WO2001037881A2 - Gentherapie von hiv-infizierten durch expression von membran-verankerten gp41-peptiden - Google Patents

Gentherapie von hiv-infizierten durch expression von membran-verankerten gp41-peptiden Download PDF

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    • C12N2740/16111—Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV env
    • C12N2740/16122—New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Definitions

  • the present invention relates to the gene therapy treatment of HIV infection by expression of membrane-anchored gp41 peptides.
  • vectors are being made available for the first time which code for a fusion protein which contains a peptide derived from HIV gp41 and a carboxy terminal attached by a flexible linker transmembrane anchor.
  • T-20 is a peptide, the ir.l-, the C-terminal heptad repeat, one of two sequence sections (cf.
  • T-20 proved to be a safe agent for short-term administration, which can be found in the Is able to effectively inhibit HIV replication.
  • very large amounts of the peptide are required in order to achieve an antiviral effect and the peptides are not bioavailable when given orally, they have a very short half-life and large-scale production is still extremely costly. to enable intracellular immunization with peptides derived from gp41 using a gene therapy approach.
  • the inventors therefore first cloned the sequences 5 'coding for T-20 to the IRES-NEO cassette (IRES: Internal riboso al entry site; NEO: Neomycin resistance gene) of the retroviral vector MPIN (see FIG. 1, Hildinger et al ., Hum. Gene Ther. 9 (1998) 33-42).
  • IRES-NEO cassette Internal riboso al entry site
  • NEO Neomycin resistance gene
  • the peptide expresses directly behind the signal peptide of the human low affinity nerve growth factor receptor (LNGFR, Fehse et al., Human Gene Therapy 8 (1997) 1815) (constructs M85 and M86), and on the other hand a construct was chosen that coding sequences for a membrane translocation signal (mts) derived from Kaposi fibroblast growth factor (amino acid positions 43-58 in the mts protein; Rojas, M., Donahue, JP, Tan, Z., Lin, YZ Nat. Bi ⁇ technol. 16 , 370-375 (1998)) in the reading direction (in frame) with T20 (see constructs M89 and M90 in FIG. 1).
  • mts membrane translocation signal
  • retroviral vectors were made by transfecting Phoenix packaging cells (Grignani, F., Kinsella, T., Mencarelli, A. et al., Cancer Res. 58, 14-19 (1998)) and the supernatants were made used to infect the T-helper cell line PM-1 (Bou-Habib, DC et al., J. Virol. 68 6006-6013 (1994)).
  • the MPIN vector was used, which contained only the neomycin resistance gene as a foreign gene.
  • gp41 peptide is understood to mean a fragment of the gp41 protein of HIV or a fragment, a variant or mutant thereof.
  • p24 production can be reduced by more than 2 orders of magnitude by transducing PM-1 with a retroviral vector that expresses a fusion protein in which the T-20 is C-terminal via a flexible peptide Linker is linked to a transmembrane peptide (membrane spanning domain, MSD) (see FIG. 1, M87), the fusion protein having the sequence given in SEQ ID NO: 2.
  • the present invention therefore relates to a nucleic acid sequence of the general formula
  • SP encodes a signal peptide which enables the transfer of an expressed peptide into the endoplasmic reticulu
  • FI encodes a fragment of the gp41 protein of HIV (preferably HIV-1) which comprises a section from a
  • Heptad repeat region contains "MSD” encodes a transmembrane anchor of a type I membrane protein and "hinge” encodes a protein sequence that is considered more flexible
  • Linker connects the peptides encoded by "FI” and "MSD”.
  • sequence coding for the signal peptide is derived from human, non-immunogenic proteins, preferably selected from the group consisting of sequences which code for signal peptides of cellular membrane proteins, such as the (human) low affinity nerve growth factor receptor (LNGFR), des Interleukin-2 receptor (IL-2R) and the granulocyte macrophage colony stimulating factor receptor (GM-CSFR).
  • LNGFR low affinity nerve growth factor receptor
  • IL-2R des Interleukin-2 receptor
  • GM-CSFR granulocyte macrophage colony stimulating factor receptor
  • Proteins whose cytoplasmic domain should be deleted serve as the transmembrane anchor of a type I membrane protein (i.e. a membrane protein whose N-terminus is outside and whose C-terminus is in the cell) in order to avoid any unwanted signal transduction by the protein.
  • a type I membrane protein i.e. a membrane protein whose N-terminus is outside and whose C-terminus is in the cell
  • Preliminary investigations have shown that there are no signal transduction effects from the expressed areas and that they do not oligomerize with other similar membrane proteins and thus have an indirect effect on cell functions.
  • Peptides from the group consisting of the transmembrane region of the LNGFR or the CD34 are preferred.
  • the nucleic acid sequence therefore preferably contains as MSD a nucleic acid sequence coding for this transmembrane anchor or for the fragments with a deleted cytoplasmic domain.
  • all flexible peptides can be used as flexible linkers which enable a flexible connection between the gp41 peptide and the transmembrane anchor, such as, for example, the hinges of ⁇ urtunglobulin G (IgG), the linker of the human P-glycoprotein (CA. Hrycyna et al ., Biochemistry 37 13660-13673 (1998)), the C-terminal linker of Human Replication Protein A (hsRPA; see. DM Jacobs et al. , J. Biomol. NMR 14, 321-331 (1999)) and the linker of the parathyroid hormone-related protein (M. Weidler et al. FEBS Lett. 444, 239-244 (1999)).
  • IgG ⁇ urtunglobulin G
  • CA human P-glycoprotein
  • hsRPA Human Replication Protein A
  • DM Jacobs et al. J. Biomol. NMR 14, 321-331 (1999)
  • the linker is preferably up to 30 amino acids in length.
  • the nucleic acid sequence according to the invention of the above formula therefore contains a nucleic acid sequence section coding for such a linker, preferably the hinge of IgG according to nucleotides 1636 to 1683 of SEQ ID NO: 1.
  • FI codes for a peptide (referred to as a gp41 peptide) which corresponds to a sequence section of the HIV gp41 protein (cf. SEQ ID NO: 4, including the gp41 proteins of the HIV quasi-species (clades)), which is selected from a region which includes the two heptad repeat regions (cf. amino acid positions 539-589 and 622-662 in SEQ ID NO: 3 and 4).
