のみを行い、その計測結果 S2を記録する。また 、ここでは、この 2回目計測における試験計測溶液の計測結果 S2と、 1回目計測にお ける試験計測溶液の計測結果 S1との比較を行い、それらの比較結果に対応する水 溶液サンプノレの有害性の評価結果 E2を記録する。この評価結果 E2は、 1回目計測 力 2回目計測までの間に、水溶液サンプノレとなる河川水などの有害性がどのくらい 変化したかを簡易に示してレ、る。
[0154] その後同様に、所定の時間経過毎に計測を実施し、例えば、 n回目計測において 、試験計測溶液の計測結果 Sn、及び n - 1回目計測の計測結果 Sn - 1との比較結果 に対応する有害性の評価結果 Enを記録する。これらの記録された水溶液サンプノレ の有害性の評価結果 E2、 E3、 · · ·、 Enを連続的に比較することにより、河川水などに おける有害物質による汚染の変化を簡便に監視することができる。
[0155] 図 32及び図 33に示した評価方法のように、計測時期を変えて連続的に有害物質 の評価を行う場合、 1回目計測と 2回目以降の計測との間での時間経過により、光合 成サンプノレに変化が生じる場合がある。光合成サンプルの変化とは、例えば、光合 成サンプルの劣化、分解、死亡、増殖などによる光合成サンプルの密度の変化のよう な量的変化、あるいは遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点における経過時間や 遅延蛍光の光量の変化のような質的変化などである。このような光合成サンプノレの変 化については、遅延蛍光の光量の計測、及び光合成サンプルの細胞密度の計測の 実施後に、以下のような補正を行うことが可能である。
[0156] まず、光合成サンプルの密度の量的変化が生じた場合、計測に用いる光合成サン プノレについて細胞密度と遅延蛍光の光量とが比例関係にある範囲にあることがあら 力、じめ調べられていれば、吸光度または光散乱量などにより計測された光合成サン プノレの細胞密度を元に補正を行うことができる。
[0157] 具体的な補正方法としては、例えば、 1回目計測において、計測溶液からの遅延蛍 光の光量とともにサンプノレの細胞密度を計測する。また、 2回目計測においても、計 測溶液からの遅延蛍光の光量とともにサンプノレの細胞密度を計測する。ここで、 1回 目計測及び 2回目計測のそれぞれの計測結果について、遅延蛍光の光量を細胞密 度で除算する補正を行えば、 1回目計測と 2回目計測との間で光合成サンプルの細 胞密度が変化した場合であっても、それらを比較することが可能となる。
[0158] また、遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点での経過時間や遅延蛍光の光量な どの質的変化が生じた場合、計測に用いる光合成サンプノレについて遅延蛍光の光 量の時間的変化が模範データと比較して許容範囲内にあることがあらかじめ調べら れていれば、それらの特徴点同士の位置関係などを元に補正を行うことができる。
[0159] 具体的な補正方法の例について、図 34を参照して説明する。図 34は、遅延蛍光 の光量の時間的変化の例を示す図であり、グラフ(a)は 1回目計測で取得された遅 延蛍光量の時間的変化を示し、グラフ (b)は 2回目計測で取得された遅延蛍光量の 時間的変化を示している。
[0160] これらの遅延蛍光量の時間的変化について、例えば、グラフ(a)に示す 1回目計測 での特徴点 A、 Bについて、その経過時間 al、 blを求める。同様に、グラフ(b)に示 す 2回目計測での特徴点 A、 Bについて、その経過時間 a2、 b2を求める。また、これ らの計測結果に対し、 1回目計測の結果から経過時間 alに対する blの比率 (blZa
1)を求める。同様に、 2回目計測の結果から経過時間 a2に対する b2の比率 (b2Za
2)を求める。そして、これらの比率(blZal)及び(b2/a2)の比較を行うことにより、 特徴点の位置関係を元にした補正を行うことができる。
[0161] (Curve値の解析方法)
