WO1996029599A1 - Methode de quantification du cholesterol dans une lipoproteine a faible densite ou a tres faible densite - Google Patents

Methode de quantification du cholesterol dans une lipoproteine a faible densite ou a tres faible densite Download PDF

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Norihiko Kayahara
Toshio Tatano
Eiko Shutoh
Hiroyuki Sugiuchi
Tetsumi Irie
Kaneto Uekama
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Kyowa Medex Co., Ltd.
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Definitions

  • the present invention relates to a low-density riboprotein important in lipid metabolism in the field of clinical diagnosis.
  • the present invention relates to a method for quantifying cholesterol (hereinafter referred to as LDL cholesterol and VLDL cholesterol) in (LDL) or very low density riboprotein (VLDL).
  • LDL cholesterol and VLDL cholesterol cholesterol
  • VLDL very low density riboprotein
  • LDL is thought to have a role in supplying cholesterol to peripheral cells, and is a direct factor in various arteriosclerosis such as coronary atherosclerosis, and its blood level may be an indicator of atherosclerotic disease.
  • arteriosclerosis such as coronary atherosclerosis
  • VLDL which is rich in triglyceride (TG)
  • TG triglyceride
  • Conventional methods for quantifying LDL cholesterol include ultracentrifugation, electrophoresis, and conversion methods, and methods for quantifying VLDL cholesterol include ultracentrifugation and electrophoresis. The ultracentrifugation method is used as a basic quantification method.
  • LDL or VLDL is separated by specific gravity difference using an ultracentrifuge for separation, and the amount of cholesterol is measured [advanced 'lipid * research (Ad v Lipid Res.), Volume 6, page 1, 1968].
  • it has disadvantages in terms of quantitativeness, simplicity, and economy.
  • separation is performed using a cellulose acetate membrane agarose gel or the like as a support, and cholesterol is quantified by an enzymatic method (Clinical Examination, Vol. 29, p. 1344, 1985). This method has problems in terms of simplicity and economy.
  • the amount of LDL cholesterol is calculated according to the following formula [Clinical Chemistry (C) in. Chem., Vol. 18, pp. 499, 1972].
  • the present inventors have developed a high-density lipoprotein (HDL), LDL, VLDL and chiromiclone (CM) fractionated by ultracentrifugation using a cholesterol measuring reagent system in the presence of a sugar compound and Z or a protein solubilizing agent. ), The reactivity with each lipoprotein differs depending on the combination of the sugar compound and / or protein solubilizer.As a result, cholesterol in HDL, LDL cholesterol, VLDL cholesterol, and CM Cholesterol reactivity was found to be different, leading to the present invention.
  • HDL high-density lipoprotein
  • CM chiromiclone
  • the present invention relates to a method for quantifying LD cholesterol or VLDL cholesterol, which comprises measuring the amount of LDL cholesterol or VLDL cholesterol in a sample in the presence of a compound and / or a protein solubilizing agent.
  • a divalent metal salt can be added in combination to further increase the specificity.
  • a reagent for quantifying cholesterol in LDL or VLDL comprising a sugar compound and / or a protein solubilizer, or a reagent for quantifying cholesterol in LDL or VLDL comprising a combination of a sugar compound and a protein solubilizer is provided.
  • a glucose derivative is preferably used as the saccharide compound.
  • a glucose derivative for example, a compound represented by the general formula (I)
  • R 1 , R 2 and R 3 are the same or different and are hydrogen, substituted or unsubstituted alkyl, substituted or unsubstituted alkanol, S ⁇ 3 M 2 (wherein M 2 is hydrogen or metal Represents), one (darkosyl) p — H (where p represents 1 or 2) or — (maltosyl) Q — H (where q represents 1 or 2), and R 4 and R 5 is the same or different and represents hydrogen, metal or S ⁇ 3 M 3 (wherein M 3 represents hydrogen or metal, and m represents an integer of 6 to 8), a compound represented by the general formula ( II)
  • R 6 , R 7 and R 8 are the same or different and represent hydrogen or S 4 3 M 4 (wherein M 4 represents hydrogen or a metal), R 9 is hydrogen, 0M 5 (wherein , M 5 represents a hydrogen or represents a metal) or OS_ ⁇ 3 M 6 (wherein, M 6 is to display the hydrogen or metal), R ie is hydrogen, a metal or S0 3 M 7 (wherein, M 7 Represents hydrogen or a metal), and n represents an integer of 4 to 8000].
  • a and b represent an integer of 0 to 200, R 1 ′ represents R 2 ° — X-0— (wherein, R 2D represents alkyl or alkenyl, and X represents a single bond or CO) Or H- (CH 2 CH 2 0) c -N (R 21) - ( wherein, c is an integer of 1 to 200, R 21 represents an alkyl or alkenyl) represents, R 12 is C 2 H 4 COOR 22 , C 3 H 6 COOR 23 , C 2 H 4 CH (COOR 24 ) 2 or C 2 H 4 CH (C00R 25 ) (C00R 26 )
  • R 22 , R 23 , R 24 , R 25 and R 26 are the same or different and represent hydrogen, metal, alkyl or alkenyl). However, a and b do not simultaneously represent 0, and both components can exist at random.
  • R 13 , R 14 , R 15 , R 16 , R 17 and R 18 are the same or different and each represents an aryl group) or a general formula (V)
  • R represents alkyl, alkenyl or substituted or unsubstituted aryl
  • Y is a single bond, One 0—, -CH (R 27 ) — (wherein R 27 represents alkyl or alkenyl), -CH 2 CH (OH) (CH 2 ) d- (where d is an integer of 1 to 22) 1)
  • CH CH (CH 2 ), 1 (where e represents an integer of 1 to 22), 1 0C0CH (CH 2 C00R 28 ) — (where R 28 represents alkyl or alkenyl) Or a mixture thereof
  • -M 1 represents hydrogen or a metal].
  • alkyl and alkano examples include straight-chain or branched C 1 to C 22, for example, methyl, ethyl, propyl, isopropyl, butyl, isobutyl, sec-butyl, tert-butyl, pentyl, isopentyl, neopentyl , Hexyl, heptyl, decyl, pencil decyl, icosanyl, docosanil, and the like.