  • HIV includes all types of HIV, especially HIV-1. In this connection, it is to be expected, for example, that a cross-reaction with HIV-1 will also occur when using an HIV-2 gp41 peptide and vice versa.
  • the gp41 peptides encoded by FI preferably have a minimum length of 28 amino acids, so that FI comprises at least 84 nucleotides.
  • the FI used is, in particular, a nucleic acid sequence coding for the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 from positions 31 to 66 (corresponds to peptide T-20), preferably that in SEQ ID NO: 1 from nucleotide 1528 to nucleotide 1635 sequence shown.
  • the peptide coded by FI has a maximum length of 40 amino acids, corresponding to a maximum length of 120 bases for the coding region FI.
  • the nucleic acid sequence of the general formula "SP-FI-Hinge-MSD" has the sequence shown in SEQ ID N0: 1 from nucleotide 1438 to nucleotide 1773, that for the sequence shown in SEQ ID NO: 2 Fusion protein encoded.
  • the invention further relates to the fusion protein of the general formula which is encoded in each case by the vectors or nucleic acid sequences mentioned
  • sp is a signal peptide which enables the transfer of an expressed peptide into the endoplasmic reticulum
  • fi is a fragment of the gp41 protein of HIV which contains a section from a heptad repeat region
  • msd is a transmembrane anchor of a type I membrane protein and "hinge” is a protein sequence that connects the peptides "fi” and “msd” as a flexible linker.
  • the fusion protein has the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2.
  • the fusion protein obtained therefrom after cleavage of the signal peptide ("fi-hinge-msd") accordingly has the sequence shown in SEQ ID NO: 2 from position 31 to position 111.
  • homologs or variants and fragments of the fusion protein which have essentially the same pharmacological and biological activity and / or immunogenicity and also for these Homologs and fragments encoding nucleic acid sequences.
  • homologues or variants are understood to mean those sequences which differ from the previously known natural sequences or sequence segments by exchanging deletion or insertion of individual amino acids.
  • homologs, variants and fragments of the protein shown in SEQ ID NO: 2 and the nucleic acid sequences encoding them are included in particular.
  • the invention further relates to a vector which a. Contains nucleic acid sequence.
  • the vector is preferably a retroviral vector.
  • the vector has the structure shown in FIG. 1.
  • the vector insert of the general formula "SP-FI-Hinge-MSD" coding for the fusion protein according to the invention preferably has the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 1.
  • a sample of the latter vector was deposited on November 11, 1999 at the German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ), Maschero- der Weg lb, 38124 Braunschweig, Germany, under number DSM 13139 according to the Budapest Treaty.
  • the above-mentioned vector can be used for the in vitro transfection of T lymphocytes and hematopoietic stem cells, these transfected cells being administered to HIV-infected people for therapeutic treatment.
  • the vectors according to the invention are particularly suitable for use (ie for direct (in vivo) application) in the gene therapy treatment of people infected with HIV, which are preferably vectors with targeted tropism, ie with specificity towards HIV target cells (CD4 + cells).
  • the invention therefore further relates to a gene therapeutic medicinal product which contains an above-mentioned vector.
  • the present invention is explained in more detail below with the aid of examples.
  • HeLa, 293 and Phoenix Airtpho cells were cultured in Dulbecco's medium (Gibco, Paisley, Great Britain) supplemented with 10% fetal calf serum (fetal calf serum, FCS; Sig a, Deisenhofen, Germany).
  • PM-1 was cultured in RPMI with 10% FCS.
  • the viral clones NL4-3 / GFP, NL4-3env-GFP and pNL4-3 have already been described previously (NL4-3: Welker R., Harris, M., Cardel, BS Krausslich, HGJ Virol.
  • NL4-2env-GFP He, J., Chen, Y., Farzan, M., et al. Nature 385, 645-649) (1997)).
  • plasmids pSNJG, pSVIIIenvJRFL, pSVIIIenvYU2 and pSVIIIenvHXB2 Welker, R., Harris, M., Cardel, B. & Krausslich, HGJ Virol. 72, 8833-8840 (1998); He, J., Chen, Y., Farzan, M., et al.
  • Infectious replication-competent viruses were generated by transfection of NL4-3 or NL4-3 / GFP-DNA in HeLa cells.
  • Pseudotyped replication-incompetent HIV were produced by co-transfecting pNL4-3env-GFP and one of the envelope expression plasmids in 293 cells.
  • the retroviral vectors were packaged in Phoenix packaging cells as previously described (Grignani F., Kinsella, T., Mencarelli, A., et al., Cancer Res. 58, 14-19 (1998)). Cloning of the retroviral vectors
  • LNGFR human low affinity nerve growth factor receptor
  • the sequence coding for the fusion-inhibiting peptide was amplified from NL4-3 using the primers T20Bgl + (M85; SEQ ID NO: 7) or T20Bgl-RGD + (M86; SEQ ID NO: 8) and T20Hind- (SEQ NO ID: 9) , which introduced a Bglll interface at the 5 'end and a Hindlll interface at the 3' end.
  • the fragments were alloyed into the vector pBluescriptKS digested with Notl and Hindlll.
  • M87 and M88 The transmembrane domain of dLNGFR was derived from dLN using a 5 'primer which also contained the heavy chain for the hinge region of the murine IgG and a BglII cleavage site (hingeTMBgl +; SEQ ID NO: 10) , and a 3 'primer of the retroviral vector dLN (U3; sequence ID NO: 11).
  • This PCR product was inserted together with the signal peptide PCR product (SPNot + / SPBgl-) into the vector pBluescriptKS (after digestion with Notl and Hindlll), and the sequence for T20 (based on NL4-3) was subsequently as PCR product which contained flanking BglII interfaces (by using the PCR primers T20Bgl + corresponding to SEQ ID NO: 7 (see above) and T20Bgl- corresponding to SEQ ID NO: 12).
  • M89 and M90 The sequence coding for T20 with a membrane translocation signal (mts) was started from NL4-3 using the primers RGD-T20Not + (M89; SEQ ID NO: 13) or T20Not + (M90; SEQ ID NO: 14) and T20mtsHind- (SEQ ID NO: 15) amplified. There is a Notl interface in the 5 'primer and a Hindlll interface in the 3' primer. The membrane translocation signal (mts) was introduced with the 3 'primer. The product was introduced into the vector pBluescriptKS digested with Notl and Hindlll.
