WO1997030087A1 - Preparation d'anticorps glycosyles - Google Patents

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WO1997030087A1
WO1997030087A1 PCT/GB1997/000423 GB9700423W WO9730087A1 WO 1997030087 A1 WO1997030087 A1 WO 1997030087A1 GB 9700423 W GB9700423 W GB 9700423W WO 9730087 A1 WO9730087 A1 WO 9730087A1
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antibody
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campath
galactose
complement lysis
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PCT/GB1997/000423
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Ashvin Kumar Kanjibhai Patel
Paul Nicholas Boyd
Anne Caroline Lines
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Glaxo Group Limited
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    • C07K2317/70—Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/73—Inducing cell death, e.g. apoptosis, necrosis or inhibition of cell proliferation
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    • C07K2317/734—Complement-dependent cytotoxicity [CDC]

Definitions

  • the present invention relates to glycosylated antibodies and in particular to antibody preparations.
  • Polypeptides including antibodies, of higher organisms are subject to a variety of post-translational modifications involving carbohydrate moieties.
  • One of the most common is glycosylation which is the attachment of oligosaccharides (carbohydrates containing from about two up to about eight simple sugars linked together) to a polypeptide.
  • the oligosaccharide side chains are linked to the backbone of the polypeptide through either N- or O-linkages.
  • N-linkages form when an acetylglucosamine residue (a sugar residue) attaches an oligosaccharide chain to an asparagine residue on the polypepetide backbone via an N-glyosidic linkage
  • O-linked oligosaccharides have an O-glycosidic link to serine, threonine, hydroxy-lysine or hydroxy-proline
  • N-linked oligosaccharides have stable core structures consisting of two N-acetyl glucosamines (GN).
  • G- -GN galactose- -N-acetylglucosamine sequence repeats
  • S sialic acid
  • F fucose
  • G galactose
  • G N-acetylgalactosamine
  • GN N-acetylglucosamine residues attached either singly or in combination to one or more hydroxyl groups of the extension or core structure
  • glycosyltransferase enzymes of the cell such as N-acetyl glucosaminyltransferase, mannosidase, fucosyltransferase galactosyltransferase and sialyltransferase (C.F. Goochee et al, Biotechnology, Vol 8, May 1990).
  • Antibodies typically comprise two heavy chains linked together by disulphide bonds and two light chains. Each light chain is linked to a respective heavy chain by disulphide bonds. Each heavy chain has at one end a variable domain followed by a number of constant domains. Each light chain has a variable domain at one end and a constant domain at its other end. The light chain variable domain is aligned with the variable domain of the heavy chain. The variable domains of each pair of heavy and light chains form the antigen binding site (Fab region) (see, for Example, Figure 1 ). The light chain constant domain is aligned with the first constant domain of the heavy chain. The constant domains of the light and heavy chains are cross-linked by interchain disulphide bonds (Fc domain) and are responsible for the biological function of the antibody such as complement mediated cell lysis and antibody dependent cellular cytotoxicity (ADCC).
  • Fc domain interchain disulphide bonds
  • the two globular domains in the Fc portion of the antibody are referred to as the CH2 and CH3 domains.
  • the heavy chains interact closely at the CH3 domain, whilst in the CH2 domain, oligosaccharides are attached to N-glycosylation sites which lie within a cleft between the two heavy chains, resulting in a separation of the two polypeptides.
  • Each heavy chain in the CH2 domain has at least one such N-glycosylation site, normally at asparagine residue Asn297.
  • This Fc glycosylation of the antibodies has been reported to be essential for biological activity, particularly for complement mediated cell lysis and antibody dependent cellular cytotoxicity in IgG and IgM antibodies (Naoyuki Tsuchiya et. al., 1989, The Journal of Rheumatology, 16, 3; Leatherbarrow et. al., 1985, Mol. Immuno. 22, 407; Duncal et. al., 1988, Nature, 332, 738).
  • Antibodies have an average of 2.8 N-linked oligosaccharides per antibody molecule, two of which are in the Fc region with the remaining 0.8 being in the Fab region (Rademacher et. al., 1983, Prog. Immun., 5, 95). In the Fc region the oligosaccharides comprise mixtures of biantennary structures. (Parekh et. al.. 1985 Nature 316, 452-457; Rademacher et. al., 1983, Prog. Immuno., 5, 95 ; Rademacher et. al., 1983, Prog. Immuno., 5, 95).