  • alkenyl examples include a straight-chain or branched-chain carbon having 2 to 22 carbon atoms such as vinyl, probenyl, and the like. Butenyl, pentenyl, hexenyl, hebutenyl, decenyl, pencenyldecenyl, icosenyl, docosenyl and the like.
  • Aryl represents phenyl or naphthyl, and examples of metals include lithium, sodium, and potassium.
  • Examples of the substituent of the substituted alkyl and the substituted alkanol include, for example, hydroxy, carboxy, sulfo and the like.
  • Examples of the substituent of the substituted aryl include, for example, alkyl and the like, wherein alkyl has the same meaning as the above-mentioned alkyl.
  • a cyclodextrin derivative is preferably used among the compounds (I) and (II).
  • nonionic surfactants include polyoxyethylene lauryl ether, polyoxyethylene cetyl ether, polyoxyethylene stearyl ether, polyoxyethylene oleyl ether, polyoxyethylene behenyl ether, polyoxyethylene monolaurate, and polyoxyethylene monostearate.
  • anionic surfactant examples include sodium dodecyl benzene sulfonate, sodium normal dodecyl benzene sulfonate, sodium radium sulfate, and higher alcohol sulfate ester soda.
  • divalent metal salt examples include magnesium salts of 0.01 to 2 OmM, calcium salts, manganese salts, nickel salts, cobalt salts, and the like, preferably, magnesium of 0.01 to 2 OmM. Salt is used.
  • the present invention is characterized in that a saccharide compound and a solubilizer or a protein solubilizing agent coexist with a cholesterol measuring reagent system, and the cholesterol measuring system itself follows a general method based on the following reaction principle.
  • the dye source and the measurement wavelength are not limited to these.
  • pigment sources include commonly used phenols such as 4-aminoantipyrine and phenol, 4-chlorophenol, m-clebour, and 3-hydroxy-2,4,6-triodebenzoic acid (HT IB).
  • phenols such as 4-aminoantipyrine and phenol, 4-chlorophenol, m-clebour, and 3-hydroxy-2,4,6-triodebenzoic acid (HT IB).
  • N-sulfopropylaniline, N-ethyl-N- is also known as 4-aminoantipyrine and Trinder's reagent in addition to the combination with N-sulfopropylaniline, 1994.
  • Cholesterol ester hydrolase cholesterol oxidase or cholesterol dehydrogenase, which is usually commercially available, is a microorganism or animal-derived cholesterol esterase capable of hydrolyzing cholesterol ester, lipoprotein lipase, and oxidizes cholesterol. Cholesterol oxidase derived from microorganisms, cholesterol dehydrogenase derived from microorganisms or animals, etc.Polyethylene glycol is the main component to further enhance the specificity and stability of these enzymes Those obtained by chemically modifying the above enzyme with a group, a water-soluble oligo residue, a sulfopropyl group, or the like can also be used.
  • an enzyme obtained by transducing these genes by genetic manipulation and introducing them into another microorganism or expressing them, or a modified product obtained by chemically modifying them, or an enzyme expressing these genes modified and expressed Modified products obtained by chemically modifying these are also suitably used.
  • a reagent (chemical modifier) for modifying the enzyme for example, a compound in which a group capable of binding to an amino group is bonded to polyethylene glycol ⁇ the N-hydroxysuccinimide group is added to polyethylene glycol VFM 4101 [manufactured by NOF CORPORATION], etc., which has a group that can bind to an amino group such as, etc. ⁇ , AKM series and ADM series having a polyalkylene glycol structure and an acid anhydride structure ACM series [All manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd .: Journal of Chemical Engineering, Vol. 20, No. 3, p. 499, pp.
  • the enzyme is dissolved in a buffer such as a phosphate buffer having a pH of 8 or more, and 0 to 50 times, for example, 0.01 to 500 times the molar amount of sunbrite is added, and the mixture is added for 5 minutes. Stir for ⁇ 24 hours.
  • a buffer such as a phosphate buffer having a pH of 8 or more
  • 0 to 50 times for example, 0.01 to 500 times the molar amount of sunbrite is added
  • the mixture is added for 5 minutes.
  • Stir for ⁇ 24 hours This reaction solution can be used as it is or as necessary on an ultrafiltration membrane. Use after removing lower molecular weight substances.
  • Cholesterol ester hydrolase, cholesterol oxidase and cholesterol dehydrogenase are preferably used in the range of 0.1 to 100 uZml.
  • the method of the present invention can be applied to body fluids containing LDL or VLDL such as blood and urine.
  • a sugar compound solution and a Z or protein solubilizer solution are prepared.
  • the sugar compound solution is prepared by converting the sugar compound into an appropriate buffer solution, for example,
  • the protein solubilizing agent solution is prepared by dissolving the protein solubilizing agent in an appropriate buffer, for example, 5 OmM Tris-HCI buffer (pH 7.4), coexisting with a cholesterol measuring reagent, and adding, for example, 5 OgZl during the reaction.
  • an appropriate buffer for example, 5 OmM Tris-HCI buffer (pH 7.4)
  • it is preferably prepared so as to have a concentration of 0.1 to 20 gZl.
  • Reagents are prepared from a protein solubilizing agent solution in which a sugar compound solution and / or a cholesterol measuring reagent coexist.
  • a protein solubilizing agent solution is not used, the sugar compound must coexist in the cholesterol measuring reagent in advance.
  • 20 to 50 ° C, preferably 30 to 4 incubate at TC for about 5 minutes.
  • add the sample itself or a sample diluted with water or physiological saline as needed to the above reagent and add
  • the amount of cholesterol was measured by the above reagent using HDL, LDL, VLDL and CM fractions fractionated from serum by ultracentrifugation.
  • the reactivity of HDL cholesterol, LDL cholesterol, VLDL cholesterol, and CM cholesterol differs depending on the combination of the sugar compound and the protein solubilizing agent, and the reactivity with each lipoprotein differs depending on the combination of the sugar compound and the protein solubilizing agent. It was confirmed that it became.
  • Table 1 shows the difference in the reactivity of each riboprotein when a cholesterol measurement reagent (unmodified) was used in combination with 5 mM of a sugar compound and 5 g / 1 of a protein solubilizing agent, voroxyethylene monolaurate.
  • the cholesterol measurement reagent (unmodified) has the sugar compound trimethyl-—cyclodextrin 5 mM.
  • Table 2 shows the difference in the reactivity of each riboprotein when coexisting in combination with 5 g / 1 protein solubilizer.
