UA30460U - Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові - Google Patents

Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові Download PDF

Info

Publication number
UA30460U
UA30460U UAU200712546U UAU200712546U UA30460U UA 30460 U UA30460 U UA 30460U UA U200712546 U UAU200712546 U UA U200712546U UA U200712546 U UAU200712546 U UA U200712546U UA 30460 U UA30460 U UA 30460U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
neutrophils
functional state
smears
blood
fixation
Prior art date
Application number
UAU200712546U
Other languages
English (en)
Russian (ru)
Inventor
Наталья Владимировна Григорова
Юлия Витальевна Ещенко
Валентина Демьяновна Бовт
Виталий Андреевич Ещенко
Original Assignee
Государственное Высшее Учебное Заведение "Запорожский Национальный Университет" Министерства Образования И Науки Украины
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное Высшее Учебное Заведение "Запорожский Национальный Университет" Министерства Образования И Науки Украины filed Critical Государственное Высшее Учебное Заведение "Запорожский Национальный Университет" Министерства Образования И Науки Украины
Priority to UAU200712546U priority Critical patent/UA30460U/uk
Publication of UA30460U publication Critical patent/UA30460U/uk

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові включає забір крові, підготовку мазка, його фіксацію, забарвлювання, мікроскопічне дослідження нейтрофілів. Мазки фіксують у парах формаліну, забарвлюють метиловим зеленим, повторно фіксують у парах формаліну, забарвлюють еозином і за кількістю забарвлених гранул визначають функціональний стан нейтрофілів.