有害物質の評価に用いられる評価値及び比較値については、上記したように、そ の一例として、第 1のステップ及び第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時 間的変化を評価値とし、その時間的変化の差をとつた値を比較値とすることができる 。このような比較値としては、上記した実施形態では、試験計測溶液及び標準計測溶 液から得られた遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつて得られた Curve値を挙げ てレ、る。この Curve値の解析方法にっレ、ては、試験計測溶液及び標準計測溶液に対 して取得された具体的な計測結果に応じて、様々な解析方法を用いることができる。
[0162] 遅延蛍光の光量の時間的変化の差に相当する Curve値については、計測結果で ある遅延蛍光の光量の時間的変化に特徴点が存在する場合と、特徴点が存在しな い場合とに分けて考えることができる。
[0163] 遅延蛍光の光量の時間的変化を示す遅延蛍光減衰カーブ(図 5参照)に特徴点が 存在する場合、上記したように、その特徴点における発光量や経過時間等に着目し て評価を行うことが可能である。また、 Curve値を用いる場合には、 2つの特徴点間、 または計測始点と特徴点との間に着目して Curve値を求め、それを比較値として評価 を行うことが好ましい。あるいは、特徴点を考慮せずにその全体または所定範囲につ いて Curve値を求めても良い。
[0164] 一方、遅延蛍光減衰カーブに特徴点が存在しない場合、その全体または所定範囲 について Curve値を求め、それを比較値として評価を行うことができる。ここで、遅延 蛍光の光量の時間的変化において、その各計測点 nにおける Curve値は、(計測点 n における試験計測溶液の発光量) - (計測点 nにおける標準計測溶液の発光量)によ つて求められる。
[0165] また、光合成サンプルから発する遅延蛍光は、一般的には、図 5に例示したように、 励起後時間が早い時間域では発光量が多ぐ遅い時間域では減衰によって発光量 が少ない。このため、 Curve値を算出する時間域が異なると、発光量の差の大きさが 異なることとなり、異なる時間域での変化を評価することが難しい場合がある。
[0166] このような場合には、試験計測溶液及び標準計測溶液に対して取得された遅延蛍 光の光量の時間的変化の差をとつた値である Curve値について、さらに試験計測溶 液または標準計測溶液に対して取得された遅延蛍光の光量 (好ましくは、標準計測 溶液に対して取得された遅延蛍光の光量)との比をとつて標準化した VCurve値を比 較値として用いることが有効である。これにより、異なる時間域での変化を評価するこ とが容易化される。ここで、遅延蛍光の光量の時間的変化において、その各計測点 n における VCurve値は、(計測点 nにおける Curve値) / (計測点 nにおける標準計測 溶液の発光量) X 100によって求められる。
[0167] なお、上記した VCurve値を特徴点が存在する遅延蛍光減衰カーブに適用する場 合には、特徴点間、または計測始点と特徴点との間に着目して VCmve値を求めても 良ぐあるいは、特徴点を考慮せずにその全体または所定範囲について VCurve値を 求めても良い。
[0168] また、遅延蛍光減衰カーブにおける特徴点の有無に関しては、一般には、第 1のス テツプまたは第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化が特徴点を 有し、第 3のステップにおいて、一の特徴点と、計測始点または他の特徴点との間の 所定範囲について遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつた値を比較値として有 害物質を評価する方法を用いることができる。また、遅延蛍光の光量の時間的変化 に特徴点がない場合には、その全体または所定範囲について遅延蛍光の光量の時 間的変化の差をとつた値を比較値とすることができる。
[0169] 図 35は、遅延蛍光減衰カーブに特徴点が存在する場合の Curve値の算出方法の 例について示す図である。標準計測溶液での遅延蛍光減衰カーブと、試験計測溶 液での遅延蛍光減衰カーブとを比較する場合、それらの減衰カーブで特徴点の位 置が異なる場合がある。このような場合において、特徴点の影響を排して有害物質の 評価を行うためには、 Curve値の算出範囲として特徴点が含まれない時間域を設定 することが好ましい。
[0170] 図 35のグラフ(a) (c)は、注目する 2つの特徴点を励起後時間 0秒の最大値の点