  • the saccharide compound solution is prepared by dissolving the saccharide compound in an appropriate buffer, for example, 5 OmM Tris-HC1 buffer (pH 7.4), and adjusting the concentration to 10 OmM or less, preferably 3 to 8 OmM during the reaction.
  • the protein solubilizing agent solution is prepared by dissolving the protein solubilizing agent in an appropriate buffer, for example, 5 OmM Tris-HC1 buffer (pH 7.4), and reacting it with, for example, 50 z / 1 or less, preferably 0 Adjust to a concentration of 1-20 gI. 20 to 50 in advance, preferably 30 to 40.
  • Cholesterol esterase (unmodified) 1.0 UZm 1 Cholesterol oxidase (unmodified) 5.0 U / m 1 Peroxidase 25 U / m 1
  • the Tris buffer (pH 7. 0) 3 0 mM Act firstly, the first reagent heated in the serum samples 50 1 pre 3 7 hand 2. was added to 2 5 m 1 at 3 7 e C 5 The mixture was heated for 5 minutes, and after 5 minutes, the absorbance of the obtained solution at 555 nm was measured (E 1). Next, 0.75 ml of the second reagent preliminarily heated at 37 ° C. was added thereto, and the mixture was stirred. After 5 minutes, the absorbance at the same wavelength was measured [E 2 (value after correction of Chinese degree)]. The amount of LDL cholesterol was calculated by performing the same operation using a standard solution having a cholesterol concentration of 20 Omg / d 1 and comparing the value of (E 2 _E 1).
  • Example 2 The same procedure was followed as in Example 1 except that the sugar compound and protein solubilizing agent used in the first reagent were recombined.
  • the correlation between the serum sample and the agarose electrophoresis method was determined for 20 serum samples. I looked at the number.
  • Second reagent 1 0 0 1
  • Example 2 The same operation as in Example 2 was carried out except that a metal salt was further added in B. and D. of Example 2, and the correlation with agarose electrophoresis was determined for 20 serum samples by correlation coefficient.
  • Table 5 As shown in Table 5, the results obtained by the method of the present invention showed a good correlation with the results obtained by the electrophoresis method.
  • This method for directly quantifying VLDL cholesterol and agarose electrophoresis (clinical examination, Vol. 29, pp. 1344, 1985) can be performed by performing the same operation as in Example 1. Compared.
  • the present invention is applied to a simple and automatic sorting apparatus that does not require a complicated separation and separation operation.
  • a possible method for quantifying LDL or VLDL cholesterol can be provided.

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Description

明 細 書
低密度リボ蛋白中または超低密度リポ蛋白中のコレステロールの定量法 技 術 分 野
本発明は、 臨床診断の分野において脂質代謝の面で重要な低密度リボ蛋白
(LDL) または超低密度リボ蛋白 (VLDL) 中のコレステロール (以下、 LDLコレステロールおよび VLDLコレステロールという) の定量法に関する。 背 景 技 術