  • PM-1 cells (5xl0 4 in 0.5 ml) were infected with 3000 to 6000 TCID50 (tissue culture infectious dose 50%) replication-competent HIV.
  • TCID50 tissue culture infectious dose 50%
  • the medium was replaced on day 5, the cells were incubated overnight, and the cell-free supernatants were analyzed using a p24 ELISA as previously described (Konvalinka, J., Litterst., MA, Welker, R. , et al. J. Virol. 69, 7180-7186 (1995)). The results are shown in Fig. 2.
  • HXB vesicular stomatitis virus
  • VSV G vesicular stomatitis virus
  • the env genes of the latter two clones were cloned directly from primary HIV isolates (He, J., Chen, Y., Farzan, M. et al. Nature 385, 645-649 (1997).
  • These HIV pseudotypes capable of "single round” infections, but does not spread over the entire culture, in PM1 / M87 cells (ie in cells which were transfected with the vector coding for the membrane-anchored T-20 fusion protein according to the invention) the infection was inhibited by a factor of 15 to 30 more than in the case of the VSV-G pseudotypes in which no significant inhibition was observed (cf. FIG. 4), as was the free T -20-peptide (cf. Wild CT. Et al. Proc. Natl. Acad.
  • the genetically expressed membrane-anchored T-20 fusion protein also inhibited the through the envelopes of the various HIV variants mediated entry, and these results clearly show that the virus is de s is inhibited by the HIV envelope (HIV-env) mediated virus entry, which is most likely a membrane fusion. All steps of HIV replication following virus entry were not affected.
  • Dmc micmabonalc depository accepts the microorganism designated under I. de. it was received on 1999-11-11 (date of first sighting) 1
  • microorganism referred to under I was received by this international depository on (date of first filing) and an application to convert this first filing into a deposit under the Budapest Treaty was received on (date of receipt of the request for conversion).

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Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft die gentherapeutische Behandlung einer HIV-Infektion durch Expression Membran-verankerter gp41-Peptide. Dazu werden erstmals Vektoren zur Verfügung gestellt, die für ein Fusionsprotein kodieren, das ein aus gp41 von HIV abgeleitetes Peptid und einen Carboxyterminal durch einen flexiblen Linker angehängten Transmembrananker enthält.

Description

Gentherapie von HlV-Infizierten durch Expression von Membran-verankerten qp41-Peptiden
Die vorliegende Erfindung betrifft die gentherapeutische Behandlung einer HIV-Infektion durch Expression Membran-verankerter gp41-Peptide . Dazu werden erstmals Vektoren zur Verfügung gestellt, die für ein Fusionsprotein kodieren, das ein aus gp41 von HIV abgeleitetes Peptid und einen carboxyterminal durch einen flexiblen Linker angehängten Transmembrananker enthält.
Zur Therapie von HIV-Infektionen wurden bereits die unterschiedlichsten Therapieansätze vorgeschlagen. Es hat sich jedoch gezeigt, daß die verfügbaren Wirkstoffe für viele Patienten nicht verträglich sind. Um die Therapie von AIDS zu verbessern, wird ständig nach neuen Angriffspunkten und Wirkstoffen mit unterschiedlichem Toxizitätsprofil gesucht. In diesem Zusammenhang wurden bereits verschiedene gentherapeutische Ansätze vorgeschlagen, um die unterschiedlichen Schritte bei der Replika- tion von HIV zu hemmen (vergl. Sorg T. & Methali, M. Trans fus . Sei . 18, 277-289 (1997)). Von Wild et al . (Wild, CT. Shugars , D.C. Greenwell, T.K. McDanal, C.B. & Matthews, T.J. Proc . Na tl . Acad. Sei U. S . A . 91, 9770-9774 (1994)) wurde ein Therapieansatz vorgeschlagen, der auf der Beobachtung beruht, daß Peptide, die von dem Transmem- branprotein gp41 (vgl. SEQ ID NO: 4 entsprechen numerische Kennzahl <400> gemäß WIPO Standard ST. 25: 4) des HIV abgeleitet sind, wie z.B. das früher als DP178 bezeichnete Peptid T-20, wirksam die HIV-Fusion und den Eintritt in die Zelle verhindern können. Bei T-20 handelt es sich um ein Peptid, das ir.l-, dem C- terminalen Heptad repeat, einem von zwei Sequenzabschnitten (vgl. Positionen 539-589 und 622-662 der SEQ ID NO: 4) in Regionen der Ektodomäne des gp41, überlappt, und die HIV-Infektion in vitro effektiv inhibieren kann (Weissenhborn, W., Dessen, A. , Harrison, S.C. Skehel, J.J. & Wiley, D.C. Nature 387, 426-430 (1997); Chan, D.C. Fass, D., Berger, J.M. & Kim, P.S. Cell 89. 263-273 (1997); Furuta, R.A. , Wild, CT., Weng Y & Weiss, CD. Nat . Struct . Biol . 5, 276-279 (1998)).
Im Rahmen einer klinischen Studie (Kilby, J.M., Hopkins, S., Venetta, T.M. et al . Na t . Med. 4, 1302-1307 (1998)) erwies sich T-20 bei kurzfristiger Verabreichung als sicheres Mittel, das in der Lage ist, die HIV-Replikation wirksam zu inhibieren. Da jedoch sehr große Mengen des Peptids benötigt werden, um einen antiviralen Effekt zu erzielen und die Peptide bei oraler Gabe nicht bioverfügbar sind, eine sehr kurze Halbwertszeit besitzen und die Herstellung in großem Maßstab noch immer extrem kostenaufwendig ist, liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde, die intrazelluläre Immunisierung mit Peptiden, die von gp41 abgeleitet sind, durch einen gentherapeutischen Ansatz zu ermögli- chen.