Description

Опис винаходу
Спосіб відноситься до гематології і стосується клінічних лабораторних методів дослідження. 2 Відомий спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові, який прийнятий за аналог |Истаманова
Т.С., Алмазов В.А. Лейкопении и агранулоцитозь!ї. -Л.: Медгиз, 1961. -С.235-237), що включає: забір крові та поміщення її краплини на предметне скло, накривання покривним склом, краї останнього обкантовують розплавленим парафіном, препарат поміщають у термонагрівальний столик, закріплений на мікроскопі, який автоматично підтримує температуру 372С, дослідження нейтрофілів проводять за допомогою фазово-контрастного пристрою, з'єднаного зі звичайним мікроскопом, реєстрацію руху нейтрофілів здійснюють за допомогою рисувального апарату.
Спільними із рішенням, що заявляється, ознаками, є: забір крові, поміщення її краплини на предметне скло, накривання покривним склом, мікроскопічне дослідження нейтрофілів.
Цей спосіб потребує особливої апаратури, що ускладнює його широке використання й не дозволяє т отримувати порівняльні результати, тому що не забезпечує високу точність результатів дослідження.
Відомий спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів, який полягає в дослідженні фагоцитозу ІКост
Е.А. Стенко М.М. Советский грамицидин и его применение в клинической практике. Лабораторнье исследования и оценка их результатов //Научнье трудьі! Клинической больницьі имени С.П. Боткина. -М.: 1947. -6б.253-256)Ї, прийнятий за прототип. Як об'єкт фагоцитозу використовують живих і вбитих мікробів. Спосіб включає: забір крові, набирання у пробірку Відаля одним і тим самим капіляром від апарату Панченкова: 1 капіляр 495 розчину цитрату натрію, 2 капіляра крові, 1 капіляр одноденної живої культури з 1-2 х109 мікробних тіл у їмл, або вбитих мікробів з концентрацією 4х109 тіл у їмл, ретельно перемішують і витримують у термостаті при 372С протягом 1год., потім вміст пробірок знову ретельно перемішують, роблять на предметних ов стеклах дуже тонкі мазки, висушують їх на повітрі, фіксують протягом ЗОхв. рідиною Нікіфорова, що складається з рівних кількостей етилового спирту та сірчаного ефіру, фіксовані мазки заливають на 25-40хв. розведеною - фарбою Романовського, яку готують таким чином: З3,8г сухої фарби Романовського розчиняють у 250мл чистого метилового спирту. Розчин залишають на 3-5 діб, часто збовтуючи для кращого розчинення фарби, потім додають 250мл чистого гліцерину та знову залишають на 3-5 діб, періодично збовтуючи, перед споживанням о зо барвник титрують, тобто декілька фіксованих мазків крові фарбують протягом ЗОхв. (1-2 краплі фарби на Тмл дистильованої води), за добре забарвленим препаратом встановлюють потрібну кількість крапель фарби на мл ре) води та час забарвлення, визначають у 100 нейтрофілах у світловому мікроскопі процент фагоцитуючих клітин « (показник фагоцитарної активності) й середню кількість мікробів у кожному з фагоцитованих нейтрофілів (фагоцитарний індекс). (ав)
Цей спосіб складний, потребує наявності мікробних культур. Джерелом помилок є: забруднення культури, у с зв'язку з чим перед кожним дослідженням потрібно перевіряти культуру бактеріоскопічним методом; споживання нестерильних реактивів.
Спільними з прототипом ознаками є: забір крові, приготування мазка, його фіксація, забарвлення та мікроскопічне дослідження. «
В основу корисної моделі поставлено завдання розробити спосіб визначення функціонального стану з с нейтрофілів крові, який шляхом подвійної фіксації і забарвлення мазків крові метиловим зеленим та еозином дозволяє чітко виявити в клітинах специфічні гранули та підрахувати їх кількість і за їх величиною зробити з висновок про функціональний стан нейтрофілів.
Суттєвими ознаками способу є: - забір крові; со - приготування мазка; - його фіксація в парах формаліну; о - забарвлення метиловим зеленим; їх - повторна фіксація в парах формаліну; - забарвлення еозином; (22) - мікроскопування; з - підрахунок середньої кількості забарвлених гранул у нейтрофілах; - визначення функціонального стану нейтрофілів.
Відмінними від прототипу ознаками є: подвійна фіксація мазків, використання як фіксатора парів формаліну, забарвлення мазків метиловим зеленим та еозином, визначення функціонального стану нейтрофілів за кількістю забарвлених гранул. с Спосіб здійснюють таким чином:
Проводять забір крові; готують мазки; фіксують мазки в парах формаліну протягом 5--1хв., для чого у чашку
Петрі наливають 20-5бмл формаліну, на дно чашки кладуть дві скляні палички, на палички мазками донизу бо поміщають два предметні скла й закривають чашку; мазки забарвлюють протягом 1--0,5хв. 196 водним розчином метилового зеленого; виконують повторну фіксацію мазків протягом 30--5хв. парами формаліну, промивання мазків дистильованою водою протягом 1--0,5хв, їх забарвлення 195 водним розчином еозину протягом 30 5х8в., промивання мазків дистильованою водою, висушування на повітрі, дослідження мазків з імерсією у світловому мікроскопі, на забарвлених препаратах у цитоплазмі нейтрофілів виявляються фіолетові гранули, на 100 65 нейтрофілах визначають середню кількість забарвлених гранул, із розрахунку на одну клітину і за цією величиною роблять висновок про функціональний стан нейтрофілів.
У нормі середня кількість забарвлених гранул у нейтрофілі складає 130 -4,1. При хронічному мієлоїдному лейкозі вона буде значно нижча - 82--3,6 (р«0,001). При лейкемоїдних реакціях кількість гранул у нейтрофілах суттєво не відрізняється від норми (138-5,4; р»0,05).
Приклад 1
У здорової (контрольної) особи проводили забір крові із кінчика пальця. Краплю крові наносили на предметне скло та готували мазок, який фіксували протягом 5 хвилин у парах формаліну, забарвлювали впродовж їхв. 196 водним розчином метилового зеленого, повторно фіксували мазок у парах формаліну протягом ЗОхв., промивали дистильованою водою протягом їхв., забарвлювали 195 водним розчином еозину 70 протягом ЗОхв., промивали дистильованою водою протягом 5бхв., підсушували на повітрі, досліджували в світловому мікроскопі з імерсійною системою. Кількість гранул у нейтрофілах здорової людини складає 130-4.1.
Приклад 2
В особи, хворої на хронічний мієлоїдний лейкоз, мазки крові обробляли, як вказано у випадку зі здоровою особою. Кількість забарвлених гранул у нейтрофілах була менша, ніж у здорової особи та складала 823,6 15. (р«0,001), що вказує на недостатність специфічної функції клітин.
Приклад З
В осіб з лейкемоїдною реакцією мазки крові обробляли, як вказано у випадку зі здоровою особою. Кількість забарвлених гранул у нейтрофілах суттєво не відрізнялась від контролю 128 -3,4; (р»0,05), що може бути показником нормального функціонального стану клітин.
Таким чином, запропонований спосіб дозволяє чітко виявляти гранули в нейтрофілах і за їх кількістю робити висновок про функціональний стан клітин. Спосіб може застосовуватися в діагностиці гематологічних захворювань, наприклад, у диференціальному діагнозі лейкозів і лейкемоїдних реакцій.

