WO2005023111A1

WO2005023111A1 - グルコースセンサおよびグルコース濃度測定装置

Info

Publication number: WO2005023111A1
Application number: PCT/JP2004/012625
Authority: WO
Inventors: Koji Sode
Original assignee: Koji Sode
Priority date: 2003-09-02
Filing date: 2004-09-01
Publication date: 2005-03-17
Also published as: EP1661516B1; US7497940B2; US20090177067A1; US8277636B2; CN101558992B; CN1845705A; EP1661516A1; US20060258959A1; CN101558992A; CN100479750C; EP1661516A4; JP4359595B2; JPWO2005023111A1

Abstract

　本発明は、グルコース脱水素酵素を導体成分に固定化した電極（32）を有するグルコースセンサ（２）に関する。グルコース脱水素酵素としては、グルコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットと、触媒活性サブユニットから供与された電子を、導体成分に授与するための電子伝達サブユニットと、を含むタンパク質複合体を使用する。好ましくは、グルコースセンサ（２）は、連続的なグルコース濃度測定を行い、あるいは複数回のグルコース濃度の測定を継続的に行うことができるように構成される。

Description

明細書

グルコースセンサおよびグルコース濃度測定装置

技術分野

[0001] 本発明は、試料中のグノレコース濃度を測定するための技術に関する _c

背景技術

[0002] 糖尿病患者にとっては、自己の血糖値を把握しておくことが重要であり、またインシユリンを投与するタイミングを、血糖値を繰り返し測定することにより決定する必要がある。血糖値の測定は、たとえば使い捨てとして構成されたグノレコースセンサを用いて行われている (たとえば特許文献 1参照)。この文献に記載のグノレコースセンサを用いる方法では、血糖値の測定に際して穿刺装置を用いて皮膚から血液を採取する必要がある。そのため、糖尿病患者にとっては、血糖値をモニタリングする作業は煩わしぐ血糖値の測定毎に皮膚に針を突き刺す必要があるために苦痛を伴う。

[0003] このような不具合を解決すベぐ継続的に血糖値をモニターすることができる血糖値測定手法が提案されており (たとえば特許文献 2参照)、また米国においては、シグナス社より「ダルコウォッチ」として製品化されている。先の血糖値測定手法では、皮膚から採取した血液や間質液を電極に供給し、この電極を利用してグルコース濃度を測定する電極法が採用されている。この場合の電極は、血糖値測定時において皮膚のごく近傍に配置され、また電極としては、グルコースォキシダーゼ (GOD)を介して血液や間質液から取り出した電子を、電極 (導体成分)に与えるように構成されている

[0004] GODを使用した電極法では、試料 (血液や間質液)における溶存酸素の影響を受けて測定精度が低下してしまうといった問題がある。また、 GODを用いる方法では、 GODがグルコースから取り出した電子を電極 (導体成分)に与える場合に、一般に、過酸化水素を生成させて、この過酸化水素を介して電極 (導体成分)に電子を与える方法、あるいは電子伝達物質 (たとえばフェリシアン化カリウムなどの金属錯体)を媒体として電極 (導体成分)に電子を与える方法が採用されてレ、る。レ、ずれの方法にぉレ、ても、皮膚から採取した血液などを、皮膚と隔離された場所においてグルコース濃度を測定する場合には人体に対する問題は殆どない。し力ながら、過酸化水素やフェリシアンィ匕カリウムが人体にとって好ましくない物質であることに鑑みれば、先のモニタリング方法のように、皮膚のごく近傍において GODを含んだ電極を存在させる測定方法は好ましくない。

[0005] さらに、電子伝達物質を使用する方法に関していえば、電子伝達物質を電極内に含有させ、あるいは電極表面に電子伝達物質を固定する必要が生じる。いずれにして、電子伝達物質を GODとは別に準備して、それを電極に含有させることはコスト的に不利である。

[0006] 特許文献 1 :日本国特公平 8-10208号公報

特許文献 2 :日本国特表平 9-503924号公報

発明の開示

[0007] 本発明は、人体に悪影響を及ぼすことなぐコスト的に有利にグルコース濃度を測定できるようにすることを課題としている。

[0008] 本発明の第 1の側面において提供されるグルコースセンサは、グルコース脱水素酵素を導体成分に固定化した電極を有しており、上記グノレコース脱水素酵素は、フラビンァデニンジヌクレオチド (FAD)が補酵素として結合し、かつグルコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットと、上記触媒活性サブユニットから供与された電子を、上記導体成分に授与するための電子伝達サブユニットと、を含むタンパク質複合体であることを特徴とし

