UA136814U - METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT - Google Patents

METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT Download PDF

Info

Publication number
UA136814U
UA136814U UAU201900203U UAU201900203U UA136814U UA 136814 U UA136814 U UA 136814U UA U201900203 U UAU201900203 U UA U201900203U UA U201900203 U UAU201900203 U UA U201900203U UA 136814 U UA136814 U UA 136814U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
light
agar
cultivation
pseudomonas aeruginosa
differentiation
Prior art date
Application number
UAU201900203U
Other languages
Ukrainian (uk)
Inventor
Андрій Валерійович Білан
Original Assignee
Андрій Валерійович Білан
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Андрій Валерійович Білан filed Critical Андрій Валерійович Білан
Priority to UAU201900203U priority Critical patent/UA136814U/en
Publication of UA136814U publication Critical patent/UA136814U/en

Links

Landscapes

  • Cultivation Of Plants (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Спосіб експрес-диференціації Pseudomonas aeruginosa за допомогою УФ-світла, при якому проводять посів на поживне середовище. Після 12-24 годин культивування ємності з посівами переглядають під УФ-променями.The method of express differentiation of Pseudomonas aeruginosa using UV light, in which the culture is carried out on a nutrient medium. After 12-24 hours of cultivation, the container with the crops is viewed under UV rays.

Description

Корисна модель належить до галузі мікробіології, і може бути використана не лише у лабораторіях ветеринарної та гуманної медицини, а й в умовах підприємств і тваринницьких ферм для диференціації збудників бактеріальних хвороб.The useful model belongs to the field of microbiology, and can be used not only in the laboratories of veterinary and humane medicine, but also in the conditions of enterprises and livestock farms for the differentiation of bacterial pathogens.

Аналогами корисної моделі є методи проведення бактеріологічних досліджень в лабораторії, які базуються на інокуляції поживних середовищ з метою виділення чистої культури збудника, накопичення бактеріальної маси та селективної (культуральної) диференціації бактерій (1-3). Недоліками цього способу є додаткові витрати часу, необхідність культивування на кількох або додаткових селективних середовищах, обмеженість в поживних середовищах та значні об'єми використовуваних поживних середовищ і необхідність у проведенні додаткових досліджень та наявності підготовленого кваліфікованого персоналу.Analogues of a useful model are methods of conducting bacteriological research in the laboratory, which are based on the inoculation of nutrient media with the aim of isolating a pure culture of the pathogen, accumulating bacterial mass and selective (cultural) differentiation of bacteria (1-3). Disadvantages of this method are additional time costs, the need for cultivation on several or additional selective media, limitations in nutrient media and significant volumes of used nutrient media, and the need for additional research and availability of trained qualified personnel.

Прототипом корисної моделі був вибраний метод бактеріологічних досліджень (Ц4-6)|.The prototype of the useful model was the selected method of bacteriological research (C4-6).

Бактеріологічне дослідження - комплекс методів для виявлення патогенних мікроорганізмів у хворого, у носія чи об'єктах зовнішнього середовища. Такі дослідження використовуються також для виявлення умовно-патогенних і санітарно-показових мікробів, що характеризують ступінь мікробного забруднення зовнішнього середовища, для вивчення мікробного пейзажу середовища (об'єкта). Бактеріологічне дослідження може бути використано для діагностики, профілактики інфекційних захворювань, для санітарно-гігієнічної характеристики середовища.Bacteriological research is a set of methods for detecting pathogenic microorganisms in a patient, in a carrier or objects in the external environment. Such studies are also used to identify opportunistic and sanitary-indicative microbes that characterize the degree of microbial contamination of the external environment, to study the microbial landscape of the environment (object). Bacteriological research can be used for diagnosis, prevention of infectious diseases, for sanitary and hygienic characteristics of the environment.