Claims (1)

  1. Формула винаходу З Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові, що включає забір крові, підготовку мазка, його фіксацію, забарвлювання, мікроскопічне дослідження нейтрофілів, який відрізняється тим, що мазки фіксують у парах формаліну, забарвлюють метиловим зеленим, повторно фіксують у парах формаліну, забарвлюють (2 еозином і за кількістю забарвлених гранул визначають функціональний стан нейтрофілів. «с Офіційний бюлетень "Промислова власність". Книга 1 "Винаходи, корисні моделі, топографії інтегральних чи мікросхем", 2008, М 4, 25.10.2008. Державний департамент інтелектуальної власності Міністерства освіти і о науки України. Зо «о
    - . и? о о (22) с2 60 б5
UAU200712546U 2007-11-12 2007-11-12 Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові UA30460U (uk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU200712546U UA30460U (uk) 2007-11-12 2007-11-12 Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU200712546U UA30460U (uk) 2007-11-12 2007-11-12 Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA30460U true UA30460U (uk) 2008-02-25

Family

ID=39818047

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU200712546U UA30460U (uk) 2007-11-12 2007-11-12 Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA30460U (uk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107219111A (zh) 一种远缘杂交甜菜的染色体制片方法
Paray et al. Gram staining: a brief review
CN111004838A (zh) 骨髓涂片荧光原位杂交技术在多发性骨髓瘤中的应用
CN102590488B (zh) 调控斑马鱼卵黄蛋白原水平的方法
CN109946278A (zh) 荧光染料dapi对细胞dna进行染色定量的癌症筛查和诊断方法
CN109892320A (zh) 一种细胞保存液及其制备方法和应用
Soares et al. Light microscopy in aquatic ecology: methods for plankton communities studies
CN105994252B (zh) 一种液基薄层细胞保存液及其制备方法
UA30460U (uk) Спосіб визначення функціонального стану нейтрофілів крові
CN103308361A (zh) 一种染色体制片方法
CN105861626A (zh) 一种基于水凝胶微阵列芯片的抗菌药物筛选方法
US20070134130A1 (en) Biological specimen collection and transfer device and method of use
Shukla et al. Forensic Applications of Compound Microscope
CA2230889A1 (en) Stain and capillary slide to detect animal and plant cells
UA33801C2 (uk) Спосіб визначення функціональної активності нейтрофілів крові
RU2562588C2 (ru) Набор для тестирования спермы в пятнах на исследуемом образце
CN111380736A (zh) 一种荧光染色液配置方法及荧光染色液
RU2143685C1 (ru) Способ дифференциального подсчета гранулоцитов, моноцитов и лимфоцитов
CA2860590A1 (en) Fixative composition for cytology, cell fixation method and its applications
CN103710435B (zh) 骨髓染色体提取试剂盒
CN102660644B (zh) 调控斑马鱼卵黄蛋白原mRNA水平的方法
RU2425370C2 (ru) Композиции для окраски мазков крови, костного мозга, пунктатов и отпечатков различных органов
Maclean Automation in staining of cytologic specimens
CN113933130A (zh) 一种人芽囊原虫染色标本的制备方法及其应用
UA66574A (en) Method for determining content of acidic and base proteins in leucocytes of biological material