  • deglycosylation of IgG was found not to significantly alter the antigen-binding properties of the immunoglobulin, since deglycosylated IgG secreted from tunicamycin treated hybridoma were found to maintain the same antigen binding affinity as the glycosylated antibody (Nose and Wigzell, 1983, PNAS., 80, 6623; Leatherbarrow and Dwek, 1983, FEBS lett , 164, 227). Also, deglycosylated IgG has consistently been found to retain protein A binding at the CH2-CH3 interface (Deisenhofer, 1981 , Biochemistry, 20, 2361 ).
  • the present invention provides an antibody preparation in which a N-glycosylation site of the Fc domain of the antibody is substituted with a biantennary oligosaccharide, characterised in that at least 20% of the preparation comprises antibody molecules having an oligosaccharide that contains at least one galactose residue.
  • each antibody molecule has two galacose residues.
  • the galactose residues may or may not be terminal.
  • An increase in the overall galactose content by increasing monogalactosyl (G1 )and/or digalactosyl (G2) of the antibody preparation increases complement lysis.
  • G2 monogalactosyl
  • G2 digalactosyl
  • an even greater increase (of about 50% or more) in complement lysis is achieved.
  • the increase in complement lysis is particularly pronounced with antibody preparations in which at least 60% of the antibody molecules have an oligosaccharide that contains at least one galactose. Therefore an antibody preparation wherein at least 60% or even 70% comprises antibody molecules having an oligosaccharide that contains at least one galactose is of particular importance. Even more preferred are antibody preparations wherein at least 80% or 90% of the preparation comprises antibody molecules having an oligosaccharide that contains at least one galactose.
  • an antibody preparation wherein at least 40% or 60%, preferably 70% or 80% and most preferably 90% or 95% comprises antibody molecules having an oligosaccharide that contains two galactose residues is of particular importance.
  • an increase in ADCC activity with the increase of galactose is more dramatic once at least 50% of the antibody preparation comprises antibody molecules having an oligosaccharide containing at least one galactose.
  • An antibody preparation wherein at least 50% or 60%, preferably 70%, 80% or even 90% comprises antibody molecules having an oligosaccharide that contains at least one galactose, preferably two galactose residues (G2).
  • the antibody preparation of the present invention comprises antibody molecules which have an oligosaccharide that contains at least one terminal sialic acid residue, preferably a single terminal sialic acid residue(S1 ).
  • ADCC activity As far as ADCC activity is concerned there is a small but steady increase of activity with overall increase in sialic acid , which is more pronounced with S1 .
  • This increase in ADCC activity with an increase in S1 is more pronounced when at least 70% of the antibody molecules have an oligosaccharide containing at least one sialic acid , preferably a single terminal sialic acid residue.
  • N-glycosylation site encompasses any site within the Fc region, comprising an aspargme residue to which an oligosaccharide can be attached .
  • the asparagine residue is in the CH2 domain of the Fc region of the antibody, and most preferably close to or at the Asn 297 position of the Fc region.
  • the asparagine residue may either be a naturally occuring residue or may also be a residue which has been engineered into the Fc region of the antibody.
  • biantennary oligosaccharide encompasse.. any structure which has a stable core structure consisting of two N-acetyl glucosamine (GN). One is attached to the asparagine residue on the antibody whilst the other is attached to a mannose residue (M) from which two more mannoses (M) branch to give a biantennary core structure as shown below :
  • This core is extended by two N-acetyl glucosamines (GN) which in turn may be substituted with one or two galactoses (G), each of the galactoses in turn being optionally substituted with sialic acid.
  • GN N-acetyl glucosamines
  • G galactoses
  • the present invention encompases all antibodies including antibody fragments comprising the Fc region, but preferred antibodies are monoclonal antibodies, in particular humanised monoclonal antibodies.
  • Antibodies of use in the invention may be prepared by any method well known in the art or more particularly as described in GB9022547.5. Purification may be carried out as described in EP-A-91917891 .
  • the present invention also provides a method of preparing an antibody preparation according to the present invention.
  • glycosyltransferase enzymes such as galactosytransferase and /or sialyltransferase methods of increasing the number of galactose and sialic acid residues of oligosaccharides may be achieved by boosting levels of the enzymes . This can be done by adding the enzymes to the antibody in vitro or by increasing the endogeous levels of galactosyltransferase and/or sialyltransferase within the cell.