Матеріал та методи бактеріологічного дослідження залежать від мети аналізу, умов середовища, патогенезу та перебігу захворювання. При наявності бактеріємії, збудника виявляють за допомогою посіву крові. У випадках виражених місцевих уражень, збудника слід шукати у виділеннях ураженого органу (як приклад -мастит). Досліджуваний матеріал варто брати в асептичних умовах в стерильний посуд і доставляти в лабораторію можливо швидше. У разі необхідності проби слід зберігати на холоді. Методика взяття проб залежить від об'єкта, характеру захворювання і властивостей мікроорганізму.The material and methods of bacteriological research depend on the purpose of the analysis, environmental conditions, pathogenesis and course of the disease. In the presence of bacteremia, the causative agent is detected using a blood culture. In cases of pronounced local lesions, the causative agent should be sought in the secretions of the affected organ (as an example - mastitis). The researched material should be taken in aseptic conditions in sterile dishes and delivered to the laboratory as soon as possible. If necessary, samples should be stored in the cold. The method of taking samples depends on the object, the nature of the disease and the properties of the microorganism.

Недоліками цього способу є додаткові витрати часу, необхідність культивування на кількох або додаткових селективних середовищах, обмеженість в поживних середовищах та значні об'єми використовуваних поживних середовищ і необхідність у проведенні додаткових досліджень та наявності підготовленого кваліфікованого персоналу.Disadvantages of this method are additional time costs, the need for cultivation on several or additional selective media, limitations in nutrient media and significant volumes of used nutrient media, and the need for additional research and availability of trained qualified personnel.

В основу корисної моделі поставлено задачу розробити спосіб бактеріологічного дослідження з використанням додаткових методів ранньої диференціації збудників на оптимальній кількості поживного середовища, культивування на яких буде тривати 12-24 години, а ріст певних збудників буде мати характерні ознаки.The basis of a useful model is the task of developing a method of bacteriological research using additional methods of early differentiation of pathogens on the optimal amount of nutrient medium, cultivation on which will last 12-24 hours, and the growth of certain pathogens will have characteristic signs.

Задача вирішується тим, що спосіб експрес-диференціації Рзхепдотопаб5 аегидіпоха за допомогою Уф-світла, при якому проводять посів на поживне середовище, згідно з корисною моделлю, після 12-24 годин культивування ємності з посівами переглядають під УФ-променями.The problem is solved by the fact that the method of express differentiation of Rzhepdotopab5 aegidipoch using UV light, in which inoculation is carried out on a nutrient medium, according to a useful model, after 12-24 hours of cultivation, the container with the crops is viewed under UV rays.

Згідно з корисною моделлю, використання ультрафіолетової лампи з УФ-променями довжиною 365 нм дозволяє охопити одноразовим дослідженням більшу кількість зразків.According to a useful model, the use of an ultraviolet lamp with UV rays of 365 nm allows a larger number of samples to be covered in a single examination.

Для експрес-диференціації Рзепдотопаб5 аєгидіпозва можна використати здатність цих мікроорганізмів утворювати специфічні речовини (флуоресцеїни та сидерофори), які проявляють за допомогою ультрафіолетового світла з довжиною хвилі 365 нм, після 12-24 годин культивування.The ability of these microorganisms to form specific substances (fluoresceins and siderophores) that are manifested with the help of ultraviolet light with a wavelength of 365 nm after 12-24 hours of cultivation can be used for express differentiation of Rzepdotopab5 aegidipozva.

Спосіб виконання корисної моделі наведено в нижчезазначених прикладах.The method of implementation of a useful model is given in the following examples.

Приклад 1. Для розробки методу, як типові використовувались штами бігеріососсив5 адаіасіає, Зігеріососсив ибрегіз, тарпуіососси5 ацйгеийив, ЕвсПегісніа соїї, Епіегорасієг, Зпідеїа,Example 1. For the development of the method, as typical strains were used Bigeriosossiv5 adaiasiae, Zigeriosossiv ibregiz, Tarpuiosossiv5 acygeiiiv, EusPegisnia soii, Epiegorassieg, Zpideia,

ЗаІтопеїа, Кіерзівіа, Спгобасієвг, Ргоївив, Раендотопа5 та Сапайада а|Ірісапв.ZaItopeia, Kierzivia, Spgobasievg, Rgoiviv, Raendotopa5 and Sapayada a|Irisapv.