LDLは、 末梢細胞にコレステロールを供給する役割を有するとされ、 冠動脈 硬化症をはじめとする各種動脈硬化症の直接的因子であり、 その血中レベルは動 脈硬化性疾患の指標となることが知られている。 また、 卜リグリセライ ド (TG) を豊富に含有する V L D Lも動脈硬化との関連性が注目されている。 従来の LDL コレステロールの定量法としては、 超遠心法、 電気泳動法、 換算法などがあり、 VLDLコレステロールの定量法としては、 超遠心法、 電気泳動法などがある。 超遠心法は、 基本的定量法として用いられており、 分離用超遠心器で比重の差に よって LDLあるいは VLDLを分離し、 そのコレステロール量を測定する 〔ァ ドバンスド ' リピッ ド * リサーチ (Ad v. L i p i d R e s . ) 、 第 6巻、 1頁、 1 968年〕 。 しかしながら、 定量性、 簡便性、 経済性などの面で欠点が ある。 電気泳動法を用いる場合には、 セルロースアセテート膜ゃァガロースゲル などを支持体として分離し、 酵素法によりコレステロールを定量する (臨床検査、 第 29巻、 1 344頁、 1 985年) 。 この方法は、 簡便性、 経済性などの面で 問題がある。 換算法では、 次の計算式に従い LDLコレステロール量を算出する 〔クリニカル · ケミスト リー (C】 i n. C h em. ) 、 第 1 8巻、 4 99頁、 1 972年〕 。
(LDLコレステロール量) =( &コレステロール量)
-(HDLコレステロール量) - (ト リグリセライ ド量) /5 しかし、 この方法は、 血清中の TGの含有量および高脂血症の型などにより制限 されるため、 簡便性、 正確性、 多数検体処理などの面で問題がある。 以上のよう に、 従来の LDLコレステロールまたは VLDLコレステロールの定量法は、 多 数検体処理、 迅速測定および臨床検査の分野で多く使用されている自動分析装置 には不向きである。 さらに、 従来の定量法では、 分離した LDL画分を定量ピぺ ッ 卜ではかり取る場合などの人的誤差も生じ易い。 しかしながら、 単純に LDL または VLDLを分画せずに血淸検体を直接コレステロールエステラーゼとコレ ステロールォキシダーゼが含有された試薬に添加しても、 総コレステロールを定 量する系と変わりがなく、 LDLコレステロールまたは VLDLコレステロール を特異的に定量できない。
発 明 の 開 示
本発明者らは、 糖化合物および Zまたは蛋白可溶化剤を存在させたコレステロ ール測定試薬の系により超遠心で分画された高密度リポ蛋白 (HDL) 、 LDL、 VLDLおよびカイロミ クロン (CM) の各リボ蛋白を用いて測定したところ、 糖化合物および/または蛋白可溶化剤の組み合わせにより各リポ蛋白との反応性 が異なり、 その結果 HDL中のコレステロール、 LDLコレステロール、 VLDLコ レステロール、 CM中のコレステロールの反応性が異なることを見い出し、 本発 明に至った。
本発明は、 搪化合物および または蛋白可溶化剤存在下、 試料中の LDLコレ ステロール量または VLDLコレステロール量を測定することを特徴とする LDし コレステロールまたは VLDLコレステロールの定量法に関する。 上記測定の際 には、 さらに特異性を上げるため、 2価の金属塩を併用して添加することもでき る
また、 本発明により、 糖化合物および または蛋白可溶化剤を成分とする LDL または VLDL中のコレステロールの定量試薬、 あるいは糖化合物と蛋白可溶化 剤を組み合わせてなる LDLまたは VLDL中のコレステロールの定量試薬を提 供することができる。
糖化合物としては、 グルコース誘導体が好ましく用いられ、 グルコース誘導体 としては、 例えば、 一般式 ( I )
Figure imgf000005_0001
〔式中、 R1 、 R2 および R3 は同一または異なって水素、 置換もしくは非置換 のアルキル、 置換もしくは非置換のアルカノィル、 S〇3 M2 (式中、 M2 は水 素または金属を表す) 、 一 (ダルコシル) p — H (式中、 pは 1または 2を表す) または— (マルトシル) Q — H (式中、 qは 1または 2を表す) を表し、 R4 お よび R5 は同一または異なって水素、 金属または S〇3 M3 (式中、 M3 は水素 または金属を表す) を表し、 mは 6〜8の整数を表す〕 で表される化合物、 一般 式 (II)
Figure imgf000005_0002
〔式中、 R6 、 R7 および R8 は同一または異なって水素または S〇3 M4 (式 中、 M4 は水素または金属を表す) を表し、 R9 は水素、 0M5 (式中、 M5 は 水素または金属を表す) または OS〇3 M6 (式中、 M6 は水素または金属を表 す) を表し、 Rieは水素、 金属または S03 M7 (式中、 M7 は水素または金属 を表す) を表し、 nは 4〜8000の整数を表す〕 で表される化合物などがあげ られる。
蛋白可溶化剤としては、 一般式 (III )
R11(C2H40)a-(C3H60)bR12 (III)
〔式中、 aおよび bは 0〜200の整数を表し、 R1'は R2°— X-0— (式中、 R2Dはアルキルまたはアルケニルを表し、 Xは単結合または COを表す) または H- (CH2 CH2 0) c -N (R21) - (式中、 cは 1〜200の整数を表し, R21はアルキルまたはアルケニルを表す) を表し、 R12は C2 H4 COOR22、 C3H6COOR23、 C2H4CH (COOR24) 2 または C2H4CH(C00R25)(C00R26)
(式中、 R22、 R23、 R24、 R25および R26は同一または異なって水素、 金属、 アルキルまたはアルケニルを表す) を表す。 ただし、 aおよび bは同時には 0を 表さず、 両成分はランダムに存在することができる〕 で表される化合物、 一般式
(IV)
(IV)
Figure imgf000006_0001
(式中、 R13、 R14、 Rl5、 R16、 R17および R18は同一または異なってアル力 ノィルを表す) で表される化合物または一般式 (V)
R19 - Y - S03M1 (V)
〔式中、 R "はアルキル、 アルケニルまたは置換もしくは非置換のァリールを表 し、 Yは単結合、
Figure imgf000006_0002
一 0—、 -CH (R27) — (式中、 R27はアルキルまたはアルケニルを表す) 、 -CH2 CH (OH) (CH2 ) d - (式中、 dは 1〜22の整数を表す) 、 一 CH=CH(CH2), 一 (式中、 eは 1〜22の整数を表す) 、 一 0C0CH(CH2C00R28)— (式中、 R28はアルキルまたはアルケニルを表す) またはこれらの混合物を表し- M1 は水素または金属を表す〕 で表される化合物が好ましく用いられる。
以下、 一般式 ( I ) 〜一般式 (V) で表される化合物をそれぞれ化合物 ( I ) 〜化合物 (V) という。