  • the oligosaccharides may be manipulated in vitro with the aid of galactosyltransferase (from for Example, bovine milk) and/or sialyltransferase (from for Example, rat liver).
  • galactosyltransferase from for Example, bovine milk
  • sialyltransferase from for Example, rat liver
  • galactosyltransferase is added to the antibody together with a substrate such as, for Example, uridine - 5' -diphosgalactose in appropriate buffer and incubated.
  • sialyltransferase is added to the antibody together with a substrate such as cytidine - 5' monophospho-N-acetyl neuraminic acid in appropriate buffer and incubated.
  • High concentrations of the enzymes may be produced by recombinant DNA technology, whereby genes encoding the enzymes galactosyltransferase or sialyltransferase (Behringwerke Artiengellschaft, Patent. Document No:AU-A- 83760/91 ) may be manipulated and transfected into cell lines to produce the enzymes either as soluble proteins or fusion proteins. Alternatively, cell lines secreting the antibody may be co-transfected with genes expressing the enzymes sialyltransferase (Behnngwerke, Artiengellschaft, Patent Document No AU-A-83760/91 ) and/or galactosyltransferase.
  • the DNA sequence coding for sialyltransferase or galactosyltransferase is inserted together with a marker gene and then the DNA sequence coding for the glycoprotein to be sialylated (galactosylated) is inserted together with another marker gene into the eukaryotic cell.
  • the DNA sequence for the glycoprotein to be sialylated is inserted together with a marker gene and then the DNA sequence coding for the sialyltransferase (galactosyltransferase) is inserted with another marker gene into the eukaryotic cell.
  • the DNA sequence coding for the sialyltransferase (galactosyltransferase) and the DNA sequence coding for the glycoprotein to be sialylated (galactosylated) are inserted at the same time together with a marker gene into the eukaryotic cell .
  • Cell lines for transfection with DNA sequences specifically for antibody production or cell lines secreting the antibody may be selected through cloning for its endogenously high levels of galactosyltransferase and/or sialyltransferase. Similarhly, cell lines for transfection or cell lines secreting the antibody may be selected for its endogenously low levels of sialidase or ⁇ -galactosidase (Gramer et. al., 1995, Biotechnology, 13, 692).
  • Sialidase and ⁇ -galactosidase are enzymes which are involved in the removal of galactose and sialic acid residues from oligosaccharide structures so that low levels of these enzymes indirectly boost the levels of galactose and sialic acid containing structures
  • Specific inhibitors and activators of the enzymes galactosyltransferase, ⁇ -galactosidase, sialyltransferase or sialidase may thus be used to manipulate the amounts of galactose and sialic acid incorporated into oligosaccharide structures.
  • the growth media for cells secreting the antibody can also be manipulated for production of high level of galactose and sialic acid containing oligosaccharide structures.
  • Another method of obtaining an antibody preparation with a high level of galactose and/or sialic acid in the oligosaccharides is to select for such antibodies, for Example, as part of an antibody purification procedure.
  • specific lectins may be immobilised on a column (Dobre et. al., 1983, J. Immunol. Methods 59(3) 339) which specifically bind to structures containing galactose or sialic acid containing oligosaccharides (Osawa and Tsuji, 1987, Ann Rev. Biochem. 56, 21 ).
  • antibodies with no galactose and/or sialic acid can be removed as they do not stick to the column, thereby increasing the levels of galactose/sialic acid containing antibodies on the column.
  • the column can then be eluted to give an antibody preparation wherein most of the antibody molecules have an aligosaccharide containing galactose and/or sialic acid.
  • the present invention also includes a method of increasing the lytic activity of an antibody preparation, specifically complement lysis activity and ADCC activity.
  • lytic antibodies are of particular relevance to this invention such as for Example, IgGM, lgG1 , IgG2, lgG3 and lgG4.
  • Complement lysis activity is increased by increasing the % of biantennary oligosaccharides at the N-glycosylation site of the Fc domain of the antibody having more than 20% galactose residues . This activity can be further increased by increasing the % of terminal sialic acid residues to more than 20%.
  • the invention provides an antibody with an increase in complement lysis activity of more than 30%.