Von den Erfindern wurden daher zunächst die für T-20 kodierenden Sequenzen 5' zur IRES-NEO-Cassette (IRES: Internal riboso al entry Site; NEO: Neomycin-Resistenzgen) des retroviralen Vektors MPIN kloniert (vergl. Figur 1, Hildinger et al . , Hum . Gene Ther. 9 (1998) 33-42). Um die Sekretion des T-20 zu erreichen, wurde das Peptid einerseits direkt hinter dem Signalpeptid des humanen low affinity nerve growth factor receptor (LNGFR, Fehse et al . , Human Gene Therapy 8 (1997) 1815) expri iert (Konstrukte M85 und M86), zum anderen wurde ein Konstrukt gewählt, das die kodieren- den Sequenzen für ein von Kaposi fibroblast growth factor abgeleitetes Membran-Translokationssignal (mts) (Aminosäurepositionen 43-58 im mts-Protein; Rojas, M. , Donahue, J.P., Tan, Z., Lin, Y.Z. Nat . Biσtechnol . 16, 370-375 (1998)) in Leserichtung (in frame) mit T20 enthielt (vergl. Konstrukte M89 und M90 in Figur 1). Mit Hilfe dieser Konstrukte wurden retrovirale Vektoren durch Transfektion von Phoenix-Verpackungszellen (Grignani, F., Kinsella, T., Mencarelli, A. et al . , Cancer Res . 58, 14-19 (1998)) hergestellt, und die Überstände wurden verwendet, um die T-Helferzellinie PM-1 (Bou-Habib, D.C. et al . , J. Virol . 68 6006-6013 (1994)) zu infizieren. Als Kontrolle wurde der MPIN- Vektor verwendet, der ausschließlich das Neomycin-Resistenzgen als Fremdgen enthielt. Nach G418-Selektion wurden die Massenkulturen mit HIV-1 infiziert, das aus den proviralen Klonen NL4- 3 (Adachi, A. , Gendelman H.E., Koenig, S., Folks , T., Willey, R., Rabson, A. & Martin, M.A. , J. Virol . 59 284-291 (1986)) oder NL4-3/GFP (Welker, R. , Harris, M. , Cardel , B. & Krausslich, H.G. J. Virol . 72, 8833-8840 (1998)) gewonnen wurde. Diese beiden Klone unterscheiden sich dadurch, daß bei NL4-3/GFP das Green fluorescent protein (GFP) anstelle des nef-Proteins exprimiert wird, so daß die HIV-1-Replikation anhand der p24-Antigen-Pro- duktion bzw. mittels Durchflußzytometrie überwacht werden kann. Entgegen allen Erwartungen führte die Expression von T-20-Peptid unter Verwendung der o.g. retroviralen Vektorkonstrukte aber überraschenderweise zu keinerlei antiviralen Aktivität.
In diesen Kσnstrukten wurde daher zusätzlich eine für das Inte- grin-bindende RGD-Peptid kodierende Sequenz in frame mit der für T-20 kodierenden Region einkloniert. Der Herstellung dieser Konstrukte lag die Überlegung zugrunde, daß das RGD-Motiv die se- kretierten Peptide an der Zellmembran festhalten könnte. Aber auch mit dem RGD-enthaltenden sekretierten T-20 Peptid (vergl. Figur 1, M86) wurde noch eine reproduzierbare HIV-Replikation beobachtet .
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wurde nun überraschender- weise festgestellt, daß sich die Produktion von p24 und die Verbreitung von NL4-3/GFP sehr stark vermindern läßt, wenn man ein Fusionsprotein exprimiert, das zusätzlich zu einem amino- terminalen gp41-Peptid daran carboxyterminal über einen flexiblen Linker angehängten Transmembrananker enthält. Unter "gp41- Peptid" wird in diesem Zusammenhang ein Fragment des gp41-Pro- teins des HIV oder ein Fragment, eine Variante oder Mutante desselben verstanden.
So wurde beispielsweise festgestellt, daß sich die p24-Produk- tion um mehr als 2 Zehnerpotenzen vermindern läßt, wenn man PM-1 mit einem retroviralen Vektor transduziert , der ein Fusionsprotein exprimiert, bei dem T-20 C-terminal über einen flexiblen Peptid-Linker mit einem Transmembran-Peptid (membrane spanning domain, MSD) verknüpft ist (vergl. Figur 1, M87), wobei das Fusionsprotein die in SEQ ID NO: 2 angegebene Sequenz aufweist.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist daher eine Nuklein- säuresequenz der allgemeinen Formel
5'- SP - FI - Hinge - MSD -3',
in der
" 5 ' " das 5 '-Ende der Nukleinsäuresequenz bezeichnet,
"" 33 '' "" das 3 '-Ende der Nukleinsäuresequenz bezeichnet,
"SP " für ein Signalpeptid kodiert, das den Transfer eines exprimierten Peptids in das endoplasmatische Reticulu ermöglicht, "FI" für ein Fragment des gp41-Proteins von HIV (vorzugs- weise HIV-1) kodiert, das einen Abschnitt aus einer
Heptad Repeat-Region enthält, "MSD" für einen Transmembrananker eines Typ I-Membranproteins kodiert und "Hinge" für eine Proteinsequenz kodiert, die als flexibler
Linker die von "FI" und "MSD" kodierten Peptide ver- bindet.
Die für das Signalpeptid kodierende Sequenz ist von humanen, nicht-immunogenen Proteinen abgeleitet, vorzugsweise ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Sequenzen, die für Signalpeptide zellulärer Membranproteine kodieren, wie zum Beispiel des (humanen) low affinity nerve growth factor receptor (LNGFR) , des Interleukin-2-Rezeptors (IL-2R) und des granulocyte macrophage colony stimulating factor receptor (GM-CSFR) .
Als Transmembrananker eines Typ I-Membranproteins (d.h. eines Membranproteins, dessen N-Terminus sich außerhalb und dessen C- terminus sich in der Zelle befindet), dienen Proteine, deren zytoplasmatische Domäne deletiert sein sollte, um eventuell unerwünschte Signaltransduktion durch das Protein zu vermeiden. In Voruntersuchungen läßt sich abgeklären, daß von den expri- mierten Bereichen keine Signaltransduktionswirkungen ausgehen und sie nicht mit anderen, ähnlichen Membranproteinen oligomeri- sieren und auf diese Weise eine indirekte Wirkung auf die Zellfunktionen ausüben. Es kommen vorzugsweise Peptide aus der Grup- pe bestehend aus der Transmembranregion des LNGFR oder des CD34 in Frage. Die Nukleinsäuresequenz enthält daher vorzugsweise als MSD eine für diese Transmembrananker bzw. für die Fragmente mit deletierter zytoplasmatischer Domäne kodierende Nukleinsäuresequenz .