(計測始点)、及びその直後に現れる極小値の点として、標準計測溶液と試験計測溶 液とで遅延蛍光減衰カーブの特徴点の位置が異なる場合の Curve値算出の時間域 の設定の例を示している。図 35のグラフ(a)は、標準計測溶液及び試験計測溶液の 遅延蛍光減衰カーブのうちで標準計測溶液の減衰カーブのみに特徴点が存在する 場合を示している。この場合、 Curve値の算出範囲は、計測始点から標準計測溶液 での極小値の出現点までの時間範囲「a」を選択することが好ましい。 [0171] また、図 35のグラフ(b)は、試験計測溶液の遅延蛍光減衰カーブでの極小点が、 標準計測溶液での極小点よりも早い時間に現れた場合を示している。この場合、 Curve値の算出範囲は、計測始点から標準計測溶液での極小値の出現点までの時 間範囲「b」と、計測始点から試験計測溶液での極小値の出現点までの時間範囲「c」 とを比較し、双方に共通する時間域である時間範囲「c」を選択することが好ましい。
[0172] また、図 35のグラフ(c)は、試験計測溶液の遅延蛍光減衰カーブでの極小点が、 標準計測溶液での極小点よりも遅い時間に現れた場合を示している。この場合、 Curve値の算出範囲は、計測始点から標準計測溶液での極小値の出現点までの時 間範囲「d」と、計測始点から試験計測溶液での極小値の出現点までの時間範囲「e」 とを比較し、双方に共通する時間域である時間範囲「d」を選択することが好ましい。
[0173] 図 36は、遅延蛍光減衰カーブに特徴点が存在しない場合の Curve値の算出方法 の例について示す図である。ここでは、光合成サンプルとして、光強度 50 μ mol/m2/s 、白色蛍光灯下で一般的な方法で育成された緑藻類である Selenastmm
capricornutumを用いた標準計測溶液の遅延蛍光減衰カーブを示してレ、る。サンプ ルの調整については、 Spirulina platensisの場合と同様の手順で行っている。図 36の グラフでは、遅延蛍光減衰カーブに明確な特徴点が現れていなレ、。このような場合、 特徴点に着目した評価ができないため、 Curve値を用いた評価が有効である。
[0174] 図 37は、 (a)シマジン濃度及び (b)ジクロロフエノール濃度を変化させた場合の
Curve値を示すグラフである。具体的には、図 37のグラフ(a)は、除草剤の一種であ るシマジンを濃度 25、 50、 lOOppbで曝露した試験計測溶液の計測結果と、標準計 測溶液の計測結果とから、励起後時間 0. 1秒一 50秒の時間域について算出された Curve値を示している。また、グラフ(b)は、ジクロロフェノールを濃度 1、 5、 lOppmで 曝露した試験計測溶液の計測結果と、標準計測溶液の計測結果とから、励起後時 間 0. 1秒一 50秒の時間域について算出された Curve値を示している。
[0175] これらのうち、シマジンに関するグラフ(a)では、シマジン曝露濃度に応じて Curve 値が変化し、濃度の増加に伴って励起後時間 0. 1秒付近でプラス側に変化した。ま た、励起後時間 0. 5秒以降にも、わずかにマイナス側への変化が認められた。また、 ジクロロフヱノールに関するグラフ(b)では、ジクロロフヱノール曝露濃度に応じて Curve値が変化し、濃度の増加に伴って励起後時間 0. 2— 10秒付近でマイナス側 への変化が認められた。
[0176] 以上の結果から、遅延蛍光減衰カーブに明確な特徴点が存在しない場合でも、
Curve値を算出することにより、有害物質の影響を評価できることがわかる。また、この ような Curve値では、変化が現れる時間域、及びそのプラス ·マイナスの変化の方向 が有害物質によって異なるため、検出された有害物質の種類及び作用等を特定する 上で有用である。
[0177] 図 38は、 (a)シマジン濃度及び (b)ジクロロフヱノール濃度を変化させた場合の
VCurve値を示すグラフである。具体的には、図 38のグラフ(a)は、シマジンを濃度 25 、 50、 lOOppbで曝露した試験計測溶液の計測結果と、標準計測溶液の計測結果と から、励起後時間 0. 1秒一 50秒の時間域について算出された VCurve値を示してい る。また、グラフ(b)は、ジクロロフヱノールを濃度 1、 5、 lOppmで曝露した試験計測 溶液の計測結果と、標準計測溶液の計測結果とから、励起後時間 0. 1秒一 50秒の 時間域について算出された VCurve値を示している。また、 VCurve値については、具 体的には、上記したように、時間的変化の差に相当する Curve値を、標準計測試料で の発光量との比率として標準化した例を示してレ、る。