ている。

[0009] 本発明の第 2の側面において提供されるグルコース濃度測定装置は、皮下組織から採取した血液または間質液に基づいて、グルコースの濃度を連続的に、あるいは複数回のグルコース濃度の測定を継続的に行うことができるように構成されたダルコース濃度測定装置であって、グルコース脱水素酵素を導体成分に固定化した電極を有するグルコースセンサと、上記血液または間質液と上記電極との間の電子授受量に相関した応答量を測定するための測定部と、上記測定部での測定結果に基づレ、てグノレコース濃度を演算する演算部と、上記演算部においてグルコース濃度を演算するタイミングを制御する制御部と、を備えており、かつ、上記グルコース脱水素酵素は、フラビンアデニンジヌクレオチドが補酵素として結合し、かつグルコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットと、上記触媒活性サブユニットから供与された電子を、上記導体成分に授与するための電子伝達サブユニットと、を含むタンパク質複合体であることを特徴としてレ、る。

[0010] グノレコース脱水素酵素としては、ブルクホルデリア属に属する微生物に由来するものを使用するのが好ましい。

[0011] ここで、本発明でいうブルクホルデリア属に属する微生物は、グルコース脱水素活性を有するひサブユニット (触媒活性サブユニット)、またはチトクロム C( βサブユニット )を含む酵素 (以下、単に「GDH」ということがある)を産出できるものであれば特に限定されないが、その中でもブルクホルデリア ·セパシァ、とくにブルクホルデリア ·セパシァ KS1株 (以下、単に「KS1株」とレ、うことがある)を用いるのが好ましい。

[0012] KS1株は、温泉付近の土壌から分離した新規菌株であるが、その菌学的性質からブルクホルデリア *セパシァであると同定されており、平成 12年 9月 25日に独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター (干 305-8566 日本国茨城県つくば巿東 1丁目 1番地 1 中央第 6)に微生物受託番号第 FERM BP-7306として寄託されている。 KS1株は、その詳細については、国際公開 WO02/36779号公報に開示されている力触媒活性サブユニットであるひサブユニット（分子量約 60kDa)、電子伝達サブユニットであるチトクロム Cに相当する βサブユニット (分子量約 43kDa)および γサブユニット (分子量約 14kDa)を含む GDHを産出することができる。ただし、分子量は、還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動において測定したものである。

[0013] なお、本願の特許請求の範囲においては、由来菌により αサブユニット、チトクロム C( /3サブユニット)あるいは γサブユニットを特定することがある力 S、これは各サブュニットを特定するための便法に過ぎなレ、。すなわち、目的とするサブユニットの発現コードを含むベクターを宿主に移入して形質転換し、この形質転換体から産出される GDHをグノレコース脱水素酵素として使用する場合であっても、相違点が GDH (サブュニット)の起源のみしかないときには、本願発明の技術的範囲に属することを念のためにここで確認しておく。

[0014] 上記グノレコースセンサは、たとえばグノレコース濃度を連続的に測定し、あるいは複数回のグルコース測定を継続的に行うことができるように構成することができる。この場合、グノレコースセンサは、皮下組織から血液または間質液を採取するための採取要素をさらに備え、採取要素によって採取した血液または間質液を、電極に接触させること力 Sできるように構成される。

[0015] 採取要素は、たとえば皮膚に突き刺すための中空の穿刺針と、この穿刺針を介して採取された血液または間質液を滞留させるための液溜部と、を備えたものとして構成される。この場合、液溜部に滞留させた血液または間質液を電極に接触させるように構成される。

液溜部は、たとえば電極および穿刺針に接触して配置された多孔質体として構成される。

[0016] 上記グノレコースセンサは、電極の少なくとも一部を、皮下組織に埋め込んで使用するように構成することもできる。この場合、電極は、たとえば可撓性を有する絶縁基板上に形成される。

図面の簡単な説明

[0017] [図 1]本発明の第 1の実施の形態におけるグルコース濃度測定装置を示す正面図でめる。

[図 2]図 1の II一 II線に沿う断面図である。

[図 3]図 1および図 2に示したグノレコース濃度測定装置の分解斜視図である。

[図 4]図 1および図 2に示したグノレコース濃度測定装置のブロック図である。

[図 5]本発明の第 2の実施の形態におけるグルコース濃度測定装置を示す斜視図でめる。

[図 6]図 5の VI— VI線に沿う断面図である。

[図 7]実施例 3において用いた測定システムの概略構成図である。

[図 8]実施例 1におレ、て、グルコース濃度を変化させたときの応答電流値の測定結果を示すグラフである。

[図 9]実施例 2におレ、て、グルコース濃度を変化させたときの応答電流値の測定結果を示すグラフである。

[図 10]実施例 3において、グルコース濃度を一定にしたときの応答電流値の経時変化を測定した結果を示すグラフである。

[図 11]実施例 3において、グルコース濃度を変化させたときの応答電流値の測定結果を示すグラフである。

発明を実施するための最良の形態

[0018] 図 1に示したグルコース濃度測定装置 XIは、腕などの皮膚に密着させて使用するものであり、グルコース濃度測定を連続的に行い、あるいは複数回のグルコース濃度測定を継続して行えるように構成されている。図 2および図 3に示したように、ダルコ一ス濃度測定装置 XIは、筐体 1およびグルコースセンサ 2を有している。