Приклад 2. Для культивування мікроорганізмів використовувався різноманітний лабораторний посуд (чашки Петрі з секторами (на З і 4 сектори), міні чашки Петрі, пробірки, мікропробірки, культуральні мікроплашки і пластини) об'ємом від 20 мл до 20 мкл. В який розливали розплавлені агаризовані середовища - Ендо, Левіна, бакто-агар, Плоскірева, ацетатний агар, ентерокок агар, малонат агар, лактозо-пептонне середовище, хромогенний агар (СМ), агар Кліглера, 5-5-агар, глюкозо-фосфатний бульйон, цитратний агар, агар Сіммонса та селективний, вісмут-сульфітний агар, магнієве середовище, сольовий агар, агар Байєрд-Example 2. A variety of laboratory dishes (Petri dishes with sectors (3 and 4 sectors), mini Petri dishes, test tubes, microtubes, culture microplates and plates) with a volume of 20 ml to 20 μl were used for the cultivation of microorganisms. In which melted agar media were poured - Endo, Levina, bacto-agar, Ploskireva, acetate agar, enterococcus agar, malonate agar, lactose-peptone medium, chromogenic agar (CM), Kligler's agar, 5-5-agar, glucose-phosphate broth , citrate agar, Simmons agar and selective, bismuth-sulfite agar, magnesium medium, salt agar, Bayerd agar

Паркера, буфер натрієво-хлоридно пептонний, хромогенний агар (СР) та основу кров'яного агару з азидом натрію.Parker's buffer, sodium chloride peptone buffer, chromogenic agar (CP) and blood agar base with sodium azide.

Приклад 3. Після 12-24 годинного культивування вище вказаних мікроорганізмів на різноманітних поживних середовищах, ємності переглядалися при денному освітлені та під ультрафіолетовою лампою з довжиною хвилі 365 нм.Example 3. After 12-24 hours of cultivation of the above-mentioned microorganisms on various nutrient media, the containers were viewed in daylight and under an ultraviolet lamp with a wavelength of 365 nm.

Приклад 4. Підтвердження виду збудників проводилось біохімічними тестами: оксидазним, окисленням глюкози, ростом при 42"С, окисленням глюконату, розкладанням бо трифенілтетразолію хлориду та пептонізацією молока.Example 4. The type of pathogen was confirmed by biochemical tests: oxidase, glucose oxidation, growth at 42"C, gluconate oxidation, decomposition of triphenyltetrazolium chloride, and peptonization of milk.

Приклад 5. Оскільки більшість видів бактерій, що належать до роду Рзєпаотопавх, добре відомі здатністю продукувати сидерофори - хелатні сполуки, які переносять залізо (І) на поверхню бактеріальної клітини, та під дією Уф-променів, здатні флуоресціювати. Цю властивість можливо використати для ранньої (експрес) диференціації цього типу збудників.Example 5. Since most species of bacteria belonging to the genus Rzepaotopavkh are well known for their ability to produce siderophores - chelating compounds that transfer iron (I) to the surface of the bacterial cell and are able to fluoresce under the influence of UV rays. This property can be used for early (express) differentiation of this type of pathogens.

Отже, спосіб дозволяє швидко диференціювати збудника вже під час культивування. Крім цього спосіб дозволяє охопити одноразовим дослідженням більшу кількість зразків або поголів'я.Therefore, the method allows to quickly differentiate the pathogen already during cultivation. In addition, the method allows a one-time study to cover a larger number of samples or livestock.

Джерела інформації: 1. Рег7Іо М. Сіїпіса! Містобіоіоду Неміємув. - 1998. - 1:268-280. 2. МІКіеє М.Е., АІтопа М.К., Маг: Е.Р. Віїїви Меадіса! дошгтпаї. - 1992. - 3. Нієдтап М.Р. єї аІ дошгпаї ої Сіїіпіса! Місгобіоіоаду. - 1991. - 29:2385-2389. 4. Миттау Р., Тгаупог Р., Норзоп 0. Ууоштпаї ої Сіїпіса! Місторіоіоду. - 1992. - 30:1600-1601. 5. бБогіапо Е., Ропіє С дошгпаї ої Сіїпіса! Місторіоіоду. - 1992. - 30:3033-3034. б. Метіпо еї аї!. АБвіг. А!йвіг. Місгобіо!. - 1995. - 16 (4):17-3.Sources of information: 1. Reg7Io M. Siipisa! Mystobiiodu Nemiemuv. - 1998. - 1:268-280. 2. Mikieye M.E., AItopa M.K., Mag: E.R. Go Meadis! doshgtpay - 1992. - 3. Niedtap M.R. eyi aI doshgpai oi Siiiipis! Misgobioioad. - 1991. - 29:2385-2389. 4. Mittau R., Tgaupog R., Norzop 0. Uuoshtpai oi Siipisa! Mystoriiod. - 1992. - 30:1600-1601. 5. bBogiapo E., Ropie S doshgpai oi Siipisa! Mystoriiod. - 1992. - 30:3033-3034. b. Metipo ey ai!. ABvig. A!yvig. Misgobio!. - 1995. - 16 (4):17-3.