[0178] これらのうち、シマジンに関するグラフ(a)では、シマジン曝露濃度に応じて VCurve 値が変化し、濃度の増加に伴って励起後時間 0. 1— 0. 3秒付近でプラス側に変化 した。また、励起後時間 15秒付近を中心に、 0. 4秒一 50秒の幅広い範囲でマイナス 側への変化が認められた。また、ジクロロフエノールに関するグラフ(b)では、ジクロロ フエノール曝露濃度に応じて VCurve値が変化し、濃度の増加に伴って励起後時間 の全域(0. 1 50秒付近)で幅広くマイナス側への変化が認められた。
[0179] 以上の結果から、遅延蛍光減衰カーブに明確な特徴点が存在しない場合でも、
VCurve値を算出することにより、有害物質の影響を評価できることがわかる。また、こ のような VCurve値では、変化が現れる時間域、及びそのプラス.マイナスの変化の方 向が有害物質によって異なるため、検出された有害物質の種類及び作用等を特定 する上で有用である。また、 VCurve値では、 Curve値に比べて異なる時間域の変化 を比較することが容易である。 [0180] (試験計測溶液の順化処理)
次に、試験計測溶液に対して計測前に行われる順化処理にっレ、て説明する。図 5 における標準的測定条件に関して上述したように、光合成サンプルを計測光条件に 順応させるための予備的な光照射、及び所定時間の暗黒下での待機 (暗中待機)に よる順化処理 (順化ステップ)が行われる場合がある。
[0181] 一般には、このような順化ステップを含む有害物質の評価方法は、試験対象の水 溶液サンプノレ中に存在する有害物質を評価する有害物質の評価方法であって、 (a) 水溶液サンプノレに光合成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測溶液を 調製する調製ステップと、 (b)試験計測溶液を所定の放置時間放置する放置ステツ プと、(c)試験計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の 光量を計測する計測ステップと、 (d)計測ステップで取得された遅延蛍光の光量に基 づいて、水溶液サンプル中に存在する有害物質を評価する評価ステップと、(e)計測 ステップの前に、試験計測溶液に対して所定の待機時間での暗中待機を行う暗中待 機ステップ、または試験計測溶液に対して予備的な光照射及び所定の待機時間で の暗中待機を行う予備照射ステップのいずれか一方を含む順化ステップとを備えるこ とが好ましい。
[0182] このような有害物質の評価方法では、評価対象の水溶液サンプルに混合された光 合成サンプルから発せられる遅延蛍光の光量の時間的変化において得られる特徴 から、複数の有害物質を同時に、かつ精度良く定性、定量することができる。また、遅 延蛍光の光量を計測して評価することにより、計測時間を全体的に短縮化することが できる。また、計測ステップの前に試験計測溶液に対して順化ステップを行うことによ り、遅延蛍光の計測、及びその計測結果による有害物質の評価の精度を向上するこ とができる。
[0183] このように、計測ステップの前に順化ステップを実施する場合、暗中待機ステップに おいて、所定の待機時間は 30秒以上 1時間以下の時間であることが好ましい。また、 予備照射ステップにおける予備的な光照射の時間及び暗中待機の時間の比が、計 測ステップにおける光の照射の時間及び喑中待機の時間の比と等しいことが好まし レ、。以下、このような順化ステップについて具体的に説明する。 [0184] 有害物質の評価に用いられる遅延蛍光は、光合成サンプルに吸収された光ェネル ギ一が、様々な化学反応に分配された後に再び放出される現象である。このため、 遅延蛍光の計測(計測ステップ)にいたるまでの光合成サンプノレの光や温度などに 関する種々の環境の履歴が、遅延蛍光の計測結果に重大な影響を及ぼす場合があ る(例えば、非特許文献 2参照)。したがって、遅延蛍光の計測結果を水質検査等の 有害物質の評価に利用するためには、光合成サンプルの環境履歴を制御して再現 性の良レ、条件で遅延蛍光の計測を行うことが好ましレ、。
[0185] 図 39は、遅延蛍光の計測回数による CP1の変化を示すグラフである。ここでは、光 合成有効放射に換算して 5 x mol/m2/Sの白色蛍光灯下で 15分間放置した標準計測 溶液について、計測条件として 665nm、 0.8mWん m2の光を 2秒照射後に、喑中で 60 秒間、遅延蛍光の光量を計測することとし、この計測を 5回連続で実施してそれぞれ につレ、て CP1値を求めてレ、る。
[0186] この計測結果では、 1回目計測で 15217、 2回目計測で 11693、 3回目計測で 10098 、 4回目計測で 9690、 5回目計測で 9627の CP1値が得られている。これらの CP1値に 示すように、 CP1値は特に 1回目力 3回目の計測結果でばらつきがある。また、遅延 蛍光の計測を繰り返すことにより、ある値 (例えば 3回目力 5回目での値)で計測結 果が安定し、再現性が向上していくことがわかる。これは、光合成サンプル内の光ェ ネルギ一の分配力 S、放置条件から計測条件に順応していくことを示している。
[0187] 以上の結果からわかるように、計測溶液を所定の放置時間放置する放置ステップ の後に、続けて遅延蛍光の計測ステップを行った場合には、遅延蛍光の計測の再現 性が充分に得られず、その計測結果にばらつきを生じる場合がある。図 39に示した 例では、計測回数が 1回目から 3回目の計測結果では、水質検査の精度は充分には 得られなレ、。また、何回目の計測結果から充分な再現性が得られているかの判断は 煩雑であり、また、その計測結果に計測者の個人差が反映されてしまうことも考えられ る。
[0188] このような場合について、光合成サンプルに対する環境履歴の制御方法を検討し た結果、放置ステップと計測ステップとの間に、光合成サンプノレの環境履歴を制御す るための順化ステップを付加することによって、再現性の良い計測結果が得られるこ とがわ力 た。このような順化ステップを行うことにより、例えば図 39の計測結果にお いて、 3回目以降の計測結果を 1回目から得ることが可能となる。
[0189] 計測溶液を計測条件に順化させる順化ステップは、(1)計測溶液に対して所定の 待機時間での暗中待機を行う暗中待機ステップ、または(2)試験計測溶液に対して 予備的な光照射及び所定の待機時間での暗中待機を行う予備照射ステップのいず れカ または両ステップを放置ステップと計測ステップとの間に付カ卩することによって 達成される。
[0190] 図 40は、様々な順化条件において遅延蛍光の計測を 3回行った結果における計 測精度を示す表である。具体的には、様々な順化条件において 3回連続の計測を行 レ、、その標準偏差を 3回計測の平均で除算して 100倍したものを計測精度(%)とし て算出している。すなわち、図 40に示す計測精度は、 3回の計測において得られた CP1値力 それらの平均に対してどの程度の誤差を持っている力、を表している。
[0191] また、ここでは、光合成有効放射に換算して 5 /i mol/m2/sの白色蛍光灯下で 15分 間放置した標準計測溶液にっレ、て、計測条件として 665nm、 0.8mWん m2の光を 2秒 照射後に、暗中で 60秒間、遅延蛍光の光量を計測することとし、この計測を 3回実施 して本計測としている。そして、その本計測の実施前に様々な順化条件 (予備照射条 件)で順化処理を行って、それぞれにつレ、て 3回計測結果での計測精度を求めてレ、 る。
[0192] 順化条件としては、本計測の直前に計測条件と同じ手順で 665nm、 0.8111\¥ん1112の 光を 2秒照射後に暗中で 60秒間待機させたものを「計測条件 1回」、同様の手順を 2 回繰り返したものを「計測条件 2回」とした。また、光照射をせずに計測条件と同じ時 間喑中で待機させたものを「喑中 1回」、喑中待機を 2回繰り返したものを「喑中 2回」 とした。また、計測条件と同じ時間光を照射したものを「光 1回」、光を 30秒照射後に 暗中で 30秒間待機させたものを「光 30喑 30」、光を 1秒照射後に暗中で 30秒間待機 させたものを「光 1喑 30」、順化処理を行わないものを「順化条件なし」とした。
[0193] その結果、計測溶液に対する順化条件としては、計測条件と同じ光照射一暗中待 機を 1一 2回繰り返すか、または、光照射をせずに計測条件と同じ時間暗中で待機を 1一 2回繰り返すこと力 順化処理として適していることがわかった。図 40に示す例で は、順化条件の時間が同じ「計測条件 2回」と「暗中 2回」での計測精度はそれぞれ 3 . 6と 4. 8、「計測条件 1回」と「暗中 1回」での計測精度はそれぞれ 10. 6と 14. 2であ る。また、暗中待機のみで順化処理を行う場合に比べて、計測条件と同じ光照射ー喑 中待機を実施する方が、より効果的に計測溶液を計測環境に順化できることがわか つた。
[0194] 以上の結果より、上記した喑中待機ステップ、または予備照射ステップのいずれか
、または両ステップを放置ステップと計測ステップとの間に付加することにより、その後 に実施する遅延蛍光の計測精度を向上させることができる。
産業上の利用可能性
[0195] 本発明は、短時間でかつ幅広い有害物質の分析を行うことが可能な有害物質の評 価方法、及び有害物質の評価用キットとして利用可能である。

Claims

請求の範囲
[1] 試験対象の水溶液サンプル中に存在する有害物質を評価する有害物質の評価方 法であって、
前記水溶液サンプルに光合成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測 溶液を調製し、前記試験計測溶液を所定の放置時間放置し、前記試験計測溶液に 所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第 1のステ ップと、
比較サンプノレに前記光合成サンプルを混合して調製された比較計測溶液を前記 所定の放置時間放置し、前記比較計測溶液に前記所定の照射時間光を照射した後 に、発生する遅延蛍光の光量を計測した比較計測結果を用意する第 2のステップと、 前記第 1のステップ及び前記第 2のステップでそれぞれ取得された遅延蛍光の光 量に基づいて評価値を算出し、前記評価値の比較値を求めることにより、前記水溶 液サンプノレ中に存在する有害物質を評価する第 3のステップとを備え、
前記評価値は、前記第 1のステップ及び前記第 2のステップで取得された遅延蛍光 の光量の時間的変化の特徴点における経過時間であることを特徴とする有害物質の 評価方法。
[2] 試験対象の水溶液サンプル中に存在する有害物質を評価する有害物質の評価方 法であって、
前記水溶液サンプルに光合成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測 溶液を調製し、前記試験計測溶液を所定の放置時間放置し、前記試験計測溶液に 所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光量を計測する第 1のステ ップと、
比較サンプノレに前記光合成サンプルを混合して調製された比較計測溶液を前記 所定の放置時間放置し、前記比較計測溶液に前記所定の照射時間光を照射した後 に、発生する遅延蛍光の光量を計測した比較計測結果を用意する第 2のステップと、 前記第 1のステップ及び前記第 2のステップでそれぞれ取得された遅延蛍光の光 量に基づいて評価値を算出し、前記評価値の比較値を求めることにより、前記水溶 液サンプノレ中に存在する有害物質を評価する第 3のステップとを備え、 前記評価値は、前記第 1のステップ及び前記第 2のステップで取得された遅延蛍光 の光量の時間的変化であり、前記比較値は、前記時間的変化の差をとつた値である ことを特徴とする有害物質の評価方法。
[3] 前記第 1のステップまたは前記第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間 的変化が特徴点を有し、前記第 3のステップにおいて、一の特徴点と、計測始点また は他の特徴点との間の所定範囲について遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつ た値を前記比較値として有害物質を評価することを特徴とする請求項 2記載の有害 物質の評価方法。
[4] 前記第 3のステップにおいて、前記第 1のステップ及び前記第 2のステップで取得さ れた遅延蛍光の光量の時間的変化の差をとつた値について、さらに前記第 1のステ ップまたは前記第 2のステップで取得された遅延蛍光の光量の時間的変化との比を とった値を前記比較値として有害物質を評価することを特徴とする請求項 2または 3 記載の有害物質の評価方法。
[5] 前記第 2のステップにおいて、前記比較サンプルとして比較対象となる標準サンプ ルを用い、前記標準サンプルに前記光合成サンプルを混合して前記比較計測溶液 である標準計測溶液を調製し、前記標準計測溶液を前記所定の放置時間放置し、 前記標準計測溶液に前記所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の 光量を計測して、前記比較計測結果を取得することを特徴とする請求項 1一 4のいず れか一項記載の有害物質の評価方法。
[6] 前記第 2のステップにおいて、前記比較サンプノレとして他の水溶液サンプルを用い 、前記他の水溶液サンプルに前記光合成サンプノレを混合して調製された前記比較 計測溶液である他の試験計測溶液について取得された計測結果を前記比較計測結 果として用意することを特徴とする請求項 1一 4のいずれか一項記載の有害物質の評 価方法。
[7] 前記第 2のステップにおいて、前記比較計測結果として、前記比較計測溶液につ レ、てあらかじめ取得された計測結果を前記比較計測結果として用意することを特徴と する請求項 1一 6のいずれか一項記載の有害物質の評価方法。
[8] 前記第 1のステップ及び前記第 2のステップにおいては、計測毎に光条件を変化さ せて、前記試験計測溶液及び前記比較計測溶液を所定の放置時間放置し、 前記第 3のステップにおいては、前記光条件に応じた前記比較値の変化を評価す ることを特徴とする請求項 1一 7のいずれか一項記載の有害物質の評価方法。
[9] 前記試験計測溶液中及び前記比較計測溶液中における前記光合成サンプルの 密度は、遅延蛍光の光量と比例関係を有する密度の範囲であることを特徴とする請 求項 1一 8のいずれか一項記載の有害物質の評価方法。
[10] 前記第 1のステップ及び前記第 2のステップにおいては、遅延蛍光の光量を計測す る前に、前記試験計測溶液及び前記比較計測溶液を均一化させることを特徴とする 請求項 1一 9のいずれか一項記載の有害物質の評価方法。
[11] 前記光合成サンプルは、耐塩性藻類、耐アルカリ性藻類、及び耐酸性藻類からな る群から選択される少なくとも一種からなることを特徴とする請求項 1一 10のいずれか 一項記載の有害物質の評価方法。
[12] 前記光合成サンプルは、スピルリナであることを特徴とする請求項 11記載の有害物 質の評価方法。
[13] 試験対象の水溶液サンプル中に存在する有害物質を評価する有害物質の評価方 法であって、
前記水溶液サンプルに光合成機能を有する光合成サンプルを混合して試験計測 溶液を調製する調製ステップと、
前記試験計測溶液を所定の放置時間放置する放置ステップと、
前記試験計測溶液に所定の照射時間光を照射した後に、発生する遅延蛍光の光 量を計測する計測ステップと、
前記計測ステップで取得された遅延蛍光の光量に基づレ、て、前記水溶液サンプル 中に存在する有害物質を評価する評価ステップと、
前記計測ステップの前に、前記試験計測溶液に対して所定の待機時間での暗中 待機を行う暗中待機ステップ、または前記試験計測溶液に対して予備的な光照射及 び所定の待機時間での暗中待機を行う予備照射ステップのいずれか一方を含む順 化ステップと
を備えることを特徴とする有害物質の評価方法。
[14] 前記暗中待機ステップにおいて、前記所定の待機時間は 30秒以上 1時間以下の 時間であることを特徴とする請求項 13記載の有害物質の評価方法。
[15] 前記予備照射ステップにおける予備的な光照射の時間及び暗中待機の時間の比 が、前記計測ステップにおける光の照射の時間及び暗中待機の時間の比と等しいこ とを特徴とする請求項 13または 14記載の有害物質の評価方法。
[16] 試験対象の水溶液サンプル中に存在する有害物質を評価するための有害物質の 評価用キットであって、
前記水溶液サンプルに混合される光合成サンプルと、
前記水溶液サンプノレの塩濃度及び pHを調整するための混合塩類と、 前記光合成サンプルと前記混合塩類とを、前記水溶液サンプルに分離して混合さ せる混合手段と、
を備えることを特徴とする有害物質の評価用キット。
[17] 前記光合成サンプノレの分布密度を均一化するための安定化剤を備えることを特徴 とする請求項 16記載の有害物質の評価用キット。
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