Als flexible Linker können erfindungsgemäß sämtliche flexiblen Peptide dienen, die eine flexible Verbindung zwischen dem gp41- Peptid und dem Transmembrananker ermöglichen, wie z.B. der Hinge von Iπurtunglobulin G (IgG), der Linker des humanen P-Glykopro- teins (CA. Hrycyna et al . , Biochemistry 37 13660-13673 (1998)), der C-terminale Linker des Human Replication Protein A (hsRPA; vgl. D.M. Jacobs et al . , J. Biomol . NMR 14, 321-331 (1999)) und der Linker des Parathyroid hormone-related protein (M. Weidler et al. FEBS Lett . 444, 239-244 (1999)). Der Linker hat vorzugsweise eine Länge von bis zu 30 Aminosäuren. Die erfindungsgemäße Nukleinsäuresequenz der obigen Formel enthält daher einen für einen solchen Linker kodierenden Nukleinsäuresequenzabschnitt , vorzugsweise den Hinge von IgG gemäß Nukleotiden 1636 bis 1683 der SEQ ID NO: 1.
Wie bereits erwähnt, kodiert FI für ein Peptid (als gp41-Peptid bezeichnet), das einem Sequenzabschnitt des HIV-gp41-Proteins (vgl. SEQ ID NO: 4, einschließlich der gp41-Proteine der HIV- Quasispezies (clades)) entspricht, der aus einem Bereich ausgewählt ist, der die beiden Heptad-Repeatregionen (vgl. Aminosäu- repositionen 539-589 und 622-662 in SEQ ID NO: 3 und 4) einschließt. In diesem Zusammenhang schließt "HIV" alle HIV-Typen ein, insbesondere HIV-1. In diesem Zusammenhang ist beispielsweise zu erwarten, daß es auch bei Verwendung eines HIV-2 gp41- Peptids zu einer Kreuzreaktion mit HIV-1 kommt und umgekehrt.
Die von FI kodierten gp41-Peptide haben vorzugsweise eine Mindestlänge von 28 Aminosäuren, so daß FI mindestens 84 Nukleotide umfaßt. Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird als FI insbesondere eine für die in SEQ ID NO: 2 von Position 31 bis 66 dargestellte Aminosäuresequenz (entspricht Peptid T-20) kodierende Nukleinsäuresequenz verwendet, vorzugsweise die in SEQ ID NO:l von Nukleotid 1528 bis Nukleotid 1635 dargestellte Sequenz. Gemäß einer besonderen Ausführungsorm weist das von FI kodierte Peptid eine Länge von maximal 40 Aminosäuren auf, entsprechend einer Maximallänge von 120 Basen für den kodierenden Bereich FI .
Gemäß einer besonderen Ausführungssform der Erfindung weist die Nukleinsäuresequenz der allgemeinen Formel "SP-FI-Hinge-MSD" die in SEQ ID N0:1 von Nukleotid 1438 bis Nukleotid 1773 dargestell- te Sequenz auf, die für das in SEQ ID NO: 2 dargestellte Fusionsprotein kodiert. Gegenstand der Erfindung ist ferner das von den genannten Vektoren bzw. Nukleinsäuresequenzen jeweils kodierte Fusionsprotein der allgemeinen Formel
NH2- sp - fi - hinge - msd -COOH,
in der
"NH2" das aminoterminale Ende des Proteins bezeichnet, "COOH" das carboxyterminale Ende des Proteins bezeichnet,
"sp" ein Signalpeptid ist, das den Transfer eines exprimier- ten Peptids in das endoplasmatische Reticulum ermöglicht, "fi" ein Fragment des gp41-Proteins von HIV ist, das einen Abschnitt aus einer Heptad Repeat-Region enthält,
"msd" ein Transmembrananker eines Typ I-Membranproteins ist und "hinge" eine Proteinsequenz ist, die als flexibler Linker die Peptide "fi" und "msd" verbindet.
Bezüglich der Definitionen von "sp", "fi", "hinge" und "msd" wird auf die obigen Definitionen der Sequenzelemente "SP", "FI", "Hinge" und "MSD" verwiesen, wo die strukturellen und funktioneilen Merkmale des Fusionsproteins bzw. der einzelnen Protein- Teilbereiche bereits erwähnt sind.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform hat das Fusionsprotein die in SEQ ID NO: 2 dargestellte Aminosäuresequenz. Das nach Abspaltung des Signalpeptids daraus erhaltene Fusionsprotein ( "fi-hinge-msd" ) hat demgemäß die in SEQ ID NO: 2 von Position 31 bis Position 111 gezeigte Sequenz.
Erfindungsgemäß eingeschlossen sind ferner Homologe bzw. Varianten und Fragmente des genannten Fusionsproteins, die die im wesentlichen die gleiche pharmakologische und biologische Wirksamkeit und/oder Immunogenität aufweisen sowie die für diese Homologen und Fragmente kodierenden Nukleinsäuresequenzen. Unter Homologen bzw. Varianten werden in diesem Zusammenhang solche Sequenzen verstanden, die von den bislang bekannten natürlichen Sequenzen oder Sequenzabschnitten, durch Austausch Deletion oder Insertion einzelner Aminosäuren abweichen. In diesem Zusammenhang sind insbesondere Homologe, Varianten und Fragmente des in SEQ ID NO: 2 dargestellten Proteins sowie die sie kodierenden Nukleinsäuresequenzen eingeschlossen .
Gegenstand der Erfindung ist ferner ein Vektor, der eine o.g. Nukleinsäuresequenz enthält. Bei dem Vektor handelt es sich vorzugsweise um einen retroviralen Vektor.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung weist der Vektor den in Figur 1 dargestellten Aufbau auf. Das für das erfindungsgemäße Fusionsprotein kodierende Vektor-Insert der allgemeinen Formel "SP-FI-Hinge-MSD" weist vorzugsweise die in SEQ ID NO: 1 dargestellte Nukleinsäuresequenz auf. Eine Probe des letztgenannten Vektors wurde am 11.11.1999 bei der Deutschen Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen (DSMZ), Maschero- der Weg lb, 38124 Braunschweig, Deutschland, unter der Nummer DSM 13139 nach dem Budapester Vertrag hinterlegt.