  • the invention also provides an antibody with an increase in ADCC activity of more than 30%.
  • an antibody composition of the invention in therapy and diagnosis.
  • use of antibodies according to the invention in the treatment of cancers such as lymphomas and leukaemias and in particular small cell and non-small cell lung cancer, prostatic cancer, colorectal cancer, prostatic cancer and ovarian cancer.
  • T-cell mediated disorders including severe vasculitis, rheumatoid arthritis, systemic lupis, also autoimmune disorders such as multiple sclerosis, graft vs host disease, psoriasis, juvenile onset diabetes, Sjogrens' disease, thyroid disease, myastenia gravis, transplant rejection and asthma.
  • the invention also provides the use of an antibody composition described above in the manufacture of a medicament for the treatment of any of the aforementioned disorders.
  • a method of treatment of conditions amenable to therapy and diagnosis with an antibody composition according to the invention comprising administering a therapeutically efficacious amount of antibody composition to a mammal requiring such treatment.
  • a method of treatment of cancers such as lymphomas and leukaemias and in particular small ceil and non-small cell lung cancer, prostatic cancer as well as colorectal cancer and ovarian cancer and associated metastases.
  • T-cell mediated disorders including severe vasculitis, rheumatoid arthritis, systemic lupis and also autoimmune disorders such as multiple sclerosis, graft vs host disease, psoriasis, juvenile onset diabetes, Sjogren's disease, thyroid disease, myasthenia gravis, transplant rejection and asthma.
  • compositions containing conjugated antibodies according to the present invention which comprise an antibody composition of the present invention and one or more pharmaceutically acceptable excipients.
  • compositions include, in addition to an antibody composition according to the present invention a physiologically acceptable diluent or carrier possibly in a mixture with other agents such as other antibodies or an antibiotic.
  • Suitable carriers include but are not limited to physiological saline, phosphate buffered saline, phosphate buffered saline glucose and buffered saline. Routes of administration are routinely parenteral including intravenous, intramuscular, subcutaneous and intraperitoneal injection or delivery.
  • the antibodies according to the present invention are preferably monoclonal antibodies.
  • Antibodies according to the present invention can be from any species.
  • the antibodies may be chimaeric antibodies that have variable regions from one antibody and constant regions from another, such as a human antibody.
  • chimaeric antibodies may be species/species chimaeras or class/class chimaeras.
  • Such chimaeric antibodies may have one or more further modifications to improve antigen binding ability or to alter effector functions.
  • Another form of altered antibody is a humanised antibody including a composite antibody, wherein the constant regions and the hypervariable regions other than the CDRs constitute the human framework. Additional amino acids in the framework or constant regions of such antibodies may be altered if required to restore binding.
  • antibodies of use in the present invention include any altered antibodies in which the amino acid sequence is not one which exists in nature However, CDR-grafted antibodies are most preferred.
  • Antibodies of the present invention include IgG and IgM of different isotypes such as for Example, G1 , G2 G3 and G4. Whilst IgM ,lgG1 ,lgG2 and lgG3 are known to mediate complement lysis, lgG1 ,lgG2,lgG3 and lgG4 are expected to bind to Fc receptors and would therefore be expected to mediated ADCC.
  • antigens to which antibodies of the present invention may bind include the 40KD antigen (CO/17.1.A) as disclosed in J.Cell Bio., 125(2), 437-446, April 1994 and in Proc. Natl. Acad. Sci., 87, 3542-3546, May 1990, the anti- folate antigen as disclosed in A. Tomasetti et.al., Federation of European Biochemical Societies Vol 317, 143 -146, Feb 1993, anti-CEA, anti mucin, anti-20/200KD, anti-ganglioside, anti-digoxin, anti-CD4, anti-CD23, anti-CD52 and more specifically, Campath-1 H which is a humanised anti-CD52 antibody.
  • 40KD antigen CO/17.1.A
  • the anti- folate antigen as disclosed in A. Tomasetti et.al., Federation of European Biochemical Societies Vol 317, 143 -146, Feb 1993
  • anti-CEA anti mucin
  • the antibody chain DNA sequences including the CDRs of Campath-1 H are set out in EPO328404, the disclosure of which is hereby incorporated by reference. (Page, M.J. and Sydenham, M.A., 1991 , High level expression of the humanised monoclonal antibody Campath-1 H in Chinese Hamster Ovary cells , Biotech. 9: 64-68).