—般式 ( I) 一 ~—般式 (V) の各基の定義において、 アルキルおよびアルカノ ィルのアルキル部分としては、 直鎖または分技状の炭素数 1〜2 2の、 例えば、 メチル、 ェチル、 プロピル、 イソプロピル、 ブチル、 イソブチル、 sec-ブチル、 tert- ブチル、 ペンチル、 イソペンチル、 ネオペンチル、 へキシル、 へブチル、 デシル、 ペン夕デシル、 ィコサニル、 ドコサニルなどがあげられ、 アルケニルと しては、 直鎮または分技状の炭素数 2〜2 2の、 例えば、 ビニル、 プロべニル、 ブテニル、 ペンテニル、 へキセニル、 へブテニル、 デセニル、 ペン夕デセニル、 ィコセニル、 ドコセニルなどがあげられる。 ァリールは、 フエニルまたはナフチ ルを表し、 金属としては、 リチウム、 ナトリウム、 カリウムなどがあげられる。
置換アルキルおよび置換アルカノィルの置換基としては、 例えば、 ヒ ドロキシ、 カルボキシ、 スルホなどがあげられる。 置換ァリールの置換基としては、 例えば、 アルキルなどがあげられ、 アルキルは、 前記アルキルと同意義を表す。
糖化合物としては、 化合物 ( I ) または化合物 (Π ) の中でもシクロデキスト リン誘導体が、 特にメチル化シクロデキストリンなどが好ましく用いられる。 例 えば、 α;—シクロデキストリン、 /5—シクロデキストリン、 7—シクロデキスト リ ン、 ジメチルー S—シクロデキストリン、 トリメチル一 S—シクロデキストリ ン、 ヒ ドロキシェチル一 /S—シクロデキストリン、 2—ヒ ドロキシプロピル一 —シクロデキストリン、 2—ヒ ドロキンプロピル一^一シクロデキストリン、 力 ルボキシメチルー /S—シクロデキストリン、 グリコシルー —シクロデキストリ ン、 マルトシルーなーシクロデキストリン、 マルトシルー^ーシクロデキストリ ン、 パーシャリーメチルー /5—シクロデキストリン、 ーシクロデキストリンス ルフェート、 —シクロデキストリンスルフエ一トなどがあげられる。
蛋白可溶化剤としては、 化合物 (Ι Π ) 、 化合物 (IV) または化合物 (V ) な どの界面活性剤の中でも、 特にノニオン系界面活性剤、 ァニオン系界面活性剤な どが好ましく用いられる。 ノニオン系界面活性剤としては、 例えば、 ポリオキシ エチレンラウリルエーテル、 ポリオキンエチレンセチルエーテル、 ポリオキシェ チレンステアリルエーテル、 ポリオキシエチレンォレイルエーテル、 ポリオキシ エチレンベへニルエーテル、 ポリオキンエチレンモノラウレート、 ポリオキシェ チレンモノステアレート、 ポリオキシエチレンモノォレエート、 ボリォキシェチ レンラウリルァミ ン、 ポリオキンエチレンステアリルァミン、 しょ糖脂肪酸エス テルなどがあげられ、 ァニオン系界面活性剤としては、 例えば、 ドデシルペンゼ ンスルホン酸ナトリウム、 ノルマルドデシルベンゼンスルホン酸ナト リウム、 ラ ゥリル硫酸ナトリウム、 高級アルコール硫酸エステルソーダなどがあげられる。
2価の金属塩としては、 0 . 0 1〜2 O mMのマグネシウム塩、 カルシウム塩、 マンガン塩、 ニッケル塩、 コバルト塩などがあげられ、 好ましくは、 0 . 0 1〜 2 O m Mのマグネシウム塩が用いられる。
本発明は、 糖化合物およびノまたは蛋白可溶化剤をコレステロール測定試薬系 と共存させる点に特徵を有するものであり、 コレステロール測定系自体は下記の 反応原理に基づく一般法に従うものである。 ただし、 色素源および測定波長はこ れに限定されるものではない。
コレステロ一ルエステル
加水分解酵素
エステル型コレステロール + H O 遊離型コレステロール + 脂肪酸 コレステロール
酸化酵素
遊離型コレステロール + 0, コレステノ ン + Ho 2O^2
パーォキシダ―ゼ
2H202 + 4一ァミ ノアンチピリ ン + EMSE + H3 +0 キノン色素 + 5H20
(λ max = 555 nm)
EMSE: N—ェチル一 N— (3—メチルフエニル )一 N'—サクシニルェチレンジァミ ン
コレステロールエステル
エステル型コレステロール + H20 ^ 遊離型コレステロール + 脂肪酸 コレステロール
脱水窣酵素
遊離型コレステロール + NAD(P)+ ~ ^→ コレステノン + NAD(P)H + H+
(λ = 340nm)
例えば、 色素源としては、 一般に使用される 4一ァミノアンチピリンとフエノ —ル、 4一クロ口フエノール、 m—クレブール、 3—ヒドロキシー 2, 4 , 6— トリョード安息香酸 (HT I B) などのフヱノール類との組合せの他、 4ーァミ ノアンチピリンとトリンダー試薬として知られている (同仁化学研究所第 1 9版 総合カタログ、 1 9 9 4年) N—スルホプロピルァニリン、 N—ェチルー N—
(2—ヒ ドロキシ一 3—スルホプロピル) 一 m— トルイジン (TO OS) 、 N— ェチルー N— ( 2—ヒドロキシー 3—スルホプロピル) 一 3, 5—ジメチルァニ リン (MA〇 S) 、 N—ェチルー N— (2—ヒドロキシー 3—スルホプロピル) — 3, 5—ジメ トキシァニリン (DAOS) 、 N—ェチルー N—スルホプロピル 一 m— トルイジン (TOPS) 、 N— ( 2—ヒドロキシ一 3—スルホプロピル) - 3, 5—ジメ トキシァニリン (HDAOS) 、 N, N—ジメチルー in— トルイ ジン、 N, N—ジスルホプロピル一 3, 5—ジメ トキシァニリン、 N—ェチル一 N—スルホプロピル一 m—ァニシジン、 N—ェチルー N—スルホプロピルァニリ ン、 N—ェチルー N—スルホプロピル一 3, 5—ジメ トキシァニリン、 N—スル ホプロピル一 3, 5—ジメ トキシァニリン、 N—ェチル一N—スルホプロピル一 3, 5—ジメチルァニリン、 N—ェチルー N— ( 2—ヒ ドロキン一 3—スルホプ 口ピル) —m—ァニシジン、 N—ェチルー N— ( 2—ヒ ドロキシ一 3—スルホプ 口ピル) ァニリン、 N—ェチルー N— ( 2—ヒ ドロキシー 3—スルホプロピル) 一 3, 5—ジメ トキシァニリンなどのァニリン類あるいは N—ェチルー N— (3 一メチルフエニル) 一 N' —サクシニルエチレンジァミン (EMSE) 、 N—ェ チルー N— ( 3—メチルフエニル) 一 N' —ァセチルエチレンジァミ ンなどとの 組合せが使用できる。 