Der oben genannte Vektors läßt sich zur in vi tro Transfektion von T-Lymphozyten und hamatopoetischen Stammzellen verwenden, wobei diese transfizierten Zellen HlV-Infizierten zur therapeutischen Behandlung verabreicht werden. Die erfindungsgemäßen Vektoren sind zur Verwendung (d.h. zur unmittelbaren ( in vivo) Applikation) bei der gentherapeutischen Behandlung von mit HIV Infizierten besonders geeignet, wobei es sich vorzugsweise um Vektoren mit gezieltem Tropismus, d.h. mit Spezifität gegenüber HIV Zielzellen (CD4+ Zellen) handelt. Die Erfindung betrifft daher ferner ein gentherapeutisches Arzneimittel, das einen oben genannten Vektor enthält. Die vorliegende Erfindung wird nachfolgend anhand von Beispielen näher erläutert.
Beispiele
Zellen und Viren
HeLa-, 293- und Phoenix-Airtpho-Zellen wurden in Dulbecco's Medium (Gibco, Paisley, Großbritannien), das mit 10% foetalem Kälberserum (fetal calf serum, FCS; Sig a, Deisenhofen, Deutschland) supplementiert war, kultiviert. PM-1 wurde in RPMI mit 10% FCS kultiviert. Die viralen Klone NL4-3/GFP, NL4-3env-GFP und pNL4-3 wurden bereits zuvor beschrieben (NL4-3: Welker R. , Harris, M. , Cardel, B. S. Krausslich, H.G. J. Virol . 72, 8833-8840 (1998); NL4-2env-GFP: He, J., Chen, Y., Farzan, M. , et al . Nature 385, 645-649) (1997)). Um den env-defizienten Klon NL4-3env-GFP zu pseudotypisieren, wurden die Plasmide pSNJG, pSVIIIenvJRFL, pSVIIIenvYU2 und pSVIIIenvHXB2 (Welker, R. , Harris, M., Cardel, B. & Krausslich, H.G. J. Virol . 72, 8833-8840 (1998); He, J . , Chen, Y., Farzan, M. , et al . Nature 385, 645-649) (1997); von Laer, D., Thomsen, S., Vogt, B., et al . , J. Virol 72, 1424-1430 (1998)) verwendet. Diese Plasmide enthalten die VSV G-cDNA bzw. die cDNA der HIV-Hüllen JR-FL, YU2 und HXB2.
Infektiöse replikationskompetente Viren wurden durch Trans- fektion von NL4-3 oder NL4-3/GFP-DNA in HeLa-Zellen erzeugt. Pseudotypisierte replikationsinkompetente HIV wurden durch Co- Transfektion von pNL4-3env-GFP und eines der Hüll-Expressions- plasmide in 293-Zellen hergestellt. Die retroviralen Vektoren wurden in Phoenix-Verpackungszellen wie zuvor beschrieben (Grignani F., Kinsella, T., Mencarelli, A. , et al . , Cancer Res . 58, 14-19 (1998)) verpackt. Klonierunα der retroviralen Vektoren
M85 und M86: Die für das Signalpeptid des humanen low affinity nerve growth factor receptor (LNGFR) kodierende Sequenz wurden durch Poly erasekettenreaktion (PCR) ausgehend von dem Vektor dLN unter Verwendung der Primer SPNot+ (Sequenz ID NO: 5) und SPBgl2 (SEQ ID NO: 6) amplifiziert , wodurch eine Notl-Schnitt- stelle am 5 '-Ende und eine Bglll-Schnittstelle am 3 '-Ende eingeführt wurden (dLN: Fehse et al . , Human Gene Therapy 8 (1997) 1815) . Die für das fusionsinhibierende Peptid kodierende Sequenz wurde aus NL4-3 unter Verwendung der Primer T20Bgl+ (M85; SEQ ID N0:7) oder T20Bgl-RGD+ (M86; SEQ ID NO:8) und T20Hind- (SEQ NO ID:9) amplifiziert , wodurch eine Bglll-Schnittstelle am 5 ' -Ende und eine Hindlll-Schnittstelle am 3 ' -Ende eingeführt wurden. Die Fragmente wurden in den mit Notl und Hindlll verdauten Vektor pBluescriptKS legiert.
M87 und M88: Die Transmembran-Domäne von dLNGFR wurde ausgehend von dLN unter Verwendung eines 5 '-Primers, der auch die für die Hinge-Region der murinen IgG schweren Kette und eine Bglll- Schnittstelle enthielt (hingeTMBgl+; SEQ ID NO:10), und eines 3 '-Primers des retroviralen Vektors dLN (U3-; Sequenz ID NO: 11) amplifiziert . Dieses PCR-Produkt wurde zusammen mit dem Signal- peptid-PCR-Produkt (SPNot+/SPBgl- ) in den Vektor pBluescriptKS (nach Verdau mit Notl und Hindlll) eingefügt, und die Sequenz für T20 wurde (ausgehend von NL4-3) nachfolgend als PCR-Produkt, das flankierende Bglll-Schnittstellen enthielt (durch Verwendung der PCR-Primer T20Bgl+ entsprechend SEQ ID NO: 7 (s.o.) und T20Bgl- entsprechend SEQ ID NO: 12), eingefügt.
M89 und M90: Die für T20 kodierende Sequenz mit einem Membran- translokationssignal (mts) wurde ausgehend von NL4-3 unter Verwendung der Primer RGD-T20Not+ (M89; SEQ ID NO: 13) oder T20Not+ (M90; SEQ ID NO: 14) und T20mtsHind- (SEQ ID NO: 15) amplifi- ziert. Im 5 '-Primer ist eine Notl-Schnittstelle vorhanden, und im 3 '-Primer liegt eine Hindlll-Schnittstelle vor. Das Membran- translokationssignal (mts) wurde mit dem 3 ' -Primer eingeführt. Das Produkt wurde in den mit Notl und Hindlll verdauten Vektor pBluescriptKS eingeführt.
Die für die verschiedenen T20-Fusionsproteine kodierenden Gene wurden dann als Notl x Hindlll-Fragmente zusammen mit der polio- IRES aus SF1 MIN in den Vektor MPIN (Hildinger et al . , Hum. Gene Ther. 9 (1998) 33-42) transferiert.