  • Figure 2 A typical carbohydrate profile of Campath-1 H.
  • a carbohydrate map for Campath-1 H was obtained by releasing the glycan from the antibody with the aid of Glycopeptidase F.
  • the glycan was derivatised with 1 -phenyl-3-methyl-2-pyrazolin-5-one (PMP) for detection and analysed by reverse phase HPLC.
  • PMP 1 -phenyl-3-methyl-2-pyrazolin-5-one
  • Figure 3 Typical carbohydrate profiles of Campath-1 H after sialidase and ⁇ -galactosidase treatment.
  • Typical carbohydrate profiles of oligosaccharides released from (a) Campath-1 H (control); (b) Campath-1 H digested with sialidase; and (c) Campath-1 H digested with sialidase and ⁇ -galactosidase.
  • (i) represents monosialylated biantennary structures; (ii) asialo, galactosylated biantennary structures; (iii) and (iv) asialo, monogalactosylated, biantennary structures; (v) and (vi) asialo, agalactosylated, biantennary structures.
  • Figure 4 Oligosaccharide structures of Campath-1 H.
  • Typical biantennary structures showing agalactosyl (G0), monogalactosyl (G1 ), digalactosyl (G2), monosialyl (S1 ) and disialyl (S2) structures associated with human IgG and detected by reverse phase HPLC Symbols S - sialic acid; G - galactose, GN - acetylglucosamine, M - mannose and F - fuccse.
  • Figure 5 Reverse Phase HPLC profiles of oligosaccharides structures released from galactosyltransferase and sialyltransferase treated Campath-1 H.
  • Figure 6 Effect of galactose containing oligosaccharides on (a) complement lysis and (b) ADCC activities.
  • Figure 7 Effect of sialic acid containing oligosaccharides on (a) complement lysis and (b) ADCC activities.
  • Complement lysis and ADCC activities together with carbohydrate profiles were obtained for control Campath-1 H and Campath-1 H treated with either sialyltransferase alone or galactosyltransferase and sialyltransferase (as in Examples 3 and 4). Peaks showing G0, G1 , G2, S1 and S2 were integrated and the data expressed as a percentage of total oligosaccharides (Tables 1 , 2 and 4).
  • the graph shows (a) complement lysis, (b) ADCC activities against percent oligosaccharides containing monosialylated (S1 ), disialylated (S2) and structures containing at least one sialic acid (S1 +S2).
  • the graphs also include an average of percent oligosaccharide structures for control Campath-1 H.
  • Campath-1 H was initially treated with galactosyltransferase at either pH 7.4 or pH 8.4. The antibodies were then treated with sialyltransferase at pH 6.0. Galactosyltransferase (Example 2) or galactosyltransferase followed by sialyltransferase (Example 4) treated antibodies are compared against control Campath-1 H for activities. Activities (eg. ADCC or complement lysis) were determined and expressed as described in Example 1 .
  • Activities eg. ADCC or complement lysis
  • Campath-1 H is a purified human IgG monoclonal antibody, which mediates lysis of target cells (Wein 133 cells) through either complement of ADCC.
  • Campath-1 H has only two N-linked oligosaccharides and no O-linked sugars per antibody were detected.
  • the amino acid sequence shows no sites for N-linked oligosaccharide structures in the Fab regions of the antibody and protease digestion of the antibody followed by amino acid sequencing of the resultant peptides containing N-linked sugars, demonstrated that the sugars were only restricted to the Fc region of the antibody.
  • N-linked oligosaccharide structures are restricted only to the Fc region of the antibody.
  • Campath-1 H in PBS was dialysed overnight against 2 changes of 100 mM sodium acetate buffer, pH 6.0. The concentration of the antibody was then determined spectrophotometrically at 280 nm.
  • the antibody was initially digested with 2 units of Sialidase (from Salmonella typhimurium, Oxford Glycosystems) for 18 hr at 37°C, followed by further incubated (18 hr) in the presence of 60 mUnits of ⁇ -Galactosidase (from streptococcus pneumoniae, Oxford Glycosystems). Controls consist of the same antibody treated as above but in the absence of Sialidase and ⁇ -Galactosidase. The samples were divided into 2 portions and stored at 5°C.