また、 高感度の色素源として、 特公昭 6 0— 3 34 7 9で 示される 1 0— (N-メチルカルバモイル) 一 3, 7—ビス (ジメチルァミノ) フエノチアジン (MCDP) 、 特公平 4 - 2783 9で示されるビス [ 3—ビス (4一クロ口フエニル) メチルー 4ージメチルァミノフエニル] ァミン(BCMA)、 特開昭 62 - 2 9 6で示される色素源なども使用可能であり、 これらに 4一アミ ノアンチピリンあるいは上記で示したトリンダ一試薬を組み合わせて用いること もできる。 色素源の濃度としては、 0. 0 1〜 I OmgZm 1が好ましく、 溶解 度の関係で制限される。 コレステロールエステル加水分解酵素、 コレステロール酸化酵素あるいはコレ ステロール脱水素酵素としては、 通常市販されている、 コレステロールエステル を加水分解する能力を有する微生物または動物由来のコレステロールエステラー ゼゃリポプロティンリパーゼ、 コレステロールを酸化して過酸化水素を生成する 微生物由来のコレステロールォキシダーゼ、 微生物または動物由来のコレステロ 一ルデヒ ドロゲナーゼなどがあげられる力 これら酵素の特異性、 安定性をさら にあげるためにポリエチレングリコールを主成分とする基、 水溶性のオリゴ搪残 基、 スルホプロピル基などで上記の酵素を化学的に修飾したものも用いられる。 また、 遺伝子操作によってこれらの遣伝子を取り、 別の微生物に導入して発現さ せた酵素またはこれらを化学的に修飾した修飾体、 あるいはこれらの遺伝子を改 変して発現させた酵素またはこれらを化学的に修飾した修飾体なども好適に用い られる。
酵素を修飾するための試薬 (化学修飾剤) としては、 例えば、 ポリエチレング リコールにァミ ノ基と結合可能な基を結合させた化合物 {ポリエチレングリコー ルに N—ヒ ドロキシサクシンィミ ド基などのァミノ基と結合可能な基を結合させ たサンブライ ト V F M 4 1 0 1 [日本油脂 (株) 製] など } 、 ボリアルキレン グリコール構造および酸無水物構造を有するサンブライ ト A K Mシリーズ、 同 A D Mシリーズ、 同 A C Mシリーズ [いずれも日本油脂 (株) 製:化学工学論文 集、 第 2 0巻、 第 3号、 4 5 9頁、 1 9 9 4年] 、 ポリエチレングリコールとボ リプロピレングリコールの共重合体にァミノ基と結合可能な基を結合させた化合 物、 ボリェチレングリ コールモノメタク リルモノ メチルエーテルと無水マレイン 酸の共重合体などがあげられる。 また、 ボリウレタンの化学修飾剤であるポリゥ レ タ ン P 4 0 0 0 ac t i vated (ベー リ ンガーマンハイム社製 Enzyme modi f icat i on set能書) 、 デキストランの化学修飾剤であるデキストラン T 4 0 , T C T一 act i vated (同) 、 1 , 3—プロパンサルトンなども使用できる。
次に、 酵素に上記化学修飾剤を反応させる方法を例示するが、 これによつて制 約されない。 まず、 酵素を p H 8以上のリン酸緩衝液などの緩衝液中に溶解し、 0〜5 0 で例ぇば0 . 0 1〜5 0 0倍モル量のサンブライ トを添加し、 5分間 〜2 4時間撹拌する。 この反応液をそのままあるいは必要に応じて限外濾過膜に より低分子物を除去して用いる。 コレステロールエステル加水分解酵素、 コレス テロール酸化酵素およびコレステロール脱水素酵素は、 0. 〜 l O O uZm l で使用するのが好ましい。
本発明方法は、 血液、 尿などの LDLあるいは VLDLを含有する体液に適用 できる。
次に、 本発明の定量法について例をあげて説明する。
方法 1
本発明を実施するに際しては、 まず、 糖化合物溶液および Zまたは蛋白可溶化 剤溶液を調製する。 糖化合物溶液は、 糖化合物を適当な緩衝液、 例えば 5 OmM
Tr i s -HC 1緩衝液 (pH7. 4) に溶解し、 反応時に例えば 1 0 OmM 以下、 好ましくは 3〜8 OmMの漢度になるように調製する。 なお、 搪化合物は あらかじめコレステロール測定試薬中に共存させておいてもよい。 蛋白可溶化剤 溶液は、 蛋白可溶化剤を適当な緩衝液、 例えば 5 OmM Tr i s— HC I緩衝 液 (pH7. 4) に溶解し、 コレステロール測定試薬と共存させ、 反応時に例え ば 5 O gZl以下、 好ましくは 0. 1〜20 gZlの濃度になるように調製する。 試薬は、 糖化合物溶液および/またはコレステロール測定試薬が共存した蛋白可 溶化剤溶液から調製し (蛋白可溶化剤溶液を使用しない場合は、 糖化合物をあら かじめコレステロール測定試薬中に共存させておく) 、 20〜50°C、 好ましく は 30〜4 (TCで約 5分保温する。 次いで、 上記試薬に試料そのものもしくは必 要に応じて水あるいは生理食塩水で希釈した試料を加え、 5〜30分間反応させ る。 反応終了後、 反応液の吸光度を 340〜900 nm、 例えば単波長の場合は 555 nmで、 2波長の場合は主波長 600 nm、 副波長 700 nmで測定し、 コレステロール量を算出する (2波長の場合は両波長での吸光度の差から算出す る) 。
血清から超遠心により分画された HDL、 LDL、 VLDLおよび CMの各フ ラクションを使用して上記試薬によりコレステロール量を測定した。 その結果、 糖化合物および蛋白可溶化剤の組み合わせにより HDLコレステロール、 LDL コレステロール、 VLDLコレステロール、 CMコレステロールの反応性が異な り、 糖化合物および蛋白可溶化剤の組み合わせにより各リポ蛋白との反応性が異 なることが確認された。
コレステロール測定試薬 (未修飾) に糖化合物 5mMおよび蛋白可溶化剤ボリ ォキシエチレンモノラウレート 5 g/1を組み合わせて共存させたときの各リボ 蛋白の反応性の差を第 1表に示す。 第 1 表
Figure imgf000014_0001
一, +, ++, +++はそれぞれ反応の強さを不し,一 < + < ++ < +++である コレステロール測定試薬 (未修飾) に糖化合物ト リ メチルー —シクロデキス トリン 5 mMおよび蛋白可溶化剤 5 g/ 1を組み合わせて共存させたときの各リ ボ蛋白の反応性の差を第 2表に示す。
第 2 表
Figure imgf000015_0001
方法 2