[0019] 筐体 1は、たとえばバンド 10(図 1参照)を用いて腕などに固定されるものであり、凹部 11、表示部 12、一対のコネクタピン 13a, 13bおよび図外の制御回路を有している。凹部 11は、グルコースセンサ 2を着脱自在に収容するためのものである。表示部 12は、主として測定結果を表示するためのものであり、 LCDなどにより構成されている。コネクタピン 13a,13bは、後述するグルコースセンサ 2の作用極 32または対極 33に接触させるためのものである。コネクタピン 13a，13bは、グルコースセンサ 2の作用極 32と対極 33との間に電圧を印加するために、あるいは電圧印加時の応答電流を測定するために利用されるものである。

[0020] グノレコースセンサ 2は、互いに接合されたセンサ本体 3および試料採取部材 4を備えており、これらを一体として筐体 1に対して着脱自在とされている。このグノレコースセンサ 2は、たとえば使い捨てとして構成されている。もちろん、センサ本体 3と試料採取部材 4とを個別に筐体 1に対して着脱自在とし、センサ本体 3および試料採取部材 4を個別に交換するように構成することもできる。

[0021] センサ本体 3は、絶縁基板 30の下面 31に作用極 32および対極 33を形成したものである。絶縁基板 30には、一対の貫通孔 30a，30bが設けられている。貫通孔 30aは作用極 32を露出させるためのものであり、貫通孔 30bは対極 33を露出させるためのものである。すなわち、センサ本体 3は、グルコースセンサ 2を筐体 1の凹部 11に収容させた状態では、コネ

クタピン 13aが作用極 32に接触し、コネクタピン 13bが対極 33に接触し得るように構成されている。 [0022] 作用極 32は、導体成分およびグノレコースデヒドロゲナーゼ (GDH)を含んでおり、グルタルアルデヒドなどの架橋剤によって絶縁基板 30に固定されている。

[0023] 導体成分は、たとえばカーボン粉末により構成されており、その含有量は、たとえば 5 一 lOOmgとされる。もちろん、導体成分としては、カーボン以外の導体粉末、あるいは多孔質に形成された導体 (たとえば導体粉末の焼結体)を使用することもできる。

[0024] GDHとしては、グノレコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットおよび電子伝達サブユニットが互いに結合したタンパク質複合体が使用される。

[0025] 触媒活性サブユニットは、試料中のグルコースから電子を取り出し、この電子を電子伝達サブユニットに供与する役割を果たすものであり、補酵素としてフラビンアデ二ンジヌクレオチド (FAD)を有するものが使用される。したがって、電子伝達サブユニットに対しては、還元型 FADを介して、触媒活性サブユニットからの電子が供与される。

[0026] 触媒活性サブユニットの含有量は、たとえば活性に換算して 5 100Uに相当する量とされる。ここで、酵素 1単位 (1U)は、標準検定条件 (pH6.0、 37°C)の下で DCIP(2,6- ジクロロフヱノールインドフエノール)の還元にもとづく退色を、 DCIPの吸収波長である 600nmにおいて経時的に計測したときに、 1分ごとに 1 /i Mグルコースを酸化する量（モル吸光係数は 4.76 X 1000 μ Μん m)として定義される。

[0027] 一方、電子伝達サブユニットは、触媒活性サブユニットから授与された電子を、導体成分に供与する役割を果たすものである。電子伝達サブユニットとしては、たとえばチトクロム Cが使用される。

[0028] 触媒活性サブユニットおよび電子伝達サブユニットとしては、ブルクホルデリア属に属する微生物、たとえば KS1株に由来するタンパク質複合体を使用するのが好ましい。 KS1株由来の GDHは、触媒活性サブユニットとして機能するひサブユニット (還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 60kDa)、電子伝達タンパク質である /3サブユニット (還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 43kDa)、および γサブユニット (還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 14kDa)が結合した 3量体として、あるレ、はひサブユニットと j3サブユニットからなる 2量体として生成される。もちろん、 GDH としては、ひサブユニット、 j3サブユニットおよび γサブユニットをコードする DNAを移入した形質転換体によって生成させたタンパク質複合体を使用することもできる。

[0029] 上記微生物あるいは形質転換体によって目的とする GDHを取得する場合には、それらのサブユニット (タンパク質)を個別に精製し、あるいはそれらを個別に準備する必要がなぐさらには電子伝達物質を GDHとは別に作用極 32に含有させる必要がないため、それらの点においてコスト的に有利である。

[0030] 対極 33は、たとえばカーボンペーストをスクリーン印刷により形成することができる。

もちろん、対極 33は、カーボン以外の導体成分により形成することができ、スクリーン印刷以外の手法により形成することもできる。

[0031] 試料採取部材 4は、皮膚から試料 (血液または間質液）を採取するためのものであり、絶縁基板 40、穿刺針 41、および液吸収体 42を有している。

[0032] 絶縁基板 40は、穿刺針 41および液吸収体 42を固定するためのものであり、その下面 40aには、両面に接着性を有する粘着テープ 43が貼着されている。これにより、絶縁基板 40ひいてはグノレコースセンサ 2を皮膚 Skに密着して固定することができる。穿刺針 41は、皮膚に突き刺して試料を採取するための部分であり、中空状に形成されている。この穿刺針 41は、絶縁基板 40を貫通し、絶縁基板 40の上面において開放している。液吸収体 42は、穿刺針 41によって採取された試料を保持するためのものであり、穿刺針 41の上端を覆うように配置されている。この液吸収体 42は、筐体 1にダルコースセンサ 2を収容した状態では、センサ本体 3の作用極 32および対極 33に接触する。液吸収体 42は、たとえば多孔質体として形成されている。多孔質体としては、たとえば織布、不織布、編布、あるいは発泡体を使用することができる。なお、液吸収体 42に代えて、採取した試料を保持するための空間を設けてもよい。

[0033] グルコース濃度測定装置 XIは、上述の要素に加えて、図 4に示したように電圧印加部 14、電流値測定部 15、演算部 16および制御部 17を備えている。

[0034] 電圧印加部 14は、作用極 32および対極 33に電圧を印加するためのものであり、図面上には表れていないが、コネクタピン 13a，13b (図 2参照)に導通接続されている。

[0035] 電流値測定部 15は、作用極 32と対極 33との間に電圧を印加したときの応答電流値を測定するためのものである。

[0036] 演算部 16は、電流値測定部 15において測定された応答電流値に基づいて、試料中のグルコース濃度を演算するためのものである。

[0037] 制御部 17は、各部 12, 14— 16の動作を制御するためのものである。より具体的には、電流値測定部 15を制御して応答電流値を測定するタイミングを制御し、演算部 16を制御してグノレコース濃度を演算させ、あるいは表示部 12を制御して表示部 12での表示内容を制御する。

[0038] 図 2によく表れているように、グルコース濃度測定装置 XIでは、グルコースセンサ 2 を皮膚 Skに固定した上で、筐体 1によってグノレコースセンサ 2を覆うことにより、グノレコース濃度測定を連続的に行い、あるいは複数回のグノレコース濃度測定を継続的に行うことができる。グルコースセンサ 2を皮膚 Skに固定した場合には、試料採取部材 4 の穿刺針 41が皮膚 Skに突き刺さつている。穿刺針 41が中空に形成されていることから、液吸収体 42には、穿刺針 41を介して試料が供給される。この状態では、液吸収体 42と皮下組織との間が液絡してレ、るために、皮下組織におけるグルコース濃度が変化した場合には、皮下組織でのグルコース濃度と平衡を保っために、液吸収体 42 でのグルコース濃度が変化する。すなわち、液吸収体 42でのグルコース濃度は、皮下組織におけるグルコース濃度を反映したものとなる。

[0039] 一方、液吸収体 42は、作用極 32と接触している。そのため、試料中のグルコースからは、作用極 32の触媒活性サブユニットによって電子が取り出される。この電子は、電子伝達サブユニットに供与される。作用極 32と対極 33との間には、図 4に示した電圧印加部 14を介して継続的に電位差が与えられている。これは、電子伝達サブュニットに必要以上に電子が蓄積されるのを抑制し、リアルタイムで応答電流値を測定するためである。電子伝達サブユニットに供与された電子は、作用極 32と対極 33との間に電位差が与えられることによって、導体成分に供与される。作用極 32は、コネクタピン 13aを介して電流値測定部 15に接続されているため、電流値測定部 15においては、電子伝達サブユニットから供与された電子の量が応答電流値として測定される。

[0040] 図 4に示した制御部 17は、連続的または一定時間毎 (たとえば 5分一 2時間毎)に応答電流値をサンプリングするとともに、演算部 16に対して、サンプリングされた応答電流値に基づいてグノレコース濃度を連続的または一定時間毎に演算させる。演算部 16においては、予め調べられた検量線に対して、測定された応答電流値を当てはめることによりグノレコース濃度が演算される。グルコース濃度の演算が終了した場合には、制御部 17は、表示部 12に対して演算部 16における濃度演算結果を表示させる。

[0041] グノレコースセンサ 2では、作用極 32において、酵素として、触媒活性サブユニットに対して電子伝達サブユニットが結合 (サブユニット化)した GDHが含有をさせられている。このため、作用極 32においては、触媒活性を有するタンパク質 (触媒活性サブュニット)の周りに、作用極 32に対して電子を伝達する機能を有するタンパク質 (電子伝達サブユニット)が均一に存在する環境が作り出されている。すなわち、触媒活性を有するタンパク質 (触媒活性サブユニット)に対して、分子数で等量の電子伝達タンパク質 (電子伝達サブユニット)が密着した状態で存在する。その結果、グルコースセンサ 2では、触媒活性タンパク質と触媒電子伝達タンパク質との間の反応速度 (電子授受速度)を大きくして応答感度を高めるとともに、安定した応答電流の測定を行うことができる。

[0042] 次に、本発明の第 2の実施の形態について、図 5および図 6を参照して説明する。

[0043] 図 5および図 6に示したグノレコース濃度測定装置 X2は、先に説明した本発明の第

1の実施の形態に係るグノレコース濃度測定装置 XIと同様に、バンドや粘着テープを利用して腕などの皮膚 Skに密着させて使用するものである (図 1参照)。このグノレコース濃度測定装置 X2は、グルコース濃度測定を連続的に行い、あるいは複数回のグルコース濃度の測定を継続して行うことが可能なように構成されており、グルコースセンサ 5および筐体 6を有してレ、る。

[0044] グノレコースセンサ 5は、筐体 6に対して着脱自在とされており、たとえば使い捨て可能なように構成されている。このグノレコースセンサ 5は、絶縁基板 50上に作用極 51および対極 52が形成された形態を有している。絶縁基板 50は、皮膚 Skに突き刺すための細幅部分 50aを有するとともに、ポリイミド樹脂などにより可撓性を有するものとして形成されている。作用極 51および対極 52は、端子部 51a,52aを有している。作用極 51 および対極 52は、先に説明したグルコースセンサ 2の作用極 32および対極 33(図 3参照)と同様にして形成されている。

[0045] 筐体 6は、第 1および第 2部材 61，62を有しており、これらの部材 61, 62の間には、空間 63が形成されている。空間 63は、グルコースセンサ 5を保持するためのものである。 [0046] 第 1部材 61には、表示部 64および一対のコネクタピン 65a，65bが設けられている。表示部 64は、各種の情報を表示するためのものであり、たとえば LCDにより構成されている。コネクタピン 65a,65bは、図外の制御回路に繋がっており、空間 63にグルコースセンサ 5を保持した状態においては、作用極 51および対極 52の端子部 51a，52aに接触するように構成されている。この状態においては、コネクタピン 65a,65bを利用して作用極 51および対極 52の間への電圧の印加が可能であり、また電圧印加状態においては電流値の測定が可能となる。一方、第 2部材 62には、絶縁基板 50の細幅部分 50aを外部に突出させるための開口部 66が形成されている。

[0047] このようなグルコース濃度測定装置 X2では、筐体 6にグルコースセンサ 5を保持させた状態において、絶縁基板 50の細幅部分 50aを皮膚 Skに突き刺すことにより、連続的にグルコース濃度測定を行レ、、あるいは複数回のグノレコース濃度測定を継続的に τうことが可

能となる。

[0048] 皮膚 Skに絶縁基板 50の細幅部分 50aを突き刺した状態においては、作用極 51において血液または間質液のグノレコースから電子が取り出される。この電子は、電子伝達サブユニットに供与される。電子伝達サブユニットに供与された電子は、作用極 51および対極 52の間に電位差を与えることにより作用極 51の導体成分に供与される。このときに供与された電子の量は、コネクタピン 65a,65bを介して応答電流値として測定すること力 Sできる。グルコース濃度測定装置 X2においては、連続的または一定時間毎（たとえば 5分一 2時間毎)に応答電流値をサンプリングするとともに、サンプリングされた応答電流値に基づいてグルコース濃度が連続的または一定時間毎に演算される。演算結果は、表示部 64において表示される。

[0049] グノレコースセンサ 5においても、作用極 51が触媒活性サブユニットおよび電子伝達サブユニットが結合したタンパク質複合体を含んだものとなっている。そのため、ダルコースセンサ 5が人体に対して悪影響を与えることはなぐまた安定した応答電流の測定をコスト的に有利に行うことができる。

[0050] [実施例 1]

本実施例においては、酵素電極の応答特性について、バッチ式の反応槽を用いて検討した。

[0051] 酵素電極は、プラスチックチューブ (直径 5mm、長さ 30mm)の内部に、酵素とカーボン粉末を固定化した構成とした。酵素およびカーボン粉末の固定化は、酵素とカーボンペース (20mg)の混合物をプラスチックチューブに充填した後に、プラスチックチューブの内部に、架橋剤としての 1 %ダルタルアルデヒドを含む lOOmMのリン酸ナトリウム緩衝液 (PH7.0)を 30分間含浸させることにより行った。架橋剤における過剰なアルデヒド基は、 10mMの Tris— HC1中で 20分間処理することにより不活性化した。酵素電極は、使用する前に、 lOOmMのリン酸ナトリウム緩衝液 (pH7.0)に浸漬して平衡ィ匕しておいた。酵素としては、 KS1株由来のひサブユニット (触媒活性サブユニット)、 βサブユニット (電子伝達サブユニット)および γサブユニットからなる CyGDH(92.1U/mg)、または KS1株由来のひサブユニット (触媒活性サブユニット)および _Ίサブユニットからなるひ GDH(21.3U/mg)を使用し、 2種類の酵素電極を作成した。酵素電極においては、酵素の含有量を 10Uに相当する量とした。

[0052] 応答特性は、濃度の異なる複数のグルコース溶液にっレ、て、応答電流を測定した結果に基づいて検討した。応答電流値は、目的濃度に調整されたグルコース溶液を保持した反応槽に対して、酵素電極、参照電極および対極を浸漬するとともに、酵素電極と対極との間に電圧を印加し、参照電極を基準電極として測定した。グルコース溶液は、グルコースを lOOmMのリン酸ナトリウム緩衝液 (pH7.0)に溶解させることにより作成した。グルコース溶液の濃度は、 OmM、 0.5mM、 1.0mM、 1.5mM、 2.0mM、 2.5mM 、 8mM、 12mM、 21mM、 30mMおよび 47mMに設定した。参照電極としては Ag/AgCl電極を用い、対極としては Pt電極を用いた。印加電圧値は + 400mVとし、応答電流値の測定は、反応槽の温度を 25°Cまたは 37°Cに維持して行った。応答電流値の測定結果については、図 8に示した。

[0053] 図 8から分かるように、 /3サブユニット (電子伝達サブユニット)を有しないひ GDHを用いた酵素電極では、グルコース濃度の増加に伴う応答電流値の増加量が小さぐ作用極における導体成分とひサブユニットとの間で、適切な電子伝達が行われていないことが伺える。これに対して、 /3サブユニットを有する CyGDHを用いた酵素電極では、グルコース濃度の増加に伴う応答電流値の増加量が大きぐ良好な応答特性が得られている。すなわち、サブユニットを αサブユニットに結合 (サブユニット化)させることにより、作用極における導体成分と αサブユニットとの間で、適切な電子伝達が行われてレ、ることが伺える

。このような傾向は、測定温度を 25°Cおよび 37°Cに設定した場合のいずれにおいても伺える。したがって、電子伝達タンパク質が結合した GDHを用いた酵素電極では、金属錯体などの電子伝達物質を用いることなぐ電極法において、グルコース濃度の測定を行うことができる。

[0054] [実施例 2]

本実施例においては、印加電圧が酵素電極の応答特性に与える影響について、バッチ式の反応槽を用いて検討した。酵素電極は、基本的には実施例 1と同様にして作成した。ただし、酵素としては、比活性 56.5U/mgである CyGDHを用レ、、また酵素電極における酵素の含有量を 50Uに相当する量とした。応答特性については、目的濃度のグルコース溶液を 37°Cに維持し、印加電圧を + 400mVおよび + 250mVとした場合のそれぞれについて、応答電流値を測定した結果に基づいて検討した。ダルコース溶液の濃度は、 0mM、 0.5mM、 1.0mM、 1.5mM、 2.0mM、 2.5mM、 8mM、 12mM、 21mM、および 47mMに設定した。応答電流値の測定結果については、図 9に示した

[0055] 図 9から分かるように、印加電圧値が + 250mVの場合には、印加電圧値が + 400mV の場合に比べて応答電流値が小さくなつているものの、印加電圧値が + 400mVおよび + 250mVのレ、ずれの場合にぉレ、ても適切に応答電流値を測定できるとレ、える。したがって、電子伝達タンパク質が結合した GDHを用いた場合には、印加電圧値が比較的に小さくても適切に応答電流値を測定し、グルコース濃度を測定することができる。この結果は、連続的あるいは継続的な血糖値モニターを行う場合のように、連続的に電圧を印加する必要がある場合に、あるいは連続的または継続的な血糖値モニターを行うためのグノレコース濃度測定装置を、電池によって駆動する場合に、優位に作用する。

[0056] [実施例 3]

本実施例においては、酵素電極を用いての連続的なグノレコース濃度のモニターの可能性について、フローセルを用いて検討した。具体的には、（1)72時間の連続モニター試験、（2)作成初期 (未使用)の酵素電極と、 72時間の連続モニターに使用後の酵素電極の応答特性について検討した。

[0057] (1)連続モニター試験

連続モニター試験は、図 7に概略構成を示した測定システム 7を用いて行った。この測定システム 7は、反応セル 70に、酵素電極 71、参照電極 72および対極 73を保持させ、反応セル 70の内部にグノレコース溶液を供給したときに、これらの電極 71 73がグノレコース溶液に接触するように構成されたものである。各電極 71 73は、ポテンシォスタツト 74に接続されている。反応セル 70には、流路 75が規定されており、反応セル 70は、グルコース溶液を連続的に供給'排出可能なフローセルとして構成されてレヽる。反応セル 70には、目的とする濃度のグルコース溶液が保持された容器 76から、ポンプ 77の動力を介してグルコース溶液が連続的に供給されるように構成されている。測定システム 7では、酵素電極 71として実施例 2と同様にして作成したもの、参照電極 72としてフローセル用の Ag/AgCl電極、対極 73としてはステンレスチューブが用いられている。

[0058] 応答電流値は、酵素電極 71と対極 73との間に電圧を印加するとともに、参照電極

72を基準電極として測定した。印加電圧値は + 250mVとした。応答電流値の測定は、反応セル 70に対して 5mMのグルコース溶液 (ρΗ7·0)を O. lml/minの流速で連続的に供給するとともに、グルコース溶液の温度を 37°Cに維持した状態において、連続的に測定した。応答電流値の経時変化については、図 10に示した。図 10においては、縦軸の応答電流を、測定時間が「0」のときの値を 100とした相対値として示してある。

[0059] (2)使用前後の酵素電極の応答特性

使用前 (Oh)および使用後 (72h)の酵素電極の応答特性は、図 7に示した測定システム 7を用いて、目的濃度のグルコース溶液を 37°Cに維持した状態において 0.5ml/min の流速で供給し、印加電圧を + 250mVとして測定した応答電流値に基づいて検討した。グルコース溶液は、 0mM、 0.5mM、 1.0mM、 2.5mM、 lO.OmM, 15.0mM、 20.0mM および 25mMの順に段階的上昇させた後、先とは逆に段階的に濃度を減少させて供給した。応答電流値の測定結果については、図 11に示した。 [0060] 図 10から分かるように、 72時間の連続モニター試験においては、応答電流値が経時的に低下しているものの、 72時間後においても一定量の応答電流値が測定されている。一方、図 11から分かるように、 72時間の連続モニターに使用した後の酵素電極は、使用前の酵素電極に比べて応答特性が悪くなつているが、グルコース濃度を測定するのに十分な応答特性を有している。これらの結果は、電子伝達タンパク質が結合した GDHを用いた酵素電極においては、 72時間の連続モニター試験後においても GDHが十分な残存活性を有しており、たとえば CyGDHを用いた酵素電極を用いて連続モニターが可能であることを示唆してレ、る。

[0061] すなわち、酵素電極での応答電流値の経時的劣化を予め調べておいた上で、経時劣化の予測に基づいて、測定値や演算値を補正すれば、連続モニターが可能となる。また、酵素電極を改良して経時劣化を抑制するようにすれば、連続モニターが可能となる。さらには、酵素電極の経時的劣化に伴う応答電流値の減少分を、印加電圧を経時的に増加させて応答電流値を強制的に増大させて相殺すること、すなわち図 11に示した応答電流値が一定値で推移するように印加電圧を制御することにより、連続モニターが可能となる。

[0062] 連続モニター試験からは、次の知見も得られる。すなわち、最初の 18時間程度の間の応答電流値の減少量が大きぐその後の応答電流値は比較的に安定している。したがって、酵素電極 (グノレコースセンサ)をある程度意図的に劣化させた後に実際のグノレコース濃度測定を行うといった使用方法も考えられる。

[0063] また、図 11から分かるように、使用前 (Oh)および使用後 (72h)の酵素電極 (グルコースセンサ)は、グノレコース濃度を上昇させる過程 (0mM→25mM)とグルコース濃度を減少させる過程 (25mM→0mM)との間に良好な相関関係が見受けられる。このことは、血糖値を連続的にモニターする場合のように、グルコース濃度が経時的に変動する環境下において、適切にグルコース濃度を測定できることを意味している。