  • the first portion is used for carbohydrate detection and mapping.
  • the second is retained for activity assays.
  • carbohydrate detection and mapping Figure 3
  • intact oligosaccharides chains are released with glycopeptidase F (Flavobactenum mentngosepttcum, Boehringer Mannheim) and derivatized with 1 -phenyl-3-methyl-2-pyrazolin-5-one (PMP) to facilitate UV detection and analysed by reverse phase HPLC on a Sphensorb S30DS C18 column (particle size 3 ⁇ , 15 cm ⁇ 4 6 mm ID from phase Separations Ltd).
  • glycopeptidase F Fravobactenum mentngosepttcum, Boehringer Mannheim
  • the antibody is analysed for complement lysis and ADCC activities using methods described previously (Blumberg et al , 1986, J Immunol. Methods, 92, 1 17, Patel et. al., 1995, J. Immunol. Methods, 184, 29).
  • Wein 133 cells non-Hodgkins's B cell lymphoma
  • the cells (2 ⁇ 10 7 ) are harvested and washed in 50mM HEPES, 93mM NaCl, 5mM KCl and 2mM MgCI 2 adjusted to pH 7.4 by NaOH (buffer A).
  • the cells are suspended in 1 ml buffer A containing 600 ⁇ l EuCI 3 , 3mM diethylene triaminepentaacetate and 25 mg/ml dextran sulphate and incubated for 20 minutes at 4°C. Incubation is continued for a further 5 minutes after the addition of an equal volume of Buffer B (buffer A containing 2mM CaCl 2 and 10mM L-glucose). Target cells are then washed 3 times in buffer B and twice in Iscoves media supplemented with 2% FCS.
  • Buffer B buffer A containing 2mM CaCl 2 and 10mM L-glucose
  • the cell density is adjusted to 1 ⁇ 10 6 cells/ml in the same media and kept on ice
  • Campath-1 H standard positive control and samples are diluted in Iscoves media containing 2% FCS.
  • the samples (at 3 different dilutions) and the standard are pipetted (50 ⁇ l) into "U"- bottomed 96 well plates and equilibrated to 4°C for 10 minutes.
  • Europium labelled target cells 150 ⁇ l, 5 ⁇ 10 4 cells
  • the plates are incubated at 4°C for 30 minutes.
  • Plates scheduled for estimation of ADCC activities are centrifuged at 1800 rpm (5 mm) to pellet effector and target cells, prior to incubation at 37°C.
  • the plates are incubated at 37°C for either 90 minutes (complement lysis) or 180 mm (ADCC), followed by centrifugation at 1800 rpm for 5 minutes to pellet intact cells.
  • An aliquot (20 ⁇ l) of the supernatant is taken from each well of the microtitre plate.
  • Lysis of W133 cells is estimated by quantifying fluorescence of europium released into the supernatant after mixing with enhancement solution (200 ⁇ l).
  • Complement lysis or ADCC activities (units/ml) of samples is estimated from a standard curve obtained using the Campath-1 H standard. Relative complement lysis or ADCC activities is derived using the equation below:
  • Example 2 Enzymatic addition of galactose to the antibody Campath-1 H at either pH 7.4 or pH 8.4.
  • the purified antibody, Campath-1 H is dialysed overnight against 2 changes of either 10mM sodium phosphate buffer containing 0 15M NaCl and 5 ⁇ M MnCl 2 , pH 7.4 or 100 mM glycine / NaOH buffer containing 5 ⁇ M MnCl 2 pH 8.4.
  • the concentration of the antibody is determined spectrophotometrically at 280nm.
  • the lyophihsed enzyme galactosyltransferase is suspended in 500 ⁇ l of distilled water, giving an activity of 10 units/ml.
  • the lyophihsed substrate, uridine-5'-diphosgalactose is suspended into either 10mM sodium phosphate buffer containing 0.15M NaCl and 5 ⁇ M MnCl 2 , pH 7.4 or 100 mM Glycme/NaOH buffer containing 5 ⁇ M MnCI 2 , pH 8.4.
  • the reaction mixture is then incubated for 18 hrs at 37°C and stored at 5oC.
  • the antibodies generated in this Example are then divided into three portions.
  • the first portion is used for carbohydrate detection and mapping ( Figure 5), whilst the second portion was retained for activity assays as described in Example 1.