糖化合物溶液は、 糖化合物を適当な緩衝液、 例えば 5 OmM Tr i s -HC1 緩衝液 (pH7. 4) に溶解し、 反応時に例えば 1 0 OmM以下、 好ましくは 3 〜8 OmMの濃度になるように調製する。 蛋白可溶化剤溶液は、 蛋白可溶化剤を 適当な緩衝液、 例えば 5 OmM Tr i s— HC 1緩衝液 (pH 7. 4 ) に溶解 し、 反応時に例えば 5 0 z/ 1以下、 好ましくは 0. 1〜20 g Iの濃度にな るように調製する。 あらかじめ 20〜5 0で、 好ましくは 3 0〜4 0。C、 例えば 37 eCで加温した糖化合物溶液および/または蛋白可溶化剤溶液に試料そのもの もしくは必要に応じて水あるいは生理食塩水で希釈した試料を添加して例えば 3 7°Cで 5分間加温し、 5分後、 得られた溶液の 5 5 5 nmにおける吸光度を測 定する (E 1 ) 。 次いで、 あらかじめ 20〜5 0°C、 好ましくは 3 0〜4 0て、 例えば 37てで加温したコレステロール測定試薬を添加して撹拌し、 5分後に同 波長における吸光度を測定する [E 2 (濃度補正後の値) ]。 コレステロール量 は、 既知濃度のコ レステロールを含有する標準液を用いて同様の操作を行い、 (E 2— E 1 ) の値を比較することにより算出する。
次に、 実施例によって本発明の態様を説明する。
発明を実施するための最良の形態
実施例 1
直接 LDLコレステロ一ルを定量する本法とァガロース電気泳動法 (臨床検査、 第 2 9巻、 1 3 4 4頁、 1 9 8 5年) とを比較した。
本法の試薬組成
第一試薬
トリメチルー yS—シクロデキストリン 5 m
ポリオキシエチレンモノラウレート 5 z/ 1
EMS E 1. 1 mM
トリス緩衝液 (pH 7. 0) 3 0 mM
第二
コレステロールエステラーゼ (未修飾) 1. 0 UZm 1 コレステロールォキシダーゼ (未修飾) 5. 0 U/m 1 パーォキシダーゼ 2 5 U/m 1
4一ァミノアンチピリン 2. 2 mM
トリス緩衝液 (pH 7. 0) 3 0 mM 本法では、 まず、 血清サンプル 50 1をあらかじめ 3 7てで加温した第一試 薬 2. 2 5m 1 に添加して 3 7 eCで 5分間加温し、 5分後、 得られた溶液の 555 nmにおける吸光度を測定した (E 1 ) 。 次いで、 あらかじめ 3 7°Cで加温した 第二試薬 0. 7 5m 1を添加して撹拌し、 5分後に同波長における吸光度を測定 した [E 2 (漢度補正後の値) ] 。 LDLコレステロールの量は、 コレステロ一 ル濃度 2 0 Omg/d 1の標準液を用いて同様の操作を行い、 (E 2 _E 1 ) の 値を比較することにより算出した。
ァガロース電気泳動法では、 鼋気泳動後の支持体上のリポ蛋白分画に対してコ レステロールの酵素染色を行い、 デンシトメ トリ一 (クリニスキャン 2 ;株式会 社へレナ研究所) により LDLコレステロールを定量した。 その結果を第 3表に示す c 第 3 表
Figure imgf000017_0001
第 3表に示すように、 本発明の方法による結果は、 電気泳動法による結果と良 好な相関を示した。
実施例 2
第一試薬で使用する糖化合物および蛋白可溶化剤を組み換える以外は、 実施例 1の本法と同様の操作を行い、 血清サンプル 2 0検体につき、 ァガロース電気泳 動法との相関を相関係数でみた。
第一試薬の組成
A. ト リ メチルー; 5—シクロデキス トリ ン 5 mM
ポリオキシエチレンモノラウレート 5 z/ 1 EMS E 1. 1 mM 卜 リス緩衝液 (pH 7. 0) 30 mM
B. ト リ メチルー —シクロデキストリ ン 5 mM
ドデシルベンゼンスルホン酸ナト リウム 5 g/ 1 EMS E 1. 1 mM トリス緩衝液 (pH7. 0) 30 mM C. ジメチルー /5—シクロデキス トリ ン 5 mM
ボリォキシエチレンモノラウレー ト 5 g/ \
EMSE 1. 1 mM トリス緩衝液 (pH7. 0) 30 mM
D. ジメチルー ーシクロデキストリ ン 5 mM
ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム 5 g/ \
EMSE 1. 1 mM ト リス緩衝液 (PH 7. 0) 3 0 mM 本法では、 それぞれ、 日立 0 7 0自動分析装置を用いて測定した。 測定条件 を下記に示す。
サンプル量: 4 11 1
第一試薬 : 3 0 0 】
第二試薬 : 1 0 0 1
測定波長 主波長: 6 0 0 nm、 副波長: 70 0 n m
結果を第 4表に示す c
第 4
Figure imgf000018_0001
第 4表に示すように、 本発明の方法による結果は、 電気泳動法による結果と良 好な相関を示した。
実施例 3
実施例 2の B. および D. においてさらに金属塩を添加する以外は、 実施例 2 と同様の操作を行い、 血清サンプル 20検体につき、 ァガロース電気泳動法との 相閱を相関係数でみた。 第一試薬の組成
E. ト リ メチルー 5—シクロデキストリ ン 5 m
ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリゥム 5 g/\ 塩化 M g · 6水和物 6 mg/m 1 EMSE 1. 1 mM トリス緩衝液 (pH 7. 0) 30 mM
F. ジメチル一 ^—シクロデキス ト リ ン 5 mM
ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム 5 g/1 塩化 Mg · 6水和物 6 m g/m 1 EMSE 1. 1 mM ト リス緩衝液 (pH 7. 0) 3 0 mM 結果を第 5表に示す。
第 5 表
Figure imgf000019_0001
第 5表に示すように、 本発明の方法による結果は、 電気泳動法による結果と良 好な相関を示した。
実施例 4
直接 VLDLコレステロールを定量する本法とァガロース電気泳動法 (臨床検 査、 第 2 9巻、 1 3 4 4頁、 1 9 8 5年) とを、 実施例 1 と同様の操作を行うこ とにより比較した。
本法の試薬組成
第一試薬
2—ヒ ドロキシプロピル一 S—シクロデキストリ ン 5 mM
ポリオキシエチレンラウリルエーテル 5 z/ 1
EMSE 1. 1 mM トリス緩衝液 (pH 7. 0) 30 mM 第一試薬
修飾コレステロールエステラーゼ 1. 0 UZml 修飾コレステロ一ルォキシダ一ゼ 5. 0 UZml パーォキシダーゼ 25 U/m 1
4ーァミノアンチピリ ン 2. 2 mM トリス緩衝液 (PH7. 0) 30 mM なお、 修飾コレステロールエステラーゼおよび修飾コレステロールォキシダー ゼは、 20 mMリ ン酸緩衝液 (ρ H 8 ) にコレステロールエステラーゼまたはコ レステロールォキシダ一ゼを溶解させて (1 Omg/ml ) 5てに冷却後、 これ に 20倍モルのサンブライ ト 400 1 (日本油脂) を添加して溶解させ、 5eCで 4時間反応させてポリエチレングリコ一ルで修飾することにより調製し、 この反 応液のまま使用した (ボリエチレングリコール部分の分子量 6000 ) 。
結果を第 6表に示す。 第 6 表
Figure imgf000020_0001
第 6表に示すように、 本発明の方法による結果は、 電気泳動法による結果と良 好な相関を示した。
産業上の利用可能性
本発明によれば、 煩雑な分画分離操作の不要な簡便でかつ自動分折装置に適用 可能な LDLコレステロールまたは VLDLコレステロールの定量法を提供する ことができる。

Claims

請 求 の 範 囲
1. 糖化合物およびノまたは蛋白可溶化剤存在下、 試料中の低密度リボ蛋白 (LDL) または超低密度リボ蛋白 (VLDL) 中のコレステロール量を測定す ることを特徵とする LDLまたは VLDL中のコレステロールの定量法。
2. 糖化合物およびノまたは蛋白可溶化剤存在下、 試料中の LDL中のコレス テロール量を測定することを特徴とする LDL中のコレステロールの定量法。
3. 糖化合物および または蛋白可溶化剤存在下、 試料中の VLDL中のコレ ステロール量を測定することを特徴とする VLDL中のコレステロールの定量法 c
4. 糖化合物がグルコース誘導体である請求の範囲 1〜 3記載の定量法 3
5. 糖化合物が一般式 ( I )
Figure imgf000022_0001
〔式中、 R1 、 R2 および R3 は同一または異なって水素、 置換もしくは非置換 のアルキル、 置換もしくは非置換のアルカノィル、 S〇3 M2 (式中、 M2 は水 素ま rこは金属を表す) 、 一 (ダルコシル) p — H (式中、 pは 1または 2を表す) または一 (マルトシル) 。 — H (式中、 qは 1または 2を表す) を表し、 R4 お よび R5 は同一または異なって水素、 金属または S〇3 3 (式中、 M3 は水素 または金属を表す) を表し、 mは 6〜8の整数を表す〕 で表される化合物 [以下、 化合物 ( I) という。 他の式番号の化合物についても同様である] または一般式
Figure imgf000022_0002
〔式中、 R6 、 R7 および R8 は同一または異なって水素または S03 M4 (式 中、 M4 は水素または金属を表す) を表し、 R9 は水素、 OM5 (式中、 M5 は 水素または金属を表す) または OS03 M6 (式中、 M6 は水素または金属を表 す) を表し、 R1Dは水素、 金属または S03 M7 (式中、 M7 は水素または金属 を表す) を表し、 nは 4〜8000の整数を表す〕 で表される化合物である請求 の範囲 4記載の定量法。
6. 糖化合物がシクロデキストリン誘導体である請求の範囲 5記載の定量法。
7. 蛋白可溶化剤が一般式 (【1【 )
R"(C2H40)a-(C3H60)bR12 (III)
〔式中、 aおよび bは 0〜200の整数を表し、 R'1は R2e-X—〇一 (式中、 R2eはアルキルまたはアルケニルを表し、 Xは単結合または COを表す) または H- (CH2 CH2 0) c -N (R21) - (式中、 cは 1〜200の整数を表し、 R21はアルキルまたはアルケニルを表す) を表し、 R12は C2 H4 COOR22、 C3HsC〇OR23、 C2H4CH (COOR2" 2 または C2H4CH(C00R2S)(C00R2e)
(式中、 R22、 R23、 R2\ R25および R26は同一または異なって水素、 金属、 アルキルまたはアルケニルを表す) を表す。 ただし、 aおよび bは同時には 0を 表さず、 両成分はランダムに存在することができる〕 で表される化合物、 一般式
(IV)
Figure imgf000023_0001
(式中、 R13、 Rl4、 R15、 R16、 R17および R'8は同一または異なってアル力 ノィルを表す) で表される化合物または一般式 (V)
R19-Y-S03M (V)
〔式中、 R 19はアルキル、 アルケニルまたは置換もしくは非 g換のァリールを表 し、 Yは単結合、
Figure imgf000024_0001
一 0—、 -CH (R27) — (式中、 R27はアルキルまたはアルケニルを表す) 、 - CH2 CH (OH) (CH2 ) « — (式中、 dは 1〜22の整数を表す) 、 -CH=CHCCH2), ― (式中、 eは 1〜22の整数を表す)、 一 0C0CH(CH2C00R28) - (式中、 R28はアルキルまたはアルケニルを表す) またはこれらの混合物を表し、 M1 は水素または金属を表す〕 で表される化合物である請求の範囲 1〜 6記載の 定量法。
8. 蛋白可溶化剤がノニオン系界面活性剤またはァニオン系界面活性剤である 請求の範囲 7記載の定量法。
9. コレステロール量を測定する際に 2価の金属塩を存在させることを特徴と する請求の範囲 1〜 8記載の定量法。
10. 試料中にコレステロールエステル加水分解酵素およびコレステロール酸化 酵素またはコレステロ一ル脱水素酵素を作用させ生成する過酸化水素または還元 型補酵素を定量することからなるコレステロ一ル量を測定する方法において、 使 用するコレステロールエステル加水分解酵素、 コレステロール酸化酵素またはコ レステロ一ル脱水素酵素が化学修飾されたもしくは未修飾のコレステロールエス テラーゼ、 化学修飾されたもしくは未修飾のコレステロールォキシダーゼまたは 化学修飾されたもしくは未修飾のコレステロールデヒドロゲナーゼである請求の 範囲 1〜 9記載の定 i法。 .
11. 糖化合物および または蛋白可溶化剤を成分とする LDLまたは VLDL 中のコレステロールの定量試薬。
12. 糖化合物および Zまたは蛋白可溶化剤を成分とする LDL中のコレステロ —ルの定量試薬。
13. 糖化合物および/または蛋白可溶化剤を成分とする V LDL中のコレステ ロールの定量試薬。
14. 糖化合物と蛋白可溶化剤を組み合わせてなる LDLまたは VLDL中のコ レステロールの定量試薬。
15. 糖化合物と蛋白可溶化剤を組み合わせてなる LDL中のコレステロールの 疋量試 。
16. 搪化合物と蛋白可溶化剤を組み合わせてなる VLDL中のコレステロール の定量試薬。
17. 糖化合物がグルコース誘導体である請求の範囲 11〜16記載の定量試薬。
18. 糖化合物が化合物 ( I) または化合物 (II) である請求の範囲 17記載の定 里 e ^ 。
19. 糖化合物がシクロデキストリン誘導体である請求の範囲 18記載の定量試薬 c
20. 蛋白可溶化剤が化合物 (III )、 化合物 (IV) または化合物 (V) である 請求の範囲 11〜19記載の定量試薬。
21. 蛋白可溶化剤がノニオン系界面活性剤またはァニオン系界面活性剤である 請求の範囲 20記載の定量試薬。
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