Infektion mit HIV
PM-1-Zellen (5xl04 in 0,5 ml) wurden mit 3000 bis 6000 TCID50 (tissue culture infectious dose 50%) replikationskompetentem HIV infiziert. Für die Analyse der p24-Produktion wurde das Medium am Tag 5 ausgetauscht, die Zellen wurden über Nacht inkubiert, und die zellfreien Überstände wurden unter Verwendung eines p24 ELISA wie zuvor beschrieben (Konvalinka, J., Litterst . , M.A. , Welker, R. , et al . J. Virol . 69, 7180-7186 (1995)) untersucht. Die Ergebnisse sind in Fig. 2 dargestellt.
Die Infektion mit NL4-3/GFP wurde zu den angegebenen Zeitpunkten ferner mittels durchflußzytrometrischer Analyse mit einem FACScalibur (Beckton Dickinson, Heidelberg, Deutschland) über- wacht. Dazu wurden PM-1 (mit und ohne die Vektoren MPIN und M85 bis M87) mit einer moi von 0.01 (moi: Infektionsmultiplizität ; bezeichnet die Anzahl von Viren-Partikeln, mit denen eine Zelle infiziert wird) mit NL-4/GFP infiziert und an den Tagen 4, 7 und 10 durchflußzytometrisch analysiert. Der Prozentsatz EGFP-posi- tiver und damit HlV-infizierter Zellen ist in Fig. 3 für die verschiedenen Kulturen im Verlauf gezeigt. Die Nachweisgrenze liegt bei ca 0.1 % positiven Zellen. Untersuchung des Wirkmechanismus
Um zu ermitteln, auf welcher Stufe die HIV-Replikation inhibiert wird, wurden mit dem Klon NL4-3env-GFP "Single round "-Infektio- nen durchgeführt. Der Klon NL4-3env-GFP ist aufgrund einer Mutation im env-Gen replikations-defekt und exprimiert GFP anstelle von nef . Zur Herstellung infektiöser Virionen wurde der Vektor mit den Hüllen dreier verschiedener HlV-Clone (HXB, YU2 und JR- FL) sowie mit dem G-Protein des vesikulären Stomatitisvirus (VSV G) pseudotypisiert . HXB wird als T-tropisch klassifiziert, mit Verwendung des Co-Rezeptors CXCR4 , während YU2 und JR-FL M-tro- pisch sind und CCR-5 verwenden. Die env-Gene der beiden letztgenannten Klone wurden direkt aus primären HlV-Isolaten kloniert (He, J., Chen, Y., Farzan, M. et al . Na ture 385, 645-649 (1997). Diese HlV-Pseudotypen sind zu "Single round "-Infektionen in der Lage, verbreiten sich aber nicht über die gesamte Kultur. In PM1/M87 Zellen (d.h. in Zellen, die mit dem erfindungsgemäßen, für das Membran-verankerte T-20-Fusionsprotein kodierenden Vektor transfiziert waren) wurde die Infektion über die drei ver- schiedenen HIV-Hüllen um einen Faktor von 15 bis 30 stärker inhibiert als im Falle der VSV-G-Pseudotypen, bei denen keine signifikante Inhibierung beobachtet wurde (vergl. Figur 4). Ebenso wie das freie T-20-Peptid (vgl. Wild CT. et al . Proc . Natl . Acad. Sei . USA 91, 9770-9774 (1994), inhibierte auch das gentechnisch exprimierte Membran-verankerte T-20-Fusionsprotein den durch die Hüllen der verschiedenen HIV-Varianten vermittelten Eintritt. Diese Ergebnisse zeigen eindeutig, daß das Virus auf der Stufe des durch die HIV-Hülle (HlV-env) vermittelten Viruseintritts inhibiert wird, bei der es sich höchstwahrschein- lieh um eine Membranfusion handelt. Alle auf den Virus-Eintritt folgenden Schritte der HIV-Replikation wurden nicht beeinflußt.
Diese Untersuchungen zeigen, daß Me bran-verankertes gp41-Peptid die HIV-Replikation effizient inhibiert, während sekretiertes reines gp41-Peptid nicht effektiv ist. HEIN ICH-PETTE-I HAMBURG
OAPESTER VERTRAG ÜBER DIE INTERNATIONALE ANERKENNUNG DER HINTERLEGUNG VON MIKROORGANISMEN FOR DIE ZWECKE VON PATENTVERF ÄHREN
INTERNATIONALES - OKMBLATT
Heinrich-Pette-Institut Martimstr. 52
20251 Hamourg
FMPFANGSBESTΛTIGUNG BEI ERSTHINTERLEGUNG ausgestellt gematt Regel 7 1 von der unten angegebenen INTERNATIONALEN HINTFRLfcGUNGSSTELLE
I KENNZEICHNUNG DES MIKROORGANISMUS
Vom HINTERLEGER zugeteiltes Bczugszeichen Von der INI FKNATIONALEN HINTERLEGUNGSSTELLE zugetcilie EINGANGSNUMMER. 87
DSM 13139
II WISSENSCHAFTLICH!, BESCHREIBUNG UND/ODER VORGESCHLAGENE IAXONOMISCHE BEZEICHNUNG
Mit dem unter 1 bezeichneten Mikroorganismus wurde
(X ) eine wαscnschaffliche Besehreibung
( ) eme vorgeschlagene taxonomischε Bezeichnung eingereicht. (Zutreffendes ankreuzen)
III. EINGANG UND ANNAHME
Dmc micmabonalc Hinterlegungsstelle nimmt den unter I bezeichneten Mikroorganismus an. de. bei ihr am 1999 - 11 - 11 (Datum der Ersthirrxrlcgung)1 eingegangen ist
rv EINGANG DES ANTRAGS AUF UMWANDLUNG
Der unter I bezeichnete Mikroorganismus ist bei dieser internationalen Hinterlegungsstelle am eingegangen (Datum der Erst- hmterlegung) und ein Antrag aut Umwandlung dieser Ersthinterlegung in eine Hinterlegung gemäß Budapester Vertrag ist am eingegangen (Datum des Eingangs des Antrags auf Umwandlung)
V INTERNATIONALE HINTERLEGUNGSSTELLE
Name DSMZ-DEUTSCHE SAMMLUNG VON Unterschritten) der zur Vertretung der mieπutionalen Hinterlegungsstelle MIKROORGANISMEN UND ZELLKULTUREN GmbH befugten Person(en) oder des (der) vnn ihr ermächtigten Bediensteten
Anschrift Mascheroder Weg Ib D-38I24 Brsunsehweig C/.