Claims (2)

ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІUSEFUL MODEL FORMULA 1. Спосіб експрес-диференціації Реендотопазх аегидіпоза за допомогою Уф-світла, при якому проводять посів на поживне середовище, який відрізняється тим, що після 12-24 годин культивування ємності з посівами переглядають під УФ-променями.1. The method of express differentiation of Reendotopazh aegidiposis with the help of UV light, in which inoculation is carried out on a nutrient medium, which differs in that after 12-24 hours of cultivation, containers with inoculations are viewed under UV rays. 2. Спосіб за п. 1, який відрізняється тим, що використовується ультрафіолетова лампа з УФ- променями довжиною 365 нм, що дозволяє охопити одноразовим дослідженням більшу кількість зразків.2. The method according to claim 1, which is characterized by the fact that an ultraviolet lamp with UV rays of 365 nm length is used, which allows to cover a larger number of samples with a single examination.
UAU201900203U 2019-01-08 2019-01-08 METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT UA136814U (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201900203U UA136814U (en) 2019-01-08 2019-01-08 METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201900203U UA136814U (en) 2019-01-08 2019-01-08 METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA136814U true UA136814U (en) 2019-09-10

Family

ID=71073909

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU201900203U UA136814U (en) 2019-01-08 2019-01-08 METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA136814U (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2505813C1 (en) Method for determining microorganism sensitivity to antimicrobial substances
UA136814U (en) METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT
RU2531236C1 (en) Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus
CN100345977C (en) Preparing method for cow mammitis staphylococcus culture fluid and its use
RU2452774C1 (en) Method of evaluating bacterial load of urine, prostatic secretion, and ejaculate
RU2648160C2 (en) Nutrient medium for the isolation of bacteria yersinia enterocolitica
RU2292398C2 (en) Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus
RU2818369C1 (en) Method for assessing lactobacillus viability preservation under effect of various antiseptic concentrations
RU2738858C1 (en) Method of extracting uncultivated forms of staphylococci
UA131010U (en) METHOD OF DETERMINATION OF PATIENTS AND CARRIERS OF STAPHYLOCOCCUS AUREUS CAUTION DIRECTLY IN THE PRODUCTION CONDITIONS
RU2261903C1 (en) NUTRIENT MEDIUM FOR DETECTION OF Mycoplasma hominis AND METHOD FOR DIAGNOSIS OF UROGENITAL MYCOPLASMOSIS
KR100316321B1 (en) Kit for detecting microorganisms
RU2021360C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum-1 showing activity against shigella dysenteria-1
RU2021362C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum-3 showing activity against shigella dysenteria-3
RU2021370C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum b5 showing activity against shigella boydii-5
RU2332461C1 (en) Method of pathogenic staphylococci detection by plasma coagulating activity
RU2021358C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum showing activity against shigella boydii b15
RU2032742C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum p active with relation to shigella dysenteriae 2-9, shigella flexner 6, shigella boydii 1-10, 14, 15, shigella sonnei
RU2021357C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum-2 showing activity against shigella dysenteria-2
RU2021361C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum ls4 showing activity against shigella dysenteria-4
RU2021355C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum b1 showing activity against shigella boydi 1
Shyrobokov et al. Study guide of the practical classes course part І
RU2021366C1 (en) Strain bacteriophagum shigellosum showing activity against shigella dysenteria-8
Maroff Determination of the inhibitory activity of some biological extracts agaiast multi rrsistans antibiotic Staphylococcus specis which and isolated from different sources of infechtion
Anelechi et al. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences