WO2001065246A1 - Quantifizierung von in einer flüssigkeit enthaltenen zielmolekülen - Google Patents

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Jürgen SCHÜLEIN
Björn GRASSL
Jörg HASSMANN
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    • C12Q1/004—Enzyme electrodes mediator-assisted
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813—Hybridisation assays
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    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373—Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • G01N33/5438—Electrodes

Definitions

  • the invention relates to a method for the detection and / or quantification of target molecules contained in a liquid.
  • a chip for the detection of polynucleotide sequences is known from WO 96/01836.
  • a large number of miniaturized reaction fields are provided on the chip produced from a silicon substrate.
  • a probe is bound to each of the reaction fields.
  • hybridization occurs with one of the specified probes.
  • Hybridization can e.g. can be detected by a fluorophore label provided on the probe.
  • DE 198 08 884.1 describes a method for the detection of chemical substances using two interacting fluorophoric groups which are bound to a molecule. When the molecule attaches specifically to the chemical substance to be detected, the interaction between the fluorophoric groups is changed.
  • WO 99/47700 relates to a method for the detection of a target molecule by means of fluorescence. It is a provided with a fluorophoric group probe bound to a solid phase ge ⁇ . If the target sequence is present in the solution, a second fluorophoric group is bound in the vicinity of the first fluorophoric groups in such a way that a radiation-free energy transfer can take place between the two fluorophoric groups.
  • US 5,591,578 describes a method for the detection of polynucleotide sequences using redox indicators.
  • a probe that is complementary to the target polynucleotide sequence is covalently bound to an electrode.
  • Covalently redox-active transition metal complexes are bound to the probe.
  • a redox signal can be measured at the electrode.
  • DE 196 28 171 discloses a process for the purification and enrichment of charge-carrying first molecules which have a specific affinity for second molecules bound to an electrode.
  • a voltage protocol is carried out in such a way that the first molecules are enriched on the electrode.
  • the object of the invention is to eliminate the disadvantages of the prior art.
  • a sensitive, simple and inexpensive electrochemical method for the detection and / or quantification of small amounts of first biopolymers in a liquid is to be specified.
  • a method for the detection and / or quantification of first biopolymers contained in a liquid is provided, with the following steps:
  • the proposed method enables sensitive detection of first biopolymers in a liquid.
  • the use of electrodes provided with a plastic surface allows the method to be carried out inexpensively.
  • the method also enables the first biopolymers contained in the liquid to be quantified.
  • the first biopolymer can in particular be a single-stranded DNA or RNA complementary to the second biopolymer.
  • the second biopolymers are preferably covalently bonded to the plastic surface.
  • osmium tetroxide and bipyridine a particularly high sensitivity is achieved.
  • the plastic is an electrically conductive composite material, e.g. a composite of carbon fibers and polycarbonate.
  • the electrode as a whole is advantageously made of the plastic. Such electrodes can be manufactured in an inexpensive pressing process.
  • step lit. e performed one of the following measurements: DC voltage measurement, cyclovoltammetric measurement, chronoamperometric measurement, chronovoltammetric measurement. Furthermore, in step lit. e a differtial pulse voltammogram or an impedance spectrum are recorded. It is also possible in step lit. e to measure an AC signal in a phase-sensitive manner. A DC signal can be impressed on the AC signal. To quantify the first biopolymers, a peak of the measurement signal can be integrated. As
  • the distance between the peak height and the background can be used as a quantification variable.
  • the electrode can be removed after step lit. e be rinsed or heated.
  • a thermal denaturation of the first biopolymers can be achieved by heating the electrode.
  • Certain first biopolymers preferably bind at a predetermined temperature.
  • the specificity of the method can be increased further by heating or adjusting the temperature.
  • the specificity or the stringency can also be increased by a suitable adjustment of the pH in the liquid.
  • the first biopolymers are lit. a subjected to a polymerase chain reaction. This enables the detection of particularly small amounts of the first biopolymers.
  • the only figure shows a differtial pulse voltammogram of an unoccupied one with single-stranded oligonucleotides occupied and a working electrode with hybridized oligonucleotides after a treatment with osmium tetroxide and bipyridine.
  • the working electrodes each consist of carbon composite material, which is preferably composed of 30% carbon fibers and 70% polycarbonate.
  • Oligonucleotides with the sequence 5 * -GCC TTC CCA ACC ATT CCC TTA-3 ' were covalently bound to the surface of the working electrodes using carbodiimide using a standard method.
  • the occupancy density was 15 mol / mm 2 '.
  • the hybridization of the oligonucleotides was carried out in a buffered solution of 0.5-fold TBE (TRIS borate EDTA), 0.5M NaCl and 100 mol / ⁇ l of complementary oligonucleotides. After the hybridization, the working electrodes were washed stringently. An untreated, one with single-stranded oligonucleotides and one with hybridized oligonucleotides working electrode was immersed for 30 seconds in a solution of 2 mM Os0 and 13 mM bipyridine. The measurement was carried out using a platinum gene electrode and an Ag / AgCl reference electrode with an Autolab
  • the hybridization of the target oligonucleotides to the working electrode can be accelerated by applying a voltage.
  • the density of oligonucleotides on the surface of the working electrode can be increased by adding salt during the coating or by basic pretreatment of the surface. For example, an occupancy density of 85fmol / mm 2 can be achieved in a 10mM MgCl 2 solution. With a three-hour pretreatment of the surface in 5M NaOH, an occupancy density of 750fmol / mm 2 can be achieved.
  • the electrode after step lit. yours opposite voltage are applied.
  • a thermal denaturation of the first biopolymers can be achieved by heating the electrode.
  • the specificity of the method can also be increased by heating or adjusting the temperature of the electrode, because predetermined first biopolymers bind at a specific temperature.

Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von in einer Flüssigkeit enthaltenen ersten Biopolymeren, mit folgenden Schritten: a) Bereitstellen einer Elektrode mit einer aus Kunststoff hergestellten Oberfläche, die mit zweiten zu den nachzuweisenden ersten Biopolymeren eine spezifische Affinität besitzenden Biopolymeren beschichtet ist, b) Inkontaktbringen der Elektrode mit der Flüssigkeit, c) Anlegen eines vorgegebenen Spannungsprotokolls an die Elektrode, so dass eine Anreicherung der ersten Biopolymere an den zweiten Biopolymeren bewirkt wird, d) Zugabe von Osmiumtetroxid und Bipyridin zur Flüssigkeit, e) Messung des an der Elektrode abfallenden Redoxsignals.

Description

Beschreibung
QUANTIFIZIERUNG VON IN EINER FLÜSSIGKEIT ENTHALTENEN ZIELMOLEKULEN
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von in einer Flüssigkeit enthaltenen Zielmolekülen.
Nach dem Stand der Technik ist aus der WO 96/01836 ein Chip zum Nachweis von Polynukleotidseguenzen bekannt . Auf dem aus einem Siliziumsubstrat hergestellten Chip ist eine Vielzahl miniaturisierter Reaktionsfelder vorgesehen. An jedes der Reaktionsfelder ist eine Sonde gebunden. Beim Eintauchen des Chips in eine die nachzuweisende Polynukleotidsequenz enthaltende Lösung kommt es zur Hybridisierung mit einer der vorgegebenen Sonden. Die Hybridisierung kann z.B. durch eine an der Sonde vorgesehene fluorophore Markierung nachgewiesen werden.
Die DE 198 08 884.1 beschreibt ein Verfahren zum Nachweis von chemischen Substanzen unter Verwendung zweier in Wechselwirkung stehender fluorophorer Gruppen, welche an ein Molekül gebunden sind. Bei der spezifischen Anlagerung des Moleküls an die nachzuweisende chemische Substanz wird die Wechselwirkung zwischen den fluorophoren Gruppen geändert.
Die WO 99/47700 betrifft ein Verfahren zum Nachweis eines Zielmoleküls mittels Fluoreszenz. Dabei ist eine mit einer fluorophoren Gruppe versehene Sonde an einer festen Phase ge¬ bunden. Bei Vorliegen der Zielsequenz in der Lösung wird eine zweite fluorophore Gruppe in der Nähe der ersten fluorophoren Gruppen derart gebunden, daß ein strahlungsloser Energieüber- gang zwischen den beiden fluorophoren Gruppen stattfinden kann.
Die US 5,312,572 und die US 5,871,918 beschreiben Verfahren zum elektrochemischen Nachweis von Polynukleotidsequenzen. Dabei sind der Lösung redoxaktive Moleküle zugesetzt, welche im Falle der Hybridisierung der Polynukleotidsequenz an das dabei gebildete doppelsträngige Molekül binden. Das Vorliegen eines solchen doppelsträngigen Moleküls ruft ein meßbares Re- doxsignal hervor.
Die US 5,591,578 beschreibt ein Verfahren zum Nachweis von Polynukleotidsequenzen unter Verwendung von Redox-Indikatoren. Dabei wird eine zur Ziel -Polynukleotidsequenz komplemen- täre Sonde kovalent an eine Elektrode gebunden. An die Sonde sind kovalent redoxaktive Übergangsmetallkomplexe gebunden. Im Falle der Hybridisierung der Ziel-Polynukleotidsequenz mit der Sonde ist ein Redoxsignal an der Elektrode meßbar.
Aus der DE 196 28 171 ist ein Verfahren zur Aufreinigung und Anreicherung von ladungstragenden ersten Molekülen bekannt, welche zu zweiten an einer Elektrode gebundenen Molekülen eine spezifische Affinität aufweisen. Beim Inkontaktbringen einer die ersten Moleküle enthaltenden Lösung mit der Elektrode wird ein Spannungsprotokoll derart gefahren, daß die ersten Moleküle an der Elektrode angereichert werden.
Aus E. Palecek, Bioelectrochemistry and Bioenergetics 1985, 15, 275 - 295 ist es bekannt, als redoxaktive Substanz zum Nachweis doppelsträngiger Biopolymere Osmiumtetroxide-Verbin- dungen zu benutzen. Die nach dem Stand der Technik bekannten Verfahren sind zeitaufwendig, umständlich oder erfordern einen hohen apparativen Aufwand.
Aufgabe der Erfindung ist es, die Nachteile nach dem Stand der Technik zu beseitigen. Es soll insbesondere ein sensitives, einfaches und kostengünstiges elektrochemisches Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung geringer Mengen von in einer Flüssigkeit befindlichen ersten Biopolymeren an- gegeben werden.
Diese Aufgabe wird durch die Merkmale des Anspruchs 1 gelöst . Zweckmäßige Ausgestaltungen ergeben sich aus den Merkmalen der Ansprüche 2 - 12.
Nach Maßgabe der Erfindung ist ein Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von in einer Flüssigkeit enthaltenen ersten Biopolymeren vorgesehen, mit folgenden Schritten:
a) Bereitstellen einer Elektrode mit einer aus Kunststoff hergestellten Oberfläche, die mit zweiten zu den nachzuweisenden ersten Biopolymeren eine spezifische Affinität besitzenden Biopolymeren beschichtet ist,
b) Inkontaktbringen der Elektrode mit der Flüssigkeit,
c) Anlegen eines vorgegebenen Spannungsprotokolls an die Elektrode, so daß eine Anreicherung der ersten Biopolymere an den zweiten Biopolymeren bewirkt wird,
d) Zugabe von Osmiumtetroxid und Bipyridin zur Flüssigkeit, e) Messung des an der Elektrode abfallenden Redoxsignals .
Das vorgeschlagene Verfahren ermöglicht einen sensitiven Nachweis von in einer Flüssigkeit befindlichen ersten Biopolymeren. Die Verwendung von mit einer KunststoffOberfläche versehenen Elektroden erlaubt eine kostengünstige Durchführung an des Verfahrens. Das Verfahren ermöglicht insbesondere auch eine Quantifizierung der in der Flüssigkeit enthaltenen ersten Biopolymere.
Unter den ersten und den zweiten Biopolymeren werden hier insbesondere Proteine, Peptide, DNA, RNA und dgl . verstanden. Das erste Biopolymer kann insbesondere eine zum zweiten Biopolymer komplementäre einzelsträngige DNA oder RNA sein.
Die zweiten Biopolymere sind an die KunststoffOberfläche vorzugsweise kovalent gebunden. In Kombination mit der vorgeschlagenen Verwendung von Osmiumtetroxid und Bipyridin wird eine besonders hohe Sensitivität erreicht.
Nach einer vorteilhaften Ausgestaltung ist der Kunststoff ein elektrisch leitfähiges Kompositmaterial, z.B. ein Verbund- stoff aus Kohlefasern und Polycarbonat . Vorteilhafterweise ist die Elektrode insgesamt aus dem Kunststoff hergestellt. Solche Elektroden können in einem kostengünstigen Pressverfahren hergestellt werden.
Weiterhin ist es möglich, daß die zweiten Biopolymere an eine auf der Oberfläche der Elektrode aufgebrachte, vorzugsweise aus Dextran oder Polyethylenglycol hergestellte, Matrix gebunden sind. Durch die Verwendung einer solchen Matrix kann die Dichte der Belegung der Oberfläche der Elektrode mit zweiten Biopoly eren erhöht werden. Nach einer weiteren Ausgestaltung wird beim Schritt lit. e eine der folgenden Messungen durchgeführt: Gleichspannungs- messung, zyklovoltammetrische Messung, chronoamperometrische Messung, chronovoltammetrische Messung. Ferner können beim Schritt lit. e ein Differtial-Puls-Voltammogramm oder ein Impedanzspektrum aufgenommen werden. Es ist auch möglich beim Schritt lit. e ein Wechselstromsignal phasensensitiv zu messen. Dem Wechselstromsignal kann ein Gleichspannungssignal aufgeprägt sein. Zur Quantifizierung der ersten Biopolymere kann über einen Peak des Meßsignals integriert werden. Als
Quantifizierungsgröße kann der Abstand zwischen Peakhöhe und Untergrund herangezogen werden.
Zur Durchführung von Mehrfachmessungen kann die Elektrode nach dem Schritt lit. e gespült oder geheizt werden. Durch das Heizen der Elektrode kann eine thermische Denaturierung der ersten Biopolymere erreicht werden. Bestimmte erste Biopolymere binden vorzugsweise bei einer vorgegebenen Temperatur. Durch Heizen bzw. Einstellen der Temperatur kann die Spezifität des Verfahrens weiter erhöht werden. Die Spezifität bzw. die Stringenz kann auch durch eine geeignete Einstellung des pH-Werts in der Flüssigkeit erhöht werden.
Zweckmäßigerweise werden die ersten Biopolymere vor dem Schritt lit. a einer Polymerase-Kettenreaktion unterworfen. Das ermöglicht den Nachweis besonders geringer Mengen an ersten Biopolymeren.
Das Verfahren wird anhand der Zeichnung und eines Ausfüh- rungsbeispiels näher erläutert.
Die einzige Figur zeigt ein Differtial-Puls-Voltammogramm einer unbelegten, einer mit einzelsträngigen Oligonukleotiden belegten und einer mit hybridisierten Oligonukleotiden belegten Arbeitselektrode nach einer Behandlung mit Osmiumtetroxid und Bipyridin. Die Arbeitselektroden bestehen jeweils aus Kohlenstoff-Verbundmaterial , welches vorzugsweise zu 30% aus Kohlefasern und zu 70% aus Polycarbonat zusammengesetzt ist. An Oberfläche der Arbeitselektroden wurden unter Verwendung von Carbodiimid nach einem Standardverfahren kovalent Oligo- nukleotide mit der Sequenz 5 * -GCC TTC CCA ACC ATT CCC TTA- 3 'gebunden. Die Belegungsdichte betrug 15fmol/mm2'. Die Hy- bridisierung der Oligonukleotide erfolgte in einer gepufferten Lösung aus 0,5-fachem TBE (TRIS Borat EDTA) , 0.5M NaCl und lOOfmol/μl an komplimnetären Oligonukleotiden. Nach der Hybridisierung wurden die Arbeitselektrode stringent gewaschen. Anschließend wurde eine unbehandelte, eine mit einzelsträngi- gen Oligonukleotiden belegte und eine mit hybridisierten Oligonukleotiden belegte Arbeitselektrode jeweils 30 Sekunden in einer Lösung aus 2 mM Os0 und 13 mM Bipyridin getaucht. Die Messung erfolgte unter Zuhilfenahme einer Platingegenelektro- de und einer Ag/AgCl-Referenzelektrodemit einem Autolab
PGSTAT 10 der Firma Ecochemie.
Die Hybridisierung der Targetoligonukleotide an der Arbeitselektrode kann durch das Anlegen einer Spannung beschleunigt werden. Die Belegungsdichte an Oligonukleotiden auf der Oberfläche der Arbeitselektrode kann durch Zugabe von Salz während der Belegung oder durch eine basische Vorbehandlung der Oberfläche erhöht werden. Z.B. kann in einer lOmM MgCl2 Lösung eine Belegungsdichte von 85fmol/mm2 erreicht werden. Bei einer dreistündigen Vorbehandlung der Oberfläche in 5M NaOH kann eine Belegungsdichte von 750fmol/mm2 erreicht werden.
Sofern mehrere Messungen hintereinander durchgeführt werden sollen, kann an die Elektrode nach dem Schritt lit. d eine entgegengesetzte Spannung angelegt werden. Außerdem kann die Elektrode nach dem Schritt lit. e gespült und/oder geheizt werden. Durch das Heizen der Elektrode kann eine thermische Denaturierung der ersten Biopolymere erreicht werden. Durch Heizen bzw. Einstellen der Temperatur der Elektrode kann aber auch die Spezifität des Verfahrens erhöht werden, weil vorgegebene erste Biopolymere bei einer spezifischen Temperatur binden.
SEQUENZPROTOKOLL
<110> november AG <120> Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von in einer Flüssigkeit enthaltenen Zielmolekülen
<130> 411639GA-mu <140> <141>
<160> 1 <170> Patentin Ver. 2.1
<210> 1
<211> 21
<212> DNA <213> Homo sapiens
<400> 1 gccttcccaa ccattccctt a 21

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zum Nachweis und/oder zur Quantifizierung von in einer Flüssigkeit enthaltenen ersten Biopolymeren, mit folgenden Schritten:
a) Bereitstellen einer Elektrode mit einer aus Kunststoff hergestellten Oberfläche, die mit zweiten zu den nachzuweisenden ersten Biopolymeren eine spezifische Affinität besit- zenden Biopolymeren beschichtet ist,
b) Inkontaktbringen der Elektrode mit der Flüssigkeit,
c) Anlegen eines vorgegebenen Spannungsprotokolls an die Elektrode, so daß eine Anreicherung der ersten Biopolymere an den zweiten Biopolymeren bewirkt wird,
d) Zugabe von Osmiumtetroxid und Bipyridin zur Flüssigkeit,
e) Messung des an der Elektrode abfallenden Redoxsignals .
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei der Kunststoff ein elektrisch leitfähiges Kompositmaterial ist.
3. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Elektrode insgesamt aus Kunststoff hergestellt ist.
4. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die zweiten Biopolymere an eine auf der Oberfläche der Elek- trode aufgebrachte, vorzugsweise aus Dextran oder Polyethylenglycol hergestellte, Matrix gebunden sind.
5. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei beim Schritt lit. e eine der folgenden Messungen durchgeführt wird: Gleichspannungsmessung, zyklovoltammetrische Messung, chronoamperometrische Messung, chronovoltammetrische Messung.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei beim Schritt lit. e ein Differtial-Puls-Voltammogramm aufgenommen wird.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei beim Schritt lit. e ein Impedanzspektrum aufgenommen wird.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, wobei beim Schritt lit. e eine Wechselstromsignal phasensensitiv gemessen wird.
9. Verfahren nach Anspruch 5, wobei das Wechselstromsignal einem Gleichspannungssignal aufgeprägt ist.
10. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei zur Quantifizierung der ersten Biopolymere über einen Peak eines Meßsignals integriert wird.
11. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei zur Mehrfachmessung die Elektrode nach dem Schritt lit. e gespült oder geheizt wird.
12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die ersten Biopolymere vor dem Schritt lit. a einer Polymera- se-Ketten-Reaktion unterworfen wird.
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Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005106034A1 (en) * 2004-04-29 2005-11-10 Agency For Science, Technology And Research Method and device for detection of nucleic acids and/or polypeptides
US8877035B2 (en) 2005-07-20 2014-11-04 Bayer Healthcare Llc Gated amperometry methods
US9005527B2 (en) 2006-10-24 2015-04-14 Bayer Healthcare Llc Transient decay amperometry biosensors
US9110013B2 (en) 2005-09-30 2015-08-18 Bayer Healthcare Llc Gated voltammetry methods
US9410917B2 (en) 2004-02-06 2016-08-09 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Method of using a biosensor
US9933385B2 (en) 2007-12-10 2018-04-03 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Method of using an electrochemical test sensor

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20200149095A1 (en) * 2018-11-14 2020-05-14 Element Biosciences, Inc. Low binding supports for improved solid-phase dna hybridization and amplification
US10704094B1 (en) 2018-11-14 2020-07-07 Element Biosciences, Inc. Multipart reagents having increased avidity for polymerase binding
US10876148B2 (en) 2018-11-14 2020-12-29 Element Biosciences, Inc. De novo surface preparation and uses thereof

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997001646A2 (en) * 1995-06-27 1997-01-16 The University Of North Carolina At Chapel Hill Electrochemical detection of nucleic acid hybridization
WO1998052042A1 (en) * 1997-05-14 1998-11-19 Keensense, Inc. Molecular wire injection sensors
WO1999067628A1 (en) * 1998-06-24 1999-12-29 Therasense, Inc. Multi-sensor array for electrochemical recognition of nucleotide sequences and methods

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4123933A1 (de) * 1991-07-19 1993-01-21 Krupp Corpoplast Masch Vorformling, verfahren zur herstellung des vorformlings sowie verfahren zur beheizung des vorformlings
US5591578A (en) * 1993-12-10 1997-01-07 California Institute Of Technology Nucleic acid mediated electron transfer
US5871918A (en) * 1996-06-20 1999-02-16 The University Of North Carolina At Chapel Hill Electrochemical detection of nucleic acid hybridization
WO1995029395A1 (en) * 1994-04-26 1995-11-02 The Regents Of University Of Michigan Unitary sandwich enzyme immunoassay cassette, device and method of use
DE19725190A1 (de) * 1997-06-14 1998-12-17 Innova Gmbh Vorrichtungen mit integrierten Elektroden aus elektrisch leitfähigen Kunststoffen
JP2967197B1 (ja) * 1998-08-11 1999-10-25 九州大学長 遺伝子の特殊一本鎖核酸部位の検出用プローブ、遺伝子の特殊一本鎖核酸部位の検出方法およびその装置

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997001646A2 (en) * 1995-06-27 1997-01-16 The University Of North Carolina At Chapel Hill Electrochemical detection of nucleic acid hybridization
WO1998052042A1 (en) * 1997-05-14 1998-11-19 Keensense, Inc. Molecular wire injection sensors
WO1999067628A1 (en) * 1998-06-24 1999-12-29 Therasense, Inc. Multi-sensor array for electrochemical recognition of nucleotide sequences and methods

Cited By (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9410917B2 (en) 2004-02-06 2016-08-09 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Method of using a biosensor
US10067082B2 (en) 2004-02-06 2018-09-04 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Biosensor for determining an analyte concentration
US7655404B2 (en) 2004-04-29 2010-02-02 Agency For Science, Technology And Research Method and device for detection of nucleic acids and/or polypeptides
WO2005106034A1 (en) * 2004-04-29 2005-11-10 Agency For Science, Technology And Research Method and device for detection of nucleic acids and/or polypeptides
US8877035B2 (en) 2005-07-20 2014-11-04 Bayer Healthcare Llc Gated amperometry methods
US10670553B2 (en) 2005-09-30 2020-06-02 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Devices using gated voltammetry methods
US9110013B2 (en) 2005-09-30 2015-08-18 Bayer Healthcare Llc Gated voltammetry methods
US9835582B2 (en) 2005-09-30 2017-12-05 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Devices using gated voltammetry methods
US11435312B2 (en) 2005-09-30 2022-09-06 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Devices using gated voltammetry methods
US9005527B2 (en) 2006-10-24 2015-04-14 Bayer Healthcare Llc Transient decay amperometry biosensors
US10190150B2 (en) 2006-10-24 2019-01-29 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Determining analyte concentration from variant concentration distribution in measurable species
US11091790B2 (en) 2006-10-24 2021-08-17 Ascensia Diabetes Care Holdings Ag Determining analyte concentration from variant concentration distribution in measurable species
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