Figure imgf000015_0001
Datum 1999 - 11 - 15
' Falte Regel 6.4 Buchstabe d zutnflt. ist dies der Zeitpunkt, zu dem der Status einer internationalen Hinterlegungsstelle erworben worden UL Formblatt DSMZ-BP'4 (einzige Seite) 0196 HE I NR I CH-=ΕTTE- 1 . HPMBURG
OAPESTER VERTRAG ÜBER DIE INTERNATIONALE ANFK_C_-NNl_NG DER HINTERLEGUNG VON MIKROORGANISMFN FÜR DIE ZWECKE VON PATEN rvERFAl IREN
INTERNATIONALES FORMBLATT
Hemrich-Pette-Institut Martimstr. 52
20251 Hamburg
LEBENSFAH1GKEITSBESCHEINIGUNG ausgestellt gemäß Regel 102 von der unten angegebenen
IN-l ERN VπONΛIXN HINTESLEGUNGSSTEU--
Figure imgf000016_0001
Angabe des Datums der Ersthintcrlcgung. Wenn eine erneute Hinterlegung oder eine Weiterleitung vorgenommen worden ist, Angabc de . Doiums der jeweils letzten erneuten Hinterlegung oder Weiterleitung
In den in Regel 10-2 Buchstabe a Ziffer u und w vorgesehenen Fallen Angabe der leαien Lebensflüligkcicprufung
Zutrefiendes ankreuzen.
Ausftllcn, wenn die Angaben beantragt worden sind und wenn die Ergebnisse der Prüfung negativ waren
Formblatt DSMZ-BP 9 (einzige Seite) 0196

Claims

Patentansprüchei
Nukleinsäuresequenz, gekennzeichnet durch die allgemeine Formel
SP - FI - hinge - MSD,
in der
"SP" für ein Signalpeptid kodiert, das den Transfer eines exprimierten Peptids in das endoplas atische Reticulum ermöglicht,
"FI" für ein Fragment des gp41-Proteins von HIV kodiert, das einen Abschnitt aus einer Heptad Repeat-Region enthält,
"MSD" für einen Transmembrananker eines Typ I-Membran- proteins kodiert und
"Hinge" für eine Proteinsequenz kodiert, die als flexibler Linker die von "T20" und "MSD" kodierten Peptide verbindet .
Nukleinsäuresequenz nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß SP eine Sequenz ist, die für ein Signalpeptid des low äffinity nerve growth factor receptor (LNGFR) , des Interleukin-2-Rezeptors (IL-2R) oder des granulocyte ma- crophage colony stimulating factor receptor (GM-CSFR) kodiert .
Nukleinsäuresequenz nach Anspruch 1 oder 2 , dadurch gekennzeichnet , daß MSD eine Sequenz ist, die für einen Transmembrananker des LNGFR oder des CD34 oder ein Fragment derselben kodiert.
4. Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß hinge eine Sequenz ist, die für den Linker von Immunglobulin G (IgG), des humanen P-Glykopro- teins , des Human Replication Proteins A und des Parathy- roid hormone-related protein kodiert.
5. Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß FI für die in SEQ ID NO: 2 von Position 31 bis Position 66 dargestellte Aminosäuresequenz kodiert .
6. Nukleinsäuresequenz nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß sie die in SEQ ID NO: 1 von Nukleotid 1528 bis Nukleotid 1635 dargestellte Sequenz aufweist.
7. Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 6 , dadurch gekennzeichnet, daß sie die in SEQ ID NO: 1 von Nukleotid 1528 bis Nukleotid 1773 dargestellte Sequenz auf eist.
8. Vektor, dadurch gekennzeichnet, daß er eine Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 7 enthält.
9. Vektor nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß er ein retroviraler Vektor ist.
10. Vektor nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß er den in Figur 1 dargestellten Aufbau aufweist.
11. Vektor nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß er die in SEQ ID NO: 1 dargestellte Nukleinsäuresequenz enthält.
12. Vektor nach Anspruch 11 mit der Hinterlegungsnummer DSM 13139.
13. Verwendung eines Vektors nach den Ansprüchen 8 bis 12 zur in vi tro Transfektion von T-Lymphozyten und hamatopoetischen Stammzellen.
14. Verwendung eines Vektors nach den Ansprüchen 8 bis 12 zur gentherapeutischen Behandlung von mit HIV Infizierten.
15. Verwendung von T-Lymphozyten oder hamatopoetischen Stammzellen, die mit einem Vektor nach den Ansprüchen 8 bis 12 transfiziert sind, zur gentherapeutischen Behandlung von mit HIV Infizierten.
16. Gentherapeutisches Arzneimittel, enthaltend einen Vektor nach den Ansprüchen 8 bis 12.
17. Gentherapeutisches Arzneimittel, enthaltend T-Lymphozyten oder hamatopoetischen Stammzellen, die mit einem Vektor nach den Ansprüchen 8 bis 12 transfiziert sind.
18. Protein der allgemeinen Formel "sp-fi-hinge-msd" , das durch eine Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 7 kodiert wird, wobei "sp", "fi", "hinge" und "msd" die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung haben .
19. Protein nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß es die in SEQ ID NO: 2 dargestellte Sequenz aufweist.
20. Protein der allgemeinen Formel "fi-hinge-msd" , das durch eine Nukleinsäuresequenz nach den Ansprüchen 1 bis 7 kodiert wird, wobei "fi", "hinge" und "msd" die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung haben.
21. Protein nach Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet, daß es die in SEQ ID NO: 2 von Position 31 bis Position 111 dargestellte Sequenz aufweist.
22. Protein, dadurch gekennzeichnet, daß es eine Mutanten, eine Variante oder ein Derivate des Proteins nach den Ansprüchen 18 bis 21 ist.
23. Nukleinsäuresequenz, dadurch gekennzeichnet, daß sie für ein Protein nach Anspruch 22 kodiert.
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