Claims

請求の範囲

[1] グノレコース脱水素酵素を導体成分に固定化した電極を有しており、

上記グノレコース脱水素酵素は、フラビンアデニンジヌクレオチドが補酵素として結合し、かつグルコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットと、上記触媒活性サブユニットから供与された電子を、上記導体成分に授与するための電子伝達サブュニットと、を含むタンパク質複合体であることを特徴とする、グルコースセンサ。

[2] 上記グノレコース脱水素酵素は、ブルクホルデリア属に属する微生物に由来するものである、請求項 1記載のグルコースセンサ。

[3] 上記電子伝達サブユニットは、チトクロム Cである、請求項 2に記載のグルコースセンサ。

[4] 上記触媒活性サブユニットは、還元条件下での SDS -ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 60kDaであり、上記チトクロム Cは、還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 43kDaである、請求項 3に記載のグノレコースセンサ。

[5] 上記グノレコース脱水素酵素は、還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 14kDaである _Ίサブユニットをさらに含んでレ、る、請求項 4に記載のグルコースセンサ。

[6] グノレコース濃度を連続的に測定し、あるいは複数回のグルコース濃度の測定を継続的に行うことができるように構成されている、請求項 1に記載のグルコースセンサ。

[7] 皮下組織から血液または間質液を採取するための採取要素をさらに備えており、上記採取要素によって採取した血液または間質液を、上記電極に接触させることができるように構成されている、請求項 6に記載のグノレコースセンサ。

[8] 上記採取要素は、皮膚に突き刺すための中空の穿刺針と、この穿刺針を介して採取された血液または間質液を滞留させるための液溜部と、を備えており、

上記液溜部に滞留させた血液または間質液を上記電極に接触させるように構成されている、請求項 7に記載のグルコースセンサ。

[9] 上記液溜部は、上記電極および上記穿刺針に接触して配置された多孔質体である、請求項 8に記載のグルコースセンサ。

[10] 上記電極の少なくとも一部を、皮下組織に坦め込んで使用するように構成されている、請求項 6に記載のグルコースセンサ。

[11] 上記電極は、可撓性を有する絶縁基板上に形成されている、請求項 10に記載のグノレコースセンサ。

[12] 皮下組織力採取した血液または間質液に基づいて、グノレコースの濃度を連続的に、あるいは複数回のグルコース濃度の測定を継続的に行うことができるように構成されたグノレコース濃度測定装置であって、

グノレコース脱水素酵素を導体成分に固定化した電極を有するグルコースセンサと、上記血液または間質液と上記電極との間の電子授受量に相関した応答量を測定するための測定部と、

上記測定部での測定結果に基づいてグルコース濃度を演算する演算部と、上記演算部においてグルコース濃度を演算するタイミングを制御する制御部と、を備えており、かつ、

上記グノレコース脱水素酵素は、フラビンアデニンジヌクレオチドが補酵素として結合し、かつグルコース脱水素活性を有する触媒活性サブユニットと、上記触媒活性サブユニットから供与された電子を、上記導体成分に授与するための電子伝達サブュニットと、を含むタンパク質複合体であることを特徴とする、グルコース濃度測定装置

[13] 上記ダルコース脱水素酵素は、ブルクホルデリア属に属する微生物に由来するものである、請求項 12記載のグノレコース濃度測定装置。

[14] 上記電子伝達サブユニットは、チトクロム Cである、請求項 13に記載のグルコース

[15] 上記触媒活性サブユニットは、還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 60kDaであり、上記チトクロム Cは、還元条件下での SDS—ポリアクリルアミドゲル電気泳動における分子量が約 43kDaである、請求項 14に記載のグルコース濃度測定装置。

[16] 皮下組織から血液または間質液を採取するための採取要素をさらに備えており、上記採取要素によって採取した血液または間質液を、上記電極に接触させることができるように構成されている、請求項 12に記載のグノレコース濃度測定装置。

[17] 上記採取要素は、皮膚に突き刺すための中空の穿刺針と、この穿刺針を介して採取された血液または間質液を滞留させるための液溜部と、を備えており、

上記液溜部に滞留させた血液または間質液を上記電極に接触させるように構成されている、請求項 16に記載のグルコース濃度測定装置。

[18] 上記液溜部は、上記電極および上記穿刺針に接触して配置された多孔質体である、請求項 17に記載のグルコース濃度測定装置。

[19] 上記電極の少なくとも一部を、皮下組織に坦め込んで使用するように構成されている、請求項 12に記載のグルコース濃度測定装置。

[20] 上記電極は、可撓性を有する絶縁基板上に形成されている、請求項 19に記載のグノレコース濃度測定装置。