  • the third is reserved for subsequent treatment with the enzyme sialyltransferase (see Example 4).
  • the percentage composition of G0, G1 , G2, S1 and S2 structures of Campath 1 -H is calculated (Table 2) and compared against relative composition of the same structures found in serum IgG (Parekh et.al., 1985, Nature, 316, 452).
  • the results demonstrate an overall increase from 69% to 100% in structures containing at least one galactose (G1 , G2, S1 and S2).
  • Example 1 This confirms our findings in Example 1 , whereby although the total galactose containing structures were important, complement lysis activity was influenced more specifically by G2 structures.
  • Example 2 we have also found that only the G2 structures are important for ADCC activity, whereby a five fold and seven fold increase in G2 structure was associated with a 20% and 100% increase in activity, respectively.
  • Example 1 We have also shown (Example 1 ) that following ⁇ -galactosidase treatment of Campath-1 H, a small decrease in G2 structures caused a loss in ADCC activity, whilst a decrease in mainly G1 structures did not change ADCC activity.
  • Example 3 Enzymatic addition of sialic acid to the antibody, Campath-1 H
  • the lyophihsed substrate cytidine-5'-monophospho-N-acetylneuraminic acid is dissolved in 50mM Citrate / 50 ⁇ M EDTA buffer, pH 6.0.
  • 50mM Citrate buffer containing 50 ⁇ M EDTA pH 6.0 add 0.04 units of sialyltransferase (Sigma) and 2mM substrate cytidine-5'-monophospho-N-acetylneuraminic acid Controls consist of an absence of enzyme or enzyme and substrate Incubate at 37°C for 16 hrs and store at 5°C.
  • the antibodies generated in this Example are divided into two portions. The first portion is used for carbohydrate detection and mapping (as above) and the second is reserved for determination of complement lysis and ADCC activities (as described previously).
  • the relative complement lysis and ADCC activities of sialyltransferase treated Campath-1 H compared to the control is shown in Table 5.
  • the data shows that following sialyltransferase treatment of the antibody, complement lysis and ADCC activities compared to the control increased by 28% and 20%, respectively.
  • Such an increases in the cytolytic activity of the antibody is related to an increase in S1 and S2 oligosaccharide structures on Campath-1 H.
  • Example 4 Enzymatic addition of sialic acid to galactosyltransferase treated Campath-1 H Campath-1 H previously treated with galactosyltransferase (Example 2) is dialysed against 50mM Citrate buffer containing 50 ⁇ M EDTA, pH 6.0. The lyophihsed substrate cytidine-5'-monophospho-N-acetylneuraminic acid is also dissolved in 50mM Citrate / 50 ⁇ M EDTA buffer, pH 6.0.
  • the antibodies generated in this Example is divided into two portions. The first portion is used for carbohydrate detection and mapping ( Figure 5) and the second is reserved for determination of complement lysis and ADCC activity (as described previously).
  • Digalactosylated (G2) structures together with oligosaccharides with at least one galactose (G1 , G2, S1 and S2) or two galactose residues (G2, S1 or S2) determined in Examples 1 ,2,3 and 4 are shown against complement lysis and ADCC activities ( Figure 6).
  • the data confirms that an increase in structures containing at least 1 galactose (to levels beyond 20%) caused an increase in complement lysis activity.
  • the data also confirms that G2 and structures containing at least 2 galactose residues also caused an increase in both complement lysis and ADCC activities. This was particularly more evident when structures with at least 2 galactose residues exceeded 20%.
  • Figure 7 shows the effect of S1 and S2 structures together with oligosaccharides containing at least 1 sialic acid (from Examples 1 , 2, 3 and 4) on complement lysis and ADCC activities.
  • the daia shows that S2 structures alone have little influence on either complement lysis or ADCC activities.
  • structures containing at least 1 sialic acid (at levels exceeding 7%) caused a proportion increase in both complement lysis and ADCC activities.
  • the data confirm that increases in activities following sialylation are mainly due to S1 structures.

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Abstract

Cette préparation d'anticorps dans laquelle on a substitué un site de N-glycosylation du domaine Fc de l'anticorps par un oligosaccharide double antennule, est caractérisée en ce qu'au moins 20 % de cette préparation comprend des molécules d'anticorps comportant un oligosaccharide, lequel contient au moins un reste galactose.
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